JP2019513817A

JP2019513817A - Ｔｉｇｉｔに対する抗体

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Publication number: JP2019513817A
Application number: JP2018566191A
Authority: JP
Inventors: ツォー，ジェイ．，ユン; 直也鶴下; デュラマド，オマール
Original assignee: ジェイエヌバイオサイエンシーズエルエルシー; アブムノセラピューティクスエルエルシー
Priority date: 2016-03-04
Filing date: 2017-03-03
Publication date: 2019-05-30
Anticipated expiration: 2037-03-03
Also published as: US20200297844A1; JP7109382B2; TW201734043A; SA522431756B1; MY191649A; JP2025032326A; UY37141A; KR102588359B1; SA518392332B1; KR102355950B1; CN108883164B; EP3423089A1; TWI805127B; IL261188B; JP2022126847A; AU2017228474A1; KR20220024837A; MY202516A; KR20180119653A; SG11201806992VA

Abstract

本発明は、TIGITと特異的に結合するモノクローナル抗体を提供する。本モノクローナル抗体には、CD155に対するTIGITの結合を阻害することによりT細胞及びナチュラルキラー細胞を実質的に活性化する能力を有する。本モノクローナル抗体は、他の適用の中で、がん及び感染性疾患の処置に使用することができる。
【選択図】図１

Description

関連出願の相互参照
本願は、2016年3月4日に出願した米国特許仮出願第62/304,045号及び2016年10月26日に出願した米国特許仮出願第62/413,025号の優先権を主張するものであり、前記仮出願の開示は、その全体が参照により本明細書に組み入れられる。

本明細書で提供するのは、とりわけ、免疫チェックポイント分子と特異的に結合することによって免疫細胞の実質的な活性化をもたらすモノクローナル抗体、並びに他の適用の中で、がん及び感染性疾患の処置のためのそれらの使用である。

抗原特異的免疫応答は、正及び負の調節因子の複数の層により制御される複雑な生物学的プロセスである。T細胞は、先ず、T細胞受容体(TCR)によって、抗原提示細胞上の主要組織適合複合体(MHC)分子により提示されるそれらの同種ペプチド抗原の認識により刺激される。最適なT細胞活性化は、CD28などの共刺激分子により提供される「二次シグナル」を必要とする。免疫応答は、さらに、共刺激分子、例えば、TNF受容体スーパーファミリーに属するOX40、GITR及び4-1BBによって正に調節され、チェックポイント分子、例えば、PD-1及びCTLA-4によって負に調節される。チェックポイント分子の機能は、体内の免疫系の望ましくない過剰反応を防止することであるが、チェックポイント分子はまた、がん及び感染性疾患と有効に闘う免疫系の能力を制限する。アンタゴニストモノクローナルIgG抗体によるPD-1又はCTLA-4機能の遮断は、ヒトにおけるがんの免疫療法に有効であると報告されている(総説については、Pardoll、Nat. Rev. Cancer、12:252-264、2012; Mahoneyら、Nat. Rev. Drug Discov.14:561-584、2015; Shinら、Curr. Opin. Immunol. 33:23-35、2015; Marquez-Rodasら、Ann. Transl. Med. 3:267、2015を参照されたい)。

他のチェックポイント分子、例えば、TIM-3、LAG-3、TIGIT、BTLA及びVISTAが報告されている(Mercierら、Front. Immunol. 6:418、2015)。細胞質側尾部に免疫受容抑制性チロシンモチーフ(ITIM)を有する免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーである、TIGIT(Ig及びITIMドメインを有する、T細胞免疫受容体)は、活性化したT細胞及びナチュラルキラー(NK)細胞のサブセット上で発現される(Yuら、Nat. Immunol. 10:48-57、2009)。TIGITが、CD155(PVR及びnecl-5とも呼ばれる)、CD112(PVRL2及びネクチン-2とも呼ばれる)、及びおそらくCD113(PVRL3及びnectin-3とも呼ばれる)と相互作用することは、公知である(Mercierら、上掲; Martinetら、Nat. Rev. Immunol.15:243-254、2015)。抗原提示細胞上で発現される高親和性リガンドCD155とTIGITの結合は、T細胞及びNK細胞の機能を抑制することが報告されている(Mercierら、上掲; Jollerら、J. Immunol. 186:1338-1342、2011; Stanietskyら、Eur. J. Immunol. 43:2138-2150、2013; Liら、J. Biol. Chem. 289:17647-17657、2014; Zhangら、Cancer Immunol. Immunother.、2016年2月3日付けEpub)。TIGITは、樹状細胞によるサイトカイン産生を調節することによって間接的にT細胞を阻害することも報告されている(Yuら、上掲)。

腫瘍は、浸潤性T細胞が消耗し、NK細胞が、免疫応答から逃れるためにチェックポイント分子、例えばPD-1及びTIGITによって静められる、高抑制性の微小環境を構成する(Johnstonら、Cancer Cell. 26:926-937、2014; Chauvinら、J. Clin. Invest. 125:2046-2058、2015; Inozumeら、J. Invest. Dermatol.、2015年10月12日付けEpub)。CD8+ T細胞上でのTIGITの高レベル発現は、AML対象の臨床転帰不良と相関関係があることが報告されている(Kongら、Clin. Cancer Res.、2016年1月13日付けEpub)。AML対象からの消耗したTIGIT+ CD8+ T細胞の機能的欠陥は、TIGIT発現のsiRNA媒介ノックダウンにより元に戻されることが報告された(Kongら、上掲)。血液のHIV感染及びリンパ組織のSIV感染中のエフェクターCD8+ T細胞がより高いTIGITレベルを示したことも報告されている(Chewら、PLOS Pathogens、12:e1005349、2016)。加えて、TIGITのex vivoでの抗体遮断は、ウイルス特異的CD8+ T細胞エフェクター応答を回復させることが報告された。

Pardoll、Nat. Rev. Cancer、12:252-264、2012 Mahoneyら、Nat. Rev. Drug Discov.14:561-584、2015 Shinら、Curr. Opin. Immunol. 33:23-35、2015 Marquez-Rodasら、Ann. Transl. Med. 3:267、2015 Mercierら、Front. Immunol. 6:418、2015 Yuら、Nat. Immunol. 10:48-57、2009 Martinetら、Nat. Rev. Immunol.15:243-254、2015 Jollerら、J. Immunol. 186:1338-1342、2011 Stanietskyら、Eur. J. Immunol. 43:2138-2150、2013 Liら、J. Biol. Chem. 289:17647-17657、2014 Zhangら、Cancer Immunol. Immunother.、2016年2月3日付けEpub Johnstonら、Cancer Cell. 26:926-937、2014 Chauvinら、J. Clin. Invest. 125:2046-2058、2015 Inozumeら、J. Invest. Dermatol.、2015年10月12日付けEpub Kongら、Clin. Cancer Res.、2016年1月13日付けEpub Chewら、PLOS Pathogens、12:e1005349、2016

本発明は、とりわけ、ヒトTIGITとの結合についてTIG1、TIG2又はTIG3のいずれかと競合する抗体を提供する。TIGITとの特異的結合のために、抗体TIG1は、配列番号14の成熟軽鎖可変領域及び配列番号10の成熟重鎖可変領域を特徴とし、抗体TIG2は、配列番号22の成熟軽鎖可変領域及び配列番号18の成熟重鎖可変領域を特徴とし、抗体TIG3は、配列番号30の成熟軽鎖可変領域及び配列番号26の成熟重鎖可変領域を特徴とする。一部の抗体は、ヒトTIGIT上の、TIG1、TIG2又はTIG3と同じエピトープと結合する。一部の抗体は、CD155に対するヒトTIGITの結合を阻害する。一部の抗体は、実質的にTIG1からの対応する3つの軽鎖CDR及び3つの重鎖CDRからの、3つの軽鎖CDR及び3つの重鎖CDRを含む。一部の抗体は、TIG1、TIG2又はTIG3の3つの軽鎖CDR及び3つの重鎖CDRを含む。一部の抗体は、TIG1(配列番号15〜17の軽鎖及び配列番号11〜13の重鎖)、TIG2(配列番号23〜25の軽鎖及び配列番号19〜21の重鎖)又はTIG3(配列番号31〜33の軽鎖及び配列番号27〜29の重鎖)のいずれかの、Kabatにより定義される3つの重鎖CDR及びKabatにより定義される3つの軽鎖CDRを含む。

一部のモノクローナル抗体は、配列番号1の残基35及び37並びに/又は配列番号1の残基49及び51を含む、ヒトTIGITのエピトープと結合する。一部のモノクローナル抗体は、配列番号1の残基35、37、49及び51を含む、ヒトTIGITのエピトープと結合する。一部のモノクローナル抗体は、配列番号1の残基35〜51、及びいずれかの側の、配列番号1からの5個以下の隣接アミノ酸からなるペプチドと結合する。一部のモノクローナル抗体は、配列番号1の残基35〜51からなるペプチドと結合する。一部のそのようなモノクローナル抗体は、配列番号1の3〜20個の連続する残基からなるエピトープと結合する。

一部の抗体は、キメラ抗体、ヒト化抗体、ベニヤ(veneered)抗体、又はヒト抗体である。一部の抗体は、ヒトIgG1カッパアイソタイプを有する。一部の抗体は、ヒトIgG4カッパアイソタイプを有する。抗体は、インタクト抗体又は一本鎖抗体、Fab又はF(ab')₂断片であり得る。

本発明は、上記抗体のいずれかと薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物をさらに提供する。

本発明は、対象におけるがんを処置する又はがんの予防をもたらす方法であって、がんを有する又はがんのリスクがある対象に上記抗体のいずれかの有効なレジメンを投与することを含む方法をさらに提供する。一部の方法では、対象は、急性骨髄性白血病又は成人T細胞白血病を有する。

他の実施形態では、本発明は、免疫チェックポイント阻害剤と組み合わせた本明細書に記載の抗体の使用を企図している。抗原特異的T細胞応答を増幅する結果となる免疫チェックポイントの遮断は、ヒトがん療法における有望な手法であることが示されている。遮断の候補であって、様々な腫瘍細胞型において選択的にアップレギュレートされるものもある免疫チェックポイント(リガンド及び受容体)の例としては、PD-1(プログラム細胞死タンパク質1)、PD-L1(プログラム死リガンド-1)、BTLA(B及びTリンパ球アテニュエーター)、CTLA-4(細胞傷害性Tリンパ球関連抗原4)、TIM-3(T細胞膜タンパク質3)、LAG-3(リンパ球活性化遺伝子3)、T細胞活性化のVドメイン免疫グロブリン抑制因子(VISTA)、CD96、A2aR(アデノシンA2a受容体)、A2bR(アデノシンA2b受容体)、CD73(エクト-5'-ヌクレオチダーゼ)、CD39(ENTPD1、NTPDase1)、アルギナーゼ、インドールアミンピロール-2,3-ジオキシゲナーゼ(indoleamine-pyrrole 2,3-dioxygenase)(IDO)、トリプトファン-2,3-ジオキシゲナーゼ(tryptophan 2,3-dioxygenase)(TDO)、及びキラー細胞抑制受容体が挙げられる。免疫チェックポイント阻害剤、及びそれらを用いる併用療法については本明細書の他の箇所で詳細に論じる。

本発明は、病原体に感染した対象を処置する方法であって、対象に上記抗体のいずれかの有効なレジメンの有効なレジメンを投与することを含む方法をさらに提供する。一部の方法では、病原体は、HIV又はSIVである。他の方法では、病原体は、ウイルス、細菌、真菌又は原生動物である。

さらなる態様では、D51を含む1個以上のアミノ酸残基においてTIGITポリペプチドと結合する抗TIGIT抗体であって、TIGITポリペプチドが配列番号1に対応するアミノ酸配列を有する、抗TIGIT抗体を本明細書で提供する。一部の実施形態では、抗体は、モノクローナル抗体である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、キメラ、ヒト化又はベニヤ抗体である。一部の実施形態では、抗体は、ヒト抗体である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、L44、I47又はH55を含む1個以上のアミノ酸残基と結合しない。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、配列番号14の成熟軽鎖可変領域、及び配列番号10の成熟重鎖可変領域を含む。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、配列番号1に対応するアミノ酸配列上の、TIG1と同じエピトープと結合する。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、配列番号15〜17を含む3つの軽鎖CDR及び配列番号11〜13を含む3つの重鎖CDRを含む。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、配列番号35と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟重鎖可変領域、及び配列番号37と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟軽鎖可変領域を含む。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、配列番号35のアミノ酸配列を含み、成熟軽鎖可変領域は、配列番号37のアミノ酸配列を含む。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号40を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号41を含む軽鎖定常領域に連結されている。

さらなる態様では、本明細書で提供するのは、ヒトTIGITとの結合についてTIG1、TIG2又はTIG3のいずれかと競合するモノクローナル抗体であって、CD155との特異的結合のために、抗体TIG1が、配列番号14の成熟軽鎖可変領域及び配列番号10の成熟重鎖可変領域を特徴とし、抗体TIG2が、配列番号22の成熟軽鎖可変領域及び配列番号18の成熟重鎖可変領域を特徴とし、抗体TIG3が、配列番号30の成熟軽鎖可変領域及び配列番号26の成熟重鎖可変領域を特徴とする、モノクローナル抗体である。一部の実施形態では、抗体は、ヒトTIGIT上の、TIG1、TIG2又はTIG3のいずれかと同じエピトープと結合する。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、CD155に対するヒトTIGITの結合を阻害する。一部の実施形態では、抗体は、TIG1、TIG2又はTIG3のいずれか1つの3つの軽鎖CDR及び3つの重鎖CDRに対応する、3つの軽鎖CDR及び3つの重鎖CDRを含む。一部の実施形態では、抗体は、TIG1、TIG2又はTIG3のいずれか1つの3つの重鎖CDR及び3つの軽鎖CDRを含む。一部の実施形態では、抗体は、TIG1(配列番号15〜17の軽鎖及び配列番号11〜13の重鎖)、TIG2(配列番号23〜25の軽鎖及び配列番号19〜21の重鎖)又はTIG3(配列番号31〜33の軽鎖及び配列番号27〜29の重鎖)のいずれか1つの、Kabatにより定義される3つの重鎖CDR及びKabatにより定義される3つの軽鎖CDRを含む。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、キメラ、ヒト化又はベニヤ抗体である。一部の実施形態では、抗体は、ヒト抗体である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、ヒトIgG1カッパアイソタイプを有する。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、インタクト抗体である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、一本鎖抗体、Fab又はF(ab')2断片である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、配列番号35と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟重鎖可変領域、及び配列番号37と少なくとも90%の配列同
一性を有する成熟軽鎖可変領域を含む。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、配列番号35と少なくとも95又は99%の配列同一性を有し、成熟軽鎖可変領域は、配列番号37と少なくとも95又は99%の配列同一性を有する。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、配列番号35のアミノ酸配列を有し、成熟軽鎖可変領域は、配列番号37のアミノ酸配列を有する。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号40を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号41を含む軽鎖定常領域に連結されている。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号60を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号64を含む軽鎖定常領域に連結されている。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号61を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号64を含む軽鎖定常領域に連結されている。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、配列番号43と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟重鎖可変領域、及び配列番号45と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟軽鎖可変領域を含む。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、配列番号43と少なくとも95又は99%の配列同一性を有し、成熟軽鎖可変領域は、配列番号45と少なくとも95又は99%の配列同一性を有する。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、配列番号43のアミノ酸配列を有し、成熟軽鎖可変領域は、配列番号45のアミノ酸配列を有する。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号48を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号49を含む軽鎖定常領域に連結されている。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号62を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号65を含む軽鎖定常領域に連結されている。一部の実施形態では、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号63を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号65を含む軽鎖定常領域に連結されている。さらに他の態様では、本明細書で提供するのは、配列番号1の残基35及び37並びに/又は配列番号1の残基49及び51を含むエピトープと結合するモノクローナル抗体である。一部の実施形態では、抗体は、配列番号1の残基35、37、49又は51を含むエピトープと結合する。一部の実施形態では、抗体は、配列番号1の残基35〜51、及びいずれかの側の、配列番号1からの5個以下の隣接アミノ酸からなるペプチドと結合する。一部の実施形態では、抗体は、配列番号1の残基35〜51からなるペプチドと結合する。一部の実施形態では、エピトープは、配列番号1の連続する3〜20個の残基からなる。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体は、以下の特性:(a)CD155に対するTIGITの結合を、任意に15〜100ng/mlのIC50で、阻害する、(b)CD155を発現する抗原提示細胞の存在下での固有T細胞活性化をIL-2産生により測定して、任意に1.5〜3倍、増加させる、(c)抗原特異的T細胞活性化をIL-12産生により測定して、任意に1.5〜3倍、増加させる、(d)ナチュラルキラー細胞活性化をIL-2、IL-6、TNFα又はIFNγのいずれかの産生により測定して、任意に1.5〜3倍、増加させる、(e)少なくとも1つの炎症誘発性サイトカインのT細胞産生を、任意に1.5〜3倍、増加させる、(f)少なくとも1つの抗炎症性サイトカインのT細胞産生を、任意に1.5〜3倍、低減させる、のうちの1つ以上を有する。

別の態様では、本明細書で提供するのは、本明細書に記載の抗体のいずれかと薬学的に許容される担体とを含む医薬組成物である。

さらなる態様では、がんを処置する又はがんの予防をもたらす方法であって、がんを有する又はがんのリスクがある対象に本明細書で開示する抗体のいずれかの本明細書で提供する有効なレジメン又は治療有効量を投与することを含む方法を本明細書で提供する。一部の実施形態では、がんは、急性骨髄性白血病又は成人T細胞白血病である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体により活性化される腫瘍浸潤性T細胞が対象に投与される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体により増強される、がんに対する免疫応答を誘導するワクチンが、対象に投与される。一部の実施形態では、ワクチンは、がん細胞の表面で発現される抗原又はその断片を含む。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、対象にがんに対するその細胞傷害活性が抗体により増強される、ナチュラルキラー細胞が投与される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、がん細胞の表面で発現される抗原に対する二次抗体が対象にさらに投与され、それによってがんに対する前記二次抗体のエフェクター媒介性細胞傷害性が抗体により増強される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、免疫細胞の表面で発現される抗原に対する二次抗体が対象にさらに投与される。一部の実施形態では、免疫細胞は、T細胞又はナチュラルキラー細胞である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗原は、CTLA-4、PD-1又はPD-L1である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、化学療法、放射線照射、細胞療法及び外科手術からなる群から選択される1つ以上の療法が対象にさらに投与される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、1つ以上の免疫チェックポイント受容体又はリガンドの阻害剤が対象にさらに投与される。一部の実施形態では、阻害剤は、イピリムマブ、ニボルマブ、ペムブロリズマブ(ランブロリズマブ)及びアテゾリズマブからなる群から選択される。

さらなる態様では、本明細書で提供するのは、病原体に感染した対象を処置する方法であって、本明細書で開示する抗体のいずれかの有効なレジメン又は治療有効量を対象に投与することを含む方法である。一部の実施形態では、病原体は、ウイルス、細菌、真菌又は原生動物である。一部の実施形態では、病原体は、HIV、SIV、肝炎、ヘルペスウイルス、アデノウイルス、インフルエンザウイルス、フラビウイルス、エコーウイルス、ライノウイルス、コザックウイルス、コロナウイルス(cornovirus)、呼吸器合胞体ウイルス、ムンプスウイルス、ロタウイルス、麻疹ウイルス、風疹ウイルス、パルボウイルス、ワクシニアウイルス、HTLVウイルス、デングウイルス、パピローマウイルス、軟属腫ウイルス、ポリオウイルス、狂犬病ウイルス、JCウイルス、アルボウイルス脳炎ウイルス、クラミジア、リケッチア菌、マイコバクテリア、ブドウ球菌、連鎖球菌(treptocci)、肺炎連鎖球菌(pneumonococci)、髄膜炎菌、淋菌(conococci)、クレブシエラ菌、プロテウス菌、セラチア菌、シュードモナス菌、レジオネラ菌、ジフテリア、サルモネラ菌、桿菌、コレラ、破傷風、ボツリヌス中毒、炭疽、ペスト、レプトスピラ症及びライム病菌である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、対象は、抗体により増強される病原体に対する免疫応答を誘導するワクチンで処置される。一部の実施形態では、ワクチンは、病原体のタンパク質又はその断片を含む。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、病原体に対する二次抗体が対象にさらに投与され、抗体により病原体に対する二次抗体のエフェクター媒介性細胞傷害性が増強される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗ウイルス剤、抗寄生虫剤、抗菌剤又は抗真菌剤のうちの1つ以上が対象にさらに投与される。

別の態様では、本明細書で提供するのは、がんの処置を補助する方法であって、がんを有する対象に本明細書で開示する抗体のいずれかの治療有効量を投与することを含む方法である。一部の実施形態では、がんは、急性骨髄性白血病又は成人T細胞白血病である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体により活性化される腫瘍浸潤性T細胞が対象に投与される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗体により増強される、がんに対する免疫応答を誘導するワクチンが、対象に投与される。一部の実施形態では、ワクチンは、がん細胞の表面で発現される抗原又はその断片を含む。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、対象にがんに対するその細胞傷害活性が抗体により増強される、ナチュラルキラー細胞が投与される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、がん細胞の表面で発現される抗原に対する二次抗体が対象に投与され、それによってがんに対する二次抗体のエフェクター媒介性細胞傷害性が抗体により増強される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、免疫細胞の表面で発現される抗原に対する二次抗体が対象にさらに投与される。一部の実施形態では、免疫細胞は、T細胞又はナチュラルキラー細胞である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、抗原は、CTLA-4、PD-1又はPD-L1である。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、化学療法、放射線照射、細胞療法及び外科手術からなる群から選択される1つ以上の療法が対象にさらに投与される。本明細書で開示するあらゆる実施形態のうちの一部の実施形態では、1つ以上の免疫チェックポイント受容体又はリガンドの阻害剤が対象にさらに投与される。一部の実施形態では、1つ以上の免疫チェックポイント受容体又はリガンドは、CTLA-4、PD-1及びPD-L1からなる群から選択される。一部の実施形態では、阻害剤は、イピリムマブ、ニボルマブ、ペムブロリズマブ(ランブロリズマブ)及びアテゾリズマブからなる群から選択される。

本明細書に記載の態様及び実施形態の各々は、その実施形態又は態様の文脈から明確に又は明瞭に排除されない限り、一緒に使用することができる。

組換えTIGIT及びCD155タンパク質用の発現ベクターの模式的構造の図である。抗TIGIT抗体によるTIGIT-CD155相互作用の阻害を示す図である。 TIG1 VHのアミノ酸配列を示す図である。 TIG1 VLのアミノ酸配列を示す図である。 TIG2 VHのアミノ酸配列を示す図である。 TIG2 VLのアミノ酸配列を示す図である。 TIG3 VHのアミノ酸配列を示す図である。 TIG3 VLのアミノ酸配列を示す図である。 HuTIG1 VH遺伝子のヌクレオチド配列及びコードされているアミノ酸配列を示す図である。 HuTIG1 VL遺伝子のヌクレオチド配列及びコードされているアミノ酸配列を示す図である。発現ベクターpHuTIG1.AAの模式的構造を示す図である。ヒトTIGITに対するHuTIG1-IgG1.AAの結合についてのELISA分析の結果を示す図である。ヒトTIGITに対するHuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAの結合についてのFACS分析の図である。ヒトTIGITとヒトCD155間の相互作用のHuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAによる遮断を示すグラフである。 HuTIG3 VH遺伝子のヌクレオチド配列及びコードされているアミノ酸配列を示す図である。 HuTIG3 VL遺伝子のヌクレオチド配列及びコードされているアミノ酸配列を示す図である。ヒトTIGITに対するHuTIG3-IgG1.AAの結合についてのELISA分析を示す図である。抗原特異的リコール刺激の際のTIG1によるIL-2産生増加を示す図である。抗原特異的リコール刺激の際のTIG1によるCD4+及びCD8+ T細胞増殖増加を示す図である。 K562細胞上でのCD155の発現(上の図)及びNK細胞上でのTIGITの発現(下の図)を示す図である。 K562標的細胞に対するTIG1によるNK細胞媒介性細胞傷害性増強を示す図である。 HuTIG1-IgG1.AAがサイトカインエフェクター応答を増強することを示す図である。ジャーカット-TIGIT細胞株によるその細胞表面でのヒトTIGITの発現を示す図である。 HuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAがCDC活性を惹起しないことを示す図である。 HuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAが、抗ヒトTIGIT抗体についてのin vitro T細胞アンタゴニスト活性アッセイにおいて固有T細胞活性化を増加させたことを示す図である。 GM-CSF/IL-4により分化された単球由来の樹状細胞(moDCs)がCD112、CD155及びPD-L1を発現したことを示す図である。 HuTIG1-IgG1.AA、抗PD-L1抗体、及び抗PD-L1抗体との組合せでのHuTIG1-IgG1.AAの添加時の、IFNγの分泌増進を示す図である。図２６Ａは、ヒトリンパ系細胞及び骨髄系腫細胞上でのTIGIT及びCD96の発現を示す図である。図２６Ｂは、様々な発現レベルでの抗TIGIT染色の代表ヒストグラムを示す図である。フローサイトメトリーによるHuTIG1-IgG1.AAエピトープマッピングを示す図である。スティック表現で表示された番号付きエピトープ残基側鎖を伴うヒトTIGITの細胞外IgVドメインのリボン図を示す図である。 TIGIT発現についてのCD4+ T細胞サブセット分析の結果を示す図である。 TIGIT発現についてのCD8+ T細胞サブセット分析の結果を示す図である。 K562標的細胞に対するHuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAによるNK細胞媒介性細胞傷害性増強を示す図である。図３２Ａは、解離した腫瘍試料からの腫瘍浸潤性リンパ球上でのTIGITの発現を示す図である。図３２Ｂは、様々な発現レベルでの抗TIGIT染色の代表ヒストグラムを示す図である。

本発明は、細胞質側尾部に免疫受容抑制性チロシンモチーフ(ITIM)を有する免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーである、TIGITの細胞外ドメインと特異的に結合するモノクローナル抗体をとりわけ提供する。本モノクローナル抗体は、CD155に対するTIGITの結合を阻害し、それによってT細胞及び/又はNK細胞を活性化することができる。本モノクローナル抗体は、他の適用の中で、がん及び感染性疾患の処置に使用することができる。

I.定義
モノクローナル抗体又は他の生物学的実体、例えばTIGITの断片は、典型的には単離された形態で提供される。これは、抗体又は他の生物学的実体(biologically entity)が、モノクローナル抗体に、典型的に、その産生又は精製に起因する干渉タンパク質及び他の汚染物質について少なくとも純度50% w/wであることを意味するが、その使用を容易にすることを目的とした過剰の薬学的に許容される担体又は他のビヒクルが混合されている可能性を排除しない。モノクローナル抗体は、産生又は精製由来の干渉タンパク質及び汚染物質について少なくとも60、70、80、90、95又は99% w/w純度であることもある。多くの場合、単離されたモノクローナル抗体又は他の生物学的実体薬剤(biological entity agent)は、その精製後に残存する主要高分子種である。

モノクローナル抗体とその標的抗原の特異的結合は、例えば、実施例15のアッセイにより判定して、少なくとも10⁶、10⁷、10⁸、10⁹、又は10¹⁰M^-1の親和性(会合定数又はKa)を意味する。特異的結合は、少なくとも1つの無関係の標的に対して起こる非特異的結合より規模が検出可能に高く、また区別可能である。特異的結合は、特定の官能基間、又は特定の空間的適合性(例えば、鍵と鍵穴タイプ)の形成の結果であるが、非特異的結合は、通常はファンデルワールス力の結果である。しかし、特異的結合は、モノクローナル抗体が1つの及び1つのみの標的に結合することを必ずしも含意するとは限らない。

基本抗体構造単位は、サブユニットの四量体である。各四量体は、各対が1本の「軽」鎖(約25kDa)及び1本の「重」鎖(約50〜70kDa)を有する、同一の2対のポリペプチド鎖を含む。各鎖のアミノ末端部分は、抗原認識を主に担当する、アミノ酸数約100〜110以上の可変領域を含む。この可変領域は、最初は、切断可能なシグナルペプチドに連結された状態で発現される。シグナルペプチドのない可変領域は、成熟可変領域と呼ばれることもある。したがって、例えば、軽鎖成熟可変領域は、軽鎖シグナルペプチドのない軽鎖可変領域を意味する。各鎖のカルボキシ末端部分は、エフェクター機能を主に担当する定常領域を規定する。

軽鎖は、カッパ又はラムダのどちらかとして分類される。重鎖は、ガンマ、ミュー、アルファ、デルタ又はイプシロンとして分類され、抗体のアイソタイプをIgG、IgM、IgA、IgD及びIgEとしてそれぞれ規定する。軽鎖及び重鎖内の可変及び定常領域は、アミノ酸数約12以上の「J」領域によって連結されており、重鎖は、アミノ酸数約10以上の「D」領域も含む。(一般には、Fundamental Immunology(Paul, W.、第2版、Raven Press、N.Y.、1989)、第7章を参照されたい)(あらゆる目的のためにその全体が参照により組み入れられる)。

各軽/重鎖対の成熟可変領域は、抗原結合部位を形成する。したがって、インタクト抗体は、2つの結合部位を有する。二重機能性又は二重特異性抗体の場合を除いて、2つの結合部位は同じである。鎖は全て、相補性決定領域又はCDRとも呼ばれる、3つの超可変領域によって連結された、同じ一般構造の比較的保存されるフレームワーク領域(FR)を示す。各対の2本の鎖からのCDRは、フレームワーク領域により整列され、それにより特異的エピトープへの結合が可能になる。軽鎖と重鎖の両方は、N末端からC末端へ、ドメインFR1、CDR1、FR2、CDR2、FR3、CDR3及びFR4を含む。各ドメインへのアミノ酸の割り当ては、Kabat、Sequences of Proteins of Immunological Interest(National Institutes of Health、Bethesda、Md.(1987年及び1991年))、又はChothia及びLesk、J. Mol. Biol. 196:901-917(1987)、Chothiaら、Nature 342:878-883(1989)の定義に従う。Kabatは、異なる重鎖間又は異なる軽鎖間の対応する残基に同じ番号が割り当てられる、広く使用されている番号付け規定(Kabat番号付け)も提供している。

用語「抗体」は、インタクト抗体及びその結合断片を含む。したがって、抗体へのいずれの言及も、文脈上他の意味に解すべき場合を除き、インタクト形態の抗体又は結合断片を指すと解されたい。典型的に、断片は、該断片が由来するインタクト抗体と、標的との特異的結合について競合し、別個の重鎖、軽鎖Fab、Fab'、F(ab')₂、F(ab)_c、Dab、ナノボディ、及びscFv、ダイアボディ、scFv-Fc、ミニボディ、IgNAR、V-NAR、hcIgG、ビスscFv、トリアボディ、及びテトラボディを含む。断片は、組換えDNA技術によって産生されることもあり、又はインタクト免疫グロブリンの酵素的若しくは化学的分離によって産生されることもある。用語「抗体」は、二重特異性抗体も含む。二重特異性又は二機能性抗体は、2つの異なる重/軽鎖対と2つの異なる結合部位とを有する人工ハイブリッド抗体である(例えば、Songsivilai and Lachmann、Clin. Exp. Immunol.、79:315-321(1990); Kostelnyら、J. Immunol.、148:1547-53(1992)を参照されたい)。

用語「エピトープ」は、抗体が結合する抗原上の部位を指す。エピトープは、連続するアミノ酸から形成されることもあり、又は1つ以上のタンパク質の三次折り畳みによって並べられた非連続アミノ酸から形成されることもある。連続するアミノ酸から形成されるエピトープ(別名、直線状エピトープ)は、変性溶媒に曝露されても通常は保持されるが、三次折り畳みにより形成されるエピトープ(立体構造エピトープ（conformational epitope）としても知られる)は、変性溶媒で処理されると通常は失われる。エピトープは、概して少なくとも3、より通常は少なくとも5又は8〜10個のアミノ酸を固有の空間配座で含む。エピトープの空間配座を決定する方法としては、例えば、X線結晶解析及び2次元核磁気共鳴が挙げられる。例えば、Epitope Mapping Protocols in Methods in Molecular Biology、66巻、Glenn E. Morris編(1996)を参照されたい。

同じ又は重複するエピトープを認識する抗体は、ある抗体についての別の抗体の標的抗原との結合と競合する能力を明らかにする単純なイムノアッセイで同定することができる。その抗原と結合している抗体のX線結晶解析によって抗体のエピトープを定義して、接触残基を同定することもできる。或いは、2つの抗体は、一方の抗体の結合を低減又は除去する抗原の全てのアミノ酸変異が、他方の結合を低減又は除去する場合、同じエピトープを有する。2つの抗体は、一方の抗体の結合を低減又は除去する一部のアミノ酸変異が、他方の結合を低減又は除去する場合、重複エピトープを有する。

抗体間の競合は、試験条件下で抗体が基準抗体と共通抗原の特異的結合を阻害するアッセイにより判定される(例えば、Junghansら、Cancer Res. 50:1495、1990を参照されたい)。試験抗体は、過剰な試験抗体(例えば、少なくとも2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、15倍、20倍、25倍、30倍、35倍、40倍、45倍、50倍、60倍、70倍、80倍、90倍、100倍以上(これらの値の間に入る数値を包含する))が基準抗体の結合を少なくとも50%、しかし好ましくは75%、90%又は99%阻害する場合、基準抗体と競合する。他の実施形態では、試験抗体は、競合結合アッセイで測定して過剰な試験抗体が基準抗体の結合を少なくとも約55%、60%、65%、70%、又は好ましくは少なくとも約75%、76%、77%、78%、79%、80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、若しくは100%阻害する場合、基準抗体と競合する。競合アッセイにより同定される抗体(競合抗体)は、基準抗体と同じエピトープと結合する抗体、及び基準抗体が結合するエピトープに対して立体障害が起こるのに十分なほど近位にある、隣接エピトープと結合する抗体を含む。好ましくは、競合は、実施例14におけるように評価される。

用語「対象」は、ヒト及び他の哺乳動物対象を含む。一部の場合、本発明の方法は、実験動物、獣医学的応用、及び疾患の動物モデルの開発、例えば、限定されるものではないが、マウス、ラット、ハムスターをはじめとする齧歯類、並びにサル等の霊長類における使用が見出される。一部の実施形態では、対象は、予防的処置又は治療的処置のどちらかを受ける、又は受ける候補である。

本明細書で使用される、基準アミノ酸配列のアミノ酸残基「に対応する(corresponds to)」又は「に対応して(いる)(corresponding to)」又は「に対応して(いる)(correspondence with)」目的のアミノ酸配列のアミノ酸残基は、目的の配列のアミノ酸残基が、基準アミノ酸配列内の列挙されている残基と相同の又は同等の位置にあることを示す。当業者は、TIGITポリペプチド等のポリペプチド内の特定のアミノ酸残基の位置が相同基準配列の位置に対応するかどうかを判定することができる。例えば、公知の技術(例えば、基本的局所アライメント検索ツール(basic local alignment search tool)(BLAST)、ClustalW2、構造に基づく配列アライメントプログラム(Structure based sequences alignment program)(STRAP)等)を使用して、TIGHTポリペプチドの配列と基準配列の配列とのアライメントを行うことができる。加えて、相同ポリペプチドの残基の三次元構造を決定する際に補助として基準配列の結晶構造座標を使用することができる(Stengelら、Proc. Natl. Acad. Sci. USA、109:5399-5404、2012)。別の態様では、三次構造レベルで相同性を判定することにより同等の残基を同定することができる。そのような方法を使用して、基準配列の対応するアミノ酸残基位置番号付けに従ってTIGITポリペプチドバリアントのアミノ酸残基に番号を付けることができる。例えば、目的のTIGITバリアント又はエピトープの各アミノ酸残基のアミノ酸残基位置番号付けの決定に配列番号1のアミノ酸配列を使用することができる。一部の実施形態では、あるアミノ酸配列は、約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%又は100%配列同一性を共有する場合、別のアミノ酸配列に対応する。

アミノ酸置換を保存的又は非保存的と分類することを目的として、アミノ酸は、次のようにグループ分けされる:グループI(疎水性側鎖):met、ala、val、leu、ile;グループII(中性親水性側鎖):cys、ser、thr;グループIII(酸性側鎖):asp、glu;グループIV(塩基性側鎖):asn、gln、his、lys、arg;グループV(鎖の配向に影響を与える残基):gly、pro;及びグループVI(芳香族側鎖):trp、tyr、phe。保存的置換は、同じクラス内のアミノ酸間の置換を含む。非保存的置換は、これらのクラスのうちの1のメンバーの、別のメンバーへの交換に相当する。

配列同一性百分率は、Kabat番号付け規定により最大にアラインメントした抗体配列を用いて決定される。アラインメント後、対象抗体領域(例えば、重鎖又は軽鎖の全成熟可変領域)を基準抗体の同じ領域と比較する場合、対象抗体領域と基準抗体領域間の配列同一性百分率は、対象抗体領域と基準抗体領域の両方において同じアミノ酸が占有する位置の数を、ギャップを考慮せずに、これらの2領域のアライメントした位置の総数で割り、100を掛けて百分率に変換したものである。

列挙された1つ以上の要素を「含む(comprising)」組成物又は方法は、具体的に列挙されていない他の要素を含む(include)こともある。例えば、抗体を含む組成物は、抗体のみを含有することもあり、又は抗体を他の成分と組み合わせて含有することもある。

文脈からそうではないことが明らかでない限り、範囲への言及は、範囲内の全ての整数、及びそのような整数によって定義される全ての部分範囲を含む。

II.標的分子
別段の指示がない限り、TIGITは、ヒトTIGITを意味する。例示的なヒト配列にはSwiss-Protアクセッション番号Q495A1が割り当てられている。完全ヒトGITIT配列は、244個のアミノ酸を有し、そのうちアミノ酸1〜21はシグナルペプチドであり、22〜244は成熟タンパク質(配列番号1)を構成する。おおよそ残基22〜141が細胞外ドメイン(配列番号3)を構成する。おおよそ残基142〜162が膜貫通ドメインを構成し、おおよそ残基163〜244が細胞質ドメインを構成する。

別段の指示がない限り、CD155は、このタンパク質のヒト形態を指す。ヒトCD155の例示的ヒト配列は、Swiss-Prot P15151に指定されており、これはアミノ酸数417のタンパク質であり、そのうちおおよそ残基1〜20がシグナルペプチドであり、21〜343が細胞外ドメイン(配列番号6)であり、344〜367が膜貫通ドメインであり、368〜417が細胞質ドメインである。

文脈からそうではないことが明らかでない限り、上記タンパク質の1つへの言及は、少なくともタンパク質の細胞外ドメインを意味し、通常は、切断可能なシグナルペプチド以外の完全タンパク質を意味する。

III.本発明の抗体
A. 結合特異性及び機能的特性
本発明は、TIGITタンパク質の細胞外ドメイン内のエピトープと結合するモノクローナル抗体を提供する。TIG1、TIG2及びTIG3と称される抗体は、3つのそのような例示的マウス抗体である。これらの抗体の重鎖及び軽鎖成熟可変領域の配列は、それぞれ、配列番号10及び14、18及び22、並びに26及び30で指定したものであり、TIG1、TIG2及びTIG3は、ヒトTIGITの細胞外ドメインと特異的に結合する。

本発明の一部の抗体は、TIG1、TIG2又はTIG3と称される抗体と同じ又は重複するエピトープと結合する。そのような結合特異性を有する他の抗体は、TIGIT、又は所望のエピトープを含むその一部分を用いてマウスを免役すること、及び結果として生じる抗体をTIGHTの細胞外ドメインとの結合について、任意にTIG1、TIG2又はTIG3との競合で、スクリーニングすることにより、産生させることができる。変異誘発形態のTIGIT抗原に対する抗体をスクリーニングして、変異変化のコレクションについてTIG1、TIG2又はTIG3と同じ又は同様の結合プロファイルを示す抗体を同定することもできる。変異は、TIGHT抗体の細胞外ドメイン全体にわたっての、又はエピトープが存在することが分っているセクションを通しての、アラニン(又はアラニンが既に存在する場合にはセリン)での1度に1残基の又はより広い間隔の置換である、系統的交換置換であり得る。

実施例16は、配列番号1の残基35、37、49及び51は、TIG1抗体のエピトープを形成する残基であるものとしてマッピングする。これらの残基のいずれか1個に対するアラニン置換は、抗体の結合を本質的基に消失させる。したがって、本発明は、配列番号1の残基35及び37並びに/又は配列番号1の残基49及び51を含むヒトTIGITのエピトープと結合する、好ましくは、これらの残基の全てを含むエピトープと結合する、他の抗体を含む。エピトープは、直線状(例えば、連続する3〜20、3〜17、若しくは5〜10個の残基)であってもよく、又は立体構造であってもよい。一部のそのような抗体は、配列番号1の残基35〜51、及びいずれかの側の、配列番号1からの5個以下の隣接アミノ酸からなるペプチドと結合する。一部のそのような抗体は、配列番号1の残基35〜51からなるペプチドと結合する。一部のそのような抗体をそのようなペプチドでの免疫処置により生成することができる。実施例19により、配列番号1の残基35、37、49及び51に加えて、配列番号1の残基90が、ヒト化(Hu)TIG1抗体のTIGITへの結合にとって重要であることも明らかになる。他の実施形態では、抗体(例えば、HuTIG1抗体)は、配列番号1のアミノ酸位置35、37、49、51及び/又は90に対応する1個以上の残基を含むエピトープと結合する。さらなる実施形態では、抗体(例えば、HuTIG1抗体)は、配列番号1のアミノ酸位置34、39、44、47、52、55、86、88、92及び/又は96に対応する1個以上の残基と結合しない。

選択されたマウス抗体(例えば、TIG1、TIG2又はTIG3)の結合特異性を有する抗体を、ファージディスプレイ方法の異型を使用して産生させることもできる。Winter、WO 92/20791を参照されたい。この方法は、ヒト抗体の産生に特に適している。この方法では、選択されたマウス抗体の重鎖又は軽鎖可変領域のどちらかが出発物質として使用される。例えば、軽鎖可変領域が出発物質として選択された場合、メンバーが同じ軽鎖可変領域(すなわち、マウス出発物質)及び異なる重鎖可変領域を表示する、ファージライブラリーが構築される。重鎖可変領域は、例えば、再編成されたヒト重鎖可変領域のライブラリーから得ることができる。TIGITに対して強い特異的結合(例えば、少なくとも10⁸M^-1、好ましくは少なくとも10⁹M^-1)を示すファージが選択される。その後、このファージからの重鎖可変領域は、さらなるファージライブラリーを構築するための出発物質として役立つ。このライブラリーにおいて、各ファージは、同じ重鎖可変領域(すなわち、第1のファージライブラリーから同定された領域)及び異なる軽鎖可変領域を提示する。軽鎖可変領域は、例えば、再編成されたヒト可変軽鎖領域のライブラリーから得ることができる。この場合もやはり、TIGITに対して強い特異的結合を示すファージが選択される。結果として得られる抗体は、マウス出発物質と同じ又は同様のエピトープ特異性を通常は有する。

一部の抗体は、完全に又は実質的にTIG1からの、CDR H1、H2及びH3を含む成熟重鎖可変領域、並びにCDR L1、L2及びL3を含む成熟軽鎖領域を有する。一部の抗体は、完全に又は実質的にTIG2からの、CDR H1、H2及びH3を含む成熟重鎖可変領域、並びにCDR L1、L2及びL3を含む成熟軽鎖領域を有する。一部の抗体は、完全に又は実質的にTIG3からの、CDR H1、H2及びH3を含む成熟重鎖可変領域、並びにCDR L1、L2及びL3を含む成熟軽鎖領域を有する。CDRは、下の表に示すようなKabat、Chothia、Kabat・Chothia複合型、AbM又はContact定義を含む、任意の従来の定義によって定義することができる:

他の抗体は、TIG1、TIG2又はTIG3等の例示的抗体の重鎖及び軽鎖をコードするcDNAの変異誘発により得ることができる。成熟重鎖及び/若しくは軽鎖可変領域のアミノ酸配列においてTIG1、TIG2若しくはTIG3と少なくとも約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%若しくは100%のうちのいずれかの%同一であり、その機能的特性を維持する、並びに/又は機能的重要度の低い少数のアミノ酸置換(例えば、保存的置換)、欠失若しくは挿入の点でそれぞれの抗体と異なる、モノクローナル抗体も、本発明に含まれる。結合に重要である可能性が高い可変領域フレームワーク内のアミノ酸は、下記のヒト化に関するセクションで説明するように同定することができる。対応するTIG1、TIG2又はTIG3のCDRと約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%又は100%のうちのいずれかの%同一である、Kabatにより定義される少なくとも1つの及び好ましくは6つ全てのCDRを有するモノクローナル抗体も含まれる。

抗体は、好ましくは、(i)ヒトCD155に対するヒトTIGITの結合を阻害する特性、(ii)他のリガンド、例えばCD112及びCD113に対するTIGITとの結合を阻害する特性、(iii)抗原特異的T細胞応答を増加させる特性、(iv)ナチュラルキラー細胞を活性化する特性、(v)固有T細胞活性化を刺激する特性、並びに(vi)1つ以上の免疫賦活性サイトカインの産生を刺激する、並びに/又はT細胞及び免疫系の他の細胞による1つ以上の免疫抑制性サイトカインの産生を低減させる特性のうちの1つ以上を有する。これらの特定を測定するための例示的アッセイは、実施例で提供する。

好ましい抗体は、CD155に対するTIGITの結合を完全に又は部分的に阻害する。一部の抗体は、実施例におけるように測定して、約25〜300ng/ml、25〜75ng/ml、25〜50ng/ml、40〜75ng/ml、50〜75ng/ml、50〜90ng/ml、50〜100ng/ml、75〜100ng/ml、50〜150、75〜175ng/ml、100〜200ng/ml、125〜225ng/ml、100〜250ng/ml、150〜300ng/ml、175〜250ng/ml、200〜300ng/ml、25〜275ng/ml、250〜300ng/ml、49+/-10%ng/ml、65+/-10%ng/ml又は76+/-10%ng/mlのうちのいずれかのIC₅₀で、そのような相互作用を阻害することができる。他の実施形態では、抗体は、少なくとも約25ng/ml、50ng/ml、75ng/ml、100ng/ml、125ng/ml、150ng/ml、175ng/ml、200ng/ml、225ng/ml、250ng/ml、275ng/ml、又は300ng/ml以上のうちのいずれかのIC₅₀（これらの値間に入る濃度を含む）、CD155に対するTIGITの結合を完全に又は部分的に阻害することができる。一部の抗体は、実施例の様に測定した場合、抗原特異的T細胞応答を1.5〜3倍、例えば、約1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2、2.1、2.2、2.3、2.4、2.5、2.6、2.7、2.8、2.9若しくは又は3倍以上のいずれか、増加させることができる。一部の抗体は、実施例の様に測定した場合NK細胞によるIL-2、IL-6、TNFα及びIFNγのうちの1つ、2つ、3つ又は全ての産生を1.5〜3倍、例えば、約1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2、2.1、2.2、2.3、2.4、2.5、2.6、2.7、2.8、2.9又は3倍以上のいずれか、増加させることができる。一部の抗体は、実施例の様に測定した場合、固有T細胞活性化を1.5〜3倍、例えば、約1.5、1.6、1.7、1.8、1.9、2、2.1、2.2、2.3、2.4、2.5、2.6、2.7、2.8、2.9又は3倍以上のいずれか、増加させることができる。一部の抗体は、動物モデル又は臨床試験で示されるように、がん又は感染性疾患を阻害することができる。ヒトがん細胞が免疫不全実験動物、例えばマウス又はラットに注射される、がんの動物モデルは、広く入手できる。

抗体のヒト化又はキメラ化は、出発マウス抗体と比べてin vivo半減期を増加させる。結果として得られる半減期は、例えばヒトの場合、10〜50日であり得る。半減期は、Kimら、Eur J of Immunol 24:542(1994)により記載されたもの等の、薬物動態研究によって測定することができる。

B. 非ヒト抗体
TIGITに対する他の非ヒトモノクローナル抗体、例えば、マウス、モルモット、霊長類、ウサギ、ニワトリ又はラット抗体の産生は、例えば、TIGIT若しくはその断片、又はTIGITを有する細胞を用いて動物を免疫することにより達成することができる。Harlow及びLane、Antibodies、A Laboratory Manual(CSHP NY、1988)(あらゆる目的で参照により組み入れられる)を参照されたい。そのような免疫原は、天然源から、ペプチド合成により、又は組換え発現により得ることができる。任意に、担体タンパク質と融合した又は複合体化した免疫原を投与することができる。任意に、免疫原をアジュバントと共に投与することができる。いくつかのタイプのアジュバントを下記のように使用することができる。完全フロイントアジュバント、及びそれに続く不完全アジュバントは、実験動物の免疫処置に好ましい。ウサギ又はモルモットは、概して、ポリクローナル抗体の作製に使用される。マウスは、概して、モノクローナル抗体の作製に使用される。抗体は、TIGITとの特異的結合についてスクリーニングされる。任意に、抗体は、TIGITの特異的領域との結合についてさらにスクリーニングされる。そのようなスクリーニングは、抗体とTIGITの欠失変異体のコレクションとの結合を判定すること、及びいずれの欠失変異体が抗体と結合するのか判定することによって達成することができる。結合は、例えば、ウェスタンブロット、FACS又はELISAによって評価することができる。

C. ヒト化抗体
HAMA(ヒト抗マウス抗体(ヒト抗ラット抗体又はヒト抗ウサギ抗体又はヒト抗ハムスター抗体等にも当てはまる))応答の低減又は除去は、好適な治療剤の臨床開発の有意な態様である。例えば、Khaxzaeliら、J. Natl.Cancer Inst.(1988)、80:937; Jaffersら、Transplantation(1986)、41:572; Shawlerら、J. Immunol.(1985)、135:1530; Searsら、J. Biol.Response Mod.(1984)、3:138; Millerら、Blood(1983)、62:988; Hakimiら、J. Immunol.(1991)、147:1352; Reichmannら、Nature(1988)、332:323; Junghansら、Cancer Res.(1990)、50:1495を参照されたい。本明細書に記載の本発明は、HAMA応答が低減又は除去されるようにヒト化されている抗体を提供する。当技術分野において公知の通例の方法を使用してこれらの抗体のバリアントをさらに得ることができ、そのような方法の一部を以下でさらに説明する。

ヒト化抗体は、非ヒト「ドナー」抗体からのCDRがヒト「アクセプター」抗体配列にグラフトされている遺伝子改変抗体である(例えば、Queen、米国特許第5,530,101号及び同第5,585,089号、Winter、米国特許第5,225,539号、Carter、米国特許第6,407,213号、Adair、米国特許第5,859,205号第6,881,557号、Foote、米国特許第6,881,557号を参照されたい)。アクセプター抗体配列は、例えば、成熟ヒト抗体配列、そのような配列の複合体、ヒト抗体配列のコンセンサス配列、又は生殖系列領域配列であり得る。したがって、ヒト化抗体は、完全に又は実質的にドナー抗体からのものである一部の又は全てのCDRと、存在する場合には、完全に又は実質的にヒト抗体配列からのものである可変領域フレームワーク配列と、定常領域とを有する抗体である。同様に、ヒト化重鎖は、完全に又は実質的にドナー抗体重鎖からのものである少なくとも1つ、2つ、通常は3つ全てのCDRと、存在する場合には、実質的にヒト重鎖可変領域フレームワーク及び定常領域配列からのものである重鎖可変領域フレームワーク配列及び重鎖定常領域とを有する。同様に、ヒト化軽鎖は、完全に又は実質的にドナー抗体軽鎖からのものである少なくとも1つ、2つ、通常は3つ全てのCDRと、存在する場合には、実質的にヒト軽鎖可変領域フレームワーク及び定常領域配列からのものである軽鎖可変領域フレームワーク配列及び軽鎖定常領域とを有する。ナノボディ及びdAb以外のヒト化抗体は、ヒト化重鎖及びヒト化軽鎖を含む。ここでは、本願中の他の箇所同様、対象抗体におけるCDRは、(Kabatにより定義して)対応する残基の少なくとも約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%又は100%がそれぞれのCDR間で同一である場合、実質的に、基準抗体における対応するCDRからのものであるが、対象抗体におけるKabatにより定義されるCDR H2は、(Kabatにより定義して)対応する残基の少なくとも約65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、76%、77%、78%、79%、80%、8
1%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%又は100%がそれぞれのCDR間で同一である場合、実質的に、基準抗体における対応するCDRからのものである。抗体鎖の可変領域フレームワーク配列又は抗体鎖の定常領域は、Kabatによる定義される対応する残基の少なくとも約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%又は100%が同一である場合、実質的にそれぞれヒト可変領域フレームワーク配列又はヒト定常領域からのものである。

ヒト化抗体には(好ましくは、Kabatにより定義して)6つ全てのCDRが非ヒト(例えば、マウス)抗体から組み込まれていることが多いが、非ヒト抗体からの全てに満たないCDR(例えば、少なくとも3つ、4つ又は5つのCDR)を用いてヒト化抗体を作製することもできる(例えば、Pascalisら、J. Immunol. 169:3076、2002; Vajdosら、Journal of Molecular Biology、320:415-428、2002; Iwahashiら、Mol. Immunol. 36:1079-1091、1999; Tamuraら、Journal of Immunology、164:1432-1441、2000)。

一部の抗体では、ヒト化抗体において結合を保持するために必要とされるのは、CDRの一部、すなわち、SDRと呼ばれる、結合に必要なCDR残基のサブセットのみである。抗原と接触せず、SDR内にない、CDR残基は、分子モデリングにより、及び/又は実験により、又はGonzalesら、Mol. Immunol. 41:863、2004に記載されたように、Chothia超可変ループ(Chothia、J. Mol. Biol. 196:901、1987)外に存するKabat CDRの領域から、以前の研究に基づいて同定することができる(例えば、CDR H2内の残基H60〜H65は必要とされないことが多い)。1つ以上のドナーCDR残基が非存在である位置又は全ドナーCDRが削除される位置において、そのようなヒト化抗体では、その位置を占有するアミノ酸は、アクセプター抗体配列内の(Kabat番号付けによる)対応する位置を占有するアミノ酸であり得る。ドナーアミノ酸がそれらのCDR内に含む、そのようなアクセプター置換の数は、競合する考慮事項のバランスを反映する。そのような置換は、ヒト化抗体におけるマウスアミノ酸数を減少させる点で及びその結果として潜在的免疫原性を低下させる点で有利である可能性がある。しかし、置換は親和性の変化を引き起こすこともあるため、親和性の有意な低下を避けるほうが好ましい。CDR内の置換の位置及び置換するためのアミノ酸も、実験により選択することができる。

アクセプターは、選択されたヒトフレームワーク配列と配列が同一であることもあるが、それが、ヒト免疫グロブリンからのものであろうと、又はヒトコンセンサスフレームワークからのものであろうと、本発明は、アクセプター配列が、ヒト免疫グロブリン配列又はヒトコンセンサスフレームワーク配列と比べて既存のアミノ酸置換を含むことがあることを企図している。これらの既存の置換は、好ましくは最小限であり、通常は、ヒト免疫グロブリン配列又はヒトコンセンサスフレームワーク配列と比べてほんのアミノ酸4個、3個、2個又は1個の相違に過ぎない。

ヒトアクセプター抗体配列は、任意に、ヒトアクセプター配列可変領域フレームワークとドナー抗体鎖の対応する可変領域フレームワークとの高い配列同一性度(例えば、65〜85%同一性)をもたらすことが公知の多くのヒト抗体配列の中から選択することができる。

ヒト可変領域フレームワーク残基からのある特定のアミノ酸を、CDR立体構造及び/又は抗原への結合に対してそれらがもたらす可能性のある影響に基づいて、置換に選択することができる。そのような可能性のある影響の研究は、モデリング、特定の位置のアミノ酸の特性の調査、又は特定のアミノ酸の置換若しくは変異誘発の効果についての実験による観察による。

例えば、アミノ酸が、非ヒト可変領域フレームワーク残基と選択されたヒト可変領域フレームワーク残基とで異なるとき、ヒトフレームワークアミノ酸を、非ヒト抗体からの同等のフレームワークアミノ酸により、そのような非ヒト抗体からのアミノ酸が、
(1)抗原に直接非共有結合する、
(2)CDR領域に隣接している、
(3)あるいはCDR領域と相互作用する(例えば、CDR領域の約6オングストローム以内にある)
ことが当然予想される場合、置換することができる。

置換の他の候補は、ヒト免疫グロブリンのその位置に普通はないアクセプターヒトフレームワークアミノ酸である。これらのアミノ酸を、非ヒトドナー抗体の同等の位置からの又はより典型的なヒト免疫グロブリンの同等の位置からのアミノ酸で置換することができる。置換の他の候補は、ヒト免疫グロブリンのその位置に普通はないアクセプターヒトフレームワークアミノ酸である。

好ましいヒト化抗体は、配列番号35と少なくとも約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、又は100%未満同一の成熟重鎖可変領域、及び配列番号37と少なくとも約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、又は100%未満同一の成熟軽鎖可変領域を有する。好ましくは、結合に重要である可能性が高いと同定されたもの以外の可変領域フレームワーク残基に関しては任意の変異が存在する(段落[0043]を参照されたい)。任意の変異は、保存的アミノ酸置換であることが好ましい。好ましい抗体は、配列番号35の配列を有する成熟重鎖可変領域、及び配列番号37の配列を有する成熟軽鎖可変領域を含む。完全長抗体の発現のために、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号40からなる又は配列番号40を含む重鎖定常領域に好ましくは連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号41からなる又は配列番号41を含む軽鎖定常領域に好ましくは連結されている。

別の好ましいヒト化抗体は、配列番号43と少なくとも約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、又は100%未満同一の成熟重鎖可変領域、及び配列番号45と少なくとも約80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%、又は100%未満同一の成熟軽鎖可変領域を有する。好ましくは、結合に重要である可能性が高いと同定されたもの以外の可変領域フレームワーク残基に関して任意の変異が存在する(段落[0043]及び実施例を参照されたい)。任意の変異は、保存的アミノ酸置換であることが好ましい。好ましい抗体は、配列番号43の配列を有する成熟重鎖可変領域、及び配列番号45の配列を有する成熟軽鎖可変領域を含む。完全長抗体の発現のために、成熟重鎖可変領域は、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号48からなる又は配列番号48を含む重鎖定常領域に好ましくは連結されており、成熟軽鎖可変領域は、配列番号49からなる又は配列番号49を含む軽鎖定常領域に好ましくは連結されている。

D. キメラ及びベニヤ抗体
本発明は、非ヒト抗体、特に、実施例のTIG1、TIG2及びTIG3抗体のキメラ及びベニヤ形態をさらに提供する。

キメラ抗体は、非ヒト抗体(例えば、マウス)の軽鎖及び重鎖の成熟可変領域がヒト軽鎖及び重鎖定常領域と組み合わせられている抗体である。そのような抗体は、非ヒト抗体の結合特異性を実質的に又は完全に保持し、約三分の二ヒト配列である。

ベニヤ抗体は、非ヒト抗体のCDRの一部及び通常は全てと非ヒト可変領域フレームワーク残基の一部とを保持するが、B又はT細胞エピトープに寄与し得る他の可変領域フレームワーク残基、例えば、露出されている残基(Padlan、Mol. Immunol. 28:489、1991)をヒト抗体配列の対応する位置からの残基で置き換える、ヒト化抗体の1つの型である。結果は、CDRが完全に又は実質的に非ヒト抗体からのものであり、非ヒト抗体の可変領域が置換によってよりヒト様に作製されている、抗体である。TIG1、TIG2又はTIG3抗体のベニヤ形態は、本発明に含まれる。

E. ヒト抗体
TIGITに対するヒト抗体は、以下で説明する様々な技術によって得られる。一部のヒト抗体は、競合的結合実験により、上記のWinterのファージディスプレイ方法により、あるいは、特定のマウス抗体と、例えば、実施例に記載のマウスモノクローナル抗体のうちの1つと、同じエピトープ特異性を有するように選択される。TIGITの断片のみを標的抗原として使用することにより、及び/又はTIGITの欠失変異体のコレクションに対する抗体をスクリーニングすることにより、特定のエピトープ特異性についてヒト抗体をスクリーニングすることもできる。

ヒト抗体を産生させる方法としては、Oestbergら、Hybridoma 2:361-367(1983)、Oestberg、米国特許第4,634,664号及びEnglemanら、米国特許第4,634,666号のトリオーマ方法;ヒト免疫グロブリン遺伝子を含むトランスジェニックマウスの使用(例えば、Lonbergら、WO93/12227(1993);米国特許第5,877,397号、米国特許第5,874,299号、米国特許第5,814,318号、米国特許第5,789,650号、米国特許第5,770,429号、米国特許第5,661,016号、米国特許第5,633,425号、米国特許第5,625,126号、米国特許第5,569,825号、米国特許第5,545,806号、Nature 148、1547-1553(1994)、Nature Biotechnology 14、826(1996)、Kucherlapati、WO 91/10741(1991)を参照されたい);及びファージディスプレイ方法(例えば、Dowerら、WO 91/17271及びMcCaffertyら、WO 92/01047、米国特許第5,877,218号、米国特許第5,871,907号、米国特許第5,858,657号、米国特許第5,837,242号、米国特許第5,733,743号及び米国特許第5,565,332号を参照されたい)が挙げられる。

F. 定常領域の選択
キメラ抗体、ヒト化抗体(ベニヤ抗体を含む)又はヒト抗体の重鎖及び軽鎖可変領域をヒト定常領域の少なくとも一部分に連結させることができる。定常領域の選択は、部分的に、抗体依存性の補体及び/又は細胞媒介性細胞傷害性が望まれるかどうかに依存する。例えば、ヒトアイソタイプ(isotopes)IgG1及びIgG3には補体媒介性細胞傷害性があり、ヒトアイソタイプIgG2及びIgG4にはない。軽鎖定常領域は、ラムダ又はカッパであり得る。TIGITを発現しないがん又は病原体に対する免疫療法には、ヒトIgG2若しくはIgG4、又はエフェクター機能が低下した弱毒化形態のヒトIgG1が好ましいことが多い。ヒトIgG4には、Fabアーム交換を防止するために重鎖上にS288P(Eu番号付け)改変変異を含めることが好ましいことが多い。しかし、TIGITを発現するがん細胞(例えば、T細胞若しくはNK細胞の腫瘍)の除去のために又は免疫抑制には、ヒトIgG1又はIgG3が好ましいことが多い。

ヒト定常領域は、異なる個体間でアロタイプ変異及びイソアロタイプ変異を示す、つまり、定常領域は、個体によって1つ以上の多型位置が異なり得る。イソアロタイプは、イソアロタイプを認識する血清が1つ以上の他のアイソタイプの非多型領域と結合する点でアロタイプとは異なる。ヒト定常領域への言及は、任意の天然アロタイプを有する、又は天然アロタイプの多型位置を占有する残基の任意の順列を有する、定常領域を含む。

軽鎖及び/又は重鎖のアミノ又はカルボキシ末端における1個又は数個のアミノ酸、例えば、重鎖のC末端リシンが、分子の一部又は全てにおいて欠けている又は誘導体化されていることもある。定常領域内で置換を行って、補体媒介細胞傷害性若しくはADCC等のエフェクター機能を低下若しくは増大させることができ(例えば、Winterら、米国特許第5,624,821号、Tsoら、米国特許第5,834,597号、及びLazarら、Proc. Natl. Acad. Sci. USA、103:4005、2006を参照されたい)、又はヒトにおける半減期を延長することができる(例えば、Hintonら、J. Biol. Chem. 279:6213、2004を参照されたい)。例示的な置換としては、抗体の半減期を増すための250位でのGln及び/又は428位でのLeu(Eu番号付け)が挙げられる。

本発明の一部の抗体は、変異のない同じ抗体と比較して低下したエフェクター機能、例えば、CDC及びADCC又はADCPを有するように定常領域変異を導入することによって改変される。好ましくは、これらのエフェクター機能の各々又は全ては、変異のない抗体と比較して少なくとも50%、75%、90%又は95%低下される。本実施例は、CDCの測定方法を示す。他のアッセイは、Shieldsら、2001 J. Biol. Chem.、第276巻、6591-6604頁; Chappelら、1993 J. Biol. Chem.、第268巻、25124-25131頁; Lazarら、2006 PNAS、103; 4005-4010により記載されている。

234、235、236及び/又は237位のいずれか又は全ての置換は、Fcγ受容体、特にFcγRI受容体に対する親和性を低下させる(例えば、米国特許第6,624,821を参照されたい)。アラニンは、置換に好ましい残基であり、L234A/L235Aは、エフェクター機能を低下させるための好ましい二重変異である。エフェクター機能低下を伴う変異の他の組合せとしては、L234A/L235A/ G237A、E233P/L234V/L235A/G236、A327G/A330S/P331S、K322A、L234A及びL235A、L234F/L235E/P331Sが挙げられる。任意に、ヒトIgG2における234、236及び/又は237位はアラニンで置換され、235位はグルタミンで置換される。(例えば、米国特許第5,624,821号を参照されたい)。EUインデックス330及び331位の補体C1q結合部位における2つのアミノ酸置換は、補体結合を低減させる(Taoら、J. Exp. Med. 178:661(1993)、並びにCanfield及びMorrison、J. Exp. Med. 173:1483(1991)を参照されたい)。233〜236位のIgG2残基及び327、330及び331位におけるIgG4残基のヒトIgG1への置換は、ADCC及びCDCを大きく低下させる(例えば、Armour KL.ら、1999 Eur J Immunol. 29(8):2613-24;及びShields RL.ら、2001. J Biol Chem. 276(9):6591-604を参照されたい)。N297A、N297Q又はN297G(Eu番号付け)変異は、グリコシル化を低減させ、それによってエフェクター機能を低下させる。

G. 組換え抗体の発現
キメラ抗体、ヒト化抗体(ベニヤ抗体を含む)及びヒト抗体は、概して組換え発現により産生される。組換えポリヌクレオチド構築物は、天然に会合しているプロモーター領域又は異種プロモーター領域を含む、抗体鎖のコード領域に作動可能に連結された発現制御配列を概して含む。好ましくは、発現制御配列は、真核生物宿主細胞を形質転換することができる又は真核生物宿主細胞にトランスフェクトすることができるベクターにおける真核生物プロモーター系である。ベクターが適切な宿主に組み込まれた後、宿主は、ヌクレオチド配列の高レベル発現並びに組換え抗体の回収及び精製に好適な条件下で維持される。

哺乳動物細胞は、免疫グロブリンをコードするヌクレオチドセグメント又はそれらの断片の発現に好ましい宿主である。Winnacker、From Genes to Clones、(VCH Publishers、NY、1987)を参照されたい。インタクト異種タンパク質を分泌することができる多数の好適な宿主細胞株が当技術分野において公知であり、そのような宿主細胞株には、CHO細胞株、様々なCOS細胞株、HeLa細胞、HEK293細胞、L細胞、並びにSp2/0及びNS0をはじめとする非抗体産生メラノーマが含まれる。好ましくは、細胞は、非ヒト細胞である。これらの細胞のための発現ベクターは、発現制御配列、例えば、複製起点、プロモーター、エンハンサー(Queenら、Immunol. Rev. 89:49(1986))、並びに必要なプロセッシング情報部位、例えば、リボソーム結合部位、RNAスプライス部位、ポリアデニル化部位、及び転写終結配列を含み得る。好ましい発現制御配列は、内在性遺伝子、サイトメガロウイルス、SV40、アデノウイルス、ウシパピローマウイルス等に由来するプロモーターである。Coら、J. Immunol. 148:1149(1992)を参照されたい。

発現されたら、HPLC精製、カラムクロマトグラフィー、ゲル電気泳動等を含む、当技術分野の標準的手順に従って、抗体を精製することができる(一般に、Scopes、Protein Purification(Springer-Verlag、NY、1982)を参照されたい)。

IV.治療応用
抗体は、がん及び感染性疾患の処置において免疫応答を増強するために使用することができる。本発明の抗体により処置することができる障害としては、限定するものではないが、血液系腫瘍及び固形腫瘍を含むがんが挙げられる。そのような癌は、TIGIT又はCD155を発現してもしなくてもよい。TIGITに対する抗体は、TIGITを発現しないがんに対して有効である。なぜならCD155とTIGITの相互作用の阻害が、そのようながんに対する免疫応答を刺激するからである。血液系腫瘍の例としては、急性骨髄性白血病、成人T細胞白血病、T細胞大顆粒リンパ球白血病、急性リンパ芽球性白血病、慢性リンパ球性白血病、慢性骨髄性白血病、急性単球性白血病、ホジキン及び非ホジキンリンパ腫並びに多発性骨髄腫をはじめとする、白血病、リンパ腫及び骨髄腫が挙げられる。固形腫瘍の例としては、限定するものではないが、卵巣がん、子宮内膜がん、乳がん、肺がん(小細胞又は非小細胞)、結腸がん、前立腺がん、子宮頸がん、膵がん、胃がん、食道がん、肝細胞癌(肝がん)、腎細胞癌(腎がん)、頭頸部腫瘍、中皮腫、メラノーマ、肉腫、及び脳腫瘍(例えば、膠芽腫等の神経膠腫)が挙げられる。

本発明の方法は、アジュバント設定で実施することができる。「アジュバント設定」は、対象が増殖性疾患、特にがんの病歴を有し、外科手術、放射線療法及び/又は化学療法を含むがこれらに限定されない療法に対して一般に(必ずではないが)応答性であった、臨床設定を指す。しかし、増殖性疾患歴のため、これらの対象は、その疾患を発症するリスクがあると見なされる。「アジュバント設定」での処置又は投与は、後続の処置様式を指す。一部の実施形態では、本明細書で提供するのは、がんを処置する又はがんの予防をもたらす方法であって、がんを有する又はがんのリスクがある対象に、本明細書で開示する抗体のいずれかの治療有効量をアジュバント設定で投与することを含む方法である。

本明細書で提供する方法は、「非アジュバント設定」で実施することもでき、つまり、方法を一次治療/根治的治療の前に行うことができる。一部の態様では、対象は、以前に処置されたことがある。他の態様では、対象は、以前に処置されたことがない。一部の態様では、処置は、一次治療である。一部の実施形態では、本明細書で提供するのは、がんを処置する又はがんの予防をもたらす方法であって、がんを有する又はがんのリスクがある対象に、本明細書で開示する抗体のいずれかの治療有効量を非アジュバント設定で投与することを含む方法である。

本発明の抗体により処置することができる他の障害としては、ウイルス、細菌、真菌、原生動物及び他の病原体(例えば、肝炎(A、B又はC型)、ヘルペスウイルス(例えば、VZV、HSV-1、HAV-6、HSV-II、及びCMV、エプスタイン・バーウイルス)、アデノウイルス、インフルエンザウイルス、フラビウイルス、エコーウイルス、ライノウイルス、コザックウイルス、コロナウイルス(cornovirus)、呼吸器合胞体ウイルス、ムンプスウイルス、ロタウイルス、麻疹ウイルス、風疹ウイルス、パルボウイルス、ワクシニアウイルス、HTLVウイルス、デングウイルス、パピローマウイルス、軟属腫ウイルス、ポリオウイルス、狂犬病ウイルス、JCウイルス、HIV、SIV及びアルボウイルス脳炎ウイルス、クラミジア、リケッチア菌、マイコバクテリア、ブドウ球菌、連鎖球菌(streptocci)、肺炎連鎖球菌(pneumonococci)、髄膜炎菌及び淋菌(conococci)、クレブシエラ菌、プロテウス菌、セラチア菌、シュードモナス菌、レジオネラ菌、ジフテリア、サルモネラ菌、桿菌、コレラ、破傷風、ボツリヌス中毒、炭疽、ペスト、レプトスピラ症及びライム病菌)の、感染性疾患が挙げられる。

A. 抗体の投与
本明細書に記載の抗体は、有効なレジメンで投与することができ、有効なレジメンとは、障害の発症を遅延させる、障害の重症度を低下させる、障害のさらなる悪化を抑制する、及び/又は障害の少なくとも1つの徴候若しくは症状を改善する、用量、投与経路及び投与頻度を意味する。対象が既に障害に罹患している場合のレジメンは、治療有効レジメンと呼ぶことができる。対象が、一般集団と比べて障害のリスクが高いが、まだ症状を経験していない場合のレジメンは、予防有効レジメンと呼ぶことができる。一部の事例では、個々の対象において、歴史的対照と比べて、又は同じ対象における過去の経験と比べて、治療又は予防有効性を観察することができる。他の事例では、前臨床又は臨床試験で、処置を受けた対象の集団において、未処置の対象の対照集団と比べて治療又は予防有効性を実証することができる。

一部の態様では、本明細書に記載のいずれの方法も、それを必要とする対象への本明細書に記載の抗体の1つ以上の治療有効量の投与を含む。本明細書で使用される、抗がん療法(例えば、本明細書に記載の抗TIGIT抗体のいずれか)の「治療有効投薬量」又は「予防有効投薬量」は、有益な又は所望の結果を果すのに十分な量である。治療目的使用についての有益な又は所望の結果は、がんに起因する1つ以上の症状を減少させること、がんに罹患している対象の生活の質を向上させること、がんを処置するために必要な他の薬物療法の用量を減少させること、標的化によるもの等の別の薬物療法の効果を増強すること、疾患の進行を遅延させること、及び/又は生存期間を延長することのような、臨床結果を含む。有効投薬量を1回以上の投与で投与することができる。本発明の目的にとって、抗がん療法の有効投薬量は、治療的又は予防的処置を直接又は間接的にもたらすのに十分な量である。臨床状況下で理解されているように、抗がん療法の治療有効投薬量を別の抗がん療法と併用で達成してもしなくてもよい。

本明細書に記載の抗体のいずれについての例示的投薬量も、約0.1〜20mg/kg若しくは0.5〜5mg/kg体重(例えば、約0.5mg/kg、1mg/kg、2mg/kg、3mg/kg、4mg/kg、5mg/kg、6mg/kg、7mg/kg、8mg/kg、9mg/kg、10mg/kg、11mg/kg、12mg/kg、13mg/kg、14mg/kg、15mg/kg、16mg/kg、17mg/kg、18mg/kg、19mg/kg、若しくは20mg/kg)又は固定投薬量として、10〜1500mg(例えば、10mg未満、20mg、30mg、40mg、50mg、60mg、70mg、80mg、90mg、100mg、150mg、200mg、250mg、300mg、350mg、400mg、450mg、500mg、550mg、600mg、650mg、700mg、750mg、800mg、850mg、900mg、950mg、1000mg、1100mg、1200mg、1300mg、1400mg、若しくは1500mg又はそれ以上のいずれか(これらの数の間の値を含む))である。投薬量は、他の要因の中で、対象の状態、もしあれば以前の処置に対する応答、処置が予防的であるのか治療的であるのか、及び障害が急性的であるのか慢性的であるのかに依存する。

投与は、非経口、静脈内、経口、皮下、動脈内、頭蓋内、髄腔内、腹腔内、腫瘍内、局所、鼻腔内又は筋肉内投与であり得る。静脈内又は皮下投与による全身循環への投与が好ましい。静脈内投与は、例えば、30〜90分等の期間にわたっての注入によるものであり得る。

投薬頻度は、他の要因の中で、循環内での抗体の半減期、対象の状態、及び投与経路に依存する。頻度は、対象の状態の変化又は処置される障害の進行に応じて、毎日、週1回、月1回、年4回、又は不定期間隔であり得る。静脈内投与についての例示的頻度は、連続処置原因にわたって週1回〜年4回の間であるが、より高又は低頻度の投薬も可能である。皮下投与についての例示的投薬頻度は、毎日〜月1回であるが、より高又は低頻度の投薬も可能である。

投与される投薬の数は、障害が急性的であるのか慢性的であるのか、及び処置に対する障害の応答に依存する。急性障害には、又は慢性障害の急性憎悪には、1〜10用量の間で十分であることが多い。急性障害には、又は慢性障害の急性憎悪には、任意に分割形態である単回ボーラス用量で十分であることもある。急性障害又は急性憎悪の再発のために処置が反復されることもある。慢性障害については、少なくとも1、5若しくは10年間、又は対象の生涯にわたって、定期的間隔で、例えば、週1回、隔週、月1回、年4回、6カ月毎に抗体を投与することもできる。

抗TIGIT抗体を含む処置は、がんを有する対象の無憎悪生存期間又は全生存期間中央値を対照対象と比較して少なくとも約30%、31%、32%、33%、34%、35%、36%、37%、38%、39%、40%、41%、42%、43%、44%、45%、46%、47%、48%、49%、しかし好ましくは少なくとも約50%、51%、52%、53%、54%、55%、56%、57%、58%、59%、60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、76%、77%、78%、79%、80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%又はさらには100%増加させることにより疾患を軽減することができ、或いはこれらの期間のどちらかを2週間、1、2若しくは3カ月、又は好ましくは4若しくは6カ月、又はさらには9カ月若しくは1年延長することができる。加えて、又は代替的に、抗TIGIT抗体を含む処置は、対象の完全奏功率、部分奏功率、又は客観的奏功率(完全+部分)を、対照対象と比較して少なくとも約30%、31%、32%、33%、34%、35%、36%、37%、38%、39%、40%、41%、42%、43%、44%、45%、46%、47%、48%、49%、しかし好ましくは少なくとも約50%、51%、52%、53%、54%、55%、56%、57%、58%、59%、60%、61%、62%、63%、64%、65%、66%、67%、68%、69%、70%、71%、72%、73%、74%、75%、76%、77%、78%、79%、80%、81%、82%、83%、84%、85%、86%、87%、88%、89%、90%、91%、92%、93%、94%、95%、96%、97%、98%、99%又はさらには100%上昇させることができる。対照対象は、抗TIGIT抗体以外は、抗TIGIT抗体を受ける対象と同じ処置を受ける。したがって、対照対象は、プラセボのみを受けることもあり、又は抗TIGIT抗体を受けている対象がプラセボと抗TIGIT抗体以外の何らかの化学療法剤も受ける場合にはプラセボとそのような化学療法剤との組合せを受けることもある。

本明細書で開示する抗TIGIT抗体は、CD155発現細胞(例えば、これに限定されないが、K562細胞)のNK細胞媒介細胞傷害性を、本明細書で開示する抗TIGIT抗体の1つの非存在下でのCD155発現細胞のNK細胞媒介細胞傷害性の量と比べて少なくとも約10%、11%、12%、13%、14%、15%、16%、17%、18%、19%、20%、21%、22%、23%、24%、25% 26% 27%、28%、29%、30%、31%、32%、33%、34%、35%以上のいずれかの%、増強することができる。

典型的に、臨床試験(例えば、第II相、第II/III相、又は第III相試験)において、対象の対照群と比べて抗TIGIT抗体で処置された対象の無憎悪生存中央値及び/又は奏功率中央値の増加は、例えばp=0.05又は0.01又はさらには0.001レベルで、統計的に有意である。完全及び部分奏功率は、例えば米国国立がん研究所及び/又は食品医薬品局によってリストアップ又は承認されているような、がんの臨床試験において一般に使用される客観的基準により決定され、そのような客観的基準としては、例えば、他の中でも、腫瘍体積、腫瘍数、転移、生存期間、及び生活の質尺度を挙げることができる。

非経口投与用の医薬組成物は、好ましくは無菌であり、実質的に等張性であり、GMP条件下で製造される。医薬組成物を単位剤形(すなわち、単回投与用の投薬量)で提供することができる。1つ以上の生理的に許容される担体、希釈剤、賦形剤又は補助剤を使用して、医薬組成物を製剤化することができる。製剤化は、選択される投与経路に依存する。注射のため、抗体は、水溶液、好ましくは、生理学的に適合性の緩衝液、例えば、ハンクス溶液、リンゲル溶液、又は(注射部位の不快感を低減させるために)生理食塩水若しくは酢酸緩衝液で製剤化することができる。溶液は、製剤化用薬剤(formulatory agents)、例えば、懸濁剤、安定剤及び/又は分散剤を含有することができる。或いは、抗体は、好適なビヒクル、例えば、滅菌した発熱物質不含の水で使用前に構成するための凍結乾燥形態であってもよい。液体製剤中の抗体の濃度は、例えば、約10mg/mlから約150mg/mlまで変動し得る。一部の製剤中の濃度は、約25〜50mg/mlである。

B. 併用療法
本発明は、1つ以上の活性治療剤(例えば、化学療法剤)又は他の予防若しくは治療モダリティ(例えば、放射線照射)と組み合わせた抗TIGIT抗体の使用を企図している。そのような併用療法では、様々な活性薬剤は、異なる、補完的な作用機序を有することが多い。そのような併用療法は、薬剤の1つ以上についての用量低減を可能にし、それによって薬剤の1つ以上に関連する有害作用を低減又は除去する点で特に有利であり得る。さらに、そのような併用療法は、基礎疾患、障害又は状態に対して相乗的治療又は予防効果を有することもある。

ここで使用する「組み合わせ」は、別々に投与することができる、例えば、別々の投与のために別々に処方することができる(例えば、キット内に提供されるような)療法、及び単一の製剤(すなわち、「共製剤」)で一緒に投与することができる療法を含むことを意図したものである。

ある特定の実施形態では、本明細書で開示する抗TIGIT抗体のいずれかは逐次投与又は逐次適用され、例えば、その場合、1つの薬剤が1つ以上の他の薬剤の前に投与される。他の実施形態では、抗体は、同時投与され、例えば、その場合、2つ以上の薬剤が同時に又はほぼ同時に投与され、これらの2つ以上の薬剤は、2つ以上の別々の製剤中に存在してもよく、又は単一の製剤(すなわち、共製剤)に組み合されてもよい。これらの2つ以上の薬剤は、逐次投与されるのか又は同時投与されるのかを問わず、本発明の目的について組み合わせて投与されると見なされる。

本発明の抗体は、状況下で任意の適切な手法で少なくとも1つの他の(活性)薬剤と組み合わせて用いることができる。一実施形態では、少なくとも1つの活性薬剤及び本発明の少なくとも1つの抗TIGIT抗体での処置は、ある期間にわたって維持される。別の実施形態では、少なくとも1つの活性薬剤での処置は、縮小又は中止されるが(例えば、対象が安定している場合)、本発明の抗TIGIT抗体での処置は、一定した投与レジメンで維持される。さらなる実施形態では、少なくとも1つの活性薬剤での処置は、縮小又は中止され(例えば、対象が安定している場合)、さらに本発明の抗TIGIT抗体での処置も縮小される(例えば、より低用量、より低頻度の投薬又はより短い処置レジメン)。さらに別の実施形態では、少なくとも1つの活性薬剤での処置は、縮小又は中止され(例えば、対象が安定している場合)、本発明の抗TIGIT抗体での処置は、増加される(例えば、より高用量、より高頻度の投薬又はより長い処置レジメン)。さらに別の実施形態では、少なくとも1つの活性薬剤での処置は維持され、本発明の抗TIGIT抗体での処置は、縮小又は中止される(例えば、より低用量、より低頻度の投薬又はより短い処置レジメン)。さらに別の実施形態では、少なくとも1つの活性薬剤での処置、及び本発明の抗TIGIT抗体での処置は、縮小又は中止される(例えば、より低用量、より低頻度の投薬又はより短い処置レジメン)。

本発明の抗体での処置は、処置される障害に対して有効な他の処置と組み合わせることができる。増殖性状態、がん、腫瘍、又は前がん性疾患、障害若しくは状態の処置に使用する場合、本発明の抗体を化学療法、放射線照射(例えば、局所照射療法若しくは全身照射療法)、幹細胞処置、外科手術、又は他の生物製剤での処置と組み合わせることができる。

ある特定の実施形態では、本発明は、腫瘍増殖の腫瘍抑制の方法であって、腫瘍増殖の相加的又は相乗的抑制を達成するためのシグナル伝達阻害剤(STI)と組み合わせた本明細書に開示する抗TIGIT抗体の投与を含む方法を提供する。本明細書で使用される用語「シグナル伝達阻害剤」は、シグナル伝達経路における1つ以上のステップを選択的に阻害する薬剤を指す。本発明のシグナル伝達阻害剤(STI)には、(i)BCR-Ablキナーゼ阻害剤(例えば、イマチニブメシル酸塩(GLEEVEC))、(ii)キナーゼ阻害剤及び抗体を含む、上皮増殖因子(EGF)受容体阻害剤、(iii)HER-2/neu受容体阻害剤(例えば、HERCEPTIN)、(iv)Aktファミリーキナーゼ又はAkt経路の阻害剤(例えば、ラパマイシン)、(v)細胞周期キナーゼ阻害剤(例えば、フラボピリドール)、及び(vi)ホスファチジルイノシトールキナーゼ阻害剤が含まれる。がん患者における腫瘍増殖の抑制のために、免疫修飾に関与する薬剤も本明細書で開示する抗TIGIT抗体と組み合わせて用いることができる。

化学療法剤の例としては、限定されないが、アルキル化剤、例えば、チオテパ及びシクロホスファミド;スルホン酸アルキル、例えば、ブスルファン、インプロスルファン及びピポスルファン;アジリジン、例えば、ベンゾデパ、カルボコン、メツレドパ及びウレドパ;エチレンイミン及びメチロールメラミン(アルトレタミン、トリエチレンメラミン、トリエチレンホスホラミド、トリエチレンチオホスホラミド(triethylenethiophosphaoramide)及びトリメチロールメラミン(trimethylolomelamime)を含む);ナイトロジェンマスタード、例えば、クロラムブシル(chiorambucil)、クロルナファジン、クロロホスファミド、エストラムスチン、イホスファミド、メクロレタミン、メクロレタミンオキシド塩酸塩、メルファラン、ノベムビチン、フェネステリン、プレドニムスチン、トロホスファミド、ウラシルマスタード;ニトロソウレア、例えば、カルムスチン、クロロゾトシン、ホテムスチン、ロムスチン、ニムスチン、ラニムスチン;抗生物質、例えば、アクラシノマイシン(aclacinomysins)、アクチノマイシン、アントラマイシン(authramycin)、アザセリン、ブレオマイシン、カクチノマイシン、カリチアマイシン、カルビシン、カルミノマイシン、カルジノフィリン、クロモマイシン、ダクチノマイシン、ダウノルビシン、デトルビシン、6-ジアゾ-5-オキソ-L-ノルロイシン、ドキソルビシン、エピルビシン、エソルビシン、イダルビシン、マルセロマイシン、マイトマイシン、ミコフェノール酸、ノガラマイシン、オリボマイシン、ペプロマイシン、ポトフィロマイシン、ピューロマイシン、クエラマイシン、ロドルビシン、ストレプトニグリン、ストレプトゾシン、ツベルシジン、ウベニメクス、ジノスタチン、ゾルビシン;代謝拮抗薬、例えば、メトトレキサート及び5-フルオロウラシル(5-FU);葉酸類似体、例えば、デノプテリン、メトトレキサート、プテロプテリン、トリメトレキサート;プリン類似体、例えば、フルダラビン、6-メルカプトプリン、チアミプリン、チオグアニン;ピリミジン類似体、例えば、アンシタビン、アザシチジン、6-アザウリジン、カルモフール、シタラビン、ジデオキシウリジン、ドキシフルリジン、エノシタビン、フロクスウリジン、5-FU;アンドロゲン、例えば、カルステロン、プロピオン酸ドロモスタノロン、エピチオスタノール、メピチオスタン、テストラクトン;アンチアドレナル(anti-adrenals)、例えば、アミノグルテチミド、ミトタン、トリロスタン;葉酸補充薬、例えば、フォリン酸(frolinic acid);アセグラトン;アルドホスファミドグリコシド;アミノレブリン酸;アムサクリン;ベストラブシル;ビスアントレン;エダトレキサート(edatraxate);デフォファミン;デメコルシン;ジアジクオン;エルフォルミチン;酢酸エリプチニウム;エトグルシド;硝酸ガリウム;ヒドロキシウレア;レンチナン;ロニダミン;ミトグアゾン;ミトキサントロン;モピダモール;ニトラクリン;ペントスタチン;フェナメット;ピラルビシン;ポドフィリン酸;2-エチルヒドラジド;プロカルバジン;ラゾキサン;シゾフィラン;スピロゲルマニウム;テヌアゾン酸;トリアジコン; 2, 2', 2''-トリクロロトリエチルアミン;ウレタン;ビンデシン;ダカルバジン;マンノムスチン;ミトブロニトール;ミトラクトール;ピポブロマン;ガシトシン;アラビノシド(Ara-C);シクロホスファミド;チオテパ;トキソイド(すなわち、タキサン)、例えば、パクリタキセル、タキソール及びドキセタキセル;クロラムブシル;ゲムシタビン; 6-チオグアニン;メルカプトプリン;メトトレキサート;白金及び白金配位錯体、例えば、シスプラチン及びカルボプラチン;ビンブラスチン;エトポシド(VP-16);イホスファミド;マイトマイシンC;ミトキサントロン;ビンクリスチン;ビノレルビン;ナベルビン;ノバントロン;テニポシド;ダウノマイシン;アミノプテリン;ゼローダ;イバンドロネート; CPT11;トポイソメラーゼ阻害剤;カンプトテシン、ジフルオロメチルオルニチン(DMFO);レチノイン酸;エスペラミシン;カペシタビン; )、代謝拮抗薬(例えば、アザチオプリン);アントラサイクリン;植物アルカロイド(例えば、ビンカアルカロイドを含む);並びに上記のもののいずれかの薬学的に許容される塩、酸又は誘導体が挙げられる。

化学療法剤には、腫瘍に対するホルモン作用を調節又は阻害するように作用する抗ホルモン剤、例えば、抗エストロゲン剤[例えば、タモキシフェン、ラロキシフェン、4(5)-イミダゾールを阻害するアロマターゼ、4-ヒドロキシタモキシフェン、トリオキシフェン、ケオキシフェン、オナプリストン、及びトレミフェンを含む];並びに抗アンドロゲン剤、例えば、フルタミド、ニルタミド、ビカルタミド、ロイプロリド及びゴセレリン、並びに上記のもののいずれかの薬学的に許容される塩、酸又は誘導体も含まれる。ある特定の実施形態では、併用療法は、ホルモン又は関連ホルモン剤の投与を含む。

本明細書で開示する抗TIGIT抗体と組み合わせて用いることができるさらなる処置様式には、放射線療法、腫瘍抗原に対するモノクローナル抗体、モノクローナル抗体と毒素の複合体、T細胞アジュバント、骨髄移植、又は抗原提示細胞(例えば、樹状細胞療法)、又は細胞-細胞療法(cell-cell based thrapies)が含まれる。本明細書で使用される用語「細胞療法」は、損傷した若しくは充満した成熟細胞集団若しくは組織を修復すること又は病原体若しくは増殖細胞(例えば、がん細胞)に対する免疫応答を増強すること等の所望の治療効果を達成することを目的とした細胞の導入を含む任意の療法を指す。他の実施形態では、細胞療法には、損傷した若しくは充満した成熟細胞集団若しくは組織を修復すること又は病原体若しくは増殖細胞(例えば、がん細胞)に対する免疫応答を増強すること等の所望の治療効果を達成するために必要とされる、特定の細胞型に分化することができる非分化細胞(例えば、幹細胞又は他の多能性若しくは全能性細胞)の導入が含まれる。一部の実施形態では、本発明の抗体を、腫瘍浸潤性T細胞と共に、又は任意にex vivoで腫瘍へのホーミング(honing)のために増殖若しくは選択された、ナチュラルキラー細胞と共に投与することもできる。本発明の抗体は、これらの細胞の活性化に寄与する。

好ましい組み合わせは、本発明の抗体と、対照正常組織と比べてがん細胞上で優先的に発現される表面抗原に対する二次抗体である。がんの処置のために本発明の抗体を用いる併用療法で投与することができる抗体の一部の例としては、HER2抗原に対するHerceptin(登録商標)(トラスツズマブ)、VEGFに対するAvastin(登録商標)(ベバシズマブ)、又はEGF受容体に対する抗体、例えば、Erbitux(登録商標)(セツキシマブ)及びVectibix(登録商標)(パニツムマブ)が挙げられる。投与することができる他の薬剤としては、PD-1、PD-L1、CTLA-4、4-1BB、BTLA、VISTA、TIM-3及びLAG-3のいずれかの抗体若しくは他の阻害剤、又は他の下流のシグナル伝達阻害剤、例えばmTOR及びGSK3β阻害剤、並びにサイトカイン、例えば、インターフェロン-γ、IL-2及びIL-15が挙げられる。さらなる薬剤の一部の具体的な例としては、イピリムマブ、パゾパニブ、スニチニブ、ダサチニブ、ペムブロリズマブ、INCR024360、ダブラフェニブ、トラメチニブ、アテゾリズマブ(MPDL3280A)、タルセバ、コビメチニブ及びニボルマブが挙げられる。併用療法の二次抗体又は他の薬剤の選択は、処置されるがんに依存する。任意に、がんは、適切な抗体の選択を導くために抗原の発現又は優先的発現について試験される。二次抗体のアイソタイプは、好ましくは、エフェクター機能、例えば、ADCC、CDC及びファゴサイトーシスを促進するためのヒトIgG1である。

本発明の抗体は、がんに対する免疫応答を惹起するワクチンと共に投与することもできる。そのような免疫応答は、本発明の抗体により増強される。ワクチンは、免疫応答を誘導するのに有効であり、任意に担体分子に連結されている、がんの表面で発現される抗原又はその断片を含むことができる。

本発明は、免疫チェックポイント阻害剤と組み合わせた本明細書に記載の抗TIGIT抗体の使用を企図している。

全てのがんの特徴である途方もない数の遺伝的及びエピジェネティックな変化は、腫瘍細胞をそれらの正常な対応物と区別するために免疫系が使用することができる抗原の多様なセットをもたらす。T細胞の場合、T細胞受容体(TCR)による抗原認識によって開始される応答の最終的な大きさ(例えば、サイトカイン産生又は増殖レベル)及び質(例えば、サイトカイン産生パターンなどの、発生する免疫応答のタイプ)は、共刺激シグナルと阻害シグナル(免疫チェックポイント)間のバランスにより調節される。正常な生理的条件下で、免疫チェックポイントは、免疫系が病原性感染に応答しているとき、自己免疫の防止(すなわち、自己免疫寛容の維持)及びまた損傷からの組織の保護にも極めて重要である。免疫チェックポイントタンパク質の発現は、重要な免疫耐性機序として腫瘍により調節不全にされ得る。

遮断の候補であって、様々な腫瘍細胞型において選択的にアップレギュレートされるものもある免疫チェックポイント(リガンド及び受容体)の例としては、PD-1(プログラム細胞死タンパク質1)、PD-L1(プログラム死リガンド-1)、BTLA(B及びTリンパ球アテニュエーター)、CTLA-4(細胞傷害性Tリンパ球関連抗原4)、TIM-3(T細胞膜タンパク質3)、LAG-3(リンパ球活性化遺伝子3)、T細胞活性化のVドメイン免疫グロブリン抑制因子(VISTA)、CD96、A2aR(アデノシンA2a受容体)、A2bR(アデノシンA2b受容体)、CD73(エクト-5'-ヌクレオチダーゼ)、CD39(ENTPD1、NTPDase1)、アルギナーゼ、インドールアミンピロール-2,3-ジオキシゲナーゼ(indoleamine-pyrrole 2,3-dioxygenase)(IDO)、トリプトファン-2,3-ジオキシゲナーゼ(tryptophan 2,3-dioxygenase)(TDO)、及びキラー細胞抑制受容体が挙げられ、これらは、それらの構造的特徴に基づいて、2つのクラス:i)キラー細胞免疫グロブリン様受容体(KIR)、及びii)C型レクチン受容体(II型膜貫通型受容体ファミリーのメンバー)に分けることができる。受容体(例えば、2B4(別名CD244)受容体)とリガンド(例えば、ある特定のB7ファミリー阻害性リガンド、例えば、B7-H3(別名CD276)とB7-H4(別名B7-S1、B7x及びVCTN1))の両方を含む、他のあまり明確に定義されていない免疫チェックポイントが文献に記載されている。Pardoll、(2012年4月)Nature Rev. Cancer 12:252-64を参照されたい。

本発明は、上述の免疫チェックポイント受容体及びリガンド、並びにまだ記載されていない免疫チェックポイント受容体及びリガンドの阻害剤と組み合わせた本明細書で開示する抗TIGIT抗体のいずれかの使用も企図している。免疫チェックポイントのある特定のモジュレーターは現在利用可能であるが、他のものは、開発最終段階である。例を挙げて説明すると、2011年にメラノーマの処置に承認されたとき、完全ヒト化CTLA-4モノクローナル抗体イピリムマブ(YERVOY、Bristol-Myers Squibb)は、米国において規制当局の承認を受ける最初の免疫チェックポイント阻害剤となった。CTLA-4及び抗体(CTLA-4-Ig、アバタセプト(ORENCIA、Bristol-Myers Squibb))を含む融合タンパク質は、関節リウマチの処置に使用されており、他の融合タンパク質は、エプスタイン・バーウイルスに感作されている腎臓移植患者において有効であることが示されている。抗PD-1抗体(例えば、ニボルマブ(Bristol-Myers Squibb)及びペムブロリズマブ(ランブロリズマブ)(Merck))は開発中であり、抗PD-L1抗体(例えば、MPDL3280A(Roche))も評価中である。ニボルマブ及びペムブロリズマブは、メラノーマ、肺及び腎がんを有する患者において有望性を示している。

同様の併用療法を感染性疾患、例えば、ウイルス性、細菌性、真菌性及び寄生虫性疾患、障害及び状態、並びにそれらに関連する障害の処置又は予防に使用することができる。例えば、本発明の抗体は、病原体に対する抗体又は病原体に対するワクチン、例えば、ラウス肉腫ウイルスに対するパリビズマブと組み合わせることができる。ワクチンは、免疫応答を誘導するのに有効な、病原体のタンパク質又はその断片であり得る。本発明の抗体は、病原体に対する抗体又はワクチンの免疫応答を増強する。ex vivoで増殖されたT細胞又はナチュラルキラー細胞と共に本発明の抗体を投与することもできる。

そのような併用療法は、様々なウイルス生活環ステージを標的とし、異なる作用機序を有する抗ウイルス剤、例えば、限定されるものではないが、以下:ウイルス脱コートの阻害剤(例えば、アマンタジン及びリマンタジン);逆転写酵素阻害剤(例えば、アシクロビル、ジドブジン及びラミブジン);インテグラーゼを標的とする薬剤;ウイルスDNAへの転写因子の結合を遮断する薬剤;翻訳に影響を及ぼす薬剤(例えば、アンチセンス分子)(例えば、ホミビルセン);翻訳/リボザイム機能を調節する薬剤;プロテアーゼ阻害剤;ウイルス構築モジュレーター(例えば、リファンピシン);抗レトロウイルス剤、例えば、ヌクレオシド類似体逆転写酵素阻害剤(例えば、アジドジミジン(AZT)、ddl、ddC、3TC、d4T)等;非ヌクレオシド系逆転写酵素阻害剤(例えば、エファビレンツ、ネビラピン);ヌクレオチド類似体逆転写酵素阻害剤;及びウイルス粒子の放出を防止する薬剤(例えば、ザナミビル及びオセルタミビル)を含む。ある特定のウイルス(例えば、HIV)感染症の処置及び/又は予防は、抗ウイルス剤の一群(「カクテル」)を必要とすることが多い。

本明細書で開示する抗TIGIT抗体のいずれかと組み合わせた使用が企図される他の抗ウイルス剤としては、アバカビル、アデホビル、アマンタジン、アンプレナビル、アンプリゲン、アルビドール、アタザナビル、アトリプラ、ボセプレビレルテット(boceprevirertet)、シドホビル、コンビビル、ダルナビル、デラビルジン、ジダノシン、ドコサノール、エドクスジン、エムトリシタビン、エンフビルチド、エンテカビル、ファムシクロビル、ホスアンプレナビル、ホスカルネット、ホスホネット、ガンシクロビル、イバシタビン、イムノビル(imunovir)、イドクスウリジン、イミキモド、インジナビル、イノシン、様々なインターフェロン(例えば、ペグインターフェロンアルファ-2a)、ロピナビル、ロビリド、マラビロク、モロキシジン、メチサゾン、ネルフィナビル、ネクサバール、ペンシクロビル、ペラミビル、プレコナリル、ポドフィロトキシン、ラルテグラビル、リバビリン、リトナビル、ピラミジン(pyramidine)、サキナビル、スタブジン、テラプレビル、テノホビル、チプラナビル、トリフルリジン、トリジビル、トロマンタジン、ツルバダ、バラシクロビル、バルガンシクロビル、ビクリビロック、ビダラビン、ビラミジン、及びザルシタビンが挙げられるが、これらに限定されない。

本発明は、抗寄生虫剤と組み合わせた本明細書で開示する抗TIGIT抗体のいずれかの使用を企図している。そのような薬剤としては、チアベンダゾール、ピランテルパモ酸塩、メベンダゾール、プラジカンテル、ニクロサミド、ビチオノール、オキサムニキン、メトリホナート、イベルメクチン、アルベンダゾール、エフロルニチン、メラルソプロール、ペンタミジン、ベンズニダゾール、ニフルチモックス、及びニトロイミダゾールが挙げられるが、これらに限定されない。当業者は、寄生虫性障害の処置に有用性が見出され得る他の薬剤を承知している。

本発明の実施形態は、細菌性障害の処置又は予防に有用な薬剤と組み合わせた本明細書で開示する抗TIGIT抗体のいずれかの使用を企図している。抗菌剤は、作用機序に基づく手法、化学構造に基づく手法及び活性スペクトルに基づく手法を含む、様々な手法で分類することができる。抗菌剤の例としては、細菌細胞壁を標的にするもの(例えば、セファロスポリン及びペニシリン)、又は細胞膜を標的にするもの(例えば、ポリミキシン)、又は必須細菌酵素に干渉するもの(例えば、スルホンアミド、リファマイシン及びキノリン)が挙げられる。タンパク質合成を標的とするほとんどの抗菌剤(例えば、テトラサイクリン及びマクロライド)は静菌性であるが、アミノグリコシド等の薬剤は殺菌性である。抗菌剤をカテゴリー分けする別の手段は、それらの標的特異性に基づくものであり、「狭域スペクトル」薬剤は、特定のタイプの細菌(例えば、連鎖球菌(Streptococcus)等のグラム陽性菌)を標的とするが、「広域スペクトル」薬剤は、より広範な細菌に対する活性を有する。当業者は、特定の細菌感染症における使用に適している抗菌剤のタイプを知っている。

本発明の実施形態は、真菌性障害の処置又は予防に有用な薬剤と組み合わせた本明細書で開示する抗TIGIT抗体のいずれかの使用を企図している。抗真菌剤としては、ポリエン (例えば、アンホテリシン、ニスタチン及びピマリシン)、アゾール (例えば、フルコナゾール、イトラコナゾール及びケトコナゾール)、アリルアミン(例えば、ナフチフィン及びテルビナフィン)及びモルホリン(例えば、アモロルフィン)、並びに代謝拮抗薬(例えば、5-フルオロシトシン)が挙げられる。

本発明は、上記の薬剤(及び薬剤のクラスのメンバー)の薬学的に許容される塩、酸又は誘導体を包含する。

TIGITに対する抗体は、併用療法での使用について記載した二次抗体又は薬剤のいずれかと、医薬組成物の成分として組み合わせて用いることができる。医薬組成物において、薬剤は、記載した1つ以上の薬学的に許容される担体と組み合わせることができる。

V.他の適用
抗TIGIT抗体は、臨床診断若しくは処置の文脈において又は研究においてTIGITを検出するために使用することができる。例えば、抗体を使用して、対象が、処置可能であるがん又は感染性疾患に罹患していることの指標として、T細胞、ナチュラルキラー細胞及びがん細胞上のTIGITの存在を検出することができる。がん又は感染性疾患に罹患している対象のT細胞、ナチュラルキラー細胞及び/又はがん細胞上でのTIGHTの発現は、そのがん又は感染性疾患が本発明の抗体で処置可能であることの指標も提供する。抗体を、T細胞、ナチュラルキラー細胞及びがん細胞並びに様々な刺激に対するそれらの応答を検出する際の実験研究用の研究試薬として、販売することもできる。そのような使用の場合、モノクローナル抗体は、蛍光分子、スピン標識分子、酵素又は放射性同位元素で標識することができ、TIGITについてのアッセイを行うために必要な試薬全てを有するキットの形態で提供することができる。抗体は、例えばアフィニティークロマトグラフィーにより、TIGITを精製することもできるために使用することができる。

VI.キット
TIGITに対する抗体は、併用療法での使用について記載した二次抗体又は薬剤のいずれかと、キットの構成要素として組み合わせることができる。本明細書で開示する本発明は、本明細書で開示する抗体の1つ以上、及び1つ以上の薬学的に許容される賦形剤又は担体(例えば、限定するものではないが、リン酸緩衝生理食塩水、水、滅菌水、ポリエチレングリコール、ポリビニルピロリドン、レシチン、ラッカセイ油、ゴマ油、エマルジョン、例えば、油/水型エマルジョン又は水/油型エマルジョン、マイクロエマルジョン、ナノ担体、及び様々なタイプの湿潤剤)を含有する、1つ以上のキットを提供する。添加剤、例えば、アルコール、油、グリコール、保存剤、着香剤、着色剤、懸濁剤等も、担体、希釈剤又は賦形剤と共に本発明のキットに含めることができる。一実施形態では、本明細書で開示する抗体組成物における使用に適している薬学的に許容される担体は、滅菌したものであり、発熱物質不含であり、及び/又はさもなければ付随する感染症及び他の望ましくない副作用のリスクがなく、対象への投与について安全である。キットにおいて、組み合わせ及びそれに続く投与についての説明書又は別々の投与についての説明書と共に、それぞれの薬剤を別々のバイアルで、提供することができる。キットは、本明細書で開示する抗TIGIT抗体のいずれかの適切な取り扱い及び保管についての書面で説明書も含むことができる。

本明細書全体にわたって与えられているあらゆる最大数値限界は、それより低いあらゆる数値限界を、そのようなより低い数値限界が本明細書に明確に記載されているかのごとく含むことを意図している。本明細書全体にわたって与えられているあらゆる最小数値限界は、それより高いあらゆる数値限界を、そのようなより高い数値限界が本明細書に明確に記載されているかのごとく含むことになる。本明細書全体にわたって与えられているあらゆる数値範囲は、そのようなより広い範囲内に入るあらゆるより狭い範囲を、そのようなより狭い数値範囲が全て本明細書に明確に記載されているかのごとく含むことになる。

上記又は以下で引用する全ての特許出願、ウェブサイト、他の公表文献、アクセッション番号等は、個々の事柄が参照によりそのように組み入れられると具体的に且つ個々に示されている場合と同程度に、あらゆる目的でそれら全体が参照により組み入れられる。様々なバージョンの配列が、様々な時点で、あるアクセッション番号に結び付けられた場合、本出願の有効出願日の時点でそのアクセッション番号に結び付けられるバージョンが意図される。有効出願日は、適宜、アクセッション番号を参照して、実際の出願日又は優先権出願の出願日のどちらか早いほうの日を意味する。同様に、様々なバージョンの公表文献、ウェブサイト等が様々な時点で公開されている場合、別段の指示がない限り、本出願の有効出願日の最も近日に公開されたバージョンが意図される。別段の具体的な指示がない限り、本発明の任意の特徴、ステップ、要素、実施形態又は態様を任意の他のものと組み合わせて用いることができる。

明確化及び理解を目的として例証及び例によりある程度詳細に本発明を説明したが、ある特定の変更及び修飾を添付の特許請求の範囲に記載の範囲内で行うことができることは理解されるであろう。

[実施例]
以下の実施例は、ヒトTIGITに対するモノクローナル抗体の産生、特徴づけ及びヒト化を論じるものであり、本願に記載の抗体による結合特性を決定することができる例示的方法を提供するものでもある。

[実施例1]
組換えヒトTIGITタンパク質の発現
この研究における遺伝子クローニング、変異誘発及びプラスミド構築は、Sambrook及びRussel(Molecular Cloning、A Laboratory Manual、第3版、2001、Cold Spring Harbor Laboratory Press、Cold Spring Harbor、NY)、Kostelnyら(Int. J. Cancer 93:556-565、2001)、並びにColeら(J. Immunol. 159:3613-3621、1997)に記載されているもの等の、標準的分子生物学技術を用いて行った。

ヒト免疫グロブリンγ1鎖のFc領域と融合したヒトTIGITの細胞外領域(hTIGIT-Fc、配列番号59)の産生のための哺乳動物発現ベクターpFCm404(図1)は、以下の遺伝子成分を含有する。図1中のpFcm404のSalI部位から右回りに進んで、プラスミドは、ヒトサイトメガロウイルス(CMV)主要前初期プロモーター及びエンハンサー(図1中のCMV-P)で出発するhTIGIT-Fcのための転写ユニットを含有する。CMVプロモーターに続いて、シグナルペプチド(sp、配列番号2)、ヒトTIGITの細胞外領域(hTIGIT、配列番号3)、ポリペプチドリンカー(配列番号4)、及びヒトγ1 Fc領域(配列番号5)のコード領域、次いでヒトγ1重鎖遺伝子のポリアデニル化部位がある。hTIGIT-Fc遺伝子に続いて、SV40初期プロモーター(SV40-P)、ピューロマイシンに対する耐性のためのピューロマイシンN-アセチルトランスフェラーゼ遺伝子(puro)、SV40ポリアデニル化部位を含有するセグメント(SV40-A)がある。最後に、pFCm404は、細菌複製起点(pUC ori)とβラクタマーゼ遺伝子(βラクタマーゼ)とを含む、プラスミドpUC19の一部を含有する。図中の矢印は、転写方向を示す。関連制限酵素部位が図中に示されている。

pFCm404中のヒトTIGITの細胞外領域のコード領域を、ヒトCD155の細胞外領域(hCD155、配列番号6)をコードするDNA断片で置き換え、その結果、新たな発現ベクターpFCm406(図1)を得た。ヒトγ1 Fc領域と融合したヒトCD155の細胞外領域(hCD155-Fc、配列番号7)をpFCm406から発現させる。

pFCm404中のγ1 Fc領域のAgeI部位とEagI部位の間のコード領域を、FLAGペプチド(FLAG、配列番号8)、及びそれに続くヒトCD55のグリコシルホスファチジルイノシトール結合シグナル(GIP、配列番号9)をコードするDNA断片で置き換え、その結果、新たな発現ベクターpFCm407(図1)を得た。pFCm406によりコードされたFLAG及びGPIと融合したヒトTIGITの細胞外領域(hTIGIT-GPI)を細胞表面で発現させる。

培養上清中でhTIGIT-Fc及びhCD155-Fcを安定して産生する細胞株を得るために、発現ベクターpFCm404及びpFCm406を、それぞれ、マウスメラノーマ細胞株NS0(European Collection of Animal Cell Cultures、Salisbury、Wiltshire、UK)の染色体に導入した。37℃の7.5%CO2インキュベーターにおいて10%ウシ胎仔血清(FBS)を含有するDME培地中でNS0細胞を増殖させた。Bebbingtonら(Bio/Technology 10:169-175、1992)に記載されているようにエレクトロポレーションによってNS0への安定したトランスフェクションを行った。トランスフェクション前に、FspIを使用して発現ベクターを直線化した。細胞おおよそ10⁷個に10μgの直線化プラスミドをトランスフェクトし、それを、10%FBSを含有するDME培地に懸濁させ、数枚の96ウェルプレートに播種した。24時間後、選択培地(10%FBSと3μg/mlピューロマイシンとを含有するDME培地)を適用した。選択開始からおおよそ10日後、コーティング用のヤギ抗ヒトガンマ鎖抗体及びFc融合タンパク質の検出用のHRPコンジュゲートヤギ抗ヒトガンマ鎖を使用して、ELISAにより、Fc融合タンパク質の産生について培養上清をアッセイした。

高レベルのFc融合タンパク質を産生するNS0安定トランスフェクタントをハイブリドーマ-SFM培地(Thermo Fisher Scientific、Waltham、MA)に適応させ、該培地中で増幅させ、回転ボトルの中で消耗するまで増殖させた。遠心分離及び濾過後、培養上清をプロテインAセファロースカラム(GE Healthcare、Piscataway、NJ)に供した。カラムをリン酸緩衝食塩水(PBS)で洗浄した後、0.1Mグリシン-HCl(pH3.0)でFc融合タンパク質を溶出した。1M Tris-HCl(pH8)での中和後、溶出Fc融合タンパク質の緩衝液を透析によりPBSに交換した。

表面でhTIGIT-GPIを発現する細胞株を得るために、発現ベクターpFCm407をNS0細胞に安定的にトランスフェクトした。ラット抗FLAGモノクローナル抗体、及びPE標識ヤギ抗ラットIgG、Fc特異的抗体を使用して、フローサイトメトリーにより、細胞表面でのhTIGIT-GPIの発現をモニターした。細胞表面で高レベルのhTIGHT-GPIを発現するNS0細胞株(NS0-hTIGIT)を抗TIGIT抗体のスクリーニングに使用した。

[実施例2]
抗TIGITモノクローナル抗体の生成及び特徴づけ
抗ヒトTIGITモノクローナル抗体を産生するマウスハイブリドーマを、JN Biosciences(Mountain View、CA)においてGenomONE CF EX Cell Fusion Reagent(Cosmo Bio、Carlsbad、CA)等の標準的ハイブリドーマ技術に従って作製した。免疫原として、ヒトTIGIT-Fc融合タンパク質及びNS0-hTIGIT細胞を使用した。

ハイブリドーマ細胞の培養上清に分泌されたマウス抗体を一連のスクリーニングに供して、以下の特性：(1)精製hTIGIT-Fc融合タンパク質と結合する、(2)NS0-hTIGIT細胞と結合する、(3)NS0細胞と結合しない、(4)フィトヘマグルチニンで処理されたヒト末梢血単核細胞に由来するCD3+ T細胞と結合する、及び(5)hCD155-Fc融合タンパク質とNS0-hTIGIT細胞の結合を遮断する、を有する抗体を同定した。hTIGIT-Fcと結合する第1の特性は、マウス抗TIGIT抗体の同定用のマウスカッパ鎖及びラムダ鎖に対するHRPコンジュゲートヤギ抗体(SouthernBiotech、Birmingham、AL)を使用してELISAにより試験した。第2、第3及び第4の特性は、細胞結合マウス抗体の検出用のPE標識ヤギ抗マウスガンマ鎖抗体(SouthernBiotech)を使用してフローサイトメトリーにより調べた。第5の特性は、下で説明するようにフローサイトメトリーにより分析した。3つのマウスモノクローナル抗体(TIG1、TIG2及びTIG3)は、これら5つの特性全てを有することが見出された。TIG1、TIG2及びTIG3モノクローナル抗体は、上で説明したようにプロテインAカラムクロマトグラフィーによりハイブリドーマ細胞の培養上清から精製した。TIG1、TIG2及びTIG3のアイソタイプは、それぞれ、マウスIgG2b/カッパ、IgG2a/カッパ及びIgG2a/カッパである。

TIGITとCD155間の相互作用を遮断するTIG1、TIG2及びTIG3の活性をフローサイトメトリーにより分析した。NS0-hTIGIT細胞を、競合物質としての様々な濃度の抗TIGITモノクローナル抗体の存在(又は非存在)下で、亜飽和濃度のhCD155-Fcと共にインキュベートした。NS0-hTIGIT細胞と結合したhCD155-Fcの検出は、DyLight488標識ヤギ抗ヒト抗体IgG、Fc特異的抗体(Jackson ImmunoResearch, West Grove, PA)を用いて、を行った。図2に示されているように、TIG1、TIG2及びTIG3は、hCNSO-hTIGIT細胞に対するD155-Fcの結合を用量依存的に阻害した。hCD155-FcとNSO-hTIGIT細胞間の相互作用を遮断するための半最大阻害濃度(IC₅₀)は、TIG1については49ng/ml、TIG2については197ng/ml、及びTIG3については460ng/mlであった。TIGITに対するCD155の結合の95%より多くを遮断するために必要な抗体濃度は、TIG1については0.63μg/ml、TIG2については1.25μg/ml、及びTIG3については2.5μg/mlであった。

[実施例3]
抗TIGITモノクローナル抗体のV遺伝子シークエンシング
マウス抗TIGIT抗体の重鎖及び軽鎖(それぞれ、VH及びVL)配列の決定は、Tsurushitaら(Methods 36:69-83、2005)に記載されている手順に従って行った。TRIzol試薬(Invitrogen、Carlsbad、CA)をその供給業者のプロトコールに従って使用して、おおよそ10⁷の細胞から全RNAを抽出した。SMARTer RACE cDNA Amplification Kit(Clontech、Mountain View、CA)をその供給業者のプロトコールに従って使用して、5'-PAGE用のオリゴdTプライムcDNAを合成した。SMARTer RACE cDNA Amplification Kitに提供されている、マウス重鎖又は軽鎖定常領域にそれぞれ特異的にアニールする3'プライマー(Tsurushitaら、上掲)及び5'プライマーを使用する、Phusion DNAポリメラーゼ(Thermo Fisher Scientific、Waltham、MA)を用いるポリメラーゼ連鎖反応により、VH及びVL cDNAを増幅した。増幅されたVH及びVL遺伝子を、CloneJet PCR Cloning Kit(Thermo Fisher Scientific)を使用してクローニングし、CloneJet PCR Cloning Kitに提供されているプライマーを用いてシークエンシングを行った。いくつかのVH及びVLクローンをシークエンシングし、典型的なマウス重鎖及び軽鎖可変領域とに相同な固有の配列を同定した。

TIG1の成熟VHのアミノ酸配列(配列番号10)を図3に示す。TIG1 VHのCDR1、2及び3アミノ酸配列は、それぞれ、NFGMH(配列番号11)、FISSGSSSIYYADTVKG(配列番号12)及びMRLDYYAMDY(配列番号13)である。

TIG1の成熟VLのアミノ酸配列(配列番号14)を図4に示す。TIG1 VLのCDR1、2及び3アミノ酸配列は、それぞれ、RASKSISKYLA(配列番号15)、SGSTLQS(配列番号16)及びQQHNEYPWT(配列番号17)である。

成熟TIG2 VHのアミノ酸配列(配列番号18)を図5に示す。TIG2 VHのCDR1、2及び3アミノ酸配列は、それぞれ、EYTMH(配列番号19)、GINPNNGGTSYNQKFKG(配列番号20)及びPGWYNYAMDY(配列番号21)である。

成熟TIG2 VLのアミノ酸配列(配列番号22)を図6に示す。TIG2 VLのCDR1、2及び3アミノ酸配列は、それぞれ、KASQGVSTAVA(配列番号23)、SASYRYT(配列番号24)及びQQHYITPWT(配列番号25)である。

成熟TIG3 VHのアミノ酸配列(配列番号26)を図7に示す。TIG3 VHのCDR1、2及び3アミノ酸配列は、それぞれ、DYDMS(配列番号27)、YISDGGYNTYYPDTVKG(配列番号28)及びQILLRYYFDY(配列番号29)である。

成熟TIG3 VLのアミノ酸配列(配列番号30)を図8に示す。TIG3 VLのCDR1、2及び3アミノ酸配列は、それぞれ、KSSQSLLYSSNQKNYLA(配列番号31)、WASTRES(配列番号32)及びQQYHSYPWT(配列番号33)である。

図3〜8のCDR配列の割り当て及びアミノ酸位置の番号付けは、Kabatら(1991)に従う。図中のCDR1、CDR2及びCDR3配列には下線が引かれている。

[実施例4]
ヒト化TIG1抗体の構築及び発現
TIG1 VH及びVLのヒト化は、Tsurushitaら(Methods 36:69-83、2005)の手順に従って、Queenら(Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 86:10029-10033、1989)によって記載されたように行った。簡単に言うと、JN Biosciencesが占有するアルゴリズムを使用して、TIG1の可変領域の三次元分子モデルを先ず構築した。次に、その分子モデルを使用して、TIG1の相補性決定領域(CDR)の構造の形成に重要なフレームワークアミノ酸残基を同定した。並行して、TIG1 VH及びVLとの高い相動性をそれぞれ有する、cDNA由来のヒトVH及びVLアミノ酸配列を、選択した。最後に、CDR構造の維持に重要なフレームワークアミノ酸残基と共にCDR配列を、TIG1 VH及びVLから、対応する選択されたヒトフレームワーク配列にグラフトした。

設計したヒト化TIG1 VH(HuTIG1 VH)のアミノ酸配列は、MDSRLNLVFLVLILKGVQCEVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSNFGMHWVRQAPGKGLEWVAFISSGSSSIYYADTVKGRFTISRDNAKNSLYLQMNSLRAEDTAVYYCARMRLDYYAMDYWGQGTMVTVSS(配列番号34)である。成熟HuTIG1 VHアミノ酸配列、EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSNFGMHWVRQAPGKGLEWVAFISSGSSSIYYADTVKGRFTISRDNAKNSLYLQMNSLRAEDTAVYYCARMRLDYYAMDYWGQGTMVTVSS(配列番号35)は、配列番号34の20位で開始する。

設計したヒト化TIG1 VL(HuTIG1 VL)のアミノ酸配列は、MRFQVQVLGLLLLWISGAQCDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASKSISKYLAWYQQKPGKAPKLLIYSGSTLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQHNEYPWTFGGGTKVEIK(配列番号36)である。成熟HuTIG1 VLアミノ酸配列、DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASKSISKYLAWYQQKPGKAPKLLIYSGSTLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQHNEYPWTFGGGTKVEIK(配列番号37)は、配列番号36の21位で開始する。

HuTIG1 VHをコードする遺伝子を、コード領域の3'末端にスプライスドナーシグナル、断片の5'末端にSpeI部位、及び断片の3'末端にHindIII部位を含むエクソンとして合成した。SpeI及びHindIII部位が隣接する合成HuTIG1 VH遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号38)を、推定アミノ酸配列(配列番号34)と一緒に図9Aに示す。

HuTIG1 VLをコードする遺伝子を、コード領域の3'末端にスプライスドナー、断片の5'末端にNheI部位、及び断片の3'末端にEcoRI部位を含むエクソンとして合成した。NheI及びEcoRI部位が隣接する合成HuTIG1 VL遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号39)を、推定アミノ酸配列(配列番号36)と一緒に図9Bに示す。

ヒト化IgG1/カッパ形態のマウス抗ヒトTIGITモノクローナル抗体TIG1(HuTIG1-IgG1.AA)の産生のための哺乳動物発現ベクターpHuTIG1.AA(図10)を、以下の遺伝子成分を含有するように構築した。図10中のSalI部位から右回りに進んで、ベクターは、抗体重鎖遺伝子の転写を開始させるためにヒトサイトメガロウイルス(CMV)主要前初期プロモーター及びエンハンサー(図中のCMV-P)で出発する重鎖転写ユニットを含有する。CMVプロモーターの後に、SpeI及びHindIII部位が隣接するヒト化形態のTIG1の重鎖可変領域(HuTIG1 VH)をコードするエクソンがあり、CH1、ヒンジ、CH2及びCH3エクソンと介在イントロンを含むヒトγ1重鎖定常領域を含有するゲノム配列、及びヒトγ1重鎖遺伝子のポリアデニル化部位がある。pHuTIG1.AAにコードされたCH2領域は、エフェクター機能の除去のために234及び235位(Eu番号付け)にアラニン残基へのアミノ酸置換(L234A/L235A)を有する(Hezarehら、J. Virol. 75:12161-12168、2001)。重鎖遺伝子配列の後、軽鎖転写ユニットがCMVプロモーター及びエンハンサー(CMV-P)で始まり、その後に、NheI及びEcoRI部位が隣接するヒト化形態のTIG1の軽鎖可変領域(HuTIG1 Vl)をコードするエクソン、イントロンの一部が前にあるヒトカッパ鎖定常領域(Cκ)を含有するゲノム配列、及びそのCκエクソンの後にヒトカッパ鎖遺伝子のポリアデニル化部位がある。次いで、その軽鎖遺伝子の後に、SV40初期プロモーター(SV40-P)、ピューロマイシンに対する耐性のためのピューロマイシンN-アセチルトランスフェラーゼ遺伝子(puro)、そしてSV40ポリアデニル化部位を含有するセグメント(SV40-A)がある。最後に、pHuTIG1.AAは、細菌複製起点(pUC ori)とβラクタマーゼ遺伝子(βラクタマーゼ)とを含む、プラスミドpUC19の一部を含有する。図中の矢印は、転写方向を示す。

pHuTIG1.AAにコードされたHuTIG1-IgG1.AAの成熟ガンマ重鎖のアミノ酸配列は、EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFTFSNFGMHWVRQAPGKGLEWVAFISSGSSSIYYADTVKGRFTISRDNAKNSLYLQMNSLRAEDTAVYYCARMRLDYYAMDYWGQGTMVTVSSASTKGPSVFPLAPSSKSTSGGTAALGCLVKDYFPEPVTVSWNSGALTSGVHTFPAVLQSSGLYSLSSVVTVPSSSLGTQTYICNVNHKPSNTKVDKKVEPKSCDKTHTCPPCPAPEAAGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSRDELTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK(配列番号40)である。

C末端リシンが存在してもよく、又は存在しなくてもよい。

pHuTIG1.AAにコードされたHuTIG1-IgG1.AAの成熟カッパ軽鎖のアミノ酸配列は、DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCRASKSISKYLAWYQQKPGKAPKLLIYSGSTLQSGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFATYYCQQHNEYPWTFGGGTKVEIKRTVAAPSVFIFPPSDEQLKSGTASVVCLLNNFYPREAKVQWKVDNALQSGNSQESVTEQDSKDSTYSLSSTLTLSKADYEKHKVYACEVTHQGLSSPVTKSFNRGEC(配列番号41)である。

発現ベクターpHuTIG1.AAをチャイニーズハムスター卵巣細胞株CHO-K1(ATCC、Manassas、VA)の染色体に導入して、HuTIG1-IgG1.AAを安定して産生する細胞株を得た。CHO-K1細胞を、37℃の7.5%CO2インキュベーターにおいてSFM4CHO培地(GE Healthcare Life Sciences、Logan、UT)中で増殖させた。CHO-K1への安定したトランスフェクションをエレクトロポレーションにより行った。トランスフェクションの前に、FspIを使用してpHuTIG1.AAを直線化した。典型的な実験では、おおよそ10⁷の細胞に20μgの線形化プラスミドをトランスフェクトし、SFM4CHO培地に懸濁させ、細胞を適切に希釈した後、数枚の96ウェルプレートに100μg/ウェルで播種した。48時間後、20μg/mlのピューロマイシンを含有するSFM4CHO培地を100μl/ウェルで安定トランスフェクタントの単離のために添加した。選択開始からおおよそ10日後、発現株の培養上清を抗体産生についてアッセイした。

HuTIG1-IgG1.AAの発現をサンドイッチELISAにより測定した。典型的な実験では、ELISAプレートをヤギ抗ヒトIgG Fc特異的ポリクローナル抗体でコーティングし、洗浄緩衝液(0.05% Tween 20を含有するPBS)で洗浄し、ELISA緩衝液(2%脱脂乳と0.05% Tween 20とを含有するPBS)でブロックした。洗浄緩衝液での洗浄後、ELISA緩衝液で適切に希釈した試験試料をELISAプレートに適用した。適切なヒト化IgG1/κ抗体を標準物質として使用した。ELISAプレートを1時間、室温でインキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、HRPコンジュゲートヤギ抗ヒトカッパ鎖ポリクローナル抗体を使用して結合抗体を検出した。プレートを0.5時間、室温でインキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、発色を100μl/ウェルのABTS基質(Sigma-Aldrich)の添加により開始させ、100μl/ウェルの2%シュウ酸で停止させた。吸光度を405nmで測定した。

HuTIG1-IgG1.AAを高度に産生するCHO-K1安定トランスフェクタントを、細胞生存率が50%未満になるまでSFM4CHO中で増殖させた。遠心分離及び濾過後、培養上清をプロテインAカラム(HiTrap MABSelect SuRe、GE Healthcare、Piscataway、NJ)に供した。カラムをPBSで洗浄した後、0.1M グリシン-HCl(pH3.0)で抗体を溶出した。溶出抗体の緩衝液を1M Tris-HCl(pH8)で中和し、次いで透析によりPBSに交換した。抗体濃度を280nmでの吸光度(1mg/ml=1.4OD)測定により決定した。

[実施例5]
HuTIG1-IgG1.AAの特徴づけ
ヒトTIGITに対するHuTIG1-IgG1.AAの結合をELISAにより調べた。PBS(100μl/ウェル)中5μg/mlのhTIGIT-Fcを用いて4℃で終夜、ELISAプレートをコーティングし、洗浄緩衝液(0.05% Tween 20を含有するPBS)で洗浄し、200μl/ウェルのSuperBlockブロッキング緩衝液(Thermo Fisher Scientific)でブロックした。洗浄緩衝液での洗浄後、プレートに結合したヒトTIGITと結合させるために、HuTIG1-IgG1.AAをSuperBlockブロッキング緩衝液中の2.5μg/mlで出発して、2倍系列希釈で添加した。ELISAプレートを1時間、室温でインキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、ELISA緩衝液で1/2,000希釈した100μl/ウェルのHRPコンジュゲートヤギ抗ヒトカッパ鎖ポリクローナル抗体(Southern Biotech)で結合抗体を検出した。30分間、室温でインキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、発色を100μl/ウェルのABTS基質で開始させ、100μl/ウェルの2%シュウ酸で停止させた。吸光度を405nmで測定した。図11に示されているように、HuTIG1-IgG1.AAは、ヒトTIGITに用量依存的に結合した。TIGITとの結合についてのHuTIG1-IgG1.AAの半最大有効濃度(EC₅₀)は、65ng/mlであった。これは、HuTIG1-IgG1.AAがヒトTIGITに対する良好な結合物であることを示す。

HuTIG1-IgG1.AAとヒトTIGITの結合をフローサイトメトリーによっても調べた。NS0-hTIGIT細胞(8x10⁵の細胞)を、160μlのFACS緩衝液(0.5%ウシ血清アルブミンと0.05%アジ化ナトリウムとを含有するPBS)中、10μg/mlで出発する、2倍系列希釈での、様々な濃度のHuTIG1-IgG1.AAの存在(又は非存在)下、20分間、4℃でインキュベートした。FACS緩衝液での洗浄後、NS0-hTIGIT細胞上に結合しているHuTIG1-IgG1.AAを、FACS緩衝液中のPE標識ヤギ抗ヒトIgG抗体で検出した。20分間のインキュベーション、及びFACS緩衝液での洗浄後、FACScanフローサイトメーター(BD Biosciences、San Jose、CA)を使用するフローサイトメトリーに細胞を付して、各抗体濃度での平均チャネル蛍光(MCF)を得た。図12は、各抗体濃度(横軸)でのMCF(縦軸)のプロットを示す。EC₅₀値は、60ng/mlであった。これは、HuTIG1-IgG1.AAが、細胞表面で発現されるヒトTIGITに対する良好な結合物であることを示す。

ヒトTIGITとヒトCD155間の相互作用を遮断するHuTIG1-IgG1.AAの活性を、NS0-hTIGIT細胞を使用してフローサイトメトリーにより分析した。NS0-hTIGIT細胞(10⁶の細胞)を、200μlのFACS緩衝液中、10μg/mlで出発する、2倍系列希釈での、様々な濃度のHuTIG1-IgG1.AAの存在(又は非存在)下、20分間、4℃で亜飽和濃度(125ng/ml)のFITC標識hCD155-Fc融合タンパク質(hCD155-Fc-FITC)と共にインキュベートした。FACS緩衝液での洗浄後、FACScanフローサイトメーター(BD Biosciences、San Jose、CA)を使用するフローサイトメトリーにNS0-hTIGIT細胞を供した。細胞上へのhCD155-Fc-FITCの結合を調査するために、MCFを各抗体濃度で得た。図13に示されているように、HuTIG1-IgG1.AAは、hCD155-Fc-FITCと細胞上のTIGITとの間の相互作用を用量依存的に遮断した。TIGIT-CD155相互作用を遮断するためのHuTIG1-IgG1.AAの半最大阻害濃度(EC₅₀)は、67ng/mlであった。これは、HuTIG1-IgG1.AAがCD155とTIGIT間の相互作用の有効な遮断物であることを示す。

[実施例6]
ヒト化TIG3抗体の構築及び発現
実施例4で説明した一般手順に従ってTIG3 VH及びVLのヒト化を行った。設計したヒト化TIG3 VH(HuTIG3 VH)のアミノ酸配列は、MNFGLRLIFLVLTLKGVNCEVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFAFSDYDMSWVRQAPGKGLEWVAYISDGGYNTYYPDTVKGRFTISRDNAKNSLYLQMNSLRAEDTAVYYCARQILLRYYFDYWGQGTTVTVSS(配列番号42)である。成熟HuTIG3 VHアミノ酸配列、EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFAFSDYDMSWVRQAPGKGLEWVAYISDGGYNTYYPDTVKGRFTISRDNAKNSLYLQMNSLRAEDTAVYYCARQILLRYYFDYWGQGTTVTVSS(配列番号43)は、配列番号42の20位で開始する。

設計したヒト化TIG3 VL(HuTIG3 VL)のアミノ酸配列は、MDSQAQVLMLLLLWVSGTCGDIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGKAPKLLIYWASTRESGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFAVYYCQQYHSYPWTFGGGTKVEIK(配列番号44)である。成熟HuTIG3 VLアミノ酸配列、DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGKAPKLLIYWASTRESGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFAVYYCQQYHSYPWTFGGGTKVEIK(配列番号45)は、配列番号44の21位で開始する。

HuTIG3 VHをコードする遺伝子を、コード領域の3'末端にスプライスドナー、断片の5'末端にSpeI部位、及び断片の3'末端にHindIII部位を含むエクソンとして合成した。合成HuTIG3 VH遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号46)を、推定アミノ酸配列(配列番号42)と一緒に図14Aに示す。

ヒト化TIG3 VL(HuTIG3 VL)をコードする遺伝子を、コード領域の3'末端にスプライスドナー、断片の5'末端にNheI部位、及び断片の3'末端にEcoRI部位を含むエクソンとして合成した。合成HuTIG3 VL遺伝子のヌクレオチド配列(配列番号47)を、推定アミノ酸配列(配列番号44)と一緒に図14Bに示す。

ヒト化1gG1/カッパ形態の抗ヒトTIGITモノクローナル抗体TIG3(HuTIG3-IgG1.AA)の産生のための哺乳動物発現ベクターpHuTIG3.AAは、次のようにpHuTIG1.AAを修飾することによって構築した:(1)SpeI部位とHindIII部位間のHuTIG1 VH遺伝子をHuTIG3 VH遺伝子で置き換え、(2)NheI部位とEcoRI部位間のHuTIG1 VL遺伝子をHuTIG3 VL遺伝子で置き換えた。pHuTIG3.AAにコードされたCH2領域は、エフェクター機能を除去するために234及び235位(Eu番号付け)にアラニン残基へのアミノ酸置換(L234A/L235A)を有する。

pHuTIG3.AAにコードされたHuTIG3-IgG1.AAの成熟ガンマ重鎖のアミノ酸配列は、EVQLVESGGGLVQPGGSLRLSCAASGFAFSDYDMSWVRQAPGKGLEWVAYISDGGYNTYYPDTVKGRFTISRDNAKNSLYLQMNSLRAEDTAVYYCARQILLRYYFDYWGQGTTVTVSSASTKGPSVFPLAPSSKSTSGGTAALGCLVKDYFPEPVTVSWNSGALTSGVHTFPAVLQSSGLYSLSSVVTVPSSSLGTQTYICNVNHKPSNTKVDKKVEPKSCDKTHTCPPCPAPEAAGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSRDELTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK(配列番号48)である。

C末端リシンが存在してもよく、又は存在しなくてもよい。

pHuTIG3.AAにコードされたHuTIG3-IgG1.AAの成熟カッパ軽鎖のアミノ酸配列は、DIQMTQSPSSLSASVGDRVTITCKSSQSLLYSSNQKNYLAWYQQKPGKAPKLLIYWASTRESGVPSRFSGSGSGTDFTLTISSLQPEDFAVYYCQQYHSYPWTFGGGTKVEIKRTVAAPSVFIFPPSDEQLKSGTASVVCLLNNFYPREAKVQWKVDNALQSGNSQESVTEQDSKDSTYSLSSTLTLSKADYEKHKVYACEVTHQGLSSPVTKSFNRGEC(配列番号49)である。

100mlの対数増殖期Expi293細胞(Thermo Fisher Scientific)へのpHuTIG3.AAの一過性のトランスフェクションを供給業者のプロトコールに従って行った。HuTIG3-IgG1.AAを高度に産生するCHO-K1安定トランスフェクタントを上で説明したようにpHuTIG3.AAのエレクトロポレーションにより作製し、細胞生存率が50%になるまでSFM4CHO中で増殖させた。一過的にトランスフェクトしたExpi293細胞の各々の細胞上清からHuTIG3-IgG1.AAを精製し、上で説明したようにプロテインAアフィニティーカラムによりCHO-K1細胞に安定的にトランスフェクトした。

[実施例7]
HuTIG3-IgG1.AAの特徴づけ
ヒトTIGITの結合に対するHuTIG3-IgG1.AAの結合を実施例5で説明したようにELISAにより調べた。図15に示されているように、HuTIG3-IgG1.AAは、ヒトTIGITと用量依存的に結合した。TIGITとの結合についてのHuTIG3-IgG1.AAの半最大有効濃度(EC₅₀)は、85ng/mlであった。これは、HuTIG3-IgG1.AAがヒトTIGITに対する良好な結合物であることを示す。

ヒトTIGITに対するHuTIG3-IgG1.AAの結合を実施例5で説明したようにフローサイトメトリーによっても調べた。図12に示されているように、HuTIG3-IgG1.AAは、ヒトTIGITと用量依存的に結合した。TIGITとの結合についてのHuTIG3-IgG1.AAの半最大有効濃度(EC₅₀)は、370ng/mlであった。これは、HuTIG3-IgG1.AAがヒトTIGITに対する良好な結合物であることを示す。

TIGITとCD155間の相互作用を遮断するHuTIG3-IgG1.AAの活性を、実施例5で説明したようにNS0-hTIGIT細胞及びFITC標識hCD155-Fcを使用してフローサイトメトリーにより分析した。図13に示されているように、HuTIG3-IgG1.AAは、TIGITとCD155間の相互作用を用量依存的に遮断した。TIGIT-CD155相互作用を遮断するためのHuTIG3-IgG1.AAの半最大阻害濃度(IC₅₀)は、279ng/mlであった。これは、HuTIG3-IgG1.AAがCD155とTIGIT間の相互作用の有効な遮断物であることを示す。

[実施例8]
ヒトT細胞における破傷風トキソイドに対するIL-2サイトカイン応答はTIGIT遮断により増強される
抗原特異的T細胞応答を増強するマウス抗TIGIT抗体の能力を、破傷風トキソイドに対するin vitroでの抗原特異的リコールアッセイ(例えば、Piersmaら、Vaccine. 2006年4月12日;24(16):3076-83; Zaundersら、J Immunol. 2009年8月15日;183(4):2827-36を参照されたい)を使用して調べた。免疫系によるCD4+及びCD8+ T細胞メモリー応答の誘導を可能にする追加免疫注射により、破傷風トキソイドに対する十分なワクチン防御を達成する。有効性の代替尺度(例えば、Plotkinら、Clin Vaccine Immunol. 2010年7月;17(7):1055-1065; Goulonら、1972年11月、Presse Med. 1:3049-3050を参照されたい)として、抗破傷風トキソイドの0.1IU/mLの血清レベルは、免疫応答の維持の指標である。

破傷風トキソイドのワクチン接種を受けたヒトボランティアからの末梢血単核細胞(PBMC)を入手し(iQ Biosciences)、ボランティアの破傷風の血中力価が1.0IU/mlより高いことをELISA(Genway)により確認した。800,000個のPBMCを、96ウェル丸底プレート(Nunc)において、10%ウシ胎仔血清(FBS)を含有するRPMI 1640培地(Invitrogen)中で培養した。37℃の5%CO2インキュベーターにおいて、4日間、3.3μg/ml又は10μg/mlのマウス抗PD-1抗体(Biolegend、クローンEH12.2H7)又は抗TIGIT抗体(TIG1)の存在下でPBMCを含むウェルに、2μg/mlの破傷風トキソイド(List Biological Laboratories)を添加した。対照として、いかなる抗体もなしにPBMCに2μg/mlの破傷風トキソイドを添加した。培養ウェルからの上清を回収し、T細胞活性化の指標となるサイトカインであるIL-2をサイトカインビーズアレイ(BD Pharmingen、CBA Th1/Th2 Cytokine Kit)によりフローサイトメトリー(BD FACSCalibur)によって測定した。図16に示されているように、破傷風トキソイド刺激のみによるIL-2産生は、31pg/mlであった。IL-2産生は、3.3μg/ml及び10μg/mlのマウス抗TIGIT抗体の存在下で、それぞれ、70pg/ml及び86pg/mlにさらに増進された。破傷風トキソイド刺激によるIL-2産生は、3.3μg/ml及び10μg/mlのマウス抗PD-1抗体EH12.2H7の存在下でも、それぞれ、39pg/ml及び57pg/mlに増進された。これらのデータは、TIG1には抗原特異的T細胞サイトカイン応答を増強する機能的能力があることを示す。

[実施例9]
破傷風トキソイドに対するヒトT細胞増殖応答はTIGIT遮断により増強される
抗原特異的T細胞応答を増強するマウス抗TIGIT抗体の能力を、破傷風トキソイドに対するin vitroでの抗原特異的リコールアッセイ(例えば、Piersmaら、Vaccine. 2006年4月12日;24(16):3076-83; Zaundersら、J Immunol. 2009年8月15日;183(4):2827-36を参照されたい)を使用して調べた。破傷風トキソイドのワクチン接種を受けたヒトボランティアからのPBMCを、実施例8で説明したように入手した(iQ Biosciences)。in vitro及びin vivoで細胞を標識するのに使用される試薬である、カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル(CFSE)(ThermoFisher)でPBMCを標識して、色素希釈を使用してフローサイトメトリーにより複数の世代を追跡した。250,000個のCFSE標識PBMCを96ウェル丸底プレート(Nunc)においてAIM-V培地(Invitrogen)中で培養した。各ウェルに2.5μg/ml、5μg/ml又は10μg/mlのマウス抗PD-1抗体(BiolegendのクローンEH12.2H7)又はTIG1の存在下で各ウェルに、2μg/mlの破傷風トキソイド(Astarte Biologics、LLC)を添加した。細胞を4日間、37℃の5%CO2インキュベーターにおいてインキュベートした。4日目にIL-2[50単位/ml](Peprotech)を培養物に添加し、6日目に、CD4+ T細胞又はCD8+ T細胞に関するCFSE希釈についてのフローサイトメトリー(BD FACSCalibur)による増殖測定のためにPBMCを収集した。

図17(上のパネル)に示されているように、破傷風トキソイドは、ドナー1及び2に由来するヒトCD4+ T細胞の4.5%及び6.5%の増殖をそれぞれ誘導した。TIG1の添加は、試験した全ての抗体濃度(2.5μg/ml、5μg/ml及び10μg/ml)でCD4+ T細胞増殖をさらに増進させ、それらの用量範囲の抗PD-1抗体に関して同様の増殖効果が観察された。

図17(下のパネル)に示されているように、破傷風トキソイドは、ドナー1及び2に由来するヒトCD8+ T細胞の15%及び15.5%の増殖をそれぞれ誘導した。TIG1の添加は、試験した全ての抗体濃度(2.5μg/ml、5μg/ml及び10μg/ml)でCD8+ T細胞増殖をさらに増進させ、それらの用量範囲で抗体EH12.2H7に関して同様の増殖効果が観察された。これらの結果は、TIG1には抗原特異的T細胞増殖応答を増強する能力があることを実証する。

[実施例10]
TIGIT遮断によるヒト主要エフェクター細胞及びK562標的細胞に関するNK細胞媒介細胞傷害性の増大
ヒトNK細胞は、慢性骨髄性白血病(CML)細胞株であるK562等の、MHC Iを欠く標的細胞に対して自然細胞傷害性を惹起することができる(例えば、Nagelら、Cancer Res 1981; 41:2284-2288; Anderssonら、Int J Cancer. 1979年2月;23(2):143-7.; Lozzioら、Leuk Res. 1979; 3(6):363-70を参照されたい)。市販の抗体(Biolegendの抗CD155クローンSKII.4)を使用して、K562細胞上でのCD155(PVR)の発現(ATCC)を確認した。図18(上のパネル)に示されているように、K562細胞の98%は、高レベルのCD155を発現することが見出された(黒いヒストグラム)。市販の抗体(eBiosciencesの抗TIGITクローンMBSA43及びBiolegendの抗CD56クローンHCD56)を使用してPBMC(iQ Biosciences)におけるヒトCD56陽性NK細胞上でのTIGIT発現を、3名の代表ヒトドナーに関して確認した(図18、下のパネル)。

NK細胞により媒介されるK562細胞の溶解をTIG1あり又はなしで測定した。37℃の5% CO2インキュベーターにおいてAIM-V培地(Invitrogen)中、インターロイキン-2(IL-2)[200単位/ml](Peprotech)の存在下でPBMCを終夜培養した。翌日、K562細胞をCFSE標識し、4時間、37℃の5% CO2インキュベーターにおいて10μg/ml TIG1の存在下、PBMCと共に1:100(標的:PBMC;おおよそ5% NK細胞を含有するPBMC100個に対してK562細胞1個)で共培養した。インキュベーション期間の後、細胞を回収し、5nM Sytox Red(ThermoFisher)で染色して、死滅した標的細胞を(CFSE+ Sytox Red+)により区別した。NK細胞により溶解されたK562標的細胞の百分率を、フローサイトメトリー(FACSCalibur; FlowJo Analysis)によって決定した。図19に示されているように、2%のK562細胞がTIG1なしで溶解された。TIG1を添加したとき、4.4%のK562細胞が溶解された。TIG1の添加は、K562細胞のNK細胞媒介自然細胞傷害性を2倍増強した。これは、TIG1にはヒトエフェクター細胞のサブセットによる標的細胞殺滅レベルを増加させる能力があることを実証する。

[実施例11]
SEB誘導ヒトT細胞サイトカイン産生はTIGIT遮断により増進される
SEB(ブドウ球菌エンテロトキシンB(Staphylococcus Enterotoxin B))等のスーパー抗原は、抗原提示細胞上のMHCクラスII分子をTCRのνβ要素に連結させることによりT細胞を活性化し、その結果、インターロイキン-2(IL-2)、インターロイキン-6(IL-6)、腫瘍壊死因子アルファ(TNFα)及びインターロイキンガンマ(IFNγ)をはじめとするサイトカインが産生されることになる(例えば、Krakauerら、Toxins(Basel). 2010年8月;2(8):1963-1983を参照されたい)。T細胞の0.1〜0.001%が活性化され得る典型的なリコール抗原誘導T細胞応答と比較して、SEBは、特定の血液ドナー各々に見られるνβ3、νβ12、νβ14及びνβ17を有するT細胞の画分に依存してヒト血液中のT細胞の10〜20%までを活性化することができる。したがって、ヒト全血液細胞(WBC)を用いてTIGIT遮断により標的修飾レベルを決定するために、SEBをT細胞ベースのサイトカイン分泌アッセイに使用することができる。

採血から4時間以内にヘパリンナトリウムを使用して、溶血の徴候のない新鮮に単離されたWBC試料(Stanford Blood Center)を得た。250μlを96ウェル丸底プレート(Nunc)のウェルに分取し、10μg/mlのヒト化抗PD-1モノクローナル抗体又は10μg/mlのHuTIG1-IgG1.AAの存在下、24時間、37℃の5%CO2インキュベーターにおいて最終濃度1μg/mlのSEB(Toxin Technology)で刺激した。24時間後、96ウェルプレートを短時間遠心分離して、収集のために血漿層を分離した。血漿試料収集後、IL-2、IL-6、TNFα及びIFNγの発現レベルをフローサイトメトリー(BD FACSCalibur)によるサイトカインビーズアッセイ(Biolegend、LEGENDplex(商標)ヒトCD8/NKパネル)により測定し、定量的測定用のBiolegendソフトウェアにより分析した。

IL-2、IL-6、TNFα及びIFNγの各々についての発現レベルの変化を決定するために、試験抗体(加えてSEB)の存在下でのサイトカインレベルを、各ドナーについての抗体の非存在下でのサイトカインレベルで割った。2倍変化(例えば、抗TIGITの存在下で検出される2倍変化)は、実験で測定されるサイトカインの絶対濃度がSEB刺激対照条件で見いだされる量の2倍であることを意味する。図20に示されているように、健常ドナー血液細胞によるSEB刺激IL-2、IL-6、TNFα又はIFNγ産生は、10μg/mlのヒト化抗PD-1又は10μg/mlのHuTIG1-IgG1.AAの存在下で増進された。これらの条件下では、WBCによるSEB誘導サイトカイン産生及びHuTIG1-IgG1.AAによるその修飾は、サイトカインエフェクター応答増強の読み出し情報である。HuTIG1-IgG1.AAは、ここに示したアッセイでのIL-2、IL-6、TNFα及びIFNγの産生の刺激により実証されるように、免疫応答を増強することができた。

[実施例12]
HuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AA媒介補体依存性細胞傷害性の特徴づけ
補体依存性細胞傷害性(CDC)は、補体の存在下でのその標的分子を発現する細胞の溶解を指す(例えば、Gazzano-Santoroら、J. Immunol. Methods、202:163を参照されたい)。古典的補体経路の活性化は、細胞表面のそれらの同種抗原と結合する抗体(適切なサブクラスの抗体)との補体系(C1q)の第1の成分の結合により開始される。補体活性化を評価するために、ヒトT細胞ジャーカットデュアルレポーター親細胞株(Dual Jurkat; Invivogen)を、表面でヒトTIGITを安定的に発現するように改変した(Jurkat-TIGIT)。図21に示されているように、市販のPE標識抗TIGIT抗体(eBiosciencesのクローンMSBA43)を用いるフローサイトメトリーにより、ジャーカット-TIGIT細胞の表面でのTIGITの発現が確認された。それ故、膜結合TIGITを構成的に発現し、それゆえに補体の存在下で抗体結合CDC活性を受けることができる標的細胞として、ジャーカット-TIGHTを使用した。

CDCアッセイは、ジャーカット-TIGIT細胞及びヒト補体を用いて、50μg/mlまでの増加濃度を有するHuTIG1-IgG1.AA、HuTIG3-IgG1.AA又はウサギ抗胸腺細胞グロブリン(ATG)(Fresenius Biotech GmbH)の存在下で行った。そのジャーカット細胞との反応性、及びジャーカット細胞に関して記録された補体依存性細胞傷害活性(例えば、Eiermannら、J Hematother Stem Cell Res. 2001年6月;10(3):385-90.; Ayukら、AntiCancer Research 29:1355-1360(2009)参照)のため、ATGを陽性対照として使用した。10%ウシ胎仔血清(FBS)を含有するRPMI 1640培地(Invitrogen)中の50,000個のジャーカット-TIGIT細胞を、96ウェル丸底プレート(Nunc)に播種した。50μg/mlの最高濃度で出発して処置抗体を添加し、続いて3倍希釈系列を添加して、1時間、37℃の5%CO2インキュベーターにおいて細胞と共にインキュベートした。この1時間のインキュベーションの後、ヒト補体を添加し、さらに3時間、37℃の5%CO2インキュベーターにおいてインキュベートした。この3時間のインキュベーションの完了後、5μg/mlのヨウ化プロピジウム(ThermoFisher)を添加し、試料をフローサイトメトリー(BD FACSCalibur)により分析して、細胞死の読み出し情報としてヨウ化プロピジウム陽性の百分率を決定した。

正規化された変化を決定するために、生存百分率をフローサイトメトリーにより測定し、ヨウ化プロピジウム陽性細胞の百分率を死細胞として評価した。未処置試料の値を100%に正規化した。抗体の存在下での試料の生存百分率を正規化された未処置のもので割って、生存率の倍率変化を得る。図22に示されているように、50μg/ml以下のHuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAは両方とも、CDC活性を誘導しなかった。これらのデータは、HuTIG1-IgG1.AAとTIGITの結合も、HuTIG3-IgG1.AAとTIGITの結合も、T細胞の補体媒介細胞死をもたらさないことを実証する。

[実施例13]
HuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAのジャーカットデュアルレポーター細胞株特徴づけ
FN-κBコンセンサス転写応答エレメントの5つのコピー及びc-Rel結合部位の3つのコピーと融合したIFNβ最小プロモーターによって駆動される分泌ルシフェラーゼレポーター遺伝子を染色体内に有するジャーカット-TIGITレポーター細胞株を使用して、ヒトTIGIT受容体の遮断についての機能的結果を分析した。ジャーカット-TIGIT細胞は、5つのIFN刺激応答エレメントと共にISG54最小プロモーターの制御下で分泌型胚性アルカリホスファターゼ(secreted embryonic alkaline phosphatase)(SEAP)レポーター遺伝子も発現する。

アッセイは、Tエフェクター細胞(ジャーカット-TIGIT)及び抗原提示細胞を代表する、2種の細胞株を含む。Tエフェクター細胞は、T細胞受容体(TCR)の下流で活性化されるルシフェラーゼレポーターを安定的に発現する。抗原提示細胞(人工抗原提示細胞、又は「aAPC」)は、抗原非依存的にジャーカット-TIGIT等のTエフェクター細胞に結合して活性化するT細胞活性化タンパク質を安定的に発現する(Promega)。CD155を発現するようにaAPC細胞をさらに改変する。Tエフェクター細胞をその対応するaAPC細胞と共培養すると、TIGITとCD155の相互作用により、Tエフェクター細胞の活性化が阻害され、ルシフェラーゼ発現が低減される。抗TIGIT遮断抗体の添加により、ルシフェラーゼ活性の発現を可能にする阻害シグナルが放出される。

このアッセイでは、ヒトCD155及びT細胞活性化タンパク質を発現する16,000個のaAPC(TCR Activator CD155 CHO-K1)(Promega)を96ウェルハーフエリアプレート上に播種し、37℃の5%CO2インキュベーターにおいて24時間インキュベートする。翌日、10μg/mlで出発して2倍希釈系列を用いるHuTIG1-IgG1.AA又はHuTIG3-IgG1.AAの非存在又は存在下で、50,000個のヒトジャーカット-TIGIT細胞をTCR活性化因子CD155 CHO-K1細胞とさらに24時間共培養した。上清を収集し、QUANTI-Luc(Invivogen)及びマルチモードプレートリーダー(Perkin Elmer EnSpire)を使用して、分泌されたルシフェラーゼを相対発光単位として測定した。相対発光単位の倍率変化を決定するために、様々な濃度の抗TIGIT抗体の存在下でTCR活性化因子CD155 CHO-K1と共培養したジャーカット-TIGITの相対発光単位を、抗体の非存在下での相対発光単位で割った。したがって、例として、(例えば、抗TIGITの存在下で検出される)2倍増加は、例えば、実験で測定される相対発光量が、TCR活性化因子のみで刺激する対照条件で見いだされた量の2倍であることを意味する。

図23に示されているように、HuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAは両方とも、0.6μg/ml〜10μg/mlの各々のブロッキングTIGIT抗体の存在下で誘導される相対発光単位増加によって決定した場合に、おおよそ1.5〜2.5倍増加で、固有T細胞活性化シグナル伝達を増加させることができた。これらのデータは、抗TIGIT抗体は、TIGITの機能を遮断することによるアンタゴニスト活性を有し、固有T細胞活性を増加させることを実証する。

[実施例14]
TIGITとの競合的結合
フローサイトメトリーを使用して、ヒトTIGITとの結合についてTIG1と競合する抗体を同定する。Pierce FITC Antibody Labeling Kit(Thermo Fisher Scientific)を製造業者のプロトコールに従って使用して、蛍光色素FITCでTIG1を標識する。ヒトTIGITに対する得られたFITC標識TIG1の結合を、NS0-hTIGIT細胞を使用してフローサイトメトリーにより調査する。200μlのFACS緩衝液(0.5%ウシ血清アルブミンと0.05%アジ化ナトリウムとを含有するPBS)中、10μg/mlで出発する、2倍系列希釈での、様々な濃度のFITC標識TIG1と共に、4℃で30分間、100,000個のNS0-hTIGIT細胞をインキュベートする。2mlのFACS緩衝液での洗浄後、NS0-hTIGIT細胞を0.2mlのFACS緩衝液に懸濁させ、FACScanフローサイトメーター(BD Biosciences、San Jose、CA)を使用するフローサイトメトリーに供し、各抗体濃度での平均チャネル蛍光(MCF)を得る。最大蛍光レベルの90%が達成される亜飽和濃度をFITC標識TIG1について決定する。

亜飽和濃度のFITC標識TIG1を、100,000個のNS0-hTIGIT細胞と共に、200μlのFACS緩衝液中、4℃で30分間、200倍高い濃度の試験抗体の存在(又は非存在)下でインキュベートする。例えば、0.1μg/mlのFITC標識TIG1をNS0-hTIGIT細胞との結合に使用する場合、20μg/mlの試験抗体を細胞懸濁液に添加する。バックグラウンド対照として、100,000個のNS0-hTIGIT細胞をいかなる抗体もなしにインキュベートする。2mlのFACS緩衝液で洗浄した後、NS0-hTIGIT細胞を0.2mlのFACS緩衝液に懸濁させ、フローサイトメトリー分析に供する。

FITC標識TIG1と共にインキュベートしたNS0-hTIGIT細胞のMCF[MCF A]を100%に正規化し、抗体なしでインキュベートしたNS0-hTIGIT細胞のMCF[MCF B]を0%に正規化する。FITC標識TIG1及び試験抗体と共にインキュベートしたNS0-hTIGIT細胞のMCF[MCF C]を次の式によって正規化する:100x([MCF C]-[MCF B])/([MCF A]-[MCF B])。FITC標識TIG1及び試験抗体と共にインキュベートしたNS0-hTIGIT細胞の正規化されたMCFが20%未満であった場合、その試験抗体を、ヒトTIGITとの結合についてTIG1と競合すると判定する。

同じアッセイを使用して、TIG2又はTIG3と競合する抗体を同定することができる。

[実施例15]
親和性測定
モノクローナル抗体の抗原結合親和性は、無標識光学表面プラズモン共鳴(SPR)バイオセンサー、例えば、Biacore T100(GE Healthcare Life Sciences、Marlborough、MA)、ProteOn XPR36(BioRad、Hercules、CA)、Octet RED384(ForteBio、Menlo Park、CA)及びIBIS MX96(Wasatch Microfluidics、Salt Lake City、UT)により測定することができる(Yangら、Anal. Biochem. 508:78-96、2016)。Biacore T100を使用して、Yangら(上掲)により記載されたようにTIG1、TIG2及びTIG3の各々についての抗原結合親和性を測定する。標準的な結合プロトコールを使用して、CM5センサーチップ(GE Healthcare Life Sciences)のフローセルにプロテインA/G(Thermo Fisher Scientific)を固定化する。試験抗体(TIG1、TIG2又はTIG3)は、CM5センサーチップ上のプロテインA/Gによって捕捉される。様々な濃度の組換えヒトTIGITタンパク質、例えば、Hisタグ付き組換えヒトTIGIT(Creative BioMart、Shirley、NY)を、センサーチップ上での試験抗体との結合のためのフローにおいて使用する。BIAevaluationソフトウェア(GE Healthcare Life Sciences)を使用して、試験抗体とヒトTIGIT間の相互作用の結合速度(ka)及び解離速度(kd)を得る。TIG1、TIG2及びTIG3の各々についての結合速度(ka)を解離速度(kd)で割ることにより、会合定数(Ka)を算出する。解離定数(Kd)は、解離速度(kd)を結合速度(ka)で割ることによって算出する。

BioRad ProteOn XPR36システムを用いて、10mM HEPES、150mM NaCl、pH7.4、0.005% Tween-20及び0.2mg/ml BSA中、25℃で、HuTIG1-IgG1.AAについてのバイオセンサー研究を実行した。HuTIG1-IgG1.AAを、3.7、1.2及び0.4nMに希釈し、GEの抗ヒトIgG抗体〜10,000RUでコーティングされたGLMセンサーチップ上に5分間、捕捉させた。最高濃度としての100nMから3倍希釈系列で下は1.2nMまでのHisタグ付き可溶性組換えヒトTIGIT(カタログ番号TIT-H52H3; Acro Biosystems、Newark、DE)を試験した。Local Rmaxを使用して、異なる密度の3つの抗体表面からのデータの1:1相互作用モデルへのグローバルフィッティングを行った。得られた結合速度(ka)及び解離速度(kd)は、それぞれ、(4.42±0.02)x10⁵M^-1s^-1及び(4.09±0.02)x10^-4s^-1である。算出解離定数(Kd)は、925±7pMである。

[実施例16]
エピトープマッピング
TIGIT分子中のTIG1、TIG2及びTIG3の各々により認識されるエピトープを局在定位するために、オーバーラップ伸長PCR法(Higuchi、R.、1989、「PCR Technology:Principles and Applications for DNA Amplification」、Erlich, H. A.編、Stockton Press、New York、NY、61-70頁)を使用して部位特異的変異誘発によりTIGITの細胞外領域(配列番号3)に単一アミノ酸置換変異体を生じさせた。TIGITの細胞外領域における次の6つの変異体をアッセイに使用した:Q35A(配列番号50)、N37A(配列番号51)、Q39A(配列番号52)、N49A(配列番号53)、D51A(配列番号54)及びF86A(配列番号55)。各変異体名の左側の文字、中央の数字、及び右側の文字は、野生型TIGITにおけるアミノ酸残基、TIGTの細胞外領域(配列番号3)におけるN末端メチオニン残基からの計数による位置、及び変異体におけるアミノ酸をそれぞれ示す。アミノ酸残基は、1文字表記である。これら6つの変異体の各々は、TIGIT-CD155複合体の界面付近にアミノ酸置換を有する(Stengel、Proc. Natl. Acad. Sci. USA、109:5399-5404、2012)。

哺乳動物発現ベクターpFCm179は、(i)ピューロマイシンN-アセチルトランスフェラーゼ遺伝子が大腸菌(E. coli)キサンチングアニンホスホリボシルトランスフェラーゼ遺伝子によって置き換えられていること、及び(ii)ヒトTIGITの細胞外領域がヒトIL-15によって置き換えられていることを除いて、pFCm404(図1)と同じ構造を有する。ヒトTIGITの細胞外領域の6つのアラニン置換変異体をコードするDNA断片を個々にpFCm179に導入して、IL-15コード領域を置き換えた。得られた発現ベクターであるpFCm179-Q35A、pFCm179-N37A、pFCm179-Q39A、pFCm179-N49A、pFCm179-D51A及びpFCm179-F86Aは、TIGITコード領域にQ35A、N37A、Q39A、N49A、D51A及びF86A変異体をそれぞれ有し、各変異体に特異的な単一のアミノ酸置換を除いて、pFCm404にコードされているのと同じTIGIT-Fc融合タンパク質配列を発現する。

野生型及び変異型TIGIT-Fc融合タンパク質をヒト胎児由来腎臓細胞株HEK293において一過的に発現させた。37℃の7.5%CO2インキュベーターにおいて10%FCSを含有するDMEM中でHEK293細胞を増殖させた。ポリエチレンイミン法(Durocherら、Nucl. Acids Res. 30:e9、2002)を使用して、野生型及び変異型TIGIT-Fc融合タンパク質の発現ベクター(pFCm404、pFCm179-Q35A、pFCm179-N37A、pFCm179-Q39A、pFCm179-N49A、pFCm179-D51A及びpFCm179-F86A)を個々にHEK293細胞にトランスフェクトした。培養上清中のTIGIT-Fc融合タンパク質の産生レベルをELISAにより測定した。簡単に言うと、ELISAプレートを、PBSで1/2,000希釈した、100μl/ウェルのヤギ抗ヒトIgG Fc特異的ポリクローナル抗体(Sigma-Aldrich)で4℃で終夜コーティングし、洗浄緩衝液で洗浄し、200μl/ウェルのELISA緩衝液で20分間、室温でブロックした。洗浄緩衝液での洗浄後、ELISA緩衝液(100μl/ウェル)で適切に希釈した、一過的にトランスフェクトされたHEK293細胞の培養上清を、ELISAプレートに適用した。精製hTIGIT-Fcを標準物質として使用した。ELISAプレートを30分間、室温でインキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、ELISA緩衝液で1/1,2000希釈した100μl/ウェルのHRPコンジュゲートヤギ抗ヒトIgGポリクローナル抗体(Southern Biotech)を使用して、結合したFc融合タンパク質を検出した。プレートを30分間、室温でインキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、発色を100μl/ウェルのABTS基質(Sigma-Aldrich)の添加により開始させ、100μl/ウェルの2%シュウ酸で停止させた。吸光度を405nmで測定した。

TIGIT変異体に対するマウスTIG1、TIG2及びTIG3抗体の各々の結合をELISAによって調べた。ELISAプレートを、PBSで1/2,000希釈した、100μl/ウェルのヤギ抗ヒトIgG Fc特異的ポリクローナル抗体(Sigma-Aldrich)で4℃で終夜コーティングし、、洗浄緩衝液で洗浄し、200μl/ウェルのELISA緩衝液で20分間、室温でブロックした。洗浄緩衝液で洗浄した後、ELISA緩衝液(100μl/ウェル)中の、野生型TIGITを有するか又は6つのTIGIT変異体のうちの1つを有する、0.5μg/mlの一過的に発現されたTIGIT-Fc融合タンパク質を、室温で30分間のインキュベーションのために、ELISAプレートに二重で適用した。陰性対照として、トランスフェクトされていないHEK293細胞の培養上清を使用した。洗浄緩衝液で洗浄した後、ELISA緩衝液(100μl/ウェル)中の200ng/mlの試験抗体(TIG1、TIG2又はTIG3)100μl/ウェルを適用した。ELISAプレートを30分間、室温でインキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、ELISA緩衝液で1/2,000希釈した100μl/ウェルのHRPコンジュゲートヤギ抗マウスカッパ鎖ポリクローナル抗体(Bethyl Laboratories、Montgomery、TX)を使用して、結合抗体を検出した。プレートを0.5時間、室温でインキュベートし、洗浄緩衝液で洗浄した後、発色を100μl/ウェルのABTS基質(Sigma-Aldrich)の添加により開始させ、100μl/ウェルの2%シュウ酸で停止させた。吸光度を405nmで測定した。

TIG1、TIG2及びTIG3の各々について、各TIGIT変異体との相対結合を下記の式で算出した。野生型TIGIT-Fc融合タンパク質に関する平均吸光度[Abs A]を100%に正規化し、トランスフェクトされていないHEK293細胞の細胞上清に関する平均吸光度[Abs B]を0%に正規化した。変異型TIGIT-Fc融合タンパク質に関する平均吸光度[Abs C]は、次の式によって正規化した:100x([Abs C]-[Abs B])/([Abs A]-[Abs B])。結果を表1に要約する。TIGITの相対結合は、アミノ酸残基が35、37、49及び51位でアラニンにより置換されている場合、5%未満であった。これは、これら4位置のアミノ酸残基がTIGITに対するTIG1の結合にとって重要な意味をもつことを示す。このアッセイに使用したTIGIT変異体はいずれもTIGITに対するTIG2及びTIG3の結合を消失させなかった。

[実施例17]
HuTIG1-IgG1.AA、抗PD-L1抗体、及び抗PD-L1抗体と組合せでのHuTIG1-IgG1.AAの添加時のIFNγの分泌増進
密度勾配媒体(Lymphoprep; STEMCELL; 07801)を用いて血液を層化し、遠心分離後、PBMCを中間相(interphase)から収集することにより、ヒトPBMCを先ずバフィーコートから単離した。次のステップでは、CD14の正の選択(EasySep Human CD14 Positive Selection kit; STEMCELL;カタログ番号18058)により製造業者のプロトコールに従ってPBMCからヒト単球を単離し、5%FBSと0.1μg/mlのGM-CSF(R&D;カタログ番号215-GM-050/CF)と0.1μg/mlのIL-4(R&D;カタログ番号204-IL-050/CF)とを補充したRPMI培地中で6日間培養した。分化した単球由来の樹状細胞(moDC)を回収し、CD155、CD112及びPD-L1の発現をフローサイトメトリーによりチェックした(図24)。

4名の異なるドナーからのヒトCD4+細胞をネガティブディプリーション(negative depletion)(RosetteSep human CD4 T cell enrichment cocktail; STEMCELL; #15062)によりバフィーコートから単離し、フローサイトメトリーを使用して純度を決定した。

moDCとCD4+細胞を1:4比(25,000個のmoDC、100,000個のCD4+細胞)で組み合わせ、4日間、無血清培地(X-Vivo-20; LONZA;カタログ番号04-448Q)中、HuTIG1-IgG1.AA(5μg/ml若しくは15μg/ml)、又は抗PD-L1抗体(10μg/ml;クローン243.55.S1;配列番号56及び57)、又はHuTIG1-IgG1.AA(15μg/ml)と抗PD-L1抗体(10μg/ml)両方の存在下で4日間培養した後、Cytometric Bead Array(CBA; Human IFNγFlex Set; BD;カタログ番号560111)を使用してIFNγを定量した。ヒトIgG1 Fc(25μg/ml; BioXcell;カタログ番号BE0096)を対照として使用した。

図25に示されているように、HuTIG1-IgG1.AA及び抗PD-L1抗体遮断は、独立して、IFNγの産生を適切なアイソタイプ対照抗体と比較して増加させた。HuTIG1-IgG1.AAと抗PD-L1抗体の組み合わせは、いずれか単剤療法単独と比較してIFNγの産生を有意に且つ相乗的に増進させた。

[実施例18]
HuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAは、ヒトリンパ系及び骨髄系細胞上で発現されるTIGITを検出する
直接コンジュゲート抗体を用いて、10名のドナーから単離した全ヒトPBMCを共染色して、T細胞、B細胞、NK細胞及び骨髄細胞系列サブセットを描出した。Live/dead Fixable Aqua Dead Cell Stain kitを使用して、死細胞を排除した。Alexa647色素にコンジュゲートしたHuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AA抗体を使用して、TIGITの発現を判定した。市販の抗CD96抗体(クローンNK92.39)を使用して、CD96の発現を判定した。図26Aにおいて、プラス(+)符号は、バックグラウンドより高い発現を示し、(+++)は、観察された最高発現を表す。プラス/マイナス(+/-)符号は、指定集団内の細胞のサブセットのみがバックグラウンドより高くTIGIT又はCD96を発現することを示し、マイナス(-)符号は、バックグラウンドより高い発現の欠如を示す。全ての場合において、バックグラウンドは、標的抗体(すなわち、HuTIG1-IgG1.AA、HuTIG3-IgG1.AA、抗CD96抗体)以外の染色パネルに使用した蛍光色素全てを添加する、改良Fluorescence Minus One(FMO)方法を使用して決定した。むしろ、標的抗体を同じコンジュゲーションのIgG特異的アイソタイプ対照抗体に置換した。図26Bは、図26AでCD96の発現レベルを割り当てるために使用した様々な発現レベルでの、PBMCにおける抗TIGIT抗体染色の代表ヒストグラムを示す。薄いヒストグラムは、改良FMOを表す。濃いヒストグラムは、HuTIG1-IgG1.AA又はHuTIG3-IgG1.AA染色を表す。

メラノーマ、結腸直腸がん、非小細胞肺癌、及び腎明細胞癌から解離した腫瘍細胞を商業的供給源から購入し、直接コンジュゲート抗体で染色して、T細胞及び抗原提示細胞サブセットを描出した。汎アイソフォーム抗CD45抗体(クローンHI30)を使用して、白血球を同定した。Live/dead Fixable Aqua Dead Cell Stain kitを使用して、死細胞を排除した。Alexa647色素にコンジュゲートしたHuTIG1-IgG1.AA抗体を使用して、TIGITの発現を判定した。全ての場合において、バックグラウンドは、標的抗体(すなわち、HuTIG1-IgG1.AA)以外の染色パネルに使用した蛍光色素全てを添加する、改良Fluorescence Minus One(FMO)方法を使用して決定した。むしろ、標的抗体を同じコンジュゲーションのIgG特異的アイソタイプ対照抗体に置換した。図32Bは、図32Aに示されている様々な発現レベルでの、腫瘍浸潤性リンパ球(TIL)に関する抗TIGIT染色の代表ヒストグラムを示す。薄いヒストグラムは、改良FMOを表す。濃いヒストグラムは、HuTIG1-IgG1.AA染色を表す。

[実施例19]
フローサイトメトリーによる抗ヒトTIGIT抗体HuTIG1-IgG1.AAのエピトープマッピング
ヒトTIGIT cDNAをpcDNA3.1(+)に、21残基天然シグナルペプチドの後、且つ成熟TIGITタンパク質(配列番号58)のN末端の前に、9残基ヘマグルチニン(HA)ペプチドタグ、続いて10残基ペプチドリンカーを有するようにクローニングした。ヒトTIGITの細胞外領域内の目的のアミノ酸残基(T34、Q35、N37、E39、L44、I47、N49、D51、L52、H55、F86、I88、H90、Y92及びT96)を、1度に1アミノ酸ずつアラニンに変異させた。プラスミドを精製し、Fugene 6(Promega)トランスフェクション試薬を製造業者の推奨基準に従って使用してCHO-K1細胞に一過的にトランスフェクトした。HAタグ付きヒトTIGIT変異体発現を抗HA抗体検出により確認した。

抗hTIGIT抗体結合エピトープのフローサイトメトリー分析のために、単一のアミノ酸変異を有する又は有さないHAタグ付きヒトTIGITタンパク質をCHO-K1細胞に一過性にトランスフェクトした。24時間後、トランスフェクトされた細胞をHBSS緩衝液(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号14175095)に懸濁させ、体積50μLで様々な濃度のHuTIG1-IgG1.AA抗体と共にインキュベートした。4℃での1時間のインキュベーション後、細胞を洗浄し、50μLのAlexa488コンジュゲート抗ヒトIgG(H+L)二次抗体(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号A-11013)と共に第2のインキュベーションを行って、抗体が結合した細胞を検出した。細胞を陽性対照としての抗HA抗体(Sigma、カタログ番号H7411)と共にインキュベートし、トランスフェクトされていないCHO-K1を陰性対照として使用した。細胞をAttune NxTサイトメーター(Thermo Fisher Scientific)で分析し、FlowJoソフトウェアを使用してデータを処理した。各変異体について、飽和抗体結合MFI(平均蛍光強度)を100%POC(対照に対するパーセント)に正規化し、非一次抗体結合対照MFIを0%POCに正規化した。次いで、次の式を使用するGraphPad Prism 7曲線フィッティングを使用して、データを4変数非線形シグモイド曲線にフィッティングした:Y=下限値+(上限値-下限値)/(1+10^(LogEC ₅₀ ^{-X)×Hill勾配)})。

このアッセイでは、HuTIG1-IgG1.AAは、EC₅₀=1.28nMで野生型ヒトTIGITと結合した。15の単一点アラニンTIGIT変異体のうち5つは、結合親和性の10分の1低下よりも高く、HuTIG1-IgG1.AAと結合した。N49A、D51A、H90A、N37A又はQ35A変異を有するヒトTIGIT(配列番号3)は、それぞれ、EC₅₀=17.7〜176nMの範囲の低下した力価で、HuTIG1-IgG1.AAと結合した(図27)。これらの残基の全てがTIGIT IgV細胞外ドメインのβシート構造前面の1つの不連続部位に共に位置する(図28)。

[実施例20]
HuTIG1-IgG1.AAを投与した非ヒト霊長類の全血からのT細胞サブセットのex vivo免疫表現型検査
薬物動態研究は、Charles River Laboratories(Reno、NV)が行った。この研究の目的は、TIGITの受容体占有率の直接評価のために、抗TIGIT(HuTIG1-IgG1.AA)抗体の10mg/kgの単一用量で処置したカニクイザルからの全血試料をex vivoで調査することであった。

3匹の実験的にナイーブな雌カニクイザル(#67、#68及び#69)に、HuTIG1-IgG1.AA抗体の10mg/kgの単一静脈内用量を投与した。投与前、投与後1、2、7、14、21及び28日目の時点に相当する、最後の試料採取時点から24時間以内に、ヘパリンナトリウム試料中の全血を受けた。全血フローサイトメトリー研究のために、BioLegendからの蛍光標識抗ヒトTIGIT(クローンMBSA43)を使用して、カニクイザル血液リンパ球細胞サブセット上でのTIGITの発現レベルを決定した(抗ヒトTIGHTは、非ヒト霊長類と交差反応することが示されていたため)(PLoS Pathog. 2016年1月;12(1); BioLegend)。生細胞をFACSCaliburにより獲得し、FlowJoソフトウェアにより分析した。

抗TIGIT(MBSA43)は、投与前全血試料の染色時にCD4+ T細胞サブセットとCD8+ T細胞サブセットの両方に結合することができた。投与後、抗TIGIT(MBSA43)は、調べた異なるサルに応じて14日目又は21日目まではこれらのT細胞サブセット上でTIGIT発現を検出することができず、調べた異なる動物に応じて21日目又は28日目にはレベルが投与前検出レベルに戻った(図29B及び30B)。TIGIT発現のこの検出不能は、表面TIGITが処置抗体(HuTIG1-IgG1.AA)により占有されていることを示唆するCD4+又はCD8+ T細胞出現頻度の有意な変化のためでははく(それぞれ、図29A及び30A)、T細胞サブセット枯渇のためでもなかった。

これらのデータは、抗TIGIT抗体HuTIG1-IgG1.AAがカニクイザルと交差反応性であること、及びBioLegendからの抗ヒトTIGIT(クローンMBSA43)を使用することによりTIGIT受容体占有率の評価が提供されることを支持する。

[実施例21]
K562標的細胞に対するHuTIG1-IgG1.AA及びHuTIG3-IgG1.AAによるNK細胞媒介性細胞傷害性増強
PBMCの代わりに精製NK細胞を使用して、実施例10で説明したNK細胞媒介性細胞傷害性アッセイを反復した。これらの実験に十分且つ適切な精製NK細胞を得るために、高いNK細胞出現頻度、十分なTIGIT表面発現、及び十分なCD226発現を有するドナーPBMCをスクリーニングすることが重要である。抹消血LeukoPak(細胞100億個以上からなるもの)を入手し、Miltenyi autoMACS Pro Separatorを製造業者の説明書(Miltenyi Biotec、カタログ番号130-092-657)に従って使用してNK細胞単離を行った。6ウェルプレートにおいてインターロイキン-2(IL-2)[200単位/ml]を含有する培地に精製されたNK細胞を再懸濁させた。6ウェルプレートを24時間、37℃の5%CO2インキュベーター内に置いた後、ウェルから回収した細胞を用いて自然細胞傷害性研究を行った。

精製NK細胞により媒介されるK562の溶解を抗TIGIT抗体(TIG1)あり又はなしで測定した。NK細胞を37℃の5% CO2インキュベーターにおいてRPMI1640培地(Invitrogen)中、インターロイキン-2(IL-2)[200単位/ml](Peprotech)の存在下で終夜培養した。翌日、K562細胞をCFSE標識し、37℃の5%CO2インキュベーターにおいて10μg/mlのリツキサン又はヒト化抗TIGIT抗体(HuTIG1-IgG1.AA若しくはHuTIG3-IgG1.AA)の存在下で4時間、NK細胞と1:20(標的:NK、K562細胞1個対NK細胞20個)で共培養した。K562細胞はCD20を発現しないのでリツキサンを陰性対照として使用した。インキュベーション期間の後、細胞を回収し、5nM Sytox Red(ThermoFisher)で染色して、死滅した標的細胞を(CFSE+ Sytox Red+)により区別した。NK細胞により溶解されたK562標的細胞の百分率を、フローサイトメトリー(FACSCalibur; FlowJo Analysis)によって決定した。

図31に示されているように、精製NK細胞を使用したとき、抗TIGIT抗体の添加は、K562細胞のNK細胞媒介自然細胞傷害性を増強し、これは抗TIGIT抗体(HuTIG1-IgG1.AA又はHuTIG3-IgG1.AA)には、ヒトエフェクター細胞のサブセットによる標的細胞殺滅レベルを(「抗体なし」又はリツキサン正規化百分率に対して、それぞれ、28%又は19%)増加させる能力があることを実証するものであった。

配列

Claims

D51を含む1個以上のアミノ酸残基においてTIGITポリペプチドと結合する抗TIGIT抗体であって、TIGITポリペプチドが配列番号1に対応するアミノ酸配列を有する、抗TIGIT抗体。
モノクローナル抗体である、請求項1に記載の抗TIGIT抗体。
キメラ、ヒト化又はベニヤ抗体である、請求項1又は請求項2に記載の抗TIGIT抗体。
ヒト抗体である、請求項1に記載の抗TIGIT抗体。
L44、I47又はH55を含む1個以上のアミノ酸残基と結合しない、請求項1〜4のいずれか一項に記載の抗TIGIT抗体。
配列番号14の成熟軽鎖可変領域及び配列番号10の成熟重鎖可変領域を含む、請求項1〜5のいずれか一項に記載の抗TIGIT抗体。
配列番号1に対応するアミノ酸配列上の、TIG1と同じエピトープと結合する、請求項1〜6のいずれか一項に記載の抗TIGIT抗体。
配列番号15〜17を含む3つの軽鎖CDR、及び配列番号11〜13を含む3つの重鎖CDRを含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の抗TIGIT抗体。
配列番号35と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟重鎖可変領域、及び配列番号37と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟軽鎖可変領域を含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の抗TIGIT抗体。
成熟重鎖可変領域が、配列番号35のアミノ酸配列を含み、成熟軽鎖可変領域が、配列番号37のアミノ酸配列を含む、請求項9に記載の抗TIGIT抗体。
成熟重鎖可変領域が、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号40を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域が、配列番号41を含む軽鎖定常領域に連結されている、請求項9又は請求項10に記載の抗体。
ヒトTIGITとの結合についてTIG1、TIG2又はTIG3のいずれかと競合するモノクローナル抗体であって、CD155との特異的結合のために、抗体TIG1が、配列番号14の成熟軽鎖可変領域及び配列番号10の成熟重鎖可変領域を特徴とし、抗体TIG2が、配列番号22の成熟軽鎖可変領域及び配列番号18の成熟重鎖可変領域を特徴とし、抗体TIG3が、配列番号30の成熟軽鎖可変領域及び配列番号26の成熟重鎖可変領域を特徴とする、モノクローナル抗体。
ヒトTIGIT上の、TIG1、TIG2又はTIG3のいずれかと同じエピトープと結合する、請求項12に記載のモノクローナル抗体。
CD155のヒトTIGITへの結合を阻害する、請求項1〜13のいずれか一項に記載の抗体。
TIG1、TIG2又はTIG3のいずれか1つの3つの軽鎖CDR及び3つの重鎖CDRに対応する、3つの軽鎖CDR及び3つの重鎖CDRを含む、請求項12に記載のモノクローナル抗体。
TIG1、TIG2又はTIG3のいずれか1つの3つの重鎖CDR及び3つの軽鎖CDRを含む、請求項12に記載のモノクローナル抗体。
TIG1(配列番号15〜17の軽鎖及び配列番号11〜13の重鎖)、TIG2(配列番号23〜25の軽鎖及び配列番号19〜21の重鎖)又はTIG3(配列番号31〜33の軽鎖及び配列番号27〜29の重鎖)のいずれか1つの、Kabatにより定義される3つの重鎖CDR及びKabatにより定義される3つの軽鎖CDRを含む、請求項12に記載のモノクローナル抗体。
キメラ、ヒト化又はベニヤ抗体である、請求項12〜17のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
ヒト抗体である、請求項12に記載のモノクローナル抗体。
ヒトIgG1カッパアイソタイプを有する、請求項12〜19のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
インタクト抗体である、請求項12〜20のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
一本鎖抗体、Fab又はF(ab')₂断片である、請求項12〜20のいずれかに記載のモノクローナル抗体。
配列番号35と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟重鎖可変領域、及び配列番号37と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟軽鎖可変領域を含む、請求項12〜21のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、配列番号35と少なくとも95%の配列同一性を有し、成熟軽鎖可変領域が、配列番号37と少なくとも95%の配列同一性を有する、請求項23に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、配列番号35のアミノ酸配列を有し、成熟軽鎖可変領域が、配列番号37のアミノ酸配列を有する、請求項24に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号40を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域が、配列番号41を含む軽鎖定常領域に連結されている、請求項25に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号60を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域が、配列番号64を含む軽鎖定常領域に連結されている、請求項25に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号61を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域が、配列番号64を含む軽鎖定常領域に連結されている、請求項25に記載のモノクローナル抗体。
配列番号43と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟重鎖可変領域、及び配列番号45と少なくとも90%の配列同一性を有する成熟軽鎖可変領域を含む、請求項12〜21のいずれか一項に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、配列番号43と少なくとも95%の配列同一性を有し、成熟軽鎖可変領域が、配列番号45と少なくとも95%の配列同一性を有する、請求項29に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、配列番号43のアミノ酸配列を有し、成熟軽鎖可変領域が、配列番号45のアミノ酸配列を有する、請求項30に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号48を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域が、配列番号49を含む軽鎖定常領域に連結されている、請求項31に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号62を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域が、配列番号65を含む軽鎖定常領域に連結されている、請求項31に記載のモノクローナル抗体。
成熟重鎖可変領域が、C末端リシンが存在してもよく又は存在しなくてもよいという条件で配列番号63を含む重鎖定常領域に連結されており、成熟軽鎖可変領域が、配列番号65を含む軽鎖定常領域に連結されている、請求項31に記載のモノクローナル抗体。
配列番号1の残基35及び37並びに/又は配列番号1の残基49及び51を含むエピトープと結合するモノクローナル抗体。
配列番号1の残基35、37、49及び51を含むエピトープと結合する、請求項35に記載のモノクローナル抗体。
配列番号1の残基35〜51、及びいずれかの側の、配列番号1からの5個以下の隣接アミノ酸からなるペプチドと結合する、請求項35に記載のモノクローナル抗体。
配列番号1の残基35〜51からなるペプチドと結合する、請求項37に記載のモノクローナル抗体。
エピトープが、配列番号1の3〜20個の連続する残基からなる、請求項35に記載のモノクローナル抗体。
以下の特性:(a)TIGITとCD155の結合を、任意に15〜100ng/mlのIC₅₀で、阻害する、(b)CD155を発現する抗原提示細胞の存在下で固有T細胞活性化をIL-2産生により測定して、任意に1.5〜3倍、増加させる、(c)抗原特異的T細胞活性化をIL-12産生により測定して、任意に1.5〜3倍、増加させる、(d)ナチュラルキラー細胞活性化をIL-2、IL-6、TNFα又はIFNγのいずれかの産生により測定して、任意に1.5〜3倍、増加させる、(e)少なくとも1つの炎症誘発性サイトカインのT細胞産生を、任意に1.5〜3倍、増加させる、(f)少なくとも1つの抗炎症性サイトカインのT細胞産生を、任意に1.5〜3倍、低減させる、のうちの1つ以上を有する、請求項12〜39のいずれかに記載のモノクローナル抗体。
請求項1〜40のいずれかに規定される抗体と医薬的に許容される担体とを含む医薬組成物。
がんを処置する又はがんの予防をもたらす方法であって、がんを有する又はがんのリスクがある対象に請求項1〜40のいずれかに記載の抗体の有効なレジメン又は治療有効量を投与することを含む方法。
がんが、急性骨髄性白血病又は成人T細胞白血病である、請求項42に記載の方法。
対象に、抗体により活性化される腫瘍浸潤性T細胞が投与される、請求項42又は請求項43に記載の方法。
対象に、抗体により増強される、がんに対する免疫応答を誘導するワクチンが投与される、請求項42〜44のいずれか一項に記載の方法。
ワクチンが、がん細胞の表面で発現される抗原又はその断片を含む、請求項45に記載の方法。
対象に、がんに対するその細胞傷害活性が抗体により増強される、ナチュラルキラー細胞が投与される、請求項42〜46のいずれか一項に記載の方法。
対象に、がん細胞の表面で発現される抗原に対する二次抗体がさらに投与され、それにより、がんに対する二次抗体のエフェクター媒介性細胞傷害性が抗体により増強される、請求項42〜47のいずれか一項に記載の方法。
対象に、免疫細胞の表面で発現される抗原に対する二次抗体がさらに投与される、請求項42〜47のいずれか一項に記載の方法。
免疫細胞が、T細胞又はナチュラルキラー細胞である、請求項49に記載の方法。
抗原が、CTLA-4、PD-1又はPD-L1である、請求項49又は請求項50に記載の方法。
対象に、化学療法、放射線照射、細胞療法及び外科手術からなる群から選択される1つ以上の療法がさらに投与される、請求項42〜51のいずれか一項に記載の方法。
対象に、1つ以上の免疫チェックポイント受容体又はリガンドの阻害剤がさらに投与される、請求項42〜52のいずれか一項に記載の方法。
阻害剤が、イピリムマブ、ニボルマブ、ペムブロリズマブ(ランブロリズマブ)及びアテゾリズマブからなる群から選択される、請求項53に記載の方法。
病原体に感染した対象を処置する方法であって、請求項1〜40のいずれかに記載の抗体の有効なレジメン又は治療有効量を対象に投与することを含む方法。
病原体が、ウイルス、細菌、真菌又は原生動物である、請求項55に記載の方法。
病原体が、HIV、SIV、肝炎、ヘルペスウイルス、アデノウイルス、インフルエンザウイルス、フラビウイルス、エコーウイルス、ライノウイルス、コザックウイルス、コロナウイルス(cornovirus)、呼吸器合胞体ウイルス、ムンプスウイルス、ロタウイルス、麻疹ウイルス、風疹ウイルス、パルボウイルス、ワクシニアウイルス、HTLVウイルス、デングウイルス、パピローマウイルス、軟属腫ウイルス、ポリオウイルス、狂犬病ウイルス、JCウイルス、アルボウイルス脳炎ウイルス、クラミジア、リケッチア菌、マイコバクテリア、ブドウ球菌、連鎖球菌(treptocci)、肺炎連鎖球菌(pneumonococci)、髄膜炎菌、淋菌(conococci)、クレブシエラ菌、プロテウス菌、セラチア菌、シュードモナス菌、レジオネラ菌、ジフテリア、サルモネラ菌、桿菌、コレラ、破傷風、ボツリヌス中毒、炭疽、ペスト、レプトスピラ症及びライム病菌である、請求項56に記載の方法。
対象が、抗体により増強される病原体に対する免疫応答を誘導するワクチンで処置される、請求項55〜57のいずれか一項に記載の方法。
ワクチンが、病原体のタンパク質又はその断片を含む、請求項58に記載の方法。
対象に病原体に対する二次抗体がさらに投与され、抗体により病原体に対する二次抗体のエフェクター媒介性細胞傷害性が増強される、請求項55〜59のいずれか一項に記載の方法。
対象に、抗ウイルス剤、抗寄生虫剤、抗菌剤又は抗真菌剤のうちの1つ以上がさらに投与される、請求項55〜60のいずれか一項に記載の方法。
がんの処置を補助する方法であって、がんを有する対象に請求項1〜40のいずれかに記載の抗体の治療有効量を投与することを含む方法。
がんが、急性骨髄性白血病又は成人T細胞白血病である、請求項62に記載の方法。
対象に、抗体により活性化される腫瘍浸潤性T細胞が投与される、請求項62又は請求項63に記載の方法。
対象に、抗体により増強されるがんに対する免疫応答を誘導するワクチンが投与される、請求項62〜64のいずれか一項に記載の方法。
ワクチンが、がん細胞の表面で発現される抗原又はその断片を含む、請求項65に記載の方法。
対象にがんに対するその細胞傷害活性が抗体により増強される、ナチュラルキラー細胞が投与される、請求項62〜66のいずれか一項に記載の方法。
対象に、がん細胞の表面で発現される抗原に対する二次抗体が投与され、それによってがんに対する二次抗体のエフェクター媒介性細胞傷害性が抗体により増強される、請求項62〜67のいずれか一項に記載の方法。
対象に、免疫細胞の表面で発現される抗原に対する二次抗体が対象にさらに投与される、請求項62〜67のいずれか一項に記載の方法。
免疫細胞が、T細胞又はナチュラルキラー細胞である、請求項69に記載の方法。
抗原が、CTLA-4、PD-1又はPD-L1である、請求項69又は請求項70に記載の方法。
対象に、化学療法、放射線照射、細胞療法及び外科手術からなる群から選択される1つ以上の療法がさらに投与される、請求項62〜71のいずれか一項に記載の方法。
対象に、1つ以上の免疫チェックポイント受容体又はリガンドの阻害剤がさらに投与される、請求項62〜72のいずれか一項に記載の方法。
1つ以上の免疫チェックポイント受容体又はリガンドが、CTLA-4、PD-1、PD-L1、TIM-3、LAG-3、BTLA、VISTA、CD96、A2aR、A2bR、アルギナーゼ、CD39、CD73、IDO及びTDOからなる群から選択される、請求項73に記載の方法。
阻害剤が、イピリムマブ、ニボルマブ、ペムブロリズマブ(ランブロリズマブ)及びアテゾリズマブからなる群から選択される、請求項74に記載の方法。