JP2965131B2 - 核酸結合用磁性担体およびそれを用いる核酸単離方法 - Google Patents
核酸結合用磁性担体およびそれを用いる核酸単離方法Info
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Description
物材料から核酸を抽出または精製し、あるいは核酸増幅
産物を精製するために使用する、磁気応答粒子を含有す
る核酸結合用磁性担体に関する。本発明はさらに、該磁
性担体および磁界を利用する、核酸を含有する生物材料
からの核酸単離方法、ならびにそのための試薬キットに
関する。
る核酸単離方法としては、生親和性分子(例えば核酸な
ど)が共有結合し得る重合性シラン被膜により覆われ
た、超常磁性酸化鉄核を有する、磁気応答粒子を利用す
ることが知られている(特開昭60−1564号公
報)。
ラン被膜により覆われた超常磁性酸化鉄を有する磁気応
答粒子を用意し、リゲートを含有する試料溶液、既知量
の標識リゲートおよび試料溶液中のリゲートに特異的で
あるリガンドが共有結合されている磁気応答粒子を反応
させ、磁気応答粒子上でリガンド/リゲート複合体を形
成させ、次いで磁気応答粒子を反応溶液から磁気分離
し、磁気応答粒子に結合した標識リゲートまたは溶液中
の遊離標識リゲートを測定し、そして標識量をリゲート
濃度を測定するための標準曲線に相関させるというリゲ
ート濃度の測定方法も知られている(特公平7−698
6号公報)。
結合させるために、生親和性分子(例えば核酸)と共有
結合するシラン被膜が必要である。
結合した核酸配列を使用する分析法および装置について
も公知である(国際出願公開番号WO86/0582
5)。この方法では、1本鎖核酸と結合し得る物質で被
膜された磁気または磁気可能な粒子を使用し、1本鎖核
酸を分離および検出する。具体的には、セルロース誘導
体の1種であるニトロセルロースで磁気粒子表面を被覆
し、ニトロセルロースとDNAまたはRNAの1本鎖核
酸を特異的に結合させる。この方法で回収された1本鎖
のDNAまたはRNAは、シーケンシング用に使用され
る。
NAの1本鎖核酸を特異的に結合させる必要がある。
ーションのためにポリカチオン性支持体を使用するこ
と、特に汚染物を含有する核酸の精製および分離のため
にポリカチオン支持体を使用することもまた公知である
(特表平1−502319号公報)。この方法では、具
体的には、汚染物質を含む試料溶液とポリカチオン性固
体支持体(磁気反応性粒子)とを接触させ、試料溶液中
に含まれる汚染物を過度に結合させることなく、核酸を
支持体に非共有的に結合させ、核酸が結合した支持体を
溶液から分離する。ここで支持体としては、金属酸化
物、ガラス、ポリアミドなどが例示され、ポリカチオン
性磁気応答粒子としては、磁気アミンマイクロスフェア
(磁性微小球)などが使用されている。核酸と支持体と
の結合は、正電荷を有する磁気アミンマイクロスフェア
と核酸の負電荷を有する糖リン酸塩主鎖との間のイオン
結合に基づくとされている。
子に均一に被覆している磁気的に応答する金属酸化物/
ポリマーコーティングとよりなる磁性粒子を使用する、
純粋な生物材料の単離法もまた公知である(特表平2−
501753号公報)。この方法は、上記粒子に生物材
料を反応させ、磁性粒子を分離し、さらに磁性粒子を生
物材料から分離することによる。
ーをコアとしており、内部コア粒子に金属酸化物とポリ
スチレンなどのポリマーとを均一に被覆している。
一分散性(粒径差は5%以下)の超常磁性粒子、および
オリゴヌクレオチドを粒子表面の官能基(ビオチニル
基)または分子に共有結合または吸着させる磁性粒子の
製法が公知であり、オリゴヌクレオチドを共有結合また
は吸着させた粒子を核酸プローブとして使用することが
公知である(国際出願公開番号WO90/0604
5)。
使用する核酸プローブを特異的に共有結合または吸着さ
せることが目的であり、上記粒子は非特異的に多量の核
酸を固定する担体ではない。
ラン被膜またはポリマー被覆を用いる方法は、担体表面
とシラン被膜またはポリマーとの結合が共有結合などの
方法で行われる。これらの方法は、磁性粒子表面に官能
基が付加される場合が多く、核酸などの特異的吸着によ
る分別および測定には有利であるが、核酸を非特異的に
多く吸着し、回収量も高くなる固相担体には不向きであ
る。
被覆した磁性粒子を固相担体として使用する場合、大き
な粒子(例えば直径が20μm以上)は、弱磁場および
弱磁場変化に対し応答し得るが、迅速に沈澱し分散性が
悪い傾向にある。従って、固相吸着など均質的な状態を
要求する反応に対しては、プラスミドDNAなどの小さ
い核酸を吸着固定することが難しい。また、大きな粒子
は小さな粒子に比べて重量当りの比表面積が限られてい
る。このため、これに対しては、少量の物質が結合する
のみである。
下)では、比表面積および分散性においては良好である
が、沈降性に劣る。このため、磁極による磁界分離にお
いて、必要とされる磁極には、磁力の強い大きくて高価
な磁石が必要であり、磁極による分離にも長い時間を有
する。
方法に関しては、従来、HPLC(高速液体クロマトグ
ラフィー)装置の使用を前提とするクロマトグラフィー
でのカラム分離が使用されている。合成した核酸または
増幅した産物をカラムに通すことにより、必要な核酸が
シリカ担体表面に吸着する。このカラムに洗浄液を流す
ことで、不純物を洗浄できる。回収する際は、別にバッ
ファーを流し、必要な核酸を回収できる。この方法で
は、シリカ担体から構成されるカラムを何度も使用でき
るメリットがある。他方、生物材料の1つである全血か
らの核酸単離は、目詰まりなどの問題から実施できず、
回収できる核酸の量が少量となってしまうという不都合
があった。しかもその装置は高価である。
どの生物材料から核酸を分離する方法もまた公知である
(特開平2−289596号公報、特公平7−1307
7号公報)。
た場合、遠心分離を何回も繰り返す煩雑な操作が必要で
ある。しかも溶液を注入後、十分に混合するためにボル
テックスミキサーなどで強い振動による混合操作が必要
であるため、振動により試料に含まれる核酸が切れ、長
鎖核酸が得られにくいという問題がある。
便に固定するには、種々の問題がある。
は、核酸を非特異的に多く吸着させることが可能な磁性
粒子担体を提供することを目的とする。本発明はさら
に、この磁性担体を用いる核酸単離方法およびそのため
の試薬キットもまた提供する。
を解決するために、鋭意検討した結果、比表面積が特定
な範囲にある磁性シリカ粒子が良好な結果を奏すること
を見いだし、本発明に到達した。
金属酸化物を含む磁性シリカ粒子であって、該磁性シリ
カ粒子が100〜800m2/gの比表面積を有する。
金属酸化物を含む磁性シリカ粒子であって、該磁性シリ
カ粒子が100〜800m2/gの比表面積を有する核
酸結合用磁性担体、核酸を含有する材料、および核酸抽
出用溶液を混合する工程、核酸が結合した磁性担体を磁
界を用いて液体から分離する工程、および核酸を結合し
た磁性担体から核酸を溶離する工程を包含する。
性金属酸化物を含む磁性シリカ粒子であって、該磁性シ
リカ粒子が100〜800m2/gの比表面積を有する
核酸結合用磁性担体、核酸を含有する試料、および核酸
抽出用溶液を混合する工程、核酸が結合した磁性担体を
磁界を用いて液体から分離する工程、核酸を結合した磁
性担体から核酸を溶離する工程、必要により得られた核
酸を増幅する工程、および標的核酸を検出する工程を包
含する。
常磁性金属酸化物を含む磁性シリカ粒子であって、該磁
性シリカ粒子が100〜800m2/gの比表面積を有
する核酸結合用磁性担体、および核酸抽出用溶液を含
む。
超常磁性金属酸化物を含む磁性シリカ粒子である。本発
明の磁性シリカ粒子は、核酸を結合し、かつ磁界により
固体と液体との分離を可能とする。
00〜800m2/gである。この比表面積は、JIS
K1150「シリカゲル試験方法」で規格化された測
定法である窒素ガス吸着法で測定される。上記磁性シリ
カ粒子の比表面積が、100m2/g未満であると、核
酸吸着量が小さく、核酸回収率が悪くなる。比表面積が
800m2/gを越えると、製法上、細孔容量が極端に
大きくなり、溶離による回収液が減少し、核酸回収率が
悪くなる。
カ粒子は、以下のような構造を有している。上記超常磁
性金属酸化物が、その表面がシリカで被覆されており、
そしてさらに微小なシリカ粒子で構成される無機多孔性
壁物質で複合されている。この磁性シリカ粒子は、ほぼ
完全な球状である。核酸と磁性シリカ粒子とは、シリカ
表面の水酸基と核酸の塩基との間で生じる水素結合によ
り結合されている。
は磁場変化度に応答するが、永久磁化はされず、残留磁
化が小さい金属酸化物をいう。
化鉄が挙げられる。この酸化鉄としては、四三酸化鉄
(Fe3O4)および四三酸化鉄を徐々に酸化して得られ
るr型三二酸化鉄(rFe2O3)などが用いられる。そ
の粒径は、好ましくは0.2〜0.4μmである。この
四三酸化鉄は残留磁気が小さく、さらに好ましい表面構
造(ほぼ球形)を有するため、磁気分離および再分散の
サイクルを反復することが可能である。四三酸化鉄を含
有する磁性シリカ粒子は、弱酸性の水溶液中で安定であ
り、2年以上も貯蔵可能である。
磁性金属酸化物の量は、磁極の強さにもよるが、10〜
60wt%が好ましく、さらに好ましくは20〜40w
t%である。この好ましい範囲内では、磁性担体は、市
販の磁石を使用して迅速に分離できる。
径は、0.1〜60nm、好ましくは0.5〜10nm
であり、そして細孔容積は、0.01〜1.5ml/
g、好ましくは0.1〜0.5ml/gである。これら
表面細孔直径および細孔容積は、窒素ガス吸着法により
測定される。これらの測定法は、JlS K1150
「シリカゲル試験法」で規格化されている。
は決まる。表面細孔直径が大きい方が比表面積は大き
く、細孔容積もまた大きい傾向にある。比表面積は大き
い方が核酸の吸着量は増えるが、細孔容積も大きいため
回収量が減る傾向にある。表面細孔直径および細孔容積
が上記範囲内にあれば、核酸の最終回収率は高い。
15μm、好ましくは1〜10μmである。この磁性シ
リカ粒子は、上記粒子径の範囲内にあることにより、混
合による分散性に優れる。
ものが最も好ましい:超常磁性酸化鉄を含む磁性シリ
カ粒子であって、その比表面積が100〜800m2
/gであり、上記酸化鉄が、シリカで被覆されてお
り、さらに微小シリカ粒子で構成される無機多孔性壁
物質で複合されており、上記酸化鉄の重量がl0〜6
0wt%であり、磁性シリカ粒子の表面細孔直径が
0.1〜60nmであり、磁性シリカ粒子の細孔容積
が0.01〜1.5ml/gであり、そして磁性シリ
カ粒子の粒子径が0.5〜15μmである。
平6−47273号公報に記載の方法により製造され得
る。例えば、四三酸化鉄を、テトラエトキシシランのア
ルコール溶液に添加し、超音波分散機により分散湿潤さ
せる。これにテトラエトキシシランの加水分解触媒を加
え、超音波分散させながら、四三酸化鉄の表面にシリカ
を沈着させる。このようにして得られた分散液に、ケイ
酸ナトリウムを加え、有機溶媒および界面活性剤(ソル
ビタンモノステアレートのトルエン溶液)を加えて乳化
し、W/O型エマルジョンを形成させる。この乳濁液を
硫酸アンモニウム水溶液に添加し、充分攪拌させる。そ
の後、濾過分離、水洗、アルコール沈殿を行い、乾燥さ
せることにより、所望の球状シリカ粒子が得られる。
子に比較して、比表面積が非常に大きいため、多量の核
酸を非特異的に吸着させることができる。さらに分散性
もよいため、核酸を含有する材料および核酸抽出液との
混合が簡単であり、溶離液による核酸の回収量が高い。
方法は、超常磁性金属酸化物を含む磁性シリカ粒子であ
って、該磁性シリカ粒子が100〜800m2/gの比
表面積を有する核酸結合用磁性担体、核酸を含有する材
料、および核酸抽出用溶液を混合し、核酸が結合した磁
性担体を磁界を用いて液体から分離し、そして核酸を結
合した磁性担体から核酸を溶離することを包含する。
料、および核酸抽出用溶液を混合する工程は、例えば市
販のボルテックスミキサーを用いて行われ得る。この工
程は、チューブを軽く転倒攪拌あるいは振盪することに
よっても十分に行われ得る。
ら分離する工程は、磁石を用いて行われ得る。この磁石
は、例えば、磁束密度が約300ガウスの磁石が用いら
れ得る。具体的には、核酸結合磁性担体、核酸を含有す
る試料、および核酸抽出用溶液を含むチューブの側壁に
磁石を近づけ、核酸結合担体をチューブ側壁に集め、核
酸抽出用溶液などの溶液と分離する方法がある。
程は、核酸が結合した磁性担体を、例えば約70%エタ
ノールで数回洗浄した後、磁性担体を乾燥し、その後、
滅菌水やTE緩衝液などの低イオン濃度の溶液を添加す
ることにより、磁性担体に結合した核酸を低イオン濃度
の溶液から溶離し得る。
AまたはRNAの1本鎖核酸を特異的に結合させる必要
はない。
は、蛋白質、膜、DNAまたはRNA、低分子量核酸な
どを含む生物材料である。このような生物材料として
は、蛋白質、膜、DNAまたはRNA、低分子量核酸な
どを含むバクテリオファージ、ウイルス、細菌あるいは
これらの組み合わせが例示される。また、精製する目的
のために、この核酸が、プラスミドまたは増幅産物中の
核酸であってもよい。
は、カオトロピック物質、EDTA、トリス塩酸などを
含有する緩衝液が挙げられる。カオトロピック物質とし
ては、グアニジン塩、ヨウ化ナトリウム、ヨウ化カリウ
ム、(イソ)チオシアン酸ナトリウム、尿素などが例示
される。それらは組合せて使用してもよい。その濃度
は、約1〜10モル/l程度が好ましい。
は、例えば、グアニジンチオシアン酸塩、Triton
X−100、トリス/塩酸緩衝液が含まれる。
E緩衝液、滅菌水などの溶離用緩衝液が用いられ得る。
使用する核酸単離方法では、多孔質ガラスまたは磁気微
小球を使用する場合に比べて、固相担体の比表面積が数
倍大きくなり、このため、核酸の回収率もまた高い。
後の支持体への結合を高濃度の塩溶液中で行うことがで
きる。また、溶出は、イオン強度が低い滅菌水またはT
E緩衝液中で行うことができる。
の手順が挙げられる。
出用溶液を入れ、次に全血サンプルを注入し、混合す
る。
る。
ら、静置する。
った磁極スタンドに、上記チューブを設置することで、
磁性シリカ粒子を磁極側のチューブ側壁に集める。
出する。
ドに設置したまま、スタンドを逆さにする)により排出
する方法もあるが、廃液の飛散によるコンタミネーショ
ンの問題があるため、フィルターチップで吸い出すこと
が好ましい。
し、グアニジンチオシアン酸塩を含む洗浄液を注入す
る。
磁極スタンドに設置し、上記と同様にして溶液を廃棄す
る。
タノールで上記と同様な方法により、核酸の吸着した磁
性シリカ粒子を洗浄し、高濃度のグアニジンチオシアン
酸塩を取り除く。
70%エタノールおよびアセトンで洗浄する。
クに上記チューブを設置し、放置してチューブ内および
磁性シリカ粒子内の上記の有機溶媒を完全に蒸発させて
除く。 (12)滅菌水を加え、適温(約56℃)のヒートブロ
ックに上記チューブを設置し、(3)の操作を繰り返
す。
溶液をフィルターチップで吸引し、別の新しいチューブ
に移す。
℃)で行なう。
は、さらに必要により核酸増幅法によって増幅し、検出
プローブにて検出することができる。
などが適用され得る。核酸の増幅法としては、例えば下
記工程A〜Dを包含する方法が挙げられる。
鎖核酸とする工程 B.上記1本鎖核酸と、標的核酸に相補的な塩基配列を
有する正方向および逆方向のプライマーおよび4種のd
NTPとを熱安定性DNAポリメラーゼを含む緩衝液中
で反応させて、1本鎖核酸に上記プライマーをアニール
させ、プライマー伸長反応を行う工程 C.プライマー伸長物を分離して、1本鎖とする工程、
および D.上記工程BおよびCを繰り返す工程。
り生成した増幅産物に、例えば標識プローブをハイブリ
ダイズさせることにより、標的核酸を検出する。
な塩基配列を有するオリゴヌクレオチドであり、標識物
質または標識結合物質を結合するものが使用され得る。
ファターゼ、ペルオキシダーゼ、ガラクトシダーゼなど
の酵素、蛍光物質、および放射性物質が挙げられる。標
識結合物質としては、ビオチン、ジゴキシゲニンなどが
例示される。標識物質は、ビオチン、ジゴキシゲニン、
あるいはアビジンを介して結合され得る。
は、例えば、これらの標識物質または標識結合物質を結
合するdNTPを使用して合成する方法が含まれる。
しては、従来公知の方法、例えばサザンハイブリダイゼ
ーション法およびノーザンハイブリダイゼーション法が
挙げられる。
てアルカリホスファターゼを使用した場合、化学発光基
質、例えば1,2−ジオキセタン化合物(PPD)を反
応させると、ハイブリッドを形成した核酸のみが発光す
る。これをX線フィルムに感光することにより、標的核
酸の大きさおよび電気泳動上での位置を確かめることが
できる。
性金属酸化物を含む磁性シリカ粒子であって、該磁性シ
リカ粒子が100〜800m2/gの比表面積を有する
核酸結合用磁性担体、および核酸抽出用溶液を含む。
核酸抽出用溶液は、上記記載の通りである。
子に比較して、比表面積が非常に大きいため、多量の核
酸を非特異的に吸着させることができる。さらに分散性
もよいため、核酸を含有する材料および核酸抽出液との
混合が簡単であり、溶離液による核酸の回収量が高い。
従って、これを用いることにより、核酸の回収量に優れ
た核酸の単離および検出方法、および核酸単離用試薬キ
ットが提供される。
する。
を用いて行った。
〜l0μm、四三酸化鉄粒子の含有量が30wt%、比
表面積が400m2/g、細孔容積が0.15ml/
g、表面細孔直径が約1.20nmであるもの(鈴木油
脂製)を使用した。
積、および表面細孔直径は、JlSK1150「シリカ
ゲル試験法」で規格化されている測定法に従って測定し
たものである。
に直ちに溶解しないため、粉末状で使用する場合、操作
性において煩雑になる。よって、0.5g/ccになる
よう滅菌水に溶解したものを準備した。
法)生物材科としては、MRSA(メチシリン耐性黄色
ブドウ球菌)陽性の全血サンプルを用い、核酸抽出用溶
液としては5Mグアニジンチオシアン酸塩およびTri
ton X−100を含むトリス/塩酸緩衝液を使用し
た。洗浄液も5Mグアニジンチオシアン酸塩を含むトリ
ス/塩酸緩衝液を使用した。高濃度の塩を除去するため
に70%エタノール溶液およびアセトン溶液を使用し、
固相担体には結合した核酸を回収するための溶離液とし
て滅菌水を使用した。
出用溶液900μlを入れ、次に全血サンプルl00μ
lを注入し、混合した。
μlを加えた。
0分間置いた。
ブの形状に合った磁極スタンドに、上記チューブを設置
することにより、磁性シリカ粒子が磁極側のチューブ側
壁に集めた。
出した。
し、グアニジンチオシアン酸塩を含む洗浄液を1cc注
入した。
同様に磁極スタンドに設置し上記と同様にして溶液を廃
棄した。
同様の方法により、核酸の吸着した磁性シリカ粒子を洗
浄し、高濃度のグアニジンチオシアン酸塩を取り除い
た。
および1ccアセトンで洗浄した。
チューブを設置し、約10分放置してチューブ内、およ
び磁性シリカ粒子内のアセトンを完全に蒸発させ除い
た。
6℃のヒートブロックに上記チューブを設置し、2分毎
に混合操作をしながら10分間置いた。
溶液をフィルターチップで吸引し、別の新しいチューブ
に移した。通常回収量は70μl程度である。
た。
計によりその吸光度(OD 260nm)を測定して、
核酸の濃度を求めた。回収量はこれに回収容量をかけて
求めた。
出用キットIsoquick(マイクロプローブ製)を
使用した。この比較の試薬キットでは、次のようにして
核酸の抽出を行った。まずカオロピック物質で細胞膜の
破壊およびヌクレアーゼ活性の阻害を行い、次に抽出溶
液により核酸を水相に、その他の物質を有機相に残すよ
うに分離し、そしてアルコール沈殿などで水相から核酸
を取り出した。
1と同様にして、核酸濃度および回収量を求めた。
1に示す。
明方法)では核酸の回収量が高かった。
ルによる添加回収試験)実施例1と同じ磁性シリカ粒子
を用いた核酸単離方法での抽出効率を見るために、メチ
シリン耐性黄色ブドウ球菌(MRSA)を培養後、濃度
(菌数)を算出しておき、菌体をAPGC(アシッドグ
アニジウムチオシアネートフェノール・クロロホルム)
法で抽出した核酸を全血に添加したものを、サンプルと
して準備した。
l05個/100μlの核酸溶液を各l00μlずつ全
血に添加したもの。
にして行った。
2種のプライマー(配列番号1および2)を使用し、P
CR法を実施した。条件としては94℃で1分間、55
℃で1分間、および75℃で1分間を、30サイクル繰
り返した。
ドットブロット法を用いた。mecA遺伝子配列からプ
ローブ(配列番号3)を作製した。プローブをアルカリ
ホスファターゼ標識し、増幅後のサンプルをこのプロー
ブとサンドイッチハイブリダイゼーションし、発光基質
である1,2−ジオキセタン化合物(PPD)を添加
後、発光量を検出した。
を計算により求めた。その結果を表2に示す。
oquick(マイクロプローブ社製)を用いて核酸抽
出を行った。核酸抽出は、比較例1と同様に行い、核酸
の添加回収量を求めた。
2に示す。
明方法)は、核酸の添加回収率が高かった。
収実験)生物材料としては、健康人の全血サンプルを用
い、このサンプルに下記直鎖状のDNA断片を添加し
て、上記DNA断片を単離した。生物材料からの核酸の
単離方法は、実施例1と同様に行った。
BluescriptII/ScaI断片(2.96k
bp)または40ng/μl γ/HindIII消化
物。
サンプルをドットプロット法にて検出した。色差計での
定量、回収液量から、回収率を求めた。その結果を表3
および表4に示す。
用抽出溶液で抽出した後、核酸をシリカレジンで吸着
し、シリカレジンをフィルターカップに集めた後、洗浄
を行い最後にその核酸を滅菌数または低濃度のTE緩衝
液で溶出させ、ClearCut Miniprep
Kit(Stratagene製)を使用した。この操
作は以下の通りに行った。
ル、100μlのSolution3および10μlの
シリカ懸濁液を入れた。
め、上清を除去した。
を回収した。
3および表4に示す。
cript II/Scal
IIl
NA断片を含むサンプルでも本発明方法は、DNA断片
の回収率が高かった。
単離方法は、非特異的に多量の核酸を吸着でき、回収効
率に優れる。本発明は、操作性にも優れるため、研究用
途、多量の検体を短時間で処理する必要な臨床検体の前
処理などに使用できる。DNAおよび/またはRNAを
効率よく抽出できるため、本発明は、各種核酸増幅法の
前処理としても使用できる。本発明は、磁界による分離
のため、自動化しやすいという利点も有する。
Claims (14)
- 【請求項1】 超常磁性金属酸化物を含む磁性シリカ粒
子である核酸結合用磁性担体であって、該磁性シリカ粒
子が100〜800m2/gの比表面積を有する、核酸
結合用磁性担体。 - 【請求項2】 前記磁性シリカ粒子が、その表面がシリ
カで被覆されている超常磁性金属酸化物を、微小なシリ
カ粒子で構成される無機多孔性壁物質で複合してなり、
そしてほぼ完全な球状である、請求項1に記載の核酸結
合用磁性担体。 - 【請求項3】 前記超常磁性金属酸化物が酸化鉄であ
る、請求項1に記載の核酸結合用磁性担体。 - 【請求項4】 前記超常磁性金属酸化物が10〜60w
t%で含まれる、請求項1に記載の核酸結合用磁性担
体。 - 【請求項5】 前記磁性シリカ粒子の表面細孔直径が
0.1〜60nmであり、かつ細孔容積が0.01〜
1.5ml/gである、請求項1から4のいずれかに記
載の核酸結合用磁性担体。 - 【請求項6】 前記磁性シリカ粒子の粒子径が0.5〜
15μmである、請求項1から5のいずれかに記載の核
酸結合用磁性担体。 - 【請求項7】 核酸の単離方法であって、該方法は、超
常磁性金属酸化物を含む磁性シリカ粒子であって、該磁
性シリカ粒子が100〜800m2/gの比表面積を有
する核酸結合用磁性担体、核酸を含有する材料、および
核酸抽出用溶液を混合する工程;核酸が結合した該磁性
担体を磁界を用いて液体から分離する工程;および核酸
を結合した該磁性担体から該核酸を溶離する工程を包含
する、核酸単離方法。 - 【請求項8】 前記核酸が、プラスミドまたは増幅産物
中の核酸である、請求項7に記載の核酸単離方法。 - 【請求項9】 前記核酸抽出溶液がカオトロピック物質
を含有する、請求項7に記載の核酸単離方法。 - 【請求項10】 前記カオトロピック物質が、グアニジ
ン塩、ヨウ化ナトリウム、ヨウ化カリウム、(イソ)チ
オシアン酸ナトリウム、尿素、またはこれらの組合せで
ある、請求項9に記載の核酸単離方法。 - 【請求項11】 前記溶離工程において、溶離用緩衝液
が用いられる、請求項7に記載の核酸単離方法。 - 【請求項12】 前記溶離用緩衝液が、TE緩衝液また
は滅菌水である、請求項11に記載の核酸単離方法。 - 【請求項13】 核酸の検出方法であって、該方法は、
超常磁性結晶である金属酸化物を含む磁性シリカ粒子で
あって、該磁性シリカ粒子が100〜800m2/gの
比表面積を有する核酸結合用磁性担体、核酸を含有する
試料、および核酸抽出用溶液を混合する工程;核酸が結
合した該磁性担体を磁界を用いて液体から分離する工
程;核酸を結合した該磁性担体から該核酸を溶離する工
程;必要により得られた該核酸を増幅する工程;および
標的核酸を検出する工程を包含する、核酸検出方法。 - 【請求項14】 核酸単離用試薬キットであって、該キ
ットは、超常磁性金属酸化物を含む磁性シリカ粒子であ
って、該磁性シリカ粒子が100〜800m2/gの比
表面積を有する核酸結合用磁性担体、および核酸抽出用
溶液を含む、核酸単離用試薬キット。
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