ES2268714T3 - Composiciones de polimeros entrecruzados y metodos para su uso. - Google Patents
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Abstract
COMPOSICIONES RETICULADAS DE POLIMERO INCLUYEN UN PRIMER POLIMERO SINTETICO QUE CONTIENE MULTIPLES GRUPOS NUCLEOFILOS QUE SE UNEN COVALENTEMENTE A UN SEGUNDO POLIMERO SINTETICO QUE CONTIENE MULTIPLES GRUPOS ELECTROFILOS. EL PRIMER POLIMERO SINTETICO ES PREFERENTEMENTE UN POLIPEPTIDO SINTETICO O UN POLIETILEN GLICOL QUE HA SIDO MODIFICADO PARA CONTENER MULTIPLES GRUPOS NUCLEOFILOS, TALES COMO AMINO PRIMARIO (-NH 2 ) O TIOL (-SH 2 ). EL SEGUNDO POLIMERO SINTETICO PUEDE SER UN POLIMERO SINTETICO HIDROFILO O HIDROFOBO QUE CONTIENE, O HA SIDO DERIVATIZADO PARA CONTENER, DOS O MAS GRUPOS ELECTROFILOS, TALES COMO GRUPOS SUCCINIMIDILO. LAS COMPOSICIONES PUEDEN CONTENER ADICIONALMENTE OTROS COMPONENTES, COMO POR EJEMPLO POLISACARIDOS O PROTEINAS NATURALES (COMO POR EJEMPLO GLICOSAMINOGLICANOS O COLAGENO) Y/O AGENTES BIOLOGICAMENTE ACTIVOS. SE DESCUBREN ASIMISMO METODOS PARA UTILIZAR LAS COMPOSICIONES POLIMERICAS RETICULADAS PARA LLEVAR A CABO UNA ADHESION ENTRE UNA PRIMERA SUPERFICIE Y UNA SEGUNDA SUPERFICIE, PARA CONSEGUIR UN AUMENTO DE TEJIDO, PARA EVITAR LA FORMACION DE ADHESIONES QUIRURGICAS, Y PARA RECUBRIR UNA SUPERFICIE DE UN IMPLANTE SINTETICO.
Description
Composiciones de polímeros entrecruzados y
métodos para su uso.
Esta solicitud es una continuación en parte de
la solicitud No. de serie 08/573,799, archivada el 18 de diciembre
de 1995, a la que reivindicamos con prioridad bajo U.S.C.\NAK
120.
Esta invención relaciona generalmente a las
composiciones de polímeros entrecruzados que comprenden un primer
polímero sintético que contiene múltiples grupos nucleofílicos
entrecruzados que usan un segundo polímero sintético que contiene
múltiples grupos electrofílicos, y a los métodos de uso de tales
composiciones como bio-adhesivos para el aumento del
tejido, en la prevención de adhesiones quirúrgicas, y para
superficies de recubrimiento de implantes sintéticos, como matrices
de liberación de drogas y para aplicaciones oftálmicas.
La patente US No. 5,162,430 emitida el 10 de
noviembre de 1992, para Rhee et al., y los propietarios
comunes asignados a la presente invención, revelan los conjugados de
polímero sintético-colágeno preparados mediante
colágeno unido covalentemente a polímeros hidrofílicos sintéticos
tal como varios derivados del polietilen glicol.
El propietario común de la patente US 5,324,775,
emitida el 28 de junio de 1994, para Rhee et al., revela
varias inserciones, de ocurrencia natural, de polímeros compatibles
(tal como polisacáridos) unidos covalentemente a polímeros del
polietilen glicol hidrofílicos sintéticos, no inmunogénicos.
El propietario común de la patente US No.
5,328,955, expedida el 12 de julio de 1994, a Rhee et al.,
describe varias formas activadas del polietilen glicol y varias
uniones que pueden ser usadas para producir conjugados de polímero
sintético-colágeno que tienen un rango de
propiedades físicas y químicas.
El propietario común, copendiente de la
aplicación serie US No. 08/403,358, archivada el 14 de marzo de
1995, describe una composición de biomaterial entrecruzado que es
preparada usando un agente de entrecruzamiento hidrófobico, o una
mezcla de agentes de entrecruzamiento hidrofílicos e hidrofóbicos.
Los agentes de entrecruzamiento hidrofóbicos incluyen cualquier
polímero hidrofóbico que contiene, o puede ser químicamente derivado
para contener, dos o más grupos succinimidil.
El propietario común, copendiente de la
aplicación US serie No. 08/403,360, archivada el 14 de marzo de
1995, describe una composición útil en la prevención de adhesiones
quirúrgicas que comprenden un material sustrato y un agente de unión
anti-adhesión, en donde el material sustrato
preferiblemente comprende colágeno y el agente de unión
preferiblemente comprende al menos un grupo funcional reactivo al
tejido y al menos un grupo funcional reactivo al sustrato.
El propietario común, de la aplicación serie US
No. 08/476,825, archivada el 7 de junio de 1995, por Rhee et
al., revela composiciones bioadhesivas que comprenden colágeno
entrecruzado usando un polímero hidrofílico sintético activado
multifuncionalmente, como también los métodos de uso de tales
composiciones para efecto de adhesión entre una primer superficie y
una segunda superficie, en donde al menos una de la primera y la
segunda superficie es preferiblemente una superficie de tejido
nativo.
La publicación de patente japonesa No. 07090241
describe una composición usada para adhesión temporal de un material
para lentes a un soporte, para montar el material a un instrumento
de maquinado, que comprende una mezcla de polietilen glicol, que
tiene un peso molecular promedio en el rango de
1000-5000, y
poli-N-vinilpirrolidona, que tiene
un peso molecular promedio en el rango de
30,000-200,000.
West and Hubbell, Biomaterials (1995)
16:1153-1156, describen la prevención de adhesiones
post-operativas usando un hidrogel de
polietilenglicol-co-ácido láctico diacrilato foto
polimerizado y un hidrogel de
polietilenglicol-co-polipropilen
glicol entrecruzado físicamente, Poloxamer 407®.
Nosotros ahora revelamos una descripción
detallada de las modalidades preferidas de la presente invención,
incluyendo composiciones de polímero entrecruzado que comprenden
polímeros sintéticos que contienen grupos nucleofílicos múltiples
entrecruzados usando polímeros sintéticos que contienen grupos
electrofílicos múltiples, y los métodos para el uso de estas
composiciones para efectuar adhesión entre una primer superficie y
una segunda superficie (en donde al menos una de la primera y la
segunda superficie es preferiblemente una superficie de tejido
nativo) o para efectuar el aumento de tejido, o para prevenir la
adhesión quirúrgica, o para recubrir superficies de implantes
sintéticos, o para la administración de drogas u otros agentes
activos, o para aplicaciones oftalmológicas.
La presente invención revela una composición de
polímero entrecruzado que comprende un primer polímero sintético que
contiene dos o más grupos nucleofílicos, y un segundo polímero
sintético que contiene dos o más grupos electrofílicos que son
capaces de unirse covalente el uno al otro para formar una matriz
tridimensional: en donde cada polímero sintético tiene un esqueleto
de óxido de alquileno.
Una composición preferida de la composición
comprende polietilen glicol que contiene dos o más grupos amino
primarios como el primer polímero sintético, y polietilen glicol que
contiene dos o más grupos succinimidil (una estructura en forma de
anillo de 5 miembros representada aquí como
-N(COCH_{2})_{2}) como el segundo polímero
sintético.
En un método general para la preparación de una
composición para la administración de un compuesto cargado
negativamente (tal como una proteína o una droga), un primer
polímero sintético que contiene dos o más grupos electrofílicos, en
donde el primer polímero sintético está presente en exceso molar en
comparación al segundo polímero sintético, para formar una matriz
cargada positivamente, que luego se hace reaccionar con un compuesto
cargado negativamente. En un método general para la preparación de
la matriz para la administración de un compuesto cargado
positivamente, un primer polímero sintético que contiene dos o más
grupos nucleofílicos se hace reaccionar con un segundo polímero
sintético que contiene dos o más grupos electrofílicos, para formar
una matriz cargada negativamente, que luego se hace reaccionar con
un compuesto cargado positivamente.
En un método general para efectuar las uniones
no quirúrgicas de una primer superficie a una segunda superficie, un
primer polímero sintético que contiene dos o más grupos
nucleofílicos es mezclado con un segundo polímero sintético que
contiene dos o más grupos electrofílicos para proporcionar una
mezcla de reacción; la mezcla de reacción es aplicada a una primer
superficie antes de que ocurra el entrecruzamiento sustancial; y la
primer superficie es contactada con una segunda superficie para
efectuar adhesión entre las dos superficies.
En un método general para el aumento de tejido
suave o duro dentro del cuerpo de un mamífero, un primer polímero
sintético que contiene dos o más grupos nucleofílicos y un segundo
polímero sintético que contiene dos o más grupos electrofílicos son
administrados simultáneamente a un sitio del tejido en donde se
requiere su aumento y la mezcla de reacción se le permite
entrecruzar in situ para efectuar el aumento del tejido.
Alternativamente, el primer polímero sintético y el segundo polímero
sintético pueden ser mezclados inmediatamente antes de ser
administrados a un sitio de tejido, tal como la mayoría de las
reacciones de entrecruzamiento que proceden in vivo.
En un método general para la prevención de la
formación de adhesiones que siguen a una cirugía, un primer polímero
sintético que contiene dos o más grupos nucleofílicos es mezclado
con un segundo polímero sintético que contiene dos o más grupos
electrofílicos para proporcionar una mezcla de reacción; la mezcla
de reacción es aplicada al tejido que lo comprende, lo rodea o
adyacente al sitio de una cirugía antes de que haya ocurrido
entrecruzamiento sustancial entre los grupos nucleofílicos y los
grupos electrofílicos; a la mezcla de reacción se le permite
continuar el entrecruzamiento in situ hasta que se ha logrado
el entrecruzamiento en equilibrio; y el sitio de cirugía es cerrado
mediante metodologías convencionales.
En un método general para la prevención de la
formación de adhesiones después de una cirugía, un primer polímero
sintético que contiene dos o más grupos nucleofílicos es mezclado
con un segundo polímero sintético que contiene dos o más grupos
electrofílicos para proporcionar una mezcla de reacción; la mezcla
de reacción es aplicada al tejido que comprende, los alrededores o
adyacentes a un sitio de cirugía antes de que haya ocurrido el
entrecruzamiento sustancial entre los grupos nucleofílicos y
electrofílicos; a la mezcla de reacción se le permite continuar el
entrecruzamiento in situ hasta haber logrado el equilibrio
del entrecruzamiento; y el sitio de la cirugía es cerrado mediante
métodos convencionales.
En un método general para el recubrimiento de
una superficie de un implante sintético, un primer polímero
sintético que contiene dos o más grupos nucleofílicos es mezclado
con un segundo polímero sintético que contiene dos o más grupos
electrofílicos para proporcionar una mezcla de reacción; la mezcla
de reacción es aplicada a una superficie de un implante sintético; y
a los componentes de la mezcla de reacción se les permite
entrecruzarse el uno con el otro sobre la superficie del
implante.
Una característica de la invención es que las
composiciones de polímero entrecruzado son óptimamente claras,
haciendo las composiciones y métodos de la invención particularmente
apropiadas para uso en aplicaciones oftálmicas en que la claridad
óptica es un requerimiento. Es más, las composiciones de la
invención están comprendidas dentro de los componentes
biocompatibles, no-inmunogénicos que no producen
toxicidad, ni inflamación potencial ni productos de reacción
inmunogénica en el sitio de administración al tejido.
Otra característica de la invención es que las
composiciones de polímero entrecruzado tienen una alta resistencia a
la compresión y una alta hinchabilidad, i.e. una composición que se
ha secado se hinchara tres veces (o más) con relación a su tamaño en
estado seco al ser rehidratada, y es más "elástica". Puesto que
estos polímeros son generalmente muy hidrofílicos, ellos son más
fácilmente inyectados, i.e., la composición entrecruzada permanece
como una "masa cohesiva" cuando es inyectada a través de una
aguja muy fina (medidor 27-30).
Aun otra característica de la invención es que
los grupos nucleofílicos en el primer polímero sintético pueden
unirse covalentemente a los grupos amino primarios en los residuos
de lisina de las moléculas de colágeno en el sitio del tejido de la
administración, en efecto, la composición "anclada
biológicamente" al tejido huésped.
Una característica de la invención es que los
componentes de las composiciones son
no-inmunogénicos y no requieren una "prueba de
piel" antes del inicio del tratamiento, igual que en
composiciones de colágeno xenogénico disponible corrientemente, tal
como aquellos fabricados de cueros bovinos.
Otro hecho de la invención es que, diferente al
colágeno, las composiciones de la invención no están sujetas a
división enzimática por las metaloproteinasas de la matriz, tal como
colagenasa, y por lo tanto no son fácilmente degradables in
vivo y, como tal, se espera tengan mayor persistencia a largo
termino in vivo antes que las composiciones de colágeno del
arte previas.
Aun otra característica es que, cuando los
grupos en cada uno de los polímeros utilizados reaccionan para
formar un enlace amida, la fabricación de las composiciones de la
presente invención puede ser altamente controladas rindiendo una
calidad más consistente de los productos.
La figura 1 muestra la fuerza de compresión
versus el desplazamiento para discos (dimensiones aproximadas: 5 mm
de grosor x 5 mm de diámetro) de composiciones de polímero
entrecruzado que comprenden tetra-amino PEG (10,000
MW) entrecruzado usando SE-PEG tetrafuncionalmente
activado (10,000 MW), medido usando el probador universal Instron,
modelo 4202, a un ritmo de compresión de 2 mm por minuto.
La figura 2 muestra la fuerza de compresión
versus el desplazamiento para los discos (dimensiones aproximadas: 5
mm de grueso x 5 mm de diámetro) de composiciones de polímero
entrecruzado que comprenden tetra-amino PEG (10,000
MW) entrecruzado usando SC-PEG activado
trifuncionalmente (5,000 MW), medido usando el probador universal
Instron, modelo 4202, a un ritmo de compresión de 2 mm por
minuto.
La figura 3 muestra la estructura química de dos
polietilen glicoles disponibles comercialmente que contienen
múltiples grupos amino primarios.
Las figuras 4 a 13 muestran la formación de
varias composiciones de polímero sintético entrecruzado de polímeros
hidrofílicos.
Las figuras 14 a 18 muestran la formación de
varias composiciones de polímero entrecruzado de polímeros
hidrofóbicos.
De acuerdo con la presente invención, las
composiciones de polímero entrecruzado son preparadas mediante la
reacción de un primer polímero sintético que contiene dos o más
grupos nucleofílicos con un segundo polímero sintético que contiene
dos o más grupos electrofílicos capaces de unirse covalentemente con
los grupos nucleofílicos del primer polímero sintético.
Los componentes de la presente invención son
no-inmunogénicos y, como tal, no requieren una
"prueba de piel" antes de arrancar el tratamiento, igual que el
colágeno xenogénico. También, como el colágeno, las composiciones de
la invención no están sujetas a división enzimática por las
metaloproteinasas de la matriz (e.g. colagenasa) y se espera por lo
tanto tengan mayor persistencia a largo termino in vivo que
las composiciones de colágeno disponibles corrientemente.
El concepto detrás de la presente invención es
que el polímero sintético que contiene múltiples grupos
nucleofílicos (representados abajo como "x") reaccionaran con
un polímero sintético que contiene múltiples grupos electrofílicos
(representado abajo como "Y"), resultando en una red de
polímero unido covalentemente, como sigue:
polímero - X_{m} + polímero -
Y_{n} \rightarrow polímero - Z -
polímero
en donde m \geq 2, n \geq 2, y
m + n \geq
5;
X = -NH_{2}, -SH, -OH, -PH_{2},
-CO-NH-NH_{2}, etc., y puede ser
el mismo o diferente;
Y = -CO_{2}N(COCH_{2})_{2},
-CO_{2}H, -CHO, -CHOCH_{2}, -N=C=O, -SO_{2}CH=CH_{2},
-N(COCH)_{2}),
-S-S-(C_{5}H_{4}N), etc., y puede ser el mismo o
diferente; y
Z = grupo funcional resultante de la unión de un
grupo nucleofílico (X) y un grupo electrofílico (Y).
Como es anotado arriba, también está contemplado
por la presente invención que X y Y pueden ser el mismo o
diferentes, i.e. el polímero puede tener dos grupos electrofílicos
diferentes, o dos grupos nucleofílicos diferentes, tal como
glutationa.
El esqueleto de cada polímero es un óxido de
alquileno, particularmente, óxido de etileno, óxido de propileno, y
mezclas de ellos. Ejemplos de óxidos de alquileno disfuncionales
pueden ser representados por:
X - polímero - X
\hskip1cmY - polímero - Y
En donde X y Y son como están definidos arriba,
y el termino "polímero" representa
-(CH_{2}CH_{2}O)_{n}- o
-(CH(CH_{3})CH_{2}O)_{n}- o
-(CH_{2}CH_{2}O)_{n}-(CH(CH_{3})CH_{2}O)_{n}-
El grupo funcional X o Y requerido está
comúnmente acoplado a la columna vertebral del polímero mediante un
grupo de unión (representado abajo como "Q"), muchos de los que
son conocidos o posibles. Hay muchas maneras de preparar los varios
polímeros funcionalizados, algunos de los que se alistan abajo:
polímero -
Q^{1}-X + polímero - Q^{2}-Y
\rightarrow polímero -
Q^{1}-Z-Q^{2} - polímero
-
En donde Q = | Estructura total = | ||
-O-(CH_{2})_{n} | polímero - O-(CH_{2})_{n}-X (o Y) | ||
-S-(CH_{2})_{n}- | polímero - S-(CH_{2})_{n}-X (o Y) | ||
-NH-(CH_{2})_{n}- | polímero - NH-(CH_{2})_{n}-X (o Y) | ||
-O_{2}C-NH-(CH_{2})_{n}- | polímero - O_{2}C-NH-(CH_{2})_{n}-X (o Y) | ||
-O_{2}C-(CH_{2})_{n}- | polímero - O_{2}C-(CH_{2})_{n}-X (o Y) | ||
-O_{2}C-CR^{1}H- | polímero - O_{2}C-CRH-X (o Y) | ||
-O-R_{2}-CO-NH- | polímero - O-R-CO-NH-X (o Y) |
En donde n = 1-10 en cada
caso
R^{1} = H, CH_{3}, C_{2}H_{5}, etc;
R^{2} = CH_{2},
CO-NH-CH_{2} CH_{2}.
Q^{1} y Q^{2} pueden ser el mismo o
diferentes.
Por ejemplo, cuando Q^{2} = OCH_{2}CH_{2}
(no hay Q^{1} en este caso); Y =
-CO_{2}N(COCH_{2})_{2}; y X = -NH_{2}, -SH, o
-OH, las reacciones resultantes y los grupos Z serian como
siguen:
polímero - NH_{2} + polímero -
OCH_{2}CH_{2}CO_{2} - N(COCH_{2})_{2}
\rightarrow polímero - NH-OCH_{2}CH_{2}CO -
polímero
(amida)
polímero - SH + polímero -
OCH_{2}CH_{2}CO_{2} - N(COCH_{2})_{2}
\rightarrow polímero - S-OCH_{2}CH_{2}CO -
polímero
(tioester)
Polímero - OH + polímero -
OCH_{2}CH_{2}CO_{2} - N(COCH_{2})_{2}
\rightarrow polímero - O-OCH_{2}CH_{2}CO -
polímero
(ester)
Un grupo adicional, representado abajo como
"D", puede ser insertado entre el polímero y el grupo de unión
para incrementar la degradación del polímero entrecruzado in
vivo, por ejemplo, para uso en la administración de drogas.
polímero
-D-Q-X + polímero
-D-Q-Y \rightarrow polímero -
D-Q-Z-Q-D
- polímero
-
Algunos grupos "D" biodegradables útiles
incluyen lactido, glicolido,
\varepsilon-caprolactona,
poli(\alpha-hidroxi ácido),
poli(amino ácidos), poli(anhídrido), y varios di- o
tripéptidos.
Con el fin de preparar las composiciones de la
presente invención, primero es necesario proporcionar un primer
polímero sintético que contiene dos o más grupos nucleofílicos, tal
como grupos amino primarios o grupos tiol, y un segundo polímero
sintético que contiene dos o más grupos electrofílicos capaces de
unirse covalentemente con los grupos nucleofílicos en el segundo
polímero sintético.
Como es usado aquí, el término "polímero"
se refiere a polímeros sintéticos que tienen un esqueleto de óxido
de alquileno. Los polímeros sintéticos que contienen ya sea grupos
nucleofílicos o electrofílicos son también referidos aquí como
"polímeros sintéticos activados multifuncionalmente". El
termino "activado multifuncionalmente" (o, simplemente,
"activado") se refiere a polímeros sintéticos que tienen, o han
sido químicamente modificados para tener, dos o más grupos
nucleofílicos o electrofílicos que son capaces de reaccionar el uno
con el otro (i.e., los grupos nucleofílicos reaccionan con los
grupos electrofílicos) para formar enlaces covalentes. Los tipos de
polímeros sintéticos activados multifuncionalmente incluyen
polímeros activados difuncionalmente, polímeros activados
tetrafuncionalmente, y polímeros.
Los polímeros sintéticos activados
multifuncionalmente para uso en la presente invención deben contener
al menos dos, preferiblemente más, al menos tres, grupos funcionales
con el propósito de formar una red entrecruzada
tri-dimensional con los polímeros sintéticos que
contienen múltiples grupos nucleofílicos (i.e., "polímeros
multi-nucleofílicos"). En otras palabras, ellos
deben ser al menos activados difuncionalmente, y-son
más preferiblemente activados trifuncionalmente o
tetrafuncionalmente. Si el primer polímero sintético es un polímero
sintético activado difuncionalmente, el segundo polímero sintético
debe contener tres o más grupos funcionales con el objeto de obtener
una red entrecru-
zada tri-dimensional. Más preferiblemente, los dos polímeros sintéticos contienen al menos tres grupos funcionales.
zada tri-dimensional. Más preferiblemente, los dos polímeros sintéticos contienen al menos tres grupos funcionales.
Los polímeros sintéticos que contienen múltiples
grupos nucleofílicos también son referidos aquí genéricamente como
"polímeros multi-nucleofílicos". Para uso en la
presente invención, los polímeros
multi-nucleofílicos deben contener al menos dos,
preferiblemente más, al menos tres, grupos nucleofílicos. Si un
polímero sintético que contiene solo dos grupos nucleofílicos es
usado, un polímero sintético que contiene tres o más grupos
electrofílicos debe ser usado con el propósito de obtener una red
entrecruzada tri-dimensional.
Los polímeros
multi-nucleofílicos preferidos para ser usados en
las composiciones y métodos de la presente invención incluyen
polímeros sintéticos que contienen, o han sido modificados para
contener, grupos nucleofílicos múltiples tales como grupos amino
primarios y grupos tiol. Los polímeros
multi-nucleofílicos incluyen: polietilen glicoles
que han sido modificados para contener dos o más grupos amino
primarios o grupos tioles. En general, la reacción de un grupo tiol
con un grupo electrofílico tiende a proceder más lentamente que la
reacción de un grupo amino primario con un grupo electrofílico.
El polietilen glicol puede ser químicamente
modificado para contener múltiples grupos amino primarios o grupos
tiol de acuerdo a los métodos expuestos, por ejemplo, en el capitulo
22 de Poly(ethylene Glycol) Chemistry: Biotechnical and
Biomedical Appli cations, J. Milton Harris, ed., Plenum Press,
NY (1992). Los polietilen glicoles que han sido
modificados para contener dos o más grupos amino primarios son
referidos aquí como "multi-amino PEGs". Los
polietilen glicoles que han sido modificados para contener dos o más
grupos tiol son referidos aquí como "multi-tiol
PEGs". Como es usado aquí, el termino "polietilen
glicol(es)" incluye el (los) polietilen glicol(es)
modificados y/o derivados.
Varias formas de multi-amino PEG
están comercialmente disponibles de Nektar Therapeutics (San Carlos,
CA) y de Texaco Chemical Company (Houston, TX) bajo el nombre
"Jeffamine". Los multi-amino PEGs útiles en la
presente invención incluyen Texaco's Jeffamina diaminas (serie
"D") y triaminas (serie "T"), que contienen dos y tres
grupos amino primarios por molécula, respectivamente. Las
estructuras generales para las diaminas y triaminas Jeffaminas se
muestran en la figura 3.
Los polímeros sintéticos que contienen múltiples
grupos electrofílicos son también referidos aquí como "polímeros
multi-electrofílicos". Para uso en la presente
invención, los polímeros sintéticos activados multifuncionalmente
deben contener al menos dos, más preferiblemente, al menos tres,
grupos electrofílicos con el fin de formar un circuito entrecruzado
tri-dimensional con polímeros
multi-nucleofílicos.
Los polímeros
multi-electrofílicos preferidos para uso en las
composiciones de la invención son polímeros que contienen dos o más
grupos succinimidil capaces de formar enlaces covalentes con grupos
electrofílicos en otras moléculas. Los grupos succinimidil son
altamente reactivos con materiales que contienen grupos amino
primarios (-NH_{2}), tal como multi-amino PEG. Los
grupos succinimidil son ligeramente menos reactivos con materiales
que contienen grupos tiol (-SH), tal como multi-tiol
PEG.
Como es usado aquí, el termino "que contiene
dos o más grupos succinimidil" se espera que abarque polímeros
que son comercialmente disponibles que contienen dos o más grupos
succinimidil, como también aquellos que deben ser químicamente
derivados para contener dos o más grupos succinimidil. Como es usado
aquí, el termino "grupo succinimidil" se espera que abarque
grupos sulfosuccinimidil y otros tales como variaciones del grupo
succinimidil "genérico". La presencia de la unidad estructural
de sulfito de sodio en el grupo succinimidil sirve para incrementar
la solubilidad del polímero.
Los polímeros hidrofílicos y, en particular,
varios polietilen glicoles, son preferidos para el uso en las
composiciones de la presente invención. Como es usado aquí, el
termino "PEG" se refiere a polímeros que tienen repetida la
estructura (OCH_{2}CH_{2})_{n}.
Las estructuras para algunas formas específicas
activadas tetrafuncionalmente de PEG se muestran en las figuras 4 a
13, como son los productos de reacción generalizada obtenidos
mediante la reacción de PEGs activados tetrafuncionalmente con
grupos multi-amino PEGs. Como se observa en las
figuras el grupo succinimidil es una estructura en forma de anillo
de 5 miembros representada como -N(COCH_{2})_{2}.
En las figuras 4 a 13, el símbolo
\circun{3}denota una unión abierta.
La figura 4 muestra la reacción de PEG
succinimidil glutarato activado tetrafuncionalmente, referido aquí
como SG-PEG, con multi-amino PEG, y
el producto de reacción obtenido por este medio.
Otra forma activada de PEG es referida como un
PEG succinimidil propionato.
(SE-PEG). La fórmula estructural
del SE-PEG activado tetrafuncionalmente y el
producto de reacción obtenido mediante la reacción con
multi-amino PEG se muestra en la figura 5. En una
formula estructural general para el compuesto, el subíndice 3 es
reemplazado con una "m". En la modalidad mostrada en la figura
4, m = 3, en el que hay 3 grupos CH_{2} repetidos en cada lado del
PEG.
La estructura en la figura 5 resulta en un
conjugado que incluye una unión "éter" que está menos sujeta a
hidrólisis. Esto es diferente del conjugado mostrado en la figura 4,
en donde se proporciona una unión éster. La unión éster está sujeta
a hidrólisis bajo condiciones fisiológicas.
Aun otra forma activada funcionalmente del
polietilen glicol, en donde m = 2, se muestra en la figura 6, como
es el conjugado formado mediante la reacción del PEG activado
tetrafuncionalmente con un multi-amino PEG.
Otro PEG activado funcionalmente similar a los
compuestos de las figuras 5 y 6 es proporcionado cuando m = 1. La
formula estructural del PEG activado tetrafuncionalmente y el
conjugado resultante formado mediante la reacción del PEG activado
con PEG multi-amino se muestran en la figura 7. Se
nota que este conjugado incluye ambos una unión éter y una unión
péptido. Estas uniones son estables bajo condiciones
fisiológicas.
Otra forma de PEG activado funcionalmente es
referida como un PEG succinimidil succinamida
(SSA-PEG). La formula estructural para la forma
activada tetrafuncionalmente de este compuesto y el producto de
reacción obtenido mediante la reacción con un
multi-amino PEG se muestra en la figura 8. En la
estructura mostrada en la figura 8, m = 2, sin embargo, los
compuestos relacionados, en donde m = 1 o m = 3-10,
pueden también ser usados en las composiciones de la invención.
La estructura en la figura 8 resulta en un
conjugado que incluye una unión "amida" que, como la unión éter
previamente descrita, está menos sujeta a hidrólisis y es por lo
tanto más estable que una unión éster.
Aun otra forma activada del PEG es proporcionada
cuando m = 0. Este compuesto es referido como PEG succinimidil
carbonato (SC-PEG). La formula estructural del
SC-PEG activado tetrafuncionalmente y la formula
conjugado formada mediante la reacción con
multi-amino PEG se muestra en la figura 9.
Como se discutió arriba, los derivados del
polietilen glicol activados preferidos para uso en la invención
contienen grupos succinimidil como el grupo reactivo. Sin embargo,
grupos de activación diferentes pueden ser unidos a lo largo de la
longitud de la molécula PEG. Por ejemplo, el PEG puede ser derivado
para formar PEG propion aldehido (A-PEG) activado
funcionalmente, la forma activada tetrafuncionalmente que se muestra
en la figura 10, como es el conjugado formado mediante la reacción
del A-PEG con multi-amino PEG. La
unión mostrada en la figura 10 es referida como una unión
-(CH_{2})_{m}-NH-, en donde m =
1-10.
Aun otra forma de polietilen glicol activado es
PEG glicidil éter (E-PEG) activado funcionalmente,
del que el compuesto activado tetrafuncionalmente se muestra en la
figura 11, como es el conjugado formado mediante la reacción de tal
producto con multi-amino PEG.
Otro derivado activado del polietilen glicol es
el PEG-isocianato (1-PEG) activado
funcionalmente, que se muestra en la figura 12, junto con el
conjugado formado mediante la reacción de dicho compuesto con
multi-amino PEG.
Otro derivado activado del polietilen glicol es
el PEG-vinilsulfona (V-PEG) activado
funcionalmente, que se muestra en la figura 13, abajo, junto con el
conjugado formado mediante la reacción de dicho producto con
multi-amino PEG.
Los polietilen glicoles activados
multifuncionalmente preferidos para uso en las composiciones de la
presente invención son polietilen glicoles que contienen grupos
succinimidil, tal como
SG-PEG y SE-PEG
(mostrados en las figuras 4-7), preferiblemente en
forma activada trifuncionalmente o tetrafuncionalmente.
Muchas de las formas activadas del polietilen
glicol descritas arriba están ahora disponibles comercialmente de
Néctar Therapeutics, San Carlos, California y Unión Carbide, South
Charleston, West Virginia.
Los polímeros hidrofóbicos pueden también ser
usados para preparar las composiciones de la presente invención. Los
polímeros hidrofóbicos para uso en la presente invención
preferiblemente contienen, o pueden ser derivados para contener, dos
o más grupos electrofílicos, tal como grupos succinimidil, más
preferiblemente, dos, tres, o cuatro grupos electrofílicos. Como es
usado aquí, el termino "polímero hidrofóbico" se refiere a
polímeros que contienen una proporción relativamente pequeña de
átomos de oxigeno o nitrógeno.
Los polímeros hidrofóbicos que ya contienen dos
o más grupos succinidimil incluyen, sin limitación, disuccinimidil
suberato (DSS), bis(sulfosuccinimidil) suberato (BS^{3}),
ditiobis(succinimidilpropionato) (DSP),
bis(2-succinimidooxicarboniloxi) etil sulfona
(BSOCOES), y
3,3'-ditiobis(sulfosuccinimidilpropionato)
(DTSPP), y sus análogos y derivados. Los polímeros arriba
referenciados están comercialmente disponibles de Pierce (Rocford,
IL), bajo catalogo Nos. 21555, 21579, 22585, 21554, y 21577,
respectivamente. Las formulas estructurales para los polímeros
arriba referenciados, como también los productos de reacción
generalizada obtenida mediante la reacción de cada uno de estos
polímeros con amino PEG, se muestran abajo en las figuras
14-18, respectivamente.
Los polímeros hidrofóbicos preferidos para uso
en la invención generalmente tienen una cadena de carbono que no es
más larga que cerca de 14 átomos de carbono. Los polímeros que
tienen cadenas sustancialmente más largas que 14 átomos de carbono
generalmente tienen muy pobre solubilidad en soluciones acuosas y,
como tal, tienen tiempos de reacción muy largos cuando están
mezclados con soluciones acuosas de polímeros sintéticos que
contienen múltiples grupos nucleofílicos.
Ciertos polímeros, tales como los poliácidos,
pueden ser derivados para contener dos o más grupos funcionales, tal
como grupos succinimidil. Los poliácidos para uso en la presente
invención incluyen, sin limitación, ácido tricarboxílico basado en
trimetilpropano, ácido tetracarboxílico basado en
di(trimetilol propano), ácido heptanedioico, ácido
octanedioico (ácido suberico), y ácido hexadecanedioico (ácido
tapsico). Muchos de estos poliácidos están comercialmente
disponibles de DuPont Chemical Company.
De acuerdo a un método general, los poliácidos
pueden ser químicamente derivados para contener dos o más grupos
succinimidil mediante la reacción con una cantidad molar apropiada
de N-hidroxisuccinimida (NHS) en la presencia de
N,N'-diciclohexilcarbodiimida (DCC).
Los polialcoholes tales como trimetilpropano y
di(trimetilol propano) pueden ser convertidos a la forma de
ácido carboxílico usando varios métodos, entonces luego derivados
mediante reacción con NHS en la presencia de DCC para producir
polímeros activados trifuncionalmente y tetrafuncionalmente,
respectivamente, como es descrito en la aplicación de propiedad
común US serie No. 08/403,358. Los poliácidos tal como ácido
heptanodioico (HOOC-(CH_{2})_{5}-COOH),
ácido actanodioico
(HOOC-(CH_{2})_{6}-COOH), y ácido
hexadecanodioico
(HOOC-(CH_{2})_{14}-COOH) son derivados
mediante la adición de grupos succinidimil para producir polímeros
activados difuncionalmente.
Las poliaminas tal como etilendiamina
(H_{2}N-CH_{2}
CH_{2}-NH_{2}), tetrametilendiamina
(H_{2}N-(CH_{2})_{4}-NH_{2}),
pentametilendiamina (cadaverina)
(H_{2}N-(CH_{2})_{5}-NH_{2}),
hexametilendiamina
(H_{2}N-(CH_{2})_{6}-NH_{2}),
bis(2-hidroxietil)amina
(HN-(CH_{2}CH_{2}OH)_{2}),
bis(2-aminoetil)amina
(HN-(CH_{2}CH_{2}NH_{2})_{2}), y
tris(2-aminoetil)amina
(N-(CH_{2}CH_{2}NH_{2})_{3}) pueden ser químicamente
derivados a poliácidos, que entonces pueden ser derivados para
contener dos o más grupos succinimidil mediante la reacción con las
cantidades molares apropiadas de
N-hidroxisuccinimida en la presencia de DCC, como
está descrito en la aplicación US serie No. 08/403,358. Muchas de
estas poliaminas están comercialmente disponibles de DuPont Chemical
Company.
En un método general para la preparación de
composiciones de polímero entrecruzado de la invención, un primer
polímero sintético que contiene múltiples grupos nucleofílicos es
mezclado con un segundo polímero sintético que contiene múltiples
grupos electrofílicos. La formación de una red entrecruzada
tri-dimensional ocurre como resultado de la reacción
entre los grupos nucleofílicos del primer polímero sintético y los
grupos electrofílicos del segundo polímero sintético.
Aquí en lo sucesivo, el termino "primer
polímero sintético" será usado para referirse a un polímero
sintético que contiene dos o más grupos nucleofílicos, y el termino
"segundo polímero sintético" será usado para referirse a un
polímero sintético que contiene dos o más grupos electrofílicos. Las
concentraciones del primer polímero sintético y del segundo polímero
sintético usado para preparar las composiciones de la presente
invención variarán dependiendo de un número de factores, incluyendo
los tipos y pesos moleculares de los polímeros sintéticos
particulares usados y el uso final deseado de la aplicación.
En general, hemos encontrado que cuando se usa
multi-amino PEG como el primer polímero sintético,
es preferible usarlo a una concentración en el rango de cerca de 0.5
a cerca de 20% en peso de la composición final, mientras que el
segundo polímero sintético usarlo a una concentración en el rango de
cerca de 0.5 a cerca de 20% en peso de la composición final. Por
ejemplo, una composición final que tiene un peso total de 1 gramo
(1000 miligramos) contendrá entre cerca de 5 a cerca de 200
miligramos de multi-amino PEG, y entre cerca de 5 a
cerca de 200 miligramos del segundo polímero sintético.
El uso de concentraciones más altas de ambos el
primero y el segundo polímeros sintéticos resultaran en la formación
de una red entrecruzada más ajustada, produciendo un gel más rígido,
más robusto. Como tal, las composiciones que tienen la intención de
ser usadas en el aumento de tejido generalmente emplearán
concentraciones del primer y segundo polímero sintético que caen
hacia el límite superior del rango de concentración preferido. Las
composiciones con la intención de ser usadas como bioadhesivos o en
la prevención de la adhesión no necesitan ser tan firmes y por lo
tanto contienen concentraciones menores de polímero.
Debido a que los polímeros que contienen
múltiples grupos electrofílicos también reaccionan con el agua, el
segundo polímero sintético es generalmente guardado y usado en forma
estéril y seca para prevenir la perdida de habilidad de
entrecruzamiento debido a la hidrólisis que típicamente ocurre
durante la exposición de tales grupos electrofílicos al medio
acuoso. Los procesos para la preparación de polímeros hidrofílicos
sintéticos que contienen múltiples grupos electrofílicos en forma
seca y estéril son expuestos en la aplicación de propiedad común
serie US No. 08/497,573 archivada el 30 de junio de 1995, ahora
patente US No. 5 643 464 de Rhee et al. Por ejemplo, el
polímero sintético seco puede ser moldeado mediante compresión en
una hoja delgada o membrana, que entonces puede ser esterilizada
usando rayos gama, o preferiblemente irradiación con haces de
electrones. La membrana u hoja resultante puede ser cortada al
tamaño deseado o ser cortada en partículas de tamaño más
pequeño.
Los polímeros que contienen múltiples grupos
nucleofílicos son generalmente no reactivos al agua y pueden por lo
tanto ser guardados en solución acuosa.
Las composiciones de polímero entrecruzado
pueden también ser preparadas para contener varios agentes para
producir imagen tal como yodo o sulfato de bario, o flúor, con el
fin de ayudar a la visualización de las composiciones después de la
administración vía rayos X, o ^{19}F-MRI,
respectivamente.
Las proteínas de ocurrencia natural, tal como
colágeno, y derivados de varios polisacáridos de ocurrencia natural,
tal como glicosaminoglicanos, pueden adicionalmente ser incorporados
en las composiciones de la invención. Cuando estos otros componentes
también contienen grupos funcionales que reaccionarán con los grupos
funcionales de los polímeros sintéticos, su presencia durante el
mezclado y/o entrecruzamiento del primer y segundo polímero
sintético resultará en la formación de un polímero sintético de
matriz entrecruzada de existencia natural con un polímero sintético.
En particular, cuando el polímero de ocurrencia natural (proteína o
polisacárido) también contiene grupos nucleofílicos tal como grupos
amino primarios, los grupos electrofílicos en el segundo polímero
sintético reaccionarán con los grupos amino primarios de estos
componentes, como también con los grupos nucleofílicos del primer
polímero sintético, para causar que estos otros componentes
comiencen a ser parte de la matriz de polímero.
En general, los glicosaminoglicanos deben ser
químicamente derivados mediante deacetilacion, desulfatación, o
ambos con el objeto de contener grupos amino primarios disponibles
para la reacción con grupos electrofílicos o moléculas de polímero
sintético. Los glicosaaminoglicanos que pueden ser derivados de
acuerdo a uno o ambos métodos antes mencionados incluyen lo
siguiente: ácido hialuronico, condroitina sulfato A, condroitina
sulfato B (dermatan sulfato), condroitina sulfato C, quitina (puede
ser derivada del qitosano), queratan sulfato, queratosulfato, y
heparina. La derivación de glicosaminoglicanos mediante
deacetilación y/o desulfatación y enlace covalente de los
resultantes derivados de glicosaminoglicano con polímeros
hidrofílicos sintéticos es descrita con detalle en la comúnmente
asignada aplicación de patente serie US No. 08/146,843, archivada el
3 de noviembre de 1993, ahora patente US No. 5.510.418 a Rhee et
al.
Similarmente, los grupos electrofílicos del
segundo polímero sintético reaccionará con los grupos amino
primarios en los residuos de lisína o los grupos tiol en los
residuos de cisteína de ciertas proteínas de ocurrencia natural. Las
proteínas ricas en lisína tal como colágeno y sus derivados son
especialmente reactivos con grupos electrofílicos en los polímeros
sintéticos. Como es usado aquí, el término "colágeno" se espera
que abarque colágeno de cualquier tipo, de cualquier fuente,
incluyendo, pero no limitado a, colágeno extraído del tejido o
producido recombinantemente, análogos del colágeno, derivados del
colágeno, colágenos modificados, y colágenos desnaturalizados tal
como la gelatina. El enlace covalente del colágeno a polímeros
hidrofílicos sintéticos está descrito en detalle en la patente
comúnmente asignada US No. 5,162,430 de fecha 10 noviembre de 1992,
a Rhee et al.
En general, el colágeno de cualquier fuente
puede ser usado en las composiciones de la invención; por ejemplo,
el colágeno puede ser extraído y purificado de fuente humana u otra
fuente mamífera, tal como corium porcino o bovino y placenta humana,
o puede ser producido recombinantemente o de manera diferente. La
producción de colágeno sustancialmente no antigénico purificado en
solución de piel bovina es bien conocida en el arte. La patente US
No. 5,428,022 del 27 de junio de 1995 de Palefsky et al.,
describe métodos de extracción y purificación de colágeno de
placenta humana. La aplicación de patente US serie No.08/183,648 del
18 de junio de 1994, ahora patente US No. 5,667,839 de Berg et
al., describe métodos de producción de colágeno humano
recombinante en la leche de animales transgénicos, incluyendo vacas
transgénicas. El termino "colágeno" o "material colágeno"
como es usado aquí, se refiere a todas las formas de colágeno,
incluyendo aquellas que han sido procesadas o modificadas de otra
forma.
El colágeno de cualquier tipo, incluyendo pero
no limitado a, los tipos I, II, III, IV, o cualquier combinación de
ellos, puede ser usado en las composiciones de la invención; aunque
el tipo I es generalmente preferido. Cualquier atelopéptido o
telopéptido que contiene colágeno puede ser usado; sin embargo,
cuando el colágeno de una fuente xenogénica, tal como colágeno
bovino, es usado, el colágeno atelopéptido generalmente es
preferido, debido a su reducida inmunogenecidad comparada al
colágeno que contiene telopéptido.
El colágeno que no ha sido previamente
entrecruzado por métodos como el calor, la irradiación, o con
agentes de entrecruzamiento químico es preferido para uso en las
composiciones de la invención, aunque el colágeno entrecruzado
previamente puede ser usado. Colágeno fibrilar atelopéptido no
entrecruzado está comercialmente disponible de Inamed Aesthetics
(Santa Bárbara, CA) a concentraciones de colágeno de 35 mg/ml y 65
mg/ml bajo las marcas comerciales Zyderm® I Collagen and Zyderm® II
Collagen, respectivamente. El colágeno fibrilar atelopéptido
entrecruzado glutaraldehido está comercialmente disponible de Inamed
Aesthetics a una concentración de colágeno de 35 mg/ml bajo la marca
comercial Zyplast® Collagen.
Los colágenos para uso en la presente invención
están generalmente en suspensión acuosa a una concentración entre
cerca de 20 mg/ml a cerca de 120 mg/ml; preferiblemente, entre cerca
de 30 mg/ml a cerca de 90 mg/ml.
Aunque el colágeno intacto es preferido, el
colágeno desnaturalizado, comúnmente conocido como gelatina, puede
también ser usado en las composiciones de la invención. La gelatina
puede tener el beneficio adicional de ser más rápidamente degradable
que el colágeno.
Debido a su consistencia pegajosa, el colágeno
no fibrilar es generalmente preferido para ser usado en las
composiciones de la invención que tienen el propósito de ser usadas
como bioadhesivos. El termino "colágeno no fibrilar" se refiere
a cualquier colágeno modificado o sin modificar que es
sustancialmente de forma no fibrilar a un pH de 7, como es indicado
por la claridad óptica de una suspensión acuosa del colágeno.
El colágeno que está ya en forma fibrilar puede
ser usado en las composiciones de la invención. Como es usado aquí,
el termino "colágeno no fibrilar" tiene la intención de abarcar
los tipos de colágeno que no son fibrilares en la forma nativa, como
también los colágenos que han sido químicamente modificados tal como
aquellos que están en forma no fibrilar a alrededor de un pH neutro.
Los tipos de colágeno que no son fibrilares (o microfibrilares) en
la forma nativa incluyen los tipos IV, VI, y VII.
Los colágenos químicamente modificados que están
en forma no fibrilar a un pH neutro incluyen colágeno succinilado y
colágeno metilado, los cuales pueden ser preparados de acuerdo a los
métodos descritos en la patente U.S. No. 4,164,559, del 14 de agosto
de 1979 de Miyata et. al.. Debido a su pegajosidad inherente,
el colágeno metilado es particularmente preferido para uso en
composiciones de bioadhesivos, como es descrito en la aplicación US
serie No. 08/476,825, ahora patente US No. 5,614,587 de Rhee et
al.
Los colágenos para uso en las composiciones de
polímero entrecruzado de la presente invención pueden comenzar en
forma fibrilar, entonces ser transformados a la forma no fibrilar
mediante la adición de uno o más agentes de desmontaje de fibras. El
agente desmontador de fibra debe estar en una cantidad suficiente
para transformar el colágeno a no fibrilar sustancialmente a un pH
de 7, como es descrito arriba. Los agentes desmontadores de fibra
para uso en la presente invención incluyen, sin limitación, varios
alcoholes biocompatibles, amino ácidos, sales inorgánicas, y
carbohidratos, con los alcoholes biocompatibles siendo los
sustancialmente preferidos. Los alcoholes biocompatibles preferidos
incluyen glicerol y propilen glicol. Alcoholes no biocompatibles,
tales como etanol, metanol, e isopropanol, no son preferidos para
ser usados en la presente invención, debido a sus efectos
potencialmente dañinos en el cuerpo del paciente que los recibe. Los
amino ácidos preferidos incluyen arginina. Las sales inorgánicas
preferidas incluyen cloruro de sodio y cloruro de potasio. Aunque
los carbohidratos, tales como varias azucares incluyendo la sucrosa,
pueden ser usados en la practica de la presente invención, ellos no
son preferidos como otros tipos de agentes desmontadores de fibra
debido a que pueden tener efectos citotoxicos in vivo.
Porque es opaco y menos pegajoso que el colágeno
no fibrilar, el colágeno fibrilar es menos preferido para uso en
composiciones bioadhesivas. Sin embargo, como está descrito en la
aplicación US serie No. 08/476,825, el colágeno fibrilar, o las
mezclas de colágeno fibrilar y no fibrilar, pueden ser preferidas
para uso en composiciones adhesivas cuyo propósito es lograr larga
persistencia in vivo, si la claridad óptica no es un
requerimiento.
Para composiciones cuyo propósito es ser usadas
en el aumento de tejido, el colágeno fibrilar es preferido debido a
su tendencia a formar geles entrecruzados más fuertes que tienen una
mayor persistencia a largo termino in vivo que aquellos
preparados usando colágeno no fibrilar.
En general, el colágeno es adicionado al primer
polímero sintético, luego el colágeno y el primer polímero sintético
son mezclados vigorosamente para lograr una composición homogénea.
El segundo polímero sintético es entonces adicionado y mezclado
dentro de la mezcla del primer polímero sintético y el colágeno, en
donde se unirá covalentemente a los grupos amino primarios o los
grupos tiol en el primer polímero sintético y a los grupos amino
primarios del colágeno, resultando en la formación de una red
entrecruzada homogénea. Varios derivados glicosaminoglicanos
desulfatados y/o desacetilados pueden ser incorporados en la
composición de una manera similar a la descrita arriba para el
colágeno.
Para uso en la adhesión de tejido como se
discute abajo, puede también ser deseable incorporar proteínas tales
como albumina, fibrina o fibrinógeno en la composición de polímero
entrecruzado para promover la adhesión
celular.
celular.
En adición, la introducción de hidrocoloides
tales como carboximetilcelulosa puede promover la adhesión de tejido
y/o la hinchabilidad.
Las composiciones de la presente invención
pueden ser administradas antes, durante o después del
entrecruzamiento del primer y segundo polímero sintético. Ciertos
usos, que son discutidos en mayor detalle abajo, tal como aumento
del tejido, pueden requerir que las composiciones estén
entrecruzadas antes de la administración, mientras que otras
aplicaciones, tal como adhesión de tejido, requieren que las
composiciones sean administradas antes de que el entrecruzamiento
haya alcanzado el "equilibrio". El punto en el cual el
entrecruzamiento ha alcanzado el equilibrio es definido aquí como el
punto al que la composición ya no se sienta más tiempo adhesiva o
pegajosa al tacto.
Con el fin de administrar la composición antes
del entrecruzamiento, el primer polímero sintético y el segundo
polímero sintético pueden estar contenidos dentro de los cilindros
de una jeringa de doble compartimento. En este caso, los dos
polímeros sintéticos no se mezclan hasta que los dos polímeros son
extruidos por la punta de la jeringa al interior del tejido del
paciente. Esto permite que la gran mayoría de la reacción de
entrecruzamiento ocurra in situ, evitando el problema del
bloqueo de la aguja que comúnmente ocurre si los dos polímeros
sintéticos son mezclados muy temprano y el entrecruzamiento entre
los dos componentes está demasiado avanzado antes de ser expedido
desde la aguja de la jeringa. El uso de una jeringa de doble
compartimento, como es descrito arriba, permite el uso de agujas de
menor diámetro, lo cual es ventajoso cuando se está trabajando en el
aumento de tejido suave en el delicado tejido facial, tal como
alrededor de los ojos.
Alternativamente, el primer polímero sintético y
el segundo polímero sintético pueden ser mezclados de acuerdo a los
métodos descritos arriba antes del suministro al sitio del tejido,
después inyectado al tejido deseado inmediatamente (preferiblemente,
dentro de cerca de 60 segundos) permitiendo el mezclado.
En otra modalidad de la invención, el primer
polímero sintético y el segundo polímero sintético son mezclados,
luego extruidos y permitido el entrecruzamiento en una hoja o en
otra forma solida. El solido entrecruzado es luego deshidratado para
remover sustancialmente toda el agua no unida. El solido seco
resultante puede ser molido o co-dividido en
partículas, luego suspendido en un transportador fluido no acuoso,
incluyendo, sin limitación, ácido hialuronico, dextran sulfato,
dextrano, colágeno no entrecruzado succinilado, colágeno no
entrecruzado metilado, glicógeno, glicerol, dextrosa, maltosa,
triglicéridos de ácidos grasos (tal como aceite de maíz, aceite de
soya, y aceite de sesamo), y fosfolipido de yema de huevo, la
suspensión de partículas puede ser inyectada a través de una aguja
de pequeño calibre hasta el sitio del tejido. Una vez dentro del
tejido, las partículas de polímero entrecruzado se rehidratarán y
aumentarán en tamaño al menos cinco veces.
Mediante la variación de las cantidades molares
relativas del primer polímero sintético y del segundo polímero
sintético, es posible alterar la carga neta de la composición de
polímero entrecruzado resultante, con el fin de preparar una matriz
para la administración de compuestos cargados (tal como una proteína
o una droga). Como tal, la administración de proteínas cargadas o
drogas, que deberían normalmente difundirse rápidamente desde una
matriz transportadora neutra, puede ser controlada.
Por ejemplo, si un exceso molar de un primer
polímero sintético que contiene múltiples grupos nucleofílicos es
usado, la matriz resultante tiene una carga positiva neta y puede
ser usada iónicamente y administrar compuestos cargados
negativamente. Ejemplos de compuestos cargados negativamente que
pueden ser administrados desde estas matrices incluyen varias
drogas, células, proteínas, y polisacáridos. Colágenos cargados
negativamente, tal como colágeno succinilatado; y derivados del
glicosaminoglicano, tal como hialuronato de sodio, queratan sulfato,
queratosulfato, sodio condroitina sulfato A, sodio dermatan sulfato
B, sodio condroitina sulfato C, heparina, condroitina esterificada
sulfato C, y heparina esterificada, pueden ser efectivamente
incorporados en la matriz de polímero entrecruzado como es descrito
arriba.
Si es usado un exceso molar de un segundo
polímero sintético que contiene múltiples grupos electrofílicos, la
matriz resultante tiene una carga negativa neta y puede ser usada
para unir iónicamente y administrar componentes cargados
positivamente. Ejemplos de compuestos cargados positivamente que
pueden ser administrados de estas matrices incluyen varias drogas,
células, proteínas, y polisacáridos. Los colágenos cargados
positivamente, tal como colágeno metilado, y derivados del
glicosaminoglicano, tal como un ácido hialuronico desacetilado
esterificado, condroitina desulfatada desacetilada esterificada
sulfato A, condroitina desulfatada desacetilada sulfato C, keratano
desulfatado desacetilado sulfato, queratosulfato desulfatado
desacetilado, heparina desulfatada esterificada, y quitosano, pueden
ser efectivamente incorporados dentro de la matriz de polímero
entrecruzado como es descrito arriba.
Las composiciones de polímero entrecruzado de la
presente invención pueden también ser usadas para la administración
localizada de varias drogas y otros agentes activos biológicamente.
Los agentes activos biológicamente tales como factores de
crecimiento pueden también ser administrados desde la composición a
un sitio del tejido local con el fin de facilitar la curación del
tejido y la regeneración.
El termino "agente activo biológicamente" o
"agente activo" como es usado aquí se refiere a moléculas
orgánicas que ejercen efectos biológicos in vivo. Ejemplos de
agentes activos, incluye, sin limitación, enzimas, receptores
antagonistas o agonistas, hormonas, factores de crecimiento, médula
ósea autógena, antibióticos, agentes antimicrobianos y anticuerpos.
El termino "agente activo" también tiene la intención de
abarcar varios tipos de células y genes que pueden ser incorporados
dentro de las composiciones de la invención. El termino "agente
activo" también tiene la intención de abarcar combinaciones o
mezclas de dos o más agentes activos, como es definido arriba.
Los agentes activos preferidos para uso en las
composiciones de la presente invención incluyen factores de
crecimiento, tales como factores de crecimiento de transformación
(TGFs), factores de crecimiento de fibroblasto (FGFs), factores de
crecimiento derivado de plaqueta (PDGFs), factores de crecimiento de
la epidermis (EGFs), péptidos activados de tejido conectivo (CTAPs),
factores osteogenicos, y análogos activos biológicamente,
fragmentos, y derivados de tales factores de crecimiento. Los
miembros de la familia supergen del factor de crecimiento de
transformación (TGF), que son proteínas regulatorias
multifuncionales, son particularmente preferidos. Los miembros de la
familia supergen TGF incluyen los factores de crecimiento de
transformación beta (por ejemplo, TGF-\beta1,
TGF-\beta2, TGF-\beta3);
proteínas morfogeneticas del hueso (por ejemplo,
BMP-1, BMP-2, BMP-3,
BMP-4, BMP-5, BMP-6,
BMP-7, BMP-8,
BMP-9); factores de crecimiento
unión-heparina (por ejemplo factor de crecimiento
del fibroblasto (FGF), factor de crecimiento de epidermis (EGF),
factor de crecimiento derivado de plaqueta (PDGF), factor de
crecimiento como-insulina (IGF)); Inhibinas (por
ejemplo, Inhibina A, Inhibina B); factores de diferenciación del
crecimiento (por ejemplo, GDF-1); y Activinas (por
ejemplo, Activina A, Activna B, Activina AB).
Los factores de crecimiento pueden ser aislados
de fuentes nativas o naturales, tal como células mamíferas, o pueden
ser preparadas sintéticamente, tal como mediante técnicas de ADN
recombinante o mediante varios procesos químicos. Además, los
análogos, los fragmentos, o derivados de estos factores pueden ser
usados, con la condición de que ellos exhiban al menos algo de la
actividad biológica de la molécula nativa. Por ejemplo, los análogos
pueden ser preparados mediante la expresión de genes alterados por
mutagenesis de sitio-especifico u otras técnicas de
ingeniería genética.
Los agentes activos biológicamente pueden ser
incorporados en la composición del polímero sintético mediante
mezcla. Alternativamente, los agentes pueden ser incorporados en la
matriz del polímero entrecruzado, como es descrito arriba, mediante
la unión de estos agentes con los grupos funcionales en los
polímeros sintéticos. Los procesos para el enlace covalente de los
agentes activos biológicamente tal como factores de crecimiento que
usan polietilen glicoles activados funcionalmente como es descrito
en la patente común US No. No. 5,162,430, del 10 de noviembre de
1992 a Rhee et.al.. Tales composiciones preferiblemente
incluyen uniones que pueden ser fácilmente biodegradadas, por
ejemplo como resultado de la degradación enzimática, resultando en
la liberación del agente activo dentro del tejido objetivo, en donde
ejercerá su efecto terapéutico deseado.
Un método simple para la incorporación de
agentes activos biológicamente que contienen grupos nucleofílicos
dentro de la composición de polímero entrecruzado involucra mezclado
del agente activo con el primer polímero sintético (o la mezcla
primer polímero sintético/ colágeno) antes de la adición del segundo
polímero sintético. Este procedimiento resultará en enlaces
covalentes del agente activo a la composición del polímero
entrecruzado, produciendo una composición de liberación sostenida
altamente efectiva.
El tipo y cantidad de agente activo usado
dependerá, entre otros factores, del sitio particular y la condición
a ser tratada y la actividad biológica y la farmacocinética del
agente activo seleccionado.
Las composiciones de polímero entrecruzado de la
presente invención pueden también ser usadas para administrar varios
tipos de células vivas o genes a un sitio deseado de administración
con el propósito de formar un nuevo tejido. El termino "genes"
como es usado aquí tiene la intención de abarcar material genético
de fuentes naturales, ácidos nucleícos sintéticos, ADN, ADN y ARN
antisentido.
Cuando es usado para administrar células, por
ejemplo, las células del pedúnculo mesenquimal no están
diferenciadas y por lo tanto pueden diferenciarse para formar varios
tipos de células nuevas debido a la presencia de un agente activo o
de los efectos (químicos, físicos, etc.) del ambiente del tejido
local. Ejemplos de células del pedúnculo mesemquimal incluyen
osteoblastos, condrocitos, y fibroblastos. Los osteoblastos pueden
ser administrados al sitio de un defecto del hueso para producir
nuevo hueso; los condrocitos pueden ser administrados al sitio de un
cartílago defectuoso para producir nuevo cartílago; los fibroblastos
pueden ser administrados para producir colágeno donde quiera que sea
requerido nuevo tejido conectivo; las células neuroectodermicas
pueden ser administradas para formar nuevo tejido nervioso; las
células epiteliales pueden ser administradas para formar nuevo
tejido epitelial, tal como hígado, páncreas, etc.
Las células o genes pueden ser ya sea alogenitas
o xenogenicas en origen. Por ejemplo, las composiciones pueden ser
usadas para administrar células o genes de otras especies que han
sido genéticamente modificadas. Puesto que las composiciones de la
invención no son fácilmente degradadas in vivo, las células y
genes atrapadas dentro de las composiciones de polímero entrecruzado
serán aisladas del las propias células del paciente y, como tal, no
provocarán una respuesta inmune en el paciente. Con el objeto de
entrampar las células o genes dentro de la matriz de polímero
entrecruzado, el primer polímero y las células o genes pueden ser
premezcladas, luego el segundo polímero es mezclado dentro de la
mezcla primer polímero/célula o gen para formar una matriz
entrecruzada, por lo tanto el entrampamiento de las células o genes
dentro de la matriz.
Como se ha discutido arriba para los agentes
activos biológicamente, cuando es usado para administrar células o
genes, los polímeros sintéticos preferiblemente también contienen
grupos biodegradables para ayudar a la liberación controlada de las
células o genes en el sitio objetivo de la administración.
Nosotros hemos hallado que las composiciones
preferidas de la invención tienden a tener inusualmente alta
pegajosidad, haciéndolos particularmente apropiados para uso como
bioadhesivos, por ejemplo, para uso en cirugía. Como son usados
aquí, los términos "bioadhesivo", "adhesivo biológico", y
"adhesivo quirúrgico" son usados intercambiablemente para
referirse a composiciones biocompatibles capaces de efectuar
temporalmente o permanentemente unión entre las superficies de dos
tejidos nativos, o entre la superficie de un tejido nativo y la
superficie de un tejido no-nativo o una superficie
de un implante sintético.
En un método general para efectuar la unión de
una primer superficie a una segunda superficie, el primer polímero
sintético y el segundo polímero sintético son aplicados a la primer
superficie, luego la primer superficie es contactada con la segunda
superficie para efectuar adhesión entre la primer superficie y la
segunda superficie: Preferiblemente, el primer polímero sintético y
el segundo polímero sintético son primero mezclados para iniciar el
entrecruzamiento, luego administrados a la primer superficie antes
de que haya ocurrido el entrecruzamiento sustancial entre los grupos
nucleofílicos del primer polímero sintético y los grupos
electrofílicos del segundo polímero sintético. La primer superficie
es entonces contactada con la segunda superficie, preferiblemente
inmediatamente, para efectuar adhesión entre las dos superficies. Al
menos una de las dos superficies es preferiblemente una superficie
de un tejido nativo.
Por ejemplo, el primer polímero sintético y el
segundo polímero sintético son generalmente suministrados en
jeringas separadas, cuyos contenidos son luego mezclados juntos
usando técnicas de mezclado
jeringa-a-jeringa justo antes de la
administración a la primer superficie. El primer polímero sintético
y el segundo polímero sintético son preferiblemente mezclados por un
mínimo de 20 (preferiblemente 20 a 100; más preferiblemente, 30 a
60) pasos para asegurar un mezclado adecuado. Como el
entrecruzamiento entre los correspondientes grupos reactivos de los
dos polímeros sintéticos es generalmente iniciado durante el proceso
de mezclado, es importante administrar la mezcla de reacción a la
primer superficie tan pronto como sea posible después del
mezclado.
La mezcla de reacción puede ser extruida sobre
la primer superficie desde la apertura de una jeringa u otro
instrumento de extrusión apropiado. Siguiendo la aplicación, la
mezcla de reacción extruida puede ser extendida sobre la primer
superficie usando una espátula, si es necesario. Alternadamente, el
primer polímero sintético y el segundo polímero sintético pueden ser
mezclados juntos en un recipiente de mezclado apropiado, y luego
aplicado a la primer superficie usando una espátula.
En otro método para la preparación de la mezcla
de reacción, el primer polímero sintético y el segundo polímero
sintético están contenidos en cámaras separadas de un tarro espray o
una botella con una boquilla, u otro instrumento de aspersión
apropiado. En este escenario, el primero y segundo polímeros no se
mezclan hasta que son expelidos por la boquilla del instrumento de
aspersión. Siguiendo la aplicación de la mezcla de reacción a una
superficie que contiene colágeno, la primer superficie es contactada
con una segunda superficie. Si las dos superficies son contactadas
antes de la ocurrencia del entrecruzamiento sustancial entre el
polímero sintético y el agente de entrecruzamiento, los grupos
reactivos en el agente de entrecruzamiento también serán unidos
covalentemente con los grupos amino primarios en los residuos de
lisína de las moléculas de colágeno presentes en una o ambas
superficies, proporcionando adhesión mejorada.
Las dos superficies pueden ser mantenidas juntas
manualmente, o usando otros medios apropiados, mientras la reacción
de entrecruzamiento se produce. El entrecruzamiento está completo
típicamente dentro de 5 a 60 minutos después del mezclado del primer
y segundo polímeros sintéticos. Sin embargo, el tiempo requerido
para que ocurra completamente el entrecruzamiento depende de un
número de factores, incluyendo los tipos y pesos moleculares de los
dos polímeros sintéticos y, más particularmente, las concentraciones
de los dos polímeros sintéticos (i.e., concentraciones mayores
resultan en tiempos de entrecruzamiento más rápidos).
Al menos una de la primera y segunda superficie
es preferiblemente una superficie de un tejido nativo. Como es usado
aquí, el término "tejido nativo" tiene la intención de incluir
tejidos biológicos que han sido elevados o removidos de una parte
del cuerpo de un paciente para implantación a otra parte del cuerpo
del mismo paciente (tal como autoinjertos de hueso, autoinjertos de
láminas de piel, etc.). Por ejemplo, las composiciones de la
invención pueden ser usadas para adherir una pieza de piel de una
parte del cuerpo de un paciente a otra parte del cuerpo, como en el
caso de una victima de quemaduras.
La otra superficie puede ser una superficie de
un tejido nativo, o una superficie de un tejido
no-nativo, o una superficie de un implante
sintético. Como es usado aquí, el termino "tejido
no-nativo" se refiere a tejidos biológicos que
han sido removidos del cuerpo de un paciente donante (que puede ser
de la misma especie o de diferente especie que el paciente receptor)
para implantación dentro del cuerpo de un paciente receptor (e.g.,
trasplantes de órganos y tejidos). Por ejemplo, las composiciones de
polímero entrecruzado de la presente invención pueden ser usadas
para adherir una cornea de donante al ojo de un paciente
receptor.
Como es usado aquí, el termino "implante
sintético" se refiere a cualquier material biocompatible usado
para implantación en el cuerpo de un paciente no abarcados por las
definiciones de arriba para tejido nativo y tejido
no-nativo. Los implantes sintéticos incluyen, por
ejemplo, vasos sanguíneos artificiales, válvulas del corazón,
órganos artificiales, prótesis de huesos, lenticulas implantables,
injertos vasculares, cepas, y combinaciones cepa/injertos, etc.
Debido a su claridad óptica, las composiciones
de polímero entrecruzado de la invención que no contienen colágeno
son particularmente bien apropiadas para uso en aplicaciones
oftálmicas. Por ejemplo, una lenticula sintética para corrección de
la visión puede ser pegada a la capa Bowman de la cornea del ojo de
un paciente usando los métodos de la presente invención. Como está
descrito en la aplicación US serie No. 08/147,227 del 3 de noviembre
de 1993, por Rhee et al., ahora patente US No. 5,565,519 un
colágeno modificado químicamente (tal como colágeno succinilado o
metilado) que es sustancialmente no fibrilar a un pH de 7 puede ser
entrecruzado usando un polímero hidrofílico sintético, luego
moldeado a una forma lenticular deseada y permitido el
entrecruzamiento completo. La lenticula de colágeno entrecruzado
resultante puede entonces ser pegada a la capa Bowman de la cornea
sin epitelio de un ojo de un paciente usando los métodos de la
presente invención. Mediante la aplicación de la mezcla de reacción
que comprende el primero y segundo polímero sintético a la anterior
superficie de la cornea, entonces contactando la superficie anterior
de la cornea con la superficie posterior de la lenticula antes que
haya ocurrido el entrecruzamiento sustancial, los grupos
electrofílicos en el segundo polímero sintético también se unirá
covalentemente con las moléculas de colágeno en ambos el tejido
corneal y la lenticula para anclar la lenticula en el lugar.
(Alternativamente, la mezcla de reacción puede ser aplicada primero
a la superficie posterior de la lenticula, que es entonces
contactada con la superficie anterior de la cornea).
Las composiciones de la presente invención son
también apropiadas para uso en reemplazo vítreo.
Las composiciones de polímero entrecruzado de la
invención pueden también ser usadas para el aumento de tejido blando
o duro dentro del cuerpo de un sujeto mamífero. Como tal, ellos
pueden ser mejores que los materiales basados en colágeno
corrientemente comercializados para aumento del tejido blando,
porque ellos son menos inmunogenicos y más persistentes. Ejemplos de
aumento de tejido blando incluyen esfínter (e.g., urinario, anal,
esofágico) aumento de esfínter y el tratamiento de rítidos y
cicatrices. Ejemplos de aumento de tejido duro incluye aplicaciones
para la reparación y/o el reemplazo de huesos y/o tejido
cartilaginoso.
Las composiciones de la invención son
particularmente apropiadas para uso como material de reemplazo para
el fluido sinovial en las articulaciones osteoartriticas, donde las
composiciones del polímero entrecruzado sirven para reducir el dolor
de las articulaciones y mejorar el funcionamiento de las
articulaciones mediante la restauración de la red hidrogel blanda en
la articulación. Las composiciones de polímero entrecruzado pueden
también ser usadas como material de reemplazo para los núcleos
pulposos de un disco intervertebral dañado. Como tal, el núcleo
pulposo del disco dañado es primero removido, luego es inyectada la
composición de polímero entrecruzado o de otra manera introducido en
el centro del disco. La composición puede ya sea ser entrecruzada
antes de la introducción en el disco, o permitido el
entrecruzamiento in situ.
En un método general para efectuar el aumento
del tejido dentro del cuerpo de un sujeto mamífero, el primero y el
segundo polímero sintético son inyectados simultáneamente a un sitio
de tejido con necesidad de aumentar a través de una aguja de gauge
pequeño (e.g., 25-32 gauge). Una vez dentro del
cuerpo del paciente, los grupos nucleofílicos en el primer polímero
sintético y los grupos nucleofílicos en el segundo polímero
sintético reaccionaran los unos con los otros para formar una red de
polímero entrecruzado in situ. Los grupos electrofílicos del
segundo polímero sintético pueden también reaccionar con los grupos
amino primarios en los residuos de lisína de las moléculas de
colágeno dentro del propio tejido del paciente, proporcionando
"anclaje biológico" de las composiciones con el tejido
huésped.
Otro uso de las composiciones de polímero
entrecruzado de la invención es recubrir tejidos con el propósito de
prevenir la formación de adhesiones después de una cirugía o el daño
de tejidos internos u órganos. En un método general para el
recubrimiento de tejidos para prevenir la formación de adhesiones
después de una cirugía, el primero y segundo polímeros sintéticos
son mezclados, luego es aplicada una delgada capa de la mezcla de
reacción a los tejidos que lo comprenden, alrededores, y/o
adyacentes al sitio de la cirugía antes de que haya ocurrido el
entrecruzamiento sustancial entre los grupos nucleofílicos del
primer polímero sintético y los grupos electrofílicos del segundo
polímero sintético. La aplicación de la mezcla de reacción al sitio
del tejido puede ser por extrusión, cepillado, aspersión (como está
descrito arriba), o por cualquier otro método conveniente.
Siguiendo la aplicación de la mezcla de reacción
al sitio de la cirugía, se permite la continuación del
entrecruzamiento in situ antes de cerrar la incisión
quirúrgica. Una vez el entrecruzamiento haya alcanzado el
equilibrio, los tejidos que están entrando en contacto con los
tejidos recubiertos no se pegarán a los tejidos recubiertos. En este
momento, el sitio de la cirugía puede ser cerrado usando medios
convencionales (suturas, etc.).
En general, las composiciones que logran el
entrecruzamiento completo dentro de un periodo de tiempo corto
(i.e., 5-15 minutos después de la mezcla del primer
polímero sintético y el segundo polímero sintético) son preferidas
para uso en la prevención de adhesiones quirúrgicas, así que el
sitio de la cirugía puede ser cerrado relativamente tan pronto como
se completa el procedimiento quirúrgico.
Otro uso de las composiciones de polímero
entrecruzado de la invención es como un material de recubrimiento
para implantes sintéticos. En un método general para recubrimiento
de una superficie de un implante sintético, el primero y segundo
polímeros sintéticos son mezclados, luego una capa delgada de la
mezcla de reacción es aplicada a la superficie del implante antes de
que haya ocurrido el entrecruzamiento sustancial entre los grupos
nucleofílicos en el primer polímero sintético y los grupos
electrofílicos en el segundo polímero sintético. Con el fin de
minimizar la reacción fibrosa y celular en el implante cubierto, la
mezcla de reacción es preferiblemente preparada para tener una carga
neta neutra. La aplicación de la mezcla de reacción a la superficie
del implante puede ser por extrusión, cepillado, aspersión, (como se
describe arriba), o por cualquier otro método conveniente. Después
de la aplicación de la mezcla de reacción a la superficie del
implante, se permite la continuación del entrecruzamiento hasta que
este se haya completado.
Aunque este método puede ser usado para recubrir
la superficie de cualquier tipo de implante sintético, es
particularmente útil para implantes donde la trombogenecidad
reducida es una consideración importante, tal como en vasos
sanguíneos artificiales y válvulas del corazón, injertos vasculares,
cepas vasculares, y combinaciones cepa/injerto. El método puede
también ser usado para recubrir membranas quirúrgicas implantables
(e.g. polipropileno monofilamento) o mallas (e.g., para uso en
reparación de hernias). Los implantes de senos pueden también ser
recubiertos usando el método de arriba con el fin de minimizar la
contractura capsular.
Las composiciones de la presente invención
pueden también ser usadas para recubrir lentículas, que son hechas
ya sea de polímeros de ocurrencia natural o sintética.
Las composiciones de polímero entrecruzado de la
invención pueden ser extruidas o moldeadas en forma de una cuerda o
un anillo y luego ser deshidratadas. La cuerda o anillo deshidratado
resultante puede ser administrado vía un catéter al sitio de una
malformación vascular; tal como un aneurisma, para el propósito de
oclusión vascular y, finalmente, reparar la malformación. La cuerda
o el anillo deshidratado puede ser administrado en un tamaño
compacto y será rehidratdo dentro del vaso sanguíneo, hinchándose
varias veces en tamaño comparado a su estado deshidratado, mientras
mantiene su forma original.
Como se discute en la aplicación comúnmente
asignada serie No. 08/574,050 del 18 de diciembre de 1995, ahora
patente US No. 5,752,974 de Rhee et al., las composiciones de
polímero entrecruzado de la invención se pueden usar para bloquear o
llenar varios vacíos y huecos en el cuerpo de un mamífero. Las
composiciones también se pueden usar como
bio-sellantes para sellar fisuras o grietas dentro
de un tejido o estructura (tal como un vaso), o coyunturas entre
tejidos adyacentes o estructuras, para prevenir filtraciones de
sangre u otros fluidos biológicos.
Las composiciones de polímero entrecruzado
pueden también ser usadas como un mecanismo de relleno de espacios
grandes para el desplazamiento de un órgano en una cavidad del
cuerpo durante procedimientos quirúrgicos o de radiación, por
ejemplo, para proteger los intestinos durante el curso planeado de
una radiación de la pelvis.
Las composiciones de polímero entrecruzado de la
invención pueden también ser recubiertas en la superficie interior
de un vacío fisiológico, tal como un vaso sanguíneo o el tubo de
Falopio, por lo tanto sirviendo como un sellante para prevenir la
restenosis del vacío seguido el tratamiento medico, tal como, por
ejemplo, cateterizacion de balón para remover depósitos de placa
arterial de la superficie interior de un vaso sanguíneo, o la
remoción de un tejido de cicatriz o un tejido endometrial del vaso
(por ejemplo, vía catéter) inmediatamente seguido después del
mezclado del primer y segundo polímeros sintéticos. Puesto que las
composiciones de la invención no son fácilmente degradables in
vivo, el potencial para la restenosis debido a la degradación
del recubrimiento es minimizada. El uso de composiciones de polímero
entrecruzado que tienen una carga neutra neta además minimizan el
potencial por restenosis.
Los siguientes ejemplos son expuestos para
proporcionar a aquellos de habilidades ordinarias en el arte con una
completa revelación y descripción de cómo hacen para funcionar las
modalidades preferidas de los conjugados, composiciones, e
instrumentos y no tienen la intención de limitar el alcance que los
inventores han logrado con su invención. Esfuerzos han sido
realizados para asegurar seguridad con respecto a los números usados
(e.g., cantidades, temperaturas, pesos moleculares, etc.) pero
algunos errores y desviaciones experimentales deberían tomarse en
cuenta. Solo si es indicado de otra manera, partes son partes en
peso, peso molecular es peso molecular promedio, la temperatura es
en grados centígrados, y la presión es o está cerca de la
atmosférica.
Ejemplo
1
0.15 gramos de di-amino PEG
(3400 MW obtenido de Nektar Therapeutics San Carlos: C.A) en 250
\mul de agua fue mezclado con 0.1 g de SC-PEG
trifuncionalmente activado (5000 MW también obtenido de Shearwater
Polymers) usando mezclado
jeringa-a-jeringa. La mezcla de
reacción fue extruida sobre un disco de petri y se formó un gel
blando a temperatura ambiente.
0.15 gramos de di-amino PEG en
250 \mul de agua fue mezclado con 0.1 gramos de
SE-PEG tetrafuncionalmente activado (también de
Shearwater Polymers) usando mezclado
jeringa-a-jeringa. La mezcla de
reacción fue extruida sobre un disco de petri y formado un gel
blando a temperatura ambiente.
Ejemplo
2
Las siguientes soluciones stock de varios
di-amino PEGs fueron preparadas:
- Diez (10) gramos de Jeffamine ED-2001 (obtenida de Texaco Chemical Company, Houston, TX) fueron disueltos en 9 ml de agua.
- Diez (10) gramos de Jeffamine ED-4000 (también obtenida de Texaco Chemical Company, Houston, TX) fueron disueltos en 9 ml de agua.
- 0.1 gramos de di-amino PEG (3400 MW, obtenido de Shearwater Polymers, Huntsville, AL) fueron disueltos en 300 \mul de agua.
Cada una de las tres soluciones
di-amino PEG preparadas arriba fueron mezcladas con
soluciones acuosas de SC-PEG trifuncionalmente
activados (TSC-PEG, 5000 MW, también obtenido de
Shearwater Polymers) como es expuesto en la tabla 1, abajo
\vskip1.000000\baselineskip
Di-amino PEG | TSC-PEG + solvente acuoso | ||
50 \mul | 0 mg + 50 \mul de agua | ||
50 \mul | 10 mg + 50 \mul de PBS | ||
50 \mul | 10 mg + 100 \mul de PBS | ||
250 \mul | 50 mg + 500 \mul de PBS |
Las soluciones de di-amino PEG y
TSC-PEG fueron mezcladas usando el mezclado
jeringa-a-jeringa. Cada uno de los
materiales fue extruido de la jeringa y permitido un tiempo de 1
hora a 37ºC. Cada uno de los materiales formó un gel. En general,
comienzan a ablandarse con el incremento del contenido de agua; los
geles que contenían la menor cantidad de solvente acuoso (agua o
PBS) fueron más firmes.
Ejemplo
3
Cincuenta (50) miligramos de
tetra-amino PEG (10,000 MW obtenido de Nektar
Therapeutics, San Carlos, CA) en 0.5 ml de PBS fue mezclado, usando
mezclado jeringa-a-jeringa, con 50
ml de SE-PEG tetrafuncionalmente activado ("tetra
SEPEG", 10,000 MW también obtenido de Nektar Therapeutics) en 0.5
ml de PBS o SC-PEG trifuncionalmente activado
("tri SC-PEG", 5000 MW también obtenido de
Nektar Therapeutics) en 0.5 ml de PBS.
Jeringas conteniendo cada una de las dos mezclas
fueron incubadas a 37ºC por aproximadamente 16 horas. Ambas
composiciones formaron geles elásticos. Los geles fueron expelidos
de las jeringas y cortados en forma de discos de 5-6
mm de grosor con un diámetro de 5 mm, para ser usados en las pruebas
de compresión e hinchabilidad, como es descrito abajo.
La fuerza de compresión versus el desplazamiento
para los dos geles fue medida en el Probador Universal Instron,
modelo 4202, a un ritmo de compresión de 2 mm por minuto, usando
discos de los dos geles preparados como es descrito abajo. La fuerza
de compresión (en Newtons) versus el desplazamiento del gel (en
milímetros) se muestra en las figuras 1 y 2 para geles preparados
usando el tetra SE-PEG y el tri
SC-PEG, respectivamente.
Bajo fuerzas de compresión tan altas como
30-35 Newtons, los geles no se rompen, pero
permanecen elásticos.
Discos de cada uno de los dos geles, preparados
como es descrito arriba, fueron pesados y las dimensiones (diámetro
y longitud) medidos. Los discos fueron entonces inmersos en PBS e
incubados a 37ºC. Después de 3 días de incubación, los discos fueron
removidos del PBS, pesados, y medidos. Los resultados de las pruebas
de hinchabilidad se muestran en la tabla 2, abajo.
Agente de entrecruzamiento | Peso del gel (en gramos) | Dimensiones (en mm) | ||
(diámetro/grosor) | ||||
Antes del | Después del | Antes del | Después del | |
hinchamiento | hinchamiento | hinchamiento | hinchamiento | |
Tetra SE-PEG | 0.116 | 0.310 | 5.0/5.0 | 7.1/8.1 |
Tri SC-PEG | 0.131 | 0.287 | 5.0/6.0 | 6.4/8.5 |
Como se muestra arriba, los geles se hincharon 2
a tres veces en peso, como también se hincharon un promedio de cerca
de 50% en diámetro y en grosor.
Ejemplo
4
Diez (10) miligramos de
poli-L-lisína hidrobromuro (8,000
MW, obtenida de Peninsula Laboratories, Belmont, CA) en 0.1 ml de
buffer fosfato (0.2 M, pH = 6.6) fueron mezclados con 10 mg de
SE-PEG tetrafuncionalmente activado (10,000 MW,
obtenido de Nektar Therapeutics, San Carlos, CA) en 0.1 ml de PBS.
La composición formo un gel casi inmediatamente.
Ejemplo
5
Geles que comprenden tetra-amino
PEG (10,000 MW obtenido de Nektar Therapeutics, San Carlos, CA) y
1-4% en peso de SE-PEG
tetrafuncionalmente activado ("tetra SE-PEG",
10,000 MW, también obtenido de Nektar Therapeutics, San Carlos, CA)
fueron preparados mezclando el tetra-amino PEG (a
una concentración de 25 mg/ml en agua) con el tetra
SE-PEG (en PBS) en un disco de petri. La mezcla
resultante de tetra-amino PEG/SE-PEG
resultante fue incubada por 16 horas a 37ºC.
La mezcla que contenía 1% de
SE-PEG no formó un gel debido a la baja
concentración de SE-PEG. La mezcla que contenía un
2% de SE-PEG formó un gel en algún momento durante
las 16 horas del periodo de incubación. Las mezclas que contenían 3
y 4% de SE-PEG formaron geles con aproximadamente
4-6 minutos de mezclado. El gel que contenía un 2%
de SE-PEG fue fácilmente extruible a través de una
aguja de 30 gauge; el gel que contenía un 3% de
SE-PEG puede ser extruido a través de una aguja de
27 gauge.
El efecto de la elevada temperatura sobre la
formación del gel fue evaluado. Los geles que comprenden
tetra-amino PEG y 2.5% en peso de tetra
SE-PEG fueron preparados e incubados a temperaturas
de 37 y 40-50ºC. Se halló que la elevada temperatura
tiene un marcado efecto sobre el tiempo de gelificación: la mezcla
tetra-amino PEG/SE-PEG incubada a
37ºC formó un gel dentro de aproximadamente 20-25
minutos, mientras que las mezclas incubadas a
40-50ºC formaron geles dentro de aproximadamente 5
minutos. Ambos geles fueron extruibles a través de una aguja de 27
gauge.
El efecto del pH sobre la formación del gel
fue evaluado. Los geles que comprenden tetra-amino
PEG y 2.5% en peso de tetra SE-PEG fueron preparados
como se expone en la tabla 3. Abajo.
pH del tetra-amino | pH del tetra | pH de la mezcla | Tiempo de | Temperatura de |
PEG | SE-PEG | resultante | gelificación | gelificación |
10 | 4.1 | 6.9 | 10-15 minutos | 45ºC |
10 | 7.0 | 7.2 | < 5 minutos | 45ºC |
La extrudibilidad a través de una aguja de 27
gauge fue evaluada para geles que comprenden
tetra-amino PEG y 1-3% en peso de
tetra SE-PEG. Los geles fueron contenidos dentro de
jeringas de 1-cc. La fuerza requerida para comprimir
el émbolo de la jeringa a un ritmo de 5 centímetros por minuto fue
medido usando el probador Universal Instron modelo 4202. Los
resultados de la prueba de extrusión son presentados en la tabla 4,
abajo.
Concentración de SE-PEG (en peso) | Fuerza de extrusión (N) |
1.5-2% | 10-11 |
2-2.5% | 52 |
2.5-3% | 88 |
Las fuerzas de extrusión de 100 N o menores son
consideradas aceptables para inyección manual con la ayuda de un
instrumento jeringa.
La resistencia a la tensión (i.e. elasticidad)
de geles de 3 mm de grosor que comprenden
tetra-amino PEG y 2.5, 5, y 10% en peso de tetra
SE-PEG fueron medidas usando el probador Universal
Instron modelo 4202. Los geles de longitudes iniciales variables
fueron estirados a un ritmo de 10 milímetros por minuto. La longitud
de cada gel, tensionado hasta fallar (cambio en longitud como un
porcentaje de longitud inicial), y la fuerza al fallar son mostradas
en la tabla 5, abajo.
Concentración SE-PEG | Longitud inicial | Tensión en la falla | Fuerza en la falla |
(% en peso) | (cm) | (N) | |
10 | 1.4 | 139% | 0.4 |
10 | 1.9 | 99% | 0.5 |
10 | 2.5 | 78% | 0.5 |
5 | 1.3 | 111% | 0.2 |
5 | 1.3 | 99% | 0.2 |
5 | 1.6 | 94% | 0.2 |
2.5 | 1.0 | 237% | <0.1 |
2.5 | 1.5 | 187% | <0.1 |
2.5 | 1.7 | 129% | <0.1 |
Los geles que contenían 5% y 10% de tetra
SE-PEG aproximadamente doblaron su longitud inicial
antes de romperse. Los geles que contenían un 2.5% de
SE-PEG aproximadamente triplicaron su longitud
inicial antes del rompimiento, pero fueron considerablemente más
débiles (i.e., menor fuerza en la falla) que los geles más altamente
entrecruzados.
Ejemplo
6
Geles que comprenden varias concentraciones de
tetra-amino PEG y tetra SE-PEG a pH
de 6, 7, y 8 fueron preparadas en discos de petri. Después del
mezclado del tetra-amino PEG y del tetra
SE-PEG, los discos fueron inclinados repetidamente;
el tiempo de gelificación fue considerado ser el punto al que la
formulación dejo de fluir. El efecto del pH sobre el tiempo de
gelificación de las varias formulaciones de
tetra-amino PEG/tetra SE-PEG a
temperatura ambiente se muestran en la tabla 6 abajo.
Concentración Tetra-amino | Concentración Tetra | pH | Tiempo de gelificación |
PEG (mg/ml) | SE-PEG (mg/ml) | ||
20 | 20 | 6 | > 90.0 min |
20 | 20 | 7 | 20.0 min |
20 | 20 | 8 | 1.4 min |
50 | 50 | 6 | 24.0 min |
50 | 50 | 7 | 3.5 min |
50 | 50 | 8 | 10.0 seg |
100 | 100 | 6 | 9.0 min |
100 | 100 | 7 | 47.0 seg |
100 | 100 | 8 | 10.0 seg |
200 | 200 | 6 | 2.0 min |
200 | 200 | 7 | 9.0 seg |
200 | 200 | 8 | 5.0 seg |
El tiempo requerido para la formación de gel
disminuyó con el incremento del pH y el incremento de las
concentraciones de tetra-amino PEG y tetra
SE-PEG.
Ejemplo
7
Treinta (30) miligramos de
tetra-amino PEG (10,000 MW, obtenido de Nektar
Therapeutics, San Carlos, CA) fue disuelto en 0.6 ml de PBS, luego
filtrado en ambiente estéril. Treinta (30) miligramos de
SE-PEG tetrafuncionalmente activado ("tetra
SE-PEG", 10,000 MW, también obtenido de
Shearwater Polymers) fue disuelto en 0.6 ml de PBS, luego filtrado
esterilmente.
Las soluciones de tetra-amino
PEG y tetra SE-PEG fueron mezcladas juntas con un
pellet que contenía células de fibroblasto de piel humana
("HSF") (CRL # 1885, pasaje 4, obtenido de American Tissue Type
Culture Collection, Manassas, VA). Doscientos cincuenta (250)
microlitros de la célula resultante que contiene la solución
tetra-amino PEG/tetra SE-PEG
(PEG-PEG) fue dispensada en cada una de las dos
pozos en una placa de cultivo de 48 pozos y permitida la formación
de gel por aproximadamente 5 minutos a temperatura ambiente. Un (1)
mililitro de Medio Eagle modificado Dulbecco (suplementado con 10%
de suero bovino fetal, L-glutamina,
penicilina-estreptomicina, y amino ácidos no
esenciales) fueron adicionados a cada uno de los dos pozos. La
concentración de células fue aproximadamente 3 x 10^{5} células
por mililitro de solución de tetra-amino PEG/tetra
SE-PEG, o 7.5 x 10^{5} células por pozo.
Para preparar un control, un pellet de células
HSF fue suspendido en 1.2 ml de medio completo. Doscientos cincuenta
(250) microlitros de la mezcla control fue dispensada dentro de tres
pozos de la misma placa de cultivo de 48 pozos como se usó arriba.
Cada pozo se estimó contiene aproximadamente 7.5 x 10^{5} células.
A cada pozo se le suministró medio fresco cada día.
Inicialmente, los geles con células que
contenían tetra-amino PEG/tetra
SE-PEG estaban claros y las células se encontró
estaban densamente pobladas y con morfología esferoidal, indicando
esto que había poca adhesión entre las células y el gel PEG/PEG (las
células normalmente asumirían una morfología en forma de huso,
aplanadas cuando se adhieren al sustrato, tal como al plástico
tratado de las placas de cultivo de tejido). Después de tres días de
incubación a 37ºC, el medio en los pozos que contenían geles PEG/PEG
se halló tenían color aclarado (el medio de Eagle modificado
Dulbecco es normalmente rojo en color), indicando un cambio en el pH
del medio. Esto indicó que las células estaban vivas y
alimentándose. A los 7 días de incubación a 37ºC, las células
todavía eran esferoidales en morfología (indicando carencia de
adhesión al gel) y el medio se ha aclarado aun más, indicando que
las células aun eran viables y continuaban alimentándose.
En el día 7, los contenidos de cada pozo fueron
colocados en una solución de formalina al 10% para evaluación
histológica. De acuerdo a la evaluación histológica, un estimado del
75% de las células en los pozos que contenían geles PEG/PEG parecían
estar vivas, pero no parecen estar reproduciéndose.
Los resultados del experimento indican que las
células HSF son viables en los geles entrecruzados
tetra-amino PEG/tetra SE-PEG, pero
no muestran adherencia al gel y no parece que se reproduzcan
mientras están atrapadas dentro de la matriz del gel. Como es
descrito arriba, la adherencia o no adherencia de las células a un
material sustrato puede influenciar la morfología de las células. En
ciertos tipos de células, la morfología celular puede, de turno,
influenciar ciertas funciones celulares. Por lo tanto, la no
adherencia de las células a la matriz de gel PEG-PEG
puede ser una ventaja en la administración de tipos de células
particulares en donde la función es influenciada por la morfología
celular. Por ejemplo, la habilidad de las células de cartílago para
producir materiales de matriz extracelular es influenciado por la
morfología celular: cuando las células están en la configuración
esferoidal, la reproducción para, y las células comienzan a producir
componentes de matriz extracelular.
Puesto que los geles PEG-PEG no
son fácilmente degradados in vivo, los geles pueden ser
particularmente útiles en aplicaciones de administración celular en
donde es deseable que las células permanezcan atrapadas dentro de la
matriz por periodos extendidos de tiempo.
Claims (79)
1. Una composición que comprende un primer
polímero sintético que tiene grupos nucleofílicos, y un segundo
polímero sintético que tiene grupos electrofílicos; en donde dichos
grupos nucleofílicos y dichos grupos electrofílicos son capaces de
reaccionar para formar enlaces covalentes entre el primer polímero
sintético y el segundo polímero sintético que resulta en la
formación de una matriz tridimensional;
en donde cada polímero sintético tiene un
esqueleto de alquilen óxido.
2. La composición de la reivindicación 1, en
donde el esqueleto de alquilen óxido es seleccionado del grupo que
consiste de óxido de etilen (-CH_{2}CH_{2}O-), óxido de
propileno (-CH_{2} (CH_{3})CH_{2}O-), y mezclas de
ellos.
3. La composición de la reivindicación 1, en
donde dicho primer polímero sintético tiene m grupos nucleofílicos,
y dicho segundo polímero sintético tiene n grupos electrofílicos, en
donde m y n son cada uno mayores o iguales a 2, y en donde m+n es
mayor o igual que 5.
4. La composición de la reivindicación 3, en
donde m es mayor o igual que dos, y n = 2.
5. La composición de la reivindicación 3, en
donde m = 2, y n es mayor o igual que dos.
6. La composición de la reivindicación 3, en
donde m y n son cada uno mayores o iguales que tres.
7. La composición de la reivindicación 1, en
donde el primer polímero sintético es un polietilen glicol que ha
sido modificado para contener dos o más grupos nucleofílicos
seleccionados de un grupo amino primario y un grupo
tiol.
tiol.
8. La composición de la reivindicación 1, en
donde el segundo polímero sintético es un polímero hidrofílico
sintético que contiene dos o más grupos electrofílicos.
9. La composición de la reivindicación 8, en
donde el polímero hidrofílico sintético contiene dos o más grupos
succinimidil.
10. La composición de la reivindicación 8, en
donde el polímero hidrofílico sintético es un derivado del
polietilen glicol.
11. La composición de la reivindicación 1, que
comprende además un polisacárido o una proteína.
12. La composición de la reivindicación 11, en
donde el polisacárido es un glicosaminglicano.
13. La composición de la reivindicación 12, en
donde el glicosaminglicano es seleccionado del grupo que consiste
de: ácido hialuronico, quitina, condroitina sulfato A, condroitina
sulfato B, condroitina sulfato C, queratin sulfato, queratosulfato,
heparina, y derivados de ellos.
14. La composición de la reivindicación 11, en
donde la proteína es colágeno o un derivado de el.
15. La composición de la reivindicación 1, en
donde los grupos nucleofílicos están acoplados al esqueleto de
alquilen óxido del primer polímero sintético vía un grupo de
unión.
16. La composición de la reivindicación 1, en
donde los grupos electrofílicos están acoplados al esqueleto de
alquilen óxido del segundo polímero sintético vía un grupo de
unión.
17. La composición de las reivindicaciones 15 o
16, en donde el grupo de unión es independientemente seleccionado
del grupo que consiste de -O-(CH_{2})_{n}-,
-S-(CH_{2})_{n}-, -NH-(CH_{2})_{n}-,
-O_{2}C-NH-(CH_{2})_{n}-,
-O_{2}C-(CH_{2})_{n}-,
-O_{2}C-CR^{1}H-, y
-O-R^{2}-CO-NH-,
en donde n =1-10, R^{1} = H, CH_{3},
C_{2}H_{5}, y R^{2} = CH_{2} o
CO-NH-CH_{2}CH_{2}.
18. La composición de la reivindicación 15,
además de comprender un grupo adicional insertado entre el primer
polímero sintético y el grupo de unión, en donde el grupo adicional
es seleccionado del grupo que consiste de lactido, glicolido,
\varepsilon-caprolactona, poli(ácido
\alpha-hidroxi), poli(amino ácidos),
poli(anhídrido), dipeptidos, y tripeptidos.
19. La composición de la reivindicación 16,
además de comprender un grupo adicional insertado entre el segundo
polímero sintético y el grupo de unión, en donde el grupo adicional
es seleccionado del grupo que consiste de lactido, glicolido,
\varepsilon-caprolactona, poli(ácido
\alpha-hidroxi), poli(amino ácidos),
poli(anhídrido), dipeptidos, y tripeptidos.
20. Una composición que comprende un primer
polietilen glicol que tiene grupos amino primarios, y un segundo
polietilen glicol que tiene grupos succinimidil.
\newpage
21. La composición de la reivindicación 20, en
donde dicho primer polietilen glicol tiene m grupos amino
primarios, y dicho segundo polietilen glicol tiene n grupos
succinimidil, en donde m y n son cada uno mayores o iguales que dos,
y en donde m+n es mayor o igual que 5.
22. La composición de la reivindicación 21, en
donde m es mayor que 3, y n = 2.
23. La composición de la reivindicación 21, en
donde m = 2 y n es mayor o igual que 3.
24. La composición de la reivindicación 21, en
donde m y n son mayores que o iguales que
25. La composición de la reivindicación 20,
además comprende un polisacárido de ocurrencia natural o una
proteína de ocurrencia natural.
26. La composición de la reivindicación 25, en
donde el polisacárido de ocurrencia natural es un
glicosaminoglicano.
27. La composición de la reivindicación 26, en
donde el glicosaminoglicano es seleccionado del siguiente grupo:
ácido hialuronico, quitina, condroitin sulfato A, condroitin sulfato
B, condroitin sulfato C, queratin sulfato, queratosulfato, heparina
y derivados de ellos.
28. La composición de la reivindicación 25, en
donde la proteína de ocurrencia natural es colágeno o un derivado
del colágeno.
29. La composición de la reivindicación 20, en
donde el primer polietilen glicol es multi-amino
PEG.
30. La composición de la reivindicación 20, en
donde el segundo polietilen glicol tiene la siguiente
estructura:
31. La composición de las reivindicaciones 29 y
30, en donde la reacción del multi-amino PEG y el
segundo polietilen glicol producen una molécula con la siguiente
estructura:
32. La composición de la reivindicación 20, en
donde el polietilen glicol tiene la siguiente estructura:
33. La composición de la reivindicación 20, en
donde el segundo polietilen glicol tiene la siguiente
estructura:
\newpage
34. La composición de la reivindicación 20, en
donde el segundo polietilen glicol tiene la siguiente
estructura:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
35. La composición de la reivindicación 20, en
donde el segundo polietilen glicol tiene la siguiente
estructura:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
36. La composición de la reivindicación 20, en
donde el segundo polietilen glicol tiene la siguiente
estructura:
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
37. La composición de la reivindicación 1, en
donde el segundo polietilen glicol sintético tiene la siguiente
estructura:
38. La composición de la reivindicación 1, en
donde el segundo polietilen glicol sintético tiene la siguiente
estructura:
\newpage
39. La composición de la reivindicación 1, en
donde el segundo polietilen glicol sintético tiene la siguiente
estructura:
40. La composición de la reivindicación 1, en
donde el segundo polietilen glicol sintético tiene la siguiente
estructura:
41. La composición de la reivindicación 20, en
donde el grupo amino primario está acoplado al primer polietilen
glicol vía un grupo de unión.
42. La composición de la reivindicación 20, en
donde el grupo succinimidil está acoplado al segundo polietilen
glicol vía un grupo de unión.
43. La composición de la reivindicación 41 o 42,
en donde el grupo de unión es independientemente seleccionado del
grupo que consiste de -O-(CH_{2})_{n}-,
-S-(CH_{2})_{n}-, NH-(CH_{2})_{n}-,
-O_{2}C-NH-(CH_{2})_{n}-,
-O_{2}C-(CH_{2})_{n}-,
-O_{2}C-CR^{1}H-, y
-O-R^{2}-CO-NH-,
en donde n = 1-10, R^{1} = H, CH_{3},
C_{2}H_{5} y R^{2} = CH_{2} o
CO-NH-CH_{2}CH_{2}.
44. La composición de la reivindicación 41,
además comprende un grupo adicional insertado entre el primer
polietilen glicol y el grupo de unión, en donde el grupo adicional
es seleccionado del grupo que consiste de lactido, glicolido,
\varepsilon-caprolactona, poli(ácido
\alpha-hidroxi), poli(amino ácidos),
poli(anhídrido), dipeptidos, y tripeptidos.
45. La composición de la reivindicación 42,
además comprende un grupo adicional insertado entre el segundo
polietilen glicol y el grupo de unión, en donde el grupo adicional
es seleccionado del grupo que consiste de lactido, glicolido,
\varepsilon-caprolactona, poli(ácido
\alpha-hidroxi), poli(amino ácidos),
poli(anhídrido), dipeptidos, y tripeptidos.
46. Un método para la preparación de una matriz
que contiene un compuesto cargado negativamente útil para la
administración de un compuesto cargado negativamente a un mamífero,
que comprende los pasos de:
- provisión de un primer polímero sintético que contiene grupos nucleofílicos y que tiene un esqueleto de alquilen óxido y un segundo polímero sintético que contiene grupos electrofílicos y que tiene un esqueleto de alquilen óxido,
- formación de una mezcla mediante el mezclado del primer polímero sintético y del segundo polímero sintético para iniciar el entrecruzamiento, en donde el primer polímero sintético está presente en la mezcla en exceso molar comparado al segundo polímero sintético;
- permitir que el primer polímero sintético y el segundo polímero sintético continúen el entrecruzamiento para formar una matriz sintética entrecruzada cargada positivamente; y
- reacción de la matriz con el compuesto cargado negativamente.
47. El método de la reivindicación 46, en donde
dicho primer polímero sintético tiene m grupos nucleofílicos y
dicho segundo polímero sintético tiene n grupos electrofílicos, en
donde m y n son cada uno mayores o iguales que 2, y en donde m+n es
mayor o igual que 5.
48. El método de la reivindicación 46, en donde
el primer polímero sintético es un polietilen glicol, y en donde
los grupos nucleofílicos son seleccionados del grupo amino primario
y un grupo tiol.
\newpage
49. El método de la reivindicación 46, en donde
el segundo polímero sintético es un derivado del polietilen glicol,
y en donde los grupos electrofílicos son grupos succinimidil.
50. El método de la reivindicación 46, en donde
el compuesto cargado negativamente es colágeno succinilatado.
51. El método de la reivindicación 46, en donde
el compuesto cargado negativamente es un derivado del
glicosaminoglicano cargado negativamente seleccionado del grupo que
consiste de: sodio hialuronato, queratan sulfato, queratosulfato,
sodio condroitin sulfato A, sodio dermatan sulfato B, sodio
condroitin sulfato C, heparina, condroitin sulfato C esterificado,
heparina esterificada, y combinaciones de ellos.
52. Un método para la preparación de una matriz
que contiene un compuesto cargado positivamente útil para la
administración de un compuesto cargado positivamente a un mamífero,
que comprende los pasos de:
- suministro un primer polímero sintético que contiene grupos nucleofílicos y que tiene un esqueleto de alquilen óxido y un segundo polímero sintético que contiene grupos electrofílicos y que tiene un esqueleto de alquilen óxido.
- formación de una mezcla mediante mezclado del primer polímero sintético y el segundo polímero sintético para iniciar el entrecruzamiento, en donde el segundo polímero sintético está presente en la mezcla en exceso molar comparado al primer polímero sintético,
- permitir al primer polímero sintético y al segundo polímero sintético continuar el entrecruzamiento para formar una matriz de polímero sintético entrecruzado cargado negativamente; y
- reacción de la matriz con el compuesto cargado positivamente.
53. El método de la reivindicación 52, en donde
el electrofílico dicho primer polímero sintético tiene m grupos
nucleofílicos y dicho segundo polímero sintético tiene n grupos
electrofílicos, en donde m y n son cada uno mayor o igual que 2, y
en donde m+n es mayor o igual que 5.
54. El método de la reivindicación 52, en donde
el primer polímero sintético es un polietilen glicol, y en donde
los grupos nucleofílicos son seleccionados de un grupo amino
primario y un grupo tiol.
55. El método de la reivindicación 52, en donde
el segundo polímero sintético es un polietilen glicol, y en donde
los grupos electrofílicos son grupos succinimidil.
56. El método de la reivindicación 52, en donde
el compuesto cargado positivamente es colágeno metilado.
57. El método de la reivindicación 52, en donde
el compuesto cargado positivamente es un derivado glicosaminoglicano
seleccionado del grupo que consiste de: ácido hialuronico
desacetilado esterificado, condroitina sulfato A desulfatada
desacetilada esterificada, condroitina sulfato C desulfatada
desacetilada esterificada, condroitina sulfato A desulfatada
desacetilada esterificada,, queratin sulfato desulfatado
desacetilado, queratosulfato desulfatado desacetilado, heparina
desulfatada esterificada, quitosano, y combinaciones de ellos.
58. Un método para hacer una lenticula
sintética, que comprende los pasos de
- suministro de un primer polímero sintético que contiene grupos nucleofílicos y que tiene un esqueleto de alquilen óxido y un segundo polímero sintético que contiene grupos electrofílicos y que tiene un esqueleto de alquilen óxido,
- formación de una mezcla mediante el mezclado del primer polímero sintético y el segundo polímero sintético para iniciar el entrecruzamiento; colocando dicha mezcla dentro de un molde de forma lenticular o sobre una superficie de un ojo; y
- permitir al primer polímero sintético y al segundo polímero sintético continuar el entrecruzamiento para formar una lenticula clara.
59. El método de la reivindicación 58, en donde
dicho primer polímero sintético tiene m grupos nucleofílicos y
dicho segundo polímero sintético tiene n grupos electrofílicos, en
donde m y n son cada uno mayor o igual que 2, y en donde m+n es
mayor o igual que 5.
60. El método de la reivindicación 58, en donde
el primer polímero sintético es un polietilen glicol, y en donde
los grupos nucleofílicos son seleccionados de un grupo amino
primario y un grupo tiol.
61. El método de la reivindicación 58, en donde
el segundo polímero sintético es un derivado del polietilen glicol,
y en donde los grupos electrofílicos son grupos succinimidil.
62. El método de la reivindicación 58, además
comprende una proteína.
63. El método de la reivindicación 58, en donde
dicha proteína es colágeno o un derivado del colágeno.
64. Una composición de acuerdo a cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 45 para uso en el método de prevenir las
adhesiones seguidas después de una cirugía o un daño.
65. Una composición de acuerdo a cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 45 para uso como un
bio-sellante.
66. Una jeringa de compartimento doble en donde
un compartimento contiene un primer polímero sintético que tiene
grupos nucleofílicos como es relatado en cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 45 y el segundo compartimento contiene un
segundo polímero sintético que tiene grupos electrofílicos como es
definido en cualquiera de las reivindicaciones 1 a 54.
67. Un primer polímero sintético que tiene
grupos nucleofílicos como es descrito en cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 54 y un segundo polímero sintético que tiene
grupos electrofílicos como es descrito en cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 54 para uso simultaneo en un método para la
introducción de una composición de polímero entrecruzado dentro de
un tejido dentro del cuerpo de un sujeto mamífero, dichos grupos
nucleofílicos y electrofílicos siendo capaces de reaccionar para
formar enlaces covalentes entre el primer polímero sintético y el
segundo polímero sintético para formar una matriz
tri-dimensional.
68. El uso de la composición de cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 45 para la fabricación de un medicamento
para uso en un método para efectuar pegado no quirúrgico de una
primer superficie a una segunda superficie, que comprende los pasos
de:
- suministro del primer polímero sintético que contiene grupos nucleofílicos y el segundo polímero sintético que contiene grupos electrofílicos;
- mezclado del primer polímero sintético y el segundo polímero sintético para iniciar el entrecruzamiento; aplicando la mezcla a una primer superficie antes de que haya ocurrido un entrecruzamiento sustancial; y
- contacto de la primer superficie con una segunda superficie para efectuar adhesión entre la primer superficie y la segunda superficie.
69. El uso de la reivindicación 68, en donde una
de las dos superficies es una superficie de un tejido nativo y la
otra de las superficies es seleccionada de una superficie de tejido
no-nativo y una superficie de un implante
sintético.
70. El uso de la reivindicación 68, en donde
ambas la primer y segunda superficie son superficies de tejido
nativo.
71. El uso de la composición de cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 45 para la fabricación de un medicamento
para el uso en un método para la introducción de una composición de
polímero sintético entrecruzado dentro de un tejido dentro de un
cuerpo de un sujeto mamífero, que comprende los pasos de:
- suministro del primer polímero sintético que contiene grupos nucleofílicos y el segundo polímero sintético que contiene grupos electrofílicos;
- administración del primer polímero sintético y el segundo polímero sintético simultáneamente al tejido; y
- permitir al primer polímero sintético y al segundo polímero sintético que se entrecrucen in situ.
72. El uso de la reivindicación 71, en donde el
tejido es un tejido blando.
73. El uso de la reivindicación 71, en donde el
tejido es un tejido duro.
74. El uso de cualquiera de las reivindicaciones
71 a 73, en donde el primer polímero sintético y el segundo
polímero sintético están contenidos dentro de cilindros separados y
administrados desde una jeringa de doble compartimento.
75. El uso de la reivindicación 80, que
comprende el paso adicional de la formación de una mezcla mediante
el mezclado del primer polímero sintético y el segundo polímero
sintético antes de la administración, en donde la mezcla es
administrada dentro de los 60 segundos de mezclado.
76. El uso de la composición de cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 45 para la fabricación de un medicamento
para uso en un método para la prevención de la adhesión de un primer
tejido y un segundo tejido, que comprende los pasos de:
- suministro de un primer polímero sintético que contiene grupos nucleofílicos y un segundo polímero sintético que contiene grupos electrofílicos;
- formación de una mezcla mediante el mezclado del primer polímero sintético y el segundo polímero sintético para iniciar el entrecruzamiento;
- aplicación de la mezcla a la primer superficie antes de que haya ocurrido el entrecruzamiento sustancial; y
- permitir al primer polímero sintético y al segundo polímero sintético continuar el entrecruzamiento in situ.
77. El uso de la composición de cualquiera de
las reivindicaciones 1 a 45 para la fabricación de un medicamento
para uso en un método para recubrimiento de una superficie de un
implante sintético, que comprende los pasos de:
- suministro del primer polímero sintético que contiene grupos nucleofílicos y del segundo polímero sintético que contiene grupos electrofílicos;
- formación de una mezcla mediante el mezclado del primer polímero sintético y el segundo polímero sintético para iniciar el entrecruzamiento;
- aplicación de la mezcla a una superficie de un implante sintético; y
- permitir al primer polímero sintético y al segundo polímero sintético que se entrecrucen el uno con el otro sobre la superficie del implante sintético.
78. El uso de la reivindicación 77, en donde el
implante sintético es seleccionado del grupo que consiste de: vasos
sanguíneos artificiales, válvulas del corazón artificiales, injertos
vasculares, cepas vasculares, combinaciones cepa/injerto, membranas
quirúrgicas, mallas quirúrgicas, e implantes de senos.
79. El uso de la reivindicación 77, en donde la
mezcla tiene una carga neutra neta.
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