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TWI586419B - 分離發酵液成分之方法 - Google Patents

分離發酵液成分之方法 Download PDF

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TWI586419B
TWI586419B TW104139054A TW104139054A TWI586419B TW I586419 B TWI586419 B TW I586419B TW 104139054 A TW104139054 A TW 104139054A TW 104139054 A TW104139054 A TW 104139054A TW I586419 B TWI586419 B TW I586419B
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bdo
evaporator
salt
water
fermentation broth
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沃倫 克拉克
麥可 傑佩斯
馬克Ｊ 柏克
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奇諾麥提卡公司
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Description

分離發酵液成分之方法
本發明概言之係關於發酵液成分之分離，且更具體而言係關於沸點高於水之水可混溶性化合物與其他發酵液成分之分離。
本申請案主張2009年6月4日提出申請之美國臨時申請案第61/184,292號之優先權之權利，其全部內容以引用方式併入本文中。
自環境及成本減少之角度考慮，存在設計能夠分離且視需要再循環發酵成分之製程方案的動機，該等發酵成分包含細胞團、殘餘培養基及培養基鹽、殘餘受質(例如蔗糖及/或葡萄糖)、及水。人們亦試圖再循環細胞團以作為改進發酵產率之方式。人們很少嘗試回收殘餘培養基及培養基鹽以重新用於發酵之領域。就此而言，大部分努力著重於較少初始培養基成本而非下游回收率。所得「低成本」培養基對於細胞生長及產品生產而言通常並非最佳。藉由研究用於回收培養基成分之有效方法，可在對於初始原料成本之限制較少之情形下使用更佳的培養基方案。
以有效純度大規模分離化合物係製程化學中之複雜難題。僅規模上之差異即可導致在實驗台規模中研究之分離程序在中試或商業規模中不實際或甚至不可行。化合物與複雜混合物之分離取決於諸多因素，包含：化合物在環境溫度下係固體還是液體、化合物沸點、密 度、極性、pH敏感性官能團之存在或缺乏、及相對於水在有機溶劑中之溶解度。該等因素亦適用於混合物中欲與目標化合物分離之所有其他成分。關於化合物(尤其係有機化合物)分離之另一性質係其如何在兩種不混溶相之間分配，例如在水與有機溶劑之間。極性極高之化合物在水中之溶解度通常高於萃取過程中使用之常見有機溶劑。一些化合物由於具有兩親性特徵而尤其難以藉由萃取方法與水分離。兩親性化合物係具有極性部分及親脂性部分之化合物。該等化合物可因產生難處理乳液而使得藉由萃取進行之分離變複雜。
另外，在自發酵製備化合物時，水量可明顯高於目標化合物之量，從而需要自複雜混合物分離次要成分。沸騰溫度高於水之化合物的分離進一步增加了分離之複雜性及成本，此乃因該化合物不能自發酵液直接蒸餾，如(例如)乙醇發酵過程中之情形。就此而言，目標化合物與水之相互作用可導致兩種物質在與兩種純化成分不同之沸點下以共沸物形式進行共蒸餾。共沸物之形成不易預測。在視圖分離目標化合物與水時，此可減小目標化合物之回收率。在化合物具有極性官能團時，另一憂慮係該化合物可與水相中存在之其他化合物(例如，包含任一鹽及金屬離子)如何相互作用。
目標化合物中存在之官能團的性質可使鹽之分離變複雜。舉例而言，化合物之一或多個官能團可與陽離子或陰離子相互作用或與陽離子或陰離子螯合。陽離子或陰離子之螯合作用係以尺寸依賴性方式發生，且亦依賴於官能團在目標化合物上之佈置。螯合作用及其他相互作用可使得一些鹽即使在不存在水之情形下亦可溶於液體化合物中，而其他鹽可在不存在水之情形下不可溶，儘管存在具有能夠與鹽相互作用之官能團的化合物。難以預測對於鹽溶解度之該等類型作用。任一共溶劑之性質進一步增加了化合物與鹽之相互作用的複雜性。舉例而言，在分離水可混溶性目標化合物期間，氫鍵結及與水之其他相互 作用可破壞鹽與目標化合物之相互作用。因此，在一些情形下，在一定量水存在下，鹽可更易於與化合物分離。然而，可平衡鹽過飽和從而藉由結晶分離鹽之水量(例如，在維持水破壞螯合作用及目標化合物與任一鹽之其他相互作用之能力時)難以預測。
在研究分離方法時之又一難題係生物合成副產物(例如有機酸、過量受質、及諸如此類)之潛在反應性。在加熱條件下，過量受質可發生降解並導致產物具有不期望顏色。此外，一些副產物可與目標產物發生反應，從而顯著降低分離產率。該等副產物可包含彼等在發酵期間形成者以及在其分離程序步驟期間所形成之副產物，例如在蒸餾、水蒸發、及諸如此類期間於高溫下因降解過程而形成之副產物。
因此，業內需要研究可自微生物發酵液分離沸點高於水之水可混溶性化合物之方法，同時考慮達成關於再循環其他發酵成分之環境及成本益處。本發明可滿足此需求且亦提供相關優點。
在一些態樣中，本文所揭示之實施例係關於自發酵液分離1,4-丁二醇(1,4-BDO)之方法，其包含：分離富含1,4-BDO之液體部分與包括細胞之固體部分，自該液體部分去除水，自該液體部分去除鹽，及純化1,4-BDO。
在其他態樣中，本文所揭示之實施例係關於自發酵液分離1,4-BDO之方法，其包含：藉由圓盤堆疊式離心去除一部分固體以提供液體部分，藉由超濾自該液體部分去除另一部分固體，藉由蒸發結晶自該液體部分去除一部分鹽，藉由離子交換自該液體部分去除另一部分鹽，及蒸餾1,4-BDO。
在其他態樣中，本文所揭示之實施例係關於自發酵液分離1,4-BDO之方法，其包含：藉由圓盤堆疊式離心去除一部分固體以提供液體部分，藉由超濾自該液體部分去除另一部分固體，藉由奈米過濾自 該液體部分去除一部分鹽，藉由離子交換自該液體部分去除另一部分鹽，蒸發一部分水，及蒸餾1,4-BDO。
在其他態樣中，本文所揭示之實施例係關於產生1,4-BDO之方法，其包含將產生1,4-BDO之微生物在發酵器中培養足夠時間以產生1,4-BDO。產生1,4-BDO之微生物包含具有1,4-BDO路徑之微生物，該1,4-BDO路徑包含一或多個編碼1,4-BDO路徑酶之外源基因及/或一或多個基因破壞。該方法進一步包含根據所述分離方法分離1,4-BDO。
1‧‧‧流化床排管(排管)
2‧‧‧分離器
3‧‧‧冷凝器
200‧‧‧圓盤堆疊式離心機
210‧‧‧轉筒
220‧‧‧固定入口管道
230‧‧‧分配器
240‧‧‧圓盤堆疊
250‧‧‧管道
260‧‧‧頂部圓盤
270‧‧‧配流圓盤
280‧‧‧滑動型轉筒底部
300‧‧‧裝置
310‧‧‧轉鼓
320‧‧‧螺桿
330‧‧‧入口管道
340‧‧‧混合室
350‧‧‧離心分離液
圖1展示自發酵液純化1,4-BDO之方法步驟的方塊圖。
圖2展示圓盤堆疊式離心機之剖視圖。
圖3展示沉降式離心機之剖視圖。
圖4展示強制循環結晶器之圖式。
圖5展示在有效體積中具有水平熱交換器及擋板之強制循環結晶器之圖式。
圖6展示導流管及擋板結晶器之圖式。
圖7展示誘導循環結晶器之圖式。
圖8展示密閉型Oslo結晶器之圖式。
圖9展示開放型Oslo結晶器之圖式。
圖10展示降膜蒸發器之部分剖視圖。
圖11展示強制循環蒸發器之部分剖視圖。
圖12展示板式蒸發器之部分剖視圖。
圖13展示循環蒸發器之圖式。
圖14展示流化床蒸發器之圖式。
圖15展示用於產生及分離1,4-BDO之完整圖式之流程圖。
圖16展示用於產生及分離1,4-BDO之另一完整圖式之流程圖。
通用化學品之發酵生產係使用不可再生礦物燃料原料之傳統生產的有效替代方式。該方法能夠使用可再生原料(例如再循環之生物質及諸如此類)，故可證實，其較基於礦物燃料之生產更經濟且更具環境合理性。自發酵生成之產物可用於許多應用中。在特定實施例中，本發明提供產生1,4-BDO之方法。1,4-丁二醇(BDO)係聚合物中間體及工業溶劑。在下游，可進一步轉化丁二醇；例如，藉由氧化轉化成γ-丁內酯，γ-丁內酯可進一步轉化成吡咯啶酮及N-甲基-吡咯啶酮，或者其可發生氫解而變成四氫呋喃。該等化合物作為聚合物中間體、溶劑、及添加劑具有各種用途。
本發明部分地係關於自發酵液分離沸點高於水之水可混溶性化合物同時視需要再循環發酵液之其他成分的方法。該方法分離出可包含微生物有機體之細胞團，該等微生物有機體已經基因插入、基因破壞或插入與破壞之組合改造以自適宜原料以有效產率產生化合物。
可藉由去除鹽來進一步處理無細胞培養液、或液體部分。此可藉由若干方法在自發酵液去除一些或實質上所有水之前或之後來達成。如上所述，通常不能回鹽收以再循環用於發酵過程中。通常，任一鹽之回收除涉及培養基鹽以外，還涉及期望生物合成產物之鹽形式，例如乳酸鹽、檸檬酸鹽或其他羧酸鹽產物或含胺產物之銨鹽、及諸如此類。本文所述之方法使得可回收培養基鹽且視需要再循環返回至發酵中。分離方法亦涉及水去除，可將水重新引入發酵系統中。在最終純化中，可在去除細胞、鹽、及水後自剩餘液體部分蒸餾藉由發酵產生之化合物、或使其重結晶(若為固體)。在液體之情形下，可藉由(例如)分餾來達成最終純化。
在一些實施例中，本發明係關於自發酵液分離沸點高於水之水可混溶性目標化合物之方法。該方法包含：(1)分離富含化合物之液體部分與包含細胞之固體部分；(2)自該液體部分去除水；(3)自該液體 部分去除鹽；及(4)藉由蒸餾或重結晶純化目標化合物。上文之步驟(2)及(3)可依序或一起實施。
可經由發酵得到之沸點高於水之目標化合物的沸點可比水高10℃、20℃、30℃、40℃、50℃、60℃、70℃、80℃、90℃、100℃、150℃、200℃及300℃及更多(包含其間之所有值)。沸點高於水之目標化合物可包含(例如)1,4-BDO、1,3-BDO、2,3-BDO、1,3-PDO、1,2-PDO(甲基乙二醇)、1,2-乙二醇(乙二醇)、γ-丁內酯(GBL)、1,5-戊二醇、1,6-己二醇。另外，目標化合物包含彼等可與水混溶者。在一些實施例中，該等水可混溶性化合物可能難以經受習用萃取程序。此外，目標化合物包含彼等中性化合物。本文所用之中性化合物係指不具有能夠攜帶電荷之官能團(例如胺、羧酸、磺酸、硼酸及諸如此類)的化合物。最後，目標化合物可足夠小以可透過奈米過濾膜，如下文進一步所述。實例性化合物種類包含醇、二醇、三醇(例如甘油)、四醇、多元醇及諸如此類。
在一特定實施例中，目標化合物係1,4-BDO。1,4-BDO具有約230℃之沸點且可與水完全混溶。另外，未曾確定可自水經濟地萃取1,4-BDO之溶劑。對於中性分子，不能藉由使鹽形式結晶來進行分離。1,4-BDO之分子量足夠低以通過奈米過濾膜，如下文實例III中所述。另外，各種發酵培養基鹽在純1,4-BDO中之溶解度相對較低，如下文實例VI中所述。
在一些實施例中，本發明提供自發酵液分離1,4-丁二醇(1,4-BDO)之方法，其包含：(1)分離富含1,4-BDO之液體部分與包含細胞之固體部分；(2)自該液體部分去除水；(3)自該液體部分去除鹽，及(4)純化1,4-BDO。
熟習此項技術者應認識到，考慮到本文針對實例性化合物1,4-BDO所揭示教示內容之導則，可使用相同程序來分離其他沸點高於水 之水可混溶性目標化合物。舉例而言，可容易地修改本文所揭示之方法以能夠分離1,3-丁二醇。因此，儘管許多實施例藉由1,4-BDO進行例示，但應理解，該等方法易於適用於其他沸點高於水之水可混溶性目標化合物。
在一些實施例中，本發明係關於自發酵液分離1,4-丁二醇(1,4-BDO)之方法。該方法包含分離富含1,4-BDO之液體部分與包含細胞之固體部分。在自液體部分分離鹽之前或之後，自液體部分蒸發水。在一些實施例中，在去除水後分離1,4-BDO與已結晶鹽，如下文進一步所述。鹽在1,4-BDO中之溶解度較低，從而所分離1,4-BDO中之約98%不含鹽。在一些實施例中，在去除水之前藉由特定過濾方法及/或離子交換、或層析方法分離鹽，如下文進一步所述。
本文所用之「分離」係指包含純化步驟以獲得實質上純化目標化合物之過程。在特定實施例中，目標化合物包含1,4-BDO。實質上純化化合物包含彼等在一些實施例中至少98%無鹽、在其他實施例中至少99%無鹽、且在其他實施例中至少99.5%無鹽者。實質上純化化合物亦包含彼等除鹽外亦不含其他雜質者，從而目標化合物在一些實施例中至少98%純、在其他實施例中至少99%純、且在其他實施例中至少99.5%純。
本文所用之術語「液體部分」係指在自發酵液去除固體物質獲得之濃縮物或上清液。固體物質去除包含去除一些、實質上所有、或所有固體物質。例如，在離心中，液體部分係自固體分離之濃縮物或上清液。液體部分亦係在經由膜過濾後獲得之滲透物或上清液部分。液體部分亦係在應用一或多種過濾方法後獲得之濾液或上清液部分。
本文所用之術語「固體部分」係指含有不溶性材料之發酵液部分。該等不溶性材料包含(例如)細胞、細胞碎片、沉澱蛋白、細粒、及諸如此類。細粒係指較小(通常)非晶型固體。細粒亦可在結晶期間 或在自發酵液去除水期間產生。細粒可由可溶解且重結晶出來之目標化合物組成。細粒可包含因過小而不能在膜過濾中捕集之固體部分。
本文所用之術語「鹽」與培養基鹽及發酵培養基鹽互換使用，其係指發酵液中所用之經溶解離子性化合物。發酵液中之鹽可包含(例如)氯化鈉、氯化鉀、氯化鈣、氯化銨、硫酸鎂、硫酸銨、及緩衝液(例如鈉及/或鉀及/或銨之磷酸鹽、檸檬酸鹽、乙酸鹽、及硼酸鹽)。
本文所用之術語「實質上所有」在用於係指水或鹽之去除時係指去除至少95%之水或鹽。「實質上所有」亦可包含去除至少96%、97%、98%、99%、或99.9%或其間之任一值。
本文所用之術語「基因破壞」或其語法等效內容意指使所編碼基因產物失活之遺傳改變。遺傳改變可係(例如)整個基因之缺失、轉錄或轉譯所需之調節序列之缺失、導致截短基因產物之一部分基因之缺失或使所編碼基因產物失活之各種突變策略中之任一者。一種尤其有用之基因破壞方法係完全基因缺失，此乃因其減少或消除了本發明非天然存在微生物中遺傳回復之發生。
本文所用之術語「微生物」意指具有顯微尺寸之原核或真核細胞或有機體。該術語意欲包含所有種類細菌及真核有機體，例如酵母及真菌。該術語亦包含可經培養用於產生生物化學物質之任一類細胞培養物。
本文所用之術語「產生1,4-BDO之微生物」意指經改造在有效量下生物合成1,4-BDO之微生物。經改造有機體可包含基因插入，其包含質粒插入及/或染色體插入。經改造有機體亦可包含基因破壞以進一步經由產生1,4-BDO之期望路徑優化碳通量。產生1,4-BDO之有機體可包含插入與缺失之組合。
本文所用之「外源」意指將參照分子或參照活性引入宿主微生物有機體中。舉例而言，可藉由將編碼核酸引入宿主遺傳材料中來引入 分子，例如藉由整合至宿主染色體中或作為非染色體遺傳材料(例如質粒)。因此，在提及編碼核酸之表現使用該術語時，其係指以可表現形式將編碼核酸引入微生物有機體中。在提及生物合成活性使用該術語時，其係指引入宿主參照有機體中之活性。源可為(例如)同源或異源編碼核酸，其在引入宿主微生物有機體中後可表現參照活性。因此，術語「內源」係指在宿主中存在之參照分子或活性。同樣，在用於係指編碼核酸之表現時，該術語係指微生物有機體中所含編碼核酸之表現。術語「異源」係指衍生自除參照種類外之源的分子或活性，而「同源」係指衍生自宿主微生物有機體之分子或活性。因此，本發明中編碼核酸之外源表現可使用異源或同源編碼核酸中之任一者或二者皆使用。
在一些實施例中，本發明提供自發酵液純化目標化合物之方法。適用化合物包含彼等沸點高於水且鹽溶解度較低者。目標化合物亦包含彼等可與水混溶者。實例性目標化合物係1,4-BDO。該方法包含分離含有目標產物之液體部分與包含細胞團之固體部分。目標產物可為沸點高於水之任一化合物。細胞團包含目標化合物之產生中所用之微生物有機體。固體部分亦包含細胞碎片、細粒、蛋白質、及來自發酵之其他不溶性材料。
分離方法亦包含自液體部分去除鹽及水。去除順序並不重要。在一些實施例中，可部分地去除鹽，隨後去除實質上所有水，且然後去除剩餘鹽。在其他實施例中，可部分地去除水，隨後去除實質上所有鹽，且然後去除剩餘水。在其他實施例中，可部分地去除水，隨後自發酵液分離固體部分。在其他實施例中，實質上所有水之最終去除可作為純化步驟之一部分藉由(例如)蒸餾進行。如下文實例VI中所揭示，純淨1,4-BDO不會使典型發酵培養基鹽微溶。因此，可藉由自液體部分蒸發水來分離1,4-BDO與鹽。如下文實例V中所示，在1,4-BDO 之濃度為約30重量%時，鹽開始結晶出來。在一些實施例中，在藉由水去除分離1,4-BDO與結晶或沉澱之鹽後，1,4-BDO係至少98%無鹽度(salt free)。自實例VI可發現，密切相關之同系物乙二醇及丙二醇仍使發酵鹽微溶。因此，即使在去除實質上所有水後，亦可使用其他方法來去除鹽。
最後，在已去除鹽及水後，剩餘液體或固體可經受最終純化。在目標產物係液體時，可藉由蒸餾(例如包含分餾或多次蒸餾)來達成純化。在目標產物係固體時，可藉由重結晶來達成純化。
產生並分離目標化合物及再循環各種發酵液成分之總體過程概述於圖1之方塊流程圖中。步驟100係發酵，其使用碳原料(例如蔗糖)來產生目標化合物。步驟110係自發酵液分離細胞以提供液體部分，其中步驟115係可選之細胞再循環。步驟110已例示於實例I及II中，其中藉由離心及超濾自發酵液分離細胞及固體。在步驟120中，自液體部分分離鹽，其中步驟125係可選之鹽再循環。步驟120已例示於實例III-V中，其闡述奈米過濾(實例III)及離子交換(實例IV)，其中水仍存在於液體部分中。實例V展示在水蒸發期間經由結晶來分離鹽。步驟130係經由蒸發去除水，其中步驟135係可選之水再循環。步驟130藉由實例V進行例示，其展示蒸發水以利於藉由沉澱來分離鹽。步驟120與130之順序可互換，如下文進一步所述。最後，在步驟140中，目標化合物經受最終純化。
在一些實施例中，自發酵液分離目標化合物(包含1,4-BDO)之方法涉及分離富含目標化合物之液體部分與包含細胞之固體部分。在分離富含目標化合物之液體部分時，可處理任一量之發酵液，包含1%、5%、10%、20%、30%、40%、50%、60%、70%、80%、90%(包含多達全部體積)之發酵液及其間之所有值，且進一步包含小於發酵液總體積之1%的體積。熟習此項技術者應認識到，所處理發酵液之 量可取決於發酵過程之類型，例如分批發酵、加料分批發酵、或連續發酵，如下文所詳述。可藉由離心、過濾、或該等方法之組合自發酵液分離包含細胞與其他固體副產物及雜質之固體。
在一些實施例中，可使用離心來提供包括實質上不含固體(包含細胞團)之目標化合物(例如1,4-BDO)的液體部分。端視離心機之構型及尺寸，操作速度可在500rpm至12,000rpm之間有所變化，此可產生高達15,000倍於重力之離心力。用於自發酵液去除細胞及固體之許多離心機構型在業內已眾所周知。一種此類構型係(例如)圖2中所示之原判堆疊式離心機200。
圓盤堆疊式離心機中之分離發生於轉筒210內部。進料係經由固定入口管道220自頂部引入轉筒中，且在分配器230中進行加速，隨後進入圓盤堆疊240中。分配器經設計以將進料液體加速。
液體-固體或液體-液體-固體之分離係在各個圓盤之間發生。在兩相系統(例如具有不混溶之油相及水相)中，油相移動經過圓盤堆疊到達中心且可經由管道250排出並噴霧至收集框架中。與油分離之水及固體移動至外圍，經由頂部圓盤260中之通道將水引入配流室中，在此藉助內置配流圓盤270將水自轉子抽出。
在外圍收集固體，在此可經由旋風離心機將其間歇性地排出。可藉由液壓系統來達成固體排放，該液壓系統以預設之適宜間隔迫使滑動型轉筒底部280落下從而打開位於轉筒外圍之固體埠。
圓盤堆疊式離心機通常以連續過程使固相與一或兩種液相彼此分離。藉由離心力迫使較稠固體向外移動，而密度較小之液相形成內部同心層。插入特殊板材(圓盤堆疊)可增加分離效率。可人工、間歇性、或連續性地去除固體。根據一些實施例，可將細胞團再次引入發酵中。在典型圓盤堆疊式離心機裝置中，液相在轉筒頂部之出口區中溢出而進入單獨室中。
在圓盤堆疊式離心機之作業期間，在轉筒軸處引入進料，增加速度(通常藉由徑向葉片總成實施)，並使其流經緊密間隔之錐形盤堆疊。盤間距通常為0.5mm至3mm以減小自流體分離沉降顆粒所需之距離。盤角通常介於40度與50度之間以有利於固體沿圓盤表面向下傳送並進入固體保持空間。
分離機制係基於固體在離心力影響下抵靠圓盤下側沉降並沿圓盤向下滑動至固體保持空間。同時，淨化之流體沿圓盤間之通道向上移動並經由向心幫浦離開離心機。沉降之固體經由噴嘴連續排出或經由轉筒外圍之埠間歇性排出。
可在發酵液中細胞之濃度及粒徑較低之情形下使用圓盤堆疊式離心機。可在細胞及其他固體物質構成低至約0.2重量%至約3重量%之發酵液時使用圓盤堆疊式離心機。亦可在細胞及其他固體物質小於約0.2重量%(例如，0.01重量%、0.05重量%、及0.1重量%，包含其間之所有值)時使用圓盤堆疊式離心機。亦可在細胞及其他固體物質高於3重量%(例如4重量%、5重量%、6重量%、7重量%、8重量%、9重量%、10重量%、及15重量%，包含其間之所有值)時使用圓盤堆疊式離心機。在合併之細胞團及其他固體高於約3重量%至約15重量%時，可使用其他離心構型，例如沉降式離心機。
介於約0.5微米至約500微米間之細胞及其他固體顆粒(其係軟塑膠顆粒且並未磨蝕)通常適於盤式離心。對於小於約0.5微米之顆粒物質而言，可使用超濾。同樣，在大於約500微米時，可使用沉降型離心機。可經培養以產生目標化合物(包含1,4-BDO)之典型原核細胞的尺寸可介於約0.5微米至約10微米之間，從而使圓盤堆疊式離心係適宜方法。
在分批發酵後、或在加料分批發酵、或連續發酵期間，可藉由圓盤堆疊式離心機自發酵液去除細胞及不溶性固體。圓盤堆疊式離心機 之輸出物係淨化(無細胞)濃縮物及含有約5%至約50%固體之欠流動流。來自圓盤堆疊式離心機之欠流動固體流可含有大量可回收之目標產物。自固體回收額外目標化合物之一種方式包含其他離心步驟。除提供目標化合物之更大回收率外，多次離心亦用於進一步濃縮細胞及固體。濃縮之細胞可再循環返回至發酵中。在使用有價值之經改造有機體時，細胞再循環尤其有用。
在一些實施例中，可使用沉降式離心機來分離出細胞及固體。在用於粒徑下限接近約10微米之固體時，沉降式離心機通常可實現良好性能，但可端視沉降速度處理較小顆粒，如下文進一步所述。在培養物之細胞在典型原核有機體之較大尺寸範圍內時，可使用此離心機構型。熟習此項技術者應認識到，真核細胞通常遠大於原核細胞，其中真核細胞之平均尺寸介於約10微米至約100微米之間或更大。儘管圓盤堆疊式離心機在此尺寸範圍中可良好地進行作業，但沉降式離心機因能夠處理較大量之固體而係有用的。因此，在細胞團及其他固體佔大於約3重量%至約50重量%之物質時，可使用沉降式離心機。此濃度適用於上述圓盤堆疊式離心機之欠流，從而使沉降式離心機成為適於進一步濃縮細胞團並回收額外產物之方法。
沉降式離心機或固體轉筒離心機基於沉降原理進行作業。實例性裝置闡述於美國專利第4,228,949號及第4,240,578號中，其全部內容以引用方式併入本文中。在如圖3中所示之此一裝置300中，機器之中心部分係轉鼓310，其含有獨立旋轉之螺桿320。發酵液或含有固體之進料(例如，來自圓盤堆疊式離心機之欠流)經由入口管道330供給至位於第一部分螺桿之中心的混合室340中。培養液然後經過混合室中之埠向外到達鼓之外壁。藉由螺桿將脫水培養液輸送經過機器。經由濃縮物管道自槽內表面倒出濃縮物350、或上清液。可根據欲處理材料之特性來調節鼓中之水位。
鼓及螺桿彼此獨立地以高達約3,600rpm之速度進行旋轉，此取決於機器之類型及尺寸。業內已知所用脫水原理係「並流」或「逆流」方法。並流方法容許差速極低。差速係鼓速度與螺桿速度之差。較低差速意味著在離心機中之滯留時間較長，此會導致污泥較乾且磨損極小。逆流原理可更適用於易於脫水之進料及期望容量較高時。
可在固體轉筒離心機中分離固體，前提係其在進料之液相部分中之沉降速度足夠高。影響沉降速度之因素包含(例如)粒徑、形狀、細胞/固體與發酵液液相間之密度差、及黏度。轉筒之幾何形狀(尤其係長度與直徑之關係)應可適用於特定條件。在一些實施例中，在介於約2：1至約3：1之間的長徑比下可獲得良好結果。
在作業時，分離係在配備有螺桿輸送帶之水平錐形圓柱狀轉筒中發生。經由固定入口管道將發酵液供給至轉筒中並藉由入口分配器進行加速。離心力提供將固體沉降於轉筒壁上之方式。與轉筒在相同方向差速旋轉之輸送帶將固體輸送至錐形末端。然後使固體上升脫離液相並離心脫水，隨後將其排入收集通道。剩餘液相然後經由轉筒之圓柱形末端中之開口流入外殼中。
如上所述，可藉由多次離心來分離細胞及固體以增加目標化合物之分離產率。多次離心可包含(例如)離心兩次、三次、四次、及五次。可使用水稀釋中間之欠流動流以進一步增加液體產物之回收率。亦可使用離心構型之任一組合來實施多次離心，例如上述圓盤堆疊式離心與沉降式離心之組合。可經由過濾過程(例如超濾)去除不能藉由離心分離之其他固體。
超濾係經由使用高達約145psi(10巴)之壓力之膜實施的選擇性分離過程。有用構型包含使用螺旋捲繞空心纖維、或平板(筒)超濾元件之橫流過濾。該等元件係由截留分子量小於約200,000道爾頓之聚合或陶瓷膜組成，例如，如下文實例I中所用之Hydranautics 5K PES 膜。陶瓷超濾膜亦係有用的，此乃因其具有長達10年或超過10年之長工作壽命。陶瓷膜之缺點在於比聚合膜昂貴很多。超濾可濃縮分子量大於約1,000道爾頓之懸浮固體及溶質。超濾包含經由標稱截留分子量(MWCO)為約1,000道爾頓至約200,000道爾頓(孔徑為約0.005微米至0.1微米)之膜進行過濾。術語截留分子量用於界定由膜保留約90%之蛋白質之尺寸。使用超濾時，滲透物液體將含有低分子量有機溶質(例如1,4-BDO)、培養基鹽、及水。捕集之固體可包含(例如)殘餘細胞碎片、DNA、及蛋白質。
除在離心下游使用超濾外，超濾亦可用於微孔過濾下游。微孔過濾提供離心之替代性方式以用於分離細胞。微孔過濾通常涉及低壓橫流膜過程以用於分離介於0.05-10微米之間之膠體及懸浮顆粒。微孔過濾包含經由孔徑為約0.05微米至約5.0微米之膜進行過濾。可使用聚合物、陶瓷、或鋼微過濾膜來分離細胞。陶瓷或鋼微過濾膜具有長操作壽命，包含長達10年或高於10年。微過濾可用於發酵液之淨化。與超濾不同，微孔過濾通常並不捕集殘餘細胞碎片、DNA、及蛋白質。然而，可使用一系列過濾步驟同時逐漸降低孔徑來避免過濾膜結垢。此可用於優化過濾膜之再使用。在一些實施例中，可使用單一超濾步驟來去除細胞團(代替離心或微孔過濾)及殘餘細胞碎片、DNA、蛋白質等。陶瓷超濾元件可用於此應用中，此乃因其能夠承受此作業模式中所用之頻繁清洗循環。
在一些實施例中，可使用稱作奈米過濾之另一過濾方法來分離出某些鹽。舉例而言，此製程步驟可回收某些培養基鹽而不用預先蒸發水。奈米過濾可分離鹽、去除顏色、並提供脫鹽。在奈米過濾中，滲透物液體通常含有單價離子及低分子量有機化合物(例如，1,4-BDO)。奈米過濾包含經由標稱截留分子量(MWCO)為約100道爾頓至約2,000道爾頓之膜(孔徑為約0.0005微米至0.005微米)進行過濾。用於 奈米過濾之一種方法係使用螺旋捲繞元件之橫流過濾。可使用若干奈米過濾膜，例如下文實例III中所用之薄膜複合奈米過濾膜GE DK。奈米過濾中之質量轉移機制係擴散。奈米過濾膜容許部分地擴散某些離子性溶質(例如鈉及氯化物)、主要為單價之離子、以及水。較大離子類(包含二價及多價離子)、及更複雜分子基本上得以保留。
因單價離子以及水部分地擴散經過奈米過濾膜，故膜兩側溶液間之滲透壓差並不大且此通常使得奈米過濾中之操作壓力略低於(例如)反滲透。
奈米過濾不僅去除一部分無機鹽且亦可去除有機酸之鹽。有機酸副產物之去除在分離過程中可至關重要，此乃因該等酸可催化與目標產物之不期望副反應或在其中用作反應物。在與分離1,4-BDO相關之特定實施例的背景中，舉例而言，有機酸之去除尤其有用，此乃因此可防止諸如在高溫之任一下游蒸發或蒸餾步驟期間羥基發生酯化等反應。該等酯副產物通常具有高於BDO之沸點，從而導致蒸餾中之重物流發生產率損失。
奈米過濾亦可分離葡萄糖或蔗糖受質與目標產物，從而防止在蒸發及蒸餾期間發生降解反應。該等降解反應可使目標化合物著色。與自蒸發結晶回收之鹽流相比，富含鹽及受質之奈米過濾滯留物可更適於再循環至發酵中。舉例而言，使用過濾方法代替涉及施加熱之方法可產生降解較少之產物。該等降解產物可對發酵有機體具有毒性。
奈米過濾及離子交換二者皆可去除形成顏色之化合物及UV吸收性化合物。此可用於一些目標化合物之背景中。舉例而言，顏色去除可用於產生聚合物等級之1,4-BDO。
可連續使用多個過濾膜，其中所留下固體之大小逐漸變細。此可用於減少膜結垢並有助於回收各種發酵液成分以用於再循環。舉例而言，一系列過濾可使用微過濾、隨後超濾、隨後奈米過濾。因此，微 過濾有助於回收細胞團，超濾可去除較大成分(例如細胞碎片、DNA、及蛋白質)，且奈米過濾有助於回收鹽。
彼等熟習此項技術者應認識到，在本文所提供之教示內容及導則，各種過濾類型中之任一者皆可整合至各種發酵生物反應器構型之背景中。在一些實施例中，過濾係在生物反應器外面進行。在此模式中，可自生物反應器去除任一量之發酵液並單獨過濾。可藉由使用真空方法、或使用正壓來幫助過濾。在一些實施例中，可藉助生物反應器內部之過濾元件達成細胞過濾。該等構型包含彼等發現於膜細胞再循環生物反應器(MCRB)中者。Chang等人之美國專利第6,596,521號闡述兩階段細胞再循環連續反應器。
在一些實施例中，可藉助聽細胞沉降器來分離細胞並再循環至發酵混合物中，如Yang等人(Biotechnol.Bioprocess.Eng.,7：357-361(2002))所述。聽細胞沉降使用超音波來濃縮發酵液中之細胞懸浮液。此方法使細胞易於返回生物反應器並避免有時使過濾型細胞再循環系統變複雜之膜結垢問題。
對於水蒸發之前之鹽分離而言，可單獨使用其他方法、或與上述實例性過濾方法相組合。該等其他方法包含(例如)離子交換。舉例而言，Gong等人(Desalination 191：1-3,193-199(2006))闡述離子交換膜藉由電透析對1,3-丙二醇發酵液脫鹽之傳輸性質的影響。
離子交換元件可採用樹脂珠粒以及膜之形式。通常，樹脂係以多孔珠粒形式進行澆注。樹脂可係具有呈帶點位點形式之活性基團的交聯聚合物。在該等位點處，帶相反電荷之離子被吸引但可由其他離子代替，此端視其相對濃度及對於位點之親和力而定。舉例而言，離子交換劑可為陽離子性或陰離子性。決定給定離子交換樹脂之效率的因素包含給定離子之偏好、及可用活性位點之數量。為使活性位點最大化，通常使用較大表面積。因此，小顆粒因其表面積較大而係有用 的。
舉例而言，樹脂聚合物可包含交聯約0.5%至約15%之聚合物。溫度及pH亦影響離子交換之效率。舉例而言，pH可影響可用於交換之離子的數量，且溫度影響此過程之動力學。在一些實施例中，藉由離子交換去除鹽包含去除有機酸及有機酸之鹽。陰離子性形式之有機酸可結合至陰離子交換活性位點。在一些實施例中，結合有機酸之pH低於該酸之pKa。乳酸之pKa為(例如)約3.1。去除有機酸之鹽的有效方法係陽離子交換隨後陰離子交換。陽離子樹脂首先去除有機酸抗衡離子(鈣、鈉、銨、及諸如此類)，從而降低溶液之pH。陰離子樹脂然後結合游離酸。
離子交換之有用態樣係可再生樹脂之設備。可沖洗樹脂以使其不含交換之離子並與期望離子溶液接觸以替換期望離子。對於再生而言，可反覆使用相同樹脂珠粒，且可將分離離子濃縮於廢物流出物中。對於許多過濾方法而言，可實施連續離子交換，如實例IV中所例示。因此，可使進料經過任一數量之陰離子性及陽離子性交換器、或混合床交換器，且以任一順序經過。
在一些實施例中，使用經由蒸發之水去除來促進鹽回收。在一些實施例中，在水去除之前已去除鹽。在任一情形下，蒸發之水可作為補充水再循環至發酵中，從而將製程之總體水需求降至最低。在未去除鹽之情形下，其在富含1,4-BDO之液相中之溶解度足夠低從而其可在水去除後結晶。在一些實施例中，鹽在1,4-BDO中具有足夠低溶之解度從而所分離之1,4-BDO中約98%無鹽。
可使用蒸發結晶器來生成沉澱之鹽，該等鹽可藉由離心、過濾或其他機械方式去除。在1,4-BDO分離之背景中，蒸發結晶器用於自發酵液去除水以產生已去除足夠水之液相，從而使發酵培養基鹽過飽和且隨後在剩餘液相或母液中結晶。如下文實例V中所示，在1,4-BDO 濃度為約30重量%時鹽開始結晶。
母液係指結晶中之主體溶劑。通常，母液係溶解(solublize或dissolve)各種溶質之能力不同之溶劑的組合。在自發酵液純化1,4-BDO之背景中，舉例而言，母液包含在自發酵液去除細胞及其他固體後獲得之液體部分。在自發酵液分離目標化合物之背景中，主要溶質包含發酵培養基鹽及有機酸。
結晶中之過飽和係指以下狀況：溶質在主體溶劑中之濃度高於通常在給定溫度及壓力條件下可能之濃度。發酵液之主體溶劑係含有相對較小量1,4-BDO(例如)、及溶解鹽與其他培養基的水。
實例性蒸發結晶器係如圖5及6中所示之強制循環(FC)結晶器。FC結晶器已闡述於(例如)美國專利第3,976,430號中，其全部內容以引用方式併入本文中。FC結晶器可蒸發水，從而增加了鹽在富含化合物(例如1,4-BDO)之液體部分中之過飽和，由此使鹽發生結晶。FC結晶器可用於達成高蒸發速率。FC結晶器係由以下四個基本組件組成：具有錐形底部部分之結晶器容器、循環幫浦、熱交換器、及處理結晶器中所生成蒸氣之真空設備。來自結晶器容器之漿液循環經過熱交換器並再次返回結晶器容器，其中藉由將鹽沈積於漿液中存在之晶體上來減小過飽和。將蒸發之水引入真空系統，在此將其冷凝且若需要再循環至發酵液中。儘管在一些實施例中使用低真空，但亦可在約大氣壓下使用FC結晶器。在一些實施例中，FC結晶器使用絕熱蒸發冷卻來生成鹽過飽和。在該等實施例中，FC結晶器無需配備熱交換器。
在一些實施例中，如圖6中所示，FC結晶器可進一步配備有內部擋板以處置液相之溢流並減少可抑制晶體生長之細粒。亦可藉助可選之淘析段對FC結晶器中生成之鹽進行尺寸選擇。FC結晶器之此部分位於結晶器容器之錐形區段的底部。尺寸選擇係藉由以下達成：提供沿該段向上之發酵流體流動，從而僅使得具有特定沉降速率之顆粒逆 著此流動而移動。沉降速度與晶體之尺寸及形狀以及流體黏度有關。在其他實施例中，FC結晶器亦可配備有內部洗滌器以減小產物損失。此可有助於回收揮發性產物。
圖7中展示之湍流或導流管及擋板「DTB」結晶器提供兩種排放流，一種係含有晶體之漿液，且另一種係具有少量細粒之液相。DTB結晶器之構型應使得其可促進晶體生長，且可生成平均尺寸大於彼等使用FC結晶器所獲得晶體之晶體。在一些實施例中，DTB結晶器係在真空下、或在輕度之超大氣壓下進行作業。在一些實施例中，DTB結晶器使用真空進行冷卻。
在一些實施例中，DTB結晶器係在低過飽和狀態下進行作業。熟習此項技術者應認識到，使用此方案可獲得大晶體。系統可視需要經構造以溶解細粒從而進一步增加晶體尺寸。在DTB結晶器用於發酵培養基鹽回收時，晶體尺寸無需優先考慮。
DTB結晶器在結晶作用中已得到廣泛地研究，且可精確地進行模製。其獨特的生長區及淨化液相區有利於界定動力學參數，且由此可容易地計算生長及成核速率。該等特徵使得DTB結晶器適於進行數學描述，且由此可經受良好操作控制。如同FC結晶器，DTB結晶器係混合懸浮混合產品去除(MSMPR)設計之實例。
DTB結晶器包含用作沉降區之帶擋板區，其位於有效體積外圍。使用此區來進一步處理液相及細粒。在一些實施例中，不存在帶擋板區，如細粒之進一步處理不太重要之情形。此一構型在業內稱作導流管結晶器。DTB結晶器可配備有攪拌器，攪拌器通常位於裝置底部鄰近進料溶液入口處。如同FC結晶器，DTB結晶器視需要配備有淘析段。在一些實施例中，可使用可選之外部加熱環路來增加蒸發速率。
又一結晶器結構係如圖8中所示之誘導循環結晶器。此構型提供用於有效體積之額外攪拌方式。該裝置在導流管之使用方面與DTB結 晶器相似。與DTB裝置不同，其沒有內部攪拌器。相反，容器之錐形部分中之誘導器自再循環幫浦引入經加熱溶液。對於其他結晶裝置構型而言，誘導循環結晶器視需要配備有淘洗段。擋板亦可視需要用於此類結晶器中。
在其他實施例中，結晶器可為Oslo型結晶器，如圖9及10中所示。此類結晶器亦稱作「生長-」、「流化床-」、或「Krystal-」型結晶器。Oslo結晶器容許晶體在流化床中生長，該流化床未經受機械循環。Oslo單元中之晶體將生長至一與在流化床中之滯留時間成正比之尺寸。結果為Oslo結晶器可生長出比大部分其他結晶器類型大的晶體。可自結晶器之流化床去除漿液並輸送至(例如)離心區段。可自結晶器之淨化區吹掃出含有1,4-BDO之澄清液相。
分類結晶室係位於單元下部部分。上部部分係液-氣分離區，在此藉由去除水產生過飽和。稍微過飽和之液相向下流經中心管道且藉由與晶體之流化床接觸來減輕過飽和。隨著循環液相向上移動通過分級床而逐漸出現去過飽和(desupersaturation)，隨後收集於該室之頂部部分中。剩餘液體係經由循環管道離開且在添加新鮮進料後，其通過提供熱補充之熱交換器。然後其再循環至上部部分。
在一些實施例中，Oslo型結晶器亦可視需要配備有擋板、淘析段、及洗滌器，如上所述般。因正生長之晶體無與任一攪拌器件接觸，故欲除去之細粒之量通常較低。Oslo型結晶器容許在晶體去除期間之間有長生產週期。
Oslo型結晶器可用於若干化學物質(如在發酵培養基鹽中所發現者)之分離-結晶。在一實施例中，Oslo型結晶單元係「密閉」型，如圖9中所示。在其他實施例中，Oslo型結晶器係「開放」型，如圖10中所示。後一構型係用於(例如)需要較大沉降區時。
許多上述蒸發結晶裝置可控制晶體生長。在細胞去除後自液體部 分回收發酵培養基鹽時，確切之晶體形態、尺寸、及諸如此類通常不重要。實際上，在純化任一目標化合物(包含1,4-BDO)時，可充分回收非晶型培養基鹽。因此，在一些實施例中，可使用本身無控制晶體生長之其他蒸發方法。
在藉由奈米過濾及/或離子交換去除鹽時，可使用反滲透(RO)膜過濾在蒸發之前去除一部分之水。水透過RO膜而1,4-BDO得以保留。在一些實施例中，RO膜可將產物(例如1,4-BDO)濃縮至約20%。熟習此項技術者應認識到，產物1,4-BDO之滲透壓增加至一無法再使用RO膜進一步濃縮之點。然而，使用RO膜係用於在能量更密集性之水蒸發製程之前濃縮目標產物之有效低能量輸入方法。因此，大規模使用RO膜係尤其有用的。
在一些實施例中，在去除水之前去除實質上所有鹽。在其他實施例中，在去除一部分水之後去除實質上所有鹽。所去除之水部分可為包含5%、10%、15%、20%、25%、30%、35%、40%、50%、60%、70%、80%、及其間所有值之任一量。在一些實施例中，在去除實質上所有水之後去除鹽。實質上所有水包含95%、96%、97%、98%、99%、99.9%及其間之所有值且包含所有水。
許多類型及構型之蒸發器可用於水去除。設計蒸發系統之一個考慮係將能量需求降至最低。諸如多效或機械蒸氣再壓縮等蒸發構型可減小能量消耗。在一些實施例中，藉由使用包含一或多重效應之蒸發器系統進行蒸發來去除水。在一些實施例中，可使用雙效或三效蒸發器系統來分離水與目標產物(例如1,4-BDO)。可使用任一數量之多效蒸發器系統來去除水。該等裝置亦可應用於沸點高於水之任一發酵產物中。三效蒸發器、或其他蒸發裝置構型可包含專用效應，其係用於鹽回收之蒸發結晶器，例如三效構型之最終效應。
蒸發器係液體沸騰產生蒸氣之熱交換器，其亦為低壓蒸汽生成 器。此蒸汽可用於進一步在稱作另一「效應」之另一蒸發器中加熱。因此，舉例而言，可將兩個蒸發器連接以便一者之蒸氣線與另一者之蒸汽室連接，從而提供兩效或雙效蒸發器。舉例而言，此構型可延續至第三蒸發器以建立三效蒸發器。
因此，蒸發器可藉由效應之數量進行分類。在單效蒸發器中，蒸汽提供用於汽化之能量且將蒸氣產物冷凝並自系統去除。在雙效蒸發器中，使用離開第一效應之蒸氣產物來提供用於第二汽化單元之能量。效應之級聯可針對任何數目個級繼續。多效蒸發器可比單效蒸發器更有效地去除大量溶劑。
在多效佈置中，使用離開效應之蒸氣產物的潛熱來加熱下一效應。效應係以藉由蒸汽加熱之效應-效應I開始計數。第一效應係在最高壓力下進行作業。使用來自效應I之蒸氣來加熱效應II，其因此係在較低壓力下進行作業。此繼續經過每一額外效應，以便壓力穿過該序列而降低且熱蒸氣將自一個效應行進至下一效應。
在一些實施例中，蒸發器中之所有效應可具有物理性相似之尺寸、構造、及傳熱面積。除非熱損失明顯，否則其亦可具有相同容量。蒸發器系(串行連接效應)可以若干不同方式接收進料。順向進料佈置遵循模式I、II、及III。該等佈置使用單一進料幫浦。在此構型中，將進料升溫至如效應I中所用之最高操作溫度。最低操作溫度係在最終效應中，其中產物之濃度亦最大。因此，此構型可用於熱敏性產物或用以減少副反應。
在其他實施例中，可使用逆向進料佈置-III、II、I。在此一構型中，使用多個幫浦相對於系統之壓力降進行作業，然而，因將進料逐漸加熱，故其可較順向進料構型更有效。此佈置亦減小了系統中之黏度差且由此可用於黏性發酵液。在一些實施例中，可使用混合進料佈置，其中進料進入系統中部、或效應II、III、及I。最終蒸發係在最 高溫度下實施。此外，所需幫浦少於逆向進料佈置。在其他實施例中，使用平行進料系統來分開進料流並將各部分供給至每一效應。此構型常用於期望產物係漿液之結晶蒸發器中。
存在許多蒸發器設計。可使用任一設計組合作為如上所述之效應。一種蒸發器設計係降膜蒸發器。此裝置包含垂直殼及管式熱交換器、以及橫向或同心佈置之離心分離器，如圖11中所示。
欲蒸發液體均勻分配於管道之內表面上。液體向下流動以形成薄膜，因藉由蒸汽施加熱量而自此發生蒸發。蒸汽發生冷凝並在管道外表面上向下流動。將諸多管道並排構建至一起。在每一末端，管道皆固定至管板上，且最終藉由夾套包封管束。
經由夾套引入蒸汽。管道間之空間形成加熱區段。管道內側稱作沸騰區段。其共同形成排管。濃縮之液體及蒸氣在底部離開排管，自此將大部分濃縮之液體排出。剩餘部分與蒸氣一起沿切向進入隨後之分離器中。通常藉助用於來自排管之大部分濃縮物的同一幫浦來排出分離之濃縮物，且蒸氣自頂部離開分離器。將冷凝於管道外表面上之加熱蒸汽作為冷凝物收集於加熱區段底部，自此將其排出。
降膜蒸發器可在加熱介質與沸騰液體間之溫差極低之情形下進行作業，且其亦具有極短之產物接觸時間，通常僅為每程數秒。該等特性使降膜蒸發器尤其適用於熱敏性產物。降膜蒸發器在較小溫差下之作業有利於其以多效構型使用或與機械蒸氣壓縮系統一起使用。
排管管道中加熱表面之足夠潤濕幫助避免可阻塞管道之乾斑及水垢。在一些實施例中，藉由延伸或劃分蒸發器效應可增加潤濕速率。降膜蒸發器可高度響應諸如能量供應、真空、進料速率、及濃度等參數之變化。在一些實施例中，單效、雙效、三效、或其他多效降膜蒸發器構型可使用已經由如上所詳述奈米過濾過程過濾之發酵進料。在水蒸發之前減少鹽可進一步幫助防止在排管之管道中發生水垢。
在一些實施例中，降膜蒸發器係短程蒸發器。在作業時，液體部分藉助分配系統均勻分配於排管之加熱管道上。液體部分以與習用降膜蒸發器相似之方式在內壁上向下流動呈薄膜形式。在排管管道中形成之蒸氣作為餾出物冷凝於冷凝物管道之外壁上且然後向下流動。水餾出物及濃縮液體部分自蒸發器之下部單獨排出。
另一蒸發器構型係強制循環蒸發器。在此設計中，閃蒸器或分離器佈置於排管及循環幫浦上方，如圖12中所示。在作業時，液體部分藉助循環幫浦循環經過排管。液體在排管內在高於正常沸騰壓力之高壓下係過熱的。進入分離器後，壓力迅速減小從而使液體閃蒸或迅速沸騰。可使用流速(由循環幫浦控制)、及溫度來控制水去除過程。此構型可用於避免排管管道結垢。
在一些實施例中，可如上所述使用多個強制循環蒸發器效應。舉例而言，在自發酵液體之液體部分分離水時，除使用單效強制循環蒸發器外，亦可使用雙效、三效、及多效強制循環蒸發器。在一些實施例中，一或多個強制循環蒸發器可與一或多個降膜蒸發器一起使用。
在其他實施例中，蒸發器可為板式蒸發器，如圖13中所示。此蒸發器使用板式熱交換器及一或多個分離器。板及框架構型使用具有交替通道之板來攜帶加熱介質及發酵液之液體部分。在作業時，液相及加熱介質以逆流方式經過其各自之通道。界定之板距及形狀可生成湍流，從而有效地進行傳熱。通道與液體部分之傳熱可使水沸騰。由此形成之蒸氣驅使殘餘液體作為升膜進入板總成之蒸氣管道中。殘餘液體及蒸氣在離心分離器之下游分離。寬進氣管道及向上之移動可幫助在熱交換器之橫截面上方進行良好地分配。板式蒸發器可在經由奈米過濾膜進行預過濾之情形下有效地作業以避免結垢。因此，對於水垢而言，須要考慮與降膜蒸發器相似之因素。
在一些實施例中，可以與上文針對降膜及強制循環蒸發器所述非 常相同之方式來使用多效板式蒸發。在用於多效構型中時，熟習此項技術者應認識到在向板式蒸發器引入液體部分之前使用強制循環蒸發器及/或奈米過濾步驟之益處。因此，分離方案可包含(例如)：奈米過濾，隨後一或多個強制循環蒸發器之多效蒸發構型，隨後一或多個板式及/或降膜蒸發器。在其他實施例中，亦可結合使用任一上述蒸發結晶器及多效構型。
在一些實施例中，可使用循環蒸發器自液體部分去除水，如圖14中所示。循環蒸發器使用具有短管道長度之垂直排管，其中橫向分離器佈置於熱交換器頂部。在作業時，液體部分係在排管底部供應並上升至頂部。在排管之管道中加熱期間，水開始沸騰以釋放蒸氣。向上移動之蒸氣所夾帶之液體被攜帶至排管頂部。進入分離器後，液體與蒸氣分離。液體經由循環管道流回蒸發器中以繼續循環。排管加熱元件與分離器室之溫差越大，最終水自液體部分蒸發之程度越大。在液體部分充分富集1,4-BDO時，鹽將開始自液體部分沉澱。
在一些實施例中，循環蒸發器之分離器可分成若干分離室中，每一分離室皆配備有單獨之液體循環系統。此可減小自液體部分去除水所需之加熱表面。
流化床蒸發器係可用於自液體部分去除水之又一構型。如圖15中所示之此一系統配備有垂直流化床熱交換器。在熱交換器之管道側係固體顆粒，例如玻璃或陶瓷珠粒、或鋼絲顆粒。
流化床蒸發器以與強制循環蒸發器相似之方式進行作業。液體之向上移動可夾帶固體顆粒，此會提供沖刷或清洗作用。固體顆粒與液體部分一起移動經過排管管道。在排管頭部，固體顆粒與液體分離並再循環至排管入口室中。過熱流體在分離器中閃蒸至沸騰溫度，從而經由蒸發去除水。排管管道中固體之沖刷作用使得作業時間延長且進一步防止管道結垢。此可用於所產生之結垢固體會限制習用強制循環 蒸發器系統之使用時。
升膜蒸發器係用於自收集自發酵液之液體部分去除水之另一類蒸發器。此系統構型在垂直殼及管熱交換器(排管)上具有頂置式蒸氣分離器。在作業時，排管底部之液體部分上升至頂部進入蒸氣分離器中。外部加熱使液體部分中之水在排管管道之內壁中沸騰。蒸汽之向上移動將液體部分攜帶至排管頂部。在經由管道上升期間，進一步形成蒸氣。在進入分離器後，蒸氣相與液相分離。升膜蒸發器尤其用於使用黏性液體及/或預計具有大量結垢固體時。
逆流-滴流蒸發器係可用於自發酵液之液體部分去除水之另一蒸發器。此裝置具有殼及管熱交換器(排管)，其中排管之下部大於升膜蒸發器之下部。如同升膜蒸發器，分離器佈置於排管頂部。在此蒸發器中，分離器進一步配備有液體分配系統。
在作業時，如同降膜蒸發器，在蒸發器頂部提供液體。液體分配於蒸發器管道上方，但蒸氣相對於液體以逆流形式流動至頂部。在一些實施例中，該方法亦可包含惰性氣體流以(例如)以增加夾帶。此氣體可在排管之下部引入。
攪拌蒸發器係可用於自發酵液之液體部分去除水之另一類蒸發器。此裝置包含配備有攪拌器之外部套式加熱容器。在作業時，將液體部分視需要分批置於容器中。藉由在連續攪拌下沸騰至期望濃度使水蒸發出。此裝置可藉由使用可選浸沒加熱線圈以增加加熱表面來增加其蒸發速率。此類蒸發器尤其用於發酵液黏性較高時。
最後，螺旋管式蒸發器係可用於自發酵液之液體部分去除水之另一類蒸發器。該設計包含配備有螺旋加熱管道之熱交換器及底置式離心分離器。在作業時，液體部分自頂部至底部與蒸氣平行流動變成沸騰膜。膨脹之蒸氣對液體膜產生剪切、或推動作用。流動路徑之彎曲誘導二次流，二次流會干擾沿管道軸之移動。此湍流改進了傳熱且尤 其可用於黏性液體。與非螺旋筆直管道設計相比，加熱管道之螺旋構型有效地提供了較大加熱表面積-高度比。此裝置提供了較大蒸發比率從而容許單程作業。
如上所述，以雙效、三效、及多效構型使用上述任一類型之多個蒸發器可增加蒸發效率。改進作業效率之其他方法包含(例如)熱及機械蒸氣再壓縮。在一些實施例中，可使用多效構型、熱再壓縮、及機械再壓縮之任一組合來增加蒸發效率。
熱蒸氣再壓縮涉及將來自沸騰室(或分離器)之蒸氣再壓縮至較高壓力。對應於加熱室壓力之飽和蒸汽溫度較高從而蒸氣可再用於加熱。此係使用蒸汽噴射式蒸氣再壓縮機來達成，該蒸汽噴射式蒸氣再壓縮機係在蒸汽噴射式幫浦原理下進行作業。簡言之，蒸汽噴射原理使用蒸汽能量來產生真空並處理製程氣體。壓力下蒸汽進入噴嘴中並產生高速射流。此噴射作用產生可吸引並夾雜氣體之真空。在大氣壓下排出蒸汽與氣體之混合物。使用一定量蒸汽(稱作動力蒸汽)來操作熱再壓縮機。動力蒸汽轉移至下一效應或冷凝器中。過量蒸氣之能量大約相當於所用動力蒸汽量。
在配備有熱蒸氣再壓縮機之多效蒸發器中，第一排管中之加熱介質係來自一個相關效應並藉助蒸汽噴射器壓縮至較高溫度值的產物蒸氣。任一後一效應之加熱介質係前一排管中所生成之蒸氣。使用引入產物冷凝最終效應中之蒸氣，視需要補充有冷卻水。回收之所有水易於再循環至發酵液。
機械再壓縮機使用離開一個蒸發器之所有蒸氣。將蒸氣再壓縮至蒸發器之相應加熱蒸汽溫度的壓力。操作原理與熱幫浦相似。可視需要使用蒸氣冷凝物之能量來預加熱發酵液中液體部分之其他部分。藉由使用高壓風機或渦輪壓縮機來提供機械再壓縮。該等風機高速作業且在約1：1.2至約1：2之蒸氣壓縮比下適用於較大流速。合理速度可介 於約3,000rpm至約18,000rpm之間。在一些實施例中，尤其在使用高壓時，可使用多級壓縮機。
在配備有機械蒸氣再壓縮機之蒸發器中，第一效應中之加熱介質係在相同效應中產生且藉助高壓風機壓縮至較高溫度的蒸氣。視需要將來自高熱量區段之任何過量蒸氣冷凝或可用於高冷凝器中。
如上所述，存在許多可以各種能量有效性構型佈置之可能蒸發類型，其包含：多效、熱蒸氣再壓縮、機械蒸氣再壓縮、或該等之組合。最佳構型取決於許多因素，包含(例如)培養基鹽是在蒸發之前去除還是在蒸發期間經由結晶去除。對於在蒸發之前去除鹽之情形，低成本構型係有用的。實例性構型包含降膜三效蒸發器系統或機械蒸氣再壓縮系統。鹽在蒸發期間結晶之情形比較複雜，此乃因鹽之沉澱可能會使熱交換器表面結垢。用於此情形之實例性構型包含三重效應，其中(例如)前兩個效應係降膜蒸發器(在開始結晶之前)且最後的一個級係強制循環蒸發結晶器。
特定而言，1,4-BDO純化可在兩個蒸餾管柱系列中進行，但可使用更多蒸餾管柱。使用第一管柱分離水及其他輕成分與1,4-BDO，而使用第二管柱自任一殘餘重成分蒸餾1,4-BDO。蒸餾管柱可在真空下作業以降低所需溫度，並減少不期望反應、產物降解、及顏色形成。可將管柱中之壓力降降至最低以在底部再沸器中維持低溫。可藉由使用(例如)降膜再沸器將再沸器中之滯留時間降至最低以亦防止不期望反應、產物降解、及顏色形成。
彼等熟習此項技術者應認識到，各種構型之所列舉離心、過濾、離子交換、蒸發結晶器、蒸發器、及蒸餾裝置皆可用於純化目標化合物(包含1,4-BDO)。一種實例性構型包含(例如)圓盤堆疊式離心、超濾、蒸發結晶、離子交換、及蒸餾，如圖16之流程圖所示。因此，在一些實施例中，本發明提供自發酵液分離1,4-BDO之方法，其包含： 藉由圓盤堆疊式離心去除一部分固體以提供液體部分，藉由超濾自該液體部分去除另一部分固體，藉由蒸發結晶自該液體部分去除一部分鹽，藉由離子交換自該液體部分去除另一部分鹽，及蒸餾1,4-BDO。
如圖16中所示，首先藉由圓盤堆疊式離心去除細胞及固體。細胞可視需要再循環返回至發酵中。超濾去除細胞碎片、DNA、及沉澱之蛋白質。蒸發結晶去除一部分培養基鹽及水，培養基鹽及水中之任一者可視需要再循環返回至發酵中。蒸發結晶後，使剩餘液相經過離子交換管柱以去除其他鹽。如上所述，離子交換後，可在蒸發器系統中蒸發一部分水。蒸餾輕餾分、隨後蒸餾1,4-BDO以提供基本上純淨之1,4-BDO。
另一實例性構型包含圓盤堆疊式離心、超濾、奈米過濾、離子交換、蒸發、及蒸餾，如圖17中所示。因此，在一些實施例中，本發明提供自發酵液分離1,4-BDO之方法，其包含：藉由圓盤堆疊式離心去除一部分固體以提供液體部分，藉由超濾自該液體部分去除另一部分固體，藉由奈米過濾自該液體部分去除一部分鹽，藉由離子交換自該液體部分去除另一部分鹽，蒸發一部分水，及蒸餾1,4-BDO。
如圖17中所示，首先藉由圓盤堆疊式離心去除細胞及固體。細胞可視需要再循環返回至發酵中。超濾去除細胞碎片、DNA、及沉澱之蛋白質。奈米過濾去除一部分培養基鹽，培養基鹽可視需要再循環返回至發酵中。奈米過濾後，使滲透物經過離子交換管柱以去除其他鹽。如上所述，離子交換後，可在蒸發器系統中蒸發一部分水。蒸餾輕餾分、隨後蒸餾1,4-BDO以提供基本上純淨之1,4-BDO。
目標化合物可為產物可經改造用於微生物中之生物合成的任一化合物。本文所揭示之方法可用於沸點高於水之目標化合物。特定而言，目標化合物之沸點可介於約120℃與400℃之間。其他性質包含在水中之高溶解度或可混溶性及不能使鹽微溶(在使用蒸發結晶時)、及 分子量低於約100-150道爾頓之中性化合物(適用於奈米過濾)。
本文所述之方法及原理可用於自發酵液分離目標化合物，其中目標化合物具有上述一般性質。此一方法包含分離富含目標化合物之液體部分與包含細胞團之固體部分，隨後去除水及鹽，隨後純化。
在一些實施例中，本發明亦提供再循環發酵液成分之方法。發酵液可包含沸點高於水之1,4-BDO或任一目標化合物、能夠產生1,4-BDO或目標化合物之細胞、培養基鹽、及水。該方法包含分離富含1,4-BDO或目標化合物之液體部分與包含細胞之固體部分。然後使細胞再循環至發酵液中。可在自液體部分分離鹽之前或之後去除水。使來自液體部分之蒸發水再循環至發酵液中。可藉由以下方式自液體部分去除鹽並再循環至發酵液中：自液體部分去除水從而使鹽結晶，或藉由奈米過濾及/或離子交換。然後使自奈米過濾分離之鹽再循環至發酵液中。該方法提供可進一步藉由(例如)蒸餾純化之1,4-BDO或其他目標化合物。
在一些實施例中，產生目標化合物(例如1,4-BDO)之方法包含將產生化合物之微生物在發酵器中培養足夠時間以產生目標化合物。該有機體包含具有化合物路徑之微生物，該化合物路徑包括一或多個編碼化合物路徑酶之外源基因及/或一或多個基因破壞。產生化合物之方法亦包含藉由包含以下之方法分離化合物：分離富含目標化合物之液體部分與包括細胞之固體部分，自該液體部分去除水，自該液體部分去除鹽，及純化目標化合物。目標化合物具有高於水之沸點。
在一特定實施例中，產生1,4-BDO之方法包含將產生1,4-BDO之微生物在發酵器中培養足夠時間以產生1,4-BDO。有機體包含具有1,4-BDO路徑之微生物，該1,4-BDO路徑包含一或多個編碼化合物路徑酶之外源基因及/或一或多個基因破壞。產生1,4-BDO之方法亦包含藉由包含以下之方法分離化合物：分離富含目標化合物之液體部分與 包括細胞之固體部分，自該液體部分去除水，自該液體部分去除鹽，及純化目標化合物。
在目標產物係1,4-BDO之特定實施例中，藉由培養能夠經由一組1,4-BDO路徑酶產生1,4-BDO之微生物有機體來開始產生1,4-BDO。實例性微生物有機體包含(不限於)彼等闡述於美國專利第2009/0075351號及美國專利第2009/0047719號中者，其全部內容以引用方式併入本文中。
可提供納入一或多種編碼1,4-BDO路徑酶之外源核酸的有機體。該等有機體包含(例如)經改造具有完整1,4-BDO生物合成路徑之非天然存在之微生物有機體。該等路徑可包含由內源及外源核酸編碼之酶。微生物宿主中通常不存在之酶可藉由(例如)包含一或多個外源核酸來增加功能性以使路徑完整。一種此類1,4-BDO路徑包含編碼以下之酶：4-羥基丁酸脫氫酶、琥珀醯-CoA合成酶、CoA-依賴性琥珀酸半醛脫氫酶、4-羥基丁酸：CoA轉移酶、4-丁酸激酶、磷酸轉丁醯酶、α-酮戊二酸脫羧酶、醛脫氫酶、醇脫氫酶或醛/醇脫氫酶。
另一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：4-胺基丁酸CoA轉移酶、4-胺基丁醯基-CoA水解酶、4-胺基丁酸-CoA連接酶、4-胺基丁醯基-CoA氧化還原酶(脫胺)、4-胺基丁醯基-CoA轉胺酶、或4-羥基丁醯基-CoA脫氫酶。此一路徑可進一步包含4-羥基丁醯基-CoA還原酶(醇形成)、4-羥基丁醯基-CoA還原酶、或1,4-丁二醇脫氫酶。
又一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：4-胺基丁酸CoA轉移酶、4-胺基丁醯基-CoA水解酶、4-胺基丁酸-CoA連接酶、4-胺基丁醯基-CoA還原酶(醇形成)、4-胺基丁醯基-CoA還原酶、4-胺基丁-1-醇脫氫酶、4-胺基丁-1-醇氧化還原酶(脫胺)或4-胺基丁-1-醇轉胺酶。此一路徑可進一步包含1,4-丁二醇脫氫酶。
另一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：4-胺基丁酸激 酶、4-胺基丁醛脫氫酶(磷酸化)、4-胺基丁-1-醇脫氫酶、4-胺基丁-1-醇氧化還原酶(脫胺)、4-胺基丁-1-醇轉胺酶、[(4-胺基丁醯基)氧基]膦酸氧化還原酶(脫胺)、[(4-胺基丁醯基)氧基]膦酸轉胺酶、4-羥基丁醯基-磷酸脫氫酶、或4-羥基丁醛脫氫酶(磷酸化)。此一路徑可進一步包含1,4-丁二醇脫氫酶。
另一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：α-酮戊二酸5-激酶、2,5-二側氧基戊酸半醛脫氫酶(磷酸化)、2,5-二側氧基戊酸還原酶、α-酮戊二酸CoA轉移酶、α-酮戊二醯基-CoA水解酶、α-酮戊二醯基-CoA連接酶、α-酮戊二醯基-CoA還原酶、5-羥基-2-側氧基戊酸脫氫酶、α-酮戊二醯基-CoA還原酶(醇形成)、5-羥基-2-側氧基戊酸脫羧酶、或5-羥基-2-側氧基戊酸脫氫酶(脫羧)。此一路徑可進一步包含4-羥基丁醯基-CoA還原酶(醇形成)、4-羥基丁醯基-CoA還原酶、或1,4-丁二醇脫氫酶。
另一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：麩胺酸CoA轉移酶、麩胺醯基-CoA水解酶、麩胺醯基-CoA連接酶、麩胺酸5-激酶、麩胺酸-5-半醛脫氫酶(磷酸化)、麩胺醯基-CoA還原酶、麩胺酸-5-半醛還原酶、麩胺醯基-CoA還原酶(醇形成)、2-胺基-5-羥基戊酸氧化還原酶(脫胺)、2-胺基-5-羥基戊酸轉胺酶、5-羥基-2-側氧基戊酸脫羧酶、或5-羥基-2-側氧基戊酸脫氫酶(脫羧)。此一路徑可進一步包含4-羥基丁醯基-CoA還原酶(醇形成)、4-羥基丁醯基-CoA還原酶、或1,4-丁二醇脫氫酶。
另一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：3-羥基丁醯基-CoA脫氫酶、3-羥基丁醯基-CoA脫水酶、乙烯基乙醯基-CoA △-異構酶、或4-羥基丁醯基-CoA脫水酶。此一路徑可進一步包含4-羥基丁醯基-CoA還原酶(醇形成)、4-羥基丁醯基-CoA還原酶、或1,4-丁二醇脫氫酶。
另一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：高絲胺酸脫胺酶、高絲胺酸CoA轉移酶、高絲胺酸-CoA水解酶、高絲胺酸-CoA連接酶、高絲胺酸-CoA脫胺酶、4-羥基丁-2-烯醯基-CoA轉移酶、4-羥基丁-2-烯醯基-CoA水解酶、4-羥基丁-2-烯醯基-CoA連接酶、4-羥基丁-2-烯酸還原酶、4-羥基丁醯基-CoA轉移酶、4-羥基丁醯基-CoA水解酶、4-羥基丁醯基-CoA連接酶、或4-羥基丁-2-烯醯基-CoA還原酶。此一路徑可進一步包含4-羥基丁醯基-CoA還原酶(醇形成)、4-羥基丁醯基-CoA還原酶、或1,4-丁二醇脫氫酶。
另一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：琥珀醯-CoA還原酶(醇形成)、4-羥基丁醯基-CoA水解酶、4-羥基丁醯基-CoA連接酶、或4-羥基丁醛脫氫酶(磷酸化)。此一路徑可進一步包含琥珀醯-CoA還原酶、4-羥基丁酸脫氫酶、4-羥基丁醯基-CoA轉移酶、4-羥基丁酸激酶、磷酸轉移-4-羥基丁醯基酶、4-羥基丁醯基-CoA還原酶、4-羥基丁醯基-CoA還原酶(醇形成)、或1,4-丁二醇脫氫酶。
另一路徑可包含一或多種編碼以下之外源核酸：麩胺酯脫氫酶、4-胺基丁酸氧化還原酶(脫胺)、4-胺基丁酸轉胺酶、麩胺酸脫羧酶、4-羥基丁醯基-CoA水解酶、4-羥基丁醯基-CoA連接酶、或4-羥基丁醛脫氫酶(磷酸化)。此一路徑可進一步包含α-酮戊二酸脫羧酶、4-羥基丁酸脫氫酶、4-羥基丁醯基-CoA轉移酶、4-羥基丁酸激酶、磷酸轉移-4-羥基丁醯基酶、4-羥基丁醯基-CoA還原酶、4-羥基丁醯基-CoA還原酶(醇形成)、或1,4-丁二醇脫氫酶。
除基因插入外或代替該等基因插入，有機體可包含基因破壞以引導碳通量朝向合成1,4-BDO之方向。該等有機體包含(例如)具有一組代謝修飾之非天然存在的微生物，該等代謝修飾使1,4-丁二醇產生與生長偶聯。在一些實施例中，1,4-丁二醇產生並不與生長偶聯。該代謝修飾組可包含一或多個基因破壞、或其直系同源物。在一些實施例 中，破壞可包含完全基因缺失。破壞亦可包含經由去除啟動子序列及諸如此類進行修飾。對於1,4-BDO產生而言，一組代謝修飾可包含(例如)adhE及ldhA之破壞。其他破壞可包含基因mdh。其他破壞可包含一或多種選自包含mqo、aspA、sfcA、maeB、pntAB、及gdhA之基因組的基因。其他破壞可包含一或多種選自包含pykA、pykF、dhaKLM、deoC、edd、yiaE、ycdW、prpC、及gsk之基因組的基因。其他破壞可包含pflAB之破壞。一組實例性破壞可包含一或多種選自包括adhE、ldhA、pflAB、mdh、及aspA之基因組的基因，包含基因adhE、ldhA、pflAB、mdh、及aspA中每一者之破壞。
其他實例性破壞組包含adher、nadh6；adher、ppck；adher、sucd4；adher、atps4r；adher、fum；adher、mdh；adher、pfli、ppck；adher、pfli、sucd4；adher、ackr、nadh6；adher、nadh6、pfli；adher、aspt、mdh；adher、nadh6、ppck；adher、ppck、thd2；adher、atps4r、ppck；adher、mdh、thd2；adher、fum、pfli；adher、ppck、sucd4；adher、glcpts、ppck；adher、gludy、mdh；adher、gludy、ppck；adher、fum、ppck；adher、mdh、ppck；adher、fum、gludy；adher、fum、hex1；adher、hex1、pfli；adher、hex1、thd2；adher、frd2、ldh_d、mdh；adher、frd2、ldh_d、me2；adher、mdh、pgl、thd2；adher、g6pdhy、mdh、thd2；adher、pfli、ppck、thd2；adher、ackr、akgd、atps4r；adher、glcpts、pfli、ppck；adher、ackr、atps4r、sucoas；adher、gludy、pfli、ppck；adher、me2、pfli、sucd4；adher、gludy、pfli、sucd4；adher、atps4r、ldh_d、sucd4；adher、fum、hex1、pfli；adher、mdh、nadh6、thd2；adher、atps4r、mdh、nadh6；adher、atps4r、fum、nadh6；adher、aspt、mdh、nadh6；adher、aspt、mdh、thd2；adher、atps4r、glcpts、sucd4；adher、atps4r、gludy、mdh；adher、atps4r、mdh、 ppck；adher、atps4r、fum、ppck；adher、aspt、glcpts、mdh；adher、aspt、gludy、mdh；adher、me2、sucd4、thd2；adher、fum、ppck、thd2；adher、mdh、ppck、thd2；adher、gludy、mdh、thd2；adher、hex1、pfli、thd2；adher、atps4r、g6pdhy、mdh；adher、atps4r、mdh、pgl；adher、ackr、frd2、ldh_d；adher、ackr、ldh_d、sucd4；adher、atps4r、fum、gludy；adher、atps4r、fum、hex1；adher、atps4r、mdh、thd2；adher、atps4r、frd2、ldh_d；adher、atps4r、mdh、pgdh；adher、glcpts、ppck、thd2；adher、gludy、ppck、thd2；adher、fum、hex1、thd2；adher、atps4r、me2、thd2；adher、fum、me2、thd2；adher、glcpts、gludy、ppck；adher、me2、pgl、thd2；adher、g6pdhy、me2、thd2；adher、atps4r、frd2、ldh_d、me2；adher、atps4r、frd2、ldh_d、mdh；adher、aspt、ldh_d、mdh、pfli；adher、atps4r、glcpts、nadh6、pfli；adher、atps4r、mdh、nadh6、pgl；adher、atps4r、g6pdhy、mdh、nadh6；adher、ackr、fum、gludy、ldh_d；adher、ackr、gludy、ldh_d、sucd4；adher、atps4r、g6pdhy、mdh、thd2；adher、atps4r、mdh、pgl、thd2；adher、aspt、g6pdhy、mdh、pyk；adher、aspt、mdh、pgl、pyk；adher、aspt、ldh_d、mdh、sucoas；adher、aspt、fum、ldh_d、mdh；adher、aspt、ldh_d、mals、mdh；adher、aspt、icl、ldh_d、mdh；adher、frd2、gludy、ldh_d、ppck；adher、frd2、ldh_d、ppck、thd2；adher、ackr、atps4r、ldh_d、sucd4；adher、ackr、acs、ppc、ppck；adher、gludy、ldh_d、ppc、ppck；adher、ldh_d、ppc、ppck、thd2；adher、aspt、atps4r、glcpts、mdh；adher、g6pdhy、mdh、nadh6、thd2；adher、mdh、nadh6、pgl、thd2；adher、atps4r、g6pdhy、glcpts、mdh；adher、atps4r、glcpts、mdh、pgl；及adher、ackr、ldh_d、mdh、sucd4。上述基因以及該等 基因所催化之反應包含於下表1a中剔除候選者之較廣泛列表中。
表1a中代謝產物之縮寫示於下表1b中。
納入上述基因破壞之任一組合的任一非天然存在微生物亦可包含至少一種外源核酸之基因插入。上述基因插入路徑中之任一者可與基因破壞整合至一起。舉例而言，包含基因adhE、ldhA、pflAB、mdh、及aspA之破壞的路徑亦可包含插入4-羥基丁酸脫氫酶、CoA依賴性琥珀半醛脫氫酶、琥珀醯-CoA合成酶、CoA依賴性琥珀半醛脫氫酶、4-羥基丁酸：CoA轉移酶、麩胺酸：琥珀半醛轉胺酶、麩胺酸脫羧酶、CoA獨立性醛脫氫酶、CoA依賴性醛脫氫酶或醇脫氫酶。下表2匯總了用於產生1,4-BDO之納入基因破壞與基因插入之組合的實例性經改造有機體。注意：基因插入可呈染色體插入或提供質粒之形式。
表2中匯總之菌株如下：菌株1：大腸桿菌MG1655之單缺失衍生物，其中缺失內源性ldhA；質粒表現大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、牙齦卟啉單胞菌Cat2、丙酮丁醇梭菌AdhE2。菌株2：宿主菌株AB3，其係產生琥珀酸酯之菌株，係大腸桿菌MG1655之衍生物，其中缺失內源性adhE ldhA pflB；質粒表現大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、牙齦卟啉單胞菌Cat2、丙酮丁醇梭菌AdhE2。
菌株3：宿主菌株ECKh-138，其中缺失內源性adhE、ldhA、pflB，缺失內源性lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys 突變之肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)lpdA；質粒表現大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、牙齦卟啉單胞菌Cat2、丙酮丁醇梭菌AdhE2；菌株提供lpdA之改良以增加丙酮酸脫氫酶通量。菌株4：宿主菌株ECKh-138，缺失內源性adhE、ldhA、pflB、及lpdA，染色體插入具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA；質粒表現大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、丙酮丁醇梭菌buk1、丙酮丁醇梭菌ptb、丙酮丁醇梭菌AdhE2。
菌株5：宿主菌株ECKh-401，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA；質粒表現大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、牙齦卟啉單胞菌Cat2、丙酮丁醇梭菌AdhE2；菌株缺失mdh及arcA以引導通量通過氧化性TCA循環。菌株6：宿主菌株ECKh-401，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA；質粒表現牛型結核分枝桿菌sucA、大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、牙齦卟啉單胞菌Cat2、丙酮丁醇梭菌AdhE2。
菌株7：宿主菌株ECKh-422，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換；質粒表現大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、牙齦卟啉單胞菌Cat2、丙酮丁醇梭菌AdhE2；菌株在檸檬酸合成酶中存在突變以改良厭氧活性。菌株8：菌株ECKh-422，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源 mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換；質粒表現牛型結核分枝桿菌sucA、大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、牙齦卟啉單胞菌Cat2、丙酮丁醇梭菌AdhE2。菌株9：宿主菌株ECKh-422，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，使用gltA Arg163Leu突變體染色體置換gltA；質粒表現牛型結核分枝桿菌sucA、大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd、牙齦卟啉單胞菌Cat2、拜氏梭菌Ald。
菌株10：宿主菌株ECKh-426，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd；質粒表現牙齦卟啉單胞菌Cat2、拜氏梭菌Ald；菌株在fimD基因座處具有整合至菌株ECKh-422中之上游路徑的琥珀酸酯分支。菌株11：宿主菌株ECKh-432，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd；質粒表現牙齦卟啉單胞菌Cat2、拜氏梭菌Ald；菌株具有整合至ECKh-422中之琥珀酸酯及α-酮戊二酸酯上游路徑分支。菌株12：宿主菌株ECKh-432，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置 換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd；質粒表現丙酮丁醇梭菌buk1、丙酮丁醇梭菌ptb、拜氏梭菌Ald。
菌株13：宿主菌株ECKh-439，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，缺失內源ackA，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd；質粒表現牙齦卟啉單胞菌Cat2、拜氏梭菌Ald；菌株使菌株ECKh-432中之乙酸激酶缺失。菌株14：宿主菌株ECKh-453，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，缺失內源ackA，缺失內源ppc且在ppc基因座處插入流感嗜血桿菌(Haemophilus influenza)ppck，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd；質粒表現牙齦卟啉單胞菌Cat2、拜氏梭菌Ald；菌株具有菌株ECKh-432中之乙酸激酶缺失及PPC/PEPCK置換。
菌株15：宿主菌株ECKh-456，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd，使用fnr結合位點、pflB- p6啟動子及pflB之RBS置換lpdA啟動子；質粒表現牙齦卟啉單胞菌Cat2、拜氏梭菌Ald；菌株使用菌株ECKh-432中之厭氧啟動子置換lpdA啟動子。菌株16：宿主菌株ECKh-455，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbdI，使用fnr結合位點、pflB-p6啟動子及pflB之RBS置換pdhR及aceEF啟動子；質粒表現牙齦卟啉單胞菌Cat2、拜氏梭菌Ald；菌株使用ECKh-432中之厭氧啟動子置換pdhR及aceEF啟動子。
菌株17：宿主菌株ECKh-459，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入丙酮丁醇梭菌buk1、丙酮丁醇梭菌ptb；質粒表現拜氏梭菌Ald；菌株使BK/PTB整合至菌株ECKh-432中。菌株18：宿主菌株ECKh-459，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且染色體插入在lpdA基因座處具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入丙酮丁醇梭菌buk1、丙酮丁醇梭菌ptb；質粒表現拜氏梭菌Ald、熱葡糖苷酶地芽孢 桿菌adh1。
菌株19：宿主菌株ECKh-463，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且在lpdA基因座處染色體插入具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd，在rrnC基因座處插入非PTS蔗糖操縱子基因蔗糖通透酶(cscB)、D-果糖激酶(cscK)、蔗糖水解酶(cscA)、及LacI相關性蔗糖特異性抑制子(cscR)；質粒表現牙齦卟啉單胞菌Cat2、拜氏梭菌Ald；菌株具有插入至菌株ECKh-432中之非PTS蔗糖基因。菌株20：宿主菌株ECKh-463，缺失內源adhE、ldhA、pflB，缺失內源lpdA且在lpdA基因座處染色體插入具有Glu354Lys突變之肺炎克雷伯菌lpdA，缺失內源mdh及arcA，gltA用gltA Arg163Leu突變體進行染色體置換，在fimD基因座處染色體插入大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd，在fimD基因座處染色體插入牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd，在rrnC基因座處插入非PTS蔗糖操縱子；質粒表現丙酮丁醇梭菌buk1、丙酮丁醇梭菌ptb、拜氏梭菌Ald。
經改造用於經由磷酸轉移酶(PTS)系統利用蔗糖的菌株產生大量丙酮酸酯副產物。因此，使用非PTS蔗糖系統可用來降低丙酮酸酯的形成，此乃因在將磷酸烯醇丙酮酸(PEP)轉化成丙酮酸酯將無法伴隨引入蔗糖。此將增加PEP彙集物及草醯乙酸酯通過PPC或PEPCK之通量。
可將非PTS蔗糖操縱子插入至rrnC區域中。為生成含有由與rrnC區域同源之區域側接之非PTS蔗糖基因之PCR產物，使用兩個寡核苷酸來PCR放大來自Mach1TM(Invitrogen,Carlsbad,CA)之csc基因。此 菌株係W菌株之派生物，該W菌株係已知能夠使蔗糖分解代謝之大腸桿菌菌株(Orencio-Trejo等人，Biotechnology Biofuels 1：8(2008))。序列係衍生自大腸桿菌W菌株KO11(登記號AY314757)(Shukla等人，Biotechnol.Lett.26：689-693(2004))且包含編碼蔗糖通透酶(cscB)、D-果糖激酶(cscK)、蔗糖水解酶(cscA)、及LacI相關性蔗糖特異性抑制子(cscR)之基因。藉由置放引物來有效去除cscR之前53個胺基酸。純化後，將PCR產物電穿孔至MG1655電穿孔勝任細胞(electrocompetent cell)中，該等MG1655電穿孔勝任細胞已經pRedET(tet)轉化且根據製造商說明書製得(www.genebridges.com/gb/pdf/K001%20Q%20E%20BAC%20 Modification%20Kit-version2.6-2007-screen.pdf)。設計PCR產物以使其基因組整合至染色體之rrnC區域中。其有效地缺失rrlC(23S rRNA)上游之191個核苷酸、所有rrlC rRNA基因及rrlC下游之3個核苷酸並使用蔗糖操縱子進行置換。藉由P1轉導將整個rrnC：：crcAKB區域轉移至BDO宿主菌株ECKh-432中(Sambrook等人，Molecular Cloning：A Laboratory Manual，第三版，Cold Spring Harbor Laboratory,New York(2001))，從而得到ECKh-463(△adhE △ldhA △pflB △lpdA：：K.p.lpdA322 △mdh △arcA gltAR163L fimD：：大腸桿菌sucCD、牙齦卟啉單胞菌sucD、牙齦卟啉單胞菌4hbd fimD：：牛型結核分枝桿菌sucA、克氏羧菌4hbd rrnC：：cscAKB)。藉由在蔗糖上生長來選擇重組體並藉由診斷型PCR來證實之。
在培養產生化合物或產生1,4-BDO之有機體之前，可藉由(例如)加熱滅菌來處理原料進料(例如蔗糖糖漿)及培養基成分，隨後添加至生產生物反應器中以去除任何生物污染物。根據一些實施例，原料可包含(例如)用於發酵BDO之蔗糖或葡萄糖。在一些實施例中，原料可包含合成氣。用於支持微生物生長之額外培養基成分包含(例如)鹽、氮源、緩衝液、痕量金屬、及用於控制pH之鹼。發酵液之實例性培 養基包裝的主要成分(以g/L表示)示於下表3中。
碳源類型可變化很大且可包含葡萄糖、果糖、乳糖、蔗糖、麥芽糖糊精、澱粉、菊粉、甘油、植物油(例如大豆油)、烴、醇(例如甲醇及乙醇)、有機酸(例如乙酸酯)、合成氣、及CO、CO2、與H2之類似組合。術語「葡萄糖」包含葡萄糖糖漿，亦即包括葡萄糖寡聚物之葡萄糖組合物。植物及得自植物之生物質材料可為低成本原料源。該原料可包含(例如)玉米、大豆、棉花、亞麻子、油菜籽、甘蔗及棕櫚油。生物質可經受酶或化學物質調介之水解以釋放受質，可進一步經由生物催化處理該等受質以產生目標化學產物。該等受質包含共同自生物質之纖維素、半纖維、及木素部分得到之以下物質的混合物：碳水化合物、以及芳族化合物及其他產物。自生物質生成之碳水化合物係富含包含諸如以下之5碳及6碳糖的混合物：蔗糖、葡萄糖、木糖、阿拉伯糖、半乳糖、甘露糖、及果糖。
可以固體、液體、或氣體形式向培養物中添加碳源。可以受控方式添加碳源以避免因過量加料而在細胞上產生應力。就此而言，如下文進一步所述，分批加料及連續培養係有用之培養方式。
氮源類型可變化很大且可包含尿素、氫氧化銨、銨鹽(例如硫酸銨、磷酸銨、氯化銨及硝酸銨)、其他硝酸鹽、胺基酸(例如麩胺酸酯及離胺酸)、酵母萃取物、酵母自溶產物、酵母氮鹼基、蛋白質水解 物(包含但不限於腖、酪蛋白水解物，例如胰蛋白腖及酪蛋白胺基酸)、大豆粉、Hy-Soy、胰酶大豆肉湯、棉籽粕、麥精萃取物、玉米漿及糖蜜。
可藉由添加酸或鹼來控制培養物之pH。因pH在培養期間可能下降，故若需要可添加鹼。適宜鹼之實例包含NaOH及NH4OH。
用於產生目標化合物(例如1,4-BDO)之實例性細胞生長程序包含分批發酵、使用分批分離之分批加料發酵、使用連續分離之分批加料發酵、及使用連續分離之連續發酵。所有該等方法在業內皆已眾所周知。端視有機體之設計而定，可在需氧或厭氧條件下實施發酵。在一些實施例中，將培養物之溫度保持在約30℃至約45℃之間，包含31℃、32℃、33℃、34℃、35℃、36℃、37℃、38℃、39℃、40℃、41℃、42℃、43℃、及44℃。
在分批發酵中，使用製備之培養基填充發酵罐(或生物反應器)以支持生長。適當調節用於微生物發酵之溫度及pH，且添加任一額外補充物。將產生1,4-BDO之有機體的接種物添加至發酵器中。在分批發酵中，發酵通常進行固定時間段且然後分離發酵產物。可分批重複該過程。
在分批加料發酵中，向發酵生物反應器中連續或定期添加新鮮培養基。體積固定之分批加料發酵係一類分批加料發酵，其中在未稀釋培養物之情形下供給碳源。亦可藉由以濃縮液體或氣體形式供給生長碳源來將培養物體積維持為接近恆定。在另一類體積固定之分批加料培養中(有時稱作循環分批加料培養)，定期取出一部分培養物並用作另一分批加料過程之起始點。一旦發酵達到某一階段，立即去除培養物且使用無菌水或含有碳進料受質之培養基將生物質稀釋至初始體積。稀釋降低了生物質濃度並致使特定生長速率增加。隨後，隨著進料開始，生長速率將隨著生物質增加並再次達到容器中可承受之最大 值(此時可再次稀釋培養物)而逐漸降低。或者，分批加料發酵可具有可變體積。在體積可變之模式中，隨著向培養物中連續添加營養素及培養基而並不去除一部分發酵液，發酵液體積隨發酵時間變化。
在連續發酵中，在分泌產物時，通常隨著連續分離所消耗培養基(可包含目標產物，例如1,4-BDO)而連續添加新鮮培養基。連續培養之一特徵在於可獲得時間獨立性穩態，其能夠確定微生物行為與環境條件間之關係。藉助恒化器、或相似生物反應器來達成此穩態。恒化器使得可連續添加新鮮培養基同時連續去除培養物液體以保持培養物體積恆定。藉由改變向恒化器添加培養基之速率，可控制微生物之生長速率。
目標化合物(例如1,4-BDO)之連續及/或近連續產生可包含：在足夠營養素及培養基中培養產生化合物之有機體以維持及/或接近維持指數期生長。在該等條件下之連續培養可包含(例如)1天、2天、3天、4天、5天、6天或7天或更長。此外，連續培養可包含1週、2週、3週、4週或5週或更多週及多達數月。或者，若適用於特定應用，可將產生目標化合物之有機體培養數小時。應理解，連續及/或近連續培養條件亦可包含該等實例性時間之間的所有時間間隔。應進一步理解，產生化合物之微生物有機體的培養時間係產生足夠量期望目的用產物之足夠時間。
在一些實施例中，培養可在需氧條件下實施。可控制向培養物之氧進料。可以空氣、富集氧、純氧或其任一組合之形式供應氧。業內已熟知監測氧濃度之方法。可藉由以下方式遞送氧：以某一進料速率遞送，或可藉由量測培養物中溶解之氧含量並相應地出於維持溶解之氧含量恆定而進料來按需遞送。在其他實施例中，可在實質上厭氧條件下實施培養。實質上厭氧係指氧量小於液體培養基中所溶解氧之飽和量的約10%。厭氧條件包含使用氧小於約1%之氣氛維持之液體或固 體培養基的密封室。
可在厭氧條件下實施發酵。舉例而言，可藉由以下方式使培養物實質上無氧：首先使用氮吹掃培養基且然後密封培養物容器(例如，可使用隔膜及捲曲蓋密封燒瓶)。亦可藉由提供用於限量曝氣之小孔來使用微氧條件。在商業規模中，藉由如同需氧情形一般使用空氣或氧吹掃發酵器來達成微氧條件，但吹掃速率遠低於需氧情形且使用嚴格控制之攪拌。
在一些實施例中，可使用經遺傳修飾之大腸桿菌在厭氧分批發酵中來產生目標化合物(包含1,4-BDO)。在發酵中，將一部分原料受質用於細胞生長且將另一部分受質轉化成其他發酵副產物。可向發酵液中添加過量培養基成分(例如鹽、緩衝液、氮等)以支持細胞生長。因此，發酵液係水、目標化合物、副產物、殘餘培養基、殘餘受質、及原料/培養基雜質之複雜混合物。自該發酵液分離目標化合物並純化。實例性發酵液之組成示於下表4中。
經由基於發酵之生物合成生產過程，可達成約5-15重量%之1,4-BDO產物濃度。
應理解，不會實質上影響本發明各實施例之作用的修改亦包含於本文所提供之本發明定義內。因此，下列實例意欲加以闡釋但並不限制本發明。
實例I 發酵液之離心
此實例展示使用圓盤堆疊式離心機自發酵液去除細胞團及其他固體。
經由離心淨化藉由經遺傳修飾大腸桿菌產生之1,4-丁二醇發酵液。使用GEA-Westfalia圓盤堆疊式離心機進行此步驟。實驗室規模之CTC 1 Whispefuge型離心機具有1.0升之轉筒容量及0.55升之固體保持空間。使用高拉伸強度不銹鋼來構造轉筒罩、分配器、圓盤堆疊、及所有過程濕件。使用蠕動幫浦來控制向離心機單元之進料，且將流速保持恆定於約0.25升/分鐘。藉由使用調節閥對出口濃縮物流進行節流來將系統中之反壓維持於約15psi。使離心機在12,000rpm下作業並在環境室溫下進料。離心可自發酵液去除細胞生物質及不溶性材料。藉由濁度來表示細胞生物質及不溶性材料之濃度，如藉由600nm下之光學密度(OD)所量測。進料發酵液及淨化濃縮物之濁度數據示於表5中。進料在視覺上係渾濁的且所量測之OD為13.3。淨化濃縮物在視覺上較澄清且所量測之OD為0.18。總體而言，濁度降低約99%，此表明藉由圓盤堆疊式離心機可獲得優異淨化效果。
實例II 發酵液之超濾
此實例展示在藉由實例I所實施之離心去除細胞團及其他固體後發酵液之超濾。
使用GEA實驗室規模之L型過濾單元來進一步淨化實例1中所產生之產物。L型過濾單元配備有Hydranautics 5K PES平板膜。總安裝膜面積為0.144m2。藉由調節入口流及反壓調節閥將透膜壓力維持於約36psi。使用入口熱交換器將進料溫度維持於約27℃。量測整個實驗過程中之滲透物流速以確定通量。表6展示隨體積濃度因子(VCF)變化之滲透物通量(以升/m2/h表示)。
亦在實驗中抽取試樣以確定滲透物品質。使用Bradford分析量測進料及滲透物中之蛋白質濃度。表7展示進料、滲透物及滯留物中之蛋白質濃度。與進料相比，滲透物中之蛋白質濃度降低約68%。
實例III 發酵液之奈米過濾
此實例展示在實例II中實施之超濾後發酵液之奈米過濾。
GEA實驗室規模之L型過濾單元配備有GE DK奈米過濾平板膜。總安裝膜面積為0.072m2。使用此設置來過濾自實例2獲得之UF滲透物。藉由調節入口流及反壓調節閥將透膜壓力維持於約270psi。使用入口熱交換器將進料溫度維持於38℃。量測整個實驗過程中之滲透物流量以確定通量。表8展示隨體積濃度因子(VCF)變化之通量(以升/m2/h表示)。
亦在實驗中抽取試樣以確定滲透物品質。使用LC-MS量測有機酸，使用層析(IC)分析鹽離子，且使用Analox G6分析儀量測葡萄糖。表9展示葡萄糖、離子、及有機酸之截留百分比。在進料之pH下，預計有機酸以其鹽形式存在。奈米過濾滲透物亦具有可視之顏色減弱，其自進料中之深黃色變成極滲透物產物中之極淡黃色。
實例IV 發酵液之離子交換
此實例展示在實例III中實施之奈米過濾後發酵液之離子交換層析純化。
經由離子交換步驟處理自實例III獲得之奈米過濾滲透物以去除剩餘離子並進一步淨化產物。在此步驟中使用強酸性陽離子交換樹脂Amberlite IR 120H及弱鹼性陰離子交換樹脂Amberlite IRA 67。分別使用5.3×10-3ft3之陽離子及陰離子交換樹脂來裝填各個陽離子及陰離子交換管柱(2ft高×1英吋直徑)。在10mL/min及40℃下，將奈米過濾滲透物首先供給至陽離子交換管柱，且然後供給至陰離子交換管柱。經由IC分析離子交換之離子含量。去除所有剩餘離子以達成小於0.1mEq/L之濃度。亦在此步驟中去除所有剩餘有機酸。產物極澄清且無可見黃色。
實例V 合成進料之蒸發結晶
此實例展示藉助旋轉蒸發器在實驗室規模中藉由蒸發結晶去除來自合成進料之鹽。
使用Buchi Rotavap R-205在50℃之浴溫及約100mm Hg之真空下實施蒸發。使用含有約92mEq/L單價陽離子、5mEq/L二價陽離子及125mEq/L陰離子之約8% BDO水溶液來製備合成進料材料。自此混合物蒸發掉水同時鹽離子自溶液發生沉澱。藉由提取較小等份試樣以藉由離子層析進行分析來監測整個蒸發過程中溶液中之離子濃度。在分析前，濾出沉澱之固體。表10展示隨著將BDO自約10%濃縮至95%溶液中之離子濃度(在進料試樣中標準化至100%)。溶液中之離子濃度增至飽和點(在約30% BDO時)。自此之後，進-步蒸發將迫使鹽結晶(沉澱)。總體而言，此蒸發結晶步驟使97.5%之鹽離子自BDO溶液發 生沉澱。
實例VI 鹽溶解度
此實例展示在各種小碳鏈二醇(包含1,4-BDO)中之鹽溶解度特徵。
量測鹽在含有不同量1,4-丁二醇(BDO)、1,3-丙二醇(PDO)或1,2-乙二醇(單乙二醇，MEG)之不同溶液中的溶解度。向10mL溶液中添加鹽直至溶液飽和。使用離子層析量測飽和鹽溶解度。表11展示四種不同鹽在室溫下(約20℃)之鹽溶解度。鹽溶解度隨BDO濃度增加而顯著降低，此表明可使用蒸發結晶去除鹽。表12展示三種不同鹽在室溫下於不同濃度之1,4-BDO、PDO或MEG溶液中的鹽溶解度。結果顯示，鹽溶解度自MEG至PDO至1,4-BDO逐漸降低，此證實1,4-BDO在三種化合物中最適用於蒸發結晶。
表11.四種不同鹽在含有0-100%之1,4-丁二醇(1,4-BDO)之溶液中的溶解度
在此申請案通篇中，各公開案皆已在括號內提及。該等公開案之揭示內容的全部內容皆以引用方式併入本申請案中，從而更全面地闡述本發明所涉及領域之狀態。
儘管已參照所揭示實施例對本發明進行闡述，但彼等熟習此項技術者應不難瞭解，上文詳述之具體實例及研究僅用於闡釋本發明。應理解，可在不背離本發明精神之情形下作出各種修改。因此，本發明 僅由下列申請專利範圍限制。

Claims (21)

  1. 一種自發酵液分離1,4-丁二醇(1,4-BDO)之方法，其包括：自包括細胞之該發酵液的固體部分中分離富含1,4-BDO之該發酵液之液體部分，其中自該發酵液之固體部分中分離該發酵液之液體部分之步驟係實質上由微過濾或超濾所組成，且其中該發酵液包括以1,4-BDO之重量計，約5%-15%濃度之1,4-BDO；自該液體部分去除水；自該液體部分去除鹽，其中該鹽係藉由奈米過濾並藉由離子交換去除；及純化1,4-BDO。
  2. 如請求項1之方法，其中該分離該液體部分之步驟實質上由微過濾所組成。
  3. 如請求項1之方法，其中該微過濾包括經由孔徑為0.05微米至5.0微米之膜過濾。
  4. 如請求項1之方法，其中該分離該液體部分之步驟實質上由超濾所組成。
  5. 如請求項1之方法，其中該超濾包括經由孔徑為約0.005微米至約0.1微米之膜過濾。
  6. 如請求項1之方法，其中去除水係藉由使用包括一或多重效應之蒸發器系統進行蒸發來達成。
  7. 如請求項6之方法，其中該蒸發器系統包括雙效或三效蒸發器。
  8. 如請求項6之方法，其中該蒸發器系統進一步包括熱再壓縮機。
  9. 如請求項6之方法，其中該蒸發器系統進一步包括機械再壓縮機。
  10. 如請求項6之方法，其中該蒸發器系統包括選自由以下組成之群之蒸發器：降膜蒸發器、短程降膜蒸發器、強制循環蒸發器、板式蒸發器、循環蒸發器、流化床蒸發器、升膜蒸發器、逆流-滴流蒸發器、攪拌蒸發器、及螺旋管式蒸發器。
  11. 如請求項6之方法，其中該蒸發器系統包括真空。
  12. 如請求項1之方法，其中實質上所有鹽皆在去除水之前去除。
  13. 如請求項1之方法，其中實質上所有鹽皆在去除一部分水之後去除。
  14. 如請求項1之方法，其中鹽係在去除實質上所有水之後去除。
  15. 如請求項1之方法，其中奈米過濾包括經由孔徑介於約0.0005微米至約0.005微米間之膜過濾。
  16. 如請求項1之方法，其中使包括細胞之該固體部分再循環至該發酵液中。
  17. 如請求項1之方法，其中使該去除之水再循環至該發酵液中。
  18. 如請求項1之方法，其中使該去除之鹽再循環至該發酵液中。
  19. 如請求項1之方法，其中1,4-BDO之純化包括蒸餾。
  20. 如請求項1之方法，其中藉由離子交換去除鹽包括藉由陽離子交換隨後藉由陰離子交換去除鹽。
  21. 一種產生1,4-BDO之方法，其包括：將產生1,4-BDO之微生物在發酵器中培養足夠時間以產生1,4-BDO，該產生1,4-BDO之微生物包括具有1,4-BDO路徑之微生物，該1,4-BDO路徑包括一或多個編碼1,4-BDO路徑酶之外源基因及/或一或多個基因破壞；藉由如請求項1之方法分離1,4-BDO。
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Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TWI691592B (zh) * 2009-06-04 2020-04-21 美商奇諾麥提卡公司 分離發酵液成分之方法

Families Citing this family (80)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20080184589A1 (en) * 2007-02-02 2008-08-07 The Shivvers Group, Inc., An Iowa Corporation High efficiency drier with heating and drying zones
EP2304039B1 (en) 2008-06-17 2019-08-21 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for the biosynthesis of fumarate, malate, and acrylate
EP3514242A3 (en) 2008-09-10 2019-08-28 Genomatica, Inc. Microrganisms for the production of 1,4-butanediol
KR20110097951A (ko) 2008-12-16 2011-08-31 게노마티카 인코포레이티드 합성가스와 다른 탄소원을 유용 제품으로 전환시키기 위한 미생물 및 방법
US8420375B2 (en) * 2009-06-10 2013-04-16 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for carbon-efficient biosynthesis of MEK and 2-butanol
KR20120083908A (ko) 2009-10-13 2012-07-26 게노마티카 인코포레이티드 1,4-부탄다이올, 4-하이드록시부탄알, 4-하이드록시부티릴-ｃｏａ, 푸트레신 및 관련 화합물의 제조를 위한 미생물 및 관련 방법
KR20120120493A (ko) 2009-12-10 2012-11-01 게노마티카 인코포레이티드 합성 가스 또는 기타 가스상 탄소원 및 메탄올을 1,3-부탄디올로 변환하는 방법 및 변환용 유기체
US8455242B2 (en) 2010-02-22 2013-06-04 Hyclone Laboratories, Inc. Mixing system with condenser
US8445244B2 (en) * 2010-02-23 2013-05-21 Genomatica, Inc. Methods for increasing product yields
WO2012047122A1 (en) * 2010-10-07 2012-04-12 Anthony James Styles Lactose production
US9018424B2 (en) * 2011-03-30 2015-04-28 Toray Industries, Inc. Method of producing diol or triol
CN103987852B (zh) * 2011-10-14 2017-02-15 东丽株式会社 2,3‑丁二醇的制造方法
US20130109079A1 (en) * 2011-11-02 2013-05-02 Shell Oil Company Method for separating an organic component from a mixture containing the organic component
US11065629B2 (en) 2011-11-21 2021-07-20 Pneumatic Scale Corporation Centrifuge system for separating cells in suspension
TW201410865A (zh) 2012-06-04 2014-03-16 Genomatica Inc 製造４－羥基丁酸酯、１，４－丁二醇及相關化合物之微生物及方法
CA2874084C (en) * 2012-06-05 2020-08-25 Mitsubishi Chemical Corporation Production method for 1,4-butanediol
EP2857435B1 (en) 2012-06-05 2017-07-26 Mitsubishi Chemical Corporation Production method for polybutylene terephthalate
CN104508001B (zh) 2012-06-05 2017-07-07 基因组股份公司 聚酯和聚氨基甲酸酯的制造方法
DK2712895T3 (en) * 2012-09-26 2016-08-29 Omya Int Ag Rheologically stable aqueous MINERALMATERIALESUSPENSIONER comprising organic POLYMERS WITH REDUCED volatile organic compounds (VOC)
FR2996728B1 (fr) * 2012-10-16 2015-12-18 Armor Inox Sa Dispositif de traitement thermique en particulier pour des saucisses
AU2013363492B2 (en) * 2012-12-20 2018-03-15 Archer Daniels Midland Company Recovering and using carboxylic acids from a fermentation broth
CN105209414B (zh) * 2013-03-15 2018-04-17 基因组股份公司 用于从发酵肉汤中获得1,4‑丁二醇的方法和系统
BR112015020904A2 (pt) 2013-03-15 2017-10-10 Genomatica Inc microrganismos e métodos para produção de butadieno e compostos relacionados por assimilação de formiato
JP6354835B2 (ja) * 2013-04-12 2018-07-11 東レ株式会社 １，４−ブタンジオールの製造方法
US11814664B2 (en) 2013-05-24 2023-11-14 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for producing (3R)-hydroxybutyl (3R)-hydroxybutyrate
US9850503B2 (en) * 2013-06-10 2017-12-26 Ineos Bio Sa Control of conductivity in anaerobic fermentation
JP2015017087A (ja) * 2013-06-13 2015-01-29 三菱化学株式会社 ジオールの製造方法
CA2922120C (en) 2013-09-03 2022-09-06 Myriant Corporation A process for manufacturing acrylic acid, acrylonitrile and 1,4-butanediol from 1,3-propanediol
EP4296364A3 (en) 2013-12-03 2024-08-21 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for improving product yields on methanol using acetyl-coa synthesis
EP3744830B1 (en) 2013-12-27 2023-11-22 Genomatica, Inc. Methods and organisms with increased carbon flux efficiencies
US9752165B2 (en) * 2014-02-10 2017-09-05 Cellulosic Ethanol Technologies, Llc Processes and systems for recovering oil from fermentation products
JP6585615B2 (ja) 2014-03-21 2019-10-02 ライフ テクノロジーズ コーポレイション 流体処理システムのための凝縮器システム
EP3119504B1 (en) 2014-03-21 2020-10-14 Life Technologies Corporation Gas filter systems for fluid processing systems
EP3132046B1 (en) 2014-04-16 2019-07-24 Novamont S.p.A. Process for the production of 1,4-butanediol
CN104176844A (zh) * 2014-05-14 2014-12-03 重庆紫光化工股份有限公司 一种有机合成料液分离纯化中产生的废液的回收利用系统及回收利用方法
CN106660904B (zh) * 2014-07-11 2020-01-07 阿彻丹尼尔斯米德兰德公司 用于从发酵培养基中萃取乙醇的系统和方法
BR112017005665A2 (pt) 2014-09-18 2017-12-12 Genomatica Inc organismos microbianos não naturais com eficiência energética melhorada
US9971397B2 (en) * 2014-10-08 2018-05-15 Apple Inc. Methods and apparatus for managing power with an inter-processor communication link between independently operable processors
CN105585432B (zh) * 2014-10-22 2018-10-12 中国石油化工股份有限公司大连石油化工研究院 一种从发酵液中分离提取2,3-丁二醇的方法
CA2911610C (en) 2014-11-13 2017-12-12 Weatherford Technology Holdings, Llc Oil/bitumen emulsion separation
WO2016092517A1 (en) 2014-12-12 2016-06-16 Versalis S.P.A. Process for the production of 1, 3-butadiene from 1, 4 -butanediol via tetrahydrofuran
EP3050970B1 (en) 2015-01-28 2019-09-18 Metabolic Explorer Modified microorganism for optimized production of 1,4-butanediol
FR3032707B1 (fr) 2015-02-18 2017-03-10 Ifp Energies Now Procede d'esterification d'un diol mettant en œuvre une distillation reactive
KR102547252B1 (ko) 2016-01-08 2023-06-23 에스케이이노베이션 주식회사 유기물질 기상탈수반응 원료의 제조방법
US11458413B2 (en) * 2016-03-28 2022-10-04 Energy Integration, Inc. Energy-efficient systems including vapor compression for biofuel or biochemical plants
WO2017167803A1 (en) * 2016-03-29 2017-10-05 Basf Se Process for producing a polyacrylamide solution with increased viscosity
CN107400583B (zh) 2016-05-18 2021-07-13 Lg电子株式会社 啤酒酿造包及具有其的啤酒酿造装置
CN107400588B (zh) 2016-05-18 2021-08-03 Lg电子株式会社 啤酒酿造装置
CN107400585B (zh) * 2016-05-18 2021-07-30 Lg电子株式会社 啤酒酿造装置
US11208621B2 (en) * 2016-05-18 2021-12-28 Lg Electronics Inc. Beverage-making apparatus
US11224306B2 (en) 2016-05-18 2022-01-18 Lg Electronics Inc. Beverage-making apparatus
CN107400586B (zh) 2016-05-18 2021-05-28 Lg电子株式会社 啤酒酿造装置
WO2018089971A1 (en) * 2016-11-14 2018-05-17 Lygos, Inc. Process for purification of malonic acid from fermentation broth
CA3053053C (en) 2017-03-20 2020-04-14 Lanzatech, Inc. A process and system for product recovery and cell recycle
CN111148821B (zh) * 2017-09-21 2022-11-22 能量集成公司 包括用于生物燃料或生物化学设备的蒸气压缩的节能系统
US10682586B2 (en) 2017-10-03 2020-06-16 Quinton Downe Devices, systems and methods for capturing energy in distilling operations
KR20240018681A (ko) 2017-11-27 2024-02-13 노바몬트 에스.피.에이. 재생 가능한 공급원으로부터의 1,4-부탄디올의 제조 방법 및 이로부터 수득된 폴리에스테르
US20210079334A1 (en) 2018-01-30 2021-03-18 Genomatica, Inc. Fermentation systems and methods with substantially uniform volumetric uptake rate of a reactive gaseous component
JP7000227B2 (ja) 2018-03-29 2022-01-19 東京瓦斯株式会社 電力システム
KR102568314B1 (ko) * 2018-06-08 2023-08-18 뉴메틱 스케일 코포레이션 현탁액 내 세포를 분리하기 위한 원심 분리 시스템
EP3814515A2 (en) 2018-06-26 2021-05-05 Genomatica, Inc. Engineered microorganisms with g3p---> 3pg enzyme and/or fructose-1,6-bisphosphatase including those having synthetic or enhanced methylotrophy
JP7390369B2 (ja) * 2018-09-21 2023-12-01 ベルサリス エッセ．ピー．アー． 発酵ブロスからバイオ－１，３－ブタンジオールを精製する方法
AU2020219125A1 (en) * 2019-02-05 2021-08-12 Lindy Biosciences, Inc. Isolated cell culture components and methods for isolating the same from liquid cell culture medium
EP3921433A4 (en) 2019-02-08 2022-11-23 Lanzatech, Inc. PROCESS FOR RECOVERING NEAR BOILING POINT PRODUCTS
JP7567479B2 (ja) 2019-03-25 2024-10-16 東レ株式会社 ３－ヒドロキシアジピン酸－３，６－ラクトンの製造方法
WO2021060335A1 (ja) * 2019-09-26 2021-04-01 東レ株式会社 アジピン酸の製造方法
IT202000013243A1 (it) 2020-06-04 2021-12-04 Novamont Spa Processo per la purificazione di una miscela di dioli
CN112029808B (zh) * 2020-09-11 2022-12-06 华东理工大学 一种基于超声波辅助槐糖脂沉降的半连续发酵方法
US20240060031A1 (en) * 2020-09-29 2024-02-22 1087 Systems, Inc Graded Bioprocess Monitoring
CN116348446A (zh) * 2020-10-13 2023-06-27 赢创运营有限公司 具有优化粒径分布的d,l-甲硫氨酸
EP4015614A1 (en) 2020-12-15 2022-06-22 Alfa Laval Corporate AB Method for operating a bioprocessing system and a bioprocessing system
CN112691398B (zh) * 2020-12-22 2022-05-17 无锡荣丰生物工程有限公司 多效连续脱氨蒸发系统及利用其进行缬氨酸脱氨的方法
CN112321391B (zh) * 2021-01-06 2021-04-06 苏州苏震生物工程有限公司 一种内消旋-2,3-丁二醇的制备方法
EP4056671A1 (en) * 2021-03-10 2022-09-14 Sartorius Stedim Biotech GmbH Method for operating a bioprocess installation
IT202100030572A1 (it) 2021-12-02 2023-06-02 Novamont Spa 1,3-butandiolo purificato da una miscela di dioli
CN114195316B (zh) * 2021-12-31 2024-07-12 中膜(浙江)环保科技有限公司 一种磷酸铁废水处理系统及处理方法
EP4499852A1 (en) * 2022-03-30 2025-02-05 CJ CheilJedang Corporation Method of producing gamma-butyrolactone from biomass
WO2023212400A1 (en) * 2022-04-29 2023-11-02 Manus Bio Inc. Fermentation processes and systems
CN115177965B (zh) * 2022-07-11 2023-04-25 西安国康瑞金制药有限公司 一种从黄体酮生产母液中回收黄体酮的系统和方法
WO2024042486A1 (en) * 2022-08-26 2024-02-29 Amyris Bio Products Portugal, Unipessoal, Ltda. Compositions and methods for the production of polyurethanes

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TW200613557A (en) * 2004-05-28 2006-05-01 Basf Ag Fermentative production of fine chemicals
CN101041613A (zh) * 2007-01-19 2007-09-26 华东理工大学 分离纯化多元醇的方法
US20090075351A1 (en) * 2007-03-16 2009-03-19 Burk Mark J Compositions and methods for the biosynthesis of 1,4-butanediol and its precursors

Family Cites Families (190)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3175962A (en) * 1961-02-28 1965-03-30 Gen Electric Falling film evaporator
GB1230276A (zh) 1968-12-09 1971-04-28
JPS4831084B1 (zh) 1970-09-04 1973-09-26
GB1344557A (en) 1972-06-23 1974-01-23 Mitsubishi Petrochemical Co Process for preparing 1,4-butanediol
US3976430A (en) 1974-08-05 1976-08-24 Hooker Chemicals & Plastics Corporation Forced circulation cooling crystallizer
DE2455617C3 (de) 1974-11-23 1982-03-18 Basf Ag, 6700 Ludwigshafen Verfahren zur Herstellung von Butandiol und/oder Tetrahydrofuran über die Zwischenstufe des γ-Butyrolactons
DE2501499A1 (de) 1975-01-16 1976-07-22 Hoechst Ag Verfahren zur herstellung von butandiol-(1.4)
GB1583517A (en) 1977-05-04 1981-01-28 Jackson J F Solid bowl decanter centrifuges of the scroll discharge type
DE2842575A1 (de) 1977-10-04 1979-04-12 Broadbent & Sons Ltd Thomas Vollmantel-abklaerzentrifuge
JPS575693A (en) 1980-06-13 1982-01-12 Ajinomoto Co Inc Production of l-arginine through fermentation process
US4301077A (en) 1980-12-22 1981-11-17 Standard Oil Company Process for the manufacture of 1-4-butanediol and tetrahydrofuran
JPS60196105U (ja) * 1984-06-05 1985-12-27 株式会社　笹倉機械製作所 熱圧縮式二重効用蒸発器
JPS61254177A (ja) 1985-05-02 1986-11-11 Hitachi Zosen Corp エタノ−ル含有液からのエタノ−ル抽出法
US4652685A (en) 1985-11-15 1987-03-24 General Electric Company Hydrogenation of lactones to glycols
JPS62285779A (ja) * 1986-06-04 1987-12-11 Chiyoda Chem Eng & Constr Co Ltd １，４−ブタンジオ−ル産生バチルス属細菌及びそれを用いる１，４−ブタンジオ−ルの製造方法
US5250430A (en) 1987-06-29 1993-10-05 Massachusetts Institute Of Technology Polyhydroxyalkanoate polymerase
US5245023A (en) 1987-06-29 1993-09-14 Massachusetts Institute Of Technology Method for producing novel polyester biopolymers
US4876331A (en) 1987-08-18 1989-10-24 Mitsubishi Kasei Corporation Copolyester and process for producing the same
EP0556387B1 (en) 1988-04-27 1995-08-09 Daicel Chemical Industries, Ltd. Process for preparing optically active 1,3-butanediol
JPH0278801A (ja) * 1988-09-14 1990-03-19 Hisaka Works Ltd プレート式蒸発器
US5209825A (en) 1988-10-04 1993-05-11 E. I. Du Pont De Nemours And Company Preparation of purified concentrated BDO
ATE85813T1 (de) 1988-12-12 1993-03-15 Unilever Nv Verfahren zur mikrobiologischen herstellung von 1,3-propandiol aus glycerin.
GB9011777D0 (en) 1990-05-25 1990-07-18 Ici Plc Hv/hb copolymer production
US5998366A (en) 1990-09-21 1999-12-07 The Regents Of The University Of California Method for ameliorating glutamic acid decarboxylase associated autoimmune disorders
US6682906B1 (en) 1990-09-21 2004-01-27 The Regents Of The University Of California Cloned glutamic acid decarboxylase
US5674978A (en) 1990-09-21 1997-10-07 The Regents Of The University Of California Peptides derived from glutamic acid decarboxylase
US5475086A (en) 1990-09-21 1995-12-12 The Regents Of The University Of California Cloned glutamic acid decarboxylase peptides
JP3021721B2 (ja) * 1991-03-22 2000-03-15 花王株式会社 アルキルグリコシドの製造方法
US5162214A (en) * 1991-04-05 1992-11-10 General Atomics International Services Corporation Cma production utilizing acetate ion exchange from fermentation broth
GB9108756D0 (en) 1991-04-24 1991-06-12 Ici Plc Production of polyalkanoate in plants
US5286842A (en) 1991-07-01 1994-02-15 Mitsubishi Kasei Corporation Process for producing a biodegradable polymer
GB9115245D0 (en) 1991-07-16 1991-08-28 Ici Plc Production of polyalkanoate
CZ10894A3 (en) 1991-07-19 1994-12-15 Univ Michigan State Transgenic plants producing polyhydroxyalkanoates
US5610041A (en) 1991-07-19 1997-03-11 Board Of Trustees Operating Michigan State University Processes for producing polyhydroxybutyrate and related polyhydroxyalkanoates in the plastids of higher plants
BR9203053A (pt) 1991-08-07 1993-03-30 Ajinomoto Kk Processo para produzir acido l-glutamico pro fermentacao
US5158789A (en) 1991-08-09 1992-10-27 Ici Americas Inc. Melt cocrystallized sorbitol/xylitol compositions
JP2777757B2 (ja) 1991-09-17 1998-07-23 鐘淵化学工業株式会社 共重合体およびその製造方法
DE4205471A1 (de) 1992-02-22 1993-08-26 Basf Ag Verfahren zur abtrennung von 1,4-butandiol aus hydriergemischen
DE4220759A1 (de) 1992-06-24 1994-01-05 Inst Genbiologische Forschung DNA-Sequenzen für Oligosaccharid-Transporter, Plasmide, Bakterien und Pflanzen enthaltend einen Transporter sowie Verfahren zur Herstellung und Transformation von Hefestämmen zur Identifikation des Transporteers
TW260624B (en) * 1992-08-18 1995-10-21 Dev Center Biotechnology Process of separating tryptophan (Trp) from zymotic fluid by ion-exchange displacement chromatography
AU5676394A (en) 1992-11-20 1994-06-22 Agracetus, Inc. Transgenic cotton plants producing heterologous bioplastic
JP3263710B2 (ja) 1992-12-11 2002-03-11 高砂香料工業株式会社 生分解性光学活性ポリマー及びその製造方法
JP3241505B2 (ja) 1993-08-11 2001-12-25 高砂香料工業株式会社 生分解性光学活性コポリマー及びその製造方法
KR100230878B1 (ko) 1993-10-28 1999-11-15 이나모리 순스케 환원된 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오타이드로부터 환원된 니코틴아미드 아데닌 디뉴클레오타이드 포스페이트를 생산하는 능력이 증가된 미생물에서 표적물질을 제조하는 방법
GB9414506D0 (en) 1994-07-18 1994-09-07 Zeneca Ltd Improved production of polyhydroxyalkanoate
DE4433134A1 (de) 1994-09-16 1996-03-21 Buck Chem Tech Werke Verfahren zur Herstellung von Polyhydroxyfettsäuren sowie rekombinanter Bakterienstämme zur Durchführung des Verfahrens
US5563239A (en) 1994-11-09 1996-10-08 Eastman Chemical Company Composition and process for the production of poly(3-hydroxyalkanoates)
US5478952A (en) 1995-03-03 1995-12-26 E. I. Du Pont De Nemours And Company Ru,Re/carbon catalyst for hydrogenation in aqueous solution
US5747311A (en) 1995-08-22 1998-05-05 Microgen Corporation Process for chemical modification of reactants by microbes
US5770435A (en) 1995-11-02 1998-06-23 University Of Chicago Mutant E. coli strain with increased succinic acid production
US5869301A (en) 1995-11-02 1999-02-09 Lockhead Martin Energy Research Corporation Method for the production of dicarboxylic acids
DE19543635A1 (de) 1995-11-23 1997-05-28 Hp Chemie Pelzer Res & Dev Verbundwerkstoffe aus Polyhydroxyfettsäuren und Fasermaterialien
US5849894A (en) 1995-11-29 1998-12-15 Monsanto Company Rhodospirillum rubrum poly-β-hydroxyalkanoate synthase
EP0883683A1 (en) 1996-02-27 1998-12-16 Michigan State University Cloning and expression of the gene encoding thermoanaerobacter ethanolicus 39e secondary-alcohol dehydrogenase and enzyme biochemical characterization
US5959179A (en) 1996-03-13 1999-09-28 Monsanto Company Method for transforming soybeans
US6091002A (en) 1996-03-13 2000-07-18 Monsanto Company Polyhydroxyalkanoates of narrow molecular weight distribution prepared in transgenic plants
US5958745A (en) 1996-03-13 1999-09-28 Monsanto Company Methods of optimizing substrate pools and biosynthesis of poly-β-hydroxybutyrate-co-poly-β-hydroxyvalerate in bacteria and plants
US5750848A (en) 1996-08-13 1998-05-12 Monsanto Company DNA sequence useful for the production of polyhydroxyalkanoates
US6730503B1 (en) 1996-09-19 2004-05-04 Roche Vitamins Inc. Alcohol/aldehyde dehydrogenase
US5766439A (en) * 1996-10-10 1998-06-16 A. E. Staley Manufacturing Co. Production and recovery of organic acids
JPH10141873A (ja) * 1996-11-12 1998-05-29 Hitachi Ltd 流下液膜式蒸発器
JPH10166664A (ja) 1996-12-12 1998-06-23 Casio Electron Mfg Co Ltd カラー印刷装置
WO1998036078A1 (en) 1997-02-13 1998-08-20 James Madison University Methods of making polyhydroxyalkanoates comprising 4-hydroxybutyrate monomer units
US6759219B2 (en) 1997-03-03 2004-07-06 Metabolix, Inc. Methods for the biosynthesis of polyesters
US5994478A (en) 1997-04-21 1999-11-30 Monsanto Company Hydroxy-terminated polyhydroxyalkanoates
US6156852A (en) 1997-04-21 2000-12-05 Monsanto Company Hydroxy-terminated polyhydroxyalkanoates
US5981810A (en) 1997-06-16 1999-11-09 Mitsubishi Chemical Corporation Process for preparing 1,4-butanediol
US5986133A (en) * 1997-06-30 1999-11-16 The Texas A&M University System Recovery of fermentation salts from dilute aqueous solutions
KR19990013007A (ko) 1997-07-31 1999-02-25 박원훈 형질전환된 대장균 ｓｓ373(ｋｃｔｃ 8818ｐ)과 이를 이용한숙신산의 생산방법
WO1999014313A2 (en) 1997-09-19 1999-03-25 Metabolix, Inc. Biological systems for manufacture of polyhydroxylalkanoate polymers containing 4-hydroxyacids
US6228579B1 (en) 1997-11-14 2001-05-08 San Diego State University Foundation Method for identifying microbial proliferation genes
US6280986B1 (en) 1997-12-01 2001-08-28 The United States Of America As Represented By The Secretary Of Agriculture Stabilization of pet operon plasmids and ethanol production in bacterial strains lacking lactate dehydrogenase and pyruvate formate lyase activities
DE19818248A1 (de) * 1998-04-23 1999-10-28 Basf Ag Verfahren zur Herstellung von 1,4-Butandiol
US6159738A (en) 1998-04-28 2000-12-12 University Of Chicago Method for construction of bacterial strains with increased succinic acid production
AU5101599A (en) 1998-07-15 2000-02-07 E.I. Du Pont De Nemours And Company Tetrahydrofolate metabolism enzymes
EP1105514B1 (en) 1998-08-04 2008-02-06 Metabolix, Inc. Polyhydroxyalkanoate production from polyols
US6593116B1 (en) 1998-08-18 2003-07-15 Metabolix, Inc. Transgenic microbial polyhydroxyalkanoate producers
US6835820B2 (en) 1999-01-07 2004-12-28 The University Of Massachusetts Polyhydroxyalkanoate biosynthesis associated proteins and coding region in bacillus megaterium
AU3482200A (en) 1999-02-02 2000-08-25 Bernhard Palsson Methods for identifying drug targets based on genomic sequence data
US6686310B1 (en) 1999-02-09 2004-02-03 E. I. Du Pont De Nemours And Company High surface area sol-gel route prepared hydrogenation catalysts
WO2000052183A1 (en) 1999-03-05 2000-09-08 Monsanto Technology Llc Multigene expression vectors for the biosynthesis of products via multienzyme biological pathways
KR100329019B1 (ko) 1999-04-13 2002-03-18 윤덕용 유기산의 고효율 생산방법
KR100785997B1 (ko) 1999-08-18 2007-12-14 이 아이 듀폰 디 네모아 앤드 캄파니 1,3-프로판디올을 높은 역가로 생물학적으로 생산하는 방법
US6361983B1 (en) * 1999-09-30 2002-03-26 E. I. Du Pont De Nemours And Company Process for the isolation of 1,3-propanediol from fermentation broth
US20020102672A1 (en) 1999-10-04 2002-08-01 Joseph Mizrahi Process for producing a purified lactic acid solution
US6897055B2 (en) 1999-11-25 2005-05-24 Degussa Ag Nucleotide sequences coding for the genes sucC and sucD
DE19956686A1 (de) 1999-11-25 2001-05-31 Degussa Neue für die Gene sucC und sucD codierende Nukleotidsequenzen
DE10021703A1 (de) 2000-05-04 2001-11-08 Basf Ag Verfahren zur destillativen Trennung von Tetrahydrofuran, gamma-Butyrolacton und/oder 1,4-Butandiol enthaltenden Gemischen
US20020164729A1 (en) 2000-07-21 2002-11-07 Skraly Frank A. Production of polyhydroxyalkanoates from polyols
US6495152B2 (en) 2000-08-18 2002-12-17 Tepha, Inc. Sulfur containing polyhydroxyalkanoate compositions and method of production
US6916637B2 (en) 2000-09-30 2005-07-12 Degussa Ag Fermentation process for the preparation of L-amino acids using strains of the family Enterobacteriaceae
AU2002219818B2 (en) 2000-11-20 2007-08-16 Cargill, Incorporated 3-hydroxypropionic acid and other organic compounds
EP1354955A4 (en) 2000-12-28 2005-01-05 Toyota Motor Co Ltd PROCESS FOR PREPARING PRENYL ALCOHOL
AU2002239855B2 (en) 2001-01-10 2006-11-23 The Penn State Research Foundation Method and system for modeling cellular metabolism
US7127379B2 (en) 2001-01-31 2006-10-24 The Regents Of The University Of California Method for the evolutionary design of biochemical reaction networks
JP2004533037A (ja) 2001-03-01 2004-10-28 ザ・レジェンツ・オブ・ザ・ユニバーシティ・オブ・カリフォルニア 調節された反応ネットワークの全体的特性を決定するためのモデルおよび方法
US7052883B2 (en) 2001-04-03 2006-05-30 Degussa Ag Process for the production of L-amino acids using strains of the family Enterobacteriaceae that contain an attenuated fruR gene
AU2002252704A1 (en) 2001-04-20 2002-11-05 E.I. Du Pont De Nemours And Company A product removal process for use in a biofermentation system
DE60225288T2 (de) 2001-07-18 2009-03-26 Evonik Degussa Gmbh Verfahren zur herstellung von l-aminosäuren unter verwendung von stämmen aus der familie der enterobacteriaceae die ein attenuiertes ugpb-gen enthalten
JP3959993B2 (ja) * 2001-08-01 2007-08-15 三菱化学株式会社 １，４−ブタンジオールの製造方法
US6515187B1 (en) 2001-10-03 2003-02-04 Atofina Chemicals, Inc. Process for recovering acrolein or propionaldehyde from dilute aqueous streams
DE10153411A1 (de) 2001-10-30 2003-05-15 Basf Ag Verfahren zur Auftrennung von wasserhaltigen Rohamingemischen aus der Aminsynthese
DE10153410A1 (de) 2001-10-30 2003-05-15 Basf Ag Verfahren zur Auftrennung von wasserhaltigen Rohamingemischen aus der Aminsynthese
US20090100536A1 (en) 2001-12-04 2009-04-16 Monsanto Company Transgenic plants with enhanced agronomic traits
US20090158452A1 (en) 2001-12-04 2009-06-18 Johnson Richard G Transgenic plants with enhanced agronomic traits
CN1217001C (zh) 2002-01-04 2005-08-31 清华大学 一种生产d－(－)－3－羟基丁酸的方法
ATE432338T1 (de) 2002-01-18 2009-06-15 Novozymes As Alanin-2,3-aminomutase
US7314974B2 (en) 2002-02-21 2008-01-01 Monsanto Technology, Llc Expression of microbial proteins in plants for production of plants with improved properties
US20030224363A1 (en) 2002-03-19 2003-12-04 Park Sung M. Compositions and methods for modeling bacillus subtilis metabolism
AU2003222128A1 (en) 2002-03-29 2003-10-13 Genomatica, Inc. Human metabolic models and methods
WO2003095651A1 (fr) 2002-05-10 2003-11-20 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd. Procede de production d'acide mevalonique
US7856317B2 (en) 2002-06-14 2010-12-21 Genomatica, Inc. Systems and methods for constructing genomic-based phenotypic models
JP4418793B2 (ja) 2002-07-10 2010-02-24 ザ ペン ステート リサーチ ファウンデーション 遺伝子ノックアウト戦略を決定する方法
US7413878B2 (en) 2002-07-15 2008-08-19 Kosan Biosciences, Inc. Recombinant host cells expressing atoAD and capable of making a polyketide using a starter unit
GB0218019D0 (en) 2002-08-05 2002-09-11 Ciba Spec Chem Water Treat Ltd Production of a fermentation product
ATE501264T1 (de) 2002-08-09 2011-03-15 Codexis Inc Enzymatische verfahren zur herstellung 4- substituierter 3-hydroxybuttersäure-derivate
WO2004024876A2 (en) 2002-09-12 2004-03-25 Metabolix, Inc. Polyhydroxyalkanoate production by coenzyme a-dependent aldehyde dehydrogenase pathways
ATE404664T1 (de) 2002-09-27 2008-08-15 Dsm Ip Assets Bv Aldehyddehyrdrogenase-gen
JP5064656B2 (ja) 2002-10-15 2012-10-31 ザ リージェンツ オブ ザ ユニバーシティ オブ カリフォルニア 実施反応経路を同定するための方法およびシステム
US20040152159A1 (en) 2002-11-06 2004-08-05 Causey Thomas B. Materials and methods for the efficient production of acetate and other products
WO2004096862A2 (en) * 2003-05-02 2004-11-11 Ceapro Inc. Improved extration and purification method for cereal beta (1-3) beta (1-4) glucan
US7056439B2 (en) * 2003-05-06 2006-06-06 Tate & Lyle Ingredidents Americas, Inc. Process for producing 1, 3-propanediol
US7919658B2 (en) * 2003-05-06 2011-04-05 E. I. Du Pont De Nemours And Company Purification of biologically-produced 1,3-propanediol
KR20060071397A (ko) 2003-08-11 2006-06-26 코덱시스, 인코포레이티드 4-치환된 3-히드록시부티르산 유도체 및 이웃자리 시아노,히드록시 치환된 카르복실산 에스테르의 효소적 제조 방법
US7927859B2 (en) 2003-08-22 2011-04-19 Rice University High molar succinate yield bacteria by increasing the intracellular NADH availability
US7708865B2 (en) * 2003-09-19 2010-05-04 Texas A&M University System Vapor-compression evaporation system and method
FR2864967B1 (fr) 2004-01-12 2006-05-19 Metabolic Explorer Sa Microorganisme evolue pour la production de 1,2-propanediol
DE102004020753A1 (de) * 2004-04-27 2005-12-29 Man Turbo Ag Vorrichtung zur Ausnutzung der Abwärme von Verdichtern
DE102004031177A1 (de) 2004-06-29 2006-01-19 Henkel Kgaa Neue Geruchsstoffe bildende Genprodukte von Bacillus licheniformis und darauf aufbauende verbesserte biotechnologische Produktionsverfahren
DE102004035065A1 (de) * 2004-07-20 2006-02-16 Basf Ag P-ET-TS-Expressionseinheiten
US7601858B2 (en) * 2004-08-17 2009-10-13 Gs Cleantech Corporation Method of processing ethanol byproducts and related subsystems
KR101245428B1 (ko) 2004-08-27 2013-03-19 라이스 유니버시티 숙신산 생산이 증가된 돌연변이 대장균 균주
JP2008511318A (ja) * 2004-09-01 2008-04-17 アグロテクノロジー アンド フード イノベイションズ ビー．ブイ． 基質の変換効率が向上された発酵方法
GB0419424D0 (en) 2004-09-02 2004-10-06 Viragen Scotland Ltd Transgene optimisation
JP4712716B2 (ja) 2004-09-09 2011-06-29 財団法人地球環境産業技術研究機構 プロモーター機能を有するｄｎａ断片
WO2006069174A2 (en) 2004-12-22 2006-06-29 Rice University Simultaneous anaerobic production of isoamyl acetate and succinic acid
EP3925998B1 (en) 2005-04-22 2023-06-07 Mitsubishi Chemical Corporation Biomass-resource-derived polyester and production process thereof
DE102005042541A1 (de) * 2005-09-07 2007-03-08 Basf Ag Fermentative Herstellung nichtflüchtiger mikrobieller Stoffwechselprodukte in fester Form
JP2009507493A (ja) 2005-09-09 2009-02-26 ジェノマティカ・インコーポレイテッド 増殖連動型のコハク酸塩生成のための方法と生物
US9297028B2 (en) 2005-09-29 2016-03-29 Butamax Advanced Biofuels Llc Fermentive production of four carbon alcohols
US20080274526A1 (en) 2007-05-02 2008-11-06 Bramucci Michael G Method for the production of isobutanol
DE102005051974A1 (de) * 2005-10-31 2007-05-03 Basf Ag Verfahren zur Herstellung von Trioxan und mindestens einem Comonomer
CN104131038A (zh) * 2006-02-24 2014-11-05 东丽株式会社 化学品的制备方法和连续发酵装置
CN101410526B (zh) * 2006-03-29 2015-08-12 生物能源株式会社 来自乳酸发酵液的乳酸成分的分离方法和分离部件
EP2041293A4 (en) 2006-05-01 2011-06-22 Univ Florida ETHANOL PRODUCTION IN NON-RECOMBINANT HOST
US8962298B2 (en) 2006-05-02 2015-02-24 Butamax Advanced Biofuels Llc Recombinant host cell comprising a diol dehydratase
US8017364B2 (en) 2006-12-12 2011-09-13 Butamax(Tm) Advanced Biofuels Llc Solvent tolerant microorganisms
WO2008098622A1 (de) 2007-02-15 2008-08-21 Basf Se Verfahren zur herstellung von sehr reinem 1,4-butandiol durch vermeidung von sauerstoff in der destillativen reinigung
KR20090110879A (ko) 2007-02-15 2009-10-22 바스프 에스이 매우 순수한 1,4-부탄디올의 제조 방법
JP4910783B2 (ja) * 2007-03-02 2012-04-04 栗田工業株式会社 製鉄ダスト含有スラリーの遠心分離方法
EP2121915B1 (en) 2007-03-20 2012-08-08 University of Florida Research Foundation, Inc. Materials and methods for efficient succinate and malate production
JP2008245537A (ja) 2007-03-29 2008-10-16 Toray Ind Inc 連続発酵による化学品の製造方法
WO2008131286A1 (en) 2007-04-18 2008-10-30 Gevo, Inc. Engineered microorganisms for producing isopropanol
KR101573775B1 (ko) 2007-04-18 2015-12-04 부타맥스 어드밴스드 바이오퓨얼스 엘엘씨 고도 활성 케톨-산 리덕토아이소머라아제 효소를 이용한 아이소부탄올의 발효 생산
US8426174B2 (en) 2007-05-02 2013-04-23 Butamax(Tm) Advanced Biofuels Llc Method for the production of 2-butanol
US8426173B2 (en) 2007-05-02 2013-04-23 Butamax (Tm) Advanced Biofuels Llc Method for the production of 1-butanol
US8425734B2 (en) * 2007-07-02 2013-04-23 I3 Nanotec Llc Membrane-based hybrid process for separation of mixtures of organics, solids, and water
US20090023182A1 (en) 2007-07-18 2009-01-22 Schilling Christophe H Complementary metabolizing organisms and methods of making same
US7947483B2 (en) 2007-08-10 2011-05-24 Genomatica, Inc. Methods and organisms for the growth-coupled production of 1,4-butanediol
KR101042242B1 (ko) 2007-09-07 2011-06-17 한국과학기술원 1,4-부탄디올 생성능을 가지는 변이체 및 이를 이용한1,4-부탄디올의 제조방법
DE102007048277A1 (de) * 2007-10-08 2009-04-09 Agraferm Technologies Ag Verfahren und Vorrichtung zur mikrobiellen Herstellung eines bestimmten Produktes und Methan
BRPI0817545A2 (pt) 2007-10-12 2014-11-25 Univ California Microorganismo recombinante, métodos para produzir um microorganismo recombinante e para produzir isopropanol, vetor recombinante, e, célula hospedeira recombinante.
BRPI0907385A2 (pt) 2008-01-22 2015-07-21 Genomatica Inc Métodos e organismos para utilização de gás de síntese e outras fontes de carbono gasosas e metanol
US20090246842A1 (en) 2008-02-15 2009-10-01 Gevo, Inc. Engineered microorganisms for producing propanol
CN102015995B (zh) 2008-03-03 2014-10-22 焦耳无限科技公司 产生碳基目的产物的二氧化碳固定工程微生物
JP2011519561A (ja) 2008-05-01 2011-07-14 ジェノマティカ， インコーポレイテッド メタクリル酸の産生のための微生物
EP2313491A4 (en) 2008-07-08 2011-12-07 Opx Biotechnologies Inc METHODS, COMPOSITIONS AND SYSTEMS FOR BIOSYNTHETIC BIOPRODUCTION OF 1,4-BUTANEDIOL
EP3514242A3 (en) 2008-09-10 2019-08-28 Genomatica, Inc. Microrganisms for the production of 1,4-butanediol
EP2355911B1 (en) 2008-10-03 2013-01-02 Metabolic Explorer Method for purifying an alcohol from a fermentation broth using a falling film, a wiped film, a thin film or a short path evaporator
BRPI0920751B1 (pt) 2008-10-03 2020-07-14 Metabolic Explorer Método para purificar um álcool a partir de um caldo de fermentação
US8344188B2 (en) 2008-10-16 2013-01-01 Maverick Biofuels, Inc. Methods and apparatus for synthesis of alcohols from syngas
KR20110097951A (ko) 2008-12-16 2011-08-31 게노마티카 인코포레이티드 합성가스와 다른 탄소원을 유용 제품으로 전환시키기 위한 미생물 및 방법
WO2010085731A2 (en) 2009-01-23 2010-07-29 Microbia, Inc. Production of 1,4 butanediol in a microorganism
US8597918B2 (en) 2009-06-04 2013-12-03 Genomatica, Inc. Process of separating components of a fermentation broth
PL2438178T3 (pl) 2009-06-04 2018-09-28 Genomatica Inc Mikroorganizmy do produkcji 1,4-butanodiolu i pokrewne sposoby
US7893305B2 (en) 2009-06-10 2011-02-22 Global Bio-Chem Technology Group Company Limited Separation of diols from a mixture comprising diols and polyols
JP2013504326A (ja) 2009-09-09 2013-02-07 ジェノマティカ・インコーポレイテッド イソプロパノールならびに第一級アルコール、ジオールおよび酸の共生成のための微生物ならびに方法
KR20120083908A (ko) 2009-10-13 2012-07-26 게노마티카 인코포레이티드 1,4-부탄다이올, 4-하이드록시부탄알, 4-하이드록시부티릴-ｃｏａ, 푸트레신 및 관련 화합물의 제조를 위한 미생물 및 관련 방법
US8530210B2 (en) 2009-11-25 2013-09-10 Genomatica, Inc. Microorganisms and methods for the coproduction 1,4-butanediol and gamma-butyrolactone
KR20120120493A (ko) 2009-12-10 2012-11-01 게노마티카 인코포레이티드 합성 가스 또는 기타 가스상 탄소원 및 메탄올을 1,3-부탄디올로 변환하는 방법 및 변환용 유기체
US8445244B2 (en) 2010-02-23 2013-05-21 Genomatica, Inc. Methods for increasing product yields
US8048661B2 (en) 2010-02-23 2011-11-01 Genomatica, Inc. Microbial organisms comprising exogenous nucleic acids encoding reductive TCA pathway enzymes
WO2011123270A1 (en) 2010-04-01 2011-10-06 Bioamber S.A.S. Processes for the production of tetrahydrofuran, gamma - butyrolactone and/or butanediol from salts of succinic acid
WO2011123269A1 (en) 2010-04-01 2011-10-06 Bioamber S.A.S. Processes for the production of tetrahydrofuran, gamma-butyrolactone and/or butanediol from salts of succinic acid
WO2011137192A1 (en) 2010-04-27 2011-11-03 The Regents Of The University Of California Production of 1,4-butanediol by recombinant microorganisms
US9018424B2 (en) 2011-03-30 2015-04-28 Toray Industries, Inc. Method of producing diol or triol
WO2012158180A1 (en) 2011-05-18 2012-11-22 Bioamber S.A.S. Processes for producing butanediol (bdo), diaminobutane (dab), from fermentation broths containing ammonium succinate
CA2874084C (en) 2012-06-05 2020-08-25 Mitsubishi Chemical Corporation Production method for 1,4-butanediol
US20140275465A1 (en) 2013-03-15 2014-09-18 Genomatica, Inc. Process and systems for obtaining 1,4-butanediol from fermentation broths
JP6354835B2 (ja) 2013-04-12 2018-07-11 東レ株式会社 １，４−ブタンジオールの製造方法

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TW200613557A (en) * 2004-05-28 2006-05-01 Basf Ag Fermentative production of fine chemicals
CN101041613A (zh) * 2007-01-19 2007-09-26 华东理工大学 分离纯化多元醇的方法
US20090075351A1 (en) * 2007-03-16 2009-03-19 Burk Mark J Compositions and methods for the biosynthesis of 1,4-butanediol and its precursors

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TWI691592B (zh) * 2009-06-04 2020-04-21 美商奇諾麥提卡公司 分離發酵液成分之方法

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Publication number Publication date
US20110003355A1 (en) 2011-01-06
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