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JP3637085B2 - マンノシル−シクロデキストリンの製造方法 - Google Patents

マンノシル−シクロデキストリンの製造方法 Download PDF

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JP3637085B2 JP27020994A JP27020994A JP3637085B2 JP 3637085 B2 JP3637085 B2 JP 3637085B2 JP 27020994 A JP27020994 A JP 27020994A JP 27020994 A JP27020994 A JP 27020994A JP 3637085 B2 JP3637085 B2 JP 3637085B2
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博文 中野
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  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Description

【0001】
【産業上の利用分野】
本発明は、シクロデキストリン類の水酸基にα結合でマンノシル基が結合したマンノシル−シクロデキストリン類の製造方法に関する。詳しくは、酵素反応を利用するマンノースとシクロデキストリン類からの効率的なマンノシル−シクロデキストリン類の製造方法に関する。
本発明により得られるマンノシル−シクロデキストリン類は、食品工業,化粧品工業,医薬品工業などの分野で広く利用される。
【0002】
【従来の技術および発明が解決しようとする課題】
シクロデキストリン類(以下、CDと略記する。)は、グルコースがα−1,4結合で連なった環状デキストリンで、グルコース6,7,8個より成るそれぞれα−,β−およびγ−CDが良く知られている。さらに、最近ではCDの溶解度を改善するため、これらCDにα−1,6結合でグルコシル基やマルトシル基を結合させた分岐CDが合成されている。
【0003】
これらCDおよび分岐CDには分子内部に空洞があり、しかもこの空洞内部が疎水性になっているため、包接作用があり、各種油性物質等を取り込む性質を有している。
CDおよび分岐CDは、このような性質をもっているため、食品工業,化粧品工業,医薬品工業などの分野で広く使用されている。
【0004】
最近、医薬品工業の分野では、薬剤の副作用を少なくするため、糖質の細胞認識性に着目して、これをドラッグ・デリバリー・システムの薬剤運搬体の標識細胞へのセンサーとして利用する研究が活発に行われている。特に、ガラクトースは肝臓組織に、マンノースは肝臓実質細胞,肝臓非実質細胞,マクロファージに強い親和性を示すことが良く知られている。
【0005】
以前、我々は上述した現状に鑑み、シクロデキストリンとα−マンノシル糖化合物を含有する溶液に、α−マンノシル基転移酵素を作用させることによって、CDのグルコシル基の6位の水酸基にマンノシル基が結合しているマンノシル−CDの開発に成功している。また、マルトオリゴ糖とα−マンノシル糖化合物を含有する溶液に、α−マンノシル基転移酵素およびシクロデキストリン合成酵素を作用させることによって、同様のマンノシル−CDの開発に成功している。
【0006】
しかし、これらマンノシル基転移酵素の転移反応およびシクロデキストリン合成酵素の作用を利用して直接マンノシル−CDを合成する方法は、反応に用いる基質であるマンノシル糖化合物が高価であるために、コストの面に問題がある。また、マンノシル糖化合物は溶解度が低いものが多く、基質濃度が低く抑えられるため、転移効率が低い。その結果、収率,コストの面に問題がある。
したがって、本発明の目的はマンノシル−CDをより効率的な方法で製造する方法を提供することにある。
【0007】
【課題を解決するための手段】
このような事情に鑑み、本発明者は鋭意努力を重ねた結果、高濃度のマンノースとCDを含有する溶液に、α−マンノシダーゼを作用させると、縮合反応によってCDのグルコース残基に直接マンノシル基が結合したマンノシル−CDを効率良く合成することを見出した。基質となるマンノースは比較的安価であり、高い溶解度を有する。その結果、収率,コストを格段に高めることが可能になった。また、基質濃度を高めることによって、α−マンノシダーゼの安定化、反応槽のコンパクト化も可能となった。これらの知見に基づいて本発明は完成されたのである。
【0008】
すなわち、本発明はシクロデキストリン類の0.2〜20倍(重量比)のマンノースとシクロデキストリン類を含有する溶液にα−マンノシダーゼを作用させることを特徴とするシクロデキストリン類の水酸基にα結合でマンノシル基が結合しているマンノシル−シクロデキストリンの製造方法を提供するものである。
【0009】
本発明で得られるマンノシル−シクロデキストリン(分岐CDと略記することがある。)は、CDの水酸基にα結合でマンノシル基が結合しているマンノシル−CDであり、CD1分子当たりマンノシル基1分子以上が結合している化合物をいう。これら分岐CDの代表的な構造式を図1〜3、I〜IXに表す。
【0010】
本発明の分岐CDは、高濃度のマンノースとCDとを含有する溶液に、α−マンノシダーゼを作用させることによって得られる。本発明において反応に供するCDは、α−CD,β−CDおよびγ−CDのいずれでもよく、これらの混合物であってもよい。また、グルコシル−CD,マルトシル−CD,ガラクトシル−CDなど分岐側鎖を有するCDおよびその混合物や、前記のα−CDなどのCDとの混合物であってもよい。
【0011】
本発明に用いるα−マンノシダーゼとしては、マンノースとCDを含有する溶液に作用させたとき、マンノースとCDの縮合反応を触媒し、CDの水酸基にα結合でマンノシル基が結合しているマンノシル−CDを合成するものであれば、いずれも使用可能である。本発明に用いるα−マンノシダーゼは、自然界に広く分布しているものである。例えば、タチナタマメあるいはアーモンドなどの植物由来の酵素、サザエや肝臓(ウシ,ラット,ヒト)などの動物由来の酵素、さらにはアルスロバクター・オーレセンス,アスペルギルス・ニガーなどの微生物由来の酵素がよく知られている。本発明では植物由来の酵素が好適に用いられる。
【0012】
本発明の反応系において、マンノースとCDを含む溶液(水溶液または懸濁液)は、CDの濃度が通常5〜70%(w/w),好ましくは20〜50%(w/w)であり、マンノースの濃度が通常20〜80%(w/w),好ましくは25〜70%(w/w)であることが適当である。また、CDに対するマンノースの比率(重量)は、使用するCDの種類によって異なるが、0.2〜20倍の範囲、好ましくは1〜10倍の範囲とするのが適当である。
【0013】
反応液のpHは3〜10、好ましくは4〜7、温度は25〜85℃、好ましくは50〜70℃に調整して反応させることが適当である。また、使用酵素量は反応時間と密接な関係があるので、通常は反応が1時間〜2週間、好ましくは6時間〜10日間で終了するような酵素量とすればよいが、これらに限定されるものではない。
【0014】
以上のような方法で反応させて得られた液を、高速液体クロマトグラフィーにかけて、CDへの反応生成物を分画・分取した後、酵素分解法およびFAB−MSによる分子量測定により構造解析を行なった結果、また既知のマンノシル−CDとの高速液体クロマトグラフィーの溶出時間から、該反応生成物は図1〜3に示す構造式I〜IXに表される分岐CDであることを確認した。
【0015】
【実施例】
次に、実施例により本発明を具体的に説明するが、本発明はこれらに限定されるものではない。
実施例1
(1)縮合反応
マンノース2.75g,α−CD2.75gを10mM 酢酸緩衝液(pH4.5)4.2mlに溶解させた後、タチナタマメのα−マンノシダーゼ(シグマ社製)を42単位加え、60℃にて9日間反応させた。
反応終了後、反応液の一部を高速液体クロマトグラフィーにより分析した結果を図4に示す。また、反応終了後、酵素を熱失活させた溶液を高速液体クロマトグラフィーにかけて反応生成物Aを270mg、反応生成物Bを12mgおよび反応生成物Cを18mg分取した。
【0016】
(2)構造解析
上記(1)で単離された反応生成物A(図5)は、FAB−MS分析により分子量は1134であることがわかった。また、図6に示すように、このものはタチナタマメのα−マンノシダーゼにより完全に等モルのマンノースとα−CDに分解された。さらに、13C−NMR解析により、図7に示すように、α−CDのグルコシル基の6位の水酸基にα結合でマンノシル基が結合した化合物(図1の構造式I)であることが確認された。
【0017】
また、反応生成物BおよびC(図8)はいずれも、FAB−MS分析により分子量1296であることがわかった。これらは、タチナタマメのα−マンノシダーゼにより完全に分解され、α−CDと2倍モルのマンノースを生成した。さらに、高速液体クロマトグラフィーの溶出パターンを考慮して、反応生成物BおよびCはαCD1分子に対して2分子のマンノシル基が結合した化合物と考えられる(図2および3の構造式IVおよびVII)。
【0018】
実施例2
(1)縮合反応
マンノース8g,β−CD2gを10mM 酢酸緩衝液(pH4.5)14mlに溶解させた後、タチナタマメのα−マンノシダーゼ(シグマ社製)を75.6単位加え、60℃にて9日間反応させた。反応液の一部を高速液体クロマトグラフィーにより分析した結果を図9に示す。
反応終了後、酵素を熱失活させた溶液を高速液体クロマトグラフィーにかけて反応生成物D130mg、反応生成物E4mgおよび反応生成物F8mgをそれぞれ分取した。
【0019】
(2)構造解析
上記(1)で単離された反応生成物Dは、FAB−MS分析により分子量が1296であることがわかった。また、タチナタマメのα−マンノシダーゼにより完全に等モルのマンノースとβ−CDに分解された。13C−NMR解析により、β−CDのグルコシル基の6位の水酸基にα結合でマンノシル基が結合した化合物(図1の構造式II)であることが確認された。
【0020】
また、反応生成物EおよびFはいずれもFAB−MS分析により分子量1458であることがわかった。これらは、タチナタマメのα−マンノシダーゼにより完全に分解され、β−CDと2倍モルのマンノースを生成した。さらに、液体クロマトグラフィーの溶出パターンを考慮して、反応生成物EおよびFはβ−CD1分子に対して2分子のマンノシル基が結合した化合物と考えられる(図2および3の構造式VおよびVIII) 。
【0021】
実施例3
(1)縮合反応
マンノース2.75g,γ−CD2.75gを10mM 酢酸緩衝液(pH4.5)4.2mlに溶解させた後、タチナタマメのα−マンノシダーゼ(シグマ社製)を42単位加え、60℃にて9日間反応させた。反応液の一部を高速液体クロマトグラフィーにより分析した結果を図10に示す。
反応終了後、酵素を熱失活させた溶液を高速液体クロマトグラフィーにかけて反応生成物G130mg、反応生成物H8mgおよび反応生成物I12mgをそれぞれ分取した。
【0022】
(2)構造解析
上記(1)で単離された反応生成物Gは、FAB−MS分析により分子量は1458であることがわかった。また、タチナタマメのα−マンノシダーゼにより完全に等モルのマンノースとγ−CDに分解された。13C−NMR解析により、γ−CDのグルコシル基の6位の水酸基にα結合でマンノシル基が結合した化合物(図1の構造式III)であることが確認された。
また、反応生成物HおよびIはいずれもFAB−MS分析により分子量1620であることがわかった。これらは、タチナタマメのα−マンノシダーゼにより完全に分解され、γ−CDと2倍モルのマンノースを生成した。さらに、高速液体クロマトグラフィーの溶出パターンを考慮して、生成物HおよびIはγ−CDのグルコシル基に2分子のマンノシル基が結合した化合物と考えられる(図2および3の構造式VIおよびIX)。
【0023】
実施例4
CDとしてα−CDを用いた場合の縮合反応によるマンノシル−α−CDの生成率に及ぼす諸条件について検討した。
(1)酵素添加量の影響
マンノース1.8M、α−CD0.36M(100mMマッキーベン緩衝液、pH4.5)にマンノース1gあたり27.8,55.6または111.2単位のタチナタマメのα−マンノシダーゼ(シグマ社製)を加え、60℃で反応させて経時的にサンプリングし、これを加熱し、酵素反応を停止した後、生成物を高速液体クロマトグラフィーで分析した。その結果、図11に示すように、酵素量の増加に伴って生成率は高くなった。
なお、高速液体クロマトグラフィーの条件は以下の通りである。
【0024】
Figure 0003637085
【0025】
また、酵素1単位は5mMのp−ニトロフェニルα−マンノシド(pH4.5)に40℃で10分間作用させたときに1分間に1μmolのp−ニトロフェノールが遊離する酵素量とした。
【0026】
(2)pHの影響
種々のpHの100mMマッキーベン緩衝液中、マンノース1.8M、α−CD0.36Mの基質にマンノース1gあたり55.6単位のタチナタマメのα−マンノシダーゼ(シグマ社製)を加え、60℃で7日間反応させ、加熱によって酵素反応を停止した後、生成物を高速液体クロマトグラフィーで分析した。その結果、図12に示すように、至適pHはp−ニトロフェニルα−マンノシドを基質に用いた加水分解反応の場合と同じであった。
【0027】
(3)温度の影響
マンノース1.8M、α−CD0.36M(100mMマッキーベン緩衝液、pH4.5)の基質にマンノース1gあたり55.6単位のタチナタマメのα−マンノシダーゼ(シグマ社製)を加え、各温度で1日および7日目にサンプリングし、加熱によって酵素反応を停止した後、生成物を高速液体クロマトグラフィーで分析した。その結果、図13に示すように、反応1日目では65℃のときの生成率が高いが、反応7日目では酵素の失活のため、65℃よりも60℃のときが最も高かった。
【0028】
(4)α−CD濃度の影響
マンノースを1.8Mに固定し、α−CD濃度を0.2〜0.5M(100mMマッキーベン緩衝液、pH4.5)とした基質にマンノース1gあたり55.6単位のタチナタマメのα−マンノシダーゼ(シグマ社製)を加え、60℃で反応させ、1日および7日目にサンプリングし、加熱によって酵素反応を停止した後、生成物を高速液体クロマトグラフィーで分析した。その結果、α−CDの増加に伴って縮合生成物の生成量は増加したが、図14に示すように、α−CDあたりの生成率は低下した。
【0029】
(4)マンノース濃度の影響
α−CDを0.36Mに固定し、マンノース濃度を0.5〜3.5M(100mMマッキーベン緩衝液、pH4.5)とした基質にα−CD1gあたり51.4単位のタチナタマメのα−マンノシダーゼ(シグマ社製)を加え、60℃で7日間反応させ、加熱によって酵素反応を停止した後、生成物を高速液体クロマトグラフィーで分析した。その結果、図15に示すように、反応1日目では大きな差はないが、7日目ではマンノース濃度の増加に伴い生成率は増加した。
【0030】
【発明の効果】
本発明によれば、α−マンノシダーゼの縮合反応を利用して、CD分子中の水酸基にα結合でマンノシル基が結合しているマンノシル−CDを効率よく得ることができる。本発明の方法により得られるマンノシル−CDは、医薬品分野のほか食品分野,化粧品分野等における幅広い利用が期待される。
【図面の簡単な説明】
【図1】 本発明により得られる分岐CDの構造を示す。
【図2】 本発明により得られる分岐CDの構造を示す。
【図3】 本発明により得られる分岐CDの構造を示す。
【図4】 実施例1の反応液の高速液体クロマトグラフである。
【図5】 実施例1の反応生成物Aの高速液体クロマトグラフである。
【図6】 実施例1の反応生成物Aの酵素分解液の高速液体クロマトグラフである。
【図7】 実施例1の反応生成物Aの13C−NMR解析スペクトルである。
【図8】 実施例1の反応生成物BおよびCの高速液体クロマトグラフである。
【図9】 実施例2の反応液の高速液体クロマトグラフである。
【図10】 実施例3の反応液の高速液体クロマトグラフである。
【図11】 実施例4の酵素添加量を変えた場合の生成率の経時的変化を示すグラフである。
【図12】 実施例4の反応の至適pHを示すグラフである。
【図13】 実施例4の反応の至適温度を示すグラフである。
【図14】 実施例4のCD濃度を変えた場合の生成率の変化を示すグラフである。
【図15】 実施例4のマンノース濃度を変えた場合の生成率の変化を示すグラフである。

Claims (3)

  1. シクロデキストリン類の0.2〜20倍(重量比)のマンノースとシクロデキストリン類を含有する溶液にα−マンノシダーゼを作用させることを特徴とするシクロデキストリン類の水酸基にα結合で1個または数個のマンノシル基が結合しているマンノシル−シクロデキストリン類の製造方法。
  2. シクロデキストリン類の濃度が5〜70%(w/w)であり、マンノースの濃度が20〜80%(w/w)である請求項1記載の方法。
  3. pH3〜10、温度25〜85℃で反応させる請求項1記載の方法。
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