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DE02771969T1 - Modulierung des harnstoffabbaus in weinhefe - Google Patents

Modulierung des harnstoffabbaus in weinhefe Download PDF

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yeast strain
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urea
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Jurgens Hendrik VAN VUUREN
Aline Lonvaud
Joana Coulon
Debra Inglis
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University of British Columbia
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Abstract

Hefestamm, der transformiert wurde, so dass die Stickstoffkatabolitrepression einer Harnstoff-abbauenden enzymatischen Aktivität, die von dem Hefestamm unter fermentierenden Bedingungen exprimiert wird, reduziert wird.

Claims (20)

  1. Hefestamm, der transformiert wurde, so dass die Stickstoffkatabolitrepression einer Harnstoff-abbauenden enzymatischen Aktivität, die von dem Hefestamm unter fermentierenden Bedingungen exprimiert wird, reduziert wird.
  2. Hefestamm gemäß Anspruch 1, wobei die Harnstoff-abbauende enzymatische Aktivität eine Harnstoffcarboxylase- oder eine Allophanathydrolaseaktivität ist.
  3. Hefestamm gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei der Stamm mit einer rekombinanten Nukleinsäure transformiert ist, umfassend eine kodierende Sequenz, welche die Harnstoff-abbauende enzymatische Aktivität kodiert.
  4. Hefestamm gemäß Anspruch 1 oder 2, wobei der Stamm mit einer rekombinanten Nukleinsäure transformiert ist, umfassend einen Promotor, der adaptiert ist, die Expression der Harnstoff-abbauenden enzymatischen Aktivität unter fermentierenden Bedingungen zu vermitteln.
  5. Hefestamm gemäß Anspruch 3, wobei die kodierende Sequenz ein offenes Leseraster umfasst, das zu einem offenen Leseraster von DUR1,2 homolog ist.
  6. Hefestamm gemäß einem der Ansprüche 1 bis 5, wobei der Hefestamm unter fermentierenden Bedingungen ein Kohlenhydrat fermentiert, so dass Ethylalkohol produziert wird.
  7. Hefestamm gemäß einem der Ansprüche 1 bis 6, wobei der Hefestamm ein S. cerevisiae-Stamm ist.
  8. Hefestamm gemäß einem der Ansprüche 1 bis 7, wobei der Hefestamm unter fermentierenden Bedingungen einen Wein mit einer Ethylcarbamatkonzentration von weniger als 30 ppb produziert.
  9. Ein Hefestamm, wie er im Wesentlichen zuvor und unter Bezugnahme auf die Beispiele und Zeichnungen beschrieben ist.
  10. Verwendung des Hefestamms gemäß einem der Ansprüche 1 bis 9, um ein fermentiertes alkoholisches Getränk herzustellen.
  11. Verfahren zur Herstellung eines fermentierten alkoholischen Getränks, wobei das Verfahren den Schritt umfasst, den Hefestamm gemäß einem der Ansprüche 1 bis 9 unter den fermentierenden Bedingungen zu halten.
  12. Fermentiertes alkoholisches Getränk gemäß Anspruch 10 oder Anspruch 11.
  13. Fermentiertes alkoholisches Getränk gemäß Anspruch 12, wobei das Getränk Wein oder ein destilliertes alkoholisches Getränk ist.
  14. Fermentiertes alkoholisches Getränk gemäß Anspruch 13, wobei das Getränk Wein ist, und der Wein eine Ethylcarbamatkonzentration von weniger als 30 ppb aufweist.
  15. Verwendung des Hefestamms gemäß einem der Ansprüche 1 bis 9, um ein fermentiertes Produkt herzustellen.
  16. Verfahren zur Herstellung eines fermentierten Produkts, wobei das Verfahren den Schritt umfasst, den Hefestamm gemäß einem der Ansprüche 1 bis 9 unter den fermentierenden Bedingungen zu halten.
  17. Fermentiertes Produkt gemäß Anspruch 15 oder Anspruch 16.
  18. Verfahren zur Modifizierung eines Hefestamms, wobei das Verfahren den Schritt umfasst, den Hefestamm zu transformieren, so dass die Stickstoffkatabolitrepression einer Harnstoff-abbauenden enzymatischen Aktivität, die in dem Hefestamm unter fermentierenden Bedingungen exprimiert wird, reduziert wird.
  19. Isolierte Nukleinsäure, umfassend eine Promotorsequenz, die, wenn sie optimal ausgerichtet wird, zu 95% mit einer nativen DUR1,2-Promotorsequenz identisch ist, wobei die Promotorsequenz keine Stickstoffkatabolitrepression einer operativ verbundenen kodierenden Sequenz unter fermentierenden Bedingungen in einer Wirtszelle vermittelt.
  20. Isolierte Nukleinsäuresequenz, umfassend eine kodierende Sequenz, die, wenn sie optimal ausgerichtet wird, zu 80% mit einer DUR1,2-kodierenden Sequenz identisch ist, wobei die kodierende Sequenz mit einer Promotorsequenz operativ verbunden ist, die keine Stickstoffkatabolitrepression der kodierenden Sequenz unter fermentierenden Bedingungen in einer Wirtszelle vermittelt.
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