JP2006280277A

JP2006280277A - 核酸の抽出方法

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Publication number: JP2006280277A
Application number: JP2005104816A
Authority: JP
Inventors: Tadashi Matsunaga; 是松永; Haruko Takeyama; 春子竹山; Takeshi Tanaka; 剛田中; Kohei Maruyama; 浩平丸山
Original assignee: Tokyo University of Agriculture and Technology NUC; Tokyo University of Agriculture
Current assignee: Tokyo University of Agriculture and Technology NUC; Tokyo University of Agriculture
Priority date: 2005-03-31
Filing date: 2005-03-31
Publication date: 2006-10-19

Abstract

【課題】水溶液中で多量の核酸を高効率で吸着することができ、かつ吸着された核酸を高効率で脱離し、抽出することができ、ＰＣＲ法及びＳＮＰ自動検出の統合化が可能な核酸の抽出方法を提供すること。
【解決手段】粒子の表面に形成されたアミノ基に核酸を吸着させ、該アミノ基に吸着させた核酸を多価アニオン塩溶液と反応させることにより、該アミノ基に吸着させた核酸を脱離し、抽出させることを特徴とする核酸抽出方法。
【選択図】図３

Description

本発明は、粒子による核酸の抽出方法に関する。より詳しくは、アミノ基修飾粒子により多量の核酸を高効率で吸着することができ、かつ吸着された核酸を高効率で脱離することによってターゲットとする核酸をきわめて効率よく抽出することができる核酸抽出方法に関するものである。

近年、ＤＮＡ又はＲＮＡ等の核酸抽出の自動化は、学術分野のみならず医療分野及び産業界においても強く求められているところである。例えば、ヒト全血、血清等に含まれている核酸を自動化抽出し、抽出した核酸をＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）法により増幅させ、更に増幅させた増幅断片についてＳＮＰ（一塩基多型）の遺伝子型判別を行うこと等が検討されている（例えば非特許文献１参照）。

核酸の抽出方法として、カオトロピック塩の存在下、常磁性体の磁性粒子をシリカによりコーティングした磁性粒子を使用し、核酸の吸着、脱離を行う抽出方法が開示されている（例えば特許文献１参照）。

しかしながら、この核酸抽出方法は、吸着、脱離を伴う抽出工程において、カオトロピック塩や、洗浄の際に用いる有機溶媒を使用しなければならないため、抽出後の核酸に有機溶媒が混入することにより酵素阻害等の悪影響を及ぼすという問題点があった。

さらに、核酸を抽出する方法として、磁気微粒子を使用して、核酸を吸着させ、分離して抽出する方法が開示されている。例えば、特許文献２には、磁気微粒子表面にデンドリマーを形成させ、更にデンドリマー表面をアミノ基で被覆したデンドリマー組成物を使用し、核酸を抽出する方法が開示されている（例えば特許文献２参照）。

しかしながら、上記核酸の抽出方法においては、水溶液中で、デンドリマー表面に形成されたアミノ基により核酸を効率良く吸着（捕捉）することはできるものの、一旦吸着された核酸はアミノ基と強く相互作用していることから、核酸を脱離して抽出することは困難であった。例えば、デンドリマー表面に形成されたアミノ基に吸着した核酸に、塩化ナトリウム等の水溶液を加えた場合、吸着した核酸の内約４分の１程度しか核酸を脱離し、抽出することができないものとなっていた。

つまり、デンドリマー表面に形成されたアミノ基と相補的に結合した核酸を脱離し抽出するための最適な条件については全く検討されておらず、結局、核酸抽出方法を既存のＰＣＲ法及びＳＮＰ自動検出法に統合することが困難であるという問題点があった。

syvanen AC. 2001.Accessing genetic variation:genotyping single nucleotide polymorphisms.Nat Rev Genet 2:930-42 特開平２−２８９５９６号公報特開２００４−１５０７９７

以上のような状況に鑑み、本発明の課題は、水溶液中で多量の核酸を高効率で吸着することができ、吸着された核酸を高効率で脱離し、抽出することができ、かつＰＣＲ法及びＳＮＰ自動検出の統合化が可能な核酸の抽出方法を提供することにある。

本発明者等は、上記課題を解決すべく鋭意研究した結果、粒子の表面に形成されたアミノ基に吸着させた多量の核酸に多価アニオン塩溶液を特定条件下で反応させることにより、該アミノ基に吸着させた核酸を極めて効率良く脱離し、抽出することができることを見出し、本発明を完成するに至った。

本発明は以下の事項に関する。すなわち、
（１）粒子の表面に形成されたアミノ基に核酸を吸着させ、該アミノ基に吸着させた核酸を多価アニオン塩溶液と反応させることにより、該アミノ基に吸着させた核酸を脱離させることを特徴とする核酸抽出方法。
（２）前記粒子は、バクテリア由来の磁性体、人工磁性体、金属、プラスチックビーズ、ガラスビーズ、ゲル状物質の粒子から選ばれる少なくとも１つであることを特徴とする（１）に記載の核酸抽出方法。
（３）前記多価アニオン塩溶液は、リン酸塩溶液であることを特徴とする（１）又は（２）に記載の核酸抽出方法。
（４）前記多価アニオン塩溶液の濃度は、１．０ｍＭ〜５００ｍＭであることを特徴とする（１）ないし（３）のいずれかに記載の核酸抽出方法。
（５）前記アミノ基に吸着させた核酸を前記多価アニオン塩溶液と反応させる温度は、１０℃〜９０℃であることを特徴とする（１）ないし（４）のいずれかに記載の核酸抽出方法。
（６）（１）ないし（５）のいずれかに記載の核酸抽出方法により、抽出した核酸をＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）法により増幅させ、更に該増幅させた核酸断片をＳＮＰ（一塩基多型）遺伝子型判別を行うことを特徴とするＳＮＰ検出方法に関する。

本発明の核酸の抽出方法によれば、粒子の表面に形成されたアミノ基により、多量の核酸を吸着することができると同時に、吸着した核酸を極めて効率良く脱離し、抽出することができる。

さらに、本発明の核酸の抽出方法によれば、抽出した核酸をＰＣＲ法により増幅させることができ、さらに増幅した核酸をＳＮＰ自動検出に供することができる。しかも、本発明の核酸抽出方法は、核酸の吸着、脱離の一連の抽出工程を水溶液中で行うことができるため、従来からＰＣＲ法により核酸の増幅工程において問題となっていた有機溶媒による酵素阻害等の悪影響を防止することができる。

すなわち、本発明によれば、核酸の吸着及び脱離を水溶液中で効率良く行うことができるため、ＰＣＲ法に最適な核酸の抽出方法を提供することができ、さらには、ＳＮＰ検出の信頼性及び検出精度を向上させることができる。

以下、本発明の実施の形態を詳細に説明する。

本発明の核酸の抽出方法は、粒子の表面に形成されたアミノ基に多量の核酸を吸着させ、該アミノ基に吸着させた核酸を多価アニオン塩溶液と反応させることにより、核酸を脱離し、抽出することを特徴としている。

＜アミノ基修飾粒子＞
[粒子について]
本発明の核酸の抽出方法において使用される粒子とは、その表面にアミノ基を形成させることができる粒子であれば特に制限されるものではないが、例えばバクテリア由来の磁性体、人工磁性体、金属、プラスチックビーズ、ガラスビーズ、ゲル状物質を例示することができる。これらの中でも、磁性及び大きさ等の観点からバクテリア由来の磁性体が好ましい。

上記バクテリア由来の磁性体は、酸化鉄で構成された単磁区構造を有し、その大きさが５０〜１００ｎｍであり、特に核酸抽出に適したものである。

[粒子の構造]
本発明の核酸の抽出方法においては、上記の粒子の表面に核酸を多量に吸着させるためのアミノ基を形成させる。アミノ基修飾磁気粒子の表面構造は、単層とすることは勿論、さらに表面処理を施し二層以上に分岐を繰り返すデンドリマー状としてもよい。アミノ基修飾磁気微粒子表面のデンドリマーの多層構造は、抽出したい核酸の性質に応じて適宜設定することができる。

上記粒子表面上のアミノ基は、粒子の表面をアミノシラン処理することにより形成される。

アミノシラン処理は、特に限定されるものではないが、例えばアミノシリル化剤やアミノシランカップリング剤を使用して行うことができる。

[アミノシラン処理について]
上記アミノシランカップリング剤により粒子表面にアミノシラン処理を施す際には、粒子に存在するヒドロキシル基を表面に露出させることが好ましい。例えば、粒子としてバクテリア由来の磁性体等の磁性体を採択した場合、該表面をアミノシラン処理するためには粒子表面に存在する脂質二重膜を除去することによって表面のヒドロキシル基を活性化させ、アミノシリル化反応、アミノシランカップリング反応を促進することができる。なお、粒子上の脂質二重膜を除去は、特に限定されるものではないが、粒子を有機溶媒、界面活性剤、強アルカリ等で処理することにより行うことができる。

アミノシランカップリング剤は、粒子表面のヒドロキシル基をアミノシランカップリングすることができれば、特に制限されるものでないが、例えば、入手し易さの観点から３-[２-(２-アミノエチル)-エチルアミン]-プロピルトリメトキシシラン（ＡＥＥＡ）や３-アミノプロピルトリエトキシシラン（ＡＰＴＥＳ）等を使用することができる。また上記シランカップリング剤を溶解させる溶媒としては、上記のアミノカップリング剤を溶解することができれば特に制限されるものではないが、アルコール、炭化水素、芳香族炭化水素等を使用することができ、アミノ基を多量に導入することができることから芳香族炭化水素が好ましく、その中でも特にトルエンを好適に使用することができる。

本発明の核酸の抽出方法においては、上記粒子を界面活性剤等で脂質二重膜を除去した後、アミノシランカップリング剤を所定時間反応させることによりアミノシラン処理をすることができ、粒子表面にアミノ基を導入することができる。なお、導入されたアミノ基の数は、スクシイミジル基を有し、第１級アミンと１対１で反応するサルフォサクシイミド６-[3'-(2-ピリジルジチオール)-プロピオンアミド]ヘキサノエイト（sulfo-LC-SPDP）と反応させ、ＤＴＴ等のチオール性還元剤によってジスルフィド結合を切断し、遊離する化合物の吸光度を測定することにより定量することができる。なお、得られたアミノ基修飾粒子は、炭化水素、アルコール、超純水等に保存することができる。

＜核酸の吸着＞
本発明の核酸の抽出方法においては、血液、血清、バフィーコート、体液、リンパ球、培養細胞、組織等の核酸生体成分が溶解した溶液に上記の粒子を添加し、該溶液中の核酸を粒子表面のアミノ基に吸着させる。すなわち、粒子表面形成されたアミノ基がターゲットとなる核酸との静電相互作用による相補的結合を形成し、これによりターゲットとなる核酸を多量に効率よく吸着することができる。

核酸の吸着量は、添加した核酸溶液中の核酸の量とアミノ基修飾磁性粒子と反応させ洗浄後に上清液から回収された核酸の量との差をとって吸着量とした。なお、核酸の定量は、核酸定量試薬により行うことができる。

＜核酸の脱離＞
[多価アニオン塩溶液について]
本発明において、粒子表面に形成されたアミノ基と静電相互作用による相補的結合により吸着した多量の核酸を効率よく脱離するために多価アニオン塩溶液を使用する。多価アニオン塩溶液中の陰イオンがアミノ基と吸着している核酸に置き換わり、これによって吸着していた核酸の脱離が起こる。

多価アニオン塩としては、アミノ基との静電相互作用が核酸よりも大きいものであれば良く、特に制限されるものではないが、硫酸塩又はリン酸塩が好ましく、具体的には硫酸アンモニウム、硫酸ナトリウム、硫酸マグネシウム、硫酸アルミニウム、リン酸水素アンモニウム、リン酸水素カリウム等を例示することができる。これらの中でもリン酸ナトリウム塩緩衝溶液が特に好ましい。なお、上記緩衝溶液には、少量の塩化ナトリウム等の電解質を添加することもでき、溶液のイオン強度を調整することができる。

上記多価アニオン塩溶液の濃度は、１．０ｍＭ〜５００ｍＭであることが必要である。濃度が１．０ｍＭ未満であると、核酸の脱離が不十分となり、一方、濃度が５００ｍＭを超えると、分離、抽出後の核酸に支障をきたし、ＰＣＲ法による核酸増幅に障害が生じる。

多量の核酸が吸着した粒子上に上記多価アニオン塩溶液を加え、所定の温度にてインキュベートした後、核酸を脱離する。インキュベートする温度としては、１０℃〜９０℃、好ましくは２０℃〜８０℃である。インキュベートする温度が１０℃未満であると核酸の脱離が起こりにくく、９０℃以上であると脱離した核酸に障害を与えることとなり好ましくない。なお、多価アニオン塩溶液の濃度とインキュベートする温度の最適化、ＰＣＲ法の適用を考えると、核酸の脱離する割合が同程度ならば、核酸脱離用多価アニオン塩溶液は低塩下であることが好ましいので、多価アニオン塩の濃度を低く設定するとよい。

本発明において、吸着した核酸を多価アニオン塩溶液によって脱離した核酸等の定量は、核酸が吸着した微粒子に多価アニオン塩溶液を加えた後の上澄み溶液に遊離している核酸を測定することにより行う。

＜ＰＣＲ法への適用＞
本発明においては、上記核酸の抽出方法を従来のＰＣＲ法に統合することができる。すなわち、本発明の核酸の抽出方法により吸着、脱離し、抽出した核酸をテンプレートし、核酸増幅物とすることができる。特に、本発明の場合、水溶液で核酸抽出を行うことができるので酵素阻害等の悪影響を防止することができる。ＰＣＲは、核酸抽出物を所定の温度で、所定時間反応、変性させた後、伸長させた。ＰＣＲ法を適用して得られた核酸増幅物は電気泳動後、染色により生じるバンドの有無により、確認することができる。

さらに本発明においては、核酸抽出方法によって抽出され、ＰＣＲ法により増幅された核酸増幅産物を用いて、更にＳＮＰ自動検出を行うことができる。ＳＮＰ検出は、特に限定されるものでなく、従来の方法にしたがって行うことができる。例えば、核酸増幅産物を緩衝溶液中で固定化した後、アルカリ処理により核酸を１本鎖化とし、標識した検出プローブとハイブリタイズを行い、標識した検出プローブを遊離させることによって行うことができる。

以下、本発明につき、実施例を用いて説明するが、本発明は、なんらこれに限定されるものではない。
＜粒子の調整＞
粒子として、磁性細菌粒子を使用した。磁性細菌粒子は磁性細菌をＭＳＧＭ培地１００Ｌとし、室温にて７日間、微好気条件下で培養した菌体から分離した。さらに、１００００×g、４℃にて連続遠心集菌し、２０mM トリス塩酸緩衝液(Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー、PH7.0)で３回洗浄をした。遠心分離で得られた磁性細菌をトリス塩酸緩衝液(Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー、PH7.0)に懸濁し、フレンチプレス（有限会社大岳製作所製、商品名５５０１Ｍ）を使用して１５００ｋｇ／cｍ²で破砕した。その後、ネオジムーボロン（Ｎｄ−Ｂ）磁石を用いて菌体破砕液から磁性細菌粒子を磁気分離した。回収した磁性粒子は、１０ｍＭＰＢＳ緩衝液中に保存した。

＜磁性細菌粒子の脂質二重膜の除去＞
緩衝溶液に保存した上記磁性細菌微粒子を形成するマグネタイトの結晶表面に存在するヒドロキシル基を露出させるために、ドジデル硫酸ナトリウム（ＳＤＳ：界面活性剤）により脂質二重膜を除去した。磁性細菌粒子１０ｍｇを１％界面活性剤（ＳＤＳ）溶液１mlに懸濁し、１時間煮沸させた。煮沸段階においては、５分ごとに磁性細菌粒子を超音波分散させた。その後、超純水及びメタノールで洗浄した。

＜アミノ基修飾磁性細菌粒子の作製＞
脂質二重膜を除去した磁性細菌粒子を１ｍｇ取り、粒子表面のヒドロキシル基を活性化させるため表面処理を行った。表面処理は、上記磁性細菌粒子をＡＰＭ溶液（アンモニア過水、水：水酸化アンモニウム：過酸化水素＝５：１：１の割合で混合した溶液）に懸濁させ、６０℃で３０分間、超音波を使用して分散させた。分散後の磁性細菌粒子を超純水で洗浄し、メタノール、メタノール／トルエン（１：１）、脱水トルエンの順に置換し洗浄を行った。次に、アミノシランカップリング剤として、３-[２-(２-アミノエチル)-エチルアミン]-プロピルトリメトキシシラン（ＡＥＥＡ）使用し、該アミノシランカップリング剤をトルエンに溶解して１％溶液とした。この溶液１ｍｌをとり磁性細菌粒子とカップリング反応させた。反応条件は６０℃で１０分間行い、常時超音波で磁性細菌粒子を分散させた。カップリング反応後の磁性細菌粒子を磁気回収し、洗浄を行った。洗浄はエタノール、メタノール置換し、メタノール洗浄は５回繰り返した。

このように作製したアミノ基修飾磁性細菌粒子の表面上のアミノ基数をサルフォサクシイミド６-[3'-(2-ピリジルジチオール)-プロピオンアミド]ヘキサノエイト（sulfo-LC-SPDP）を使用し測定した。上記アミノ基修飾磁性細菌粒子を１００μgとり、上澄みを取り除き、超純水で置換した後、５mMのサルフォサクシイミド６-[3'-(2-ピリジルジチオール)-プロピオンアミド]ヘキサノエイト（sulfo-LC-SPDP）、１００μｌに懸濁して、室温にて３０分インキュベートした。磁性細菌粒子を５分毎に超音波により分散させた。分散後、上澄みを磁気分離により取り除いた。

次に、超純水１００μｌを加え、超音波で磁性細菌粒子を攪拌することにより該磁性細菌粒子の洗浄を行い、非特異的に吸着したサルフォサクシイミド６-[3'-(2-ピリジルジチオール)-プロピオンアミド]ヘキサノエイト（sulfo-LC-SPDP）を除去した。この工程を３回繰り返し、超純水を除き、２０ｍＭのＤＴＴ２００μｌに粒子を懸濁し、５分毎に超音波で分散させながら、室温で３０分インキュベートした。サルフォサクシイミド６-[3'-(2-ピリジルジチオール)-プロピオンアミド]ヘキサノエイト（sulfo-LC-SPDP）のジスルフィド結合の開裂によって遊離した２−ピリジルチオールの３４３ｎｍの吸収を測定することにより磁性細菌粒子表面上のアミノ基を測定した。なお、２−ピリジルチオールの検出には紫外線可視分光度計（島津製作所製ＵＶ−１６００）により行った。測定の結果、磁性細菌粒子１粒あたり１．２×１０^５のアミノ基が存在していることが明らかとなった。

＜アミノ基修飾磁性細菌粒子によるλＤＮＡの吸着＞
上記アミノ基修飾磁性細菌粒子を使用して、λＤＮＡの吸着を行った。具体的には、上記作製したアミノ基修飾磁性細菌粒子を用い、核酸としてλＤＮＡを採択し、該核酸の吸着、脱離によるλＤＮＡの抽出を行った。具体的には、アミノ基修飾磁性細菌粒子１０μｇに所定の濃度のλＤＮＡ溶液４０μｌを加えた後、２０分間、２５℃でインキュベートし、同時に５分毎に超音波による磁性細菌粒子の分散を行った。その後、加えたλＤＮＡ溶液を回収して、磁性細菌粒子の洗浄を行った。さらに磁性細菌粒子の洗浄を３回繰り返した。加えたλＤＮＡの量から洗浄後に上澄み溶液に存在するλＤＮＡの量の合計を差し引きして、磁性細菌微粒子によるλＤＮＡの吸着量とした。測定の結果、磁性細菌微粒子１０μｇあたり、６００ｎｇのλＤＮＡを吸着することができた。測定結果を図１に示す。

＜アミノ基修飾磁性細菌粒子に吸着したλＤＮＡの脱離＞
（実施例１）
アミノ基修飾磁性細菌粒子１０μｇにリン酸ナトリウム緩衝溶液（２０ｍＭリン酸水素ナトリウム溶液、塩化ナトリウム溶液１１．３７ｇ／１００ｍｌ、ＰＨ８．２、イオン強度を２．０Ｉ）を加え、室温で２０分間インキュベートした。インキュベートと同時に５分ごとに超音波で磁性細菌粒子を攪拌した。２０分間後、磁性細菌粒子を磁気回収して、上澄み液中に存在する脱離したλＤＮＡを定量した。その結果、吸着したλＤＮＡ６００ｎｇの５１％を脱離、抽出することができた。なお、λＤＮＡの定量には、ＤＮＡ定量試薬であるPicoGreen（モレキュラープローブ社製）を使用した。測定結果を図２に示す。

（実施例２及び３、比較例１）
多価アニオン塩溶液として、リン酸ナトリウム緩衝溶液に代えて、実施例２：トリス塩酸緩衝液(Ｔｒｉｓ−ＨＣｌバッファー)、実施例３：ヘペス緩衝液（ＨＥＰＥＳバッファー）、比較例１：塩化ナトリウム溶液を使用した以外は実施例１と同様にしてλＤＮＡの脱離、抽出を行い、同様に抽出したλＤＮＡの割合を測定した。測定結果を図２に示す。

＜リン酸ナトリウム緩衝溶液の濃度について＞
（実施例４〜実施例７）
多価アニオン塩溶液として、リン酸ナトリウム緩衝溶液を使用し、ＤＮＡ脱離の温度を２５℃とし、その濃度を変化させた以外は、実施例１と同様にしてλＤＮＡの脱離、抽出を行った。λＤＮＡの抽出量の測定結果を図３に示す。
（実施例８〜実施例１１）
λＤＮＡ脱離の温度を８０℃とした以外は実施例４と同様にしてλＤＮＡの脱離、抽出を行った。λＤＮＡの抽出量の測定結果を図３に示す。

図１〜図３からも明らかなように、多価アニオン塩溶液として、リン酸ナトリウム緩衝溶液を使用し、温度を８０℃に設定することにより、アミノ基修飾磁性細菌粒子に吸着した多量のλＤＮＡをほぼ１００％という極めて高効率で脱離し、抽出することができることが理解される。

＜抽出したλＤＮＡのＰＣＲ法による増幅＞
（実施例１２）
８７ｍＭのリン酸ナトリウム緩衝溶液を使用し、脱離し抽出したλＤＮＡを１．０μｌ採取し、全量５０μｌで、ＰＣＲを行った。ＰＣＲのターゲットとしては、λＤＮＡに特異な配列でリアルタイムＰＣＲの推奨されているプロトコル（Biocompare@：The buyer's guide for life science）に用いられているものを使用した。

その配列は、フォワードプライマー:5'-ＧＣＡＡＧＴＡＴＣＧＴＴＴＣＣＡＣＣＧＴ-３'およびリバースプライマー: 5'-ＴＴＡＴＡＡＧＴＣＴＡＡＴＧＡＡＧＡＣＡＡＡＴＣＣＣ-３'である。

ＰＣＲ反応は２．５ＵＴａｑＤＮＡポリメラーゼ、０．２ｍＭｄＮＴＰｓ、０．２μＭプライマー、１．５ｍＭの塩化マグネシウムを含むＰＣＲ中バッファー中、全量５０μｌで行った。ＰＣＲ反応の条件は、９５℃で１０秒、６０℃で１５秒、７２℃で２０秒を３５サイクルで行い、その後７２℃で５分間伸長させた。ＰＣＲ反応後のＰＣＲ増幅産物は３．０％アガロースを用いて電気泳動を行い、電気泳動後エチルブロマイドで染色して確認をした。結果を図４に示す。なお、電気泳動は、パルスフィールド電気泳動用関連機器CHEF−Mapper(バイオラッド社製)を使用して行った。

（実施例１３）
リン酸ナトリウム緩衝溶液の濃度を６９０ｍＭとした以外は実施例１２と同様にして行った。抽出したλＤＮＡのＰＣＲ反応を行い、ＰＣＲ増幅産物の電気泳動を行った。結果を図４に示す。

図４から、リン酸ナトリウム緩衝溶液の濃度を８７ｍＭとした場合にはＰＣＲ阻害性が全く見られないことが明瞭に理解される。

＜ヒト全血からのＤＮＡ吸着と分離、抽出及びＰＣＲ法による増幅＞
（実施例１５）
ヒト全血１５μｌに対して、溶解バッファー（５．０Ｍ Urea、４％ Tween 20 、２０mM MES PH 5.0 、Protenase K ０．１mg／ｍｌ）を２５μｌ加え、これに実施例１で用いたアミノ基修飾磁性細菌粒子を１０μｇ混合した。これを５６℃で２０分間インキュベートし、同時に５分毎に超音波で該磁性細菌粒子を分散させた。その後、磁性細菌粒子を磁気回収した後、磁性細菌粒子を溶解バッファーで３回洗浄した。さらに、濃度８７ｍＭのリン酸ナトリウム緩衝溶液を４０μｌ加え、２０分間インキュベートした。同時に５分毎に超音波により、磁性細菌粒子を磁気回収して、上澄み溶液のλＤＮＡを実施例１と同様に定量した。

その結果、λＤＮＡ抽出量は、２３０ｎｇ／１５μｌ-Ｂｌｏｏｄであり、これを濃度換算すると、５．７ｎｇ／μｌであった。更にλＤＮＡ抽出後の上澄み溶液１μｌをＰＣＲのテンプレートとし、その阻害性を検出した（ターゲットはアルデヒド脱酵素ＡＬＤＨ２遺伝子の一塩基変異を含む６３ｂｐ）。測定結果を図５に示す。

図５に示すように、ヒト全血から多量の核酸を吸着、分離し抽出することができ、しかも抽出した核酸をＰＣＲにより増幅することができる。また、増幅された核酸は、ＰＣＲ阻害性を有していないものであることが明瞭に理解される。

＜増幅されたλＤＮＡのＳＮＰ検出＞
（実施例１６）
上記実施例１５で得られた１０μｌのＰＣＲ増幅産物（片側の鎖にビオチン標識されている。）を２５μｇのストレプトアビジン固定化磁性ビーズ（ダイナル社製、商品名Ｍ−２８０）を含む１２．５μｌのＴＥＮバッファー中（１０ｍＭＴｒｉｓ−ＨＣｌバッファー 1ｍＭＥＤＴＡ、２Ｍ塩化ナトリウム溶液）で反応させ、ビーズ上にＰＣＲ産物を固定化した。

次に、５０ｍＭの水酸化ナトリウム水溶液を用いて、ビーズ上のＰＣＲ産物をアルカリによる一本鎖化処理を行った後、５０ｐモルのＣｙ３もしくはＣｙ５標識されたＡＬＤＨ２遺伝子型判別用の検出プローブ（ＡＬＤＨ２＊１検出プローブ：5'-ＴＴＣＡＣＴＴＣＡＧＴＧＴＡＴ、ＡＬＤＨ２＊２検出プローブ：5'-ＴＴＣＡＣＴＴＴＡＧＴＧＴＡＴと２５℃でハイブリタイズさせた。その後３２℃まで加熱し、同温度のままＰＢＳバッファーを用いて３回洗浄することにより、未ハイブリタイズ、もしくは非特異吸着した検出したプローブを除去した。

更に、８０℃で粒子上のＰＣＲ産物からハイブリタイズした検出プローブを遊離させ、標識されたＣｙ３もしくはＣｙ５の蛍光物質の蛍光強度をマイクリプレートリーダーにて測定した。測定結果を図６に示す。

図６に示すように、増幅された核酸に対して遺伝子型の判別が可能であることが示された。

本発明の核酸の抽出方法は、核酸抽出の自動化技術に貢献することができるものであり、遺伝子診断やオーダーメイド医療等の発展が著しい医療分野の技術革新に寄与することができる。また、既存のＰＣＲ法及びＳＮＰ自動検出の統合化が可能なものとなり、遺伝子解析技術の向上に大きく寄与することができる革新的な技術となる。

添加したλＤＮＡの量（ｎｇ）とアミノ基修飾磁性磁気微粒子(ＢＭＰs)によるλＤＮＡの吸着量(ｎｇ／１０μｇ-ＢＭＰs)との関係を示す図である。各多価アニオン塩溶液とλＤＮＡの脱離割合（％）の関係を示す図である。リン酸ナトリウム緩衝溶液の濃度（ｍＭ）とλＤＮＡの脱離割合（％）との関係を示すを示す図である（２５℃、８０℃）。抽出したλＤＮＡのＰＣＲ反応後における電気泳動写真である。ヒト全血から抽出したＤＮＡのＰＣＲ反応後における電気泳動写真である。ヒト全血から抽出したＤＮＡのＰＣＲ産物に対するＳＮＰ検出結果を示す図である（アルデヒド脱水素酵素ＡＬＤＨ２遺伝子）。

Claims

粒子の表面に形成されたアミノ基に核酸を吸着させ、該アミノ基に吸着させた核酸を多価アニオン塩溶液と反応させることにより、該アミノ基に吸着させた核酸を脱離させることを特徴とする核酸抽出方法。
前記粒子は、バクテリア由来の磁性体、人工磁性体、金属、プラスチックビーズ、ガラスビーズ、ゲル状物質の粒子から選ばれる少なくとも１つであることを特徴とする請求項１記載の核酸抽出方法。
前記多価アニオン塩溶液は、リン酸塩溶液であることを特徴とする請求項１又は請求項２に記載の核酸抽出方法。
前記多価アニオン塩溶液の濃度は、１．０ｍＭ〜５００ｍＭであることを特徴とする請求項１ないし請求項３のいずれか１項に記載の核酸抽出方法。
前記アミノ基に吸着させた核酸を前記多価アニオン塩溶液と反応させる温度は、１０℃〜９０℃であることを特徴とする請求項１ないし請求項４のいずれか１項に記載の核酸抽出方法。
請求項１ないし請求項５のいずれか１項に記載の核酸抽出方法により、抽出した核酸をＰＣＲ（ポリメラーゼ連鎖反応）法により増幅させ、更に該増幅させた核酸断片をＳＮＰ（一塩基多型）遺伝子型判別を行うことを特徴とするＳＮＰ検出方法。