ES2289192T3 - Microporacion de tejido para suministro de agentes bioactivos. - Google Patents
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Abstract
Un sistema para suministrar un permeante a un organismo que comprende: medios para destruir la piel del organismo en un área seleccionada para formar una pluralidad de microporos, teniendo cada microporo 1-1000 µm de diámetro y extendiéndose hasta una profundidad deseada por debajo de una capa epidérmica de la piel, comprendiendo dichos medios de destrucción una sonda calentada eléctricamente (186) en comunicación operativa con unos medios para modular la temperatura de dicha sonda calentada eléctricamente, entre un estado de temperatura elevada y un estado de temperatura reducida (178), estando colocada dicha sonda calentada eléctricamente en contacto directo con una zona del área seleccionada de la piel; un depósito (308) que contiene el permeante, estando dimensionado dicho depósito para su colocación cubriendo la pluralidad de microporos formados; en el que, en el estado de temperatura elevada, dicha sonda calentada eléctricamente transfiere conductivamente energía térmica hasta la zonade la piel en contacto, hasta elevar la temperatura de la piel subyacente a la zona de contacto para destruir una zona de la piel hasta una profundidad deseada por debajo de la capa epidérmica, y en el que, en el estado de temperatura reducida, dicha sonda calentada eléctricamente transfiere menos energía térmica a la piel que la que se requiere para destruir la zona de piel; y medios de control de la impedancia para ajustar el cambio en impedancia eléctrica de dicha sonda calentada eléctricamente en respuesta a la temperatura de dicha sonda calentada eléctricamente, estando acoplados operativamente dichos medios de control de la impedancia a dichos medios de modulación, para modular la corriente suministrada a dicha sonda calentada eléctricamente, de forma que la sonda calentada eléctricamente se mantiene en el estado de temperatura elevada durante un espacio de tiempo deseado.
Description
Microporación de tejido para suministro de
agentes bioactivos.
Esta invención se refiere en general al campo
del suministro transmembranar de fármacos o moléculas bioactivas a
un organismo. Más particularmente, esta invención se refiere a un
sistema mínimamente invasivo o no invasivo, para suministrar un
permeante a un organismo incrementando la permeabilidad de la piel,
membrana mucosa o capa externa de una planta, a través de la
microporación en esta membrana biológica.
El estrato córneo es particularmente responsable
de las propiedades de barrera bien conocidas de la piel. Por tanto,
es esta capa la que presenta la mayor barrera al flujo transdérmico
de fármacos u otras moléculas hacia el cuerpo y de los analitos al
exterior del cuerpo. El estrato córneo, la capa externa córnea del
cuerpo, es una estructura compleja de remanentes celulares
queratinizados compactos, separados por dominios lipídicos.
Comparado con la mucosa gástrica u oral, el estrato córneo es mucho
menos permeable a moléculas, bien externas o internas al cuerpo. El
estrato córneo está formado por queratinocitos, que comprenden la
mayoría de las células epidérmicas, que pierden sus núcleos y se
transforman en corneocitos. Estas células muertas forman el estrato
córneo, que tiene un grosor de sólo aproximadamente
10-30 \mum y, según se indicó anteriormente, es
una membrana impermeable muy resistente que protege el cuerpo de la
invasión de sustancias exteriores y la migración hacia el exterior
de fluidos y moléculas disueltas. El estrato córneo se renueva
continuamente por desprendimiento de las células córneas durante la
descamación y la formación de nuevas células córneas mediante el
proceso de queratinización.
Debajo del estrato córneo está la capa de
células viables de la epidermis y la dermis, o capa de tejido
conectivo. Estas capas forman conjuntamente la piel. La
microporación en estas capas subyacentes (la capa de células
viables y la dermis) no se ha usado previamente pero puede
incrementar el flujo transdérmico. Más profundas en la dermis están
las estructuras subyacentes del cuerpo, incluyendo grasa, músculo,
hueso, etc.
La microporación en la membrana mucosa no se
usado previamente. La membrana mucosa carece normalmente de estrato
córneo. La capa más superficial es la capa epitelial que consiste en
numerosas capas de células viables. Más profunda respecto a la capa
epitelial está la lámina propia, o la capa de tejido conectivo.
La microporación en plantas ha estado limitada
previamente a seleccionar aplicaciones en células individuales en
instalaciones de laboratorios. Los organismos vegetales tienen
generalmente capas externas duras para proporcionar resistencia a
los elementos y la enfermedad. La microporación en esta capa externa
dura de las plantas permite el suministro de sustancias útiles para
la introducción en la planta, como para conferir la característica
deseada a la planta o para la producción de una sustancia deseada.
Por ejemplo, se puede tratar una planta, de forma que cada célula
de la planta exprese un péptido particular y útil, como una hormona
o insulina humana.
El flujo de un fármaco o analito a través de la
membrana biológica se puede incrementar cambiando, bien la
resistencia (el coeficiente de difusión) o el gradiente de potencial
(el gradiente para difusión). El flujo se puede incrementar
mediante el uso de los denominados potenciadores de penetración o
químicos. Los potenciadores químicos se conocen bien en la técnica
y se proporcionará a continuación una descripción más detallada.
Otro método para incrementar la permeabilidad de
la piel a los fármacos es la iontoforesis. La iontoforesis implica
la aplicación de un campo eléctrico externo y el suministro tópico
de una forma ionizada de fármaco o un fármaco desionizado
transportado con el flujo de agua asociado con el transporte de
iones (electro-ósmosis). Aunque el incremento de la permeación con
la iontoforesis ha sido efectivo, el control del suministro de
fármacos y el deterioro irreversible de la piel son problemas
asociados con la técnica.
La energía sónica se ha usado también para
incrementar la permeabilidad de la piel y las membranas sintéticas
a los fármacos y otras moléculas. Los ultrasonidos se han definido
como ondas de presión mecánica con frecuencias superiores a 20 kHz,
H. Lutz et al., Manual of Ultrasound
3-12 (1984). La energía sónica se genera haciendo
vibrar un cristal piezoeléctrico u otro elemento electromecánico
haciendo pasar una corriente alterna a través del material, R.
Brucks et al., 6 Pharm. Res. 697 (1989). El uso de
energía sónica para incrementar la permeabilidad de la piel a las
moléculas de fármaco se ha denominado sonoforesis o fonoforesis.
Aunque se ha confirmado que el incremento de la
permeabilidad de la piel debería teóricamente hacer posible
transportar moléculas desde el interior del cuerpo a través de la
piel hacia el exterior del cuerpo, para recogida o supervisión, no
se han descrito métodos realizables en la práctica. La patente de
EE.UU. Nº 5.139.023 de Stanley et al., describe un aparato y
método para supervisión no invasiva de la glucosa sanguínea. En
esta invención, se usan potenciadores de permeación química para
incrementar la permeabilidad del tejido mucoso o la piel a la
glucosa. La glucosa se difunde entonces pasivamente a través del
tejido mucoso o la piel y se captura en un medio receptor. La
cantidad de glucosa en el medio receptor se mide y correlaciona
para determinar la concentración de glucosa sanguínea. Sin embargo,
según se enseña en Stanley et al., este método es mucho más
eficiente cuando se usa sobre el tejido mucoso, como en el tejido
bucal, lo cual hace que se recojan cantidades detectables de
glucosa en el medio receptor, después de un tiempo muerto de
aproximadamente 10-20 minutos. Sin embargo, el
método enseñado por Stanley et al. produce un tiempo muerto
extremadamente largo, que varía de 2 a 24 horas dependiendo de la
composición química potenciadora usada, antes de que se puedan
detectar cantidades de glucosa detectables difundiéndose a través de
la piel humana (epidermis separada térmicamente) in vitro.
Estos tiempos muertos se pueden atribuir a la cantidad de tiempo
requerida para que los potenciadores de la permeación química
difundan rápidamente a través de la piel e incrementen la
permeabilidad de la barrera del estrato córneo, así como a la
cantidad de tiempo requerida para que la glucosa se difunda
pasivamente a través de la piel hacia el exterior. Por tanto,
Stanley et al., claramente no enseña un método para
transportar glucosa sanguínea u otros analitos no invasivamente a
través de la piel, de una forma que permita la supervisión rápida,
según se requiere para la supervisión de la glucosa sanguínea de
pacientes diabéticos y para muchos otros analitos corporales, como
electrolitos sanguíneos.
Aunque se conoce el uso de energía sónica para
suministro de fármacos, los resultados han sido muy desalentadores,
ya que el incremento de la permeabilidad ha sido relativamente bajo.
No hay consenso sobre la eficacia de la energía sónica para
incrementar el flujo de fármacos a través de la piel. Aunque algunos
estudios describen el éxito de la sonoforesis, J. Davick et
al., 68 Phys. Ther. 1672 (1988); J. Griffin et
al., 47 Phys. Ther. 594(1967); J. Griffin &
J. Touchstone, 42 Am. J. Phys. Med. 77 (1963); J. Griffin
et al., 44 Am. J. Phys., Med. 20(1965); D.
Levy et al., 83 J. Clin. Invest. 2074); D. Bommannan
et al. 9 Pharm. Res. 559 (1992), otros han obtenido
resultados negativos, H. Benson et al., 69 Phys. Ther.
113 (1998); J. MecElnay et al., 20 Br. J. Clin.
Pharmacol. 4221(1985); H. Pratzel et al., 13 J.
Rheumatol. 1122 (1986). Los sistemas en los que se empleaba
piel de roedor mostraban los resultados más prometedores, mientras
que los sistemas en los que se empleaba piel humana han mostrado en
general resultados desalentadores. Es bien conocido para los
expertos en la técnica que la piel de los roedores es mucho más
permeable que la piel humana y, consecuentemente, los resultados
anteriores no enseñan al experto en la técnica cómo utilizar de
forma efectiva la sonoforesis aplicada al suministro y/o el control
transdérmicos a través de la piel humana.
En las solicitudes en tramitación junto con la
presente, de N^{os} de serie 08/152.442 presentada el 15 de
noviembre de 1993, actualmente patente de EE.UU. Nº 5.458.140, y en
el Nº de serie 08/152.174 presentada el 8 de diciembre de 1993,
actualmente patente de EE.UU. Nº 5.445.611, se describe y reivindica
una mejora significativa en el uso de la energía ultrasónica en el
control de analitos y también en el suministro de fármacos al
cuerpo. En estas invenciones se consigue el muestreo transdérmico de
un analito o el suministro transdérmico de fármacos, mediante el
uso de energía sónica que se modula en intensidad, fase o
frecuencia, o una combinación de estos parámetros, asociado con el
uso de potenciadores de permeación químicos. También se describe el
uso de energía sónica, opcionalmente con modulaciones de frecuencia,
intensidad y/o fase, para impulsar y/o bombear moléculas de forma
controlable a través del estrato córneo vía perforaciones
introducidas mediante punción con agujas, chorro hidráulico, láser,
electroporación u otros métodos.
La microporación (es decir, formación de
microporos) en el estrato córneo para incrementar el suministro de
fármacos, ha sido el objeto de diversos estudios, y ha producido la
concesión de patentes para tales técnicas.
Jacques et al., 88 J. Invest.
Dermatol. 88-93 (1987), enseña un método de
administración de un fármaco destruyendo el estrato córneo de una
región de la piel, usando luz láser pulsada de longitud de onda,
longitud de pulso, energía de pulso, número de pulsos y velocidad
de repetición de pulsos suficiente para destruir el estrato córneo,
sin dañar significativamente la epidermis subyacente y, a
continuación, aplicar el fármaco a la región de la destrucción.
Este trabajo originó la concesión de la patente de EE.UU. 4.775.361
a Jacques et al. La destrucción de la piel a través del uso
de irradiación con láser-ultravioleta había sido
descrita anteriormente por Lane et al., 121 Arch.
Dermatol. 609-617 (1985). Jacques et al.
se restringe al uso de pocas longitudes de onda de luz y láseres
caros.
Tankovich, patente de EE.UU. Nº 5.165.418 (de
aquí en adelante, "418 de Tankovich"), describe un método para
obtener una muestra sanguínea irradiando piel humana o animal con
uno o más pulsos de láser de energía suficiente para producir la
vaporización del tejido de la piel, produciendo un orificio en la
piel que se extiende a través de la epidermis, y cortando al menos
un vaso sanguíneo, haciendo que se expulse una cantidad de sangre a
través del orificio, de forma que se pueda recoger. La 418 de
Tankovich es, por tanto, inadecuada para la permeabilización no
invasiva o mínimamente invasiva del estrato córneo, de forma que se
pueda suministrar un fármaco al cuerpo o que se pueda analizar un
analito procedente del cuerpo.
La patente de EE.UU. Nº 5.423.803 de Tankovich
et al. (de aquí en adelante "803 de Tankovich"),
describe un método de eliminación por láser de células cutáneas
epidérmicas superficiales en piel humana, para aplicaciones
cosméticas. El método comprende la aplicación de un
"contaminante" absorbedor de luz a las capas externas de la
epidermis, y forzar parte de este contaminante hacia el interior o a
través de los espacios intercelulares en el estrato córneo, e
iluminar la piel infiltrada con pulsos de luz láser de intensidad
suficiente, de forma que la cantidad de energía absorbida por el
contaminante hará que el contaminante explote con suficiente energía
para desgarrar algunas de las células cutáneas epidérmicas. La 803
de Tankovich enseña además que debería existir una absorción
elevada de energía por el contaminante a la longitud de onda del haz
láser, que el haz láser tiene que ser un haz pulsado de menos de 1
\mus de duración, que el contaminante tiene que forzarse hacia el
interior o a través de las capas superiores de la epidermis, y que
el contaminante tiene que explotar con suficiente energía para
desgarrar células epidérmicas tras la absorción de energía láser.
Esta invención tampoco describe o sugiere un método de suministro
de fármacos o recogida de analitos.
Raven et al., WO 92/00106, describe un
método para eliminar selectivamente tejido enfermo de un cuerpo,
administrando a un tejido seleccionado un compuesto que es muy
absorbedor de radiación infrarroja de longitud de onda
750-860 nm e irradiando la región con radiación
infrarroja correspondiente, a una potencia suficiente para producir
la vaporización térmica del tejido al que se administró el
compuesto, pero insuficiente para producir vaporización del tejido
al que no se había administrado el compuesto. El compuesto
absorbedor debería ser soluble en agua o suero, por ejemplo verde
de indocianina, clorofila, porfirinas, compuestos que contengan
hemo, o compuestos que contengan una estructura polieno, y los
niveles de potencia están en el intervalo de
50-1000 W/cm^{2} o incluso superiores.
Konig et al., DD 259351, enseña un
procedimiento para el tratamiento térmico de tejido tumoral, que
comprende depositar un medio en el tejido tumoral, que absorbe la
radiación en la región espectral del rojo y/o próxima al rojo, e
irradiar el tejido infiltrado con una longitud de onda apropiada de
luz láser. Los medios absorbedores pueden incluir azul de metileno,
porfirina reducida o sus agregados, y azul de ftalocianina. Se
ejemplifica el azul de metileno, que absorbe fuertemente a
600-700 nm, y un láser de kriptón que emite a 647 y
676 nm. El nivel de potencia debería ser al menos 200
mW/cm^{2}.
Se ha demostrado que separando el estrato córneo
de una pequeña área de la piel, con la aplicación y eliminación
repetida de papel celo a la misma localización, se pueden recoger
cantidades arbitrarias de fluido intersticial, que se puede
analizar después para diversos analitos de interés. De forma similar
la piel "separada con celo" se ha demostrado que es permeable
al suministro transdérmico de compuestos hacia el interior del
cuerpo. Desafortunadamente, la "separación con celo" deja una
rozadura abierta que tarda semanas en cicatrizar y, por esto, así
como por otras razones, no se considera una práctica aceptable para
incrementar el transporte transcutáneo en aplicaciones amplias.
Según se analizó anteriormente, se ha demostrado
que los láseres pulsados, como el láser excímer funcionando a 193
nm, el láser de erbio funcionando cerca de 2,9 \mum o el láser de
CO_{2} funcionando a 10,2 \mum, se pueden usar para originar de
forma efectiva pequeños orificios en el estrato córneo humano. Estas
técnicas de destrucción por láser ofrecen el potencial de un método
selectivo y potencialmente no traumático para abrir un orificio de
suministro y/o muestreo a través del estrato córneo. Sin embargo,
debido a los costes prohibitivos asociados con estas fuentes de
luz, no han existido productos comerciales basados en este concepto.
La invención descrita en este momento permite producir la
microdestrucción deseada de la membrana biológica con fuentes de
energía de coste muy bajo, proporcionando un sistema para conducir
directamente la energía térmica hacia el interior o a través de la
membrana biológica con resolución espacial y temporal definida muy
precisamente.
A la vista de los problemas y/o deficiencias
anteriores, el desarrollo de un sistema para incrementar de forma
segura la permeabilidad de la membrana biológica, para el control
mínimamente invasivo o no invasivo de los analitos del cuerpo en un
marco temporal más rápido, sería un avance significativo en la
técnica. Otro avance significativo en la técnica sería proporcionar
un sistema para incrementar de forma mínimamente invasiva o no
invasiva la velocidad de flujo transmembranar de un fármaco hacia el
interior de un área seleccionada de un organismo.
Se están realizando avances significativos en el
suministro de fármacos y otros compuestos, a través del uso de
diversas técnicas que incrementan la permeabilidad de una membrana
biológica, tal como la piel o la membrana mucosa. Se han realizado
avances incluso más prometedores a través de técnicas para crear
microporos, según se describe en las aplicaciones mencionadas
anteriormente.
No obstante, es deseable mejorar en estas
tecnologías, formando microporos a profundidades seleccionadas en
la membrana biológica y para suministrar compuestos tanto grandes
como pequeños, en términos de peso molecular y tamaño, a través de
los microporos hacia el interior del cuerpo.
La presente invención proporciona un sistema
para suministrar un permeante hacia el interior de un organismo,
que comprende:
medios para destruir la piel del organismo en un
área seleccionada para formar una pluralidad de microporos,
teniendo cada microporo 1-1000 \mum de diámetro y
extendiéndose hasta una profundidad deseada por debajo de la capa
epidérmica de la piel, comprendiendo dichos medios de destrucción un
elemento sólido calentado eléctricamente
(186-Figura 5), en comunicación operativa con medios
para modular la temperatura de dicho elemento sólido entre un
estado de temperatura elevada y un estado de temperatura reducida
(178-Figura 5), estando colocado dicho elemento
sólido en contacto directo con una parte del área seleccionada de la
piel;
un depósito (308-Figura 28) que
contiene el permeante, estando dimensionado dicho depósito para
colocarlo cubriendo la pluralidad de microporos formados;
en el que, en el estado de temperatura elevada,
dicho elemento sólido transfiere de forma conductiva energía
térmica hasta la porción de contacto de la piel para elevar la
temperatura de la piel subyacente a la porción de contacto,
destruyendo una porción de la piel hasta una profundidad deseada por
debajo de la capa epidérmica y, en el que, en el estado de
temperatura reducida, dicho elemento sólido transfiere de forma
conductiva menos energía térmica a la piel que la que se requiere
para destruir la piel; y
medios de control de la impedancia para
determinar el cambio en impedancia eléctrica de dicho elemento
sólido en respuesta a la temperatura de dicho elemento sólido,
estando dichos medios de control de la impedancia ligados
operativamente a dichos medios de modulación, para modular la
corriente suministrada a dicho elemento sólido, de forma que dicho
elemento sólido se mantiene en el estado de temperatura
\hbox{elevada durante un período de tiempo deseado.}
En una realización, la capa epidérmica es la
capa del estrato córneo de la piel.
En otra realización, la profundidad de los
microporos se extiende al menos hacia el interior de la capa de
células viables de la piel.
En ciertas realizaciones, la profundidad del
microporo está entre aproximadamente 100 micrones y aproximadamente
300 micrones, entre aproximadamente 180 micrones y aproximadamente
300 micrones, entre aproximadamente 20 micrones y aproximadamente
100 micrones, o superior a aproximadamente 110 micrones.
En una realización, dichos medios de modulación
comprenden un circuito cerrado de modulación de corriente (174,
178-Figura 5), que modula la corriente suministrada
a dicho elemento sólido, de forma que dicho elemento sólido se
mantiene sustancialmente en el estado de temperatura elevado durante
menos de aproximadamente 20 milisegundos, para reducir la sensación
para el organismo y minimizar el volumen de tejido al que le está
afectando la energía térmica transferida.
Preferiblemente, en el estado de temperatura
reducida, el circuito cerrado de modulación de corriente elimina la
corriente de dicho elemento sólido.
En otra realización, dichos medio de modulación
comprenden un campo magnético modulador, alimentándose dicho campo
magnético selectivamente para producir corrientes eléctricas
inducidas dentro de dicho elemento sólido, de forma que el elemento
sólido se mantiene sustancialmente en el estado a temperatura
elevada durante menos de aproximadamente 20 milisegundos, para
reducir la sensación al organismo y minimizar el volumen de tejido
al que le está afectando la energía térmica transferida.
En una realización, el sistema de la invención
comprende además medios para detectar cuando la destrucción de la
piel ha formado la pluralidad de microporos hasta la profundidad
deseada en la piel.
En una realización preferida, dichos medios de
detección comprenden un medio para medir los cambios en la
impedancia eléctrica de la piel a medida que se forma la pluralidad
de microporos (250-Figura 7). En una realización,
la impedancia eléctrica que se está midiendo es una impedancia
compleja.
En una realización, el sistema de la invención
comprende además medios para enfriar el área seleccionada de la
piel, de forma que el área seleccionada está en un estado
enfriado.
En una realización, el permeante se selecciona
del grupo formado por un ácido nucleico, un péptido, una proteína,
un antígeno vacunal, un analgésico, un fármaco de molécula pequeña.
En una realización, el ácido nucleico es DNA o RNA.
En otra realización, el permeante se selecciona
del grupo formado por insulina, interferón, un aditivo y
heparina.
En otra realización más, el permeante tiene un
peso molecular de al menos 10.000.
En ciertas realizaciones, el permeante está
asociado con un vehículo. En una realización, el vehículo comprende
liposomas. En otra realización, el vehículo comprende complejos
lipídicos. En otra realización más, el vehículo comprende
micropartículas. En una realización adicional, el vehículo comprende
compuestos de polietilenglicol. En una realización más, el vehículo
comprende una matriz polímera; preferiblemente, la matriz polímera
es bioerosionable.
En una realización, el permeante comprende una
formulación seca; preferiblemente, la formulación seca es un
polvo.
En una realización, la sustancia bioactiva se
selecciona del grupo formado por péptidos, proteínas, analgésicos,
antigenos vacunales, DNA o RNA.
En una realización, el vehículo es una
micropartícula; preferiblemente, las micropartículas comprenden una
sustancia bioactiva. En una realización, la sustancia bioactiva se
selecciona del grupo formado por péptidos, proteínas, analgésicos,
antígenos vacunales, DNA o RNA. En ciertas realizaciones, el DNA o
RNA está desnudo, fragmentado, acoplado a un plásmido, acoplado a
un vector vírico, encapsulado o acoplado a otra sustancia.
En una realización, el sistema de la invención
comprende además medios para detectar cuando la destrucción de la
piel ha formado al menos un microporo de la profundidad deseada en
la piel, en el que dichos medios de detección comprenden medios
para medir cambios en la impedancia eléctrica de la piel, como la
formación de al menos un microporo (250-Figura 7),
y en el que dichos métodos de detección están acoplados
operativamente a los medios de destrucción para discontinuar la
destrucción de la piel cuando el microporo alcanza la profundidad
deseada.
En una realización preferida, la impedancia
eléctrica que se está midiendo es una impedancia compleja. En una
realización más preferida, la impedancia compleja se mide a una
frecuencia seleccionada para destacar las propiedades de impedancia
de los tejidos seleccionados.
En una realización, dichos medios de destrucción
comprenden un elemento sólido en comunicación operativa con medios
para modular la temperatura de dicho elemento sólido entre un estado
de temperatura elevada y un estado de temperatura reducida, estando
colocado dicho elemento sólido en contacto directo con una porción
del área seleccionada de la piel, en la que, en el estado de
temperatura elevada dicho elemento sólido transfiere energía
térmica conductivamente hasta la porción de contacto de la piel,
para elevar suficientemente la temperatura de la piel subyacente a
la porción de contacto, destruyendo una porción de la piel hasta una
profundidad deseada por debajo de la capa epidérmica y en la que,
en el estado de temperatura reducida, dicho elemento sólido
transfiere conductivamente menos energía térmica a la piel que la
que se requiere para destruir la porción de la piel.
En otra realización, los medios de destrucción
comprenden medios para aplicar ráfagas o pulsos cortos de corriente
eléctrica a la piel para formar los microporos.
Los siguientes métodos no son parte de la
invención reivindicada, pero sirven para ilustrar la invención.
Un método para incrementar la velocidad de flujo
transmembranar de un permeante hacia el interior de una zona
seleccionada de un organismo puede comprender las etapas de
incrementar la permeabilidad de dicha zona seleccionada del
organismo a dicho permeante, mediante (a) poración en una membrana
biológica en dicha zona seleccionada por medios que formen un
microporo en dicha membrana biológica, reduciendo así las
propiedades de barrera de dicha membrana biológica al flujo de
dicho permeante, y (b) puesta en contacto de la zona seleccionada
en el que se ha formado el poro, con una composición que comprende
una cantidad efectiva de dicho permeante, en donde la velocidad de
flujo transmembranar de dicho permeante hacia el interior del
organismo se incrementa.
El método para incrementar la velocidad de flujo
transmembranar puede comprender además aplicar a dicha zona de
dicho organismo un potenciador para incrementar el flujo de dicho
permeante hacia el interior de dicho organismo. Dicho potenciador
comprende energía sónica y, más específicamente, dicha energía
sónica se aplica a dicha zona a una frecuencia en el intervalo de
aproximadamente 10 Hz a 1000 MHz, y dicha energía sónica se modula
mediante un elemento seleccionado del grupo que consiste en
modulación de frecuencia, modulación de amplitud, modulación de
fase y sus combinaciones. Alternativamente, dicho potenciador
comprende un campo electromagnético y, más específicamente,
iontoforesis o un campo magnético o una fuerza mecánica, potenciador
químico o potenciador térmico. Adicionalmente, se puede aplicar
cualquiera de los métodos de incremento sónico, electromagnético,
mecánico, térmico o químico en cualquiera de sus combinaciones, para
incrementar la velocidad de flujo transmembranar de dicho permeante
hacia el interior o a través de dicho microporo.
Un método para incrementar adicionalmente la
velocidad de flujo transmembranar puede emplear un potenciador, en
el que se aplican dichos potenciadores en dicha zona, de forma que
se incremente la velocidad de flujo del permeante hacia el interior
de los tejidos que rodean el microporo. Dicho potenciador puede
comprender energía sónica. Además, la citada energía sónica se
aplica a dicha zona a una frecuencia en el intervalo de
aproximadamente 10 Hz a 1000 MHz, en el que dicha energía sónica se
modula mediante un elemento seleccionado del grupo que consiste en
modulación de frecuencia, modulación de amplitud, modulación de fase
y sus combinaciones. Alternativamente, dicho potenciador comprende
energía sónica o térmica, electroporación, iontoforesis,
potenciadores químicos, fuerza mecánica o un campo magnético, o
cualquiera de sus combinaciones.
El método para mejorar la velocidad de flujo
transmembranar de un permeante, puede comprender además aplicar a
dicha zona de dicho organismo un potenciador, en el que se puede
aplicar cualquiera de los métodos de energía sónica o térmica,
electroporación, iontoforesis, potenciadores químicos, fuerza
mecánica o un campo magnético en cualquiera de sus combinaciones,
comprendiendo el método adicionalmente combinar energía sónica o
térmica, electroporación, iontoforesis, potenciadores químicos,
fuerza magnética o un campo magnético, para incrementar la
velocidad de flujo del permeante hacia el interior de los tejidos
que rodean al microporo. En el método para mejorar adicionalmente
la velocidad de flujo transmembranar en la capa externa y debajo de
la misma, dicha poración de dicha membrana biológica en dicha zona,
se logra seleccionando del grupo que consiste en (a) destruir la
membrana biológica poniendo en contacto dicha zona, de hasta
aproximadamente 100 \mum de ancho, de dicha membrana biológica
con una fuente de calor de forma que se forma un microporo en dicha
zona de dicha membrana biológica; (b) perforar dicha membrana
biológica con una microlanceta calibrada para formar un microporo
de hasta aproximadamente 1000 \mum de diámetro; (c) destruir la
membrana biológica mediante un haz de energía sónica sobre dicha
membrana biológica de hasta aproximadamente 1000 \mum de diámetro;
(d) perforar hidráulicamente dicha membrana biológica con un chorro
de fluido a alta presión, para formar un microporo de hasta
aproximadamente 1000 \mum de diámetro y (e) perforar dicha
membrana biológica con pulsos cortos de electricidad para formar un
microporo de hasta 1000 \mum de diámetro. Además, dicha formación
de poros se puede lograr poniendo en contacto dicha zona, hasta
aproximadamente 1000 \mum de ancho, con una fuente de calor, para
transferir conductivamente una cantidad efectiva de energía térmica
a dicha zona, de forma que la temperatura de parte del agua y otras
sustancias vaporizables en dicha zona se eleva por encima de su
punto de vaporización, creando un microporo hasta una profundidad
seleccionada en la membrana biológica, en dicha zona, de forma que
la temperatura de parte del tejido en dicha zona se eleva hasta el
punto en que se produce la descomposición térmica, creando un
microporo hasta una profundidad seleccionada en la membrana
biológica, en dicha zona. Adicionalmente, el método de poración de
dicha membrana biológica en dicha zona, puede comprender además
tratar al menos dicha zona con una cantidad efectiva de una
sustancia que presenta suficiente absorción a través del intervalo
de emisión de una fuente de luz pulsada y enfocando la salida de
una serie de pulsos procedentes de dicha fuente de luz pulsada sobre
dicha sustancia, de forma que dicha sustancia se calienta
suficientemente para transferir de forma conductiva una cantidad
efectiva de energía térmica a dicha membrana biológica, para elevar
la temperatura creando así un microporo. Dicha fuente de luz
pulsada emite a una longitud de onda que no se absorbe
significativamente por dicha membrana biológica. Dicha fuente de
luz pulsada puede ser un diodo láser que emite en el intervalo de
aproximadamente 630 a 1550 nm, dicha fuente de luz pulsada puede
ser un oscilador paramétrico óptico bombeado por un diodo láser, que
emite en el intervalo de aproximadamente 700 y 3000 nm, dicha
fuente de luz pulsada puede ser un elemento seleccionado del grupo
formado por lámparas de arco, bombillas incandescentes y diodos
emisores de luz. El método puede comprender además proporcionar un
sistema detector para determinar cuando el microporo en la membrana
biológica ha alcanzado las dimensiones deseadas, incluyendo
anchura, longitud y profundidad y, además, en el que dicho sistema
detector comprende medios de recogida de luz para recibir la luz
reflejada desde dicha zona y enfocar dicha luz reflejada sobre un
detector para recibir dicha luz, y enviar una señal a un controlador
en el que dicha señal indica una cualidad de dicha luz, y un
controlador acoplado a dicho detector y a dicha fuente de luz para
recibir dicha señal y para desconectar dicha fuente de luz cuando se
recibe una señal preseleccionada o, alternativamente, un sistema de
medición de impedancia eléctrica que puede detectar los cambios en
la impedancia de la membrana biológica a diferentes profundidades
en el
\hbox{organismo, a medida que se forma el microporo.}
El método de mejora de la velocidad de flujo
transmembranar en la capa externa y debajo de la misma, puede
comprender además enfriar dicha zona y tejidos adyacentes, de forma
que dicha zona y tejidos adyacentes estén en un estado enfriado.
Dichos medios de enfriamiento comprenden un dispositivo Peltier.
El método para incrementar el flujo
transmembranar en y debajo de la capa externa puede comprender
además, previamente a la poración de dicha zona, la iluminación de
al menos dicha zona con luz, de forma que dicha zona se
esterilice.
El método para incrementar el flujo
transmembranar en y debajo de la capa externa puede comprender
además poner en contacto dicha zona con un elemento sólido, en el
que dicho elemento sólido funciona como una fuente de calor para
transferir conductivamente una cantidad efectiva de energía térmica
a dicha membrana biológica para elevar la temperatura, para crear
de esta forma un microporo. Además, dicha fuente de calor se
construye para modular la temperatura de dicha zona hasta una
temperatura superior a 100ºC, en aproximadamente de 10 nanosegundos
a 50 milisegundos y, después, restituir la temperatura de dicha zona
hasta aproximadamente la temperatura ambiente, en aproximadamente
de 1 milisegundo a 50 milisegundos y en la que se repite un ciclo
de incremento de la temperatura y restitución a la temperatura
ambiente una o más veces, efectivo para formar poros en la membrana
biológica hasta la profundidad deseada. El método puede emplear una
fuente de calor, en la que dicha restitución hasta aproximadamente
la temperatura ambiente de dicha zona se realiza retirando dicha
fuente de calor del contacto con dicha zona y, en la que los
parámetros de modulación se seleccionan para reducir la sensación
para el sujeto animal.
El método para incrementar las velocidades de
flujo transmembranar usando una fuente de calor y un sistema
detector, puede comprender adicionalmente medios para controlar la
impedancia eléctrica entre dicho elemento sólido y dicho organismo
a través de dicha zona y tejidos adyacentes, y medios para avanzar
la posición de dicho elemento sólido, de forma que dicha formación
de poros se produce con un cambio concomitante en impedancia,
dichos medios de avance, hacen avanzar el elemento sólido, de forma
que el elemento sólido está en contacto con dicha zona durante el
calentamiento del elemento sólido, hasta que se obtiene la
impedancia seleccionada. Además, el método puede comprender
adicionalmente medios para retirar dicho elemento sólido del
contacto con dicha zona, en el que dichos medios de control son
capaces de detectar un cambio en impedancia asociado con la puesta
en contacto con una capa seleccionada que subyace a la superficie de
dicha zona, y enviar una señal a dichos medios de retirada, para
retirar dicho elemento sólido del contacto con dicha zona.
El método para incrementar la velocidad de flujo
transmembranar puede usar un elemento sólido en el que dicho
elemento sólido se calienta suministrando una corriente eléctrica a
través de un elemento de calentamiento óhmico y, además, en el que
dicho elemento sólido se forma de manera que contiene un componente
eléctricamente conductivo y la temperatura de dicho elemento sólido
se modula haciendo pasar una corriente eléctrica modulada a través
de dicho elemento conductivo. Adicionalmente, dicho elemento sólido
se puede colocar en un campo magnético modulable, en el que la
excitación del campo magnético produce corrientes eléctricas
inducidas suficientes para calentar el elemento sólido.
En el método para incrementar la velocidad de
flujo transmembranar, dicha poración se puede lograr perforando
dicha zona con una microlanceta calibrada, hasta formar un microporo
de hasta aproximadamente 1000 \mum de diámetro mediante un haz de
energía sónica dirigido sobre dicha zona, para formar un microporo
de hasta aproximadamente 1000 \mum de diámetro, perforando
hidráulicamente dicha membrana biológica con un chorro de fluido a
alta presión hasta formar un microporo de hasta aproximadamente 1000
\mum de diámetro o, alternativamente, perforando dicha membrana
biológica con pulsos cortos de electricidad hasta formar un
microporo de hasta aproximadamente 1000 \mum de diámetro.
En el método para incrementar la velocidad de
flujo transmembranar de un permeante, dicho permeante puede
comprender un ácido nucleico. Más específicamente, dicho ácido
nucleico comprende DNA o el ácido nucleico comprende RNA.
En el método para incrementar la velocidad de
flujo transmembranar de un permeante, el microporo en la membrana
biológica se puede extender hacia el interior de una parte de la
capa externa de la membrana biológica que varía de 1 a 30 micrones
de profundidad, se extiende a través de la capa externa de la
membrana biológica variando entre 10 y 200 micrones de profundidad,
o se extiende a través de la capa de tejido conectivo de la
membrana biológica, variando entre 1000 y 10000 micrones de
profundidad.
En el método para incrementar la velocidad de
flujo transmembranar de un permeante, el microporo puede penetrar
la membrana biológica hasta una profundidad determinada, para
facilitar la actividad deseada del permeante seleccionado.
En el método para incrementar la velocidad de
flujo transmembranar de un permeante, el permeante puede comprender
un polipéptido, incluyendo el caso en el que el polipéptido es una
proteína o péptido, y además incluyendo el caso en el que el
péptido comprende insulina o un factor de liberación; un
carbohidrato, incluyendo el caso en el que el carbohidrato
comprende una heparina; un analgésico, incluyendo el caso en el que
el analgésico compren de un opiáceo; una vacuna; o un
esteroide.
En el método para incrementar la velocidad de
flujo transmembranar de un permeante, el permeante puede estar
asociado con un vehículo. El vehículo puede comprender liposomas;
complejos lipídicos; micropartículas; o compuestos de
polietilenglicol. Más específicamente, el método en el que el
permeante es una vacuna puede estar combinado con el método en el
que el permeante está asociado con un vehículo.
Además, en el método para incrementar la
velocidad de flujo transmembranar de un permeante, el permeante
puede comprender una sustancia que tiene la capacidad de cambiar su
respuesta detectable a un estímulo cuando se encuentra en las
proximidades de un analito presente en el organismo.
Un objeto de la invención es proporcionar un
sistema para controlar las velocidades de flujo transmembranar de
fármacos u otras moléculas hacia el interior del cuerpo y, si se
desea, hacia la corriente sanguínea, a través de perforaciones
diminutas en la membrana biológica, incluyendo el estrato córneo u
otras capas de la piel, o en la mucosa o capas externas de una
planta.
Otro objeto adicional de la invención es
proporcionar un sistema de suministro de fármacos hacia el interior
del cuerpo a través de microporos en la membrana biológica, en
combinación con energía sónica, potenciadores de permeación,
gradientes de presión, energía electromagnética, energía térmica y
análogos.
Un objeto de la invención es minimizar las
propiedades de barrera de la membrana biológica usando la poración,
para recoger analitos procedentes del interior del cuerpo de forma
controlable, a través de perforaciones en la membrana biológica,
para permitir el control de estos analitos.
También se describe un método para controlar
analitos seleccionados en el cuerpo a través de microporos en la
membrana biológica, en combinación con energía sónica, potenciadores
de permeación, gradientes de presión, energía electromagnética,
energía mecánica, energía térmica y análogos.
Estos y otros objetos se pueden conseguir
proporcionando un método para controlar la concentración de un
analito en el cuerpo de un individuo, que comprende las etapas de
incrementar la permeabilidad de la membrana biológica de un área
seleccionada de la superficie del cuerpo del individuo al analito,
mediante
(a) poración de la membrana biológica del área
seleccionada, formando un microporo en la membrana biológica,
opcionalmente sin causar daño grave a los tejidos subyacentes,
reduciendo así las propiedades de barrera de la membrana biológica
a la extracción del analito;
(b) recogida de una cantidad seleccionada del
analito; y
(c) cuantificación del analito recogido.
En una realización preferida, el método
comprende además la aplicación de energía sónica al área
seleccionada en la que se han formado los poros, a una frecuencia
en el intervalo de aproximadamente 5 kHz a 100 MHz, en el que la
energía sónica se modula mediante un elemento seleccionado del grupo
formado por modulación de frecuencia, modulación de amplitud,
modulación de fase y sus combinaciones. En otra realización
preferida, el método comprende poner en contacto el área
seleccionada del cuerpo del individuo con un potenciador químico,
con la aplicación de energía electromagnética, térmica, mecánica o
sónica, para incrementar más la extracción del analito.
La poración de la membrana biológica se consigue
por medios seleccionados del grupo que consiste en (a) destruir la
membrana biológica poniendo en contacto un área seleccionada de,
como máximo aproximadamente 1000 \mum de ancho, de la membrana
biológica, con una fuente de calor, de forma que la temperatura del
agua ligada al tejido y otras sustancias vaporizables en el área
seleccionada, se eleva por encima del punto de vaporización del
agua y otras sustancias vaporizables, eliminando por tanto la
membrana biológica en el área seleccionada; (b) perforar la
membrana biológica con una microlanceta calibrada para formar un
microporo de hasta aproximadamente 1000 \mum de diámetro; (c)
destruir la membrana biológica enfocando un haz de energía sónica
enfocado de forma precisa, sobre el estrato córneo; (d) perforar
hidráulicamente la membrana biológica con un chorro a alta presión
de un fluido, para formar un microporo de hasta aproximadamente 1000
\mum de diámetro y (e) perforar la membrana con pulsos cortos de
electricidad, para formar un microporo de hasta aproximadamente
1000 \mum de diámetro.
Una realización preferida de destrucción térmica
de la membrana biológica comprende tratar al menos el área
seleccionada con una cantidad efectiva de un colorante que exhibe
una absorción intensa a través del intervalo de emisión de una
fuente de luz pulsada, y dirigir la salida de una serie de pulsos
procedentes de la fuente de luz pulsada sobre el colorante, de
forma que el colorante se caliente suficientemente para transferir
calor conductivamente al estrato córneo para elevar la temperatura
del agua ligada al tejido y otras sustancias vaporizables en el
área seleccionada por encima del punto de vaporización del agua y de
otras sustancias vaporizables. Preferiblemente, la fuente de luz
pulsada emite a una longitud de onda que no se absorbe
significativamente por la piel. Por ejemplo, la fuente de luz
pulsada puede ser un diodo láser emitiendo en el intervalo de
aproximadamente 630 a 1550 nm, un oscilador paramétrico óptico
bombeado por diodo láser que emite a una longitud de onda en el
intervalo de aproximadamente 700 a 3000 nm, o un elemento
seleccionado del grupo formado por lámparas de arco, bombillas
incandescentes y diodos emisores de luz. También se puede
proporcionar un sistema de detección, para determinar cuándo se han
superado las propiedades de barrera del estrato córneo. Un sistema
de detección preferido comprende medios de recogida de luz para
recibir la luz reflejada del área seleccionada, y enfocar la luz
reflejada sobre un fotodiodo, un fotodiodo para recibir la luz
enfocada y enviar una señal a un controlador, en el que la señal
indica la calidad de la luz reflejada, y un controlador acoplado al
fotodiodo y a la fuente de luz pulsada para recibir la señal y para
desconectar la fuente de luz pulsada cuando se recibe una señal
preseleccionada.
En otra realización preferida, el método
comprende además enfriar el área seleccionada de la membrana
biológica y tejidos adyacentes con medios de enfriamiento, de forma
que dicha área seleccionada y tejidos adyacentes están en un estado
o condición seleccionado enfriado, estable, previamente, durante y/o
después de la formación de poros.
En otra realización preferida adicional, el
método comprende destruir la membrana biológica, de forma que el
fluido intersticial exude desde los microporos, recoger el fluido
intersticial, y analizar el analito en el fluido intersticial
recogido. Una vez recogido el fluido intersticial, el microporo se
puede sellar aplicando una cantidad efectiva de energía procedente
del diodo láser o de otra fuente de luz, de forma que se produzca
la coagulación del fluido intersticial que queda en el microporo.
Preferiblemente, se aplica vacío al área seleccionada en la que se
forman los poros, para mejorar la recogida de fluido
intersticial.
En otra realización preferida adicional, el
método comprende, previamente a la formación de poros en la membrana
biológica, iluminar al menos el área seleccionada con luz, de forma
que el área seleccionada iluminada con la luz se esteriliza.
Otro método preferido de formación de poros en
la membrana biológica, comprende poner en contacto el área
seleccionada con un elemento sólido, de forma que la temperatura del
área seleccionada se incrementa desde temperatura ambiente hasta
más de 100ºC, en aproximadamente 10 nanosegundos a 50 ms y, después,
restituir la temperatura del área seleccionada hasta
aproximadamente temperatura ambiental de la piel, en aproximadamente
1 a 50 ms, en el que este ciclo de incremento de la temperatura y
restitución hasta aproximadamente la temperatura ambiente, se
repite un número de veces efectivo para reducir las propiedades de
barrera de la membrana biológica. Preferiblemente, la etapa de
restituir hasta aproximadamente la temperatura ambiente se realiza
extrayendo el elemento sólido del contacto con la membrana
biológica. Se prefiere también proporcionar medios para controlar
la impedancia eléctrica entre el elemento sólido y el cuerpo, a
través del área seleccionada de la membrana biológica y tejidos
adyacentes, y medios para hacer avanzar la posición del elemento
sólido de forma que, a medida que se produce la destrucción con una
reducción concomitante de la resistencia, el medio de avance hace
avanzar el elemento sólido, de forma que el elemento sólido esté en
contacto con la membrana biológica durante el calentamiento del
elemento sólido. Además, se prefiere también proporcionar medios
para extraer el elemento sólido del contacto con la membrana
biológica, en los que los medios de control son capaces de detectar
un cambio en la impedancia asociado con la puesta en contacto con
una capa subyacente a la membrana biológica o una de sus capas, y
enviar una señal a los medios de extracción, para extraer el
elemento sólido del contacto con la membrana biológica. El elemento
sólido se puede calentar mediante un elemento óhmico de
calentamiento, puede tener un circuito cerrado de corriente con un
punto de alta resistencia, en el que el punto de alta resistencia
se modula haciendo pasar una corriente eléctrica modulada a través
de dicho circuito cerrado para efectuar el calentamiento. o se
puede situar en un campo magnético alternante modulable de una
espira de excitación, de forma que, la activación de la espira de
excitación con corriente alterna produce corrientes de inducción
suficientes para calentar el elemento sólido mediante pérdidas
óhmicas internas.
Un método para mejorar la velocidad de flujo
transmembranar de un permeante activo hacia el interior de un área
seleccionada del cuerpo, que comprende las etapas de incrementar la
permeabilidad de la capa de membrana biológica del área
seleccionada de la superficie del cuerpo al permeante activo
mediante:
(a) formar poros en la membrana biológica del
área seleccionada mediante medios que formen un microporo en la
membrana biológica, opcionalmente sin producir daños graves a los
tejidos subyacentes y reduciendo, de este modo, las propiedades de
barrera de la membrana biológica al flujo del permeante activo;
y
(b) poner en contacto el área seleccionada en la
que se han formado poros, con una composición que comprende una
cantidad efectiva del permeante, de forma que se incremente el flujo
de permeante hacia el interior del cuerpo.
En una realización preferida, el método
comprende además aplicar energía al área seleccionada en la que se
han formado poros, durante un tiempo y a una intensidad y frecuencia
efectivas para crear un efecto de corriente de fluido y, de este
modo, incrementar la velocidad de flujo transmembranar del permeante
hacia el interior del cuerpo.
Un método para aplicar un tatuaje a un área
seleccionada de piel sobre la superficie del cuerpo de un individuo,
puede comprender las etapas de:
(a) formar poros en el estrato córneo del área
seleccionada mediante medios que forman un microporo en el estrato
córneo, opcionalmente sin producir daños graves a los tejidos
subyacentes y reduciendo, de este modo, las propiedades de barrera
del estrato córneo al flujo de un permeante; y
(b) poner en contacto el área seleccionada en la
que se han formado poros con una composición que comprende una
cantidad efectiva de tinta para tatuar, de forma que se incremente
el flujo de dicha tinta hacia el interior del
cuerpo.
cuerpo.
Un método para reducir el retraso temporal en la
difusión de un analito desde la sangre de un individuo al fluido
intersticial de dicho individuo, en un área seleccionada de membrana
biológica, puede comprender aplicar medios de enfriamiento a dicha
área seleccionada de piel.
Un método para reducir la evaporación de fluido
intersticial y su presión de vapor, en el que dicho fluido
intersticial se está recogiendo de un microporo en un área
seleccionada de la membrana biológica de un individuo, puede
comprender aplicar medios refrigerantes a dicha área seleccionada de
membrana biológica.
Según más realizaciones adicionales, se describe
un método para suministrar sustancias bioactivas hacia el interior
del cuerpo, a través de microporos formados a profundidades
seleccionadas en una membrana biológica, como la piel o la membrana
mucosa, o la capa externa de una planta. El método implica formar
poros en una capa externa de la membrana biológica, a través de
cualquiera de las técnicas de formación de poros conocidas en la
técnica, pero hasta una profundidad suficiente y deseada en el
interior o a través de la membrana biológica, y poner en contacto
la zona en la que se han formado los poros, con una cantidad
efectiva de la sustancia bioactiva de peso y tamaño moleculares
bajos o elevado. Este proceso se puede mejorar aplicando medidas
adicionales de mejora de la permeación, bien antes, durante o
después de que se suministre la sustancia bioactiva. Por ejemplo,
se pueden aplicar energía sónica, iontoforesis, campos magnéticos,
electroporación, potenciadores de permeación, medidas de presión
osmótica y presión atmosférica, a la zona en la que se han formado
los poros, para mejorar la permeabilidad de las capas situadas por
debajo de la capa externa de la membrana biológica.
Fig. 1 muestra una representación esquemática de
un sistema para suministrar luz de diodo láser y controlar el
progreso de poración.
Fig. 2 muestra una representación esquemática de
un sistema de retroalimentación de circuito cerrado para controlar
la poración.
Fig. 3A muestra una representación esquemática
de un sistema óptico de formación de poros, que comprende un
dispositivo de enfriamiento.
Fig. 4 muestra una representación esquemática de
un dispositivo de calentamiento óhmico con un actuador mecánico.
Fig. 5 muestra una representación esquemática de
un dispositivo de calentamiento de circuito de corriente de elevada
resistencia.
Fig. 6 muestra una representación esquemática de
un dispositivo para modular el calentamiento, usando calentamiento
inductivo.
Fig. 7 muestra una representación esquemática de
un monitor de impedancia de circuito cerrado, usando cambios en la
impedancia para determinar la extensión de la poración.
Figs. 8A-D muestran secciones
transversales de piel humana tratada con ftalocianina de cobre y
luego sometidas, respectivamente, a 0, 1, 5 y 50 pulsos de luz de
810 nm, con una densidad de energía de 4000 J/cm^{2} para un
período de pulso de 20 ms.
Figs. 9-11 muestran
representaciones gráficas de la distribución de temperatura durante
los sucesos de poración térmica simulada, usando poración
óptica.
Figs. 12 y 13 muestran representaciones gráficas
de la temperatura en función del tiempo en el estrato córneo y la
epidermis viable, respectivamente, durante sucesos de poración
térmica simulada, usando poración óptica.
Figs. 14-16 muestran
representaciones gráficas de distribución de temperatura,
temperatura en función del tiempo en el estrato córneo, y
temperatura en función del tiempo en la epidermis viable,
respectivamente, durante sucesos de poración térmica simulada,
usando poración óptica, en la que el tejido se enfriaba antes de la
poración.
Figs. 17-19 muestran
representaciones gráficas de distribución de temperatura,
temperatura en función del tiempo en el estrato córneo, y
temperatura en función del tiempo en la epidermis viable,
respectivamente, durante sucesos de poración térmica simulada, en
los que el tejido se calentaba con un hilo caliente.
Figs. 20-22 muestran
representaciones gráficas de distribución de temperatura,
temperatura en función del tiempo en el estrato córneo, y
temperatura en función del tiempo en la epidermis viable,
respectivamente, durante sucesos de poración térmica simulada, en
los que el tejido se calentaba con un hilo caliente y el tejido se
enfriaba antes de la poración.
Figs. 23 y 24 muestran representaciones gráficas
de distribución de temperatura y temperatura en función del tiempo
en el estrato córneo, respectivamente, durante sucesos de poración
térmica simulada, en los que el tejido se calienta ópticamente
según los parámetros de funcionamiento de la 803 de Tankovich.
Fig. 25 muestra una representación gráfica de
las concentraciones de glucosa sanguínea (*) y del fluido
intersticial (ISF), en función del tiempo.
Fig. 26 muestra un diagrama de dispersión de la
diferencia de duración entre los datos de glucosa ISF y glucosa
sanguínea de la Fig. 25.
Fig. 27 muestra un histograma de la desviación
relativa de las concentraciones de glucosa ISF respecto a las
sanguíneas, procedentes de la Fig. 25.
Fig. 28 muestra una sección transversal de un
aparato de suministro ilustrativo para suministrar un fármaco a un
área seleccionada en la piel de un individuo.
Figs. 29A-C muestran
representaciones gráficas de áreas de piel afectadas por el
suministro de lidocaína a áreas seleccionadas en la que se han
formado poros en el estrato córneo (Figs. 29A-B), o
no (Fig. 29C).
Fig. 30 muestra un diagrama que compara la
cantidad de fluido intersticial recogida de los microporos sólo con
succión (), y con una combinación de succión y ultrasonidos (*).
Figs. 31, 32 y 33 muestran una vista en
perspectiva de un aparato transductor de ultrasonidos/vacío para
recoger el fluido intersticial, una vista de una sección
transversal del mismo aparato y una vista esquemática de una
sección transversal del mismo aparato, respectivamente.
Figs. 34A-B muestran una vista
superior de un transductor ultrasónico portátil y una vista lateral
de su extremo espatulado, respectivamente.
Fig. 35 es una representación gráfica que
muestra los efectos de incremento de la microporación en el
suministro transdérmico de testosterona.
Hay que entender que esta invención no está
limitada a las configuraciones particulares, etapas de procedimiento
y materiales descritos aquí, ya que tales configuraciones, etapas
de procedimiento y materiales pueden variar algo. También hay que
entender que la terminología empleada aquí se usa sólo para el
propósito de describir realizaciones particulares, y no está
destinada a ser limitativa, ya que el alcance de la presente
invención estará limitado sólo por las reivindicaciones adjuntas y
sus equivalentes.
Hay que destacar que, según se usan aquí, las
formas singulares "un", "una" y "el", "la",
incluyen los referentes en plural, a menos que el contexto indique
claramente otra cosa. Así, por ejemplo, la referencia a un método
para el suministro de "un fármaco" incluye la referencia al
suministro de una mezcla de dos o más fármacos, la referencia a
"un analito" incluye la referencia a uno o más de tales
analitos, y la referencia a un "potenciador de la permeación"
incluye la referencia a una mezcla de dos o más potenciadores de la
permeación o técnicas tales como una combinación de ultrasonidos y
electroporación.
Por tanto, según se usa aquí, la forma en
singular se puede usar de forma intercambiable con la forma en
plural, y viceversa, es decir: "capa" podría significar capas,
o "capas" podría significar capa.
Según se usa aquí, "incluyendo" o
"incluye" o análogos, significa incluyendo, sin limitación.
Al describir y reivindicar la presente
invención, la siguiente terminología se usará según las definiciones
establecidas anteriormente.
Según se usa aquí "organismo" significa el
animal o planta completa sobre el que se actúa mediante los métodos
aquí descritos.
\newpage
Según se usa aquí, "poración",
"microporación", o cualquier término similar, significa la
formación de un pequeño orificio o poro hasta una profundidad
deseada, en el interior o a través de la membrana biológica, como
la piel o la membrana mucosa, o la capa externa de un organismo,
para reducir las propiedades de barrera de esta membrana biológica
al paso de analitos desde debajo de la superficie, para el análisis
del paso de permeantes o fármacos hacia el interior del cuerpo para
propósitos seleccionados, o para ciertos procedimientos médicos o
quirúrgicos. El procedimiento de microporación al que se hace
referencia aquí, se distingue de los orificios formados por
electroporación principalmente por las dimensiones mínimas de los
microporos, que deben ser no inferiores a 1 micrón de ancho y al
menos 1 micrón de profundidad, mientras que los orificios formados
por electroporación son típicamente sólo de unos pocos nanómetros en
cualquier dimensión. No obstante, la electroporación es útil para
facilitar la absorción de permeantes seleccionados por los tejidos
elegidos como objetivo, por debajo de las capas externas de un
organismo, después de que el permeante haya pasado a través de los
microporos hacia el interior de estas capas más profundas del
tejido. Preferiblemente, el orificio o microporo no será superior a
aproximadamente 1 mm de diámetro y, más preferiblemente, no superior
a aproximadamente 300 \mum de diámetro, y se extenderá hasta una
profundidad seleccionada, según se describe aquí más adelante.
Según se usa aquí, "microporo" o
"poro" significa un orificio formado mediante el método de
microporación.
Según se usa aquí "destrucción" significa
la eliminación controlada de material que puede incluir células u
otros componentes que comprenden alguna parte de una membrana o
tejido biológico, producida por cualquiera de los siguientes:
energía cinética liberada cuando alguno o todos los componentes
vaporizables de tal material se han calentado hasta el punto en el
que se produce la vaporización y la rápida expansión de volumen
resultante, debida a este cambio de fase hace que este material, y
posiblemente algún material adyacente, se elimine de la zona de
destrucción; descomposición térmica, mecánica o sónica de parte o
todo el tejido en la zona de poración.
Según se usa aquí, la destrucción de un tejido o
perforación de un tejido se puede lograr utilizando la misma fuente
de energía.
Según se usa aquí, "tejido" significa
cualquier componente de un organismo, incluyendo pero no limitado a,
células, membranas biológicas, hueso, colágeno, fluidos y análogos,
que comprenden alguna parte del organismo.
Según se usa aquí, "sónico" o
"acústico" son intercambiables y cubren el espacio de
frecuencias de 0,01 Hz y superiores.
Según se usa aquí, "ultrasónico" describe
un subconjunto de sónico que comprende frecuencias superiores o
iguales a 20.000 Hz, sin límite superior.
Según se usa aquí, "perforación" o
"microperforación" significa el uso de medios mecánicos,
hidráulicos, sónicos, electromagnéticos o térmicos para perforar
total o parcialmente una membrana biológica como la piel o las
capas mucosas de un animal, o las capas de tejido externo de una
planta
En la medida en que la "destrucción" y la
"perforación" logran el mismo propósito que la formación de
poros, es decir, la creación de un orificio o poro en la membrana
biológica, opcionalmente sin ningún daño significativo a los
tejidos subyacentes, estos términos se pueden usar de manera
intercambiable. Según se usa aquí "mejora de la penetración" o
"mejora de la permeación" significa un incremento en la
permeabilidad, mediante la utilización de un potenciador de
permeación de una membrana biológica, como la piel o la membrana
mucosa o bucal, o una capa de tejido externo de una planta para una
sustancia bioactiva, fármaco, analito, colorante, tinte,
micropartícula, microsfera, compuesto u otra formulación química
(también denominada "permeante"), es decir, de forma que se
incremente la velocidad a la que una sustancia bioactiva, fármaco,
analito, colorante, micropartícula, compuesto u otra formulación
química permea la membrana biológica y facilita la extracción de
analitos hacia el exterior, a través de la membrana biológica, o el
suministro de sustancias a través de la membrana biológica y hacia
el interior de los tejidos subyacentes. La permeación mejorada
realizada a través del uso de tales potenciadores se puede
observar, por ejemplo, observando la difusión de un colorante, como
un permeante, a través de la piel humana o animal, usando un
aparato de
difusión.
difusión.
Según se usa aquí, "potenciador de
penetración", "potenciador de permeación",
"potenciador" y análogos, incluye todas las sustancias y
técnicas que incrementan el flujo de un permeante, analito u otra
molécula a través de la piel, y está limitado sólo por
funcionalidad. En otras palabras, todos los compuestos que alteran
la envuelta celular y los disolventes y técnicas físicas como la
electroporación, iontoforesis, campos magnéticos, energía sónica,
energía térmica o presión o manipulación mecánica, como un masaje
local de la zona y cualquier sustancia química potenciadora, están
destinados a estar incluidos.
Según se usa aquí, "potenciador químico"
significa una sustancia que incrementa el flujo de un permeante o
analito u otra sustancia, a través de una membrana biológica, y está
limitado sólo por función.
Según se usan aquí, "colorante",
"tinte", y análogos, se deben usar de forma intercambiable y se
refieren a un cromóforo biológicamente adecuado que presenta una
absorción adecuada sobre parte o todo el intervalo de emisión de
una fuente de luz pulsada usada para destruir los tejidos, para
formar poros en su interior.
Según se usa aquí, "transdérmico" o
"percutáneo" o "transmembranar" o "transmucoso" o
"transbucal", significa el paso de un permeante hacia el
interior o a través de la membrana o tejido biológico, para lograr
concentraciones sanguíneas o concentraciones tisulares terapéuticas
efectivas de un fármaco, o en paso de una molécula presente en el
cuerpo ("analito") hacia el exterior, a través de la membrana
biológica o tejido, de forma que la molécula de analito se puede
recoger sobre el exterior del cuerpo.
Según se usa aquí, el término "sustancia
bioactiva", "permeante", "fármaco" o "sustancia
farmacológicamente activa" o "sustancia suministrable", o
cualquier otro término análogo, significa cualquier material o
compuesto químico o biológico, adecuado para el suministro mediante
los métodos previamente conocidos en la técnica y/o mediante los
métodos enseñados en la presente invención, que induce un efecto
deseado, como un efecto biológico o farmacéutico, el cual puede
incluir, pero no está limitado a (1) producir un efecto profiláctico
sobre el organismo y evitar un efecto biológico no deseado, como
evitar una infección, (2) aliviar un estado producido por una
enfermedad, por ejemplo, aliviar el dolor o inflamación producido
como resultado de una enfermedad, (3) bien aliviar, reducir, o
eliminar completamente la enfermedad del organismo, y/o (4) la
colocación en las capas de tejido viable del organismo de un
compuesto o formulación que puede reaccionar, opcionalmente de
forma irreversible, a los cambios en la concentración de un analito
particular y, al producir esto, causar un cambio detectable en la
respuesta mensurable de este compuesto o formulación a la aplicación
de energía a este área, que puede ser electromagnética, mecánica o
acústica. El efecto puede ser local, como proporcionar un efecto
anestésico local, o puede ser sistémico. Esta invención no se dirige
a nuevos permeantes o a nuevas clases de sustancias activas
distintas de las empleadas en virtud de la técnica de microporación,
aunque se pueden usar ahora sustancias no usadas típicamente para
suministro transdérmico, transmucoso, transmembranar o transbucal.
Más bien se dirige al modo de suministro de sustancias bioactivas o
permeantes que existen en la técnica, o que se pueden establecer
más tarde como sustancias activas y que son adecuadas para el
suministro mediante la presente invención.
Tales sustancias incluyen clases amplias de
compuestos suministrados normalmente al interior del organismo,
incluyendo a través de superficies y membranas corporales,
incluyendo piel, así como mediante inyección, incluyendo métodos de
aguja, hidráulicos o de hipervelocidad. En general, esto incluye
pero no está limitado a: polipéptidos, incluyendo proteínas y
péptidos (p.ej., insulina); factores de liberación, incluyendo la
hormona liberadora de hormona luteinizante (LHRH); carbohidratos
(p.ej., heparina); ácidos nucleicos; vacunas; y sustancias
farmacológicamente activas, como antinfecciosos, p.ej. sustancias
antibióticas y antivíricas; analgésicos y combinaciones de
analgésicos; anoréxicos; antihelmínticos; antiartríticos; sustancias
antiasmáticas; anticonvulsivos; antidepresivos; sustancias
antidiabéticas; antidiarreicos; antihistamínicos; antinflamatorios;
preparaciones antimigraña; antinauseosos; antineopásicos;
antiparkinsonianos; antipruríticos; antipsicóticos; antipiréticos;
antiespasmódicos; anticolinérgicos; simpatomiméticos; derivados de
xantina; preparaciones cardiovasculares, incluyendo bloqueadores de
canales de potasio y calcio, bloqueadores beta, bloqueadores alfa, y
antiarrítmicos; hipotensores; diuréticos y antidiuréticos;
vasodilatadores incluyendo coronarios, periféricos y cerebrales;
estimulantes del sistema nervioso central; vasoconstrictores;
preparaciones contra la tos y el catarro, incluyendo descongestivos;
hormonas, como estradiol, testosterona, progesterona y otros
esteroides y derivados y análogos, incluyendo corticosteroides;
hipnóticos; inmunosupresores; relajantes musculares;
parasimpatolíticos; psicoestimulantes; sedantes; y tranquilizantes.
Mediante el método de la presente invención, se pueden suministrar
tanto permeantes no ionizados como ionizados, así como permeantes
de cualquier peso molecular, incluyendo sustancias con pesos
moleculares que varían desde menos de 50 Daltons hasta más de
1.000.000 de Daltons.
Según se usa aquí, una cantidad "efectiva"
de un permeante significa una cantidad suficiente de un compuesto
para proporcionar el efecto local o sistémico deseado y funcionar en
una relación beneficio/riesgo razonable, al ejecutar cualquier
tratamiento. Una cantidad "efectiva" de un potenciador, según
se usa aquí, significa una cantidad seleccionada de forma que se
proporcione un incremento deseado en la permeabilidad del tejido y
la profundidad de penetración deseada, velocidad de administración y
permeante suministrado.
Según se usan aquí, "portadores" o
"vehículos" se refieren a materiales portadores sin actividad
farmacológica significativa en las cantidades usadas normalmente,
que son adecuados para administración con otros permeantes, e
incluyen cualquier material conocido en la técnica, p.ej., cualquier
líquido, gel, disolvente, diluyente líquido, solubilizador,
microsferas, liposomas, micropartículas, complejos lipídicos, o
análogos, que sea suficientemente atóxico en las cantidades
empleadas y no interaccione con el fármaco a administrar de forma
deletérea. Ejemplos de vehículos adecuados para el uso en esta
invención incluyen agua, tampones, aceite mineral, silicona, geles
inorgánicos u orgánicos, emulsiones acuosas, azúcares líquidos,
lípidos, micropartículas, ceras, vaselina, y una diversidad de
otros aceites y materiales polímeros.
Según se usa aquí, una "membrana biológica"
significa un material de tejido presente en un organismo vivo, que
separa un área del organismo de otra y, en muchos casos, separa el
organismo de su medio exterior. La piel y las membranas mucosa y
bucal están, por tanto, incluidas, así como las capas externas de
una planta. Asimismo, las paredes de una célula o un vaso sanguíneo
se incluirían en esta definición.
Según se usa aquí, "membrana mucosa" o
"mucosa" se refiere a los recubrimientos epiteliales de la
boca, nasofaringe, garganta, tracto respiratorio, tracto
urogenital, ano, ojo, intestino y todas las demás superficies
accesibles a través de un dispositivo endoscópico, como la vejiga,
colon, pulmón, vasos sanguíneos, corazón y análogos.
Según se usa aquí, la "membrana bucal"
incluye la membrana mucosa de la boca.
Según se usa aquí, "capa externa" y "capa
de tejido conectivo" son partes de la membrana biológica y tienen
los siguientes significados. "Capa externa" significa todo o
parte de la epidermis de la piel o el recubrimiento epitelial de la
membrana mucosa o la capa externa de una planta. La porción más
superficial de la epidermis animal es el estrato córneo, como se
sabe bien en la técnica. La porción más profunda de la epidermis se
denomina, para simplicidad, la "capa celular viable", a partir
de aquí. Por debajo de la capa externa está la "capa de tejido
conectivo". La capa de tejido conectivo significa la dermis en la
piel o la lámina propia en la membrana mucosa, u otros tejidos
subyacentes en plantas o animales.
Según se usa aquí, "organismo" o
"individuo" o "sujeto" o "cuerpo", se refiere a
cualquiera entre un ser humano, animal o planta, a los que se pueda
aplicar la invención.
Según se usa aquí, "analito" significa
cualquier material o compuesto químico o biológico adecuado para
pasar a través de una membrana biológica mediante la tecnología
enseñada en la presente invención, o mediante la tecnología
previamente conocida en la técnica, o del que un individuo puede
querer saber la concentración o actividad dentro del cuerpo. La
glucosa es un ejemplo específico de un analito, porque es un azúcar
adecuado para el paso a través de la piel, y los individuos, por
ejemplo aquellos que tienen diabetes, pueden querer conocer sus
concentraciones de glucosa sanguínea. Otros ejemplos de analitos
incluyen, pero no están limitados a, compuestos tales como sodio,
potasio, bilirrubina, urea, amoníaco, calcio, plomo, hierro, litio,
salicilatos, anticuerpos, hormonas o una sustancia suministrada
exógenamente, y análogos.
Según se usa aquí, "hacia el interior" o
"en" una membrana biológica o una de sus capas, incluye la
penetración en o a través de sólo una o más capas (p.ej., todo o
parte del estrato córneo o la capa externa entera de la piel o una
de sus partes).
Según se usa aquí, "a través" de una
membrana biológica o una de sus capas significa a través de la
profundidad completa de la membrana biológica o su capa.
Según se usa aquí, "velocidad de flujo
transdérmico" es la velocidad de paso de cualquier analito hacia
el exterior a través de la piel de un sujeto, o la velocidad de
paso de cualquier sustancia bioactiva, fármaco, sustancia
farmacológicamente activa, colorante, partícula o pigmento, en y a
través de la piel que separa el organismo de su medio externo.
"Velocidad de flujo transmucoso" y "velocidad de flujo
transbucal", se refiere a tal paso a través de las membranas
mucosa y bucal y "velocidad de flujo transmembranar" se refiere
a tal paso a través de cualquier membrana biológica.
Según se usan aquí, "transdérmico",
"transmucoso", "transbucal" y "transmembranar", se
pueden usar de forma intercambiable, según sea apropiado en su
contexto de uso.
Según se usan aquí, los términos "amplitud de
intensidad", "intensidad" y "amplitud", se usan como
sinónimos y se refieren a la cantidad de energía que se está
produciendo mediante un sistema de energía sónica, térmica,
mecánica o electromagnética.
Según se usa aquí, "modulación de
frecuencia" o "barrido" significa una variación continua,
gradual o escalonada en la frecuencia de una energía sónica,
térmica, mecánica o electromagnética, en un período determinado de
tiempo. Una modulación de frecuencia es una variación gradual o
escalonada en frecuencia, en un período de tiempo determinado, por
ejemplo 5,4-5,76 MHz en 1 s, o 5-10
MHz en 0,1 s, o 10-5 MHz en 0,1 s, o cualquier otro
intervalo de frecuencias o período de tiempo que sea apropiado para
una aplicación específica. Una modulación compleja puede incluir la
variación, tanto de la frecuencia como de la intensidad,
simultáneamente. Por ejemplo, las Figs. 4A y 4B de la patente de
EE.UU. Nº 5.458.140 podrían, respectivamente, representar las
modulaciones de amplitud y frecuencia que se están aplicando
simultáneamente a un transductor de energía sónica individual.
Según se usa aquí, "modulación de amplitud"
significa una variación continua, gradual o escalonada en la
amplitud o intensidad de una energía sónica, térmica, mecánica o
electromagnética, en un período de tiempo determinado.
Según se usa aquí, "modulación de fase"
significa que la sincronización de una energía sónica, térmica,
mecánica o electromagnética se ha cambiado en relación con su
estado inicial. Un ejemplo se muestra en la Fig. 4C de la patente
de EE.UU. Nº 5.458.140. La frecuencia y amplitud de la señal pueden
permanecer idénticas. Una modulación de fase se puede ejecutar con
un retraso variable, de forma que la señal se retrase o avance
selectivamente en referencia a su estado previo, o a otra
señal.
Según se usan aquí, "señal" o
"energía" se pueden usar como sinónimos. La energía sónica,
térmica, mecánica o electromagnética, en sus diversas aplicaciones,
como con modulación de frecuencia, intensidad o fase, o sus
combinaciones, y el uso de potenciadores químicos combinados con
energía sónica, térmica, mecánica o electromagnética, según se
describe aquí, pueden variar a través de un intervalo de frecuencias
de entre aproximadamente 0,01 Hz hasta 1000 MHz, prefiriéndose un
intervalo de entre aproximadamente 0,1 Hz y 30 MHz.
Según se usa aquí, medios "no invasivos"
significa que no requieren la entrada de una aguja, catéter u otro
instrumento invasivo en una parte del sujeto, incluyendo la piel o
una membrana mucosa.
Según se usa aquí, "mínimamente invasivo" y
"no invasivo" son sinónimos.
Según se usa aquí, "micropartículas" o
"microsferas" o "nanopartículas" o "nanosferas" o
"liposomas" o "complejos lipídicos", se pueden usar de
forma intercambiable.
La formación de un microporo en la membrana
biológica se puede lograr mediante diversos medios del estado de la
técnica, así como de ciertos medios descritos aquí, que son mejoras
de los mismos. Aunque las siguientes técnicas y ejemplos se
realizan con respecto a la poración de la membrana biológica, se
debería entender que las mejoras descritas aquí, también se aplican
a la poración de la membrana mucosa o bucal de las capas externas
de una planta.
El uso de destrucción por láser, según se
describió por Jacques et al en la patente de EE.UU.
4.775.361, y por Lane et al., más arriba, proporcionan
ciertamente un medio para destruir el estrato córneo usando un
láser excímer. A 193 nm de longitud de onda y 14 ns de amplitud de
pulso, se descubrió que, aproximadamente de 0,24 a 2,8 \mum de
estrato córneo se podían eliminar mediante cada pulso láser a una
exposición radiante de entre aproximadamente 70 y 480 mJ/cm^{2}.
A medida que se incrementa la energía del pulso, se elimina más
tejido del estrato córneo y se requieren menos pulsos para la
poración completa de esta capa. El umbral menor de exposición
radiante que se tiene que absorber por el estrato córneo dentro del
límite del tiempo de relajación térmica, para producir
microexplosiones adecuadas que produzcan la destrucción del tejido,
es aproximadamente 70 mJ/cm^{2} en un tiempo de 50 milisegundos
(ms). En otras palabras, se tiene que suministrar un total de 70
mJ/cm^{2} en una intervalo de tiempo de 50 ms. Esto se puede
realizar mediante un pulso único de 70 mJ/cm^{2}, o en 10 pulsos
de 7 mJ/cm^{2}, o con una iluminación continua de 1,4
vatios/cm^{2}, durante el tiempo de 50 ms. El límite superior de
exposición radiante es el que destruirá el estrato córneo sin dañar
el tejido subyacente, y se puede determinar empíricamente a partir
de la fuente de luz, longitud de onda de la luz, y otras variables
comprendidas en la experiencia y conocimiento de un experto en esta
técnica.
Mediante "suministro", en el contexto de la
aplicación de energía, se indica que la cantidad de energía fijada
se absorbe por el tejido a destruir. A la longitud de onda de 193
nm, se produce esencialmente una absorción del 100% en el interior
de los primeros 1 o 2 \mum del tejido del estrato córneo.
Asumiendo que el estrato córneo tenga aproximadamente 20 \mum de
grosor, a las longitudes de onda mayores, como a 670 nm, sólo
aproximadamente 5% de la luz incidente se absorbe en la capa de 20
\mum. Esto significa que aproximadamente 95% del haz de potencia
elevada pasa al interior de los tejidos subyacentes al estrato
córneo, en los que probablemente producirá un daño significativo.
En el contexto de suministro de una sustancia bioactiva, el término
significa proporcionar la sustancia bioactiva a la localización
deseada.
El ideal es usar sólo tanta potencia como sea
necesaria para perforar la membrana biológica u otras capas de
piel, mucosa o tejido seleccionados, sin producir sangrado, daño
térmico u otro daño inaceptable a los tejidos subyacentes y
adyacentes desde los que se extraen los analitos o se suministran
los permeantes.
Sería beneficioso usar fuentes de energía más
económicas que la energía procedente de láseres excímer. Los
láseres excímer, que emiten luz a longitudes de onda en la región UV
lejana, son mucho más caros en cuanto a funcionamiento y
mantenimiento que, por ejemplo, los láseres de diodo que emiten luz
a longitudes de onda en las regiones visible e IR (600 a 1800 nm).
Sin embargo, a longitudes de onda mayores, la membrana biológica se
hace progresivamente más transparente y la absorción se produce
principalmente en los tejidos subyacentes.
La presente invención facilita un método rápido
y mínimamente traumático para eliminar la función de barrera de la
membrana biológica, para facilitar el transporte transmembranar de
sustancias hacia el interior del cuerpo cuando se aplican
tópicamente, o para acceder a los analitos en el interior del cuerpo
para el análisis. El método utiliza un procedimiento que comienza
con la aplicación por contacto de una fuente de calor de pequeña
área, al área elegida como objetivo de la membrana biológica.
La fuente de calor tiene que tener varias
propiedades importantes, como se describirá a continuación. Primero,
la fuente de calor tiene que estar dimensionada de forma que el
contacto con la membrana biológica se restrinja a una pequeña área,
típicamente aproximadamente de 1 a 1000 \mum de diámetro. Segundo,
tiene que tener la capacidad de modular la temperatura de la
membrana biológica en el punto de contacto, desde temperatura
superficial ambiente hasta superior al punto de vaporización de una
cantidad suficiente de los componentes en la membrana biológica, y
luego volver hasta aproximadamente la temperatura ambiente, con
tiempos de ciclo para minimizar el daño colateral a los tejidos
viables y el traumatismo al sujeto. Esta modulación se puede crear
electrónica, mecánica o químicamente.
Adicionalmente, para aplicaciones seleccionadas,
se puede facilitar una característica limitativa de la profundidad
inherente al proceso de microporación, si la fuente de calor tiene,
tanto una masa térmica suficientemente pequeña, como una fuente de
energía limitada para elevar su temperatura, de forma que cuando se
coloca en contacto con tejidos con más de 30% de contenido de agua,
la dispersión térmica en estos tejidos sea suficiente para limitar
la temperatura máxima de la fuente de calor hasta menos de 100ºC.
Esta característica, detiene efectivamente el proceso de
vaporización térmica, una vez que la sonda térmica ha penetrado a
través del estrato córneo al interior o a través de las capas
inferiores de la epidermis.
Sin embargo, si uno utiliza una sonda térmica
que puede continuar suministrando suficiente energía al interior o
a través de las capas de tejido viables hidratadas por debajo de la
capa externa de la membrana biológica, el proceso de poración puede
continuar en el interior del cuerpo hasta una profundidad
seleccionada, penetrando a través de las capas más profundas,
incluyendo, p.ej., en el caso de la piel, a través de la epidermis,
la dermis y en las capas subcutáneas inferiores, si se desea. La
preocupación cuando se diseña un sistema para crear un microporo
que se extiende alguna distancia en el interior o a través de los
tejidos viables por debajo del estrato córneo, la membrana mucoso o
bucal, es principalmente cómo minimizar el daño al tejido adyacente
y la sensación para el sujeto durante el proceso de poración.
Experimentalmente, se ha demostrado que si la sonda térmica usada
es un elemento sólido calentado eléctrica u ópticamente, con el
extremo de la sonda calentada activa definido físicamente para no
tener más de unos pocos cientos de micrones de ancho y sobresaliendo
como máximo unos pocos milímetros desde la base de soporte, un sólo
pulso o múltiples pulsos de corriente pueden suministrar suficiente
energía térmica hacia el interior o a través del tejido para
permitir que la destrucción penetre tan profundo como permita el
diseño físico, por ejemplo, hasta que la base de soporte actúe como
componente para limitar la extensión de la penetración en o a
través del tejido, restringiendo esencialmente la profundidad hasta
la que puede penetrar la sonda térmica en un microporo para ponerse
en contacto con tejido sin tratar, sin formación de poros. Si las
propiedades eléctricas y térmicas de dicha sonda térmica, cuando
está en contacto con los tejidos, permiten que el pulso de energía
module la temperatura de dicha sonda con suficiente rapidez, este
tipo de poración en el tejido profundo se puede conseguir
esencialmente sin dolor para el sujeto. Los experimentos han
demostrado que, si la cantidad requerida de energía térmica se
suministra a la sonda en menos de, aproximadamente, 20
milisegundos, el procedimiento es indoloro. Inversamente, si el
pulso de energía se tiene que extender más allá de,
aproximadamente, 20 milisegundos, la sensación para el sujeto se
incrementa rápidamente y de forma no lineal, a medida que se
extiende la amplitud del pulso.
Se puede construir un diseño de sonda calentada
eléctricamente, que soporte este tipo de formación de poros
profundos seleccionados, curvando un hilo de volframio de 50 a 150
micrones de diámetro en forma de una acodadura puntiaguda, formando
un codo próximo a 180 grados, con un radio interno mínimo en este
punto. Este trozo de hilo conformado como una "V" en
miniatura, se puede montar de forma que la punta de la "V" se
extiende alguna distancia hacia fuera de la pieza de soporte, que
tiene electrodos de cobre depositados sobre la misma. La distancia
a la que el hilo se extiende hacia el exterior desde el soporte
definirá la distancia de penetración máxima en o a través del
tejido, cuando el hilo se calienta. Cada pata de la "V" de
volframio se unirá a uno de los electrodos sobre el vehículo de
soporte que puede conectarse, a su vez, al circuito de corriente
pulsante. Cuando la corriente se suministra al hilo de una forma
controlada apropiadamente, el hilo se calentará rápidamente hasta
la temperatura deseada, para efectuar el proceso de destrucción
térmica en un único pulso o en múltiples pulsos de corriente.
Controlando la impedancia dinámica de la muestra y conociendo el
coeficiente de resistencia frente a la temperatura del elemento de
volframio, se puede establecer fácilmente un control de circuito
cerrado de la temperatura del punto de contacto. Asimismo,
controlando dinámicamente la impedancia a través del cuerpo desde
el punto de contacto de la sonda y un segundo electrodo colocado
separado a cierta distancia, se puede estimar la profundidad del
poro, basada en las diferentes propiedades de impedancia del tejido
a medida que uno penetra más profundamente en el cuerpo.
Se puede construir un diseño de sonda calentada
ópticamente, que soporta este tipo de poración de profundidad
deseada, cogiendo una fibra óptica y colocando sobre un extremo una
punta formada por un capuchón o recubrimiento sólido. Se puede
acoplar una fuente de luz, como un diodo láser, al otro extremo de
la fibra. La cara de la punta enfrentada a la fibra tiene que tener
un coeficiente de absorción suficientemente elevado a través del
intervalo de longitudes de onda emitidas por la fuente de luz, para
que cuando los fotones alcancen el extremo de la fibra y golpeen
esta cara, algunos de ellos se absorban y, consecuentemente, hagan
que la punta se caliente. El diseño específico del conjunto de esta
punta, fibra y fuente pueden variar ampliamente, aunque las fibras
con diámetros gruesos de 50 a 1000 micrones de ancho son artículos
de uso común hoy en día, y las fuentes que emiten hasta miles de
vatios de energía óptica son, de forma similar, de uso común. La
punta que forma la sonda térmica real se puede fabricar de un
material con un punto de fusión elevado como volframio, y unirse a
la fibra mecanizándola para permitir la inserción de la fibra en un
diámetro cilíndrico en el extremo de la fibra. Si el extremo distal
de la punta se ha fabricado para limitar la difusión térmica fuera
de esta punta y el retroceso al cilindro de soporte que une la
punta a la fibra dentro del marco de tiempo de las amplitudes de
pulso usadas, los fotones incidentes sobre esta punta elevarán la
temperatura rápidamente, tanto en la cara de la fibra como en la
cara de contacto que está situada contra la superficie de los
tejidos. La colocación del conjunto de la fibra/punta sobre la
superficie del tejido se puede lograr con un mecanismo simple,
diseñado para mantener la punta contra la superficie bajo alguna
tensión de muelle, de forma que a medida que el tejido de debajo se
destruye, la punta misma avanzará hacia el interior del tejido. Esto
permite que el proceso de destrucción térmica continúe hacia el
interior o a través del tejido, siempre que uno lo desee. Una
característica adicional de este diseño de sonda calentada
ópticamente es que, controlando la energía radiada del cuerpo negro
desde el extremo calentado que se recoge por la fibra, se puede
efectuar un control de circuito cerrado muy simple de la
temperatura del extremo. Asimismo, según se describió anteriormente,
controlando dinámicamente la impedancia a través del cuerpo desde
el punto de contacto de la sonda y un segundo electrodo colocado a
alguna distancia, se puede determinar la profundidad del poro,
basándose en las propiedades de impedancia diferentes del tejido, a
medida que uno penetra más profundamente en el cuerpo. La relación
entre la amplitud del pulso y la sensación para este diseño, es
esencialmente la misma que para la sonda calentada eléctricamente,
descrita anteriormente.
La impedancia se puede usar para determinar la
profundidad de un poro fabricado por cualquier medio. Se puede usar
como entrada para un sistema de control para fabricar poros de
profundidad seleccionada. La impedancia medida puede ser la
impedancia compleja medida a una frecuencia seleccionada para
destacar las propiedades de impedancia de los tejidos seleccionados
en un organismo seleccionado.
Una característica adicional es el gran
incremento de eficiencia que se puede alcanzar combinando la
poración de las capas externas de la membrana biológica, con otras
técnicas de mejora de la permeación que se pueden optimizar en la
actualidad para funcionar sobre las diversas barreras, para el
suministro efectivo del compuesto deseado hacia el interior o a
través de los espacios internos que necesite atravesar para ser
efectivo biológicamente. En particular, si uno está suministrando
un compuesto de DNA, bien desnudo, fragmentado, encapsulado o
acoplado a otra sustancia, se desea a menudo introducir el DNA en
las células vivas sin matar la célula, para permitir la absorción
deseada y el funcionamiento posterior de la terapia. Se conoce bien
en la técnica que la electroporación, iontoforesis y ultrasonidos
pueden producir la formación de orificios, temporalmente, en las
membranas celulares y otras membranas de tejidos internos. Habiendo
roto el estrato córneo o la capa mucosa o capa externa de una
planta, y si se desea penetrar en la epidermis o dermis, o más
profundamente en el interior de una planta, se pueden usar entonces
electroporación, iontoforesis, campos magnéticos y energía sónica,
con parámetros que se pueden diseñar para actuar selectivamente
sobre estas barreras de tejidos subyacentes. Por ejemplo, para
cualquier medio de incremento de la energía electromagnética o
sónica, la acción específica de incremento se puede diseñar para
enfocarse sobre cualquier parte del poro, p.ej., sobre el fondo del
poro mediante el diseño de los medios de enfoque empleados, como el
diseño de los dispositivos de formación de los electrodos, del
campo sónico y magnético y análogos. Alternativamente, el incremento
se puede enfocar más generalmente sobre el poro entero o sobre el
área que rodea al poro. En el caso de la electroporación, en el que
se usan normalmente pulsos superiores a entre 50 y 150 voltios
para realizar la electroporación del estrato córneo o la capa
mucosa, en el medio que presentamos serán suficientes pulsos de sólo
unos pocos voltios para realizar la electroporación de la célula,
capilar u otras membranas en el tejido elegido como objetivo. Esto
se debe principalmente a la reducción drástica del número de capas
aislantes presentes entre los electrodos, una vez que la superficie
externa de la membrana biológica se ha perforado. De forma similar,
se puede demostrar que la iontoforesis es efectiva para modular el
flujo de un medio fluido que contiene DNA, a través de los
microporos con cantidades muy pequeñas de corriente, debido a la
reducción drástica de la impedancia física al flujo del fluido a
través de estas capas en las que se han formado poros.
Mientras que se han usado previamente los
ultrasonidos para acelerar la permeación del estrato córneo o la
capa mucosa, eliminando esta barrera a través de los microporos se
ha creado la oportunidad de utilizar la energía sónica para
permeabilizar la célula, capilar u otras estructuras en el tejido
elegido como objetivo. Como en los casos de electroporación e
iontoforesis, hemos demostrado que los niveles de energía sónica
precisos para efectuar una mejora notable en el flujo
transmembranar de una sustancia, son mucho más bajos que cuando el
estrato córneo o las capas mucosas se dejan intactos. El modo de
funcionamiento de todos estos métodos activos, electroporación,
iontoforesis, campos magnéticos, fuerzas mecánicas o ultrasonidos,
cuando se aplican solos o en combinación, después de realizar la
poración en la membrana biológica, es muy similar a los parámetros
usados típicamente en aplicaciones in vitro, en las que
membranas celulares individuales se están perforando para el
suministro de una sustancia.
Con la fuente de calor colocada en contacto con
la superficie de la membrana biológica, se establece un ciclo a
través de una serie de una o más modulaciones de temperatura, desde
un punto inicial a temperatura ambiente, hasta una temperatura
máxima en exceso de 123ºC, y de nuevo hasta una temperatura
superficial ambiente. Para minimizar o eliminar la percepción
sensorial del proceso de microporación por el animal, estos pulsos
se limitan en duración, y el distanciamiento entre pulsos es
suficientemente largo para permitir el enfriamiento de las capas de
tejido viables en la membrana biológica y, más particularmente, de
los tejidos inervados, para conseguir una temperatura promedio en
los tejidos inervados de menos de aproximadamente 45ºC. Estos
parámetros están basados en las constantes temporales térmicas de
los tejidos epidérmicos viables de la piel humana (aproximadamente
30-80 ms), localizados entre la sonda térmica y el
tejido inervado en la dermis subyacente. El resultado de esta
aplicación de energía térmica pulsada es que se conduce suficiente
energía hacia el interior o a través del estrato córneo, dentro del
pequeño punto elegido como objetivo, de forma que la temperatura de
este volumen de tejido se eleva suficientemente por encima del
punto de vaporización del contenido de agua ligada al tejido en el
estrato córneo. A medida que la temperatura se incrementa por encima
de 100ºC, el contenido de agua del estrato córneo (típicamente de
5% a 15%) en este punto localizado, se induce a vaporizarse y
expandirse muy rápidamente, produciendo una eliminación dirigida
por el vapor de aquellos corneocitos en el estrato córneo
localizados en las proximidades de este suceso de vaporización. La
patente de EE.UU. Nº 4.775.361 enseña que una temperatura del
estrato córneo de 123ºC representa un umbral en el cual se produce
este tipo de vaporización instantánea. A medida que se aplican
pulsos posteriores de energía térmica, se eliminan capas adicionales
del estrato córneo hasta que se forma un microporo a través del
estrato córneo, hacia la siguiente capa inferior de la epidermis,
el estrato lúcido. Limitando la duración del pulso térmico hasta
menos de una constante temporal térmica de la epidermis y
permitiendo que cualquier energía térmica conducida al interior o a
través de la epidermis se disipe durante un tiempo suficientemente
largo, la elevación de temperatura de las capas viables de la
epidermis es mínima. Esto permite que se produzca el proceso de
microporación completo sin ninguna sensación para el sujeto y sin
daño para los tejidos subyacentes ni circundantes. Si la sonda
térmica puede alcanzar temperaturas superiores a 300ºC, parte de la
poración se puede deber a la descomposición térmica directa del
tejido.
En un método de creación de orificios
microscópicos, es decir microporos, de aproximadamente 1 a 100
\mum de ancho, indoloro o con escasa sensación, en una membrana
biológica de un organismo, la clave para realizar con éxito este
método es la creación de una fuente de energía térmica apropiada, o
sonda térmica, que se mantiene en contacto con la membrana
biológica. El principal desafío técnico para fabricar una sonda
térmica apropiada es diseñar un dispositivo que produzca el
contacto deseado con la membrana biológica y que se pueda modular a
una frecuencia suficientemente alta.
Es posible fabricar una sonda térmica apropiada
poniendo en contacto la membrana biológica con un compuesto
absorbedor de luz adecuado, como un colorante o tinte, o cualquier
película fina o sustancia seleccionada debido a su capacidad para
absorber luz a la longitud de onda emitida por una fuente de luz
seleccionada. En este caso, la fuente de luz seleccionada puede ser
un diodo láser que emite a una longitud de onda que no se
absorbería normalmente por la membrana biológica. Enfocando la
fuente de luz hacia una pequeña zona de la capa tópica del
colorante, tinte, película fina o sustancia, la temperatura del área
elegida como objetivo se puede modular variando la intensidad del
flujo de luz enfocado sobre ella. Es posible utilizar la energía de
fuentes láser que emiten a una longitud de onda más larga que un
láser excímer, aplicando primero tópicamente al estrato córneo un
compuesto absorbedor de luz adecuado, como un colorante, tinte,
película fina o sustancia seleccionada, debido a su capacidad para
absorber luz a la longitud de onda emitida por la fuente láser. Se
puede aplicar el mismo concepto a cualquier longitud de onda y sólo
se tiene que elegir un colorante o tinte y una longitud de onda
óptica apropiados. Sólo se tiene que consultar cualquier manual de
referencia para descubrir cuáles son los colorantes apropiados y la
longitud de onda de la absorbancia máxima de ese colorante. Una de
tales referencias es Green, The sigma-Aldrich
handbook of stains, dyes and indicators, Aldrich Chemical Company,
Inc. Milwaukee, Wisconsin (1991). Por ejemplo, la ftalocianina de
cobre (Pigment Blue 15; CPC) absorbe a aproximadamente 800 nm; el
ácido tetrasulfónico de ftalocianina de cobre (Acid Blue 249)
absorbe a aproximadamente 610 nm; el verde de indocianina absorbe a
aproximadamente 775 nm; y la criptocianina absorbe a aproximadamente
703 nm. El CPC es particularmente adecuado para esta realización
por las siguientes razones: es un compuesto muy estable e inerte,
ya aprobado por la FDA para uso como colorante en suturas
implantables; absorbe muy intensamente a longitudes de onda de 750
nm a 950 nm, que coinciden con numerosos emisores en estado sólido
de bajo coste, como diodos láser y LEDs y, además, este área de
banda de longitud de onda óptica, de forma similar, no se absorbe
directamente por los tejidos de la piel en ninguna cantidad
significativa; el CPC tiene un punto de vaporización elevado
(>550ºC al vacío) y cambia directamente desde fase sólida hasta
fase de vapor, sin ninguna fase líquida; el CPC tiene una
constante de difusividad térmica relativamente baja, permitiendo
que la energía lumínica enfocada sobre él, caliente selectivamente
sólo el área directamente en el punto focal, con una dispersión
lateral muy pequeña del foco caliente hacia el CPC circundante,
ayudando así a la definición espacial de la sonda térmica de
contacto.
El propósito de esta descripción no es hacer un
listado exhaustivo de colorantes, tintes, películas o sustancias
apropiados, porque esto se podría determinar fácilmente por un
experto en la técnica a partir de los datos actualmente
disponibles.
Lo mismo se aplica para cualquier fuente de luz
pulsada particular deseada. Por ejemplo, este método se puede
realizar con una lámpara incandescente enfocada, accionada
mecánicamente, como fuente de luz pulsada. Diversa literatura de
catálogos y ventas muestra numerosos láseres que funcionan en el
intervalo de UV cercano, visible e IR cercano. Láseres
representativos son el modelo PLP-02 de Hammamatsu
Photonic Systems, que actúa a una potencia de salida de 2x10^{-8}
J, a una longitud de 415 nm; el modelo PLP-05 de
Hammamatsu Photonic Systems que funciona a una potencia de salida
de 15 J, a una longitud de onda de 685 nm; la serie de láser pulsado
SDL-3250 de SDL, Inc., que actúa a una potencia de
salida de 2x10^{6} J, a una longitud de onda de aproximadamente
800-810 nm; el modelo SDL-8630 de,
SDL, Inc. que funciona a una potencia de salida de 500 mW, a una
longitud de onda de aproximadamente 670 nm; el modelo
AR-081-15000 de Uniphase Laser, que
funciona a una potencia de salida de 15000 mW, a una longitud de
onda de 790-830 nm; el modelo TOLD9150 de Toshiba
America Electronic que funciona a una potencia de salida de 30 mW,
a una longitud de onda de 690 nm; y el modelo Diolite
800-50 de, LiCONIX, que funciona a una potencia de
50 mW, a una longitud de onda de 780 nm.
Una fuente de luz láser pulsada puede emitir
radiación a través de un amplio intervalo de longitudes de onda,
variando entre aproximadamente 100 nm y 12.000 nm. Los láseres
excímer emitirán típicamente a través de un intervalo de entre
aproximadamente 100 y 400 nm. Los láseres excímer comerciales están
disponibles actualmente con longitudes de onda en el intervalo de
aproximadamente 193 nm y 350 nm. Preferiblemente, un diodo láser
tendrá un intervalo de emisión de entre aproximadamente 380 y 1550
nm. Un diodo láser de frecuencia duplicada tendrá un intervalo de
emisión entre aproximadamente 190 y 775 nm. Se pueden utilizar
longitudes de onda mayores de entre aproximadamente 1300 y 3000 nm,
usando un oscilador paramétrico óptico bombeado por diodo láser. Se
espera, dada la gran cantidad de investigación que se está
produciendo en tecnología láser, que estos intervalos se expandan
con el tiempo.
La energía suministrada o absorbida no se tiene
que obtener de un láser, ya que se puede usar cualquier fuente de
luz, bien sea de un láser, una lámpara de arco corto como una
lámpara de destellos de xenon, una lámpara incandescente, un diodo
emisor de luz (LED), el sol, o cualquier otra fuente. Por tanto, el
instrumento particular usado para suministrar radiación
electromagnética es menos importante que la longitud de onda y
energía asociada con el mismo. Se puede considerar cualquier
instrumento capaz de suministrar la energía necesaria a las
longitudes de onda adecuadas, es decir, en el intervalo de
aproximadamente 100 nm hasta aproximadamente 12.000 nm. La
característica esencial es que la energía se tiene que absorber por
el compuesto absorbedor de luz, para producir su calentamiento
localizado, seguido de conducción de suficiente calor al tejido a
destruir, dentro de la dimensión temporal permitida.
En una realización ilustrativa, la propia sonda
está formada por una capa fina, preferiblemente de aproximadamente
5 a 1000 \mum de grosor, de una sustancia sólida no biológicamente
activa, colocada en contacto con un área seleccionada de la piel de
un individuo, que es suficientemente grande para cubrir la zona en
la que se va a crear un microporo. La formulación específica del
compuesto químico se elige de forma que presente una absorción
elevada a lo largo del intervalo espectral de una fuente de luz
seleccionada para proporcionar energía al compuesto absorbedor de
luz. La sonda puede ser, por ejemplo, una lámina de un compuesto
sólido, una película tratada con un compuesto absorbedor de luz
adecuado, o recubierta con el mismo o que lo contiene, o una
aplicación directa del compuesto absorbedor de luz a la piel, como
precipitado o como suspensión en un vehículo. Independientemente de
la configuración de la sonda térmica absorbedora de luz, tiene que
presentar un coeficiente de difusión térmica lateral
suficientemente bajo, de forma que cualquier elevación local de
temperatura permanezca suficientemente definida espacialmente, y el
modo dominante de pérdida de calor será preferiblemente mediante
conducción directa en la membrana biológica, a través del punto de
contacto entre la piel y la sonda.
La modulación de temperatura requerida de la
sonda se puede lograr enfocando una fuente de luz sobre la capa de
la sonda, y modulando la intensidad de esta fuente de luz. Si la
energía absorbida en el área iluminada es suficientemente elevada,
hará que la capa de la sonda se caliente. La cantidad de energía
suministrada y, posteriormente, tanto la velocidad de calentamiento
como la temperatura máxima de la capa de la sonda en el punto
focal, se pueden modular fácilmente variando la amplitud del pulso y
la potencia máxima de la fuente de luz. En esta realización, sólo
es el pequeño volumen de capa de la sonda calentado por la energía
óptica incidente enfocada, el que forma la sonda térmica. El
material adicional de la capa de esta sonda que se podría haber
aplicado sobre un área mayor que la zona real de poración, es
accesorio. Usando un compuesto absorbedor de luz en fase sólida con
un punto de fusión relativamente elevado, como la ftalocianina de
cobre (CPC), que permanece en su fase sólida hasta una temperatura
superior a 550ºC, la sonda térmica se puede llevar rápidamente
hasta una temperatura de varios cientos de ºC, y permanecer aún en
contacto con la membrana biológica, permitiendo que esta energía
térmica se conduzca al interior o a través del estrato córneo.
Además, esta realización comprende elegir una fuente de luz con un
espectro de emisión en el que muy poca energía se absorbería
normalmente en los tejidos de la membrana biológica.
Una vez que el área elegida como objetivo tiene
la capa de la sonda absorbedora de luz colocada en contacto con
ella, la sonda térmica se forma cuando la fuente de luz se activa
con la curvatura focal del haz colocada para coincidir con la
superficie del área tratada. La densidad de energía de luz en la
curvatura focal y la cantidad de absorción que se produce en el
compuesto absorbedor de luz, se determinan para que sean suficientes
para llevar la temperatura del compuesto absorbedor de luz, dentro
del área de la pequeña zona definida por el foco de la fuente de
luz, hasta más de 123ºC, en unos pocos milisegundos. A medida que
aumenta la temperatura de la sonda térmica, la conducción en la
membrana biológica o a través de la misma suministra energía hacia
el interior o a través de estos tejidos, elevando la temperatura
local de la membrana biológica. Cuando se ha suministrado
suficiente energía al interior de esta pequeña área de la membrana
biológica o a través de la misma, para hacer que la temperatura
local se eleve por encima del punto de ebullición de parte del agua
y otros componentes vaporizables contenidos en estos tejidos, se
produce una vaporización instantánea de este material, eliminando
cierta parte de la membrana biológica en esta localización, y
formando un microporo.
Encendiendo y apagando la fuente de luz, se
puede modular rápidamente la temperatura de la sonda térmica y se
puede lograr la destrucción selectiva de estos tejidos, permitiendo
crear un orificio dimensionado muy precisamente, que puede penetrar
selectivamente sólo a través de los primeros 10 a 30 micrones de la
membrana biológica, o se puede hacer más profundo.
Una característica adicional de esta realización
es que, eligiendo una fuente de luz de la que se absorbería
normalmente muy poca energía por la membrana biológica o los tejidos
subyacentes, y diseñando la óptica de enfoque y suministro para que
tenga una apertura numérica suficientemente elevada, la pequeña
cantidad de luz suministrada que no se absorbe por la propia sonda
térmica, diverge rápidamente a medida que penetra profundamente en
el cuerpo. Debido a que hay muy poca absorción a las longitudes de
onda suministrada, no se suministra esencialmente ninguna energía a
la membrana biológica directamente desde la fuente de luz. Esta
dilución tridimensional de energía acoplada en los tejidos, debida
a la divergencia del haz y al bajo nivel de absorción en el tejido
sin tratar, produce una interacción completamente benigna entre el
haz de luz y los tejidos, sin que se produzca daño por ello.
Se puede usar un diodo láser como fuente de luz
con una longitud de onda de emisión de 800 \pm 30 nm. Se puede
formar una sonda térmica mediante aplicación tópica de una cinta
adhesiva transparente que se ha tratado sobre la cara adhesiva con
una zona de 0,5 cm formada de un depósito de ftalocianina de cobre
(CPC) molida finamente. La CPC muestra coeficientes de absorción
extremadamente elevados en el intervalo espectral de 800 nm,
absorbiendo típicamente más de 95% de la energía radiante de un
diodo láser.
La Fig. 1 muestra un sistema 10 para suministrar
luz desde tal diodo láser hasta un área seleccionada de la membrana
biológica de un individuo y para controlar el progreso del proceso
de poración. El sistema comprende un diodo láser 14, acoplado a un
controlador 18, que controla la intensidad, duración y separación de
los pulsos de luz. El diodo láser emite un haz 22 que se dirige
hacia una lente o lentes de captación 26, que enfocan el haz sobre
un espejo 30. El haz se refleja después mediante el espejo hasta una
lente o lentes del objetivo 34, que enfoca el haz en un punto
preseleccionado 38. Este punto preseleccionado corresponde con el
plano de una plataforma xyz 42 y su orificio de objetivo 46, de
forma que se puede irradiar un área seleccionada de una membrana
biológica de un individuo. La plataforma xyz está conectada con el
controlador, de forma que se puede controlar la posición de la
plataforma xyz. El sistema comprende también un sistema de control
que comprende una cámara CCD 50, acoplada a un monitor 54. La
cámara CCD está alineada confocalmente con la lente del objetivo,
de forma que se puede controlar el progreso del proceso de poración
visualmente sobre el monitor.
Se describe un sistema de fotodiodos sensores y
sistemas ópticos de captación que se han alineado confocalmente con
la fuente de luz de destrucción. La Fig. 2 muestra un sistema sensor
60 para uso en esta realización. El sistema comprende una fuente de
luz 64 para emitir un haz de luz 68, que se dirige a través de un
sistema óptico de emisión 72 que enfoca el haz en un punto
preseleccionado 76, como la superficie de la piel de un individuo
80. Una parte de la luz que se pone en contacto con la piel se
refleja, y otra luz se emite desde el área irradiada. Una parte de
esta luz reflejada y emitida pasa a través de un filtro 84 y luego a
través de un sistema de captación óptica 88, que enfoca la luz
sobre un fotodiodo 92. Un controlador 96 se acopla tanto al diodo
láser como al fotodiodo para controlar, respectivamente, la salida
del diodo láser, y detectar la luz que alcanza el fotodiodo. Sólo
partes seleccionadas del espectro emitido desde la piel pasan a
través del filtro. Analizando los cambios en la luz reflejada y
emitida desde el área elegida como objetivo, el sistema tiene la
capacidad de detectar cuando se ha roto el estrato córneo, y esta
retroalimentación se usa luego para controlar la fuente de luz,
desactivando los pulsos de luz cuando se logra la microporación del
estrato córneo. Empleando este tipo de sistema de retroalimentación
de circuito cerrado activo, se obtiene un dispositivo aplicable
universalmente, autorregulable, que produce microporos dimensionados
uniformemente en el estrato córneo, con requerimientos de energía
mínimos, independientemente de las variaciones entre un individuo y
el siguiente.
Se puede incorporar un dispositivo refrigerante
en la superficie de contacto del sistema con la piel. La Fig. 3A
muestra una representación esquemática ilustrativa del mismo. En
este sistema 100, una fuente de luz 104 (acoplada a un controlador
106) emite un haz de luz 108, que pasa a través de un sistema óptico
de emisión 112 y es enfocado por el mismo. El haz es enfocado por
el sistema óptico de emisión hacia un punto preseleccionado 116,
como un área seleccionada de la piel de un individuo 120. Un
dispositivo refrigerante 124, como un dispositivo de Peltier u otro
medio de enfriamiento, se pone en contacto con la piel para enfriar
su superficie. En una realización preferida del dispositivo
refrigerante 124 (Fig. 3B), hay un orificio central 128, a través
del cual pasa el haz de luz enfocada para ponerse en contacto con
la piel. Haciendo referencia de nuevo a la Fig. 3A, se coloca
también preferiblemente un disipador de calor 132 en contacto con el
dispositivo refrigerante. Proporcionando un dispositivo
refrigerante con un pequeño orificio en su centro, coincidente con
el foco de la luz, los tejidos en el área general donde se van a
formar los poros se pueden enfriar hasta entre 5ºC y 10ºC. Esta
refrigeración permite un margen de seguridad superior para que
funcione el sistema, en cuanto a que las sensaciones potenciales
para el usuario y la posibilidad de cualquier daño colateral a la
epidermis directamente debajo de la zona de poración, se reducen
significativamente respecto a la realización no refrigerada.
Adicionalmente, para aplicaciones de control, la refrigeración
minimiza la evaporación de fluido intersticial y puede proporcionar
también propiedades físicas ventajosas, como tensión superficial
reducida de tal fluido intersticial. Más aún, se sabe que la
refrigeración del tejido produce un incremento localizado en el
flujo sanguíneo en tal tejido refrigerado, favoreciendo así la
difusión de analitos desde la sangre hacia el fluido intersticial y
favoreciendo la difusión de los permeantes suministrados fuera de la
zona del poro o hacia el interior del tejido subyacente al
poro.
El método se puede aplicar también para otras
técnicas de microcirugía en las que el compuesto absorbedor de
luz/sonda térmica se aplica al área a destruir, y luego la fuente de
luz se usa para modular selectivamente la temperatura de la sonda
en la zona seleccionada elegida como objetivo, afectando a los
tejidos a través del proceso de
vaporización-destrucción producido.
La fuente de luz se puede usar para ayudar a
sellar el microporo una vez que ha pasado su utilidad.
Específicamente, en el caso de control para un analito interno, se
crea un microporo y se extrae cierta cantidad de fluido
intersticial a través de este orificio. Una vez que se ha recogido
una cantidad suficiente de fluido intersticial, la fuente de luz se
reactiva a un nivel de potencia reducido, para facilitar la
agrumación o coagulación del fluido intersticial dentro del
microporo. Forzando la coagulación o agrumación del fluido en el
poro, este orificio en el cuerpo se sella efectivamente, reduciendo
así el riesgo de infección. Asimismo, el uso de la propia fuente de
luz, tanto para la formación del microporo como para su sellado, es
un procedimiento inherentemente estéril, sin ninguna penetración
física en el cuerpo por ningún dispositivo o aparato. Además, el
choque térmico inducido por la energía lumínica mata cualquier
microbio que puedan estar presentes en la zona de destrucción.
Este concepto de esterilización óptica se puede
extender para incluir una etapa adicional en el proceso en el que
la fuente de luz se aplica primero de manera desenfocada, cubriendo
el área elegida como objetivo con un área iluminada que se extiende
100 \mum o más por encima del tamaño real del microporo a
producir. Seleccionando el área sobre la cual se tiene que aplicar
el haz desenfocado, la densidad de flujo se puede reducir
correspondientemente hasta un nivel muy por debajo del umbral de
destrucción, pero suficientemente elevado para esterilizar
efectivamente la superficie de la piel. Después de una exposición
suficientemente larga del área mayor al haz esterilizante, bien en
una etapa continua o en una serie de pulsos, el sistema se configura
a continuación en el modo de destrucción enfocado de modo preciso y
comienza el proceso de microporación óptica.
La sonda térmica requerida se puede crear a
partir de un elemento sólido, como un hilo de pequeño diámetro.
Según se describió previamente, la superficie de contacto de la
sonda térmica tiene que permitir que su temperatura se module desde
temperatura ambiente de la membrana biológica, hasta temperaturas
superiores a 123ºC, en el tiempo requerido permitido de,
preferiblemente, entre aproximadamente 1 microsegundo hasta 50
milisegundos a la temperatura elevada (tiempo de encencido) y al
menos 1 a 50 ms a la temperatura baja (tiempo de enfriamiento). En
particular, la capacidad de modular la temperatura hasta una
temperatura superior a 150ºC durante un tiempo de calentamiento de
alrededor de 5 ms y un tiempo de enfriamiento de 50 ms produce una
destrucción térmica muy efectiva con escasa o ninguna sensación
para el individuo.
Se pueden aplicar con éxito varios métodos para
modular las temperaturas del área de contacto de la sonda térmica
del elemento sólido. En una realización de la invención, se puede
llevar un trozo corto de hilo hasta la temperatura elevada deseada
mediante un elemento de calentamiento externo, como un elemento de
calentamiento óhmico usado en el extremo de un soldador de cobre.
La Fig. 4 muestra un dispositivo de calentamiento óhmico 140 con un
actuador mecánico. El dispositivo de calentamiento óhmico comprende
una fuente de calor óhmico 144, acoplada a una sonda térmica de
elemento sólido 148. La fuente de calor óhmico está acoplada también
a través de un montaje aislante 152, a un dispositivo de modulación
mecánica 156, como un solenoide. En esta configuración se puede
alcanzar una condición de estado estable, en la que el extremo de la
sonda de elemento sólido se estabilizará a cierta temperatura de
equilibrio, definida por los parámetros físicos de la estructura,
es decir, la temperatura de la fuente de calor óhmico, la longitud y
diámetro del elemento sólido, la temperatura del aire que rodea al
elemento sólido, y el material del que está formado el elemento
sólido. Una vez conseguida la temperatura deseada, se efectúa la
modulación de la temperatura del área seleccionada de la membrana
biológica de un organismo 160, a través del dispositivo de
modulación mecánica, para situar alternativamente el extremo
caliente del hilo en contacto con la membrana biológica durante,
preferiblemente, un tiempo de calentamiento de 5 ms, y luego
retirarlo al aire durante, preferiblemente, un tiempo de
enfriamiento de 50 ms.
Otra realización de la invención (Fig. 5),
muestra un dispositivo 170, que comprende una fuente de corriente
174 acoplada a un controlador 178. La fuente de corriente está
acoplada a un circuito cerrado de corriente 182, que comprende un
elemento sólido 186 conformado en una estructura, de forma que
presenta un punto de resistencia elevado. Preferiblemente, el
elemento sólido está soportado sobre un montaje 190, y un aislante
194 separa las diferentes partes del circuito de corriente. La
modulación de temperatura deseada se logra luego modulando
meramente la corriente a través del elemento sólido. Si la masa
térmica del elemento sólido está dimensionada apropiadamente y la
disipación de calor proporcionada por los electrodos que lo conectan
a la fuente de corriente es suficiente, los tiempos de
calentamiento y enfriamiento del elemento sólido se pueden lograr
en unos pocos milisegundos. La puesta en contacto del elemento
sólido con un área seleccionada de la membrana biológica 198,
calienta la membrana biológica para lograr la destrucción
deseada.
En la Fig. 6 se muestra aún otro ejemplo
ilustrativo, no según la invención, de poración de la membrana
biológica con una sonda térmica de elemento sólido. En este sistema
200, el elemento sólido 204 se puede colocar en un campo magnético
alternante modulable, formado por una espira de alambre 208, la
espira de excitación. Incrementando la energía de la corriente
alternante en la espira de excitación mediante un controlador 212
acoplado a la misma, se pueden inducir corrientes inducidas de
intensidad suficiente en la sonda térmica de elemento sólido, que
se calentará directamente a través de las pérdidas óhmicas internas.
Esto es esencialmente una versión en miniatura de un sistema de
calentamiento inductivo usado normalmente para el tratamiento
térmico de los extremos de herramientas o para inducir la
desgasificación de los electrodos en tubos de vacío o lámparas
destellos. La ventaja del método de calentamiento inductivo es que
la energía suministrada a la sonda térmica de elemento sólido se
puede controlar estrechamente y modularse fácilmente a través del
control electrónico de la espira de excitación, sin ninguna
conexión eléctrica directa con la propia sonda térmica. Si la masa
térmica de la sonda térmica de elemento sólido y la masa térmica de
la membrana biológica en contacto con el extremo de la sonda son
conocidas, el control de la energía inductiva suministrada puede
permitir un control preciso de la temperatura en el punto de
contacto 216 con la membrana biológica 220. Debido a que el tejido
de la membrana biológica es esencialmente amagnético a las
frecuencias más bajas a las que se puede lograr el calentamiento
inductivo, si en la espira de excitación se usan frecuencias
seleccionadas apropiadamente, entonces este campo electromagnético
alternante no producirá ningún efecto sobre los tejidos del
organismo.
Si se emplea una modulación de contacto
controlada mecánicamente, se puede obtener una característica
adicional incorporando un sistema sencillo de control de circuito
cerrado, en el que se controla la impedancia eléctrica entre el
extremo de la sonda y la piel del sujeto. De esta manera, la sonda
se puede poner en contacto con la piel del sujeto, indicado por la
reducción por etapas de la resistencia una vez realizado el
contacto, y luego mantenerse allí durante el tiempo de
calentamiento deseado, después de lo cual se puede retirar. Varios
tipos de actuadores lineales son adecuados para esta forma de
control de circuito cerrado, como un mecanismo de sonido a bobina,
un solenoide simple, un sistema rotativo con una palanca o balancín,
y análogos. La ventaja es que, a medida que progresa la destrucción
térmica, puede avanzar de forma similar la posición del extremo de
la sonda térmica en la membrana biológica, asegurando siempre un
buen contacto para facilitar la transferencia eficiente de la
energía térmica requerida. Asimismo, para la poración en la piel, se
puede usar el cambio en las propiedades de conductividad del
estrato córneo y la epidermis, para proporcionar una verificación
elegante de circuito cerrado de que se ha completado el proceso de
poración, es decir, cuando la resistencia indica que se ha
alcanzado la epidermis, es el momento de detener el proceso de
poración. Asimismo, se pueden usar cambios similares de impedancia
para controlar la profundidad de penetración a otras capas.
La Fig. 7 muestra un ejemplo ilustrativo de tal
monitor de impedancia de circuito cerrado. En este sistema 230, hay
una fuente de calor óhmico 234, acoplada a una sonda térmica de hilo
238. La fuente de calor está montada a través de un montaje
aislante 242 sobre un modulador mecánico 246. Un controlador 250
está acoplado al hilo y a la piel 254, donde el controlador detecta
cambios en impedancia en el área seleccionada de la piel 258.
Cuando se obtiene un nivel predeterminado, el controlador detiene el
proceso de poración.
De forma similar a los medios hidráulicos de
poración, están las microlancetas, adaptadas sólo para penetrar en
el estrato córneo con los propósitos de administrar un permeante,
como un fármaco, a través del poro formado, o de extraer un analito
a través del poro para análisis. Tal dispositivo se considera que es
"mínimamente invasivo", comparado con los dispositivos y/o
técnicas que son no invasivas. El uso de microlancetas que penetran
por debajo del estrato córneo para extraer sangre es bien conocido.
Tales dispositivos están disponibles comercialmente de fabricantes
como Becton-Dickinson y Lifescan, y se pueden
utilizar controlando la profundidad de penetración. Como ejemplo de
un dispositivo de microlanceta para recoger fluidos corporales, se
hace referencia a Erickson et al., solicitud internacional
de patente PCT publicada WO 95/10223 (publicada el 20 de abril de
1995). Esta solicitud muestra un dispositivo para penetración en o
a través de la capa dérmica de la piel, sin penetración en los
tejidos subcutáneos, para recoger fluidos corporales para control,
como para las concentraciones de glucosa sanguínea.
La poración de una membrana biológica se puede
lograr también usando medios sónicos. La poración por medios
sónicos es una variación de los medios ópticos descritos
anteriormente excepto porque, en vez de usar una fuente de luz, se
suministra al área del estrato córneo a destruir un haz de energía
sónica enfocado muy precisamente. Se requieren los mismos niveles
de energía sónica, es decir, se tiene que absorber aún un umbral de
70 mJ/cm^{2}/50 ms. Se pueden usar los mismos transductores
ultrasónicos enfocados, pulsados, descritos en las solicitudes
originales de N^{os} de serie 08/152.442 (actualmente patente de
EE.UU. Nº 5.458.140) y 08/152.174 (actualmente patente de EE.UU. Nº
5.445.611) para suministrar las densidades de energía requeridas
para la destrucción, que los usados en el suministro de energía
sónica que se modula en intensidad, fase o frecuencia, o una
combinación de estos parámetros, para el muestreo transdérmico de
un analito o el suministro transdérmico de fármacos. Esto tiene la
ventaja de permitir el uso del mismo transductor para impulsar un
fármaco a través del estrato córneo o impulsar un fluido corporal
hasta la superficie para su análisis, y usarlo para crear primero un
microporo.
Adicionalmente, se puede aplicar electroporación
o ráfagas o pulsos cortos de corriente eléctrica al estrato córneo,
con suficiente energía para formar microporos. La electroporación se
conoce en la técnica para producir poros en membranas biológicas y
están disponibles en el comercio instrumentos de electroporación.
Por tanto, una persona experta en esta técnica puede seleccionar un
instrumento y condiciones para su uso, sin experimentación
innecesaria según las directrices proporcionadas aquí.
Los microporos producidos en la membrana
biológica mediante los métodos descritos anteriormente, permiten
elevadas velocidades de fluencia de compuestos terapéuticos de
distintos pesos moleculares destinados a suministrarse
transmembranarmente. Además, estos orificios no traumáticos en el
cuerpo permiten el acceso de diversos analitos al interior del
cuerpo, que se pueden analizar para determinar sus concentraciones
internas.
Ejemplo
1
En este ejemplo, se prepararon muestras cutáneas
como sigue. Se separó la membrana epidérmica de la piel completa de
un cadáver humano mediante el método de separación térmica de
Klingman y Christopher, 88 Arch. Dermatol. 702 (1963), que
implicaba la exposición del grosor total de la piel a una
temperatura de 60ºC durante 60 segundos, tiempo después del cual el
estrato córneo y parte de la epidermis (la membrana epidérmica) se
desprendían cuidadosamente de la dermis.
Ejemplo
2
Las muestras de estrato córneo separadas
térmicamente, preparadas según el procedimiento del Ejemplo 1, se
cortaron en secciones de 1 cm^{2}. Estas pequeñas muestras se
unieron luego al cubre de vidrio de un portaobjetos, colocándolas
sobre el portaobjetos y aplicando un disco recubierto en su dorso
por un adhesivo sensible a la presión con un orificio de 6 mm en el
centro sobre la muestra de piel. A continuación, las muestras
estaban listas para el ensayo experimental.
En algunos casos, las muestras de piel se
hidrataban, dejándolas sumergirse durante varias horas en una
solución de fosfato tamponada neutra o en agua pura.
Como prueba de estas muestras de piel sin
tratar, se aplicaron a la muestra las salidas de varios diodos láser
infrarrojos diferentes, que emitían aproximadamente a 810, 905,
1480 y 1550 nanómetros. Los medios ópticos emisores se diseñaron
para producir una curvatura focal de 25 \mum de ancho, con un
objetivo final que tiene una apertura numérica de 0,4. Se midió la
potencia total suministrada al punto focal, que estaba entre 50 y
200 milivatios para los diodos láser de 810 y 1480 nm, que eran
capaces de funcionar en forma de onda continua (CW). Los diodos
láser de 905 y 1550 nm se diseñaron para producir pulsos de potencia
máxima elevada, aproximadamente de 10 a 200 nanosegundos de
duración, con índices de repetición de hasta 5000 Hz. Para los
láseres pulsados se midió que los niveles de potencia máxima eran
45 vatios a 905 nm y 3,5 vatios a 1550 nm.
Bajo estas condiciones de funcionamiento, no
existía un efecto aparente sobre las muestras de piel procedentes
de ninguno de los láseres. El área elegida como objetivo se
iluminaba continuamente durante 60 segundos y luego se examinaba
microscópicamente, sin revelar ningún defecto visible. Además, la
muestra se colocaba en una célula de Franz modificada, usada
típicamente para analizar sistemas de suministro transdérmico
basados en potenciadores de permeación química, y la conductividad
de un lado de la membrana al otro se midió, tanto antes como
después de la irradiación por láser, y no mostraba ningún cambio.
Basándose en estos análisis que se realizaban sobre muestras de
piel de cuatro donadores diferentes, se concluyó que a estas
longitudes de onda, el acoplamiento de la energía óptica en o a
través del tejido cutáneo era tan pequeño, que no era detectable
ningún efecto.
Ejemplo
3
Para evaluar la sensación potencial para un
sujeto vivo cuando se iluminaba con energía óptica en las
condiciones del Ejemplo 2, se usaron seis voluntarios y se aplicó
la salida de cada fuente de láser a las yemas de sus dedos,
antebrazos, y el dorso de sus manos. En los casos de láseres de 810,
905 y 1550 nm, el sujeto era incapaz de sentir cuando el láser
estaba encendido o apagado. En el caso del láser de 1480 nm, existía
alguna sensación durante la iluminación por el láser de 1480 nm
funcionando a 70 mW CW, y después de un rato corto, se formaba una
ampolla pequeñita bajo la piel, debido a la absorción de la
radiación de 1480 nm por una de las bandas de absorción de agua.
Aparentemente, la cantidad de energía absorbida era suficiente para
inducir la formación de la ampolla, pero no era suficiente para
producir la eliminación por destrucción del estrato córneo.
Asimismo, la absorción de la luz de 1480 nm se producía
predominantemente en los tejidos más profundos, totalmente
hidratados (85% a 90% de contenido de agua) de la epidermis y
dermis, no en el tejido relativamente seco (10% a 15% de contenido
de agua) del estrato córneo.
Ejemplo
4
Habiendo demostrado la carencia de efecto sobre
la piel en su estado natural (Ejemplo 3), se evaluó una serie de
compuestos químicos para la efectividad en la absorción de la
energía lumínica y la transferencia posterior de esta energía
absorbida, vía conducción, en o a través del tejido del estrato
córneo elegido como objetivo. Los compuestos ensayados incluían
tinta china; negro indeleble de la marca "SHARPIE", rotuladores
marcadores azul y rojo; azul de metileno; rojo fucsia; epolita nº
67, un compuesto absorbedor desarrollado para moldearse en lentes
de policarbonato para gafas protectoras de láser; tintura de yodo;
completo de
yodo-poli(vinil-pirrolidona)
("BETADINE"); ftalocianina de cobre; y tinta de impresoras.
Usando ambos diodos láser CW descritos en el
Ejemplo 2, se observaron resultados de destrucción positivos sobre
las muestras in vitro de estrato córneo separado
térmicamente, preparado según el Ejemplo 1 cuando se usaban todos
estos productos, sin embargo algunos funcionaban mejor que otros. En
particular, la ftalocianina de cobre (CPC) y la epolita nº 67 eran
algunos de los más efectivos. Una razón probable para el
funcionamiento superior de la CPC, es su elevado punto de
ebullición, superior a 500ºC, y el hecho de que mantiene su fase
sólida hasta esta temperatura.
Ejemplo
5
Como la ftalocianina de cobre ha sido ya
aprobada por la FDA para uso en suturas implantables, y está listada
en el índice Merck como una molécula bastante benigna y estable en
relación con la biocompatibilidad humana, la siguiente etapa
realizada fue combinar la aplicación tópica de la CPC y la fuente de
luz enfocada a la piel de voluntarios humanos sanos. Se preparó una
suspensión de CPC triturada finamente en alcohol isopropílico. El
método de aplicación usado fue agitar la solución y luego aplicar
una pequeña gota en la zona elegida como objetivo. A medida que el
alcohol se evaporaba, se quedaba un recubrimiento fino y uniforme de
la CPC en fase sólida sobre la superficie de la piel.
El aparato mostrado en la Fig. 1 se aplicaba
entonces a la zona, en la que la CPC se había depositado tópicamente
sobre la piel, colocando el área seleccionada de la piel del
individuo contra una placa de referencia. La placa de referencia
consiste en una ventana de vidrio fino, aproximadamente de 3 cm x 3
cm, con un orificio de 4 mm en el centro. El área cubierta por la
CPC se colocó de tal forma que estuviese dentro del orificio
central. A continuación, se usó un microscopio de vídeo confocal
(Fig. 1) para enfocar la superficie de la piel de forma precisa. La
colocación de la piel para lograr el enfoque más preciso sobre el
sistema de vídeo, también la colocaba de forma que el punto focal
del sistema láser fuese coincidente con la superficie de la piel.
El operador activaba luego los pulsos de luz láser, observando
simultáneamente los efectos en la zona elegida como objetivo sobre
el monitor de vídeo. La cantidad de penetración se estimaba
visualmente por el operador, calibrando la cantidad de desenfoque
del punto de láser en el microporo, a medida que se incrementaba la
profundidad del microporo, y esto se puede corregir dinámicamente
por el operador, esencialmente siguiendo la superficie destruida
hacia abajo en los tejidos, moviendo la posición de la fuente de
cámara/láser a lo largo del eje "z", en la piel. En el punto
en el que se había eliminado el estrato córneo hasta la epidermis,
la apariencia de la base del orificio cambiaba perceptiblemente,
haciéndose muy húmeda y reluciente. Al observar este cambio, el
operador desactivaba el láser. En muchos casos, dependiendo del
estado de hidratación del sujeto, así como otras condiciones
fisiológicas, se producía una salida notable de fluido intersticial,
como respuesta a la función de barrera del estrato córneo que se
estaba eliminando sobre esta pequeña área. El sistema de vídeo se
usaba para grabar este registro visual de la accesibilidad de fluido
intersticial en la zona de poración.
Ejemplo
6
Se siguió el procedimiento del Ejemplo 5,
excepto porque la CPC se aplicaba a una cinta adhesiva transparente,
que se adhería luego a una zona seleccionada sobre la piel de un
individuo. Estos resultados eran sustancialmente similares a los
del Ejemplo 5.
Ejemplo
7
Se realizaron experimentos de histología sobre
piel de cadáveres, según métodos bien conocidos en la técnica para
determinar los parámetros de umbral de destrucción para mezclas de
colorantes determinadas y la información del daño colateral. La
superficie superior de la muestra de piel se trató con una solución
de ftalocianina de cobre (CPC) en alcohol. Una vez que se evaporaba
el alcohol, se distribuía una capa tópica de CPC en fase sólida
sobre la superficie de la piel con un grosor medio de 10 a 20
\mum. La Fig. 8A muestra una sección transversal del grosor total
de la piel antes de la aplicación de láser, en la que se muestran la
capa de CPC 270, el estrato córneo 274, y las capas epidérmicas
subyacentes 278. La Fig. 8B muestra la muestra después de que se
aplicase un único pulso de luz de 810 nm a un círculo de 80 \mum
de diámetro con una densidad de energía de 4000 J/cm^{2}, durante
un período de pulso de 20 ms. Merece la pena destacar que existía
aún una cantidad significativa de CPC presente sobre la superficie
del estrato córneo incluso en el medio del cráter destruido 282.
También es necesario destacar que las mediciones de laboratorio
indican que sólo aproximadamente 10% de la energía lumínica
incidente en la CPC se absorbe realmente, siendo el 90% restante
reflejada o retrodispersada. Por tanto, el flujo de energía
efectiva que se suministraba a la capa de colorante, que podría
causar el calentamiento deseado, es sólo aproximadamente 400
J/cm^{2}. 8C representa la muestra después de que se aplicasen 5
pulsos de 810 nm de luz, siendo eliminada la barrera del estrato
córneo sin dañar el tejido subyacente. Estos resultados son una
buena representación del funcionamiento de la destrucción térmica
modulada ópticamente "ideal". La Fig. 8D representa la muestra
después de que se aplicasen 50 pulsos. El tejido dañado 286 estaba
presente en las capas epidérmicas, debido a la carbonización del
tejido no destruido y a la desnaturalización térmica del tejido
subyacente. Las Figs. 8A-8C muestran separaciones
entre el estrato córneo y las capas epidérmicas subyacentes, debido
a un artefacto de deshidratación, congelación y preparaciones para
formación de imágenes.
Ejemplo
8
Para examinar los detalles del mecanismo de
destrucción térmica, se construyó un modelo matemático de los
tejidos cutáneos, sobre el cual se podían ensayar varias
realizaciones diferentes del método de destrucción térmica. Este
modelo contabiliza la distribución de temperatura en un medio
estratificado semiinfinito con una entrada de flujo térmico
especificada localmente sobre la superficie y eliminación de calor
desde la superficie hasta alguna distancia, es decir, se aplica
convección entre los dos. La ecuación de difusión dependiente del
tiempo, de simetría axial, se resuelve en coordenadas cilíndricas,
usando el método implícito de dirección alternante (ADI). (Nota: la
constante de temperatura B.C. se aplica sobre el límite inferior
para servir como z->inf; y el flujo térmico radial cero se
aplica sobre el límite radial max. para servir como r->inf). Las
capas son paralelas a la superficie y se definen como: (1)
colorante; (c) estrato córneo; (3) epidermis subyacente; y (4)
dermis. La profundidad en el medio semiinfinito y las propiedades
térmicas, densidad (rho), calor específico (c) y conductividad (k),
se tienen que especificar para cada capa.
Primero, el coeficiente de transferencia
térmica, h, sobre la piel se calcula basado en la distribución de
temperatura "estable", "1-D", determinada
mediante la temperatura del aire ambiental, la temperatura de la
superficie cutánea y la temperatura de la dermis. Se asume que no
hay colorante presente y se proporciona "h" sobre la
superficie de la piel. El programa permite entonces usar esta
"h" sobre la superficie de la capa de colorante o introduce
otra "h" deseada para la superficie del colorante. A
continuación, se calcula la distribución de temperatura
"estable" a través de todas las capas (incluyendo la capa de
colorante), usando la "h" especificada en la superficie del
colorante. Esta distribución de temperatura es la condición inicial
para el problema de calentamiento dependiente del tiempo. Este
constituye la m inicial del "archivo-m". A
continuación, el programa resuelve la distribución de temperatura
dependiente del tiempo poniendo en marcha el tiempo, calculando y
mostrando el campo de temperatura en cada etapa.
Cada realización del método aquí descrito, para
el cual se han recogido datos empíricos, se ha modelado para al
menos un conjunto de parámetros operativos, mostrando cómo la
destrucción del estrato córneo se puede conseguir de una forma
precisa y controlable. El resultado de las simulaciones se presenta
gráficamente en dos formatos diferentes: (1) una vista transversal
de la piel que muestra las diferentes capas de tejido con tres
isotermas representadas en la parte superior de esta vista, que
definen tres umbrales de temperatura críticos, y (2) dos gráficos
diferentes de temperatura frente a tiempo, uno para el punto en el
medio del estrato córneo, directamente debajo de la zona elegida
como objetivo, y el segundo para el punto en las proximidades de las
capas de células viables de la epidermis y la parte inferior del
estrato córneo. Estos gráficos muestran cómo la temperatura en cada
punto varía con el tiempo a medida que se aplican los pulsos de
calor, como si uno pudiese implantar un termopar microscópico en
los tejidos. Además, la aplicación de este modelo permite la
investigación de los límites paramétricos dentro de los cuales se
puede emplear el método, para fijar los límites externos para dos
aspectos importantes de funcionamiento del método. Primero, los
casos generales son casos presentados que definen la envolvente
dentro de la que se puede emplear el método sin producir dolor o
daño tisular no deseado.
Para cualquier fuente de calor dada, según se
describe en las diversas realizaciones diferentes de la invención,
hay un punto en el que el efecto sobre los tejidos cutáneos del
sujeto se torna no óptimo, porque el sujeto percibe una sensación
de dolor, o porque las células viables en la epidermis y/o dermis
subyacentes soportan temperaturas que, si se mantienen durante una
duración suficientemente prolongada, producirán daños a estos
tejidos. Consecuentemente, se realizó una simulación de ensayo
usando la realización de colorante de ftalocianina de cobre (CPC)
tópico calentado ópticamente como método de línea de base, para
establecer cómo las constantes temporales térmicas de las
diferentes capas de tejido cutáneo definen esencialmente un
intervalo temporal en el que el método se puede emplear sin dolor o
daño a las capas de tejido adyacentes.
Las Figs. 9 y 10 muestran vistas transversales
esquemáticas de la piel y la capa de colorante tópico. En cada
figura, se representan tres isotermas distintas: (1) 123ºC, el punto
en el que la vaporización del agua contenida en el tejido produce
la destrucción del tejido; (2) 70ºC, el punto en el que las células
viables se dañarán si esta temperatura se mantiene durante varios
segundos; y (3) 45ºC, el punto promedio en el cual se percibirá una
sensación de dolor por el sujeto. Este umbral del dolor se describe
en varios textos de fisiología básicos, pero la experiencia
demuestra que este umbral es, en cierto modo, subjetivo. De hecho,
en análisis repetidos sobre el mismo individuo, diferentes zonas de
poración contenidos en de unos pocos milímetros entre sí, pueden
mostrar cantidades de sensación significativamente distintas,
posiblemente debido a la proximidad de una terminación nerviosa en
relación con la zona de poración.
Las dimensiones en los gráficos muestran las
diferentes capas del colorante y la piel, según se miden en m,
definidas por límites planos. Aunque que los tejidos cutáneos reales
tienen límites mucho más replegados, en un sentido promedio para
las dimensiones implicadas, el modelo proporciona una buena
aproximación de los gradientes térmicos presentes en los tejidos
reales. Las dimensiones usadas en esta, y todas las simulaciones
posteriores, para los grosores de la capa de colorante CPC y las
diversas capas cutáneas son como sigue: colorante, 10 m; estrato
córneo, 30 m; epidermis subyacente, 70 m; y dermis, 100 m.
Las condiciones adicionales impuestas sobre el
modelo para esta simulación particular, se muestran en las
siguientes tablas:
\vskip1.000000\baselineskip
Cuando se realizan estas simulaciones, se
imponen las siguientes asunciones conservativas:
1. Aunque cierta parte del estrato córneo se
pueda mostrar que tiene una temperatura que ya excede del umbral de
destrucción para vaporización térmica del contenido de agua, este
suceso no se modela, y la pérdida posterior de energía térmica en
los tejidos debida a esta vaporización no se factoriza en la
simulación. Esto producirá una ligera elevación en las temperaturas
mostradas en los tejidos subyacentes desde este punto en adelante,
en la realización de la simulación.
2. De forma similar, cuando alguna parte de la
capa de colorante de ftalocianina de cobre (CPC) se muestra que ha
alcanzado su punto de vaporización de 550ºC, este suceso no se
modela, sino que la temperatura se limita todo lo posible a este
nivel. Esto producirá también una ligera elevación de las
temperaturas posteriores en las capas subyacentes, a medida que la
simulación progresa.
Incluso con estas simplificaciones usadas en el
modelo, la correlación entre el funcionamiento predicho y el
funcionamiento observado empíricamente, basado tanto en estudios
clínicos como en estudios histológicos sobre las muestras de tejido
donador, es notable. Los datos claves a destacar en las Figs. 9 y
10, son el espacio de tiempo en el que se aplica el pulso térmico,
y la localización de las tres temperaturas de umbral diferentes
mostradas por las isotermas.
En la Fig. 9, con una longitud de pulso de 21
milisegundos, la isoterma de 70ºC justo cruza el límite que separa
el estrato córneo y la capa de células viables en la epidermis. Los
estudios in vitro sobre muestras de piel de donador bajo
estas condiciones, cincuenta pulsos de energía térmica suministrados
con una separación de 50 milisegundos entre sí, producen un daño
detectable a esta capa superior de células vivas (véase Fig. 8D).
Sin embargo, también se mostró en estudios in vitro, que
cinco pulsos de energía térmica con estos mismos parámetros de
funcionamiento, no producían ningún daño significativo a estos
tejidos. Parece razonable que, aunque se haya podido exceder el
umbral de daño nominal, al menos en un sentido transitorio, esta
temperatura se tiene que mantener durante cierto período de tiempo
acumulativo para causar realmente cualquier daño a las células. No
obstante, la información básica presentada por la simulación es que,
si uno mantiene el "tiempo de calentamiento" del pulso térmico
a menos de 20 milisegundos con una densidad de flujo de 400
Julios/cm^{2}, entonces las células vivas en la epidermis
subyacente no soportarán ningún daño, aunque la isoterma del umbral
de destrucción se haya trasladado bien en o a través del estrato
córneo. En otras palabras, usando una fuente de energía térmica de
densidad de flujo reducida, modulada de forma que el "tiempo de
calentamiento" sea adecuadamente corto, la destrucción del
estrato córneo se puede conseguir sin ningún daño a las células
adyacentes en la epidermis subyacente (véase Fig. 8C). Esto es
posible, en gran parte, debido a las difusividades térmicas
significativamente diferentes de estas dos capas de tejido. Es
decir, el estrato córneo, que contiene sólo aproximadamente de 10%
a 20% de contenido de agua, tiene una constante de conductividad
térmica mucho menor, 0,00123 J/(S*cm*K), que la de la epidermis, de
0,00421J/S*cm*K). Esto permite que la temperatura aumente en el
estrato córneo, manteniendo simultáneamente una definición espacial
restringida, hasta el punto en el que se producirá la
destrucción.
En la Fig. 10, el mismo escenario de simulación
iniciado en la prueba de punto crítico de umbral de daño ilustrado
en la Fig. 9, se realiza más adelante en el tiempo. Manteniendo el
pulso térmico durante 58 milisegundos a la misma intensidad de
flujo de 400 Julios/cm^{2} dentro del círculo de 60 \mum de
diámetro de colorante que se está calentando, la isoterma sensorial
del dolor a 45ºC, justo entra en la capa de piel inervada que
comprende la dermis. Además, la isoterma de umbral de daño se mueve
significativamente más adelante en la capa epidérmica que donde se
mostraba que se encontraba en la Fig. 9. Relacionando esta
simulación con los numerosos estudios clínicos llevados a cabo con
este método, se obtiene una verificación excelente de la precisión
del modelo, porque el modelo muestra casi exactamente la duración de
"tiempo de calentamiento" en el que la sonda térmica se puede
aplicar a la piel antes de que el individuo la perciba. En pruebas
clínicas, se usó un generador de pulsos controlable para fijar el
"tiempo de calentamiento" y el "tiempo de enfriamiento" de
una serie de pulsos lumínicos aplicados a la capa tópica de
colorante de ftalocianina de cobre (CPC) sobre la piel. Mientras
que se mantenía un "tiempo de enfriamiento" constante de 80
milisegundos, el "tiempo de calentamiento" se incrementaba
gradualmente hasta que el sujeto describía una sensación de
"dolor" ligera. Sin excepción, todos los sujetos implicados en
estos estudios describían el primer "dolor" en un "tiempo de
calentamiento" de entre 45 y 60 milisegundos, muy próximo al
predicho por el modelo. Además, la variabilidad entre zonas
mencionada previamente en cuanto a la sensación de "dolor" se
percibía en estos estudios clínicos. Consecuentemente, lo que se
describe como "dolor" es el punto en el que se percibe por
primera vez una sensación no ambigua. En una zona esto se puede
describir como dolor, mientras que en una zona adyacente el mismo
sujeto lo puede describir como meramente "perceptible".
Un elemento de esta investigación clínica es el
descubrimiento de que, incluso en la misma zona, un tren de pulsos
térmicos no uniforme puede jugar con la neuropercepción
psico-fisiológica del sujeto, produciendo una
reducción genuina en la sensación percibida. Por ejemplo, se puede
usar una serie de pulsos térmicos de menor longitud para saturar
las neuronas en el área, empobreciendo momentáneamente los
neurotransmisores disponibles en esta unión sináptica y, por tanto,
limitando la capacidad de enviar un mensaje de "dolor". Esto
permite entonces que un pulso más largo a continuación de estos
pulsos cortos sea menos perceptible que si éste se aplicase al
principio de la secuencia. Consecuentemente, se llevó a cabo una
serie de experimentos con algunos trenes de pulsos creados
arbitrariamente, y los resultados eran coherentes con esta
hipótesis. Una analogía para esta situación se podría encontrar en
la percepción cuando uno entra por primera vez en un baño muy
caliente que es dolorosa al principio, pero rápidamente se hace
tolerable a medida que uno se aclimata a la sensación de calor.
Ejemplo
9
Un objeto de esta invención es conseguir una
microporación indolora del estrato córneo, sin causar ningún daño
significativo a los tejidos viables adyacentes. Según se describe en
la simulación ilustrada en el Ejemplo 8 y en las Figs.
9-10, parece existir un límite para cualquier
densidad de flujo de energía térmica en el punto elegido como
objetivo de destrucción, en el cual la microporación se puede
conseguir de una manera indolora y no traumática. Tanto los
estudios in vivo como in vitro han mostrado que éste
es el caso, y esto ha permitido el desarrollo a través de métodos
empíricos, de algunos parámetros operativos que parecen funcionar
muy bien. El siguiente conjunto de simulaciones muestra cómo
funciona el método cuando se usan estos parámetros específicos.
En el primer caso, se aplica a la piel cubierta
por CPC un tren de diez pulsos, 10 milisegundos de "tiempo de
calentamiento" separados por 10 milisegundos de "tiempo de
enfriamiento". La Fig. 11 muestra la distribución final de
temperatura en los tejidos cutáneos, inmediatamente después de que
este tren de impulsos haya terminado. Según se puede observar, las
isotermas que representan los tres umbrales de temperatura críticos
muestran que se ha conseguido la destrucción del estrato córneo,
sin ninguna sensación presente en los nervios de la capa dérmica y
muy escaso cruce del umbral de daño hacia el interior o a través de
las células viables de la epidermis subyacente. Según se mencionó
previamente, parece que para producir realmente un daño celular
permanente, las células epidérmicas tienen que, no sólo calentarse
hasta un cierto punto, sino que tienen que mantenerse asimismo a
esta temperatura durante cierto período de tiempo, que se cree
generalmente que es aproximadamente cinco segundos. Las Figs. 12 y
13 muestran la temperatura del estrato córneo y la epidermis
viable, respectivamente, en función del tiempo, mostrando el
calentamiento durante el "tiempo de calentamiento" y el
enfriamiento durante el "tiempo de enfriamiento" para los diez
ciclos completos. En relación con esta simulación para los estudios
llevados a cabo in vivo, hay que destacar que en más de 90%
de los intentos de poración con los parámetros del sistema fijados
para optimizar la simulación, se consiguió una poración efectiva
del estrato córneo sin dolor para el sujeto, y en un examen
microscópico posterior de la zona de poración varios días más
tarde, no se evidenciaba ningún daño perceptible de los tejidos. Los
estudios in vitro realizados en muestras de piel de donador
de grosor total, eran también coherentes con la predicción de
comportamiento del modelo.
Ejemplo
10
Al llevar a cabo tanto los estudios empíricos
in vivo como estas simulaciones, parece que el
preenfriamiento de la piel ayuda a optimizar el proceso de
microporación para reducir la probabilidad de dolor o daño en los
tejidos adyacentes. En la práctica, esto se puede conseguir
fácilmente usando una simple placa fría colocada contra la piel
previamente al proceso de poración. Por ejemplo, aplicando una placa
de Peltier enfriada al círculo de 1 cm de diámetro que rodeaba la
zona de poración elegida como objetivo, con la placa mantenida a
aproximadamente 5ºC durante unos pocos segundos, se reduce
significativamente la temperatura de los tejidos. En las Figs.
3A-B se muestra una ilustración esquemática de un
dispositivo experimental usado para este propósito en el
laboratorio. Aplicando exactamente el mismo tren de pulsos de diez
pulsos usado en la prueba ilustrada en el Ejemplo 9, se puede
observar, comparando Fig. 11 con Fig. 14, Fig. 12 con Fig. 15 y Fig.
13 con Fig. 16, cuánta mejora se puede realizar en el control de la
penetración de temperatura en o a través de los tejidos cutáneos.
Nuevamente, la difusividad térmica y el calor específico
relativamente bajos del estrato córneo, en comparación con la
epidermis y la dermis, son ventajosos. Una vez enfriados, los
tejidos altamente hidratados de la epidermis y dermis requieren una
entrada de energía térmica mucho mayor para elevar sus temperaturas,
mientras que el estrato córneo, con su composición relativamente
seca, se puede calentar rápidamente hasta el umbral de
destrucción.
Ejemplo
11
Una vez que se ha entendido el mecanismo básico
de conducción térmica para suministro de la energía al interior o a
través de los tejidos cutáneos subyacente a la destrucción y
microporación indolora efectiva del estrato córneo, se pueden
concebir varios métodos específicos diferentes para conseguir las
modulaciones de temperatura rápidas requeridas del punto de
contacto, como las realizaciones de hilo caliente ilustradas en las
Figs. 4-7.
Una realización básica, según se describe aquí,
usa un elemento de calentamiento óhmico (Fig. 4), como el extremo
de un pequeño soldador sin cables, con un hilo dimensionado
adecuadamente, relativamente no reactivo, enrollado en torno al
mismo con una pequeña cantidad de hilo que se deja sobresalir hacia
afuera del cuerpo del calentador. Cuando se aplica electricidad con
una fuente de corriente constante, el calentador alcanzará cierta
temperatura y, en unos pocos segundos, alcanzará un estado de
equilibrio con las pérdidas de convección al aire circundante. De
forma similar, el hilo, que es una parte de este sistema térmico,
alcanzará un estado de equilibrio, de forma que el extremo más
externo del hilo se puede incrementar hasta casi cualquier
temperatura arbitraria, hasta aproximadamente 1000ºC, con estos
tipos de componentes. El extremo se puede dimensionar para
proporcionar exactamente la dimensión de microporo deseada.
En el laboratorio, se han utilizado hilos de
volframio con un diámetro de 80 \mum unidos al extremo
reemplazable de un soldador sin cables "WAHL" con
aproximadamente 2 mm de hilo sobresaliendo del extremo. Con un
termopar, la temperatura del extremo se ha medido en su estado
estable, y se ha detectado que, variando los parámetros de
corriente constante, se pueden conseguir fácilmente temperaturas de
estado estable superiores a 700ºC. Para conseguir la modulación
deseada, se acopló al extremo un actuador electromecánico de
respuesta rápida, de masa pequeña, de forma que la posición del
hilo se podía convertir linealmente más de 2 mm a una velocidad
máxima de 200 Hz. Luego, montando el aparato entero sobre un
escenario de precisión, este extremo vibratorio se podría poner en
contacto, de forma muy controlable, con la superficie de la piel, de
forma que estuviese en contacto sólo durante menos de 10
milisegundos cada vez, el "tiempo de calentamiento", mientras
que se podría conseguir un "tiempo de enfriamiento" de
períodos arbitrariamente largos, fijando el generador de pulsos
consecuentemente. Estos estudios in vivo mostraban que la
poración se podía conseguir realmente antes de que el sujeto en el
que se estaban formando los poros supiese incluso que el extremo del
hilo se estaba poniendo en contacto con la piel.
Para comparar el funcionamiento de esta
realización con la realización del colorante CPC tópico calentado
ópticamente, se realizaron las siguientes simulaciones, según el
procedimiento del Ejemplo 8. Esencialmente, sólo variando las
condiciones iniciales, la realización del hilo caliente se puede
realizar con el idéntico código de simulación. Debido a que el
contacto con el hilo se produce esencialmente de forma instantánea,
no existe ningún incremento de calor dependiente del tiempo en la
capa de colorante CPC y, cuando el hilo se elimina físicamente del
contacto con la piel, no existe ningún calor residual restante sobre
la superficie, como se produce con la capa de colorante CPC
calentado. Asimismo, como el propio hilo define el área elegida
como objetivo para destrucción/microporación, no debería haber
ninguna difusión lateral de energía térmica antes de su aplicación
al estrato córneo. Los funcionamientos comparativos de la
realización del "hilo caliente" se muestran en las Figs.
17-19.
\newpage
Ejemplo
12
En este ejemplo, se siguió el procedimiento del
Ejemplo 11, excepto porque la piel se preenfrió según el
procedimiento del Ejemplo 10. De forma similar, el preenfriamiento
de la zona elegida como objetivo produce resultados positivos
análogos a la realización del "hilo caliente". Los resultados
de la simulación preenfriada del enfoque del "hilo caliente"
se muestran en las Figs. 20-22.
Ejemplo
13
Según se analizó en la introducción de
antecedentes de esta descripción, la patente de Tankovich 803 parece
a primera vista que es similar a la invención aquí reivindicada. En
este ejemplo, el modelo de simulación se estableció con los
parámetros operativos especificados en la 803 de Tankovich, es
decir, una amplitud de pulso de 1 s y un nivel de potencia de
40.000.000 W/cm^{2}. Las Figs. 23 y 24 muestran que, bajo estas
condiciones, ninguna parte del estrato córneo alcanza el umbral
para la vaporización instantánea del agua, 123ºC, y, por tanto, no
se produce la destrucción/microporación del estrato córneo. En la
práctica, la aplicación de este tipo de pulso de potencia máxima
elevada y corta duración, a la capa de colorante tópica, vaporiza
meramente el colorante hacia el exterior de la superficie de la
piel, sin ningún efecto sobre la piel. Este ejemplo, por tanto,
demuestra que las condiciones especificadas por la 803 de Tankovich
no son operativas en la invención aquí reivindicada.
Ejemplo
14
En este ejemplo, el fluido intersticial obtenido
después de la poración de la piel según el procedimiento del
Ejemplo 6, se recogió y analizó para determinar su concentración de
glucosa. Los datos se obtuvieron en cuatro sujetos no diabéticos y
seis sujetos diabéticos de tipo I sometidos a una prueba de
sobrecarga de glucosa. Las edades de los sujetos variaban entre 27
y 43. La finalidad del estudio era examinar la utilidad del método
para recoger de forma indolora suficiente fluido intersticial (ISF)
de los sujetos para permitir que las muestras de ISF se analizasen
para el contenido de glucosa, y luego comparar estas concentraciones
con la concentración de glucosa presente en la sangre total del
sujeto.
A todos los sujetos se les realizaban las
pruebas de glucosa ISF y en sangre con el sistema "ELITE" de
Miles-Bayer. Los diez sujetos sufrían idénticos
protocolos de medición, realizándose los ajustes en relación con la
sobrecarga de glucosa e inyección de insulina para aquellos sujetos
con diabetes dependiente de insulina.
El diseño básico del estudio era reclutar un
número modesto de voluntarios, algunos con diabetes y algunos sin
diabetes, de los que se extraían una serie de parejas de muestras de
ISF y sangre total cada 3 a 5 minutos, a lo largo de las 3 a 4
horas de duración del período de estudio. Tanto las muestras de
sangre como de ISF se analizaron para glucosa, y se determinó la
relación estadística entre las concentraciones de glucosa sanguínea
y el fluido intersticial. Para examinar el retraso temporal
hipotético de las concentraciones de glucosa del ISF, comparadas
con las concentraciones de glucosa de la sangre total, se indujo a
los sujetos de estudio a mostrar un cambio dinámico y significativo
en sus concentraciones de glucosa. Esto se consiguió haciendo
ayunar a cada sujeto durante 12 horas antes de empezar la prueba y,
luego, dando al sujeto una sobrecarga de glucosa después de que se
hubiesen establecido sus concentraciones de glucosa de línea de
base, a través de una batería de tres concentraciones de glucosa
sanguínea y de ISF en ayunas. Una vez que se habían establecido las
concentraciones de línea de base, se proporcionó a los sujetos una
sobrecarga de glucosa en forma de un zumo dulce basado en las
siguientes directrices:
i. Para los sujetos testigo, la sobrecarga de
glucosa se calculó basada en 0,75 gramos de glucosa por 0,45 kg
(una libra) de peso corporal.
ii. Para los sujetos con diabetes dependiente de
insulina, la sobrecarga de glucosa era de 50 gramos de glucosa.
Además, inmediatamente después de tomar la sobrecarga de glucosa,
los sujetos diabéticos se inyectaban su dosis matutina normal de
insulina de acción rápida. En el caso en que el sujeto diabético
presente concentraciones de glucosa en ayunas superiores a 300
mg/dl, se les pidió que se inyectasen su insulina primero, y la
sobrecarga de glucosa se les proporcionó una vez que sus
concentraciones de glucosa sanguínea se habían reducido hasta menos
de
120 mg/dl.
120 mg/dl.
A cada sujeto reclutado se le proporcionó
inicialmente una descripción completa del estudio en el documento
de "consentimiento informado", que se requirió que entendiesen
y firmasen antes de inscribirse oficialmente en el programa. Tras
la aceptación, completaron un cuestionario de su historial médico.
El procedimiento clínico detallado llevado a cabo fue:
(a) Sujeto en ayunas desde las 9:00 p.m. la
noche antes de la visita del estudio, consumiendo sólo agua. No se
permitieron cafeína, cigarros, ni zumo de fruta durante este
período.
(b) El sujeto llega a las instalaciones de
prueba alrededor de las 9:00 a.m. del día siguiente.
(c) Se hizo sentarse al sujeto en una silla
reclinable proporcionada para que el sujeto se relajase durante el
procedimiento de estudio.
(d) Se tomaron muestras de sangre total e ISF a
intervalos entre tres y cinco minutos, comenzando tras la llegada
del sujeto y continuando durante las siguientes tres a cuatro horas.
La duración durante la que se recogieron los datos se basaba en
cuándo las concentraciones de glucosa sanguínea habían vuelto a su
intervalo normal y se habían estabilizado tras la sobrecarga de
glucosa. Las muestras de ISF se recogían usando poración óptica,
método de bombeo de ISF, descrito con más detalle más adelante. Cada
muestra de ISF era aproximadamente de 5 \mul de volumen, para
asegurar un buen relleno de la banda de prueba ELITE. Las muestras
de sangre se obtenían a través de una lanceta de punción digital
convencional. Tanto las muestras de ISF como sanguíneas se probaban
inmediatamente para glucosa con el sistema de glucómetro doméstico
ELITE de Miles-Bayer. Para mejorar la estimación de
las concentraciones de glucosa sanguíneas "verdaderas", se
realizaron dos pruebas ELITE separadas en cada muestra de pinchazo
de dedo.
(e) Para facilitar la recogida continua del ISF
de la misma zona a lo largo de la fase completa de recogida de
datos para un individuo dado, se creo una matriz de 5 por 5 de
veinticinco microporos, sobre el antebrazo superior del sujeto,
siendo cada microporo entre 50 y 80 \mum de ancho y estando
espaciados entre sí 300 \mum. Se sujetó al antebrazo del sujeto
un disco de teflón de 30 \mum de diámetro con un orificio de 6 mm
en el centro, con un adhesivo sensible a la presión, y se colocó de
forma que el orificio central de 6 mm se localizaba sobre la matriz
de microporos de 5 por 5. Esta unión permitía un método conveniente
mediante el que se podía conectar una pequeña tubería de succión,
aplicando un ligero vacío (25 a 30 cm de Hg) al área en la que se
formaban los poros, para inducir al ISF a que fluyese hacia fuera
del cuerpo a través de los microporos. En la parte superior del
disco de teflón se montó una cubierta transparente de vidrio claro,
permitiendo al operador observar directamente la piel en la que se
formaban los microporos por debajo de la misma. Cuando se formaba
un glóbulo de 5 \mul de ISF sobre la superficie de la piel, esto
se podía constatar fácilmente mediante control visual de la zona a
través de esta cubierta transparente. Este nivel de vacío creaba un
gradiente de presión nominal de aproximadamente 3515,5 kg/m^{2}.
Sin los microporos, no se podría extraer ningún ISF en absoluto del
cuerpo del sujeto usando sólo el ligero vacío.
(f) Una vez extraídos los tres primeros pares de
muestras, se le proporcionaba al sujeto una sobrecarga de glucosa
en forma de zumo de naranja muy endulzado. La cantidad de glucosa
proporcionada era de 0,75 gramos por 0,45 kg de peso corporal para
los sujetos no diabéticos y 50 gramos para los sujetos diabéticos.
Los sujetos diabéticos se administraban también un pinchazo de
insulina de acción rápida, (regular) con la dosificación calculada
apropiadamente, basada en esta concentración de glucosa de 50 gramos
concurrente con la ingestión de la sobrecarga de glucosa. Con el
retraso normal de 1,5 a 2,5 horas entre la recepción de una
inyección de insulina y el efecto máximo de la inyección, se
esperaba que los sujetos diabéticos presentasen un aumento
ascendente de sus concentraciones de glucosa sanguínea hasta 300
mg/dl, y luego un descenso rápido nuevamente hacia el intervalo
normal, a medida que la insulina produce su efecto. Se esperaba que
los sujetos no diabéticos presentasen los perfiles de prueba de
tolerancia a la glucosa estándar, mostrando típicamente un máximo en
las concentraciones de glucosa sanguínea entre 150 mg/dl y 220
mg/dl entre 45 minutos y 90 minutos después de administrar la
sobrecarga de glucosa, y luego un descenso rápido de nuevo hasta sus
concentraciones de línea de base normales durante la siguiente hora
más o menos.
(g) Después de la administración de la
sobrecarga de glucosa o de la sobrecarga de glucosa y la inyección
de insulina, se extraían simultáneamente de los sujetos las muestras
de ISF y sangre total de pinchazo de dedo a intervalos de cinco
minutos durante las siguientes tres a cuatro horas. El muestreo
terminó cuando las concentraciones de glucosa sanguíneas en tres
muestras sucesivas indicaban que la glucosa del sujeto se había
estabilizado.
Después del examen de los datos, se hacían
aparentes varias características. En particular, para cualquier
lote específico de tiras de prueba ELITE, existe una desviación
marcada en la salida mostrada en el glucómetro en mg/dl de glucosa,
comparada con la concentración indicada en la sangre. Se podría
esperar una lectura elevada, debido a la carencia de hematocrito en
el ISF y a las diferencias normales en las concentraciones de
electrolito entre el ISF y la sangre completa. Independientemente
de las razones subyacentes a esta desviación en la salida, se
determinó a través de comparación con una prueba de referencia, que
las concentraciones de glucosa del ISF están relacionadas
linealmente con los valores producidos por el sistema ELITE, con los
coeficientes de escala constantes para cualquier lote específico de
tiras ELITE. Consecuentemente, para la comparación de las
concentraciones de glucosa del ISF frente a las mediciones de sangre
completa, se aplicó una corrección lineal de primer orden a los
datos del ISF, como sigue: ISF_{glucosa} = 0,606 * ISF_{ELITE} +
19,5.
Esta reducción a escala de la salida del
glucómetro ELITE, cuando se usa para medir las concentraciones de
glucosa del ISF, permite examinar, a través del conjunto completo de
datos, los factores de error asociados con el uso del ISF para
estimar las concentraciones de glucosa sanguínea. Por supuesto,
incluso sin ninguna reducción a escala lineal en absoluto, las
correlaciones entre los valores de glucosa del ISF y las
concentraciones de glucosa sanguínea son las mismas que en la
versión reducida a escala.
Basándose en la mayoría del conjunto de
literatura publicada sobre el objeto de glucosa del ISF, así como
en datos preliminares, se esperaba originalmente observar un retraso
de 15 a 20 minutos entre las concentraciones de glucosa del ISF y
las presentadas en la sangre completa procedente de un pinchazo del
dedo. Esto no es lo que mostraron los datos cuando se analizaron.
Específicamente, cuando el conjunto de datos de cada individuo se
analiza para determinar la desviación temporal requerida para
conseguir la correlación máxima entre las concentraciones de
glucosa del ISF y las concentraciones de glucosa sanguínea, se
descubrió que el peor caso de retraso temporal para este conjunto
de sujetos era sólo de 13 minutos, y el tiempo promedio de retraso
era sólo de 6,2 minutos, con varios sujetos que mostraban un ajuste
temporal que era casi instantáneo (aproximadamente 1 minuto).
Basándose en la cantidad mínima de retraso
observada en este conjunto de datos, el gráfico mostrado en la Fig.
25 presenta las diez pruebas de sobrecarga de glucosa, concatenadas
una tras otra en una escala de tiempo extendida. Los datos se
presentan sin ninguna desviación temporal en absoluto, mostrando el
elevado nivel de ajuste entre las concentraciones de glucosa del
ISF y de la sangre, tratándose el conjunto completo de datos
clínicos exactamente de la misma manera. Si el conjunto completo de
datos se desvía en su totalidad para encontrar la mejor estimación
temporal, la correlación entre las concentraciones de glucosa del
ISF y de la sangre alcanza el máximo con un retraso de dos (2)
minutos a un valor r de r=0,97. Esta es sólo una mejora trivial de
la correlación no desviada r=0,964. Por tanto, para el resto del
análisis, los valores del ISF se tratan sin imponer sobre los
mismos una desviación temporal. Es decir, cada conjunto de
concentraciones de glucosa sanguínea y del ISF se trata como pares
de datos recogidos simultáneamente.
Una vez que las lecturas del ISF de ELITE no
desviadas se habían reducido a escala para reflejar la glucosa
proporcional presente en el ISF, era posible examinar el error
asociado con estos datos. El método más simple para ello es asumir
que el promedio de las dos lecturas de glucosa sanguínea de pinchazo
del dedo es, de hecho, el valor absolutamente correcto y, a
continuación, comparar meramente los valores del ISF reducidos a
escala con estos valores de glucosa sanguínea promedio. Estos datos
son como sigue: desviación estándar sangre-ISF,
13,4 mg/dl; coeficiente de varianza de ISF, 9,7%; desviación
estándar de los dos ELITES, 8,3 mg/dl; y coeficiente de varianza de
la sangre (Miles), 6%.
Como muestran estos datos, la medición basada en
la sangre ya contiene un factor de error. En efecto, los datos de
funcionamiento del fabricante indican que el sistema ELITE tiene un
coeficiente de varianza nominal (CV) de entre 5% y 7%, dependiendo
de las concentraciones de glucosa y de la cantidad de hematocrito en
la sangre.
Un vistazo adicional al factor diferencial entre
la glucosa del ISF y la glucosa sanguínea se muestra en forma de un
gráfico de dispersión en la Fig. 26. En esta figura, se muestran
también para referencia los límites superior e inferior del
intervalo de confianza del 90%. Es interesante destacar que, con
sólo dos excepciones, todos los datos en el intervalo de
concentraciones de glucosa sanguínea inferiores a 100 mg/dl se
incluyen entre estos topes de error del intervalo de confianza del
90%. Esto es importante, ya que las consecuencias de pasar por alto
una tendencia hacia la hipoglucemia serían muy significativas para
el usuario diabético. Es decir, sería mucho mejor predecir por
defecto las concentraciones de glucosa entre 40 y 120 mg/dl, que
predecirlas por exceso.
Esencialmente, si uno asume que el error de la
prueba básica cuando se usa el sistema ELITE sobre el ISF, es
comparable con el error de la prueba asociado con el uso de ELITE
sobre sangre completa, entonces la desviación de la glucosa del ISF
respecto a la glucosa sanguínea, se puede describir como:
ISF_{desviación}=[(ISF_{real})^{2}
-
(ISF_{real})^{2}]^{1/2}.
Aplicando esta ecuación a los valores mostrados
anteriormente, uno puede resolver el valor "verdadero" estimado
del factor de error del ISF:
ISF_{real}=[(ISF_{desviación})^{2}
-
(\text{sanguíneo})_{real})^{2}]^{1/2}.
O, resolviendo la ecuación,
ISF_{real}=[(13.4)^{2} -
(8.3)^{2}]^{1/2}=10.5\
mg/dl
En la Fig. 27 se muestra un histograma de la
desviación relativa de las concentraciones de glucosa del ISF
respecto a las sanguíneas.
La presente invención también incluye un método
para el suministro de fármacos, incluyendo fármacos actualmente
suministrados transmembranarmente, a través de microporos en el
estrato córneo u otra membrana biológica. En una realización
ilustrativa de la invención, el suministro se consigue colocando la
solución en un recipiente sobre la zona de poración. En otra
realización ilustrativa, se usa energía sónica con o sin gradiente
de presión, para incrementar más el suministro. La energía sónica
se puede aplicar según los parámetros transdérmicos tradicionales,
o utilizando efectos de flujo acústico, que se describirán
momentáneamente, para impulsar la solución de suministro a través
de la membrana biológica en la que se han formado poros.
Ejemplo
15
Este ejemplo muestra el uso de poración en el
estrato córneo para el suministro de lidocaína, un analgésico
tópico. La solución de lidocaína contenía también una formulación
potenciadora de la permeación química, diseñada para incrementar su
difusión pasiva a través del estrato córneo. En la Fig. 28 se
muestra un plano de un aparato de suministro ilustrativo 300, en el
que el aparato comprende una carcasa 304 que incluye un depósito 308
para albergar una solución que contiene el fármaco 312. La parte
superior de la carcasa comprende un transductor ultrasónico 316
para proporcionar energía sónica destinada a ayudar al transporte de
la solución que contiene el fármaco a través de los microporos 320,
hacia el interior del estrato córneo 324. Una salida 328 en el
transductor ultrasónico permite la aplicación de presión al mismo
para ayudar más al transporte de la solución que contiene el
fármaco a través de los microporos en el estrato córneo. El aparato
de suministro se aplica a un área seleccionada de la piel de un
individuo, de forma que se coloca sobre al menos uno, y
preferiblemente una pluralidad, de microporos. Una capa adhesiva
332, unida a una parte inferior de la carcasa, permite al aparato
adherirse a la piel, de forma que la solución que contiene fármaco
albergada en el depósito, está en comunicación líquida con los
microporos. El suministro del fármaco a través de los microporos
produce el transporte hacia el interior de la epidermis 336 y la
dermis 340 subyacentes.
Se analizaron cinco sujetos para la efectividad
del suministro del fármaco, usando poración junto con ultrasonidos.
El experimento usaba dos zonas sobre el antebrazo izquierdo de los
sujetos, separadas entre sí aproximadamente 7 cm, a igual distancia
entre el pulgar y el brazo. La zona cercana al pulgar se denominará
zona 1, y la zona más lejana al pulgar se denominará zona 2. La
zona 1 se usó como testigo en el que la solución de lidocaína y
potenciador se aplicaban usando un aparato de suministro idéntico
300, pero sin ninguna microporación del estrato córneo ni energía
sónica. En la zona 2 se formaron poros con 24 orificios separados
entre sí por 0,8 milímetros en una rejilla contenida en un círculo
de 1 cm de diámetro. Los microporos en la zona 2 se produjeron
según el procedimiento del Ejemplo 6. Se aplicaron lidocaína y
ultrasonidos de nivel bajo. Las aplicaciones de ultrasonidos se
realizaron con un sistema transductor ultrasónico Zevex fabricado
según necesidades, fijado en modo de ráfagas con entradas de 0,4
voltios entre máximo y máximo, produciéndose un recuento de 1000
ráfagas a 10 Hz con una frecuencia fundamental de 65,4 kHz, es
decir, una señal modulada de pulso con el transductor activado para
ráfagas de 15 milisegundos, y luego apagado para los siguientes 85
milisegundos. La salida medida del amplificador al transductor era
de 0,090 vatios RMS.
Tras la aplicación de la lidocaína, se
realizaron mediciones de sensación friccionando un hilo de calibre
30 a lo largo de la zona de prueba. Se ejecutaron experimentos en
ambas zonas, en la zona 1 durante intervalos de 10 a 12 minutos de
duración, y en la zona 2 durante dos intervalos de 5 minutos de
duración, aplicados serialmente a la misma zona. Ambas zonas se
valoraron para entumecimiento, usando una escala de 10 a 0, en la
que 10 indicaba ningún entumecimiento y 0 indicaba entumecimiento
completo, según se describía por los sujetos analizados. El
siguiente sumario de resultados es para los 5 sujetos.
La zona testigo, zona 1, presentaba de escaso a
ningún entumecimiento (escala de 7 a 10) entre 10 y 12 minutos.
Aproximadamente a los 20 minutos se observaba algún entumecimiento
(escala 3) en la zona 1, a medida que la solución permeaba
completamente el estrato córneo. La zona 1 se limpiaba una vez
completada la aplicación de lidocaína. La zona 2 presentaba un
entumecimiento prácticamente completo (escala de 0 a 1) en el
círculo de 1 cm que contenía las poraciones. En el exterior del
círculo de 1 cm de diámetro, el entumecimiento descendía casi
linealmente hasta 1 en un círculo de 2,5 cm de diámetro, sin ningún
entumecimiento fuera del círculo de 2,5 cm de diámetro. La
valoración de la zona 2 después de la segunda aplicación producía un
círculo ligeramente mayor totalmente entumecido de aproximadamente
1,2 cm de diámetro, descendiendo el entumecimiento linealmente
hasta 1 en un patrón oval irregular con un diámetro de 2 a 2,5 cm,
perpendicular al antebrazo, y un diámetro de 2 a 6 cm paralelo al
antebrazo. En el exterior del área no se percibía ningún
entumecimiento. En las Figs. 29A-C, se muestra una
representación gráfica de resultados ilustrativos obtenidos en un
sujeto típico. Las Figs. 29A y 29B muestran los resultados
obtenidos en la zona 2 (con poración) después de 5 y 10 minutos,
respectivamente. La Fig. 29C muestra los resultados obtenidos en la
zona 1 (testigo sin poración).
Se puede utilizar la física de los campos de
energía sónica creados por transductores sónicos en un método
mediante el cual se puede modular la frecuencia sónica, para mejorar
las velocidades de flujo conseguidas mediante otros métodos. Según
se muestra en la Fig. 1 de la patente de EE.UU Nº 5.445.611, la
distribución de energía de un transductor sónico, se puede dividir
en campos cercanos y lejanos. El campo cercano, caracterizado por
la longitud N, es la zona desde el primer mínimo de energía hasta el
último máximo de energía. La zona distal respecto al último máximo
es el campo lejano. El patrón del campo cercano (N) está dominado
por un gran número de valores máximos y nulos de presión local muy
próximos. La longitud de la zona del campo cercano, N, es una
función de la frecuencia, tamaño y forma de la cara del transductor,
y la velocidad del sonido en el medio a través del que viaja el
ultrasonido. Para un transductor individual, las variaciones de
intensidad en su intervalo de funcionamiento normal, no afectan a
la naturaleza de la distribución de la energía sónica más que de
forma lineal. Sin embargo, para un sistema con transductores
múltiples, todos modulados tanto en frecuencia como en amplitud,
las intensidades relativas de los transductores separados afectan a
la distribución de energía en el medio sónico, independientemente
de que sea piel u otro medio.
Cambiando la frecuencia de la energía sónica en
una cantidad pequeña, por ejemplo en el intervalo de aproximadamente
1 a 20%, el patrón de valores máximos y nulos permanece
relativamente constante, pero la longitud N de la zona del campo
cercano cambia en proporción directa a la frecuencia. Cambios
mayores de la frecuencia, es decir un factor de 2 o más, producirán
lo más probablemente un conjunto diferente de resonancias o modos
vibracionales en el transductor, produciendo un patrón de energía
del campo cercano significativa e impredeciblemente diferente. Por
tanto, con un cambio pequeño en la frecuencia sónica, el patrón
complejo de valores máximos y nulos se comprime o expande de forma
similar a un acordeón. Seleccionando la dirección de la modulación
de frecuencia, se puede controlar la dirección de desviación de
estos valores máximos de presión local. Aplicando energía sónica a
la superficie de la piel, la modulación selectiva de la frecuencia
sónica controla el movimiento de estos valores máximos de presión
local a través de la piel, bien hacia el interior del cuerpo o hacia
la superficie del cuerpo. Una modulación de frecuencia de elevada a
baja conduce los valores máximos de presión hacia en interior del
cuerpo, mientras que una modulación de frecuencia de baja a elevada
impulsa los valores máximos de presión desde el interior del cuerpo
hacia la superficie y a través de la piel hasta el exterior del
cuerpo.
Asumiendo parámetros típicos para esta
aplicación de, por ejemplo, un transductor sónico de 1,27 cm de
diámetro, una frecuencia de funcionamiento nominal de 10 MHz, y una
impedancia acústica similar a la del agua, una modulación de
frecuencia de 1 MHz produce un movimiento de aproximadamente 2,5 mm
de los valores máximos y nulos del patrón de energía del campo
cercano en las proximidades del estrato córneo. Desde la perspectiva
de extracción transdérmica y/o transmucosa de analitos, este grado
de acción proporciona acceso al área muy por debajo del estrato
córneo, e incluso de la epidermis, dermis, y otros tejidos por
debajo de los mismos. Para cualquier transductor determinado, puede
existir un intervalo óptimo de frecuencias en el que esta modulación
de frecuencias tiene la máxima efectividad.
El flujo de un fármaco o analito a través de la
piel se puede incrementar también cambiando, bien la resistencia
(el coeficiente de difusión) o la fuerza directriz (el gradiente de
difusión). El flujo se puede incrementar mediante el uso de los
denominados potenciadores de penetración o químicos.
Los potenciadores químicos comprenden dos
categorías principales de componentes, es decir, compuestos
disgregadores de la envuelta y disolventes o sistemas binarios que
contienen tanto compuestos disgregadores de la envuelta celular,
como disolventes.
Los compuestos disgregadores de la envuelta
celular se conocen en la técnica por ser útiles en preparaciones
farmacéuticas tópicas y funcionan también en la extracción de
analitos a través de la piel. Se piensa que estos compuestos ayudan
a la penetración en la piel disgregando la estructura lipídica de
las envueltas celulares del estrato córneo. En la solicitud de
patente europea 43.738, publicada el 13 de junio de 1982, se
describe una lista completa de estos compuestos. Se cree que
cualquier compuesto disgregador de la envuelta celular es útil para
los propósitos de esta invención.
Disolventes adecuados incluyen agua; dioles,
como propilenglicol y glicerol; mono-alcoholes, como
etanol, propanol y alcoholes superiores; DMSO;
dimetil-formamida;
N,N-dimetil-acetamida;
2-pirrolidona;
N-(2-hidroxi-etil)pirrolidona,
N-metil-pirrolidona,
1-dodecil-aza-cicloheptan-2-ona
y otras
alquil-aza-cicloalquil-2-onas
(azonas) n-sustituidas y análogos.
La patente de EE.UU: 4.537.776, de Cooper,
concedida el 27 de agosto de 1985, contiene un excelente sumario de
la técnica previa e información de antecedentes que detalla el uso
de ciertos sistemas binarios para el incremento de permeante.
De forma similar, la solicitud de patente
europea 43.738, a la que se hizo referencia anteriormente, enseña a
usar dioles seleccionados como disolventes junto con una categoría
amplia de compuestos disgregadores de la envuelta celular, para el
suministro de compuestos lipófilos, farmacológicamente activos.
En la solicitud de patente inglesa GB 2.153.223
A, publicada el 21 de agosto de 1985, se describe un sistema
binario para incrementar la penetración de metoclopramida, que
consiste en un éster de alcohol monovalente de un ácido alifático
monocarboxílico C8-32 (insaturado y/o ramificado si
es C18-32) o un monoalcohol alifático
C6-24 (insaturado y/o ramificado si es
C14-24) y un compuesto N-cíclico
como 2-pirrolidona,
N-metil-pirrolidona y análogos.
En la patente de EE.UU. 4.973.468, se describen
combinaciones de potenciadores que consisten en éter monoetílico o
monometílico de dietilen-glicol con monolaurato y
metil-laurato de propilen-glicol,
que incrementan el suministro transdérmico de esteroides, como
progesteronas y estrógenos. En la patente de EE.UU. 4,820.720, se
muestra un potenciador dual que consiste en monolaurato de glicerol
y etanol, para el suministro transdérmico de fármacos. La patente
de EE.UU. 5.006.342, enumera numerosos potenciadores para la
administración transdérmica de fármacos, consistentes en ésteres de
ácidos grasos o éteres de alcoholes grasos de alcanodioles C_{2} a
C_{4}, en los que cada porción de ácido graso/alcohol del
éster/éter es de aproximadamente 8 a 22 átomos de carbono. La
patente de EE.UU. 4.863.970, muestra composiciones potenciadoras de
penetración para aplicación tópica, que comprenden un permeante
activo contenido en un vehículo potenciador de penetración, que
contiene cantidades específicas de uno o más compuestos
disgregadores de la envuelta celular, como ácido oleico, alcohol
oleílico, y ésteres de glicerol de ácido oleico; un alcanol C_{2}
o C_{3} y un diluyente inerte, como agua.
Otros potenciadores químicos, no asociados
necesariamente con sistemas binarios, incluyen DMSO o soluciones
acuosas de DMSO, como se enseña en la patente de EE.UU. 3.551.554 de
Herschler; patente de EE.UU. 3.711.602 de Herschler y patente de
EE.UU. 3.711.606 de Herscher, y las azonas
(alquil-aza-cicloalquil-2-onas
n-sustituidas), como se destacó en la patente de
EE.UU. 4.557.943 de Cooper.
Algunos sistemas potenciadores químicos pueden
poseer efectos secundarios negativos, como toxicidad e irritación
cutánea. La patente de EE.UU. 4.855.298. describe composiciones para
reducir la irritación cutánea producida por composiciones que
contienen un potenciador químico que tienen propiedades de
irritación cutánea, con una cantidad suficiente de glicerina para
proporcionar un efecto antiirritativo.
Debido a que la combinación de la microporación
del estrato córneo y la aplicación de energía sónica, acompañada
por el uso de potenciadores químicos, puede producir una velocidad
incrementada de extracción de analitos o suministro de permeante a
través del estrato córneo, el vehículo de transporte específico y
particularmente el potenciador químico utilizado, se pueden
seleccionar de una larga lista de vehículos de la técnica previa,
algunos de los cuales se mencionaron anteriormente. No se piensa que
sea necesario detallar o enumerar específicamente lo que está
disponible fácilmente en la técnica. La invención no se dirige al
uso de potenciadores químicos en sí, y se cree que todos los
potenciadores químicos, útiles en el suministro de fármacos a través
de la piel, funcionarán con colorantes en la microporación óptica,
y también con energía sónica para efectuar una extracción
mensurable de analitos desde debajo y a través de la superficie de
la piel, o el suministro de fármacos a través de la superficie de
la piel.
Ejemplo
16
Se analizaron la energía sónica modulada y los
potenciadores químicos para su capacidad de controlar el flujo
transdérmico sobre muestras de piel de cadáveres humanos. En estas
pruebas, la membrana epidérmica se había separado de la piel
completa del cadáver mediante el método de separación térmica del
Ejemplo 1. La membrana epidérmica se cortó y colocó entre las dos
mitades de la célula de permeación, con el estrato córneo enfrentado
al compartimiento superior (donador) o al compartimiento inferior
(receptor). Se usaron células de Franz modificadas para contener la
epidermis, según se muestra en la Fig. 2 de la patente de EE.UU. Nº
5.445.611. Cada célula de Franz consiste en una cámara superior y
una cámara inferior que se mantienen juntas mediante una o más
mordazas. La cámara inferior tiene una entrada de muestreo a través
de la que se añaden o eliminan los materiales. Cuando las cámaras
superior e inferior se fijan entre sí, una muestra de estrato córneo
se mantiene entre las mismas. La cámara superior de cada célula de
Franz se modifica para permitir la colocación de un transductor de
ultrasonidos en 1 cm de la membrana del estrato córneo. Se usó una
solución de azul de metileno como molécula indicadora para valorar
la permeación del estrato córneo. Se obtuvo un registro visual de
cada experimento en una banda magnética con el tiempo grabado, con
una cámara de vídeo y una grabadora de vídeocasete (no mostradas).
Adicionalmente, se extrajeron muestras para medición con un
espectrómetro de absorción, para cuantificar la cantidad de
colorante que había atravesado la membrana del estrato córneo
durante un experimento. Los potenciadores químicos adecuados para
el uso podrían variar entre un amplio intervalo de disolventes y/o
compuestos disgregadores de la envuelta celular, según se indicó
anteriormente. El potenciador específico utilizado fue:
etanol/glicerol/agua/monooleato de
glicerol/metil-laurato, en proporciones de volumen
50/30/15/2,5/2,5. El sistema para producir y controlar la energía
sónica incluía un generador de formas de onda aleatorias (Standford
Research Systems modelo DS345), un amplificador de 0,30 MHz y 20
vatios, y dos transductores de inmersión de ultrasonidos no
enfocados que tenían resonancias máximas a 15 y 25 MHz,
respectivamente. Se prepararon seis células simultáneamente para
probar las muestras de estrato córneo del mismo donador. Una vez
instaladas las muestras de estrato córneo, se dejaron hidratar con
agua destilada durante al menos 6 horas, antes de realizar cualquier
prueba.
Ejemplo
17
Según se indicó anteriormente en el Ejemplo 16,
la epidermis separada por calor se colocó en las células de Franz
con la cara epidérmica hacia arriba, y la cara del estrato córneo
hacia abajo, a menos que se indique otra cosa. Las cámaras
inferiores se rellenaron con agua destilada, mientras que las
cámaras superiores se rellenaron con solución concentrada de azul
de metileno en agua destilada.
Epidermis separada por calor:
Inmediatamente después de rellenar las cámaras superiores con
solución de azul de metileno, se aplicó energía sónica a una de las
células con el transductor sumergido totalmente. Esta orientación
correspondería, por ejemplo, a tener el transductor en la cara
opuesta de un pliegue de piel, o hacer que la energía sónica se
reflejase hacia el exterior de una placa reflectora colocada de
forma similar y usada para "impulsar" el analito fuera de la
otra cara del pliegue hacia el interior de un dispositivo de
recogida. Las características de regulación de energía sónica se
fijaron inicialmente a la frecuencia de funcionamiento nominal de
25 MHz, con una intensidad equivalente a una forma de onda de
entrada de 20 voltios entre máximo y máximo (P-P).
Esto corresponde aproximadamente a 1 vatio de potencia de entrada
promedio al transductor y, de forma similar, asumiendo el valor
nominal del fabricante para una eficiencia de conversión de 1% para
este transductor particular, una potencia de salida sónica de
alrededor de 0,01 vatios sobre la superficie de 0,78 cm^{2} del
área activa, o una intensidad sónica de 0,13 vatios/cm^{2}. A
otras tres células testigo distintas no se les aplicaba energía
sónica. Después de 5 minutos se desconectaba la energía sónica. No
se observaba ninguna indicación visual de flujo de colorante a
través del estrato córneo durante este intervalo en ninguna de las
células, indicando niveles inferiores a aproximadamente 0,0015%
(v/v) de solución de colorante, en 2 ml de medio receptor.
El análisis de estas mismas 3 células testigo y
1 célula experimental continuó como sigue. La intensidad de energía
sónica se incrementó hasta la salida máxima posible disponible del
equipo director de una entrada de 70 voltios entre pico y pico,
entrada de potencia promedio de 12 vatios o (0,13 vatios/cm^{2} de
intensidad de salida sónica). Asimismo, la frecuencia se fijó para
modular o barrer de 30 MHz a 10 MHz. Este barrido de 20 MHz se
realizó diez veces por segundo, es decir, una velocidad de barrido
de 10 Hz. A estos niveles de potencia de entrada, era necesario
controlar el transductor de energía sónica para evitar el
sobrecalentamiento. Se aplicó un termopar de contacto al cuerpo del
transductor, y la potencia se sometió a ciclos de encendido y
apagado para mantener la temperatura máxima del transductor por
debajo de 42ºC. después de aproximadamente 30 minutos de
funcionamiento cíclico a una potencia máxima, a un ciclo de
funcionamiento de aproximadamente 50%, 1 minuto encendido y 1
minuto apagado, no había aun ninguna permeación detectable del
estrato córneo por el colorante azul de metileno.
A continuación, se fijó al transductor de
energía sónica un revestimiento de agua refrigerante para permitir
una activación extendida al nivel de energía máximo. Usando los
mismos 3 testigos y 1 célula experimental, se aplicó energía sónica
a una potencia máxima durante 12 horas a la célula experimental.
Durante este tiempo, la temperatura del fluido en la cámara
superior aumentó sólo hasta 35ºC, sólo ligeramente por encima de los
aproximadamente 31ºC de temperatura normal del estrato córneo in
vivo. No se observó ninguna evidencia visual aparente de flujo
de colorante a través del estrato córneo en ninguna de las cuatro
células, tras 12 horas de energía sónica aplicada según se
describió anteriormente.
Ejemplo
18
Estrato córneo perforado: Se prepararon
seis células, según se describió anteriormente en el Ejemplo 16. Las
mordazas que sujetaban las cámaras superior e inferior de las
células de Franz se apretaron más de la medida requerida para
sellar normalmente el compartimiento superior del compartimiento
inferior, y hasta el punto de introducir artificialmente
perforaciones y poros en las muestras epidérmicas separadas por
calor. Cuando la solución de colorante se añadió a la cámara
superior de cada célula, se produjeron inmediatamente indicaciones
de escape de colorante en las cámaras inferiores, a través de las
perforaciones formadas en el estrato córneo. Tras la aplicación de
energía sónica a las células en las que se había perforado de esta
forma el estrato córneo con pequeños poros, se observó un rápido
incremento en el transporte de fluido a través de un poro en el
estrato córneo. La velocidad de transporte de las moléculas de
colorante indicador estaba directamente relacionada con la
aplicación o no de energía sónica. Es decir, la aplicación de
energía sónica causaba un pulso inmediato (tiempo de retraso
aproximadamente <0,1 segundos) de las moléculas indicadoras a
través de los poros en el estrato córneo. Este pulso de moléculas
indicadoras cesaba inmediatamente después de desconectar la energía
sónica (un retraso de apagado de aproximadamente < 0,1 segundos).
El pulso se podría repetir según se describió.
Ejemplo
19
Se usaron dos formulaciones de potenciadores
químicos diferentes. El potenciador químico uno o CE1 era una
mezcla de etanol/glicerol/agua/monooleato de glicerol/laurato de
metilo en las proporciones de volumen 50/30/15/2,5/2,5. Estos son
componentes generalmente considerados como seguros, es decir, GRAS,
por la FDA, para uso como excipientes farmacéuticos. El potenciador
químico dos o CE2 es una formulación experimental que se demuestra
que es muy efectiva para incrementar el suministro transdérmico de
fármacos, pero considerado generalmente muy irritante para
aplicaciones de suministro transdérmico a largo plazo. CE2 contenía
etanol/glicerol/agua/lauradona/laurato de metilo en las
proporciones de volumen 50/30/15/2,5/2,5. La lauradona es el éster
laurílico (dodecilo) del ácido
2-pirrolidona-5-carboxílico
("PCA") y se denomina también lauril-PCA.
Se prepararon seis células de Franz como
anteriormente (Ejemplo 16), salvo porque la epidermis separada por
calor se instaló con la capa epidérmica hacia abajo, es decir, la
cara del estrato córneo hacia arriba. La hidratación se estableció
exponiendo cada muestra a agua destilada durante la noche. Para
empezar el experimento, el agua destilada en las cámaras inferiores
se reemplazó con solución de colorante azul de metileno en las seis
células. Las cámaras superiores se rellenaron con agua destilada y
las células se observaron durante aproximadamente 30 minutos,
confirmando que no había ningún paso de colorante, para asegurar que
no había ninguna perforación de poro en ninguna de las células.
Cuando no se encontró ninguna, el agua destilada de las cámaras
superiores se extrajo de cuatro de las células. Las otras dos
células servían como testigos de agua destilada. Las cámaras
superiores de dos de las células experimentales se rellenaron a
continuación con CE1 y las otras dos células experimentales se
rellenaron con CE2.
La energía sónica se aplicó inmediatamente a una
de las dos células CE2. Se usó un transductor de 25 MHz con una
frecuencia que barría cada 0,1 segundos de 10 MHz a 30 MHz, a una
intensidad máxima de 0,13 vatios/cm^{2}. Después de aplicar
10-15 minutos de energía sónica a un ciclo de
funcionamiento de 50%, se detectó visualmente el flujo de
colorante. No se detectó flujo de colorante en las otras cinco
células.
A continuación se aplicó energía sónica a una de
las dos células que contenían CE1 con las mismas características de
regulación. El colorante comenzó a aparecer en la cámara superior en
5 minutos. Por tanto, la energía sónica junto con un potenciador
químico, incrementaba significativamente la velocidad de flujo
transdérmico de un colorante marcador a través del estrato córneo,
reduciendo asimismo el tiempo de retraso.
Ejemplo
20
Se prepararon formulaciones de los dos
potenciadores químicos, CE1 y CE2, menos la glicerina, y estas
nuevas formulaciones, denominadas CE1MG y CE2MG, se probaron como
anteriormente. La glicerina se sustituyó por agua, de forma que las
proporciones de los otros componentes permanecieron invariables. Se
prepararon tres células en células de Franz modificadas con la cara
epidérmica de las muestras de epidermis separada por calor hacia la
cara superior de las cámaras. Estas muestras se hidrataron luego en
agua destilada durante 8 horas. Después de la etapa de hidratación,
el agua destilada en las cámaras superiores se reemplazó, bien con
CE1MG o CE2MG, y la cámara superior se rellenó con la solución de
colorante. Se aplicó energía sónica a cada una de las tres
células
secuencialmente.
secuencialmente.
Tras la aplicación de energía sónica de
frecuencia modulada, pulsada, durante una duración total inferior a
10 minutos, se observó un incremento significativo en la
permeabilidad de las muestras de estrato córneo. La permeabilidad
del estrato córneo se alteró de manera relativamente uniforme a
través del área expuesta tanto al potenciador químico como a la
energía sónica. No se observaron perforaciones en forma de poros a
través de las que el colorante pudiese atravesar el estrato córneo.
La velocidad de flujo transdérmico se podía controlar
instantáneamente conectando o desconectando la energía sónica. La
desconexión de la energía sónica parecía reducir instantáneamente
la velocidad de flujo transdérmico, de forma que ningún colorante
se transportaba activamente de forma visible a través de la muestra
de piel; presumiblemente, la velocidad se reducía a la de la
difusión pasiva. La conexión de la energía sónica de nuevo reanudaba
instantáneamente la velocidad de flujo de nivel elevado. El modo
modulado parecía proporcionar un incremento pulsátil regular en la
velocidad de flujo transdérmico a la velocidad modulada. Cuando la
energía sónica se fijaba a una frecuencia constante, el incremento
máximo en la velocidad de flujo transdérmico para esta configuración
parecía producirse a aproximadamente 27 MHz.
Habiendo obtenido los mismos resultados con las
tres muestras, las células se drenaron a continuación de todos los
fluidos y se lavaron con agua destilada sobre ambas caras del
estrato córneo. Las cámaras inferiores se rellenaron a continuación
inmediatamente con agua destilada, y las cámaras superiores se
volvieron a rellenar con la solución de colorante. Las células se
observaron durante 30 minutos. No se observaban orificios en las
muestras de estrato córneo y no se detectaba una gran cantidad de
colorante en las cámaras inferiores. Una pequeña cantidad de
colorante se hizo visible en las cámaras inferiores, probablemente
debido al colorante y potenciador atrapados en las muestras de
piel, procedentes de sus exposiciones previas. Después de 12 horas
adicionales, la cantidad de colorante detectada era todavía muy
pequeña.
Ejemplo
21
Estrato córneo perforado: Se prepararon
tres células con muestras de epidermis separada por calor con la
cara epidérmica hacia la cara superior de la cámara, procedentes
del mismo donador que en el Ejemplo 16. Las muestras se hidrataron
durante 8 horas y luego se reemplazó el agua destilada en las
cámaras inferiores, bien con CE1MG o CE2MG. Las cámaras superiores
se rellenaron a continuación con la solución colorante. Las
perforaciones en forma de poro en las muestras del estrato córneo
permitieron al colorante filtrarse a través de las muestras de
estrato córneo, hacia el interior de las cámaras subyacentes que
contenían potenciador. Se aplicó energía sónica. Inmediatamente
después de la aplicación de la energía sónica, las moléculas de
colorante se impulsaban rápidamente a través de los poros. Según se
mostró anteriormente, el flujo rápido de colorante a través de los
poros se correlacionó directa e inmediatamente con la aplicación de
la energía sónica.
Ejemplo
22
Se probó un transductor de energía sónica de
bajo coste, TDK Nº NB-58S-01 (TDK
Corp.), en cuanto a su capacidad para incrementar las velocidades
de flujo transdérmico. La respuesta máxima de este transductor se
determinó que era aproximadamente 5,4 MHz, produciéndose otros
máximos locales a aproximadamente 7 MHz, 9 MHz, 12,4 MHz y 16
MHz.
Este transductor TDK se probó a continuación a
5,4 MHz en cuanto a su capacidad para incrementar la velocidad de
flujo transdérmico conjuntamente con CE1MG. Se prepararon tres
células con la cara epidérmica hacia la cámara inferior, después se
hidrataron las muestras de piel durante 8 horas. La solución
colorante se colocó en la cámara inferior. El transductor se colocó
en la cámara superior, sumergido en CE1MG. Usando frecuencias de
barrido de 5,3 a 5,6 MHz como activación de energía sónica, se
movieron cantidades significativas de colorante a través del
estrato córneo y se detectaron en el pocillo de recogida de la
célula en 5 minutos. Se produjo un calentamiento local, alcanzando
el transductor una temperatura de 48ºC. En un testigo que usaba
CE1MG sin energía sónica, una exposición de 24 horas producía menos
colorante en el pocillo de recogida, que una exposición de 5
minutos con energía
sónica.
sónica.
Este ejemplo demuestra que un transductor de
energía sónica de bajo coste a frecuencia baja, puede afectar
enormemente a la velocidad de flujo transdérmico, cuando se usa
conjuntamente con un potenciador químico apropiado. Aunque una
energía sónica de mayor frecuencia concentraría teóricamente más
energía en el estrato córneo, cuando se usa con un potenciador
químico la energía sónica modulada de frecuencia inferior puede
acelerar la velocidad de flujo transdérmico, haciendo la tecnología
útil y práctica.
Ejemplo
23
Demostración de la migración de moléculas a
través de la piel humana: Se repitieron las pruebas con el
transductor de TDK y CE1MG descritas anteriormente, a
aproximadamente 12,4 MHz, uno de los máximos resonantes locales más
elevados para el transductor, con un barrido de frecuencia a una
velocidad de 2 Hz desde 12,5 a 12,8 MHz y una densidad de energía
sónica inferior a 0,1 W/cm^{2}. La cara epidérmica de la epidermis
separada por calor estaba hacia abajo, la solución de colorante
estaba en la cámara inferior, y la solución potenciadora y la
energía sónica se colocaban en la cámara superior. En 5 minutos, una
cantidad significativa de colorante se había movido a través del
estrato córneo hacia el interior del pocillo de recogida. El
calentamiento óhmico en el transductor era significativamente
inferior que cuando el mismo transductor se hacía funcionar a 5,4
MHz, produciendo un incremento en la temperatura del potenciador
químico hasta sólo aproximadamente 33ºC.
Incluso a estos niveles de eficiencia bajos, los
resultados obtenidos con CE1MG y energía sónica procedente del
transductor de TDK eran notables en la dirección de determinación.
Las Figs. 3A y 3B de la patente de EE.UU. Nº 5.445.611 muestran
gráficos de datos obtenidos de tres células separadas con la
velocidad de flujo medida en la dirección de determinación. Incluso
en el punto temporal de 5 minutos, estaban presentes cantidades
fácilmente medibles del colorante en el potenciador químico sobre el
exterior del estrato córneo, indicando transporte desde la cara
epidérmica a través del estrato córneo hasta el área "exterior"
de la muestra de piel.
Para optimizar el uso de la energía sónica o del
enfoque energía sónica/potenciador químico, para recoger y
supervisar analitos del cuerpo, se requieren medios para analizar la
cantidad de analito de interés. Un sistema de ensayo que realiza
múltiples lecturas mientras que la unidad está en el proceso de
extraer analitos mediante energía sónica, con o sin potenciadores
químicos, hace innecesario estandarizar a través de una amplia
población de base y normalizar para diferentes características de
piel y velocidades de flujo. Representando gráficamente dos o más
puntos de datos en el tiempo a medida que la concentración de
analito en el sistema de recogida se va incrementando, se puede
aplicar un algoritmo que se adapte a la curva para determinar los
parámetros que describen la curva en relación con la extracción de
analito o la velocidad de flujo hasta el punto en el que se alcanza
el equilibrio, estableciendo así la medida de la concentración del
intervalo. La forma general de esta curva es invariable de un
individuo a otro; sólo cambian los parámetros. Una vez que se han
establecido estos parámetros, la resolución para la solución del
estado de equilibrio (es decir, el tiempo es igual a infinito) de
esta función, es decir, cuando se ha establecido el equilibrio
total, proporciona la concentración del analito en el cuerpo. Por
tanto, este enfoque permite realizar mediciones hasta el nivel
deseado de precisión en la misma cantidad de tiempo para todos los
miembros de una población, independientemente de las variaciones
individuales en la permeabilidad cutánea.
Existen actualmente varias técnicas de detección
que son adaptables para esta aplicación. Véase, D.A. Christensen,
en 1648 Procedings of Fiber Optic, Medical and Fluorescent Sensors
and Applications 223-26 (1992). Un método implica
el uso de un par de fibras ópticas que se colocan juntas entre sí,
de una manera aproximadamente paralela. Una de las fibras es una
fibra fuente, a través de la que se conduce la energía lumínica. La
otra fibra es una fibra de detección, conectada a un diodo
fotosensible. Cuando se conduce luz a través de la fibra fuente,
una parte de la energía lumínica, la onda evanescente, está presente
en la superficie de la fibra, y una parte de esta energía lumínica
se recoge por la fibra de detección. La fibra de detección conduce
la energía de la onda evanescente capturada al diodo fotosensible,
que la mide. Las fibras se tratan con un aglutinante, para atraer y
unir el analito que se va a medir. A medida que las moléculas de
analito se unen a la superficie (p.ej. el analito de glucosa se une
a las lectinas inmovilizadas, como concanavalina A, o a anticuerpos
anti-glucosa inmovilizados), la cantidad de
acoplamiento de onda evanescente entre las dos fibras cambia, y la
cantidad de energía capturada por la fibras de detección y medida
por el diodo también cambia. Varias mediciones de la energía de la
onda evanescente detectada a lo largo de períodos de tiempo cortos,
soportan una determinación rápida de los parámetros que describen
la curva de equilibrio, haciendo posible así el cálculo de la
concentración del analito en el cuerpo. Los resultados
experimentales, que muestran un flujo medible en 5 minutos (Figs 3A
y 3B de la patente de EE.UU. Nº 5.445.611) con este sistema,
sugieren que los datos suficientes para una lectura final precisa
se recogen en 5 minutos.
En su realización más básica, se puede utilizar
un dispositivo para la aplicación de energía sónica y recogida de
analito, que comprende una almohadilla absorbente, bien de material
natural o sintético, que sirve como depósito para el potenciador
químico, si se usa, y para recibir el analito procedente de la
superficie de la piel. La almohadilla o depósito se mantiene en su
sitio, bien pasivamente o ayudado por medios de retención
apropiados, como una tira de cierre o tira adhesiva, sobre el área
seleccionada de la superficie de la piel.
Se coloca un transductor de energía sónica de
forma que la almohadilla o depósito esté entre la superficie de la
piel y el transductor, y se mantenga en su sitio mediante medios
apropiados. Se acopla una fuente de potencia al transductor y se
activa mediante medios de interruptor o mediante otros medios
adecuados. El transductor se activa para suministrar energía sónica
modulada en frecuencia, fase o intensidad, según se desee, para
suministrar el potenciador químico, si se usa, desde el depósito a
través de la superficie de la piel, seguido de recogida del analito
desde la superficie de la piel al interior del depósito. Después del
período de tiempo deseado, fijo o variable, el transductor se
desactiva. La almohadilla o depósito, que ahora contiene el analito
de interés, se puede eliminar para cuantificar el analito, por
ejemplo, mediante un laboratorio que utiliza varios análisis
químicos convencionales, o mediante un dispositivo portátil.
Alternativamente, el mecanismo para cuantificar el analito se puede
construir en el interior del dispositivo usado para la recogida del
analito, bien como una parte integral del dispositivo o como un
anexo. Los dispositivos para controlar un analito se describen en
la patente de EE.UU. Nº 5.458.140.
Ejemplo
24
Un método alternativo para la detección de un
analito, como glucosa, tras la recogida de la muestra a través de
la superficie de la piel en la que se han formado poros, según se
describió anteriormente, se puede conseguir a través del uso de
medios enzimáticos. Existen varios métodos para la medición de
glucosa en una muestra biológica. Un método implica la oxidación de
glucosa en la muestra con glucosa-oxidasa, para
producir glucono-lactona y peróxido de hidrógeno.
En presencia de un cromógeno incoloro, el peróxido de hidrógeno se
convierte a continuación mediante peroxidasa, en agua y un producto
coloreado.
Glucosa
\xrightarrow{glucosa-oxidasa} gluconolactona +
H_{2}O_{2}
2H_{2}O_{2} +
cromógeno \longrightarrow H_{2}O + producto\
coloreado
La intensidad del producto coloreado será
proporcional a la cantidad de glucosa en el fluido. Este color se
puede determinar a través del uso de métodos convencionales de
absorbancia o reflectancia. Mediante calibrado con concentraciones
conocidas de glucosa, la cantidad de color se puede usar para
determinar la concentración de glucosa en el analito recogido.
Ensayando para determinar la relación, uno puede calcular la
concentración de glucosa en la sangre del sujeto. Esta información
se puede usar luego de la misma forma que la información obtenida
de una prueba de glucosa procedente de un pinchazo en el dedo. Los
resultados pueden estar disponibles en un tiempo de cinco a diez
minutos.
Ejemplo
25
Cualquier sistema que use una representación
visual o lectura de concentración de glucosa indicará a un
especialista o paciente la necesidad de administración de insulina
u otra medicación apropiada. En cuidados intensivos u otras
situaciones en las que se desea un control constante y se necesita
realizar acciones correctivas casi simultáneamente, el dispositivo
de visualización se puede conectar con medios de señalización
apropiados, que activan la administración de insulina u otra
medicación de forma apropiada. Por ejemplo, existen bombas de
insulina que se implantan en el peritoneo u otra cavidad corporal,
que se pueden activar como respuesta a estímulos externos o
internos. Alternativamente, utilizando las velocidades de flujo
transdérmico incrementadas, posibles con la microporación del
estrato córneo y otras técnicas descritas en esta invención, se
podría aplicar un sistema de suministro de insulina transdérmico,
con control de las velocidades de flujo moduladas mediante la señal
procedente del sistema detector de glucosa. De esta forma, puede
estar disponible un sistema de control biomédico completo, que no
sólo controla y/o diagnostica una necesidad médica, sino que
proporciona simultáneamente una acción correctiva.
Se podrían proporcionar sistemas de control
biomédico de un tipo similar en otras situaciones, como mantener
los equilibrios de electrolito correctos o administrar analgésicos
como respuesta a un parámetro de analito medido, como las
prostaglandinas.
Ejemplo
26
De forma similar al sonido audible, las ondas
sónicas pueden sufrir reflexión, refracción y absorción cuando
encuentran otro medio con propiedades diferentes [D. Bommannan et
al., 9 Pharm. Res. 559 (1992)]. Los reflectores o lentes
se pueden enfocar o controlar de otra manera la distribución de
energía sónica en un tejido de interés. Para muchas localizaciones
en el cuerpo humano, se puede encontrar un pliegue de carne que
pueda soportar este sistema. Por ejemplo, un lóbulo de la oreja es
una localización conveniente que permitiría el uso de un reflector
o lente para ayudar a ejercer un control direccional (p.ej.,
"impulso" de analitos o permeantes a través del estrato córneo
en el que se han formado poros), similar al que se realiza cambiando
la frecuencia e intensidad sónicas.
Ejemplo
27
Se pueden usar múltiples transductores de
energía sónica para dirigir selectivamente la dirección del flujo
transdérmico a través del estrato córneo en el que se han formado
poros, bien hacia el interior del cuerpo o desde el cuerpo. Un
pliegue de la piel, como un lóbulo de la oreja permite que los
transductores se localicen en sendas caras del pliegue. Los
transductores se pueden activar selectivamente o en fase, para
incrementar el flujo transdérmico en la dirección deseada. Se puede
construir un conjunto de transductores o un circuito acústico para
usar tipos de sistemas en fase, similares a aquellos desarrollados
para sistemas de comunicación por radar y microondas, para dirigir
y enfocar la energía sónica hacia el interior del área de
interés.
Ejemplo
28
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 19, con la excepción de que las muestras de epidermis
separada por calor se tratan primero con un láser excímer (p.ej.
modelo EMG/200 de Lambda Physik; 193 nm de longitud de onda, 14 ns
de amplitud de pulso) para destruir el estrato córneo, según el
procedimiento descrito en la patente de EE.UU. Nº 4.775.361.
Ejemplo
29
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 19, con la excepción de que las muestras de epidermis
separadas por calor se tratan primero con yoduro de
1,1'-dietil-4,4'-carbocianina
(Aldrich, _{max} = 703 nm) y luego se suministra un total de 70
mJ/cm^{2}/50 ms a la muestra tratada con colorante, con un modelo
de láser de diodo TOLD9150 (Toshiba America Electronic, 30 mW a 690
nm) para destruir el estrato córneo.
Ejemplo
30
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 29, con la excepción de que el colorante es verde de
indocianina (Sigma, Nº de catálogo I-2633; _{max}
= 775 nm) y el láser es un modelo Diolite 800-50
(LiCONiX, 50 mW a 780 nm).
Ejemplo
31
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 29, con la excepción de que el colorante es azul de
metileno y el láser es un modelo SDL-8630 (SDL Inc.;
500 mW a 670 nm).
Ejemplo
32
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 29, con la excepción de que el colorante está contenido en
una solución que comprende un potenciador de permeación, p.ej.
CE1.
Ejemplo
33
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 29, con la excepción de que se suministra al estrato córneo
el colorante y una solución que contiene un potenciador, con ayuda
de la exposición a ultrasonidos.
Ejemplo
34
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 31, con la excepción de que la fuente de luz pulsada es una
lámpara de arco corto que emite a lo largo del amplio intervalo de
400 a 1100 nm, pero tiene un filtro de paso de banda colocado en el
sistema para limitar la salida a la región de longitud de onda de
aproximadamente 650 a 700 nm.
Ejemplo
35
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 19, con la excepción de que las muestras de epidermis
separadas por calor se perforan primero con una microlanceta (Becton
Dickinson) calibrada, para producir un microporo en el estrato
córneo sin alcanzar al tejido subyacente.
Ejemplo
36
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 19, con la excepción de que las muestras de epidermis
separadas por calor se tratan primero con energía sónica enfocada en
el intervalo de 70-480 mJ/cm^{2}/50 ms, para
destruir el estrato córneo.
Ejemplo
37
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 19, con la excepción de que el estrato córneo se perfora
primero hidráulicamente con un chorro de fluido a alta presión, para
formar un microporo de hasta aproximadamente 100 \mum de
diámetro.
Ejemplo
38
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 19, con la excepción de que el estrato córneo se perfora
primero con pulsos cortos de electricidad para formar un microporo
de hasta aproximadamente 100 \mum de diámetro.
Ejemplo
39
Se describirá a continuación un nuevo mecanismo
y aplicación de energía sónica en el suministro de sustancias
terapéuticas al interior del cuerpo y/o la recogida de fluidos del
interior del cuerpo en un depósito externo, a través de
microporaciones formadas en la membrana biológica. Un aspecto
adicional de esta invención es la utilización de energía sónica
para crear un efecto de flujo acústico sobre los fluidos que fluyen
alrededor y entre las células intactas en los tejidos viables por
debajo de la capa externa de un organismo, como la epidermis y
dermis de la piel humana. El flujo acústico es un modo bien
documentado mediante el que la energía sónica puede interaccionar
con un medio fluido. Nyborg, Physical Acoustics Principles and
Methods, págs. 265-331, Vol
II-parte B, Academic Press, 1965. El primer análisis
teórico del fenómeno del flujo acústico lo proporcionó Rayleigh
(1884, 1945). En un tratamiento extensivo del problema,
Longuet-Higgins (1953-1960) ha
proporcionado un resultado aplicable al flujo bidimensional, que
produce la cuasi-adyacencia de cualquier superficie
cilíndrica vibratoria. Nyborg (1958) desarrolló una aproximación
tridimensional para una superficie arbitraria. Según se describió
por Fairbanks et al., 1975 Ultrasonics Symposium Proceedings,
IEEE, Nº de catálogo 75, CHO 994-4SU, la energía
sónica y los fenómenos de flujo acústico pueden ser de gran utilidad
para acelerar el flujo de un fluido a través de un medio poroso,
mostrando incrementos mensurables en las velocidades de flujo de
hasta 50 veces respecto a las velocidades posibles pasivamente o
aplicando sólo gradientes de presión.
Todos los esfuerzos previos de suministro
transdérmico o extracción utilizando ultrasonidos, se han enfocado
en métodos de interacción entre la energía sónica y los tejidos
cutáneos, diseñados para permeabilizar la capa del estrato córneo.
Se ha hipotetizado que el modo exacto de interacción implicado se
debe exclusivamente a la elevación local de la temperatura en la
capa SC y la fusión resultante de los dominios lipídicos en los
espacios intercelulares entre los corneocitos. Srinivasan et
al. Otros investigadores han sugerido que las microcavitaciones
y/o el cizallamiento de las estructuras en el estrato córneo, abren
canales a través de los que los fluidos pueden fluir más
fácilmente. En general, el diseño de los sistemas sónicos para el
incremento de las velocidades de flujo transdérmico, se ha basado en
el descubrimiento temprano de que la aplicación de una unidad de
ultrasonidos terapéuticos existente, diseñada para producir un
efecto de "calentamiento profundo" sobre el sujeto, cuando se
usa conjuntamente con una aplicación tópica de una preparación
gelificada o líquida que contiene el fármaco a suministrar al
interior del cuerpo, podría producir un incremento cuantificable en
la velocidad de flujo del fármaco hacia el interior del cuerpo. En
el contexto del método enseñado aquí para crear microporos en esta
membrana biológica, el uso de energía sónica se puede considerar
ahora en un sentido totalmente nuevo y diferente que los conceptos
de sonoforesis definidos clásicamente.
Basándose en el descubrimiento experimental
mencionado en las patentes de EE.UU. 5.458.140 y 5.445.611, de que
cuando existía o se creaba un pequeño orificio en el estrato córneo
(SC) en las células de Franz usadas en los estudios in
vitro, la aplicación de un transductor ultrasónico dirigido de
forma apropiada al depósito de fluido sobre cada cara de la muestra
SC en la que se habían formado poros podía generar un suceso de
"flujo acústico", en el que se podían bombear grandes
velocidades de flujo de fluido a través de esta membrana en la que
se habían formado poros.
Con el método enseñado aquí para crear
microporaciones controladas en la membrana biológica de un
organismo, la aplicación del modo de flujo fluido de interacción
fluido/energía sónica a la inducción de fluido hacia el interior o
hacia el exterior del organismo se puede explorar ahora de forma
práctica. Por ejemplo, estudios clínicos han demostrado que,
haciendo una serie de microporos de 80 \mum de diámetro en un
cuadrado de 400 \mum, y aplicando luego una succión suave
(25-30 cm de Hg) a este área, se puede inducir
aproximadamente a 1 \mul de fluido intersticial, en promedio, a
abandonar el cuerpo para la recogida en una cámara externa.
Añadiendo un transductor sónico pequeño, de baja potencia a este
sistema, configurado de forma que genere activamente ondas de
presión circulares concéntricas convergentes hacia el interior en
los 2 a 6 mm de tejido que rodea a la zona de poración, se ha
demostrado que esta velocidad de flujo ISF se puede incrementar en
un 50%.
Liberándonos del deseo de crear alguna forma de
absorción directa de energía sónica en los tejidos cutáneos (como
se requiere para producir calentamiento), se pueden determinar
frecuencias de energía sónica para las que los tejidos cutáneos son
virtualmente transparentes, es decir en la región de frecuencia muy
baja de 1 kHz a 500 kHz. Incluso a algunas de las frecuencias
inferiores ensayadas, se podían observar efectos de flujo acústico
significativos, usando un microscopio para observar una prueba in
vivo, en la que la piel del sujeto se sometía a microporación y
el ISF se inducía a salir del cuerpo y se recogía sobre la
superficie de la piel. La activación del transductor sónico
mostraba indicaciones visuales considerables de la cantidad de
flujo acústico, a medida que pequeños trozos de materia particulada
se transportaban junto con el ISF, cuando éste se arremolinaba
alrededor. La magnitud típica de movimiento presentado se puede
describir como sigue: para un depósito circular de ISF de 3mm de
diámetro sobre la superficie de la piel, se podía observar una
partícula visual individual que completaba aproximadamente 3 órbitas
completas por segundo. Esto se equipara a una velocidad de fluido
lineal de más de 2,5 mm/segundo. Toda esta acción se demostraba con
niveles de potencia sónica en los tejidos de menos de 100
mW/cm^{2}.
Aunque uno puede observar fácilmente la
superficie superior de la piel y la actividad fluida sobre la misma,
valorar lo que está sucediendo dinámicamente en el interior de las
capas del tejido cutáneo en respuesta al acoplamiento de energía
sónica al interior de estos tejidos, es mucho más difícil. Uno puede
asumir que, si tales velocidades de fluido grandes (p.ej. >2,5
mm/s) se pueden inducir tan fácilmente sobre la superficie,
entonces también se podría percibir algún incremento detectable en
el flujo de fluido en los canales intercelulares presentes en los
tejidos dérmicos viables, en respuesta a esta entrada de energía
sónica. Actualmente, se ha cuantificado un incremento en el ISF
recogido a través de un conjunto dado de microporaciones, cuando se
aplicaba una energía sónica de frecuencia baja al área en un círculo
que rodeaba las zonas de poración. En este experimento, se
alternaba una técnica de recogida de ISF basada solamente en una
succión suave (25 a 30 cm de Hg), con el uso de exactamente el
mismo aparato pero con el transductor sónico acoplado. Durante una
serie de 10 períodos de recogida de dos minutos, cinco con mera
succión y cinco con succión y energía sónica activa, se observaba
que, activando la fuente de energía sónica, se podía recoger
aproximadamente 50% más de ISF durante el mismo período de tiempo.
Estos datos se muestran en la Fig. 30. Este incremento en la
velocidad de flujo de ISF se detectó sin un incremento descrito en
la sensación procedente del sujeto ensayado, debido a la energía
sónica. El aparato usado para este experimento se ilustra en Figs.
31-33. El sistema transductor de las Figs.
31-33 comprende un cilindro de pared gruesa de
material piezoeléctrico, con un diámetro interno de aproximadamente
8 mm y un grosor de pared de 4 mm. El cilindro se ha polarizado de
forma que, cuando se aplica un campo eléctrico a través de las
superficies metalizadas del diámetro externo e interno, el grosor
de la pared del cilindro se expande o contrae como respuesta a la
polaridad del campo. En la práctica, esta configuración produce un
dispositivo que comprime rápidamente el tejido que se ha succionado
hacia el interior del orificio central, produciendo un efecto de
flujo acústico radial hacia el interior sobre aquellos fluidos
presentes en estos tejidos. Este flujo acústico hacia el interior es
responsable de llevar más ISF a la localización de las
microporaciones en el centro del orificio, donde puede abandonar el
cuerpo para la recogida externa.
Se construyó y probó un dispositivo similar
mostrado en Fig. 34A-B, y produjo resultados
iniciales similares. En la versión de la Fig.
34A-B, se modificó un transductor ultrasónico
construido por Zevex, Inc. Salt Lake City, Utah, añadiéndole una
extensión espatulada a la bocina sónica. En el extremo espatulado de
0,5 mm de grosor de esta extensión se colocó un orificio de 4 mm.
Cuando se activaba, el principio de movimiento era longitudinal a
lo largo de la longitud de la espátula, produciendo un movimiento
rápido de vaivén. La perturbación física de la espátula metálica,
producida por la colocación del orificio de 4 mm, producía un
comportamiento de desplazamiento grande muy activo, pero caótico,
en este punto. Durante el uso, la piel del sujeto se succionaba
hacia el interior de este orificio, y la energía sónica se conducía
al interior de la piel, de forma similar a la ilustrada en Fig.
33.
El aspecto nuevo de esta nueva aplicación de
ultrasonidos reside en las siguientes áreas básicas:
1. Ya no se necesita que la función de la
energía sónica este enfocada en la permeabilización de la membrana
de la barrera del estrato córneo, según se enseñó por Langer, Kost,
Bommannan y otros.
2. Se puede utilizar un sistema de frecuencia
mucho más baja, que tiene una absorción muy escasa en los tejidos
cutáneos, aunque puede crear aun el fenómeno de flujo fluido deseado
en los pasadizos intercelulares, entre las células epidérmicas que
contienen el fluido intersticial.
3. El modo de interacción con los tejidos y
fluidos en su interior es el denominado modo "flujo",
reconocido en la literatura sónica como un modo único y diferente
de las interacciones vibratorias clásicas, capaces de cizallar las
membranas celulares y acelerar el proceso de difusión pasiva.
Optimizando la configuración geométrica,
frecuencia, potencia y modulaciones aplicadas al transductor sónico,
se ha demostrado que se pueden conseguir incrementos significativos
en el flujo de fluido a través de las zonas de la piel en las que
se han formado poros. La optimización de estos parámetros se diseña
para explotar las no linealidades que gobiernan las relaciones de
flujo fluido en este medio a escala microscópica. Usando
frecuencias inferiores a 200 kHz, se pueden observar grandes efectos
fluídicos, sin ningún calentamiento detectable u otras
interacciones de tejido negativas. Los niveles de potencia sónica
requeridos para producir estos efectos mensurables son muy bajos,
con niveles de potencia promedio típicamente inferiores a 100
milivatios/cm^{2}.
Por tanto, los ejemplos anteriores son
representativos de sistemas que se pueden emplear en la utilización
de energía sónica, o de energía sónica y potenciadores químicos, en
la recogida y cuantificación de analitos para propósitos
diagnósticos y para el suministro transmembranar de permeantes. La
poración de la membrana biológica, seguida por el uso apropiado de
energía sónica, particularmente cuando está acompañado por el uso
de potenciadores químicos, permite la determinación transmembranar
no invasiva o mínimamente invasiva de analitos, o el suministro de
permeantes a través del estrato córneo. Hay numerosas técnicas de
poración y sistemas potenciadores, algunos de los cuales pueden
funcionar mejor que otros, para la detección y extracción de ciertos
analitos o el suministro de permeantes a través del estrato córneo.
Sin embargo, con las directrices presentadas aquí y un cierto grado
de experimentación para obtener una poración óptima, potenciadores,
o tiempo intensidad y frecuencia óptima de la energía sónica
aplicada, así como modulación de frecuencia, amplitud y fase de la
energía sónica aplicada, se pueden llevar a cabo fácilmente por los
expertos en la técnica. Por tanto, la invención está limitada en su
alcance sólo por las siguientes reivindicaciones y sus equivalentes
funcionales.
Se han realizado avances y mejoras de las
técnicas de microporación, especialmente adecuados para, pero no
limitados a, aplicaciones de suministro. Un avance es formar poros,
usando cualquiera de las técnicas de microporación mencionadas
anteriormente, hasta una profundidad deseada en el interior o a
través de las membranas biológicas, incluyendo la piel, la membrana
mucosa o la capa externa de una planta, particularmente para el
suministro de un fármaco o sustancia bioactiva al interior del
cuerpo. Otro avance es suministrar sustancias bioactivas al
interior del organismo, a través de microporos formados en la
membrana biológica. Otro avance adicional es aplicar medidas de
mejora de la permeación, antes, durante o después de la
microporación, de forma que se incremente la permeabilidad de las
capas en la piel o mucosa en las que se forman los microporos,
cuando se suministran sustancias como fármacos o sustancias
bioactivas, a su interior o a través de las mismas.
El microporo formado en la membrana biológica se
puede extender hasta una profundidad seleccionada. Un microporo que
se extiende hacia el interior de la epidermis puede penetrar sólo en
el estrato córneo o en profundidades seleccionadas en el interior
de la capa de células viables o en la capa subyacente de tejido
conectivo. De forma similar, si se forma en la membrana mucosa, el
microporo puede penetrar sólo en la parte superficial de la capa
epitelial o en profundidades seleccionadas en el revestimiento
epitelial o la lámina propia subyacente, y en el tejido situado
debajo. La profundidad del microporo en cada caso se puede
\hbox{extender a través de la profundidad completa de la membrana biológica.}
Como ejemplo de microporación hasta una
profundidad seleccionada, si uno utiliza una sonda térmica que pueda
continuar suministrando energía suficiente al interior o a través
de las capas de células viables totalmente hidratadas por debajo
del estrato córneo, el proceso de poración puede continuar hacia el
interior del cuerpo hasta profundidades seleccionadas, penetrando a
través de la epidermis, la dermis y hacia el interior o a través de
las capas subcutáneas situadas debajo, si se desea. El interés
cuando se diseña un sistema para crear un microporo que se extiende
alguna distancia hacia el interior o a través de los tejidos viables
en la epidermis o dermis, o el recubrimiento epitelial o la lámina
propia, es cómo minimizar el daño al tejido adyacente y la
sensación para el sujeto durante el proceso de poración.
Experimentalmente, hemos demostrado que si la
sonda térmica usada es un elemento sólido calentado eléctrica u
ópticamente, con el extremo de la sonda calentado, activo, definido
físicamente para que no tenga más de unos pocos cientos de micrones
de anchura y sobresalga unos pocos milímetros de la base de soporte,
un pulso único o múltiples pulsos de corriente pueden suministrar
bastante energía térmica al interior del tejido para permitir que
la destrucción penetre tan profunda como permita el diseño físico,
es decir, hasta que la base de soporte limite la extensión de la
penetración hacia el interior o a través del tejido. Si las
propiedades eléctricas y térmicas de dicha sonda térmica, cuando
está en contacto con los tejidos, permiten que el pulso de energía
module la temperatura de dicha sonda suficientemente rápido, este
tipo de poración del tejido profundo se puede conseguir
esencialmente sin ningún dolor para el sujeto. Los experimentos han
demostrado que, si se suministra la cantidad de energía térmica
requerida a la sonda, en menos de aproximadamente 20 milisegundos
(20-50 ms), el procedimiento es indoloro. A la
inversa, si el pulso de energía se tiene que extender durante más
de aproximadamente 20 milisegundos (20-50 ms), la
sensación para el sujeto aumenta rápida y no linealmente, a medida
que se extiende la amplitud del pulso.
De forma similar, se puede construir un diseño
de sonda calentada eléctricamente, que soporta este tipo de
poración a profundidad seleccionada, curvando un hilo de volframio
de 50 a 150 micrones de diámetro en una acodadura aguda, formando
una acodadura próxima a 180 grados, con un radio interno mínimo en
este punto. Esta pieza en forma de "V" en miniatura se puede
montar de forma que esta "V" se extiende separada a cierta
distancia de una pieza de soporte que tiene electrodos de cobre
depositados sobre la misma. La distancia a la que se extiende el
hilo hacia afuera del soporte definirá la distancia de penetración
máxima en el tejido cuando se calienta el hilo. Cada extremo de la
"V" de volframio se unirá a uno de los electrodos sobre el
vehículo de soporte, que se puede conectar, a su vez, al circuito
de corriente pulsante. Cuando la corriente se suministra al hilo de
una forma controlada apropiadamente, el hilo se calentará
rápidamente hasta la temperatura deseada, para efectuar el proceso
de destrucción térmica en un solo pulso o en múltiples pulsos de
corriente. Controlando la impedancia dinámica de la sonda y
conociendo el coeficiente de resistencia frente a la temperatura del
elemento de volframio, se puede establecer fácilmente un control de
circuito cerrado de la temperatura del punto de contacto. Asimismo,
controlando dinámicamente la impedancia a través del cuerpo desde el
punto de contacto de la sonda y desde un segundo electrodo separado
a alguna distancia, se puede determinar la profundidad del poro
basándose en las diferentes propiedades de impedancia del tejido, a
medida que uno penetra más profundamente en el cuerpo. Una vez que
se han determinado rutinariamente las propiedades de impedancia de
un tejido seleccionado de un organismo seleccionado, este parámetro
se puede usar para determinar la profundidad del poro y se puede
usar en un sistema de control para controlar la profundidad
del
poro.
poro.
Análogamente, se puede construir una realización
de un diseño de sonda calentada ópticamente que soporte este tipo
de poración de profundidad seleccionada, cogiendo una fibra óptica y
colocando sobre un extremo una punta formada por un capuchón o
recubrimiento sólido. Una fuente de luz, como un diodo láser, se
acoplará al interior del otro extremo de la fibra. La cara de la
punta enfrentada a la fibra tiene que tener un coeficiente de
absorción suficientemente elevado a lo largo del intervalo de
longitudes de onda emitidas por la fuente de luz, para que cuando
los fotones alcancen el extremo de la fibra y golpeen esta cara,
algunos de ellos se absorban y, consecuentemente, hagan que la
punta se caliente. El diseño específico de esta punta, fibra y
conjunto de la fuente pueden variar ampliamente, sin embargo las
fibras con diámetros transversales totales de 50 a 1000 micrones
son artículos convencionales hoy en día, y las fuentes que emiten
hasta miles de vatios de energía óptica son, de forma similar,
convencionales. La punta que forma la sonda térmica real se puede
fabricar de un material con elevado punto de fusión, como volframio
y unirse a la fibra mecanizándolo de forma que permita la inserción
de la fibra en el interior del diámetro interior cilíndrico en el
extremo de la fibra. Si el extremo distal de la punta se ha
fabricado para limitar la difusión térmica hacia el exterior de esta
punta y devolverla al cilindro de soporte que une la punta a la
fibra, en el marco de tiempo de las amplitudes de pulso óptico
empleadas, los fotones incidentes en esta punta elevarán la
temperatura rápidamente, tanto en la cara de la fibra como en la
cara de contacto que está colocada contra la superficie de los
tejidos. La colocación del sistema fibra/punta sobre la superficie
del tejido, se puede conseguir con un mecanismo simple, diseñado
para mantener la punta contra la superficie, bajo alguna tensión de
resorte, de forma que, a medida que el tejido situado debajo se
destruye, la propia punta avanzará hacia el interior del tejido.
Esto permite que el proceso de destrucción térmica continúe hacia el
interior o a través del tejido, en la medida en que uno lo desee.
Una característica adicional del diseño de esta sonda calentada
ópticamente es que, controlando la energía radiada del cuerpo negro
desde la punta calentada, que se recoge por la fibra, se puede
efectuar un control de circuito cerrado muy simple de la temperatura
de la punta. Asimismo, según se describió anteriormente,
controlando dinámicamente la impedancia a través del cuerpo desde el
punto de contacto de la sonda y desde un segundo electrodo separado
a alguna distancia, se puede estimar la profundidad del poro,
basándose en las diferentes propiedades de impedancia del tejido, a
medida que uno penetra más profundamente en el cuerpo. La relación
entre amplitud del pulso y sensación, para este diseño, es
esencialmente la misma que para la sonda calentada eléctricamente
descrita anteriormente.
Por ejemplo, se sabe que algunas aplicaciones de
vacunas son más efectivas si se suministran en la capa dérmica, de
forma que estén en las proximidades de las células de Langerhan's o
dendríticas, u otras células importantes para esta respuesta
inmunológica. Esto implicaría una profundidad de poración diseñada
para pasar a través de la epidermis, la cual, en la mayoría de los
casos, sería una profundidad de aproximadamente 180 micrones a 250
micrones.
Como otro ejemplo, cuando se suministran algunas
proteínas y péptidos, es deseable minimizar la respuesta
inmunológica al permeante en la zona de la administración y, al
mismo tiempo, eludir las zonas activas para proteasa en los tejidos
cutáneos. En este caso, se puede desear un poro incluso más
profundo, que llegue incluso a una profundidad de 300 micrones en
el interior de la piel.
Alternativamente, puede ser deseable dejar una
capa mínimamente gruesa de estrato córneo intacto, para minimizar
la absorción inicial rápida de un permeante, y para proporcionar
cierta retención de la función de barrera del estrato córneo, para
proporcionar una liberación controlada durante un período más largo
de tiempo.
El gran incremento de eficiencia se puede
conseguir combinando la poración en las capas de la membrana
biológica con otras técnicas de incremento de la permeación, que
pueden ahora optimizarse para funcionar sobre las diversas
barreras, para efectuar el suministro del compuesto deseado a los
espacios internos, según sea necesario para la bioefectividad. En
particular, si uno está suministrando un compuesto de ácido
nucleico, bien desnudo, fragmentado, encapsulado o acoplado a otra
sustancia, se desea a menudo introducir el ácido nucleico en las
células vivas sin matar la célula, para permitir la absorción
deseada y el funcionamiento posterior de la terapia. La aplicación
de electroporación, iontoforesis, campos magnéticos y energía
térmica y sónica, puede hacer que se formen orificios,
temporalmente, en las membranas celulares y otros tejidos internos.
Debido a que hemos mostrado cómo romper el estrato córneo o la capa
epitelial de la membrana mucosa o la capa externa de una planta y,
si se desea, la epidermis o la dermis o tejidos más profundos en el
interior de una planta, se pueden usar ahora la electroporación,
iontoforesis, campos magnéticos y energía térmica y sónica, con
parámetros que se pueden adaptar para actuar selectivamente sobre
estas barreras de tejido subyacentes y permeabilizar la membrana
celular, capilar, u otras membranas en el tejido elegido como
objetivo. La electroporación, iontoforesis, campos magnéticos, y
energía térmica y sónica, no eran aplicables previamente para este
uso.
En el caso de la electroporación, en la que se
usan rutinariamente pulsos que superiores a entre 50 y 150 voltios,
para formar poros por electroporación en el estrato córneo, la capa
externa de la membrana mucosa o la capa externa de una planta, en
el entorno que presentamos son suficientes pulsos de unos pocos
voltios o menos para formar poros por electroporación en la
membrana celular, capilar u otras membranas en el tejido elegido
como objetivo. Esto se debe principalmente a la reducción
espectacular en el número de capas aislantes presentes entre los
electrodos, una vez que se ha abierto la piel, la capa mucosa o la
capa externa de una planta.
De forma similar, se puede demostrar que la
iontoforesis es efectiva para modular el flujo de un medio fluido
que contiene el ácido nucleico a través de los microporos, con
cantidades muy pequeñas de corriente, debido a la reducción
espectacular de la impedancia física al flujo fluido a través de
estas capas con poros formados.
En el caso de la energía sónica, mientras que se
ha usado la energía sónica clásica para acelerar la permeación del
estrato córneo o la capa mucosa, eliminando esta barrera, se puede
usar ahora la energía sónica para permeabilizar la membrana
celular, capilar u otras membranas en el tejido elegido como
objetivo. Como en los casos de la electroporación y la
iontoforesis, hemos demostrado que los niveles de energía sónica
precisos para efectuar una mejora notable en el flujo
transmembranar de una sustancia, son mucho más reducidos que cuando
las capas de la piel o mucosa se dejan intactos. Otras medidas de
incremento de la permeación implican cambiar la presión osmótica o
la presión física en la zona en la que se han formado los
microporos, por ejemplo aplicando una presión neumática suave al
depósito de permeante, para forzar un flujo fluido particular hacia
el interior del organismo, a través de los microporos.
El modo de funcionamiento de todos estos métodos
activos, electroporación, iontoforesis, energía magnética, térmica
o sónica, cuando se aplican solos o en combinación, después de
efectuar la poración en la piel, la capa mucosa o la capa externa
de una planta, tiene la ventaja de ser susceptible de usar
parámetros usados típicamente en aplicaciones in vitro, en
las que membranas de células individuales se abren para el
suministro de una sustancia. Ejemplos de estos parámetros son bien
conocidos en la literatura. Por ejemplo, Sambrook et al.,
Molecular cloning: A laboratory manual, 2ª edición, Cold Spring
Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, New York, 1989.
Los microporos producidos en la membrana
biológica permiten suministrar transdérmica, transmucosa o
transmembranarmente índices de flujo elevados de compuestos
terapéuticos de pesos moleculares elevados (así como pequeños).
Además, estos orificios microscópicos, no traumáticos en el cuerpo
permiten el acceso de diversos analitos al interior del cuerpo, que
se pueden analizar para determinar sus concentraciones internas.
Otro avance adicional de la presente invención
implica el uso de poración en la membrana biológica para el
suministro de una sustancia bioactiva, p.ej., polipéptidos,
incluyendo proteínas y péptidos (p.ej., insulina); factores de
liberación, incluyendo LHRH; carbohidratos (p.ej., heparina); ácidos
nucleicos; vacunas; y sustancias farmacológicamente activas, como
antiinfecciosos, p.ej. antibióticos y antivíricos; analgésicos y
combinaciones de analgésicos; anoréxicos; antihelmínticos;
antiartríticos; antiasmáticos; anticonvulsivos; antidepresivos;
antidiabéticos; antidiarreicos; antihistaminas; antiinflamatorios;
preparaciones antimigraña; antinauseosos; antineoplásicos;
antiparkinsonianos; antipruríticos; antipsicóticos; antipiréticos;
antiespasmódicos; anticolinérgicos; simpatomiméticos; derivados de
xantina; preparaciones cardiovasculares, incluyendo bloqueantes de
canales de potasio y calcio, betabloqueantes, alfabloqueantes y
antiarrítmicos; antihipertensivos; diuréticos y antidiuréticos;
vasodilatadores, incluyendo los generales, coronarios, periféricos y
cerebrales; estimulantes del sistema nervioso central;
vasoconstrictores; preparaciones contra la tos y el catarro,
incluyendo descongestivos; hormonas, como estradiol, testosterona,
progesterona y otros esteroides, derivados y análogos, incluyendo
corticoesteroides; hipnóticos; inmunosupresores; relajantes
musculares; parasimpatolíticos; psicoestimulantes; sedantes; y
tranquilizantes. Mediante el método de la presente invención se
pueden suministran fármacos ionizados y no ionizados, así como
fármacos de peso molecular elevado, medio o bajo.
Se puede usar el suministro de DNA y/o RNA para
conseguir la expresión de un polipéptido, estimular una respuesta
inmunológica, o para inhibir la expresión de un polipéptido, a
través del uso de un ácido nucleico "antisentido",
especialmente un RNA antisentido. El término "polipéptido" se
usa aquí sin pretender ninguna limitación de tamaño, a menos que se
indique un tamaño particular, e incluye péptidos de cualquier
longitud, incluyendo proteínas. Entre los polipéptidos típicos que
se pueden expresar están aquellos seleccionados del grupo que
consiste en oxitocina, vasopresina, hormona adrenocorticotrópica,
factor de crecimiento epidérmico, prolactina, hormona liberadora de
la hormona luteinizante, hormona de crecimiento, factor liberador de
hormona de crecimiento, factores de crecimiento análogos a
insulina, insulina, eritropoyetina, proteínas de la obesidad, como
leptina, somatostatina, glucagón, factores insulinotrópicos
análogos a glucagón, hormona paratiroidea, interferon, gastrina,
interleuquina-2 y otras interleuquinas y
linfoquinas, tetragastrina, pentagastrina, urogastroína, secretina,
calcitonina, encefalinas, endorfinas, angiotensinas, renina,
bradiquinina, bacitracinas, polimixinas, colistinas, tirocidina,
gramicidinas y análogos sintéticos, sus modificaciones y fragmentos
farmacológicamente activos, anticuerpos monoclonales y vacunas.
Este grupo no se considera limitativo; la única limitación al
fármaco peptídico o proteico que se puede expresar es de
funcionalidad. El suministro de DNA y/o RNA es útil en terapia
génica, vacunación y cualquier situación terapéutica en la que se
deba administrar un ácido nucleico o un polipéptido in vivo.
P.ej., patente de EE.UU. Nº 5.580.859.
Un método para obtener la administración a largo
plazo de un polipéptido, puede comprender formar poros en la
membrana biológica y, a continuación, suministrar un DNA que
codifique un polipéptido a través de los poros en la membrana
biológica, con lo que el tejido absorbe el DNA y produce el
polipéptido durante al menos un mes, y más preferiblemente al menos
6 meses. Un método para obtener la expresión transitoria de un
polipéptido, puede comprender formar poros en la membrana biológica
y, a continuación, suministrar un RNA o DNA que codifique el
polipéptido a través de los poros de la membrana biológica, con lo
que las células del tejido (p.ej., la piel, la membrana mucosa, los
capilares o el tejido subyacente), absorben el RNA o DNA, y producen
el polipéptido durante menos de aproximadamente 20 días, usualmente
menos de aproximadamente 10 días y, a menudo, menos de
aproximadamente 3-5 días. Las células que absorben
el RNA o DNA podrían incluir las células de la membrana biológica,
el tejido subyacente u otro tejido elegido como objetivo, alcanzado
mediante los capilares.
El DNA y/o RNA pueden ser ácido nucleico
desnudo, opcionalmente en un vehículo o portador y/o pueden estar
contenidos en microsferas, liposomas y/o asociados con proteínas
facilitadoras de la transfección, micropartículas, complejos
lipídicos, partículas víricas, lípidos neutros o cargados,
carbohidratos, fosfato cálcico u otras sustancias precipitantes,
y/o otras sustancias para estabilizar el ácido nucleico. El ácido
nucleico puede estar contenido en un vector vírico que, bien se
integra en el cromosoma o no se integra, en un plásmido, o como un
polinucleótido desnudo. El ácido nucleico puede codificar un
polipéptido o, alternativamente, puede codificar un RNA
antisentido, por ejemplo para inhibir la traducción de un
polipéptido seleccionado en una célula. Cuando el ácido nucleico es
DNA, puede ser una secuencia de DNA que no es autorreplicativa por
sí sola, pero se inserta en un plásmido, el cual comprende además
un replicador. El DNA puede contener también un promotor
transcripcional, como el promotor CMV IEP, que es funcional en seres
humanos. El DNA puede codificar también una polimerasa para
transcribir el DNA. En una realización preferida, el DNA codifica un
polipéptido y una polimerasa para transcribir el DNA. El DNA se
puede suministrar junto con la polimerasa o con un RNAm que
codifique para la misma, el cual se traduce en la célula. En esta
realización, el DNA es preferiblemente un plásmido, y la polimerasa
es preferiblemente una polimerasa de un fago, como la polimerasa T7,
en la que el gen de la polimerasa T7 debería incluir un promotor de
T7.
El método se puede usar para tratar una
enfermedad asociada con una deficiencia, ausencia o mutación de un
polipéptido específico. El método prevé la inmunización de un
individuo, donde tal individuo puede ser un ser humano o un animal,
que comprende suministrar un DNA y/o RNA al individuo, donde el DNA
y/o RNA codifica un producto de traducción inmunogénico, que
provoca una respuesta inmunológica frente al inmunógeno. El método
se puede usar para provocar una respuesta inmunológica humoral, una
respuesta inmunológica celular, o una mezcla de ambas.
Ejemplo
40
Este ejemplo ilustrativo muestra la preparación
y suministro de un RNAm. En general, debería ser obvio que, al
poner en práctica la invención, se puede construir fácilmente un
plásmido adecuado para la transcripción in vitro del RNAm
por los técnicos medios en la materia, con un número virtualmente
ilimitado de DNAc. Tales plásmidos pueden comprender ventajosamente
un promotor para una RNA-polimerasa seleccionada,
seguido por una región no traducida en posición 5', una región no
traducida en posición 3', y un molde para una sección de
poliadenilato. Debería existir un único sitio de restricción entre
estas regiones no traducidas en 5' y 3', para facilitar la
inserción de cualquier DNAc seleccionado en el plásmido. Luego,
después de clonar el plásmido que contiene el gen seleccionado, el
plásmido se linealiza mediante digestión de la región de
poliadenilación y se transcribe in vitro para formar
tránscritos de RNAm. Estos tránscritos se proporcionan
preferiblemente con una protección terminal en 5'.
Alternativamente, se puede usar una secuencia no traducida en 5'
como EMC, que no requiere una protección en 5'.
El vector de clonación SP6 disponible
fácilmente, pSP64T, proporciona regiones flanqueantes del gen de
globina de Xenopus, un RNAm traducido eficientemente. Cualquier
DNAc que contenga un codón de iniciación se puede introducir en
este plásmido, y se puede preparar RNAm del DNA molde resultante.
Este plásmido particular se puede digerir con BglII, para insertar
cualquier DNAc seleccionado, que codifique un polipéptido de
interés. Aunque se pueden obtener buenos resultados con pSP64T,
cuando se linealiza y luego se transcribe con
RNA-polimerasa SP6, es preferible usar las
secuencias flanqueantes de globina de Xenopus de pSP64T, con la
RNA-polimerasa del fago T7. Esto se logra
purificando un fragmento HindIII/EcoRI de 150 pb de pSP64T, e
insertándolo en un fragmento HindIII/EcoRI linealizado de
aproximadamente 2,9 kb de pIBI131 (disponible comercialmente de
International Biotechnologies, Inc., New Haven, Conn.) con ligasa
de T4. El plásmido resultante, pXBG, está adaptado para recibir
cualquier gen de interés en un solo sitio BglII, situado entre las
dos secuencias de globina de Xenopus, y para la transcripción del
gen seleccionado con polimerasa T7.
Un gen marcador conveniente para demostrar la
expresión in vivo de polinucleótidos exógenos es el de
cloramfenicol-acetil-transferasa,
CAT. El gen CAT del fragmento pequeño BamHI/HindIII de
pSV2-CAT (ATCC Nº 37155) y el pXBG digerido con
BglII, se incuban ambos con el fragmento de Klenow de la
DNA-polimerasa de E. Coli, para generar
extremos romos, y después se ligan con DNA-ligasa
T4, para formar pSP-CAT. Este plásmido se digiere
luego con PstI y HindIII, y se purifica el pequeño fragmento, que
comprende el gen CAT entre las secuencias flanqueantes de globina
en 5' y 3' de pSP64T. El plásmido pIBI131 que contiene el promotor
de T7, se digiere también con PstI y HindIII, y el fragmento largo
se purifica. Este fragmento se liga después al fragmento que
contiene el gen CAT, con DNA-ligasa T4, para formar
el plásmido pT7CAT-An.
El DNA plasmídico pT7CAT-An, se
purifica según métodos bien conocidos en la técnica, p.ej., patente
de EE.UU. Nº 5.580.859. El DNA plasmídico purificado resultante se
linealiza a continuación aguas abajo de la región de poliadenilato
con un exceso de PstI, y el DNA linealizado resultante se purifica y
transcribe a continuación in vitro, según el método del
Ejemplo 5 de la patente de EE.UU. Nº 5.580.859, el cual es
suficientemente puro para el suministro según la presente
invención.
El RNAm purificado, se suministra formando poros
en una zona seleccionada de un individuo, según los procedimientos
de microporación con una profundidad de poro seleccionada, que
optimiza la bioactividad y el suministro de una cantidad efectiva
de RNAm a tal zona, de forma que el RNAm pasa a través de la piel o
la membrana mucosa al interior del tejido subyacente, donde el RNAm
se absorbe por las células. Este suministro a través del estrato
córneo o la membrana mucosa, en los que se han formado poros, se
puede facilitar con energía sónica y/o usar energía sónica según el
procedimiento del Ejemplo 15 y/o con electroporación para
incrementar la absorción celular, y/o con un diferencial de presión
para inducir el flujo a través de los poros en la piel o la
membrana mucosa. Además, el suministro se puede facilitar colocando
el RNAm en una solución transportadora, como un complejo lipídico
cargado positivamente o liposoma, para incrementar la difusión del
RNAm a través de los poros hacia el interior del cuerpo, o para
facilitar la absorción del RNAm hacia el interior de las
células.
Ejemplo
41
Este ejemplo muestra la inmunización de un
individuo con RNAm que codifica la proteína gp120 del VIH. El RNAm
se prepara según el procedimiento del Ejemplo 40, excepto porque el
gen para gp120 (pIIIenv3-1 del AIDS Research and
Reagent Program, National Institute of Allergy and Infectious
Disease, Rockville, MD) se inserta en el plásmido pXBG del Ejemplo
40. El RNAm que contiene el gen gp120 se suministra según el
procedimiento del Ejemplo 40.
Ejemplo
42
Este ejemplo muestra la inmunización de un
individuo con DNA que codifica la proteína gp120 del VIH. El gen
gp120 se inserta en un adenovirus recombinante según el
procedimiento de P. Muzzin et al., Correction of obesity and
diabetes in genetically obese mice by leptin gene therapy, 93 Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 14804-14808 (1996); G. Chen
et al., Disappearance of body fat in normal rats induced by
adenovirus-mediated leptin gene therapy, 93 Proc.
Natl. Acad. Sci. USA 14795-99 (1996). El DNA
resultante se suministra según el procedimiento del Ejemplo 41.
Ejemplo
43
En este ejemplo, se sigue el procedimiento del
Ejemplo 42, excepto porque el el DNA que codifica la proteína gp120
se sustituye por el DNA que codifica la glicoproteína D de
HSV-2 y, adicionalmente, se combina con una
cantidad efectiva de la glicoproteína D.
Ejemplo
44
En este ejemplo, se suministra en un vector
plasmídico apropiado un ácido nucleico que codifica la proteína de
la obesidad leptina, como un DNAc de una leptina humana o de leptina
de rata, C. Guoxun et al., Disappearance of body fat in
normal rats induced by adenovirus-mediated leptin,
93 Proc. Natl. Acad. Sci. USA 14795-99 (1996), o un
DNAc de leptina de ratón, P. Muzzin et al., Correction of
obesity and diabetes in genetically obese mice by leptin gene
therapy, 93, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 14804-14808
(1996). El vector de expresión de mamífero, pEUK-C1
(Clontech, Palo Alto, Calif.) está diseñado para la expresión
transitoria de genes clonados. Este vector es un plásmido de 4,9
kb, que comprende un origen de replicación pBR322, y un marcador de
resistencia a ampicilina para propagación en bacterias, y también
comprende el origen de replicación de SV40, el promotor tardío de
SV40, y la señal de poliadenilación tardía de SV40 para replicación
y expresión de un gen seleccionado en una célula de mamífero.
Localizado entre el promotor tardío de SV40 y la señal de
poliadenilación tardía de SV40, está un sitio de clonación múltiple
(MCS) de sitios de restricción únicos XhoI, XbaI, SmaI, SacI y
BamHI. Los fragmentos de DNA clonados en el MCS se transcriben en
RNA a partir del promotor tardío de SV40, y se traducen desde el
primer codón ATG en los fragmentos clonados. Los tránscritos de DNA
clonado se escinden y poliadenilan usando las señales de
procesamiento de SV40 VPI. El gen de leptina se clona en el MCS de
pEUK-C1, usando técnicas bien conocidas en la
técnica, p.ej., J. Sambrook et al., Molecular cloning: A
laboratory manual (2ª edición, 1989), incorporado aquí mediante
referencia. El plásmido resultante se suministra a un individuo
humano o animal después de la poración de la piel o la membrana
mucosa, según el procedimiento descrito anteriormente en los
ejemplos previos.
Ejemplo
45
Suministro de heparina. Las heparinas son
sustancias terapéuticas útiles en las que el mantenimiento de un
nivel equivalente a una infusión intravenosa de aproximadamente 1000
a 5000 UI por hora, inyecciones subcutáneas dos veces al día de
5000-1000 UI de heparina, o
1500-6000 UI de heparinas de peso molecular bajo, es
una dosificación clínica típica. Normalmente, la heparina no se
consideraría un buen candidato para un sistema de suministro
transdérmico, debido a su resistencia relativamente elevada a
atravesar la piel, debido principalmente al peso molecular, 5000 a
30000 Da, de la sustancia. Con las técnicas de microporación
descritas aquí, se conseguía fácilmente una velocidad de flujo
significativa de heparina cuando se administraba una cantidad
suficiente de heparina, p.ej. desde un depósito de suministro unido
a la superficie de la piel en la que se situaban los microporos. Se
aplicaba una solución de heparina a la piel en la que se habían
formado poros hasta una profundidad de aproximadamente 100 \mum,
permitiendo la difusión pasiva o acoplada con iontoforesis
(aproximadamente 1 mA/cm^{2}), que se aplicaba durante un período
de tiempo suficiente para transportar la heparina a través de los
microporos hacia el interior de los tejidos subyacentes. Se
observaba evidencia del suministro de heparina por el incremento de
la dilatación y permeabilidad capilares, según se evidenciaba
mediante el examen microscópico de la zona in vivo, tanto
para el suministro pasivo como incrementado iontoforéticamente.
Además de mostrar un flujo de heparina significativo usando la
difusión pasiva como fuerza directriz principal, la heparina,
siendo un compuesto altamente cargado, es un candidato natural para
el acoplamiento de un campo eléctrico con los microporos, para
permitir una velocidad de flujo controlable activamente y
velocidades de flujo mayores que las posibles a través del mismo
número de microporos con el método de difusión pasiva. Se llevó a
cabo un experimento en el que se preparó una zona en el antebrazo
palmar de un voluntario masculino sano, creando una matriz de 36
microporos dentro de un área de 1 cm cuadrado. Se unió a la zona un
pequeño depósito que contenía una solución de heparina sódica y el
electrodo negativo para un sistema iontoforético. El electrodo
positivo se unió a la piel del sujeto, separado a alguna distancia,
usando un electrodo de hidrogel, obtenido de Iomed, un
suministrador comercial de sistemas iontoforéticos. El sistema se
hizo funcionar durante diez minutos a 0,2 miliamperios por mg/dl al
principio, hasta 67 mg/dl durante un ciclo de diez minutos,
volviendo después hasta 100 en otros diez minutos adicionales,
hipotetizando que se debía a la puesta en marcha del sistema
contrarregulador del sujeto y la compensación de la insulina
suministrada. Una repetición de este procedimiento con la adición
de ultrasonidos funcionando a 44 kHz y 0,2 vatios/cm^{2} indicaba
un suministro más rápido de la insulina, como se evidenció mediante
las concentraciones de glucosa del sujeto, que cayeron desde 109
mg/dl hasta 78 mg/dl, menos de 30 minutos después de que comenzase
el suministro. Como en el caso del Ejemplo 45, para el suministro
de heparina, se puede acoplar con los microporos un sistema
iontoforético de corriente baja, para facilitar una velocidad de
flujo mayor y proporcionar la capacidad de modular esta velocidad
de flujo variando la corriente, permitiendo un suministro de tipo a
medida del sistema a construir. Los trabajos previos con insulina
han mostrado típicamente que se requieren corrientes iontoforéticas
relativamente elevadas para superar las fuertes propiedades de
barrera del estrato córneo intacto. Formando poros en el estrato
córneo o la mucosa y fijando opcionalmente los parámetros de
poración para fabricar un poro más profundo en el interior o a
través de la membrana biológica elegida como objetivo, se requiere
una densidad de corriente inferior para producir las velocidades de
flujo de insulina deseadas.
De forma similar, para formulaciones de insulina
poco cargadas o sin cargar, se puede efectuar un incremento de
flujo activo a través de los microporos, acoplando un campo sónico o
sonoforesis, que puede incluir frecuencias descritas normalmente
como ultrasónicas, para ayudar a impulsar la insulina a través de
los tejidos. Una característica adicional del campo sónico es su
capacidad de incrementar la permeabilidad de las diversas barreras
en los tejidos viables, dejando que la insulina alcance un volumen
mayor de tejido sobre el que se puede producir la absorción deseada
en la corriente sanguínea. La modulación de la energía sónica se ha
demostrado que es muy efectiva en la modulación del flujo total de
un compuesto a través de los microporos hacia el interior o a
través de los tejidos más profundos, proporcionando un segundo medio
para desarrollar un sistema de suministro de inyección
instantánea.
Las vías exactas de absorción de insulina cuando
se suministra una inyección subcutánea son aún un tema de debate.
Una de las razones de que esto no esté claro todavía son los niveles
ampliamente variables de biodisponibilidad demostrada dentro de una
población, o incluso del mismo sujeto, sobre una base de inyección
por inyección. Una vía hipotetizada es la absorción directa a
través de los capilares hacia la corriente sanguínea. Un método
para favorecer este proceso es acoplar la electroporación con la
poración superficial, en el que la electroporación se ha optimizado
específicamente para funcionar en la región de las membranas
endoteliales capilares, creando temporalmente un gran número de
orificios para incrementar esta absorción directa. Al igual que con
la iontoforesis y sonoforesis descritas previamente, los niveles de
amplitud de voltaje total del sistema de electroporación requerido
para efectuar este tipo de electroporación dentro de estas capas de
tejido subyacentes a la superficie externa, son, a menudo,
inferiores que las requeridas para penetrar a través de una
superficie externa intacta, debido a la reducción de la impedancia
bruta de la capa externa de la membrana biológica.
Ejemplo
47
Suministro de micropartículas: El uso de
liposomas, complejos lipídicos, microsferas incluyendo nanosferas,
compuestos pegilados (compuestos combinados con polietilenglicol) y
otras micropartículas como parte de un sistema de suministro de
fármacos, está bien desarrollado para muchas aplicaciones
específicas diferentes. En particular, cuando se trata con un
compuesto que se rompe fácilmente mediante los componentes endógenos
contenidos en los tejidos corporales, como las enzimas proteasa,
nucleasa o carbohidrasa, en la piel, tejidos, macrófagos u otras
células presentes en la corriente sanguínea o la linfa, se pueden
obtener frecuentemente incrementos en la biodisponibilidad y/o
liberación prolongada, utilizando una de estas técnicas.
Actualmente, una vez que uno ha aplicado una de estas técnicas, la
formulación se suministra generalmente a través de algún tipo de
inyección. La presente invención, creando microporos a través de una
membrana biológica (p.ej., la piel o una membrana mucosa) y en el
interior del cuerpo hasta una profundidad seleccionada, permite que
este tipo de micropartícula se suministre a través de la piel o la
mucosa. Según se describió en el ejemplo anterior de la insulina,
se pueden combinar la microporación, electroporación, iontoforesis,
energía sónica o potenciadores, así como estimulación mecánica de
la zona, como presión o masaje, en cualquier combinación, para
incrementar el suministro y/o absorción de una formulación
específica. En el caso de algunas micropartículas obtenidas
mediante ingeniería genética, los poros pueden tener una profundidad
óptima, diseñada para rodear ciertas zonas biológicamente activas o
colocar la partícula dentro de la zona elegida. Para algunos
sistemas de suministro de micropartículas, la energía incidente
sobre las partículas después de que se han suministrado al interior
o a través de los tejidos bajo la superficie, se puede usar para
desencadenar la liberación acelerada del compuesto activo,
permitiendo así el control externo de la velocidad de flujo de la
sustancia terapéutica.
Ejemplo
48
Micropartículas para control de analito
implantable: Otra aplicación de las micropartículas es suministrar
una partícula no como sustancia terapéutica, sino como vehículo de
un compuesto de sonda que se podría interrogar de forma no
invasiva, por ejemplo, mediante radiación electromagnética
procedente de un sistema de lectura externo para obtener
información relativa a las concentraciones de un analito específico
en el cuerpo. Un ejemplo es incorporar en una microsfera porosa un
compuesto fluoróforo específico de glucosa, el cual, dependiendo de
las concentraciones de glucosa presentes en los tejidos
circundantes, alteraría su respuesta fluorescente, bien en
amplitud, longitud de onda o vida de fluorescencia. Si el fluoróforo
se diseñaba para ser activo con una longitud de onda de activación
que variaba de 700 nm a 1500 nm, se podría utilizar una fuente de
luz infrarroja de bajo coste, como un LED o diodo láser para
estimular su respuesta fluorescente, que estaría de forma similar
en este intervalo de 700 nm a 1500 nm. A estas longitudes de onda,
los tejidos de la piel y la mucosa absorben muy poco y permitirían
construir un sistema simple de esta manera.
La glucosa es un analito candidato, para el cual
se han desarrollado sondas de fluorescencia de tiempo de vida
experimental y se han incorporado en implantes polímeros insertados
subcutáneamente, que se han interrogado con éxito a través de la
piel con métodos de simulación y detección óptica. Se requeriría
meramente la reformulación de estos implantes experimentales en
micropartículas dimensionadas adecuadamente para permitir el
suministro hacia el interior o a través de las capas de tejido
viables, mediante los microporos. Sin embargo, cualquier analito se
podría elegir como objetivo, y el método de interrogación de las
micropartículas suministradas podría ser a través del campo
magnético o eléctrico, más que de la energía óptica.
Ejemplo
49
Se prepara una vacuna bacteriana, vírica, de
toxoides o mixta, en forma de sólido, líquido, suspensión o gel,
según se requiera. Esta formulación podría incluir uno cualquiera o
una combinación de péptidos, proteínas, carbohidratos, DNA, RNA,
microorganismos enteros, aditivos, vehículos y similares. Se
formaron poros en una zona seleccionada de un individuo (piel o
membrana mucosa), según los procedimientos descritos anteriormente
en el Ejemplo 45, y se aplicó la vacuna a la zona en la que se
formaron los poros. La profundidad de los microporos puede depender
del tipo de vacuna suministrada. Este suministro se puede favorecer
con electroporación, iontoforesis, energía magnética o sónica,
potenciadores, así como estimulación mecánica de la zona, como
presión o masaje según los procedimientos descritos anteriormente
y/o el uso de electroporación, iontoforesis, energía magnética o
sónica, potenciadores, así como estimulación mecánica de la zona,
como presión o masaje, para incrementar la absorción celular. Se
pueden suministrar dosis adicionales o de refuerzo de la misma
forma, para conseguir la inmunización del individuo.
Ejemplo
50
Suministro de testosterona: Se usó un parche de
testosterona disponible comercialmente, el parche Androderm® de
TheraTech, Inc., en una serie de experimentos para evaluar los
beneficios de la microporación en lo que respecta al suministro de
este permeante. Un sujeto masculino hipergonádico sufrió una terapia
de Androderm durante dos días, después de lo cual se extrajo una
serie de muestras de sangre venosa durante el período posterior de
24 horas, para establecer las concentraciones de testosterona de la
línea de base de este sujeto. A continuación se instalaron dos
parches de Androderm de 2,5 mg, según se recomendaba por el
fabricante, y se extrajo un conjunto similar de muestras de sangre
venosa para medir las concentraciones de testosterona cuando el
único método de incremento del flujo transdérmico usado eran los
potenciadores de permeación química contenidos en el parche.
Después de dos días más de período de lavado, se instalaron de forma
similar dos parches de Androderm de 2,5 pero, previamente a la
instalación, se formaban poros en la superficie de la piel, en las
zonas elegidas como objetivo con 72 microporos por zona, midiendo
cada poro aproximadamente 80 \mum de anchura y 300 \mum de
longitud y se extendían hasta una profundidad de 80 a 120 \mum.
Para la fase de suministro con poración se extrajo un conjunto
similar de muestras de sangre venosa para medir la testosterona.
Los datos de estos tres períodos de veinticuatro horas se muestran
en la Fig. 35, titulada "Efectos de la microporación sobre el
suministro transdérmico de testosterona". Una característica a
destacar de estos datos es que, cuando están presentes las
microporaciones, las concentraciones de testosterona en la sangre
del sujeto se elevan mucho más rápidamente, precediendo
esencialmente al límite ascendente del ciclo sin poración en más de
cuatro horas. Observando la pendiente y el área bajo la curva, se
puede calcular que se producía un incremento de más de tres veces
en la velocidad de flujo, debido a las microporaciones durante las
primeras cuatro horas.
Ejemplo
51
Suministro de Alprostadil: El Alprostadil, o
PGE1, es una prostaglandina usada terapéuticamente para tratar la
disfunción eréctil masculina a través de su comportamiento como
vasodilatador. El modo de suministro estándar para este fármaco es
una inyección directa en la base del pene o a través un supositorio
insertado en la uretra. Se realizó una serie de experimentos con
dos voluntarios masculinos sanos. Cada sujeto tenía una zona de 1
cm cuadrado en la base del tronco del pene preparada mediante
formación de 12 a 36 microporos en este área, con los parámetros de
poración térmica fijados para crear poros de aproximadamente 100
micrones de profundidad, medida desde la superficie de la piel. Se
colocó una solución concentrada de alprostadil en un pequeño
depósito de un parche colocado sobre la zona de poración, luego se
colocó un transductor ultrasónico en la superficie del depósito y
se activó, y se registraron las respuestas eréctiles y otras
respuestas clínicas en cinta de vídeo. Ambos sujetos desarrollaron
una cantidad significativa de congestión del pene, estimada como la
consecución de 70% o más de una erección completa, a la dosis
aplicada. Además, se observó un flujo malar rápido hasta las
concentraciones sistémicas del fármaco suministrado. Durante un
período de suministro de 30 a 60 minutos, ambos sujetos
desarrollaron un flujo malar rápido profundo que se extendía desde
la cara, cuello, pecho y brazos. Tanto la respuesta eréctil como el
flujo malar rápido proporcionan evidencia del suministro de una
cantidad clínicamente activa del fármaco, un vasodilatador bien
conocido.
Ejemplo
52
Suministro de interferón: Los interferones son
proteínas de aproximadamente 17-22.000 de peso
molecular, que se administran clínicamente para tratar diversas
enfermedades, como infecciones víricas (p.ej. hepatitis B y C),
enfermedades inmunológicas (como esclerosis múltiple), y cánceres
(p.ej., leucemia por tricoleucitos). Debido a su naturaleza
proteica, los interferones se tienen que administrar actualmente
mediante inyección, ya que no se pueden suministrar oralmente y son
demasiado grandes para los métodos de suministro transdérimicos o
transmucosos tradicionales. Para demostrar el suministro de un
interferón a través de la técnica de microporación, se aplica una
alícuota de 100 microlitros de solución de
alfa-interferón que contiene interferón con una
actividad específica de 100 millones de unidades internacionales de
interferón por mg disuelto en 1 ml de solución de suministro, a un
área de 1 cm cuadrado de piel con poros formados hasta una
profundidad de 150-180 \mum, siendo deficiente
por tanto en lecho capilar, sobre el muslo de un sujeto humano sano.
Se realizaron las pruebas usando, bien puramente difusión pasiva y
con la aplicación de energía sónica a la región a una amplitud
suficiente, y modulación de la misma para acelerar la migración del
interferón a través de los poros hacia el interior o a través de
los tejidos subyacentes, sin producir calentamiento deletéreo de la
solución de interferón. Se realizan extracciones de sangre venosa a
diversos intervalos de tiempo para ambas pruebas, y se ensayan para
las concentraciones de interferón, usando radioinmunoensayo y
bioensayo. Se detecta el interferón en el suero durante el período
de tiempo de 4 horas analizado. Las concentraciones de interferón
para el experimento de suministro incrementado mediante energía
sónica se detectaron antes que para el experimento pasivo. En otro
experimento, el interferón se administra en forma de polvo seco
directamente a los microporos en el área de la piel en la que se
han formado poros. El interferón se detecta en el suero usando las
mismas técnicas descritas anteriormente. En otra prueba, la
solución de interferón se aplica en un gel, con o sin una película
de soporte, al tejido de la mucosa bucal en el que se han formado
poros. La sangre venosa se extrae y analiza para las
concentraciones de interferón. El interferón se detecta en el suero
durante el período de tiempo de 3 horas analizado. En otro
experimento, el interferón se incorpora en un comprimido que
contiene una matriz bioerosionable, con una matriz de polímero
mucoadherente que proporciona el contacto del comprimido a través
del área de la mucosa bucal en la que se han formado poros. El
interferón se detecta en el suero usando las mismas técnicas
descritas anteriormente.
Ejemplo
53
Suministro de morfina: Se aplica una solución de
morfina a un área en la que se han formado poros sobre el antebrazo
palmar de sujetos humanos. Se usa un gradiente de presión positiva
para proporcionar una velocidad de suministro basal de la morfina
al interior del cuerpo, según se determinó mediante el análisis de
extracciones de sangre venosa a intervalos de tiempo apropiados,
para la presencia de morfina. Se consigue una concentración basal
de morfina de aproximadamente 3-6 ng/ml. Bajo
demanda, se aplica una inyección instantánea a presión adicional,
para producir un pico en el suministro de morfina. La inyección
instantánea a presión adicional se consigue en una prueba mediante
el uso de ultrasonidos, o, en otro experimento, mediante el uso de
un pico de presión. Este tipo de suministro, en el que se aplica de
forma continua una concentración basal de morfina, con picos en el
suministro de morfina periódicamente bajo demanda, es útil para
tratar el dolor crónico e intercurrente.
Ejemplo
54
Suministro de un DNA resistente a una
enfermedad, a una planta: Se forman microporos en las semillas de
una planta de maíz seleccionada. Las semillas se colocan en una
solución de una formulación de permeante que contiene DNA que
codifica proteínas de resistencia a una enfermedad. Se usa
opcionalmente energía sónica para favorecer el suministro del DNA a
las semillas de maíz. Las semillas se germinan y hacen crecer hasta
la madurez. Las semillas resultantes de las plantas de maíz maduras
llevan ahora el gen resistente a la enfermedad.
Ejemplo
55
Suministro de DNA a una planta: Se forman
microporos en las semillas de una remolacha azucarera. Las semillas
se colocan en una solución de una formulación permeante que contenía
DNA que codifica la hormona de crecimiento humana. Se pueden usar
electroporación, iontoforesis, energía sónica, potenciadores, así
como la estimulación mecánica de la zona, como presión, para
favorecer el suministro del DNA a las semillas. Las semillas se
hacen germinar y crecer hasta la madurez. La planta de remolacha
madura resultante se puede recolectar entonces y extraerse la
hormona de crecimiento humana para su posterior purificación y uso
clínico.
Ejemplo
56
Se realizó un experimento en el que se aplicaban
partículas de dextrano fluorescentes, de peso molecular
aproximadamente 10.000 Daltons, en una solución acuosa, mediante un
parche con depósito sobre un cm cuadrado de piel sobre el antebrazo
palmar de un sujeto humano, en el que se formaron 36 microporos que
se extendían aproximadamente a una profundidad de 80 \mum. El
parche con depósito se mantuvo en su sitio durante 5 minutos. Se
obtuvo una imagen de la zona en la que se formaban los poros y el
área circundante con un vídeomicroscopio fluorescente, para evaluar
la penetración del permeante en el tejido. La fluorescencia mostraba
que en 5 minutos, se producía una permeación de dextrano
significativa, separada más de 2 mm del microporo más próximo. El
sistema de ensayo de vídeo usado 10 minutos después, mostraba una
difusión mayor, de forma que el flujo de fluido fluorescente se
extendía 10 mm desde los poros. El experimento proporciona una
evidencia clara de que esta técnica permite el suministro de
permeantes con pesos moleculares de 10.000.
Claims (37)
-
\global\parskip0.910000\baselineskip
1. Un sistema para suministrar un permeante a un organismo que comprende:medios para destruir la piel del organismo en un área seleccionada para formar una pluralidad de microporos, teniendo cada microporo 1-1000 \mum de diámetro y extendiéndose hasta una profundidad deseada por debajo de una capa epidérmica de la piel, comprendiendo dichos medios de destrucción una sonda calentada eléctricamente (186) en comunicación operativa con unos medios para modular la temperatura de dicha sonda calentada eléctricamente, entre un estado de temperatura elevada y un estado de temperatura reducida (178), estando colocada dicha sonda calentada eléctricamente en contacto directo con una zona del área seleccionada de la piel;un depósito (308) que contiene el permeante, estando dimensionado dicho depósito para su colocación cubriendo la pluralidad de microporos formados;en el que, en el estado de temperatura elevada, dicha sonda calentada eléctricamente transfiere conductivamente energía térmica hasta la zona de la piel en contacto, hasta elevar la temperatura de la piel subyacente a la zona de contacto para destruir una zona de la piel hasta una profundidad deseada por debajo de la capa epidérmica, y en el que, en el estado de temperatura reducida, dicha sonda calentada eléctricamente transfiere menos energía térmica a la piel que la que se requiere para destruir la zona de piel; ymedios de control de la impedancia para ajustar el cambio en impedancia eléctrica de dicha sonda calentada eléctricamente en respuesta a la temperatura de dicha sonda calentada eléctricamente, estando acoplados operativamente dichos medios de control de la impedancia a dichos medios de modulación, para modular la corriente suministrada a dicha sonda calentada eléctricamente, de forma que la sonda calentada eléctricamente se mantiene en el estado de temperatura elevada durante un espacio de tiempo deseado. - 2. El sistema de la reivindicación 1, en el que la capa epidérmica es la capa del estrato córneo de la piel.
- 3. El sistema de la reivindicación 1, en el que la profundidad de los microporos se extiende al menos hacia el interior de la capa de células viables de la piel.
- 4. El sistema de la reivindicación 1, en el que la profundidad del microporo está entre aproximadamente 100 micrones y aproximadamente 300 micrones.
- 5. El sistema de la reivindicación 1, en el que la profundidad del microporo está entre aproximadamente 180 micrones y aproximadamente 300 micrones.
- 6. El sistema de la reivindicación 1, en el que la profundidad del microporo esta entre aproximadamente 20 micrones y aproximadamente 100 micrones.
- 7. El sistema de la reivindicación 1, en el que la profundidad del microporo es superior a aproximadamente 110 micrones.
- 8. El sistema de la reivindicación 1, en el que dichos medios de modulación comprenden un bucle de corriente modulador (182), que modula la corriente suministrada a dicha sonda calentada eléctricamente, de forma que dicho elemento sólido se mantiene sustancialmente en el estado de temperatura elevada durante menos de aproximadamente 20 milisegundos, para reducir la sensación para el organismo y minimizar el volumen de tejido afectado por la energía térmica transferida.
- 9. El sistema de la reivindicación 8, en el que, en el estado de temperatura reducida, el bucle de corriente moduladora elimina corriente de dicha sonda calentada eléctricamente.
- 10. El sistema de la reivindicación 1, en el que dichos medios de modulación comprenden un campo magnético modulador, excitándose selectivamente el campo para producir corrientes eléctricas inducidas en dicha sonda calentada eléctricamente, de forma que dicha sonda calentada eléctricamente se mantiene sustancialmente en el estado de temperatura elevada durante menos de aproximadamente 20 milisegundos, para reducir la sensación para el organismo y minimizar el volumen de tejido afectado por la energía térmica transferida.
- 11. El sistema de la reivindicación 1, que comprende adicionalmente medios para detectar cuándo la destrucción de la piel ha formado la pluralidad de microporos hasta la profundidad deseada en la piel.
- 12. El sistema de la reivindicación 11, en el que dichos medios de detección comprenden un medio para medir los cambios en la impedancia eléctrica de la piel, a medida que se forma la pluralidad de microporos.
- 13. El sistema de la reivindicación 12, en el que la impedancia eléctrica que se está midiendo es una impedancia compleja.
- 14. El sistema de la reivindicación 1, que comprende además medios para enfriar el área seleccionada de la piel, de forma que el área seleccionada esté en un estado enfriado.
- 15. El sistema de la reivindicación 1, en el que el permeante se selecciona del grupo formado por un ácido nucleico, un péptido, una proteína, un antígeno vacunal, un analgésico y un fármaco de molécula pequeña.
- 16. El sistema de la reivindicación 15, en el que el ácido nucleico es DNA o RNA.
- 17. El sistema de la reivindicación 1, en el que el permeante se selecciona del grupo que consiste en insulina, interferón, un aditivo y heparina.
- 18. El sistema de la reivindicación 1, en el que el permeante tiene un peso molecular de al menos 10.000.
- 19. El sistema de la reivindicación 1, en el que el permeante está asociado con un vehículo.
- 20. El sistema de la reivindicación 19, en el que el vehículo comprende liposomas.
- 21. El sistema de la reivindicación 19, en el que el vehículo comprende complejos lipídicos.
- 22. El sistema de la reivindicación 19, en el que el vehículo comprende micropartículas.
- 23. El sistema de la reivindicación 19, en el que el vehículo comprende compuestos de polietilenglicol.
- 24. El sistema de la reivindicación 19, en el que el vehículo comprende una matriz polímera.
- 25. El sistema de la reivindicación 24, en el que la matriz polímera es bioerosionable.
- 26. El sistema de la reivindicación 1, en el que el permeante comprende una formulación seca.
- 27. El sistema de la reivindicación 26, en el que la formulación seca es un polvo.
- 28. El sistema de la reivindicación 27, en el que la sustancia bioactiva se selecciona del grupo que consiste en péptidos, proteínas, analgésicos, antígenos vacunales, DNA o RNA.
- 29. El sistema de la reivindicación 19, en el que el vehículo es una micropartícula.
- 30. El sistema de la reivindicación 29, en el que las micropartículas comprenden una sustancia bioactiva.
- 31. El sistema de la reivindicación 30, en el que la sustancia bioactiva se selecciona del grupo que consiste en péptidos, proteínas, analgésicos, antígenos vacunales, DNA o RNA.
- 32. El sistema de la reivindicación 30, en el que el DNA o RNA está desnudo, fragmentado, acoplado a un plásmido, acoplado a un vector vírico, encapsulado, o acoplado a otra sustancia.
- 33. El sistema de la reivindicación 1, que comprende adicionalmentemedios para detectar cuándo la destrucción de la piel ha formado al menos un microporo hasta la profundidad deseada en la piel (250),en el que dichos medios de detección comprenden un medio para medir cambios en la impedancia eléctrica de la piel a medida que se forma al menos un microporo, y en el que dichos medios de detección están acoplados operativamente a los medios de destrucción, para discontinuar la destrucción de la piel cuando el microporo alcanza la profundidad deseada.
- 34. El sistema de la reivindicación 33, en el que la impedancia eléctrica que se está midiendo es una impedancia compleja.
- 35. El sistema de la reivindicación 34, en el que la impedancia compleja se mide a una frecuencia seleccionada para resaltar las propiedades de impedancia de los tejidos seleccionados.
- 36. El sistema de la reivindicación 33, en el que dichos medios de destrucción comprenden una sonda calentada eléctricamente (186), en comunicación operativa con medios para modular la temperatura de dicha sonda calentada eléctricamente entre un estado de temperatura elevada y un estado de temperatura reducida, estando colocada dicha sonda calentada eléctricamente en contacto directo con una zona del área seleccionada de la piel, en el que, en el estado de temperatura elevada, dicha sonda calentada eléctricamente transfiere conductivamente energía térmica a la zona de contacto de la piel, para elevar suficientemente la temperatura de la piel subyacente a la porción de contacto, para destruir una parte de la piel hasta una profundidad deseada por debajo de la capa epidérmica y, en el que, en el estado de temperatura reducida, dicha sonda calentada eléctricamente transfiere conductivamente menos energía eléctrica a la piel, que la que se requiere para destruir la zona de la piel.
- 37. El sistema de la reivindicación 33, en el que los medios de destrucción comprenden un medio para aplicar ráfagas o pulsos cortos de corriente eléctrica a la piel para formar los microporos.
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Families Citing this family (104)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CA2259437C (en) * | 1996-07-03 | 2006-12-05 | Altea Technologies, Inc. | Multiple mechanical microporation of skin or mucosa |
US20060002949A1 (en) | 1996-11-14 | 2006-01-05 | Army Govt. Of The Usa, As Rep. By Secretary Of The Office Of The Command Judge Advocate, Hq Usamrmc. | Transcutaneous immunization without heterologous adjuvant |
US6797276B1 (en) | 1996-11-14 | 2004-09-28 | The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army | Use of penetration enhancers and barrier disruption agents to enhance the transcutaneous immune response |
US5980898A (en) | 1996-11-14 | 1999-11-09 | The United States Of America As Represented By The U.S. Army Medical Research & Material Command | Adjuvant for transcutaneous immunization |
US6517532B1 (en) | 1997-05-15 | 2003-02-11 | Palomar Medical Technologies, Inc. | Light energy delivery head |
US6527716B1 (en) | 1997-12-30 | 2003-03-04 | Altea Technologies, Inc. | Microporation of tissue for delivery of bioactive agents |
US6173202B1 (en) * | 1998-03-06 | 2001-01-09 | Spectrx, Inc. | Method and apparatus for enhancing flux rates of a fluid in a microporated biological tissue |
US20020102729A1 (en) * | 1998-06-08 | 2002-08-01 | Maclaughlin Fiona | Formulations for electroporation |
ES2317699T3 (es) | 1998-07-14 | 2009-04-16 | Altea Therapeutics Corporation | Eliminacion controlada de una membrana biologica mediante una carga pirotecnica para un transporte transmembranico. |
CA2358584A1 (en) * | 1999-01-22 | 2000-07-27 | Powderject Research Limited | Method of enhancing needleless transdermal powdered drug delivery |
CA2376368C (en) | 1999-06-08 | 2009-08-11 | Altea Technologies, Inc. | Apparatus for microporation of biological membranes using thin film tissue interface devices, and method therefor |
AU6076200A (en) | 1999-07-08 | 2001-01-30 | Johnson & Johnson Consumer Companies, Inc. | Exothermic bandage |
US6890553B1 (en) | 1999-07-08 | 2005-05-10 | Johnson & Johnson Consumer Companies, Inc. | Exothermic topical delivery device |
US20030078499A1 (en) | 1999-08-12 | 2003-04-24 | Eppstein Jonathan A. | Microporation of tissue for delivery of bioactive agents |
US7113821B1 (en) * | 1999-08-25 | 2006-09-26 | Johnson & Johnson Consumer Companies, Inc. | Tissue electroperforation for enhanced drug delivery |
US7133717B2 (en) | 1999-08-25 | 2006-11-07 | Johnson & Johnson Consumer Companies, Inc. | Tissue electroperforation for enhanced drug delivery and diagnostic sampling |
EP1222932B1 (en) * | 1999-10-14 | 2007-02-21 | Pola Chemical Industries Inc. | Compositions for electroporation |
WO2001076553A2 (en) * | 2000-04-06 | 2001-10-18 | Sontra Medical, Inc. | Method and device for enhanced transdermal drug delivery |
US7404815B2 (en) | 2000-05-01 | 2008-07-29 | Lifescan, Inc. | Tissue ablation by shear force for sampling biological fluids and delivering active agents |
IL137689A0 (en) * | 2000-08-03 | 2001-10-31 | L R Res & Dev Ltd | System for enhanced chemical debridement |
PT1335711E (pt) * | 2000-09-08 | 2007-09-05 | Alza Corp | Dispositivo transdérmico. |
WO2002026191A2 (en) | 2000-09-28 | 2002-04-04 | Nanocyte Inc. | Methods, compositions and devices utilizing stinging cells/capsules for delivering a therapeutic or a cosmetic agent into a tissue |
US7632522B2 (en) | 2000-09-28 | 2009-12-15 | Nanocyte Inc. | Use of stinging cells/capsules for the delivery of active agents to keratinous substances |
US6882884B1 (en) | 2000-10-13 | 2005-04-19 | Soundskin, L.L.C. | Process for the stimulation of production of extracellular dermal proteins in human tissue |
US6794376B2 (en) * | 2000-12-06 | 2004-09-21 | William Beaumont Hospital | Methods and compositions for enhancing diffusion of therapeutic agents through tissue |
CA2437899C (en) | 2001-02-13 | 2012-05-15 | Gregory M. Glenn | Vaccine for transcutaneous immunization against etec-caused traveler's diarrhea |
JP2004529906A (ja) | 2001-03-19 | 2004-09-30 | イオマイ コーポレイシヨン | 経皮的免疫賦活 |
JP2005530695A (ja) * | 2002-02-15 | 2005-10-13 | ザイコス インク. | 生理活性物質を細胞内に導入するエレクトロポレーション法 |
US9918665B2 (en) | 2002-03-11 | 2018-03-20 | Nitto Denko Corporation | Transdermal porator and patch system and method for using same |
AU2003225735A1 (en) * | 2002-03-11 | 2003-09-29 | Altea Therapeutics Corporation | Transdermal drug delivery patch system, method of making same and method of using same |
DE60320793D1 (de) | 2002-03-26 | 2008-06-19 | Nanocyte Inc | Nesselzellen mit expression eines exogenen polynucleotids, das ein therapeutisches, diagnostisches oder kosmetisches mittel kodiert, und diese nesselzellen verwendende verfahren, zusammensetzungen und vorrichtungen oder daraus gewonnene kapseln zur ametischen mittels in ein gewebe |
WO2003089043A2 (en) | 2002-04-19 | 2003-10-30 | Transpharma Medical Ltd. | Handheld transdermal drug delivery and analyte extraction |
US7276058B2 (en) | 2002-06-19 | 2007-10-02 | Palomar Medical Technologies, Inc. | Method and apparatus for treatment of cutaneous and subcutaneous conditions |
US8016811B2 (en) | 2003-10-24 | 2011-09-13 | Altea Therapeutics Corporation | Method for transdermal delivery of permeant substances |
WO2006111201A1 (en) | 2005-04-18 | 2006-10-26 | Pantec Biosolutions Ag | Laser microporator |
US8834862B2 (en) | 2005-04-19 | 2014-09-16 | Nanocyte Inc. | Methods, compositions and devices utilizing stinging cells/capsules for conditioning a tissue prior to delivery of an active agent |
US7856985B2 (en) | 2005-04-22 | 2010-12-28 | Cynosure, Inc. | Method of treatment body tissue using a non-uniform laser beam |
CN101912288A (zh) | 2005-09-02 | 2010-12-15 | 因特赛尔美国公司 | 经皮递送疫苗和透皮递送药物的装置及其应用 |
CA2622560A1 (en) | 2005-09-15 | 2007-03-29 | Palomar Medical Technologies, Inc. | Skin optical characterization device |
JP4921795B2 (ja) | 2006-01-06 | 2012-04-25 | 株式会社東芝 | 超音波薬剤導入装置及び医用画像診断装置 |
CN103948468A (zh) | 2006-04-28 | 2014-07-30 | 斯尔替克美学股份有限公司 | 促进皮下富含脂肪细胞冷却的治疗装置中所用的防冻剂 |
US7586957B2 (en) | 2006-08-02 | 2009-09-08 | Cynosure, Inc | Picosecond laser apparatus and methods for its operation and use |
US9132031B2 (en) | 2006-09-26 | 2015-09-15 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Cooling device having a plurality of controllable cooling elements to provide a predetermined cooling profile |
US8192474B2 (en) | 2006-09-26 | 2012-06-05 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Tissue treatment methods |
US20080077201A1 (en) | 2006-09-26 | 2008-03-27 | Juniper Medical, Inc. | Cooling devices with flexible sensors |
WO2008049903A2 (en) | 2006-10-25 | 2008-05-02 | Pantec Biosolutions Ag | Wide-area parasystemic treatment of skin related conditions |
CA2925191C (en) | 2007-01-22 | 2018-07-24 | Nitto Denko Corporation | Transdermal porator and patch system and method for using same |
US20080287839A1 (en) | 2007-05-18 | 2008-11-20 | Juniper Medical, Inc. | Method of enhanced removal of heat from subcutaneous lipid-rich cells and treatment apparatus having an actuator |
US8523927B2 (en) | 2007-07-13 | 2013-09-03 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | System for treating lipid-rich regions |
ES2693430T3 (es) | 2007-08-21 | 2018-12-11 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Monitorización del enfriamiento de células subcutáneas ricas en lípidos, como el enfriamiento de tejido adiposo |
JP5466161B2 (ja) | 2007-10-09 | 2014-04-09 | トランスファーマ メディカル リミテッド | 磁気的なパッチ連結物 |
CA2696227A1 (en) | 2007-10-17 | 2009-04-23 | Transpharma Medical Ltd. | Dissolution rate verification |
CN102688089A (zh) | 2007-12-05 | 2012-09-26 | 赛诺龙医疗公司 | 一次性电磁能施用器以及使用它的方法 |
US8603073B2 (en) | 2008-12-17 | 2013-12-10 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Systems and methods with interrupt/resume capabilities for treating subcutaneous lipid-rich cells |
US8606366B2 (en) | 2009-02-18 | 2013-12-10 | Syneron Medical Ltd. | Skin treatment apparatus for personal use and method for using same |
CA3075147C (en) | 2009-04-30 | 2022-06-21 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Device, system and method of removing heat from subcutaneous lipid-rich cells |
US9919168B2 (en) | 2009-07-23 | 2018-03-20 | Palomar Medical Technologies, Inc. | Method for improvement of cellulite appearance |
KR101358374B1 (ko) | 2009-07-30 | 2014-02-05 | 알마 레이저 엘티디. | 초음파발생봉 |
US9014799B2 (en) * | 2009-10-08 | 2015-04-21 | Palo Alto Research Center Incorporated | Transmucosal drug delivery device and method including electrically-actuated permeation enhancement |
US8834423B2 (en) | 2009-10-23 | 2014-09-16 | University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education | Dissolvable microneedle arrays for transdermal delivery to human skin |
US9844461B2 (en) | 2010-01-25 | 2017-12-19 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Home-use applicators for non-invasively removing heat from subcutaneous lipid-rich cells via phase change coolants |
JP2013535998A (ja) * | 2010-07-13 | 2013-09-19 | スコット マクナルティ | バイオメトリック情報をセンシングするためのシステム、方法、及び装置 |
US8676338B2 (en) | 2010-07-20 | 2014-03-18 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Combined modality treatment systems, methods and apparatus for body contouring applications |
CN103957931B (zh) | 2010-09-03 | 2017-10-24 | 瓦尔内瓦奥地利有限责任公司 | 艰难梭状芽胞杆菌毒素a和毒素b蛋白的分离多肽及其用途 |
US10722395B2 (en) | 2011-01-25 | 2020-07-28 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Devices, application systems and methods with localized heat flux zones for removing heat from subcutaneous lipid-rich cells |
KR102136901B1 (ko) | 2012-04-18 | 2020-07-22 | 싸이노슈어, 엘엘씨 | 피코초 레이저 장치 및 그를 사용한 표적 조직의 치료 방법 |
IN2014DN10161A (es) * | 2012-05-01 | 2015-08-21 | Univ Pittsburgh | |
US9545523B2 (en) | 2013-03-14 | 2017-01-17 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Multi-modality treatment systems, methods and apparatus for altering subcutaneous lipid-rich tissue |
US9844460B2 (en) | 2013-03-14 | 2017-12-19 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Treatment systems with fluid mixing systems and fluid-cooled applicators and methods of using the same |
WO2014145707A2 (en) | 2013-03-15 | 2014-09-18 | Cynosure, Inc. | Picosecond optical radiation systems and methods of use |
US10517892B2 (en) * | 2013-10-22 | 2019-12-31 | Medtronic Minimed, Inc. | Methods and systems for inhibiting foreign-body responses in diabetic patients |
WO2015117032A1 (en) | 2014-01-31 | 2015-08-06 | Zeltiq Aesthestic, Inc. | Treatment systems for treating glands by cooling |
US10675176B1 (en) | 2014-03-19 | 2020-06-09 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Treatment systems, devices, and methods for cooling targeted tissue |
USD777338S1 (en) | 2014-03-20 | 2017-01-24 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Cryotherapy applicator for cooling tissue |
US9265260B1 (en) | 2014-04-07 | 2016-02-23 | Gpd Technologies Llc | Systems and methods for using light energy to facilitate penetration of substances in plants |
US10278334B2 (en) | 2014-04-07 | 2019-05-07 | Premier Citrus Apz, Llc | Systems and methods for delivering nucleic acids to a plant |
US11178823B2 (en) | 2014-04-07 | 2021-11-23 | Premier Citrus Apz, Llc | Systems and methods for using light energy to facilitate penetration of substances in plants |
US10952891B1 (en) | 2014-05-13 | 2021-03-23 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Treatment systems with adjustable gap applicators and methods for cooling tissue |
US10568759B2 (en) | 2014-08-19 | 2020-02-25 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Treatment systems, small volume applicators, and methods for treating submental tissue |
US10935174B2 (en) | 2014-08-19 | 2021-03-02 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Stress relief couplings for cryotherapy apparatuses |
US9459201B2 (en) | 2014-09-29 | 2016-10-04 | Zyomed Corp. | Systems and methods for noninvasive blood glucose and other analyte detection and measurement using collision computing |
US10441768B2 (en) | 2015-03-18 | 2019-10-15 | University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education | Bioactive components conjugated to substrates of microneedle arrays |
WO2017066768A1 (en) | 2015-10-16 | 2017-04-20 | University Of Pittsburgh-Of The Commonwealth System Of Higher Education | Mullti-component biio-active drug delivery and controlled release to the skin by microneedle array devices |
US11154418B2 (en) | 2015-10-19 | 2021-10-26 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Vascular treatment systems, cooling devices, and methods for cooling vascular structures |
CN108777945B (zh) * | 2015-12-10 | 2022-01-11 | 柑桔代理有限责任公司 | 利用光能促进植物中物质渗透的系统和方法 |
US11744889B2 (en) | 2016-01-05 | 2023-09-05 | University of Pittsburgh—of the Commonwealth System of Higher Education | Skin microenvironment targeted delivery for promoting immune and other responses |
CA3009414A1 (en) | 2016-01-07 | 2017-07-13 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Temperature-dependent adhesion between applicator and skin during cooling of tissue |
US10765552B2 (en) | 2016-02-18 | 2020-09-08 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Cooling cup applicators with contoured heads and liner assemblies |
US11191278B2 (en) | 2016-03-25 | 2021-12-07 | Premier Citrus Apz, Llc | Systems and methods for delivering nucleic acids to a plant |
US9554738B1 (en) | 2016-03-30 | 2017-01-31 | Zyomed Corp. | Spectroscopic tomography systems and methods for noninvasive detection and measurement of analytes using collision computing |
US10682297B2 (en) | 2016-05-10 | 2020-06-16 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Liposomes, emulsions, and methods for cryotherapy |
US10555831B2 (en) | 2016-05-10 | 2020-02-11 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Hydrogel substances and methods of cryotherapy |
US11382790B2 (en) | 2016-05-10 | 2022-07-12 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Skin freezing systems for treating acne and skin conditions |
KR101938187B1 (ko) * | 2017-01-03 | 2019-01-14 | (주)엠큐어 | 약물주입홀의 개폐가 가능한 니들모듈 |
KR101929761B1 (ko) * | 2017-01-03 | 2018-12-17 | (주)엠큐어 | 약물주입홀이 형성된 니들모듈 |
CN110582245B (zh) | 2017-03-27 | 2022-09-16 | 诺服塞尔有限公司 | 用于皮内溶液递送的系统、设备和方法 |
US11076879B2 (en) | 2017-04-26 | 2021-08-03 | Zeltiq Aesthetics, Inc. | Shallow surface cryotherapy applicators and related technology |
CA3092248A1 (en) | 2018-02-26 | 2019-08-29 | Mirko Mirkov | Q-switched cavity dumped sub-nanosecond laser |
CN110604867B (zh) * | 2018-06-15 | 2024-08-02 | 海创医疗科技(深圳)有限公司 | 一种超声中频导药仪 |
KR20210038661A (ko) | 2018-07-31 | 2021-04-07 | 젤티크 애스세틱스, 인코포레이티드. | 피부 특성을 개선시키기 위한 방법, 장치, 및 시스템 |
US11622943B2 (en) * | 2019-05-10 | 2023-04-11 | Chamkurkishtiah Panduranga Rao | System and method for allergen-specific epicutaneous immunotherapy |
EP3969099A4 (en) | 2019-05-16 | 2023-06-21 | University of Pittsburgh - of the Commonwealth System of Higher Education | MICRONNEEDLE ARRANGEMENTS WITH UNDERCUT FEATURES FOR CUTANEOUS AND NON-CUTANEOUS DRUG DELIVERY |
CN112490602B (zh) * | 2020-10-19 | 2021-09-24 | 电子科技大学 | 一种基于多层结构的THz导波调控装置 |
EP4482415A1 (en) * | 2022-02-24 | 2025-01-01 | Teoresi S.p.A. | Device for inducing cell permeability in a portion of tissue by opto-poration |
Family Cites Families (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS5850905Y2 (ja) * | 1981-05-27 | 1983-11-19 | 桜アルミ株式会社 | 温熱治療器 |
JPS58121943A (ja) * | 1982-01-16 | 1983-07-20 | 小林 敏男 | 高周波脱毛装置用脱毛針 |
JPS6268466A (ja) * | 1985-09-24 | 1987-03-28 | 大盛商事株式会社 | つぼ当て治療器 |
US4775361A (en) * | 1986-04-10 | 1988-10-04 | The General Hospital Corporation | Controlled removal of human stratum corneum by pulsed laser to enhance percutaneous transport |
US5749847A (en) * | 1988-01-21 | 1998-05-12 | Massachusetts Institute Of Technology | Delivery of nucleotides into organisms by electroporation |
DE68925030T2 (de) * | 1988-01-21 | 1996-07-25 | Massachusetts Inst Technology | Molekültransport durch gewebe mit der verwendung von elektroporation. |
US5115805A (en) * | 1990-02-23 | 1992-05-26 | Cygnus Therapeutic Systems | Ultrasound-enhanced delivery of materials into and through the skin |
JPH04150871A (ja) * | 1990-10-12 | 1992-05-25 | Azusa Eng:Kk | 流動磁場応用健康用具 |
IT1244667B (it) * | 1991-03-28 | 1994-08-08 | Enea | Procedimento di microperforazione laser di cellule. |
CA2066963A1 (en) * | 1991-05-15 | 1992-11-16 | Norio Daikuzono | Laser light irradiation apparatus |
US5225282A (en) * | 1991-12-13 | 1993-07-06 | Molecular Bioquest, Inc. | Biodegradable magnetic microcluster comprising non-magnetic metal or metal oxide particles coated with a functionalized polymer |
JP3368603B2 (ja) * | 1992-02-28 | 2003-01-20 | オリンパス光学工業株式会社 | 遺伝子治療用処置具 |
EP0637942B1 (en) * | 1992-04-24 | 1999-05-06 | Surgical Laser Technologies, Inc. | Medical device |
US5342355A (en) * | 1992-10-19 | 1994-08-30 | Laser Centers Of America | Energy delivering cap element for end of optic fiber conveying laser energy |
US5643252A (en) * | 1992-10-28 | 1997-07-01 | Venisect, Inc. | Laser perforator |
US5458140A (en) * | 1993-11-15 | 1995-10-17 | Non-Invasive Monitoring Company (Nimco) | Enhancement of transdermal monitoring applications with ultrasound and chemical enhancers |
WO1995028144A1 (en) * | 1994-04-13 | 1995-10-26 | Ciba-Geigy Ag | Temporally controlled drug delivery systems |
CA2194010A1 (en) * | 1994-06-24 | 1996-01-04 | Ooi Wong | Pulsatile delivery systems of biologically active agents using electro voltage pulsing for controlling membrane permeability |
US5586981A (en) * | 1994-08-25 | 1996-12-24 | Xin-Hua Hu | Treatment of cutaneous vascular and pigmented lesions |
AU5869796A (en) * | 1995-05-22 | 1996-12-11 | Ned A. Godshall | Micromechanical patch for enhancing the delivery of compound s through the skin |
AU725269B2 (en) * | 1995-07-25 | 2000-10-12 | Massachusetts Institute Of Technology | Enhanced transdermal transport using ultrasound |
JP3899427B2 (ja) * | 1995-08-29 | 2007-03-28 | アルテア セラピューティクス コーポレイション | 薬物送達および鑑視適用のためのヒト皮膚の微細穿孔 |
CA2259437C (en) * | 1996-07-03 | 2006-12-05 | Altea Technologies, Inc. | Multiple mechanical microporation of skin or mucosa |
-
1997
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