CN107603960A - 乙酰辅酶a羧化酶除草剂抗性植物 - Google Patents

Abstract

本发明提供了产生对除草剂具有抗性的作物植物的组合物和方法。特别地，本发明提供了含有改变的乙酰辅酶A羧化酶(ACCase)基因和蛋白，并对除草剂的抑制作用具有抗性的小麦植物、植物组织和植物种子，所述除草剂通常抑制ACCase蛋白的活性。

Description

乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性植物

本申请是申请日为2012年1月31日，申请号为201280016882.X，标题为“乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性植物”的专利申请的分案申请。

相关申请的交叉引用

本申请要求2011年2月1日提交的美国临时申请No.61/438,294和2011年10月31日提交的美国临时申请No.61/553830的优先权，在此通过引用将上述申请以其全部并入本文之中。

技术领域

本发明提供了产生对除草剂具有抗性的作物植物的方法和组合物。特别地，本发明提供了含有修饰的乙酰辅酶A羧化酶(ACCase)基因和蛋白质，并对除草剂的抑制作用具有抗性的小麦植物、植物组织和植物种子，所述除草剂通常抑制ACCase蛋白的活性。

背景技术

小麦是全球种植和最具有广泛适应性的谷物。普通小麦用于各种食品中，例如面包、饼干、蛋糕、薄脆饼干和面条。一般来说，将硬质小麦碾磨成面粉用于制作面包，而软质小麦碾磨成面粉则用于糕点和饼干。小麦淀粉用于食品和造纸工业，如洗衣用淀粉，以及其他产品。

商业小麦生产的主要威胁是杂草竞争，这会导致谷物产量降低和质量低劣。虽然可以用耕作来消除杂草，但是经耕种的土地的土壤易受到风和水的侵蚀。由于便于应用和有效性，除草剂处理是控制杂草的首选方法。在减少耕地或设计在土壤表面留下高水平残留物以防止侵蚀的直播种植系统中，除草剂也可以进行杂草控制。小麦中最重要的杂草竞争来自于与其高度相关的草，例如野燕麦和具节山羊草，很难对这些与栽培作物相关的问题杂草种类设计有效的化学控制策略，这是因为它们往往具有相同的除草剂敏感性。为了解决这一问题，其中的一个方法是开发抗除草剂的品种。在这个系统中，在“作物中”施用除草剂以控制杂草，而不对除草剂耐受性的作物造成伤害。

植物中除草剂抗性的开发提供了重要的生产和经济优势；因此，使用除草剂来控制作物中的杂草或植物几乎成为普遍惯例。然而，此类除草剂的使用也会造成所需作物植物的死亡或生长的降低，这使得除草剂应用的时间和方法相当关键或者在某些情况下根本是不可行的。

对于农民而言，特别感兴趣的是使用具有更大效力、广杂草谱有效性和快速土壤降解的除草剂。通过允许使用除草剂来控制杂草生长并且没有损害作物的风险，对这些化合物具有抗性的植物、植物组织和种子提供了具有吸引力的解决方案。广谱除草剂的其中一类是那些能抑制植物中乙酰辅酶A羧化酶(ACCase)活性的化合物。此类除草剂属于芳氧基苯氧基丙酸酯类(FOP)和环己二酮类(DIM)化学家族。例如，小麦对于许多靶向单子叶植物的ACCase抑制性除草剂是易感的，这使得几乎不可能使用这些除草剂来控制禾本科杂草。

由于小麦在世界舞台上作为作物植物的重要性，需要对ACCase除草剂的抑制效果具有抗性的小麦杂种，从而当使用除草剂来控制禾本科杂草时允许更大的作物产量。

发明概述

本发明提供了产生对除草剂具有抗性的作物植物的方法和组合物。特别地，本发明提供了含有突变的乙酰辅酶A羧化酶(ACCase)基因和蛋白质，并对除草剂的抑制作用具有抗性的小麦植物、品种、品系和杂种、以及植物组织和植物种子，所述除草剂通常抑制ACCase蛋白的活性。

栽培小麦对许多靶向单子叶或禾本科杂草的ACCase抑制性除草剂是易感的。然而，如本文所述，创建了对ACCase抑制性除草剂表现出耐受性的小麦基因型。遗传分析已经在突变体小麦种质中鉴定出了导致ACCase除草剂抗性表型的遗传差异。

在一个实施方式中，本发明提供了一种或多种小麦植物，其种质包含能够使植物对ACCase除草剂具有抗性的突变。此外，在进一步的实施方式中，本发明涉及所述植物杂交的后代(例如，F1，F2，F3等)，其中所述后代的种质具有与亲本植物相同的突变。因此，本发明的实施方式提供了其种质中含有突变的小麦品种/杂种，因此该植物的表型是ACCase除草剂抗性的。在一些实施方式中，所述后代(例如，F1，F2，F3等)是良种小麦品系相互杂交的结果，其中所述良种小麦品系至少一种含有包含能使植物对ACCase除草剂具有耐受性的突变的种质。

在一个实施方式中，本发明提供了小麦植物，其中所述小麦植物种质赋予对如下水平的一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性，所述一种或多种除草剂的水平通常会抑制小麦植物生长。在一些实施方式中，所述一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂来自于芳氧基苯氧基丙酸酯类(FOP)和环己二酮类(DIM)化学品家族。在一些实施方式中，所述赋予对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性的小麦植物种质包含在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCC No.___)中所发现的乙酰辅酶A羧化酶基因中的一个或多个突变。

在另外的实施方式中，本发明提供了控制小麦植物或植物种群附近的杂草的方法，包括：提供一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂，将一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂施用到包含小麦植物或小麦植物种群的农田中，和控制所述小麦植物或植物种群附近的杂草，使得杂草的生长受到所述一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂的施用的不利影响，而所述小麦植物或其种群的生长没有受到不利影响。在一些实施方式中，所述一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂来自于芳氧基苯氧基丙酸酯类(FOP)和环己二酮类(DIM)化学家族。在一些实施方式中，所述小麦植物或小麦植物种群包含在AF28-A，AF26-B和/或AF10-D(ATCCNo.___)中所发现的乙酰辅酶A羧化酶基因中的一个或多个突变。

在另外的实施方式中，本发明提供了小麦杂种、品系或品种，其中所述小麦杂种、品系或品种包含的种质包含乙酰辅酶A羧化酶基因中的一个或多个突变，以使得所述杂种、品系或品种被赋予对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂的抗性。在一些实施方式中，通过包含所述一种或多种突变的小麦种质的渐渗来创建所述的小麦杂种、品系或品种，所述突变赋予对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂的抗性。在一些实施方式中，通过掺入包含一个或多个突变的异源基因来创建所述的小麦杂种、品系或品种，所述突变赋予对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂的抗性。

在另外的实施方式中，本发明提供了产生对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂具有抗性的小麦杂种、品系或品种的方法，包括鉴定赋予所述除草剂抗性的种质，其中所述除草剂抗性种质衍生自除草剂抗性小麦植物，和将所述种质导入到良种小麦植物杂种、品系或品种中。在一些实施方式中，通过渐渗来将所述种质导入到所述良种小麦植物杂种、品系或品种中。在一些实施方式中，通过导入异源基因来将所述种质导入到所述良种小麦植物杂种、品系或品种中。

还是在另外的实施方式中，本发明提供了小麦杂种、品系或品种，其中所述杂种、品系或品种的种质包含被赋予的对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂的抗性，以及对来自一个或多个非乙酰辅酶A羧化酶抑制剂的除草剂组中的一种或多种化合物的抗性。

还是在另外的实施方式中，本发明提供了鉴定对乙酰辅酶A羧化酶除草剂具有抗性的小麦植物品系的方法，包括提供来自小麦植物的核酸样品，提供扩增引物，用于扩增存在于所述核酸样品中的对应于乙酰辅酶A羧化酶基因的小麦植物基因组区域，将所述扩增引物应用于所述核酸样品，使得发生所述乙酰辅酶A羧化酶基因的所述区域的扩增，并基于所述扩增的核酸样品中赋予乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性的一个或多个突变的存在来鉴定对乙酰辅酶A羧化酶除草剂具有抗性的小麦植物。

仍然在另外的实施方式中，本发明提供了小麦种子，其中所述种子的所述种质包含突变的乙酰辅酶A羧化酶基因，所述突变赋予对乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性。在一些实施方式中，所述小麦种子的种质包含在AF28-A，AF26-B和/或AF10-D(ATCCNO：___)中所发现的突变体乙酰辅酶A羧化酶基因。在一些实施方式中，本发明提供了由所述种子生长得到的小麦植物，以及进一步的包含由所述种子生长得到的小麦植物的植物部分。在一些实施方式中，乙酰辅酶A羧化酶基因是AF28-A，AF26-B和/或AF10-D(ATCCNO：___)中所发现的基因的功能性片段，该基因片段编码的蛋白质片段足以将对乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性赋予小麦植物。在一些实施方式中，本发明提供了由所述种子生长得到的小麦植物，以及进一步的包含由所述种子生长得到的小麦植物的植物部分。

在一些实施方式中，本发明提供了来自小麦的纯化和分离的核酸序列，其编码乙酰辅酶A羧化酶。根据本发明，从B、D和A基因组中鉴定出了编码乙酰辅酶A羧化酶的野生型序列(分别为SEQ ID NO：1、2和3)。另外，每个基因组的提供乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性的突变已经被鉴定出来，分别是SEQ ID NO：4、5和6。对于每个基因组，A基因组，(SEQ ID NO：8)；B基因组，(SEQ ID NO：10)；D基因组，(SEQ ID NO：12)，该突变表示在氨基酸2004位置上的Ala向Val的改变(以标准黑草参考序列gi|199600899|emb|AM108429.1和gi|199600901|emb|AM108430.1为参考，SEQ ID No：13、14、15和16，也见图9)。本发明还包括由这些序列编码的氨基酸，包括SEQ ID NO：7、8、9、10、11或12，以及保守性修饰的变体，和保留ACCase活性的片段及提供乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性的突变体。

因此，本发明的组合物包括分离的多肽，该多肽包含选自由以下组成的组中的氨基酸序列：(a)包含SEQ ID NO：7、9或11和SEQ ID NO：8、10或12的氨基酸序列和(b)与SEQID NO：7、9或11和SEQ ID NO：8、10或12具有至少90％、95％或99％序列相同性的氨基酸序列，其中所述多肽具有ACCase活性或提供对乙酰辅酶A羧化酶除草剂的抗性。

本发明还包括含有异源核苷酸序列的小麦植物，该核苷酸序列与SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6或者在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCC NO：____)中所发现的乙酰辅酶A羧化酶序列具有至少70％同源性，至少80％同源性，至少85％同源性，至少90％同源性，至少95％同源性，至少97％同源性，或至少99％同源性。在一些实施方式中，所述乙酰辅酶A羧化酶序列编码或包含一个或多个氨基酸取代，例如，在SEQ ID NO：8中发现的Ala2004Val，在SEQID NO：10中发现的__，在SEQ ID NO：12中发现的__。

在一个实施方式中，本发明还提供了具有由所述种子生长得到的所述小麦植物的所有生理学和形态学特征的小麦杂交植物。在另外的实施方式中，本发明提供了来自于所述小麦种子或所述小麦植物部分的组织培养物和再生组织培养物，所述小麦种子或所述小麦植物部分包含在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCC NO：___)中所发现的乙酰辅酶A羧化酶基因中的突变。

在一个实施方式中，本发明提供了产生小麦种子的方法，包括将包含突变体乙酰辅酶A羧化酶基因(在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCC NO：___)中所发现)的植物进行自交或与第二小麦植物进行杂交，从所述杂交中收集所述种子。在一些实施方式中，产生所述小麦种子的方法包括将亲本种子小麦品系与亲本授粉小麦品系一起种植，其中所述亲本种子品系包含赋予乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性的种质，其中所述授粉系和/或种子品系的种质包含赋予乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性的种质，使所述亲本种子和授粉小麦植物一起生长，使得所述亲本授粉植物向所述亲本种子植物授粉，并收集由所述授粉产生的种子。

在另一个实施方式中，本发明提供了掺入了异源核苷酸构建体的遗传修饰的小麦植物，该构建体包括可操作地连接到调控序列的SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6，例如表达盒，抑制构建体，植物，植物细胞和种子。本发明的遗传修饰的植物、植物细胞和种子可能会表现出表型的改变，例如经调控的ACCase或突变体ACCase水平。

提供了减少或消除植物中ACCase多肽活性的方法，包括将选定的多核苷酸导入到所述植物中。在特定的方法中，提供所述多核苷酸降低植物中ACCase的水平。

还提供了在植物中组成型地或在具体调控的时间和组织中提高突变体ACCase多肽水平的方法，包括将选定的多核苷酸与合适的调控元件导入到植物中。在具体的方法中，突变体ACCase多核苷酸的表达提高植物对ACCase除草剂的耐受性。

附图说明

图1是所发现的第一种除草剂耐受植物的图片。该植物在烯草酮除草剂的两次致死施用下存活。

图2是两株M2亲本的种子生长得到的M3植物的图片。用两个连续等级的致死剂量喹禾灵处理植物。左边的植物在除草剂的两个施用下存活，而右边的植物在除草剂的一次施用后死亡。

图3是剂量反应研究的图片，其显示，相比起未诱变的Hatcher冬小麦，M3代中所选择的突变体植物对喹禾灵除草剂耐受性提高。1、3和4栏是所针对增高的除草剂耐受性选择的植物；2栏是未诱变的Hatcher冬小麦。

图4是来自A、B和D基因组的ACCase基因以及突变体AF28-A的ACCase基因、突变体AF26-B和突变体AF10-D基因的序列。

图5的图像描述了用喹禾灵筛选的源自M2的M3突变体的肉眼可见的损伤。水平线以下的数值与未诱变的Hatcher检查不同，由最左侧的标尺代表。

图6的图像描述了用喹禾灵进行的剂量响应试验，其将未诱变的Hatcher对照(由最左侧的标尺代表)与M2-所选择的M3品系进行比较。

图7的图像展示了小麦A、B、D基因组中野生型和突变体ACCase序列的对比，包括每个突变体序列中新发现的一个非同义单核苷酸多态性(SNP)。

图8的图像显示了随着喹禾灵浓度的提高，ACCase酶耐受性的比较。

图9显示了将本发明的序列与黑草参考序列进行比对以及相互之间进行比对。

定义

为了提供对于说明书和权利要求书，包括此类术语的范围的明确和一致的理解，提供了下述定义。以SI接受的形式来表示单位、前缀和符号。除非另有说明，核酸的5’至3’方向在书写时是从左到右；氨基酸序列的氨基至羧基的方向在书写时是从左至右。数字范围包括定义该范围的数字，并且包括在所定义范围内的每个整数。本文中的氨基酸可以以它们公知的三个字母的符号或由IUPAC-IUB生化命名委员会所推荐的一个字母的符号来表示。同样的，核苷酸也可以以它们公知认可的单字母代码来表示。除非另有规定，本文所使用的软件、电学和电子术语如The New IEEE Standard Dictionary of Electrical andElectronics Terms(第5版，1993)所定义。下面所定义的术语是参照说明书整体来进行更充分的定义。

术语“保守性修饰变体”适用于氨基酸和核酸序列。对于特定的核酸序列，保守性修饰变体是指那些编码相同氨基酸序列或氨基酸序列的保守性修饰变体的核酸。由于遗传密码的简并性，大量功能相同的核酸编码任意给定的蛋白。例如，密码子GCA、GCC、GCG和GCU全部都编码氨基酸丙氨酸。因此，在用密码子指定丙氨酸的每个位点，可将密码子改变为所描述的任意相应密码子，而不会改变编码的多肽。这种核酸变体是“无义变体”，代表着一种保守性修饰变体。通过参照遗传密码子，本文中编码多肽的每条核酸序列都描述了每种可能的核酸无义变体。本领域普通技术人员将认识到，核酸中的每个密码子(除了AUG，其通常是甲硫氨酸的唯一密码子；以及UGG，其通常是色氨酸的唯一密码子)都能被修饰以产生相同功能的分子。因此，编码本发明多肽的核酸序列的每个无义变体都隐含在每个所描述的多肽序列中，也在本发明的范围之内。

至于氨基酸序列，本领域普通技术人员将认识到，在编码序列中改变、添加或缺失了单个氨基酸或小百分比的氨基酸的对核酸、肽、多肽或蛋白质序列的个别取代、缺失或插入改变是“保守性修饰变体”，这种改变导致氨基酸被化学性质相似的氨基酸所取代。因此，选自1至15中的任意整数个氨基酸残基都可以被如此改变。因此，例如，可以进行1、2、3、4、5、7或10个氨基酸的改变。保守性修饰变体通常能够提供与衍生出该变体的未修饰多肽序列类似的生物活性。保守取代表格提供的功能类似的氨基酸在本领域都是公知的。

下面6组中每组含有的是相互之间为保守性取代的氨基酸。

1)丙氨酸(A)，丝氨酸(S)，苏氨酸(T)；

2)天冬氨酸(D)，谷氨酸(E)；

3)天冬酰胺(N)，谷氨酰胺(Q)；

4)精氨酸(R)，赖氨酸(K)；

5)异亮氨酸(I)，亮氨酸(L)，甲硫氨酸(M)，缬氨酸(V)以及

6)苯丙氨酸(F)，酪氨酸(Y)，色氨酸(W)。

同样参见Creighton(1984)Proteins W.H.Freeman and Company。本文所涉及到的任何序列都应当被解释为包括保守修饰变体。

对于具体的核酸，“编码(encoding)”或“被编码(encoded)”意为包括翻译成具体蛋白质的信息。编码蛋白的核酸可以在核酸的翻译区域包含非翻译序列(例如，内含子)，或者可以缺乏这种插入的非翻译序列(例如，在cDNA中)。使用密码子来表示编码蛋白质的信息。通常，核酸使用“通用”遗传密码子来编码氨基酸序列。然而，通用密码子的变体，例如存在于一些植物、动物和真菌的线粒体、细菌山羊衣原体、或纤毛虫大核中的通用密码子的变体，当核酸在它们之中表达时，可使用这些密码子变体。

当使用合成方法来制备或改变核酸时，可以利用在核酸要表达的预期宿主中已知的密码子偏好。例如，虽然本发明的核酸序列可以在单子叶植物和双子叶植物品种中表达，但是由于这些偏好已经显示出不同，因此要对序列进行修饰以考虑单子叶植物或双子叶植物的具体密码子偏好和GC含量偏好。

如本文所使用的，当涉及核酸时的“异源”是来自于外源物种的核酸，或，如果是来自于相同的物种，则基本上是通过人为故意干预从其天然形式在组成上和/或对基因组基因座进行修饰得到的核酸。例如，可操作地连接到异源结构基因上的启动子所来自的物种与结构基因所来源的物种不同，或者，如果来自于相同的物种，其中一个或两个基本上由它们的原始形式修饰得到。异源蛋白可以来源于外源物种，或者，如果来自于相同的物种，则基本上是通过人为故意干预而由其原始形式修饰得到的。

“宿主细胞”是指包含载体，并支持该载体复制和/或表达的细胞。宿主细胞可以是原核细胞如大肠杆菌，或真核细胞如酵母、昆虫、两栖动物或哺乳动物细胞。优选地，宿主细胞是单子叶植物或双子叶植物细胞。特别优选的单子叶植物宿主细胞是玉米宿主细胞。

在将核酸插入细胞的内容中，术语“导入”是指“转染”或“转化”或“转导”，包括涉及将核酸掺入到真核或原核细胞中，其中核酸可以掺入细胞的基因组中(例如，染色体、质粒、质体或线粒体DNA)，转变成自主复制子，或瞬时表达(例如，转染的mRNA)。

术语“分离的”指的是物质，例如核酸或蛋白，其(1)基本上或根本上是不含通常是伴随在一起的或发现在其天然存在的环境中是与其相接触的组分。分离的物质任选包括在其天然环境中没有发现与该物质在一起的物质；或者(2)如果该物质处于其天然环境中，则通过人为故意干预对该物质合成地(非天然地)改变其组成和/或将其置于对于在该环境中发现的物质是非天然的细胞位置中(例如，基因组或亚细胞器)。可以对处于其天然状态下或从其天然状态下移出的物质进行改变以产生合成的物质。例如，如果在核酸所来源的细胞中通过人为干预的方法对核酸进行改变，或者如果是由被改变的DNA转录，则天然存在的核酸就变为分离的核酸。见，例如Compounds and Methods for Site DirectedMutagenesis in Eukaryotic Cells，Kmiec，U.S.Pat.NO.5,565,350；In Vivo HomologousSequence Targeting in Eukaryotic Cells；Zarling et al.，PCT/US93/03868。同样的，如果通过非天然存在的方法将核酸导入到对于该核酸是非天然的基因组基因座，则天然存在的核酸(例如，启动子)就变成分离的核酸。本文所定义的“分离的”核酸同样也被称为“异源的”核酸。

本文所用的“核酸”包括脱氧核糖核苷酸或核糖核苷酸的单链或双链形式的聚合物，除非另有限定，还包括具有天然核苷酸基本特征的已知类似物，即它们杂交到单链核酸上的方式与天然存在的核苷酸类似(例如，肽核酸)。

“核酸文库”是指分离的DNA或cDNA分子的集合，其包括并基本上代表了指定生物体基因组的整个转录部分。示例性核酸文库的构建，例如基因组和cDNA文库的构建在标准分子生物学参考文献中有所教导，例如Berger and Kimmel，Guide to Molecular CloningTechniques，Methods in Enzymology，Vol.152，Academic Press，Inc.，San Diego，Calif.(Berger)；Sambrook et al.，Molecular Cloning--A Laboratory Manual，2nd ed.，Vol.1-3(1989)；以及Current Protocols in Molecular Biology，F.M.Ausubel et al.，Eds.，Current Protocols，a joint venture between Greene Publishing Associates，Inc.and John Wiley&Sons，Inc.(1994)。

本文所使用的“可操作地连接”包括启动子和第二序列之间的功能性连接，其中启动子序列起始和介导第二序列对应的DNA序列的转录。一般来说，可操作地连接意味着所连接的核酸序列是连续的，并且如果要连接两个蛋白编码区，所连接的核酸序列是连续的并处于相同读码框中。

除非另有说明，术语“ACCase核酸”是指包含多核苷酸(“ACCase多核苷酸”)的核酸，该多核苷酸编码具有ACCase活性的ACCase多肽，并包括所有的保守性修饰变体，同源旁系等等。“ACCase基因”是本发明的基因，是指全长ACCase多核苷酸的异源基因组形式。

本文所使用的术语“植物”可以包括整个植物、植物部分或器官(例如，叶、茎、根等)、植物细胞、种子及后代。植物细胞，如本文所使用的，进一步包括而不限于获自种子、悬浮培养物、胚胎、分生组织、愈伤组织、叶、根、茎、配子体、孢子体、花粉、小孢子或从中发现的细胞。植物细胞也可以理解为包括修饰的细胞，例如，从上述组织中获得的原生质体。能够在本发明的方法中使用的植物的种类范围与适合于转化技术的高等植物范围相同，包括单子叶植物和双子叶植物。特别优选的植物包括玉米、大豆、向日葵、高粱、油菜、小麦、苜蓿、棉花、稻、大麦和小米。

如本文中所使用的，“多核苷酸”包括脱氧核糖核苷酸、核糖核苷酸或其类似物，所述类似物具有天然核糖核苷酸的必要特征，在严格条件下与天然存在的核苷酸杂交至基本上相同的核苷酸序列上，和/或允许与天然存在的核苷酸一样翻译成相同的氨基酸。多核苷酸可以是天然或异源的结构基因或调节基因的全长或亚序列。除非另有表示，该术语包括涉及具体的序列及其互补序列。因此，出于稳定性或其它原因而经过主链修饰的DNA或RNA与也是本文所指的术语“多核苷酸”。此外，包含不常见碱基(例如肌苷)或修饰的碱基(例如三苯甲基化的碱基)的DNA或RNA(仅仅举两个例子)也是本文所使用的术语“多核苷酸”。可以认识到，已经对DNA和RNA进行许多种的修饰以实现本领域技术人员所已知的多种有用目的。这里所采用的术语多核苷酸包括多核苷酸的化学、酶或代谢性修饰的形式，以及病毒和细胞(包括简单和复杂的细胞)的特征性DNA和RNA化学形式。

本文所使用的术语“多肽”、“肽”和“蛋白质”可以互换使用，是指氨基酸残基的聚合物。该术语适用于其中一个或多个氨基酸残基是相应天然存在氨基酸的人工化学类似物的氨基酸聚合物，以及天然存在的氨基酸聚合物。天然存在氨基酸的此类类似物的基本特征是，当掺入到蛋白质中时，该蛋白对完全由天然存在氨基酸所组成的相同蛋白所激发的抗体也具有特异性反应性。术语“多肽”、“肽”和“蛋白质”还包括修饰，包括但不限于糖基化、脂质连接、硫酸化、谷氨酸残基的γ-羧化、羟化和ADP-核糖基化。可以认识到，众所周知并如上所述，多肽并不是完全的线性。例如，由于泛素化，多肽可以是分支的，它们也可以是环状的，具有或不具有分支，通常是由于翻译后事件的结果，包括天然发生事件和人为操纵的非天然发生的事件。环状、分支和分支环状的多肽可以通过非翻译的天然过程和完全的合成方法来进行合成。此外，本发明涉及本发明蛋白质的氨基末端含甲硫氨酸和不含甲硫氨酸变体的用途。

本文所使用的“启动子”包括转录起始位点上游的，并且参与RNA聚合酶和其他蛋白质识别和结合以进行转录起始的DNA区域。“植物启动子”是能够在植物细胞中起始转录的启动子，无论其来源是否是植物细胞。示例性的植物启动子包括，但不限于获自植物、植物病毒和包含在植物中表达的基因的细菌(例如农杆菌或根瘤菌)的那些启动子。处于发育控制下的启动子的示例包括能优先在特定组织中(例如叶、根、或种子)起始转录的启动子。这种启动子被称为“组织优先性”。只在特定组织中起始转录的启动子被称为“组织特异性”。“细胞类型”特异性启动子主要是在一种或多种器官的特定细胞类型中驱动表达，例如，根和叶中的维管细胞。“诱导型”或“抑制型”启动子是处于环境控制之下的启动子。可能影响诱导型启动子驱动转录的环境条件的示例包括厌氧条件或存在光。组织特异性、组织优先性、细胞类型特异性和诱导性启动子构成了“非组成型”启动子类型。“组成型”启动子是在大多数环境条件下都具有活性的启动子。

本文所使用的“重组”或“基因修饰”包括通过导入异源核酸而被改变的细胞或载体，或者衍生自所述被修饰细胞的细胞。因此，例如，重组或基因修饰细胞表达并没有发现在细胞天然形式中(未重组)以相同形式存在的基因，或者表达由于人为的故意干预而异常表达、低表达或根本不表达的天然基因。本文所使用的术语“重组”或“遗传修饰”并不包括由天然发生事件造成的细胞或载体的改变(例如，自发突变、自然转化/转导/转座)例如非人为故意干预而发生的那些事件。

本文所使用的“表达盒”是核酸构建体，由重组或合成所产生，具有能够允许特定核酸在宿主细胞中转录的一系列核酸元件。重组表达盒能够掺入到质粒、染色体、线粒体DNA、质体DNA、病毒或核酸片段中。通常，表达载体的重组表达盒部分除其他序列外，包括待转录的核酸和启动子。

术语“残基”或“氨基酸残基”或“氨基酸”在本文中可互换使用，是指掺入蛋白质、多肽或肽(统称“蛋白质”)的氨基酸。氨基酸可以是天然存在的氨基酸，除非另有限定，也可包括天然氨基酸的非天然类似物，该类似物与天然存在的氨基酸功能类似。

术语“选择性杂交”包括在严格杂交条件下，核酸序列与指定的核酸靶序列的杂交的可检测性程度要大于(例如，至少是背景的2倍)其与非靶核酸序列的杂交，并基本上排除了非靶核酸。选择性杂交序列彼此之间通常具有约至少80％的序列相同性，优选90％序列相同性，最优选100％的序列相同性(例如，互补)。

术语“严格条件”或“严格杂交条件”包括在该条件下，探针与其靶序列杂交的可检测性程度要大于与其他序列杂交的程度(例如，在背景之上至少2倍)。严格条件是序列依赖性的，并且在不同的情况下是不同的。通过控制杂交和/或洗涤条件的严格性，可以鉴定出与探针100％互补的靶序列(同源探测)。另外，可以调整严格条件以允许序列中有一些错配，以使得可以检测出较低程度的相似性(异源探测)。一般来说，探针的长度小于1000个核苷酸，优选其长度小于500个核苷酸。

通常，严格条件是盐浓度小于1.5M Na离子，通常约0.001至1.0M Na离子浓度(或其他盐类)，pH 7.0至8.3，对于短探针(例如，10至50个核苷酸)温度至少约为30℃，对于长探针(例如大于50个核苷酸)至少为约60℃的条件。也可以加入去稳定剂例如甲酰胺来达到严格条件。示例性的低严格条件包括在30-35％甲酰胺，1M NaCl，1％SDS的溶液中，在37℃下杂交，以及在1X至2X SSC中(20X SSC＝3.0M NaCl/0.3M柠檬酸三钠)，在50℃至55℃下洗涤。示例性的中等严格条件包括在40-45％甲酰胺，1M NaCl，1％SDS的溶液中，在37℃下杂交，以及在0.5X至tX SSC中，在55℃至50℃下洗涤。示例性的高严格条件包括在50％甲酰胺，1M NaCl，1％SDS的溶液中，在37℃下杂交，以及在0.1X SSC中，在60℃下洗涤20分钟。

特异性通常是杂交后洗涤的函数，关键因素为离子强度和最终洗涤溶液温度。对于DNA-DNA杂交，可以从Meinkoth and Wahl，Anal.Biochem.，138：267-284(1984)的方程中估算Tm：T_m＝81.5℃.+16.6(log M)+0.41(％GC)-0.61(％form)-500/L，其中M是一价阳离子的摩尔浓度，％GC是DNA中鸟苷酸和胞嘧啶核苷酸的比例，％form是甲酰胺在杂交溶液中的比例，L是杂交的碱基对的长度。Tm是这样的温度(在特定的离子强度和pH下)，在该温度下，有50％的互补序列与完美匹配的探针杂交。对于每1％的错配，Tm减少约1℃；因此，可以调整Tm、杂交和/或洗涤条件以杂交到具有所需相同性的序列上。举例而言，如果需要找寻具有.gtoreq.90％相同性的序列，则可Tm降低10℃。通常，对于在具体离子强度和pH下的特异性序列及其互补序列，所选择的严格条件要比热熔点(Tm)低约5℃。然而，非常严格条件可以利用在比热熔点(Tm)低1、2、3、4、5或6℃下的杂交和/或洗涤；中等严格条件可以利用在比热熔点(Tm)低7、8、9或10℃下的杂交和/或洗涤；低严格条件可以利用在比热熔点(Tm)低11、12、13、14、15或20℃下的杂交和/或洗涤。使用该方程、杂交和洗涤组合物以及所需的Tm，本领域普通技术人员将会理解也隐含描述了杂交和/或洗涤溶液严格性的其他变化形式。如果所需的错配程度导致Tm小于45℃(水溶液)或32℃(甲酰胺溶液)，则优选提高SSC的浓度以使得使用更高的温度。对于核酸杂交的外延指导提供在Tijssen，LaboratoryTechniques in Biochemistry and Molecular Biology--Hybridization with NucleicAcids Probes，Part I，Chapter 2，Ausubel，et al.，Eds.，Greene Publishing andWiley-Interscience，New York(1995)中。一般而言，高严格洗涤是在含有0.1％SDS的0.5XSSC中，在65℃下洗涤2X 15分钟。

本文中所使用的“转基因植物”或“基因修饰植物”包括涉及在其基因组中包括异源多核苷酸的植物。通常，异源多核苷酸被稳定整合进基因组中，使得该多核苷酸能够传递给后代。异源多核苷酸可以单独或作为表达盒的部分而整合进基因组中。本文中所使用的“转基因”或“遗传修饰”包括任何细胞、细胞系、愈伤组织、组织、植物部分或植物，其基因型是通过异源核酸的存在而被改变，包括那些最初被改变的转基因，以及通过有性杂交或无性繁殖从最初转基因中创建出来的。这里所使用的术语“转基因”或“遗传修饰”并不包括由常规植物育种方法或天然发生事件造成的基因组(染色体或染色体外)改变，例如随机异体受精、非重组病毒感染、非重组细菌转化、非重组转位或自发突变。

本文中使用的“载体”包括用于转染宿主细胞并将多核苷酸插入其中的核酸。载体往往是复制子。表达载体允许插入其中的核酸进行转录。

用下列术语来描述两个或两个以上的核酸或多核苷酸序列之间的关系：(a)“参考序列”，(b)“比对窗口”，(c)“序列相同性”，(d)“序列相同性百分比”，和(e)“实质相同性”。

如本文中所使用的，“参考序列”是作为序列比对基础的确定序列。参考序列可能是特定序列的子集或全部；例如，是全长eDNA或基因序列的节段，或者是完整的eDNA或基因序列。

如本文中所使用的，“比对窗口”包括多核苷酸序列的连续和特定的节段，其中多核苷酸序列可以与参考序列进行比对，且其中与参考序列(其并不包含添加或缺失)相比，在比对窗口中的多核苷酸部分可以包括添加或缺失(例如，缺口)，以对两条序列进行最优比对。一般来说，对比窗口的长度为至少20个连续的核苷酸，优选可以是30、40、50、10020个连续的核苷酸或更长。本领域技术人员会理解，为了避免由于多核苷酸序列中包括缺口而使得与参考序列具有很高的相似性，通常导入缺口罚分，并从匹配数目中将其减去。

对序列进行对比的比对方法在本领域是已知的。对序列进行对比的最优比对可通过下述来实施：Smith和Waterman，Adv.Appl.Math.2：482(1981)的局部同源比对算法；Needleman and Wunsch，J.Mol.Biol.48：443(1970)的同源比对算法；Pearson andLipman，Proc.Natl.Acad.Sci.85：2444(1988)的搜索相似性方法；用计算机实现这些算法，包括，但不限于：Intelligenetics，Mountain View，Calif.的PC/Gene程序中的CLUSTAL；Genetics Computer Group(GCG)，575 Science Dr.，Madison，Wis.，USA，WisconsinGenetics Software Package中的GAP、BESTFIT、BLAST、FASTA和TFASTA；Higgins andSharp，Gene 73：237-244(1988)Higgins and Sharp，CABIOS 5：151-153(1989)；Corpet，etal.，Nucleic Acids Research 16：10881-90(1988)；Huang，et al.，ComputerApplications in the Biosciences 8：155-65(1992)以及Pearson，et al.，Methods inMolecular Biology 24：307-331(1994)中详细描述了CLUSTAL程序。可用于数据库相似性搜索的BLAST家族程序包括：用于在核苷酸数据库序列中用核苷酸查询序列的BLASTN；用于在蛋白质数据库序列中用核苷酸查询序列的BLASTX；用于在蛋白质数据库序列中用蛋白质查询序列的BLASTP；用于在核苷酸数据库序列中用蛋白质查询序列的TBLASTN；以及在核苷酸数据库序列中用核苷酸查询序列的TBLASTX。见Current Protocols in MolecularBiology，Chapter 19，Ausubel，et al.，Eds.，Greene Publishing and Wiley-Interscience，New York(1995)。

除非另有说明，本文所提供的序列相同性/相似性数值是指使用BLAST2.0程序套件，利用默认参数所得到的数值。Altschul et al.，Nucleic Acids Res.25：3389-3402(1997)。实施BLAST分析的软件是公众可获得的，例如，通过National Center forBiotechnology-Information www.hcbi.nlm.nih.gov/)。该算法包括首先通过在查询序列中确定长度为W的短字段来确定高得分序列对(HSP)，当与数据库序列中相同长度的字段比对时，其匹配或满足一些正值阈值得分T。T被称为相邻字串得分阈值(Altschul et al.，supra)。这些起始相邻字串命中作为种子发起搜索，以寻找含有它们的更长HSP。字串命中沿着每条序列向两个方向延伸，直到累积比对得分不再增加。对于核苷酸序列，使用参数M(对匹配残基对的奖励得分，总是＞0)和N(对错配残基的罚分，总是＜0)来计算累积得分。对于氨基酸序列，使用打分矩阵来计算累积得分。当：累积比对得分从其达到的最大值下降了数值X时；由于一个或多个负分值残基比对使累积得分达到0及0以下时；或者到达任何一条序列的末端时，停止命中字段在各个方向上的延伸。BLAST算法参数W、T和X决定了比对的敏感度和速度。BLASTN程序(对于核苷酸序列)使用的默认值为字串长度(W)为11，期望值(E)为10，阈值100，M＝5，N＝-4，以及两条链的比较。对于氨基酸序列，BLASTP程序使用的默认值为字串长度(W)为3，期望值(E)为10，以及BLOSUM62打分矩阵(see Henikoff&Henikoff(1989)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89：10915)。

除了计算序列相同性百分比，BLAST算法还可以实现两条序列之间的相似性数据分析(see，e.g.，Karlin&Altschul，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90：5873-5787(1993))。BLAST算法提供的其中一种相似性测量方法是最小和概率(P(N))，其表示了两个核苷酸或氨基酸序列之间偶然发生匹配的概率。

BLAST搜索假定可以将蛋白质建模为随机序列。然而，许多真实的蛋白质包含非随机序列的区域，该序列可以是同聚束(homopolymeric tract)、短周期重复、或富含一种或多种氨基酸的区域。这种低复杂度区域可以在互不相关的蛋白质之间比对，即使这些蛋白的其他区域完全不相似。可以采用一些低复杂度过滤程序来减少这种低复杂度比对。例如，可以单独或组合采用SEG(Wooten and Federhen，Comput.Chem.，17：149-163(1993))和XNU(Claverie and States，Comput.Chem.，17：191-201(1993))的低复杂度过滤。

在涉及两条核酸或多肽序列的内容中，本文所使用的“序列相同性”或“相同性”包括当以最大对应性进行比对时，在特定的比较窗口中两条序列相同的残基。当序列相同性百分比用于指蛋白质时，可以认为不相同残基位置的不同往往是由保守性氨基酸的取代所造成的，在该位置上的氨基酸残基被其他的具有相似化学性质(例如，电荷或疏水性)的氨基酸残基所代替，因此并不会改变分子的功能特性。当序列的不同是在于保守性取代时，可以向上校正序列相同性百分比以校准取代的保守性。由这种保守性的取代而不同的序列被称为具有“序列相似性”或“相似性”。进行校正的方法是本领域技术人员熟知的。通常涉及将保守性取代作为部分而不是完全的错配进行打分，因此增加了序列相同性百分比。因此，举个例子，相同的氨基酸所给的得分为1，而非保守性取代所给的得分为0，则保守性取代所给的得分为0至1之间。例如，根据Meyers and Miller，Computer Applic.Biol.Sci.，4：11-17(1988)的在程序PC/GENE(Intelligenetics，Mountain View，Calif.，USA)中所执行的算法来计算保守性取代的得分。

本文所使用的“序列相同性百分比”是指通过在一个比较窗口内比较两条最优比对的序列所确定的值，其中当与参考序列(其并不包含添加或缺失)进行比较时，多核苷酸序列在比较窗口中的部分可以包含添加或缺失(即间隙)，以实现两条序列的最优比对。通过以下来计算百分比：确定两条序列中出现相同核苷酸碱基或氨基酸残基的位置的数目，以产生匹配位置的数量，用比较窗口中位置的总数除匹配位置的数目，将结果乘以100，以产生序列相同性百分比。

本文所使用的术语“品种”和“栽培种”是指由给定基因型或基因型组合获得的特征表达所定义的植物，其通过表达至少一种所述特征而与其他的植物种群相区别，并且就其适合不变地进行繁殖而言可被认为是一个整体(unit)。

本文所使用的术语“杂种”是指在遗传学上不相似的植物亲本的后代或子代，或者是指与自然授粉所产生的非杂交种子相对的由控制交叉授粉而产生的原种(stock)。

本文所使用的术语“后代(progeny)”是指植物的世代，其中该世代的祖先可以追溯到所述植物。本文所使用的术语除草剂抗性植物的“后代”包括除草剂抗性植物的后代以及该植物的任何突变体、重组或遗传修饰的衍生植物，无论是相同的物种或不同的物种，其中原始除草剂抗性植物的除草剂抗性特性已经转移到所述后代植物中。

本文所使用的术语“植物组织”包括分化和未分化的植物组织，包括那些存在于根、枝条、叶、花粉、种子和瘤中的组织，以及培养中的细胞(例如，单细胞、原生质体、胚、愈伤组织等)。植物组织可以在植株中，在器官培养物，组织培养物或细胞培养物中。

本文所使用的术语“植物部分”在本文中使用是指植物结构或植物组织，例如，花粉、胚珠、组织、豆荚、种子和细胞。在本发明的一些实施方式中，转基因植物是作物植物。本文所使用的术语“作物”和“作物植物”是以它们的广义来使用的。该术语包括但不限于，可被人类食用的、用作动物或鱼类或海洋动物饲料的、或被人类食用或使用或观赏的任何种类的植物，或者是用于工业或商业或教育的任何植物。

本文所使用，涉及植物的术语“良种种质”是指被证明具有遗传优势的遗传材料。

本文所使用的术语“良种植物”是指对优良的农艺性能进行选择和育种所得到的任何植物。

本文所使用的术语“性状”是指生物体的可被观察和测量的特性。例如，本发明描述了对FOP和DIM除草剂具有抗性的植物。

本文所使用的术语“标记”和“DNA标记”以及关于“选择标记”的“分子标记”是指生理学或形态学性状，被确定为用于其本身的选择的标记或用于选择其他的与该标记紧密连锁的性状的标记。例如，这样的标记可以是与除草剂耐受性相关的基因或性状，包括但不限于简单重复序列(SSR)、单核苷酸多态性(SNP)、基因插入和/或缺失等等。

本文所使用的术语“渐渗(introgress)”和“渐渗(introgressing)”和“渐渗(introgression)”是指将外源遗传物质掺入育种原种品系的常规(即经典)授粉育种技术。例如，本发明提供了通过杂交两个植物世代而渐渗入除草剂耐受的突变体ACCase基因的小麦作物植物。

当涉及基因时，本文所使用的术语“野生型”是指在植物种群中常见的功能性基因。功能性野生型基因是在群体中最常被观察到的基因，因此可任意地叫做基因的“正常”或“野生型”形式。

本文所使用的术语“突变体”或“功能性突变体”当涉及基因或基因产物时分别是指与野生型基因或基因产物相比，表现出序列和/或功能特性修饰(即改变的特征)的基因或基因产物。因此，当用于涉及核苷酸序列时，术语“修饰的”和“突变”是指与另外的，通常是相关的核苷酸序列有一个或多个核苷酸不同的核酸序列，当用于涉及由所述“修饰的”或“突变”核酸编码的多肽时，术语“功能性突变体”是指保持了活性的蛋白或多肽。在本申请中，ACCase突变体蛋白，或其“功能性突变体”是保持了其天然创造必需氨基酸的活性的ACCase基因。此外，“修饰的”核苷酸序列被解释为如在本领域技术人员已知的简并密码子中所发现的那样。例如，遗传密码子是简并的，因为有很多不同密码子代表相同氨基酸的例子；遗传密码子中有一些氨基酸可能每个都是由一个以上的密码子编码。可以预见的是，本发明可以包括这种简并，例如，其中小麦杂种包含与SEQ ID 1、2、3、4、5或6，或与在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCC NO.____)中发现的序列具有至少70％同源性、至少80％同源性、至少90％同源性、至少95％同源性、至少97％同源性、或至少99％同源性的在例如小麦种质中所发现的ACCase。

发明详述

乙酰辅酶A羧化酶(ACC)是催化乙酰辅酶A的羧化以生成丙二酸单酰辅酶A的生物素化酶。这个羧化是一个两步可逆的反应，由如下组成：由生物素羧化酶活性对羧基载体结构域的生物素基团进行ATP-依赖性羧化，然后由羧基转移酶活性将羧基基团从生物素转移至乙酰辅酶A(Nikolau et al.，2003，Arch.Biochem.Biophys.414：211-22)。乙酰辅酶A羧化酶不仅仅是植物体内脂肪酸合成的关键酶(合成过程发生在叶绿体和线粒体中)，ACCase还在长链脂肪酸和黄酮的形成过程中，以及发生在细胞质内的丙二酰化过程中发挥作用。ACCase有两种同工型，其中叶绿体ACCase占总ACCase活性的比例超过80％(Herbert etal.，1996，Biochem.J.318：997-1006)。芳氧基苯氧基(FOP)和环己二酮(DIM)是已知能选择性抑制杂草中叶绿体ACCase的两类化学物质(Rendina et al.，1990，J.Agric.FoodChem.38：1282-1287)。

将小麦品种的种子暴露在化学诱变剂甲基磺酸乙酯(EMS)下，种植并评估其对ACCase除草剂的耐受性。其中一种基因型，AF28-A(SEQ ID NO：4)对所测试的每种除草剂都表达出高水平的耐受性。本文进一步证实，将AF28-A、AF26-B和/或AF10-D与良种亲本品系杂交会产生良好的种子组以及在后代植物中产生ACCase除草剂抗性。

因此，本发明的一个实施方式提供了含有改变的ACCase基因和蛋白质的植物种质。在一些实施方式中，本发明提供了ACCase除草剂用于杂种植物的农田中以减少存在于所述作物农田中的单子叶杂草植物数量的用途，其中所述杂种种质包含改变的赋予ACCase除草剂抗性的ACCase酶，并且所述杂草植物是ACCase除草剂易感的。优选的植物包括小麦、稻和大麦或其它具有类似突变的单子叶谷物植物。

在一个实施方式中，本发明提供了具有对ACCase除草剂所致抑制作用的抗性的植物，所述对ACCase除草剂所致抑制作用的抗性是单独的或与与其它的抗性性状组合，所述其它抗性性状例如对禾草螟(Chilo partellus)的昆虫抗性(Girijashankar et al.，2005，Plant Cell Rep.24：513-522，以其整体并入本文)。在一些实施方式中，例如，其种质包含来自于苏云金芽孢杆菌(Bacillus thuringiensis)的合成cry1 Ac基因的小麦杂种，被渐渗至其种质提供ACCase除草剂抗性的小麦品系中。同样，ACCase除草剂抗性和昆虫抗性的掺入是通过植物转基因至相同的小麦杂种中来完成的。本领域技术人员将知道本文所述的适合于将两种或更多种抗性属性并入到同一个植物中的各种技术。

在一个实施方式中，本发明提供了在植物中的ACCase除草剂抗性，包括，例如，通过植物育种和选择将名为AF28-A、AF26-B和/或AF10-D，ATCC NO.___的ACCase种质整合进良种品种中，从而开发出对用于杂草控制的ACCase抑制性除草剂具有耐受性的除草剂耐受性植物。在上述植物中开发该除草剂耐受性性状允许使用这些除草剂来控制在这些作物存在时生长的单子叶杂草。在一些实施方式中，通过渐渗或经典的育种方法来将ACCase抗性性状导入良种品系的。在一些实施方式中，是通过异源基因转基因利用表达或抑制构建体将ACCase抗性基因导入到良种品系中。在一些实施方式中，本发明提供了植物，优选小麦，其中该小麦植物的至少一个祖先包含来自于保藏在ATCC登录号：___下的名为AF28-A的种质的ACCase抗性基因。在一些实施方式中，ACCase抗性除草剂基因包括与SEQ ID NO：4，或者与保藏在ATCC登录号：___下的AF28-A中所发现的ACCase抗性除草剂基因具有至少70％同源性、至少80％同源性、至少85％同源性、至少90％同源性、至少95％同源性、至少97％同源性、或至少99％同源性的核酸序列。在一些实施方式中，ACCase抗性除草剂基因与SEQ IDNO：4，或者与保藏在ATCC登录号：___下的AF28-A中所发现的包含Ala2004Val氨基酸取代的ACCase抗性除草剂基因具有至少70％同源性、至少80％同源性、至少85％同源性、至少90％同源性、至少95％同源性、至少97％同源性、或至少99％同源性。

在一些实施方式中，使用经典的育种技术将ACCase除草剂抗性种质渗入到良种植物品系中。用于小麦，大麦，稻和其他单子叶谷类作物的经典育种方法的示例可以在，例如Sleper and Poehlman，2006，Breeding Field Crops，Fifth Edition，BlackwellPublishing中找到，并以其全部并入本文之中。

在一个实施方式中，将ACCase除草剂抗性种质渗入到提供食物供人类消耗的植物中，优选小麦。在一些实施方式中，将ACCase除草剂抗性种质渗入到为牲畜(例如，家禽，牛，猪，羊等)提供食物的小麦植物中。在一些实施方式中，将ACCase除草剂抗性种质渗入到用于诸如乙醇产生等工业工艺的小麦植物中。在一个实施方式中，利用载体和本领域已知技术通过转基因将ACCase除草剂抗性基因导入植物基因组中。

在一些实施方式中，本发明提供了保藏在ATCC登录号：___下的AF28-A品系中的小麦植物部分的ACCase抗性种质，所述小麦植物部分是花粉、胚珠、组织、豆荚和细胞中的一种或多种。在一个实施方式中，本发明提供了F1杂种，其种质包含如本文所述的ACCase抗性基因。在一些实施方式中，F1杂种是两个良种小麦品系的杂交品种，其中至少一个品系含有的种质包含如本文所述的ACCase抗性基因。

在一个实施方式中，本发明提供了在植物群体中控制杂草的方法。在一些实施方式中，控制杂草包括向所述植物群体施用ACCase除草剂，这样使杂草的生长受到抑制而不会对植物的生长带来不利影响。在一些实施方式中，所施用的ACCase除草剂来自于芳氧基苯氧基丙酸酯类(FOP)除草剂家族，包括但不限于，炔草酯(clodinafop-propargyl)、氰氟草酯(cyhalofop-butyl)、禾草灵(diclofop-methyl)、精恶唑禾草灵(fenoxaprop-p-ethyl)、吡氟禾草灵(fluazifop-b-butyl)、氟吡乙禾灵(haloxyfop-ethoxyethyl)、吡氟甲禾灵(haloxyfop-etotyl)、氟吡甲禾灵(haloxyfop-R-methyl)、恶草酸(propaquizafop)、精喹禾灵(quizalofop-p-ethyl)和quizalo-p-refuryl化合物。在一些实施方式中，所应用的ACCase除草剂来自于环己二酮类(DIM)除草剂家族，包括但不限于：禾草灭(alloxydim)、丁苯草酮(butroxydim)、clefoxydim、烯草酮(clethodim)、噻草酮(cycloxydim)、环苯草酮(profoxydim)、烯禾啶(sethoxydim)、吡喃草酮(teproloxydim)和三甲苯草酮(tralkoxydim)化合物。在一些实施方式中，所应用的ACCase除草剂包括来自于如本文所公开的FOP和DIM ACCase除草剂家族的化合物的组合。然而，本发明并不局限于所使用的ACCase除草剂，本领域技术人员将领会到，在任何给定的时间内将会发现新的能抑制ACCase酶的ACCase除草剂。

在一个实施方式中，本发明提供了植物(例如F1，F2，F3，F4等)，其种质赋予对ACCase除草剂以及来自于一个或多个不同除草剂组的一种或多种额外除草剂的抗性。例如，用于抑制杂草生长的另外的除草剂组包括但不限于，脂质合成抑制剂(例如，芳氧基苯氧基丙酸酯、环己二酮、苯并呋喃、氯甲酸、二硫代磷酸酯、硫代氨基甲酸酯)，光合系统II中光合作用抑制剂(例如，苯基氨基甲酸酯、哒嗪酮、三嗪、三嗪酮(triazinone)、三唑啉酮(triazolinone)、尿嘧啶、酰胺、尿素、苯并噻二嗪酮(benzothiadiazinone)、腈、苯基吡啶)，光合系统I中光合作用抑制剂(例如，双吡啶)，卟啉原氧化酶抑制剂(例如，二苯醚，N-苯基邻苯二甲酰亚胺(N-phenyl phthalimide)，噁二唑，oyzolidinedione，苯吡唑，嘧啶二酮，噻二唑)，类胡萝卜素生物合成抑制剂(例如，哒嗪酮，吡啶羧基酰胺，异噁唑酮(isoxazolidinone)，三唑(tirazole))，4-羟苯基丙酮酸双氧化酶抑制剂(例如，红千层(callistemone)，异恶唑，吡唑，三酮)，EPSP合酶抑制剂(例如，甘氨酸)，谷氨酰胺合成酶抑制剂(例如，次膦酸)，二氢蝶酸合酶抑制剂(例如，氨基甲酸酯)，微管组装抑制剂(例如，苯甲酰胺、苯甲酸、二硝基苯胺、磷酸酰胺化物(phosphoroamidate)、吡啶)，细胞分裂抑制剂(例如，乙酰胺，氯乙酰胺，氧乙酰胺(oxyacetamides))，细胞壁合成抑制剂(例如，腈，三唑羧基酰胺(triazolocarboxamides))以及生长素运输抑制剂(例如，phthalamates，缩氨基脲)。在一些实施方式中，本发明提供了来自于良种植物品系的F1杂种，其包含对一种或多种ACCase除草剂的抗性，单独地或与对上述除草剂组中一种或多种除草剂的抗性组合。

在一个实施方式中，本发明提供了包含SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6(编码野生型或突变体ACCase蛋白质(SEQ ID NO 7、8、9、10、11或12))的异源核苷酸序列的用途，其用于提供选定的ACCase除草剂抗性农艺性状。在一个实施方式中，核苷酸序列包含在保藏于ATCC登录号：___下的名为AF28-A、AF26-B和/或AF10-D的种质中所发现的突变体ACCase基因。在一些实施方式中，核苷酸序列与SEQ ID NO：1、SEQ ID NO：2、SEQ ID NO：3、SEQ ID NO：4、SEQ ID NO：5或SEQ ID NO：6具有至少70％同源性、至少80％同源性、至少85％同源性、至少90％同源性、至少95％同源性、至少97％同源性、或至少99％同源性。在一些实施方式中，ACCase核苷酸序列可操作地连接至启动子序列，并形成表达或抑制构建体的组成部分，并且在一些实施方式中，ACCase核苷酸序列与在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D中所发现的ACCase抗性除草剂基因，或与在A、B、D基因组中包含氨基酸取代Ala2004Val的SEQ ID NO：4、SEQ ID NO：5和/或SEQ ID NO：6具有至少70％同源性、至少80％同源性、至少85％同源性、至少90％同源性、至少95％同源性、至少97％同源性、或至少99％同源性。

经典小麦育种

通过利用植物授粉方法的技术，已经对农田作物进行了经典育种。如果花粉可以从一朵花转移到同一株植物的同一朵或另外一朵花上，则认为该植物是“自花授粉”，而如果来自于另一株植物的花朵的花粉发生授粉时，则认为该植物是“异花授粉”。经过多代而被挑选出来的自花授粉植物会在其如果不是全部也是大多数的基因位点上变为纯合的，从而产生均一的(uniform)真正育种后代群体。将来自于不同背景的两种纯合植物，或者将两个不同的纯合品系进行杂交，将会产生均一的杂种植物群体，该杂种植物在很多基因位点上更可能是杂合的。将两种在很多基因位点上都是杂合的植物进行杂交，将会产生遗传学上不相同且不均一的杂种植物子代。

小麦植物是自花授粉植物，但是它们也可以通过异花授粉繁殖。开发小麦杂种需要开发授粉亲本(育性恢复)和使用细胞质雄性不育恢复系统的种子亲本自交系，将种子亲本和授粉亲本进行杂交，对杂交进行评估。也可以使用用于提供杂种母本雄性不育性的化学杂交制剂来开发小麦杂种。谱系育种程序组合了理想的性状；在本发明中，理想性状是植物对ACCase除草剂的抗性。将这个性状放进来自于一个或多个品系的育种池中，使得通过杂交创建新的自交系，然后挑选具有理想性状的植物，接着进行更多的杂交，等等。将新的自交系与其他的自交系进行杂交(例如，如本文所描述的那些良种植物品系)。

谱系育种起始于将两种基因型杂交，例如AF28-A、AF26-B和/或AF10-D与良种小麦品系。如果原始的两个亲本不能提供全部的理想特性，则可以在育种群体中包括其他的来源。例如，如果需要杂种同时得到ACCase除草剂抗性和对本文所述的其他除草剂组的抗性，则可以利用经典育种技术将具有这些特性的植物进行杂交。在谱系方法中，优势植物自花授粉并且选择连续几代。在随后的几代中，由于自花授粉和选择，杂合状态让步于纯合植物的纯合品系。通常，在谱系方法中，可进行五代或更多代的自花授粉和选择(例如，S1，S2，S3，S4，S5等)。

回交育种被用于改良植物品系。回交育种将一个或多个特定的理想性状从一个来源转移到缺少该性状的另一个来源。这可以通过，例如，将供体(例如，AF28-A)与良种自交系(例如，良种品系)进行杂交来完成。该杂交的后代再回过来与良种自交系进行杂交(即回交)，接着在所产生的后代中选择所需要的性状(例如，对ACCase除草剂的抗性)。在五个或更多个世代并且对所需性状进行选择之后，该后代在控制所需表型的位置(位点)上通常是杂合的，但是在其他遗传性状上将会与良种亲本很相像。最后的回交则是典型的自花授粉以给出所转移的基因的纯的育种后代。

在目前的杂交小麦育种程序中，新亲本系开发为种子亲本系还是花粉亲本系取决于它们是否含有育性恢复基因；种子亲本系不含有育性恢复基因且在某些的胞质中是雄性不育的(也被称为“A”品系植物)，而在其他的胞质中则是雄性可育的(也被称为“B”系植物)，然而，花粉亲本品系不是雄性不育的，并含有雄性恢复基因(也被称为“R”系植物)。通常将种子亲本品系创建成胞质雄性不育，使得这些植物中的花药极小至不存在，因此需要异花授粉。种子亲本品系只产生种子，胞质的传递仅通过卵来完成。含有在F1杂种中完全恢复育性所必需的基因的亲本品系提供用于异花授粉的花粉，该杂交与雄性不育种子亲本联合产生具有良好籽粒品质的高产单交种。

通常，通过种植成行成片的雄性不育植物(种子亲本)和成行成片的育性恢复植物(花粉亲本)，使花粉亲本植物的花粉对种子亲本进行风媒授粉来实施该胞质雄性不育育性恢复系统以产生杂交种子。该过程产生了被消费者收获和种植的茁壮的单交种。也可以通过将隐性核不育基因遗传育种至特定的种群中来创建雄性不育的种子亲本植物，然而胞质雄性不育育性恢复系统仍然是用于育种杂交小麦的经典系统，不过化学诱导雄性不育也已经被广泛使用。Sleper and Poehlman，2006，Breeding Field Crops，Fifth Ed.，Blackwell Publishing提供了关于当前小麦育种程序的很好的综述，以其全部并入本文。

本发明并不局限于所列举的小麦品系，本领域技术人员将认识到，任何良种小麦品系同样都适合于本发明描述的组合物和方法。

植物转基因

本发明的组合物包括被鉴定为ACCase编码序列(其参与植物对ACCase除草剂的响应)的小麦核苷酸序列。具体地，本发明提供了分离的核酸分子，其包含编码SEQ ID NO：5、6、7、8和9所示氨基酸序列的核苷酸序列。进一步提供了具有由本文所述核酸分子编码的氨基酸序列的多肽，例如，SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6所示的那些核苷酸序列。

本发明的组合物可以用于各种方法中，通过这些方法蛋白产物可以在作物植物中表达，作为除草剂抗性蛋白行使功能。这种表达导致表达的水平、组织或时间发生改变或调整以实现ACCase除草剂抗性的改良。本发明的组合物可以在与特定ACCase的来源相同的物种中表达，或者，也可以在任何感兴趣的物种中表达。用这种方式，ACCase的编码序列可以与导入到作物植物中的启动子组合使用。在一个实施方式中，可使用高水平表达组成型启动子，导致ACC的高水平表达。在其他的实施方式中，将编码序列可操作地连接至组织特异性启动子上，以指导其在已知对ACCase除草剂易感的植物组织中表达，例如叶子。同样的，可以操控表达的时间。例如，通过合适地选择启动子，可以在植物生长早期增强表达，以使引发(prime)植物对除草剂处理的响应。

在具体的实施方式中，提高植物除草剂耐受性的方法包括，用包含本发明核苷酸序列的DNA构建体稳定转化植物，该核苷酸序列可操作地连接到能在植物中驱动表达的启动子上。

此外还提供了转化的植物、植物细胞、植物组织及其种子。

本发明的方法可以与本领域中可提供的其他方法一起使用以增强植物中的其他性状。可以认识到，这样的第二核苷酸序列可以以正向或反向使用，这取决于所期望的结果。

突变体ACCase核苷酸序列(SEQ ID NO：4、5和/或6)的这种过表达将会是使用所述突变体核苷酸序列的优选方法。使用不同启动子来驱动这种过表达的各种优点和缺点对本领域技术人员而言都是已知的。然而，通过举例的方式，组成型启动子能够驱动表达，但是更理想的启动子是能靶向组织，例如叶子。

本发明的序列，在下面将进行更详细的讨论，包括编码序列、反义序列及其片段和变体。本发明的序列的表达可以用于调节或调控相应的ACCase蛋白的表达。本发明包括分离的或基本上纯化的核酸或蛋白组合物。

所公开的核苷酸序列和由其编码的蛋白质的片段和变体同样包括在本发明中。“片段”是指核苷酸序列的一部分或氨基酸序列的一部分，以及因此由其编码的蛋白。核苷酸片段可以编码保留了天然蛋白生物学活性的蛋白质片段，因此具有ACC样活性，从而影响除草剂响应。另外，用作杂交探针的核苷酸序列片段通常并不编码保留生物学活性的蛋白片段。因此，核苷酸序列片段的范围是从至少约20个核苷酸、约50个核苷酸、约100个核苷酸到编码本发明蛋白质的全长核苷酸序列。

编码本发明ACCase蛋白生物学活性部分的ACCase核苷酸序列片段编码至少15、25、30、50、100、150、200，或250个连续氨基酸，或直到本发明全长蛋白质中存在的全部数量的氨基酸。

可以使用本发明的核苷酸序列从其他生物体中特别是其他植物中，更特别是其他单子叶植物，分离相应的序列。用这种方式，可利用诸如聚合酶链式反应(PCR)、杂交等方法，基于这些序列与本文所示序列的同源性来鉴定这样的序列。基于这些序列与本文所示的完整ACCase序列或其片段的同源性而分离出来的序列也包括在本发明中。这样的序列包括所公开序列的直系同源序列。“直系同源”是指来自于一个共同祖先基因并由于物种形成而在不同物种中发现的基因。当它们的核苷酸序列和/或它们编码的蛋白质序列享有如本文中其他地方所定义的实质相同性时，在不同物种中发现的基因被认为是直系同源的。直系同源基因的功能在物种间往往是高度保守的。

在PCR方法中，可设计用于PCR反应的寡核苷酸引物以从提取自任何感兴趣的植物的cDNA或基因组DNA扩增相应的DNA序列。设计PCR引物和PCR克隆的方法在本领域中通常是已知的，并公开于，例如Sambrook.See also Innis et al.，eds.(1990)PCR Protocols：AGuide to Methods and Applications(Academic Press，New York)；Innis and Gelfand，eds.(1995)PCR Strategies(Academic Press，New York)；和Innis and Gelfand，eds.(1999)PCR Methods Manual(Academic Press，New York)中。已知的PCR方法包括，但不限于，使用配对引物、巢式引物、单特异性引物、简并引物、基因特异性引物、载体特异性引物、部分错配引物等的方法。

在杂交技术中，将已知核苷酸序列的全部或部分用作探针，选择性地与来自于所选择生物体的克隆基因组DNA片段或cDNA片段群体中(即基因组或cDNA文库)所存在的相应核苷酸序列杂交。杂交探针可以是基因组DNA片段、cDNA片段、RNA片段、或其它寡核苷酸，并且可以用可检测基团例如³²P或其它任何可检测标记进行标记。因此，例如，可以基于本发明的ACCase序列，通过标记合成寡核苷酸来制备用于杂交的探针。制备杂交探针和构建cDNA和基因组文库的方法，在本领域是公知的并公开在Sambrook中。

可通过本领域已知的和本文公开的任何方法来测定ACCase多肽的生物学活性(即影响ACCase除草剂响应)。

本发明的核苷酸序列可以在宿主细胞中表达，例如细菌、酵母、昆虫、哺乳动物细胞，或优选植物细胞。预计本领域技术人员知晓很多可用于表达编码本发明蛋白质的核酸的表达系统。不会试图详细描述已知的用于在原核或真核细胞中表达蛋白的各种方法。

在用于在感兴趣植物中表达的表达盒或DNA构建体中提供本发明的序列。表达盒包括可操作地连接至本发明ACCase序列的5’和3’调控序列。该表达盒还可以包括至少一个额外的待共转化进所述生物体中的基因。此外，额外的基因可以在多个表达盒中提供。

所提供的此类表达盒具有多个限制性位点使得插入的ACCase序列可处于调控区域的转录调控之下。表达盒还可以额外含有选择性标记基因。

表达盒可包括，以转录的5’-3’方向，转录起始区域(即，启动子)、翻译起始区域、本发明的多核苷酸、翻译终止区域，以及任选存在的，在宿主生物体内行使功能的转录终止区域。调控区域(启动子、转录调控区域以及翻译终止区域)和/或本发明的多核苷酸对于宿主细胞或相互之间可以是天然/类似的。此外，调控区域和/或本发明的多核苷酸对于宿主细胞或相互之间是异源的。

虽然优选使用异源启动子来表达所述序列，但可以使用天然启动子序列。此类构建体将改变宿主细胞(即，植物或植物细胞)内ACCase的表达水平。因此改变了宿主细胞(即植物或植物细胞)的表型。

终止区域可以是天然与转录起始区域一起的，可以是天然与可操作地连接的感兴趣的DNA序列一起的，或可以来自于另外的来源。农杆菌Ti质粒中可以提供合适的终止区域，例如章鱼碱合酶和胭脂碱合酶终止区域。也见Guerineau et al.(1991)Mol.Gen.Genet.262：141-144；Proudfoot(1991)Cell 64：671-674；Sanfacon et al.(1991)Genes Dev.5：141-149；Mogen et al.(1990)Plant Cell 2：1261-1272；Munroe etal.(1990)Gene 91：151-158；Ballas et al.(1989)Nucleic Acids Res.17：7891-7903；and Joshi et al.(1987)Nucleic Acid Res.15：9627-9639中。

在合适的情况下，对基因进行优化以提高其在转化植物中的表达。即，可使用植物偏好的密码子来合成基因以改良表达。本领域中可获得用于合成植物偏好基因的方法。见，例如U.S.Pat.Nos.5,380,831，and 5,436,391，and Murray et al.(1989)Nucleic AcidsRes.17：477-498，其通过引用并入本文。

已知可对序列进行额外的修饰以增强细胞宿主中基因的表达。这包括清除编码假多聚腺苷酸化信号、外显子-内含子剪接位点信号、转座子样重复以及其他可能对基因表达有害的熟知序列的序列。序列的G-C含量可以被调整至指定细胞宿主的平均水平，其参考宿主细胞中表达的已知基因计算。如果可能的话，对序列进行修饰以避免预测的发夹二级mRNA结构。

表达盒还可以在表达盒构建体中含有5’前导序列。这种前导序列可以用于增强翻译。翻译前导序列在本领域是已知的，包括：小核糖核酸病毒前导序列，例如，EMCV前导序列(脑心肌炎病毒的5’非编码区)(Elroy-Stein et al.(1989)PNAS USA 86：6126-6130)；马铃薯Y病毒前导序列，例如，TEV前导序列(烟草蚀刻病毒)(Allison et al.(1986)Virology154：9-20)；以及人类免疫球蛋白重链结合蛋白(BiP)(Macejak et al.(1991)Nature 353：90-94)，来自于苜蓿花叶病毒衣壳蛋白mRNA的非翻译前导序列(AMV RNA4)(Jobling etal.(1987)Nature 325：622-625)；烟草花叶病毒(TMV)前导序列(Gallie et al.(1989)inMolecular Biology of RNA，ed.Cech(Liss，NewYork)，pp.237-256)；以及玉米褪绿斑驳病毒(MCMV)前导序列(Lommel et al.(1991)Virology 81：382-385)。同样见于Della-Cioppaet al.(1987)Plant Physiol.84：965-968中。也可以利用其它已知的方法来增强转录。

在制备表达盒时，可以对各种DNA片段进行操作，以便提供处于正确方向以及视情况而定处于适当读码框中的DNA序列。为此，可以采用接头(adapter)或连接子(linker)连接DNA片段，或可以包括其它的操作以提供便于使用的限制性位点、除去多余的DNA、除去限制性位点等。为了这个目的，可以包括体外诱变、引物修复、限制性、退火、重取代例如转换和颠换。

一般来说，表达盒将包含用于选择转化细胞的可选择性标记基因。利用可选择性标记基因来选择转化的细胞或组织。标记基因包括编码抗生素抗性的基因，例如那些编码新霉素磷酸转移酶II(NEO)和潮霉素磷酸转移酶(HPT)的基因，以及赋予除草剂化合物抗性的基因，所述除草剂化合物例如草铵磷(glufosinate)、草甘膦、铵类、溴苯腈、咪唑啉酮以及2，4-二氯苯氧基乙酸(2，4-D)。一般见于：Yarranton(1992)Curr.Opin.Biotech.3：506-511；Christopherson et al.(1992)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89：6314-6318；Yao et al.(1992)Cell 71：63-72；Reznikoff(1992)Mol.Microbiol.6：2419-2422；Barkley et al.(1980)in The Operon，pp.177-220；Hu et al.(1987)Cell 48：555-566；Brown et al.(1987)Cell 49：603-612；Figge et al.(1988)Cell 52：713-722；Deuschle et al.(1989)Proc.Natl.Acad.Aci.USA 86：5400-5404；Fuerst et al.(1989)Proc.Natl.Acad.Sci.USA86：2549-2553；Deuschle et al.(1990)Science 248：480-483；Gossen(1993)Ph.D.Thesis，University of Heidelberg；Reines et al.(1993)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 90：1917-1921；Labow et al.(1990)Mol.Cell.Biol.10：3343-3356；Zambretti et al.(1992)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89：3952-3956；Baim et al.(1991)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 88：5072-5076；Wyborski et al.(1991)Nucleic AcidsRes.19：4647-4653；Hillenand-Wissman(1989)Topics Mol.Struc.Biol.10：143-162；Degenkolb et al.(1991)Antimicrob.Agents Chemother.35：1591-1595；Kleinschnidtet al.(1988)Biochemistry 27：1094-1104；Bonin(1993)Ph.D.Thesis，University ofHeidelberg；Gossen et al.(1992)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 89：5547-5551；OliVa etal.(1992)Antimicrob.Agents Chemother.36：913-919；Hlavka et al.(1985)Handbookof Experimental Pharmacology，Vol.78(Springer-Verlag，Berlin)；Gill et al.(1988)Nature 334：721-724；和WO公开号Nos.02/36782。通过引用将这些公开并入本文。

上述的选择性标记基因列表的目的不在于进行限制。任何可选择性标记基因都能用于本发明。

在本发明的实践中，可以使用多种启动子。基于所期望的结果来选择启动子。即，为了在感兴趣的宿主细胞中表达，可以将核酸分子与组成型、组织偏好型或其他启动子进行组合。此类组成型启动子包括，例如，Rsyn7的核心启动子(WO 99/48338和U.S.Pat.Nos.6,072,050)；CaMV 35S核心启动子(Odell et al.(1985)Nature 313：810-812)；水稻肌动蛋白(McElroy et al.(1990)Plant Cell 2：163-171)；泛素(Christensenet al.(1989)Plant Mol.Biol.12：619-632和Christensen et al.(1992)PlantMol.Biol.18：675-689)；PEMU(Last et al.(1991)Theor.Appl.Genet.81：581-588)；MAS(Velten et al.(1984)EMBO J.3：2723-2730)；ALS启动子(U.S.Pat.Nos.5,659,026)，等等。其他组成型启动子包括，例如，在美国专利No.5,608,149；5,608,144；5,604,121；5,569,597；5,466,785；5,399,680；5,268,463；和5,608,142中公开的那些启动子。

正如可以通过使用合适的启动子将本发明的ACCase多肽靶向到特异的植物组织或细胞类型中，也可以通过使用靶向信息或“靶向标记”将其靶向到细胞内的不同位置中。不像启动子，其是在转录水平上起作用，这种靶向信息是初始翻译产物的一部分。根据病原体感染的模式或组织或细胞类型的代谢功能，蛋白质在不同细胞隔区中的位置可能会使其针对指定的病原体更为有效，或者使其对细胞功能的干扰更小。例如，通过将编码信号肽(这种序列也可以叫做“信号序列”)的序列包含在构建体(即表达盒)中，可产生在其前端具有信号肽的蛋白质，该信号肽引导翻译产物进入到内质网中。所使用的信号序列可以是，例如，与编码多肽的基因相关的信号肽，或可以来自于其他基因。

在文献中描述了许多信号肽，它们在很大程度上是可以互换的(Raikhel N，Chrispeels M J(2000)Protein sorting and vesicle traffic.In B Buchanan，WGruissem，R Jones，eds，Biochemistry and Molecular Biology of Plants.AmericanSociety of Plant Physiologists，Rockville，Md.，pp 160-201)，通过引用并入到本文中。信号肽的加入将导致翻译产物进入到内质网中(在这个过程中，信号肽自己却被从多肽中移除)，但是蛋白质的最终胞内定位取决于其他因素，可对这些因素进行操作以使定位更适合于病原体和细胞类型。默认途径，即如果不包括其他的靶向标记时多肽所采取的途径，会导致多肽跨过细胞膜(Raikhel and Chrispeels，如上)分泌到质外体中。质外体是质膜系统外面的区域，包括细胞壁、细胞间隙、以及形成了水和溶质通过其中的连续、可渗透系统的木质部导管。

转化/转染的方法不是本发明的关键；目前提供了各种转化或转染的方法。当有更新的方法可用于转化作物或其他宿主细胞时，也可以直接应用它们。因此，已经开发出各种各样的方法来将DNA序列插入到宿主细胞的基因组中，以获得序列的转录和/或翻译，并影响生物体中表型的变化。因此，任何能提供有效转化/转染的方法都可以使用。

根据转化靶向的植物或植物细胞类型的不同，即单子叶植物或双子叶植物，转化方法和将核苷酸序列导入植物的方法也不同。将核苷酸序列导入到植物细胞以及随后插入至植物基因组的合适方法包括显微注射(Crossway et al.(1986)Biotechniques 4：320-334)，电穿孔(Riggs et al.(1986)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 83：5602-5606)，农杆菌介导的转化(Townsend et al.，U.S.Pat.Nos.5,563,055和Zhao et al.，U.S.Pat.Nos.5,981,840)，直接基因转移(Townsend et al.，U.S.Pat.Nos.5,563,055and Zhao et al.，U.S.Pat.Nos.5,981,840)，以及弹道粒子加速(见，例如Sanford et al.，U.S.Pat.Nos.4,945,050；Tomes et al.(1995)″Direct DNA Transfer into Intact Plant Cells viaMicroprojectile Bombardment，″in Plant Cell，Tissue，and Organ Culture：Fundamental Methods，ed.Gamborg and Phillips(Springer-Verlag，Berlin)；andMcCabe et al.(1988)Biotechnology 6：923-926)。也见于Weissinger et al.(1988)Ann.Rev.Genet.22：421-477；Sanford et al.(1987)Particulate Science andTechnology 5：27-37(洋葱)；Christou et al.(1988)Plant Physiol.87：671-674(大豆)；McCabe et al.(1988)Bio/Technology 6：923-926(大豆)；Finer and McMullen(1991)Invitro Cell Dev.Biol.27P：175-182(大豆)；Singh et al.(1998)Theor.Appl.Genet.96：319-324(大豆)；Datta et al.(1990)Biotechnology 8：736-740(稻)；Klein et al.(1988)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 85：4305-4309(玉米)；Klein et al.(1988)Biotechnology 6：559-563(玉米)；Tomes，U.S.Pat.Nos.5,240,855；Buising et al.，U.S.Pat.Nos.5,322,783和5,324,646；Klein et al.(1988)Plant Physiol.91：440-444(玉米)；Fromm et al.(1990)Biotechnology 8：833-839(玉米)；Hooykaas-Van Slogterenet al.(1984)Nature(London)311：763-764；Bytebier et al.(1987)Proc.Natl.Acad.Sci.USA 84：5345-5349(百合科)；De Wet et al.(1985)in TheExperimental Manipulation of Ovule Tissues，ed.Chapman et al.(Longman，NewYork)，pp.197-209(花粉)；Kaeppler et al.(1990)Plant Cell Reports 9：415-418 andKaeppler et al.(1992)Theot.Appl.Genet.84：560-566(颈须(whisker)介导的转化)；D′Halluin et al.(1992)Plant Cell 4：1495-1505(电穿孔)；Li et al.(1993)Plant CellReports 12：250-255以及Christou and Ford(1995)Annals of Botany 75：407-413(rice)；Osjoda et al.(1996)Nature Biotechnology 14：745-750(玉米，通过根瘤农杆菌)；所有这些都通过引用并入本文。

依照传统方式，可以将已转化的细胞生长成植物。见，例如，McCormick et al.(1986)Plant Cell Reports 5：81-84。可以种植这些植物，可以用相同转化的品系或不同品系进行授粉，由此产生的杂种可以组成型表达所鉴定的期望表型特征。培养两代或两代以上以确保期望表型特征的组成型表达能够稳定维持和遗传，然后收获种子以确保期望表型特征的组成型表达。本领域技术人员将认识到，在重组表达盒被稳定掺入转基因植物并证实可操作之后，可通过有性杂交将其导入到其他植物中。可以使用许多的任意标准育种技术，这取决于要进行杂交的物种。

在无性繁殖的作物中，可通过扦插或组织培养技术来繁殖成熟的转基因植物，以产生多个相同的植物。选择期望的转基因，获得新的变种，对其进行无性繁殖以用于商业用途。在种子繁殖作物中，将成熟的转基因植物进行自交以产生纯合自交植物。该自交植物会产生含有新导入的异源核酸的种子。可以种植这些种子以产生能够产生选定表型的植物。

从再生植物中获得的部分，例如花、种子、叶、枝、果实等都包括在本发明中，条件是这些部分包含含有本发明的分离核酸的细胞。再生植物的后代、变种和突变体同样包括在本发明的范围内，条件是这些部分包含所导入的核酸序列。

优选的实施方式是对于添加的异源核酸是纯合的转基因，即含有两个添加的核酸序列的转基因植物，染色体对中各染色体的相同位点上含一个基因。通过将含有单个添加的核酸的杂合转基因植物进行有性交配(自交)，使所产生的种子发芽，相对于对照植物(即天然的、非转基因)分析所产生的植物中本发明多肽的表达改变，获得纯合转基因植物。也可以考虑与亲本植物进行回交以及与非转基因植物进行异交(out-crossing)。

本发明可以用于转化任意的植物物种，包括但不限单子叶植物和双子叶植物。感兴趣的植物的示例包括但不限于，玉米(Zea mays)，芸苔属(例如，甘蓝型油菜，白菜型油菜，芥菜型油菜)，特别是那些可用作种子油来源的芸苔属植物，苜蓿(Medicago sativa)，稻(Oryza sativa)，黑麦(Secalecereale)，高粱(Sorghum bicolor，Sorghum vulgare)，小米(例如，珍珠粟(pennisetumglaucum)，黍(panicummiliaceum)，粟(Setariaitalica)，子(eleusinecoracana))，向日葵(Helianthus annuus)，红花(Carthamustinctorius)，小麦(Triticumaestivum)，大豆(Glycine max)，烟草(Nicotianatabacum)，马铃薯(solanumtuberosum)，花生(arachishypogaea)，棉花(Gossypiumbarbadense，Gossypiumhirsutum)，甘薯(Ipomoea batatus)，木薯(Manihotesculenta)，咖啡(Coffeaspp.)，椰子(Cocosnucifera)，菠萝(ananascomosus)，柑橘树(Citrus spp.)，可可(Theobroma cacao)，茶(Camellia sinensis)，香蕉(Musa spp.)，鳄梨(perseaamericana)，无花果(ficuscasica)，番石榴(psidiumguajava)，芒果(Mangiferaindica)，橄榄(oleaeuropaea)，木瓜(Carica papaya)，腰果(anacardiumoccidentale)，澳大利亚坚果(Macadamia integrifolia)，杏仁(prunusamygdalus)，甜菜(Beta vulgaris)，甘蔗(Saccharum spp.)，燕麦(Avenasativa)，大麦(hordeumvulgare)，蔬菜，花卉，和针叶树。

蔬菜包括，番茄(Lycopersiconesculentum)，生菜(例如，莴苣)，绿豆(Phaseolusvulgaris)，利马豆(phaseoluslimensis)，豌豆(Lathyrus spp.)，黄瓜属成员如黄瓜(C.sativus)，哈密瓜(C.Cantalupensis)，和甜瓜(C.melo)。观赏植物包括杜鹃(Rhododendron spp.)，绣球(Macrophylla hydrangea)，芙蓉(Hibiscus rosasanensis)，玫瑰(Rosa spp.)，郁金香(Tulipa spp.)，水仙(Narcissus spp.)，矮牵牛(Petuniahybrida)，香石竹(Dianthus caryophyllus)，一品红(Euphorbia pulcherrima)和菊花。可用于实施本发明的针叶树包括，例如，松树如火炬松(Pinustaeda)，湿地松(Pinusradiata)，黄松(Pinus ponderosa)，黑松(pinuscontorta)，和蒙特雷松(Pinusradiata)；道格拉斯冷杉(pseudotsugamenziesii)；西部铁杉(tsugacanadensis)；云杉(piceaglauca)；红木(Sequoia sempervirens)；冷杉如银杉(Abiesamabilis)和香脂冷杉(abiesbalsamea)；和雪松，如西部红雪松(thujaplicata)和阿拉斯加黄杉木(chamaecyparisnootkatensis)。优选的，本发明的植物是作物植物(例如，玉米，苜蓿，向日葵，油菜，大豆，棉花，红花，花生，高粱，小麦，大麦，稻，小米，烟草等)。

原核细胞可用作表达宿主。原核生物中最常见的代表是大肠杆菌的多种菌株，然而，也可以使用其他的微生物菌株。本文所定义的常用的原核控制序列包括用于转录起始的启动子，任选地具有操纵子以及核糖体结合序列，包括这样的常用启动子，如β-内酰胺酶(青霉素)和乳糖(lac)启动子系统(Chang et al.(1977)Nature 198：1056)，色氨酸(TRP)启动子系统(Goeddel et al.(1980)Nucleic Acids Res.8：4057)以及λ衍生的P L启动子和N-基因的核糖体结合位点(Shimatake et al.(1981)Nature 292：128)。用于大肠杆菌的选择性标记的示例包括，例如，对氨苄青霉素、四环素或氯霉素具有抗性的基因。

选择载体以允许导入到合适的宿主细胞中。细菌载体通常是质粒或噬菌体来源的。用噬菌体载体颗粒感染或者用裸噬菌体载体DNA转染合适的细菌细胞。如果使用质粒载体，则用质粒载体DNA转染细菌细胞。利用芽孢杆菌属和沙门氏菌可提供用于表达本发明蛋白质的表达系统(Palva et al.(1983)Gene 22：229-235 and Mosbach et al.(1983)Nature 302：543-545)。

本领域普通技术人员已知各种真核表达系统，例如酵母，昆虫细胞系、植物和哺乳动物细胞。如下进行简要的解释，本发明的多肽可以在这些真核系统中表达。在一些实施方式中，转化/转染的植物细胞，如下所讨论的，可用作表达系统来产生本发明的蛋白质。这种抗微生物蛋白质可以用于任何用途，包括包被表面以靶向微生物。这样，目标微生物包括人类病原体或微生物。

在酵母中合成异源核苷酸序列的方法是众所周知的。Sherman，F.，et al.(1982)Methods in Yeast Genetics，Cold Spring Harbor Laboratory是公认的著作，其描述了可用于在酵母中产生蛋白质的各种方法。广泛使用的用于产生真核蛋白的两种酵母是酿酒酵母和毕赤酵母。用于在酿酒酵母和毕赤酵母中表达的载体、菌株和方法在本领域是已知的，并且可从商业供应商处获得(例如，Invitrogen)。合适的载体通常具有表达控制序列，例如启动子，包括3’-磷酸甘油激酶或醇氧化酶，以及复制起点，终止序列等。

本发明的蛋白质，一旦表达，通过裂解细胞并对裂解液实施常规的蛋白质分离技术就可以从酵母中分离出来。纯化过程的监控可利用Western印迹技术、放射免疫测定法或其它标准的免疫测定技术来完成。

也可以以有义方向来使用本发明的核苷酸序列以抑制植物中内源基因的表达。使用有义方向的核苷酸序列来抑制植物中基因表达的方法在本领域是已知的。该方法通常涉及用DNA构建体转化植物，该DNA构建体包含能够在植物中驱动表达的启动子，该启动子可操作地连接至对应于内源基因转录本的至少部分核苷酸序列。通常，这样的核苷酸序列与内源基因转录本的序列具有大量的序列相同性，优选序列相同性大于约65％，更优选序列相同性大于约85％，更优选序列相同性大于约95％，见美国专利No.5,283,184和5,034,32，通过引用并入本文。

本发明还提供了调控(即，提高或降低)本发明的多肽在植物或其部分中的浓度或组成的方法。提高或降低多肽在植物或其部分中的浓度和/或组成能够影响调节。例如，提高本发明的多肽和天然多肽之间的比例能够影响调节。该方法包括：利用如上所述的重组表达盒将本发明的多核苷酸导入到植物细胞中以获得转化的植物细胞，在合适的培养条件下培养该转化的植物细胞，以及诱导或抑制本发明的多肽在植物中的表达持续一段时间以足以调控多肽在植物或植物部分中的浓度和/或组成。

提高ACCase多肽的活性和/或水平

提供了提高ACCase突变多肽的活性和/或水平以提高ACCase除草剂耐受性的方法。通过向植物提供ACCase多肽来提高ACCase突变多肽的水平和/或活性。通过将突变体ACCase多肽导入到植物中，将编码突变ACCase多肽的核苷酸序列导入到植物中，或者通过对编码本发明ACCase多肽的基因位点进行修饰来提供该多肽。

正如本文其他地方所讨论的，向植物提供多肽的很多方法在本领域中都是已知的，包括但不限于，将多肽直接导入到植物中，将编码具有增强ACCase活性的多肽的多核苷酸构建体导入到植物中(瞬时或稳定)。还可以认识到的是，本发明的方法也可以使用不能在转化植物中指导蛋白质或RNA表达的多核苷酸。因此，可以通过对编码突变体ACCase多肽的基因或其启动子进行改变来提高ACCase突变体多肽的水平和/或活性。见，例如Kmiec，U.S.Patent 5,565,350；Zarling，et al.，PCT/US93/03868。因此，提供了在ACCase基因中携带突变的诱变植物，其中该突变增加了突变体ACCase的表达或者提高了所编码多肽的活性。

减少ACCase多肽的活性和/或水平

通过将表达盒(该表达盒能表达抑制ACC表达的多肽)转化到植物细胞中，也提供了减少或消除ACCase多肽活性的方法。该多肽可通过阻止ACCase合酶信使RNA的表达或翻译来直接抑制，或者通过编码抑制ACCase基因(编码ACCase多肽)转录和翻译的多肽来间接抑制ACCase的表达。用于在植物中抑制或清除基因表达的方法在本领域中是众所周知的，并且任意的这种方法都可以用于本发明来抑制ACCase多肽的表达。可以使用很多方法来减少或清除ACCase合酶多肽的活性。此外，不止一种方法可以用来减少单一ACCase多肽的活性。

1、基于多核苷酸的方法：

在本发明的一些实施方式中，用能够表达抑制本发明ACCase合酶多肽表达的多核苷酸的表达盒转化植物。本文所使用的术语“表达”是指基因产物的生物合成，包括所述基因产物的转录和/或翻译。例如，为了实现本发明的目的，能够表达抑制至少一种ACCase合酶多肽表达的多核苷酸的表达盒是能够产生抑制本发明至少一种ACCase合酶多肽转录和/或翻译的RNA分子的表达盒。从DNA分子“表达”或“产生”蛋白质或多肽是指对编码序列进行转录和翻译以产生蛋白质或多肽，而从RNA分子“表达”或“产生”蛋白质或多肽是指对RNA编码序列进行翻译以产生蛋白质或多肽。

抑制ACCase合酶多肽表达的多核苷酸的示例包括有义抑制/共抑制，其中设计表达盒来表达编码相应ACCase合酶多肽之信使RNA的全部或部分的“有义”方向的RNA分子，并且该RNA分子的过表达会导致天然基因表达的降低；反义抑制，设计表达盒来表达与编码ACCase合酶多肽的信使RNA的全部或部分互补的RNA分子，该反义RNA分子的过表达会导致天然基因表达的降低；双链RNA干扰，其中如上所述的用于共抑制的有义RNA分子，以及与该有义RNA分子全部或部分互补的反义RNA分子在同一个细胞中表达，导致相应的内源信使RNA的表达被抑制；发夹RNA干扰以及含有内含子的发夹RNA干扰，其中设计表达盒来表达能够自我杂交以形成包含单链环区和碱基对茎的发夹结构的RNA分子；小干扰RNA或微RNA(micro RNA)，其中设计表达盒来表达仿照内源miRNA基因的RNA分子。

2、基于多肽的基因表达抑制

在一个实施方式中，多核苷酸编码结合到ACCase多肽编码基因上的锌指蛋白，导致该基因表达的降低。例如，在美国专利No.6,453,242中已经描述了选择锌指蛋白靶向位点的方法，以及例如在美国专利公开No.2003/0037355中描述了使用锌指蛋白来抑制植物中基因表达的方法；各自通过引用并入本文。

3、基于多肽的蛋白活性抑制

在本发明的一些实施方式中，多核苷酸编码能够与至少一种ACCase结合并降低ACCase合酶多肽活性的抗体。在植物细胞中表达抗体，以及通过在植物细胞中表达抗体并将抗体与蛋白结合来抑制分子通路在本领域中是众所周知的。见，例如Conrad andSonnewald，(2003)Nature Biotech.21：35-36，通过引用并入本文中。

4、基因破坏

在本发明的一些实施方式中，通过破坏编码ACCase合酶多肽的基因来减少或清除ACCase合酶多肽的活性。通过本领域已知的任意方法来破坏编码ACCase合酶多肽的基因。例如，在一个实施方式中，通过转座子标签来破坏基因。在另一个实施方式中，利用随机或靶向诱变对植物进行诱变，并选择ACCase活性降低的植物，以此来破坏基因。

在某些实施方式中，本发明的核酸序列可以与感兴趣的多核苷酸组合叠加，以创建具有期望表型的植物。例如，本发明的多核苷酸可以与本发明的其他任何的多核苷酸(SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6)，或者与除草剂抗性有关的其他基因叠加。所产生的组合也可包括任意一种感兴趣的多核苷酸的多个拷贝。本发明的多核苷酸也可以与其他基因或基因组合叠加，以产生具有多种预期性状的植物，包括但不限于动物饲养所需要的性状，例如高油基因(例如，U.S.Pat.Nos.6,232,529)，氨基酸平衡(例如，hordothionins(U.S.Pat.Nos.5,990,389；5,885,801；5,885,802；以及5,703,409))，大麦高赖氨酸(Williamson et al.(1987)Eur.J.Biochem.165：99-106；以及WO 98/20122)，和高甲硫氨酸蛋白质(Pedersen et al.(1986)J.Biol.Chem.261：6279；Kirihara et al.(1988)Gene71：359；and Musumura et al.(1989)Plant Mol.Biol.12：123))，提高的消化率(例如，修饰的储藏蛋白(U.S.application Ser.Nos.10/053，410，filed Nov.7，2001))，以及硫氧还蛋白(U.S.application Ser.Nos.10/005，429，filed Dec.3，2001)，其公开的内容通过引用并入本文。

本发明的多核苷酸也可以与昆虫、疾病或除草剂抗性所需的性状相叠加(例如，苏云金芽孢杆菌毒素蛋白(U.S.Pat.Nos.5,366,892；5,747,450；5,737,514；5,723,756；5,593,881；Geiser et al(1986)Gene 48：109)；凝集素(Van Damme et al.(1994)PlantMol.Biol.24：825)；伏马毒素解毒基因(U.S.Pat.Nos.5,792,931)；无毒抗病基因(Joneset al.(1994)Science 266：789；Martin et al.(1993)Science 262：1432；Mindrinos etal.(1994)Cell 78：1089)；产生除草剂抗性的乙酰乳酸合酶突变体(ALS)，如S4和/或Hra突变；谷氨酰胺合酶抑制剂(例如，bar基因)；和草甘膦抗性(EPSPS基因和GAT基因))；和产品加工(processing)或处理(process)所需的性状，例如高油(U.S.Pat.Nos.6,232,529)，改性油(例如，脂肪酸脱氢酶基因(U.S.Pat.Nos.5,952,544；WO94/11516))，改性淀粉(例如，ADPG焦磷酸化酶(AGPase)，淀粉合酶(SS)，淀粉分支酶(SBE)和淀粉脱支酶(SDBE))，以及聚合物或生物塑料(U.S.Pat.Nos.5,602,321)，β-酮硫解酶、聚羟基丁酸酯合成酶、和乙酰乙酰CoA还原酶(Schubert et al.(1988)J.Bacteriol.170：5837-5847)，它们使聚羟基脂肪酸酯(PHA)更容易表达)，所这些公开内容通过引用并入到本文中。也可以将本发明的多核苷酸与提供农艺性状的多核苷酸组合，例如雄性不育(见U.S.Pat.Nos.5,583,210)、茎秆强度、开花时间、或转化技术性状，如细胞周期调控或基因打靶(见WO 99/61619；WO 00/17364；WO 99/25821)，这些所公开的内容通过引用并入到本文中。

可以通过任意的方法来创建这些叠加的组合，包括但不限于，可在任何时候，以任意顺序组合所感兴趣的多核苷酸序列。例如，包含一种或多种所需性状的转基因植物可以用作靶，通过后续的转化导入更多的性状。将性状与感兴趣的多核苷酸在共转化实验中同时导入可由转化盒的任何组合来完成。例如，如果要导入两条序列，这两条序列可以包含在独立的转化盒(反式)或包含在同一个转化盒中(顺式)。序列的表达可由相同的启动子或不同的启动子来驱动。在某些情况下，可能期望导入抑制感兴趣的核苷酸表达的转化盒。这可以与其他抑制盒或过表达盒的组合进行组合以在植物中产生所需的性状组合。

本发明提供了对包含有本发明核苷酸的植物进行基因分型的方法。基因分型提供了区分染色体对同系物的方法，可以用于区别植物种群中的分离子。分子标记方法可以用来进行系统发育研究，表征作物品种间的遗传关系，鉴定杂交或体细胞杂种，对影响单基因性状的染色体片段进行定位，图位克隆，以及数量遗传学研究。见，例如，Plant MolecularBiology：A Laboratory Manual，Chapter 7，Clark，Ed.，Springer-Verlag，Berlin(1997)。对于分子标记方法，一般见于，The DNA Revolution by Andrew H.Paterson 1996(Chapter 2)in：Genome Mapping in plants(Ed.，Andrew H.Paterson)by AcademicPress/R.G.Lands Company，Austin，Tex.，pp.7-21。

本发明基因分型的具体方法可以利用任何分子标记分析技术，例如但不限于，限制性片段长度多态性(RFLP)。RFLP是由于核苷酸序列的变异造成在DNA限制性片段之间等位基因差异的产物。正如本领域技术人员众所周知的，通常是通过提取基因组DNA，用限制性酶进行消化来检测RFLP。通常，根据大小来分开所得到的片段，并与探针进行杂交；优选单拷贝探针。揭示了来自于同源染色体的限制性片段。等位基因之间片段大小的差异代表RFLP。因此，本发明还提供了使用诸如RFLP分析等的技术，追踪本发明的基因或核酸以及与这些基因或核酸遗传连锁的染色体序列的分离的方法。连锁的染色体序列在本发明基因的50厘摩(eM)之内，通常在40或30eM之内，优选在20或10eM之内，更优选在5、3、2或1eM之内。

在本发明中，用于植物核基因组分子标记作图的核酸探针在选择性杂交条件下与编码本发明多核苷酸的基因杂交。在优选实施方式中，探针选自本发明的多核苷酸。通常，这些探针是cDNA探针或限制性酶(例如，PSTI)处理的基因克隆。探针的长度通常至少15个碱基，更优选至少20、25、30、35、40或50个碱基。一般说来，然而，这些探针长度要小于1千个碱基。优选地，探针是杂交到单倍体染色体上的唯一位点的单拷贝探针。用于RFLP作图的限制性酶的一些示例是EcoRI、EcoRV和SstI。如本文中所使用的，术语“限制性酶”包括对特定的核苷酸序列进行识别，以及单独或与其他的组分一起切割的组合物。

检测RFLP的方法包括步骤(a)用限制性酶消化植物基因组DNA；(b)在选择性杂交条件下，将核酸探针杂交到基因组DNA中本发明的核苷酸序列上；(c)从中检测RFLP。本发明的多核苷酸多态性(等位基因)变体的其他鉴别方法可以利用本领域技术人员众所周知的分子标记技术，包括的技术例如：1)单链构象分析(SSCA)；2)变性梯度凝胶电泳(DGGE)；3)RNase保护测定；4)等位基因特异性寡核苷酸(ASO)；5)利用能识别核苷酸错配的蛋白质，例如大肠杆菌mutS蛋白；以及6)等位基因特异性PCR。基于两条互补DNA链之间错配检测的其他方法包括恒定变性电泳(CDGE)；异源双链分析(HA)；和化学错配切割(CMC)。因此，本发明还提供了基因分型的方法，包括在严格杂交条件下，将怀疑含有本发明核苷酸的样品与核酸探针相接触的步骤。一般而言，样品是植物样品，优选地，是怀疑包含本发明的玉米多核苷酸的样品(例如，基因，mRNA)。核酸探针在严格条件下选择性地与本发明的包含多态性标记的多核苷酸亚序列杂交。核酸探针与多态性标记核酸序列的选择性杂交产生了杂交复合物。对杂交复合物的检测表明样品中存在该多态性标记。在优选的实施方式中，核酸探针包含本发明的多核苷酸。

此外，可以认识到本发明的方法可以采用能够指导至少一种蛋白质或至少一种RNA(例如，与mRNA的至少一部分互补的反义RNA)在转化植物中表达的核苷酸构建体。通常，这种核苷酸构建体由可操作地与5’和3’转录调节区连接的编码蛋白质或RNA的序列组成。另外，也可以认识到，本发明的方法可以采用不能指导蛋白或RNA在植物中表达的核苷酸构建体。

此外，可以认识到本发明的方法并不依赖于将整个核苷酸构建体掺入到基因组中，只需将核苷酸构建体导入细胞后会导致由此得到的植物或其细胞发生改变即可。在本发明的一个实施方式中，在将核苷酸构建体导入到细胞中之后，基因组可能被改变。举个例子，核苷酸构建体或其任意部分可以掺入植物的基因组。本发明的基因组改变包括但不限于，基因组中核苷酸的添加、缺失、以及取代。而本发明的方法并不依赖于添加、缺失或取代任何特定数目的核苷酸，可以认识到，这种添加、缺失或取代包括至少一个核苷酸。

提供下列的示例用于证实和进一步说明某些优选实施方式和本发明的某些方法，而不被解释为对其范围的限制。

实施例

实施例1

乙酰辅酶A羧化酶抑制剂耐受性小麦(Triticumaestivum L.)在除草剂耐受性作物系统中的应用。

通过以下方法开发具有对乙酰辅酶A羧化酶(ACC)抑制剂类除草剂的耐受性的冬小麦(Triticumaestivum L.)：

冬小麦种子，品种Hatcher，以0.75％的比例施用强力化学诱变剂(非转基因方法)甲基磺酸酯(EMS)2.5小时。该种子以M1表示，种子的每一代都在M后连续增加数字来表示。这在小麦基因组中导致的突变频率为每96kb 1个突变(在M2代中计算)。在二月种植该小麦，七月收获。九月，将所产生的M2种子种植在农田中，总数为250万株植物。

在第二年五月，将农田分为两个区域；一个区域用一个致死剂量的喹禾灵处理(～100万株植物)，另外一个区域用一个致死剂量的烯草酮处理(～150万株植物)。喹禾灵和烯草酮是高效的ACCase抑制剂(脂质合成抑制剂)。喹禾灵部分的农田在六月再处理一次。七月，收集到了46株喹禾灵和147株烯草酮存活株的穗。

同时，在一月至四月间，将M2种子的一小部分种植在温室中。用致死剂量的喹禾灵和烯草酮分别对约75000和175000株植物进行筛选。施用之后，对一小组(7株)比其他植株更为健康的烯草酮存活株进行第二次筛选。这是在我们的突变群体中第一个被证实的改良的除草剂耐受性发生率(图1)。五月，从这组植物中总共收获了26株喹禾灵和42株烯草酮存活株。

在温室中(8-10月)对从农田中收集到的M3代用两个连续比例的致死剂量的除草剂进行喹禾灵和烯草酮筛选(图2)。相比起其他突变植物和未经诱变的对照(check)，一些株系(accession)表现出很高的存活率。已经开始进行一些初步特征研究来研究各种突变。图3显示了一些ACCase耐受性株系与未经诱变的对照进行对比。

这些筛选提供了明确的证据，即这种小麦获得了可遗传和功能性的ACCase抗性。

实施例2

乙酰辅酶A羧化酶抑制剂耐受性小麦(Triticumaestivum L.)在除草剂耐受性作物系统中的应用。

通过以下方法表征具有对乙酰辅酶A羧化酶(ACC)抑制剂类除草剂的耐受性的冬小麦(Triticumaestivum L.)：

用多种方法对表现出喹禾灵耐受性提高的植物进行筛选，以确定和表征提高的原因。对植物针对肉眼可见的损伤、全植物喹禾灵耐受性差异、对其他除草剂的交叉抗性进行筛选，并进行基因型和酶评估。

肉眼可视评估。18个喹禾灵耐受性株系用21.05g aiha^-1(基于在先研究，其是判别剂量)喹禾灵进行处理。在处理后(DAT)28天评估喹禾灵对植物造成的肉眼可视伤害，范围从0至100％，其中0为未造成伤害，100为完全干燥。本研究所评估的几乎所有株系都比未突变的Hatcher小麦表现出更强的喹禾灵耐受性(图5)。这些株系几乎没有完全枯死的植物，只是除了有一个株系与背景没有差别。

剂量响应。用11、23、46、92和184g喹禾灵ha^-1来完成剂量响应研究。处理后7天，从最新的地上生长点之上将植物上部切下来。处理后28天实行植物存活二项式评价。在整个植物对增加喹禾灵施用比例的敏感性中发现了差异。LD₅₀的范围从未经过处理的10g aiha^-1至76g ai ha^-1(图6)。基于植物的存活/死亡，本实验的抗性与敏感的比例范围从1.6至7.5。

交叉抗性。在ACCase除草剂作用模式中，使用对小麦正常致死的除草剂来实施交叉抗性研究。以65、264和361g ai ha^-1的比例来使用烯草酮，烯禾啶和吡氟禾草灵，再用烯草酮和10.5g ai ha^-1喹禾灵处理。处理后7天，从最新地上生长点之上将植物上部切下来。处理后28天实行植物存活二项式评价。喹禾灵突变体对烯草酮和烯禾啶的耐受性很低(表1)。任何交叉耐受性的存在证明将多种同源抗性ACCase基因组合到一个植物中可能导致对另外的除草剂的抗性。如果突变是基于靶位点的，这个阶段在植物中只有三分之一的ACCase携带突变和包含对ACCase抑制剂的耐受性。

DNA测序。从26个喹禾灵耐受性表型中收集DNA。开发基因组特异性引物，以从A、B和D祖先小麦基因组中扩增序列。将所得到的序列与先前克隆的未突变小麦序列进行比对，以确定核苷酸取代的存在。在将来自于未突变Hatcher的序列与来自于突变表型的序列进行比对时，在ACCase羧基转移酶结构域中发现了三个非同义突变，全部都在大穗看麦娘(Alopecurus myosuroides)氨基酸编号系统的位置2004处。在8个株系中发现了在A基因组上的这个突变，在9个株系中发现了B基因组上的突变，在9个株系中发现了D基因组上的突变。没有一个植株具有一个以上的这些SNP。该突变是C至T取代，导致氨基酸序列中丙氨酸至缬氨酸的改变(图7)。每一个比背景具有更高存活的株系都包含这些SNP中的一个。基于色谱，认为在植物中大多数这些SNP都是纯合子。

ACCase酶表征。实行体外酶测定来观察ACCase与喹禾灵的直接结合，以确定ACCase突变的存在是否降低了除草剂抑制ACCase活性的能力。测定实验中包括4个喹禾灵浓度0.1、1、10和100μM，以及未处理对照。该实验包括代表3个所检测突变和未诱变小麦的4个株系。未诱变Hatcher冬小麦对喹禾灵的敏感性比突变体株系要高(图8)。在10μM上，具有B和D基因组核苷酸取代的植物导致对喹禾灵的耐受性要比背景水平更高，而在100μM的浓度上，具有A和D基因组核苷酸取代的植物要比背景的耐受性更高，其LSD(α＝0.05)分别为14.5和21.6。在I25水平上计算，A基因组抗性/敏感的值为4.57，B基因组为3.57，D基因组为10.86。

基于这些实验，植物对喹禾灵的抗性中最大的因素是2004位置上C至T核苷酸取代的存在。

表1.施用其他ACCase除草剂后，喹禾灵耐受性突变体的存活。株系0是未突变对照。

本申请中提到的所有出版物和专利通过参考导入本文。本发明所描述的方法和组合物的各种修饰和变化对于本领域技术人员都是明显的，并没有脱离本发明的精神和范围。尽管描述了本发明和特定的优选实施方式，但应当理解本发明的权利要求不应当过分限制到这些特定实施方式中。事实上，对于本领域技术人员显而易见的为实施本发明而对所描述的方式进行的各种修饰意为落入下列的权利要求范围之内。

保藏声明

从本申请的申请日以及所有引用的和并入本文的临时申请日之前开始，本文公开的小麦品种AF28、AF26和A10的种子的保藏由科罗拉多州立大学，Ft.Collins，Colorado80523所维持文。在本申请的申请期间，专利和商标委员会以及由委员会根据请求授权确定的个人都可获得该保藏物。根据本申请任何权利要求的允许，通过American TypeCulture Collection(ATCC)，Rockville，Maryland，20852，申请人无限制地向公众提供每品种或品系至少2500个种子的保藏。ATCC保藏的种子将从如前所述的科罗拉多州立大学所维持的同一保藏中取得。另外，申请人满足37 C.F.R.§1.801-1.809的所有要求，包括当进行保藏时，提供样品的存活证明。前述小麦品种维持在ATCC保藏库中，其是一个公共保藏库，30年，或最近请求后5年，或专利的强制执行期，以最长时间为限，并且如果在该期间内死亡时应当进行更换。申请人不能对ATCC保藏材料的可用性施加任何限制；然而，申请人无权放弃由法律规定的对生物材料的转移或其在商业上运输的任何限定。

Claims (54)

1.小麦植物，其中已渐渗入乙酰辅酶A羧化酶核酸，所述乙酰辅酶A羧化酶核酸赋予对如下水平的一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性，所述一种或多种除草剂的水平通常会抑制小麦植物生长。

2.权利要求1的小麦植物，其中所述一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂来自于由芳氧基苯氧基丙酸酯类、环己二酮类和苯基吡唑啉类(DEN)组成的组。

3.权利要求1的小麦植物，其中所述对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性通过育种导入到所述小麦植物中。

4.权利要求1的小麦植物，其中所述赋予对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性的核酸包含编码乙酰辅酶A羧化酶蛋白的核酸序列，当以黑草的SEQ ID NO：14或16为参考时，所述蛋白包含氨基酸取代Ala2004Val。

5.权利要求4的小麦植物，其中所述蛋白是SEQ ID NO：8、10或12或其包括Ala2004Val取代的保守性修饰变体。

6.权利要求1的小麦植物，其中所述小麦植物种质包含在AF28-A，AF26-B和/或AF10-D(ATCC No.________)中发现的乙酰辅酶A羧化酶基因中的突变。

7.权利要求6的小麦植物，其中所述在AF28-A，AF26-B和/或AF10-D(ATCCNo.________)中发现的基因通过回交导入到所述小麦杂交种质中。

8.权利要求1的小麦植物，其中所述小麦植物包含SEQ ID NO：4、5或6的核酸序列。

9.权利要求8的小麦植物，其中所述SEQ ID NO：4、5或6通过育种导入到所述小麦植物种质中。

10.权利要求1的小麦植物，其中通过将编码ACCase蛋白的异源核酸序列导入到所述植物中来创建所述小麦植物，所述ACCase蛋白具有赋予一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂的一个或多个取代。

11.控制权利要求1的小麦植物附近的杂草的方法，包括：

a、提供一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂，

b、将一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂施用到包含权利要求1的小麦植物的农田中，其中杂草的生长受到所述一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂施用的不利影响，而所述小麦杂种的生长没有受到不利影响。

12.权利要求11的方法，其中所述一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂来自由芳氧基苯氧基丙酸酯类、环己二酮类和苯基吡唑啉类(DEN)组成的组中。

13.权利要求11的方法，其中所述权利要求1的小麦植物包含对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性，其是通过渐渗导入到所述小麦植物种质中的。

14.权利要求11的方法，其中所述小麦植物包含编码乙酰辅酶A羧化酶蛋白质的核酸序列，所述乙酰辅酶A羧化酶蛋白包含氨基酸取代Ala2004Val。

15.权利要求11的方法，其中所述小麦植物包含SEQ ID NO：4。

16.权利要求11的方法，其中所述小麦植物包含在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCCNo.________)中发现的乙酰辅酶A羧化酶基因中的一或多种突变。

17.权利要求16的方法，其中所述在AF28-A，AF26-B和/或AF10-D(ATCC No.________)中发现的基因通过育种导入到所述小麦植物中。

18.权利要求11的方法，其中通过将编码ACCase蛋白的异源核酸序列导入到所述植物中来创建所述小麦植物，所述ACCase蛋白具有赋予对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性的一个或多个取代。

19.产生对一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂具有抗性的小麦植物的方法，包括：

a)将编码ACCase蛋白的核酸序列导入到所述植物中，当与野生型和黑草参考序列(SEQID NO：14或16)相比时，所述ACCase蛋白包含氨基酸取代Ala2004Val，其中所述ACCase蛋白赋予对如下水平的一种或多种乙酰辅酶A羧化酶除草剂所致抑制作用的抗性，所述一种或多种除草剂的水平通常会抑制小麦植物生长。

20.权利要求19的方法，其中通过回交来进行所述导入。

21.权利要求19的方法，其中通过导入异源核酸序列来将所述种质导入到所述良种小麦植物中。

22.权利要求20的方法，其中所述回交包括获得植物AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCCNo.________)，将所述植物与良种小麦植物杂交以创建后代小麦植物，选择具有ACCase除草剂抗性的小麦植物，并重复步骤b和c使得在还具有ACCase除草剂抗性的植物中重新产生所述良种小麦植物的形态学和生理学特征。

23.权利要求19的方法，其中所述除草剂抗性植物包含在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCC No.________)中发现的乙酰辅酶A羧化酶基因中的突变。

24.鉴定对乙酰辅酶A羧化酶除草剂具有抗性的小麦植物的方法，包括：a)从小麦植物中获得核酸样品，b)在所述扩增的核酸样品中测定所述核酸样品中编码ACCase蛋白的核酸序列的存在，所述ACCase蛋白包括能够赋予对乙酰辅酶A羧化酶除草剂抗性的一个或多个突变。

25.权利要求24的方法，其中所述核酸样品包含在AF28-A、AF26-B和/或AF10-D(ATCCNo._______)中发现的乙酰辅酶A羧化酶基因中的突变。

26.权利要求25的方法，其中当与黑草参考序列SEQ ID NO：14或16相比时，所述一个或多个突变编码氨基酸取代Ala2004Val。

27.权利要求26的方法，其中所述核酸样品包含SEQ ID NO：4、5或6。

28.具有修饰的ACCase多核苷酸序列的植物，所述序列编码ACCase多肽，当与黑草参考序列SEQ ID NO：14或16相比时，所述ACCase多肽在位置2004处具有缬氨酸。

29.小麦栽培种AF28-A、AF26-B和/或AF10-D的种子，所述栽培种的代表性样品种子以ATCC登录号_______保藏。

30.通过生长权利要求29的种子而产生的小麦植物或其部分。

31.从来自权利要求30的植物的原生质体或细胞产生的组织培养物，其中所述细胞或原生质体从植物部分产生，所述植物部分选自由叶、花粉、胚珠、胚、子叶、胚轴、分生细胞、根、根尖、雌蕊、花药、花、种子、枝条、茎、荚和叶柄组成的组。

32.再生自权利要求31的组织培养物的小麦植物。

33.产生小麦种子的方法，所述方法包括将两种小麦植物杂交，收集所得到的小麦种子，其中至少一种小麦植物是权利要求30的小麦植物。

34.由权利要求33的方法产生的小麦种子。

35.通过生长权利要求34的种子产生的小麦植物或其部分。

36.权利要求33的方法，其中至少一种所述小麦植物是转基因的。

37.赋予植物ACCase除草剂抗性的方法，包括：调节植物中ACCase蛋白的活性。

38.权利要求37的方法，进一步包括以下步骤：将包含ACCase核酸的核酸构建体导入到植物中，其中所述ACCase核酸可操作地连接到能够在植物细胞中指导表达的启动子。

39.权利要求38的方法，其中所述核酸构建体是抑制性构建体。

40.权利要求39的方法，其中所述构建体包括SEQ ID NO：1、2或3的核酸序列。

41.权利要求39的方法，其中通过选自以下之一的方法导入表达盒：电穿孔、微弹轰击和农杆菌介导的转移。

42.权利要求39的方法，其中所述在植物中起作用的启动子是组织偏好性启动子、组织特异性启动子或诱导型启动子。

43.权利要求39的方法，其中植物是拟南芥、小麦、稻、高粱、大麦、燕麦、草坪草、黑麦、大豆、加拿大油菜、芸苔、向日葵、玉米、高粱、苜蓿、棉花、小米、花生或可可。

44.分离的多核苷酸，其包含选自以下的核酸序列：

(a)SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6所示的核酸序列；

(b)编码具有SEQ ID NO：7、8、9、10、11或12所示氨基酸序列的多肽的核苷酸序列；

(c)由GAP算法在默认参数下确定的与SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6在全长上具有至少95％序列相同性的核酸序列，其中所述核酸序列编码具有半胱氨酸蛋白酶抑制剂活性的多肽；

(d)编码具有ACCase活性或者对ACCase除草剂具有抗性的多肽的核酸序列，其中所述多肽与SEQ ID NO：7、8、9、10、11或12具有至少95％的序列相同性；和

(e)包含(a)至(d)中任一项的全长互补序列的核酸序列。

45.权利要求44的分离的多核苷酸，其中所述多核苷酸被优化以在植物中表达。

46.包含权利要求50的分离的多核苷酸的核酸构建体，其中所述多核苷酸可操作地连接至在宿主细胞中驱动表达的启动子。

47.权利要求46的构建体，其中所述多核苷酸以反义方向可操作地连接到所述启动子。

48.包含权利要求46的DNA构建体的表达盒。

49.宿主细胞，其基因组已经稳定地掺入至少一个权利要求46的DNA构建体。

50.权利要求49的宿主细胞，其中所述宿主细胞是植物细胞。

51.转基因植物，其基因组已经稳定地掺入权利要求46的DNA构建体。

52.权利要求51的转基因植物，其中所述植物选自：玉米、大豆、小麦、稻、苜蓿、大麦、小米、向日葵、高粱、加拿大油菜和棉花。

53.权利要求58的转基因植物，其中所述植物是小麦。

54.具有ACCase活性的分离的多肽，其选自：

(a)包含SEQ ID NO：7、8、9、10、11或12所示氨基酸序列的多肽；

(b)由包含SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6所示序列的核苷酸序列编码的多肽；

(c)由与SEQ ID NO：1、2、3、4、5或6所示序列具有至少90％序列相同性的核苷酸序列编码的多肽；

(d)包含与SEQ ID NO：7、8、9、10、11或12所示序列具有至少90％序列相同性的氨基酸序列的多肽；

(e)包含(a)至(d)任一项的至少50个连续氨基酸的氨基酸序列的多肽。