[go: up one dir, main page]

NO124603B - - Google Patents

Download PDF

Info

Publication number
NO124603B
NO124603B NO1832/69A NO183269A NO124603B NO 124603 B NO124603 B NO 124603B NO 1832/69 A NO1832/69 A NO 1832/69A NO 183269 A NO183269 A NO 183269A NO 124603 B NO124603 B NO 124603B
Authority
NO
Norway
Prior art keywords
substrate
bodies
active substance
wall
diffusion
Prior art date
Application number
NO1832/69A
Other languages
English (en)
Inventor
Rolf Saxholm
Original Assignee
Rolf Saxholm
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Rolf Saxholm filed Critical Rolf Saxholm
Priority to NO1832/69A priority Critical patent/NO124603B/no
Priority to SE7005930A priority patent/SE383208B/xx
Priority to DK221170AA priority patent/DK130690B/da
Priority to US00033594A priority patent/US3791930A/en
Priority to CA081,683A priority patent/CA940024A/en
Priority to DE2021558A priority patent/DE2021558C3/de
Priority to GB2141170A priority patent/GB1315031A/en
Priority to JP45038192A priority patent/JPS5144192B1/ja
Priority to NLAANVRAGE7006564,A priority patent/NL168265C/xx
Priority to FR7016221A priority patent/FR2047264A5/fr
Publication of NO124603B publication Critical patent/NO124603B/no
Priority to US05/602,745 priority patent/US3985608A/en
Priority to US05/731,103 priority patent/US4140582A/en
Priority to US06/012,905 priority patent/US4324859A/en
Priority to US06/365,239 priority patent/US4591556A/en

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/02Form or structure of the vessel
    • C12M23/10Petri dish
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/34Internal compartments or partitions
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12MAPPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M29/00Means for introduction, extraction or recirculation of materials, e.g. pumps
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/805Optical property
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/807Apparatus included in process claim, e.g. physical support structures
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/807Apparatus included in process claim, e.g. physical support structures
    • Y10S436/809Multifield plates or multicontainer arrays

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Investigating Or Analyzing Non-Biological Materials By The Use Of Chemical Means (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Description

Fremgangsmåte ved utførelse av diffusjonsprøver
i mikrobiologisk, immunologisk og lignende laboratorie-
arbeide, og virkestoffbærende legeme for utførelse
av fremgangsmåten.
Oppfinnelsen vedrører en ny teknikk som muliggjør en rasjonalisering og automatisering av mikrobiologisk, immunologisk og lignende laboratoriearbeide. Den baserer seg på en prøveteknikk med diffusjon av virkestoffer i faste eller halvfaste substrater (medier) hvor utfallet av prøvene i form av reaksjoner resp. vekst-forandringer kan observeres på optisk vei. Den omfatter tester som er biologiske (d.v.s. mikrobiologiske, immunologiske, serologiske og andre biokjemiske tester, som klinisk kjemiske tester) eller kjemiske forsåvidt de egner seg for en diffusjonsteknikk.
Mikrobiologiske og immunologiske diffusjonstester blir ofte utført ved at virkestoffet i tilmålte doser, gjerne inneholdt i virkestoffbærere som papirskiver, tabletter eller lignende, deponeres på eller i et fast eller halvfast substrat. Ved mikrobiologiske tester reagerer virkestoffet med en kultur av mikroorganismen inokulert på eller i substratet eller med forskjellige stoffer i substratet produsert av mikroorganismekulturenj mens virkestoffet ved immunologiske tester reagerer med forskjellige stoffer tilført substratet eller produsert av mikroorganismekulturen.
Virkestoffet diffunderer ned i og ut i det faste substrat og reagerer med de nevnte kulturer eller stoffer under forandring i vekst resp. reaksjon. Dette kan registreres på grunnlag av forskjellige biologiske, kjemiske eller fysikalsk-kjemiske fenomener. En vanlig test av dette slag er bestemmelse av bakteriers sensitivitet overfor antibiotika, hvor man måler utstrekningen av sirkulære hemningssoner i bakterieveksten rundt posisjonene av påførte virkestoffer.
Virkestoffbæreren, som regel en lapp eller tablett, absorberer vandig substrat eller medium. Da dermed diffusible stoffer fra substratet diffunderer inn i lappen eller tabletten, lar det seg også gjøre å gjennomføre visse egnede reaksjoner i selve bærelegemet.
Det faste eller halvfaste substrat er mikroporøst og har et høyt vanninnhold for at diffusjonsmekanismen skal kunne realiseres. Substratet kan være tørt til å begynne med og få tilført vann. Det
kan være en gel av f.eks. stivelse, gelatin, silica eller være laget på cellulosebasis. Den mest alminnelige gel er en agar gel som kan ha betydelig mekanisk styrke selv ved meget høyt vanninnhold. Agar er kjemisk meget inert og gir en gel velskikket for diffusjonstesting. Ved mikrobiologiske tester må substratet inneholde næringsstoffer,
og det må være sterilt før det inokuleres. Substratet er plasert i
en beholder eller på et underlag, som i tilfelle av mikrobiologisk testing vanligvis er en petriskål eller såkalt "large plate", mens substrat og underlag i tilfelle av immunologisk testing også kan være en såkalt "coated plate".
Diffusjonsteknikken med mikroporøse og faste substrater som reaksjonsmiljø har mange fordeler fremfor anvendelsen av flytende substrater, som i regelen krever langt mer tungvint og omstendelig håndtering, og hvor mulige innflytelser av feilkilder, spesielt forurensninger, ofte er vanskelige å identifisere, så der kreves stor omhu ved utførelsen og også regelmessig kontroll for å muliggjøre entydige slutninger. På faste substrater blir f.eks. forurensende mikrober lette å iaktta, idet de forblir som isolerte kolonier på overflaten. I flytende substrater gjennomtrenger veksten hele substratvolumet.
Blakningen - som registreres - av det flytende substrat vet man ikke om skyldes de mikrober som undersøkes, eller vekst av en forurensende mirobe. Dette krever ekstra kontrollarbeide.
Ved sensitivitetsundersøkelser vil forholdet mellom den resistente og den sensitive del av bakteriepopulasjonene kunne iakttas ved faste substrater, men ikke ved flytende.
På den annen side er diffusjonsteknikken med faste substrater i hittil kjent form beheftet med mangler som begrenser dens anvendelse. Således skyldes en prinsipiell begrensning at diffusjonen av virkestoffet fra de enkelte bærelegemer fører til en tidsavhengig konsentrasjonsgradient utover fra bærelegemet, noe som i forbindelse med at virkningen er en funksjon av både konsentrasjon og tid (f.eks. når det gjelder det stadium i en bakteriekulturs utvikling da en hemning setter inn) gir en betydelig usikkerhet i bedømmelsen avhva som foregår. Por'å gjøre det mulig å tilmåle egnede doser for bærelegemene og bedømme virkningen på grunnlag av visuell observasjon, f.eks. for bestemmelse av minste veksthemmende konsentrasjon, er det derfor nød-vendig på forhånd å utføre møysommelige forsøk med kjente konsentrasjoner som referanse, idet f.eks. en bedømmelse av virkningen av et virkestoff i et menneskelig legeme forutsetter et arbeide med bestemte kjente konsentrasjoner.
Ved plasering av flere virke-stoffer på samme substrat er der også fare for at virkestoffer fra nærliggende legemer kan inter-ferere og gi synergistiske eller antagonistiske virkninger som man ikke er herre over.
Det er riktignok kjent å søke å unngå interferenser ved å dele opp et substrat med skillevegger utformet på bunnen f.eks. av en petriskål eller ved bruk av mer eller mindre oppdelte eller for-grenede substrater med virkestoffer pålagt de enkelte grener. Men dermed innfører man til gjengjeld en effekt som det nettopp er viktig å unngå, nemlig den såkalte rekyleffekt ("rebound effect") som forår-saker ukontrollerbare konsentrasjonsfordelinger med derav følgende usikkerhet i bestemmelsen av sensitivitetssonene, og man gir også av-kall på de fordeler de tradisjonelle petriskåler eller "large plates" gir når det gjelder å kunne stryke ut en utsæd jevnt på substratoverflaten.
For å kunne arbeide med kjente konstante konsentrasjoner
i faste substrater må man idag gå frem på den måte at virkestoffet innblandes i det flytende substrat før stivningen. D.v.s. der benyttes ikke en diffusjonsteknikk, men en fortynningsteknikk, hvor der for
hver konsentrasjon av hvert virkestoff, resp. av hver virkestoff-kombinasjon, kreves en særskilt petriskål eller lignende. Dette gjøres idag i stor utstrekning for referanseforsøk, særlig i industrien, men ville falle altfor vidløftig f.eks. ved titreringsforsøk i kliniske laboratorier.
De nevnte mangler og de dermed forbundne begrensninger ved kjente fremgangsmåter hvor man arbeider med faste substrater, blir ved hjelp av oppfinnelsen ryddet av veien, hvorved der åpnes nye muligheter for en rasjonell utnyttelse av denne teknikk. Fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen er i første rekke karakterisert ved at man anvender bærelegemer som er utformet med en i vertikalretning hovedsakelig rettlinjet, diffusjonstett vegg som har underkanten hovedsakelig forløpende i et plan og er formet for i det minste delvis å inngrense et areal på sin ene side, og driver bærelegemene til bunns i substratet, hvortil virkestoffet avgis på den nevnte side ved at bærelegemet på forhånd bærer virkestoffet på denne side eller har kanaler eller porer hvorigjennom virkestoffet ledes inn, hvorved virkningen i substratet blir begrenset til et av veggen helt eller delvis omsluttet observerbart område.
Man får dermed mulighet for i ett og samme substrat etter inokulasjonen rett og slett ved selve pålegningen av virkestoffbærerne å avgrense passende små reaksjonsområder hvor der - hvis disse ifølge oppfinnelsen helt omsluttes av bære-legemene - i løpet av relativt kort tid etablerer seg en diffusjonslikevekt med en jevn, kjent konsentrasjon av virkestoff og eventuelle i substratet inneholdte komponenter, samtidig som farve- og andre endringer i områdene lettvint kan observeres, f.eks. visuelt og/eller fotometrisk,
særlig spektrofotometrisk. Der åpnes derved en mulighet for å utføre automatiske analyser - gjerne i stor målestokk - som man tidligere bare har hatt ved arbeide med væsker, også ved arbeide med faste substrater og dermed blant annet i mikrobiologisk arbeide.
I den variant hvor områdene ikke er helt omsluttet, kan fremgangsmåten gjøre det mulig å oppnå interferensvirkninger under regulerbare betingelser, f.eks. for å bedømme om det ene og det annet stoff samvirker synergistisk eller antagonistisk, og i tilfelle hvor-ledes, eller ikke interfererer.
Hva angår de virkestoffbærende legemer som anvendes ved fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen, vil det forstås at de skal ha en diffusjonstett vegg som har underkanten i det minste tilnærmelsesvis liggende i et plan og helt eller delvis omslutter et nedentil åpent rom, noe som i og for seg ikke er nytt. For å kunne fylle sin oppgave i det foreliggende tilfelle er bære-legemene ifølge oppfinnelsen karakterisert ved at en til det nevnte rom grensende flate av legemet er forsynt med et belegg inneholdende virkestoffet eller er utformet med fine kanaler eller porer egnet til å avgi deri inneholdt eller gjennomledet virkestoff til substratet i dette rom.
Hva som kan oppnås ved bruk av oppfinnelsen, såvel som ytterligere trekk ved fremgangsmåten og bærelegemene vil i det følgende bli belyst nærmere i forbindelse med bestemte anvendelser og på bakgrunn av den kjente teknikk på de respektive felter.
Som et viktig eksempel kan nevnes bakterienes spaltning
, eller forgjæring av forskjellige sukkerarter. Denne spaltning vurdert for serien av sukkerartene, er gjerne karakteristisk for den enkelte bakterietype og avviker ofte for bakteriene innbyrdes. Forholdet har en vid anvendelse som hjelpemiddel til å skille bakterier fra hverandre. Hvis en bakterie spalter en sukkerart til syreprodukter, så senkes pH-verdien i substratet, hvilket kan iakttas ved omslag av farven av den tilsatte indikator.
Hvis der eksempelvis til et fast substrat er satt en sukkerart som forgjæringsgrunnlag og bromthymolblått som indikator, vil en utsæd av sukkerspaltende og ikke-sukkerspaltende bakterier manifestere seg på følgende måte: De sukkerspaltende bakterier vokser under dannelse av gule kolonier på overflaten av substratet, mens de ikke-sukkerspaltende danner blå kolonier av samme farve som substratet hadde før utsæden. Gule og blå kolonier kan ligge tett ved siden av hverandre på substratoverflaten.
Et tilsvarende flytende substrat vil forandre farve til gult hvis sukkerspaltende bakterier vokser i det, men forbli blått hvis der er vekst utelukkende av ikke-spaltende bakterier.
Når der som et ledd i en klassifikasjon er spørsmål om bestemmelse av en bakteries forgjæringsforhold overfor forskjellige sukkerarter, brukes gjerne flytende substrater.
Da oppfinnelsen tar sikte på blant annet å rasjonalisere forgjæringsforsøk, skal der gis en nærmere beskrivelse av hvordan et forgjæringsforsøk utføres etter kjent metode.
Den bakterie som skal bestemmes ved forgjæringsforsøk, må rendyrkes. Fra denne renkultur gjøres så utsæd til buljonger som finnes opptappet på reagensrør. Buljongene inneholder indikator og forskjellige sukkerarter. Disse rør er lukket med dott, propp eller kapsel. Reagens-rørene med buljongene hensettes i stativer og inkuberes for vekst og reaksjon. Utfallet avleses ved inspeksjon av hvert rør, og det noteres manuelt.
Metoden krever manuell hensetning av rørene i stativer. Hvert buljongrør inneholder bare én sukkerart, men antallet av sukkerarter kan ofte være forholdsvis stort. Derfor blir det relativt brysomt å håndtere og skille rørene med sukkerartene når de skal ordnes i rekke i stativene. Mulighet for forveksling og feil foreligger.
Inokulasjonsprosessen er også relativt besværlig. Hvert rør med sukkerartbuljong inokuleres, idet proppen tas av; røret flamberes i øvre kant for å fjerne eventuelle mikrobielle forurensninger, hvoretter proppen igjen settes på plass.
Rørene, som vanligvis er av glass, må etter avlesningen gjennomgå en tids- og arbeidskrevende prosess med sikte på å brukes om igjen. Først blir de autoklavert for å drepe kulturene. De blir så tømt, vasket og skyllet, hvoretter de blir forsynt med propp.
Deretter steriliseres de, og de er så ferdige for ny opptapning av buljonger inneholdende sukkerarter og indikator.
Tids- og arbeidskrevende er også prepareringen av de substrater som blir tappet i rørene. Først skal buljongen lages, hvoretter der til porsjoner av denne skal settes en rekke forskjellige sukkerarter. Disse opptappes på rør og blir sterilisert på behørig måte. Rørene merkes for tilkjennegivelse av sukkerart. De hensettes i kjøleskap i påvente av bruk.
Rørene er plasskrevende på grunn av sin relativt betydelige størrelse og sitt store antall. Virkningen av dette merkes under arbeide i laboratoriet, oppbevaring i kjøleskap og inkubator, lagerhold og transport. I tillegg kreves lagerhold og renhold av stativer.
Ifølge oppfinnelsen kan det ovenfor omtalte forgjærings-forsøk utføres ved at preproduserte, f.eks. rørformede bærelegemer forsynt med forskjellige sukkerarter drives til bunns i et i og for seg kjent fast substrat i skål. Indikatoren kan hensiktsmessig til-settes bærelegemene, eller også kan den på kjent vis allerede være tilført substratet.
Før innsetningen av bærelegemene er skålens substratover-flate i sin helhet jevnt inokulert med en oppslemning eller flytende kultur av den rendyrkede bakterie.
Etter at legemene er tilført substratet, vil sukkeret - og indikatoren hvis den er tilsatt legemene - diffundere ut i substratet. Det foregår i de vanlig anvendte substrater så raskt at man ikke ville få noen vellykket reaksjon hvis sukkeret ble applisert via en papir-skive som det er oppsuget i, eller via et tablettlegeme som sukkeret er innblandet i.
Ved at det appliserte legeme i henhold til oppfinnelsen avgrenser et perifert lukket kammer, vil den sukkerart som diffunderer ut, forbli i dette kammer og utjevne seg med en jevnt fordelt konsentrasjon. Denne sluttkonsentrasjon er da avhengig av det substratvolum som er avgrenset, og av massen av den sukkerart som er applisert.
Bærelegemene som presses ned i det faste substrat slik at de med basis når bunnen av skålen, bør med sin øvre del rage noe opp over substratoverflaten. Substrattykkelsen i skålen er oftest ca. 0,5 cm eller noe mindre, og høyden av legemet bør således være litt større enn dette. Tverrmålet kan være f.eks. 0,5 - 1,5 cm. Oventil kan legemene være åpne eller forsynt med gjennomsiktig tak.
For oventil åpne bærelegemers vedkommende er det dog
ikke absolutt nødvendig at de er høyere enn substratet, da de, hvis de har mindre høyde, i innsatt tilstand vil levne en spalte i substratet ved sin overkant, så det avgrensede område allikevel ikke vil ha kontakt med substratet omkring.
Legemene inneholder de sukkerarter som skal inngå i reaksjonene. Egnede konsentrasjoner og mengder av sukkerartene, f.eks. oppsuget i filtrerpapir eller tilblandet en formålstjenlig masse, anbringes under fabrikasjonen på hensiktsmessig måte i legemene. Anbringelsen kan gjennomføres ved at f.eks. et for med sukkerartene blir festet på innsiden av legemets vegger. Dette kan hvile på en nedre, indre kant eller avtrapning like ovenfor legemets basale avslutning. Alternativt kan sukkerartene anbringes i hulrom i legemets vegger. Indre vegglamell er perforert, slik at diffusjon kan finne sted inn til det rom som legemet egentlig omslutter. Veggkammeret bør være lukket i bunnen.
Foruten at bærelegemes sidevegger som omslutter reaksjons-områdene, kan brukes som bæreorgan for sukkerartene, kan der til samme formål også brukes indre installasjoner i bærelegemene. Sentralt kan der foreligge et torpedo-, prosjektil- eller stjerneformet organ eller andre hensiktsmessig formede organer. De kan være festet f.eks. ved hjelp av et bærekryss understøttet ved legemets overkant. Videre kan legemet ha skillevegger av forskjellig form og forløp, som helt eller delvis avdeler det rom legemet egentlig omslutter. Disse skillevegger, og i det hele tatt alle indre installasjoner kan på tilsvarende måte som ytterveggene være konstruert hule med perforerte
veggflater, unntatt langs underkanten.
Etterat et legeme med en sukkerart er bragt på plass i substratet, skjer diffusjonen inn i den substratmasse som er avgrenset av legemets vegger. Hos et legeme med perforert innervegg skjer diffusjonen gjennom perforeringene.
Mengden av den sukkerart som på en eller annen av de nevnte måter er anbragt i sammenheng med legemene under produksjonsprosessen, er avpasset slik at sukkerarten etter diffusjonen inn i substratmassen, som er avgrenset av legemets vegger, vil anta en konsentrasjon egnet til formålet med de forgjæringsforsøk man utfører.
Man vil ved forgjæringsforsøk oppnå gode resultater uansett hvilken geometrisk form legemets tverrsnitt har. Selv om det er tilfelle, kan det være av interesse å diskutere legemets form i relasjon til diffusjonslikevekten. Dets form og sukkerartens plaseringssted har betydning for hvor raskt sluttkonsentrasjonen av sukkerarten etableres i legemets substratmasse. Et sirkelrundt legeme med sukkerarten plasert langs veggen, omslutter en substratmasse som blir relativt sent gjennomtrengt sammenlignet med andre former, på grunn av sirkelens relativt store areal i forhold til omkretsen. En plasering av sukkerarten i midten av det runde legeme eller/og i eller langs sek-sjonsvegger i tillegg til den foregående plasering, fører til en raskere tilstand av diffusjonslikevekt. Også f.eks. et smalt, rektangulært legeme med sukkerarten plasert ved langveggene vil være gunstig for en relativt rask etablering av den endelige sukkerkonsentrasjon i det avgrensede substrat. Også ved andre reaksjoner enn forgjærings-forsøk kan valget av legemets form ha praktiske konsekvenser for reaksjonenes forløp og utfall.
En inntruffen eller "positiv" forgjæringsreaksjon viser seg ved omslag av indikatorfarye etter inkubasjon ved 37°C i egnet tid, mens ingen eller "negativ" reaksjon karakteriseres ved intet omslag av farve. Utfallene av reaksjonene er lette å avlese.
I en beholder med substrat, f.eks. en petriskål, plaseres flere legemer i egnet avstand fra hverandre. Hvert legeme inneholder én sukkerart, slik at alle legemene tilsammen representerer de ulike sukkerarter den undersøkte bakteriekultur skal prøves med forgjærings-forsøk overfor.
Det er hensiktsmessig å plasere legemene i substratet med en i og for seg kjent dispenser av tilsvarende slag som er i bruk ved plasering av papirskiver inneholdende antibiotika. Legemene med sukkerartene oppbevares sterilt, stablet på hverandre i magasiner, slik at et magasin inneholder legemer med samme sukkerart. I avleveringsinnretningen er der på kjent måte plass til flere magasiner ved siden av hverandre, de enkelte magasiner med innbyrdes forskjellig innhold av sukkerart-legemer.
Etter anbringelsen av legemene på den faste substratover-flate kan de manuelt eller maskinelt presses til gjennombrudd av substratet og til kontakt med bunnen av skålen ved hjelp av f.eks. et stempel eller en lignende anordning som presser alle legemer ned under ett i samme operasjon. Når legemene rager noe oppover substratoverflaten, er der ingen fare for at stempelflaten skal komme i kontakt med substratet.
Legemene kan være montert på et bæreskjelett ved hvis hjelp de i en manøver kan presses til gjennombrudd av substratet og på plass i det.
På tilsvarende måte som beskrevet i patentsøknad nr. 166.874 kan legemene gjøres magnetisk påvirkbare. Ved hjelp av magnetiske kref-ter trekkes de til gjennombrudd av substratet og til kontakt med bunnen av skålen. Den magnetiske kraft kan eventuelt først appliseres etterat legemene ved tyngdekraftens hjelp er landet på substratoverflaten. De magnetisk påvirkbare deler kan være anbragt f.eks. inne i legemets vegg i nedre del eller kant. Således kan dette materiale bestå av en sammenhengende jernring eller -mansjett, eller også av granulerte deler, eventuelt med de dimensjoner rørveggens tykkelse tillater. Alternativt kan hele veggen av legemet være ferromagnetisk.
Hvis det ønskes, kan man gi nedre kant av legemet en noe eggformet eller skarp utformning, slik at substratet lettere gjennom-skjæres.
Legemene kasseres etter bruk. Bortsett fra de omtalte deler av jern kan de med fordel være laget av plast eller lignende, som destrueres ved forbrenning.
Sukkerforgjæringsreaksjonene er ikke kritiske mot en ufull-stendig tilslutning eller tetthet mellom bunnen av skålen og legemets underkant. Selv en grovt tilskåret nedre kant av legemet garanterer reaksjoner av like god kvalitet som en med meget god tilslutning.
Reaksjonenes identiteter kan på tilsvarende måte som beskrevet i patentsøknad nr. 1326/69 bestemmes maskinelt på grunnlag av definerte posisjoner.
Også reaksjonenes utfall er maskinlesbare funksjoner. Avlesningen kan foretas under visuell kontroll. Maskinen anvises på enkel måte om en reaksjon er positiv eller negativ, eller hvilken grad av positivitet reaksjonene viser. I et tilfelle som det omtalte, med klare, distinkte farvereaksjoner og veldefinerte kriterier for bestemmelse av en reaksjons utfall vil det også være mulig å foreta helautomatisk avlesning.
For gjennomførelse av en slik helautomatisk avlesning kan man f.eks. benytte en petriskål med gjennomsiktig bunn'og gjennomlyse de inngrensede reaksjonsområder samtidig eller etter tur for å registrere de optisk observerbare endringer - farveomslag, grumsing eller lignende - eller endringsgrader på fotometrisk, eventuelt spektrofotometrisk vei, f.eks. for innmatning i datamaskin.
Der åpnes dermed muligheter for å gjennomføre automatiske analyser både på felter som ikke var praktisk tilgjengelige for en slik teknikk, og på en måte som lar seg realisere med enklere og billigere apparatur enn i tilfeller hvor man har vært henvist til å arbeide med flytende substrater.
Ved forgjæringsforsøk brukes konvensjonelt én undersøkelse for hver sukkerart. Der brukes en definert, hensiktsmessig konsentrasjon av sukkerarten. Undersøkelser foretatt av patentsøkeren tyder på at man vil kunne oppnå et mer differensiert diagnostisk uttrykk hvis flere konsentrasjoner av sukkerarten inngår i undersøkelsen. En slik metode vil være prohibitiv med de arbeidsmuligheter som teknisk sett foreligger idag. Selv med én konsentrasjon av hver sukkerart betyr for-gjæringsundersøkelsene en stor belastning for laboratoriene.
Oppfinnelsen gjør det imidlertid mulig på en enkel og arbeidsbesparende måte å gjennomføre en forgjæringsundersøkelse med flere konsentrasjoner av en sukkerart. Foruten å bruke et eget legeme for hver sukkerkonsentrasjon, kan der til alle konsentrasjoner brukes et legeme med seksjonskamre til fordeling av sukkerkonsentrasjonene. Legemet kan i dette tilfelle utformes som f.eks. et relativt langt, rektangulært legeme inndelt i tverrgående, sammenhengende, rektangulære seksjoner. Hver seksjon inneholder en bestemt konsentrasjon av sukkerarten, slik at man får en suksessiv stigning eller et suksessivt fall i sukkerkonsentrasjonen fra seksjon til seksjon i det langstrakte, rektangulære legeme. Dette legeme representerer følgelig en bestemt sukkerart, dets seksjoner forskjellige konsentrasjoner av sukkerarten.
Sukkerarten er identifisert ved posisjonen av det rektangulære legeme som sådant, og den sukkerkonsentrasjon hvor en eventuell forgjæring først inntrer, er bestemt ved posisjonen av vedkommende kammer i seksjonsrekken.
Det omtalte legeme kan også anvendes med forskjellige
sukkerarter i seksjonskamrene.
Oppfinnelsen er imidlertid som nevnt ovenfor, ikke bare begrenset til bruk ved forgjæringsforsøk, men ved en lang rekke mikrobiologiske og immunologiske forsøk.
Eksempelvis vil metoden kunne anvendes til sensitivitetsbestemmelser av bakterier mot antibiotika (og kjemoterapeutika).
Idag utføres slike bestemmelser vanligvis ved hjelp av "lapp"-metoden eller "sensi-disc"-metoden.
Oppfinnelsen gjør det derimot mulig på enkel vis å utføre sensitivitetsbestemmelser ved hjelp av en titreringsteknikk. Derved oppnår man en direkte kvantitativ bestemmelse f.eks. av minste veksthemmende konsentrasjon av et antibiotikum, til forskjell fra den in-direkte metode med måling av sonediameterens størrelse. Metodene supplerer hverandre.
Til bruk ved en slik kvantitativ teknikk kan der preprodu-seres legemer inneholdende forskjellige konsentrasjoner av et antibiotikum. Dette gjøres for alle antibiotika. I et titreringsforsøk brukes for hvert antibiotikum en bestemt serie av legemene, slik at man får en stigning i konsentrasjonene av vedkommende antibiotikum fra legeme til legeme. F.eks. et legeme inndelt i seksjonskamre, som ovenfor omtalt, kan også brukes til formålet. Kamrene er da på forhånd forsynt med forskjellige konsentrasjoner av et antibiotikum i trinnvis stigning fra kammer til kammer. Man observerer minste veksthemmende konsentrasjon, forutsatt at den undersøkte bakterie er sensitiv mot vedkommende antibiotikum.
Hvis man idag vil utføre en kvantitativ sensitivitets-bestemmelse, må den utføres i en serie reagensrør med buljong eller i beholdere med fast substrat, inneholdende trinnvis stigende konsentrasjoner av et antibiotikum. På grunn av arbeidsmengden er dagens teknikk prohibitiv som generell rutinemetode.
Til tross for arbeidsbyrden brukes den imidlertid ved sensitivitetsbestemmelser av tuberkelbasiller. Det skyldes spesielle forhold som skal omtales nedenfor. Oppfinnelsen gjør det imidlertid mulig på en lettvint måte å bruke en titreringsteknikk ved sensitivitetsbestemmelser av tuberkelbasiller.
Årsaken til at sensitivitetsbestemmelser av tuberkelbasiller mot antibiotika adskiller seg fra andre bakteriers sensitivitetsbestemmelser, er tuberkelbasillenes relativt meget langsomme veksttempo. Dette forhold medfører blant annet at det ikke er hensiktsmessig å
sensitivitetsbestemme tuberkelbasiller med "lapp"metoden på konvensjonell måte.
Oppfinnelsen gjør det imidlertid mulig å bestemme tuberkel-basillers sensitivitet også ved måling av hemningssonenes størrelse. Det kan utføres ved å bruke et relativt langt og smalt, rektangulært legeme som bærer for et antibiotikum. Dette siste festes på innsiden av en kortside i legemet. Diffusjonen av vedkommende antibiotikum dirigeres av legemets form i et sammenpresset volum langs det rektangulære legemes lengdeakse. Hemningssonens lengde er et mål for sensitiviteten. Legemene kan ha en åpen eller lukket øvre avgrensning, i siste tilfelle som et flatt, gjennomsiktig tak. Dette dekke kan avdempe uttørring av substratet og minske infeksjonsrisikoen under den flere ukers lange inkubasjon ved 37°C, som er nødvendig for at veksten av tuberkelbasiller skal utvikle seg. I seg selv gir substrat skålen med lokk ikke helt tilstrekkelig tetning til å beskytte mot en viss grad av uttørring ved en så vidt lang inkubasjon. Skålene må tettes sekundært (f.eks.
med tape), eller de kan inkuberes oppbevart i f.eks. plastpose eller -eske. Disse tiltak kan unngås ved at legemene har en lukket øvre avgrensning.
Oppfinnelsen ligger meget vel til rette for en hensiktsmessig bruk av en serologisk teknikk, særlig en immundiffusjons- eller presipitasjonsteknikk. Denne meget viktige teknikk har en mangeartet og økende anvendelse, men den er tungvint og vanskelig å bruke i serie-undersøkelser. Ved hjelp av oppfinnelsen vil teknikken på en lang rekke felter gjøres tilgjengelig for laboratorienes rutineundersøkelser og vil i vesentlig grad bidra til å øke informasjonsbredden vedrørende laboratorieundersøkelsene og øke deres betydning.
I stedet for å inokulere substratet (fortrinnsvis overflaten) med en bakteriekultur kan man i dette tilfelle spre et kvantum antigen eller antistoff ut over substratoverflaten eller tilblande det i substratet før opphelling i skålene, alt etter om legemene er bærere av henholdsvis antistoff eller antigen.
Ved en kvantitativ presipitasjonsteknikk inneholder de pre-fabrikerte legemer graderte kvanta av disse stoffer.
Det er bare når der ønskes bakteriell vekst, at substratet behøver å være et næringsmedium. Generelt sett skal det være et stoff som tillater diffusjon og altså er tilstrekkelig fast til å holde seg i form med en mikroporøs struktur, men samtidig kan penetreres av bære-legemene .
Det kan i visse tilfelle være tilstrekkelig eller ønskelig
at legemene er utformet som lateralt delvis åpne legemer, f.eks. som rektangulære legemer hvor den ene kortside mangler, eller som bue-formede legemer. En slik utformning fungerer som en overgang mellom de helt åpne i og for seg kjente legemer (f.eks. papirskiver) og de ovenfor beskrevne legemer som omslutter et til alle sider lukket hulrom. Stoffene som skal diffundere, er festet i fondveggen av legemet, og diffusjonen dirigeres i sin første fase i en bestemt retning av legemets vegger. Når diffusjonen er kommet fri av legemets innflytelse, skjer den i alle retninger.
Legemene kan til dette formål få forskjellige former, som hver for seg er hensiktsmessige ved forskjellige spesifiserte diffusjons-forsøk. F.eks. kan det dreie seg om forskjellige immundiffusjonsforsøk. Videre kan det samme forhold være meget nyttig å ta i betraktning og gjøre bruk av når bakteriell vekst inngår i forsøket, f.eks. ved ut-prøvning av synergisme eller antagonisme mellom antibiotika overfor bakterier. Denne undersøkelse er et meget viktig supplement til de vanlige sensitivitetsbestemmelser, og muligheten man har fått realisert for å inkludere en slik utprøvning i de vanlige rutineundersøkelser, utgjør et viktig fremskritt.
Oppfinnelsen kan også brukes i forbindelse med undersøkelser hvor det inngår vekstfaktorer. På forhånd kan der være anbragt forskjellige vekstbefordrende stoffer i perifert lukkede bærelegemer. Etter plasering av legemene i det inokulerte substrat vil der ved diffusjon av stoffene inn i grunnlagssubstratet, som inneholdes i skålen, oppstå et nytt substrat av det som befinner seg i legemene. Det består av grunnlagssubstratet og én eller flere tilleggskomponenter, alt etter hvor mange vekstbefordrende stoffer som er anbragt i legemet. I én skål oppnår man derved forskjellige substrater. Man observerer så om den inokulerte bakteriekultur i de forskjellige legemer reagerer med rikelig, uforandret eller eventuelt nedsatt vekst som en reaksjon på tilførselen av de forskjellige stoffer. Teknikken kan brukes i diagnostisk eller i eksperimentelt øyemed.
I det hele tatt vil oppfinnelsen kunne brukes i forbindelse med mange slags undersøkelser hvori der inngår kjemiske, diffunderbare stoffer som på karakteristisk, optisk observerbar måte inngår forbindelse med bakterieveksten eller stoffskifteprodukter dannet under veksten. En eller flere substanser kan være tilsatt legemene på forhånd.
Noen undersøkelsesmetoder krever sekundær tilsetning på reaksjonsstedet av et bestemt stoff (eller flere) etter egnet tid (egnede tider) i reaksjonsforløpet, f.eks. etterat inkubasjon for vekst har funnet sted. En slik teknikk lar seg gjennomføre med oppfinnelsen. Ved hjelp av en dispenser kan den sekundære tilsetning utføres i samme mønster som primærplaseringen ble foretatt i. Herunder blir papirskiver eller andre egnede legemer som inneholder det eller de stoffer som ønskes tilsatt, plasert i primærlegemenes rom. En annen mulighet for sekundær tilsetning er å bruke en innretning med mange inokulasjons-punkter eller pipetter anordnet i det samme mønster som de primært tilsatte legemer ér plasert i.
Denne teknikk med sekundær tilsetning av stoffer etter passende tidsrom kan gjennomføres med legemer inneholdende et stoff som forekommer i en gradert serie av konsentrasjoner fra legeme til legeme. Der åpnes derved mulighet for å tilpasse fremgangsmåten til forskjellige, relativt kompliserte titreringsteknikker som idag utføres med flytende stoffer i et reagensrør. Dette gjelder også f.eks. for slike reaksjoner hvor røde blodlegemer benyttes til å bevirke hemolyse eller hæmagglutinering som hjelpemiddel ved bestemmelse av titergrenser.
De røde blodlegemer kan sekundært påføres overflaten av substratet
i bærelegemene, eller de kan være tilblandet substratet på forhånd. Substratet kan ha en meget enkel sammensetning. Det kan tilpasses
de eksisterende krav. Konsentrasjonen f.eks. av agaren kan likeledes tilpasses forholdene. F.eks. kan den være relativt lav. Substratet kan også inneholde andre stoffer som inngår i reaksjonene i konstant mengde fra reaksjon til reaksjon på samme måte som blodlegemene.
Alternativt kan titreringsteknikken utføres ved at de sekundært tilsatte stoffer brukes i trinnvise konsentrasjoner, mens stoffene som inneholdes i bærelegemene, i dette tilfelle danner en serie med konstant konsentra-sj onsnivå.
De enkelte bærelegemer behøver ikke å inneholde bare ett stoff, men kan også inneholde flere. Stoffene kan da foreligge samlet eller være plasert separat på forskjellige fra hinannen isolerte steder i bærelegemet foråt der ikke skal skje reaksjon mellom stoffene før de diffunderer ut i substratet.
Legemene kan også, særlig for eksperimentelle anvendelser, lages uten tilsetning av stoffer under fabrikasjonsprosessen, men med mulighet for tilsetning av ønskede stoffer etterat legemene er bragt på plass i substratet. Legemene kan til dette formål være forsynt med f.eks. en traktformet tilførselskanal ned til et godt drenert rom i legemets vegg, hvor der på forhånd eventuelt kan være plasert et absorberende papir. Også disse legemer kan ha forskjellige former som hver for seg er hensiktsmessige ved forskjellige spesifiserte dif-fusjonsforsøk, f.eks. ved undersøkelse av presipitasjonsmønstre, utprøv-ning av synergisme eller antagonisme mellom antibiotika eller under-søkelse av vekststoffer. Videre kan også disse legemer foruten å om-slutte et hulrom som er lukket til alle sider, være delvis åpne. Hen-sikten er å gi forskere et teknisk hjelpemiddel som kan fremme mulighetene og lette arbeidet for dem i det vide eksperimentalfelt som immun-diffusjonsteknikken og bakteriologien dekker.
Metoden gjør det dessuten mulig lettvint å bestemme konsen-trasjonsnivåer av antibiotika i vevsvæsker.
Metoden ifølge oppfinnelsen er meget fleksibel i sin anvendelse. Den kan brukes både ved stoffer som sprer seg raskt, og ved slike som sprer seg langsomt i substratet. Den åpner store muligheter ved at mange forskjellige reaksjoner og typer av reaksjoner kan tilpasses teknikken med dens store iboende fordeler, som skal omtales mere utførlig nedenfor.
Metoden kan gjennomføres under utnyttelse av prinsipper som der er gjort rede for i søkerens eldre patentsøknader nr. 166.87^ og 1326/69. De fordeler som er omtalt i disse søknader, vil også kunne komme den foreliggende metode til gode. De vedrører automatisering av laboratoriearbeidet og primærnoteringen av data under hensyntagen til en faglig sett ønskelig eller nødvendig, personlig og visuell styring og kontroll. De vedrører videre mulighetene for å etablere direkte kontakt med et EDB-anlegg med de enorme fordeler det byr på. Gjennom den foreliggende oppfinnelse vil disse prinsipper kunne finne en mer generell og utstrakt anvendelse og komme en lang rekke forskjellige mikrobiologiske, serologiske, immunologiske, klinisk-kjemiske og lignende undersøkelsesteknikker eller tester til gode.
En undersøkelsesteknikk som tilpasses oppfinnelsen, vil også gi andre fordeler enn dem som er nevnt ovenfor. De refererer seg dels til selve det laboratorietekniske arbeide, dels til substrattil-virkning og renhold, dels til lager- og transportplass og endelig til sikkerhetsmessige forhold som unngåelse av feil og forveksling.
Der skal bli gjort nærmere rede for disse forhold under henvisning til den ovenfor omtalte teknikk ved bakteriell forgjæring av sukkerarter. Oppfinnelsen vil føre med seg bare én utsæd for hele serien av sukkerarter, mot nå én utsæd for hver enkelt sukkerart - eller ved klassifiseringsforsøk undertiden for to eller tre arter. Foruten arbeidsbesparelsen når det gjelder selve inokulasjonen, får man andre av mer sekundær art. Man får blant annet bare ett lokk, nemlig petriskålens, å ta av og sette på, mot nå en dott eller et deksel for hvert buljongrør, svarende til det antall sukkerarter man inokulerer. Videre får man alle forgjæringsundersøkelsene samlet i en grei, lett håndterlig og plassbesparende enhet, petriskålen, mot den nå noe uryd-dige, tungvinte og plasskrevende situasjon med alle de enkelte buljong-rør som skal håndteres og fordeles etter hverandre i støttehullene i et stativ. Nok en hemsko i denne forbindelse er at de enkelte buljongrør med de forskjellige sukkerarter er like og adskilles bare ved en etikett med sukkerartens navn. Relativt sett har man få substrat skåler å håndtere, og alle er av samme slag, mens man nå har mange buljongrør, ytre sett like, men inneholdende sukkerarter av forskjellige slagi -Mens avlesning og notering ved den nye teknikk kan foregå automatisk under visuell kontroll eller helautomatisk, vil disse arbeidsprosesser være relativt meget brysomme og tidskrevende på konvensjonell måte. De forskjellige forgjæringsrør som står i tette rekker og kolonner i et stativ, ordnet dels etter prøvens art og dels etter sukkerart, må manuelt frigjøres ett for ett for avlesning av utfall og identitet. Deretter noteres disse data manuelt.
Med konvensjonell teknikk er risikoen for feil relativt stor.
Det gjelder avlesning og notering av data. Videre gjelder det den forut-gående inokulasjon. Denne blir gjentatt for hvert buljongrør i serien. Ved en feiltagelse kan et rør muligens bli forbigått, eller det kan bli inokulert fra en øse som ikke har nok inokulat til befordring av vekst. Derved oppstår falske resultater.
Feil og forveksling kan opptre også på et tidligere stadium.
De kan finne sted når den tekniske assistent henter sukkerartbuljong-rørene. Disse blir oppbevart i kjøleskap i separate samleenheter for hver av sukkerartene. Imidlertid kan det hende at ubrukte rør som settes tilbake i kjøleskapet, kan være feilaktig plasert i en enhet med en annen sukkerart på grunn av ytre likhet. Derfor må hvert rør kontrol-leres.
Videre kan feil og forveksling finne sted i substratavdel-ingen under tilvirkning av sukkerartbuljongene. De kan finne sted også under etiketteringen eller transporten til kjøleskap.
Det tidligere nevnte faktum at der medgår relativt mange sukkerartbuljonger til forgjæringsundersøkelser, øker mulighetene for feil. Dette er særlig tilfelle når det dreier seg om flere prøver som skal undersøkes. Teknikken ifølge oppfinnelsen fører derimot til at man relativt sett håndterer få petriskåler, og alle er av samme slag.
Oppfinnelsen vil medføre en betydelig besparelse av plass, både under lagerhold i laboratoriet og under intern og ekstern transport og forsendelse. De små legemer lagret i magasiner, er kompakte enheter i motsetning til samlingen av individuelle, relativt store og uhåndter-lige rør. Disse nødvendiggjør plasskrevende stativer som må holdes rene og frie for smitte. Ofte er rørene av glass som etter bruk krever autoklavering, vask og sterilisering før de kan benyttes om igjen.
Derimot er det etter bruk enkelt å fjerne og destruere petriskålene og med dem legemene' som er plasert i substratet. Under vekkbringelsen er det en betydelig fordel å kunne bruke de lite plasskrevende enheter som oppfinnelsen muliggjør.
Meget fordelaktig er det også at oppfinnelsen til ulike forsøk muliggjør bruken av et meget enkelt og standardisert substrat.
Utførelsen av oppfinnelsen vil i det følgende bli anskuelig-gjort nærmere under henvisning til tegningen. Fig. 1 er et grunnriss av en petriskål med bærelegemer innsatt for utførelse av fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen og med lokket gjennomskåret etter linjen I-l på fig. 2. Fig. 2 viser tilsvarende vertikalsnitt etter linjen II-II på fig. 1. Fig. 3_5 viser forskjellige utførelsesformer av bærelegemer i aksialt snitt.
Fig. 6 er et oppriss av enda en utførelsesform.
Fig. 7 viser enda en utførelsesform perspektivisk.
Fig. 8 viser enda en utførelsesform i oppriss og delvis aksialsnitt.
Fig. 9 viser enda en utførelsesform i aksialsnitt.
Fig. 10 og 11 viser perspektivisk hver sin utførelsesform. Fig. 12 viser loddrett tverrsnitt av bærelegemet på fig. 10, tatt etter linjen XII-XII. Fig. 13 og lh viser enda en utførelsesform i henholdsvis grunnriss og oppriss.
Fig. 15 viser enda en utførelsesform perspektivisk.
Skjønt fremgangsmåten som omtalt kan benyttes til mange forsøk og undersøkelser, vil der i det følgende i første rekke bli gjort rede for bestemmelse av bakterier på grunnlag av deres forgjæring av forskjellige sukkerarter.
Sukkerartene tilføres et fast eller halvfast mikroporøst substrat som er inokulert med de bakterier som skal undersøkes. De til-føres ved hjelp av bærelegemer i henhold til oppfinnelsen, f.eks. som det der er vist på fig. J>. Dette omfatter et rørformet legeme 3 som på innsiden er forsynt med et for 4 inneholdende en sukkerart som skal benyttes ved undersøkelsen, og eventuelt en indikator, hvis denne ikke inneholdes i substratet. 5 betegner en ferromagnetisk ring som er anbragt nedentil på det rørformede legeme. Ved hjelp av en eller flere permanentmagneter eller elektromagneter skal man dermed kunne trekke de rørformede legemer på plass gjennom substratet i en petriskål.
Denne plasering er vist på fig. 1 og 2. Petriskålen er her betegnet
med 1. Substratet som er inokulert med de bakterier man ønsker å bestemme, er betegnet med 2. Seks rørformede legemer av den type som er vist på fig. 3, er bragt ned i substratet. Hvert legeme 3
har et for 4 med sin egen sukkerart. Den er forskjellig fra legeme til legeme i substratskålen. Utfallet av forgjæringsreaksjonen (hvilke sukkerarter, om noen, som forgjærer) er et diagnostisk hjelpemiddel ved bestemmelse av bakterien. En forgjæring markerer seg ved indikator-omslag. Et slikt omslag er vist i det substrat som er omsluttet av legemet 3' på fig. 1. Forgjæringen som fører til indikatoromslaget, kommer igang etter at de enkelte sukkerarter, resp. indikatoren, i de forskjellige for 4 i de seks legemer, er diffundert inn i de substrat-porsjoner som hver for seg omsluttes av de enkelte rørformede legemer.
Foret 4 kan være av f.eks. papir eller cellulose, og det hviler mot et trinn nedentil i det rørformede legeme 3-
Hvis forets plass inntas av en vegglamell som er perforert, og denne lamell danner indre begrensning av et hulrom i rørets vegg, får man et bærelegeme som vist på fig. 4. Sukkerarten er plasert i hulrommet. Enten forekommer sukkerarten der som sådan, eller den forekommer oppsuget i et for eller tilblandet en inert masse. Den diffunderer gjennom den perforerte lamell og inn i det substrat som er omsluttet av det rør-formede legeme, når dette er på plass i det inokulerte substrat.
Istedenfor å benytte perforeringer eller porøse for er
det også tenkelig å påføre legemene, innvendige belegg som inneholder virkestoffene.
De rørformede legemer 3 og 4 kan være av forskjellige hensiktsmessige materialer, f.eks. av plast. Denne kan ha innlagte eller innstøpte ferromagnetiske deler som nevnt ovenfor, eller røret kan være laget av ferromagnetisk materiale,• f.eks. av stål.
Det rørformede legeme kan også ha en ferromagnetisk krave anbragt oventil rundt røret som antydet ved 12 på fig. 5, hvor hele veggen i det rørformede legeme, inklusive kraven, består av ferromagnetisk materiale. Legemet har forøvrig en noe mer prosjektillignende utformning enn det på fig. 3. På fig. 6 er det vist en ferromagnetisk krave 12 med trekantet tverrsnitt, anbragt på et rørformet legeme av den art som f.eks. fig. 3 viser.
Skulle der være behov for å gjøre legemet mer stabilt, kan det forsynes med f.eks. fire støtteben som antydet ved 13 på fig. 7. Utførelsesformen på fig. 8 har et prosjektillignende legeme 10 anbragt sentralt i det rørformede legeme 3- Det prosjekttillignende legeme bæres ved hjelp av et kors 11. Prosjektilet kan utvendig ha et belegg hvor det diffunderbare aktive stoff forefinnes, tilsvarende som i foret k på innsiden av det rørformede legeme. Derved oppnås der hurtig diffusjonslikevekt i substratmassen.
Alternativt kan de diffunderbare stoffer i foret 4 og på overflaten av prosjektilet 10 være av forskjellig natur.
Prosjektilet kan være hult og perforert. Det diffunderbare stoff kan være blitt anbragt" i hulrommet enten under fabrikasjonsprosessen eller først senere. Legemene fabrikeres til det siste formål uten aktive stoffer i prosjektilene. Det imøtekommer situasjoner, f.eks. visse eksperimentelle, hvor den som utfører eksperimentene, selv ønsker å anbringe de stoffer som skal utprøves. Det gjør man ved å dryppe dem ned i de hule prosjektiler.
Også anordningen vist på fig. 9 kan være egnet til eksperimentelle formål ut fra den samme motivering for anvendelse som ovenfor. Tildrypningen av det diffunderbare aktive stoff skjer oventil ved 8 ned i den traktformede utvidelse av det rørformede legeme J>. Stoffene diffunderer inn i substratmassen gjennom det perforerte parti 7 av legemets sentrale rørformede del, mens det uperforerte øvre parti 9 hindrer stoffene i å sive ut på overflaten av substratet.
Med rørformede legemer menes her også legemer som ikke har sirkelsylinderform, f.eks. legemer i form av en langstrakt kasse som vist på fig. 10. En slik form av legemet er fordelaktig hvis man vil lede diffusjonen i en bestemt retning. Det oppnår man ved å anbringe dét preparerte for ved den ene kortvegg som antydet ved 4 på figuren. Diffusjonen vil da forplante seg på langs av legemet 3 mot den annen kortvegg. Er forene anbragt på langsiden på en eller begge sider som an- . tydet med l1*, vil man hurtig få etablert dif fusj onslikevekt. Som vist
på fig. 12 er det rektangulære legeme på fig. 10 uten bunn og deksel, og i legemet kan der være innleiret ferromagnetisk materiale 15. Videre kan legemet være forsynt med tak når der er behov for det.
Fig. 11 viser en annen utførelsesform av et langstrakt,
-rektangulært legeme 3, hvor midtpartiet er delt i fire like rom som hvert kan ha for med forskjellige stoffer. Et snitt gjennom legemet på fig. 11 vil ha samme utseende som vist på fig. 12 for legemet på fig. 10. I de viste utførelseseksempler er et av formålene med oppfinnelsen å holde reaksjonen begrenset til et bestemt område. Legemer -i henhold til oppfinnelsen kan imidlertid også utføres slik at bare første stadium av diffusjonen foregår kontrollert og retningsbestemt, men sluttstadiet fritt og uregulert. Et eksempel på dette er vist på fig. 13 og 14. Legemet er i dette tilfelle på utsiden forsynt med langsgående fordypninger 16 som er utstyrt med små boringer 18. Disse fører inn i større, langsgående boringer 19. Enten kan disse boringer allerede under fabrikasjonsprosessen være blitt forsynt med aktive-stoffer, eller de kan først under undersøkelsen få tilført de stoffer man er interessert i å bruke eller undersøke. Det kan man gjøre ved å dryppe dråper av stoffene ned i de langsgående boringer.
Stoffene vil etterhvert diffundere ut i substratet gjennom boringene 18. Under diffusjonen videre utover vil retningen bli bestemt av formen og størrelsen av det buede parti. Først i et senere stadium, når spredningen er kommet fri fra innflytelsen av den omgivende avgrensning, blir den ukontrollert i alle retninger.
Legemet kan også utføres som forklart under henvisning til fig. 4 og 9, med en perforert vegg som avgrenser et kammer hvori de aktuelle stoffer kan innføres. Eller legemet kan utføres uten kamre og gjehnombrytninger i veggene. De aktuelle stoffer kan isåfall inneholdes i for anbragt i fordypningene 16.
Det legeme som er vist på fig. 13, er sentralt hult. Legemet kan også utformes uten dette hulrom, men det bør da få en så vidt slank utformning at det ikke bevirker sprekkdannelse i det omliggende substrat under eller etter nedføringen.
På fig. 15 er der vist et stjerneformet legeme. Også dette legeme sørger for diffusjon av stoffene etter et fastlagt mønster. De aktuelle stoffer er påført i vinklene: 17, f .éks ~. i form av et tilmålt kvantum av en pasta inneholdende det:respektive stoff i bestemt konsentrasjon.

Claims (13)

  1. Fremgangsmåte ved utførelse av diffusjonsprøver i mikrobiologisk, immunologisk og lignende laboratoriearbeide hvor virkestoffer ved hjelp av egnede bærelegemer bringes i kontakt med et fast substrat,karakterisert ved at man anvender bærelegemer som er utformet med en i vertikalretning hovedsakelig rettlinjet, diffusjonstett vegg som har underkanten hovedsakelig forløpende i et plan og er formet for i det minste delvis å inngrense et areal på sin ene side, og driver bærelegemene til bunns i substratet, hvortil virkestoffet avgis på den nevnte side ved at bærelegemet på forhånd bærer virkestoffet på denne side eller har kanaler eller porer hvorigjennom virkestoffet ledes inn, hvorved virkningen i substratet blir begrenset til et av veggen helt eller delvis omsluttet observerbart område.
  2. 2. Fremgangsmåte som angitt i krav 1,karakterisert ved at der i ett og samme substrat bringes til virkning graderte konsentrasjoner av samme virkestoff, inneholdt i hvert sitt bærelegeme, resp. i hver sin avgrensede avdeling av samme bærelegeme.
  3. 3. Fremgangsmåte som angitt i krav 1 eller 2, karakterisert ved at substratets dybde og høyden av bærelegemenes diffusjonstette vegger velges slik i forhold til hverandre at disse vegger i innført stilling strekker seg opp over substratet.
  4. 4. Virkestoffbærende legeme for utførelse av en fremgangsmåte som angitt i et av de foregående krav, omfattende en diffusjonstett sidevegg som har underkanten i det minste tilnærmelsesvis liggende i et plan £g helt eller delvis omslutter et nedentil åpent rom, karakterisert ved at en til dette rom grensende flate av legemet er forsynt med et belegg inneholdende virkestoffet eller er utformet med fine kanaler eller porer egnet til å avgi deri inneholdt eller gjennomledet virkestoff til substratet i det nevnte rom.
  5. 5. Bærelegeme som angitt i krav 4,karakterisert ved at der mellom rommets begrensningsflate og den diffusjonstette vegg er utformet et oppad åpent og nedentil lukket hulrom innad begrenset av en vegg med fine kanaler eller porer eller inneholdende en porøs fylling som holdes på plass av en gjennombrudt innervegg.
  6. 6(. Bærelegeme som angitt i krav 4, karakterisert ved at veggen er forsynt med en porøs foring grensende til det nevnte rom.
  7. 7. Bærelegeme som angitt i et av kravene 4 -6,karakterisert ved at den porøse eller med kanaler forsynte flate i det minste delvis' dannes av et organ plasert i avstand innenfor veggen og forbundet med denne ved strevere.
  8. 8. Bærelegeme som angitt i et av kravene 4-7, karakterisert ved at det nevnte rom er åpent oventil eller har gjennomsiktig tak.
  9. 9. Bærelegeme som angitt i et av kravene 4 -8,karakterisert ved at den diffusjonstette sidevegg har form av en hylse.
  10. 10. Bærelegeme som angitt i et av kravene 4-8,karakterisert ved at det i grunnriss helt eller delvis inngrenser flere rom og er innrettet til å avgi virkestoff til hvert av disse.
  11. 11. Bærelegeme som angitt i et av kravene 4-8,karakterisert ved at det har avlang grunnriss-form og eventuelt er forsynt med tverrvegger for oppdeling i samsvar med krav 10.
  12. 12. Bærelegeme som angitt i krav 10,karakterisert ved at det har flere loddrette veggfløyer sammensatt i stjerneform og er innrettet til å avgi virkestoff til hvert av de derved fremkomne delvis omsluttede rom.
  13. 13. Bærelegeme som angitt i et av kravene 4 -12,karakterisert ved at den øverste del av rommets begrensningsvegg er tett.
NO1832/69A 1969-05-03 1969-05-03 NO124603B (no)

Priority Applications (14)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NO1832/69A NO124603B (no) 1969-05-03 1969-05-03
SE7005930A SE383208B (sv) 1969-05-03 1970-04-29 Forfarande och berande element for utforande av diffusionsprov.
DK221170AA DK130690B (da) 1969-05-03 1970-05-01 Fremgangsmåde til udførelse af diffusionsprøver i mikrobiologiske, immunologiske og lignende laboratoriearbejder samt bærelegeme til udførelse af fremgangsmåden.
US00033594A US3791930A (en) 1969-05-03 1970-05-01 Supporting element and associated method of use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work
CA081,683A CA940024A (en) 1969-05-03 1970-05-01 Supporting element for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work
DE2021558A DE2021558C3 (de) 1969-05-03 1970-05-02 Verfahren zur Durchführung mikrobiologischer, immunologischer, klinisch-chemischer o.ä. Untersuchungen und Vorrichtung zur Durchführung des Verfahrens
JP45038192A JPS5144192B1 (no) 1969-05-03 1970-05-04
GB2141170A GB1315031A (en) 1969-05-03 1970-05-04 Supporting elements and method of use in microbiological serologi cal immunological clinical-chemical and similar laboratory work
NLAANVRAGE7006564,A NL168265C (nl) 1969-05-03 1970-05-04 Werkwijze en inrichting voor het uitvoeren van een reeks laboratoriumproeven en houder te gebruike daarbij.
FR7016221A FR2047264A5 (no) 1969-05-03 1970-05-04
US05/602,745 US3985608A (en) 1969-05-03 1975-08-07 Supporting element for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work
US05/731,103 US4140582A (en) 1969-05-03 1976-10-08 Supporting element for use in microbiological, serological, immunological clinical-chemical and similar laboratory work
US06/012,905 US4324859A (en) 1969-05-03 1979-02-16 Apparatus and associated methods for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work
US06/365,239 US4591556A (en) 1969-05-03 1982-04-05 Apparatus and associated methods for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NO1832/69A NO124603B (no) 1969-05-03 1969-05-03

Publications (1)

Publication Number Publication Date
NO124603B true NO124603B (no) 1972-05-08

Family

ID=19878459

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
NO1832/69A NO124603B (no) 1969-05-03 1969-05-03

Country Status (10)

Country Link
US (2) US3791930A (no)
JP (1) JPS5144192B1 (no)
CA (1) CA940024A (no)
DE (1) DE2021558C3 (no)
DK (1) DK130690B (no)
FR (1) FR2047264A5 (no)
GB (1) GB1315031A (no)
NL (1) NL168265C (no)
NO (1) NO124603B (no)
SE (1) SE383208B (no)

Families Citing this family (45)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3985608A (en) * 1969-05-03 1976-10-12 Rolf Saxholm Supporting element for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work
US4140582A (en) * 1969-05-03 1979-02-20 Rolf Saxholm Supporting element for use in microbiological, serological, immunological clinical-chemical and similar laboratory work
US3960491A (en) * 1974-04-01 1976-06-01 General Electric Company Method and apparatus for detecting immunologically reactive biological particles
US4146365A (en) * 1977-11-07 1979-03-27 Litton Bionetics, Inc. Affinity detection apparatus
US4260392A (en) * 1978-07-07 1981-04-07 Technicon Instruments Corporation Method and apparatus for obtaining an aliquot of a liquid in a gel medium
US4250257A (en) * 1978-08-24 1981-02-10 Technicon Instruments Corporation Whole blood analyses in porous media
US4247646A (en) * 1978-09-12 1981-01-27 The United States Of America As Represented By The Department Of Health, Education And Welfare Laboratory apparatus for cloning mammalian cells
US4288228A (en) * 1979-01-31 1981-09-08 Technicon Instruments Corporation Whole blood analyses and diffusion apparatus therefor
US4657868A (en) * 1980-01-15 1987-04-14 Rolf Saxholm Apparatus for testing reactions
US4291122A (en) * 1980-08-14 1981-09-22 American Sterilizer Company Biological indicator for sterilization processes
DE3119541C2 (de) * 1981-05-16 1985-12-12 Dr. Madaus & Co, 5000 Köln Vorgefertigter Nährbodenträger
US4554088A (en) * 1983-05-12 1985-11-19 Advanced Magnetics Inc. Magnetic particles for use in separations
GB2155948A (en) * 1984-03-07 1985-10-02 Sandoz Ltd Container
SE8401801D0 (sv) * 1984-04-02 1984-04-02 Ekman Carl Lars Bertil Slykapningskvarn for smaved
SE456246B (sv) * 1985-08-01 1988-09-19 Biodisk Ab Anordning for kenslighetsbestemning av mikroorganismer innefattande en icke-poros testremsa med tva olika testsubstanser
US5219554A (en) * 1986-07-03 1993-06-15 Advanced Magnetics, Inc. Hydrated biodegradable superparamagnetic metal oxides
US5069216A (en) * 1986-07-03 1991-12-03 Advanced Magnetics Inc. Silanized biodegradable super paramagnetic metal oxides as contrast agents for imaging the gastrointestinal tract
US5017342A (en) * 1988-06-01 1991-05-21 Ortho Diagnostic Systems Inc. Device for immunoassay determinations
US6020210A (en) * 1988-12-28 2000-02-01 Miltenvi Biotech Gmbh Methods and materials for high gradient magnetic separation of biological materials
EP0452342B1 (en) * 1988-12-28 1994-11-30 MILTENYI, Stefan Methods and materials for high gradient magnetic separation of biological materials
US6103127A (en) 1993-06-08 2000-08-15 Cortex Biochem, Inc. Methods for removing hazardous organic molecules from liquid waste
US5564104A (en) * 1993-06-08 1996-10-08 Cortex Biochem, Inc. Methods of removing radioactively labled biological molecules from liquid radioactive waste
US5705059A (en) * 1995-02-27 1998-01-06 Miltenyi; Stefan Magnetic separation apparatus
DE19506802A1 (de) * 1995-02-27 1996-08-29 Karl Reichart Reagensträger zur Zugabe von Reagentien
IL113920A (en) * 1995-05-30 1999-09-22 Avraham Reinhartz Apparatus and method for detection of analytes in a sample
US5587321A (en) * 1995-07-31 1996-12-24 University Of Kansas Moated tissue culture plate
US5958714A (en) * 1996-10-02 1999-09-28 Safety Associates, Inc. Test kits for determining at least two specific analytes in foods and other complex matrices
EP0986435A4 (en) * 1997-06-06 2001-01-31 Corning Inc VOLUME ADAPTER FOR MULTI-WELL PLATE
US5891712A (en) * 1997-11-21 1999-04-06 The Women's Research Institute Gamete/embryo micro drop culture dish
US6649128B1 (en) * 1998-09-23 2003-11-18 Randox Laboratories Ltd Assay device processing instrument
DE10003521A1 (de) * 2000-01-27 2001-08-09 Medigene Ag Vorrichtung zum Herstellen eines dreidimensionalen Matrixkörpers, Multi-Well-Platte, Lösung zum Kultivieren von Säugerkardiomyocyten, Verfahren zum Kultivieren einer Zellkultur, Vorrichtung für die Messung isometrischer Kraftparameter von Zellkulturen sowie Verfahren zum meßbaren Verfolgen von Kontraktionen eines in eine Trägersubstanz eingelagerten Zellgewebes
KR100389075B1 (ko) * 2000-05-08 2003-06-25 (주)바이오엔투엔티원 운동성 미생물 검출용 키트 및 그 사용방법
US20020085960A1 (en) * 2000-11-02 2002-07-04 Genomic Instrumentation Services, Inc. Array substrate holder
AU2003218120A1 (en) * 2002-03-15 2003-09-29 United States Of America As Represented By The Administrator Of The National Aeronautics And Space Electro-active device using radial electric field piezo-diaphragm for sonic applications
US20030183958A1 (en) * 2002-03-28 2003-10-02 Becton, Dickinson And Company Multi-well plate fabrication
AU2003249266A1 (en) * 2002-07-12 2004-02-02 Strategic Diagnostics Inc. Test strips moveable by magnetic fields
US7128878B2 (en) * 2002-10-04 2006-10-31 Becton, Dickinson And Company Multiwell plate
WO2008030915A2 (en) * 2006-09-06 2008-03-13 Nanologix, Inc. Apparatus for making a solid nutrient medium and associated method
JP2008164566A (ja) * 2007-01-05 2008-07-17 Yokogawa Electric Corp 化学反応用カートリッジ及びその使用方法
US9523701B2 (en) 2009-07-29 2016-12-20 Dynex Technologies, Inc. Sample plate systems and methods
GB0913258D0 (en) 2009-07-29 2009-09-02 Dynex Technologies Inc Reagent dispenser
US9068217B2 (en) * 2014-02-25 2015-06-30 Saeed Mir Heidari Method and device for determining microbial pollution level in different environments and processes
US10077420B2 (en) * 2014-12-02 2018-09-18 Histogenics Corporation Cell and tissue culture container
JP7058662B2 (ja) 2017-02-08 2022-04-22 ベクトン・ディキンソン・アンド・カンパニー 乾燥色素試薬装置、ならびにその製造及び使用方法
US11306282B1 (en) * 2017-03-30 2022-04-19 John L. Sternick Modular multiple media tray system

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3415361A (en) * 1966-12-22 1968-12-10 Miles Lab Test device and container therefor
USRE24557E (en) * 1954-03-01 1958-10-28 Means for assessing the effect of var-
US2871168A (en) * 1955-09-27 1959-01-27 Ankh Lab Inc Apparatus for testing metabolic agents
FR1221896A (fr) * 1959-01-22 1960-06-07 Ankh Lab Appareil d'analyse de solutions, en particulier pour servir à l'essai d'agents métaboliques
US3106845A (en) * 1961-06-26 1963-10-15 Univ California Dilution pipette
US3227522A (en) * 1961-09-19 1966-01-04 Ankh Lab Inc Assaying apparatus
US3389966A (en) * 1964-04-30 1968-06-25 Calvin A. Saravis Apparatus and process for semiqualitative, semiquantitative immunodiffusion reactions
US3401087A (en) * 1966-02-16 1968-09-10 Lilly Co Eli Method for conducting microbiological diffusion assays
GB1235686A (en) * 1967-02-16 1971-06-16 Rolf Saxholm Improvements in diffusion testing and apparatus therefor
US3474004A (en) * 1967-09-21 1969-10-21 Aaron J Fink Disposable culture device
US3985608A (en) * 1969-05-03 1976-10-12 Rolf Saxholm Supporting element for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work

Also Published As

Publication number Publication date
NL168265B (nl) 1981-10-16
DE2021558B2 (de) 1980-08-21
DE2021558A1 (de) 1970-11-12
NL7006564A (no) 1970-11-05
DE2021558C3 (de) 1981-06-11
DK130690C (no) 1975-09-01
NL168265C (nl) 1982-03-16
GB1315031A (en) 1973-04-26
FR2047264A5 (no) 1971-03-12
DK130690B (da) 1975-03-24
US3791930A (en) 1974-02-12
US4591556A (en) 1986-05-27
JPS5144192B1 (no) 1976-11-26
CA940024A (en) 1974-01-15
SE383208B (sv) 1976-03-01

Similar Documents

Publication Publication Date Title
NO124603B (no)
US3985608A (en) Supporting element for use in microbiological, serological, immunological, clinical-chemical and similar laboratory work
US4153512A (en) Storage stable antibiotic susceptibility test kit and method of testing
US4587213A (en) Methods and means of determining microorganism population
US3992265A (en) Antibiotic susceptibility testing
US3632478A (en) Disposable culture assembly
US5650125A (en) Method and apparatus for conducting tests
US6190878B1 (en) Device and methods for determination of analyte in a solution
US4385115A (en) Diagnostics testing devices and processes
CN106238112B (zh) 一种微流控芯片及其在病原体的鉴定与药敏实验中的应用
US3838013A (en) Combined sampling and bacteriological culturing device
IL49468A (en) The container is divided into compartments for test samples
ES2985581T3 (es) Preparación de muestras microbianas vivas y microorganismos para mediciones y evaluaciones posteriores por espectrometría de masas
AU2006257609B2 (en) Cell-and tissue culture device
US4237096A (en) Device for multiple analyses
DK151898B (da) Fremgangsmaade til hurtig paavisning af tilstedevaerelsen eller fravaerelsen af rester af antibiotikum og proevebeholder og saet til anvendelse ved fremgangsmaaden
NO851165L (no) Gjaeridentifiseringssystem i miniatyrskala
FI57128C (fi) Saett att identifiera mikroorganismer
TWI657139B (zh) 自動化體外細胞培養平台及細胞培養方法
US4140582A (en) Supporting element for use in microbiological, serological, immunological clinical-chemical and similar laboratory work
JP7383079B2 (ja) 細胞検出装置
US20060040340A1 (en) Microorganism specimen storage, hydrating, transfer and applicator device
US4766063A (en) Process and device for detecting the activity of a substance on a micro-organism or on a mixture of micro-organisms
AU1034499A (en) Method and apparatus for concentrating and searching of microbiological specimens
US11060053B2 (en) Method and device for hydrating a hydrating medium by a liquid sample