KR20130052680A

KR20130052680A - 결정질 (ｒ)-(ｅ)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1ｈ-인다졸-3-일)비닐)-1ｈ-피라졸-1-일)에탄올 및 ｆｇｆｒ 억제제로서의 그의 용도

Info

Publication number: KR20130052680A
Application number: KR1020137008655A
Authority: KR
Inventors: 벤자민 앨런 디저로드
Original assignee: 일라이 릴리 앤드 캄파니
Priority date: 2010-10-05
Filing date: 2011-09-29
Publication date: 2013-05-22
Anticipated expiration: 2031-09-29
Also published as: DK2625175T3; HRP20151299T1; ECSP13012539A; JO3062B1; CA2813329A1; PE20140252A1; SG188286A1; AU2011312485A1; NZ608482A; BR112013006336A2; HUE026379T2; US20120083511A1; MX2013003907A; CO6710911A2; MA34552B1; CN103153983B; TW201249826A; ZA201301560B; SI2625175T1; UA111725C2

Abstract

본 발명은 암의 치료에 유용한 결정질 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올을 제공한다.

Description

결정질 (Ｒ)-(Ｅ)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1Ｈ-인다졸-3-일)비닐)-1Ｈ-피라졸-1-일)에탄올 및 ＦＧＦＲ 억제제로서의 그의 용도 {CRYSTALLINE (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-DICHLOROPYRIDIN-4-YL)ETHOXY)-1H-INDAZOL-3-YL)VINYL)-1H-PYRAZOL-1-YL)ETHANOL AND ITS USE AS FGFR INHIBITOR}

섬유모세포 성장 인자 (FGF)는 많은 생리적 과정, 예컨대 발생 및 혈관신생 동안의 형태발생의 중요한 매개인자로서 인식되어 왔다. 섬유모세포 성장 인자 수용체 (FGFR) 패밀리는 세포외 이뮤노글로불린 (Ig)-유사 도메인, 소수성 막횡단 영역 및 티로신 키나제 도메인을 함유하는 세포질 부분으로 구성된 당단백질인 4개의 구성원 (FGFR1-FGFR4)으로 이루어져 있다. FGF 결합은 FGFR 이량체화를 유발하고, 이어서 수용체 자가인산화 및 하류 신호전달 경로의 활성화를 유발한다. 수용체 활성화는 세포 성장, 세포 대사 및 세포 생존과 같은 다양한 과정의 조절에 참여하는 특정 하류 신호전달 파트너를 동원하고 활성화하기에 충분하다. 따라서, FGF/FGFR 신호전달 경로는 종양 세포 증식, 이동, 침습 및 혈관신생에 중요한 수많은 생물학적 과정에 대해 다면발현 효과를 갖는다.

비닐 인다졸은 당업계에 암 치료용으로 공지되어 있다. 예를 들어, WO200210137 및 WO2003101968을 참조한다. FGFR 억제제도 또한 당업계에 공지되어 있다. 예를 들어, WO2002022598을 참조한다.

PCT/US2010/033487은, 불충분하게 결정질이고 FGFR의 억제제로서 유용한 무정형 형태의 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올을 개시한다.

본 발명은, FGFR의 강력한 억제제이고 이전 형태에 비하여 대규모에서의 탁월한 고체 취급 특성, 결정화에 의한 정제의 용이성, 및 제약 가공 및 저장의 조건 하에서의 열역학적 안정성의 유리한 특성을 제공할 수 있는 결정질 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올을 제공한다. 한 실시양태에서, 결정질 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올은 1수화물 형태이다.

본 발명은 또한 14.65에서의 피크, 및 3.54, 12.51 또는 19.16 (2θ +/- 0.1°)에서의 1개 이상의 피크를 포함하는 X선 분말 회절 패턴 (Cu 방사선, λ = 1.54059 Å)을 특징으로 하는 결정질 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올을 제공한다.

본 발명은 유효량의 본 발명의 화합물 또는 염을 유방암, 비소세포 폐 (NSCL) 암, 방광암, 위암, 췌장암, 전립선암, 결장암, 다발성 골수종, 간암, 흑색종, 두경부암, 갑상선암, 신세포암, 교모세포종 및 고환암으로 이루어진 군으로부터 선택된 암의 치료를 필요로 하는 포유동물에게 투여하는 것을 포함하는, 포유동물에서 상기 암을 치료하는 방법을 제공한다.

본 발명은 또한, 본 발명의 화합물 또는 염을 하나 이상의 제약상 허용되는 담체, 희석제 또는 부형제와 조합하여 포함하는 제약 조성물을 제공한다. 특정한 실시양태에서, 조성물은 하나 이상의 다른 치료제를 추가로 포함한다.

본 발명은 또한 요법에 사용하기 위한 본 발명의 화합물 또는 염을 제공한다. 추가로, 본 발명은 암을 치료하기 위한 의약의 제조에서의 본 발명의 화합물 또는 염의 용도를 제공한다. 추가로, 본 발명은 암의 치료에 사용하기 위한 본 발명의 화합물 또는 염의 용도를 제공한다. 특히, 이들 암은 유방암, 폐암, 방광암, 위암, 췌장암, 전립선암, 결장암, 다발성 골수종 AML, 간암, 흑색종, 두경부암, 갑상선암, 신세포암, 교모세포종 및 고환암으로 이루어진 군으로부터 선택된다. 보다 특히, 암은 유방암, 비소세포 폐암, 방광암, 위암, 췌장암, 전립선암, 결장암, 다발성 골수종, 간암, 흑색종, 두경부암, 갑상선암, 신세포암, 교모세포종 및 고환암으로 이루어진 군으로부터 선택된다. 가장 특히, 암은 비소세포 폐암이다. 가장 특히, 암은 위암이다. 가장 특히, 암은 다발성 골수종이다. 추가로 본 발명은, 활성 성분으로서 본 발명의 화합물 또는 염을 포함하는, 유방암, 비소세포 폐암, 방광암, 위암, 췌장암, 전립선암, 결장암, 다발성 골수종, 간암, 흑색종, 두경부암, 갑상선암, 신세포암, 교모세포종 및 고환암으로 이루어진 군으로부터 선택된 암을 치료하기 위한 제약 조성물을 제공한다.

본 발명의 모든 화합물이 염을 형성할 수 있다는 것이 당업자에 의해 이해될 것이다. 본 발명의 화합물은 아민이고, 따라서 임의의 수많은 무기 및 유기 산과 반응하여 제약상 허용되는 산 부가염을 형성한다. 이러한 제약상 허용되는 산 부가염 및 이들을 제조하기 위한 통상의 방법은 당업계에 널리 공지되어 있다. 예를 들어, 문헌 [P. Stahl, et al., HANDBOOK OF PHARMACEUTICAL SALTS: PROPERTIES, SELECTION AND USE, (VCHA/Wiley-VCH, 2008); S.M. Berge, et al., "Pharmaceutical Salts", Journal of Pharmaceutical Sciences, Vol 66, No. 1, January 1977]을 참조한다.

본원에 사용된 용어 "단리된"은 99% 순수한 결정질 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올을 의미한다.

본 발명의 화합물은 본질적으로 하기 제조예 및 실시예에 예시된 바와 같이 제조할 수 있었다. 하기 제조예 및 실시예의 명명은 켐드로우(ChemDraw)® 울트라(Ultra) 10.0에서 스트럭트=네임(Struct=Name) 명명 특징을 이용하여 수행하였다.

제조예 1

1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에탄올

3구 12 L 둥근 바닥 플라스크에 테트라히드로푸란 (THF, 3 L) 및 디이소프로필아민 (DIPA, 315 mL, 2.24 mol)을 첨가하고, -78℃로 냉각시켰다. n-부틸리튬 (헥산 중 1.6 M, 1400 mL, 2.24 mol)을 천천히 첨가하였다. 첨가가 완결된 후, 온도를 -78℃에 고정시키고, 3,5-디클로로피리딘 (296.7 g, 2.00 mol)의 용액을 천천히 첨가하였고, 즉시 황색 용액이 형성되고 적갈색 현탁액으로 변했다. 첨가가 완결된 후, 온도를 -78℃에 고정시키고, THF (600 mL) 중 아세트알데히드 (230 mL, 4.05 mol)를 천천히 첨가하였다. -78℃에서 교반을 계속하였다. 3시간 후, 드라이아이스조를 제거하고, 포화 수성 염화암모늄 (1 L)의 적가에 의해 반응물을 켄칭하기 시작하였다. 반응물을 교반하면서 밤새 실온 (RT)으로 가온되도록 하였다. 혼합물을 메틸-tert-부틸에테르 (MTBE, 2 L), 포화 수성 염화암모늄 (1 L) 및 물 (2 L)로 희석하였다. 분배시키고, 유기물을 포화 수성 염화나트륨 (염수)으로 세척하였다. 수성 상을 MTBE (1.5 L)로 추출하였다. 유기 층을 합하고, 황산나트륨 상에서 건조시키고, 여과하고, 진공 하에 농축시켰다. 잔류물을 실리카 겔 크로마토그래피 [헥산 중 25% 에틸아세테이트 (EA)]에 의해 정제하여 표제 화합물을 적색 오일로서 수득하였다. 수율: 352 g (90%). MS (ES) m/z 192 [M+1]⁺.

제조예 2

(S)-1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에탄올

제조예 1에서 수득한 입체이성질체의 혼합물을 키랄팩(CHIRALPAK)® AD-H 칼럼 상에서 90% 헵탄/10% 에탄올로 용리하여 분리하였다. 피크 2가 목적 거울상이성질체였다. 절대 배위를 확립하기 위해, 생성물의 샘플을 CDCl₃ 중에 용해시켰다 (최종 농도 100 mg/mL). BaF₂ 윈도우 및 100 mm의 경로 길이가 장착된 IR 셀이 구비된 키랄IR(ChiralIR) FT VCD 분광측정계 (바이오툴스 인크(BioTools Inc)®)를 사용하여 진동 원편광 이색성 (VCD) 및 적외선 (IR) 스펙트럼을 4 cm-1의 해상도로 수득하였다. 6시간 동안 150 μL의 샘플을 사용하여 VCD 및 IR을 수집하였다. 데이터를 보정 또는 추가의 데이터 가공 없이 나타내었다. 리눅스 클러스터(Linux cluster) 상에서 B3PW91/6-31G** 수준에서 가우시안(Gaussian)에 의해 최저 에너지 이형태체를 최적화함으로써 진동 주파수 및 흡수 및 VCD 강도를 수득하였고, 6 cm-1의 로렌치안(Lorentzian) 대역폭 진동 원편광 이색성을 이용하여 상응하는 스펙트럼을 시뮬레이션하였다. 상기 분석은 생성물이 S-이성질체임을 보여주었다. 수율: 84.37 g (27%). MS (ES) m/z 192 [M+1]⁺.

제조예 3

(S)-1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에틸 메탄술포네이트

(S)-1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에탄올 (5.02 g, 26.14 mmol)을 디클로로메탄 (DCM, 100 mL) 중에 용해시키고, 플라스크를 빙조에서 냉각시켰다. 트리에틸아민 (TEA, 3.5 mL, 25.11 mmol)을 첨가하고, 이어서 메탄술포닐 클로라이드 (2.2 mL, 28.42 mmol)를 적가하였다. 빙조를 제거하고, 반응물을 실온으로 가온되도록 하였다. 4시간 후, 반응물을 물 (100 mL)로 켄칭하고, 층을 분리하였다. 수성 층을 DCM (50 mL)으로 추출하고, 이어서 20% 이소프로필 알콜 (IPA)/클로로포름 (50 mL)으로 추출하였다. 유기 추출물을 합하고, 무수 황산나트륨 상에서 건조시키고, 여과하고, 진공 하에 농축시켰다. 수율: 7.15 g, (100%). MS (ES) m/z 270 [M+1]⁺.

제조예 4

4-아이오도-1-(2-(테트라히드로-2H-피란-2-일옥시)에틸)-1H-피라졸

자기 교반 막대, 질소 블랭킷 및 내부 온도 프로브가 장착된 1 L 3구 플라스크에서 2-(2-브로모에톡시)테트라히드로-2H-피란 (34 g, 156 mmol)을 아세토니트릴 (ACN, 400 mL) 중에 용해시켰다. 4-아이오도피라졸 (29.34 g, 149.74 mmol)을 첨가하고, 이어서 탄산세슘 (73.4 g, 223.02 mmol)을 첨가하였다. 혼합물을 실온에서 18시간 동안 교반하였다. 반응 혼합물을 셀라이트(CELITE)®를 통해 여과하고, 필터 케이크를 ACN으로 세척하고, 여과물을 농축시켜 금색 오일을 수득하였다. 추가 정제 없이 사용하였다. 수율: 47.819 g (99%). MS (ES) m/z 323 [M+1]⁺.

제조예 5

5-(tert-부틸디메틸실릴옥시)-1H-인다졸

10 L 반응 용기를 N,N-디메틸포름아미드 (DMF, 2.50 L), 5-히드록시인다졸 (150.20 g, 1.12 mol) 및 1H-이미다졸 (114.35 g, 1.68 mol)로 채웠다. 혼합물을 0℃로 냉각시키고, tert-부틸디메틸클로로실란 (253.16 g, 1.68 mol)을 0.5시간에 걸쳐 첨가하였다. 혼합물을 18℃에서 3시간 동안 교반하였다. 내부 온도를 약 20℃에서 유지하기 위해 5℃의 빙조를 사용하여 물 (2.5 L)을 반응물에 천천히 첨가하였다. 혼합물을 분별 깔때기로 옮기고, EA (2 x 2.5 L)로 추출하였다. 추출물을 합하고, 물 (3 x 2.5 L) 및 염수로 세척하였다. 유기 용액을 무수 황산나트륨 상에서 건조시키고, 여과하고, 증발시켜 적색 오일을 수득하였다. 오일을 실리카 겔 패드를 통해 통과시키고, 용리액 (헥산 중 0% → 30% EA)으로 용리하여 표제 화합물을 오렌지색 오일로서 수득하고, 이를 결정화시켰다. 수율: 300 g (100%). MS (ES) m/z 249 [M+1]⁺.

제조예 6

5-(tert-부틸디메틸실릴옥시)-3-아이오도-1H-인다졸

DCM (4.00 L) 중 5-(tert-부틸디메틸실릴옥시)-1H-인다졸 (300.00 g, 1.21 mol)의 용액을 재킷을 씌운 10 L 반응기 용기에서 10℃로 냉각시켰다. 생성된 용액에 N-아이오도숙신이미드 (298.89 g, 1.33 mol)를 0.5시간에 걸쳐 조금씩 첨가하였다. 혼합물을 3시간 동안 실온에서 교반하여, 액체 크로마토그래피 질량 분광측정법 (LC-MS) 및 박층 크로마토그래피 (TLC)에 의해 제시된 바와 같이 완전한 전환을 제공하였다. 혼합물을 10℃로 냉각시키고, 물 (2.5 L)로 켄칭하였다. 혼합물을 분별 깔때기로 옮기고, 수성 층을 DCM (2.5 L) 중으로 추출하였다. 합한 유기 추출물을 10% 수성 티오황산나트륨 용액 (5 L) 및 염수로 세척하였다. 유기 용액을 황산마그네슘 상에서 건조시키고, 여과하고, 진공 하에 농축시켜 표제 화합물을 오렌지색 고체로서 수득하였다. 수율: 388 g (90%). MS (ES) m/z 375 [M+1]⁺.

제조예 7

5-(tert-부틸디메틸실릴옥시)-3-아이오도-1-(테트라히드로-2H-피란-2-일)-1H-인다졸

DCM (2.50 L) 및 THF (1.00 L) 중 5-(tert-부틸디메틸실릴옥시)-3-아이오도-1H-인다졸 (387.00 g, 1.08 mol)의 용액을 재킷을 씌운 10 L 반응기 용기에서 10℃로 냉각시켰다. 생성된 혼합물에 메탄술폰산 (14.0 mL, 216.02 mmol)을 첨가하고, 이어서 3,4-디히드로-2H-피란 (296 mL, 3.24 mol)을 0.5시간에 걸쳐 첨가하고, 경미한 발열을 관찰하였다. 혼합물을 실온에서 3시간 동안 교반하였다. 반응물을 10℃로 냉각시키고, 포화 수성 중탄산나트륨 (2 L)으로 켄칭하였다. 혼합물을 물 (2 L)로 희석하고, 수성 층을 DCM (2 L)으로 추출하였다. 합한 유기 추출물을 물 (2 L) 및 염수로 세척하였다. 유기 혼합물을 무수 황산나트륨 상에서 건조시키고, 여과하고, 진공 하에 농축시켰다. 잔류물을 실리카 겔 패드를 통해 용리액 (0 → 10% EA/헥산)으로 용리하여 표제 화합물을 수득하였다. 수율: 150 g (31%). MS (ES) m/z 459 [M+1]⁺.

제조예 8

(E)-1-(테트라히드로-2H-피란-2-일)-3-(2-(1-(2-(테트라히드로-2H-피란-2-일옥시)에틸)-1H-피라졸-4-일)비닐)-1H-인다졸-5-올

자기 교반기, 온도 프로브, 및 격막을 갖는 응축기가 장착된 500 mL 3구 둥근 바닥 플라스크에서 DMF (150 mL) 중 5-(tert-부틸디메틸실릴옥시)-3-아이오도-1-(테트라히드로-2H-피란-2-일)-1H-인다졸 (14 g, 30.54 mmol)의 혼합물을 질소로 10분 동안 폭기하였다. 생성된 용액에 트리부틸아민 (TBA, 6.7 g, 36.1 mmol) 및 4,4,5,5-테트라메틸-2-비닐-1,3,2-디옥사보롤란 (7.0 g, 43.18 mmol)을 첨가하고, 10분 동안 폭기를 계속하였다. 생성된 혼합물에 비스(트리페닐포스핀) 팔라듐 (II) 클로라이드 (0.45 g, 0.63 mmol)를 첨가하고, 추가로 0.5시간 동안 폭기를 계속하였다. 혼합물을 95-100℃에서 18시간 동안 가열하였다. 반응 혼합물을 40℃ 미만으로 냉각시키고, 4-아이오도-1-(2-(테트라히드로-2H-피란-2-일옥시)에틸)-1H-피라졸 (9.8 g, 30.42 mmol)로 채웠다. 생성된 혼합물에 수산화바륨 8수화물 (19.3 g, 60.3 mmol) 및 물 (13 mL)을 첨가하고, 10분 동안 폭기를 계속하였다. 반응물에 1,1'-비스(디페닐포스피노)페로센 팔라듐 (II) 클로라이드 DCM 착체 (1.3 g, 1.56 mmol)를 첨가하고, 0.5시간 동안 폭기를 계속하였다. 혼합물을 95℃에서 질소 하에 3시간 동안 가열하였다. 혼합물을 EA로 희석하고, 셀라이트® 패드를 통해 여과하였다. 패드를 염수 (400 mL)로 세척하고, 여과물 층을 분리하였다. 유기 층을 염수로 세척하고, 합한 수성 층을 EA로 추출하였다. 유기 용액을 합하고, 농축시켜 갈색 오일을 수득하였다. 오일을 DCM (100 mL) 중에 용해시키고, 실리카 겔 패드에 첨가하였다. 패드를 용리액 (헥산 중 50% EA에 이어서 헥산 중 70% EA)으로 용리하여 밝은 갈색 오일을 수득하였다. MTBE (100 mL)로 연화처리하여 표제 화합물을 고체로서 수득하였다. 수율: 5 g (37%). MS (ES) m/z 439 [M+1]⁺.

제조예 9

5-((R)-1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1-(테트라히드로-2H-피란-2-일)-3-((E)-2-(1-(2-(테트라히드로-2H-피란-2-일옥시)에틸)-1H-피라졸-4-일)비닐)-1H-인다졸

내부 온도 프로브, 환류 응축기, 질소 블랭킷 및 자기 교반 막대가 장착된 3구 250 mL 둥근 바닥 플라스크에서, (E)-1-(테트라히드로-2H-피란-2-일)-3-(2-(1-(2-(테트라히드로-2H-피란-2-일옥시)에틸)-1H-피라졸-4-일)비닐)-1H-인다졸-5-올 (10.0 g, 22.83 mmol) 및 탄산세슘 (7.88 g, 23.94 mmol)을 ACN (92 mL) 중에 슬러리화시키고, 60℃로 가온하였다. 현탁액에 (S)-1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에틸 메탄술포네이트 (7.03 g, 26.02 mmol)를 첨가하고, 밤새 교반하였다. 반응 혼합물을 실온으로 냉각시키고, 여과하고, 고체를 ACN으로 세척하였다. 여과물을 농축시키고, 잔류물을 실리카 겔 크로마토그래피 (2-4% (메탄올 중 2 M 암모니아)/DCM)에 의해 정제하였다. 생성물 분획을 합하고, 진공 하에 농축시켜 백색 발포체를 수득하였다. 수율: 12.5 g (86%). MS (ES) m/z 612 [M+1]⁺.

제조예 10 (무정형 형태)

(R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올

첨가 깔때기, 질소 유입구, 내부 온도 프로브 및 자기 교반기가 장착된 3구, 250 mL 둥근 바닥 플라스크를 메탄올 (57 mL)로 채우고, 빙조에서 냉각시켰다. 생성된 용액에 아세틸 클로라이드 (20 mL, 281.03 mmol)를 첨가 깔때기를 통해 천천히 첨가하였다. 용액에, 메탄올 (40 mL) 중에 용해시킨 5-((R)-1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1-(테트라히드로-2H-피란-2-일)-3-((E)-2-(1-(2-(테트라히드로-2H-피란-2-일옥시)에틸)-1H-피라졸-4-일)비닐)-1H-인다졸 (7.1 g, 11.59 mmol)을 첨가 깔때기를 통해 첨가하였다. 첨가가 완결된 후, 빙조를 제거하고, 실온으로 가온하고, 혼합물을 4시간 동안 교반하였다. 반응 혼합물을 진공 하에 농축시켜 황색 발포체를 수득하였다. 황색 발포체를 메탄올 (10 mL) 중에 용해시키고, 포화 수성 중탄산나트륨 용액 (120 mL)에 천천히 첨가하였다. 혼합물을 실온에서 30분 동안 교반하였다. 혼합물을 여과하고, 고체를 물 (100 mL)로 세척하고, 진공 하에 건조시켰다. 고체를 고온의 EA/메탄올/헥산으로부터 재결정화시켜 표제 화합물을 백색 고체로서 수득하였다. 수율: 2.1 g (41%). MS (ES) m/z 444 [M+1]⁺.

실시예 1

(R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올 1수화물 형태 1:

반응 용기를 질소로 퍼징하고, (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올 및 11% 물/아세토니트릴로 이루어진 용매 혼합물로 채웠다. 생성된 현탁액을 66-68℃의 내부 온도로 가열하여 용액을 생성하였다. 용액을 56-58℃로 천천히 냉각시키고, 이어서 11% 물/아세토니트릴 혼합물 중 시드 결정의 현탁액으로 시딩하고, 천천히 교반하였다. 반응 혼합물을 초기에 48-50℃로 냉각시키고, 이어서 19-20℃로 냉각시켰다. 고체 케이크를 통과하는 적어도 80%의 상대 습도를 갖는 질소 스트림의 존재 하에 생성물을 여과하여 단리하였다. 이어서, 질소 스트림의 습도 수준을 후속적으로 40%로 변경하고, 건조를 계속하여 표제 화합물의 생성을 일으켰다. 시드 결정을 유사하게 하기와 같이 수득하였다는 것에 주목한다: 반응 용기를 질소로 퍼징하고, (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올 및 11% 물/아세토니트릴로 이루어진 용매 혼합물로 채웠다. 생성된 현탁액을 70℃의 내부 온도로 가열하여 용액을 생성하였다. 이어서, 용액을 천천히 냉각시키고, 결정화되도록 하고, 여과하고, 건조시켰다. 상기 화합물은 FGFR의 강력한 억제제이고, 이전 형태에 비하여 대규모에서의 탁월한 고체 취급 특성, 결정화에 의한 정제의 용이성, 및 제약 가공 및 저장의 조건 하에서의 열역학적 안정성의 유리한 특성을 가질 수 있다.

실시예 1의 화합물, XRPD

옵틱스(Optix) 롱 파인-포커스 공급원을 사용하여 생성된 CuKa 방사선 (λ = 1.54059 Å (전압: 45kV 및 암페어수: 40 mW))이 장착된 파날리티칼 엑스퍼트(PANalytical X'Pert)™ 프로(Pro) MPD PW3040 프로 회절계를 사용하여 XRPD 패턴을 수집하였다. 시편을 3-마이크로미터 두께의 필름 사이에 끼우고, 투과 기하구조로 분석하고, 배향 통계치를 최적화하기 위해 초당 1회전으로 회전시켰다. 분석 전에, 규소 시편 (NIST 표준 참조 물질 640c)을 분석하여 규소 111 피크의 위치를 확인하였다. 상기 물질에 대해 1개의 파날리티칼 패턴을 분석하고, 단결정 분석으로부터의 시뮬레이션된 XRPD 패턴의 비교를 통해 바람직한 배향 및 입자 통계 효과를 평가하였다. 타원형으로 분류된 다층 반사경을 사용하여 Cu Ka X선의 공급원을 시편을 통해 검출기 상에 초점을 맞추었다. 시편으로부터 240 mm에 위치한 주사 위치-민감성 검출기 (엑셀러레이터(X'Celerator))를 사용하여 회절 패턴을 수집하였다. 0.017도 2θ의 단계 크기, 및 1.2도/분의 스캔 속도, 및 0.5도 발산 슬릿 및 0.25도 산란 슬릿을 이용하여 1.01 → 39.99도 2θ의 데이터를 수집하였다. 빔-차단기를 사용하여 공기 산란에 의해 생성된 백그라운드를 최소화하였다. 솔러(Soller) 슬릿을 입사 및 회절 빔에 대해 사용하여 축 발산을 최소화하였다. 관찰된 피크를 하기 표 1에 나타내었다. 5%의 강도 역치를 이용하였다.

<표 1> 실시예 1의 화합물에 대해 관찰된 피크, XRPD.

따라서, 실시예 1의 적절히 제조된 샘플은 0.1도, 보다 바람직하게는 0.01도의 회절각에 대한 허용오차로 표 1에 기재된 바와 같은 회절 피크 (2-세타 값), 특히 3.54, 12.51 및 19.16에서의 1개 이상의 피크와 조합된 14.65에서의 피크; 보다 특히 14.65에서의 피크를 갖는 CuK_α 방사선을 사용한 X선 회절 패턴을 특징으로 할 수 있다.

FGF/FGFR 경로의 비정상적 조절은 수많은 형태의 인간 악성종양에 연루되어 왔다. FGFR 및 FGF는 다수의 암에서 종종 과다발현되고, 이들의 발현은 종종 불량한 예후와 연관되어 있다. FGFR 키나제 도메인에서의 활성화 돌연변이는 유방암, NSCLC, 방광암, 위암, 전립선암, 결장암 및 다발성 골수종을 비롯한 여러 유형의 종양에서 발견되었다. FGFR 좌위의 게놈 증폭은 또한 수많은 유방암, 위암 및 폐암 환자에서 검출되었다. FGFR 및 FGF의 과다발현은 또한 수많은 다양한 유형의 종양, 예컨대 방광암, 다발성 골수종, 전립선암 및 폐암에서 발견되었다. FGFR 패밀리 경로 억제제 요법으로부터 이익을 얻을 수 있는 다른 암은 AML, 간암, 흑색종, 두경부암, 갑상선암, 췌장암, 신세포암, 교모세포종 및 고환암을 포함한다. FGF 및 FGFR은 또한 종양 형성 및 진행에서의 그의 역할에 더하여, 특히 종양 성장 동안의 혈관신생의 핵심 조절제이기도 하다. FGF/FGFR 축은 또한 다른 종양 기질 세포, 예컨대 암 연관된 섬유모세포를 증가시킴에 있어 중요한 역할을 한다. FGF의 상향조절은 또한 항혈관신생 및 다른 화학-요법에 대한 내성을 유발한다. 최종적으로, FGFR의 소분자 억제제는 여러 전임상 종양 모델에서 항종양 활성을 입증하였고, 임상에서 탐구되고 있다. 종합하면, FGF/FGFR 경로는 암 세포에서 여러 중요한 세포 과정에 필수적이다. 이러한 이유로, FGFR 및/또는 FGF 신호전달을 표적화하는 것에 기반한 요법은 직접적으로 종양 세포에, 그리고 종양 혈관신생에 둘 다 영향을 미칠 수 있다.

제조예 10을 본질적으로 하기 기재된 바와 같이 하기 검정으로 시험하였다: FGFR1 효소 검정 (필터 결합), FGFR3 효소 검정 (필터 결합), RT-112 세포에서의 FGF9-유도된 p-ERK 기반 검정 (BSA의 존재 하에), 및 인간 제대 정맥 내피 세포 (HUVEC) 세포에서의 ERK 인산화 (Thr202/Tyr204)의 알파스크린 슈어파이어(AlphaScreen SureFire) 검출 기반 검정. 이들 검정은 제조예 10이 FGFR 패밀리 경로 억제제이고 항암 활성을 갖는다는 것을 입증하였다. 따라서, 무정형 형태의 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올을 사용한 결과는 본 발명의 화합물을 사용한 결과를 나타낸다. 화합물의 결정 형태는, 이들이 이전 형태에 비하여 대규모에서의 탁월한 고체 취급 특성, 결정화에 의한 정제의 용이성, 및 제약 가공 및 저장의 조건 하에서의 열역학적 안정성의 특성을 제공할 수 있기 때문에 여전히 유리하다.

FGFR1 및 FGFR3 효소 검정 (필터 결합)

FGFR1 또는 FGFR3 키나제 (0.15 ng/μL 인간 FGFR1 또는 0.32 ng/μL 인간 FGFR3)를 10 mM 4-(2-히드록시에틸)-1-피페라진에탄-술폰산 (HEPES) pH 7.5, 8 mM 트리스(히드록시메틸)아미노메탄 (트리스-HCl), pH 7.5, 5.0 mM 디티오트레이톨 (DTT), 10.0 μM 아데노신 트리포스페이트 (ATP), 10 mM MnCl₂, 150 mM NaCl, 0.01% 트리톤(TRITON)® X-100, 0.5 μCi ³³P-ATP 및 0.05 μg/μL 폴리(Glu-Tyr)을 함유하는 50 μL의 완충제 중에서 인큐베이션하였다. 반응을 실온에서 30분 동안 50 μL의 부피로 수행하고, 이어서 130 μL의 10% H₃PO₄를 첨가하여 켄칭하였다. 반응물 (120 μL)을 96 웰 1.0 μm 유리 섬유 필터 플레이트로 옮기고, 실온에서 20-30분 동안 인큐베이션하고, 이어서 타이터텍(TITERTEK)® 줌(Zoom) 상에서 0.5% H₃PO₄로 3회 세척하였다. 웰을 공기 건조시킨 후, 40 μL의 마이크로신트(MicroScint)™20 (팩커드(Packard))을 첨가하고, 이어서 왈락 마이코베타(Wallac Micobeta) 계수기 상에서 계수하였다. 화합물 억제를 위해, 화합물을 디메틸 술폭시드 (DMSO) 중 10 mM 스톡으로서 제공하였다. 화합물을 20% DMSO 중에 1:3으로 연속 희석하여 10개 지점의 농도-반응 곡선을 생성하고, 반응 플레이트 내에 1:5로 희석한 후 (4% 최종 DMSO 농도로 20 μM → 0.001 μM 최종), 필터 플레이트에 반응 혼합물을 첨가하여 화합물 활성을 결정하였다. 대조군 웰은 단지 4% DMSO만을 함유하였고, 반면에 0.1 M 에틸렌디아민테트라아세트산 (EDTA)을 함유하는 대조군 웰에 의해 기저선을 확립하였다. 10개의 농도 각각에 대한 억제 백분율 값을 각 플레이트 상에서 대조군 웰로부터 계산하고, 10개 지점의 농도 반응 데이터를 후속적으로 4-파라미터 로지스틱 방정식을 이용하는 액티비티베이스(ActivityBase) 소프트웨어 (IDBS)를 사용하여 분석하고, 절대 IC₅₀ 값을 생성된 곡선 핏으로부터 추정하였다. FGFR1 및 FGFR3 효소 검정은 각각 1.38 및 1.47의 추정된 IC₅₀에 대한 최소 유의 비 (MSR)를 가졌다. 이들 검정에서 FGFR1 및 FGFR3에 대한 제조예 10에 대한 IC₅₀ 결과는 각각 0.0077 및 0.0064 μM인 것으로 추정되었다. 상기 데이터는 제조예 10이 강력한 FGFR1 및 FGFR3 효소 억제제라는 것을 입증하였다.

BSA를 사용한 FGF9-유도된 p-ERK

인간 RT112 방광 암종 세포를 셀바인드(CELLBIND)® 96 웰 플레이트 (코닝(Corning) 3340)에서 10% 태아 소 혈청 (FBS, 깁코(Gibco) 10082-147) 및 1%의 페니실린/스트렙토마이신 용액 (깁코 15140-122)으로 보충된 100 μL RPMI 1640 (깁코 11875-085) 중에 웰당 5,000개 세포의 밀도로 시딩하고, 37℃에서 밤새 인큐베이션하였다. 다음날 아침, 성장 배지를 제거하고, 20 mg/mL 소 혈청 알부민 (BSA)으로 보충된 100 μL RPMI 1640으로 대체하였다. 37℃에서 3시간 동안 인큐베이션한 후, 6% DMSO 중 20 mg/mL BSA를 함유하는 RPMI 1640 중에 3배 연속 희석된 화합물 20 μL를 각 웰에 첨가하였다. 이로써 1% DMSO 중 10-0.005 μM 범위의 10개 지점 용량-반응 곡선을 얻었다. 37℃에서 1시간 동안 인큐베이션을 계속하였다. 세포를 혈청 무함유 RPMI 중 50 μg/mL FGF9 (알앤디 시스템즈(R&D Systems) 273-F9) 용액 50 μL로 자극하여 500 ng/mL FGF9의 최종 농도를 제공하였다. 포스페이트 완충 염수 (PBS) 중 25% 포름알데히드 용액 30 μL를 첨가하여 세포를 고정시키고 (3.7% 포름알데히드 최종 농도), 30분 동안 실온에서 인큐베이션하였다. 세포를 PBS로 3회 세척하고, 이어서 100 μL의 냉 메탄올을 첨가하고, -20℃에서 30분 동안 인큐베이션하였다. 메탄올을 제거하고, 0.1% 트리톤® X-100을 함유하는 PBS (PBST)로 세포를 처리하고, PBS로 3회 세척하고, 15분 동안 실온에서 인큐베이션하였다. 이어서, 세포를 2% BSA, 0.01% 포스파타제 억제제 칵테일 1 (시그마(Sigma) P2850), 0.01% 포스파타제 억제제 칵테일 2 (시그마 P5726) 및 0.01% 프로테아제 억제제 칵테일 (시그마 P8340)로 보충된 PBS 중 p-p44/42 MAPK 1차 항체 (셀 시그널링(Cell Signaling) 9101S)의 1:400 희석물 50 μL 중에서 부드럽게 진탕시키면서 4℃에서 밤새 인큐베이션하였다. 다음날 아침, 플레이트를 PBST로 2회 및 PBS로 2회 세척하고, 이어서 1% BSA 및 0.1%의 포스파타제 억제제 칵테일 1, 0.01% 포스파타제 억제제 칵테일 2 및 0.01% 프로테아제 억제제 칵테일을 함유하는 PBS 중 알렉사 플루오르(Alexa Fluor) 488 염소 항-토끼 IgG H+L 2차 항체 (인비트로젠(Invitrogen) A11034)의 1:1000 희석물 80 uL 중에서 암조건에서 1시간 동안 실온에서 인큐베이션하였다. 세포를 PBS로 3회 세척하고, 이어서 PBS 중 프로피듐 아이오다이드 (PI) (몰레큘라 프로브(Molecular Probe) P-3566)의 1:200 희석물 100 μL를 첨가한 다음, 1시간 동안 암조건에서 인큐베이션하였다. 웰당 p-ERK 양성 세포 및 총 세포를, 각각 알렉사 488 및 PI에 대해 광학 필터 500-530 nM 및 575-640 nM를 이용하여 아큐멘 익스플로러(ACUMEN EXPLORER)™ (TTP 랩테크 리미티드(TTP LabTech Ltd))로 확인하였다. 알렉사 488 값을 이용한 pERK/웰에 대한 총 평균 강도를 후속적으로 동일한 플레이트 상에서 실행된 MIN (DMSO 중 10 μM 양성 대조군 화합물) 및 MAX (DMSO 단독) 대조군으로부터 얻은 값을 이용하여 억제 백분율로 전환시켰다. 억제 백분율 값 및 10개 지점 농도 반응 데이터를 후속적으로 4-파라미터 S자형 용량 반응 방정식을 이용하여 분석하고, 상대적 IC₅₀ 값을 생성된 곡선으로부터 추정하였다. BSA 검정을 이용한 FGF9-유도된 p-ERK는 2.7의 추정 IC₅₀에 대한 최소 유의 비 (MSR)를 가졌다. 상기 검정에서 제조예 10에 대한 IC₅₀은 0.0004 μM인 것으로 추정되었다. 상기 데이터는 제조예 10이 인간 암 세포에서 FGF9-유도된 ERK 인산화의 강력한 억제제라는 것을 입증하였다.

인간 제대 정맥 내피 세포 (HUVEC)에서의 ERK 인산화 (Thr202/Tyr204)의 알파스크린 슈어파이어 검출

FGF 수용체 1의 억제에 대한 화합물의 효과를, 인간 제대 내피 세포 (HUVEC)에서의 염기성-섬유모세포 성장 인자 (b-FGF) 자극에 반응한 ERK의 인산화 (pERK)를 모니터링하여 측정하였다. 형성된 pERK의 수준을 알파스크린® 슈어파이어® 시스템 (TGR 바이오사이언시스(TGR Biosciences), TGRES50K)을 사용하여 측정하였다. 이는 인산화 분석물의 면역-샌드위치 포획을 이용하고, 이어서 항체-코팅된 알파스크린® 비드 (퍼킨 엘머(Perkin Elmer))를 사용하여 검출함으로써 증폭된 신호를 생성하는 동질 검정 포맷이었다.

HUVEC 세포를 회수하고, 10% FBS, 0.4% 소 뇌 추출물, 0.1% 히드로코르티손, 0.1% 겐타미신 술페이트 암포테리신-B 및 0.1% 표피 성장 인자 (인간 재조합)로 보충된 내피 세포 기초 배지 (클로네틱스(Clonetics), CC-3132)로 이루어진 성장 배지 중에서 계대 7까지 유지하였다. 검정을 위해, 세포를 표준 절차에 의해 수확하고, 이어서 계수하였다. 세포 (20,000개/웰)를 100 μL의 성장 배지 중에서 96 웰 폴리-D-리신 코팅된 플레이트 (BD, 354640) 내로 플레이팅하였다. 플레이트를 밤새 37℃, 5% CO₂에서 인큐베이션하였다.

검정 당일에, 세포를 37℃, 5% CO₂에서 3시간 동안 1.5% FBS 및 20 mg/mL BSA를 함유하는 EBM (내피 세포 기초) 배지 100 μL 중에서 혈청 기아 처리하고, 이어서 37℃에서 1시간 동안 기아 배지 중 20 μM의 3배 연속 희석된 화합물로 처리하였다. 이로써 1% DMSO 중 10-0.005 μM 범위의 10개 지점 농도-반응 곡선을 얻었다. 화합물 처리 1시간 후, 세포를 37℃에서 15분 동안 50 μL b-FGF (시그마, F0291, 최종 b-FGF 농도 50 ng/mL)로 자극하였다. 세포 및 50 μL 자극물질 b-FGF를 함유하는 웰에서 MAX 신호를 얻었고, 10 μM 양성 대조군 화합물 및 50 ul 자극물질 b-FGF를 함유하는 세포에서 MIN으로서 신호를 얻었다. 이어서, 배지를 제거하고, 웰당 50 μL의 1x 슈어파이어® 용해 완충제 (TGR 바이오사이언시스 슈어파이어® 키트 성분)를 첨가하고, 부드럽게 진탕시키면서 실온에서 10분 동안 인큐베이션을 계속하였다. pERK 검출을 위해, 6 μL 용해물 및 10 μL 반응 혼합물 (60 부 반응 완충제/10 부 활성화 완충제/0.6 부 각각의 공여자 및 수용자 비드, 퍼킨 엘머, 6760617R)을 384 웰 프록시플레이트 (퍼킨 엘머, 6006280)로 옮겼다. 플레이트를 밀봉하고, 부드럽게 진탕시키면서 2시간 동안 실온에서 인큐베이션하고, 이어서 표준 알파스크린® 세팅 (Ex_680nm 및 Em₅₂₀ _-620nm)을 이용하는 터보모듈(TurboModule)이 장착된 퍼킨 엘머 엔비전(EnVision) 플레이트 판독기 상에서 판독하였다. 방출 데이터를 각각의 플레이트 상에서 MAX (DMSO 단독) 및 MIN (DMSO 중 10 μM 양성 대조군 화합물) 대조군으로부터 결정된 억제 백분율로 전환시키고, 이어서 10개 지점 화합물 농도 데이터를 액티비티베이스® 4.0을 사용하여 4-파라미터 로지스틱 방정식에 대입시키고, IC₅₀을 추정하였다. ERK 인산화 (Thr202/Tyr204) 검정의 알파스크린® 슈어파이어® 검출은 2.1의 IC₅₀에 대한 최소 유의 비 (MSR)를 가졌다. 상기 검정에서 제조예 10의 IC₅₀은 0.0006 μM인 것으로 추정되었다. 상기 데이터는 제조예 10이 인간 제대 내피 세포에서 bFGF-유도된 ERK 인산화의 강력한 억제제라는 것을 입증하였다.

본 발명의 화합물은 바람직하게는 다양한 경로로 투여되는 제약 조성물로서 제제화된다. 가장 바람직하게는, 이러한 조성물은 경구 또는 정맥내 투여용이다. 이러한 제약 조성물 및 이를 제조하는 과정은 당업계에 널리 공지되어 있다. 예를 들어, 문헌 [REMINGTON: THE SCIENCE AND PRACTICE OF PHARMACY (D. Troy, et al., eds., 21^st ed., Lippincott Williams & Wilkins, 2005)]을 참조한다.

본 발명의 화합물은 일반적으로 넓은 투여량 범위에 걸쳐 효과적이다. 예를 들어, 1일 투여량은 통상적으로 체중 1 kg당 약 0.5 내지 약 100 mg의 범위 내에 속한다. 일부 경우에, 상기 범위의 하한치 미만의 투여량 수준이 보다 적절할 수 있고, 반면에 다른 경우에는 보다 더 많은 용량이 어떠한 유해한 부작용도 유발하지 않으면서 사용될 수 있으며, 따라서 상기 투여량 범위는 어떠한 방식으로든지 본 발명의 범위를 제한하려는 의도가 아니다. 실제로 투여되는 화합물의 양은 치료할 상태, 선택된 투여 경로, 투여되는 실제 화합물 또는 화합물들, 개별 환자의 연령, 체중 및 반응, 및 환자의 증상의 증증도를 비롯한 관련 상황에 비추어 의사에 의해 결정될 것임이 이해될 것이다.

Claims

결정질 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올인 화합물.
제1항에 있어서, 결정질 (R)-(E)-2-(4-(2-(5-(1-(3,5-디클로로피리딘-4-일)에톡시)-1H-인다졸-3-일)비닐)-1H-피라졸-1-일)에탄올 1수화물인 화합물.
제1항 또는 제2항에 있어서, 단리된 화합물.
제1항 내지 제3항 중 어느 한 항에 있어서, 14.65에서의 피크를 포함하는 X선 분말 회절 패턴 (Cu 방사선, λ = 1.54059 Å)을 특징으로 하는 화합물.
제4항에 있어서, 3.54 (2θ +/- 0.1°)에서의 피크를 추가로 포함하는 화합물.
제4항 또는 제5항에 있어서, 12.51 (2θ +/- 0.1°)에서의 피크를 추가로 포함하는 화합물.
제4항 내지 제6항 중 어느 한 항에 있어서, 19.16 (2θ +/- 0.1°)에서의 피크를 추가로 포함하는 화합물.
제1항 내지 제7항 중 어느 한 항에서와 같은 화합물을 제약상 허용되는 담체, 희석제 또는 부형제와 조합하여 포함하는 제약 조성물.