JPS61271995A - L−カルニチンの製造法 - Google Patents
L−カルニチンの製造法Info
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Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
(発明の目的)
本発明は、クロトノベタインを含まない培地で培養した
微生物菌体を用いて、栄養および酸素量を制限した反応
系でクロトノベタインよりL−カルニチンを生成させる
方法、すなわち培養液よシ遠心分離等で得た微生物菌体
をクロトノベタインを含む溶液に加えることKより、ク
ロトノベタインよりL−カルニチンを生成させる方法に
関する。
微生物菌体を用いて、栄養および酸素量を制限した反応
系でクロトノベタインよりL−カルニチンを生成させる
方法、すなわち培養液よシ遠心分離等で得た微生物菌体
をクロトノベタインを含む溶液に加えることKより、ク
ロトノベタインよりL−カルニチンを生成させる方法に
関する。
(産業上の利用分野)
本発明は、クロトノベタインを含まない通常の培地で培
養した微生物菌体を用い、安価に入手できるクロトノベ
タインよシ有利KL−カルニflyを生産する点にある
。
養した微生物菌体を用い、安価に入手できるクロトノベ
タインよシ有利KL−カルニflyを生産する点にある
。
カルニチン(β−ヒドロキシ−r−トリメチル漬アミノ
酪酸)には0体およびL体の2種類の立体異性体が存在
することはよく知られている。L−カルニチンは、通常
生体内に存在し、活性化した長鎖の遊離脂肪酸をミトコ
ンドリア膜から通過させるキャリアーとしての働きを有
する。
酪酸)には0体およびL体の2種類の立体異性体が存在
することはよく知られている。L−カルニチンは、通常
生体内に存在し、活性化した長鎖の遊離脂肪酸をミトコ
ンドリア膜から通過させるキャリアーとしての働きを有
する。
カルニチンは左旋性のL−カルニチンのみが天然物の形
態であるKもかかわらず、ラセミ体のカルニチンが食欲
増進剤などに用いられてきた。
態であるKもかかわらず、ラセミ体のカルニチンが食欲
増進剤などに用いられてきた。
しかし最近、少なくともいくつかの治療学的使用に対し
ては、L−カルニチンのみを使用する方が効果的である
ことが明らかにされ、その重要性に対する関心が高まり
つつある。
ては、L−カルニチンのみを使用する方が効果的である
ことが明らかにされ、その重要性に対する関心が高まり
つつある。
実際、心血管系での急性ならびに慢性の心筋虚血、狭心
症、心臓性の不整脈または、心不全の治療に用いられて
いる。
症、心臓性の不整脈または、心不全の治療に用いられて
いる。
(従来の技術)
(発明が解決しようとする問題点)
光学活性り一カルニチンの製法としては、例えば下記の
方法が知られている。
方法が知られている。
(1)化学的な合成法によって得られたラセミ体のカル
ニチンを光学分割する方法。その光学分割の方法は、前
駆体であるDL−カルニチンニトリルKN−アセチル−
D−グルタミン酸または、N−アセチル−L−グルタミ
ン酸を分割剤として加え塩を生成させ、溶解度の差を利
用して分割し、次いでこれを加水分解して、L−および
D−カルニチンクロライドとなす(特公昭43−824
8)。
ニチンを光学分割する方法。その光学分割の方法は、前
駆体であるDL−カルニチンニトリルKN−アセチル−
D−グルタミン酸または、N−アセチル−L−グルタミ
ン酸を分割剤として加え塩を生成させ、溶解度の差を利
用して分割し、次いでこれを加水分解して、L−および
D−カルニチンクロライドとなす(特公昭43−824
8)。
が代表的なものである。
(2)3−デヒドロカルニチンを微生物の酵素(カルニ
チンデヒドロゲナーゼ)の作用で不斉還元して、L−カ
ルニチンを得る方法。
チンデヒドロゲナーゼ)の作用で不斉還元して、L−カ
ルニチンを得る方法。
(米国特許第4,221,869号)
(3)T−ブチロベタインに微生物の酵素(ヒドロキシ
ラーゼ)を反応させることにより、L−カルニチンを製
造する方法。(特開昭57−39791)(4)好気的
培養法、あるいは好気的培養法により得られる菌体を用
いて、クロトノベタインよりL−カルニチンを製造する
方法。(特開昭59−183694、特開昭59−19
2095 ”)しかしながら、(1)は光学分割剤とし
て用いるN−アセチル−D−グルタミン酸が高価であり
、操作が複雑で収率が悪い。
ラーゼ)を反応させることにより、L−カルニチンを製
造する方法。(特開昭57−39791)(4)好気的
培養法、あるいは好気的培養法により得られる菌体を用
いて、クロトノベタインよりL−カルニチンを製造する
方法。(特開昭59−183694、特開昭59−19
2095 ”)しかしながら、(1)は光学分割剤とし
て用いるN−アセチル−D−グルタミン酸が高価であり
、操作が複雑で収率が悪い。
(2)は、原料の3−デヒドロカルニチンが不安定で取
扱が困難な上、補酵素として高価なNADHあるいはN
ADを必要とする。
扱が困難な上、補酵素として高価なNADHあるいはN
ADを必要とする。
(3)は、原料となるγ−ブチロベタインが高価である
などの理由で以上あげたいずれの方法も工業的製造法と
しては有利な方法とは云えない。
などの理由で以上あげたいずれの方法も工業的製造法と
しては有利な方法とは云えない。
また(4)は、本発明者らの追試によれば好気的に培養
した菌体においては、カルニチンヒドロリアーゼ誘導物
質存在下での培養にもかかわらず、カルニチンヒドロリ
アーゼ活性を取得し得ない菌種が多数存在するし、カル
ニチンヒドロリアーゼ活性を取得した菌株についてもそ
の活性が弱い場合が多い。
した菌体においては、カルニチンヒドロリアーゼ誘導物
質存在下での培養にもかかわらず、カルニチンヒドロリ
アーゼ活性を取得し得ない菌種が多数存在するし、カル
ニチンヒドロリアーゼ活性を取得した菌株についてもそ
の活性が弱い場合が多い。
そこで本発明者らは、原料としてエピクロルヒドリンよ
り安価に製造できるクロトノベタインに着目し、L−カ
ルニチンの新規製造法の開発を目的として検討を行なっ
た結果、DL−カルニチン。
り安価に製造できるクロトノベタインに着目し、L−カ
ルニチンの新規製造法の開発を目的として検討を行なっ
た結果、DL−カルニチン。
L−カルニチン、クロトノベタインなどのカルニチンヒ
ドロリアーゼ誘導物質存在下、微生物を嫌気的に培養す
ると多数の菌種の菌体において強いカルニチンヒドロリ
アーゼ活性が誘導されることを見い出した。(特願昭5
9−187378 )しかしながら、この方法において
は嫌気条件下の培養であるために、好気条件下での培養
にくらべ菌の生育が悪い場合が多い。
ドロリアーゼ誘導物質存在下、微生物を嫌気的に培養す
ると多数の菌種の菌体において強いカルニチンヒドロリ
アーゼ活性が誘導されることを見い出した。(特願昭5
9−187378 )しかしながら、この方法において
は嫌気条件下の培養であるために、好気条件下での培養
にくらべ菌の生育が悪い場合が多い。
(問題点を解決するための手段)
そこで本発明者らは、鋭意検討を重ねた結果、クロトノ
ベタインを含まない通常の培地で好気的に培養した菌体
を取シ出して栄養を制限したクロトノベタインを含む溶
液に加えると、クロトノベタインよりL−カルニチンが
生成することを見い出し、本発明に至った。
ベタインを含まない通常の培地で好気的に培養した菌体
を取シ出して栄養を制限したクロトノベタインを含む溶
液に加えると、クロトノベタインよりL−カルニチンが
生成することを見い出し、本発明に至った。
本発明の方法によれば、好気的培養によって高濃度に培
養された菌体を、栄養制限下クロトノベタインと共存さ
せるとL−カルニチンが得られ、酸素量を制限するほど
L−カルニチンの収率の向上が認められた。
養された菌体を、栄養制限下クロトノベタインと共存さ
せるとL−カルニチンが得られ、酸素量を制限するほど
L−カルニチンの収率の向上が認められた。
同時に、本発明によると好気的に増殖させた菌体を用い
るため高濃度の菌体液が調製でき、反応にあずかる菌体
数も多くなるため、結果として反応時間の短縮、基質濃
度の向上が可能となる。換言すれば小容量の好気的培養
で大容量の反応を行なうことも可能となる。
るため高濃度の菌体液が調製でき、反応にあずかる菌体
数も多くなるため、結果として反応時間の短縮、基質濃
度の向上が可能となる。換言すれば小容量の好気的培養
で大容量の反応を行なうことも可能となる。
(作 用)
従来の方法では培養時にクロトノベタインあるいは、D
L−カルニチンを加えたため、培養液からそれらに由来
するベタイン化合物の分離が必要であった。
L−カルニチンを加えたため、培養液からそれらに由来
するベタイン化合物の分離が必要であった。
しかも副生じてくるγ−ブチロベタインのためにクロト
ノベタイン、カルニチンを純粋な形で回収することは、
かなりの困難を伴なった。しかし本発明の方法において
は、培養液からのベタイン化合物の回収を考慮する必要
は全くない。しかも反応系において特筆すべきことに、
γ−ブチロベタインの生成が全く認められない。
ノベタイン、カルニチンを純粋な形で回収することは、
かなりの困難を伴なった。しかし本発明の方法において
は、培養液からのベタイン化合物の回収を考慮する必要
は全くない。しかも反応系において特筆すべきことに、
γ−ブチロベタインの生成が全く認められない。
さらに1本発明の方法において生成されるし一カルニチ
ン濃度は従来の方法において培養液中に蓄積されるL−
カルニチン濃度よりも高い場合が多い。
ン濃度は従来の方法において培養液中に蓄積されるL−
カルニチン濃度よりも高い場合が多い。
本発明の方法は、無栄養または微栄養溶液中での反応で
あるため菌体の増殖は、はとんどなく培養法で問題とな
るコンタミネーションが起こらない。また反応系のpH
の変化もほとんどないためpHv4整用の緩衝剤をほと
んど添加しなくてもすむ。これらの点は、L−カルニチ
ン精製時に用いる イオン交換樹脂に負荷を与える培地
成分や緩衝剤の量を低減させるという効果も併せ持つ。
あるため菌体の増殖は、はとんどなく培養法で問題とな
るコンタミネーションが起こらない。また反応系のpH
の変化もほとんどないためpHv4整用の緩衝剤をほと
んど添加しなくてもすむ。これらの点は、L−カルニチ
ン精製時に用いる イオン交換樹脂に負荷を与える培地
成分や緩衝剤の量を低減させるという効果も併せ持つ。
また本発明の方法は、好気性のみならず嫌気性条件下で
生育するいずれの菌株にも適用できるので、嫌気性条件
下でしか生育しない乳酸菌や絶対嫌気性菌を対象にする
ことができる。
生育するいずれの菌株にも適用できるので、嫌気性条件
下でしか生育しない乳酸菌や絶対嫌気性菌を対象にする
ことができる。
すなわち、クロトノベタインを含まない培地を用い、嫌
気性条件下で該当する菌株を生育させて得られる菌体を
用いて同様に反応を行なうと、L−カルニチンが得られ
る。
気性条件下で該当する菌株を生育させて得られる菌体を
用いて同様に反応を行なうと、L−カルニチンが得られ
る。
このような嫌気性菌や通性嫌気性菌にも本発明の方法の
適用が可能であり、上述のような種々の利点がある。こ
の結果これまで用いられなかった多種の菌体が用いられ
ることになった。
適用が可能であり、上述のような種々の利点がある。こ
の結果これまで用いられなかった多種の菌体が用いられ
ることになった。
次に本発明の実施態様の一例を説明すると、菌体取得の
ためには例えば、KH2PO40,3%。
ためには例えば、KH2PO40,3%。
K2HPO40,7%、 (NH4)2S040.1
%、MgSO4゜7H200,01%、ペプトン 0.
5%、酵母エキス0.5Xからなる液体培地5−に、針
面培地からシトロバクタ−インターメゾウス(Citr
obacterintermedius ) I F
O13544の種菌を1白金耳量接種し、30℃で2日
間、好気的に培養した。
%、MgSO4゜7H200,01%、ペプトン 0.
5%、酵母エキス0.5Xからなる液体培地5−に、針
面培地からシトロバクタ−インターメゾウス(Citr
obacterintermedius ) I F
O13544の種菌を1白金耳量接種し、30℃で2日
間、好気的に培養した。
この培養液から遠心分離によシ得られた菌体を、5fn
t生理食塩水で洗浄後、反応に供した。この菌体を無栄
讐状態で、クロトノベタイン 1.5%(105mM)
を含む0.01Mリン酸緩衝液(pH6)50wIl中
に添加した後、30℃で2日間密栓下酸素を制限した状
態で振盪することにより反応を行なった。得られた反応
液から遠心分離により菌体を取り除いた後、80℃で5
分間加熱処理を行なった。この処理液は、D、 J、
Pearsonらの酵素法(Method in En
zymolog)’ ii、 612(1969))で
分析すると、55mMのL−力ルニチンを含んでいた。
t生理食塩水で洗浄後、反応に供した。この菌体を無栄
讐状態で、クロトノベタイン 1.5%(105mM)
を含む0.01Mリン酸緩衝液(pH6)50wIl中
に添加した後、30℃で2日間密栓下酸素を制限した状
態で振盪することにより反応を行なった。得られた反応
液から遠心分離により菌体を取り除いた後、80℃で5
分間加熱処理を行なった。この処理液は、D、 J、
Pearsonらの酵素法(Method in En
zymolog)’ ii、 612(1969))で
分析すると、55mMのL−力ルニチンを含んでいた。
本発8Aにおいて用いるクロトノベタインをL −カル
ニチンに変換せしめる能力を有する微生物としては、例
えばニジエリ°ヒア コリ IFO3301゜エンテロ
バクタ−クロアカニ IFO3320,クレブシェラ
ニ二一モニアエ IFO3512,エアロバクター ク
ロアカニ IAM1134. エルピニア アロイデア
エ IFO12380,セラチア マルセンサス IF
O3736,プロテウス ブルガリス IrO2851
、サルモネラ チフイムリウムI FO12529゜ア
ルカリゲネス ファエ力リス ATCC8750,フラ
ボバクテリウム エステロアロマティカムエ■3751
、 アクロモバクタ−パルプラス IFol 318
1、 バララス スファエリカム IFO3526゜
アグロバクテリウム ラジオバクター IFO1266
4゜アゾトバクタ−ビネランディ IF012018゜
ミクロコツカス ロゼウス IF03768.コリネバ
クテリウム ラサユ IFO12161,スタフィロコ
ッカス オーレウス IFO3060,シェードモナス
マルギナリス IFO3925,アルスロバクタ−シ
ンプレックス IFO12069,ブレビバクテリウム
リネンス IFO12141,セルロモナス7ラビゲ
ナ IFO37413,ハフニア アルベイIFO37
31,アセトバクター オルレアネンスIFO3259
,クロモバクテリウム イオディナムIFO3558,
キサントモナス キャンペストリスIFO13303,
ビブリオ バラハエモリティカスIFO12711,エ
アロモナス ハイトロフイラIF012978. プ
ロタミノバクタ−アルボフラバス IFO3707,ア
シネトバクタ−カルコアセティカス IFO13006
,シトロバクタ−インターメゾウス IFO13544
,バクテリウムグラシル IFO3231,クロストリ
ジウム ブチリカム IF03858. リゾビウム
ジャポニカムIF013338. グルコノバクタ−
セリナス IrO2264、ストレプトコッカス 7ア
エカリスIF03128. ペディオコッカスベント
サシウスIF03893. ロイコノストック メセ
ンテロイデス IFO3426,ラクトパシラス アシ
ドフィラス IFO3205,プロピオニバクテリウム
テクニカム IF012428. エアロコツカス
ビリダンス IFO12317,等がある。
ニチンに変換せしめる能力を有する微生物としては、例
えばニジエリ°ヒア コリ IFO3301゜エンテロ
バクタ−クロアカニ IFO3320,クレブシェラ
ニ二一モニアエ IFO3512,エアロバクター ク
ロアカニ IAM1134. エルピニア アロイデア
エ IFO12380,セラチア マルセンサス IF
O3736,プロテウス ブルガリス IrO2851
、サルモネラ チフイムリウムI FO12529゜ア
ルカリゲネス ファエ力リス ATCC8750,フラ
ボバクテリウム エステロアロマティカムエ■3751
、 アクロモバクタ−パルプラス IFol 318
1、 バララス スファエリカム IFO3526゜
アグロバクテリウム ラジオバクター IFO1266
4゜アゾトバクタ−ビネランディ IF012018゜
ミクロコツカス ロゼウス IF03768.コリネバ
クテリウム ラサユ IFO12161,スタフィロコ
ッカス オーレウス IFO3060,シェードモナス
マルギナリス IFO3925,アルスロバクタ−シ
ンプレックス IFO12069,ブレビバクテリウム
リネンス IFO12141,セルロモナス7ラビゲ
ナ IFO37413,ハフニア アルベイIFO37
31,アセトバクター オルレアネンスIFO3259
,クロモバクテリウム イオディナムIFO3558,
キサントモナス キャンペストリスIFO13303,
ビブリオ バラハエモリティカスIFO12711,エ
アロモナス ハイトロフイラIF012978. プ
ロタミノバクタ−アルボフラバス IFO3707,ア
シネトバクタ−カルコアセティカス IFO13006
,シトロバクタ−インターメゾウス IFO13544
,バクテリウムグラシル IFO3231,クロストリ
ジウム ブチリカム IF03858. リゾビウム
ジャポニカムIF013338. グルコノバクタ−
セリナス IrO2264、ストレプトコッカス 7ア
エカリスIF03128. ペディオコッカスベント
サシウスIF03893. ロイコノストック メセ
ンテロイデス IFO3426,ラクトパシラス アシ
ドフィラス IFO3205,プロピオニバクテリウム
テクニカム IF012428. エアロコツカス
ビリダンス IFO12317,等がある。
菌の培養条件は使用する菌株により多少異なるが、一般
的にいえば炭素源として、グルコース。
的にいえば炭素源として、グルコース。
フジクトース、シ真−クロース、マルトースなどの糖質
やグリセロールなど、窒素源として硫酸アンモニウム、
塩化アンモニウム、硝酸カリウム。
やグリセロールなど、窒素源として硫酸アンモニウム、
塩化アンモニウム、硝酸カリウム。
尿素、アミノ酸、ペプトン、カザミノ酸、コーンステイ
ープリカー、ふすま、米ぬか、酵母エキスなど、無機塩
類として硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、炭酸カル
シウム、リン醗−水素カリウを含む培地が用いられるが
、これらに限定されるものではない。
ープリカー、ふすま、米ぬか、酵母エキスなど、無機塩
類として硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、炭酸カル
シウム、リン醗−水素カリウを含む培地が用いられるが
、これらに限定されるものではない。
この培地に菌株を接種し、好気的あるいは嫌気的に培養
する。培養に適した温度は、通常は15〜60℃である
が、さらに好ましくは25〜40℃である。培地の初発
pHは、通常は3〜9.好ましくは5〜8の範囲である
。通常8時間〜10日間の培養で菌を生育させる。
する。培養に適した温度は、通常は15〜60℃である
が、さらに好ましくは25〜40℃である。培地の初発
pHは、通常は3〜9.好ましくは5〜8の範囲である
。通常8時間〜10日間の培養で菌を生育させる。
このようKして得られた培養液から通常の方法により取
り出した菌体は、クロトノベタインを含む溶液と接触せ
しめることによって、L−カルニチンを生産することが
可能である。反応のpHは通常2〜10が、好ましくは
5〜7がよい結果を与える。反応の温度は、通常10〜
60℃が瀞ましくは25〜40℃である。最初に添加す
るクロトノベタイン量は、通常0.1〜10%であるが
、好ましくは1〜6%である。クロトノベタインを分割
添加するとよい結果を与えることもある。また、反応時
に例えば1100pp程度以下の実質的に菌体が増殖し
ない微量のコーンステイープリカー、ファーマメディア
、酵母エキスなどを加えるとよい結果を与えることがあ
る。反応系に亜鉛。
り出した菌体は、クロトノベタインを含む溶液と接触せ
しめることによって、L−カルニチンを生産することが
可能である。反応のpHは通常2〜10が、好ましくは
5〜7がよい結果を与える。反応の温度は、通常10〜
60℃が瀞ましくは25〜40℃である。最初に添加す
るクロトノベタイン量は、通常0.1〜10%であるが
、好ましくは1〜6%である。クロトノベタインを分割
添加するとよい結果を与えることもある。また、反応時
に例えば1100pp程度以下の実質的に菌体が増殖し
ない微量のコーンステイープリカー、ファーマメディア
、酵母エキスなどを加えるとよい結果を与えることがあ
る。反応系に亜鉛。
カリウム、カルシウム、クロム、コバルト、ストロンチ
ウム、鉄、鋼、ナトリウム、ニッケル、バリウム、マグ
ネシウム、マンガン、モリブデン。
ウム、鉄、鋼、ナトリウム、ニッケル、バリウム、マグ
ネシウム、マンガン、モリブデン。
リチウム化合物を添加すると反応収率が向上することも
ある。反応は嫌気条件下などの酸素量を制限した条件で
行なうほど、L−カルニチンの収率が向上する。
ある。反応は嫌気条件下などの酸素量を制限した条件で
行なうほど、L−カルニチンの収率が向上する。
(実施例)
以下に実施例をあげて本発明を具体的に説明する。
実施例1
KH2PO4Q、3%、に2HPO40,7%、 (
NH4)2SO40,1%、 MgSO4・7H200
,01%、クエン酸ナトリウム 0.2 %からなるp
H7の合成培地5−に斜面培地から、エシェリヒア コ
リIFO3301の1白金耳量を接種し、30℃で2日
間好気的に培養した。このようKして得られた培養液よ
シ遠心分離により菌体を得た。得られた陶体を5mの生
理食塩水で洗浄後、クロトノベタイン1.5%(105
mM)を含む0.OIMのリン酸緩衝液<pH6)5〇
−中に添加し、窒素置換した後、密栓下30℃で2日間
振盪することにより反応を行なったO 得られた反応液は遠心分離により菌体を取シ除いた後、
80℃で5分間加熱処理を行ない、酵素法で分析すると
、49mMのL−力ルニチンが生成していた。
NH4)2SO40,1%、 MgSO4・7H200
,01%、クエン酸ナトリウム 0.2 %からなるp
H7の合成培地5−に斜面培地から、エシェリヒア コ
リIFO3301の1白金耳量を接種し、30℃で2日
間好気的に培養した。このようKして得られた培養液よ
シ遠心分離により菌体を得た。得られた陶体を5mの生
理食塩水で洗浄後、クロトノベタイン1.5%(105
mM)を含む0.OIMのリン酸緩衝液<pH6)5〇
−中に添加し、窒素置換した後、密栓下30℃で2日間
振盪することにより反応を行なったO 得られた反応液は遠心分離により菌体を取シ除いた後、
80℃で5分間加熱処理を行ない、酵素法で分析すると
、49mMのL−力ルニチンが生成していた。
実施例2
培養K KH2PO40,3%、 K2HPO40,7
%。
%。
(NH4)2S04 0.1%、 MgSO4−7Hz
OO,01へペプトン 0.5%、酵母エキス 0.5
%からなる液体培地を用い、種菌として第1表に示す菌
株を用いた以外は、実施例1と同様に行ない、第1表の
結果を得た。
OO,01へペプトン 0.5%、酵母エキス 0.5
%からなる液体培地を用い、種菌として第1表に示す菌
株を用いた以外は、実施例1と同様に行ない、第1表の
結果を得た。
第 1 表
実施例3
培養にグk :ff −ス1%、 CH3COONa
1%。
1%。
KH2PO40,05X 、 K2HPO40,05
%、酵母エキス 1%、ペプトン 1%* CaCO
31%からなる液体培地を用い、攬菌として第2表に示
す菌株を用いて、嫌気条件下で培養した以外は実施例1
と同様に行ない、第2表の結果を得た。
%、酵母エキス 1%、ペプトン 1%* CaCO
31%からなる液体培地を用い、攬菌として第2表に示
す菌株を用いて、嫌気条件下で培養した以外は実施例1
と同様に行ない、第2表の結果を得た。
第 2 表
実施例4
培養スケール、反応スケールを共に10倍とし、シトロ
バクタ−、インターメゾウス IFO13544を用い
た以外は、実施例2と同様に行なった。この反応スケー
ルでは最初に加えるクロトノベタインは、7.5F (
52,4mmol )で6.た0反応液より、菌体を遠
心分離により除去して得られた上清をDowexカラム
長さ80cm、内径5σに通し、カルニチン画分を得た
。
バクタ−、インターメゾウス IFO13544を用い
た以外は、実施例2と同様に行なった。この反応スケー
ルでは最初に加えるクロトノベタインは、7.5F (
52,4mmol )で6.た0反応液より、菌体を遠
心分離により除去して得られた上清をDowexカラム
長さ80cm、内径5σに通し、カルニチン画分を得た
。
このカルニチン画分より亜硫酸水素ナトリウムで処理す
る方法(特願昭59−187377)を用いてクロトノ
ベタインを除き、405’ (24,8mmol )の
L−カルニチ/を得た。このL−カルニチンの比旋光度
は〔α)20−−30.5° (C=1.0水溶液)で
あった。
る方法(特願昭59−187377)を用いてクロトノ
ベタインを除き、405’ (24,8mmol )の
L−カルニチ/を得た。このL−カルニチンの比旋光度
は〔α)20−−30.5° (C=1.0水溶液)で
あった。
(発明の効果)
本発明の実施によシ微生物菌体を用いて、工業的に有利
にクロトノベタインよシ光学活性り一カルニチンを生成
することができ、下記の様な効果を奏することができる
。
にクロトノベタインよシ光学活性り一カルニチンを生成
することができ、下記の様な効果を奏することができる
。
1. 小容量の培養で大容量の反応を行なうことができ
る。
る。
2 γ−ブチロベタインの副生が全く認められkt。
ず、反応液よりの分離回収#専容易である。
3、 反応時にコンタミネーションが起こらない。
4、pH調整の必要がない。
5、 イオン交換樹脂の量を低減することができる。
出願人 製鉄化学工業株式会社
代表者 佐々木 浩
Claims (2)
- (1)クロトノベタインを含まない培地で培養した微生
物菌体を用い、栄養および酸素量を制限した反応系でク
ロトノベタインよりL−カルニチンを生成させることを
特徴とするL−カルニチンの製造法。 - (2)微生物菌体が、エシェリヒア(Escheric
hia)属、エンテロバクター(Enterobact
er)属、クレブシエラ(Klebsiella)属、
エアロバクター(Aerobacter)属、エルビニ
ア(Erwinia)属、セラチア(Serratia
)属、プロテウス(Proteus)属、サルモネラ(
Salmonella)属、アルカリゲネス(Alca
ligenes)属、フラボバクテリウム(Flavo
bacterium)属、アクロモバクター(Achr
omobacter)属、バシラス(Bacillus
)属、アグロバクテリウム(Agrobacteriu
m)属、アゾトバクター(Azotobacter)属
、ミクロコッカス(Micrococcus)属、コリ
ネバクテリウム(Corynebacterium)属
、スタフィロコッカス(Staphylococcus
)属、シュードモナス(Pseudo−monas)属
、アルスロバクター(Arthrobacter)属、
ブレビバクテリウム(Brevibacterium)
属、セルロモナス(Cellulomonas)属、ハ
フニア(Hafnia)属、アセトバクター(Acet
obacter)属、クロモバクテリウム(Chrom
obacterium)属、キサントモナス(Xant
homonas)属、ビブリオ(Vibrio)属、エ
アロモナス(Aeromonas)属、プロタミノバク
ター(Protaminobacter)属、アシネト
バクター(Acinetobacter)属、シトロバ
クター(Citrobacter)属、バクテリウム(
Bacte−rium)属、クロストリジウム(Clo
stridium)属、リゾビウム(Rhizobiu
m)属、グルコノバクター(Gluconobacte
r)属、ストレプトコッカス(Streptococc
us)属、ペディオコッカス(Pedio−coccu
s)属、ロイコノストック(Leuconostoc)
属、ラクトバシラス(Lactobacillus)属
、プロピオニバクテリウム(Propionibact
erium)属、エアロコッカス(Aerococcu
s)属、よりなる群より選ばれた属に属する少なくとも
一種である特許請求の範囲(1)記載の方法。
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11282785A JPS61271995A (ja) | 1985-05-25 | 1985-05-25 | L−カルニチンの製造法 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP11282785A JPS61271995A (ja) | 1985-05-25 | 1985-05-25 | L−カルニチンの製造法 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS61271995A true JPS61271995A (ja) | 1986-12-02 |
Family
ID=14596531
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP11282785A Pending JPS61271995A (ja) | 1985-05-25 | 1985-05-25 | L−カルニチンの製造法 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS61271995A (ja) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62275689A (ja) * | 1985-12-09 | 1987-11-30 | Bio-Le Kk | L−カルニチンの製造法 |
-
1985
- 1985-05-25 JP JP11282785A patent/JPS61271995A/ja active Pending
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
JPS62275689A (ja) * | 1985-12-09 | 1987-11-30 | Bio-Le Kk | L−カルニチンの製造法 |
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