JP6654634B2 - 不均一なバイオマーカー分布を定量的に分析するための方法、システム及び装置 - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
２０１４年１２月３日に出願された米国仮特許出願第６２／０８６，８４０号の利益が本出願により主張され、同仮特許出願の内容は参照により本明細書に組み込まれている。

本開示は画像の取得及び分析の自動化、特に顕微鏡による疾患評価に適用された画像の取得及び分析の自動化の分野に関する。

組織評価に従来利用可能な技術により、遺伝子又はタンパク質の発現（ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）／活性化（ａｃｔｉｖａｔｉｏｎ）を示す単一のバイオマーカーだけを分離した形で、日常的に評価できるようになった。これらの有益な単一のバイオマーカーでは、全体像が分かるわけではないことがはっきりしてきた。タンパク質の発現及び活性化に関するシークエンシング技術及び生化学的測定においては均質化された組織試料に焦点を当てており、そのような場合、発現パターン又は遺伝子変化の空間的背景が失われてしまう。生化学的アッセイ及びシークエンシング技術を通じて得られる情報は有用であるが、依然、情報の内容に重大な格差が残っており、また多数の細胞からのタンパク質含有量を平均化する結果、１つの腫瘍内での細胞の発現及び活性化のパターンに関する理解も不完全なままである。

最近の研究により現在、従来のアッセイ技術では見逃されてしまう重要な情報の存在が示唆される。そうした状況の一例は、１つの腫瘍における複数の遺伝子の再配列又は異常の存在と、同じ細胞内で異なる再配列が発生するとそれらが協同的効果を及ぼすという可能性の認識である（Ｚｏｎｇ ｅｔ ａｌ．２００９、Ｇｏｌｄｓｔｅｉｎ ｅｔ ａｌ．２０１０）。腫瘍間及び腫瘍内での遺伝的不均一性（ｈｅｔｅｒｏｇｅｎｅｉｔｙ）が報告されており、そうした不均一性は治療の失敗や治療時における薬物耐性に寄与すると考えられている（Ｇｅｒｌｉｎｇｅｒ ｅｔ ａｌ．２０１２、Ｍａｒｕｓｙｋ ｅｔ ａｌ．２０１２）。したがって、１つの腫瘍が遺伝子の再配列又は欠失を複数有することだけでなく、これらが同一細胞内で発生するか、別々の細胞で発生するか、又は様々な状況で複合的に発生するかということも認識することが重要である（Ｓｖｅｎｓｓｏｎ，ｅｔ ａｌ．２０１１）。表現型（ｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃ）不均一性及びタンパク質発現特性も、腫瘍組織中のバイオマーカーを評価する際に重要な検討事項であることが示されている（Ｙａｐ ｅｔ ａｌ．２０１２、Ｍａｒｕｓｙｋ ｅｔ ａｌ．２０１２）。表現型不均一性は遺伝的又は後成的な原因から生じる可能性があり、また薬物耐性や、がん増殖の再発に寄与すると考えられている。

したがって、組織中の多様なバイオマーカーを特徴付ける能力があり、組織内及び組織間における前記バイオマーカーの存在及びレベルの不均一性の測定が可能であれば、様々な疾患状態を理解及び特徴付ける上で重要な情報の提供に繋がる。加えて、組織中で主要なバイオマーカーの分布が異なる領域を識別及び測定することが可能であれば、標的療法及び併用療法の開発に参考となる重要情報をもたらし得る。

他の研究者が、様々なクラスタ化（ｃｌｕｓｔｅｒｉｎｇ）方法及び選択的多重化（ｍｕｌｔｉｐｌｅｘｉｎｇ）方式を使用して、発現不均一性の分析を試みてきた（Ｇｅｒｄｅｓ ｅｔ ａｌ．２０１３、Ｑｉａｎ，ｅｔ ａｌ．２０１０）。階層型クラスタ化アプローチでは、有意な想定を立てる必要がある。階層型クラスタ化アルゴリズムの場合、新規クラスタを形成するために境界線を引く位置を決定付ける点間の距離を知ることが、１つの主要なパラメータである。あるいは、一部の階層型アルゴリズム（Ｗａｒｄ方式（Ｗａｒｄ １９６３）など）ではクラスタ数をパラメータとして入力する必要がある。しかし、カットオフ閾値（距離）及び予想されるクラスタ数はいずれも、不詳であることが多いパラメータである。加えて、一部のアルゴリズムでは均等なクラスタのサイズ（例えばｋ平均）、異なるクラスタの構成要素である点間の距離（階層型クラスタ化）に関する想定、又は見つかると予想されるクラスタ数（階層型クラスタ化、ｋ平均）に関する想定を強制する。幅広く使用されているが、階層型方法は、非連続的尺度（例えば＋、＋＋、＋＋＋、＋＋＋＋）を基準に測定される変数により良く適する。こうした理由から、階層型クラスタ化アルゴリズムは、発現不均一性分析の要件に対して理想的ではない。選択的な密度ベースのツール、例えばＦＬＯＣＫ（Ｑｉａｎ，ｅｔ ａｌ．２０１０）は、密度及び密度カットオフ閾値の計算に使用される過剰領域（ｈｙｐｅｒ−ｒｅｇｉｏｎ）のサイズを表すパラメータを推定し、これらをアルゴリズムに入力してクラスタ判定を可能にしなければならない、という制約がある。

最近ではＳＰＡＤＥ（Ｑｉｕ ｅｔ ａｌ．２０１２、Ｇｉｅｓｅｎ ｅｔ ａｌ．２０１４）及びｖｉＳＮＥ（Ｅｌ−ａｄ ｅｔ ａｌ．２０１３）などのツールが、高次元、多重パラメータの発現パターンを有する細胞から成る複数クラスタ間の階層的関係のマッピングに使用されている。そうしたツールでは発現パターン間での類似性関係のマッピングが重視され、この意味で、多重パラメータの発現不均一性の性質を知るための、別々の補完的な手掛かりをもたらす。ＳＰＡＤＥ及びｖｉＳＮＥなどのツールは血球計算の文脈で開発されたものであり、高次元空間での細胞集団間の関係をマッピングして、組織中での発現パターンの空間的位置の文脈に該当しない細胞集団を可視化及び分類することを、より重視する。この意味で、ＳＰＡＤＥ及びｖｉＳＮＥはクラスタ化ツールというよりむしろ、マッピングツールに相当する。

我々は今のところ、細胞及び組織の試料における元来の空間的文脈の範囲内で生体分子の発現、局在化及び／又は活性化が不均一なクラスタを十分に識別するシステム又は方法を全く知らない。

１つの組織標本を収めた１つの多重スライドにおいて、別々の核及び組織構造が特異的なバイオマーカー専用染色剤で同時に染色され、これらの染色剤は発色性色素又は蛍光色素のいずれであってもよく、各々がスペクトルの形状及び拡散に関して特徴的なスペクトル特性を有する。様々なバイオマーカーのスペクトル特性は、広スペクトル帯域又は狭スペクトル帯域のいずれであってもよく、スペクトルが重複していてもよい。標本、例えば腫瘍学標本を何らかの組み合わせの色素で染色させたものを含有するスライドが、多重スペクトル（ｍｕｌｔｉ−ｓｐｅｃｔｒａｌ）画像処理システムを使用して画像処理される。各チャネル画像が１つのスペクトル帯に相当する。したがって、この画像処理システムによって生成される多重スペクトル画像スタックは、基礎を成す構成要素のバイオマーカー発現の混合物であり、場合によっては共局在化され得る。最近では、対象のバイオマーカー向けの免疫蛍光染色において、非常に強く安定した蛍光性を有するので、量子ドット（ｑｕａｎｔｕｍ ｄｏｔ）が幅広く使用されている。

バイオマーカー向けの個別の成分染色剤、及びそれらが混合物中に出現する割合を特定することは根本的課題であり、これはスペクトルアンミキシング（ｓｐｅｃｔｒａｌ ｕｎｍｉｘｉｎｇ）操作を使用して解決される。スペクトルアンミキシングでは多重スペクトル画像の各ピクセルを、成分スペクトルのエンドメンバー又は構成要素の集合体、及び多重スペクトル画像における各々の強度寄与割合へと分解する。スペクトルアンミキシング方法の一例は、蛍光顕微鏡法及び明視野顕微鏡法の双方で一般的に使用される非負線形最小二乗操作である。ＷＯ２０１５／１０１５０７（ＰＣＴ／ＥＰ２０１４／０７８３９２）及びＷＯ２０１５／１２４７７２（ＰＣＴ／ＥＰ２０１５／０５３７４５）は多重チャネル画像（多重スペクトル画像ともいう）のアンミキシングを行うための様々なアンミキシング方法を開示しており、それら全体が参照により本明細書に組み込まれる。

不均一なバイオマーカー分布を定量的に分析するための方法、システム及び装置を提供する。

本明細書では、検出可能マーカーで標識された少なくとも１つの被分析物を含む細胞試料における不均一性を検出及び説明する方法を提供し、前記方法は、様々な発現パターンの複数のクラスタを含むクラスタマップを作成するために、細胞試料の画像から得られるデータセットに対してクラスタ分析を適用するようプログラムされたコンピュータプロセッサを含むコンピュータ装置上で細胞試料の画像を分析するステップを含み、
（ａ）データセットは細胞試料における１つ又は複数の対象領域（ＡＯＩ）内の複数の視野（ＦＯＶ）各々について１つずつの画像スタックを含み、この画像スタックはｘ軸、ｙ軸及びｚ軸を含み、ｘ軸及びｙ軸は視野内の空間座標を表し、ｚ軸は１つ又は複数の層を含み、ｚ軸の各層は単一の検出可能マーカーについての複数のｘ，ｙ座標での強度データを含み、
（ｂ）クラスタ分析は、非監視型、ノンパラメトリック、密度ベースのクラスタ化アルゴリズムを画像スタックに適用するステップを含み、このクラスタ化アルゴリズムはｘ，ｙ座標を、複数のｚ軸層にまたがる検出可能マーカー強度の比率が同等である他のｘ，ｙ座標と一緒にグループ化することにより、同等の発現パターンを有する複数のクラスタ群を生成する。

本明細書において理解される「細胞試料」は、解剖病理学向けにヒト又は動物の身体から取得される外科的標本など、任意の生体組織試料である。細胞試料は前立腺組織試料、乳房組織試料、結腸組織試料、あるいは別の臓器又は身体領域から取得される組織試料であってもよい。

本明細書において理解される「多重スペクトル」又は「多重チャネル」のピクセルは、異なる核構造及び組織構造が特定の色素で同時に染色される生体細胞試料から取得されるデジタル画像に含まれる１つのピクセルを包含する。

本明細書において理解される「多重チャネル画像」又は「多重スペクトル」画像は、多重スペクトル又は多重チャネルのピクセルから成る１つの画像を包含する。単一チャネル画像は多重チャネル画像のチャネル毎に、アンミキシング方法によって取得される。

一実施形態において、密度ベースのクラスタ化アルゴリズムは平均シフトクラスタ化アルゴリズムである。
別の一実施形態において、前述の方法のデータセットは
（ａ１）画像内の複数のＡＯＩ各々についてＦＯＶサンプリング格子（任意選択でＡＯＩ全体にまたがり規則的な間隔で配置される複数のＦＯＶを含む）を計算するステップと、
（ａ２）各ＦＯＶ内の単一又は複数のｚ面にて多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトル（ｈｙｐｅｒ−ｓｐｅｃｔｒａｌ）データを自動的に収集するステップ（任意選択でメタデータ属性を有するネスト化データ構造又はデータベースに自動記憶させてもよく、前記メタデータ属性は患者、アッセイ、生検、切片、ＡＯＩ位置及び／又はＦＯＶ位置を含む）と、
（ａ３）検出可能マーカーシグナルを多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータからコンピュータ処理によりセグメント化するステップと、
（ａ４）クラスタ分析において１つのグループとして比較されることになるＦＯＶを選択してデータセット構造に入れ込むステップ
（ただし任意選択で
（ａ４ａ）１つのグループとしての比較対象として選択されるＦＯＶは同一組織切片中の別々の腫瘍病巣に相当するか、又は
（ａ４ｂ）ＦＯＶは同一患者から採取された別の生検材料と比較するために同一患者から採取された生検材料に基づいてグループ化されるか、又は
（ａ４ｃ）ＦＯＶは腫瘍部位に基づいてグループ化されるか、又は
（ａ４ｄ）ＦＯＶは患者に基づいて別の患者と比較するためにグループ化されるか、又は
（ａ４ｅ）ＦＯＶは腫瘍遺伝子型に基づいてグループ化される）と、
（ａ５）形態学的特徴の自動セグメント化をデータセット内の各ＦＯＶの各検出可能マーカーシグナルに適用するステップ（前記特徴のセグメント化は任意選択でサイズの制約、強度の制約、又はサイズの制約と強度の制約との組み合わせに基づく）と
を含む方法によって取得される。

別の実施形態において、前述の方法の前記データセットを取得する方法は、
（ａ６）１つ又は複数のＦＯＶにおいて、クラスタ分析に含めるか、又はクラスタ分析から除外する領域を手作業で指定するステップ
をさらに含む。

別の一実施形態において、前述の方法の検出可能マーカーは、共局在化され、定量可能な場合、スペクトル又は他の物理的特徴に基づいて他のマーカー及び組織から分離され得るシグナルを生成する。一実施形態において、検出可能マーカーは抗体又は抗体の抗原結合フラグメントに付加される。模範的な一実施形態において、検出可能標識は少なくとも１つのリン酸化タンパク質に対して特異的に結合する少なくとも１つの抗体に付加される（例えばＰＩ−３キナーゼシグナル伝達経路（ｓｉｇｎａｌ ｔｒａｎｓｄｕｃｔｉｏｎ ｐａｔｈｗａｙ）又はＭＡＰキナーゼシグナル伝達経路のメンバー）。さらなる一実施形態において、抗ホスホ抗体で標識される細胞試料は、二温度固定法を使用して固定された組織である。

また本明細書では、腫瘍中におけるシグナル伝達経路の生理学的状態に応じて腫瘍を特徴付ける方法も提供し、該方法は前述の方法に従って腫瘍試料の画像を分析するステップを含み、
・複数の被分析物が検出可能マーカーで標識され、
・検出可能マーカーで標識される被分析物のうち少なくとも１つはリン酸化シグナル伝達タンパク質であり、
・画像の各ＦＯＶ内の単一又は複数のｚ面にて、ハイパースペクトル又は多重スペクトルのデータが収集される。

また本明細書では、細胞試料における不均一性を自動的に識別するシステムも提供し、該システムは
（ａ）分析用画像処理分析システムであって、
プロセッサと、
プロセッサに結合され、プロセッサによって実行されたとき前述の方法のいずれかを含む操作をプロセッサに実施させるコンピュータ実行可能な命令を記憶するメモリと
を含む分析用画像処理分析システムと、任意選択で
（ｂ）細胞試料のデジタル化画像並びに細胞試料からの多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータを捕捉するよう、またデジタル化画像を分析用画像処理分析システムへ伝達するように適合された、分析用画像処理ハードウェアシステムと、任意選択で
（ｃ）リレーショナルデータベースと
を含む。

模範的な一実施形態において、前述のシステムは、対象の１つ又は複数の被分析物が検出可能標識で標識される細胞試料を含有するスライドをさらに含み得る。さらなる一実施形態において、細胞試料は二温度固定法を使用して保存済みのホルマリン固定パラフィン包埋組織試料であり、前記検出可能標識は少なくとも１つのリン酸化タンパク質に特異的に結合する少なくとも１つの抗体に付加される。

また本明細書では、前述の方法のいずれかを含む操作を実施するためにプロセッサによって実行されるコンピュータ実行可能な命令を記憶するための、非一時的なコンピュータ可読記憶媒体も提供する。

本特許又は出願ファイルは、カラーで作成された少なくとも１枚の図面を含む。本特許又は特許出願のカラー図面付き刊行物の写しは、要請があれば、必要な手数料が支払われ次第、当社から提供される。

解剖学的組織のデジタル化、可視化及び注釈付けのための基本ワークフロー（１、２、３）、続いて注釈付き視野におけるスペクトルデータセットの収集（４）、続いて多重化マーカーレベルのコンピュータ定量分析（４）を示す図である。 不均一性分析のための模範的ワークフローにおける主要なステップを示す図である。 ＰＩ３Ｋ／ＡＫＴ／ｍＴＯＲ及びＲａｓ／ＭＡＰＫの経路を示す図である。円で囲まれたタンパク質は、実施例に記載の模範的研究向けに選定された標的を意味する。 視野上方の体系的サンプリングを示す図である（模擬明視野内に表示されるスキャン済みの解剖学的画像の上方に重ね合わされた矩形で表示される、スペクトル画像処理を使用して取得されることになる領域）。 注釈付き視野上方でのスペクトル取得の概念を示す図である。 自動化された多重モードスペクトルデータ取得をリレーショナルデータベース及び可視化ソフトウェア及び分析ソフトウェアと組み合わせた模範的システムを示す図である。 強度範囲、サイズ及び形状の制約に基づいて、構造を分析から除外することを可能にする、模範的な自動特徴選定を示す図である。 特徴をセグメント化するためのパラメータを設定する、模範的な自動マスク設定ダイアログインターフェースを示す図である。 ＦＯＶの注釈付け及び編集を手動で行うための模範的ツールを示す図である。 データセットのローディング、多重被分析物発現クラスタの判定、及び出力の表示を行うための模範的ワークフローを示すフローチャートである。 不均一な発現を定量するためのクラスタ分析を示す図である。１）注釈付き領域内でのスペクトルデータの自動取得向けに、解剖学的視野にデジタル処理によって注釈が付けられる。対象区域内の視野毎に取得されたデータがアンミキシングされ、ｚ次元を介して投影されることにより、被分析物毎の被分析物強度を表す一連の２Ｄ画像が生成される。２）各視野内の各被分析物の２Ｄ画像が他のすべての視野からの２Ｄ画像に付加されることにより、データセット全体にまたがる画像が作成され、各被分析物がｚ軸に付加されることにより、データセット全体にわたる被分析物毎の被分析物分布を表す３Ｄ画像が生成される。３）密度ベースのクラスタ化アルゴリズムが、直前のステップで作成された３Ｄデータセットに適用される。クラスタ化アルゴリズムは３Ｄデータセットのｘ，ｙ座標に応じて新規画像を作成し、各ピクセルを、すべてのマーカーにわたりメンバーが同等の発現パターンを有する１つのクラスタへとグループ化する。作成された各クラスタは、複数のマーカーについて他と異なる発現パターンを有する。４）解剖学的組織において各クラスタに属する領域を表示するよう、クラスタマップが色分けされる。５）各マーカーの強度値が各クラスタに属する領域から収集され、これらの強度値は後でプロット化するか、スプレッドシートにエクスポートすることができる。各クラスタのバイオマーカープロットを隣り合わせに配置すると、カラーマップ上で対象のバイオマーカーについて発現が高い区域又は低い区域を判定しやすくなる。６）データセット内でクラスタ毎の比例的区域を表示する、クラスタヒストグラムが生成される。これにより、区域において支配的な発現パターン、及び細胞集団全体に占める割合が比較的少ない発現パターンを簡単に判定しやすくなる。 ＭＡＰキナーゼ及びＰＩ−３キナーゼの経路を示す図である。 ＰＩ−３キナーゼの経路及び関連するキナーゼ阻害剤を示す図である。 （ａ）参照免疫ブロットに対するハプテン化ホスホ抗体ＱＤプローブの染色挙動の比較、（ｂ）免疫蛍光により評価された個別のプローブＩＨＣ別の比較、及び（ｃ）スペクトル画像処理により評価された６つのハプテン化ホスホ抗体ＱＤプローブの多重化混合物としての比較を示す図である。細胞モデルは、ＡＴＰ競合性ＡＫＴキナーゼ阻害剤（ＧＳＫ６９０６９３）を使用して、未処理（ＵＴ）条件及び薬物処理条件（ＤＴ）でＦＦＰＥ調製されたＳＫＢＲ３細胞であった。ａ）非結合型一次抗体を使用した免疫ブロットは、未処理及び薬物処理（２４時間）後のＳＫＢＲ３細胞中の各タンパク質種について、平均的なホスホシグナル伝達レベルを示した。チューブリンはタンパク質負荷の対照として示されている。ｂ）ＵＴ条件及びＤＴ条件で単一のハプテン抗体ＱＤにより標識されたＳＫＢＲ３細胞中の各ホスホタンパク質種におけるホスホシグナル伝達活性の免疫蛍光画像の例である。ｃ）ＵＴ条件及びＤＴ条件ですべてのハプテン抗体ＱＤプローブの複合染色により標識されたＳＫＢＲ３細胞中の各ホスホタンパク質種におけるホスホシグナル伝達活性の、スペクトルアンミキシング後の画像の例である。ｄ）単一標識及び多重化標識のいずれについても、個々の細胞におけるホスホシグナル伝達強度が不均一であることに注目されたい。ｃ）に記載のスペクトルデータに相当するボックスプロットは、複数のＲＯＩからの数百個の細胞を対象に平均化されたホスホマーカー（ｐｈｏｓｐｈｏｍａｒｋｅｒ）強度の定量的情報を提供する。ボックスプロットは、セグメント化された細胞についてテューキーウィスカーが付記されている（ｎ＝５つのＲＯＩ、１７１〜４１４のセグメント化された特徴／条件）。アスタリスクは有意に異なる条件（ｐ＞０．０００１）を表し、ｎｓは有意性がないことを表す。 未処理（ＵＴ）及びｐＡＫＴ阻害剤（ＧＳＫ６９０６９３）薬物処理後（ＤＴ）のＳＫＢＲ３細胞のＦＦＰＥスライドにおけるＤＡＢ ＩＨＣによるＰＩ３Ｋマーカー活性染色により検証された抗体プローブ特異性を示す図である。（ａ）一次抗体を使用してのＩＨＣ染色、（ｂ）及びＬｎＣａｐ細胞上で単一の非結合型一次抗体を使用してハプテン化された一次抗体は、すべてのホスホマーカー抗体について、対照の細胞及び組織と比べ、ＬＹ２９４００２処理後及びホスファターゼ処理後のＣａｌｕ−３異種移植組織において、予想通り、すべてのＰＩ３Ｋマーカー活性の低減を示した。 ホスホ抗体染色条件を最適化するため、ＦＦＰＥ調製されたモデルシステムが使用された：ｐＴＥＮ欠損が生じ、過活動のＰＩ３Ｋシグナル伝達を有するＬｎＣａｐ細胞株（ＭｃＭｅｎａｍｉｎ １９９９、Ｃａｎｃｅｒ Ｒｅｓ）及びＦＦＰＥ調製されたＣａｌｕ−３異種移植片。ＬｎＣａｐ細胞及びＣａｌｕ−３異種移植片はそれぞれ、ＰＩ３Ｋシグナル伝達を阻害するＬＹ２９４００２及びホスファターゼが存在しない状態及び存在する状態で処理された。ＬｎＣａｐ細胞株（左図）に対するホスホ抗体を使用してのＩＨＣ染色及びλホスファターゼ処理後のＣａｌｕ−３異種移植片（右図）のＩＨＣによる染色は、５つのＰＩ３Ｋ及び１つのＭＡＰＫ経路エフェクターについて、最適化された条件を示す。予想通り、ＬＹ２９４００２での処理後のＬｎＣａｐ細胞及びλホスファターゼ処理後のＣａｌｕ−３異種移植片のいずれにおいても、リン酸官能的（ｐｈｏｓｐｈｏｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ）発現の広範な損失が明らかである。 ＭＴＩＰのリン酸官能的プロファイリング及び再現性を示す図である。ａ）スペクトル画像処理向けのＲＯＩが、相当するＨ＆Ｅスライド（左上）により、病理学者が注釈を付けた乳房腫瘍中で無作為に取得される。左下の画像は、１つのＲＯＩからの６枚のアンミキシングされたホスホマーカー画像のオーバーレイを示す。ＲＯＩの６つのホスホタンパク質チャネルに相当する、アンミキシングされた画像が右側に示されている。スケールバーは５０μｍである。ｂ）１つのＲＯＩからのＨ＆Ｅ画像（左）、及びアンミキシングされた画像の３つのホスホマーカー（Ｈ＆Ｅ画像の右）は、腫瘍中の上皮領域及び間質領域における特徴的なホスホ発現（ｐｈｏｓｐｈｏｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）パターンを表示する形で示されている。ｃ）ボックスプロット（左）は、ホスホプローブ（ｐｈｏｓｐｈｏｐｒｏｂｅ）標識が対照よりも高いＰＩ３Ｋシグナル伝達レベルを示すことを示す。５−ＣＡ、ｎ＝８つのＲＯＩである。Ｃは一次抗体が存在しない状態で染色された対照標本である。ボックスプロット（右）は、腫瘍（Ｔ）区域と非腫瘍隣接（ＴＡ）区域を対比するとＰＩ３Ｋシグナル伝達が区別され得る一方、非腫瘍隣接区域はＰＩ３Ｋシグナル伝達の類似性を示す可能性があることを示し、これは形態学的構造を伴うホスホプロファイリング（ｐｈｏｓｐｈｏｐｒｏｆｉｌｉｎｇ）情報の価値を示唆するものである。ペア間の有意な差はアスタリスクで表示される（ｐ＞０．０００１）。ｎｓは有意でないことを意味する。ｄ）乳房腫瘍標本において実証された多重スペクトルＰＰ−ＱＤアッセイの再現性。連続的に切除された患者の腫瘍中でのＰＰ活性が測定され、１日当たり３通りのスライドにＦＦＰＥ標本が作成され、３日連続で反復された。画像処理されたＲＯＩの数はスライド１枚につき７つであった。左の棒グラフは３日連続で測定されたホスホマーカー強度の正規化平均値を示す（ｎ＝１日当たりスライド３枚、スライド１枚当たり７つのＲＯＩ）。各ホスホマーカーの強度は、３日間にわたる該マーカーの最高平均強度値に対して正規化された。右の棒グラフは９枚の連続スライド（１日当たりスライド３枚、スライド１枚当たり７つのＲＯＩ）から測定されたホスホマーカーの絶対平均強度及び正規化平均強度のＣＶ％を示す。各ＲＯＩの平均強度は、各スライドにおける６つのホスホマーカーすべての合計強度に対して正規化された。 ＭＴＩＰのリン酸官能的プロファイリング及び再現性を示す図である。ａ）スペクトル画像処理向けのＲＯＩが、相当するＨ＆Ｅスライド（左上）により、病理学者が注釈を付けた乳房腫瘍中で無作為に取得される。左下の画像は、１つのＲＯＩからの６枚のアンミキシングされたホスホマーカー画像のオーバーレイを示す。ＲＯＩの６つのホスホタンパク質チャネルに相当する、アンミキシングされた画像が右側に示されている。スケールバーは５０μｍである。ｂ）１つのＲＯＩからのＨ＆Ｅ画像（左）、及びアンミキシングされた画像の３つのホスホマーカー（Ｈ＆Ｅ画像の右）は、腫瘍中の上皮領域及び間質領域における特徴的なホスホ発現（ｐｈｏｓｐｈｏｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ）パターンを表示する形で示されている。ｃ）ボックスプロット（左）は、ホスホプローブ（ｐｈｏｓｐｈｏｐｒｏｂｅ）標識が対照よりも高いＰＩ３Ｋシグナル伝達レベルを示すことを示す。５−ＣＡ、ｎ＝８つのＲＯＩである。Ｃは一次抗体が存在しない状態で染色された対照標本である。ボックスプロット（右）は、腫瘍（Ｔ）区域と非腫瘍隣接（ＴＡ）区域を対比するとＰＩ３Ｋシグナル伝達が区別され得る一方、非腫瘍隣接区域はＰＩ３Ｋシグナル伝達の類似性を示す可能性があることを示し、これは形態学的構造を伴うホスホプロファイリング（ｐｈｏｓｐｈｏｐｒｏｆｉｌｉｎｇ）情報の価値を示唆するものである。ペア間の有意な差はアスタリスクで表示される（ｐ＞０．０００１）。ｎｓは有意でないことを意味する。ｄ）乳房腫瘍標本において実証された多重スペクトルＰＰ−ＱＤアッセイの再現性。連続的に切除された患者の腫瘍中でのＰＰ活性が測定され、１日当たり３通りのスライドにＦＦＰＥ標本が作成され、３日連続で反復された。画像処理されたＲＯＩの数はスライド１枚につき７つであった。左の棒グラフは３日連続で測定されたホスホマーカー強度の正規化平均値を示す（ｎ＝１日当たりスライド３枚、スライド１枚当たり７つのＲＯＩ）。各ホスホマーカーの強度は、３日間にわたる該マーカーの最高平均強度値に対して正規化された。右の棒グラフは９枚の連続スライド（１日当たりスライド３枚、スライド１枚当たり７つのＲＯＩ）から測定されたホスホマーカーの絶対平均強度及び正規化平均強度のＣＶ％を示す。各ＲＯＩの平均強度は、各スライドにおける６つのホスホマーカーすべての合計強度に対して正規化された。 ＭＴＩＰは、ホスホマーカーの種類及び乳房腫瘍組織毎に、多様な範囲のシグナル伝達レベルを示す。ａ）５つの患者腫瘍からの代表的な腫瘍領域におけるホスホマーカー発現を示す例である。画像は強度比較のため、同等に処理された。スケールバーは５０μｍである。ｂ）ボックスプロットは、Ｉｎｄｕｖｉｍｅｄの患者５名における６つのホスホマーカーの平均強度を示す。ウィスカーは１〜９９パーセンタイルである。１つの腫瘍につきｎ＝８つのＲＯＩである。Ｃは一次抗体が存在しない状態で染色された対照標本である。ｃ）評価された乳房腫瘍の突然変異及び機能の特徴。Ｅｑは曖昧を意味し、不確実な診断を表す。 ＭＴＩＰは、ホスホマーカーの種類及び乳房腫瘍組織毎に、多様な範囲のシグナル伝達レベルを示す。ａ）５つの患者腫瘍からの代表的な腫瘍領域におけるホスホマーカー発現を示す例である。画像は強度比較のため、同等に処理された。スケールバーは５０μｍである。ｂ）ボックスプロットは、Ｉｎｄｕｖｉｍｅｄの患者５名における６つのホスホマーカーの平均強度を示す。ウィスカーは１〜９９パーセンタイルである。１つの腫瘍につきｎ＝８つのＲＯＩである。Ｃは一次抗体が存在しない状態で染色された対照標本である。ｃ）評価された乳房腫瘍の突然変異及び機能の特徴。Ｅｑは曖昧を意味し、不確実な診断を表す。 ＭＴＩＰは、ホスホマーカーの種類及び乳房腫瘍組織毎に、多様な範囲のシグナル伝達レベルを示す。ａ）５つの患者腫瘍からの代表的な腫瘍領域におけるホスホマーカー発現を示す例である。画像は強度比較のため、同等に処理された。スケールバーは５０μｍである。ｂ）ボックスプロットは、Ｉｎｄｕｖｉｍｅｄの患者５名における６つのホスホマーカーの平均強度を示す。ウィスカーは１〜９９パーセンタイルである。１つの腫瘍につきｎ＝８つのＲＯＩである。Ｃは一次抗体が存在しない状態で染色された対照標本である。ｃ）評価された乳房腫瘍の突然変異及び機能の特徴。Ｅｑは曖昧を意味し、不確実な診断を表す。 ＭＴＩＰは、乳房腫瘍中におけるＰＩ３Ｋネットワークシグナル伝達の不均一な空間分布を明らかにする。ａ）ｐＡＫＴ４７３チャネルの代表的なＨ＆Ｅ画像及び相当するスペクトルデータは、パネルｂにおいて黒色で概要が示されているクラスタマップの形態学的文脈を示す。ｂ）クラスタマップは固有のホスホ発現パターンを示し、これらは色分けされている。患者１名当たり８つのＲＯＩのホスホマーカー強度に平均シフトクラスタ分析アルゴリズムを適用することにより、クラスタマップが生成された（４つの代表的なＲＯＩが示されている）。ａ及びｂにおけるスケールバーは８０μｍである。ｃ）クラスタプロットは、各クラスタにおける６つのホスホマーカー強度の定量的測定結果を示す。患者毎に３つの代表的なクラスタプロットが示されている。各ホスホマーカーが占有する組織の面積は、クラスタ２−Ｃ１、２−Ｃ２、２−Ｃ６ではそれぞれ８５．１％、４．０９％、１０．６６％であり、クラスタ３−Ｃ１、３−Ｃ２、３−Ｃ５ではそれぞれ２６．６％、５４．６％、１．４３％であり、クラスタ４−Ｃ１、４−Ｃ２、４−Ｃ５ではそれぞれ９３．９％、３．８９％、１．４３％であり、クラスタ５−Ｃ１、５−Ｃ２、５Ｃ３ではそれぞれ９６．６％、３％、０．３６％である。ｄ）系統樹は５つの乳房腫瘍例（図４ａ）におけるネットワークシグナル伝達クラスタの階層型分布を示し、遺伝子型が同等であるクラスタのグループ化が散在性であることが分かる。面積が最大クラスタの１％未満であるクラスタは、系統樹分析に含まれない。各クラスタ名は腫瘍識別番号で表され、これにＣ１、Ｃ２、Ｃ３、といった形でクラスタ番号が続く。ＷＴは野生型、Ｃは対照を表し、対照は一次抗体が存在しない状態で染色されたＦＦＰＥ標本である。ＰＩＫ３ＣＡ及びＡＫＴ１の突然変異が生じたクラスタ、並びにＷＴ及びＣが色分けされている。 ＭＴＩＰは、乳房腫瘍中におけるＰＩ３Ｋネットワークシグナル伝達の不均一な空間分布を明らかにする。ａ）ｐＡＫＴ４７３チャネルの代表的なＨ＆Ｅ画像及び相当するスペクトルデータは、パネルｂにおいて黒色で概要が示されているクラスタマップの形態学的文脈を示す。ｂ）クラスタマップは固有のホスホ発現パターンを示し、これらは色分けされている。患者１名当たり８つのＲＯＩのホスホマーカー強度に平均シフトクラスタ分析アルゴリズムを適用することにより、クラスタマップが生成された（４つの代表的なＲＯＩが示されている）。ａ及びｂにおけるスケールバーは８０μｍである。ｃ）クラスタプロットは、各クラスタにおける６つのホスホマーカー強度の定量的測定結果を示す。患者毎に３つの代表的なクラスタプロットが示されている。各ホスホマーカーが占有する組織の面積は、クラスタ２−Ｃ１、２−Ｃ２、２−Ｃ６ではそれぞれ８５．１％、４．０９％、１０．６６％であり、クラスタ３−Ｃ１、３−Ｃ２、３−Ｃ５ではそれぞれ２６．６％、５４．６％、１．４３％であり、クラスタ４−Ｃ１、４−Ｃ２、４−Ｃ５ではそれぞれ９３．９％、３．８９％、１．４３％であり、クラスタ５−Ｃ１、５−Ｃ２、５Ｃ３ではそれぞれ９６．６％、３％、０．３６％である。ｄ）系統樹は５つの乳房腫瘍例（図４ａ）におけるネットワークシグナル伝達クラスタの階層型分布を示し、遺伝子型が同等であるクラスタのグループ化が散在性であることが分かる。面積が最大クラスタの１％未満であるクラスタは、系統樹分析に含まれない。各クラスタ名は腫瘍識別番号で表され、これにＣ１、Ｃ２、Ｃ３、といった形でクラスタ番号が続く。ＷＴは野生型、Ｃは対照を表し、対照は一次抗体が存在しない状態で染色されたＦＦＰＥ標本である。ＰＩＫ３ＣＡ及びＡＫＴ１の突然変異が生じたクラスタ、並びにＷＴ及びＣが色分けされている。 ＭＴＩＰは、乳房腫瘍中におけるＰＩ３Ｋネットワークシグナル伝達の不均一な空間分布を明らかにする。ａ）ｐＡＫＴ４７３チャネルの代表的なＨ＆Ｅ画像及び相当するスペクトルデータは、パネルｂにおいて黒色で概要が示されているクラスタマップの形態学的文脈を示す。ｂ）クラスタマップは固有のホスホ発現パターンを示し、これらは色分けされている。患者１名当たり８つのＲＯＩのホスホマーカー強度に平均シフトクラスタ分析アルゴリズムを適用することにより、クラスタマップが生成された（４つの代表的なＲＯＩが示されている）。ａ及びｂにおけるスケールバーは８０μｍである。ｃ）クラスタプロットは、各クラスタにおける６つのホスホマーカー強度の定量的測定結果を示す。患者毎に３つの代表的なクラスタプロットが示されている。各ホスホマーカーが占有する組織の面積は、クラスタ２−Ｃ１、２−Ｃ２、２−Ｃ６ではそれぞれ８５．１％、４．０９％、１０．６６％であり、クラスタ３−Ｃ１、３−Ｃ２、３−Ｃ５ではそれぞれ２６．６％、５４．６％、１．４３％であり、クラスタ４−Ｃ１、４−Ｃ２、４−Ｃ５ではそれぞれ９３．９％、３．８９％、１．４３％であり、クラスタ５−Ｃ１、５−Ｃ２、５Ｃ３ではそれぞれ９６．６％、３％、０．３６％である。ｄ）系統樹は５つの乳房腫瘍例（図４ａ）におけるネットワークシグナル伝達クラスタの階層型分布を示し、遺伝子型が同等であるクラスタのグループ化が散在性であることが分かる。面積が最大クラスタの１％未満であるクラスタは、系統樹分析に含まれない。各クラスタ名は腫瘍識別番号で表され、これにＣ１、Ｃ２、Ｃ３、といった形でクラスタ番号が続く。ＷＴは野生型、Ｃは対照を表し、対照は一次抗体が存在しない状態で染色されたＦＦＰＥ標本である。ＰＩＫ３ＣＡ及びＡＫＴ１の突然変異が生じたクラスタ、並びにＷＴ及びＣが色分けされている。 ネットワークシグナル伝達の定量的分析により、腫瘍突然変異によってグループ化されないホスホタンパク質発現の不均一性が明らかとなる。ａ）スペクトル画像処理に使用される腫瘍部位の連続切片からのＨ＆Ｅ画像。Ｈ＆Ｅ切片はスペクトル画像切片から４〜１６μｍ離れている。ｂ）スペクトル画像は、５つの個別のホスホマーカー層のオーバーレイを示す。スペクトル画像は、左図におけるＨ＆Ｅ画像と一致する位置にある。ｃ）クラスタマップは固有のホスホ発現パターンを示し、これらは色分けされている。間質含有率が高いクラスタは接尾辞「Ｓ」を有し、上皮含有率が高いクラスタは接尾辞Ｅを有する。患者１名当たり４つのＲＯＩのホスホマーカー強度に平均シフトクラスタ分析アルゴリズムを適用することにより、クラスタマップが生成された。ａ、ｂ、ｃ及びｄにおけるスケールバーは８０μｍである。ｄ）クラスタプロットは、５つのホスホマーカー強度の定量的測定結果を示す。患者毎に４つの代表的な主要クラスタプロットが示されている。各ホスホマーカーが占有する組織の面積は、クラスタ３７９−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ６では６０．１％、３２．９％、６．１５％、０．１５％であり、クラスタ３０７−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ４では８９．１％、９．７％、０．７６％、０．４７％であり、クラスタ３８４−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ４では４４．８％、４９．９％、４．９２％である。 ネットワークシグナル伝達の定量的分析により、腫瘍突然変異によってグループ化されないホスホタンパク質発現の不均一性が明らかとなる。ａ）スペクトル画像処理に使用される腫瘍部位の連続切片からのＨ＆Ｅ画像。Ｈ＆Ｅ切片はスペクトル画像切片から４〜１６μｍ離れている。ｂ）スペクトル画像は、５つの個別のホスホマーカー層のオーバーレイを示す。スペクトル画像は、左図におけるＨ＆Ｅ画像と一致する位置にある。ｃ）クラスタマップは固有のホスホ発現パターンを示し、これらは色分けされている。間質含有率が高いクラスタは接尾辞「Ｓ」を有し、上皮含有率が高いクラスタは接尾辞Ｅを有する。患者１名当たり４つのＲＯＩのホスホマーカー強度に平均シフトクラスタ分析アルゴリズムを適用することにより、クラスタマップが生成された。ａ、ｂ、ｃ及びｄにおけるスケールバーは８０μｍである。ｄ）クラスタプロットは、５つのホスホマーカー強度の定量的測定結果を示す。患者毎に４つの代表的な主要クラスタプロットが示されている。各ホスホマーカーが占有する組織の面積は、クラスタ３７９−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ６では６０．１％、３２．９％、６．１５％、０．１５％であり、クラスタ３０７−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ４では８９．１％、９．７％、０．７６％、０．４７％であり、クラスタ３８４−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ４では４４．８％、４９．９％、４．９２％である。 ネットワークシグナル伝達の定量的分析により、腫瘍突然変異によってグループ化されないホスホタンパク質発現の不均一性が明らかとなる。ａ）スペクトル画像処理に使用される腫瘍部位の連続切片からのＨ＆Ｅ画像。Ｈ＆Ｅ切片はスペクトル画像切片から４〜１６μｍ離れている。ｂ）スペクトル画像は、５つの個別のホスホマーカー層のオーバーレイを示す。スペクトル画像は、左図におけるＨ＆Ｅ画像と一致する位置にある。ｃ）クラスタマップは固有のホスホ発現パターンを示し、これらは色分けされている。間質含有率が高いクラスタは接尾辞「Ｓ」を有し、上皮含有率が高いクラスタは接尾辞Ｅを有する。患者１名当たり４つのＲＯＩのホスホマーカー強度に平均シフトクラスタ分析アルゴリズムを適用することにより、クラスタマップが生成された。ａ、ｂ、ｃ及びｄにおけるスケールバーは８０μｍである。ｄ）クラスタプロットは、５つのホスホマーカー強度の定量的測定結果を示す。患者毎に４つの代表的な主要クラスタプロットが示されている。各ホスホマーカーが占有する組織の面積は、クラスタ３７９−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ６では６０．１％、３２．９％、６．１５％、０．１５％であり、クラスタ３０７−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ４では８９．１％、９．７％、０．７６％、０．４７％であり、クラスタ３８４−Ｃ１、Ｃ２、Ｃ３、Ｃ４では４４．８％、４９．９％、４．９２％である。

Ｉ．略語及び定義
本開示の様々な実施例を再検討しやすくするため、略語及び特定の用語について以下の説明を記載する。

ＣＩＳＨ：発色性インサイチュハイブリダイゼーション
ＣＲＣ：結腸直腸がん
ＦＦＰＥ組織：ホルマリン固定パラフィン包埋組織
ＦＩＳＨ：蛍光性インサイチュハイブリダイゼーション
Ｈ＆Ｅ：ヘマトキシリン及びエオシン染色
ＩＨＣ：免疫組織化学
ＩＳＨ：インサイチュハイブリダイゼーション
ＮＢＦ：中性緩衝ホルマリン溶液
ＮＳＣＬＣ：非小細胞肺がん
ＰＩ３Ｋ：ホスファチジルイノシトール３−キナーゼ。ホスファチジルイノシトール−４，５−ビスリン酸３−キナーゼ、ホスファチジルイノシタイド３−キナーゼ、ＰＩ３−キナーゼ、ＰＩ（３）Ｋ、及びＰＩ−３Ｋともいう。

ＴＮＢＣ：トリプルネガティブ乳がん
被分析物：試料中において特異的に検出されることになる分子又は分子群。
被分析物結合体：被分析物に対して特異的に結合する能力を有するもの。被分析物結合体の例として以下が挙げられる：標的抗原に結合する抗体及び抗体フラグメント（一本鎖抗体を含む）；ＭＨＣ：抗原複合体に結合するｔ細胞受容体（一本鎖受容体を含む）；ＭＨＣ：ペプチドマルチマー（特定のＴ細胞受容体に結合する）；特定の核酸又はペプチド標的に結合するアプタマー；特定の核酸、ペプチド、及び他の分子に結合する亜鉛フィンガー；受容体リガンドに結合する受容体複合体（一本鎖受容体及びキメラ受容体を含む）；受容体複合体に結合する受容体リガンド、並びに特定の核酸に対してハイブリダイゼーションを起こす核酸プローブ。

抗体：本明細書における用語「抗体」は最も広義に使用され、様々な抗体構造を包含し、例としてモノクローナル抗体、ポリクローナル抗体、多特異的抗体（二重特異性抗体など）、及び抗体フラグメントが、望ましい抗原結合活性を示す範囲で挙げられるが、これらに限定されない。

抗体フラグメント：無傷の抗体においてその無傷の抗体に抗原を結合させる部分を含む、無傷の抗体以外の分子。抗体フラグメントの例としてＦｖ、Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆａｂ’−ＳＨ、Ｆ（ａｂ’）２；二重特異性抗体；線形抗体；一本鎖抗体分子（ｓｃＦｖなど）；及び抗体フラグメントから形成される多特異性抗体が挙げられるが、これらに限定されない。

抗ホスホ抗体：リン酸化されたタンパク質又はアミノ酸残基に結合するが、同じタンパク質又はアミノ酸残基の非リン酸化バージョンには結合しない抗体又は抗体フラグメント。抗ホスホ抗体の例として
・特定のリン酸化アミノ酸残基について特異的な抗体、例えばリン酸化ヒスチジン（抗ホスホＨｉｓ）、リン酸化セリン（抗ホスホＳｅｒ）、リン酸化トレオニン（抗ホスホＴｈｒ）、及びリン酸化チロシン（抗ホスホＴｙｒ）、並びに
・リン酸化アミノ酸を含有する特定の抗原について特異的な抗体、例えばセリン４７３においてリン酸化されたＡｋｔ（抗ホスホＡｋｔ（Ｓｅｒ４７３））；ＰＩ３
が挙げられる。

抗原：抗体分子又はＴ細胞受容体など、特定の体性免疫又は細胞性免疫の産物によって特異的に結合され得る化合物、組成物又は物質。抗原は例えばハプテン、単純中間代謝物、糖類（オリゴ糖など）、脂質、及びホルモンを含む任意の種類の分子のほか、複合糖質類（多糖類など）、リン脂質、核酸及びタンパク質など、巨大分子であってもよい。一般的な分類の抗原の例としてウイルス抗原、細菌抗原、真菌抗原、原生動物及び他の寄生性抗原、腫瘍抗原、自己免疫疾患、アレルギー及び移植片拒絶に関係する抗原、毒素並びに他の雑多な抗原が挙げられるが、これらに限定されない。一実施例において、抗原はγＰＧＡなど、バチルス抗原である。

ペプチド：用語「ペプチド」は、オリゴペプチド及びポリペプチドを含め、アミド結合によって一体的に結合された複数のアミノ酸の任意の配列を包含する意味で使用される。アミノ酸がアルファアミノ酸である場合、Ｌ光学異性体又はＤ光学異性体のいずれかを使用することができる。

オリゴペプチド：長さが２〜２０個のアミノ酸のペプチド。
ポリペプチド：長さが２０個のアミノ酸より長いペプチド。本明細書において使用される用語「ポリペプチド」又は「タンパク質」は、任意のアミノ酸配列を包含し、糖タンパク質など修飾後配列を含む意味で使用される。

翻訳後修飾：翻訳後のタンパク質における化学的修飾。これはタンパク質の生合成における後段階の１つであり、したがって多数のタンパク質について遺伝子発現に相当する。アミノ酸の翻訳後修飾は、タンパク質を他の生化学的官能基（酢酸塩、リン酸塩、様々な脂質及び炭水化物など）に結合させて、アミノ酸の化学的性質を変化させる（例えばシトルリン化）か、又は構造変化を引き起こす（例えばジスルフィド架橋の形成）ことにより、タンパク質の機能範囲を拡大する。酵素も、タンパク質のアミノ末端からアミノ酸を除去するか、又は中間でペプチド鎖を切断し得る。例えば、ペプチドホルモンであるインスリンはジスルフィド結合の形成後に２回切断され、プロペプチドが鎖の中間から除去される結果、タンパク質はジスルフィド結合によって接続された２つのポリペプチド鎖で構成される。また、最も早い発生期のポリペプチドはアミノ酸メチオニンから始まるが、これはｍＲＮＡ上の「開始」コドンがこのアミノ酸もコードするからである。このアミノ酸は通常、翻訳後修飾過程で除去される。他の修飾、例えばリン酸化は、酵素の活性化又は不活性化など、タンパク質の挙動を制御する一般的なメカニズムの一部である。

試料：ゲノムＤＮＡ、ＲＮＡ（ｍＲＮＡを含む）、タンパク質、又はこれらの組み合わせを含有する、対象者から取得される生体標本。例として末梢血、尿、唾液、組織生検、外科的標本、羊水穿刺試料及び剖検材料が挙げられるが、これらに限定されない。

特異的結合：特異的結合は、ある実体が試料中の１つの分子に対し、他の分子への結合を実質的に排除する範囲で結合する場合に発生する。例えば、ある実体は試料中の他の分子についての結合定数と比べ、少なくとも１０^３Ｍ^−１、１０^４Ｍ^−１又は１０^５Ｍ^−１大きい結合定数を有する場合、任意の分子に対して特異的に結合すると捉えることができる。

二温度固定法：本明細書において使用される用語「二温度固定法」は、まず組織試料を低温のアルデヒドベースの固定剤中に、組織試料を実質的に固定しなくても固定剤を組織全体にわたり十分に拡散させることができる期間にわたり浸漬させた後、高温のアルデヒドベースの固定剤中に、アルデヒドが組織試料を十分に固定させることができる期間にわたり浸漬させる、アルデヒドベースの固定剤を使用する固定手順を指す。

ピクセル：２次元格子パターン内で、該当する座標での試料のシグナル強度を表す数値に関連付けられる、規則的な間隔の座標。
ＩＩ．はじめに
腫瘍組織中の多様なバイオマーカーを特徴付け、腫瘍組織内及び腫瘍組織間における前記バイオマーカーの存在及びレベルの不均一性を測定することが可能であれば、患者の疾患状態に対して利用可能な標的療法を適切に選択するための重要な情報の提供に繋がる。適切な併用療法の開発及び選定は、再発防止においてさらに重要な要因となり得、組織中で主要なバイオマーカーの分布が異なる区域を識別及び測定することが可能であれば、併用療法を判定する上で重要な情報の提供に繋がる。

図１に記載のとおり、基本的なワークフローの基礎は細胞試料のデジタル化、可視化及び注釈付けにあり、続いて注釈付き視野におけるスペクトルデータセットの収集、続いてマーカーレベルのコンピュータ定量分析である。組織試料に適用可能な模範的ワークフローが図２に記載されている。本開示は、バイオマーカーの表現型不均一性に関係する重要な情報を得るための定量的多重化プラットフォームを拡大する、定量的顕微鏡法向けにデータを取得及び分析する新規の方法に関する。我々は、臨床試料はもとより、細胞下部及び組織配列においても、広い解剖学的区域にわたるバイオマーカーレベル及び不均一性の測定を可能にするワークフローを実現すべく、新規の方法と計器とを組み合わせた。

ＩＩＩ．試料
本方法及びシステムを使用できるようになる前に、対象の被分析物について検出可能に標識される試料を生成しなければならない。原則として、本方法及びシステムは、標識及び画像処理され得るどのような種類の細胞試料でも使用することができる。

模範的試料の例として、組織切片（ホルマリン固定パラフィン包埋組織試料又は凍結保存組織ブロックから生成されたものなど）、細胞塗抹標本（頸管スミアなど）、及び細胞懸濁物（ＣＹＴＯＳＰＩＮ遠心分離器などを使用してスライドに固定させたものなど）が挙げられる。

試料は全体的に、評価対象となる分子の詳細を保全する形で処理されるべきである。したがって、例えば複数のバイオマーカーのうち少なくとも１つを免疫組織化学によって測定する場合、検出されることになる被分析物の抗原性を排除する固定剤及び固定手順を避けるべきである。例えば、検出されることになる被分析物のうち１つが翻訳後修飾されたタンパク質（リン酸化タンパク質など）である場合、翻訳後修飾のパターンに加えられる変化が最小限で済むように試料を処理すべきである。翻訳後修飾に対するそうした変化を最小化又は排除するための模範的な処理方法が、例えば米国特許出願公開第２０１２−０２１４１９５Ａ１号、ＷＯ２００８−０７３１８７Ａ２、ＷＯ２００８−０７３１８７Ａ２、及びＬａｗｓｏｎ ｅｔ ａｌ．において開示されている。

特定の一実施形態において、試料はリン酸化タンパク質を含有するか、又は含有すると見られ、試料はアルデヒドベースの固定剤（ホルムアルデヒド、グルタルアルデヒド、グリオキサル、及びアクロレインなど）中に二温度固定法を使用して固定される。

二温度固定法における第１のステップは、試料の横断面の実質的に全体にわたる組成物の実質的に完全な拡散を可能にする上で効果的な条件下にて、組織試料を高濃度のアルデヒドベースの固定剤に浸漬することである。第１のステップにおける有効温度範囲は−２０℃超から少なくとも１５℃の範囲、好ましくは０℃超からより高い温度、より典型的には約１０℃の範囲、さらにより典型的には約１℃から約７℃の範囲である。実際の実施形態の場合、温度は典型的に約４℃であった。第１の処理ステップに要する期間は約１５分間から約４時間までの範囲、最も典型的には１５分超から約３時間の範囲で、良好な結果は典型的に約１．５時間から約２時間にわたり固定剤組成拡散ステップを実施することによって得られる。拡散時間を４時間以上にまで延長しても、有益な効果は全体的にほとんどなかったが、低温のホルマリン中に組織を残しておく時間を延長（例えば最長１４日間）しても全体的に処理に対して有害な影響はない。特に厚い組織、又は翻訳後修飾の損失に対して特に敏感な試料の場合、第１のステップでアルデヒド濃度を引き上げると、試料中への拡散率が上昇し得る。したがって、例えば、二温度固定法の第１のステップでは少なくとも１０％のホルマリンから約５０％のホルマリンを使用する。

二温度固定法における第２のステップでは組織を高温のアルデヒドベースの固定剤溶液中に、組織の形態又は組織に含有される被分析物の抗原性を損なうことなく架橋が可能な限り迅速に発生することが十分に可能な期間にわたり浸漬させる。第２のステップに付随する温度は典型的に周囲温度より高く、例えば約２２℃より高い。実際の実施形態の場合、温度は典型的に周囲より高い温度から少なくとも５５℃までの範囲、より典型的には約３５℃から約４５℃の範囲であるが、この温度範囲は比較的迅速な組織架橋を十分に可能にする架橋反応速度を引き上げるからである。しかし、温度が約５０℃を超えると、試料は概して劣化し始め、続いて起こる一定の組織学的反応に有害な影響を及ぼし得る。したがって、インサイチュハイブリダイゼーション、ＩＨＣ及び／又はＨ＆Ｅなど後続の画像処理ステップが効果的に進行できるよう、より高い温度及び期間が選択される。第２の処理ステップに要する期間は１５分超から少なくとも約５時間までの範囲、より典型的には少なくとも約１時間から約４時間の範囲、より典型的には約２時間から約３時間の範囲である。一部の実施形態において、第２の処理ステップは４５℃で１．５時間にわたり実施される。

二温度固定法についてより詳しくは、米国特許出願公開第２０１２−０２１４１９５Ａ１号（その全体が参照により本明細書に組み込まれる）に記載されている。
しかし、本方法及びシステムは、免疫組織化学、インサイチュハイブリダイゼーション、及び形態学向けの染色／標識（Ｈ＆Ｅ染色など）方法を含め、細胞中で対象の被分析物を標識する方法に対して敏感な如何なる試料にも適合するということが重視されるべきである。

試料は、対象の被分析物を検出し、好ましくは定量できるよう、可視化され得る。如何なる試料標識方法又はコントラスト生成方法でも使用することができ、例として免疫組織化学的方法、インサイチュハイブリダイゼーション方法（ＦＩＳＨ及びＣＩＳＨなど）、遺伝的に符号化されたレポーター（ＧＦＰ、ＹＦＰ、ＣＦＰなど）、又は構成的に蛍光性の成分などが挙げられる。

一実施形態において、対象の被分析物に対する被分析物結合体の特異的結合を十分に可能にする条件下で試料を被分析物結合体と接触させることによって、試料が標識される。被分析物結合体は検出可能標識で標識され、標識は被分析物結合体に直接（例えば共有付加により）付加され得るか、又は被分析物結合体について特異的である検出可能に標識された第２の実体に試料を接触させることによって適用され得る。好ましくは、検出可能標識は、測定されるシグナルの量と１つのピクセル内に存在する造影剤の量との間に一貫した関係が存在するという意味で、共局在化され、定量可能な場合、スペクトル又は他の物理的特徴に基づいて他のマーカー及び組織から分離可能である。標識のダイナミックレンジは、マーカーレベルの小さい変化を分解する上で重要な要因となり得る。標識のダイナミックレンジは、試料における標的分子レベルの変化を反映する形で確実に判定され得る強度の最小の増加又は減少を表し、ダイナミックレンジは標識システム及び画像処理システムの複合的ノイズによって制限される性能指数である。ダイナミックレンジが小さい場合、確実に測定可能な最小の数量と確実に測定可能な最大の数量との間の差も小さい。したがって、マーカーレベルの比較的小さい変化の識別が困難又は不可能となる。高いダイナミックレンジは、測定可能な最大値と測定可能な最小値との間に大きな差があることを意味する。したがって、小さい変化は、最も明るい値と比べ、確実に測定することができる。比較的高いダイナミックレンジを有する検出可能標識を使用することが好ましい。これらのパラメータを満たす模範的な検出可能標識の例として、半導体ナノ結晶（量子ドット）；ＦＩＴＣ、ＴＲＩＴＣ、ＣＹ３、ＣＹ３．５、Ｔｅｘａｓ Ｒｅｄ、ＣＹ５、Ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｉｎ、ポリマー系色素（例えばＵＳ８，３５４，２３９において開示されているものなど有機蛍光マーカー；発色団；吸光性染色剤；及びルシフェリンなど化学発光マーカーが挙げられる。

模範的な一実施形態において、被分析物について特異的な一次抗体が１つ又は複数の特異的なハプテンを含む標識方式が使用される。その場合、特定のハプテンについて特異的な検出可能に標識された二次抗体を使用して、一次抗体を検出可能に標識することができる。多種多様なハプテン−二次抗体のペアが存在することにより、伝統的な一次−二次抗体のペアリングよりも広範な、被分析物及び検出可能シグナルの多重化が可能となる。さらに、各一次抗体に複数のハプテンコピーを付加することができることから、伝統的な一次−二次抗体のペアリングと比べ、シグナル増幅を大幅に拡充することができる。模範的なハプテン−抗体の組み合わせは、例えば米国特許第７，６９５，９２９号、米国特許第８，６１８，２６５号、及びＷＯ２００８−０６３３７８において開示されており、各々の内容が参照により本明細書に組み込まれる。

本方法及びシステムの特定の一応用例は、キナーゼカスケードなど、シグナル伝達経路の活性化における不均一性の評価での応用である。したがって、一実施形態において、試料は複数の被分析物結合体で標識され、１つ又は複数の被分析物結合体は抗ホスホ抗体又はその抗体フラグメントなど、リン酸化タンパク質に対して特異的に結合する。

一実施形態において、抗ホスホ抗体は抗ホスホＨｉｓ、抗ホスホＳｅｒ、抗ホスホＴｈｒ、又は抗ホスホＴｙｒである。この実施形態は、総体的なリン酸化レベルの判定に特に有用である。別の一実施形態において、抗ホスホ抗体は特定のリン酸化タンパク質について特異的である。この実施形態は、任意のキナーゼカスケード経路又はそのような経路群における不均一性の判定に特に有用である。例えば、抗ホスホ抗体はＰＩ３Ｋ／ＡＫＴ／ｍＴＯＲの経路又はＲａｓ／ＭＡＰＫの経路に関係するリン酸化標的について特異的であってもよい。これらの経路が図３、１２及び１３に図示されている。一実施形態において、抗ホスホ抗体に関連する検出可能標識は半導体蛍光ナノ粒子（量子ドットなど）であり、そのシグナルはハイパースペクトル画像処理によって検出される。半導体蛍光ナノ粒子は強く安定した高輝度発光強度を示し、これを利用して、伝統的なＩＣアッセイにおける蛍光色素及び光ベース色素の制限を克服することができる（Ｗａｔｓｏｎ ｅｔ ａｌ．２００３；Ｂｒｕｃｈｅｚ ｅｔ ａｌ．２００５；Ｍｉｃｈａｌｅｔ，Ｘ，ｅｔ ａｌ．２００５）。半導体蛍光ナノ粒子は既に伝統的アッセイに勝っており、すなわち１）半導体蛍光ナノ粒子は感度を拡充し、単一及び少数のタンパク質分子を検出する能力があり、２）半導体蛍光ナノ粒子の高輝度及び離散的発光を使用して、組織中のタンパク質レベルをより正確に定量することができ、３）複数の着色半導体蛍光ナノ粒子を使用して、細胞及び組織中における複数のタンパク質群を同時に識別することができる（Ｆｉｃｈｔｅｒ ｅｔ ａｌ．２０１０；Ｓｃｈｏｌｌ ｅｔ ａｌ．２００９；Ｓｕｎｄａｒａ Ｒａｊａｎ ｅｔ ａｌ、２００６）。

ＩＶ．画像の取得及び注釈付け
本方法及びシステムは、対象の各被分析物の識別情報、位置及び強度に関するデータを含有する標識組織の画像に適用される。したがって、細胞試料の形態学的特徴を含有するデジタル画像が捕捉され、任意選択で対象区域（ＡＯＩ）について注釈付けされ、次いで対象の各被分析物に関連する各検出可能標識の識別情報、位置及び強度に関する多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータがＡＯＩから捕捉される。この分析のための基本的ワークフローの一例
Ａ．画像取得
形態学的画像をまず捕捉し、次いで注釈を付け、不均一性を評価されることになる１つ又は複数の対象区域（ＡＯＩ）を識別する。

有用な形態学的画像の一種は、屈折率コントラスト画像である。組織の屈折率を使用して解剖学的組織を十分な分解能で表示させることにより、分析用画像処理方法を使用して問い合わされることになる解剖学的目標物及び対象区域を識別することができる。解剖学的組織の概要は、任意の倍率で捕捉された多数の視野をタイル表示させることによって提供され、これにより、さらなる問い合わせのためのＡＯＩの選定が可能となる。組織の屈折特性及び散乱特性に基づいて、伝送される照明及びコントラストを使用することにより、エオシン染色に似た画像を表示させることができ、これを任意選択で実際のＨ＆Ｅ染色された連続切片と比較して、病理学を確認することができる。近ＩＲ域で伝送される照明の使用により、組織、対比染色剤又はレポーターに対する光傷害の最小化が確保される一方、十分に明るい照明により、スキャン画像を効率的に生成するための迅速な露出も可能となる。

屈折コントラストの使用に代わる手段は、組織構造を強調するための組織自己蛍光又は蛍光染色剤の使用と、蛍光組織切片と併せて登録済みの連続切片画像上でのＡＯＩの指定である。一部の例において、技術者はアイピースを介して直接、蛍光組織切片上で解剖学的目標物を簡単に見つけ、明視野を装備した別の顕微鏡で観察されるＨ＆Ｅ連続切片上で形態学を確認することができる。

Ｂ．画像の注釈付け
１．対象区域の注釈付け
形態学的画像は一旦収集された後、熟練の使用者（医師又は病理学者など）により、さらなる問い合わせのための１つ又は複数のＡＯＩを選定するために注釈が付けられる。ＡＯＩの境界はコンピュータにより、ステージ座標へと変換される。一実施形態において、ＡＯＩは画像全体に相当し得るか、又は画像の一部、例えば画像の中で一定の形態学的特徴を有する部分に限定され得る。画像の注釈付けに様々な基準を使用することができ、例えば、腺など解剖学的構造の認識又は上皮など細胞種別の認識を目的とする医学的訓練に基づいて注釈付けを行うか、あるいは腫瘍と基質との対比における差別化に基づいて区別を行うことができる。注釈付けは、セグメント化された細胞のテクスチャ特徴、形態学的特性の機械認識、観察中の線切片に登録された連続切片からのデータ、又はこれらの方法の組み合わせを使用して自動化することができる。一実施形態において、１つ又は複数のＡＯＩは解剖学的組織に基づいて選定される。

一実施形態において、特殊ビュアーを使用して、組織の形態学的画像に注釈を付ける。模範的なソフトウェアでは、屈折コントラストを使用して組織切片を画像処理し、暗視野画像として白黒で表示させるか、又は伝送照明下で観察するとエオシンに似た外観の色コントラストを提供する色検索表を使用して表示させることができる。このソフトウェアは、関連する形態学の認識を可能にする十分な詳細度で解剖学的特徴を可視化できるよう、組織切片のズーム及びパンが可能である。一部の例において、明視野で取得された染色連続切片の画像と併せて概要スキャンを登録するか、又は解剖学的組織と組み合わされた核対比染色の２色画像を提供するＤＡＰＩチャネル及び屈折コントラストチャネルなど、複数の色チャネルにおいて概要スキャンを取得することができる。ソフトウェアのユーザーインターフェースは、多重化マーカー向けにより高い分解能で画像処理されることになるＡＯＩを技術者が画定することを可能にする描画ツールを提供する。ソフトウェアは、画像及びＡＯＩを再ロードして編集することができるよう、これらのＡＯＩをファイルとして画像と一緒に記憶する手段を提供し、また画像の座標系からのＡＯＩの座標を実際のスライドが配置されるステージの座標系に変換する手段も提供する。ソフトウェアは、連続切片上で同種の特徴を手動又は自動で認識することによって１つの切片からのＡＯＩファイルを異なる連続切片に登録できるよう、組織画像上で基準を指定する手段も提供する。

２．視野の注釈付け
ＡＯＩを複数のＦＯＶに細分化して、ＦＯＶサンプリング格子を生成する。ＦＯＶサンプリング格子は、画像内で相互に比較可能な一連の代表的領域を設けるよう生成される。したがって、ＡＯＩ内で分析対象となる関連領域の代表的サンプルを捕捉する形で、ＦＯＶはＡＯＩ全体にわたり分布すべきである。

これを完遂し得る手段の１つは、ＡＯＩ全体にわたり偏りのない構造化されたサンプリングを提供するよう、規則的な間隔で配置された複数のＦＯＶから成る格子を自動又は手動で生成することである。計器操作者は、ＦＯＶがＡＯＩの１００％、又はより低い割合（例えば７５％のカバレージ、５０％超のカバレージ、２５％のカバレージ）をカバーするよう、カバレージの度合いを選択することができる。これは図４で図示されている。取得時間、分析時間及びコンピュータメモリ要件を低減しつつ、バイオマーカーのレベル及び空間分布の忠実な表現を導出するため、体系的無作為サンプリングの原則を使用して、広い領域を取得することができる。低めのカバレージを指定可能であることの利点は、プロセスの結果としてデータセットがより小規模となり、データセットをより迅速に取得できることである。また、ＦＯＶからのみスペクトルデータを取得する場合、照明に対する組織の露出面積が小さくなることから、既に画像処理済みの区域間に散在する区域の再画像処理が可能となる。これはレポーターの光退色が問題である場合に特に有益である。ＡＯＩ全体を正確に表現するために十分なカバレージ率を選定すべきである。

これを完遂し得るもう１つの手段は、ＡＯＩ内で特異的な一連の形態学的特徴を有する各領域にＦＯＶを割り当てることである。例えば、ＦＯＶを有核細胞のみ、腫瘍組織内の管状領域のみ、組織試料中の腫瘍性領域のみ、などに一致する形で選定することができる。特定の形態学的特徴に一致するＦＯＶは熟練の使用者により手作業で選定され得るか、又はＰａｒｉｍｉ ｅｔ ａｌ．及びＮｇｕｙｅｎ ｅｔ ａｌ．において開示されているような自動化された形態学的分析に基づいて選定され得る。

ＦＯＶサンプリング格子は自動生成される場合であっても、使用者の要望に応じてＦＯＶを追加又は削除する形で手動で監査することができ、これはスペクトルデータ取得の前でも後でも行うことができる。

一般的に、ＦＯＶと一緒にＡＯＩを選定し、組織領域のサンプリングを行うことが有利であり、これにより処理及び記憶するデータの総量が減り、コンピュータ処理経費が減り、ＡＯＩ全体にわたる発現分布をモデル化するためのデータが十分に得られる。

一実施形態において、形態学的画像及びスペクトルデータの双方を、注釈付けの前に画像全体について補足することができる。あるいは、各ＡＯＩからのみ、スペクトルデータを収集してもよい。さらに別の選択肢として、各ＡＯＩ内の１つ又は複数の視野（ＦＯＶ）からのみ、スペクトルデータを収集してもよい。

Ｖ．データセットの生成
ＡＯＩ内のＦＯＶ毎に複数の画像スタックを含むデータセットに、ＦＯＶからのデータを整理して入れ込む。

Ａ．スペクトルデータの収集
ＡＯＩ内でＦＯＶが選定されると、多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータが各ＦＯＶから収集される。このデータは新たに（すなわちＦＯＶ選定後にスペクトルデータを収集することにより）収集されるか、又は収集済みのスペクトルデータセットからＦＯＶ選定後に抽出され得る。次いで検出可能マーカーシグナルが、収集された多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータからコンピュータ処理によりセグメント化される。

スペクトル画像同様、空間の２つの次元でスペクトルデータを取得するための一般的戦略が３通りある。第１の戦略は、例えばＣＣＤカメラ又はＣＭＯＳカメラなどアレイ検出器など、検出器によって画像処理されることになるスペクトルの限定的帯域をフィルタ処理することである。カメラはこのスペクトルの限定的帯域内で生成された画像を収集し、次いでフィルタ帯域がスペクトルの隣接領域へと変更され、このプロセスが繰り返される。このプロセスは、所望のスペクトル範囲を表す画像の生成が完了するまで続く。これらの画像は空間の２つの次元と併せて１つのスタックに統合され、第３の次元がスペクトル次元である。第２の戦略は、標本から戻ってくる光の経路内の分散素子が基軸である。分散素子、例えばプリズム又はグレーチングが光のスペクトル成分を空間的に分離する。通過して検出器に至る光の特定の帯域を選定するために開口部が使用されるか、又は代替的に、後でＣＣＤなど２次元検出器の第２次元にわたり分散されることになる画像区域の薄いスライスを選定するために開口部が使用され得る。各画像の取得後に標本又は開口部を動かして、２次元区域を表す画像のスタックを、第３のスペクトル次元と併せて徐々に構築することができる。スペクトル画像を取得するための第３の方法は、試料から検出器に至る光路内でサニャック干渉計又はマイケルソン干渉計を使用することである。任意の経路長で干渉計向けに取得される画像は事実上、２次元インターフェログラムである。多数のインターフェログラムが様々な経路長で個別に取得され、これらは３次元配列へと統合された後、フーリエ変換される結果、空間の２次元と併せて画像スタックが生成され、強度値は第３次元における波長の関数としてマッピングされる。模範的なスペクトル画像捕捉方法についてはＧａｒｉｎｉ ｅｔ ａｌ．２００６で論じられている。

用語「ハイパースペクトル」及び「多重スペクトル」は重複する部分があり、取得によって達成されるスペクトル分解能の度合いによって区別される。原則として、用語「ハイパースペクトル」は可視範囲にわたり少なくとも２０ｎｍの分解能で連続的なスペクトルサンプリングを生成する様式を指す。多重スペクトル捕捉は、可視範囲にわたり不連続な２つから４つ程度のスペクトル帯の捕捉を指すと考えられる。

一実施形態において、多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータは単一の組織深度又は複数の組織深度で収集される。複数の組織深度でデータを捕捉すると、組織の厚さを通過する捕捉と、軸方向の色収差（標本中の様々な深度で色が集束するようになること）の軽減が確保される。あるいは、色収差を補正するために標本中の複数の深度での同時捕捉を可能にする、多焦点捕捉装置を採用してもよい（Ｇａｒｓｈａ ｅｔ ａｌ．２０１１）。

図５は、特定のＦＯＶにわたりスペクトルデータを取得する一例を示す図である。ＡＯＩをカバーするＦＯＶサンプリング格子の座標はデジタル注釈付けから判定され、これらの座標におけるスペクトルデータキューブの取得を自動化するために使用される。任意のＦＯＶで複数の面から取得されたスペクトルデータは、シグナル層のスペクトルアンミキシング向けの入力を提供する３Ｄデータセットを提供する形で投影される。

スペクトルデータの取得後、被分析物チャネルがアンミキシングされる（デコンボリューション処理される）ことにより、標準化された照明条件及び露出条件下で捕捉されたとおりに各マーカーの染色強度を表す純粋な被分析物チャネル画像が提供される。これを行うための模範的方法がＬｅｔｔ ｅｔ ａｌ．２００８、Ｇａｒｉｎｉ ｅｔ ａｌ．２００６、Ｇａｒｓｈａ ｅｔ ａｌ．２０１３において開示されており、各々の内容が参照により本明細書に組み込まれる。対象の染色剤各々からシグナルを分離するプロセスは、未処理データの取得後、未処理データの記憶の前又は後、随時発生し得る。

ＡＯＩ内の各ＦＯＶは、ＡＯＩについて視野がさらなる分析向けにグループ化されるような形で（例えば画像データベース、又は専用ディレクトリ構造に）収集及び記憶される。理想的には、データを整理すると単一のＡＯＩからの視野間の比較、共通の組織切片のＡＯＩ間の比較、ある組織切片からの全部又は一部のＡＯＩと別の組織切片からの全部又は一部のＡＯＩとの比較及びその他、研究者にとって有用な情報を提供し得る置換のため、視野のグループ化が可能となる。一実施形態において、前記多重スペクトルデータ及び／又は前記ハイパースペクトルデータは、患者、アッセイ、生検、切片、ＡＯＩ位置及び／又はＦＯＶ位置に対するメタデータ特性と併せて、ネスト化されたデータ構造又はデータベースに自動記憶される。

Ｂ．データセットの作成
次のステップは、データセットに含まれることになる個別のＦＯＶ又はＡＯＩ全体の選定である。本明細書において用語「データセット」は、異なる「データセット」との比較を目的にグループ化される、取得された複数の視野から成る１つの群を表す意味で使用される。これは１つの腫瘍区域からの視野を同一組織の正常区域からの視野と比較するか、又は１つの腫瘍からの複数の視野から成る１つの群を同じ患者からの異なる腫瘍からの複数の視野からなる１つの群と比較するか、又はある患者からの腫瘍からの複数の視野からなる１つの群を異なる患者からの腫瘍からの複数の視野から成る１つの群と比較するためのグループ化が関係し得る。別の例として、マイクロアレイのコア毎に取得された視野を相互に比較するためのグループ化、あるいは複製コアらの視野を複製コアから成る他の「データセット」と比較するためのグループ化が挙げられる。データ分析向けに視野をこのように柔軟にグループ化すると、マーカー発現の比較を腫瘍間、腫瘍内、患者間、患者内、処置群に応じた複数の患者、マイクロアレイのコア間、といった様々なレベルで行うことができる。

取得された複数の視野のセットをこのようにグループ化することを可能にするには、取得データの整理が必要であり、これはＯＭＥＲＯサーバーなどリレーショナルデータベースによって円滑化され得る（Ａｌｌａｎ ｅｔ ａｌ．、２０１２）。リレーショナルデータベースを使用すると、取得データを様々な形でグループ化して、腫瘍内、腫瘍間又は患者間での発現パターンの比較分析が可能となる。画像データベース技術へのインターフェース接続により、将来の開発に向けた拡張性、並びに多重モード画像データ、データマイニング、メタデータ、及び他の分析方法からのデータ向けの集中型リポジトリが可能となる。理想的には、データベース技術はｎ次元画像データ及び関連するメタデータ（画像座標、計器パラメータ、ｚ面、各層の波長チャネル、光学的構成設定、露出時間、照明レベル及びその他、ＦＯＶなど関連する注釈付け）を含め、不均一なデータを記憶する能力を有する。データベースのデータモデルも、ＡＯＩ、腫瘍、切片、患者など、比較のためのメタデータパラメータに基づくデータのリンク付けのグループ化を可能にするはずである。データベース及び関連するアクセス可能性層は、コンピュータネットワーク経由での大型データセットへの分散型アクセス、及び取得物からの大型画像データの効率的なアップロードを可能にするはずである。これら及びその他、ｎ次元画像のデータベース化に望ましい特徴についてはＡｌｌｅｎ ｅｔ ａｌ．（２０１２）で論じられている。

図６は、自動化された多重モードスペクトルデータ取得をリレーショナルデータベース及び可視化ソフトウェア及び分析ソフトウェアと組み合わせた模範的実施形態を示す図である。遠隔データベースは高帯域ネットワーク経由で接続され、ＶＡＩＳソフトウェアはデータベースに遠隔アクセスし得るクライアントの役割を果たすことができる。このように、ＶＡＩＳ Ａｎａｌｙｓｉｓソフトウェアは、実験向けに取得済みの特定のデータセットをアップロード又は読み出すことができる。ＶＡＩＳソフトウェアは、実際のアップロードされた画像データに対する様々な関連メタデータパラメータのリンク付けを可能にするプロトコルを使用して、データベースと通信するよう構成設定される。そのようなメタデータパラメータの例として、特定のプロジェクト及び実験者の識別情報、並びに機密データへのアクセス制限に使用されるパスワード保護された認証情報が挙げられる。集中型リポジトリの使用により、大型で複雑なデータセットを効率的に記憶し、これに物理的所在地の異なる複数の研究者が遠隔アクセスすることができる。データベースインターフェースは、複数の波長、複数のｚ面、複数のＦＯＶ、複数のＡＯＩ、複数の組織切片、複数の生検、複数の患者など、多数の次元及びメタデータタグから成る非従来型のネスト化データの整理の複雑さをカプセル化する。これに対し、データはシークエンシング又は質量分析など直交研究からの関連データであってもよいが、そのようなデータを従来型のファイル形式及びディレクトリ構造を使用して整理しておくことは非効率的で厄介な作業となり得る。

さほど望ましくはないが、視野を柔軟にグループ化する能力は、強固なディレクトリ構造、並びに分析に含まれることになるファイル及び被分析物のリストを作成する専用ソフトウェアブラウザを手段として達成することもできる。実施例のＶＡＩＳ Ａｎａｌｙｓｉｓソフトウェアは、データベースクライアント能力と、ディレクトリ構造に基づいてデータを整理する能力の双方を提供する。ディレクトリ構造に基づいてデータを整理する場合、ブラウザインターフェースは、共通グループ化されるファイル種別（例えばｔｉｆｆ画像、又はテキスト画像層）を認識しなければならない。我々の実施例は、取得ディレクトリをブラウズし、データセットへの包含対象となるＦＯＶディレクトリ又は個別の画像ファイルを選定する能力を提供する。ＦＯＶのセットは、統合されることになる様々な取得ディレクトリから選定することができる、関連するアンミキシングされた被分析物層は画像データディレクトリ内で認識され、またチェックボックスに基づいて、１つのデータセットにグループ化された任意のＦＯＶのセットについて見つかった被分析物層画像のリストに含まれ得る（又は含まれない）。ソフトウェアインターフェースはそれ自体、データセットを表す一連のリストを作成し、このリストには被分析物層別にグループ化された、データセット内の各画像ファイルへのパスとしての関連情報が含まれる。これらのリストを使用して個別のファイルを開き、それらを処理及び分析向けの単一のデータ構造へとメモリ内で統合することができる。

Ｃ．特徴のセグメント化
データセット内のフィールド毎にアンミキシングされた染色剤チャネルをさらに、任意選択で自動的にセグメント化して、形態学的特性（サイズ、形状）又は光度特性（シグナル強度範囲）に基づいて対象の特徴を選択することができる。特徴の自動選定により、強度範囲、サイズ及び形状の制約に基づいて構造を分析から除外することが可能となる。これは背景の染色及びノイズが分析に及ぼす影響を最小限に抑える上で役立つ。これらのセグメント化はデータセットの一部として持続し、また専用ビュアー内でデータセットを開き、セグメント化パラメータを変更することにより、再セグメント化及び上書きすることができる。

図７は、一定の特徴が自動特徴選定に基づいて既に除外された、模範的画像を示す図である。特徴を識別及び選別するため、ＶＡＩＳソフトウェアはまず、構成設定として提供された指定の強度範囲内に該当するピクセルを識別する。次のステップで、ソフトウェアは強度ウィンドウ内の各ピクセルが強度ウィンドウ内の他のピクセルと接触しているか否かを識別する。あるピクセルが他のピクセルと接触している場合、これらのピクセルは複数のピクセル座標から成る１つのオブジェクトにグループ化される。オブジェクトの境界は、指定の強度ウィンドウの範囲外にピクセルが該当する点によって定義される。次に、ソフトウェアは各オブジェクト内のピクセル数を確認してピクセル区域を判定し、このピクセル区域を、設定において指定された区域サイズに対する限度と比較する。指定されたサイズ範囲よりも大きいオブジェクト又は小さいオブジェクトが識別され、これらはさらなる分析に含まれることになるオブジェクトのリストから除外される。これはサイズ及び強度の制約に基づく単純な例であるが、真円度又は長さなど形態学的制約が選定プロセスの一部として含まれることもあり得る。この種のセグメント化は、核など関連する解剖学的特徴、又は異なる細胞腫別の選定を自動化するための基礎を形成する。

図８は、特徴セグメント化パラメータを設定するための模範的ユーザーインターフェースを示す図である。この例では自動特徴選定のオン又はオフを切り替えるチェックボックス、また選択されたオブジェクト（緑色）及び除外されたオブジェクト（赤色）の概要が可視色で分かるチェックボックスもある。強度範囲を選定する場合、使用者は指定された上限よりも明るいピクセルを除外するアプローチか、又は指定された限度よりも明るいすべてのピクセル値を単純にリセットして限度値にするアプローチを選ぶことができる。使用される強度限度は可視化設定によって定義するか、又は標準化された強度閾値の使用によって限度を表示と異なるよう設定することができる。流域セグメント化を可能にする機能も用意されている。流域セグメント化は、接触している複数の構造を分離すると考えられるオブジェクトの細分化に使用され得る。例えば、複数の細胞が近接してパックされている場合、境界付近で目に見える強度変化が発生し得るが、細胞は接触していることから、単一のオブジェクトと見なされることになる。流域セグメント化は、複数の細胞をもっともらしい別々のオブジェクトに分割するために使用されるアルゴリズムである。インターフェースには、下流分析に含まれることになる特徴について、サイズ範囲の限度を設定する機能が用意されている。最後に、強度ウィンドウ内でピクセルが他のピクセルと接触しているか否かを判定するためのパラメータがある。４箇所接続状態判定は単に、試験対象ピクセルの四方のいずれかが他の明るいピクセルと接触しているかどうかをチェックするのみである。８箇所接続状態判定も同じく、試験対象ピクセルの角が他の明るいピクセルと接触しているかどうかをチェックする。

セグメント化された特徴は技術者によってさらに、分析対象となる特徴に目印を付ける注釈付けツール付きの専用ビュアーを使用して編集することができる。例えば、技術者は視野内の腺区域内の細胞のみ含め、間質細胞は含めないことを希望し得る。あるいは、技術者は分析から除外されることになる区域を指定し得る。一例として、技術者は壊死区域を如何なる下流分析からも除外するよう指定することを希望し得る。その後、これらの注釈付け及びセグメント化はデータセットの一部として持続し、また他の技術者が適切な許可を得て専用ビュアーを使用してデータセットを開き、編集することができる。この実施化において使用されるＶＡＩＳ Ａｎａｌｙｓｉｓソフトウェアは、この種の可視化及び注釈付けの能力を多重データ向けに提供するソフトウェアの一例である。

図９は、セグメント化された特徴を手動で編集するための模範的ツールを示す図である。このツールは、ビュアー内の画像に領域を直接描画する能力を提供する。ブール型（「ａｎｄ」、「ｏｒ」、「ｎｏｔ」）の選択により、描画された領域は、分析に明示的に含まれることになる区域、又は分析に明示的に含まれない区域を指定し得る。例えば「Ａｎｄ」型のＦＯＶには、描画されたＦＯＶの内部にある区域及び既に包含対象として自動的にセグメント化された内部区域がすべて含まれることになる。言い換えれば、自動特徴選定に含まれないほど小さい特徴はやはり、分析から除外されることになる。「Ｎｏｔ」型のＦＯＶは、指定されたＦＯＶ内の如何なる特徴も下流分析から除外することになる。「ＯＲ」型のＦＯＶには、指定されたＦＯＶ内の区域全体のほか、既に自動選定された区域のうちＦＯＶ外の区域も含まれることになり、この意味で、これは領域を分析対象として含めるための、自動セグメント化に優先するメカニズムである。ＦＯＶは作成後、対象のＦＯＶを選定するドロップダウンリストの使用、続いてＦＯＶの頂点の編集又はリストからのＦＯＶの削除によって、削除又は編集することができる。ＦＯＶを手動で指定することにより、技術者は対象区域内の自動特徴セグメント化を無効にして、関連する解剖学的領域を分析に含めるか、又は分析から除外することができる。ＦＯＶは作成後でも編集又は削除することができる。状況に応じて異なる種類（「Ａｎｄ」、「ＯＲ」、「ＮＯＴ」）のＦＯＶを追加することができ、また異なる種類のＦＯＶをネスト化することができる。ＦＯＶは「データセット」の説明における持続的要素となる。様々な分析要件について、後続の編集セッションにおいてデータセットを開き、ＦＯＶの再検討及び編集を行うことができる。

ＶＩ．クラスタ分析
細胞又は組織の試料中における不均一性を判定するため、任意選択でセグメント化されるデータセットにクラスタ分析が適用される。前述のデータセットオブジェクトは、分析に含まれる視野、分析に含まれる被分析物、及び各視野のうち含まれる区域（セグメント化された特徴及び注釈付け）に関する情報を包含する。

図１０は、クラスタ化分析を実施するための模範的ワークフローを示す図である。
分析向けデータセットは不均一性分析インターフェースにロードされ、ＦＯＶ毎の各被分析物が画像「スタック」（３Ｄアレイ）にロードされる結果、ｘ軸及びｙ軸が空間座標を表し、ｚ軸は１つ又は複数の層を包含し、各層は別々の被分析物マップを表す。模範的な分析が図１１で図示されている。使用者により設定されるパラメータは、ｚ軸の層内のピクセルが中央値フィルタ処理されて任意の足跡区域にわたりシグナルを均一化するか、又は任意の足跡区域にわたりシグナルが平均化されるかを制御する。これらのパラメータは、クラスタアルゴリズムに入力される各「ピクセル」又は単位区域のサイズを決定付ける。例えば、細胞のサイズに合わせた領域が複数のグループへとクラスタ化されるよう、細胞のサイズとおおよそ同等の足跡にわたり、シグナルを均一化することが望ましい場合がある。各ＦＯＶ画像スタックは、ｘ軸又はｙ軸いずれかの端部に位置する従前の画像スタックに付加される結果、視野はタイル化され、ＡＯＩ全体を表す大型のｘ，ｙ，ｚ画像となる。各被分析物の視野がロードされるにつれ、包含対象として既に選定済みのＦＯＶはそのまま残され、他の区域はゼロの値に設定される。

非監視型、ノンパラメトリックのクラスタ化アルゴリズムが画像スタックに適用されることにより、発現パターンが同等である区域が「クラスタ」へとグループ化される。好ましくは、かなり大型のデータへのスケーリングが可能で、想定を最小限に抑えることができ、入力パラメータがなるべく少ないクラスタ化アルゴリズムが使用される。加えて、１から多数の被分析物までスケーリング可能と予想され、連続的スケールの範囲に及ぶ単一又は複数の被分析物強度値を使用し、被分析物毎に値の分布形状が異なり得る、発現パターンを見出すクラスタ化アルゴリズムを有することが好ましい。

一実施形態において、クラスタ化アルゴリズムはＤＢＳＣＡＮ（Ｅｓｔｅｒ ｅｔ ａｌ．１９９６、参照により本明細書に組み込まれる）、親和性伝播（Ａｆｆｉｎｉｔｙ Ｐｒｏｐｏｇａｔｉｏｎ）（Ｆｒｅｙ＆Ｄｕｅｃｋ、２００７、参照により本明細書に組み込まれる）、及び平均シフト（Ｍｅａｎ−Ｓｈｉｆｔ）（Ｃｏｍａｎｉｃｉｕ＆Ｍｅｅｒ、２００２及びｈｔｔｐ：／／ｅｆａｖｄｂ．ｃｏｍ／ｍｅａｎ−ｓｈｉｆｔ／、参照により本明細書に組み込まれる）から成る群から選択される。

一実施形態において、多重マーカー発現の類似性についてのカットオフが、分布のカットオフを表すパラメータ（「帯域幅」という）を通じて指定される。帯域幅は結果におけるクラスタ数に影響を及ぼす。一実施形態において、使用する帯域幅を判定するために帯域幅推定器関数が適用され、帯域幅推定器関数が取る入力は、サンプリング対象となるピクセルの数と、分位パラメータである。帯域幅推定器は画像から複数の領域のサンプリングを行い、サンプル及び分位（０から１の範囲で、０．５はサンプル値間の一対差の中央値である）から帯域幅を判定する。これにより、クラスタのメンバー間において、より高い類似性を強制するか、又は比較的低い類似性を許容するよう、クラスタ化アルゴリズムを調整できるようになるが、「高い」及び「低い」類似性の閾値はサンプル自体から判定される。分位点を高めに設定すると、クラスタのメンバーについてより高い類似性を強制し、これは概してクラスタが増える結果となり、各クラスタにおいて類似性がより高いメンバーが少なくなる。

クラスタ化アルゴリズムへの入力は、タイル化されたデータセット画像スタックであり、出力はｘ，ｙアレイであるが、ｘ座標及びｙ座標は入力されたタイル化画像スタックの空間座標を表し、各ｘｙ位置での値は任意のピクセルが属するクラスタを示す標識である（クラスタ出力アレイ）。したがって、例えばクラスタ出力アレイにおいて、アルゴリズムによってセグメント化されたクラスタの数に応じて、値が「１」のピクセルはクラスタ１番に属し、値が「２」のピクセルはクラスタ２番に属する、といった形になる。

クラスタ化アルゴリズムのクラスタ出力アレイは、各クラスタによって占有される区域の相対割合に関するヒストグラムの生成により、さらに詳しく分析することができる。ヒストグラムは、各クラスタに属するピクセル数を数え、ｘｙタイル化アレイ内の総ピクセル数で割ることによって判定される。これにより、データセット内の区域全体に占める割合が分かり、これを棒グラフ化することにより、どのクラスタが最大かを示すことができる。

クラスタマップは、クラスタ出力アレイ内の各クラスタに色を割り当て、コンピュータ画面に表示させることによって作成することもできる。このように、クラスタ「０」に付随するピクセルを白い区域として表示させ、クラスタ「１」に付随するピクセルは赤色、クラスタ「２」に付随するピクセルは黄色、といった形で表示させることができる。クラスタマップ、及び被分析物画像の配色オーバーレイを、専用画像ビュアーの交互のウィンドウに配置して、様々なクラスタの空間領域を様々なマーカーの相対的発現レベルと比較することができる。クラスタマップは、解剖学的文脈で多重化されたバイオマーカーについて、発現又は活性化のパターンが同等の区域及び異なる区域を効果的に識別する。このように、発現又は活性化が異なる区域間の関係を容易に可視化することができる。

加えて、クラスタ出力アレイを使用して、タイル化された入力画像スタック上の区域をセグメント化し、クラスタ区域内の「ピクセル」（単位区域）毎に各被分析物の値を測定することができる。このように、任意のバイオマーカーにおける強度値（発現レベル又は活性化に比例する）の分布を、クラスタ単位の形で被分析物毎にボックスプロット（図１１）を使用してプロット化するか、あるいは各被分析物を表す列と、各ピクセル又は単位区域を表す行で構成されるスプレッドシートに記憶することができる。この能力により、発現に関する個別のクラスタにおけるバイオマーカーレベルの報告が可能となり、異なるクラスタ間での発現レベルの比較が容易になる。

ＶＩＩ．シグナル伝達経路分析への適用
細胞は受容体を経て膜で化学シグナル及び環境シグナルを受容し、これらのシグナルはタンパク質リン酸化カスケードを経て中継される。このシグナル伝達は、刺激に対する応答として細胞挙動を変化させる形で遺伝機構を制御する。各経路は様々な生物学的結末に影響を及ぼし得る。これらのシグナル伝達経路の異常調節は、外部刺激がそれ以上必要でなくなる原因となり得、病理学的異常やがんの発達を引き起こし得る。したがって、腫瘍形成に関わるシグナル伝達経路を対象とする多数の標的化治療が開発され、臨床試験を経てきた（表１及び２）。

本明細書において開示される画像分析技法を使用して細胞試料（腫瘍試料、細胞株、及び細胞塗抹標本など）を分析すると、クラスタとしてセグメント化される区域は一部のマーカーについて発現、リン酸化、又は活性化のレベルが顕著に異なる場合があり、これは本ツールが開発される以前は容易に定量又は伝達することができなかった。したがって、固体腫瘍組織及び細胞調製物におけるタンパク質の活性化又は修飾（リン酸化などによる）及び／又は転写因子発現、局在化及び／又は転座に関する多重化プロービングによって示されるとおり、不均一なパターンを分析することができる。この新規の能力は、次世代のコンパニオン診断の継続的開発、新たな治療剤の活性のメカニズムの理解、及び予後アッセイの開発に有用である。

一実施形態において、腫瘍中におけるシグナル伝達経路の活性化状態に応じて腫瘍を特徴付ける方法が開示され、該方法は本明細書において開示される細胞試料中での不均一性を検出及び記述する方法のうちいずれかに従って腫瘍試料の画像を分析するステップを含み、シグナル伝達経路に関連する複数の被分析物が検出可能マーカーで標識される。マーカーのうち少なくとも１つ（好ましくは複数のマーカー）は、シグナル伝達経路に関連する被分析物の特定の生理学的状態について特異的である被分析物結合体で標識される。したがって、例えば、抗ホスホ抗体を使用して、シグナル伝達経路に関係するリン酸化された形態のタンパク質を特異的に標識することができる。一部の実施形態において、リン酸化はタンパク質の活性化を意味する（Ｓ６リボソームタンパク質のリン酸化など）。他の例では、リン酸化はタンパク質の不活性化を意味する（Ｃ末端Ｓｒｃキナーゼ（Ｃｓｋ）によるＳｒｃチロシンキナーゼのリン酸化、又はＡｋｔによるグリコーゲン生成酵素キナーゼ３（ＧＳＫ−３）のリン酸化など）。さらなる模範的な一実施形態において、標識は半導体蛍光ナノ粒子（量子ドットなど）であり、そこからのシグナルがハイパースペクトル検出を使用して検出される。

ＶＩＩＩ．実施例
本明細書に記載の画像分析方法及びシステムを例示するため、６つの抗ホスホ抗体−量子ドット共役対が一団として多重化向けに開発した。これらはＰＩ３Ｋシグナル伝達経路における５つのエフェクター成分（ｐＡＫＴ４７３、ｐＡＫＴ３０８、ｐＰＲＡＳ４０、ｐＳ６、ｐｅＩＦ４Ｇ）、及びＰＩ３Ｋシグナル伝達とのクロストークに関係する経路であるＭＡＰＫシグナル伝達経路における１つの出力エフェクター成分（ｐＥＲＫ）から成る。

Ａ．抗体及びバイオコンジュゲーション
表３は、本研究で使用したすべての一次抗体のリストである。一次抗体はすべて、Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（マサチューセッツ州ダンバーズ）から、ＢＳＡアジド不使用製剤として購入した。

ＷＯ２００８−０６３３７８Ａ２に記載のとおり、一次抗体のハプテンバイオコンジュゲートを開発し、活用した。抗ハプテン特異的な二次マウス・モノクローナル抗体は、Ｖｅｎｔａｎａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．（アリゾナ州トゥーソン）で開発された。量子ドットはＴｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ（オレゴン州ユージーン）から購入した。抗ハプテン特異的なマウス・モノクローナル抗体−量子ドットコンジュゲートを、標準のバイオコンジュゲーション方法（Ｇｒｅｇ Ｔ．Ｈｅｒｍａｎｓｏｎ、Ｂｉｏｃｏｎｊｕｇａｔｅ Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓ（バイオコンジュゲーション技法）、第２版、２００８）を使用して製造し、記載のとおり使用した（米国特許第２００８−０２１２８６６号）。特異的バイオコンジュゲート及び関連する量子ドット標識抗ハプテン抗体が下記の表４に列記されている。

以下の乳房マーカーをＶｅｎｔａｎａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．から購入し、製造者の推奨に従って使用した：ＣＯＮＦＩＲＭ抗エストロゲン受容体（ＥＲ）（ＳＰ１）（Ｃａｔ＃７９０−４３２４）、ＣＯＮＦＩＲＭ抗プロゲステロン受容体（ＰＲ）（１Ｅ２）（Ｃａｔ＃７９０−２２２３）、ＰＡＴＨＷＡＹ抗ＨＥＲ−２／ｎｅｕ（４Ｂ５）（Ｃａｔ＃７９０−２９９１）、ＣＯＮＦＩＲＭ抗Ｋｉ−６７（３０−９）（Ｃａｔ＃７９０−４２８６）及びＩＮＦＯＲＭ ＨＥＲ２二重ＩＳＨ ＤＮＡプローブカクテルアッセイ（ＶＭＳＩ Ｃａｔ＃７８０−４４２２）。ＰＴＥＮ Ｄ４．３をＣｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（マサチューセッツ州ダンバーズ）から購入した。

Ｂ．細胞モデル及び腫瘍組織標本
乳がん細胞株モデルＳＫＢＲ３及び前立腺腺癌細胞株モデルＬＮＣａＰを１０％のＦＢＳを補充したＭｃＣｏｙの５Ａ培地中で培養した。ＳＫＢＲ３細胞は、ＡＴＰ競合性ｐａｎ−ＡＫＴキナーゼ阻害剤ＧＳＫ６９０６９３を低ナノモル濃度（２５０ｎＭ）で使用して２４時間にわたり、抗体検証研究用に処理した。薬物処理後、切片化及びスライド調製のために、細胞を低温のＩＸ ＰＢＳを使用して洗浄し、低温の１０％中性緩衝ホルマリン中に固定し、パラフィン中に包埋した。

未処理の、又はＰＩ３Ｋ阻害剤ＬＹ２９４００２（ＳｉｇｎａｌＳｌｉｄｅ（登録商標）Ｐｈｏｓｐｈｏ−Ａｋｔ（Ｓｅｒ４７３）ＩＨＣ Ｃｏｎｔｒｏｌｓ；Ｃａｔ＃８１０１）で処理したパラフィン包埋ＬＮＣａＰ細胞のスライド調製物を、Ｃｅｌｌ Ｓｉｇｎａｌｉｎｇ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（マサチューセッツ州ダンバーズ）から購入した。腫瘍標本はあらかじめ、Ｉｎｄｉｖｕｍｅｄ ＧｍｂＨ（ドイツ、ハンブルク（表５））又はＯＨＳＵ Ｋｎｉｇｈｔ Ｄｉａｇｎｏｓｔｉｃ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｉｅｓ（ＫＤＬ）により調達されていた。

Ｉｎｄｉｖｕｍｅｄの標本向けの低温虚血時間は１６分以下であった。浸潤性腺管癌（ＩＤＣ）を生じたＦＦＰＥ乳房腫瘍標本を遡及的に、ＯＨＳＵ Ｐａｔｈｏｌｏｇｙから調達した。Ｃａｌｕ−３異種移植片を、Ｖｅｎｔａｎａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．（アリゾナ州トゥーソン）にて調達した。Ｉｎｄｉｖｕｍｅｄ及びＣａｌｕ−３の異種移植片標本をすべて、Ｃｈａｆｉｎ ｅｔ ａｌ．２０１３（参照により本明細書に組み込まれる）に記載の急速二温度固定法を使用して固定し、パラフィン中に包埋した。乳房腫瘍ＩＤＣ試料をホルマリン中で固定、処理し、標準の臨床慣行を使用してパラフィン包埋した。１〜２ｍｍのコアリング装置を使用してパラフィンブロックの対象区域を穿孔し、再び包埋した。ＦＦＰＥ標本をすべて、スライド調製向けに厚さ４μｍの連続切片として切断し、２４〜４８μｍの間隔の範囲内の１つの連続切片を、標準手順に従ってヘマトキシン・エオシン（Ｈ＆Ｅ）で染色した。Ｃａｌｕ−３異種移植片スライド（Ｆｏｇｈ ｅｔ ａｌ．、１９７７）をホスファターゼ緩衝液のみ、又はλホスファターゼ（Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ Ｂｉｏ ｌａｂｓ（マサチューセッツ州イプスイッチ））を添加して処理し、一次抗体のホスホ−エピトープ特異性の評価に使用した。

Ｃ．免疫ブロット
ＳＫＢＲ３細胞からのタンパク質試料は、等容積のＬａｅｍｍｌｉ試料緩衝液（Ｂｉｏｒａｄ（カリフォルニア州ハーキュリーズ））に０．５Ｍのジチオトレイトールを添加した１００℃の溶液に細胞溶解物を５分間浸漬して変性させることによって調製した。ＳＤＳ−ＰＡＧＥによりタンパク質を分離し、ポリビニリデンジフルオリド膜へ移し、一次抗体でブロット処理し、セイヨウワサビペルオキシダーゼ共役二次抗体を使用して検出した。ＥＣＬ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を使用して、タンパク質バンドを検出した。

Ｄ．細胞及び腫瘍試料の免疫標識
Ｂｅｎｃｈｍａｒｋ ＸＴ自動染色装置（Ｖｅｎｔａｎａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ（アリゾナ州トゥーソン））を使用して一次ホスホ抗体染色を行い場合の最適なアッセイ条件を判定するため、ＦＦＰＥ標本のＬｎＣａＰ、ＳＫＢＲ３及びＣａｌｕ−３異種移植片に対して、ＤＡＢベースの検出を使用する明視野ＩＨＣを実施した。ＵＬＴＲＡ ＶＩＥＷ ＵＮＩＶＥＲＳＡＬ ＤＡＢ検出キット（ＶＭＳＩ Ｃａｔ＃７６０−５００）を使用した。必要な場合、ＯＭＮＩＭＡＰ ＤＡＢ抗Ｒｂ検出キット（ＶＭＳＩ Ｃａｔ＃７６０−１４９）のＯＭＮＩＭＡＰ抗Ｒｂ ＨＲＰ成分、又は抗ハプテン特異的ＨＲＰ二次抗体コンジュゲートを、ＵＬＴＲＡ ＶＩＥＷ ＤＡＢ Ｍｕｌｔｉｍｅｒの代わりに使用した（例えば各々、非共役一次抗体又は抗ハプテン共役一次抗体を評価するため）。すべてのＨＲＰコンジュゲートを、３７℃にて８分間培養した。

ＦＦＰＥ細胞及び腫瘍の標本におけるハプテン−抗ハプテンの化学反応によるリンタンパク質染色を評価するため、Ｂｅｎｃｈｍａｒｋ ＸＴ自動染色装置（Ｖｅｎｔａｎａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ（アリゾナ州トゥーソン））上でＳＫＢＲ３細胞及び腫瘍組織のＦＦＰＥ標本に対し、蛍光スペクトル画像処理向けの免疫染色を実施した。すべてのＦＦＰＥ標本（細胞モデル、異種移植片又は腫瘍組織）について、ＥＺＰＲＥＰ緩衝液（ＶＭＳＩ Ｃａｔ＃９５０−１０２）中で自動パラフィン除去を施し、抗体培養前に９０分間、ＣＣ１緩衝液（ＶＭＳＩ Ｃａｔ＃９５０−１２４）による細胞状態調節を行った。ＦＦＰＥ標本を、単一の一次抗体又はハプテン共役一次抗体混合物（ｐＳ６：ＢＦ、ｐＡＫＴ Ｓ４７３：ＤＩＧ、ｐｅＩＦ４Ｇ：ＴＳ、ｐＰＲＡＳ４０：ＮＰ、ｐＥＲＫ１／２：ＮＣＡ、ｐＡＫＴ Ｔ３０８：ＤＮＰ、それぞれ５、１５、２０、２０、３０、１２．５μｇ／ｍＬ）を使用して３７℃にて３２分間培養した。一次抗体培養ステップに続いて、試料を二次抗ハプテン抗体ＱＤコンジュゲートの適切な組み合わせ（抗ＢＦ：ＱＤ５２５、抗ＤＩＧ：ＱＤ５６５、抗ＴＳ：ＱＤ５８５、抗ＮＰ：ＱＤ６０５１、抗ＮＣＡ：ＱＤ６２５、抗ＤＮＰ：ＱＤ６５５、それぞれ濃度は４０、５０、５０、７０、４０、３０ｎＭ）により、３７℃にて３２分間培養した。抗体での自動染色に続いて、試料をエタノール系溶液中、次いでキシレン中で脱水し、Ｃｙｔｏｓｅａｌ ６０（Ｔｈｅｒｍｏ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）を使用して装着した。

Ｅ．病理学者による腫瘍領域のスコアリング及び識別
患者からの腫瘍標本を、乳がんの機能的マーカーであるＥＲ、ＰＲ、Ｈｅｒ２、Ｋｉ−６７、ＰＴＥＮについてはＩＨＣにより、ＩＮＤＩＶＵＭＥＤの腫瘍標本についてはＨｅｒ２ Ｄｕａｌ ＩＳＨにより、ＯＨＳＵ−ＩＤＣの標本についてはＥＲ、ＰＲ、Ｈｅｒ２により染色した。機能的マーカーをＶｅｎｔａｎａ Ｍｅｄｉｃａｌ Ｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．から購入し、製造者の推奨に従って使用した。乳がんマーカーのＩＨＣ染色のスコアリングは、委員会公認の病理学者により、標準慣行に従って行われた（Ｗｏｌｆｆ ２００７、Ｈａｍｍｏｎｄ、２０１０）。委員会公認の病理学者は、Ｈ＆Ｅ染色された連続切片上の腫瘍領域を２４〜４８ｍｍ間隔で識別した。

Ｆ．腫瘍標本の突然変異分析
腫瘍試料を、関連する遺伝子突然変異についてスクリーニングした。病理学者は、ＤＮＡ抽出向けに隔離された未染色のＦＦＰＥ切片から、腫瘍領域を識別した。ＦＦＰＥ組織から導出された２０ｎｇのＤＮＡを、突然変異分析向けのＰＣＲによって、がんにおいて役割を果たすことが既知の３７の遺伝子のコーディングエクソンをカバーするパネルを使用して増幅した。標的単位複製配列ライブラリを生成するため、特別製のＩｏｎ ＡＭＰＬＩＳＥＱ（Ｉｏｎ Ｔｏｒｒｅｎｔ）固体腫瘍パネル（Ｂｅａｄｌｉｎｇ ２０１３）を使用した。単位複製配列ライブラリの調製及びシークエンシングについて詳しくは、Ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｒｙ Ｍｅｔｈｏｄｓ： Ｐｒｅｐａｒａｔｉｏｎ ｏｆ ａｍｐｌｉｃｏｎ ｌｉｂｒａｒｉｅｓ（補完的方法：単位複製配列ライブラリの調製）に説明されている。ＯＨＳＵ ＩＤＣの試料について、既に記述されているとおり（Ａｎｇ ２０１４）、５３の遺伝子における６４３の点突然変異を包含する多重化ＰＣＲ質量分析法ベースの技法を使用して、突然変異スクリーニングを実施した。シークエンシングによって検出された遺伝子突然変異が表６に列記されている。

Ｇ．画像分析
画像処理戦略では、絶対照明レベルの変動が１％未満の条件でサンプル面での照明流速量を反復可能な、閉ループ安定化金属ハロゲン化物アーク光源（Ｅｘｆｏ Ｅｘａｃｔｅ（Ｌｕｍｅｎ Ｄｙｎａｍｉｃｓ、カナダ、オンタリオ州、部品番号Ｐ０１０−００２０１Ｒ））を使用した。照明レベルは１％の増分での線形方式でも調節可能である。照明源は、屈折力測定システム（Ｘ−Ｃｉｔｅ Ｏｐｔｉｃａｌ Ｐｏｗｅｒ Ｍｅｔｅｒ ａｎｄ Ｓｅｎｓｏｒ（Ｌｕｍｅｎ Ｄｙｎａｍｉｃｓ、カナダ、オンタリオ州、部品番号Ｐ０１０−００２４５Ｒ））を使用して、サンプル面での出力を絶対単位に対して校正するメカニズムを提供する。この校正装置を使用して、正確に１００ｍｗの励起照明がデータ取得の都度、画像処理用の光学トレイン及びフィルタを介してサンプル面に到達することを確保するよう、光源内のマイクロプロセッサを校正した。

染色強度の変動がレポート分子濃度の変動に起因するものであることを確保するよう、我々は画像処理の視野が均等に照らされる状態を確保した。光源を顕微鏡に結合する前に、光源を均一化する役割を果たす液体光ガイドを介して、Ｅｘｆｏ Ｅｘａｃｔｅ光源を顕微鏡に結合する。結合後、視野照明は入射光励起向けに従来型のケーラー方式でセットアップされる。この構成設定は、スペクトル画像処理装置によって捕捉される領域にわたり、均等な視野照明を生み出すことが確認された。

画像処理システムは、Ｚｅｉｓｓ Ａｘｉｏｌｍａｇｅｒ Ｍ２（Ｚｅｉｓｓ（ニューヨーク州ソーンウッド、部品番号４３０００４９９０２））スタンドにＺｅｉｓｓ−Ｍａｒｚｈａｕｓｅｒ自動ステージ（部品番号４３２０２４９９０３）及び自動ｚ軸を装備したものが基軸であった。フィルタタレット（部品番号４２４９０７）、カメラポート（部品番号４２５５０４）、及び対物タレット（部品番号４２４５０５）及びチューブレンズタレット（部品番号４２５３０２９９０１）、これらはすべて、カスタムソフトウェア（ＶＡＩＳ Ａｃｑｕｉｒｅ）を通じた自動取得の実現に使用された自動化インターフェースを提供した。

解剖学的組織のプリスキャン画像処理向けに、高帯域伝送型照明を干渉フィルタ（Ｏｍｅｇａ Ｏｐｔｉｃａｌ（バーモント州バーリントン、部品番号７１０ＤＦ２０））を介してフィルタ処理することにより、円周斜方暗視野照明戦略において、７１０ｎｍの波長の照明が得られた。

組織区域のプリスキャンを、ＥＣ Ｐｌａｎ−Ｎｅｏｆｌｕａｒ １０ｘ／０．３０ＮＡ対物レンズ（Ｚｅｉｓｓ（ニューヨーク州ソーンウッド、部品番号４２０３４０９９０１））を使用して収集した。０．５倍のｃマウントアダプタを、解剖学的プリスキャン画像処理向けのカメラポート設定で使用した（Ｚｅｉｓｓ（ニューヨーク州ソーンウッド、部品番号４２６１１２））。０．５倍のｃマウントアダプタは、蛍光核対比染色剤を暗視野組織画像と組み合わせて使用する結果、２色の組織スキャン画像を迅速に収集し、２色のヘマトキシン・エオシン（Ｈ＆Ｅ）画像と似た形で表示できるよう構成設定された、画像処理用ビーム分割装置（Ｐｈｏｔｏｍｅｔｒｉｅｓ Ｄｕａｌ−Ｖｉｅｗ２、Ｐｈｏｔｏｍｅｔｒｉｅｓ（アリゾナ州トゥーソン））の使用を可能にするための準備であった。この研究の場合、屈折率（暗視野）成分しか使用しなくても、Ｈ＆Ｅ染色された連続切片で確認可能な組織病理学領域を認識する上で十分であると見なされた。組織区域のプリスキャンは、６．５ミクロンのピクセルを有するＳｏｎｙ製ＩＣＸ２８５マイクロレンズ付きチップをベースとするＰｈｏｔｏｍｅｔｒｉｅｓ ＣｏｏｌＳＮＡＰ ＥＳ２という１２ビットのモノクロームＣＣＤカメラ（Ｐｈｏｔｏｍｅｔｒｉｅｓ（アリゾナ州トゥーソン））上で捕捉され、閉ループは０℃まで冷却可能であった。

解剖学的組織の屈折率コントラスト画像を、医師による注釈付け向けにデジタル表示できるよう生成した。多重化画像処理向けの腫瘍区域の選定を可能にするため、７１０ｎｍの波長を中心とする２０ｎｍの帯域幅で伝送される暗視野照明を使用して、組織領域を画像処理した。この方法は、解剖学的組織全体を、周囲の包埋剤からの組織のわずかな屈折率差に基づいて対比することを可能にするが、蛍光体又は組織の自己蛍光に対する光傷害のリスクをもたらすわけではない。したがって、広い区域の迅速な取得向けに、高い照明レベルを使用し、露出時間を短く抑えることができる。

多重化染色組織の屈折画像をデジタルビュアー内で観察することにより、技術者は、バイオマーカーの検出及び定量するための高分解能でのスペクトル画像処理を使用して取得されることになる対象区域（ＡＯＩ）の所在特定及び注釈付けを行うことができた。これにより、屈折率画像を、ヘマトキシン及びエオシンで染色した同じ組織の連続切片と比較して、解剖学的病理学区域を確認することができた。

スペクトル画像処理に使用したカメラは、６．５ミクロンピクセルのＳｏｎｙ製ＩＣＸ２８５モノクロームチップを非冷却実装することが基軸であった。スペクトル画像処理に使用したセンサーの評価及び特徴付けを行った結果、直線から１％未満の偏差で４０９６階調レベルにまでデジタル化された６２ｄＢのダイナミックレンジが得られた。干渉計捕捉向けの露出時間は約１０ｍｓであったため、暗電流がノイズに及ぼす影響は、読み取りノイズと比べ、無視してよい程度であった。

スペクトル蛍光画像処理用の励起／発光フィルタは以下のとおりであった：３８０ｎｍの中心波長及び５０ｎｍの励起用帯域幅（Ｏｍｅｇａ Ｏｐｔｉｃａｌ（バーモント州バーリントン、部品番号ＱＭＡＸ／ＥＸ３５５−４０５／２５））；ｄｉｃｈＦＯＶｃビーム分割装置（反射帯域４１０ｎｍ以下）（Ｏｍｅｇａ Ｏｐｔｉｃａｌ（バーモント州バーリントン、部品番号ＸＦ２００４／２５．７＊３６））、及び４２０ｎｍでの深層遮断遷移機能付きロングパスフィルタ（Ｏｍｅｇａ Ｏｐｔｉｃａｌ（バーモント州バーリントン、部品番号３００１３７２））。

蛍光スペクトル画像はすべて、Ｐｌａｎ−Ａｐｏｃｈｒｏｍａｔ ２０ｘ／０．８ＮＡ Ｍ２７対物レンズ（Ｚｅｉｓｓ（ニューヨーク州ソーンウッド、部品番号４２０６５０９９０１））を使用して捕捉された。スペクトル画像取得向けに、第２のカメラポート上で１倍のｃマウントを使用した。色収差の影響を軽減するため、視野の深度が重複する３通りの位置でのｚスタッキングを使用した。この慣行は、実用的条件下において検出スペクトルにまたがるレポーターの合焦画像の捕捉を可能にすると判定された。

スペクトルデータ取得においては、文献（Ｍａｌｉｋ，ｅｔ ａｌ．１９９６、Ｇａｒｉｎｉ，ｅｔ ａｌ．、２００６）に記載の手順に従って、ｃマウント出力に結合したサニャック干渉計（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｐｅｃｔｒａｌ Ｉｍａｇｉｎｇ（イスラエル、ミグダル・ハエマク））を使用した。一連の経路長でインターフェログラムをデジタル化するため、スペクトル画像処理装置に一体化されたＣＣＤカメラに、干渉計出力を結合する。

未処理のスペクトルキューブに符号化された基準波長参照を提供するため、４８８ノッチフィルタ（Ｓｅｍｒｏｃｋ，Ｉｎｃ．（ニューヨーク州ロチェスター））を、対象物と干渉計との間の無限遠空間内の検出経路に配置した。組織の自己蛍光は、スペクトルの青色範囲をカバーする広いピークを有し、このノッチフィルタは狭い局所最小値を、原データの組織自己蛍光成分へと符号化する。次いでこの局所最小値のスペクトルの特徴を分析ソフトウェア内で検出し、これを使用して、分析時にアンミキシングされることになる様々な発光成分について、参照スペクトルの配列を校正する。この符号化された校正の結果、干渉計の光学系における温度依存製の変動に起因する原データでの波長マッピングの如何なる小さい変化も軽減して、アンミキシングの精度が失われる潜在性を最小限に抑えることが確保された。

プリスキャン及びスペクトルの自動取得ワークフローの構成設定及び調整のため、システムの自動化及び取得を行うカスタムソフトウェアを、Ｐｙｔｈｏｎで開発した（「Ｖｅｎｔａｎａ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｉｍａｇｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍ」（ＶＡＩＳ）ＡＣＱＵＩＲＥ）。この取得ソフトウェアはＰｙｔｈｏｎインターフェースを、顕微鏡、光源及びプリスキャンカメラ制御向けの低レベル計器制御ライブラリに活用した。ソフトウェアＧＵＩのおかげで、関連する解剖学的病理学区域の双方型選定、対象の腫瘍区域にわたり構造化されたサンプリング密度の選定（５０％）、ｚ面の選定（１μｍ間隔の３つの面）が可能となった結果、同一の計器構成設定での取得の効率的な反復が可能となるよう、データを記憶及び再ロードすることができる。取得インターフェースは、複数のｚ面でのスペクトル取得など、複雑な取得方式の定義を可能にし、広い腫瘍区域のサンプリングを行う一連の領域にわたり繰り返すことができる。

干渉計の基本的な制御及び低レベル構成設定は、ＡＳＩ Ｓｐｅｃｔｒａｌ Ｉｍａｇｉｎｇというアプリケーション（Ａｐｐｌｉｅｄ Ｓｐｅｃｔｒａｌ Ｉｍａｇｉｎｇ（イスラエル、ミグダル・ハエマク））を通じて実現した。高レベルの自動化は、ＡＳＩアプリケーションを間接的に経由してスペクトル画像処理装置を制御する、我々のカスタムインターフェースを通じて実現した。

約１００通りの波長で空間の２次元を表すスペクトル画像キューブへとインターフェログラムをフーリエ変換した後、４００ｎｍから８００ｎｍの間の波長の可視範囲にわたり、約１００のサンプル点で波長画像を生成するよう、干渉計の設定を最適化した。

蛍光スペクトル取得の場合、露出時間を、インターフェログラムの取得向けに１フレーム当たり８ｍｓに標準化し、この時間は、実験時に遭遇する最も明るい蛍光試料についてＣＣＤウェル容量の４分の３以内のシグナルを提供するよう選定された。

多次元の原データの専用処理と、測定、可視化、プロット化及びスプレッドシートのエクスポート向けの関連する特徴の抽出を可能にするため、カスタム分析ソフトウェア（「Ｖｅｎｔａｎａ Ａｎａｌｙｔｉｃａｌ Ｉｍａｇｉｎｇ Ｓｙｓｔｅｍ」（ＶＡＩＳ）ＡＮＡＬＹＳＩＳ）をＰｙｔｈｏｎで開発した。重複する被分析物シグナルのアンミキシングを、蛍光シグナルの分解に一般的に使用される非拘束最小二乗適合法（Ｇａｒｉｎｉ ｅｔ ａｌ．２００６）を使用して実施した。

データを（３２倍に）拡大して収集し、格子内の各視野座標における高分解能のスペクトルデータを捕捉した。組織の厚さを通過する捕捉と、軸方向の色収差（標本中の様々な深度で色が集束するようになること）の軽減を確保するため、ｚ軸を通る複数のｚ位置で、各視野のデータを収集した。

１つのＡＯＩ内の複数の個別の視野を収集し、ディレクトリ構造に記憶することにより、ＡＯＩの視野をさらなる分析向けにＶＡＩＳ ＡＮＡＬＹＳＩＳソフトウェアを使用してグループ化することができた。データ整理及びデータセット作成のインターフェースにより、視野を比較向けにグループ化することができた。

標準化された条件下で捕捉されるとおりの各マーカーについて染色強度を表す、純粋な被分析物チャネル画像を提供するため、多重化マーカーデータの取得後、ガラス、組織自己蛍光、及び各レポーター量子ドット（５２５、５６５、５８５、６０５、６２５、６５５）に対して参照スペクトルに照らして線形最小二乗アンミキシングを通じて被分析物チャネルのアンミキシングを行った。アンミキシングアルゴリズムは、画像処理システムを通じて伝送及び反射される光の複数の帯域を混合する実験と、結果的な制御データに基づくアンミキシング操作の実施を通じて、正確な結果を生み出すと判定された。アンミキシングの実施はさらに、組織中の様々な細胞区画を標的とする複数のマーカーを確実にセグメント化するという点が注目された。このように、スペクトルアンミキシングの正確性を、結果的なアンミキシング後の被分析物画像におけるシグナルの空間的局在化の検査を通じて評価することができた。

データセット内のフィールド毎にアンミキシングされた染色剤チャネルをさらにセグメント化して、形態学的特性（サイズ）及び光度特性（シグナル強度範囲）に基づいて対象の特徴を選択した。これらのセグメント化はデータセット対象物の一部として持続し、またＶＡＩＳビュアー内でデータセットを開き、セグメント化パラメータを変更した後、データセットを新たな名前で記憶することにより、再セグメント化することができる。

自動的にセグメント化された特徴は技術者によってさらに、分析対象となる特徴に目印を付ける注釈付けツール付きのＶＡＩＳビュアーを使用して検査及び編集された。このように、分析に含まれる区域又は分析から除外される区域を指定する実験が可能となった。一例として、研究者は壊死区域を如何なる下流分析からも除外するよう指定すると予想される。その後、これらの注釈付けは「データセット」の一部として持続し、また他の技術者が適切な許可を得て専用ビュアーを使用してデータセットを開き、編集することができる。

データセットが不均一性分析インターフェースにロードされ、視野毎の各被分析物が画像「スタック」（３Ｄアレイ）にロードされる結果、ｘ軸及びｙ軸が空間座標を表し、ｚ軸の各層は別々の被分析物マップを表す。各視野の画像スタックは、ｘ軸又はｙ軸いずれかの端部に位置する従前の画像スタックに付加される結果、視野はタイル化され、腫瘍区域を表す大型のｘ，ｙ，ｚ画像となる。各被分析物の視野がロードされるにつれ、各視野において包含対象として既に注釈付けされた区域はそのまま残され、他の区域はゼロの値に設定された。

パラメータは標準化され、ロードされた層内のピクセルが中央値フィルタ処理されて任意の足跡区域にわたりシグナルを均一化するか、又は任意の足跡区域にわたりシグナルが平均化されるかを制御する。この研究の場合、画像分解能は８×８ピクセルの足跡にわたり平均化するよう７５％にまで低減され、中央値フィルタが半径２ピクセルの条件で適用された。これらのパラメータは、クラスタアルゴリズムに入力される各「スーパーピクセル」又は単位区域のサイズを決定付け、またノイズに起因する局所的なシグナル変動の影響を低減する役割を果たした。

次は、発現パターンが同等である区域の「クラスタ」へのグループ化であった。細胞の発現及び活性化の不均一性分析向けに、我々は、ｎ次元空間内で形成される、より高密度の「ポイントクラウド」の発見に繋がるアルゴリズムを選定し、各点は我々の被分析物について測定された６つの強度値によって形成されるベクトルを表す。平均シフト（Ｃｏｍａｎｉｃｉｕ＆Ｍｅｅｒ、２００２）と呼ばれる、密度ベースのクラスタ化アルゴリズムを実装した。平均シフトアルゴリズムを、我々の多重データセットにおける様々な発現パターンをセグメント化するために適応させた。多重マーカー発現の類似性についてのカットオフが、分布のカットオフを表すパラメータ（帯域幅）を通じて指定された。使用する帯域幅を判定するために帯域幅推定器関数（Ｃｏｍａｎｉｃｉｕ＆Ｍｅｅｒ、２００１、ｈｔｔｐ：／／ｓｃｉｋｉｔ−ｌｅａｒｎ．ｏｒｇ／ｓｔａｂｌｅ／ｍｏｄｕｌｅｓ／ｇｅｎｅｒａｔｅｄ／ｓｋｌｅａｒｎ．ｃｌｕｓｔｅｒ．ｅｓｔｉｍａｔｅ＿ｂａｎｄｗｉｄｔｈ．ｈｔｍｌ及びｈｔｔｐｓ：／／ｇｉｔｈｕｂ．ｃｏｍ／ｓｃｉｋｉｔ−ｌｅａｒｎ／ｓｃｉｋｉｔ−ｌｅａｒｎ／ｂｌｏｂ／ｃ９５７２４９／ｓｋｌｅａｒｎ／ｃｌｕｓｔｅｒ／ｍｅａｎ＿ｓｈｉｆｔ＿．ｐｙ＃Ｌ３１）を使用した。帯域幅推定器が取る入力は、サンプリング対象となるピクセルの数と、分位パラメータである。帯域幅推定器は画像から多数の領域のサンプリングを行い（この例では５００個）、サンプル及び分位（我々は０．７５の分位を使用し、０．５はサンプル値間の一対差の中央値である）から帯域幅を判定する。

平均シフトクラスタ化アルゴリズムへの入力は、タイル化されたデータセット画像スタックであり、出力はｘ，ｙアレイであるが、ｘ座標及びｙ座標は入力されたタイル化画像スタックの空間座標を表し、各ｘｙ位置での値は任意のピクセルが属するクラスタ番号を示す標識である。したがって、出力アレイにおいて、アルゴリズムによってセグメント化されたクラスタの数に応じて、値が「１」のピクセルはクラスタ１番に属し、値が「２」のピクセルはクラスタ２番に属する、といった形になる。

「クラスタマップ」を、クラスタ出力アレイ内の各番号に色を割り当て、コンピュータ画面に表示させることによって作成した。このように、クラスタ「０」は白い区域として、クラスタ「１」に付随するピクセルは赤色、クラスタ「２」に付随するピクセルは黄色、といった形で表示され得る。クラスタマップ、及び被分析物画像の配色オーバーレイを、データ収集向けの光学的構成設定に従って専用画像ビュアーの交互のウィンドウに配置して、様々なクラスタの空間領域を様々なマーカーの相対的発現レベルと比較することができる。クラスタマップは、解剖学的文脈で多重化されたバイオマーカーについて、発現又は活性化のパターンが同等の区域及び異なる区域を効果的に識別する。このように、発現又は活性化が異なる区域間の関係が容易に可視化される。

クラスタ分析出力アレイを使用して、タイル化された入力画像スタック上の区域をセグメント化し、クラスタ区域内の「ピクセル」（単位区域）毎に各被分析物の値を測定した。このように、任意のバイオマーカーにおける強度値（発現レベル又は活性化を反映する）の分布を、クラスタ単位の形での被分析物毎のボックスプロット、及び各ピクセル又は単位区域を表す行を使用してプロット化した。

Ｈ．バイオマーカー強度分析
染色された細胞及び腫瘍組織の試料におけるすべてのＰＩ３Ｋ経路タンパク質のリン酸化レベルを、マーカー毎の染色強度寄与を表す、アンミキシングされたチャネルの強度を基に定量した。各画像の視野について、閾値ピクセルから平均強度を計算した（視野内の最も高輝度のシグナルの１％未満のピクセル値を除外して、関連性のないピクセル寄与を未染色区域から排除し、また最大強度の９５パーセントを超えるピクセルを９５パーセントの強度レベルに固定して、平均に対するホットピクセルからの疑似寄与を排除した）。各患者のホスホマーカーの総体的平均強度を、無作為に選択された複数の画像視野の複合平均を基に計算した。

Ｉ．シグナル伝達経路の表現型クラスタ分析
平均シフトアルゴリズムは、機械視覚での対象物追跡及びカラー画像での対象物のセグメント化に、より全般的に応用される最頻値探索型アルゴリズムである。ここでは我々は、６つのマーカー間における発現パターンの類似性に基づいて区域をセグメント化するために、このアルゴリズムを使用した。このアルゴリズムを使用すると、ベクトル空間において発現パターンが同等のグループをセグメント化することができ、また不規則な形状の分布に寛容である。また、このアルゴリズムは、「異なる」クラスタがどのような状態でなければならないかについて離散的なカットオフポイントを想定する必要、又は想定上のクラスタ数をデータに強制する必要なく、機能する。

Ｓｃｉｋｉｔ−ｌｅａｒｎプロジェクト（Ｐｅｄｒｅｇｏｓａ ｅｔ ａｌ．、２０１１）からのオブジェクトを使用してＶＡＩＳ Ａｎａｌｓｙｓに実装された平均シフトクラスタ分析により、多重視野画像スタックを入力として扱うための補助コードと併せて、リンタンパク質マーカーの様々なクラスタ化パターンを特定した。平均シフトアルゴリズムへの入力は一連のベクトルであり、各ベクトルは、区域又は「スーパーピクセル」の標準化された格子単位について平均化された６つのマーカー値で構成される。スーパーピクセルは、単一のピクセルから多数のピクセルをカバーする区域へとサイズを調整することができ、また処理されるデータセット全体を含む視野にまたがって隣接する形でタイル化される。平均シフトアルゴリズムの帯域幅パラメータを、帯域幅推定器を使用して、分位の入力パラメータを０．７５、サンプルサイズを５００として推定した。もたらされた可視化の結果、単一の２次元画像としてタイル化された各視野の、色分けされたスーパーピクセルマップが表示された。区域全体において各クラスタが占有する相対的割合を示す、色分けされたヒストグラムが生成されるほか、クラスタ毎の各マーカーについて、スーパーピクセル値の分布も生成される。

Ｊ．ネットワークシグナル伝達クラスタの階層型系統樹分析
生成されたホスホマーカー発現表現型間における類似性をランク付けするため、ユークリッド距離メトリックを採用する、ノンパラメトリックの階層型分析を使用した（Ｈａｓｔｉｅ， Ｔ． ｅｔ ａｌ．Ｔｈｅ ｅｌｅｍｅｎｔｓ ｏｆ ｓｔａｔｉｓｔｉｃａｌ ｌｅａｒｎｉｎｇ．２（統計学習の要素 ２）、Ｓｐｒｉｎｇｅｒ、２００９）。各表現型間でのベクトル差の計算により、ホスホマーカー発現表現型のあらゆる組み合わせ同士の距離を算出した。標準の凝集型、ボトムアップ、階層型の分析を使用して、最小ユークリッド距離によってネットワークシグナル伝達クラスタをランク付け及びグループ化し、系統樹形式でプロット化した。

Ｋ．結果
１．多重化組織画像処理プラットフォーム（ＭＴＩＰ）機能の特徴付け
ＰＩ３Ｋシグナル伝達経路における５つのエフェクター成分（ｐＡＫＴ４７３、ｐＡＫＴ３０８、ｐＰＲＡＳ４０、ｐＳ６、ｐｅＩＦ４Ｇ）、並びにＰＩ３Ｋシグナル伝達（ｒｅｆ）とのクロストークに関係する経路であるＭＡＰＫシグナル伝達経路における１つの出力エフェクター成分（ｐＥＲＫ）から成る、６つの抗ホスホ抗体−ＱＤ共役対を一団として多重化向けに生成した（表４）。６つのハプテン化抗ホスホマーカー抗体すべての混合物を組織と一緒に培養し、続いて６つの抗ハプテン二次抗体−ＱＤコンジュゲートの混合物と一緒に培養した（図１４）。

選択された抗体の特異性について、ＦＦＰＥ細胞及び異種移植片モデルシステムを使用する一連のＩＨＣ実験を使用して試験した（図１４、１５及び１６）。抗ホスホマーカーハプテン共役型の一次機能性及び抗ハプテンモノクローナル二次機能性について、ＰＩ３Ｋ経路活性化に関する十分に確立された乳がんモデルであるＳＫＢＲ３細胞株を使用して試験した（Ｅｎｇｌｅｍｅｎ ＰＮＡＳ参照）。ＳＫＢＲ３細胞は未処理、又はＡＫＴ小分子阻害剤ＧＳＫ６９０６９３で処理された。２つの細胞集団をＦＦＰＥブロックとして調製し、抗ホスホマーカー一次抗体を使用して染色し、続いて抗ハプテン二次抗体をＨＲＰに共役させたもので染色して、ＤＡＢ経由での対比を可能にした。これにより、ハプテン−抗ハプテン標識方式を検証することができた（図１４；ＤＡＢの染色パターンは、並行して実施された一次抗種二次染色（ｐｒｉｍａｒｙ−ａｎｔｉ−ｓｐｅｃｉｅｓ ｓｅｃｏｎｄａｒｙ ｓｔａｉｎｉｎｇ）と整合的であった）。

ＬＹ２９４００２で処理されたＬｎＣａｐ細胞に対する、単一の非結合型一次抗体を使用してのＤＡＢ ＩＨＣは、すべてのマーカーについて、広範な発現損失を実証した図１５：ＬｎＣａｐ）。ＬＹ２９４００２での処理後におけるＰＩ３Ｋマーカー発現の予想された損失は、非結合型一次抗体の特異性を立証するものである。これらの一次抗体におけるホスホ特異性は後に、ホスファターゼ処理されたＣａｌｕ−３異種移植片組織を使用して立証され、その際、すべてのホスホマーカー抗体について、ホスファターゼ処理された組織での染色が大幅に低減された（図１５：Ｃａｌｕ−３）。量子ドット共役型抗ハプテン抗体の機能性を、上記にて概説のＳＫＢＲ３ブロックに対する免疫蛍光（ＩＦ）染色によって評価した。まず、一度に１つのホスホマーカーを使用してＩＦ染色を実施し、続いてハイパースペクトル画像処理を行って、ホスホマーカーシグナルを自己蛍光背景シグナルから分離した（図１４ａ）。このプロセスの結果、ＤＡＢ染色からの結果と整合的な染色強度パターンが明らかとなった。これにより、我々の量子ドット共役型抗ハプテン二次試薬について予想された機能性が確認された。

次いで複合型マーカーを使用して多重化実験を実施し、続いてハイパースペクトル画像処理を行って、マーカー毎のシグナル寄与を分離した（図１４ｂ）。付加的な比較向けに、ＳＫＢＲ３細胞溶解物に対し、６つのホスホ抗体すべてでの免疫ブロットを行った（図１４ｃ）。結果は、マーカー毎のスペクトルアンミキシングされた画像のパターン及び発現が、２つの細胞集団におけるＩＦ及び免疫ブロットの結果と比べた場合に整合的であることを示すものである（図１４ｄ）。ＡＫＴマーカーはいずれも、予想された相対的な発現増加を示し、続いてＧＳＫ６９０６９３薬物処理が施された（Ｒｈｏｄｅｓ ２００８）。ｐＰＲＡＳ４０、ｐＥＲＫ、及びｐＳ６は薬物処理後に発現低下を示したが、ｐｅｌＦ４Ｇは発現の有意な変化を全く示さなかった。薬物処理後にＭＴＩＰを使用して検出されたホスホマーカー発現変化の、ＩＦ及び免疫ブロット染色において観察された変化との類似性は、多重化アッセイの文脈で使用される共役型抗体の特異性及び機能性を立証するものである。

２．ＭＴＩＰによるタンパク質のプロファイリング及び再現性
ＭＴＩＰの性能について、ＦＦＰＥ乳がん患者腫瘍試料を、患者５の標的シークエンシング（表５及び表６）を介して確認されたＰＩＫ３Ｃａにおける既知のＨ１０４７Ｒ突然変異で染色することによって試験した（図１７ａ）。図１７ａの各パネルに、病理学者が目印を付けた腫瘍領域にまたがって無作為に選定されたＦＯＶにわたり平均化された６つのホスホマーカーすべての染色パターンが記載されている。同じＦＯＶからのホスホマーカーのスペクトルアンミキシングされた画像は腫瘍領域内での不均一な染色パターンを示し、これはマーカー毎に予想された生物学的発現パターンを反映するものである。これらのデータは、発現における幅広いダイナミックレンジにわたり多重化されたホスホマーカーシグナル伝達を、無傷のＦＦＰＥ固体腫瘍組織において細胞より小さい空間分解能で検出するＭＴＩＰの能力を実証するものである。

ＭＴＩＰ性能の再現性は、患者５の試料を使用して立証された（図１７Ｄ）。アッセイを３日連続で３回ずつ繰り返し（ｎ＝合計９回）、各マーカーの発現レベルを、隣接する連続切片中の均一なＲＯＩにおいて画像処理された組織区域にわたる平均値として測定した。ＭＴＩＰは、各ホスホマーカー毎に８０％という狭いマージンの範囲内で変動する染色レベル測定結果を提供する。すべてのマーカー間における変動係数は８パーセントから１３．８パーセントの範囲で変動し（図１７Ｄの左図の白いバー）、これは試験所で開発された生化学試験向けの全米病理学会（ＣＡＰ）のガイドラインと整合的な、アッセイプラットフォームにおける再現性レベルを意味する。

３．ＭＴＩＰによる、ＰＩ３Ｋ経路突然変異を生じた乳房腫瘍でのタンパク質プロファイリング
ＭＴＩＰを使用しての定量的ホスホ発現プロファイリングを、標的シークエンシングを通じて判定されたとおり、ＰＩ３Ｋ経路によく見られるゲノム異常を表す乳がんコホートにおいて実施した。これらの試料からの連続切片も同じく、ＥＲ、ＰＲ、Ｋｉ６７、Ｈｅｒ２及びＰＴＥＮを含む乳がんマーカーを使用してＩＨＣを介して染色し、これをゲノム状態だけから明らかになるとは限らないＰＩ３Ｋ活性化に対する他の寄与因子に関する理解を向上すべく、病理学者にスコアリングしてもらった（表６）。ＭＴＩＰは、個々の腫瘍が複雑なＰＩ３Ｋ経路のホスホ発現パターンを有することを明らかにした（個別のＲＯＩは図１８ａ、平均ＲＯＩは図１８ｂ）。第２に、ＭＴＩＰは、患者間における有意な、ホスホ発現の不均一性を明らかにした。ＭＴＩＰは、ＰＩ３Ｋ経路のホスホ活性化が必ずしもＰＩＫ３ｃａの突然変異状態だけから予測できるわけではないことを明らかにした（図１８ｃ）。例えば、患者１はＰＩＫ３ＣａにＥ５４５Ｋ突然変異を抱えていたが、高レベルのＰＩ３Ｋ経路活性化を示したわけではない。この標本は、低いＰＩ３Ｋ活性化を補助するＰＴＥＮ＋でもあった。あるいは、患者５の標本はＰＩＫ３ｃａにＨ１０４７Ｒ突然変異を維持していたほか、高いＨｅｒ２発現及びＰＴＥＮ陰性も示し（図１８ｃ）、これは付加的なインプットがＰＩ３Ｋ経路活性化に関わることを示唆する。これらのデータは、ＭＴＩＰを使用しての多重化ホスホ発現プロファイリングが、腫瘍形成に関する、より包括的な分析を生成する上で、伝統的なＩＨＣバイオマーカー評価及び遺伝子型情報を補完し得ることを意味する。

４．ＭＴＩＰによる、乳房腫瘍におけるタンパク質不均一性のマッピング
コンピュータ処理によるパターン認識を使用して、発現パターンが同等の区域を表現型群又は「発現クラスタ」へとセグメント化した。平均シフトクラスタ分析を使用して、固有のリン酸化パターンを識別した（図１１）。表現型を、６つのマーカーにまたがって相対的なリンタンパク質発現のパターンが似ている腫瘍の領域として定義し、各クラスタに属する２次元の腫瘍区域を色分けして、捕捉された腫瘍視野内に存在する、認識された表現型を表すようにした（ｎ＝８）（図１９ａ）。各表現型クラスタを、腫瘍の空間的広がりにまたがって色分けし（図１９ｂ）、（面積が）最も大きい３つの表現型クラスタ内のホスホマーカー毎に測定されて発現レベルの分布をプロット化した（図１９ｃ）。表現型の階層型クラスタ化がヒートマップに示され、系統樹形式でランク付けされている（図１９ｄ）。４つの腫瘍例について色分けされた表現型マップを検証すると、いくつかの所感に繋がる。まず、複数の固有のＰＩ３Ｋ経路リン酸化表現型が、複数の個別の腫瘍にまたがって不均一な空間分布で存在する。各患者は、同じ腫瘍組織内に、特徴的なシグナル伝達経路リン酸化表現型を複数有する。患者３は対象のすべての領域で認識される同じ表現型を有する一方、患者４は捕捉された領域のサブセットに固有の表現型をいくつか有する。腫瘍内及び腫瘍間において、ｐＥＲＫ及びｐＡＫＴ３０８の比率の顕著な変動性が明らかであり、またｐＡＫＴ４７３，ｐＲＡＳ４０、ｐＳ６のパターンは患者間で有意な差があると見られる。階層型分析の結果、予想されたＰＩ３Ｋ経路リン酸化表現型は、マーカー毎のホスホ発現プロファイリングによって表されるような、認識された遺伝子型（野生型、ＡＫＴ１又はＰＩＫ３ＣＡ突然変異）との相関関係はあまりないことが分かった（図１８ｂ及び図１８ｃ及び図１９ｃ）。すべての腫瘍において、間質組織は、６つのＰＩ３Ｋネットワーク成分すべてにおける低めのホスホ活性化レベルによって、上皮組織からセグメント化される（灰色のクラスタ、図１９ａ、図１９ｂ、図１９ｃ）。注目すると興味深いのは、小さい細胞集団に限り出現した表現型の存在である（図１９ｂ、５−ＣＡ３、３−ＣＡ１、及び２−ＣＡ１）。そうしたデータは、これらの特定の異常な上皮のサブタイプについて、さらなる特徴付けが必要であることを意味する。したがって、ＭＴＩＰクラスタ分析は異なるホスホ活性化表現型に関する定量的データを提供し、この情報は、組織材料を均一化する、又はより広い区域にわたり平均化する、直交的方法では失われてしまう。

同一のＰＩ３Ｋ経路突然変異を生じた標本の不均一性をさらに理解するため、ホスホシグナル伝達ネットワークの不均一性を、ＰＩＫ３Ｃａ ＷＴ又はＰＩＫ３Ｃａ Ｅ５４５Ｋ（ＰＩ３Ｋ経路シグナル伝達を活性化することが既に示されている（Ｚａｒｄａｖａｓ ｅｔ ａｌ．２０１４）））のいずれかに該当する浸潤性腺管癌（ＩＤＣ）の領域が十分に定義されている乳房病変標本において評価した（図２０）。クラスタ分析からの結果を、従前の患者コホートに関して、ゲノム状態と比較した（図２０ｃ〜図２０ｅ）。希な表現型の小さいクラスタが、より大きい、異なる表現型を含有する領域内に存在していた（図２０ａ及び図２０ｂ、図１９ａ及び図１９ｂ）。異なる表現型の分布は患者によって差があった一方、表現型の大多数は、比例的に規模が大きくなるｐＥＲＫ＋ｐＡＫＴ Ｔ３０８の特性から成り、ｐＡＫＴ３０８のシグナルレベルはすべてのクラスタにおいてｐＥＲＫのレベルより高かった（図２０ｄ）。階層型分析では、図１９での分析と似た、間質組織領域の表現型グループ化を示した一方、これらの腫瘍は、対応する遺伝子型を有するホスホ表現型（野生型又はＥ５４５Ｋ突然変異）の間における明確な関係を示さなかった。

これらの実施例において、遺伝子型情報だけでは、リンタンパク質活性化レベルを予測するには不十分と見られる。これらの結果は、既存のゲノム情報及びＩＨＣバイオマーカー情報を補完するホスホプロテオーム情報をＭＴＩＰが提供する潜在性を強調するものである。

図２１は、本発明の画像処理方法の一実施例を示す図である。多重スペクトル画像１００がｘ−ｙ面に提供される。多重スペクトル画像１００は、画像スタック１０２を提供するよう、アンミキシング操作によってアンミキシングされる。

本明細書において検討される実施例では、多重スペクトル画像１００のチャネル数ｎが５であることから、アンミキシング操作により、ｎ＝５の層、Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３、Ｌ４、Ｌ５が多数提供され、各層をそれぞれ単一チャネル画像として表示させることができる。したがって、本明細書において検討される実施例では、画像スタック１０２はｎ＝５の単一チャネル画像１０４、１０６、１０８、１１０及び１１２を多数含む。アンミキシング操作から生成される画像スタック１０２はｎ＋２次元の空間を創出し、この空間で各ポイントＰ_ｉがｘ−ｙ面での空間座標、すなわちｘ_ｉ，ｙ_ｉ、及び位置ｘ_ｉ，ｙ_ｉにおけるｎ個の単一チャネル画像での各々の強度値によって与えられる。例えば、ポイントＰ_ｉについてのＬ１面上での強度値、及び結果的なポイントＰ_ｉのｎ＋２次元空間における第３の座標の値はＩ_ｉ（Ｌ１）、すなわち位置ｘ_ｉ，ｙ_ｉにおける層Ｌ１上での強度値である。同様に、ポイントＰ_ｉのさらなる座標値はＩ_ｉ（Ｌ２）、Ｉ_ｉ（Ｌ３）、Ｉ_ｉ（Ｌ４）、及びＩ_ｉ（Ｌ５）によって与えられる。言い換えれば、
ポイントＰ_ｉ＝（ｘ_ｉ，ｙ_ｉ，Ｉ_ｉ（Ｌ２），Ｉ_ｉ（Ｌ３），Ｉ_ｉ（Ｌ４），Ｉ_ｉ（Ｌ５））である。

次いで、非監視型、ノンパラメトリック、密度ベースのクラスタ化アルゴリズム、例えば平均シフトクラスタ化アルゴリズムを適用する画像スタック１０２により、ｎ＋２次元の空間内のポイントをクラスタ化するための、クラスタ化操作を実施する。本明細書において検討される実施例では、これにより多数のクラスタが提供され、それらのうち２つが例示目的で図２１に記載されており、すなわちクラスタＣ１及びＣ２である。クラスタ化アルゴリズムによって識別済みのクラスタは各々、ｎ＋２次元の空間において比較的近接する画像スタック１０２のポイントを多数含有し、適切な距離尺度、例えばユークリッド距離尺度を適用して、ｎ＋２次元の空間における２つのポイントＰ_ｉとＰ_ｊとの間の距離を測定する。

例えば、多重スペクトル画像１００の取得元である細胞試料の不均一性は、クラスタ化アルゴリズムによって識別される異なるクラスタの数で表すことができる。クラスタ化の結果は、使用者が単一チャネル画像１０４〜１１２のうち１つ、例えば表示装置１１７に表示される単一チャネルチャネル画像１０８を選択したことの入力などによって、可視化することができる。ｘ−ｙ面におけるクラスタＣ１及びＣ２の境界設定１１４、１１６は、クラスタＣ１及びＣ２をｘ−ｙ空間に投影することにより、単一チャネル画像１０８上のオーバーレイとして表示される。ｘ−ｙ空間における結果的な境界設定は、例えばクラスタＣ１の境界設定１１４及びクラスタＣ２の境界設定１１６として、表示装置１１７に表示される。

さらなる一実施形態によれば、使用者は単一チャネル画像１０４〜１１２から複数の画像を選択することにより、これら複数の単一チャネル画像を表示装置に同時に表示させることができる。境界設定１１４及び１１６は、表示される単一チャネル画像の一部又は全部に表示され得る。

本発明の実施形態は、ヒトの目にはっきり見えないクラスタがヒトの想像から隠されるｎ＋２次元の空間へと拡大するにつれ、ｎ＋２次元の空間でのクラスタ化及びその後におけるｘ−ｙ面でのクラスタ画像処理によって明らかになってくることから、特に有利である。言い換えれば、本発明の実施形態は、細胞試料における不均一性に関する極めて重要な情報を提供する画像スタックの複数の層にまたがって形成される画像スタック１０２でのクラスタの存在の検出を可能にする。そのようなクラスタの検出、例えばクラスタ数及び／又はクラスタの位置の検出は、疾患の状態に関する結論、特に薬物投与の是非に関する結論を引き出す根拠となる、重要な情報を示すものである。例えば、クラスタ数が閾値に満たず、低い度合いの不均一性を示す場合、これは化学療法を施す必要がないことを示唆し得る。さらに、クラスタの位置の検出及び画像処理は、手術計画のための重要な情報源となり得る。

本発明の一実施形態によれば、画像スタック１０２に含まれるポイントは、これらのポイントのビニングによってローパスフィルタ処理される。例えば、これはｘ−ｙ面内で動かされる２×２の正方形など、ｐ×ｐの正方形を使用して実装され得る。ｐ×ｐの正方形の各位置において、その正方形内のポイントの平均強度値は次元毎に計算され、各次元の単一平均強度値は正方形のその位置について出力され、その後、正方形は次のタイルへと動かされる。画像スタック１０２の全体をこのように処理すると、ポイントの数がｐ×ｐ分の１に経る結果となる。ポイント数が減ると、クラスタ化アルゴリズムに必要な実行時間が短縮され、またノイズを除去するローパスフィルタ処理により、クラスタ化の安定性が高まる。クラスタ化の結果、すなわち境界設定１１４及び１１６は、次いで最大分解能の画像、例えば図２１に記載の単一チャネル画像１０８に重ね合わされる。

５．論考
ＭＴＩＰ技術は、がん細胞モデル及び臨床乳がん組織における多重化リンタンパク質発現を捕捉及び測定することができる。我々は、乳がん標本における表現型の識別及びシグナル伝達経路の不均一性の定量を、強固な機械学習パターン認識アルゴリズムを使用して行うための、実用的アプローチを提示する。我々は、特徴付けられた腫瘍試料における細胞表現型に関連する情報を提供するＭＴＩＰ技術の能力を実証し、この情報は、直交的アプローチによって現在のバイオマーカーを使用してアクセスすることが不可能であるため、既存のバイオマーカー及びゲノムの情報を補うものである。

ＰＩ３Ｋ経路は、ＰＩＫ３Ｃａにおけるゲノム突然変異（すべての乳がん８〜１０の約３０％に認められる）、ＰＴＥＮ発現損失（例えばＰＴＥＮ欠損又は後成的サイレンシングを介した損失）及び受容体チロシンキナーゼ（ＲＴＫ）増幅（例えばＨｅｒ２過剰発現）を含む、様々なメカニズムを経て活性化され得る。ＰＩ３Ｋ経路の異常なリン酸化状態は、ＰＩ３Ｋ経路活性化の結果であり、ＰＩ３Ｋ経路変更の根本原因は無関係である。我々の実験は、ＰＩ３Ｋ経路活性化が多様なインプットに由来し得、これは罹患した組織におけるホスホ活性化表現型の予測を遺伝子型決定の使用だけで容易に行えるものではないことを意味する、という事実を強調するものであり、したがってＭＴＩＰを使用してＰＩ３Ｋ経路マーカーのリン酸化状態を評価すれば、既存の診断ツールを補うことができる。

不均一性分析及び表現型クラスタ化を通じ、上記は、従来型の生化学分析を使用すると失われてしまうと予想される、小さいながらも潜在的に重要な表現型群を解決する能力を実証するものである。結果は、表現型の不均一性を背景とするネットワークシグナル伝達経路活性化のプロテオーム定量におけるＭＴＩＰの性能及び関連性を強調するものである。ＭＴＩＰ分析から導き出されるホスホ発現プロファイルは、ゲノム情報及び他のバイオマーカー情報と相互に関連付けるか、又は比較することができる。ＰＩ３Ｋシグナル伝達の文脈において、ＰＩ３Ｋ経路を標的とする様々な単一の薬剤の開発が進められており、また様々な臨床開発段階にある（Ｈａｓｓａｎ ｅｔ ａｌ．２０１３；Ｆｒｕｍａｎ ａｎｄ Ｒｏｍｍｅｌ Ｎａｔ． Ｒｅｖ Ｄｒｕｇ Ｄｉｓｃｏ ２０１４）。上記の結果は、ＰＩ３Ｋ経路活性化の阻害に向けた個別治療の決定に影響を及ぼし得る患者特異的なホスホ発現特性を、ＭＴＩＰが識別し得ることを意味する。しかし、成功する標的療法の将来は、様々な組み合わせでの経路特異的な阻害剤の使用が頼りとなり得る（ＡＬ−Ｌａｚｉｋａｎｉ Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈ ２０１２；Ｂｏｚｉｋ ｅｔ ａｌ．２０１３）。多重経路ホスホ発現プロファイル（例えば本書に記載のＰＩ３Ｋ及びＭＡＰＫ）を背景に、ＭＴＩＰは、患者単位の併用療法の使用に文脈を持たせ得る、ホスホプロテオームデータを提供し得る。
本願発明の実施形態は、例えば、以下の各発明を含むが、これに限定されない。
［発明１］
検出可能マーカーで標識された１つ又は複数の被分析物を含む、細胞試料における不均一性を特徴付ける方法であって、様々な発現パターンの複数のクラスタを含むクラスタマップを作成するために、前記細胞試料の画像から得られるデータセットに対してクラスタ分析を適用するようプログラムされたコンピュータプロセッサを含むコンピュータ装置上で前記細胞試料の画像を分析するステップを含み、
（ａ）前記データセットは前記細胞試料の画像の少なくとも一部について１つの画像スタックを含み、前記画像スタックはｘ軸、ｙ軸及びｚ軸を含み、前記ｘ軸及び前記ｙ軸は画像の部分内の空間座標を表し、前記ｚ軸はいくつかのｎ個の層を含み、前記ｚ軸の各層は単一の検出可能マーカーについての複数のｘ，ｙ座標での強度データを含み、
（ｂ）前記クラスタ分析は、非監視型、ノンパラメトリック、密度ベースのクラスタ化アルゴリズムを画像スタックに適用するステップを含み、前記クラスタ化アルゴリズムは少なくともｎ＋２次元の空間において前記データセットによって定義されるポイント（Ｐ _ｉ ，Ｐ _ｊ ）をクラスタ化し、前記空間で各ポイントはｘ，ｙ座標及び画像スタック内の各々のｘ，ｙ座標におけるｎ個の層からのｎ個の強度データ値によって与えられることにより、前記複数のクラスタを生成し、
（ｃ）出力データの出力は前記クラスタ分析の結果を表し、前記データは前記細胞試料における不均一性を示すものである
方法。
［発明２］
前記画像が多重チャネル画像であり、前記多重チャネル画像のアンミキシングによって前記ｎ個の層が得られる発明１に記載の方法。
［発明３］
前記多重チャネル画像及び／又は１つ又は複数の単一チャネル画像を表示することによってデータの前記出力が実施され、単一チャネル画像が、前記多重チャネル画像及び／又は少なくとも１つの単一チャネル画像内のクラスタの境界設定を可視化することによって、ｎ個の層のうち１つの表示により与えられる発明１又は２に記載の方法。
［発明４］
前記データセット内でクラスタ毎の比例的区域を表示するクラスタヒストグラムを生成するステップをさらに含み、前記クラスタヒストグラムがステップｃで出力されるデータである発明１、２又は３に記載の方法。
［発明５］
前記画像スタックをローパスフィルタ処理しビニングされた画像スタックを提供するためのｘｙ分解能を低減するためにｎ＋２次元の空間のポイントをビニングするステップをさらに含み、ステップｂでの前記クラスタ分析が前記ビニングされた画像スタック上で実施される前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明６］
細胞試料の少なくとも１つの対象区域（ＡＯＩ）内の少なくとも１つの視野（ＦＯＶ）に画像の一部が該当する前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明７］
前記出力データが前記クラスタ分析の結果におけるクラスタ数を示すデータを含む前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明８］
前記密度ベースのクラスタ化アルゴリズムが平均シフトクラスタ化アルゴリズムであり、前記平均シフトクラスタ化アルゴリズムへの入力が画像スタックであり、前記平均シフトアルゴリズムの出力がｘ，ｙアレイであり、ｘ座標及びｙ座標が入力された画像スタックの空間座標であり、各ｘ，ｙ座標での値が任意のｘ，ｙ座標が属するクラスタ番号を示
す標識である前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明９］
組織試料の画像が医師による注釈付け向けにデジタル表示され得る解剖学的組織の屈折率コントラスト画像であり、解剖学的組織に基づいてＡＯＩが選定される前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明１０］
前記データセットが、
（ａ１）前記画像内の複数のＡＯＩ各々についてＦＯＶサンプリング格子を計算するステップと、
（ａ２）各ＦＯＶ内の単一又は複数のｚ面にて多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータを自動的に収集するステップと、
（ａ３）検出可能マーカーシグナルを多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータからコンピュータ処理によりセグメント化するステップと、
（ａ４）前記クラスタ分析において１つのグループとして比較されることになるＦＯＶを選択してデータセット構造に入れ込むステップと、
（ａ５）形態学的特徴の自動セグメント化を前記データセット内の各ＦＯＶの各検出可能マーカーシグナルに適用するステップと
を含む方法によって得られる前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明１１］
前記ＦＯＶサンプリング格子がＡＯＩにまたがり規則的な間隔で配置された複数のＦＯＶを含む発明１０に記載の方法。
［発明１２］
各ＦＯＶのｚ面からの前記多重スペクトルデータ及び／又は前記ハイパースペクトルデータが、患者、アッセイ、生検、切片、ＡＯＩ位置及び／又はＦＯＶ位置に対するメタデータ特性と併せて、ネスト化されたデータ構造又はデータベースに自動記憶される発明１０に記載の方法。
［発明１３］
（ａ４ａ）１つのグループとしての比較対象として選択される前記ＦＯＶが同一組織切片中の別々の腫瘍病巣に相当するか、又は
（ａ４ｂ）前記ＦＯＶが同一患者から採取された別の生検材料と比較するために同一患者から採取された生検材料に基づいてグループ化されるか、又は
（ａ４ｃ）ＦＯＶが腫瘍部位に基づいてグループ化されるか、又は
（ａ４ｄ）ＦＯＶが患者に基づいて別の患者と比較するためにグループ化されるか、又は（ａ４ｅ）ＦＯＶが腫瘍遺伝子型に基づいてグループ化される
発明１０に記載の方法。
［発明１４］
特徴のセグメント化がサイズの制約、強度の制約、又はサイズの制約と強度の制約との組み合わせに基づく発明１０に記載の方法。
［発明１５］
前記データセットを取得する方法が、
（ａ６）１つ又は複数のＦＯＶにおいて、前記クラスタ分析に含めるか、又は前記クラスタ分析から除外する領域を手作業で指定するステップ
をさらに含む発明１０から１４のいずれか一項に記載に記載の方法。
［発明１６］
前記検出可能マーカーが、共局在化され、定量可能な場合、スペクトル又は他の物理的特徴に基づいて他のマーカー及び組織から分離されるシグナルを生成する前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明１７］
前記検出可能マーカーが抗体に付加される発明１６に記載の方法。
［発明１８］
前記検出可能標識が少なくとも１つのリン酸化タンパク質に対して特異的に結合する少なくとも１つの抗体に付加される前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明１９］
前記少なくとも１つのリン酸化タンパク質がＰＩ−３キナーゼシグナル伝達経路又はＭＡＰキナーゼシグナル伝達経路のメンバーである前記発明のいずれか一項に記載の方法。
［発明２０］
前記少なくとも１つのリン酸化タンパク質がＡＫＴ、ＰＲＡＳ４０、Ｓ６、ＥＩＦ４Ｇ及びＥＲＫ１／２から成る群から選択される発明１９に記載の方法。
［発明２１］
前記組織が二温度固定法を使用して固定された発明１８から２０のいずれか一項に記載の方法。
［発明２２］
腫瘍中におけるシグナル伝達経路の生理学的状態に応じて前記腫瘍を特徴付ける方法であって、前記発明のいずれか一項に記載の方法に従って前記腫瘍の試料の画像を分析するステップを含み、
複数の被分析物が前記検出可能マーカーで標識され、
前記検出可能マーカーで標識される前記被分析物のうち少なくとも１つがリン酸化シグナル伝達タンパク質であり、
前記画像の各ＦＯＶ内の単一又は複数のｚ面にて、ハイパースペクトル又は多重スペクトルのデータが収集される
方法。
［発明２３］
細胞試料における不均一性を自動的に識別するシステムであって、
（ａ）分析用画像処理分析システムを含み、前記分析用画像処理分析システムは、
プロセッサと、
前記プロセッサに結合され、前記プロセッサによって実行されたとき前記発明のいずれか一項に記載の方法を含む操作を前記プロセッサに実施させるコンピュータ実行可能な命令を記憶するメモリと
を含む、システム。
［発明２４］
（ｂ）前記細胞試料のデジタル化画像並びに前記細胞試料からの多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータを捕捉するよう、また前記デジタル化画像を分析用画像処理分析システムへ伝達するように適合された、分析用画像処理ハードウェアシステム
をさらに含む発明２３に記載のシステム。
［発明２５］
対象の１つ又は複数の被分析物が検出可能標識で標識される細胞試料を含有するスライドをさらに含む発明２４に記載のシステム。
［発明２６］
前記細胞試料が二温度固定法を使用して保存済みのホルマリン固定パラフィン包埋組織試料であり、前記検出可能標識が少なくとも１つのリン酸化タンパク質に特異的に結合する少なくとも１つの抗体に付加される発明２５に記載のシステム。
［発明２７］
前記少なくとも１つのリン酸化タンパク質がＰＩ−３キナーゼシグナル伝達経路又はＭＡＰキナーゼシグナル伝達経路のメンバーである発明２６に記載のシステム。
［発明２８］
前記少なくとも１つのリン酸化タンパク質がＡＫＴ、ＡＫＴ、ＰＲＡＳ４０、Ｓ６、ＥＩＦ４Ｇ及びＥＲＫ１／２から成る群から選択される発明２６に記載のシステム。
［発明２９］
（ｃ）リレーショナルデータベース
をさらに含む発明２３から２８のいずれか一項に記載のシステム。
［発明３０］
前記発明のいずれか一項に記載の方法を含む操作を実施するためにプロセッサによって実行されるコンピュータ実行可能な命令を記憶するための、非一時的なコンピュータ可読記憶媒体。
［発明３１］
リン酸化プロファイルに従って腫瘍を特徴付ける方法であって、
（ａ）腫瘍領域を他の非腫瘍領域と区別するために形態学的詳細を明らかにするように腫瘍の細胞試料のデジタル画像を捕捉するステップであって、
（ａ１）前記腫瘍の前記細胞試料は検出可能に標識された複数の特異的結合剤で標識され、
（ａ２）前記複数の特異的結合剤のうち少なくとも１つはリン酸化された形態のシグナル伝達タンパク質に特異的であり、
（ａ３）前記特異的結合剤の前記検出可能標識は、
（ａ３ａ）相互に共局在化される場合はスペクトル特性に基づいて相互に分離可能であり、
（ａ３ｂ）前記細胞試料から分離可能であり、
（ａ３ｃ）定量可能である、ステップと、
（ｂ）前記細胞試料の腫瘍領域内の１つ又は複数の対象区域（ＡＯＩ）を選択するため前記細胞試料の前記デジタル画像に注釈付けする機能をプロセッサ上で実行するステップと、
（ｃ）前記画像内の各ＡＯＩについて視野（ＦＯＶ）のサンプリング格子を計算する機能をプロセッサ上で実行し、各ＦＯＶの単一又は複数のｚ面において多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータを収集するステップと、
（ｄ）検出可能マーカーシグナルをコンピュータ処理により多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータからセグメント化する機能をプロセッサ上で実行するステップと、
（ｅ）相互に比較されることになるＦＯＶをデータセット構造に配置する機能をプロセッサ上で実行するステップと、
（ｆ）任意選択で、サイズの制約、強度の制約、又はサイズの制約と強度の制約との組み合わせに基づいて形態学的特徴の自動セグメント化をデータセット内の各ＦＯＶの各検出可能マーカーシグナルに適用して、クラスタ分析から除外されることになるＦＯＶの領域を識別する機能をプロセッサ上で実行するステップと、
（ｇ）任意選択で、１つ又は複数のＦＯＶにおいて前記クラスタ分析に含めるか、又は前記クラスタ分析から除外することになる領域の手動での指定を可能にする機能をプロセッサ上で実行するステップと、
（ｈ）ｘ軸、ｙ軸及びｚ軸を有する画像スタック内に前記データセット構造をロードする機能をプロセッサ上で実行するステップであって、前記ｘ軸及び前記ｙ軸がＦＯＶ内の空間座標を表し、前記ｚ軸が１つ又は複数の層を含み、前記ｚ軸の各層が単一の検出可能マーカーについての複数のｘ，ｙ座標での強度データを含む、ステップと、
（ｉ）非監視型、ノンパラメトリック、密度ベースのクラスタ化アルゴリズムを前記画像スタックに適用して、ｘ，ｙ座標を、複数のｚ軸層にまたがる検出可能マーカー強度の比率が同等である他のｘ，ｙ座標と一緒にグループ化する機能をプロセッサ上で実行して、同等の発現パターンを有する複数のクラスタを生成するステップであって、各クラスタはリン酸化プロファイルを示すものである、ステップと
を含む方法。
［発明３２］
前記非監視型、ノンパラメトリック、密度ベースのクラスタ化アルゴリズムが平均シフトクラスタ化アルゴリズムであり、前記平均シフトクラスタ化アルゴリズムへの入力が前
記画像スタックであり、前記平均シフトアルゴリズムの出力がｘ，ｙアレイであり、前記ｘ座標及びｙ座標が入力された画像スタックの空間座標であり、各ｘ，ｙ座標での値が任意のｘ，ｙ座標が属するクラスタ番号を示す標識である発明３１に記載の方法。
［発明３３］
前記細胞試料が組織試料であり、前記組織試料の画像が医師による注釈付け向けにデジタル表示され得る解剖学的組織の屈折率コントラスト画像であり、解剖学的組織に基づいてＡＯＩが選定される発明３１に記載の方法。
［発明３４］
前記ＦＯＶサンプリング格子がＡＯＩにまたがり規則的な間隔で配置された複数のＦＯＶを含む発明３１に記載の方法。
［発明３５］
各ＦＯＶのｚ面からの前記多重スペクトルデータ及び／又は前記ハイパースペクトルデータが、患者、アッセイ、生検、切片、ＡＯＩ位置及び／又はＦＯＶ位置に対するメタデータ特性と併せて、ネスト化されたデータ構造又はデータベースに自動記憶される発明３１に記載の方法。
［発明３６］
（ａ４ａ）１つのグループとしての比較対象として選択される前記ＦＯＶが同一組織切片中の別々の腫瘍病巣に相当するか、又は
（ａ４ｂ）前記ＦＯＶが同一患者から採取された別の生検材料と比較するために同一患者から採取された生検材料に基づいてグループ化されるか、又は
（ａ４ｃ）ＦＯＶが腫瘍部位に基づいてグループ化されるか、又は
（ａ４ｄ）ＦＯＶが患者に基づいて別の患者と比較するためにグループ化されるか、又は（ａ４ｅ）ＦＯＶが腫瘍遺伝子型に基づいてグループ化される
発明３１に記載の方法。
［発明３７］
前記リン酸化タンパク質のうち少なくとも１つがＰＩ−３キナーゼシグナル伝達経路又はＭＡＰキナーゼシグナル伝達経路のメンバーである発明３１に記載の方法。
［発明３８］
前記リン酸化タンパク質のうち少なくとも１つがＡＫＴ、ＰＲＡＳ４０、Ｓ６、ＥＩＦ４Ｇ及びＥＲＫ１／２から成る群から選択される発明３１に記載の方法。
［発明３９］
前記細胞試料が二温度固定法を使用して固定された組織試料である発明３１に記載の方法。
［発明４０］
前記方法が（ａ）に従って前記デジタル化画像を捕捉するよう、また前記デジタル化画像を分析用画像処理分析（ＡＩＡ）システムへ伝達するように適合された分析用画像処理ハードウェアシステムを含むシステム上で実行され、前記ＡＩＡシステムが、プロセッサと、前記プロセッサに結合され、前記プロセッサによって実行されたとき（ｂ）から（ｉ）の操作をプロセッサに実施させるコンピュータ実行可能な命令を記憶するメモリとを含む発明３１に記載の方法。
［発明４１］
表示装置（１１７）を含む多重スペクトル画像処理システムによって実装される細胞試料画像処理方法であって、
細胞試料から多重スペクトルピクセルを含む画像データ（１００）を取得するステップと、
ｎ個の単一チャネル画像（１０４、１０６、１０８、１１０、１１２）を多数提供する多重スペクトルピクセルをスペクトルアンミキシングするステップと、
非監視型、ノンパラメトリック、密度ベースのクラスタ化アルゴリズムを前記ｎ個の単一チャネル画像によって与えられるｎ＋２次元の空間で応用することにより、複数のクラスタ（Ｃ１、Ｃ２）を生成するステップを含むクラスタ分析を実施するステップと、
クラスタ化によって得られたクラスタ化の結果の表現（１１４、１１６）を前記表示装置（１１７）に表示させるステップと
を含む方法。
［発明４２］
前記単一チャネル画像（１０８）のうち少なくとも１つを表示させるステップと、前記クラスタ化の結果の前記表現（１１４、１１６）を前記少なくとも１つの単一チャネル画像にオーバーレイとして表示させるステップとをさらに含む発明４０に記載の方法。
［発明４３］
単一チャネル画像の数ｎが３個より多いか又は４個より多い発明４０又は４１に記載の方法。
［発明４４］
前記クラスタ化アルゴリズムを実施する前に、前記アンミキシングされた画像データでローパスフィルタ処理される発明４０、４１又は４２に記載の方法。
［発明４５］
前記クラスタ化アルゴリズムを実施する前に、前記アンミキシングされた画像データがビニングされ、前記表示される画像（１０８）が、ビニングされなかった画像データの分解能を有する発明４０から４３のいずれか一項に記載の方法。

Claims (15)

1. 検出可能マーカーで標識された１つ又は複数の被分析物を含む、細胞試料における不均一性を特徴付ける方法であって、様々な発現パターンの複数のクラスタを含むクラスタマップを作成するために、前記細胞試料の画像から得られるデータセットに対してクラスタ分析を適用するようプログラムされたコンピュータプロセッサを含むコンピュータ装置上で前記細胞試料の画像（１００）を分析するステップを含み、前記細胞試料が、生体組織試料を含み、
   （ａ）前記データセットは前記細胞試料の画像の少なくとも一部について１つの画像スタック（１０２）を含み、前記画像スタックはｘ軸、ｙ軸及びｚ軸を含み、前記ｘ軸及び前記ｙ軸は画像の部分内の空間座標を表し、前記ｚ軸は２つ又はそれより多いｎ個の層（Ｌ１、Ｌ２、Ｌ３．．．、Ｌｎ）を含み、前記ｚ軸の各層は単一の検出可能マーカーについての複数のｘ，ｙ座標での強度データを含み、
   （ｂ）前記クラスタ分析は、非監視型、ノンパラメトリック、及び、密度ベースのクラスタ化アルゴリズムを画像スタックに適用するステップを含み、前記クラスタ化アルゴリズムは少なくともｎ＋２次元の空間において前記データセットによって定義されるポイント（Ｐ_ｉ，Ｐ_ｊ）をクラスタ化し、前記空間で各ポイントはｘ，ｙ座標及び画像スタック内の各々のｘ，ｙ座標におけるｎ個の層からのｎ個の強度データ値によって与えられることにより、前記複数のクラスタを生成し、
   （ｃ）出力データ（１１４、１１６）の出力は前記クラスタ分析の結果を表し、前記データは前記細胞試料における不均一性を示すものであり、
   前記画像が多重スペクトル画像であり、前記多重スペクトル画像のアンミキシングによって前記ｎ個の層が得られる方法。
2. 前記多重スペクトル画像（１００）及び／又は１つ又は複数の単一チャネル画像（１０４、１０６、１０８、１１０、１１２）を表示することによってデータの前記出力が実施され、単一チャネル画像が、前記多重チャネル画像及び／又は少なくとも１つの単一チャネル画像内のクラスタの境界設定（１１４、１１６）を可視化することによって、ｎ個の層のうち１つの表示により与えられる請求項１に記載の方法。
3. 前記データセット内でクラスタ毎の比例的区域を表示するクラスタヒストグラムを生成するステップをさらに含み、前記クラスタヒストグラムがステップｃで出力されるデータである請求項１又は２に記載の方法。
4. 前記画像スタックをローパスフィルタ処理するためにｎ＋２次元の空間のポイントをビニングし、ｘｙ分解能を低減してビニングされた画像スタックを提供するステップをさらに含み、ステップｂでの前記クラスタ分析が前記ビニングされた画像スタック上で実施される請求項１から３のいずれか一項に記載の方法。
5. 細胞試料の少なくとも１つの対象区域（ＡＯＩ）内の少なくとも１つの視野（ＦＯＶ）に画像の一部が該当する請求項１から４のいずれか一項に記載の方法。
6. 前記出力データが前記クラスタ分析の結果におけるクラスタ数を示すデータを含む請求項１から５のいずれか一項に記載の方法。
7. 前記密度ベースのクラスタ化アルゴリズムが平均シフトクラスタ化アルゴリズムであり、前記平均シフトクラスタ化アルゴリズムへの入力が画像スタックであり、前記平均シフトアルゴリズムの出力がｘ，ｙアレイであり、ｘ座標軸及びｙ座標軸が、入力された画像スタックの空間座標軸であり、各ｘ，ｙ座標での値が、各々のｘ，ｙ座標が属するクラスタ番号を示す標識である請求項１から６のいずれか一項に記載の方法。
8. 細胞試料の画像が医師による注釈付け向けにデジタル表示され得る解剖学的組織の屈折率コントラスト画像であり、解剖学的組織に基づいてＡＯＩが選定される請求項１から７のいずれか一項に記載の方法。
9. 前記データセットが、
   （ａ１）前記画像内の複数のＡＯＩ各々についてＦＯＶサンプリング格子を計算するステップと、
   （ａ２）各ＦＯＶ内の単一又は複数のｚ面にて多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータを自動的に収集するステップであって、前記ｚ面が、組織深度を含むものと、
   （ａ３）検出可能マーカーシグナルを多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータからコンピュータ処理によりセグメント化するステップと、
   （ａ４）前記クラスタ分析において１つのグループとして比較されることになるＦＯＶを選択してデータセット構造に入れ込むステップと、
   （ａ５）形態学的特徴の自動セグメント化を前記データセット内の各ＦＯＶの各検出可能マーカーシグナルに適用するステップと、
   を含む方法によって得られる請求項１から８のいずれか一項に記載の方法。
10. （ａ４ａ）１つのグループとしての比較対象として選択される前記ＦＯＶが同一組織切片中の別々の腫瘍病巣に相当するか、又は
    （ａ４ｂ）前記ＦＯＶが同一患者から採取された別の生検材料と比較するために同一患者から採取された生検材料に基づいてグループ化されるか、又は
    （ａ４ｃ）ＦＯＶが腫瘍部位に基づいてグループ化されるか、又は
    （ａ４ｄ）ＦＯＶが患者に基づいて別の患者と比較するためにグループ化されるか、又は（ａ４ｅ）ＦＯＶが腫瘍遺伝子型に基づいてグループ化される、
    請求項９に記載の方法。
11. 前記形態学的特徴のセグメント化がサイズの制約に基づく請求項９に記載の方法。
12. 腫瘍中におけるシグナル伝達経路の生理学的状態に応じて前記腫瘍を特徴付ける方法であって、請求項９から１１のいずれか一項に記載の方法に従って前記腫瘍の試料の画像を分析するステップを含み、
    複数の被分析物が前記検出可能マーカーで標識され、
    前記検出可能マーカーで標識される前記被分析物のうち少なくとも１つがリン酸化シグナル伝達タンパク質であり、
    前記画像の各ＦＯＶ内の単一又は複数のｚ面にて、ハイパースペクトル又は多重スペクトルのデータが収集される、
    方法。
13. 細胞試料における不均一性を自動的に識別するシステムであって、
    （ａ）分析用画像処理分析システムを含み、前記分析用画像処理分析システムは、
    プロセッサと、
    前記プロセッサに結合され、前記プロセッサによって実行されたとき請求項１から１１のいずれか一項に記載の方法を含む操作を前記プロセッサに実施させるコンピュータ実行可能な命令を記憶するメモリと、
    を含む、システム。
14. （ｂ）前記細胞試料のデジタル化画像並びに前記細胞試料からの多重スペクトルデータ及び／又はハイパースペクトルデータを捕捉するよう、また前記デジタル化画像を分析用画像処理分析システムへ伝達するように適合された、分析用画像処理ハードウェアシステム、
    をさらに含む請求項１３に記載のシステム。
15. 請求項１から１２のいずれか一項に記載の方法を含む操作を実施するためにプロセッサによって実行されるコンピュータ実行可能な命令が記憶された非一時的なコンピュータ可読記憶媒体。