JP2019528284A - 核酸産物およびその投与方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2016年8月17日に出願された米国特許仮出願第62/376,209号、および2017年5月22日に出願された米国特許仮出願第62/509,350号に対する優先権を主張する。前述の特許出願の全内容は、参照により本明細書に組み込まれる。
本発明は、一部分は、細胞、組織、器官、および患者において核酸を産生し、これらに送達するための方法、組成物、および産物、細胞、組織、器官、および患者において、タンパク質を発現させるための方法、ならびにこれらの方法、組成物、および産物を用いて生成される細胞、治療薬、および化粧品に関する。
本出願は、EFSウエブによりASCIIフォーマットで提出された配列表を含み、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。2017年8月17日に作成された該ASCIIコピーは、FAB−010PC_ST25と命名され、2.32MBのサイズである。
リボ核酸(RNA)は、原核細胞および真核細胞の両方で広く分布し、メッセンジャーRNAの形態で遺伝情報をコードし、トランスファーRNAの形態でアミノ酸を結合および輸送し、リボソームRNAの形態でアミノ酸をタンパク質に構築し、マイクロRNAおよび長鎖非コードRNAの形態での遺伝子発現制御を含む多数の他の機能を実施する。RNAは、直接的な化学合成およびインビトロ転写を含む方法により、合成的に生成することができ、治療的使用のために患者に投与できる。しかし、以前に記載されている合成RNA分子は、ヒト細胞において、不安定であり、強力な自然免疫応答を誘発する。加えて、患者、器官、組織、およびインビボの細胞に、核酸を効率的に非ウイルス的送達するための方法は、以前に記載されていない。既存の合成RNA技術および核酸の送達方法の多くの欠点により、それらの技術および方法が、治療的または美容的使用にとって望ましくないものになっている。
細胞は、それらを、特定の細胞外キュー(cue)に曝露することにより、および/または特定のタンパク質、マイクロRNAなどの異所性発現によりリプログラミングすることができる。いくつかのリプログラミング方法が以前に記載されているが、異所性発現に依存するほとんどのものは、変異の危険を伴う可能性がある外来DNAの導入を必要とする。リプログラミングタンパク質の直接送達に基づく、DNAフリーのリプログラミング方法が報告されている。しかし、これらの方法は商業的使用には、あまりにも非効率的で信頼できない。加えて、RNAベースのリプログラミング方法が記載されている(例えば、Angel.MIT Thesis.2008.1−56;Angel et al.PLoS ONE.2010.5,107;Warren et al.Cell Stem Cell.2010.7,618−630;Angel.MIT Thesis.2011.1−89;and Lee et al.Cell.2012.151,547−558、を参照されたい。これらの全ての内容は、参照により本明細書に組み込まれる)。しかし、既存のRNAベースのリプログラミング方法は、成熟細胞に実施される場合、時間がかかり、信頼できず、非効率的であり、(著しい費用およびエラーの可能性をもたらす)多くのトランスフェクションを必要とし、限られた数の細胞型のみをリプログラミングすることができ、細胞を限られた数の細胞型のみへとリプログラミングすることしかできず、免疫抑制剤の使用を必要とし、血液由来HSAおよびヒト線維芽細胞フィーダーを含む複数のヒト由来成分の使用を必要とする。以前に開示されたRNAベースのリプログラミング方法の多くの欠点により、これらの方法が、研究、治療的、または美容的使用にとって望ましくないものになっている。
いくつかの天然のタンパク質は、特定のDNA配列を認識できるDNA結合ドメイン、例えば、ジンクフィンガー(ZF)および転写活性化因子様エフェクター(TALE)を含有する。これらのDNA結合ドメインおよびFokIエンドヌクレアーゼの切断ドメインの内の1つまたは複数を含有する融合タンパク質を、細胞内のDNAの所望の領域に、二本鎖切断を形成するために用いることができる(例えば、米国特許出願公開第US2012/0064620号、米国特許出願公開第US2011/0239315号、米国特許第8,470,973号、米国特許出願公開第US2013/0217119号、米国特許第8,420,782号、米国特許出願公開第US2011/0301073号、米国特許出願公開第US2011/0145940号、米国特許第8,450,471号、米国特許第8,440,431号、米国特許第8,440,432号、および米国特許出願公開第2013/0122581号(これら全ての内容は、参照により本明細書に組み込まれる)を参照されたい)。他の遺伝子編集タンパク質としては、クラスター化して規則的な配置の短い回文配列リピート(CRISPR)関連タンパク質が挙げられる。しかしながら、細胞を遺伝子編集するための現在の方法は、非効率的で、無制御変異誘発の危険を伴うため、これらの方法が、研究、治療的、および美容的使用にとって望ましくないものとなっている。体細胞のDNAフリーの遺伝子編集のための方法は、以前に検討されておらず、体細胞の同時または順次の遺伝子編集およびリプログラミングのための方法もまた、検討されていない。加えて、患者において、(すなわち、インビボで)、細胞を直接遺伝子編集するための方法は、以前に検討されておらず、そのような方法の開発は、DNA結合ドメインの乏しい結合にある程度起因する、許容可能な標的の欠如、非効率的な送達、遺伝子編集タンパク質/タンパク質(複数)の非効率的な発現、発現された遺伝子編集タンパク質/タンパク質(複数)による非効率的な遺伝子編集と、FokI切断ドメインの無向二量体形成およびDNA結合ドメインの不十分な特異性にある程度起因する、過剰なオフターゲット効果と、ならびに他の要因により制限されている。すなわち、抗菌、抗ウイルス、および抗癌治療における遺伝子編集の使用は、以前に検討されていない。
「分子」は、分子実体(分子、イオン、複合体など)を意味する。
実施例1 RNA合成
緑色蛍光タンパク質(「GFP」)、NOVEPOETIN(「EPO」)、エラスチン(「ELN」)、チロシナーゼ(「TYR」)、メラノコルチン1受容体(「MC1R」)、HAS1、HAS2、HAS3、COL3A1、COL7A1、COL1A1、COL1A2、hTERT、ホリーGFP、フレズノRFP、Blitzen Blue、RIBOSLICE遺伝子編集タンパク質、TALEN、Cas9、Oct4、Sox2、Klf4、c−Myc−2(T58A)、Lin28、IL2、IL6、IL15、IL22、BMP2、BMP7、BDNF、LIF、BMP6、IL15RA、FGF21、LIF、PTH、KRT5、KRT5−GFP、KRT14、KRT14−GFP、GDF15およびESM1をコードし、標準および非標準ヌクレオチドの種々の組み合わせを含むRNAを、製造者の説明書ならびに本発明者らにより先に開示された発明(米国特許出願第13/465,490号(現在米国特許第8,497,124号)、国際出願第PCT/US12/67966号、米国特許出願第13/931,251号、国際出願第PCT/US13/68118号、および国際出願第PCT/US2015/013949号、これら全ての内容は全体として参照により本明細書に組み込まれる)に従って、T7高収率RNA合成キットおよびmRNAキャップ2′−O−メチルトランスフェラーゼを有するVacciniaCappingSystemキット(全てNewEnglandBiolabs,Inc.製)を用いて、DNAテンプレートから合成した(表4)。次に、RNAを、100ng/pL〜2000ng/pLまでヌクレアーゼ非含有水で希釈した。ある特定の実験のために、RNase阻害剤(Superase・In、LifeTechnologiesCorporation)を、RNA100μg当たり1μLの濃度で添加した。RNA溶液を室温、4℃、−20℃、または−80℃で保存した。リプログラミング実験のために、Oct4、Sox2、Klf4、c−Myc−2(T58A)、およびLin28をコードするRNAを、3:1:1:1:1のモル比で混合した。
RNAの1マイクログラムごとに、1μgのRNA、および1μLのトランスフェクション試薬(リポフェクタミン3000、LifeTechnologiesCorporation)を、まず、複合体形成培地(Opti−MEM、LifeTechnologiesCorporation、またはDMEM/F12+10pg/mLのインスリン+5.5pg/mLのトランスフェリン+6.7ng/mLの亜セレン酸ナトリウム+2pg/mLのエタノールアミン)で別々に希釈して、それぞれ5μL〜100μLの総量にした。次に、希釈したRNAおよびトランスフェクション試薬を、トランスフェクション試薬の製造者の説明書にしたがって、混合し、室温で10分間インキュベートした。
複合体を実施例2に従って調製した後、培養液中の細胞に直接添加した。6ウェルプレートでトランスフェクトするため、10μL〜250μLの複合体を、1ウェル当たり2mLのトランスフェクション培地を既に含有している6ウェルプレートの各ウェルに添加した。プレートを穏やかに振盪して、複合体をウェル全体に分配させた。細胞を4時間から一晩、複合体とインキュベートした後、培地を新しいトランスフェクション培地(2mL/ウェル)と交換した。あるいは、培地を交換しなかった。量を、24ウェルおよび96ウェルプレートでのトランスフェクションのために調整した。
初代ヒト線維芽細胞を、実施例1に従って合成されたRNAで、実施例2にしたがってトランスフェクションした。細胞を、Oct4に対する抗体を用いて、トランスフェクションの20〜24時間後に固定および染色した。RNAの相対的な毒性を、固定時の細胞密度を評価することにより決定した。
表5に示す複合体形成反応物を、実施例1に従って合成された、緑色蛍光タンパク質(GFP)またはVII型コラーゲンαI(COL7)をコードするRNAを用いて調製した。RNAストック溶液の濃度は、500μg/mLであった。
NOVEPOETINをコードするRNAを、ヌクレオチドの3つの組み合わせ:1)U、G、U、C、2)U、G、5moU、C、および3)U、G、psU、Cを用いて、実施例1に従って合成した。EpiLife培地中で培養された初代ヒトケラチノサイトの副集密層(sub−confluentlayer)を、1ウェル当たり1μgのRNAで、実施例3に従って6ウェルプレートのウェルにトランスフェクトした。トランスフェクションの12、24、36、および48時間後に、0.5mLの培地を除去し、0.5mLの新しいEpiLife培地をプレートに添加した。最後の培地サンプリングの後、細胞をトリプシン処理により収集し、全RNAを、RNeasyミニキット(Qiagen)を用いて単離した。ゲノムDNAを、DNaseIを用いて消化し、RNAを精製した。インターフェロン−βおよびGAPDHの発現を、RT−PCRで測定した(図5)。
ヒトテロメラーゼ逆転写酵素(hTERT)をコードするRNAを、以下のヌクレオチド:U、G、5moU、Cを用いて、実施例1に従って合成した。DMEM+10%FBS中で培養された初代ヒト皮膚線維芽細胞の副集密層を、1ウェル当たり0.25μgのRNAで、実施例3に従って24ウェルプレートのウェルにトランスフェクトした。トランスフェクションの12時間後に細胞を固定し、ウサギ抗hTERT抗体(Millipore、パーツ番号:MABE14)の1:50希釈液を用いて、染色した(図16)。
初代ヒト線維芽細胞を、トランスフェクション培地中の10,000細胞/ウェルの密度で、組換えヒトフィブロネクチンおよび組換えヒトビトロネクチン(それぞれ1μg/mL、1mL/ウェルの濃度までDMEM/F12で希釈し、1時間室温でインキュベートした)でコーティングされた6ウェルプレートに播種した。翌日、細胞を、実施例1に従って合成されたRNAで、実施例2のようにトランスフェクションした。翌日、1つのウェル中の細胞を、再度トランスフェクションした。2回目のトランスフェクションの2日後に、遺伝子編集の効率を、変異特異的ヌクレアーゼアッセイを用いて測定した。
6ウェルプレートでのトランスフェクションのために、1μgのヒトAPP遺伝子のエキソン16を標的とする遺伝子編集タンパク質をコードするRNA、1μgの標的細胞に存在しなかったPstI制限酵素部位を含有する一本鎖修復テンプレートDNA、および6μLのトランスフェクション試薬(リポフェクタミンRNAiMAX、LifeTechnologiesCorporation)を、まず、複合体形成培地(Opti−MEM、LifeTechnologiesCorporation)で別々に希釈して、120μLの総量にした。次に、希釈されたRNA、修復テンプレート、およびトランスフェクション試薬を、トランスフェクション試薬の製造者の指示にしたがって、混合し、室温で15分間インキュベートした。複合体を、培養液中の細胞に添加した。約120μLの複合体を、1ウェル当たり2mLのトランスフェクション培地を既に含有している6ウェルプレートの各ウェルに添加した。プレートを穏やかに振盪して、複合体をウェル全体に分配させた。細胞を4時間から一晩、複合体とインキュベートした後、培地を新しいトランスフェクション培地(2mL/ウェル)と交換した。翌日、培地をDMEM+10%のFBSに交換した。トランスフェクションの2日後、ゲノムDNAを分離および精製した。APP遺伝子内の領域をPCRにより増幅し、増幅産物を、PstIで消化し、ゲル電気泳動により分析した。
40匹の雌のNCrnu/nuマウスに、50%のマトリゲル(BDBiosciences)中の5x106のMDA−MB−231腫瘍細胞を皮下注入した。細胞注入量は、0.2mL/マウスであった。試験開始時のマウスの週齢は、8〜12週であった。腫瘍が100〜150mm3の平均サイズに達した時に、ペアマッチを行い、動物をそれぞれ10匹ずつの4つのグループに分け、治療を開始した。体重を、初めの5日間は毎日、その後試験の終了までは隔週で測定した。治療は、ビークル(リポフェクタミン2000、LifeTechnologiesCorporation)と複合体形成したRIBOSLICEBIRC5−1.2で構成された。各群に対する投与溶液を調製するために、308μLの複合体形成緩衝液(Opti−MEM、LifeTechnologiesCorporation)を、2つの滅菌したRNaseフリーの1.5mLのチューブのそれぞれにピペッティングした。22μLのRIBOSLICEBIRC5−1.2(500ng/pL)を、2つのチューブの内の1つに添加し、チューブの内容物をピペッティングにより混合した。22μLのビークルを、第2のチューブに添加した。第2のチューブの内容物を混合し、次に第1のチューブに移し、ピペッティングにより第1のチューブの内容物と混合し、複合体を形成した。複合体を、10分間室温でインキュベートした。インキュベーションの間、シリンジに装填した。動物に、動物1匹当たり1μgのRNAの総投与量として、動物1匹当たり60μLの総量を、静脈内または腫瘍内注入した。1日おきに注入して合計5回の治療を実施した。用量の体重による調整は行わなかった。動物を、17日間追跡調査した。平均体重に大きな減少は観察されず、RIBOSLICE遺伝子編集RNAのインビボ安全性が実証された。
ポリエチレンイミン(PEI)、種々の商用の脂質系トランスフェクション試薬、ペプチド系トランスフェクション試薬(N−TER、Sigma−AldrichCo.LLC.)、ならびにいくつかの脂質系およびステロール系送達試薬を含む送達試薬を、インビトロでのトランスフェクション効率および毒性に関してスクリーニングした。送達試薬を、RIBOSLICEBIRC5−1.2と複合体形成し、複合体を培養液中のHeLa細胞に送達した。毒性を、トランスフェクションの24時間後に細胞密度を分析することにより評価した。トランスフェクション効率を、形態学的変化を分析することにより評価した。試験した試薬は、広範囲の毒性およびトランスフェクション効率を示した。より高い割合のエステル結合を含有する試薬は、より低い割合のエステル結合を含有する試薬またはエステル結合を含有しない試薬よりも低い毒性を示した。
500ng/μLのRNAの1μgを3μLの複合体形成培地(Opti−MEM、LifeTechnologiesCorporation)と混合し、RNAの1μg当たり2.5μLのトランスフェクション試薬(リポフェクタミン2000、LifeTechnologiesCorporation)を2.5μLの複合体形成培地と混合することにより、高濃度リポソームRIBOSLICEを調製した。次に、希釈したRNAおよびトランスフェクション試薬を、混合し、室温で10分間インキュベートして、高濃度リポソームRIBOSLICEを形成した。あるいは、DOSPAまたはDOSPERを含有するトランスフェクション試薬を用いる。
40匹の雌のNCrnu/nuマウスに、1x107のU−251腫瘍細胞を皮下注入した。細胞注入量は、0.2mL/マウスであった。試験開始時のマウスの週齢は、8〜12週であった。腫瘍が35〜50mm3の平均サイズに達した時に、ペアマッチを行い、動物をそれぞれ10匹ずつの4つのグループに分け、治療を開始した。体重を、初めの5日間は毎日、その後試験の終了までは隔週で測定した。キャリパー測定を隔週で行い、腫瘍サイズを算出した。治療は、ビークル(リポフェクタミン2000、LifeTechnologiesCorporation)と複合体形成したRIBOSLICEBIRC5−2.1で構成された。投与溶液を調製するために、294μLの複合体形成緩衝液(Opti−MEM、LifeTechnologiesCorporation)を、196μLのRIBOSLICEBIRC5−1.2(500ng/μL)を含有するチューブにピペッティングし、チューブの内容物をピペッティングにより混合した。245μLの複合体形成緩衝液を、245μLのビークルを含有するチューブにピペッティングした。第2のチューブの内容物を混合し、次に第1のチューブに移し、ピペッティングにより第1のチューブの内容物と混合し、複合体を形成した。複合体を、10分間室温でインキュベートした。インキュベーションの間、シリンジに装填した。動物に、動物1匹当たり2μgまたは5μgのRNAの総投与量のいずれかに相当する、動物1匹当たり20μLまたは50μLの総量のいずれかを、腫瘍内注入した。1日おきに注入して合計5回の治療を実施した。用量の体重による調整は行わなかった。動物を、25日間追跡調査した。
リポソームを、次の配合物:3.2mg/mLのN−(カルボニルエトキシポリエチレングリコール2000)−1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(MPEG2000−DSPE)、9.6mg/mLの完全水素化ホスファチジルコリン、3.2mg/mLのコレステロール、2mg/mLのアンモニウムスルフェート、および緩衝液としてのヒスチジンを用いて調製する。pHを、水酸化ナトリウムを用いて調節し、等張性を、ショ糖を用いて維持する。リポソームを形成するため、脂質を、有機溶媒中で混合し、乾燥させ、撹拌しながら水和させ、800nmの平均孔径を有するポリカーボネートフィルターを通して押出すことにより一定の大きさにする。核酸を、核酸1μg当たり10μgのリポソーム配合物を組み合わせ、5分間室温でインキュベートすることによりカプセル化する。
リポソームを、以下の製剤:3.2mg/mLのN−(カルボニル−エトキシポリエチレングリコール2000)−1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン(MPEG2000−DSPE)、9.6mg/mLの完全水素化ホスファチジルコリン、3.2mg/mLのコレステロール、2mg/mLのアンモニウムスルフェート、および緩衝液としてのヒスチジンを用いて調製し、0.27mg/mLの1,2−ジステアロイル−sn−グリセロ−3−ホスホエタノールアミン−N−[葉酸(ポリエチレングリコール)−5000](FA−MPEG5000−DSPE)を脂質混合物に添加した。pHを、水酸化ナトリウムを用いて調節し、等張性を、ショ糖を用いて維持する。リポソームを形成するため、脂質を、有機溶媒中で混合し、乾燥させ、撹拌しながら水和させ、800nmの平均孔径を有するポリカーボネートフィルターを通して押出すことにより一定の大きさにする。核酸を、核酸1μg当たり10μgのリポソーム配合物を組み合わせ、5分間室温でインキュベートすることによりカプセル化する。
実施例1に従って合成された治療用タンパク質をコードする合成RNAをカプセル化するリポソームを、実施例14または実施例15に従って調製する。リポソームを、注入または静脈内点滴により投与する。
全RNAを、製造業者の説明書にしたがって、RNeasyミニキット(QIAGEN GmbH)を用いて、ヒト新生児皮膚線維芽細胞から抽出した。ヒトエラスチンをコードするcDNAを、MonsterScript(商標)逆転写酵素(EpicentreBiotechnologies)およびプライマー:AAAAAAACCGGTTCATTTTCTCTTCCGGCCAC(配列番号483)を用いて調製した。インビトロ転写(ivT)テンプレートを、プライマーF:AAAAAAGCTAGCATGGCGGGTCTGACG(配列番号484)、およびR:AAAAAAACCGGTTCATTTTCTCTTCCGGCCAC(配列番号485)を用いて、エラスチンコード配列(CDS)のPCR増幅によりcDNAから調製した。次に、PCR産物を、アガロースゲル電気泳動およびQIAquickゲル抽出キット(QIAGENGmbH)を用いることにより精製し、ヒトβグロビン(HBB)5’および3’非翻訳領域ならびに強力なコザック配列を含有するベクターに挿入した。ベクターを、RNA合成に先立って増幅、精製、および直線化した。
全RNAを、製造業者の説明書にしたがって、RNeasyミニキット(QIAGENGmbH)を用いて、ヒト表皮メラノサイトから抽出した。ヒトチロシナーゼをコードするcDNAを、MonsterScript(商標)逆転写酵素(EpicentreBiotechnologies)を用いて調製した。インビトロ転写(ivT)テンプレートを、チロシナーゼコード配列(CDS)のPCR増幅によりcDNAから調製した。次に、PCR産物を、アガロースゲル電気泳動およびQIAquickゲル抽出キット(QIAGENGmbH)を用いることにより精製し、ヒトβグロビン(HBB)5’および3’非翻訳領域ならびに強力なコザック配列を含有するベクターに挿入した。ベクターを、RNA合成に先立って増幅、精製、および直線化した。
ヒトチロシナーゼをコードするRNAを、製造者の説明書にしたがって、実施例18のDNAテンプレートおよびT7高収率RNA合成キット(NewEnglandBiolabs,Inc.)を用いて実施例1に従って合成した(表4)。RNAの試料を、アガロースゲル電気泳動により分析して、RNAの品質を評価した。次に、RNAを1μg/μLまで希釈した。RNA溶液を、4℃で保存した。
実施例19のRNAを、シリンジに装填し、約30秒間にわたって健康な33歳の男性患者の腹側前腕に皮内注入により投与した。
実施例20で治療された皮膚の領域を、コンデンサーに電気的に接続された2電極アレイを用いて、10V〜155Vおよび約10ミリ秒〜約1秒の電気パルスに曝露した。患者は、全ての電圧と侵入深度で打診痛知覚を報告した。治療範囲が、24〜48時間後に黒くなった。実験を数回繰り返し、同様の結果を得た。
実施例19のRNAまたは実施例16のリポソームを、角質層の破壊を伴ってまたは伴わずに皮膚に直接適用する、または平方センチメートル当たり1マイクログラム以下の用量を用いて皮内注入する、または注入により表皮に投与する。場合により、電場を、RNAの送達を増強するために、実施例21と同様に、または表面接触パッチを用いて適用する。
エラスチンをコードするRNAを、実施例1にしたがって調製した。RNAを、実施例20、21、または22と同様に送達する。
コラーゲンをコードするRNAを、実施例1にしたがって調製する。RNAを、実施例20、21、または22と同様に送達する。
NOVEPOETINをコードするRNAを、実施例1に従って調整した。RNAを、実施例20、21、または22と同様に送達する。
アクチンをコードするRNAを、実施例1にしたがって調製する。RNAを、実施例20、21、または22と同様に電場を用いて、または用いずに筋肉内注入で患者に送達する。
塩基性線維芽細胞増殖因子またはIL22をコードするRNAを、実施例1にしたがって調製する。RNAを、実施例20、21、または22と同様に送達する。
コラゲナーゼをコードするRNAを、実施例1にしたがって調製する。RNAを、実施例20、21、または22と同様に送達する。
ボツリヌス毒素をコードするRNAを、実施例1にしたがって調製する。RNAを、実施例20、21、または22と同様に送達する。
ヒトCOL1A1遺伝子のコード配列を含むRNAを、実施例1に従って合成した。初代ヒト皮膚線維芽細胞を、24ウェルプレートに播種し、実施例2にしたがってトランスフェクションした。トランスフェクションの24〜72時間後に、細胞を固定し、コラーゲンIを標的とする抗体を用いて染色した。多くのコラーゲン細胞外沈着物が、トランスフェクトされたウェル中で認められた。
ヒトCOL7遺伝子のコード配列を含むRNAを、実施例1に従って合成した。初代ヒト皮膚線維芽細胞を、24ウェルプレートに播種し、実施例2にしたがってトランスフェクションした。トランスフェクションの24〜72時間後に、細胞を固定し、VII型コラーゲンを標的とする抗体を用いて染色した。トランスフェクトされた細胞は、トランスフェクトされていない対照と比較して、高レベルのVII型コラーゲンを示した。
ヒトCOL1A1遺伝子またはヒトCOL7遺伝子のコード配列を含むRNAを、実施例1に従って合成した。RNAをシリンジに装填し、約30秒にわたって、または実施例20、21、または22と同様に患者の真皮に送達する。
実施例32で治療された皮膚の領域を、電源に電気的に接続された多電極アレイを用いて、10V〜155Vおよび約50マイクロ秒〜約1秒の電気パルスに曝露する。
GFPをコードするRNAを用いた複合体形成反応物を、実施例5に従って調製した。10分間のインキュベーション後、複合体形成反応物を3つの等分に分割し、1つは、FactorPlex(商標)複合体形成培地で1:10に希釈し、1つは、滅菌したヌクレアーゼ不含水中1:10に希釈し、1つは、未希釈のままにした。次いで、3部の各々をさらに4つの等分に分割し、1つは、実施例3に従って初代ヒト皮膚線維芽細胞に適用し、1つは、室温で6時間放置した後に、実施例3に従って初代ヒト皮膚線維芽細胞に適用し、1つは、4℃で6時間放置した後に、実施例3に従って初代ヒト皮膚線維芽細胞に適用し、1つは、液体窒素中で急速凍結し、−80℃で6時間放置した後に、実施例3に従って初代ヒト皮膚線維芽細胞に適用した。細胞は、第一のトランスフェクションの約24時間後に蛍光顕微鏡を用いて撮像した(図17)。全てのウェルは、GFP陽性細胞を含有し、合成RNA複合体が、試験した全ての保存条件で安定で、また、活性を維持したことが実証された。
NOVEPOETINをコードするRNAは、A、G、5moU、Cのヌクレオチド組み合わせで、実施例1に従って合成された。本実施例では、NOVECRITは、脂質送達ビークル、特に、リポフェクタミン3000で製剤化された。本実施例では、NOVECRITは、新規の高安定性赤血球生成刺激剤であるNOVEPOETINをコードした。
本RNAベースの遺伝子編集手法をCOL7A1遺伝子に適用した。この遺伝子は、とりわけ、ジストロフィー表皮水疱症に頻繁に関与するために興味深い。図21は、COL7A1遺伝子内に位置する配列TGAGCAGAAGTGGCTCAGTG(配列番号467)およびTGGCTGTACAGCTACACCCC(配列番号468)を標的とするRNATALENでトランスフェクトされた初代成人ヒト皮膚線維芽細胞のDNAを用いたSURVEYORアッセイを示す。+RNAレーンに存在するバンドは、ジストロフィー表皮水疱症に高頻度に関与する遺伝子の領域の編集を示す。図22は、今度はCOL7A1遺伝子内に位置する配列TTCCACTCCTGCAGGGCCCC(配列番号469)およびTCGCCCTTCAGCCCGCGTTC(配列番号470)を標的にするRNATALENでトランスフェクトされた初代成人ヒト皮膚線維芽細胞のDNAを用いた別のSURVEYORアッセイを示す。+RNAレーンに存在するバンドは、ジストロフィー表皮水疱症に高頻度に関与する遺伝子の領域の編集を示す。このデータは、とりわけ、ジストロフィー表皮水疱症などの特定の遺伝性障害の治療に対する遺伝子編集手法を示す。
実験は、非標準ヌクレオチドを含有し、遺伝子編集タンパク質をコードするインビトロ転写合成RNA分子を用いて実施した。(1)非標準ヌクレオチドとしてプソイドウリジン(psU)のみ、(2)非標準ヌクレオチドとして5−メチルシチジン(5mC)のみ、および(3)非標準ヌクレオチドとしてプソイドウリジンおよび5−メチルシチジンの両方を有するインビトロ転写合成RNA分子(ならびに対照)の免疫原性、および遺伝子編集効率を評価した。
COL7A1遺伝子中の以下の配列を標的にする遺伝子編集タンパク質をコードするRNAを、実施例1に従って合成した:TGAGCAGAAGTGGCTCAGTG(配列番号473)、およびTGGCTGTACAGCTACACCCC(配列番号468)(以下の表も参照されたい)。
野生型BMP7をコードするRNA、およびBMP7のバリアントをコードするRNAを、実施例1に従って合成した(以下の表も参照されたい)。
PTHをコードするRNAを、実施例1に従って合成した(下表も参照されたい)。
100,000個のヒト表皮ケラチノサイト(HEKn、Gibco)を、EpiLife+サプリメントS7に播種した。細胞を、実施例3に従って、PTHをコードする1μgのRNAでトランスフェクトした。トランスフェクション24時間後に、培地をサンプリングし、分泌されたPTHレベルを、製造業者の説明書に従って、ヒトPTHELISAキット(EIA−PTH−1、RayBiotech)を用いて測定した。分泌されたPTHレベルを、マイクロプレートリーダー(EMaxPlus、MolecularDevices)を用いて、450nmの吸光度を測定することにより決定した。分泌されたPTHレベルを図31に示す。
貧血を治療するためのNovecritの繰り返し投与毒性試験を実施した。具体的には、8〜10週齢の雄のSpragueDawleyラットに、1日目、8日目、および15日目に1日1回、皮内、皮下、直腸、または鼻腔内経路を介してNovecritを投与した。動物をグループに割り当て、下表に示すように治療した:
ZDSDラットモデルを利用して、糖尿病性腎症を予防および治療のための、BMP7バリアントをコードするRNAの効果を試験した。具体的には、ZDSDラットを、皮内投与された、BMP7バリアントをコードするRNAで治療した。試験設計の概要を図33に提供する。動物をグループに割り当て、下表に示すように治療した:
100,000個のヒト表皮ケラチノサイト(HEK、Gibco)を、EpiLife+サプリメントS7に播種した。細胞を、実施例3に従って、BDNF、BMP−2、BMP−6、IL−2、IL−6、IL−15、IL−22、LIF、またはFGF−21をコードする2μgのRNAでトランスフェクトした。トランスフェクション24時間後に、培地をサンプリングし、分泌されたタンパク質レベルを、製造業者の説明書に従って、ヒトELISAキット(以下の表を参照)を用いて測定した。分泌されたタンパク質レベルを、マイクロプレートリーダー(EMaxPlus、MolecularDevices)を用いて、450nmの吸光度を測定することにより決定した。分泌されたタンパク質レベルを図34、パネルA〜Iに示す。
100,000個のヒト表皮ケラチノサイト(HEK、Gibco)を、EpiLife+サプリメントS7に播種した。細胞を、実施例3に従って、IL−15をコードする2μgのRNA、またはIL−15をコードする1μgのRNA、およびIL−15RAをコードする1μgのRNAでトランスフェクトした。トランスフェクション24時間後に、培地をサンプリングし、分泌されたIL−15レベルを、製造業者の説明書に従って、ヒトIL−15ELISAキット(D1500、R&DSystems)を用いて測定した。分泌されたIL−15レベルを、マイクロプレートリーダー(EMaxPlus、MolecularDevices)を用いて、450nmの吸光度を測定することによって、決定した。分泌されたIL−15レベルを図35に示す。図35に示すように、IL−15とIL−15RAの共トランスフェクションは、IL−15のみによるトランスフェクションと比較して、分泌されたIL−15レベルを著しく増加させた。
試験は、種々のRNAの皮内投与に対するSpragueDawleyラットの応答を評価するために実施した。具体的には、8〜10週齢の雌の約200g〜約350gの重量のSpragueDawleyラットをこの試験に使用した。全部で33匹のラットを試験し、動物を試験群に割り当て、以下の表に示すように治療した:
初代ヒト表皮ケラチノサイト(HEKn−APF)を、200,000細胞/ウェルの密度で、組換えヒト1型コラーゲンでコーティングされた6ウェルプレートのケラチノサイト培地(EpiLife+サプリメントS7)に播種した。24時間後、細胞を、実施例1に従って合成したIL22をコードするRNAの2μg/ウェルでトランスフェクトし、このウェルに50mMのD−グルコースを加えた。翌日、10μLのピペットチップ用いて各ウェルにひっかき傷により線を書き込んだ。ひっかき傷作成の0時間および24時間後に撮像した。引っ掻き傷の大きさを両方の時間に測定し、治癒を、24時間のひっかき傷の、0時間のひっかき傷に対する比率を計算することにより決定した(図40)。
A1AT遺伝子中の以下の配列を標的にする遺伝子編集タンパク質をコードするRNAを、実施例1に従って合成した:L1:TAAGGCTGTGCTGACCATCG(配列番号611)、R1:TAAAAACATGGCCCCAGCAG(配列番号612)、およびR2:TCTAAAAACATGGCCCCAGC(配列番号613)。細胞の遺伝子を編集し、遺伝子編集効率を実施例38に従って測定した(図41)。さらに、細胞を、ターゲティング配列L1およびR1を標的とする遺伝子編集タンパク質、ならびに配列:cccctccaggccgtgcataaggctgtgctgaccatcgacgtcaaagggactgaagctgctggggccatgtttttagaggcc(配列番号614)を含む修復テンプレートで共トランスフェクションし、AatII酵素を用いて、実施例38に従って遺伝子修復効率を測定した(図42)。別の細胞試料を、A1AT遺伝子中の以下の配列を標的とする遺伝子編集タンパク質でトランスフェクトした:L2:TGCCTGGTCCCTGTCTCCCT(配列番号615)およびR3:TGTCTTCTGGGCAGCATCTC(配列番号616)。遺伝子編集効率を実施例38に従って測定した(図43)。
次の配列:L:TAAGGCTGTGCTGACCATCG(配列番号611)およびR:TAAAAACATGGCCCCAGCAG(配列番号612)ならびに配列:RT:cccctccaggccgtgcataaggctgtgctgaccatcgacgagaaagggactgaagctgctggggccatgtttttagaggcc(配列番号617)を含む修復テンプレートを標的とする遺伝子編集タンパク質をコードするRNAを、本発明の方法に従ってビークルと配合し、A1AT欠損症を罹患している対象に投与し、対象の肝臓細胞中のZ変異の修正、対象の肝臓細胞中の重合Zタンパク質の蓄積の減少、機能的A1ATの分泌および血清レベルの増大、ならびに1つまたは複数の対象の症状の改善がもたらされた。
FXNA(配列番号582)において、1つまたは複数の二本鎖切断を生成可能な1つまたは複数の遺伝子編集タンパク質をコードするRNA、およびFXNB(配列番号583)において、1つまたは複数の二本鎖切断を生成可能な1つまたは複数の遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNAを、実施例1に従って合成した。RNAを本発明の方法に従って配合し、カテーテルを用いてフリードライヒ運動失調症の患者の心臓に投与した。標的配列ペアは、ペア1:TCCCACACGTGTTATTTGGC(配列番号618)およびTGGCAACCAATCCCAAAGTT(配列番号619);ペア2:TAATAAATAAAAATAAAAAA(配列番号620)およびTTGCCTATTTTTCCAGAGAT(配列番号621)から選択される。
A1AT_A(配列番号584)において、1つまたは複数の二本鎖切断を生成可能な1つまたは複数の遺伝子編集タンパク質をコードするRNAを、実施例1に従って合成した。RNAを本発明の方法に従って配合し、門脈内注入によりA1AT欠損症の患者の肝臓に投与した。
A1AT_B(配列番号585)において、1つまたは複数の二本鎖切断を生成可能な1つまたは複数の遺伝子編集タンパク質をコードするRNAを、実施例1に従って合成した。RNAおよび配列:A1AT_RT(配列番号586)を含む一本鎖単鎖DNAを本発明の方法に従って配合し、門脈内注入によりA1AT欠損症の患者の肝臓に投与した。
2つ以上の反復配列、次に:BASE_EDIT_FRONT(配列番号587)、その次に次記のいずれか:BASE_EDIT_ADA1(配列番号588)、BASE_EDIT_ADA2(配列番号589)、BASE_EDIT_ADA3(配列番号590)、BASE_EDIT_ADA4(配列番号591)、BASE_EDIT_CDA1(配列番号592)およびBASE_EDIT_CDA2(配列番号593)、を含む遺伝子編集タンパク質をコードするRNAを、実施例1に従って合成した。遺伝子編集タンパク質は、標的配列の下流にある1〜50塩基内の1つまたは複数の変異を修正できる。
図49に示すように、約100,000個の初代ヒト新生児表皮ケラチノサイトを、EpiLife+サプリメントS7に播種した。細胞を、実施例3に従って、2μgのhGDF15をコードするRNAでトランスフェクトした。トランスフェクション後、種々の時点で培地をサンプリングし、ELISA(R&DDGD150)を用いて、製造業者の説明書に従って、hGDF15のレベルを分析した。図49は、トランスフェクション後、hGDF15レベルが時間依存的に上方制御されたことを示す。
hGDF15をコードするRNAの投与に対するズッカー肥満(ZDF)ラットの応答を評価する試験を実施した。ズッカー肥満ラット(ZDF)は、ヒト疾患の多くの状況を模倣するよく研究された肥満モデルである。具体的には、8〜10週齢の雄のラットをこの試験に使用した。全部で15匹のZDFおよび15匹の野生型対照スプラーグドーリーラットを試験し、動物を試験グループに割り当て、以下の表に示すように治療した:
当業者は、本明細書で具体的に記載された特定の実施形態に対する多数の等価物を、ルーチン実験のみを用いて認識し、確認できるであろう。このような等価物は、次の請求項の範囲内に包含されることが意図されている。
本明細書で引用されている全ての特許および刊行物は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
Claims (179)
- 代謝障害を治療する方法であって、増殖分化因子15(GDF15)または内皮細胞特異的分子1(ESM1)をコードする合成RNAの有効量を、それを必要としている対象に投与することを含み、前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 前記代謝障害が、I型糖尿病、II型糖尿病、インスリン抵抗性、肥満症、脂質異常症、高コレステロール血症、高血糖、高インスリン血症、高血圧、非アルコール性脂肪性肝炎(NASH)および非アルコール性脂肪酸肝疾患(NAFLD)などの脂肪肝、脂質代謝障害に関連する癌、疾患または障害、腎機能障害に関連する疾患または障害、肝機能障害に関連する疾患または障害、肺機能障害に関連する疾患または障害、血管または心臓血管疾患または障害、筋消耗、炎症、および呼吸器疾患から選択される、請求項1に記載の方法。
- 前記腎機能障害に関連する疾患または障害が、慢性腎疾患、急性腎損傷、腎症、糖尿病性腎症、腎不全、および腎線維症から選択される、請求項2に記載の方法。
- 前記血管または心臓血管疾患または障害が、冠動脈疾患、心筋症、高血圧、心房細動、子癇前症、末梢動脈疾患、アテローム性動脈硬化症、心不全、急性心筋梗塞、急性冠症候群、筋消耗、高血圧性心室肥大、高血圧性心筋症、虚血性心疾患、心筋梗塞、腹部大動脈瘤、血餅、深部静脈血栓症、静脈うっ血、静脈炎、および静脈瘤から選択される、請求項2に記載の方法。
- 前記治療が、非治療対象に比べて、前記対象のアスパラギン酸アミノ基転移酵素(AST)、アラニンアミノ基転移酵素(ALT)、またはグルコースレベルの内の1つまたは複数の減少をもたらす、請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、非治療対象に比べて、前記対象の脂質動員の増加をもたらす、請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が、皮内、筋肉内、腹腔内、静脈内、皮下、鼻腔内、硬膜外、経口、舌下、脳内、膣内、経皮、門脈内、直腸内、吸入経由、または局所的である請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法。
- GDF15を調節する方法であって、GDF15をコードする合成RNAの有効量を対象に投与するステップを含み、前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 前記調節が、非治療対象に比べて、前記対象のALT、AST、またはグルコースレベルの内の1つまたは複数の低下をもたらす、請求項8に記載の方法。
- 前記調節が、非治療対象に比べて、前記対象の脂質動員の増加をもたらす、請求項8または請求項9に記載の方法。
- 前記投与が、皮内、筋肉内、腹腔内、静脈内、皮下、鼻腔内、硬膜外、経口、舌下、脳内、膣内、経皮、門脈内、直腸内、吸入経由、または局所的である、請求項8〜10のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象のGDF15の量の増加をもたらす、請求項8〜11のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象のGDF15の量の減少をもたらす、請求項8〜11のいずれか1項に記載の方法。
- ESM1を調節する方法であって、ESM1をコードする合成RNAの有効量を対象に投与することを含み、前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 前記調節が、非治療対象に比べて、前記対象のALT、AST、またはグルコースレベルの内の1つまたは複数の低下をもたらす、請求項14に記載の方法。
- 前記調節が、非治療対象に比べて、前記対象の脂質動員の増加をもたらす、請求項14または請求項15に記載の方法。
- 前記投与が、皮内、筋肉内、腹腔内、静脈内、皮下、鼻腔内、硬膜外、経口、舌下、脳内、膣内、経皮、門脈内、直腸内、吸入経由、または局所的である、請求項14〜16のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象のESM1の量の増加をもたらす、請求項14〜17のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象のESM1の量の減少をもたらす、請求項14〜17のいずれか1項に記載の方法。
- 肝障害を治療する方法であって、増殖分化因子15(GDF15)または内皮細胞特異的分子1(ESM1)をコードする合成RNAの有効量を、それを必要としている対象に投与することを含み、
前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含み、
前記治療が、前記対象の脂肪肝、NAFLD、NASH、炎症、肝炎、繊維化、肝硬変、および肝細胞癌の内の1つまたは複数を軽減する、
方法。 - 前記治療が、非治療対象に比べて、前記対象のAST、ALT、またはグルコースレベルの内の1つまたは複数の低下をもたらす、請求項20に記載の方法。
- 前記調節が、非治療対象に比べて、前記対象の脂質動員の増加をもたらす、請求項20または請求項21に記載の方法。
- 前記投与が肝臓を対象とする、請求項20〜23のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が門脈内注入である、請求項20〜24のいずれか1項に記載の方法。
- フリードライヒ運動失調症を治療する方法であって、
(a)FXNA(配列番号582)において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNA、および/または
(b)FNXBにおいて、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNA(配列番号583)
の有効量を、それを必要としている対象に投与することを含み、
前記合成RNAが、細胞の毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、
方法。 - 前記治療が、
(a)FXNA(配列番号582)において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNA、および
(b)FXNB(配列番号583)において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNA、
の有効量を、それを必要としている対象に投与することを含む、請求項25に記載の方法。 - 前記投与が心臓を対象とする、請求項25または請求項26に記載の方法。
- 前記投与がカテーテル経由である、請求項25〜27のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、筋力低下、協調運動障害、視力障害、難聴、不明瞭発語、脊柱側弯症、凹足変形、糖尿病、および心房細動、頻拍および肥大型心筋症の内の1つまたは複数から選択される心疾患、の内の1つまたは複数を回復させる、請求項25〜28のいずれか1項に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、CRISPR/Cas9、TALENおよびジンクフィンガーヌクレアーゼから選択される、請求項25〜29のいずれか1項に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、
(a)複数の反復配列を含むDNA結合ドメインであって、少なくとも1つの前記反復配列がアミノ酸配列:LTPvQVVAIAwxyzGHGG(配列番号629)を含み、36〜39アミノ酸長さであり、
「v」はQ、DまたはEであり、
「w」は、SまたはNであり、
「x」はH、NまたはIであり、
「y」はD、A、I、N、G、H、K、Sであるか、または存在せず、
「z」はGGKQALETVQRLLPVLCQD(配列番号630)またはGGKQALETVQRLLPVLCQA(配列番号631)である、DNA結合ドメイン、および
(b)ヌクレアーゼ触媒ドメインを含むヌクレアーゼドメイン
を含む、請求項25〜29のいずれか1項に記載の方法。 - 前記ヌクレアーゼドメインが、別のヌクレアーゼドメインとダイマーを形成できる、請求項31に記載の方法。
- 前記ヌクレアーゼドメインが、配列番号632のアミノ酸配列を含むタンパク質の触媒ドメインを含む、請求項31または請求項32に記載の方法。
- 炎症を軽減する方法であって、スーパーオキシドジスムターゼ3(SOD3)またはIFκBをコードする合成RNAの有効量を投与することを含み、前記合成RNAが、その投与を必要としている対象に対する細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 前記炎症が、肺疾患または障害に関連する、請求項34に記載の方法。
- 前記肺疾患または障害が、石綿肺、喘息、気管支拡張症、気管支炎、慢性咳、慢性閉塞性肺疾患(COPD)、感冒、クループ、嚢胞性繊維症、ハンタウイルス、特発性肺線維症、インフルエンザ、肺癌、汎発性インフルエンザ、百日咳、胸膜炎、肺炎、肺塞栓症、肺高血圧症、呼吸器多核体ウイルス(RSV)、サルコイドーシス、睡眠時無呼吸、スパイロメトリー、乳幼児突然死症候群(SIDS)、および結核から選択される、請求項34または請求項35に記載の方法。
- 前記炎症が、肺感染症に関連する、請求項36に記載の方法。
- 前記肺感染症が、細菌、真菌、原虫類、多細胞生物、粒子、またはウイルスが原因である、請求項37に記載の方法。
- 前記合成RNAが、吸入により投与される、請求項34〜38のいずれか1項に記載の方法。
- 前記炎症が、敗血症に関連する、請求項34〜39のいずれか1項に記載の方法。
- α1抗トリプシン(A1AT)欠乏症を治療する方法であって、
(a)A1AT_A(配列番号584)において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNA、および/または
(b)A1AT_B(配列番号585)において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNA
の有効量を、それを必要としている対象に投与することを含み、
前記合成RNAが、細胞の毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、
方法。 - 前記治療が、
(a)A1AT_A(配列番号584)において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNA、および
(a)A1AT_B(配列番号585)において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNA
の有効量をそれを必要としている対象に投与することを含む、請求項41に記載の方法。 - 前記投与が肝臓を対象とする、請求項41または請求項42に記載の方法。
- 前記投与が門脈内注入である、請求項41〜43のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、前記対象の肝臓細胞のZ変異を修正する、請求項41〜44のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、前記対象の肝臓細胞の重合Zタンパク質の蓄積を減らす、請求項41〜45のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、機能的A1ATの分泌および/または血清レベルを増やす、請求項41〜46のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、慢性咳、肺気腫、COPD、肝不全、肝炎、肝腫大、黄疸、および肝硬変の内の1つまたは複数を回復させる、請求項41〜47のいずれか1項に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、CRISPR/Cas9、TALENおよびジンクフィンガーヌクレアーゼから選択される、請求項41〜48のいずれか1項に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、
(a)複数の反復配列を含むDNA結合ドメインであって、少なくとも1つの前記反復配列がアミノ酸配列:LTPvQVVAIAwxyzGHGG(配列番号629)を含み、36〜39アミノ酸長さであり、
「v」はQ、DまたはEであり、
「w」は、SまたはNであり、
「x」はH、NまたはIであり、
「y」はD、A、I、N、G、H、K、Sであるか、または存在せず、
「z」はGGKQALETVQRLLPVLCQD(配列番号630)またはGGKQALETVQRLLPVLCQA(配列番号631)である、DNA結合ドメイン、および
(b)ヌクレアーゼ触媒ドメインを含むヌクレアーゼドメイン
を含む、請求項41〜48のいずれか1項に記載の方法。 - 前記ヌクレアーゼドメインが、別のヌクレアーゼドメインとダイマーを形成できる、請求項50に記載の方法。
- 前記ヌクレアーゼドメインが、配列番号632のアミノ酸配列を含むタンパク質の触媒ドメインを含む、請求項50または請求項51に記載の方法。
- α1抗トリプシン(A1AT)欠乏症を治療する方法であって、A1ATをコードする合成RNAの有効量を対象に投与することを含み、前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 前記投与が肝臓を対象とする、請求項53に記載の方法。
- 前記投与が門脈内注入である、請求項53または請求項54に記載の方法。
- 前記治療が、前記対象の肝臓細胞のZ変異を修正する、請求項53〜55のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、前記対象の肝臓細胞の重合Zタンパク質の蓄積を減らす、請求項53〜56のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、機能的A1ATの分泌および/または血清レベルを増やす、請求項53〜57のいずれか1項に記載の方法。
- 前記治療が、1つまたは複数の前記対象の症状を回復させる、請求項53〜58のいずれか1項に記載の方法。
- 細胞のα1抗トリプシン(A1AT)欠乏を元に戻す方法であって、
(a)欠損のあるA1AT遺伝子を含む細胞を取得すること、および
(b)前記細胞を、A1ATをコードする合成RNAと接触させること
を含み、
前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。 - (c)ステップ(b)で接触させた細胞を取得するステップ、および
(d)前記細胞をそれを必要としている対象に投与するステップ
をさらに含む、請求項60に記載の方法。 - 前記投与が肝臓を対象とする、請求項60または請求項61に記載の方法。
- 前記投与が門脈内注入である、請求項60〜62のいずれか1項に記載の方法。
- 細胞のα1抗トリプシン(A1AT)欠乏を元に戻す方法であって、
(a)欠損のあるA1AT遺伝子を含む細胞を取得すること、および
(b)前記細胞を、A1AT_A(配列番号584)において二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNAおよびA1AT_B(配列番号585)において二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNAの内の片方または両方と接触させること
を含み、
前記合成RNAが、細胞の毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、
方法。 - (c)ステップ(b)で接触させた前記細胞を取得するステップ、および
(d)前記細胞をそれを必要としている対象に投与するステップ
をさらに含む、請求項64に記載の方法。 - 前記投与が肝臓を対象とする、請求項64または請求項65に記載の方法。
- 前記投与が門脈内注入である、請求項64〜66のいずれか1項に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、CRISPR/Cas9、TALENおよびジンクフィンガーヌクレアーゼから選択される、請求項64〜67のいずれか1項に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、
(a)複数の反復配列を含むDNA結合ドメインであって、少なくとも1つの前記反復配列がアミノ酸配列:LTPvQVVAIAwxyzGHGG(配列番号629)を含み、36〜39アミノ酸長さであり、
「v」はQ、DまたはEであり、
「w」は、SまたはNであり、
「x」はH、NまたはIであり、
「y」はD、A、I、N、G、H、K、Sであるか、または存在せず、
「z」はGGKQALETVQRLLPVLCQD(配列番号630)またはGGKQALETVQRLLPVLCQA(配列番号631)である、DNA結合ドメイン、および
(b)ヌクレアーゼ触媒ドメインを含むヌクレアーゼドメイン
を含む、請求項64〜67のいずれか1項に記載の方法。 - 前記ヌクレアーゼドメインが、別のヌクレアーゼドメインとダイマーを形成できる、請求項69に記載の方法。
- 前記ヌクレアーゼドメインが、配列番号632のアミノ酸配列を含むタンパク質の触媒ドメインを含む、請求項69または請求項70に記載の方法。
- BMP7を調節する方法であって、BMP7をコードする合成RNAの有効量を対象に投与することを含み、前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 前記調節が、前記対象のBMP7の量の増加をもたらす、請求項72に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象のBMP7の量の減少をもたらす、請求項72または請求項73に記載の方法。
- 前記調節が、細胞内アルカリフォスファターゼ活性を高める、請求項72または請求項73に記載の方法。
- 前記BMP7をコードする合成RNAが、前記BMP7のシグナルペプチドをコードする配列を含む、請求項72〜75のいずれか1項に記載の方法。
- 前記BMP7のシグナルペプチドが、配列番号597の配列を含む、請求項76に記載の方法。
- 前記投与が肝臓を対象とする、請求項72〜77のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が門脈内注入である、請求項72〜78のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が糖尿病性腎症を治療する、請求項72〜79のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が肝線維症を治療する、請求項72〜80のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が腎臓を対象とする、請求項72〜77のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が静脈内または皮内である、請求項82に記載の方法。
- 前記投与が腎疾患を治療する、請求項82または請求項83に記載の方法。
- 前記腎疾患が糖尿病性腎症である、請求項82〜84のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象の尿中アルブミンレベルの低下をもたらす、請求項72〜85のいずれか1項に記載の方法。
- 免疫チェックポイント分子を調節する方法であって、前記免疫チェックポイント分子をコードする合成RNAの有効量を対象に投与することを含み、前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 対象を治療する方法であって、免疫チェックポイント分子遺伝子を標的とする遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNAを投与することを含む、方法。
- 対象を治療する方法であって、
(a)免疫チェックポイント分子遺伝子を含む細胞を取得すること、および
(b)前記細胞を、免疫チェックポイント分子遺伝子において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNAと接触させること
を含み、
前記合成RNAが、細胞の毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、
方法。 - (c)ステップ(b)で接触させた前記細胞を取得するステップ、および
(d)前記細胞をそれを必要としている対象に投与するステップ
をさらに含む、請求項89に記載の方法。 - 前記遺伝子編集タンパク質が、CRISPR/Cas9、TALENおよびジンクフィンガーヌクレアーゼから選択される、請求項88〜90のいずれか1項に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、
(a)複数の反復配列を含むDNA結合ドメインであって、少なくとも1つの前記反復配列がアミノ酸配列:LTPvQVVAIAwxyzGHGG(配列番号629)を含み、36〜39アミノ酸長さであり、
「v」はQ、DまたはEであり、
「w」は、SまたはNであり、
「x」はH、NまたはIであり、
「y」はD、A、I、N、G、H、K、Sであるか、または存在せず、
「z」はGGKQALETVQRLLPVLCQD(配列番号630)またはGGKQALETVQRLLPVLCQA(配列番号631)である、DNA結合ドメイン、および
(b)ヌクレアーゼ触媒ドメインを含むヌクレアーゼドメイン
を含む、請求項88〜90のいずれか1項に記載の方法。 - 前記ヌクレアーゼドメインが、別のヌクレアーゼドメインとダイマーを形成できる、請求項92に記載の方法。
- 前記ヌクレアーゼドメインが、配列番号632のアミノ酸配列を含むタンパク質の触媒ドメインを含む、請求項92または請求項93に記載の方法。
- 前記免疫チェックポイント分子が、PD−1、PD−L1、PD−L2、CTLA−4、ICOS、LAG3、OX40、OX40L、およびTIM3から選択される請求項87〜94のいずれか1項に記載の方法。
- 前記免疫チェックポイント分子がPD−1である、請求項95に記載の方法。
- 前記投与が、前記対象の免疫応答を刺激または強化する、請求項87〜96のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が、前記対象の免疫応答を抑制または低減する、請求項87〜96のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が癌に罹患している、請求項87〜98のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象が自己免疫疾患に罹患している、請求項87〜98のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が、皮内、筋肉内、腹腔内、静脈内、皮下、鼻腔内、硬膜外、経口、舌下、脳内、膣内、経皮、門脈内、直腸内、吸入経由、または局所的である、請求項87〜100のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記調節が、前記対象のPD−1の量の増加をもたらす、請求項87〜101のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記調節が、前記対象のPD−1の量の減少をもたらす、請求項87〜101のいずれか1項に記載の方法。
- 癌を治療する方法であって、
(a)対象から前記細胞が免疫細胞または造血細胞を単離すること、
(b)前記細胞を、キメラ抗原受容体(CAR)をコードする合成RNAと接触させること、および
(c)前記対象に前記細胞を投与すること
を含み、
前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、
方法。 - 前記免疫細胞がT細胞である、請求項104に記載の方法。
- キメラ抗原受容体(CAR)T細胞を作製する方法であって、
(a)対象から細胞を取得すること、および
(b)前記細胞を、二本鎖切断を生成してCAR挿入のためのセーフハーバー座位を生じることが可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNAと接触させること
を含み、
前記合成RNAが、細胞の毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、
方法。 - 前記遺伝子編集タンパク質が、CRISPR/Cas9、TALENおよびジンクフィンガーヌクレアーゼから選択される、請求項106に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、
(a)複数の反復配列を含むDNA結合ドメインであって、少なくとも1つの前記反復配列がアミノ酸配列:LTPvQVVAIAwxyzGHGG(配列番号629)を含み、36〜39アミノ酸長さであり、
「v」はQ、DまたはEであり、
「w」は、SまたはNであり、
「x」はH、NまたはIであり、
「y」はD、A、I、N、G、H、K、Sであるか、または存在せず、
「z」はGGKQALETVQRLLPVLCQD(配列番号630)またはGGKQALETVQRLLPVLCQA(配列番号631)である、DNA結合ドメイン、および
(b)ヌクレアーゼ触媒ドメインを含むヌクレアーゼドメイン
を含む、請求項106に記載の方法。 - 前記ヌクレアーゼドメインが、別のヌクレアーゼドメインとダイマーを形成できる、請求項108に記載の方法。
- 前記ヌクレアーゼドメインが、配列番号632のアミノ酸配列を含むタンパク質の触媒ドメインを含む、請求項108または請求項109に記載の方法。
- キメラ抗原受容体(CAR)T細胞の持続性を高める方法であって、前記キメラ抗原受容体(CAR)T細胞を、テロメラーゼをコードする合成RNAと接触させることを含み、
前記合成RNAが、細胞の毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。 - 皮膚創傷を治療する方法であって、インターロイキン22(IL22)をコードする合成RNAの有効量を対象に投与することを含み、前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 前記投与が、外皮系の細胞集団を対象とする、請求項112に記載の方法。
- 前記細胞集団が、表皮細胞、基底膜細胞、真皮細胞、および/または皮下組織細胞の内の1種または複数を含む、請求項113に記載の方法。
- 前記細胞集団が表皮細胞であり、角質層細胞、透明層細胞、顆粒層細胞、有棘層細胞、および/または基底層細胞の内の1種または複数を含む、請求項113または請求項114に記載の方法。
- 前記細胞集団が真皮細胞であり、乳頭領域および網状領域由来の1種または複数の細胞を含む、請求項113〜115のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が、皮下注入、皮内注入、真皮下注入、筋肉内注入、または局所投与による、請求項112〜116のいずれか1項に記載の方法。
- 前記投与が、真皮または表皮の内の1種または複数への皮内注入である、請求項117に記載の方法。
- 前記有効量が、約10cm2以下、または約5cm2以下、または約1cm2以下、または約0.5cm2以下、または約0.2cm2以下の治療領域当たり、約10ng〜約5000ngである、請求項112〜118のいずれか1項に記載の方法。
- 約10cm2以下、または約5cm2以下、または約1cm2以下、または約0.5cm2以下、または約0.2cm2以下の治療領域当たり、約10ng、または約20ng、または約50ng、または約100ng、または約200ng、または約300ng、または約400ng、または約500ng、または約600ng、または約700ng、または約800ng、または約900ng、または約1000ng、または約1100ng、または約1200ng、または約1300ng、または約1400ng、または約1500ng、または約1600ng、または約1700ng、または約1800ng、または約1900ng、または約2000ng、または約3000ng、または約4000ng、または約5000ngの前記合成RNAが投与される、請求項112〜119のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象のIL22の量の増加をもたらす、請求項112〜120のいずれか1項に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象のIL22の量の減少をもたらす、請求項112〜120のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、前記対象の患部を覆う針アレイを用いて投与される、請求項112〜122のいずれか1項に記載の方法。
- 投与後に、治療部位が機械的にマッサージされる、請求項112〜123のいずれか1項に記載の方法。
- 投与後に、治療部位が電気パルスに曝露される、請求項112〜124のいずれか1項に記載の方法。
- 前記電気パルスが、約50マイクロ秒〜約1秒間、約10V〜約200Vである、請求項125に記載の方法。
- 前記電気パルスが、多電極アレイによって、前記治療領域の周りに生成される、請求項125または請求項126に記載の方法。
- 代謝障害を治療する方法であって、欠陥遺伝子を標的とする遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNAを投与することを含み、前記投与が門脈内注入による、方法。
- 代謝障害を治療する方法であって、
(a)欠損遺伝子を含む細胞を取得すること、および
(b)前記細胞を、欠陥遺伝子において、二本鎖切断を生成可能な遺伝子編集タンパク質をコードする合成RNAと接触させること
を含み、
前記合成RNAが、細胞の毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、
方法。 - (c)ステップ(b)で接触させた前記細胞を取得するステップ、および
(d)前記細胞をそれを必要としている対象に門脈内注入により投与するステップ
をさらに含む、請求項129に記載の方法。 - 前記遺伝子編集タンパク質が、CRISPR/Cas9、TALENおよびジンクフィンガーヌクレアーゼから選択される、請求項128〜130のいずれか1項に記載の方法。
- 前記遺伝子編集タンパク質が、
(a)複数の反復配列を含むDNA結合ドメインであって、少なくとも1つの前記反復配列がアミノ酸配列:LTPvQVVAIAwxyzGHGG(配列番号629)を含み、36〜39アミノ酸長さであり、
「v」はQ、DまたはEであり、
「w」は、SまたはNであり、
「x」はH、NまたはIであり、
「y」はD、A、I、N、G、H、K、Sであるか、または存在せず、
「z」はGGKQALETVQRLLPVLCQD(配列番号630)またはGGKQALETVQRLLPVLCQA(配列番号631)である、DNA結合ドメイン、および
(b)ヌクレアーゼ触媒ドメインを含むヌクレアーゼドメイン
を含む、請求項128〜130のいずれか1項に記載の方法。 - 前記ヌクレアーゼドメインが、別のヌクレアーゼドメインとダイマーを形成できる、請求項132に記載の方法。
- 前記ヌクレアーゼドメインが、配列番号632のアミノ酸配列を含むタンパク質の触媒ドメインを含む、請求項132または請求項133に記載の方法。
- 前記代謝障害が、炭水化物代謝障害、アミノ酸代謝障害、尿素回路異常症、脂肪酸代謝障害、ポルフィリン代謝障害、リソソーム蓄積症、ペルオキシソーム形成異常症、およびプリンピリミジン代謝異常症から選択される、請求項128〜134のいずれか1項に記載の方法。
- 前記代謝障害が炭水化物代謝障害であって、前記疾患はガラクトース血症で、前記欠陥遺伝子は適宜GALT、GALK1、またはGALEであり;前記疾患は本態性フルクトース尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜KHKであり;前記疾患は遺伝性フルクトース不耐症で、前記欠陥遺伝子は適宜ALDOBであり;前記疾患はI型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜G6PC、SLC37A4、またはSLC17A3であり;前記疾患はII型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜GAAであり;前記疾患はIII型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜AGLであり;前記疾患はIV型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜GBE1であり;前記疾患はV型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜PYGMであり;前記疾患はVI型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜PYGLであり;前記疾患はVII型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜PYGMであり;前記疾患はIX型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜PHKA1、PHKA2、PHKB、PHKG1、またはPHKG2であり;前記疾患はXI型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜SLC2A2であり;前記疾患はXII型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜ALDOAであり;前記疾患はXIII型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜ENO1、ENO2、またはENO3であり;前記疾患は0型糖原病で、前記欠陥遺伝子は適宜GYS1またはGYS2であり;前記疾患はピルビン酸カルボキシラーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜PCであり;前記疾患はピルビン酸キナーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜PKLRであり;前記疾患はトランスアルドラーゼ欠乏症で、前記欠陥遺伝子は適宜TALDO1であり;前記疾患はトリオースリン酸イソメラーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜TPI1であり;前記疾患はフルクトースビスホスファターゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜FBP1であり;前記疾患は高シュウ酸尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜AGXTまたはGRHPRであり;前記疾患はヘキソキナーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜HK1であり;前記疾患はグルコース・ガラクトース吸収不良症で、前記欠陥遺伝子は適宜SLC5A1であり;または前記疾患はグルコース−6−ホスフェート脱水素酵素欠乏症で、前記欠陥遺伝子は適宜G6PDである、請求項135に記載の方法。
- 前記代謝障害が、アミノ酸代謝障害であって、前記疾患はアルカプトン尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜HGDであり;前記疾患はアスパルチルグルコサミン尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜AGAであり;前記疾患はメチルマロン酸血症で、前記欠陥遺伝子は適宜MUT、MCEE、MMAA、MMAB、MMACHC、MMADHC、またはLMBRD1であり;前記疾患はメープルシロップ尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜BCKDHA、BCKDHB、DBT、またはDLDであり;前記疾患はホモシスチン尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜CBSであり;疾患はチロシン血症で、欠陥遺伝子は適宜FAH、TAT、またはHPDであり;疾患はトリメチルアミン尿症で、欠陥遺伝子は適宜FMO3であり;疾患はハートナップ病で、欠陥遺伝子は適宜SLC6A19であり;疾患はビオチニダーゼ欠損症で、欠陥遺伝子は適宜BTDであり;疾患はオルニチンカルバモイル基転移酵素欠損で、欠陥遺伝子は適宜OTCであり;疾患はカルバモイルリン酸合成酵素I欠損症で、欠陥遺伝子は適宜CPS1であり;疾患はシトルリン血症で、欠陥遺伝子は適宜ASSまたはSLC25A13であり;前記疾患は高アルギニン血症で、前記欠陥遺伝子は適宜ARG1であり;前記疾患は高ホモシステイン血症で、前記欠陥遺伝子は適宜MTHFRであり;前記疾患は高メチオニン血症で、前記欠陥遺伝子は適宜MAT1A、GNMT、またはAHCYであり;前記疾患は高リジン血症で、前記欠陥遺伝子は適宜AASSであり;前記疾患は非ケトーシス型高グリシン血症で、前記欠陥遺伝子は適宜GLDC、AMT、またはGCSHであり;前記疾患はプロピオン酸血症で、前記欠陥遺伝子は適宜PCCAまたはPCCBであり;前記疾患は高プロリン血症で、前記欠陥遺伝子は適宜ALDH4A1またはPRODHであり;前記疾患はシスチン尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜SLC3A1またはSLC7A9であり;前記疾患はジカルボキシルアミノ酸尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜SLC1A1であり;前記疾患はグルタル酸血症2型で、前記欠陥遺伝子は適宜ETFA、ETFB、またはETFDHであり;前記疾患はイソ吉草酸血症で、前記欠陥遺伝子は適宜IVDであり;または前記疾患は2−ヒドロキシグルタル酸尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜L2HGDHまたはD2HGDHである、請求項135に記載の方法。
- 前記代謝障害が尿素サイクル異常症であって、前記疾患はN−アセチルグルタミン酸合成酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜NAGSであり;前記疾患はアルギニノコハク酸尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜ASLであり;または前記疾患はアルギニン血症で、前記欠陥遺伝子は適宜ARG1である、請求項135に記載の方法。
- 前記代謝障害が脂肪酸代謝障害であって、前記疾患は極長鎖アシルコエンザイムA脱水素酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜ACADVLであり;前記疾患は長鎖3−ヒドロキシアシルコエンザイムA脱水素酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜HADHAであり;前記疾患は中鎖アシルコエンザイムA脱水素酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜ACADMであり;前記疾患は短鎖アシルコエンザイムA脱水素酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜ACADSであり;前記疾患は3−ヒドロキシアシルコエンザイムA脱水素酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜HADHであり;前記疾患は2,4−ジエノイルコエンザイムA還元酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜NADK2であり;前記疾患は3−ヒドロキシ−3−メチルグルタリルCoAリアーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜HMGCLであり;前記疾患はマロニルCoA脱炭酸酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜MLYCDであり;前記疾患は全身性原発性カルニチン欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜SLC22A5であり;前記疾患はカルニチンアシルカルニチントランスロカーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜SLC25A20であり;前記疾患はカルニチンパルミトイルトランスフェラーゼI欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜CPT1Aであり;前記疾患はカルニチンパルミトイルトランスフェラーゼII欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜CPT2であり;前記疾患はリソソーム酸リパーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜LIPAであり;または前記疾患はゴーシェ病で、前記欠陥遺伝子は適宜GBAである、請求項135に記載の方法。
- 前記代謝障害がポルフィリン代謝障害であって、前記疾患は急性間欠性ポルフィリン症で、前記欠陥遺伝子は適宜HMBSであり;前記疾患はギュンター病で、前記欠陥遺伝子は適宜UROSであり;前記疾患は晩発性皮膚ポルフィリン症で、前記欠陥遺伝子は適宜URODであり;前記疾患は骨髄肝性ポルフィリン症で、前記欠陥遺伝子は適宜URODであり;前記疾患は遺伝性コプロポルフィリン症で、前記欠陥遺伝子は適宜CPOXであり;前記疾患は異型ポルフィリン症で、前記欠陥遺伝子は適宜PPOXであり;前記疾患は骨髄性プロトポルフィリン症で、前記欠陥遺伝子は適宜FECHであり;または前記疾患はアミノレブリン酸脱水酵素欠損性ポルフィリン症で、前記欠陥遺伝子は適宜ALADである、請求項135に記載の方法。
- 前記代謝障害がリソソーム蓄積症であって、前記疾患はファーバー病で、前記欠陥遺伝子は適宜ASAH1であり;前記疾患はクラッベ病で、前記欠陥遺伝子は適宜GALCであり;前記疾患はガラクトシアリドーシスで、前記欠陥遺伝子は適宜CTSAであり;前記疾患はファブリー病で、前記欠陥遺伝子は適宜GLAであり;前記疾患はシンドラー病で、前記欠陥遺伝子は適宜NAGAであり;前記疾患はGM1ガングリオシドーシスで、前記欠陥遺伝子は適宜GLB1であり;前記疾患はテイ・サックス病で、前記欠陥遺伝子は適宜HEXAであり;前記疾患はサンドホフ病で、前記欠陥遺伝子は適宜HEXBであり;前記疾患はGM2ガングリオシドーシス、ABバリアントで、前記欠陥遺伝子は適宜GM2Aであり;前記疾患はニーマン・ピック病で、前記欠陥遺伝子は適宜SMPD1、NPC1、またはNPC2であり;前記疾患は異染性白質ジストロフィーで、前記欠陥遺伝子は適宜ARSAまたはPSAPであり;前記疾患は多種スルファターゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜SUMF1であり;前記疾患はハーラー症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜IDUAであり;前記疾患はハンター症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜IDSであり;前記疾患はサンフィリポ症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜SGSH、NAGLU、HGSNAT、またはGNSであり;前記疾患はモルキオ症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜GALNSまたはGLB1であり;前記疾患はマロトー・ラミー症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜ARSBであり;前記疾患はスライ症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜GUSBであり;前記疾患はシアリドーシスで、前記欠陥遺伝子は適宜NEU1、NEU2、NEU3、またはNEU4であり;前記疾患はI細胞病で、前記欠陥遺伝子は適宜GNPTABまたはGNPTGであり;前記疾患はムコリピドーシスIV型で、前記欠陥遺伝子は適宜MCOLN1であり;前記疾患は小児性神経セロイドリポフスチン沈着で、前記欠陥遺伝子は適宜PPT1またはPPT2であり;前記疾患はヤンスキー・ビールショースキー病で、前記欠陥遺伝子は適宜TPP1であり;前記疾患はバッテン病で、前記欠陥遺伝子は適宜CLN1、CLN2、CLN3、CLN5、CLN6、MFSD8、CLN8、またはCTSDであり;前記疾患はA型クフス病で、前記欠陥遺伝子は適宜CLN6またはPPT1であり;前記疾患はB型クフス病で、前記欠陥遺伝子は適宜DNAJC5またはCTSFであり;前記疾患はαマンノシドーシスで、前記欠陥遺伝子は適宜MAN2B1、MAN2B2、またはMAN2C1であり;前記疾患はβマンノシドーシスで、前記欠陥遺伝子は適宜MANBAであり;前記疾患はフコシドーシスで、前記欠陥遺伝子は適宜FUCA1であり;前記疾患はシスチン症で、前記欠陥遺伝子は適宜CTNSであり;前記疾患は濃化異骨症で、前記欠陥遺伝子は適宜CTSKであり;前記疾患はサラ病で、前記欠陥遺伝子は適宜SLC17A5であり;前記疾患は乳児型シアル酸蓄積症で、前記欠陥遺伝子は適宜SLC17A5であり;または前記疾患はダノン病で、前記欠陥遺伝子は適宜LAMP2である、請求項135に記載の方法。
- 前記代謝障害がペルオキシソーム形成異常症であって、前記疾患はツェルウェーガー症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜PEX1、PEX2、PEX3、PEX5、PEX6、PEX12、PEX14、またはPEX26であり;前記疾患は乳児レフスム病で、前記欠陥遺伝子は適宜PEX1、PEX2、またはPEX26であり;前記疾患は新生児副腎白質ジストロフィーで、前記欠陥遺伝子は適宜PEX5、PEX1、PEX10、PEX13、またはPEX26であり;前記疾患は1型RCDPで、前記欠陥遺伝子は適宜PEX7であり;前記疾患はピペコリン酸血症で、前記欠陥遺伝子は適宜PAHXであり;前記疾患は無カタラーゼ症で、前記欠陥遺伝子は適宜CATであり;前記疾患は高シュウ酸尿症I型で、前記欠陥遺伝子は適宜AGXTであり;前記疾患はアシル−CoAオキシダーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜ACOX1であり;前記疾患はD−二官能性タンパク欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜HSD17B4であり;前記疾患はジヒドロオキシアセトンリン酸アシルトランスフェラーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜GNPATであり;前記疾患はX連鎖副腎白質ジストロフィーで、前記欠陥遺伝子は適宜ABCD1であり;前記疾患はα−メチルアシル−CoAラセマーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜AMACRであり;前記疾患はRCDP−2型で、前記欠陥遺伝子は適宜DHAPATであり;前記疾患はRCDP−3型で、前記欠陥遺伝子は適宜AGPSであり;前記疾患は成人レフサム病1で、前記欠陥遺伝子は適宜PHYHであり;または前記疾患はマリブレー低身長症で、前記欠陥遺伝子は適宜TRIM37である、請求項135に記載の方法。
- 前記代謝障害がプリンピリミジン代謝異常症であって、前記疾患はレッシュ・ナイハン症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜HPRTであり;前記疾患はアデニンホスホリボシルトランスフェラーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜APRTであり;前記疾患はアデノシンデアミナーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜ADAであり;前記疾患はアデノシン一リン酸デアミナーゼ欠損症1型で、前記欠陥遺伝子は適宜AMPD1であり;前記疾患はアデニロコハク酸リアーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜ADSLであり;前記疾患はジヒドロピリミジン脱水素酵素欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜DPYDであり;前記疾患はミラー症候群で、前記欠陥遺伝子は適宜DHODHであり;前記疾患はオロト酸尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜UMPSであり;前記疾患はプリンヌクレオシドホスホリラーゼ欠損症で、前記欠陥遺伝子は適宜PNPであり;または前記疾患はキサンチン尿症で、前記欠陥遺伝子は適宜XDH、MOCS1、またはMOCS2、GEPHである、請求項135に記載の方法。
- トランスサイレチン(TTR)を調節する方法であって、TTRをコードする合成RNAの有効量を対象に投与することを含み、前記合成RNAが、細胞毒性を実質的に回避する1つまたは複数の非標準ヌクレオチドを含む、方法。
- 前記調節が、前記対象のTTRの量の増加をもたらす、請求項144に記載の方法。
- 前記調節が、前記対象のTTRの量の減少をもたらす、請求項144に記載の方法。
- 前記調節により、アミロイド病、老人性全身性アミロイドーシス(SSA)、家族性アミロイドポリニューロパチー(FAP)、および家族性アミロイド心筋症(FAC)の内の1種または複数が治療される、請求項144〜146のいずれか1項に記載の方法
- 前記非標準のヌクレオチドが、ピリミジンの2C、4C、および5C位、またはプリンの6C、7N、および8C位から選択される位置で1つまたは複数の置換を有する、請求項1〜147のいずれか1項に記載の方法。
- 前記非標準のヌクレオチドが、5−ヒドロキシシチジン、5−メチルシチジン、5−ヒドロキシメチルシチジン、5−カルボキシシチジン、5−ホルミルシチジン、5−メトキシシチジン、プソイドウリジン、5−ヒドロキシウリジン、5−メチルウリジン、5−ヒドロキシメチルウリジン、5−カルボキシウリジン、5−ホルミルウリジン、5−メトキシウリジン、5−ヒドロキシプソイドウリジン、5−メチルプソイドウリジン、5−ヒドロキシメチルプソイドウリジン、5−カルボキシプソイドウリジン、5−ホルミルプソイドウリジン、および5−メトキシプソイドウリジンの内の1つまたは複数を、前記非標準ヌクレオチドの少なくとも50%、または少なくとも60%、または少なくとも70%、または少なくとも80%、または少なくとも90%、または100%の量で適宜含む、請求項1〜148のいずれか1項に記載の方法。
- 少なくとも約50%のシチジン残基が非標準ヌクレオチドであり、これらは、5−ヒドロキシシチジン、5−メチルシチジン、5−ヒドロキシメチルシチジン、5−カルボキシシチジン、5−ホルミルシチジン、および5−メトキシシチジンから選択される、請求項1〜149のいずれか1項に記載の方法。
- 少なくとも約75%または少なくとも約90%のシチジン残基が非標準ヌクレオチドであり、前記非標準ヌクレオチドが、5−ヒドロキシシチジン、5−メチルシチジン、5−ヒドロキシメチルシチジン、5−カルボキシシチジン、5−ホルミルシチジン、および5−メトキシシチジンから選択される、請求項1〜150のいずれか1項に記載の方法。
- 少なくとも約20%のウリジン、または少なくとも約40%、または少なくとも約50%、または少なくとも約75%、または少なくとも約90%のウリジン残基が非標準ヌクレオチドであり、前記非標準ヌクレオチドが、プソイドウリジン、5−ヒドロキシウリジン、5−メチルウリジン、5−ヒドロキシメチルウリジン、5−カルボキシウリジン、5−ホルミルウリジン、5−メトキシウリジン、5−ヒドロキシプソイドウリジン、5−メチルプソイドウリジン、5−ヒドロキシメチルプソイドウリジン、5−カルボキシプソイドウリジン、5−ホルミルプソイドウリジン、および5−メトキシプソイドウリジンから選択される、請求項1〜151のいずれか1項に記載の方法。
- 少なくとも約40%、または少なくとも約50%、または少なくとも約75%、または少なくとも約90%のウリジン残基が非標準ヌクレオチドであり、前記非標準ヌクレオチドが、プソイドウリジン、5−ヒドロキシウリジン、5−メチルウリジン、5−ヒドロキシメチルウリジン、5−カルボキシウリジン、5−ホルミルウリジン、5−メトキシウリジン、5−ヒドロキシプソイドウリジン、5−メチルプソイドウリジン、5−ヒドロキシメチルプソイドウリジン、5−カルボキシプソイドウリジン、5−ホルミルプソイドウリジン、および5−メトキシプソイドウリジンから選択される、請求項1〜152のいずれか1項に記載の方法。
- グアニン残基の少なくとも約10%が、非標準ヌクレオチドであり、前記非標準ヌクレオチドが、任意選択で、7−デアザグアノシンである、請求項1〜153のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAが、グアノシン残基の代わりに約50%以下の7−デアザグアノシンを含有する、請求項1〜154のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAが、アデノシン残基の代わりに非標準ヌクレオチドを含有しない、請求項1〜155のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAが、5’キャップ構造を含む、請求項1〜156のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAの5’−UTRが、コザックコンセンサス配列を含む、請求項1〜157のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAの5’−UTRが、インビボでRNAの安定性を高める配列を含み、5’−UTRが、αグロビンまたはβグロビン5’−UTRを含み得る、請求項1〜158のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAの3’−UTRが、インビボでRNAの安定性を高める配列を含み、3’−UTRが、αグロビンまたはβグロビン3’−UTRを含み得る、請求項1〜159のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAが、3’ポリAテールを含む、請求項1〜160のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAの3’ポリAテールが、約20ヌクレオチド〜約250ヌクレオチドの長さである、請求項1〜161のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAが、約200ヌクレオチド〜約5000ヌクレオチドの長さである、請求項1〜162のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAが、約500〜約2000ヌクレオチドの長さ、または約500〜約1500のヌクレオチドの長さ、または約500〜約1000ヌクレオチドの長さである、請求項1〜163のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAが、インビトロ転写により調製される、請求項1〜164のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、約10ng〜約5000ngのRNAを含む1回または複数回の注入として投与される、請求項1〜165のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、約10ng以下、または約20ng以下、または約50ng以下、または約100ng以下、または約200ng以下、または約300ng以下、または約400ng以下、または約500ng以下、または約600ng以下、または約700ng以下、または約800ng以下、または約900ng以下、または約1000ng以下、または約1100ng以下、または約1200ng以下、または約1300ng以下、または約1400ng以下、または約1500ng以下、または約1600ng以下、または約1700ng以下、または約1800ng以下、または約1900ng以下、または約2000ng以下、または約3000ng以下、または約4000ng以下、または約5000ng以下をそれぞれ含む1回または複数回の注入として投与される、請求項1〜166のいずれか1項に記載の方法。
- 前記合成RNAが、約10ng、または約20ng、または約50ng、または約100ng、または約200ng、または約300ng、または約400ng、または約500ng、または約600ng、または約700ng、または約800ng、または約900ng、または約1000ng、または約1100ng、または約1200ng、または約1300ng、または約1400ng、または約1500ng、または約1600ng、または約1700ng、または約1800ng、または約1900ng、または約2000ng、または約3000ng、または約4000ng、または約5000ngをそれぞれ含む1回または複数回の注入として投与される。請求項1〜167のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、細胞によるRNAの取り込みを高めるために、1種または複数の脂質を含む、請求項1〜168のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、カチオン性リポソーム配合物を含み、前記脂質が必要に応じ表1から選択される、請求項1〜169のいずれか1項に記載の方法。
- 前記対象がヒトである、請求項1〜170のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、ほぼ週1回、少なくとも2週間にわたり投与される、請求項1〜171のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、隔週で、少なくとも1ヶ月間にわたり投与される、請求項1〜172のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、毎月またはほぼ1ヶ月おきに投与される、請求項1〜173のいずれか1項に記載の方法。
- 前記有効量の合成RNAが、少なくとも2ヵ月間、または少なくとも4ヵ月間、または少なくとも6ヵ月間、または少なくとも9ヵ月間、または少なくとも1年間投与される、請求項1〜174のいずれか1項に記載の方法。
- 請求項1〜175のいずれか1項で使用される有効量の前記合成RNAを含む組成物。
- 請求項176に記載の組成物および薬学的に許容可能な賦形剤を含む医薬組成物。
- 本明細書に記載の疾患または障害の治療における、請求項176に記載の組成物または請求項177に記載の医薬組成物の使用。
- 本明細書に記載の疾患または障害の治療のための薬物の製造における、請求項176に記載の組成物または請求項177に記載の医薬組成物の使用。
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