[go: up one dir, main page]

HU229283B1 - Microbiological method for producing amides - Google Patents

Microbiological method for producing amides Download PDF

Info

Publication number
HU229283B1
HU229283B1 HU0401111A HUP0401111A HU229283B1 HU 229283 B1 HU229283 B1 HU 229283B1 HU 0401111 A HU0401111 A HU 0401111A HU P0401111 A HUP0401111 A HU P0401111A HU 229283 B1 HU229283 B1 HU 229283B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
activity
microorganisms
nitrile
strain
acetonitrile
Prior art date
Application number
HU0401111A
Other languages
English (en)
Inventor
Karen Tracey Robins
Toru Nagasawa
Original Assignee
Lonza Ag
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Lonza Ag filed Critical Lonza Ag
Publication of HUP0401111A2 publication Critical patent/HUP0401111A2/hu
Publication of HUP0401111A3 publication Critical patent/HUP0401111A3/hu
Publication of HU229283B1 publication Critical patent/HU229283B1/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • C12N1/205Bacterial isolates
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20Bacteria; Culture media therefor
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/88Lyases (4.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P13/00Preparation of nitrogen-containing organic compounds
    • C12P13/02Amides, e.g. chloramphenicol or polyamides; Imides or polyimides; Urethanes, i.e. compounds comprising N-C=O structural element or polyurethanes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y402/00Carbon-oxygen lyases (4.2)
    • C12Y402/01Hydro-lyases (4.2.1)
    • C12Y402/01084Nitrile hydratase (4.2.1.84)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12RINDEXING SCHEME ASSOCIATED WITH SUBCLASSES C12C - C12Q, RELATING TO MICROORGANISMS
    • C12R2001/00Microorganisms ; Processes using microorganisms
    • C12R2001/01Bacteria or Actinomycetales ; using bacteria or Actinomycetales

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)

Description

A találmány legalább 3 M konceatrációjó aeetonitriit tolerálni képes mikromganizíntiscslcra, nitrií-hldratáz aktivitása ettzijnre, amldok előállítására alkalmas, az említett mikroorganizmusok, 111. enzim alkalmazásán alapuló eljárásra, valamint a mikroorganizmusok aeetoniíril-hulladék megszüntetésére történő alkalmazására vonatkozik.
Amdok, például mkotinsav-amíd - amely a fí-vstamitt-komplex ember és állat számára esszenciális vitaminja - előállítására már több biotechnológiai eljárás ismert.
Az, EF-A 0 307 936 például a-cíano-piriáin Rkodonvccvs rfanfocfirous 1i segítségével történő, nikotinsavanridoí eredményező átalakítását írja le. Az eljárás hátránya, hogy a fih&dococct® rh&dockra&s 31 piros szína, így a termék elszlneződik. Emellett az említett mikrootgastiztansokn.sk a j-ciano-piridm sznbsztrátmnra vonatkozóan nagy a K^-énéke, hőmérséklet- és 3-ciano-plridm-türése csekély.
Á WÖ 99/05306 szerint nikotinsavamidot a megfelelő nitrilből kiindulva lehet előállítani Rhodoceectts, Amyc&seí&pAs és Actixomackra nemzetiségű mikroorganizmusok segítségével. Az eljárás hátránya, hogy az AmyctAaiöpsís mikroorganizmusok magasabb hőmérsékleten maktivalödnak. Emellett d-eisno-prridin- és niketínsavamid-fürése csekély; a leirt Rkvaococeits nemzetiségű mikroorganizmusok 3-ciano-piridinGel kapcsolatos KM-értéke nagy, hómérsékleti stabilitásuk alaesmty. Ennek alapján az eljárás ipari kivitelezésére alkalmatlan.
A találmány feladata olyan mikroorganizmus megtalálása volt, amelynek nagyobb a stabilitása, például a 3-cíanö-pirídin szubsztrátummal szemben kisebb a KM-értéke, ezért amldok előállítására alkalmas gazdaságosabb, a megfelelő amidot igen jó hozammal és: jó tisztaságában szolgáltató eljárásban alkalmazható. A fenti feladatot az. 1, igénypont szerinti mikroorganizmusokkal, az 5, vagy 7. igénypont szerinti enzimmel és a S. igénypont szerinti eljárással oldottuk meg..
A találmány szerinti mikroorganizmusok megfelelő szelektálással például talajmintákból, iszapból vagy szennyvízből a szokásos mikrobiológiai technikák alkalmazásával elkalóuíöíetők. A mikroorganizmusokat célszerűen C-forrásként (1) általános képletö piriditt-aldoximot tartalmazó közegben, kohaltíonok és például élesztők!vonat és/vagy ammóniumsók jelenlétében szelektáljuk, A kapott tenyészetek közül azokat választjuk ki, amelyek képesek legalább 3 M koncentrációjú acetonitrih tolerálni, továbbá képesek rútrih, példát;! 3-cianopíridint és acetonitrih a megfelelő amiddá alakítani.
Psridln-aidoxímként pirsdsn-2-, pindín-3- vagy piridm-4~aldoxlmof alkalmazhattmfc.
A szelektáláshoz előnyösen azok a nitrüek alkalmazhatók, amelyek a későbbi híofranszfortnálás során szubsziráíxnnkéní kerülnek alkalmazásra, tehát például acetonltril (ecetsavnitrii), propiosííril, butironitdl, kroíonsavnitril, adípinsavnhrll és malorísavuüril.
A kobaltionok forrásaként az un. „kobaltionokat generáló kobaitvegyületek”-et részesítjük előnyben, ilyenek például Co2*- vagy Co'f-sök, igy kobak-klorid, kobak-szulfát és kebalt-acetát, Előnyösen kobalfvegyületként Co—sót, például kobalí{il)-kloridot alkalmazunk, A tenyésztést azonban fém-kobalt vagy más kobalívegyüietek jelenlétében Is végezhetjük. Általában a kobak vagy kobaltvegyüiet 1-39 mg/1, előnyösen Ί -20 mg/1 mennyiségben; van: jelen a közegben.
Ammónuimsöként például ammómtmi-foszfáí, így (ΝΗνχΗΡΟ,? vagy (NH,t}'H;;PO4 jöhet számításba.
A mikroorganizmusokat a tulajdonképpen; feiotranszformáiás előtt alkalmas előtenyésztésí közegbet;
tenyésztjük. Alkalmas közegek például a 3, és 3. táblázatiján megadottak.
9SÍW-S535 SL/kov
Az: előteuyésztés általában 2ö °C és· 40 -°C közötti hőmérsékleten és 5 és S közötti pB-érték mellett, előnyösen 25 CC és 35 °C között! hőmérsékleten és 6 és 7,5 közötti plf-érték mellett történik.
Áz elöíenyészfés során előnyős, ha a hatásos enzimeket, a nitfii-hídratázokat enzim-iadnktor adagolásával indukáljak,
Bnzim-induktorként az alábbiakat soroljak fel: telített vagy telítetlen alifás nitrilek vagy a megfelelő antldok, igy CrCr-alkánaitrifek,. például btttirosittik izobüllronítrih vateriáíssav-aftril vagy tzovaleriánsav-silril, vagy Cs-Cj-alkén-nttrilek, példán! nsetakrilntól vagy krotonsav-niíril; alifás amidként minden C?-C?-alkánantid, példán! buíirarnid. ízobutirarnid. valeríánsav-amid vagy propíonsav-anatd, vagy Cj-C-raikénamídök, így például metakríiamid vagy kroí<msav~;mnd alkalmazható. Előnyös enzim-induktorok a metakrilamid, btttlramíd, íz.obutlrantiö, valeriánsav-anrid, meí&krihntrU, krotonsav-smíd, butiromtril és izobutíronitríl, Különösen előnyösen metakrilnitnlí alkalmazunk enzíni-índnktofként.
A találmány szerinti nrikröorgarúzsnusök legalább 3M koncentrációjú acetonitrilt tolerálnak. Ezen az értendő, hogy 3 M aeetonítrilt tartalmazó, 7,0 pH-értékü 0,1 M káliurrdoszfát-pulferben 20 C-on végzett egy órás inkubálás után az enzim-aktivitás stabil, vagyis az akti vitás-veszteség legfeljebb lő %. Előnyös mikroorganizmusok legalább 6 M scetomírii~konce?ttráetot tolerálnak egy órán át a fenti körülmények között legfeljebb 50 % aktivitás-veszteség mellett Különösen, előnyös tókroorganizmusok legalább 9 M acetonlttil-koncenmáelót tolerálnak egy órán át a lenti körülmények közölt legfeljebb 70 % aktivitás-veszteség mellett, A legelőnyösebb mikroorganizmusok esetén az enzimaktívitás még 15 M és 19 M aeetomtrii-koneeníráeió (ez. tiszta acetonitrilnek felel meg) mellett végzett több perces ínkübálás után is stabil 15 M acetonttrílben végzett tíz perces inkubálás után: az enzimaktí vitás csökkenése 10 %-nál kisebb.
A találmány szerinti mikroorganizmusok höstabilitása nagy, azaz nagy hőmérsékleten stabilitásuk az eddig ismert mikroorganizmusokhoz képest nagyobb. A találmány szerinti mikroorganizmusok enzimaktivitásának csökkenése 7,0 pB-ártékü 0,1 M kálium-fószfát-pnfferbeu 60 C-on 1 órán át végzett ínköbálás titán legfeljebb lő %, azonos körülmények között végzett 2 órás: inkubálás után legfeljebb 40 %.
Enzimaktivifúson itt a núrii-hídratáz-aktivítást, különösen a a-cíano-pirídín szubsztrátitorra vonatkozó níirü-hidratáz-akfivitást értjük.
A találmány szerinti rnikroorgaHizmusnk további tulajdonságai: nagy tolerancia a szabsztr&tumként előnyösen alkalmazott 3-ci;n!o-piridumel és az ebből keletkező nikoíinsavamíd termékkel szemben, 3-cianoptddinre vonatkozóan alacsony KM-érték. Különösen kiváló tulajdonság, hogy a mikroorganizmusok az acetarnidot nagyobb koncentrációban képesek akkumulálni, mmt a 30 °C hőmérsékleten telített acetamid-oldat koncentráció ja (kb. '320-230 g acetamid/lÖÖ ml víz).
Előnyös mikroorganizmusok a ftö&d&cüzeus nemzetiséghez tartoznak. Olősösen előnyös a Fhodvcöccus sp. FZ4 sz. törzs és annak funkcionálisan ekvivalens variánsai és mutánsai. Funkcionálisan ekvivalens variánsokon és mutánsokon, az olyan variánsokat és mutánsokat értjük; amelyek képesek acetonitrilt legalább 3M koncentrációban tolerálni:. Igen előnyösek a „pígment-negaiiv” Aőcdococcus törzsek, azaz a kívánt tennék elszíneződést előidéző piros színnel nem rendelkező törzsek. Az ilyen törzsek, adott esetben könnyen létrehozhatók plgrnemképző míkroorgunizmusokböl UV-besugársással vagy mntagén vegyszerekkel előidézett mutagenézís útján.
A PhüdocGcctis sp. FZ4 sz. törzset 2ŐÖ0.Ő7.1 i-én a Mikroorganizmusok és Sejíkuitúrák Német Gyüjteményébets GmbH (DSMZj [Mascberoder Wcg 1b, D-38124 Braunschweig] A Budapesti Szerződés értelmében helyeztük letétbe DSM 13597 szám alatt. Ez a törzs- azonosítás;! adatai alapján egyik eddig ismert R&oí&xíwcks •tájhoz sem veit hozzárendelhető, ezért-őj fajhoz le® hozzárendelve.
A J?feífoeoe««s «ρ; FZ4 sz. törzs foakci-ooőlisa® ekvivalens variánsai és mutánsai vagy spontán mutáció vagy például ÜV«hesagárzás vagy rm-nagén vegyszer hatására jönnék létre. A Modococess ap: FZ4 sz. törzs előnyös funkcionálisan- ekvivalens variánsai és mutánsai „pigmenf-aegattV’ változatok, azaz nem rendelkeznek piros festékkel, amely a kívánt termék elszíneződéséi okozhatják.
Az enzimkivon&t például a rmkreorgamzmusök feltárásával nyerhető, ez történhet például ultrahanggal, francia préssel vagy Mzezhnes; módszerrel.
A találmány szerinti, nltríi-hidratáz-atóvitású enzimek a fest leírt mikroorganizmusokból nyerhető, előnyösen a Modocomts nemzettség mfeoorgamzmnsaihdl, különöse» előnyösen a A PboaGnocc^s sp FZ4 sz. törzsből (DSM 1.3- 597).
Ezeknek az enzimeknek az alábbi tulajdonságai vaunak:
a) KM-értékük az acetonitril szubsztrátum vonatkozásában 2,S4 ± 1,00 mM, a 3-ciaao-ptriáin szöbszírátam vonatkozásában 80,5 ± 15,ö mM, Ö,ÖS M káhum-íbszíát-pufferben, pH 7,0 és 20 öC mellett;
b) pH-optimumak 6,5 ± 1,0- pH, 0,05 M feáham-foszlát-pnfferben, 20 aC mellett.
Az enzimek - 1-lPLC segítségével meghatározott - móltómege 465 + 50 köa.
A tulajdonképpeni hiötrmtszformálás a fentiekben leírt miktoorganÍ2nmsokktó, ezekből felvont enzim kivonattal vagy az elkülönített enzimekkel történhet A biotrwszfonnáiási. előnyösen a Xhodococcas ,tp. FZ4 mikroorganizmussal: végezzük.,
A biotranszfermálás smbsz&átómaként (11) általános képletó nitníeket alkalmazhatunk. A (11) általános képletben R?l jelentése Cf-C6-alkil~ vagy Cj-Ci-alkemlcsopon: vagy (IV) általános képlető csoport, amelyben X jelentése -N- vagy -CH~, őrig R2 és R$ -egymástól függetlenül hidrogénatomot, halogénatomot C;-Cfl—ai:kí.l· vagy Cj-Ce-alkenilesoportotjelenf,
A Ct-Q-alkilcsopmt lehet metil-, etil-, propil-, izopropil-, buti!-, tefc-featll-, IzoŐntii-, péitól-, hexllcsoport és a pentil- és hexílesoporf iaomerjei. A Cj-Cj-alkenü-cseport példájaként az alábbiakat soroljuk fel: vínli-, allil-, í-propén-l-il- é-s í-propén-241-esopetí.
A halogénatom lehet fluor-, klór-, bróm- vagy jődafont.
A (U) általános képlető nitrilek előnyös képviselői az alábbiak: acetonitril, btdironitól, akriteifril, propsonitril, krotons-avnitrrl, 2-ciano-piridm, 3-eianö-píridm, 4-eiano-piridin, benzonitríl, fiuor-benzonitól, kiörbenzonitrii és 'bróm-benzonhrii. Szafesztrtamként a legelőnyösebb az acetonitril és a 3-eimo-pirtóm..
A biofranszformálást előnyösen egyszeri vagy folyamatos szohsztrátum-adagolással végezzük. Szakember hídja, hogy a szubsztrátóm alkalmazandó koncentrációja az alkalmazott szabsztrátum oldhatóságától
Az. eljárást előnyőse» nyugvó (nem növekedő) sejtekkel valósítjuk meg.
A hiotranszformálás közegeként a szakterületen szokásos közegeket alkalmazhatjuk, például híg fosztát-puffert, HEPES-pnifert, cítrái-poffert és borát-paffert, Híg föszfát-pufferon előnyösen ö,01 -0,5 M tőszfátpatfert, különösen előnyösen 0.05--0,25 M foszfát-paffért ériünk.
A biütranszíbrrnáfást előnyőse® 5 *C és 50 °C közötti, különösen előnyösen 20 °C -és 40 °C közötti hőmérsékleten valósítjuk meg. A pH-érték előnyösen 5 és 18- közötti, különösen előnyöse® 6 és 7,5 közötti,
A (H) általános képletű nnrii átalakulása titán a megfelelő (Hl) általános .képletó anúdot - e képletben
R.’ jelentése a fenti - adott esetben a sejtek elkülönítése utáa a szokásos feldolgozási módszerek, például kristályosítás vagy porlasztva. szárítás segítségével izolálhatjuk.
A találmány további tárgya a leírt mikroorganizmusok, különösen a Kóedoccceus nemzetiséghez tartozó inikroorgasizmusok alkalmazása acetonírril-huliadék megszüntetésére.
Az acetonitril olyan oldószer, amelyet például a nagynyomású félyaáéldcr©exategmRás eljárások során alkalmaznak és amelyet végSl 'hulladékként áríaltsallantíatn kell. Áz acetouitril-hulladék találmány szerinti ártalmatlanításánál az scetoxútril koncentrációja 19 M lehet,, ez tiszta acetonitriluek felel meg. Előnyösen 9,2515,0 M, célszerűen l-lö M koncentrációjú acetcnixril-oldstot, 111, -sznszpenziót alkalmazunk.
Acetönittíi-bulladék. megszüntetésekor a mikroorganizmusokat előnyösen 5 °C és 50 C közötti, célszerűéit 20 *C. és 40 *C közötti hőmérsékleten alkalmazzuk. A plí-érték előnyösen 5 és 10 közötti, célszerűen 6 és 8 közötti.
A hulladékkezelés során az acetonitril aceíaxnid reakció időtartama az acetonitril koncentrációjától függ. Ha például az. acetouitríi-oldat, íll. -szuszpenzló koncentrációja 9,5 M, pH 7,0 és kb. 20 *C hőmérséklet mellett az átalakulás mintegy 2 órát vesz igénybe.
Az FZ4 (DSM 13597) törzs azonosítása
A) Kemo-taxonomisi Ismérvek:
1. A pepridogiskán diagnosztikai aminosavat mszo-áiunrino-pimelinsav
2. Mikoigavakt C«-C48 lánchosszúságú míkolsavak vannak jelen
3. Zslrsavösszetétsd:; lineáris, telített és telítetlen zsírsavak, nagy részarányban íaberkulö-szícarinssv. Az
FZ4 törzset: a zslrsavösszeíetel alapján azonosították a Rbadoccccus nemzetiség tagjának.
B) Hagyományos ismérvek
Az F24 törzs sejtjeinek makroszkópos megjelenése és morfológiája a /Őkk/ococcss’ Fta&cfcre»s-hoz hasonlít .Az FZ4 törzs telepei lazaepirosak (RAL 3ö22), a fiatal tenyészet elágazó Álfákat fejleszt, amelyekből pálcikák és kokkuszok lesznek,
A kemo-taxonómial és a hagyományos Ismérvek alapján az ,FZ4 törzset a R/mdococazs fdedosbrenshoz. tartozónak azonosították, de a korrelációs tényező alacsony.
C) A lös rDNS első 509 feázisásak-elemzése
A 1 ős rDNS első 590 bázisának szekvenciája csak 97,7 %-ig hasonlít a ffkodococcíís rAodookroas fajta tipikus képviselőjéhez, a Pbadaeaecus rti&d&ekr&us DSM 43241-hez, és 99,1 %-ig: egy másik Rkoáeevceus Mxfatne refereueiatörzsfeöz. Tekintettel arra, hogy az FZ4 törzs 16S rDNS-a első 500 bázisának szekvenciája 99,5 %-«ái kisebb azonosságot mutatott a Rbad&CGccns rhad&tör&tts DSM 43241 megfelelő szekvenciájával, az FZ4 törzset nem lehet .ifitottbeoeeto záodocő«Mi5-hoz tartozónak tekinteni. Ezért az EZ4 törzset a Rbodococcíís nemzetiségen belüli áj fajtaként azonosították.
Ábrák;
1. ábra: acetonitril -» scstamid biotranszförtuálás sdtáodococcíís sp, EZ4 törzs nyugvó sejtjeivel;
2. ábra; a Moáococctis sp. FZ4 törzs: nyugvó sejtjei nittil-bidraláz-aktivitásának hőmérsékleti optimuma:
3. ábra: a Sóodococeus sp. FZ4 törzs nyugvó sejtjei nitríl-hidratáz-akfivitásának hő-stabilitása;
4. ábra: a Róodococ-í?us sp. FZ4 törzs nyugvó sejtjei niirii-hldratáz-aktivltásásak pH-optíjnuma;
5. ábra·: a Rbcdacaccus sp, PZ4 törzs nyugvó sejtjei: niírii-hídratáz-aktivitásáusk plí-stabditása;
6. ábra: a Rhodocacctts sp. FZ4 törzs nyugvó sejtjei niírjl-hidratáz-skíivitásájsak S-ciatto-plriötnuel szembeni toleranciája;
7. ábra: a Rfaxfocoeeiis sp. E£4 törzs nyugvó sejtjei nitril-hidratáz-aktivitásának nikotissav-amiddai szembeni toleranciája;
S, ábra: az scstoniiríl-koncenlráclónak a Rfiodsícaccus sp.. ΪΖ4 törzs nyugvó sejtjeinek ítitfil-mdratázaktivitására kifejteti befolyása az acetoEHtril --> aceíamid biotranszformálás során;
9. ábra; az acelomírtl-koncentrácittek a /óWőceccus sp. FZ4 törzs· nyugvó sejtjeinek nkril-hidralázaktivitására gyakorolt befolyása;
10. ábra; a Áöadoooccm' sp. FZ4 törzs nyugvó -sejtjeinek, nhril-hidratáz-akíivitása a 3-cíauo-piriáin koncentrációjának függvényében;
11. ábra; a. uitríl-hidratáz és a referencia-proteinek móltöfnegének iogarimmsa a HPtC-reteneiós idő függvényében;
12. ábra: a ttftril-hidratáz-alegs'ségmk ás a referencia-proteinek xnóMömegének íögartansa az SDS Page RFérték függvényében;
13. ábra: a ÁáoJococe&r sp. FZ4-ból nyert tisztított nitaí-indratáz aktivitása a S-ctano-pindín koncentrációja függvényében;
14. ábra: a .Rhodococcns a/?, FZ4-ból nyert tisztított aitríi-hidtatáz aktivitása az acetonitril koncentrációja függvényében;
15. ábra; a ffiiaddcoccus a/?, FZ4-ból nyert tisztított nitrií-hídratáz hőstabiikása;
lö, ábra: a /ífexíbccccas sp. FZ4-ból nyert tisztított nitríi-hídratáz pí-l-öptnüurna;
17. ábra: a .ék'odbcoccws sp, FZ4-boi nyers tisztított niíril-hidratáz pH-stabditása,
1, példa
A nitril-hídraíáz-aktlvrtás meghatározása
A niíril-hidratáz-aktivitás meghatározására 3-císno-piridtnbős (1,0 M, 1,0 ml), káitutn-foszfát-puffetból (0,1 M, pH 7,0; 6,5 nd) és sejí-szüszpenzióből (9,5 mi) álló reakeiőelegyei keverés közben 29 X-on: 5 percen át inkubáitubk. A reakciót sósav (5 Μ, 0,1 mi) adagolásával megszakítottuk. A reakcíóelegyet 6,2 ptn szűrön keresztül szűrtök, majd HPLC segítségével (W&ters Spherísorb 5 μ ÖDS2 (4,6 χ 156 mm); KHjPO^/HjPÖ^ (lö rnM; pH 2,S)/acetoniírÍi “ 9:1 <v/v>; í mbperc; 236 stanj meghatároztak a keletkezett otkotinsavamid mennyiségét Az összaktivitást percenként és milliliterenként keletkezett janól mkötinsav-amidkéní fejezzük ki, a fajlagos aktivitás mértékegysége: pmől nikotínsavamid/ípere x ml x ÖDíi05ÍB1).
2. példít
A A^ndPíOccííA sp. FZ4 (1>SM 13S97) törzs elkülönítése
Leírták taár (.-L'c.h. Aífcrod?·:·’/. 1998, 170, 85-90), bogy a Rhodococais sp. YH3-3 (TPÜ 3453) törzs 3piriáía-aidoximot 3-eiano-pirtdmsn és nikotinsavamíéon kérész®! mkoímsavvá metsbokzál. A Modocoraas sp. YH3-3 (TPü .3453) törzs aldöxim-dehidratáz-aktivitását, nítrií-hídratáz-aktivitását és amidáz-aktivitását különböző aldoximokkai és nítrilekkel indukálták.
Különböző talajmintákkal az 1. táblázat szerinti dúsítási közeget inoksláknk, maid 7-19 napon át 37 “C-on ínkubáltuk azt. Ezt háromszor megismételtük. Utána a tenyészeteket hígítottak és szé teszteltük. A lemezeket 5 napon át 3? °C-on infcubálva· telepeket nyertünk. Az egyes telepeket az 1. példa szerint mtril-hiáratázaktivhásra vizsgáltuk. így elkülönítettük a Rfaxfozeecux sp. FZ4 (DSM 13597) törzset. A. S-pi-ridin-aldoxbn helyett acetonisni, propionítril, butiroditri!, krotonsávmbíi, adipinxavnítril és ntaionsavniíri! ís alkalmazható Cferráskdíd.
1. táblázat: dúsító közeg
Komponens Koncentráció [g/lj
S-piridin-aldoxím 3,0 vagy 1.0
<nh4wq< 2.0
5CH2PO4 2,0
NaCl 1,0
MgSO4 x MO e,2
CoC!.> x 6H2Ö 0,01
élesztők) vonat 0,2
3, példa
Kofaktorok tenyésztés közbeni befolyása ^Arídneocens %.>. FX4 nitrii-bidratáz-aktivitásdra A 2, táblázat szertói előtenyésztő közeget a ,S»W<á)cocc?« sp. FZ4 ÍD-SM 13577) törzzsel ineknláknk, majd rázás közben 28 °C-o« 1-2 napon át inkabáitak. Az eíőtenyeszetet a 3. táblázat szerte!, vagy Co(ll)Rtódot vagy Fe(.íí)-szoliatot tartalmazó alapközegbe áioltottak és rázás közben 28 °C-on 1-2 napon át inkabáktsk, A nstríl-bidratáz-skiívítást az 1, példa szerint határoztuk meg. Az eredményeket a 4. táblázatban foglaltuk össze. A nitrd-hidratáz.-aktivitas csak akkor volt számottevő, ha a /ífeodbeoceas .$/?. FZ4 törzset kobalt jelenlétében tenyésztettek.
2. táblázat: előtenyésztő közeg
Komponens Koncentráció jg/!|
pepton S,ö
húskivonat 5,0
NaCl 2,0
éiesztökivoríat 0,5
vizzei 1 literre feltöltve, pH - ?,0
3. táblázat; alapközeg
Komponens Koncentráció [g/lj
éieszíőkivonat 2,0
pepton 0,2
L-ghítamát, Na-só: 1.5,0
MgS-Oí x 7B>0 0,5
CoCh x őHjO vagy FeSCb x? Η,Ο 0,004
krotorsamid 5,0
4. 'táblázni: koíáktöte tenyésztés közben a oíöil-hkssteztet!vitásra kifejteit befolyása
Knfaktor Növekedés iOöf,ÍI);.Wi Ősszakrivítás Ipmól/Cpero x ml) Fajlagos aktivitás [praólApere s sni χ OfA!;írst,)j
re.SO,; 2,86 0,989 0,346
CoCb 2,79 38,1 13,1
IsáukíoFoks&k tenyésztés közben a /^edneeecws sp. F24 nítril-kiár&táz-akrivitására kifejtett hatású
A 2. táblázat szerinti elötenyészhő közeget a gfoodoeecctts sp. FZ4 (DSM 13597) törzzsel btokuláltuk, majd rázás közben 28 C-on 1-2 napon át Inkubáltek. Az ^tenyészetet az 5. táblázat .szerinti, különböző isduktorekaí tartalmazó közegbe kioltottuk, és a tenyészeteket 2.8 eC-on rázás közben 3 napon át tenyésztettük- A Kitrll-hidratázvaktiv itási az 1. példa szerint határoztuk meg. Az eredményeket a 6. táblázatban foglaltuk össze. A Rküdee&ccus sp. FZ4 nitriWridratáz enzimje csak iadafctor jelenlétében képződött.
5. táblázat: lenyésztöközeg
Komponens Koncentráció (g/lj
éiesztökívonat 1,0
nátritun-CJtrát 10,0
malátakivor.at 15,0
induktor 0,2 vegyesN
KH2PÖ4 2,0
MgSOi x 7H2O 0,5
CoClj x 61-00 0,015
Ahoíteua’Ms sp> FZ4 előtenyésztése
A 2. táblázat szerinti előtenyésztö közeget a Rk&dococcus sp. F24 törzzsel 'beoltotok és rázás közben 28 *€-0» 1-2 napon át inkubáituk, Az elotertyészeteí az 5. táblázat szerinti, induktorként ő g/1 metakrilsmidot tartalmazó közegbe átoltoítük és rázás közben 28 sC-en 3 napon át tenyésziettők. Negyvennyolc óra ekekével járulékosan még 0,2 térfcgat% metskrilamídcé adagoltuk.
A 6-13. példákban a SMxoosk sp. FZA nyugvó sejtjeit használtuk.
A Rh&a'&'Ci-iceiis sp. FZ4 «jtól-hldraíáz-akíivjtását különböző szub.tetáiumokon mértük sz k példa szerint ágy, hogy 3-ciano-piridis helyett a megfelelő szabsztótnmot alkalmaztuk és a HPLC-fekétefeket az adott sznbsztrátumauk megfelelően variáltak, A Rhod&c&ccsts sp. F24 nltril-hlűratáz-akíivitásának szubszt'rátumiajlagösíágát a 7. táblázatban összehasonltjuk a Rkadöa&ccíis rkodochrous 11 nitril-bídraláz-aldívitásánsk szabsztrátum-fajlagosságávak
6. táblázat* íaáofcforok befolyása aaltrilüidratás-ííktlvÍtásta
lodaHor Növekedés {ÖILiiOrnttl Ósszakdvífás kdíaój/(perc s ml) Fajlagos .aktivitás (potól/lperc s mis OD,.;,.©:
metskriiamid 4,55 56« 125
izobiitiramid 3,55 387 109
budramid 4,7 344 73,2
rcüskriSnidil 4,61 339 71,5
tofonaanid 9,32 558 59,9
butironiirll 57ö 20? 58,4
vaíeriátisavamid 5.6 i 322 57,5
izobutíroattti's 5,24 273 52,1
tofonsavrutrii 8,24 407 49,4
propionsavandd 5,17 149 28,7
valeranferi! 3,79 129 32,4
izokapronsavfotríl 4,72 134 28,5
foovaleroslPil 3,22 747 23,2
.kapronsavfoinl 4,54 104 23,9
prapionltríl 4,72 95,8 20,3
akrilamid 5,17 69,5 11,7
o-peíiten-níp’il 4,62 62 13,4
s-kapFohtktám 4,44 40,3 9,08
beszonkril 5,62 40,3 7,17
piknlfesavanttd 3,8Ö 26,1 6,87
l·- 4,2 27,7 6,59
danoaeetamiá 4,75 30,9 6,50
scetamid 4,37 21.6 4,98
aceton itri 1 4,46 18,4 4,13
S-ciaso-píndss 5,54 12,3 2,21
; izoaikotinsavainid 5,03 10,9 2,17
benzamld 3,88 8,24 2,12
akriln úr iI 3,27 5,91 1,8 i
nikotinsava-nki 2,55 4,94 1,39
karb&íttíd 6,16 5,66 0,918
7. táblázat: ftlnxfccoccttó sj». FZ4 és f&ödoeoeeus zAodoefo-oas il skril-h-idratáz-aktivtósa szuhsztrátonfájlagosságának összehasonlítása
Khödvcocciis sp. FZ4 Fhoihcoccíis zAíxfeicátrtoíS 31
Szabszérátum Relatív aktivitás Relatív aktmtás 1%|
acetotótní 646 0 (mtril-hldraíáz A) 115 {nltril-hidratáz B)
akribútrii 498 478
buíirouiírll 466 26
propionitril 412 435
a-ciartö-piriöm 1ÖÖ 100
d-eiano-pIríöHí 98.4 70
krotonsavaitól 92,1 78
benzotúttT. oH,7 27
2-ctimo-piridin 59,3 45
m-klór-benzoKttril 39,3 43
p-klór-'benzorntril 8,25 13
metakrilnítril 3,64 87
o-klór-feesizomiril ő 2,8
7. példa
HF&decifceai’ sp. FZ4 a^rR-biáratáz-akámtásának hőmérsékleti optimuma és hőstabiiitása
Λ mtril-hldratáz-aktivitást 2Ö °C és 70 ’C közötti tartományba» különböző hőmérsékleteken mértük az {. példa szerint. A ntbll-bidraiáz hőmérsékleti optimuma 60 ’C-ο» van (2. ábra).
A nitni-hídratáz hösfafeilitásáuak meghatározására a sejt-szaszpenziőkat 40 ’-C és 70 ’C közötti különböző hőmérsékleteken 15 percen át inknbáltok, uttea 20 ’C'-on meghatároztok a nítril-hidratáz-sktivitást az 1. példa szerint. A 40-60 ’C-ort végzett 15 perces mkubálás utáni nitril-hidratáz-aktsvitás az eredeti nitril-hidratázakii vitásnak felelt meg (3. ábra)..
8. példa
JMmccí» sj». FZ4 nftríWíidratáz-aktivításának pB-optimuma és pH-stabdítása
A sitríl-hldratáz-akfivhásl: 3-12 közötti különböző pH-örtékek mellett: határoztok meg az 1. példa szerbit, különböző Ö.l mólos pafferok alkalmazásával A nííril-bidratáz-akt'svitás pH-optimuma 6 és 7 közötti pHsál volt (4. ábra).
A toml-hidratáz-aktivitás pH-stabllkásának meghatározására a sejtsznsz-penzidkaf. 4 és 10 közötti különbőzé pR-értékek melleit 2C> ’C-on 24 érán át Inkubálúik, utána centn&gáltok. Az elválasztott sejteket mostak és kálmm-ibszföt-pufferban (ö.l M; pH 7,0) újból -szaszpesdáltok. A nitril-hsdratáz-akíivttást az 1. példa szerint határoztok meg. Az 5 és 10 közötti pH-értékek mellett végzett 24 órás Inkubálás utáni nítriMndratázaktiviíás lényegében az eredeti müil-hidratáz-aktivl-íásnak felelt meg (5. ábra).
9. példa
Á 3-etaRO-piridxn femeentrácíójámtk Merfeceeejm $/?. FZ4 Bitril-hidratáiz-aktlvitdaára gyakorolt basása
K.íSlösbőző 3-csano-pirsdin-konees)tibcíók mellett (0-10 vegyesei)· inkubál-íitok sejiszxi&zpesxziókss 20 “C-on 60 percen át, A sejteket eiválasztodök, mostok és kálfem-feszfet-puíferban (0,1 M; pH 7,0) újból szwsspertáálísik, A totfíi-hsdraláz-aklfeitást az 1. példa szerfes 'határoztuk meg, A 0-20 vegyest 3-cigno-piridínktmeenb'áeiő mellett végzett 60 perces inktsbálás sdáni tníríldnóratáz-aktivitás lényegébe!) az eredeti ttitriífesdfatáz-aktsvifilsnisk fele Is meg: (6, ábra), tO. példa
A td&trüBsavaraid koeeeatrácléj&aak F&orföcot'ess ,ψ, FZ4 mtríl-hidratáz-ííktfeitására gyakorolt hatása
Kklönbözó i)ikotirssavaa«d-koneenírációk mellett (0-20 vegyes%) inköbálAank sepsznszpes)ziők;5t 20 “C-on 24 órán át A sejteket eiváiaszíoönk, mostuk és kálinto-foszfát-pnl'ferban (0.1 M; pH 7,0) újból szuszpendálttsk. A nitfíi-bisfcilsíz-akSívitást az 1. példa szerint h&tsb-oztok .meg. A 0-20 vegyes% stikotinsavasnidkoncenPáoió mellett. végzést 24 őrás inkabálás atáni niíríl-hidrsiáz-gktferiás lényegébe!) az eredeti nítril-hidmtáz-aldxviíásnak. felelt meg.(7,. ábra).
IL példa
3-Ciano-píridin Kjw-értéke &tesbcem»: sp. FZ4 oitril-bldratáza esetén
3-Ciano'piridiitből (0,1-1,0 Μ; 1,0-1,8 nd), vizes NaCl-oldatból (Ö,S5 vegves%; 0,7-0,1 ml), káliumfoszfát-ptsfeból (0,1 M; pH. 7,0; 0,3 ral) és seitszuszpenziöból (0,01 ml) álló reakcióelegyet rázás közben 30 ftC-on 10 percest át inkubáhunk, A reakclóelegyek Sssztörfogata a 3-eiasto-piridm koncetoráeléjától fUggóen 2,0 ml és 2,2 ml közöd volt. A reakciót 0,1 tnl 2 M sósav adagolásával megszakítóitok. A reakcióelegyet centrifugáltuk (12 ÖOO perc'5,5 pere), «sásra a keletkezett nikattosavanxid mennyiségét az 1. példa szerint HPLC segítségével snögfesíaroztak. A talált KM-é«ék 160 mM volt (löt ábra).
12. példa &&ed&c&CGtfi> sp. FZ4, valamint Isáresn ismert ns&Feorgamzm&s - .dwív-er/tonpsí's ,sp. NA40, ffiteitf&ciwetfs sp, GF270 és r&»d«KsS;re«® 41 - nitrd-hidrstáz-aktsvttásamak ósszefxaseolflasa
A 3-ciano-plrláin K.M-értékét F&odbeoom» sp. PZ4, fthűdacecciis sp. GF27Q (DSM 1221S; WO 00/65306), ,yp- NÁ.40 (D6.M 11617; WO 00/05366) és Kkod&cacctts riioáödtroes íí nxtrilhldratáz-akíiviíása vonatkozásában vizsgáltak az 11. példa, szerint, mindig az adott sníkroorganiztonst használva, Az Aísyeo/ofigwA sp. NA4Ö és AAodiícoecKs .ψ. FZ4 KM-é«ékei alacsonyabbak, mint a két másik mikroorganizntosé (8 táblázat).
8. táblázat: Kj^-ettékek összehasonlítása d-eiano-pirídin sznbsztrásn·» esetén
K,< i mMj
F/íní/öenecKS' ,sp. FZ4 /?bodo£:e£'«z? .sp. GF270 Afííy&ÁaÍ&piis NA40 sp. ./ókodöíijoctaf moZoehrasA 3 í
160 >200 41J 200
A Ráöúbcoccms sp. F24, ,$p, GF27Ö, 4Bjy<?o/«ío/^iy φ, NA4G és 7?0oífocscx-í« /•áetfecí^w I 1 nitríi’hídraíázaaktívitá&ának h&stabilitását a 7. példa szerint határoztuk meg, mindig az adott mikroorganizmust alkalmazva a 9. táblázatban megadott inkubációs körülmények között. Á likűdae&ecijs sp. FZ4 Ritril-hidratáz-aktlvitása a többi mikroorganizmusok nitril-hidratáz-akrivitásával összehasonlítva a íegnagvobb hostabiliíást mutatta.
9. táblázat: a nitril-hidratáz-tdítivitások hastsbllitásának összehasonlítása
Relatív aktivitás | %]
Ink.ubáeíós kőről- Rhodococcus sp.: Sí?.. ^mycö/afopsis· sp. Rfeodococeas
menyek FZ4 Cd'270 Ní:4Ö .CíOítbeOrmc? J 3
15 perc
50 ’C-ou 100 100 n.a. 100
60 C-on 93 95 n.a. 80
70 C-on ··> 5 n.a. 0
60 perc
20*C-on 100 100 100 ma.
70 C-on 100 100 95 n.a.
40 C-on 1Ö0 ISO 80 n.a.
50 C-on ιοο 100 32 n.a.
60 ’C-on 100 89 0 n.a.
70 73-on 6 0 0 n.a.
60 C-en
0 perces át 100 100 n.a. n.a.
30 percen át 100 67-80 n.a. n,a.
60 percen át 92-100 52-68 n.a. n.a.
120 percen át 72-87 29-47 n.a. n.a.
a.a.: nincs sdst
A 3-ciano-piridín-koneentrációuak a /^ödbeocűBa sp, FZ4, Rhodacozcus sp . GF270,, Awyc&l&töpsis sp, NÁ4Ö és Kh&decoccus rhadocfavas 11 nitríl-hidratáz-aktivitúsára jjfejtett befolyását a 9. példa szerint vizsgáltuk meg, mindig az adott mikroorganizmust alkalmazva a 10. táblázatban megadott il-ciano-pirídínkoncentrációk mellett, A Rhodoeoeeus sp. FZ4 ás a Sfefe>cocc«s sp. GF27Ö törzs aítFil-hi^ataz-atóvítása a legjobban törte a a-cíano-pirldiní.
10. táblázat: a S-dano-piriáin-koncentrácifeak a nitFil-hidtatáz-akíívííásra gyakorolt befolyásának összehasonlítása
Relatív aktivitás j%j
3 ~c iano-pkiőm fve- gyes%] Jróoöocooc’ízs’ ,ψ. FZ4 AkoííoewccKí sp. GF270 Aísvío/örópíís .$/?. Na4Ö /öVoííbcoceító’ ráoíáxsárow J1
0 100“ 10Öa 100“ lÖ0b
2,5 lööa 100“ 74h n.ad
5.0 10Oa 100“ b Só”
7,5 100“ 100“ 47ε n.a.c
10,0 100“ !Ö0a 55 ö/
4 bö perces snkobáiás * 15 perces Inknbalás; ' nem határoztak meg
A alkotinsas'amid-konceníráciősak a FF&mícocctss xp.. FZ4, Ráoútoeoceas sp. GF270, ,$p.. NA4Ö és fttxxfoeoccus rhodockrous I! nitrll-bidratáz-aktivitására kifejtett befolyását a 9. példa szériát vizsgáljak meg, mindig .az adott míkroorganizmast alkalmazva a 11. táblázatban: megadott' nlkotinsavsarrid-koncentrációk melled. A l&Kxtoeoeats sp. EZ4 és a ^sdacaccus sp. GF27Ö törzs nitrö-hldratáz-akíivhása a legjobban tolerálta a nikotmsavamsdot (11. táblázat).
11. táblázat: a aikotinsavatnid-koncentrácíósak a sitríl-tódratáz-^divitea gyakorolt befolyásának összehasonlítása
Relatív aktivitás (%)
nikotínsaviMnid tf&odbcoceas sp. foWőeöceaK sp. Atnycofaíapsis sp. AAooWöecMS
|vegyes%| FZ4 GF270 Na4Ö r&vd&ehriwx 11
0 100 100 100 n.a.
10 100 100 55 H.3„
29 100 1Ö0 0 na.
30 100 100 0 n.a.
13. példa
3-Ciano-pirtdin lÍtáodecoma .ψ, FZ4 törzzsel végzett biötranszformá-lása oikotinsavamiddá S-Ciane-piridm-oldatot 42 adagban (42 x 0,52 g ~ 21,8 g; 0,21 mól) ssjt-szaszpcszíótel <13,7 mg száraz sejltöiaeg, 4 ml) és kálbim-rószlat-puf&rból (0,1 M; pH 6,0; 16 ml)· állő koltérához: .adtunk. A kővetkező 3eianc-piridin adagot mindig akkor adagoltok, amikor a reakciőelegybes a 3-ciano-piridin már teljesen, ebeagálí mketinsavamiddá. A reakeióelegy a reakció során megszilárdult. összesen 25,7 g (100 %-os hozam) mkötfosavamid képződött.
14. példa
Acetonitril Jféíttfocoeow sp. FZ4 törzzsel végzett feiotranszformáiása ecetsavamiddá Acetonitrilt (5 ml; 95 mmól) 80 pere alatt kálíom-foszfát-pnfferből (0,1 M; pH 7,0; 4,5 ml) és sejtszuszpenzlöhöi (4,88 mg száraz sejttömeg, 0,5 ml) álló· kultúrához csepegtettünk 29 ’C-oo. Az atóreagálás rázás közben 20 °C-on történt. Az ecetsavamid képződését reakció közben HPLC segítségéve; [Waters Spherísorp 5 μ ODS2 (4,6 χ l Sö mm); KH;PO,j (10 mM; pH 2,5)/3.cetonitril ~ 99; 1 íérfegatarány); 1,0 nrl/perc; 219 nm] követtük:. 120 perc alatt 6,14 g (109 %-os hezarn) «cetsavamíd keletkezett, amely a. reakcíóküzegben íéklüsu'FS (;. ábra),
15. példa
Az; acetönitríi koncentrációjának tifö&á&eecests .ψ, Ϊ-24 nltril-hídrsláz-akilvítására gyakorolt befolyása az acetonitril eceísavamld bíötranxzfbr-málása során
Áeetonitriíból (0,2-19,0 M; 1,0-1,6 ml), vizes Naül-oídatból (Ö,85 vegyes%; 0,6-0,0 ml), kállumfoszlát-ptrtférből (0, 1 M; pH '7,0; ö,3 tál) és sejíszoszpenzióból (0,1 xnl) ádö reakcióelegyet rázás közben 20 fejős 10 percen st inkubálínnk. A reakcióelegy össztérfogata 2,0 ml volt. A reakciót metanol adagolásával megszakítottuk. A reakcióelegyet centrifugáltok (12 ÖÖÖ perc*'', 5 perc), és a keletkezett eeetsavamid mennyiségét HPLC segítségével a 14, példa szerint meghatároztuk.
A rsibil-bldraíáz-aktivitás a Ö,1 -15 M acetonitril tartományban lényegében állandó volt (8. ábra).
Az amonitril-koncexrtrádó befolyása sp. FZ4 nitril-lridra-iáz-akrivítására
Sejteket acetonitrilt (0,0-15,0 M) tartalmazó kálínm-foszfót-pufletben (0,1 M, pH 7,0) 20 fel-oa egy órán át irrkubáltunk. A sejtszuszpenziót eentrlfogálmk (12 ÖOÖ perc*1, 5 perc) és a sejteket (1,85: vegyes%~os vizes NaCl-oldatban újból szaszpendákuk. Ebből a sejlszuszpenzióból (0,1 ml), 3-ciano-plridínböl <0,5 M, 1,0 ml). vizes 0,85 vegyes%-os NaCl-otdatbói (0,6 mi) és kálíttm-foszláí-pufferból (0,1 M; pH 7,0; 0,3 ml) álló reakeíóelegyet rázás közben 30 feJ-on 5 perce® át Inkubátek. A reakciót metanol adagolásával megszakítottuk. A reakcióelegyet cetttrifugáliuk (12 000 perc4, 5 perc) és a képződött ecetsavandd mennyiségét HPLC segítségével a 14. példa szerint meghatároztuk.
A nitril-lridratáz-akrivisás 1 órás inkubálás 6-3 M acetonitril mellett lényegében állandó volt. 6 M acetonitril mellett 1 órán át végzett inkubálás mán az eredeti ndril-hidratáz-aktí vítás még 60 %-a maradt meg. 9 M acetonitril mellett ; érán át végzett inkubálás után az eredeti nltrll-hídratáz-aktíviíás még kb. 35 %-a maradt meg (9. ábra).
17. példa
Sb&e&e&ccíts sp. PZ4 pigment-negatív változatának létrhozása
A Möík»eocxw i'p. FZ4 törzset 50 ml „Jámrient-Brodr'-kőzegben 28 °C-c-n rázás közben ínkubáltuk addig, míg az ÖOsjobk, érték 6,29 nem leit. Az előkel túrából 10 ml-t 25 ml ..Notriení-Brotb^-kőzcgbe ámítottunk és 28 °C-on rázás közben 1,99 OD6í(toffi optikai sűrűségig ínkubáltsnk. Az igy kapod tenyészetei (10 ml) centrifugáltuk (8000 perc4, 5 perc). A felülaszóí kiöntöttük és a sejtcsapadékot 5 ml foszfát—pucérok NáCl-oldatbaa szuszpendáltuk. A seíiszoszpenziót 90 mm átmér^Ű Petri-esészébe öntöttük és HV-tepával (15 W, 2S4 nm) 25 cm távolságból 17 percen át besugároztak. Utána a sejteket dupla koncentrációjú „Nn.trient-Broth''-kőzegbcn 28 °C-on rázás közben 4 napon át inkabálfeát. Az Így kapott tenyészetet iOO-szoresára higjíotmk és 100-100 μΙes íelöhlszót „plate oonst -agar” lemezeken széleszletl'Snk. A lemezeket 28 °C-ou Ínkubáltuk, Mindegyik lemezen kb. 150 telep nőtt. A lemezeket kiteltük a napfénynek, hogy a piros pigment kialakulását serkentsük. A pigsmt-negatív telepeket könnyért meg lehetett, kblönhözteíní a színes mutánsoktól és a piros· mezei törzsiéi.
Í8. példa
JMmas a/j. FZ4-boi nyert nttrií-hidratáz tisztítása .Rkod&coecus sp, FZ4 sejteket a '3, példa szerint 2 literes íerrnentorban előtenyészetülnk. A tenyészetet centrifugáltak, és a sejtcsapadékot 0,85 vegyesOos vizes HttCl-oídatban újból szuszpendáltuk. A sejtszuszpenziót 44 mM vajsavat tartalmazó kálíum-foszfát-pafferbe ÍÖ, I M; pft 7,0) átvittük es ultrahanggal kezeltük, A seiítnaradványokat ccntrlíugálássai eltávolítottuk. A feiSiüszét a möríMdár&táz 12. táblázat szerint végzett tisztítására használtak. A tútril-hídratáz-aktivitást az 1. példa szerint határoztak meg, de sejtszuszpenzíő helyett a kivonatokat, alkalmaztuk.
12. táblázat: Ahodo«>ee?.«· sp. P24~ből nyert mtrii-hidtatáz tisztítása
Tisztítási lépés Freteintamfem h'g) Összskíivitás [gmóVpercj Fajlagos aktivitás ipmóíApere s mg)]
Sejtmentes kivonat 335 5881 17,6
(NH^jjSO^-kicsapás 198 6087 .28,4
DEAE-Sepfeaeel: 73,0 3553 4S,7
bníil-Toyopettrl 66,2 í 203 5 30,7
fenií-Sepharese 26,2 890 34,0
19. példa
A tisztított nítril-hidratáz ntóitömegéoek megteíározása
A móltömeget HPLC segítségével határoztuk: meg (TSK-géi ö 300 SW (0,75 x 60 cm); káliutn-iosziátpalibr (0,1 M; pH 7,5) és kálknn-kksrid (0,2 M);:Ő,7 ml/pere; 280 nm]. A atiril-feitetáz mókömege 465 kDa volt (11. ábra)., A nitríi-bidratáz 27,7 kDa mökömegö a-alsgységhól és 31,2 kiás móitömegű O-alegységböl áll (12. ábra).
A tisztított nítriS-hidratáz hősíabilitása
Niinldadratáz-oidaíból (0,697 pmőFperc; 0,025 ml) és kálium-fősziát-pufterböt (0,1 M; pH 7,0; 9,475 ml) álló oldatot 20-70 °C közötti különböző hőmérsékleteit 60 percen át inkubskunk. Ezt követőéit: az oldatot jeges fürdőben 20 ::C-ra hütöííük, majd 3-eiano-piridint (0,5 M; 0,500 nd) adagoltunk. A reakciós legyet 20 *Con 10 percen át inkubáltuk, utána a reakciót metanol adagolásával megszakítottuk, A képződött nikotinsavamid mennyiségét az 1. példa szerint HPLC segítségével meghatároztuk. A oiírd-hsdratáz-akíivitás 40 eC feleit 60 percen át végzett inkubálás után határozottan csökkent, 50 °C-on végzett 60 perces inkubálás után a nitriihidrstáz-akttvitös már csak az eredeti aktivitás kb. 25 %~a volt (15, ábra).
21. példa
A tisztított nitnl-bidratáz pfí-öpttnrums
3-Ciane-piridinböl (0,5 M; 0,500 ml), nitrii-hídratáz-oldatból (0,69? pmől/perc; 0,025 ml) és különböző, 4~i 1 pH-értékű pufferékből (0,1 M; 0,0473 ml) álló reakciőeíegyeket 20 ’C-eo 10 percen át snkubáimk. A reakciót metanol adagolásával megszakítottuk. A képződött nikotinsavamid mennyiségét az. 1. példa szerint HPLC segítsége vei meghatároztuk, A nitríl-hidratáz pH-optímnma 6,0 és 6,5 között volt (1 ő, ábra) .
22. példa
A tisztított aiírsl-íiidratáz pH-stafdtitása
Nkrij-hídrafáz-oídatból <8,36 pappere;: 0,47 ml) különböző, 4,Ö~11,0 pH-éríéfcő pafferekből <0,3 M; 0,1 sál) és desztillált vízből álló oldatot 20 0C~oo 30 percen át inkubálíunk. A íelülászójából <0,05 mi), 3-ektnopirldinbői <0,5 M; 0.5 ml) és az adott pafferből <0,1 M; 0,45 ml) reakcióelegyet késziíettQnk, ezt 20 cC-sm 10 percen áí inkubálíük. A reakciót metanol adagolásával megszakítottuk. A képződött nilsoíinsavamíd mennyiségét az 1. példa szerint HPLC segítségével meghatároztok. A 6 és S közötti pR-tartcmáatyban végzett 60 perces Inktíbálás után a aitril-hidratáz-aktivnás lényegébe»: az eredeti nitril-hidratáz-aktivitásnak felelt meg. (17. ábra).
23, példa
A tisztított mtríl-bidraíáz szufesztrátnm-fajtogosságs!
Hlíní-hidraSáz-oldatből (0,695 pffiólzpetc; 0,025 ml), különböző szöbsztrá&Mnokhóí <0,5000 ml) és kálium-toszfát-puSérból (0,1 M; pH?,0; 0,475 ml) álló reakcióelegyet 20 °C-on 5-10 percen ái Hskübáífenk. Az alkalmazott szabsztráíumok koncentrációja 0,015 M és 0,250 M közötti volt. A reakciót metanol adagolásával megszakítottuk.. A keletkezett amid mennyiségét HPLC segítségével 'natároztnk meg. Az eredményeket a 13. táblázat matatja, A vizsgáit szubsztráfemok közül a niírrl-bidratáz aktivitása acetomtril esetén a legnagyobb volt
13. táblázat;: a tisztltött nitril-hidratáz szobszírátum-fájlagossága
Sznbsztrátom Koncentráció j M | Relatív aktivitás 1%j
Acetonítril 0,2 1088
Akti inán· 0.2 774
Propionltril 9,2 693
Butíronitrii 0,2 578
Kretonsavöíítií 0,2 .114
3-Ctano-pirldín 9,25 1005
4~Ciano-piridin 0.12S 92,8
Beozönífril 0,815 75,6
jn-klór-benzottitoil 8,05 66,5
2-Cíanö~pínd:in 0,125 3ő,7
p-kíór-benzotnáii 0,015 8,31
Metaktilamfá 0.2 1,39
o-klór-benzontiríi 0,015 0
a ősszaktivítás 4164 psnök(perc s mi)
24, példa
Petenciális inhibitoroknak a tisztított aittdl-ltidnttázra kifejtett hatása
Niírií’kidrsíázböi (0,695 pmóí/perc; 0,025 mi), káíium-fosziat-puíferböí <0,1 M: pH 7,ö; 0,475 ml), desztillált vízből (0,150 ml) és különböző potenciális iAílátorokbcl <0,100 ml) álló oldatttot 20 °C~on 5 percen át inkubáltouk. Utána >cíano-piridisf <1M; 0,250 ml) adagoltunk. Az inhibitorok koncentrációja a reakcíóelegyhert 1,0 ®M volt. A reakcióelegyet 20 *C-on lö percen át inkubáltuk, majd a reakciót'metanol adagolásával megszakítottak. A képződött mkoltesavatnid mennyiségét az 1. példa szerint HPLC segítségévei határoztuk ió meg. Áz eredményeket a 14, táblázatban foglaltak össze, A vizsgált potenciális inhibitorok közül biárokíiamín és kálium-cianid .gátolta a legjobban az enzimet.
14. táblázat; potenciális iolbbslörok befolyása a tisztítóit niíril-hidrasázra
Potenciális infeibttor Relatív aktivitás í%j
p-kibr-merkuri-benzoesav 187
tkon 114
fenilmetánsKuifoníifluoriö 110
i.lö-fcrssrs trolin 106
kaffcasmd 106
dhio-trettól 103
lilTA Iöö
100
císzteamái 90,1
8-hídroxi-kmoll·; 97,8
2.2'.bipind;i 97,8
lód-aeetát 96,7
'N-etil-mafeisimid 95,3
nátrinm-azíd 93,5
5,5Mittobisz(2-nttro4>enzoesavj* 93,4
dietii-dttsokarbamót 93,3
D-cikloszcrin 86,3
feoil-hidrazin 84,6
2-merkapto-etanoi 767
hidroxilamin .1,34
fcálium-ciamd 0
<-----------—...»...........——— -——.—...J ’ ö, I mM etiíéndiamin-tetraecetsav e összatóvitás 3776 gmól/perc s ml
25. példa
Fémionok befolyása a tisztított Hitríl-feiáratázra
A fémionoknak a tisztított nitril-bidrakkzra kifejtett hatásának vizsgálata során a 14. példa szerint jármok el azzal az eltéréssel, hogy inhibitor helyett fémionokat adagoltunk. A reakeiőelegyben a fémionok kon· csuháélója 1,0 mM volt. Az· eredményeket a 15. táblázatban foglaltok össze; A vizsgált fémionok közöl csak az ezüst-kation és a kétvegyértékn higaíty-katios mutatott gátló hatást.
15. táblásai: iémloook befolyása a tisAitott nitrii-hidratáz aktivitására
Fémion Relatív aktivitás [%j:
CuSOi 177
MaCg 123
NiCL 123
ZeSCk 121
FéSOt 113
CaCL 113
CoCL 110
FeCL 105
- IÖ8S
AgNCy 0
HgCl? 0
------------------------—...........................................................
3 összakd vitás 3375 gm<''(perc x ml) x Ö, t Λ
26. példa
S-Ciano-piridsn K^-értéke tisztított aitril-hldratáz eseté»
Niíril-hidratáz-oldatbói (0,0697 pEbperg,; 0,025 és tóiium^foszfát-pufferbóí (8,1 M; pH 7,8; 0,475 ml) álló oldathoz 3-cíano-pmdiot adónk különböze koscentrációkbaí· (3,1 - Söö mM; 0,580 mi), A reakciéeiegyeí 20 °€-ö» 10 percen át mkubálíak, A reakciót metanol adagolásával megszakstottítk, és a képződött »ikoímsavaxald mennyiségét az 1. példa szerint HPLC segítségével: határoztuk meg, A 3-ciano-pirídín K^-értéke 80,5 volt (13. ábra).
Acetonitrií KM-értéke tisztított míriMbdratáz esetén
Nitril-hidratáz-oldatból (0,069? pm/pere; 0,025 és kálíum-foszhit-puíiérból (0,1 M.; pH 7,0; 0,475 ml) álló oldathoz acetonhnlt adunk különböző koncentrációkban (2,5 - 80 mM; 0,500 nd), A reákcióelegyet 20 °Cött 18 percen át btabáltufc. A reakciói .metanol adagolásával megszakítottak, és a képződött ecstsavamid menyayíségéí az: I. példa szerint HPLC segítségévei határozták meg. Az acetooitrii KM-értéke 80,5 volt (14. ábra).

Claims (8)

  1. SZABADALMI IGÉNVFONTOK
    1. Mikröorgaroztrmsek a Phrnloceeeus ,<φ. FZ4- fejből, 1359? DSM-száro alatt letétbe helyezve.
  2. 2. Az 1, igénypont szerinti inikroorgsTOzmosok, azzal jellemezve, hogy képesek aeetonitrilt legalább 3M konce-hrác lóban tolsrálni.
  3. 3. A 2, igénypont szerinti mikroorganizmusok, azzal jellemezve, högy képesek 3-ckmo-piridint nikotinsavamiddá átalakítani.
  4. 4. Az 1-3, igénypontok bátmelyike szerinti mikroorganizmusok, azzal jellemezve, hogy a tnikolsavak C» lánc ho sszúsággal vannak jelen,
  5. 5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti mikroorganizmusokból nyerhető erszimkivonatek. ó, Az: M. igénypontok bármelyike szerinti: mikroorganizmusból nyerhető nióil-hldratáz.
  6. 7. Nitril-hidratáz, amelynek
    a) Κί,ί-értéke az acetonidil-szubsztráíxan esetés 2,84 ±1,00 mM és 3-ciano-piridin szubszíráíum esetén
    80,5 ±15,0 mM,
    b) pH-optlmuma 6,5 ±1,0,
    e) móltöroege 465 ±50 Dalion, beleértve az «- és β-afcgységeket. és HPLC segítségévei meghatározva.
    S. Eljárás (III) általános képleiü amidok előállítására, amelyek képletében R* jelentése C:!-Ctralkilesoport, C^-Cű-alkenilcsoport vagy (IV) általános képletű csoport, amelyben X jelentése ~'N~ vagy -CH555 és R’ és R* jelentése egymástól függetlenül hidrogénatom, halogénatom, Cj-C^aiklfc söpört vagy C2-Cé-alkeníicsoport, azzal jellemezve, hogy egy (11) általános képletű siírilí, amelynek képletében R1 jelentése a fenti, az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti mikroorganlzntusok, az 5. igénypont szerinti enzímkivonst vagy a 6-7. igénypontok bármelyike szerinti enzim segítségével átalakítunk.
  7. 9, A 8. igénypont, szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy nitriíként S-eiano-píridml vagy a&etomtrilt alkalmazunk.
  8. 10. A. 8. vagy 9, igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a reagálíaíást .5 °C és 5Ö ::'C közötti hőmérsékleten és 5 és IÖ közötti pH-éríéken végezzék.
    LI. Áz 1-4.. igénypontok bármelyike szerinti: mikroorganizmusok alkalmazása, aeetoniíril-huil&dék árnbnatlanítására..
HU0401111A 2001-01-09 2002-01-08 Microbiological method for producing amides HU229283B1 (en)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
EP01100493 2001-01-09
US34237301P 2001-12-27 2001-12-27
PCT/EP2002/000103 WO2002055670A1 (de) 2001-01-09 2002-01-08 Mikrobiologisches verfahren zur herstellung von amiden

Publications (3)

Publication Number Publication Date
HUP0401111A2 HUP0401111A2 (hu) 2004-08-30
HUP0401111A3 HUP0401111A3 (en) 2004-10-28
HU229283B1 true HU229283B1 (en) 2013-10-28

Family

ID=26076438

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU0401111A HU229283B1 (en) 2001-01-09 2002-01-08 Microbiological method for producing amides

Country Status (21)

Country Link
US (2) US20040142447A1 (hu)
EP (1) EP1352050B1 (hu)
JP (1) JP4307837B2 (hu)
KR (2) KR100880143B1 (hu)
CN (1) CN1316010C (hu)
AT (1) ATE417919T1 (hu)
AU (1) AU2002228036A1 (hu)
CA (1) CA2432060C (hu)
CZ (1) CZ20031409A3 (hu)
DE (1) DE50213120D1 (hu)
DK (1) DK1352050T3 (hu)
EA (1) EA008600B1 (hu)
ES (1) ES2319875T3 (hu)
HU (1) HU229283B1 (hu)
IL (2) IL155996A0 (hu)
MX (1) MX268424B (hu)
NO (1) NO329719B1 (hu)
PL (1) PL208060B1 (hu)
PT (1) PT1352050E (hu)
SK (1) SK288061B6 (hu)
WO (1) WO2002055670A1 (hu)

Families Citing this family (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE102004013824A1 (de) 2004-03-20 2005-10-13 Degussa Ag Nitrilhydratasen aus Rhodococcus opacus
IT1400395B1 (it) 2010-06-08 2013-05-31 Procos Spa Processo one-pot per la sintesi di dalfampridine.
CN102212566A (zh) * 2011-04-11 2011-10-12 江苏大学 一种高纯度异丁酰胺生产方法
ITUA20163572A1 (it) * 2016-05-18 2017-11-18 Columbia S R L Metodo biotecnologico per la produzione di acrilammide e relativo nuovo ceppo batterico
CN111757940B (zh) * 2017-11-14 2023-11-07 哥伦比亚有限公司 用于制备酰胺的微生物学方法
CN114686538B (zh) * 2020-12-30 2023-09-29 杭州唯铂莱生物科技有限公司 一种烟酰胺制备中烟酸含量的控制方法
WO2024195728A1 (ja) * 2023-03-17 2024-09-26 三菱ケミカル株式会社 アミド化合物の製造方法

Family Cites Families (12)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4255344A (en) * 1978-11-08 1981-03-10 Mitsubishi Chemical Industries, Limited 9-α-Hydroxy steroids
CA1133840A (en) * 1980-09-08 1982-10-19 James E. Zajic De-emulsification agents of microbiological origin
DE3248167A1 (de) * 1982-12-27 1984-06-28 Wintershall Ag, 3100 Celle Trehaloselipidtetraester
US5179014A (en) * 1985-01-08 1993-01-12 Nitto Chemical Industry Co., Ltd. Process for the preparation of amides using microorganisms
MX169933B (es) * 1987-09-18 1993-08-02 Hideaki Yamada Procedimiento para la produccion biologica de amidas
GB8910958D0 (en) * 1989-05-12 1989-06-28 Bruce Neil C Assay
AU627648B2 (en) * 1990-02-28 1992-08-27 Teruhiko Beppu Dna fragment encoding a polypeptide having nitrile hydratase activity, a transformant containing the gene and a process for the production of amides using the transformant
US5753472A (en) * 1991-05-02 1998-05-19 Nitto Chemical Industry Co. Ltd. DNA fragment encoding a polypeptide having nitrile hydratase activity, a transformant containing the gene and a process for the production of amides using the transformant
DE4313649C1 (de) * 1993-04-21 1995-01-26 Fzb Biotechnik Gmbh Mikroorganismus und Verfahren zur mikrobiellen Herstellung eines Nitrilhydratase-/Amidase-Enzymkomplexes
RU2053300C1 (ru) * 1993-12-17 1996-01-27 Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов Штамм бактерий rhodococcus rhodochrous - продуцент нитрилгидратазы
EP1002122B1 (de) 1997-07-22 2003-03-19 Lonza A.G. Verfahren zur herstellung von amiden
JP4185607B2 (ja) * 1998-12-15 2008-11-26 ダイセル化学工業株式会社 新規な微生物及びアミド化合物の製造方法

Also Published As

Publication number Publication date
DE50213120D1 (de) 2009-01-29
CN1316010C (zh) 2007-05-16
MXPA03006149A (es) 2004-05-04
CA2432060C (en) 2013-04-23
CA2432060A1 (en) 2002-07-18
WO2002055670A1 (de) 2002-07-18
IL155996A0 (en) 2003-12-23
JP2004516849A (ja) 2004-06-10
KR20080099348A (ko) 2008-11-12
NO20033116L (no) 2003-07-08
EA200300749A1 (ru) 2003-12-25
US7838271B2 (en) 2010-11-23
EP1352050B1 (de) 2008-12-17
HUP0401111A2 (hu) 2004-08-30
IL155996A (en) 2010-04-29
ATE417919T1 (de) 2009-01-15
PL365921A1 (en) 2005-01-10
EP1352050A1 (de) 2003-10-15
KR100880143B1 (ko) 2009-01-23
PL208060B1 (pl) 2011-03-31
NO329719B1 (no) 2010-12-06
JP4307837B2 (ja) 2009-08-05
PT1352050E (pt) 2009-03-24
HUP0401111A3 (en) 2004-10-28
CZ20031409A3 (cs) 2003-11-12
SK6242003A3 (en) 2003-10-07
CN1486363A (zh) 2004-03-31
AU2002228036A1 (en) 2002-07-24
DK1352050T3 (da) 2009-04-06
SK288061B6 (sk) 2013-04-03
US20070148743A1 (en) 2007-06-28
EA008600B1 (ru) 2007-06-29
US20040142447A1 (en) 2004-07-22
KR100903756B1 (ko) 2009-06-18
ES2319875T3 (es) 2009-05-14
MX268424B (es) 2009-07-17
KR20040012707A (ko) 2004-02-11
NO20033116D0 (no) 2003-07-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPH03232497A (ja) 発酵法によるl―グルタミンの製造方法
JP3643582B2 (ja) L−リシン産生微生物及びこれを用いたl−リシンの製造方法
HU229283B1 (en) Microbiological method for producing amides
JPS6115695A (ja) 発酵法によるl−イソロイシンの製造方法
JP2002176993A (ja) サーファクチンの製造法
IL100819A (en) Microbiological process for the preparation of 6-hydroxyclinic acid
JPS594987B2 (ja) ニトリラ−ゼ活性の高い細菌菌体の製造法
IE920669A1 (en) Biotechnological process for the production of S-(+)-2,2-dimethylcyclopropanecarboxamide and R-(-)-2,2-dimethylcyclopropanecarboxylic acid
JP4379897B2 (ja) アリイナーゼ及びこれを用いるアリシンの製造法
JPH029384A (ja) 発酵法によるl−グルタミン酸の製造方法
US5352592A (en) Microbiological process for the production of 5-hydroxypyrazinecarboxylic acid
KR102021097B1 (ko) γ-PGA 생산능이 향상된 신규한 바실러스 서브틸리스 HB-31 균주 및 γ-PGA 생산용 배지
KR101651239B1 (ko) 신규 슈도모나스 종 균주 및 이를 이용한 6-아미노카프로산의 탈아민 방법
JP2713720B2 (ja) 酸性ウレアーゼの製造法
JP2001238691A (ja) ヌクレオシド5’−三リン酸の製造方法
JPS6228678B2 (hu)
IL101256A (en) Microbiological process for the production of 6-hydroxycycolic acid from 2-cyanopyridine
JPH10313888A (ja) L−アスパラギン酸の製造法
PT912751E (pt) Processo para a producao de derivados de d-prolina por meio de microrganismos
JPS59113887A (ja) L−アスパラギン酸の製法
JPH06245782A (ja) トランス−4−ハイドロキシ−l−プロリンの製造法
JPWO2003027303A1 (ja) 2−アミノ酸の製造方法
JPS6019992B2 (ja) ラクタ−ゼの製造法
JPS5928485A (ja) L−システインの製造法
JP2010239942A (ja) アルカリプロテアーゼ高生産菌

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A Lapse of definitive patent protection due to non-payment of fees