CN101065484B - 产生l-氨基酸的细菌和产生l-氨基酸的方法 - Google Patents
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Abstract
本发明描述了具有产生L-氨基酸的能力且被修饰使得乙酰辅酶A水解酶活性减少的棒状杆菌型细菌。该细菌被用于产生通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生的L-氨基酸,如L-谷氨酸、L-精氨酸、L-谷氨酰胺、L-脯氨酸、L-丙氨酸、L-缬氨酸和L-赖氨酸。
Description
技术领域
本发明涉及在棒状杆菌型细菌发酵期间,通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生L-氨基酸的方法,所述L-氨基酸具体为L-谷氨酸、L-精氨酸、L-谷氨酰胺、L-脯氨酸、L-缬氨酸、L-丙氨酸和L-赖氨酸。
背景技术
L-氨基酸如L-谷氨酸是通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生的,且通常以利用棒状杆菌型细菌的发酵方法以工业规模产生,棒状杆菌型细菌包括具有产生L-氨基酸的能力的短杆菌属(Brevibacterium)和棒杆菌属(Corynebacterium)。为了改进棒状杆菌型细菌的L-氨基酸生产力,已使用从自然界分离的菌株或其人工突变体(JP07-121228B,JP07-121228B,JP06-237779A,Adv Biochem Eng Biotechnol.2003;79:59-112.J Biotechnol.2003Sep 4;104(1-3):155-72.和WO95/34672)。
当需氧细菌(aerobic bacteria),特别是棒状杆菌型细菌,在限氧(oxygen-limited)条件下培养时,除目标物质(target substance)以外的有机酸如乳酸和乙酸作为副产物过量积累。这种积累抑制细菌的生长,并大大地降低发酵过程中细菌的生产力。此外,中和这些有机酸的过量的反荷离子(counterion)是必需的,这增加了生产成本。因此,希望创造出在培养过程中产生更少乙酸的菌株,如催化乙酸产生的酶的活性被减少或消除的菌株。
使用催化乙酸产生的酶的活性被减少或消除的菌株的发酵方法实例包括,使用乙酰磷酸转移酶(pta)和乳酸脱氢酶(ldh)活性缺陷的大肠杆菌(Escherichia coli)来产生L-氨基酸(WO99/06532),利用丙酮酸氧化酶(poxB)活性缺陷的肠细菌科(Enterobacteriaceae family)来产生L-氨基酸,和利用丙酮酸氧化酶(poxB)活性缺陷的肠杆菌科可来产生D-泛酸(D-panthotheic acid)(WO02/36797)。
已将乙酸激酶(ack)和乙酰磷酸转移酶(pta)报导为参与棒状杆菌型细菌中乙酸的同化作用(assimilation)的酶(Microbiology,1999 Feb;145(Pt2):503-13)。同样,已报导了棒状杆菌型细菌,其中产生乙酸的酶丙酮酸氧化酶(poxB)被破坏(EP1096013A)。
乙酰辅酶A水解酶是一种从乙酰辅酶A和水产生乙酸的酶(3.1.2.1),且已公开了预测编码谷氨酸棒杆菌的乙酰辅酶A水解酶的核苷酸序列(EP1108790A)。但是,还没有关于该基因实际克隆和表达分析的报导;因此该基因的实际(actual)功能也还未确认。
发明内容
本发明的目的是提供棒状杆菌型细菌,所述棒状杆菌型细菌具有改进的、通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生L-氨基酸的能力,并提供使用这种细菌有效地产生上述L-氨基酸的方法。
本发明的发明者进行了广泛的研究以完成上述目的。结果,他们发现通过减少棒状杆菌型细菌中乙酰辅酶A水解酶的活性,提高了产生L-氨基酸,尤其是L-谷氨酸、L-缬氨酸和L-丙氨酸的能力,并因此完成了本发明。
本发明的一个目的是提供具有产生L-氨基酸能力的棒状杆菌型细菌,其中所述棒状杆菌型细菌被修饰以使乙酰辅酶A水解酶活性减少,而且其中所述L-氨基酸是通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生的一种或多种L-氨基酸。
本发明的另一个目的是提供如上所述的棒状杆菌型细菌,其中通过在染色体的乙酰辅酶A水解酶基因的编码区或表达调控区引入突变来减少所述乙酰辅酶A水解酶活性。
本发明的另一个目的是提供如上所述的棒状杆菌型细菌,其中是通过破坏染色体乙酰辅酶A水解酶基因来减少所述乙酰辅酶A水解酶活性。
本发明的另一个目的是提供如上所述的棒状杆菌型细菌,其中所述乙酰辅酶A水解酶选自下组:
(A)包含SEQ ID NO:24所示氨基酸序列的蛋白质;和
(B)包含SEQ ID NO:24所示氨基酸序列的蛋白质,其中在所述蛋白质中取代、缺失、插入或添加一个或几个氨基酸,且其中所述蛋白质具有乙酰辅酶A水解酶活性。
本发明的另一个目的是提供如上所述的棒状杆菌型细菌,其中所述乙酰辅酶A水解酶基因选自下组:
(a)包含SEQ ID NO:23的核苷酸1037到2542的基因;和
(b)DNA,其能够在严紧条件下与包含SEQ ID NO:23的核苷酸1037至2542的多核苷酸或由所述多核苷酸制备的探针杂交,并编码了具有乙酰辅酶A水解酶活性的蛋白。
本发明的另一个目的是提供如上所述的棒状杆菌型细菌,其中所述棒状杆菌型细菌被进一步地修饰,以提高谷氨酸脱氢酶活性。
本发明的另一个目的是提供如上所述的棒状杆菌型细菌,其中所述L-氨基酸是一种或多种选自下组的L-氨基酸:L-谷氨酸、L-精氨酸、L-谷氨酰胺、L-脯氨酸、L-丙氨酸、L-缬氨酸和L-赖氨酸。
本发明的另一个目的是提供一种产生L-氨基酸的方法,包括:
在培养基中培养如上所述的棒状杆菌型细菌;和
从培养基中收集L-氨基酸,其中所述L-氨基酸是通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生的一种或多种L-氨基酸。
本发明的另一个目的是提供如上所述的方法,其中所述L-氨基酸是一种或多种选自下组的L-氨基酸:L-谷氨酸、L-精氨酸、L-谷氨酰胺、L-脯氨酸、L-丙氨酸、L-缬氨酸和L-赖氨酸。
附图简述
图1显示了构建质粒pBS3的方法。
图2显示了构建质粒pBS4的方法。
图3显示了构建质粒pBS5T的方法。
图4显示了构建质粒pΔldh56-1的方法。
图5显示了构建质粒pBS4S::Δach的方法。
优选实施方案描述
以下将对本发明的实施方案进行详细地描述。
<1>具有通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生L-氨基酸的能力的棒状杆菌型细菌
在本发明中,棒状杆菌型细菌的实例包括常规的棒状杆菌型细菌,也包括曾经被归入短杆菌属,但现在被归入棒杆菌属的细菌(Int.J.Syst.Bacteriol.,41,255(1991)),以及与棒杆菌属细菌非常接近的(close)短杆菌属细菌。这些棒状杆菌型细菌的实例包括如下:
嗜乙酰乙酸棒杆菌(Corynebacterium acetoacidophilum)
醋谷棒杆菌(Corynebacterium acetoglutamicum)
烷醇棒杆菌(Corynebacterium alkanolyticum)
美棒杆菌(Corynebacterium callunae)
谷氨酸棒杆菌(Corynebacterium glutamicum)
百合花棒杆菌(Corynebacterium lilium)
栖糖蜜棒杆菌(Corynebacterium melassecola)
嗜热产氨棒杆菌(Corynebacterium thermoaminogenes)(Corynebacteriumefficiens)
力士棒杆菌(Corynebacterium herculis)
二歧短杆菌(Brevibacterium divaricatum)
黄色短杆菌(Brevibacterium flavum)
Brevibacterium immariophilum
乳发酵短杆菌(Brevibacterium lactofermentum)(谷氨酸棒杆菌)
玫瑰色短杆菌(Brevibacterium roseum)
解糖短杆菌(Brevibacterium saccharolyticum)
生硫短杆菌(Brevibacterium thiogenitalis)
产氨短杆菌(Brevibacterium ammaniagenes)
白色短杆菌(Brevibacterium album)
蜡状短杆菌(Brevibacterium cerinum)
嗜氨微杆菌(Microbacterium ammoniaphilum)
棒状杆菌型细菌的具体实例如下:
嗜乙酰乙酸棒杆菌ATCC13870
醋谷棒杆菌ATCC15806
烷醇棒杆菌ATCC21511
美棒杆菌ATCC15991
谷氨酸棒杆菌ATCC13020,ATCC13032,ATCC13060,ATCC13869
百合花棒杆菌ATCC15990
栖糖蜜棒杆菌ATCC17965
嗜热产氨棒杆菌AJ12340(FERM BP-1539)
力士棒杆菌ATCC13868
二歧短杆菌ATCC14020
黄色短杆菌ATCC13826,ATCC14067,AJ12418(FERM BP-2205)
Brevibacterium immariophilum ATCC14068
乳发酵短杆菌(谷氨酸棒杆菌)ATCC13869
玫瑰色短杆菌ATCC13825
解糖短杆菌ATCC14066
生硫短杆菌ATCC19240
产氨短杆菌ATCC6871,ATCC6872
白色短杆菌ATCC15111
蜡状短杆菌ATCC15112
嗜氨微杆菌ATCC15354
这些菌株可从美国典型培养物保藏中心(ATCC,地址:P.O.Box 1549,Manassas,VA 20108,United States of America)获得。即,给予每个菌株唯一的登记号,该登记号列于ATCC的目录中。可以利用这个登记号定购菌株。根据布达佩斯条约(Budapest Treaty)的规定,将AJ12340菌株于1989年10月27日保藏在通商产业省工业技术院生命工学工业技术研究所(National Instituteof Bioscience and Human Technology,Agency of Industrial Science andTechnology,Ministry of International Trade and Industry(目前为,独立行政法人产业技术综合研究所特许微生物保藏中心(International Patent OrganismDepositary,National Institute of Advanced Industrial Science and Technology),地址:Tsukuba Central 6,1-1,Higashi 1-chome,Tsukuba-shi,Ibaraki-ken 305-5466,Japan),并给予登录号FERM BP-1539。根据布达佩斯条约的规定,将AJ12418菌株于1989年1月5日保藏在通商产业省工业技术院生命工学工业技术研究所,并给予登录号FERM BP-2205。
“通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生的L-氨基酸”优选指具有衍生自丙酮酸的碳骨架的L-氨基酸。这类L-氨基酸的实例包括L-谷氨酸、L-精氨酸、L-谷氨酰胺、L-脯氨酸、L-丙氨酸、L-缬氨酸和L-赖氨酸。如本文所用的,“通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生L-氨基酸的能力”,指在培养基中培养本发明的棒状杆菌型细菌时,导致在培养基中积累一种或多种上述L-氨基酸的能力。
产生L-氨基酸的能力可以是棒状杆菌型细菌的野生型菌株的原始能力,或是通过培育被赋予的能力。此外,产生L-氨基酸的能力可以通过修饰被赋予,所述修饰导致乙酰辅酶A水解酶活性的减少,如后文所述。
为了赋予产生L-氨基酸的能力,可以使用培育棒状杆菌型细菌所用的常规方法,例如创造代谢调节突变菌株,或创造目标物质的生物合成酶的活性增强的重组菌株(见“Amino Acid Fermentation”,Center for AcademicPublications Japan Co.,Ltd.,1st ed.Published on May 30,1986,p.77 to 100)。在这些方法中,可以单独或组合使用引入代谢调节突变和增强目标物质生物合成酶的方法。此外,可以引入两个或两个以上的突变,且可以增强两个或两个以上的酶活性。
赋予产生L-谷氨酸的能力的实例是增强编码L-谷氨酸生物合成酶的基因的表达。涉及L-谷氨酸生物合成的酶的实例包括谷氨酸脱氢酶、谷氨酰胺合成酶、谷氨酸合成酶、异柠檬酸脱氢酶、乌头酸水合酶、柠檬酸合酶、磷酸烯醇丙酮酸羧酶、丙酮酸羧化酶、丙酮酸脱氢酶、丙酮酸激酶、磷酸烯醇丙酮酸合酶、烯醇化酶、磷酸甘油酸变位酶、磷酸甘油酸激酶、甘油醛-3-磷酸脱氢酶、丙糖磷酸异构酶、果糖二磷酸醛缩酶、果糖磷酸激酶和葡糖磷酸异构酶。
增强这些基因的表达可以通过以下方法完成,将含有所述基因的DNA插入适当的质粒,该质粒能够在棒状杆菌型细菌中自主复制,然后用所得质粒转化细菌细胞;或通过同源重组、接合(conjugation)、转座(transposition)等将所述基因整合到染色体上(EP0756007B,EP0332488A EP0771879A);或在所述基因的启动子区域引入突变(WO/0018935),或以强启动子取代。
当上述基因通过质粒引入或整合到染色体上时,用于表达这些基因的启动子可以是任何启动子,只要该启动子能够在棒状杆菌型细菌中起作用。这类启动子的实例包括lac启动子、trp启动子、trc启动子、PS2启动子和pL启动子。也可以使用每个基因的天然(native)启动子。
通过修饰以使柠檬酸合成酶基因、磷酸烯醇丙酮酸羧酶基因,和/或谷氨酸脱氢酶基因表达增强的微生物的实例包括,在JP2001-333769A(EP1078989A)、JP2000-106869A(EP955368A)、JP2000-189169A(EP952221A)和JP2001-333769A(EP1078989A)中所公开的微生物。
赋予产生L-谷氨酸的能力的修饰也包括减少或消除酶的活性,所述的酶催化除L-谷氨酸之外的化合物的合成,和从L-谷氨酸生物合成途径分支。这类酶的实例包括异柠檬酸裂合酶、α-酮戊二酸脱氢酶、磷酸转乙酰酶、乙酸激酶、乙酰羟酸合酶、乙酰乳酸合酶(acetolactate synthase)、甲酸乙酰转移酶(formate acetyltransferase),乳酸脱氢酶和谷氨酸脱羧酶。
为了减少或消除上述酶的活性,可以在染色体上这些酶的基因处,引入导致酶活性减少或丧失的突变或缺失。这可以通过以下方法实现,例如,破坏染色体上编码这些酶的基因,或修饰所述基因的表达控制序列如启动子和/或Shine Dargarno(SD)序列。另外,可以通过引入导致氨基酸取代的错义突变、产生终止密码子的无义突变、或在编码区添加或缺失一个或两个核苷酸的移码突变;或通过缺失该基因的一部分来减少或消除这些酶的活性(Journalof Biological Chemistry 272:8611-8617(1997))。此外,可以通过如下方法减少或消除这些酶的活性:构建编码突变酶的基因,所述基因的编码区缺失,并通过同源重组用所得基因取代染色体基因。α-酮戊二酸脱氢酶活性被减少的棒状杆菌型细菌的实例包括在JP7-834672A和JP06-237779中公开的菌株。
此外,赋予产生L-谷氨酸的能力的方法实例包括:修饰菌株以增强编码yggB基因的基因表达,或修饰菌株以在YggB中引入突变的方法(NCgl 1221;NP_600492.Reports small-conductance...[gi:19552490])(美国专利申请No.60/715131)。
也可以通过下方法赋予产生L-谷氨酸的能力:筛选对有机酸类似物、呼吸抑制剂、或超氧化物产生物具有抗性的菌株,或筛选对细胞壁合成的抑制剂具有敏感性的菌株。这类方法的实例包括赋予对苯并吡喃酮(benzopirone)或萘醌(naphtoquinone)的抗性(JP56-1889A),赋予对单氟乙酸(monofluoroaceticacid)的抗性(JP 50-113209A),赋予对腺嘌呤和胸腺嘧啶的抗性(JP57-065198),赋予对HOQNO的抗性(JP56-140895A),赋予对α-酮丙二酸(α-ketomalonic acid)的抗性(JP57-2689A),赋予对胍的抗性(JP56-35981A),赋予对道诺霉素(daunomicin)的抗性(JP58-158192A),以及赋予对青霉素的敏感性(JP04-88994A)。
这类细菌的具体实例包括下列菌株:
黄色短杆菌AJ3949(FERM BP-2632;JP 50-113209A)
谷氨酸棒杆菌AJ11628(FERM P-5736;JP 57-065198A)
黄色短杆菌AJ11355(FERM P-5007;JP56-1889A)
谷氨酸棒杆菌AJ11355(FERM P-5020;JP56-1889A)
黄色短杆菌AJ11217(FERM P-4318;JP57-2689A)
谷氨酸棒杆菌AJ11218(FERM P-4319;JP57-2689A)
黄色短杆菌AJ11564(FERM P-5472;JP56-140895A)
黄色短杆菌AJ11439(FERM P-5136;JP56-35981A)
谷氨酸棒杆菌H7684(FERM BP-3004;JP04-88994A)
乳发酵短杆菌AJ11426(FERM P5123;JP56-048890A)
谷氨酸棒杆菌AJ11440(FERM P5137;JP56-048890A)
乳发酵短杆菌AJ11796(FERM P6402;JP58-158192A)
赋予产生L-缬氨酸的能力的方法实例包括:修饰菌株以增强编码L-缬氨酸生物合成酶的基因的表达的方法。L-缬氨酸生物合成酶的实例包括由ilvBNC操纵子编码的酶,即,由ilvBN编码的乙酰羟酸合成酶和由ilvC编码的异构还原酶(isomero-reductase)(WO00/50624)。ilvBNC操纵子受到L-缬氨酸、L-异亮氨酸和L-亮氨酸的任何组合的转录阻抑(transcriptional repression),所以最好进行释放稀释(release attenuation),以避免作为产物的L-缬氨酸的转录阻抑。
可以通过减少或消除至少一种酶的活性将产生L-缬氨酸的能力赋予棒状杆菌型细菌,所述酶催化减少L-缬氨酸的产生量的反应。例如,可以通过减少催化异亮氨酸合成的苏氨酸脱水酶的活性,或通过减少催化D-泛酸(D-panthothenate)合成的酶的活性赋予产生L-缬氨酸的能力(WO00/50624)。
也可以通过将对氨基酸类似物等的抗性赋予棒状杆菌型细菌来赋予产生L-缬氨酸的能力。
例如,可以使用对于L-异亮氨酸和L-甲硫氨酸是营养缺陷的,并对D-核糖、嘌呤核糖核苷或嘧啶核糖核苷有抗性的产生L-缬氨酸的突变菌株(FERM P-1841,FERM P-29,JP-B-53-025034),对聚酮化合物有抗性的产生L-缬氨酸的突变菌株(FERM P-1763,FERM P-1764;JP-B006-065314),对L-缬氨酸有抗性,且对丙酮酸类似物如β-氟丙酮酸(β-fluoropyruvic acid)敏感的产生L-缬氨酸的突变菌株(FERM BP-3006,BP-3007,Patent 3006929)。
具有产生L-丙氨酸的能力的棒状杆菌型细菌的实例包括H+-腺苷三磷酸酶(H+-ATPase)活性缺陷的棒状杆菌型细菌(Appl Microbiol Biotechnol.2001Nov;57(4):534-40),以及扩增的具有(amplified with)编码天冬氨酸β-脱羧酶结构基因的棒状杆菌型细菌(JP-A-7-163383)。
可以通过修饰棒状杆菌型细菌以增强编码L-精氨酸生物合成酶的基因的表达来赋予产生L-精氨酸的能力。L-精氨酸生物合成酶的实例包括N-乙酰谷氨酰磷酸还原酶(argC)、鸟氨酸乙酰转移酶(argJ)、N-乙酰谷氨酸激酶(argB)、乙酰鸟氨酸转氨酶(argD)、鸟氨酸氨甲酰基转移酶(argF)、精氨琥珀酸合成酶(argG)、精氨琥珀酸裂合酶(argH)和氨甲酰磷酸合成酶。这些精氨酸生物合成基因存在于Arg操纵子(argCJBDFRGH)上,且受到由argR编码的精氨酸抑制剂(repressor)的调控(J Bacteriol.2002 Dec;184(23):6602-14)。因此,精氨酸抑制剂的破坏导致Arg操纵子表达的增加,因此增强产生L-精氨酸的酶的活性(US2002-0045223)。
赋予产生L-精氨酸的能力的另一种方法是,例如通过赋予对氨基酸类似物的抗性。棒状杆菌型细菌的实例包括对2-噻唑丙氨酸(2-thiazolealanine)有抗性,并且对于L-组氨酸、L-脯氨酸、L-苏氨酸、L-异亮氨酸、L-甲硫氨酸或L-色氨酸营养缺陷的棒状杆菌型细菌(JP-A-54-044096);对酮丙二酸、氟丙二酸(fluoromalonic acid)或单氟乙酸有抗性的棒状杆菌型细菌(JP-A-57-18989);对精氨醇(argininol)有抗性的棒状杆菌型细菌(JP-B-62-024075);对x-胍有抗性的棒状杆菌型细菌(x是脂肪酸或脂肪链衍生物)(JP-A-2-186995);和对精氨酸氧肟酸(arginine hydroxamate)和6-氮尿嘧啶有抗性的棒状杆菌型细菌(JP-A-57-150381)。
赋予产生L-谷氨酰胺的能力的方法实例是通过修饰棒状杆菌型细菌来增强编码L-谷氨酰胺生物合成酶的基因的表达。L-谷氨酰胺生物合成酶的实例包括谷氨酰胺合成酶和谷氨酸脱氢酶(US2003-0003550)。
也可以通过减少或消除催化反应的酶的活性来赋予产生L-谷氨酰胺的能力,所述反应从L-谷氨酰胺生物合成途径分支、且产生其它化合物。例如,可以通过减少谷氨酰胺酶的活性来赋予产生L-谷氨酰胺的能力(US2004-0152175)。
也可以通过赋予对L-氨基酸类似物的抗性来赋予产生L-谷氨酰胺的能力。这些方法的实例包括,赋予对于6-重氮-5-氧-正亮氨酸(6-diazo-5-oxo-norleucine)的抗性的方法(JP-A-3-232497),赋予对于嘌呤类似物和/或甲硫氨酸亚砜(methionine sulfoxide)的抗性的方法(JP-A-61-202694),赋予对于α-酮丙二酸的抗性的方法(JP-A-56-151495),以及赋予对于含谷氨酸的肽的抗性的方法(JP-2-186994)。
产生L-谷氨酰胺的棒状杆菌型细菌的具体实例包括以下菌株:
黄色短杆菌AJ11573(FERM P-5492,JP56-161495A)
黄色短杆菌AJ11576(FERM BP-10381,JP56-161495A)
黄色短杆菌AJ12212(FERM P-8123,JP61-202694A)
黄色短杆菌AJ12418(FERM BP-2205,JP02-186994A)
黄色短杆菌DH18(FERM P-11116,JP03-232497A)
栖糖蜜棒杆菌DH344(FERM P-11117,JP3-232497A)
谷氨酸棒杆菌AJ11574(FERM P-5493,JP56-151495A)
赋予产生L-脯氨酸的能力的方法实例包括修饰棒状杆菌型细菌以增强编码L-脯氨酸生物合成酶的基因的表达的方法。L-脯氨酸生物合成酶的实例包括谷氨酸激酶、γ-谷氨酰磷酸还原酶(γ-glutamyl phosphate reductase)和脯氨酸-5-羧化物还原酶(pyroline-5-carboxylate reductase)(J Bacteriol.1996Aug;178(15):4412-9.)。
也可以通过减少或消除催化反应的酶的活性赋予产生L-脯氨酸的能力,所述反应从L-脯氨酸生物合成途径分支、并产生其它化合物。例如,可以通过减少鸟氨酸转氨酶(ornithine-aminotransferase)的活性来赋予产生L-脯氨酸的能力(J Bacteriol.1996 Aug;178(15):4412-9.)。
同时,因为L-精氨酸、L-谷氨酰胺和L-脯氨酸含有L-谷氨酸作为碳骨架,所以可以通过扩增编码酶的基因赋予产生这些氨基酸的能力,所述酶在上述产生L-谷氨酸的细菌中,催化导致从L-谷氨酸产生上述每种L-氨基酸的反应。
此外,由于L-丙氨酸是通过L-天冬氨酸的β-脱羧合成的,所以可以通过修饰产生L-天冬氨酸的细菌以使乙酰辅酶A水解酶活性减少来获得产生L-丙氨酸的细菌。
通过育种赋予或增强L-赖氨酸生产力可以通过引入一个或多个下列的突变来进行。这样的人工突变体如下所示:对于S-(2-氨乙基)-半胱氨酸(在下文中称为“AEC”)具有抗性的突变体;生长需要氨基酸例如L-高丝氨酸的突变体(参见日本专利公布号4828078和566499);对于AEC具有抗性且需要氨基酸例如L-亮氨酸、L-高丝氨酸、L-脯氨酸、L-丝氨酸、L-精氨酸、L-丙氨酸、L-缬氨酸等的突变体(参见美国专利3,708,395和3,825,472);对于DL-氨基己内酰胺、氨基月桂基内酰胺(aminolauryllactam)、天冬氨酸类似物、磺胺类药、醌型化合物和N-月桂基亮氨酸(N-lauroylleucine)具有抗性的产生L-赖氨酸的突变体,和对于草酰乙酸脱羧酶或呼吸系统酶抑制剂具有抗性的产生L-赖氨酸的突变体(参见日本专利Laid-Open编号5053588,5031093,52102498,539394,5386089,559783,559759,5632995和5639778,日本专利公布号5343591和531833);需要肌醇或乙酸的产生L-赖氨酸的突变体(见日本专利Laid-Open编号559784和568692);对于氟丙酮酸或对34℃或更高的温度敏感的生产L-赖氨酸的突变体(见日本专利LaidOpen编号5386090);对于乙二醇具有抗性的短杆菌和棒杆菌的产生L-赖氨酸的突变体(见美国专利4,411,997)。
赋予产生L-赖氨酸的能力的方法实例是增强编码L-赖氨酸生物合成酶的基因的表达。参与了L-赖氨酸生物合成的酶的实例包括,但不限于:二氨基庚二酸途径酶,如二氢吡啶二羧酸合酶(dihydrodipicolinate synthase)基因(dapA)、天冬氨酸激酶基因(lysC)、二氢吡啶二羧酸还原酶(dihydrodipicolinatedreductase)基因(dapB)、二氨基庚二酸脱羧酶基因(lysA)、二氨基庚二酸脱氢酶基因(ddh)(上述所有;国际公布号96/40934)、磷酸烯醇丙酮酸羧酶基因(ppc)(日本专利申请Laid-Open编号60-87788)、天冬氨酸转氨酶基因(aspC)(日本专利公布号6-102028)、二氨基庚二酸差向异构酶基因(dapF)(日本专利申请Laid-Open编号2003-135066)和天冬氨酸半醛脱氢酶(aspartate semialdehydedehydrogenease)基因(asd)(国际公布号00/61723);和氨基己二酸途径酶,如同型乌头酸水合酶(homoaconitate hydratase)基因(日本专利申请Laid-Open编号2000-157276)。
此外,本发明的细菌可具有减少的催化反应的酶的活性,或者可使所述酶具有缺陷,所述反应通过从L-赖氨酸生物合成途径分支,生成除L-赖氨酸之外的产物。催化反应的酶包括高丝氨酸脱氢酶和赖氨酸脱羧酶,所述反应通过从L-赖氨酸生物合成途径分支生成除L-赖氨酸之外的产物。这些酶的活性减少的菌株在WO95/23864和WO96/178930中有所描述。
<2>减少乙酰辅酶A水解酶活性的修饰
如上所述本发明的棒状杆菌型细菌具有产生L-氨基酸的能力,所述L-氨基酸是通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生的,且经过修饰以使乙酰辅酶A水解酶(EC 3.1.2.1)活性减少。
本发明的棒状杆菌型细菌可以通过以下方法获得,修饰上述的具有通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生L-氨基酸的能力的棒状杆菌型细菌,以使乙酰辅酶A水解酶活性减少。培育本发明的棒状杆菌型细菌时,赋予细菌产生L-氨基酸的能力,或修饰细菌以使乙酰辅酶A水解酶活性减少,可以以任何顺序进行。
“乙酰辅酶A水解酶(ACH)活性”指催化从乙酰辅酶A和水产生乙酸的活性。“修饰以使乙酰辅酶A水解酶活性减少”的含义是乙酰辅酶A水解酶活性低于未修饰的菌株,包括野生型棒状杆菌型细菌。与未修饰的菌株相比,每单位细胞重量的ACH活性优选减少到50%或以下,更优选30%或以下,还更优选10%或以下。在此,作为对照的野生型棒状杆菌型细菌包括,例如,乳发酵短杆菌2256菌株(ATCC 13869)或谷氨酸棒杆菌ATCC 13032;(被用作对照的)未修饰的菌株包括乳发酵短杆菌Δldh菌株。乙酰辅酶A水解酶活性可以根据Gergely,J.等的方法测量(Gergely,J.,Hele,P.& Ramkrishnan,C.V.(1952)J.Biol.Chem.198 p323-334)。“减少”包括活性完全消失的情况。优选的是,本发明的棒状杆菌型细菌具有的乙酰辅酶A水解酶活性比野生型或未修饰的菌株低,且引起的L-氨基酸积累比野生型或未修饰的菌株高。
ACH的实例包括含有SEQ ID NO:24所示氨基酸序列的蛋白质,和包含SEQ ID NO:24所示氨基酸序列,其中在一个或多个位置取代、缺失、插入或添加一个或多个氨基酸,但保留了ACH活性的蛋白质。尽管此处所指的“几个”氨基酸残基的数量可能依据蛋白质氨基酸残基的三维结构中的位置或种类而不同,但可以优选为2到20个,更优选2到10个,特别优选2到5个。在保留ACH活性的同时,ACH基因编码的蛋白质与SEQ ID NO:24所示氨基酸序列的同源性优选不低于80%,更优选不低于90%,还更优选不低于95%,特别优选不低于97%。这些ACH同源物中的氨基酸取代优选为保守取代,包括以ser或thr取代ala,以gln、his或lys取代arg,以glu、gln、lys、his或asp取代asn,以asn、glu或gln取代asp,以ser或ala取代cys,以asn、glu、lys、his、asp或arg取代gln,以gly、asn、gln、lys或asp取代glu,以pro取代gly,以asn、lys、gln、arg或tyr取代his,以leu、met、val或phe取代ile,以ile、met、val或phe取代leu,以asn、glu、gln、his或arg取代lys,以ile、leu、val或phe取代met,以trp、tyr、met、ile或leu取代phe,以thr或ala取代ser,以ser或ala取代thr,以phe或tyr取代trp,以his、phe或trp取代tyr和以met、ile或leu取代val。
“修饰以使乙酰辅酶A水解酶活性减少”包括每个细胞中乙酰辅酶A水解酶分子数量减少的情况,和每分子辅酶A水解酶活性减少的情况。具体地说,这些修饰可以通过以下方法完成,例如,破坏染色体上编码乙酰辅酶A水解酶的基因,或修饰表达调控序列,如启动子和/或Shine-Dalgarno(SD)序列。染色体上的乙酰辅酶A水解酶基因包括,例如,包含SEQ ID NO:23的核苷酸1037到2542的DNA。此外,乙酰辅酶A水解酶基因包括,例如,通过使用引物SEQ ID 7和8用PCR方法可获得的DNA。另外,染色体上的乙酰辅酶A水解酶基因可以是在严紧条件下能够与SEQ ID No.23的核苷酸1037到2542或可由所述核苷酸制备的探针杂交的DNA,只要其编码具有乙酰辅酶A水解酶活性的蛋白质。“严紧条件”指这样的条件,在该条件下,形成所谓的特异性杂交,而不形成所谓的非特异性的杂交。尽管难以用数值清晰地说明这些条件,但这些条件的实例包括,在60℃,并在对应于1×SSC,0.1%SDS,优选0.1×SSC,0.1%SDS的盐浓度,进行一次,优选两次或三次洗涤。
可以通过合成基于谷氨酸棒杆菌的核苷酸序列(例如,SEQ ID No.23,NCgl2480 of Gen Bank登录号NC_003450(NC_003450的2729376到2730884的互补链))的合成寡核苷酸,并使用谷氨酸棒杆菌的染色体DNA作为模板进行PCR来克隆乙酰辅酶A水解酶基因(在下文中称为“ach基因”)。另外,源自棒状杆菌型细菌如乳发酵短杆菌的另一个核苷酸序列也是可用的。可以由棒状杆菌型细菌作为DNA供体,通过例如Saito和Miura的方法(H.Saitoand K.Miura,Biochem.Biophys.Acta,72,619(1963),“BiotechnologyExperiments Handbook”,ed.By The Society for Biotechnology Japan,p.97 to 98,Baifukan,1992)制备染色体DNA。
由此制备的ach基因或其部分可用于破坏染色体ach基因。另外,用于破坏染色体ach基因的ach基因也可以是具有足够同源性以导致与目标棒状杆菌型细菌染色体上的ach基因同源重组的基因(例如,具有SEQ ID NO:23的核苷酸1037到2542的基因)。这里,足够引起同源重组的同源性优选80%或以上,更优选90%或以上,还更优选95%或以上,特别优选97%或以上。此外,在严紧条件下可以与上述基因杂交的DNA也可以被用于基因破坏。
可通过如下方法破坏ach基因,例如,制备“缺失型ach基因”,其中ach基因的部分序列缺失,以至于不产生功能正常的乙酰辅酶A水解酶,用含有此缺失型ach基因的DNA转化棒状杆菌型细菌,以导致缺失型ach基因和染色体上ach基因之间的重组。这种利用同源重组进行基因置换的基因破坏已经被建立,并包括使用线性DNA的方法,或使用含温度敏感性复制起点的质粒的方法(美国专利6,303,383或JP-A-05-007491)。利用同源重组进行基因置换的基因破坏也可以通过使用在棒状杆菌型细菌中无法复制的质粒来进行。优选使用在棒状杆菌型细菌中无法复制,但在埃希氏菌属细菌(Escherichiabacteria)中能够复制的质粒。这种质粒的实例包括pHSG299(Takara Bio)和pHSG399(Takara Bio)。
可以用缺失型ach基因,例如,通过使用sacB(Schafer,A.et al.,Gene 145(1994)69-73)的同源重组来替换染色体ach基因。sacB基因编码果聚糖蔗糖酶,且用于有效地选择菌株,在所述菌株中染色体目标基因被突变基因所取代,并将载体部分从染色体中消除(cured)。
首先,可以通过以下方法制备重组质粒:在具有温度敏感性复制起点的质粒中,插入缺失型(突变体)ach基因、sacB基因和选择标记,如氯霉素抗性基因。将所得质粒引入棒状杆菌型细菌的宿主菌株。当果聚糖蔗糖酶在棒状杆菌型细菌的细胞中表达时,由蔗糖转化产生的果聚糖对于细菌是致死的,因此该细菌无法在含有蔗糖的培养基中生长。所以,通过在含有蔗糖的平板中培养,可选择菌株,所述菌株中在质粒的突变体ach基因和染色体ach基因之间发生取代,并由此将质粒的其他部分从细胞中消除。
sacB基因的实例包括下列:
枯草芽孢杆菌(Bacillus subillus):sacB GenBank登录号X02730(SEQ IDNO:19)
解淀粉芽孢杆菌(Bacillus amyloliqufaciens):sacB GenBank登录号X52988
运动发酵单胞菌(Zymomonas mobilis):sacB GenBank登录号L33402
嗜热脂肪芽孢杆菌(Bacillus stearothermophilus):surB GenBank登录号U34874
Lactobacillus sanfranciscensis:frfA GenBank登录号AJ508391
Acetobacter xylinus:lsxA GenBank登录号AB034152
Gluconacetobacter diazotrophicus:lsdA GenBank登录号L41732
可以通过常规方法进行转化。例如,可以使用以氯化钙处理受体细胞从而增加DNA通透性的方法,其已被报导用于大肠杆菌(Mandel,M.and Higa,A.,J.Mol.Biol.,53,159(1970)),以及使用由生长细胞制备的感受态细胞以引入DNA的方法,其以被报导用于枯草芽孢杆菌(Duncan,C.H.,Wilson,G.A.andYoung,F.E.,Gene,1,153(1977))。除了这些方法之外,可以使用将重组DNA引入到原生质体-样或原生质球-样(protoplast-or spheroplast-like)受体细胞中的方法,其已被报导可用于枯草芽孢杆菌、放线菌类(actinomytetes)和酵母(Chang,S.and Choen,S.N.,Molec.Gen.Genet.,168,111(1979);Bibb,M.J.,Ward,J.M.and Hopwood,O.A.,Nature,274,398(1978);Hinnen,.A.Hicks,J.B.and Fink,G.R.,Proc.Natl.Sci.USA,75,1929(1978))。此外,棒状杆菌型细菌的转化还可以通过电脉冲法进行(Sugimoto et al.,JP2-207791A)。
用于棒状杆菌型细菌的温度敏感性质粒的实例包括p48K和pSFKT2(EP1038966)、pHSC4(法国专利Laid-open公布号2667875,1992和JP5-7491A)、pBS5T等等。在棒状杆菌型细菌中,这些质粒可以在至少为25℃的温度自主复制,但不能在37℃的温度自主复制。含有pHSC4的AJ12571菌株依据布达佩斯条约的规定于1991年8月26日保藏在通商产业省工业技术院生命工学工业技术研究所(National Institute of Bioscience and Human Technology,Agency of Industrial Science and Technology,Ministry of International Trade andIndustry)(目前为独立行政法人产业技术综合研究所特许微生物保藏中心(International Patent Organism Depositary,National Institute of AdvancedIndustrial Science and Technology),其地址为Tsukuba Central 6,1-1,Higashi1-chome,Tsukuba-shi,Ibaraki-ken 305-5466,Japan),并给予保藏号FERMBP-3524。
在温度敏感性复制起点不起作用的温度(例如25℃)培养转化的菌株,以获得已引入所述质粒的菌株。然后,在高温下培养转化体以消除温度敏感性质粒,并涂布在含抗生素药物如卡那霉素的平板培养基上。虽然消除了所述质粒的菌株不能在含这种抗生素药物的平板上生长,但其中染色体ach基因用突变的ach基因取代的少数菌株能够生长并作为菌落出现。
在这种将含突变ach基因的重组DNA整合到染色体DNA的菌株中,重组DNA导致了与原来存在于染色体上的ach基因的重组,并将染色体ach基因与突变ach基因的融合基因插入到染色体,以使重组DNA的其它部分(载体区段、温度敏感性复制起点和药物抗性标记)存在于融合基因之间。然后,为了在染色体DNA上只留下突变的ach基因,将一个拷贝的ach基因连同载体区段(包括温度敏感性复制起点和药物抗性标记)从染色体DNA消除。在这种情况下,正常ach基因被留在染色体DNA上,并将突变的ach基因从染色体DNA中消除,或者相反,将突变的ach基因留在染色体DNA上,并将正常的ach基因从染色体DNA中消除。然后,可以通过使用PCR、Southern杂交等选择在染色体上只留下突变ach基因的菌株。
减少乙酰辅酶A水解酶活性也可以通过修饰表达调控序列,如启动子、Shine-Dalgarno(SD)序列、操纵子、终止子或衰减子(attenuator)来实现。染色体上的表达调控序列可以通过基因分析软件如Genetix,通过用于表达分析的载体如启动子搜索载体(promoter-searching vector),以及通过已知的信息,如Genbank数据库鉴定。例如,减少乙酰辅酶A水解酶活性的突变实例包括,修饰乙酰辅酶A水解酶基因的启动子区以使其效力减少的突变,和破坏乙酰辅酶A水解酶基因启动子区共有序列的突变。可以通过使用不能在宿主细胞中进行复制的温度敏感性质粒或自杀载体(suicide vector)来引入这些突变。
减少乙酰辅酶A水解酶活性也可以通过以下方法完成:在染色体上乙酰辅酶A水解酶基因的编码区引入氨基酸取代(错义突变);引入终止密码子(无义突变);通过添加或缺失一个或两个核苷酸引入移码突变;或缺失基因的一部分(Journal of Biologial Chemistry 272:8611-8617(1997))。
减少乙酰辅酶A水解酶活性的实例还包括如下方法:用紫外线照射或用在常规突变处理中使用的致突变源(mutagen)如N-甲基-N’-硝基-N-亚硝基胍(NTG)和亚硝酸处理棒状杆菌型细菌,以选择乙酰辅酶A水解活性减少的菌株(“Amino Acid Fermentation”,Center for Academic Publications Japan Co.,Ltd.,1st ed.Published on May 30,1986,p.77至100)。
同时,本发明中优选使用被进一步修饰以使谷氨酸脱氢酶(以下称为“GDH”)活性增强的菌株。
为使具有产生L-氨基酸的能力、且经修饰以减少ACH活性的棒状杆菌型细菌中的GDH活性得到扩增,将编码GDH的基因片段连接到可在棒状杆菌型细菌中起作用的载体,优选连接到多拷贝型载体上以制备重组DNA,再用得到的DNA转化棒状杆菌型细菌。由于转化体细胞中编码GDH的基因拷贝数增加,GDH活性得到扩增。
编码GDH的基因可以源自棒状杆菌型细菌或可源自其他生物体如大肠杆菌。
已经鉴定了编码棒状杆菌型细菌的GDH的基因(gdh基因)的核苷酸序列(例如,SEQ ID NO:25:Molecular Microbiology(1992)6(3),317-326 1999,NC_003450的2194739..2196082的互补链),所以gdh基因可以使用基于所述核苷酸序列设计的引物和棒状杆菌型细菌的染色体DNA作为模板通过PCR获得(PCR:聚合酶链式反应;White,T.J.et al.;Trends Genet.5,185(1989))。编码其他微生物的GDH的基因也可以以相同方式获得。
<3>使用本发明的棒状杆菌型细菌产生L-氨基酸
可通过在培养基中培养如上所述得到的棒状杆菌型细菌以产生所述L-氨基酸,并导致所述L-氨基酸的积累,和从培养基中收集所述L-氨基酸,从而有效地产生使用丙酮酸作为中间物产生的L-氨基酸。
为了使用本发明的棒状杆菌型细菌产生这些L-氨基酸,可以通过常规方法用普通培养基进行培养,所述普通培养基含有碳源、氮源、无机盐和(如果需要的话,)痕量的有机营养物,如氨基酸和维生素。可以使用合成培养基或天然培养基。培养基中使用的碳源和氮源可以是任何种类的,只要它们能够被本发明中菌株所利用。
碳源的实例包括糖类,如葡萄糖、甘油、果糖、蔗糖、麦芽糖、甘露糖、半乳糖、淀粉水解物和糖蜜。此外,有机酸类如柠檬酸和苹果酸,和醇类如乙醇,可以单独使用或与其他碳源组合使用。
氮源的实例包括氨,铵盐如硫酸铵、碳酸铵、氯化铵、磷酸铵和乙酸铵,以及硝酸盐。
可以痕量存在的有机营养物的实例包括氨基酸、维生素、脂肪酸和核酸,并可以使用含有这些营养物的蛋白胨(peptone)、酪蛋白氨基酸、酵母提取物和大豆蛋白水解物。在使用其生长需要氨基酸等的营养缺陷型突变菌株的情况下,优选补充所需的营养物。
无机盐的实例包括磷酸盐、镁盐、钙盐、铁盐和锰盐。
在需氧条件下在20到45℃的发酵温度、同时将pH调整为5到9进行培养。如果培养过程中pH降低,可以在培养基中加入碳酸钙或碱,如氨气来中和。大约10到120小时的培养导致可观量的L-氨基酸的积累。
培养完成后,通过公知的回收方法从培养基中收集L-氨基酸。例如,将细胞从培养液中去除后,通过浓缩和结晶来收集L-氨基酸。
实施例
在下文中,通过下列非限制性实施例更加具体地解释本发明。
实施例1
<1>构建携带sacB基因的破坏载体
(A)构建pBS3
使用枯草芽孢杆菌的染色体DNA作为模板,和SEQ ID NOS:1和2的寡核苷酸作为引物,通过PCR获得了sacB基因(SEQ ID NO:19)。使用LA taq(由TaKaRa制造)如下进行PCR:在94℃贮热(heat retention)5分钟的一个循环;和94℃变性30秒、49℃退火30秒和72℃延伸2分钟的25个循环。用常规方法纯化所得PCR产物,然后用BglII和BamHI消化并平端化。将所述片段插入到已用AvaII消化且平端化的pHSG299中。所得DNA用于转化大肠杆菌JM109(由TAKARA BIO INC.制造)的感受态细胞。然后,将转化的细菌细胞涂布到含25μg/ml卡那霉素(以下缩写为″Km″)的LB琼脂培养基上,温育一夜。此后,分离单菌落作为转化体。从所得转化体中提取质粒,并将具有目的PCR产物的插入物的质粒命名为pBS3。图1显示了构建pBS3的方法。
(B)构建pBS4S
使用不引起氨基酸取代的交换(cross-over)PCR通过核苷酸取代来修饰pBS3上卡那霉素抗性基因中的SmaI识别位点,从而使pBS3不被内切酶(endnuclease)SmaI切断。首先,使用pBS3作为模板和SEQ ID NOS:3和4的合成DNA作为引物进行PCR,以由此获得卡那霉素抗性基因的N末端片段。另一方面,为了获得卡那霉素抗性基因的C末端片段,使用pBS3作为模板和SEQ ID NOS:5和6的合成DNA作为引物进行PCR。使用PyrobestDNA聚合酶(由TAKARA BIO INC.制造)如下进行PCR以获得目标PCR产物:在98℃贮热5分钟的一个循环;以及98℃变性10秒、57℃退火30秒、72℃延伸1分钟的25个循环。SEQ ID NOS:4和5彼此部分互补,且不包含SmaI识别位点。然后,为了获得不含SmaI识别位点的突变卡那霉素抗性基因的全长片段,将上述N末端和C末端基因产物以基本上等摩尔量混合在一起。使用所述基因产物作为模板和SEQ ID NOS:3和6的合成DNA作为引物进行PCR,以获得SmaI位点修饰的卡那霉素抗性基因片段。使用Pyrobest DNA聚合酶(由TAKARA BIO INC.制造)如下进行PCR以获得目标PCR产物:在98℃贮热5分钟的一个循环;以及98℃变性10秒、57℃退火30秒、72℃延伸1.5分钟的25个循环。
用常规方法纯化PCR产物,然后用BanII消化,然后插入到pBS3的上述BanII识别位点中。将所得质粒用于转化大肠杆菌JM109的感受态细胞(可由Takara Bio得到)。即,将转化的细菌细胞涂布到含有25μg/ml卡那霉素的LB琼脂培养基上,并温育一夜。此后,选择出现的菌落作为转化体。从所得转化体中分离质粒,并将具有目的PCR产物的插入物的质粒命名为pBS4S。图2显示了构建pBS4S的方法。
(C)构建pBS5T
通过利用BamHI和SmaI消化棒状杆菌型细菌中的温度敏感性复制起点和平端化,将其从pHSC4(JP-A-5-7491)中切除,并插入pBS4S的平端化的NdeI位点。使用所得DNA转化大肠杆菌JM109的感受态细胞(由TAKARABIO INC.制造),并涂布到含有25μg/ml Km的LB琼脂培养基上,然后培养过夜。然后,分离单菌落作为转化体。从所得转化体中提取质粒,并将具有目的PCR产物的插入物的质粒命名为pBS5T。图3显示了构建pBS5T的方法。
实施例2
<构建ldh-破坏的菌株>
(A)克隆破坏乳酸脱氢酶基因的片段
使用基于谷氨酸棒杆菌ATCC13032菌株(SEQ ID NO:21:GenBank数据库登录号NC_003450)的乳酸脱氢酶基因(以下缩写为“ldh基因”)的核苷酸序列设计的合成DNA通过交换PCR得到含有源自缺失了ORF的乳发酵短杆菌2256菌株的ldh基因的基因片段。具体来说,使用乳发酵短杆菌2256菌株的染色体DNA作为模板和SEQ ID NOS:7和8的合成DNA作为引物通过常规方法进行PCR,以获得ldh基因的N末端片段。另一方面,为了获得ldh基因的C末端片段,使用乳发酵短杆菌2256菌株的染色体DNA作为模板和SEQ ID NOS:9和10的合成DNA作为引物,通过常规方法进行PCR。SEQ IDNOS:8和9彼此互补,且被设计以导致ldh基因的ORF全部序列的缺失。
然后,为了获得缺失内部序列的ldh基因片段,将ldh的N末端和C末端基因产物以基本上等摩尔量混合,且使用所述混合物作为模板和SEQ IDNOS:11和12的合成DNA作为引物,通过常规方法进行PCR。在以常规方式纯化PCR产物之后,用SalI消化PCR产物。其后,将该PCR产物插入上述pBS4S的SalI位点。用所得DNA转化大肠杆菌感受态细胞(由TAKARABIO INC.制造),并涂布到含有100μM IPTG、40μg/ml X-Gal和25μg/ml Km的LB琼脂培养基上,然后过夜培养。其后分离单菌落作为转化体。从所得转化体中提取质粒,并将具有目的PCR产物的插入物的质粒命名为pΔldh56-1。图4显示了所述质粒的构建方法。
(B)制备ldh-破坏的菌株
由于上述(A)中所制备的pΔldh56-1不含有使其能够在棒状杆菌型细菌中自主复制的区域,当以此质粒转化棒状杆菌型细菌时,通过同源重组将所述质粒整合入染色体的转化体菌株所出现的频率极低。因此,使用含有高浓度pΔldh56-1质粒的溶液通过电脉冲法转化乳发酵短杆菌2256菌株,然后涂布到含有25μg/ml卡那霉素的CM-Dex琼脂培养基(5g/L葡萄糖、10g/L聚胨、10g/L酵母提取物、1g/L KH2PO4、0.4g/L MgSO4·7H2O、0.01g/L FeSO4·7H2O、0.01g/L MnSO4·7H2O、3g/L尿素和1.2g/L大豆水解物,和pH 7.5(KOH))上,在31.5℃培养约30小时。出现在此培养基上的菌落是这样的菌株,其中在质粒的ldh基因片段和乳发酵短杆菌2256菌株的染色体上的ldh基因之间发生了同源重组,并将卡那霉素抗性基因和源自质粒的SacB基因插入该染色体。
然后,在不含卡那霉素的CM-Dex液体培养基中,于31.5℃将这些第一次重组体(first recombinant)培养一夜。在适当的稀释后,将重组体涂布到含蔗糖10%的Dex-S10琼脂培养基(10g/L蔗糖、10g/L聚胨、10g/L酵母提取物、1g/L KH2PO4、0.4g/L MgSO4·7H2O、0.01g/L FeSO4·7H2O、0.01g/LMnSO4·4H2O、3g/L尿素、1.2g/L大豆水解物和10μg/L生物素,和pH 7.5(KOH))上并在31.5℃培养约30小时。结果,获得约50个菌株,其中通过二次重组消除sacB基因,且成为蔗糖非敏感性的。
由此获得的菌株包括染色体ldh基因被源自pΔldh56-1的突变型取代的菌株,以及保留了染色体野生型ldh基因的菌株。通过将在Dex-S10琼脂培养基上培养获得的细胞进行直接PCR(direct PCR),容易地检查ldh基因是突变型还是野生型。使用PCR扩增的引物(SEQ ID NOS:7和10)分析ldh基因,选择其PCR产物小于野生型ldh基因的菌株作为ldh破坏的菌株,并被命名为2256Δ(ldh)菌株,所述野生型ldh基因是使用野生型2256菌株的染色体DNA作为模板扩增的。所得菌株被用作亲本菌株用于制备下述ach基因破坏的菌株。
当发酵在厌氧条件下进行时,积累相当大量的乳酸作为副产品,所以乳酸脱氢酶活性缺乏是优选的(JP 11-206385;J Mol Microbio Biotechnol.2004;7(4):182-96.)。然而,L-谷氨酸通常在乳酸脱氢酶不起作用的有氧条件下产生,并且无需在乙酰辅酶A水解酶基因破坏的菌株中破坏ldh基因而用于产生L-谷氨酸。
实施例3
<构建乙酰辅酶A水解酶破坏的菌株>
(A)克隆用于破坏乙酰辅酶A水解酶基因的片段
使用基于谷氨酸棒杆菌ATCC13032(SEQ ID NO:23:GenBank数据库登录号NC_003450)乙酰辅酶A水解酶基因(以下该基因缩写为“ach”)的核苷酸序列设计的合成DNA,通过交换PCR获得含有ach基因的基因片段,所述ach基因源自缺失ORF的乳发酵短杆菌2256菌株。具体来说,使用乳发酵短杆菌2256菌株的染色体DNA作为模板和SEQ ID NOS:13和14的合成DNA作为引物通过常规方法进行PCR,以获得ach基因的C末端片段。另一方面,为了获得N末端片段,使用乳发酵短杆菌2256菌株的染色体DNA作为模板和SEQ ID NOS:15和16的合成DNA作为引物通过常规方法进行PCR。SEQID NOS:14和15彼此部分互补。利用KOD-plus(由TOYOBO Co.,LTD.制造)进行PCR反应。在进行了94℃贮热2分钟的一个循环之后,将如下步骤重复30个循环:在94℃变性10秒、55℃退火30秒、68℃延伸50秒。然后,为了获得缺失内部序列的ach基因片段,将ach基因的N末端片段和C末端片段以基本上等摩尔量混合在一起。使用所述混合产物作为模板和SEQ ID NOS:17和18的合成DNA作为引物通过常规方法进行PCR。用KOD-plus(由TOYOBO Co.,LTD.制造)进行PCR反应。进行了在94℃保持(retention)2分钟的一个循环之后,将如下步骤重复30个循环:94℃变性10秒、55℃退火30秒、68℃延伸90秒。在通过常规方式纯化扩增的PCR产物之后,用XbaI消化PCR产物,并将其插入到上述实施例1(B)中所构建的pBS4S的XbaI位点中。用所得DNA转化大肠杆菌JM 109的感受态细胞(由TAKARA BIO INC.制造),并涂布到含有100μM IPTG、40ug/ml X-Gal和25μg/ml Km的LB琼脂培养基中,然后培养一夜。此后,分离白色单菌落作为转化体。从所得转化体中提取质粒,并将具有目的PCR产物的插入物的质粒命名为pBS4S::Δach。图5显示了构建pBS4S::Δach的方法。
(B)制备ach破坏的菌株
由于上述(A)中所制备的pBS4S::Δach不含使其能够在棒状杆菌型细菌的细胞中自主复制的区域,当以该质粒转化棒状杆菌型细菌时,通过同源重组将所述质粒并入其染色体的菌株作为转化体出现的频率极低。因此,使用含有高浓度pBS4S::Δach质粒的溶液通过电脉冲法转化乳发酵短杆菌2256Δ(ldh)菌株,并涂布到含有25μg/ml卡那霉素的CM-Dex琼脂培养基上,在31.5℃培养约30小时。出现在此培养基上的菌株是这样的菌株,其中在质粒的缺失型(deletion-type)ach基因片段和乳发酵短杆菌2256Δ(ldh)菌株的染色体上的ach基因之间发生了同源重组,并将卡那霉素抗性基因和源自质粒的SacB基因插入染色体中。
然后,在不含卡那霉素的CM-Dex液体培养基中,于31.5℃将这些第一次重组体培养一夜。在适当的稀释后,将重组体涂布到含蔗糖10%的Dex-S10琼脂培养基上,并在31.5℃培养约30小时。结果,获得约50个菌株,其中通过二次重组从染色体消除sacB基因,且成为蔗糖非敏感性的。
由此获得的菌株包括染色体ach基因被源自pBS4S::Δach的突变型取代的菌株,以及保留了染色体野生型ach基因的菌株。通过将在Dex-S10琼脂培养基上培养获得的细胞进行直接PCR,容易地确定ach基因是突变型还是野生型。使用引物(SEQ ID NOS:13和16)分析ach基因后,对于野生型ach基因扩增2.9kb的DNA片段和对于突变型ach基因扩增1.4kb的DNA片段。作为通过上述方法分析蔗糖非敏感性菌株的结果,选择出只含有突变型ach基因的菌株,并将从2256Δ(ldh)获得的ach破坏的菌株命名为2256Δ(ldh,ach)菌株。
实施例4
<利用ach破坏的菌株产生L-谷氨酸>
(1)评价ach破坏的菌株的产生L-谷氨酸的能力
如下在S型釜(S-type jar)中培养乳发酵短杆菌2256Δ(ldh)菌株和2256Δ(ldh,ach)菌株用于产生L-谷氨酸。将各一环(loop)在CMDex琼脂平板上培养的2256Δ(ldh)菌株和2256Δ(ldh,ach)菌株接种到300ml的种子培养基(seed medium)(每1L纯化水(purified water)中60g葡萄糖、1.54g H3PO4、1.45g KOH、0.9g MgSO4·7H2O、0.01g FeSO4·7H2O、670μg VB1·HCl、40μg生物素、1.54g大豆水解物、0.28g DL-甲硫氨酸和0.1ml AZ-20R(用氨水调节至pH 7.2)),以1/1vvm通气培养直到残糖被完全消耗,同时控制pH为7.2(NH3),温度为31.5℃,且PL>0。
将30ml培养液接种到270ml主培养基(main culture medium)(每1L纯化水中80g葡萄糖、3.46g KH2PO4、1g MgSO4·7H2O、0.01g FeSO4·7H2O、0.01g MnSO4·4-5H2O、230μg VB1·HCl、0.35g大豆水解物、和0.2ml AZ-20R(用氨调节至pH 7.3))中,在1/1vvm通气条件下培养,同时控制温度为31.5℃,pH为7.3,且PL>0。在残糖被完全消耗之前,加入70至80ml料液(feedsolution),培养液由每1L纯化水500g葡萄糖和0.2ml AZ-20R组成,并继续培养到残糖完全被消耗。
结束培养之后,对培养液进行适当的稀释后,在Biotech Analyzer AS210(由Asahi Kasei Corporation制造)中分析培养液中所积累的L-谷氨酸(Glu)的量。表1显示了结果。
表1通过ach缺陷型菌株产生L-谷氨酸
与2256Δ(ldh)菌株(亲本菌株)相比,2256Δ(ldh,ach)菌株在产率上显示约2%的改进。此外,作为L-谷氨酸前体的α-酮戊二酸(α-KG)的积累量改进了约三倍。此结果显示,减少或消除ACH活性在L-谷氨酸的产生中是有效的。
实施例5
<通过ach缺陷型菌株产生L-丙氨酸和L-缬氨酸>
(1)评价ach缺陷型菌株的培养
如下在S型釜中培养乳发酵短杆菌2256Δ(ldh)菌株和2256Δ(ldh,ach)菌株用于产生L-丙氨酸和L-缬氨酸。将各一环在CMDex琼脂平板上培养的2256Δ(ldh)菌株和2256Δ(ldh,ach)菌株,接种到300ml种子培养基(每1L纯化水60g葡萄糖、1.54g H3PO4、1.45g KOH、0.9g MgSO4·7H2O、0.01gFeSO4·7H2O、670μg VB1·HCl、40μg生物素、1.54g大豆水解物、0.28g DL-甲硫氨酸和0.1ml AZ-20R(用氨水调节至pH 7.2))中,并以1/1vvm通气培养直到残糖完全消耗,同时用氨控制pH为7.2,温度为31.5℃,且PL>0。
将30ml培养液接种到270ml主培养基(每1L纯化水80g葡萄糖、3.46g KH2PO4、1g MgSO4·7H2O、0.01g FeSO4·7H2O、0.01g MnSO4·4-5H2O、230μg VB1.HCl、0.35g大豆水解物和0.2ml AZ-20R(用氨调节至pH 7.3))中,并在1/1vvm通气条件下培养,同时控制温度为31.5℃,pH为7.3,且PL>0。在残糖被完全消耗之前,加入70至80ml料液,所述料液由每1L纯化水500g葡萄糖和0.2ml AZ-20R组成,并继续培养直到残糖被完全消耗。
完全培养之后,对培养液进行适当的稀释后,用Amino Acid AnalyzerL8500(由Hitachi,Ltd.制造)分析培养液中所积累的L-丙氨酸(Ala)和L-缬氨酸(Val)的量。表2显示了结果。
表2通过ach缺陷型菌株产生Ala和Vla
2256Δ(ldh,ach)显示L-丙氨酸积累量的约2.2倍的改进,和L-缬氨酸积累量的约四倍的改进。此结果显示,减少或消除ACH活性在L-缬氨酸和L-丙氨酸的产生中是有效的。
工业适用性
根据本发明,改进了L-氨基酸的发酵产量(fermentation yield),所述L-氨基酸是通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生的。
序列表
<110>味之素株式会社(Ajinomoto Co.,Inc.)
<120>L-氨基酸生产细菌和一种生产L-氨基酸的方法
<130>C537-C5225
<150>JP2004-340187
<151>2004-11-25
<160>26
<170>PatentIn version 3.1
<210>1
<211>24
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
<400>1
cgggatcctt tttaacccat caca 24
<210>2
<211>29
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
<400>2
gaagatcttc aaaaggttag gaatacggt 29
<210>3
<211>23
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
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ccttttgaag atcgaccagt tgg 23
<210>4
<211>44
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
<400>4
tacctggaat gctgttttcc cagggatcgc agtggtgagt aacc 44
<210>5
<211>28
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
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cctgggaaaa cagcattcca ggtattag 28
<210>6
<211>23
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
<400>6
tgcaggtcga ctctagagga tcc 23
<210>7
<211>20
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
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cactgcacgg ccctgcgaac 20
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<211>42
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
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cgccaactag gcgccaaaaa ttcctgattt ccctaaccgg ac 42
<210>9
<211>42
<212>DNA
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<220>
<223>引物
<400>9
gtccggttag ggaaatcagg aatttttggc gcctagttgg cg 42
<210>10
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<220>
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<213>人工序列
<220>
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gagtcgaccg caccccattt ttcata 26
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<212>DNA
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<220>
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tggtcgacgt gaatgctcgg cgggatcc 28
<210>13
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<212>DNA
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<220>
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<213>人工序列
<220>
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gtccgattac ctgaggaggt attcccatga aggcataagt tttttcttgg 50
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<212>DNA
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<220>
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<210>16
<211>26
<212>DNA
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<220>
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<211>33
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<213>人工序列
<220>
<223>引物
<400>17
ggcctctaga cctgcaccga tcaggatgag tgg 33
<210>18
<211>35
<212>DNA
<213>人工序列
<220>
<223>引物
<400>18
gcgctctaga ctcaacaaga gcacgcgcag tcacc 35
<210>19
<211>2014
<212>DNA
<213>枯草芽孢杆菌
<220>
<221>CDS
<222>(464)..(1882)
<223>
<400>19
gatccttttt aacccatcac atatacctgc cgttcactat tatttagtga aatgagatat 60
tatgatattt tctgaattgt gattaaaaag gcaactttat gcccatgcaa cagaaactat 120
aaaaaataca gagaatgaaa agaaacagat agatttttta gttctttagg cccgtagtct 180
gcaaatcctt ttatgatttt ctatcaaaca aaagaggaaa atagaccagt tgcaatccaa 240
acgagagtct aatagaatga ggtcgaaaag taaatcgcgc gggtttgtta ctgataaagc 300
aggcaagacc taaaatgtgt aaagggcaaa gtgtatactt tggcgtcacc ccttacatat 360
tttaggtctt tttttattgt gcgtaactaa cttgccatct tcaaacagga gggctggaag 420
aagcagaccg ctaacacagt acataaaaaa ggagacatga acg atg aac atc aaa 475
Met Asn Ile Lys
1
aag ttt gca aaa caa gca aca gta tta acc ttt act acc gca ctg ctg 523
Lys Phe Ala Lys Gln Ala Thr Val Leu Thr Phe Thr Thr Ala Leu Leu
5 10 15 20
gca gga ggc gca act caa gcg ttt gcg aaa gaa acg aac caa aag cca 571
Ala Gly Gly Ala Thr Gln Ala Phe Ala Lys Glu Thr Asn Gln Lys Pro
25 30 35
tat aag gaa aca tac ggc att tcc cat att aca cgc cat gat atg ctg 619
Tyr Lys Glu Thr Tyr Gly Ile Ser His Ile Thr Arg His Asp Met Leu
40 45 50
caa atc cct gaa cag caa aaa aat gaa aaa tat caa gtt cct gaa ttc 667
Gln Ile Pro Glu Gln Gln Lys Asn Glu Lys Tyr Gln Val Pro Glu Phe
55 60 65
gat tcg tcc aca att aaa aat atc tct tct gca aaa ggc ctg gac gtt 715
Asp Ser Ser Thr Ile Lys Asn Ile Ser Ser Ala Lys Gly Leu Asp Val
70 75 80
tgg gac agc tgg cca tta caa aac gct gac ggc act gtc gca aac tat 763
Trp Asp Ser Trp Pro Leu Gln Asn Ala Asp Gly Thr Val Ala Asn Tyr
85 90 95 100
cac ggc tac cac atc gtc ttt gca tta gcc gga gat cct aaa aat gcg 811
His Gly Tyr His Ile Val Phe Ala Leu Ala Gly Asp Pro Lys Asn Ala
105 110 115
gat gac aca tcg att tac atg ttc tat caa aaa gtc ggc gaa act tct 859
Asp Asp Thr Ser Ile Tyr Met Phe Tyr Gln Lys Val Gly Glu Thr Ser
120 125 130
att gac agc tgg aaa aac gct ggc cgc gtc ttt aaa gac agc gac aaa 907
Ile Asp Ser Trp Lys Asn Ala Gly Arg Val Phe Lys Asp Ser Asp Lys
135 140 145
ttc gat gca aat gat tct atc cta aaa gac caa aca caa gaa tgg tca 955
Phe Asp Ala Asn Asp Ser Ile Leu Lys Asp Gln Thr Gln Glu Trp Ser
150 155 160
ggt tca gcc aca ttt aca tct gac gga aaa atc cgt tta ttc tac act 1003
Gly Ser Ala Thr Phe Thr Ser Asp Gly Lys Ile Arg Leu Phe Tyr Thr
165 170 175 180
gat ttc tcc ggt aaa cat tac ggc aaa caa aca ctg aca act gca caa 1051
Asp Phe Ser Gly Lys His Tyr Gly Lys Gln Thr Leu Thr Thr Ala Gln
185 190 195
gtt aac gta tca gca tca gac agc tct ttg aac atc aac ggt gta gag 1099
Val Asn Val Ser Ala Ser Asp Ser Ser Leu Asn Ile Asn Gly Val Glu
200 205 210
gat tat aaa tca atc ttt gac ggt gac gga aaa acg tat caa aat gta 1147
Asp Tyr Lys Ser Ile Phe Asp Gly Asp Gly Lys Thr Tyr Gln Asn Val
215 220 225
cag cag ttc atc gat gaa ggc aac tac agc tca ggc gac aac cat acg 1195
Gln Gln Phe Ile Asp Glu Gly Asn Tyr Ser Ser Gly Asp Asn His Thr
230 235 240
ctg aga gat cct cac tac gta gaa gat aaa ggc cac aaa tac tta gta 1243
Leu Arg Asp Pro His Tyr Val Glu Asp Lys Gly His Lys Tyr Leu Val
245 250 255 260
ttt gaa gca aac act gga act gaa gat ggc tac caa ggc gaa gaa tct 1291
Phe Glu Ala Asn Thr Gly Thr Glu Asp Gly Tyr Gln Gly Glu Glu Ser
265 270 275
tta ttt aac aaa gca tac tat ggc aaa agc aca tca ttc ttc cgt caa 1339
Leu Phe Asn Lys Ala Tyr Tyr Gly Lys Ser Thr Ser Phe Phe Arg Gln
280 285 290
gaa agt caa aaa ctt ctg caa agc gat aaa aaa cgc acg gct gag tta 1387
Glu Ser Gln Lys Leu Leu Gln Ser Asp Lys Lys Arg Thr Ala Glu Leu
295 300 305
gca aac ggc gct ctc ggt atg att gag cta aac gat gat tac aca ctg 1435
Ala Asn Gly Ala Leu Gly Met Ile Glu Leu Asn Asp Asp Tyr Thr Leu
310 315 320
aaa aaa gtg atg aaa ccg ctg att gca tct aac aca gta aca gat gaa 1483
Lys Lys Val Met Lys Pro Leu Ile Ala Ser Asn Thr Val Thr Asp Glu
325 330 335 340
att gaa cgc gcg aac gtc ttt aaa atg aac ggc aaa tgg tac ctg ttc 1531
Ile Glu Arg Ala Asn Val Phe Lys Met Asn Gly Lys Trp Tyr Leu Phe
345 350 355
act gac tcc cgc gga tca aaa atg acg att gac ggc att acg tct aac 1579
Thr Asp Ser Arg Gly Ser Lys Met Thr Ile Asp Gly Ile Thr Ser Asn
360 365 370
gat att tac atg ctt ggt tat gtt tct aat tct tta act ggc cca tac 1627
Asp Ile Tyr Met Leu Gly Tyr Val Ser Asn Ser Leu Thr Gly Pro Tyr
375 380 385
aag ccg ctg aac aaa act ggc ctt gtg tta aaa atg gat ctt gat cct 1675
Lys Pro Leu Asn Lys Thr Gly Leu Val Leu Lys Met Asp Leu Asp Pro
390 395 400
aac gat gta acc ttt act tac tca cac ttc gct gta cct caa gcg aaa 1723
Asn Asp Val Thr Phe Thr Tyr Ser His Phe Ala Val Pro Gln Ala Lys
405 410 415 420
gga aac aat gtc gtg att aca agc tat atg aca aac aga gga ttc tac 1771
Gly Asn Asn Val Val Ile Thr Ser Tyr Met Thr Asn Arg Gly Phe Tyr
425 430 435
gca gac aaa caa tca acg ttt gcg cca agc ttc ctg ctg aac atc aaa 1819
Ala Asp Lys Gln Ser Thr Phe Ala Pro Ser Phe Leu Leu Asn Ile Lys
440 445 450
ggc aag aaa aca tct gtt gtc aaa gac agc atc ctt gaa caa gga caa 1867
Gly Lys Lys Thr Ser Val Val Lys Asp Ser Ile Leu Glu Gln Gly Gln
455 460 465
tta aca gtt aac aaa taa aaacgcaaaa gaaaatgccg atatcctatt 1915
Leu Thr Val Asn Lys
470
ggcattttct tttatttctt atcaacataa aggtgaatcc catatgaact atataaaagc 1975
aggcaaatgg ctaaccgtat tcctaacctt ttgaagatc 2014
<210>20
<211>473
<212>PRT
<213>枯草芽孢杆菌
<400>20
Met Asn Ile Lys Lys Phe Ala Lys Gln Ala Thr Val Leu Thr Phe Thr
1 5 10 15
Thr Ala Leu Leu Ala Gly Gly Ala Thr Gln Ala Phe Ala Lys Glu Thr
20 25 30
Asn Gln Lys Pro Tyr Lys Glu Thr Tyr Gly Ile Ser His Ile Thr Arg
35 40 45
His Asp Met Leu Gln Ile Pro Glu Gln Gln Lys Asn Glu Lys Tyr Gln
50 55 60
Val Pro Glu Phe Asp Ser Ser Thr Ile Lys Asn Ile Ser Ser Ala Lys
65 70 75 80
Gly Leu Asp Val Trp Asp Ser Trp Pro Leu Gln Asn Ala Asp Gly Thr
85 90 95
Val Ala Asn Tyr His Gly Tyr His Ile Val Phe Ala Leu Ala Gly Asp
100 105 110
Pro Lys Asn Ala Asp Asp Thr Ser Ile Tyr Met Phe Tyr Gln Lys Val
115 120 125
Gly Glu Thr Ser Ile Asp Ser Trp Lys Asn Ala Gly Arg Val Phe Lys
130 135 140
Asp Ser Asp Lys Phe Asp Ala Asn Asp Ser Ile Leu Lys Asp Gln Thr
145 150 155 160
Gln Glu Trp Ser Gly Ser Ala Thr Phe Thr Ser Asp Gly Lys Ile Arg
165 170 175
Leu Phe Tyr Thr Asp Phe Ser Gly Lys His Tyr Gly Lys Gln Thr Leu
180 185 190
Thr Thr Ala Gln Val Asn Val Ser Ala Ser Asp Ser Ser Leu Asn Ile
195 200 205
Asn Gly Val Glu Asp Tyr Lys Ser Ile Phe Asp Gly Asp Gly Lys Thr
210 215 220
Tyr Gln Asn Val Gln Gln Phe Ile Asp Glu Gly Asn Tyr Ser Ser Gly
225 230 235 240
Asp Asn His Thr Leu Arg Asp Pro His Tyr Val Glu Asp Lys Gly His
245 250 255
Lys Tyr Leu Val Phe Glu Ala Asn Thr Gly Thr Glu Asp Gly Tyr Gln
260 265 270
Gly Glu Glu Ser Leu Phe Asn Lys Ala Tyr Tyr Gly Lys Ser Thr Ser
275 280 285
Phe Phe Arg Gln Glu Ser Gln Lys Leu Leu Gln Ser Asp Lys Lys Arg
290 295 300
Thr Ala Glu Leu Ala Asn Gly Ala Leu Gly Met Ile Glu Leu Asn Asp
305 310 315 320
Asp Tyr Thr Leu Lys Lys Val Met Lys Pro Leu Ile Ala Ser Asn Thr
325 330 335
Val Thr Asp Glu Ile Glu Arg Ala Asn Val Phe Lys Met Asn Gly Lys
340 345 350
Trp Tyr Leu Phe Thr Asp Ser Arg Gly Ser Lys Met Thr Ile Asp Gly
355 360 365
Ile Thr Ser Asn Asp Ile Tyr Met Leu Gly Tyr Val Ser Asn Ser Leu
370 375 380
Thr Gly Pro Tyr Lys Pro Leu Asn Lys Thr Gly Leu Val Leu Lys Met
385 390 395 400
Asp Leu Asp Pro Asn Asp Val Thr Phe Thr Tyr Ser His Phe Ala Val
405 410 415
Pro Gln Ala Lys Gly Asn Asn Val Val Ile Thr Ser Tyr Met Thr Asn
420 425 430
Arg Gly Phe Tyr Ala Asp Lys Gln Ser Thr Phe Ala Pro Ser Phe Leu
435 440 445
Leu Asn Ile Lys Gly Lys Lys Thr Ser Val Val Lys Asp Ser Ile Leu
450 455 460
Glu Gln Gly Gln Leu Thr Val Asn Lys
465 470
<210>21
<211>2820
<212>DNA
<213>谷氨酸棒杆菌
<220>
<221>CDS
<222>(898)..(1851)
<223>
<400>21
tgcagaatta tgcaagatgc gccgcaacaa aacgcgatcg gccaaggtca aagtggtcaa 60
tgtaatgacc gaaaccgctg cgatgaaact tatccacggc ggtaaaaacc tctcaattag 120
gagcttgacc tcattaatac tgtgctgggt taattcgccg gtgatcagca gcgcgccgta 180
ccccaaggtg ccgacactaa tgcccgcgat cgtctccttc ggtccaaaat tcttctgccc 240
aatcagccgg atttgggtgc gatgcctgat caatcccaca accgtggtgg tcaacgtgat 300
ggcaccagtt gcgatgtggg tggcgttgta aattttcctg gatacccgcc ggttggttct 360
ggggaggatc gagtggattc ccgtcgctgc cgcatgcccc accgcttgta aaacagccag 420
gttagcagcc gtaacccacc acggtttcgg caacaatgac ggcgagagag cccaccacat 480
tgcgatttcc gctccgataa agccagcgcc catatttgca gggaggattc gcctgcggtt 540
tggcgacatt cggatccccg gaactagctc tgcaatgacc tgcgcgccga gggaggcgag 600
gtgggtggca ggttttagtg cgggtttaag cgttgccagg cgagtggtga gcagagacgc 660
tagtctgggg agcgaaacca tattgagtca tcttggcaga gcatgcacaa ttctgcaggg 720
cataggttgg ttttgctcga tttacaatgt gattttttca acaaaaataa cacttggtct 780
gaccacattt tcggacataa tcgggcataa ttaaaggtgt aacaaaggaa tccgggcaca 840
agctcttgct gattttctga gctgctttgt gggttgtccg gttagggaaa tcaggaa 897
gtg gga tcg aaa atg aaa gaa acc gtc ggt aac aag att gtc ctc att 945
Val Gly Ser Lys Met Lys Glu Thr Val Gly Asn Lys Ile Val Leu Ile
1 5 10 15
ggc gca gga gat gtt gga gtt gca tac gca tac gca ctg atc aac cag 993
Gly Ala Gly Asp Val Gly Val Ala Tyr Ala Tyr Ala Leu Ile Asn Gln
20 25 30
ggc atg gca gat cac ctt gcg atc atc gac atc gat gaa aag aaa ctc 1041
Gly Met Ala Asp His Leu Ala Ile Ile Asp Ile Asp Glu Lys Lys Leu
35 40 45
gaa ggc aac gtc atg gac tta aac cat ggt gtt gtg tgg gcc gat tcc 1089
Glu Gly Asn Val Met Asp Leu Asn His Gly Val Val Trp Ala Asp Ser
50 55 60
cgc acc cgc gtc acc aag ggc acc tac gct gac tgc gaa gac gca gcc 1137
Arg Thr Arg Val Thr Lys Gly Thr Tyr Ala Asp Cys Glu Asp Ala Ala
65 70 75 80
atg gtt gtc att tgt gcc ggc gca gcc caa aag cca ggc gag acc cgc 1185
Met Val Val Ile Cys Ala Gly Ala Ala Gln Lys Pro Gly Glu Thr Arg
85 90 95
ctc cag ctg gtg gac aaa aac gtc aag att atg aaa tcc atc gtc ggc 1233
Leu Gln Leu Val Asp Lys Asn Val Lys Ile Met Lys Ser Ile Val Gly
100 105 110
gat gtc atg gac agc gga ttc gac ggc atc ttc ctc gtg gcg tcc aac 1281
Asp Val Met Asp Ser Gly Phe Asp Gly Ile Phe Leu Val Ala Ser Asn
115 120 125
cca gtg gat atc ctg acc tac gca gtg tgg aaa ttc tcc ggc ttg gaa 1329
Pro Val Asp Ile Leu Thr Tyr Ala Val Trp Lys Phe Ser Gly Leu Glu
130 135 140
tgg aac cgc gtg atc ggc tcc gga act gtc ctg gac tcc gct cga ttc 1377
Trp Asn Arg Val Ile Gly Ser Gly Thr Val Leu Asp Ser Ala Arg Phe
145 150 155 160
cgc tac atg ctg ggc gaa ctc tac gaa gtg gca cca agc tcc gtc cac 1425
Arg Tyr Met Leu Gly Glu Leu Tyr Glu Val Ala Pro Ser Ser Val His
165 170 175
gcc tac atc atc ggc gaa cac ggc gac act gaa ctt cca gtc ctg tcc 1473
Ala Tyr Ile Ile Gly Glu His Gly Asp Thr Glu Leu Pro Val Leu Ser
180 185 190
tcc gcg acc atc gca ggc gta tcg ctt agc cga atg ctg gac aaa gac 1521
Ser Ala Thr Ile Ala Gly Val Ser Leu Ser Arg Met Leu Asp Lys Asp
195 200 205
cca gag ctt gag ggc cgt cta gag aaa att ttc gaa gac acc cgc gac 1569
Pro Glu Leu Glu Gly Arg Leu Glu Lys Ile Phe Glu Asp Thr Arg Asp
210 215 220
gct gcc tat cac att atc gac gcc aag ggc tcc act tcc tac ggc atc 1617
Ala Ala Tyr His Ile Ile Asp Ala Lys Gly Ser Thr Ser Tyr Gly Ile
225 230 235 240
ggc atg ggt ctt gct cgc atc acc cgc gca atc ctg cag aac caa gac 1665
Gly Met Gly Leu Ala Arg Ile Thr Arg Ala Ile Leu Gln Asn Gln Asp
245 250 255
gtt gca gtc cca gtc tct gca ctg ctc cac ggt gaa tac ggt gag gaa 1713
Val Ala Val Pro Val Ser Ala Leu Leu His Gly Glu Tyr Gly Glu Glu
260 265 270
gac atc tac atc ggc acc cca gct gtg gtg aac cgc cga ggc atc cgc 1761
Asp Ile Tyr Ile Gly Thr Pro Ala Val Val Asn Arg Arg Gly Ile Arg
275 280 285
cgc gtt gtc gaa cta gaa atc acc gac cac gag atg gaa cgc ttc aag 1809
Arg Val Val Glu Leu Glu Ile Thr Asp His Glu Met Glu Arg Phe Lys
290 295 300
cat tcc gca aat acc ctg cgc gaa att cag aag cag ttc ttc taa 1854
His Ser Ala Asn Thr Leu Arg Glu Ile Gln Lys Gln Phe Phe
305 310 315
atctttggcg cctagttggc gacgcaagtg tttcattgga acacttgcgc tgccaacttt 1914
ttggtttacg ggcacaatga aactgttgga tggaatttag agtgtttgta gcttaaggag 1974
ctcaaatgaa tgagtttgac caggacattc tccaggagat caagactgaa ctcgacgagt 2034
taattctaga acttgatgag gtgacacaaa ctcacagcga ggccatcggg caggtctccc 2094
caacccatta cgttggtgcc cgcaacctca tgcattacgc gcatcttcgc accaaagacc 2154
tccgtggcct gcagcaacgc ctctcctctg tgggagctac ccgcttgact accaccgaac 2214
cagcagtgca ggcccgcctc aaggccgccc gcaatgttat cggagctttc gcaggtgaag 2274
gcccacttta tccaccctca gatgtcgtcg atgccttcga agatgccgat gagattctcg 2334
acgagcacgc cgaaattctc cttggcgaac ccctaccgga tactccatcc tgcatcatgg 2394
tcaccctgcc caccgaagcc gccaccgaca ttgaacttgt ccgtggcttc gccaaaagcg 2454
gcatgaatct agctcgcatc aactgtgcac acgacgatga aaccgtctgg aagcagatga 2514
tcgacaacgt ccacaccgtt gcagaagaag ttggccggga aatccgcgtc agcatggacc 2574
tcgccggacc aaaagtacgc accggcgaaa tcgccccagg cgcagaagta ggtcgcgcac 2634
gagtaacccg cgacgaaacc ggaaaagtac tgacgcccgc aaaactgtgg atcaccgccc 2694
acggctccga accagtccca gcccccgaaa gcctgcccgg tcgccccgct ctgccgattg 2754
aagtcacccc agaatggttc gacaaactag aaatcggcag cgtcatcaac gtcccagaca 2814
cccgcg 2820
<210>22
<211>318
<212>PRT
<213>谷氨酸棒杆菌
<400>22
Met Gly Ser Lys Met Lys Glu Thr Val Gly Asn Lys Ile Val Leu Ile
1 5 10 15
Gly Ala Gly Asp Val Gly Val Ala Tyr Ala Tyr Ala Leu Ile Asn Gln
20 25 30
Gly Met Ala Asp His Leu Ala Ile Ile Asp Ile Asp Glu Lys Lys Leu
35 40 45
Glu Gly Asn Val Met Asp Leu Asn His Gly Val Val Trp Ala Asp Ser
50 55 60
Arg Thr Arg Val Thr Lys Gly Thr Tyr Ala Asp Cys Glu Asp Ala Ala
65 70 75 80
Met Val Val Ile Cys Ala Gly Ala Ala Gln Lys Pro Gly Glu Thr Arg
85 90 95
Leu Gln Leu Val Asp Lys Asn Val Lys Ile Met Lys Ser Ile Val Gly
100 105 110
Asp Val Met Asp Ser Gly Phe Asp Gly Ile Phe Leu Val Ala Ser Asn
115 120 125
Pro Val Asp Ile Leu Thr Tyr Ala Val Trp Lys Phe Ser Gly Leu Glu
130 135 140
Trp Asn Arg Val Ile Gly Ser Gly Thr Val Leu Asp Ser Ala Arg Phe
145 150 155 160
Arg Tyr Met Leu Gly Glu Leu Tyr Glu Val Ala Pro Ser Ser Val His
165 170 175
Ala Tyr Ile Ile Gly Glu His Gly Asp Thr Glu Leu Pro Val Leu Ser
180 185 190
Ser Ala Thr Ile Ala Gly Val Ser Leu Ser Arg Met Leu Asp Lys Asp
195 200 205
Pro Glu Leu Glu Gly Arg Leu Glu Lys Ile Phe Glu Asp Thr Arg Asp
210 215 220
Ala Ala Tyr His Ile Ile Asp Ala Lys Gly Ser Thr Ser Tyr Gly Ile
225 230 235 240
Gly Met Gly Leu Ala Arg Ile Thr Arg Ala Ile Leu Gln Asn Gln Asp
245 250 255
Val Ala Val Pro Val Ser Ala Leu Leu His Gly Glu Tyr Gly Glu Glu
260 265 270
Asp Ile Tyr Ile Gly Thr Pro Ala Val Val Asn Arg Arg Gly Ile Arg
275 280 285
Arg Val Val Glu Leu Glu Ile Thr Asp His Glu Met Glu Arg Phe Lys
290 295 300
His Ser Ala Asn Thr Leu Arg Glu Ile Gln Lys Gln Phe Phe
305 310 315
<210>23
<211>3600
<212>DNA
<213>谷氨酸棒杆菌
<220>
<221>CDS
<222>(1037).(2542)
<223>
<400>23
gaagcgctac ggacttcgcg ccggcgtcga cagcaatgcg tccagcatcc aagtgagtat 60
ggtgctcatc atcaatacca acgcggaact tcaccgtcac cggaatgtcc gtgccttccg 120
tagccttcac agccgcggaa acgatgtttt caaacaaacg gcgcttgtaa ggaatcgcag 180
aaccgccacc ccggcgcgtg acctttggaa ccgggcagcc aaagttcata tcaatatgat 240
ccgccaagtt ttcatcaacg atcatcttcg ccgcttcgta ggtgtacttc gggtcaaccg 300
tgtacagctg caagcttcgg ggattttcat ccggcgcgaa ggtggtcatg tgcatggttt 360
tctcattgcg ctcaacaaga gcacgcgcag tcaccatttc acagacgtac agccccgaga 420
ttgttcccgt gcgttgcatt tcctgttcac ggcacagcgt gcggaaagca acgttggtta 480
caccagccat gggggctaga accacagggg aggcaaggtc aaaggggccg atttttaaag 540
tcacctaact attgtccccc gtgaatcagg ttgggcaaaa tatttgaagc aaattgtgag 600
cagggcgcaa ctaggaaagt ggtgtgcttt cactttttgg gggctggggt tgggttaagc 660
ttcgcgggct ctagggttgg tctgagcttt attcctgggc tttgggaggc ttgcaaacag 720
ggggcatgca aatttggggg taatgctggg ccttgaaatc ccactatcac agatagtatt 780
cgggcatttc ctgtcacgat ggtttatcct tgggacacaa catcaaagtg gggtacatca 840
tatgcttccg gttgaagtga cctatctgaa aagattggtc gaaccttgaa gcaatggtgt 900
gaactgcgtt aacgaatttt gtcggacgtt aaaatggtcg cattctgctt gctgaagtgg 960
cacacctatg tgttctgctt gggtatagca gtgcgggaaa aatttgaaaa agtccgatta 1020
cctgaggagg tattca atg tct gat cgc att gct tca gaa aag ctg cgc tcc 1072
Met Ser Asp Arg Ile Ala Ser Glu Lys Leu Arg Ser
1 5 10
aag ctc atg tcc gcc gac gag gcg gca cag ttt gtt aac cac ggt gac 1120
Lys Leu Met Ser Ala Asp Glu Ala Ala Gln Phe Val Asn His Gly Asp
15 20 25
aag gtt ggt ttc tcc ggc ttc acc ggc gct ggc tac cca aag gca ctg 1168
Lys Val Gly Phe Ser Gly Phe Thr Gly Ala Gly Tyr Pro Lys Ala Leu
30 35 40
cct acg gca atc gct aac cgg gct aaa gaa gca cac ggt gca ggc aac 1216
Pro Thr Ala Ile Ala Asn Arg Ala Lys Glu Ala His Gly Ala Gly Asn
45 50 55 60
gac tac gca atc gac ctg ttc act ggc gca tcg acc gcc cct gac tgc 1264
Asp Tyr Ala Ile Asp Leu Phe Thr Gly Ala Ser Thr Ala Pro Asp Cys
65 70 75
gat ggc gta ctt gca gaa gct gac gct atc cgc tgg cgc atg cca tac 1312
Asp Gly Val Leu Ala Glu Ala Asp Ala Ile Arg Trp Arg Met Pro Tyr
80 85 90
gca tct gat cca atc atg cgt aac aag atc aac tcc ggc tcc atg gga 1360
Ala Ser Asp Pro Ile Met Arg Asn Lys Ile Asn Ser Gly Ser Met Gly
95 100 105
tac tcc gat atc cac ctg tcc cac tcc ggc cag cag gtt gaa gag ggc 1408
Tyr Ser Asp Ile His Leu Ser His Ser Gly Gln Gln Val Glu Glu Gly
110 115 120
ttc ttc ggc cag ctc aac gta gct gtc att gaa atc acc cgc atc act 1456
Phe Phe Gly Gln Leu Asn Val Ala Val Ile Glu Ile Thr Arg Ile Thr
125 130 135 140
gaa gag ggc tac atc atc cct tct tcc tcc gtg ggt aac aac gtt gag 1504
Glu Glu Gly Tyr Ile Ile Pro Ser Ser Ser Val Gly Asn Asn Val Glu
145 150 155
tgg ctc aac gct gca gag aag gtc atc ctc gag gtt aac tct tgg cag 1552
Trp Leu Asn Ala Ala Glu Lys Val Ile Leu Glu Val Asn Ser Trp Gln
160 165 170
tct gaa gac ctc gaa ggt atg cac gac atc tgg tct gtt cct gcc ctg 1600
Ser Glu Asp Leu Glu Gly Met His Asp Ile Trp Ser Val Pro Ala Leu
175 180 185
cca aac cgc att gcc gtg cca atc aac aag cca ggc gac cgc atc ggt 1648
Pro Asn Arg Ile Ala Val Pro Ile Asn Lys Pro Gly Asp Arg Ile Gly
190 195 200
aag acc tac atc gag ttc gac acc gac aag gtt gtt gct gtt gtt gag 1696
Lys Thr Tyr Ile Glu Phe Asp Thr Asp Lys Val Val Ala Val Val Glu
205 210 215 220
acc aac acc gca gac cgc aac gca cca ttc aag cct gtc gac gac atc 1744
Thr Asn Thr Ala Asp Arg Asn Ala Pro Phe Lys Pro Val Asp Asp Ile
225 230 235
tct aag aag atc gct ggc aac ttc ctc gac ttc ctg gaa agc gaa gtt 1792
Ser Lys Lys Ile Ala Gly Asn Phe Leu Asp Phe Leu Glu Ser Glu Val
240 245 250
gct gca ggt cgc ctg tcc tac gac ggc tac atc atg cag tcc ggc gtg 1840
Ala Ala Gly Arg Leu Ser Tyr Asp Gly Tyr Ile Met Gln Ser Gly Val
255 260 265
ggc aac gtg cca aac gcg gtg atg gca ggc ctg ctg gaa tcc aag ttt 1888
Gly Asn Val Pro Asn Ala Val Met Ala Gly Leu Leu Glu Ser Lys Phe
270 275 280
gag aac atc cag gcc tac acc gaa gtt atc cag gac ggc atg gtg gac 1936
Glu Asn Ile Gln Ala Tyr Thr Glu Val Ile Gln Asp Gly Met Val Asp
285 290 295 300
ctc atc gac gcc ggc aag atg acc gtt gca tcc gca act tcc ttc tcc 1984
Leu Ile Asp Ala Gly Lys Met Thr Val Ala Ser Ala Thr Ser Phe Ser
305 310 315
ctg tct cct gag tac gca gag aag atg aac aac gag gct aag cgt tac 2032
Leu Ser Pro Glu Tyr Ala Glu Lys Met Asn Asn Glu Ala Lys Arg Tyr
320 325 330
cgc gag tcc att atc ctg cgc cca cag cag atc tct aac cac cca gag 2080
Arg Glu Ser Ile Ile Leu Arg Pro Gln Gln Ile Ser Asn His Pro Glu
335 340 345
gtc atc cgc cgc gtt ggc ctg atc gcc acc aac ggt ctc atc gag gct 2128
Val Ile Arg Arg Val Gly Leu Ile Ala Thr Asn Gly Leu Ile Glu Ala
350 355 360
gac att tac ggc aac gtc aac tcc acc aac gtt tct ggc tcc cgc gtc 2176
Asp Ile Tyr Gly Asn Val Asn Ser Thr Asn Val Ser Gly Ser Arg Val
365 370 375 380
atg aac ggc atc ggc ggc tcc ggc gac ttc acc cgt aac ggc tac atc 2224
Met Asn Gly Ile Gly Gly Ser Gly Asp Phe Thr Arg Asn Gly Tyr Ile
385 390 395
tcc agc ttc atc acc cct tca gag gca aag ggc ggc gca atc tct gcg 2272
Ser Ser Phe Ile Thr Pro Ser Glu Ala Lys Gly Gly Ala Ile Ser Ala
400 405 410
atc gtt cct ttc gca tcc cac atc gac cac acc gag cac gat gtc atg 2320
Ile Val Pro Phe Ala Ser His Ile Asp His Thr Glu His Asp Val Met
415 420 425
gtt gtt atc tct gag tac ggt tac gca gac ctt cgt ggt ctg gct cca 2368
Val Val Ile Ser Glu Tyr Gly Tyr Ala Asp Leu Arg Gly Leu Ala Pro
430 435 440
cgt gag cgc gtt gcc aag atg atc ggc ctg gct cac cct gat tac cgc 2416
Arg Glu Arg Val Ala Lys Met Ile Gly Leu Ala His Pro Asp Tyr Arg
445 450 455 460
cca ctg ctc gag gag tac tac gct cgc gca acc tcc ggt gac aac aag 2464
Pro Leu Leu Glu Glu Tyr Tyr Ala Arg Ala Thr Ser Gly Asp Asn Lys
465 470 475
tac atg cag acc cct cat gat ctt gca acc gcg ttt gat ttc cac atc 2512
Tyr Met Gln Thr Pro His Asp Leu Ala Thr Ala Phe Asp Phe His Ile
480 485 490
aac ctg gct aag aac ggc tcc atg aag gca taa gttttttctt ggtttagaaa 2565
Asn Leu Ala Lys Asn Gly Ser Met Lys Ala
495 500
ccgccgcctc gacaacattt cgaggcggcg gtttctttta ttacctgggt tttgagcgtt 2625
aaattagacc aggtcaggct agtgtttggt agctaattga gggcgatttt aataaggccg 2685
gtgccatgta ctaatatggt ctgagttggg cctatagctc agttggtaga gctacggact 2745
tttaatccgc aggtcttggg ttcgagtccc aatgggccca catcttaagt acccctgttt 2805
tggagaatgc tccgagccag gggtactttt cttttcctca cacacagtag ctgctgagaa 2865
aaatgaagac cttttgttag gttgggagta tgaccaaccc atacgaggcc ttcataccgc 2925
tcaagcatcg tacggggatt gaacccgagc acaccttttg ggaatgggaa aacaaaaggg 2985
ttcacattgc aaggagacgt cgagaagcgc ccgtccgcgt tatcgtggtg catgggctag 3045
gcacccatag tggcgccctc tggcccctcg tcgcggccat tgagggcgcg gacctcgccg 3105
cgatcgacct gcctaaaact ccgctttacg acgattggct gcgcctttta gaatctttca 3165
tctcttccga agacgacggt cggccactca tcctgatcgg tgcaggcacc ggaggcttgc 3225
tttgcgcaga agctgcacac cgcacaggac tggtcgcaca cgtcattgcc acctgcctgc 3285
tcaacccctc cgaccagccg acgcgccggg cactgttcag gttttcaccg ctgactcggt 3345
tgatccaagg ccgcttgcgc aaccgcgaaa ttcccgtgac cagagtgttg aacttcagca 3405
aaatcagccg cagcccagcc ctgagcaaat tgtgcgcggc cgatgaattt agcggagcat 3465
ccaaaataac ctggggtttc ctcgcgtcat atgtgcaaca caaggccaaa ctgggtgcag 3525
ttcccgtcac tctgatgcac cctgaccacg accttctgac tcccgttgag ctcagtctgc 3585
gtacgctttc gcgcc 3600
<210>24
<211>502
<212>PRT
<213>谷氨酸棒杆菌
<400>24
Met Ser Asp Arg Ile Ala Ser Glu Lys Leu Arg Ser Lys Leu Met Ser
1 5 10 15
Ala Asp Glu Ala Ala Gln Phe Val Asn His Gly Asp Lys Val Gly Phe
20 25 30
Ser Gly Phe Thr Gly Ala Gly Tyr Pro Lys Ala Leu Pro Thr Ala Ile
35 40 45
Ala Asn Arg Ala Lys Glu Ala His Gly Ala Gly Asn Asp Tyr Ala Ile
50 55 60
Asp Leu Phe Thr Gly Ala Ser Thr Ala Pro Asp Cys Asp Gly Val Leu
65 70 75 80
Ala Glu Ala Asp Ala Ile Arg Trp Arg Met Pro Tyr Ala Ser Asp Pro
85 90 95
Ile Met Arg Asn Lys Ile Asn Ser Gly Ser Met Gly Tyr Ser Asp Ile
100 105 110
His Leu Ser His Ser Gly Gln Gln Val Glu Glu Gly Phe Phe Gly Gln
115 120 125
Leu Asn Val Ala Val Ile Glu Ile Thr Arg Ile Thr Glu Glu Gly Tyr
130 135 140
Ile Ile Pro Ser Ser Ser Val Gly Asn Asn Val Glu Trp Leu Asn Ala
145 150 155 160
Ala Glu Lys Val Ile Leu Glu Val Asn Ser Trp Gln Ser Glu Asp Leu
165 170 175
Glu Gly Met His Asp Ile Trp Ser Val Pro Ala Leu Pro Asn Arg Ile
180 185 190
Ala Val Pro Ile Asn Lys Pro Gly Asp Arg Ile Gly Lys Thr Tyr Ile
195 200 205
Glu Phe Asp Thr Asp Lys Val Val Ala Val Val Glu Thr Asn Thr Ala
210 215 220
Asp Arg Asn Ala Pro Phe Lys Pro Val Asp Asp Ile Ser Lys Lys Ile
225 230 235 240
Ala Gly Asn Phe Leu Asp Phe Leu Glu Ser Glu Val Ala Ala Gly Arg
245 250 255
Leu Ser Tyr Asp Gly Tyr Ile Met Gln Ser Gly Val Gly Asn Val Pro
260 265 270
Asn Ala Val Met Ala Gly Leu Leu Glu Ser Lys Phe Glu Asn Ile Gln
275 280 285
Ala Tyr Thr Glu Val Ile Gln Asp Gly Met Val Asp Leu Ile Asp Ala
290 295 300
Gly Lys Met Thr Val Ala Ser Ala Thr Ser Phe Ser Leu Ser Pro Glu
305 310 315 320
Tyr Ala Glu Lys Met Asn Asn Glu Ala Lys Arg Tyr Arg Glu Ser Ile
325 330 335
Ile Leu Arg Pro Gln Gln Ile Ser Asn His Pro Glu Val Ile Arg Arg
340 345 350
Val Gly Leu Ile Ala Thr Asn Gly Leu Ile Glu Ala Asp Ile Tyr Gly
355 360 365
Asn Val Asn Ser Thr Asn Val Ser Gly Ser Arg Val Met Asn Gly Ile
370 375 380
Gly Gly Ser Gly Asp Phe Thr Arg Asn Gly Tyr Ile Ser Ser Phe Ile
385 390 395 400
Thr Pro Ser Glu Ala Lys Gly Gly Ala Ile Ser Ala Ile Val Pro Phe
405 410 415
Ala Ser His Ile Asp His Thr Glu His Asp Val Met Val Val Ile Ser
420 425 430
Glu Tyr Gly Tyr Ala Asp Leu Arg Gly Leu Ala Pro Arg Glu Arg Val
435 440 445
Ala Lys Met Ile Gly Leu Ala His Pro Asp Tyr Arg Pro Leu Leu Glu
450 455 460
Glu Tyr Tyr Ala Arg Ala Thr Ser Gly Asp Asn Lys Tyr Met Gln Thr
465 470 475 480
Pro His Asp Leu Ala Thr Ala Phe Asp Phe His Ile Asn Leu Ala Lys
485 490 495
Asn Gly Ser Met Lys Ala
500
<210>25
<211>2037
<212>DNA
<213>谷氨酸棒杆菌
<220>
<221>CDS
<222>(573)..(1913)
<223>
<400>25
gctagcctcg ggagctctag gagattgtga aaaacgggtc aaatttctcc gatgcagcgc 60
ctataaaagt cgtaccaatt ccatttgagg gtgctcaagt gtggccaggt tatataacca 120
gtcagtcaac tggtctcatt cgctggtcgg atgaatttaa ttaaagaaga gacttcatgc 180
agttaccgcg cgttttggcg atacacaatt gataaaccta aagaaatttt caaacaattt 240
taattctttg tggtcatatc tgtgcgacac tgccataatt gaacgtgagc atttaccagc 300
ctaaatgccc gcagtgagtt aagtctcaaa gcaagaagtt gctctttagg gcatccgtag 360
tttaaaacta ttaaccgtta ggtatgacaa gccggttgat gtgaacgcag tttttaaaag 420
tttcaggatc agatttttca caggcatttt gctccagcaa acgcctagga tgtacatggt 480
gccctcaatg ggaaccacca acatcactaa atggcccaga tacacacttt aaaatcgtgc 540
gcgcatgcag ccgagatggg aacgaggaaa tc atg aca gtt gat gag cag gtc 593
Met Thr Val Asp Glu Gln Val
1 5
tct aac tat tac gac atg ctt ctg aag cgc aat gct ggc gag cct gaa 641
Ser Asn Tyr Tyr Asp Met Leu Leu Lys Arg Asn Ala Gly Glu Pro Glu
10 15 20
ttt cac cag gca gtg gca gag gtt ttg gaa tct ttg aag atc gtc ctg 689
Phe His Gln Ala Val Ala Glu Val Leu Glu Ser Leu Lys Ile Val Leu
25 30 35
gaa aag gac cct cat tac gct gat tac ggt ctc atc cag cgc ctg tgc 737
Glu Lys Asp Pro His Tyr Ala Asp Tyr Gly Leu Ile Gln Arg Leu Cys
40 45 50 55
gag cct gag cgt cag ctc atc ttc cgt gtg cct tgg gtt gat gac cag 785
Glu Pro Glu Arg Gln Leu Ile Phe Arg Val Pro Trp Val Asp Asp Gln
60 65 70
ggc cag gtc cac gtc aac cgt ggt ttc cgc gtg cag ttc aac tct gca 833
Gly Gln Val His Val Asn Arg Gly Phe Arg Val Gln Phe Asn Ser Ala
75 80 85
ctt gga cca tac aag ggc ggc ctg cgc ttc cac cca tct gta aac ctg 881
Leu Gly Pro Tyr Lys Gly Gly Leu Arg Phe His Pro Ser Val Asn Leu
90 95 100
ggc att gtg aag ttc ctg ggc ttt gag cag atc ttt aaa aac tcc cta 929
Gly Ile Val Lys Phe Leu Gly Phe Glu Gln Ile Phe Lys Asn Ser Leu
105 110 115
acc ggc ctg cca atc ggt ggt ggc aag ggt gga tcc gac ttc gac cct 977
Thr Gly Leu Pro Ile Gly Gly Gly Lys Gly Gly Ser Asp Phe Asp Pro
120 125 130 135
aag ggc aag tcc gat ctg gaa atc atg cgt ttc tgc cag tcc ttc atg 1025
Lys Gly Lys Ser Asp Leu Glu Ile Met Arg Phe Cys Gln Ser Phe Met
140 145 150
acc gag ctg cac cgc cac atc ggt gag tac cgc gac gtt cct gca ggt 1073
Thr Glu Leu His Arg His Ile Gly Glu Tyr Arg Asp Val Pro Ala Gly
155 160 165
gac atc gga gtt ggt ggc cgc gag atc ggt tac ctg ttt ggc cac tac 1121
Asp Ile Gly Val Gly Gly Arg Glu Ile Gly Tyr Leu Phe Gly His Tyr
170 175 180
cgt cgc atg gcc aac cag cac gag tcc ggc gtt ttg acc ggt aag ggc 1169
Arg Arg Met Ala Asn Gln His Glu Ser Gly Val Leu Thr Gly Lys Gly
185 190 195
ctg acc tgg ggt gga tcc ctg gtc cgc acc gag gca act ggc tac ggc 1217
Leu Thr Trp Gly Gly Ser Leu Val Arg Thr Glu Ala Thr Gly Tyr Gly
200 205 210 215
tgc gtt tac ttc gtg agt gaa atg atc aag gct aag ggc gag agc atc 1265
Cys Val Tyr Phe Val Ser Glu Met Ile Lys Ala Lys Gly Glu Ser Ile
220 225 230
agc ggc cag aag atc atc gtt tcc ggt tcc ggc aac gta gca acc tac 1313
Ser Gly Gln Lys Ile Ile Val Ser Gly Ser Gly Asn Val Ala Thr Tyr
235 240 245
gcg att gaa aag gct cag gaa ctc ggc gca acc gtt att ggt ttc tcc 1361
Ala Ile Glu Lys Ala Gln Glu Leu Gly Ala Thr Val Ile Gly Phe Ser
250 255 260
gat tcc agc ggt tgg gtt cat acc cct aat ggc gtt gac gtg gct aag 1409
Asp Ser Ser Gly Trp Val His Thr Pro Asn Gly Val Asp Val Ala Lys
265 270 275
ctc cgc gaa atc aag gaa gtt cgc cgc gca cgc gta tcc gtg tac gcc 1457
Leu Arg Glu Ile Lys Glu Val Arg Arg Ala Arg Val Ser Val Tyr Ala
280 285 290 295
gac gaa gtt gaa ggc gca acc tac cac acc gac ggg tcc atc tgg gat 1505
Asp Glu Val Glu Gly Ala Thr Tyr His Thr Asp Gly Ser Ile Trp Asp
300 305 310
ctc aag tgc gat atc gct ctt cct tgt gca act cag aac gag ctc aac 1553
Leu Lys Cys Asp Ile Ala Leu Pro Cys Ala Thr Gln Asn Glu Leu Asn
315 320 325
ggt gag aac gct aag act ctt gca gac aac ggc tgc cgt ttc gtt gct 1601
Gly Glu Asn Ala Lys Thr Leu Ala Asp Asn Gly Cys Arg Phe Val Ala
330 335 340
gaa ggc gcg aac atg cct tcc acc cca gag gct gtt gag gtc ttc cgt 1649
Glu Gly Ala Asn Met Pro Ser Thr Pro Glu Ala Val Glu Val Phe Arg
345 350 355
gag cgc gac atc cgc ttc gga cca ggc aag gca gct aac gct ggt ggc 1697
Glu Arg Asp Ile Arg Phe Gly Pro Gly Lys Ala Ala Asn Ala Gly Gly
360 365 370 375
gtt gca acc tcc gct ctg gag atg cag cag aac gct tcg cgc gat tcc 1745
Val Ala Thr Ser Ala Leu Glu Met Gln Gln Asn Ala Ser Arg Asp Ser
380 385 390
tgg agc ttc gag tac acc gac gag cgc ctc cag gtg atc atg aag aac 1793
Trp Ser Phe Glu Tyr Thr Asp Glu Arg Leu Gln Val Ile Met Lys Asn
395 400 405
atc ttc aag acc tgt gca gag acc gca gca gag tat gga cac gag aac 1841
Ile Phe Lys Thr Cys Ala Glu Thr Ala Ala Glu Tyr Gly His Glu Asn
410 415 420
gat tac gtt gtc ggc gct aac att gct ggc ttc aag aag gta gct gac 1889
Asp Tyr Val Val Gly Ala Asn Ile Ala Gly Phe Lys Lys Val Ala Asp
425 430 435
gcg atg ctg gca cag ggc gtc atc taa gacccctgca ctttacttaa 1936
Ala Met Leu Ala Gln Gly Val Ile
440 445
acccctgatc cgcgttaagg atcagggatt tttgatttct tccaggtcaa ttatccgatc 1996
cacatgggtt aatgcagctg tgcggtgcgc aatgatgatc a 2037
<210>26
<211>447
<212>PRT
<213>谷氨酸棒杆菌
<400>26
Met Thr Val Asp Glu Gln Val Ser Asn Tyr Tyr Asp Met Leu Leu Lys
1 5 10 15
Arg Asn Ala Gly Glu Pro Glu Phe His Gln Ala Val Ala Glu Val Leu
20 25 30
Glu Ser Leu Lys Ile Val Leu Glu Lys Asp Pro His Tyr Ala Asp Tyr
35 40 45
Gly Leu Ile Gln Arg Leu Cys Glu Pro Glu Arg Gln Leu Ile Phe Arg
50 55 60
Val Pro Trp Val Asp Asp Gln Gly Gln Val His Val Asn Arg Gly Phe
65 70 75 80
Arg Val Gln Phe Asn Ser Ala Leu Gly Pro Tyr Lys Gly Gly Leu Arg
85 90 95
Phe His Pro Ser Val Asn Leu Gly Ile Val Lys Phe Leu Gly Phe Glu
100 105 110
Gln Ile Phe Lys Asn Ser Leu Thr Gly Leu Pro Ile Gly Gly Gly Lys
115 120 125
Gly Gly Ser Asp Phe Asp Pro Lys Gly Lys Ser Asp Leu Glu Ile Met
130 135 140
Arg Phe Cys Gln Ser Phe Met Thr Glu Leu His Arg His Ile Gly Glu
145 150 155 160
Tyr Arg Asp Val Pro Ala Gly Asp Ile Gly Val Gly Gly Arg Glu Ile
165 170 175
Gly Tyr Leu Phe Gly His Tyr Arg Arg Met Ala Asn Gln His Glu Ser
180 185 190
Gly Val Leu Thr Gly Lys Gly Leu Thr Trp Gly Gly Ser Leu Val Arg
195 200 205
Thr Glu Ala Thr Gly Tyr Gly Cys Val Tyr Phe Val Ser Glu Met Ile
210 215 220
Lys Ala Lys Gly Glu Ser Ile Ser Gly Gln Lys Ile Ile Val Ser Gly
225 230 235 240
Ser Gly Asn Val Ala Thr Tyr Ala Ile Glu Lys Ala Gln Glu Leu Gly
245 250 255
Ala Thr Val Ile Gly Phe Ser Asp Ser Ser Gly Trp Val His Thr Pro
260 265 270
Asn Gly Val Asp Val Ala Lys Leu Arg Glu Ile Lys Glu Val Arg Arg
275 280 285
Ala Arg Val Ser Val Tyr Ala Asp Glu Val Glu Gly Ala Thr Tyr His
290 295 300
Thr Asp Gly Ser Ile Trp Asp Leu Lys Cys Asp Ile Ala Leu Pro Cys
305 310 315 320
Ala Thr Gln Asn Glu Leu Asn Gly Glu Asn Ala Lys Thr Leu Ala Asp
325 330 335
Asn Gly Cys Arg Phe Val Ala Glu Gly Ala Asn Met Pro Ser Thr Pro
340 345 350
Glu Ala Val Glu Val Phe Arg Glu Arg Asp Ile Arg Phe Gly Pro Gly
355 360 365
Lys Ala Ala Asn Ala Gly Gly Val Ala Thr Ser Ala Leu Glu Met Gln
370 375 380
Gln Asn Ala Ser Arg Asp Ser Trp Ser Phe Glu Tyr Thr Asp Glu Arg
385 390 395 400
Leu Gln Val Ile Met Lys Asn Ile Phe Lys Thr Cys Ala Glu Thr Ala
405 410 415
Ala Glu Tyr Gly His Glu Asn Asp Tyr Val Val Gly Ala Asn Ile Ala
420 425 430
Gly Phe Lys Lys Val Ala Asp Ala Met Leu Ala Gln Gly Val Ile
435 440 445
Claims (9)
1.具有产生L-氨基酸的能力的属于棒杆菌属或短杆菌属的细菌,其中所述细菌被修饰使得乙酰辅酶A水解酶活性减少,并且其中所述L-氨基酸是通过使用丙酮酸作为中间物的生物合成途径产生的一种或多种L-氨基酸。
2.根据权利要求1的细菌,其中通过将突变引入染色体乙酰辅酶A水解酶基因的编码区或表达调控区来减少所述乙酰辅酶A水解酶活性。
3.根据权利要求1的细菌,其中通过破坏染色体乙酰辅酶A水解酶基因来减少所述乙酰辅酶A水解酶活性。
4.根据权利要求1至3中任一项的细菌,其中所述乙酰辅酶A水解酶选自下组:
(A)包含SEQ ID NO:24所示氨基酸序列的蛋白质;和
(B)包含SEQ ID NO:24所示氨基酸序列的蛋白质,其中在所述蛋白质中取代、缺失、插入、或添加了一个或几个氨基酸,并且其中所述蛋白质具有乙酰辅酶A水解酶的活性。
5.根据权利要求1至3中任一项的细菌,其中所述乙酰辅酶A水解酶基因选自下组:
(a)包含SEQ ID NO:23的核苷酸1037至2542的基因;和
(b)DNA,其能够在严紧条件下与包含SEQ ID NO:23的核苷酸1037至2542的多核苷酸杂交,并编码具有乙酰辅酶A水解酶活性的蛋白,所述严紧条件包括在0.1x SSC,0.1%SDS在60℃洗涤。
6.根据权利要求1至3中任一项的细菌,其中所述细菌被进一步修饰以提高谷氨酸脱氢酶活性。
7.根据权利要求1至3中任一项的细菌,其中所述L-氨基酸是一种或多种选自下组的L-氨基酸:L-谷氨酸、L-精氨酸、L-谷氨酰胺、L-脯氨酸、L-丙氨酸和L-缬氨酸。
8.产生L-氨基酸的方法,其包括:
在培养基中培养根据权利要求1至7中任一项的细菌;和
从培养基中收集L-氨基酸,且其中所述L-氨基酸是一种或多种经由丙酮酸为中间物产生的L-氨基酸。
9.根据权利要求8的方法,其中所述L-氨基酸是一种或多种选自下组的氨基酸:L-谷氨酸、L-精氨酸、L-谷氨酰胺、L-脯氨酸、L-丙氨酸、L-缬氨酸和L-赖氨酸。
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KR102281371B1 (ko) * | 2021-04-07 | 2021-07-22 | 씨제이제일제당 (주) | 신규한 글리세르알데히드-3-인산탈수소효소 변이체 및 이를 이용한 l-발린 생산 방법 |
KR102281370B1 (ko) * | 2021-04-07 | 2021-07-22 | 씨제이제일제당 (주) | 신규한 2-이소프로필말레이트합성효소 변이체 및 이를 이용한 l-발린 생산 방법 |
KR102306010B1 (ko) * | 2021-04-07 | 2021-09-27 | 씨제이제일제당 (주) | 신규한 분지쇄아미노산 투과효소 변이체 및 이를 이용한 l-발린 생산 방법 |
WO2022231042A1 (ko) * | 2021-04-30 | 2022-11-03 | 씨제이제일제당 (주) | 신규한 변이체 및 이를 이용한 l-발린 생산 방법 |
KR102703218B1 (ko) * | 2022-01-11 | 2024-09-06 | 대상 주식회사 | L-히스티딘 생산능이 향상된 에스케리치아 속 변이주 및 이를 이용한 l-히스티딘의 생산 방법 |
EP4509613A1 (en) | 2022-04-15 | 2025-02-19 | Ajinomoto Co., Inc. | Method for producing cultured meat |
CN119301142A (zh) | 2022-06-02 | 2025-01-10 | 味之素株式会社 | 亲和性物质、化合物、抗体和它们的盐 |
CN116555138B (zh) * | 2023-02-06 | 2024-02-13 | 森瑞斯生物科技(深圳)有限公司 | 乙酰辅酶a合成酶acs突变体及其在2-吡咯烷酮生产中的应用 |
Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1092467A (zh) * | 1993-02-16 | 1994-09-21 | 味之素株式会社 | 通过发酵制备l-谷氨酸的方法 |
Family Cites Families (23)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
ES2036188T3 (es) * | 1986-06-11 | 1993-05-16 | Michigan Biotechnology Institute | Un procedimiento para la produccion de acido succinico por fermentacion anaerobia. |
JP2526836B2 (ja) | 1991-08-23 | 1996-08-21 | 味の素株式会社 | 酢酸資化性遺伝子 |
JP2844511B2 (ja) | 1993-09-02 | 1999-01-06 | 味の素株式会社 | 酢酸資化性遺伝子及びその利用 |
US5504004A (en) * | 1994-12-20 | 1996-04-02 | Michigan Biotechnology Institute | Process for making succinic acid, microorganisms for use in the process and methods of obtaining the microorganisms |
KR19990013007A (ko) | 1997-07-31 | 1999-02-25 | 박원훈 | 형질전환된 대장균 ss373(kctc 8818p)과 이를 이용한숙신산의 생산방법 |
JP4197754B2 (ja) | 1997-10-09 | 2008-12-17 | 三菱化学株式会社 | 乳酸又はコハク酸の製造方法 |
JP3967812B2 (ja) | 1998-01-16 | 2007-08-29 | 三菱化学株式会社 | ピルビン酸カルボキシラーゼ遺伝子組み換え菌体による有機酸の製造法 |
JP4074365B2 (ja) | 1998-01-28 | 2008-04-09 | 三菱化学株式会社 | ラクテートデヒドロゲナーゼ遺伝子及び該遺伝子破壊株 |
BR9917880B1 (pt) * | 1998-09-25 | 2014-02-18 | Processo para produzir um ácido l-glutâmico | |
DE19951975A1 (de) * | 1999-10-28 | 2001-05-03 | Degussa | Neue für das poxB-Gen codierende Nuleotidsequenzen |
JP4623825B2 (ja) | 1999-12-16 | 2011-02-02 | 協和発酵バイオ株式会社 | 新規ポリヌクレオチド |
WO2002029020A1 (en) | 2000-09-30 | 2002-04-11 | Degussa Ag | Process for the fermentative preparation of d-pantothenic acid using coryneform bacteria |
AU2002215910A1 (en) | 2000-11-04 | 2002-05-15 | Degussa Ag | Process for the fermentative preparation of l-amino acids using strains of the enterobacteriaceae family |
DE10112102A1 (de) | 2001-03-14 | 2002-09-19 | Degussa | Verfahren zur fermentativen Herstellung von D-Pantothensäure und/oder deren Salzen |
DE10154175A1 (de) * | 2001-11-05 | 2003-05-15 | Basf Ag | Gene die für Homeostase-und Adaptions-Proteine codieren |
AU2003205041A1 (en) * | 2002-07-12 | 2004-01-29 | Ajinomoto Co., Inc. | Method for producing target substance by fermentation |
BR0304860A (pt) * | 2002-11-11 | 2004-08-31 | Ajinomoto Kk | Método para produzir uma substância alvo pela utilização de uma-bactéria pertencente ao gênero escherichia |
DE60335774D1 (de) * | 2002-11-26 | 2011-03-03 | Ajinomoto Kk | Methode für die Produktion von L-Glutamin und L-Glutamin-produzierendes Bakterium |
EP1460128B1 (en) * | 2003-03-03 | 2016-11-30 | Ajinomoto Co., Inc. | Method for producing L-arginine or L-lysine by fermentation |
US7344874B2 (en) * | 2004-03-04 | 2008-03-18 | Ajinomoto Co., Inc. | L-glutamic acid-producing microorganism and a method for producing L-glutamic acid |
US7205132B2 (en) * | 2004-09-10 | 2007-04-17 | Ajinomoto Co., Inc. | L-glutamic acid-producing microorganism and a method for producing L-glutamic acid |
JP4595506B2 (ja) | 2004-11-25 | 2010-12-08 | 味の素株式会社 | L−アミノ酸生産菌及びl−アミノ酸の製造方法 |
US7794989B2 (en) * | 2004-12-28 | 2010-09-14 | Ajinomoto Co., Inc. | L-glutamic acid-producing microorganism and a method for producing L-glutamic acid |
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Patent Citations (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN1092467A (zh) * | 1993-02-16 | 1994-09-21 | 味之素株式会社 | 通过发酵制备l-谷氨酸的方法 |
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
KALINOWSKI JOERN.THE COMPLETE CORYNEBACTERIUM GLUTAMICUMATCC 13032 GENOME SEQUENCE AND ITS IMPACT ONTHE PRODUCTION OF L-ASPATATE-DERIVED AMINOACIDS AND VITAMINS.JOURNAL OF BIOTECHNOLOGY104 1-3.2003,104(1-3),5-25. |
KALINOWSKI JOERN.THE COMPLETE CORYNEBACTERIUM GLUTAMICUMATCC 13032 GENOME SEQUENCE AND ITS IMPACT ONTHE PRODUCTION OF L-ASPATATE-DERIVED AMINOACIDS AND VITAMINS.JOURNAL OF BIOTECHNOLOGY104 1-3.2003,104(1-3),5-25. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
US8628941B2 (en) | 2014-01-14 |
BRPI0518589A2 (pt) | 2008-11-25 |
AU2005308023A1 (en) | 2006-06-01 |
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US20070254345A1 (en) | 2007-11-01 |
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AU2005308023B2 (en) | 2010-06-24 |
CN101065484A (zh) | 2007-10-31 |
KR101186128B1 (ko) | 2012-09-27 |
ES2375650T3 (es) | 2012-03-05 |
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