SU534236A1 - The method of obtaining deoxyribomonucleotides - Google Patents
The method of obtaining deoxyribomonucleotidesInfo
- Publication number
- SU534236A1 SU534236A1 SU2130061A SU2130061A SU534236A1 SU 534236 A1 SU534236 A1 SU 534236A1 SU 2130061 A SU2130061 A SU 2130061A SU 2130061 A SU2130061 A SU 2130061A SU 534236 A1 SU534236 A1 SU 534236A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- solution
- acid
- deoxyribomonucleotides
- column
- carried out
- Prior art date
Links
Landscapes
- Saccharide Compounds (AREA)
Description
(54) СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ ДЕЗОКСИРИБОМОНОНУКЛЕОТИДОВ(54) METHOD FOR OBTAINING DISOXYRIBOMONONUCLEOTIDE
1one
Изобретение относитс к получению биологически активных веществ которые могут найти применение в медицине в качестве физиологически активных средств.The invention relates to the production of biologically active substances which can be used in medicine as physiologically active agents.
Известен способ получени мононукпеотидов ферментативным путем, например, при обработке РНК культуральной жнцкостью штаммы StoiplrvLococcus aurcus в услови х пониженной активности, содержащейс в среде фосфотазы.A known method for producing mononucleotides enzymatically, for example, by treating RNA with a cultured strain of the StoiplrvLococcus aurcus strains under conditions of reduced activity, contained in the phosphatase medium.
Известен также способ получени 5-мононуклеотидов , заключающийс в ток, что в качестве сырь испат:ьзуют полимерные нуклеиновые кислоты, которые расщепл ют на мононуклеотиды 5-фосфодиэстераза ак- тивными экстрактами растительного происхождени с последующим выделением целевого продукта известными приемами,There is also known a method for producing 5-mononucleotides, consisting in the current that polymeric nucleic acids are used as raw materials: they are split into 5-phosphodiesterase mononucleotides by active extracts of plant origin, followed by isolation of the target product by known methods,
Однако известные способы не обеспечивают высокого выхода целевого продук- та,However, the known methods do not provide a high yield of the target product,
С целью расширени сырьевой базы и повышени выхода целевого продукта в предлагаемом способе в качестве исходного сырь используют отходы производ2In order to expand the resource base and increase the yield of the target product in the proposed method, as a source of raw materials used waste production
ства протаминсульфата из молок рыб, экстракцию осуществл ют кислотой, а фер ментативный гидролиз провод т нуклеазами из печени промысловых рыб.Protamine sulfate from fish milt, extraction is carried out with acid, and enzymatic hydrolysis is carried out with nucleases from commercial fish liver.
Дл получени дезоксирибомононуклеотидов предлагаемым способом примен ют ферментные препараты, которые получают из печени морских промысловых рыб, таки как камбала, горбуша и . Получают их следующим образом.For the production of deoxyribomonucleotides by the proposed method, enzyme preparations are used, which are obtained from the liver of marine commercial fish, such as flounder, pink and. Get them as follows.
Печень камбачы гомогенизируют в дистиллированной воде, подкисленной до рН 3,0 в гомогенизаторе Уоринга, затем гомогенат экстрагируют в течение 3 суток, освобождают от.верхнего сло жира, после чего центрифугируют при 4°С и 250О об/мин в течение 40 мин, Затем надосадочную жидкость сливают и довод т добавлением сухого сернокислого аммони до 25% насыщени . Осадок отдел ют центрифугированием , а надосадочную жидкость довод т до 9О% насыщени . Осадок собирают фильтрованием и раствор ют в минимальном объеме дистиллированной воды. Полученный раствор снова довод т до н сыщени 40%-ным сернокислым аммонием затем осадок отдел ют центрифугированием и отбрасывают, Надосадочную жидкость довод т до 90% насыщени сернокислым аммонием, затем выпавший в осадок собирают фильтрованием под вакуумом. Полученный осадок раствор ют в минимальном количестве 0,01М фосфатного буфера, рН 8,0 и в таком .виде полученный препарат хран т в течение при без потери активности. Дальнейшую очистку ферментного препарата осуществл ют с помощью гельфильтрации на колонке с сефадексом 6-100, После очистки ферментного препарата про вод т фракционирование на колонке с ДЕА целлюлозой и собирают объединенные фракции фосфодиэстеразы, дезоксирибонуклеазы 1 и Ц. Дезоксирибомононуклеотиды из отходов производства протаминсульфата из молок рыб получают следующим образом. Пример Отходы производства про таминсульфата из молок рыб растирают до порошкообразного состо ни в фарфоровых ступках. Затем полученную порошкообразную массу (250 г) перемешивают в 5 л 7%-ной трихлоруксусной кислоты (ТХ полученный раствор разливают по 1 л -в колбы и встр хивают на универсальном аппарате дл встр хивани жидкости до 4 О мин, затем центрифугируют 20 мин при 500О об/мин, удал ют осадок, а над осадочную жидкость сливайт в стекл нную емкость. Таким образом извлекают кислоторастворимые продукты - алигонуклеотиды , мононуклеотиды, азотистые основани . Полученный кислотный экстракт нейтрализуют 4н, аммиаком до рН 7,0 добавл5пот 4 г МсгбОд. , затем внос т препарат нуклеаз {4ОО мг), выделенный вышеописанным способом. Реакционный раствор инкубируют при 37 °С в течение 24 час, рН инкубационной смеси периодически контролируют. После окончани процесса ферментатив ного гидролиза олигонуклеотидов и добавлени 1О л 96° гидролизного спирта, полученный раствор фильтруют, затем упаривают до сиропообразной жидкости, кото рую развод т дистиллированной водой и фильтруют через активированный угсиь дл удалени пигментов. Разделение смеси дезоксирибомононуклеотидов осуществл ют следующим образом . Берут 1ОО мл раствора смеси дезокси рибомононуклеотидов и нанос т на ионообменную колонку размером 50x12 см. содержащую смолу Дауэкс- в. хлоридной форме, рН наносимого раствора предварительно довод т аммиаком до 10, Сначала колонку промывают бидистиллированной водой дл удалени аммиака, раствором OjOlM хлорида аммони 1215 л, до тех. пор, пока рН эпюирующего раствора не понизитс до 7,0, В результате такой промывки удал ют .азотистые основани и нуклеозиды, после этого колонку промывают 0,01М сол ной кислотой (15-20 л), при этом удал ют все нуклеотрады . ПолинукЛеотиды и остатки негидролизовавшейс ДНК остаютс на колонке, Так осуществл ют первоначальное разделение продуктов гидролиза ДНК Затем фракцию дезоксирибомононуклеотидов , полученную при пропускании через колонку 0,О1М раствора сол ной кислоты и концентрированную повторной реабсорбцией на Дауэкс-1, подщелачивают BOftным раствором аммиака и нанос т на колонку меньших размеров (10x2 см), содержащую Дауэкс-1, дл выделени О-Рдельных дезоксирибонуклеотидов, осуществл их фракционирование следующим образом . Пропускают О,01М раствор хлористого аммони до тех пор, пока рН раствора, вытекающего из колонки,не снизитс до 6,0, затем пропускают через колонку 0,О01 М раствор сол ной кислоты,при этом выдел ют фракцию, содержащую дезоксицитидиловую кислоту (включа 5-метилдитидиловую кислоту), затем гфомыванием 0,002М сол ной кислотой выдел ют фракцию, содержащую дезоксиадениловую кислоту, раствором 0,ООЗМ сол ной кислоты выдел ют фракцию, содержащую тимидиловую кислоту, раствором 0,005М сол ной кислоты выдел ют фракцию, содержащую дезоксигуаниловую кислоту, Идентификацию фракпкк нуклеотидов, собранных с колонки, осуществл ют при помощи спектр офотометрии. Полученные растворы дезоксирибомононуклеотидов каждый в отдельности концентрируют путем реадсорбции на ионообменных колонках, промывают водой и апюируют разбавленными растворами сол ной кислоты . При этом пуриновые Дезоксирибомононуклеотиды быстро нейтрализуют водным раствором аммиака с целью избежани кислотного гидролиза, Дальнейи1ую концентрацию каждого полученного дезоксирибомононуклеотида в растворе осуществл ют упариванием в вакууме раствора с последующим осаждением смесью этанола с эфиром или раствором сопей бари с аммиаком. Предлагаемый способ позвол ет использовать в качестве исходного сырь отходы лроизводства протаминсульфата из молок рыб, которые до насто щего времени во всем мире не наход т никакого применени и выбрасываютс за ненадобностью. Получение дезоксирибомононуклеотидов из пред лагаемого сырь обходитс в два раза дещеьле по сравнению с их получением из полимерных нуклеиновых кислот. 36 Ф 3 о б р ормула изооретени Способ получени дезоксирибомононуклеотидоБ путем экстракции исходного сырь , ферментативного гидролиза полученного экстракта с последующим выделением целевого продукта известными приемами , отличающийс тем, что, с целью расщирени сырьевой базы и повыщени выхода целевого продукта, в качестве исходного сырь используют отходы производства протаминсульфата из молок рыб, экстракцию осуществл ют кислотой , а ферментативный гидролиз провод т нуклеазами из печени промысловых рыб.Kambachi liver is homogenized in distilled water, acidified to pH 3.0 in a Waring homogenizer, then the homogenate is extracted for 3 days, freed from the upper layer of fat, and then centrifuged at 4 ° C and 250 O rpm for 40 minutes, then the supernatant is drained and adjusted to 25% saturation with dry ammonium sulphate. The precipitate is separated by centrifugation, and the supernatant is adjusted to 9 O% saturation. The precipitate is collected by filtration and dissolved in a minimum volume of distilled water. The resulting solution is again made up to 40% with ammonium sulphate, then the precipitate is separated by centrifugation and discarded, the supernatant is brought to 90% saturation with ammonium sulphate, then the precipitated precipitate is collected by suction filtration. The resulting precipitate is dissolved in a minimum amount of 0.01 M phosphate buffer, pH 8.0, and in this form the resulting preparation is stored for no loss of activity. Further purification of the enzyme preparation was carried out by gel filtration on a Sephadex 6-100 column. After purification of the enzyme preparation, fractionation was carried out on a DEA cellulose column and the combined phosphodiesterase fractions, deoxyribonuclease 1 and Ts were collected. Deoxyribomononucleotides from the production of protamine sulfate in the following way. Example Waste production of protamine sulfate from fish milk is ground to a powder in a porcelain mortar. Then, the resulting powder mass (250 g) is stirred into 5 liters of 7% trichloroacetic acid (TX the resulting solution is poured into 1 liter of the flask and shaken on a universal shaker to 4 ° minutes, then centrifuged for 20 minutes at 500 ° rpm, the precipitate is removed, and the sedimentary liquid is drained into a glass container. Thus, the acid-soluble products are removed — aligonucleotides, mononucleotides, and nitrogen bases.The resulting acid extract is neutralized with 4N, ammonia to pH 7.0 by adding 5g of 4g MgF / OD, then make n eparat nucleases {4OO mg) was isolated as described above. The reaction solution is incubated at 37 ° C for 24 hours, the pH of the incubation mixture is periodically monitored. After the enzymatic hydrolysis of the oligonucleotides is completed and the 10O 96 ° hydrolysis alcohol is added, the resulting solution is filtered, then evaporated to a syrupy liquid, which is diluted with distilled water and filtered through activated carbon to remove pigments. The separation of the mixture of deoxyribomonucleotides is carried out as follows. A 1 ml solution of a mixture of deoxy ribomononucleotides is taken and applied to a 50x12 cm ion exchange column containing a Dowex resin. the pH of the applied solution was preliminarily adjusted to 10 with ammonia. First, the column was washed with bidistilled water to remove ammonia, 1215 L of OjOlM ammonium chloride, to those. until the pH of the sample solution was lowered to 7.0, as a result of this washing, the nitrogenous bases and nucleosides were removed, then the column was washed with 0.01 M hydrochloric acid (15-20 liters), and all nucleotides were removed. Polynucleotides and residues of non-hydrolyzed DNA remain on the column. Thus, the initial separation of the products of DNA hydrolysis is carried out. Then the deoxyribomononucleotide fraction obtained by passing 0 through the O1M hydrochloric acid solution and concentrated by repeated reabsorption on Dowex-1 is basified with a solution of ammonia. a smaller column (10x2 cm) containing Dowex-1 to isolate O-specific deoxyribonucleotides by fractionating them as follows. About 0. 01 M ammonium chloride solution is passed until the pH of the solution flowing from the column drops to 6.0, then is passed through a 0 column, O01 M hydrochloric acid solution, and a fraction containing deoxycytidyl acid (including 5-methyldithylic acid), then a fraction containing deoxyadenylic acid was extracted with 0.002 M hydrochloric acid, a fraction containing thymidylic acid was separated with solution 0, and a fraction containing deoxyguanilic acid was separated with a solution of 0.005 M hydrochloric acid Lot identification of nucleotides collected from the column is carried out using the spectrum of photometry. The resulting solutions of deoxyribomonucleotides are individually concentrated by re-adsorption on ion-exchange columns, washed with water and upyoured with dilute hydrochloric acid solutions. In this case, the purine deoxyribomonucleotides are quickly neutralized with an aqueous solution of ammonia in order to avoid acid hydrolysis. A further concentration of each deoxyribomononucleotide obtained in solution is carried out by evaporation in vacuum of the solution, followed by precipitation with a mixture of ethanol and ether or a solution of barium with ammonia. The proposed method makes it possible to use as a raw material the production waste of protamine sulfate from the milk of fish, which until now has not been used in the whole world and is thrown away as unnecessary. The preparation of deoxyribomononucleotides from the proposed feedstock is twice as divided as compared to their production from polymeric nucleic acids. 36 F 3 o bb of the formula of ioretration The method of obtaining deoxyribomonucleotide by extracting the raw material, enzymatic hydrolysis of the obtained extract, followed by separation of the target product by known methods, characterized in that, in order to broaden the raw material base and increase the yield of the target product, waste is used as the starting material production of protamine sulphate from fish milt, extraction is carried out with acid, and enzymatic hydrolysis is carried out with nucleases from commercial fish liver.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU2130061A SU534236A1 (en) | 1975-05-04 | 1975-05-04 | The method of obtaining deoxyribomonucleotides |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU2130061A SU534236A1 (en) | 1975-05-04 | 1975-05-04 | The method of obtaining deoxyribomonucleotides |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
SU534236A1 true SU534236A1 (en) | 1976-11-05 |
Family
ID=20618099
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU2130061A SU534236A1 (en) | 1975-05-04 | 1975-05-04 | The method of obtaining deoxyribomonucleotides |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
SU (1) | SU534236A1 (en) |
-
1975
- 1975-05-04 SU SU2130061A patent/SU534236A1/en active
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Needham | The adenosinetriphosphatase activity of myosin preparations | |
US3389133A (en) | Process for isolating and purifying soluble ribonucleic acid | |
US4389396A (en) | Immunostimulating preparations based on ribosomal RNA's and a process for the preparation of the RNA's | |
SU534236A1 (en) | The method of obtaining deoxyribomonucleotides | |
US2174475A (en) | Enzymatic manufacture of nucleotides | |
Kluyver et al. | The production of homogentisic acid out of phenylacetic acid by Aspergillus niger | |
US4335239A (en) | Polyribonucleotides capable of promoting the genesis of leucocytes and blood platelets | |
Willstätter | Problems and methods in enzyme research | |
Emiliani et al. | Induced Autolysis of Aspergillus oryzae (A. niger group) IV. Carbohydrates | |
US3459637A (en) | Enzyme digestion of nucleic acids | |
US3934039A (en) | Process for the production of microorganism lysates | |
US2118117A (en) | Method for separating constituents of biologically valuable starting materials | |
JPS5446887A (en) | Preparation of acrylic acid or methacrylic acid | |
SU554854A1 (en) | The method of autolysis of yeast biomass | |
SU1558979A1 (en) | Method of obtaining yeast with low content of nucleic acids | |
RU2781833C1 (en) | Method for producing double-stranded ribonucleic acid from saccharomyces cerevisiae yeast cells | |
RU2824212C1 (en) | Method of producing peptide fraction from water-soluble proteins of microalgae, having antibiotic properties | |
RU2278164C2 (en) | Method for production of calcium fructose diphosphate | |
SU1490156A1 (en) | Method of producing zimosan | |
JPH0998779A (en) | Trehalose synthetase, its production and production of trehalose using the enzyme | |
US2987443A (en) | Process of producing biosplen | |
SU884574A3 (en) | Method of preparing protein from microorganism suspension | |
SU1100308A1 (en) | Method for preparing acid desoxyribonuclease | |
RU2237719C2 (en) | Method for preparing lipopolysaccharides | |
RU2158505C2 (en) | Method for preparing carbohydrate feed for insects-pollinators |