NO860180L - - Google Patents
Info
- Publication number
- NO860180L NO860180L NO860180A NO860180A NO860180L NO 860180 L NO860180 L NO 860180L NO 860180 A NO860180 A NO 860180A NO 860180 A NO860180 A NO 860180A NO 860180 L NO860180 L NO 860180L
- Authority
- NO
- Norway
- Prior art keywords
- cellulose
- cells
- fibers
- meq
- cell
- Prior art date
Links
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 claims description 110
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 claims description 57
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 claims description 57
- 239000000835 fiber Substances 0.000 claims description 56
- 210000002950 fibroblast Anatomy 0.000 claims description 18
- 229920003043 Cellulose fiber Polymers 0.000 claims description 15
- 238000000034 method Methods 0.000 claims description 15
- MZVQCMJNVPIDEA-UHFFFAOYSA-N [CH2]CN(CC)CC Chemical compound [CH2]CN(CC)CC MZVQCMJNVPIDEA-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 13
- 238000005349 anion exchange Methods 0.000 claims description 13
- 230000012010 growth Effects 0.000 claims description 13
- 241000700605 Viruses Species 0.000 claims description 10
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 claims description 9
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 8
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 claims description 8
- 210000001840 diploid cell Anatomy 0.000 claims description 7
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 claims description 7
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 7
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 claims description 6
- -1 diethyl-(2-hydroxypropyl)aminoethyl Chemical group 0.000 claims description 5
- 125000000022 2-aminoethyl group Chemical group [H]C([*])([H])C([H])([H])N([H])[H] 0.000 claims description 4
- 210000005260 human cell Anatomy 0.000 claims description 4
- 239000002356 single layer Substances 0.000 claims description 4
- 241000124008 Mammalia Species 0.000 claims description 3
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 claims description 3
- 229920001425 Diethylaminoethyl cellulose Polymers 0.000 claims description 2
- 210000000712 G cell Anatomy 0.000 claims 1
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 15
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 14
- 239000000463 material Substances 0.000 description 13
- SEQKRHFRPICQDD-UHFFFAOYSA-N N-tris(hydroxymethyl)methylglycine Chemical compound OCC(CO)(CO)[NH2+]CC([O-])=O SEQKRHFRPICQDD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 description 10
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 9
- 238000004114 suspension culture Methods 0.000 description 9
- 241000709701 Human poliovirus 1 Species 0.000 description 7
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 7
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M Sodium bicarbonate Chemical compound [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 6
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 6
- 238000004809 thin layer chromatography Methods 0.000 description 6
- 239000007997 Tricine buffer Substances 0.000 description 5
- 150000001450 anions Chemical class 0.000 description 5
- 210000004072 lung Anatomy 0.000 description 5
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 5
- GUBGYTABKSRVRQ-WFVLMXAXSA-N DEAE-cellulose Chemical compound OC1C(O)C(O)C(CO)O[C@H]1O[C@@H]1C(CO)OC(O)C(O)C1O GUBGYTABKSRVRQ-WFVLMXAXSA-N 0.000 description 4
- 239000006145 Eagle's minimal essential medium Substances 0.000 description 4
- 241000991587 Enterovirus C Species 0.000 description 4
- 206010028980 Neoplasm Diseases 0.000 description 4
- 229920002873 Polyethylenimine Polymers 0.000 description 4
- UZMAPBJVXOGOFT-UHFFFAOYSA-N Syringetin Natural products COC1=C(O)C(OC)=CC(C2=C(C(=O)C3=C(O)C=C(O)C=C3O2)O)=C1 UZMAPBJVXOGOFT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 244000309466 calf Species 0.000 description 4
- 201000011510 cancer Diseases 0.000 description 4
- KCFYHBSOLOXZIF-UHFFFAOYSA-N dihydrochrysin Natural products COC1=C(O)C(OC)=CC(C2OC3=CC(O)=CC(O)=C3C(=O)C2)=C1 KCFYHBSOLOXZIF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I dipotassium trisodium dihydrogen phosphate hydrogen phosphate dichloride Chemical compound P(=O)(O)(O)[O-].[K+].P(=O)(O)([O-])[O-].[Na+].[Na+].[Cl-].[K+].[Cl-].[Na+] LOKCTEFSRHRXRJ-UHFFFAOYSA-I 0.000 description 4
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000002953 phosphate buffered saline Substances 0.000 description 4
- DAEPDZWVDSPTHF-UHFFFAOYSA-M sodium pyruvate Chemical compound [Na+].CC(=O)C([O-])=O DAEPDZWVDSPTHF-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 4
- 102000004142 Trypsin Human genes 0.000 description 3
- 108090000631 Trypsin Proteins 0.000 description 3
- 230000010261 cell growth Effects 0.000 description 3
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 3
- 239000012737 fresh medium Substances 0.000 description 3
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 3
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 3
- 210000001161 mammalian embryo Anatomy 0.000 description 3
- 229910000030 sodium bicarbonate Inorganic materials 0.000 description 3
- 235000017557 sodium bicarbonate Nutrition 0.000 description 3
- 229910001220 stainless steel Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000010935 stainless steel Substances 0.000 description 3
- 239000012588 trypsin Substances 0.000 description 3
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000282693 Cercopithecidae Species 0.000 description 2
- 241000287828 Gallus gallus Species 0.000 description 2
- 150000001768 cations Chemical class 0.000 description 2
- 210000004748 cultured cell Anatomy 0.000 description 2
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 2
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 2
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 2
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 2
- 229920000642 polymer Polymers 0.000 description 2
- 229940076788 pyruvate Drugs 0.000 description 2
- 229940054269 sodium pyruvate Drugs 0.000 description 2
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 2
- XSNSOQNHJHPRQG-UHFFFAOYSA-N 2-[bis(2-hydroxyethyl)amino]ethanol;2-(chloromethyl)oxirane Chemical compound ClCC1CO1.OCCN(CCO)CCO XSNSOQNHJHPRQG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000030507 AIDS Diseases 0.000 description 1
- 241000271566 Aves Species 0.000 description 1
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M Bicarbonate Chemical compound OC([O-])=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 241000283086 Equidae Species 0.000 description 1
- 241000282326 Felis catus Species 0.000 description 1
- 208000007212 Foot-and-Mouth Disease Diseases 0.000 description 1
- 241000710198 Foot-and-mouth disease virus Species 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- 241000941423 Grom virus Species 0.000 description 1
- 241000709704 Human poliovirus 2 Species 0.000 description 1
- XQFRJNBWHJMXHO-RRKCRQDMSA-N IDUR Chemical compound C1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1N1C(=O)NC(=O)C(I)=C1 XQFRJNBWHJMXHO-RRKCRQDMSA-N 0.000 description 1
- 102000014150 Interferons Human genes 0.000 description 1
- 108010050904 Interferons Proteins 0.000 description 1
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 201000005505 Measles Diseases 0.000 description 1
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 1
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 1
- 101100388690 Plasmodium falciparum (isolate K1 / Thailand) MEF-1 gene Proteins 0.000 description 1
- 208000000474 Poliomyelitis Diseases 0.000 description 1
- 229940124867 Poliovirus vaccine Drugs 0.000 description 1
- 206010037742 Rabies Diseases 0.000 description 1
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 1
- 241000283984 Rodentia Species 0.000 description 1
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 1
- 241000251539 Vertebrata <Metazoa> Species 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 description 1
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 description 1
- 238000004873 anchoring Methods 0.000 description 1
- 210000004102 animal cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000000890 antigenic effect Effects 0.000 description 1
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 1
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 1
- 125000003636 chemical group Chemical group 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 1
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 210000002919 epithelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 description 1
- 239000012847 fine chemical Substances 0.000 description 1
- 210000003953 foreskin Anatomy 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 229940088597 hormone Drugs 0.000 description 1
- 239000005556 hormone Substances 0.000 description 1
- 206010022000 influenza Diseases 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 1
- 229940079322 interferon Drugs 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- 210000003292 kidney cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000011031 large-scale manufacturing process Methods 0.000 description 1
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 1
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 1
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 1
- 210000004962 mammalian cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000009343 monoculture Methods 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001338 necrotic effect Effects 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 231100000590 oncogenic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002246 oncogenic effect Effects 0.000 description 1
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 1
- 229960001539 poliomyelitis vaccine Drugs 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 239000000047 product Substances 0.000 description 1
- 208000009305 pseudorabies Diseases 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 201000005404 rubella Diseases 0.000 description 1
- 238000013376 serial cultivation Methods 0.000 description 1
- 210000003491 skin Anatomy 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 230000035899 viability Effects 0.000 description 1
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 1
- 239000005723 virus inoculator Substances 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Classifications
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/0068—General culture methods using substrates
- C12N5/0075—General culture methods using substrates using microcarriers
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
- C12N2533/70—Polysaccharides
- C12N2533/78—Cellulose
-
- F—MECHANICAL ENGINEERING; LIGHTING; HEATING; WEAPONS; BLASTING
- F02—COMBUSTION ENGINES; HOT-GAS OR COMBUSTION-PRODUCT ENGINE PLANTS
- F02B—INTERNAL-COMBUSTION PISTON ENGINES; COMBUSTION ENGINES IN GENERAL
- F02B61/00—Adaptations of engines for driving vehicles or for driving propellers; Combinations of engines with gearing
- F02B61/04—Adaptations of engines for driving vehicles or for driving propellers; Combinations of engines with gearing for driving propellers
- F02B61/045—Adaptations of engines for driving vehicles or for driving propellers; Combinations of engines with gearing for driving propellers for marine engines
Landscapes
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Zoology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Description
Foreliggende oppfinnelse vedrører en fremgangsmåte ved dyrking av celler, spesielt diploide celler og spesielt diploide celler fra pattedyr så som menneskeceller, blant annet fibroblastceller, i et dyrkningsmedium i nærvær av cellulosefibre av en spesiell type. Cellulosefibrene består av cellulose med positive ladninger og/eller anionbyttercellulose. Denne type cellulose er velkjent, og visse typer av slik cellulose er f.eks. beskrevet i "Techniques in Protein Chemistry", Elsevier Publish-ing Company, 1967, I. Leggett, s. 290-304. Velegnet materiale føres i handelen, f.eks. av Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA. I disse celluloseanionbyttere er vanlige aminogrupper som kan være substituerte på forskjellige måter, bundet til cellu-losemolekyler og gir anionbytteregenskaper.
Cellene som dyrkes ifølge oppfinnelsen består fortrinnsvis av såkalt forankringsavhengige celler som normalt dyrkes f.eks. i suspens jon.
Følgende beskrivelse av forsøk ifølge oppfinnelsen utgjør en del av foreliggende beskrivelse.
Forsøk 1
Medium: "Eagle's minimum essential medium" med tilsetning av 4mM glutamin, 1 mM natriumpyruvat, 20 mM TRICINE (N-tris(hy-droksymetyl)-metylglycin), pH 7,8, 10% kalveserum og 0,1% natriumhydrogenkarbonat.
Cellulose: Celletilvekst oppnås bare på positivt ladede cellulosefibre (anionbyttere), ingen tilvekst ble observert på negativt ladede fibre (kationbyttere). Alle cellulosematerialer stammet fra Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA. Følgende cellulosefibre ble prøvet:
(1) QAE (dietyl-(2-hydroksypropyl)-aminoetyl) 0,9 mekv/g
(2) DEAE (dietylaminoetyl) 0,9 mekv/g +0,7 mekv/g
(3) TEAE (trietylaminoetyl) 0,9 mekv/g
(4) Aminoetyl 0,33 mekv/g
(5) Bensyl-DEAE
(6) Bensoylert-naftoylert DEAE
(7) ECTE0LA (epiklorhydrin-trietanolamin) 0,3 mekv/g
(8) PEI (polyetylenimin) 1,07 mekv/g
Likeledes god tilvekst fikk man med QAE, DEAE og TEAE og svakere vekst fikk man med de andre typene av cellulose. Fibrene ble oppslemmet i destillert vann ved en konsentrasjon på 30 mg/ml og ble autoklavert i 30 minutter.
Cellestammer: Humane diploide fibroblaster ble anvendt ved alle forsøk. Disse celler stammet fra embryonisk lungevev og gjennomgikk forskjellige antall passasjer innen de ble frosset og lagret i flytende nitrogen. De er forankringsavhengige celler fordi de krever en egnet overflate som de kan hefte til, spre seg på og etter hvert deles. To cellestammer ble anvendt: (1) MRC-5 erholdt fra England og (2) en cellestamme erholdt i oppfinnerens laboratorium kalt Lu(S). Vekstegenskapene til begge disse cellestammer er grundig undersøkt og har vist seg å være likeartet.
De har begge en levetid in vitro på mellom 70 og 90 populasjonsdelinger.
Frembringelsesmåte for dyrkning av humane fibroblaster: Frosne ampuller av celler ble tint hurtig og podet i Roux-flasker av plast inneholdende 150 mm Eagles medium. Når celleskiktet ble sammenflytende, ble cellene oppslemmet i 50 ml 200 ug/ml krystal-linsk trypsin i fosfatbuffret saltløsning uten kalsium og magnesium, pH 7,8, og cellene innført i nye Roux-flasker med ferskt medium. Etter hvert ble cellene anvendt for poding av en "spinner bottle", en flaske som inneholdt en suspendert magnetisk stang som ble anvendt som røreanordning, inneholdende Eagles medium og en suspensjon av cellulosefibre. Cellepodingen som ble anvendt var 1x10 5 celler/mg cellulose. Cellulosen ble anvendt i en konsentrasjon på ca. 3 mg/ml. De fleste forsøk ble gjennom-ført med QAE-cellulose. Den nødvendige mengde for den omrørte kulturen ble sentrifugert ved 3000 X g i 10 minutter, suppleant-væsken ble suget vekk og cellulosen gjenoppslemmet i dyrkningsmediet og satt til flasken utstyrt med røring.
QAE-cellulosefibrene (grov kvalitet) hadde en lengde som varierte mellom 6 pm og 800 pm eller mer, og deres bredde varierte mellom 10 pm og 35 pm i diameter.
De celler som ble tilsatt cellulosesuspensjonen heftet til noen av fibrene, men spreddes ikke og vokste over fibrenes overflate på den normale måte som forventes av forankringsavhengige celler. De vokste istedet som en cellemasse, hvori cellulosefibre av forskjellig størrelse ble innebygget. Disse aggregater av celler og fibre nådde en størrelse på 150 til 200 um eller mer i diameter etter 7 til 8 døgns inkubering. Det anslåtte antall celler som oppnåddes etter dette tidsrom varierte mellom 1,2x10<6>og 1,8x10<6>celler/ml. Etter 8 til 10 døgns inkubering avtok antallet celler i suspensjonen. Mediet ble tappet med 2 til 3 døgns mellomrom ved at fibercellemassene fikk sette seg på bunnen av flasken, halvparten av mediet ble suget av og et like stort volum ferskt medium tilsatt.
De fibre som ble innebygget i disse aggregater hadde en lengde som varierte mellom 100 um eller mindre og 200 um, idet lengre fibre sjelden ble observert. Bredden til fibrene syntes å være mellom 10 pm og 20 pm i diameter. Resten og hoveddelen av cellulosefibrene var helt frie for celler. Cellene syntes å velge en populasjon av fibre som var best egnet for cellenes hefting og vekst. Denne virkning kan skyldes størrelsen til fibrene eller en ujevn fordeling av ladede kjemiske grupper.
Forsøk 2
Materialer og metoder
Medium: "Eagle's minimum essential medium" med tilsetning av 4mM glutamin, 1 mM natriumpyruvat, 20 mM TRICINE (N-tris(hydroksy-metyl)-metylglycin), pH 7,8, 10% kalveserum og 0,1% natriumhydrogenkarbonat.
Cellestammer: Diploide lungefibroblaster fra menneskeembryoer ble anvendt ved samtlige forsøk. De fleste forsøk ble utført med en cellestamme isolert i oppfinnerens laboratorium kalt Lu(S) med en populasjons-fordoblingsgrad mellom 20 og 30 delinger. Visse forsøk ble utført med cellestammen MRC5 med en populasjons-fordoblingsgrad mellom 30 og 35 delinger. Resultatene var likeartede for de to stammene.
Cellulose: Cellevekst erholdtes bare på positivt ladede cellulosefibre (anionbyttere), ingen vekst observert på negativt ladede fibre (kationbyttere). All cellulose stammet fra Sigma Chemical Co., St. Louis, MO, USA. Følgende anionbyttere ble undersøkt:
(1) QAE - 2-hydroksypropylaminoetyl 0,9 mekv/g
(2) DEAE - dietylaminoetyl 0,9 mekv/g
(3) TEAE - trietylaminoetyl 0,9 mekv/g
(4) Aminoetyl 0,33 mekv/g
(5) Bensy1-DEAE
(6) Bensoylert-naftoylert DEAE
(7) ECTEOLA - epiklorhydrin-trietanolamin 0,3 mekv/g
(8) PEI - polyetylenimin 1,07 mekv/g
Mikroskopisk undersøkelse av cellulosecellesuspensjonen (figur 4) viste at cellene ikke heftet til og ble spredd på fibrene under dannelse av et monoskikt, hvilket er den vanligste form for cellevekst in vitro. Istedet dannedes aggregater av celler og cellulosefibre og øket i diameter ettersom inkubasjonen skred frem.
Cellulosepreparatene som ble anvendt i begynnelsen av disse forsøk ble klassifisert som "grov kvalitet" (coarse grade) av fabrikanten og fibrene hadde en lengde som varierte mellom 6 pm og 800 pm eller mer, og deres bredde varierte mellom 10 pm og 35 pm i diameter. Som det fremgår av figur 4a, b, c, og f var en stor del av fibrene ikke knyttet til cellefiberaggregatene. De fibre som var innbygget i disse aggregater, hadde en lengde varierende mellom mindre enn 100 pm og 200 pm, lengre fibre ble sjelden observert. Fibrenes bredde syntes å være mellom 10 pm og 20 pm i diameter. Celle-fiberaggregatene kan nå størrelser på 150 til 200 pm i diameter etter 7 til 8 døgn inkubasjon. Noen ganger observertes større aggregater.
Cellene syntes å velge en populasjon av fibre som er best egnet for cellenes hefting og tilvekst. Dette utvalg synes å stå i forbindelse med fibrenes størrelse. En cellulosesuspensjon som ble filtrert gjennom et 200 mesh nett av rustfritt stål, ble podet med cellene. Som det fremgår av figur 4d, e, blir større deler av fibrene med en lengde på ca. 100 pm eller mindre knyttet til celler. Forforsøk på å dyrke fibroblaster på TLC-(tynnskiktkromatografi)-preparater av QAE- og DEAE-cellulose, som har fiberlengder på 100 pm eller mindre, gir tegn på at disse preparater er bedre egnet for celle-fiberaggregater enn cellulosematerialer av grov kvalitet.
Diploide menneskefibroblasters evne til å vokse i form av disses celle-fiberaggregater er ikke tidligere rapportert såvidt oppfinneren vet.
Folkman & Greenspan har vist at sfæroider av cellemasser kan vokse til en diameter på flere millimeter, men ved en diameter på 1 mm ble cellene i sentrum nekrotiske. Ettersom imidlertid celle-fiberaggregatene var meget mindre og gjennomtrengt av fibre, som eventuelt kan hjelpe til å lede medium til de indre deler av aggregatene, er det mulig at største delen av cellene var levende i de aggregater som ble dannet under minst 8 døgns inkubasjon. Lengre inkubasjon medførte imidlertid ofte en reduksjon av celleproteinet, selv med ofte gjentatte utskift-ninger av medium, og det må derfor finnes en grense for stør-relsen og livskraften til cellene i disse aggregatene.
Metoden som er beskrevet, har vist seg gunstig for produk-sjon i stor skala av f.eks. virusvaksiner med humane diploide fibroblaster.
Anionbyttercellulosen som anvendes ifølge oppfinnelsen, inneholder fortrinnsvis aminogrupper og har fortrinnsvis en anionbytterkapasitet på minst 0,01 mekv/g, eventuelt minst 0,05 mekv/g eller minst 0,1 mekv/g. Fortrinnsvis er anionbytterkapasiteten opptil 5 mekv/g, eventuelt opptil 3 mekv/g eller opptil 1,5 mekv/g eller også opptil 1 mekv/g, bestemt ved vanlige metoder.
Den anvendte anionbyttercellulosen foreligger fortrinnsvis i form av fibre hvorav i forhold til vekten, minst 20%, fortrinnsvis minst 50% og i særdeleshet minst 75% eller minst 90% har en fiberdiameter på maksimalt 200 pm, fortrinnsvis maksimalt 100 um, spesielt maksimalt 50 pm eller maksimalt 25 pm. Fiberlengden er fortrinnsvis maksimalt 1000 pm, spesielt maksimalt 200 pm eller maksimalt 100 pm. Også fiberlengdeverdier på maksimalt 50 pm eller maksimalt 20 um har vist seg å være betydningsfulle. Fiberlengden er samtidig fortrinnsvis minst 0,1 pm, i særdeleshet minst 1 um, spesielt minst 5 um eller minst 10 pm. Fiberlengde-verdiene beregnes herved på minst 50%, fortrinnsvis minst 75%, minst 90% eller minst 99% av cellulosematerialvekten.
Den anvendte celluloseanionbytter tilhører fortrinnsvis en av typene: QAE (dietyl-(2-hydroksypropyl)-aminoetyl)-cellulose, fortrinnsvis med ionebytterkapasitet ca. 0,9 mekv/g,
DEAE (dietylaminoetyl)-cellulose, fortrinnsvis med ionebytterkapasitet ca. 0,7 til 0,9 mekv/g,
TEAE (trietylaminoetyl)-cellulose, fortrinnsvis med ionebytterkapasitet ca. 0,9 mekv/g,
aminoetylcellulose, fortrinnsvis med ionebytterkapasitet 0,33 mekv/g,
bensyl-DEAE-cellulose,
bensoylert-naftoylert DEAE.
Ifølge oppfinnelsen dyrker man fortrinnsvis diploide celler fra pattedyr, fortrinnsvis menneskeceller, såsom fibroblastceller, og denne dyrking kan utføres også for virusdyrking eller vaksinefremstilling.
Ifølge et aspekt av oppfinnelsen bringes cellene til å vokse på fibre eller fibrene som celleansamlinger, fortrinnsvis av sfærisk eller cylindrisk form og fortrinnsvis med en diameter opptil 1000 pm, eventuelt opptil 500 pm eller opptil 300 pm eller også opptil 200 eller 100 pm. Celleansamlingene dyrkes gjerne til minst 10%, minst 50% eller minst 90% av cellematerialvekten foreligger i form av slike celleansamlinger med en diameter på minst 10 pm, fortrinnsvis minst 25 pm eller minst 50 pm, eventuelt minst 100 pm. Cellene i slike celleansamlinger danner en ansamling av mer enn ett monoskikt av celler. Disse celleansamlinger innelukker fortrinnsvis i det minste deler av to eller flere fibre innenfor celleansamlingen. Disse fibre har fortrinnsvis fiberlengder og fiberdiametre innenfor de ovenfor nevnte grensene, f.eks. en fiberlengde på maksimalt 500 pm og i særdeleshet maksimalt 300 pm og f.eks. en diameter mellom 3 og 50 pm, i særdeleshet mellom 5 og 30 pm, f.eks. 10-20 pm. Veksten utføres fortrinnsvis inntil antall celler pr. ml av dispersjonen når minst 10<4>, minst 10<5>eller minst 10<6>celler pr. ml dispersjon. Passende verdier for den øvre grense av cellemengden er f.eks. maksimalt 10 9 , maksimalt 10 8 eller maksimalt 10 7celler/ml dispersjon. Celledyrkingstiden kan varieres, f.eks. gå opp i minst 1 døgn, minst 2 døgn eller minst 3 døgn eller minst 5 døgn. Passende Øvre grenseverdier for celledyrkingstid kan f.eks. være opp til 14 døgn, opptil 10 døgn, opptil 7 døgn eller opptil 5 døgn.
Passende konsentrasjoner av cellulosefibre i dyrkningmediet kan være minst 0,01 mg/ml, minst 0,1 mg/ml eller minst 1 mg/ml, eventuelt minst 5 mg/ml. Passende øvre grenseverdier har vist seg f.eks. å være maksimalt 500 mg/ml, maksimalt 100 mg/ml, maksimalt 50 mg/ml eller maksimalt 10 mg/ml.
Passende dyrkningsmedier og dyrkningsbetingelser forøvrig for forskjellige celletyper er velkjente for en fagmann og kan anvendes ifølge oppfinnelsen. I så henseende kan det f.eks. vises til publikasjonen "Microcarrier Cell Culture Principles & Methods" fra Pharmacia Fine Chemicals og til de litteratur-referanser som er angitt i denne publikasjonen.
Anvendelsen av diploide menneskefibroblaster for polio-vaksinefremstilling har tidligere vært begrenset på grunn av tekniske vanskeligheter med dyrking av disse celler på tidligere tilgjengelige mikrobærere. Cellene vokser til forholdsvis lave konsentrasjoner, og kulturene har vært så følsomme for håndtering at et stort antall celler på mikrobærerne kunne gått tapt i de forskjellige behandlingstrinn som en kultur utsettes for. Anvendelsen av mikrobærere av positivt ladet cellulose ifølge oppfinnelsen for celledyrking har utelukket mange av disse problemer. De diploide menneskefibroblastcellene har blitt dyrket med godt resultat som celle-fiberaggregat med flere cellulosefibre som ble prøvet, som nevnt i det foregående, f.eks. dietyl-2-hydroksypropyl-aminoetyl (QAE), dietylaminoetyl (DEAE), trietylaminoetyl (TEAE).
I det følgende angis resultater erholdt med suspensjonskulturer av slike celle-fiberaggregater fra diploide menneske-fibroblastceller infisert med poliovirus.
Materialer og metoder:
Cellestammer: To stammer av embryonale menneskelunge-fibroblaster ble anvendt: (1) MRC5 erholdt fra The National Institute for Biological Standards and Control, England, og (2) Lu(S) isolert fra embryonalt menneskelungevev i oppfinnerens laboratorium.
Celluloseanionbytterfibre: De fleste forsøk ble utført med QAE- eller DEAE-cellulose, spesielt preparat med korte fiberlengder tilvirket for tynnskiktskromatografi (TLC). Andre cellulosematerialer som ble anvendt, var TEAE og bensyl-DEAE. Alle cellulosematerialer hadde en ionebytterkapasitet på ca. 0,9 mekv/g. Cellulosen ble anvendt i en konsentrasjon av 3 mg/ml.
Medium og celledyrking: Mediet for celledyrkingen var "Eagle's minimum essential medium" komplettert med 10% kalveserum, 4 mM glutamin, 20 mM TRICINE-buffer, pH 7,8 og 1 mM Na-pyruvat.
Cellene ble først dyrket til et sammenflytende monoskikt i Roux-flasker av plast, oppslemmet med trypsin (200 um/ml krystal-linsk trypsin (Sigma) i fosfatbuffret saltløsning inneholdende 20 mM TRICINE, pH 7,7-7,8 og 0,08% natriumbikarbonat), ble sentrifugert, vasket en gang og tilsatt en konsentrasjon på ca. 1,5x10^ celler/mg cellulose. Etter 5-7 døgns inkubering ble celle-fiber-massen vasket tre ganger med fosfatbuffret saltløsning, pH 7,4, gjenoppslemmet til det opprinnelige volum i "Parkers 199 medium" uten serum og infisert med poliovirus. I de fleste av disse forsøkene anvendtes poliovirus av type 1 (Brunender) samt poliovirus av type 2 (MEF-1) i ett forsøk. Infeksjonsevnen til disse virus ble målt ved poding av viruspreparatene i ti gangers fortynning i vevskulturer og den fortynning ved hvilken 50% av kulturene ble infisert, ble beregnet og betegnet "vevskultur-infeksjonsdose", 50% sluttpunkt (VKID5Q). Alle styrkeverdier er angitt i log1QVKID5Q.
Resultat:
Tabell II viser resultatene fra 5 uavhengige 100 ml suspensjonskulturer av Lu(S)-celler med 3 mg/ml QAE-cellulose infisert med 6,3 VKIDC_ poliovirus type 1.
DU
Tabell III viser resultatene fra fem 100 ml suspensjonskulturer av MRC 5-celler med 3 mg/ml av de angitte cellulosemateri-alene. Kulturene ble infisert med 6,0 VRID^/ml poliovirus type 1 .
Suspensjonskulturer med større volumer enn 100 ml ga også opphav til likeartede virusstyrkeverdier. Tabell IV beskriver noen resultater av poliovirus type 1 dyrket i MRC 5-celler sammen med 3 mg/ml DEAE-TLC-cellulose. Viruspodingen utgjorde 6,0 VKID50</ml.>
Poliovirus av type 2 ble podet i en konsentrasjon på 5,0 VKID5Q/ml i en 5 liter suspensjonskultur av MRC 5 med 3 mg/ml DEAE-TLC-cellulose. Etter 24 timer hadde styrkeverdien steget til 6,5 og etter 48 timer til 6,8 VKIDc_/ml. Selv om disse styrkeverdier var lave, antagelig på grunn av at inokuleringen var så lav, viser de at virus kunne øke på det nærmeste hundre ganger, hvilket er omtrent samme økning som oppnås med poliovirus av type 1.
Diploide menneske-fibroblaster utgjør det beste tilgjengelige cellesubstrat for fremstilling av menneske-virusvaksine, ettersom cellestammene lett kan reguleres og standardiseres, er meget godt undersøkte, underholder vekst av de fleste humane virustyper og er fullstendig normale, hvilket utelukker risikoen for at onkogen DNA kommer inn i vaksinepreparatet. Det har imidlertid vært vanskelig å anvende disse celler for vaksinefremstilling på grunn av vanskelighetene med å dyrke cellene i stor skala på mikrobærere. Ifølge foreliggende oppfinnelse har det vist seg at diploide menneske-fibroblaster kan dyrkes opp til tilstrekkelige cellekonsentrasjoner sammen med cellulosemikro-bærere (f.eks. mellom 1,5 og 2x10^ celler/ml), slik at ved infeksjon med virus, f.eks. poliovirus, kan styrkeverdier oppnås som er vesentlig høyere enn det som kan oppnås hos monokulturer av disse celler på f.eks. apnjurceller.
I det følgende beskrives sammenlignende forsøk som ble utført med fremgangsmåten ifølge oppfinnelsen og med konvensjo-nelle celledyrkingsunderlag. De dyrkede cellene bestod av diploide menneske-fibroblastceller, "strain MRC5". Denne cellestamme beskrives f.eks. i en artikkel av Jacobs, Jones, Baille: "Characteristics of a human diploid cell designated MRC5" i Nature, bind 227, s. 168-170, 1970, og stammet fra National Institute for Biological Study and Control.
Dyrkningsmediet bestod av "Eagle's minimum essential medium" i samtlige forsøk og dette var komplettert med 10% kalveserum, 20 mM Tricine, pH 7,8, 4 mM glutamin, 1 mM Na-pyruvat og 0,08% hydrogenkarbonat.
Følgende mikrobærere ble anvendt:
1. Mikrobærere ifølge oppfinnelsen: DEAE-cellulosefibre (small fibre) for tynnskiktkromatografi, kapasitet 0,96 mekv/g. 2. Biosilon, som består av mikrobærere av plastkuler og ble tilsatt et medium som sterilt pulver. 3 og 4. Cytodex og Gelibeads (tiogelatinkuler) klargjort ifølge fabrikantens instruksjoner.
Cellulosen ifølge oppfinnelsen ble anvendt i en konsentrasjon av 3 mg/ml, biosilon i en mengde på 60 mg/ml, cytodex og gelibeads i en konsentrasjon på 4 mg/ml.
Resultat
Forsøket vedrører bestemmelse av styrkeverdier for poliovirus type 1 erholdt fra de ovenfor angitte celledyrkinger på mikrobærere.
MRC5 , passasje 21, ble podet i suspensjonskulturer i en konsentrasjon på 4x10 5 celler/ml. Kulturene ble rørt med en hastighet på ca. 40 omdreininger/minutt. Mediet ble utskiftet en gang etter 4 døgns inkubering ved at celle-mikrobærermassen fikk sette seg på bunnen av kolben, det gamle mediet ble avsuget og et like stort volum ferskt medium tilsatt.
Etter 7 døgns inkubering ved 37°C ble celle-mikrobærermassen vasket tre ganger med fosfatbuffret saltløsning pH 7,4 og serumfritt Parkers 199-medium tilsatt. Kulturene ble deretter infisert med poliovirus type 1 (podemengde ca. 10 5 ' 5 TCID^Q/ml). Resultatene er angitt i tabell V. Tidligere forsøk har vist at den optimale tiden for å oppnå antigenmateriale for poliovirus-vaksine er 72 timer etter infeksjon.
Cellene som er dyrket ifølge oppfinnelsen består fortrinnsvis av normale celler, d.v.s. celler med begrenset delbarhet, f.eks. i gjennomsnitt ofte maksimalt 150, maksimalt 100 eller maksimalt 70 delinger (såkalte populasjonsdelinger). Defini-sjoner av slike celler er å finne i litteraturen, f.eks. Haeflick, Moorhead: "The serial cultivation of human diploid strains" Experimental Cell Research, bind 25 (1961), s. 585-621, og Haeflick: "The limited in vitro lifetime of human diploid cell strains", Experimental Cell Research, bind 37 (1965), s. 614-636.
Man kan imidlertid også dyrke celler av krefttype eller celler som er modifisert for kombinasjon av celler av krefttype eller ved innføring av genetisk materiale fra kreftceller eller i kreftceller.
Som eksempel på celleopprinnelse kan nevnes animalske celler generelt, celler av hvirveldyr så som celler fra fugler, f.eks. hønsefugler, pattedyrceller, f.eks. celler fra rotter, mus, ape, gnavere, hest, svin, får, hund, katt og spesielt menneskeceller. De dyrkede cellene består ofte av embryoceller (fosterceller) av ovenfor nevnte opprinnelse, for eksempel mannsceller eller kvinnelige embryon. Cellene kan videre stamme fra spesielle organer, f.eks. lunge, hud, forhud, epitelceller. Som eksempel på embryoceller kan også nevnes kyllingembryofibroblaster.
Celledyrkingen kan anvendes for fremstilling av forskjellige produkter, f.eks. enzymer, hormoner, f.eks. interferon, som underlag for virusdyrking og fremstilling av vaksine mot disse, f.eks. polio, rabies, røde hunder, influensa, meslinger, herpes, pseudorabies, munn- og klovsyke, aids-forårsakende virus o.s.v. Man anvender gjerne cellekulturer som er godkjent for vaksinefremstilling av WHO.
Passende dimensjoner på cellulosefibrene er angitt forut.
En fiberlengde på minst 20 um, minst 40 pm eller minst 60 um har ofte vist seg passende. Samtidig kan fiberlengdens øvre grense ligge på de forut nevnte grenseverdiene, f.eks. maksimalt 200 um eller maksimalt 150 um, eller også maksimalt 100 pm. Fiber-lengdeverdiene beregnes herunder liksom for de forutnevnte fiber-lengdeverdiene på minst 30%, fortrinnsvis minst 50%, spesielt minst 75%, minst 90% eller minst 99% av cellulosematerialvekten.
Cellulose som blir anvendt som underlag for de anionbyttende cellulosematerialer som ble anvendt ifølge oppfinnelsen, består normalt av en polymer av glukose med ca. 2000-4000 eller flere, f.eks. 3500 eller flere gjentatte enheter i en kjede. Glykosid-bindingen sitter ved 0, cellulose kan defineres som en polymer av (3-D-glukose.
Figur 1 - Vekst av Lu(S)-celler i 100 ml suspensjonskulturer som inneholder 3 mg/ml QAE-, DEAE- eller TEAE-cellulose og podet med 20x10<6>celler. Celleantallet anslås fra målte proteinverdier. Figur 2 - Virkningen av forskjellig QAE-cellulosekonsentrasjoner på veksten av Lu(S)-celler i 100 ml suspensjonskulturer podet med 20x10<6>celler. Celleantallet ble bestemt fra målte proteinverdier . Figur 3 - Virkningen av cellepoding på tilvekst av Lu(S)-celler i 100 ml suspensjonskulturer inneholdende 3 mg/ml QAE-cellulose. Celluloseantallet ble anslått fra den målte proteinverdi. Figur 4 - Morfologisk utseende av diploide menneskefibroblast-celle-fiberaggregater (se pil).
A og B: 4 døgns MRC 5 dyrking med DEAE-cellulose, 380 ganger.
C: 13 døgns MRC 5-dyrking med 3 mg/ml QAE-cellulose, 380 ganger. D: 8 døgns Lu(S)-dyrking med ca. 1 mg/ml QAE-cellulose filtrert gjennom et nett av rustfritt stål med maskevidde 200 mesh, 48 ganger.
E: 8 døgns Lu(S)-dyrking med ca. 1 mg/ml QAE-cellulose filtrert gjennom et nett av rustfritt stål med maskevidde 200 mesh, 960 ganger.
F: 13 døgns MRC 5-dyrking med 3 mg/ml QAE-cellulose, 120 ganger.
Claims (7)
1. Fremgangsmåte ved dyrking av normale diploide celler i suspensjon i et dyrkningsmedium,
karakterisert ved at veksten utføres i en suspensjon omfattende fibre av cellulose med positive ladninger og/eller anionbytterevne.
2. Fremgangsmåte ifølge krav 1,
karakterisert ved at cellulosen består av en anionbyttercellulose, fortrinnsvis med aminogrupper og spesielt med en anionbytterkapasitet på minst 0,01 mekv/g og eventuelt opptil 5 mekv/g.
3. Fremgangsmåte ifølge krav 1 eller 2,
karakterisert ved at man anvender fibre av anionbyttercellulose, hvorav, i forhold til vekten, minst 20% har en fiberdiameter på maksimalt 100 um, og fortrinnsvis en mengde på maksimalt 1000 pm og minst 1 pm.
4. Fremgangsmåte ifølge hvert av kravene 1 til 3, karakterisert ved at anionbyttercellulosen tilhører en av typene
QAE (dietyl-(2-hydroksypropyl)aminoetyl)-cellulose, fortrinnsvis med en ionebytterkapasitet på ca. 0,9 mekv/g,
DEAE (dietylaminoetyl)-cellulose, fortrinnsvis med en ionebytterkapasitet på ca. 0,7-0,9 mekv/g,
TEAE (trietylaminoetyl)-cellulose, fortrinnsvis med en ionebytterkapasitet på ca. 0,9 mekv/g,
aminoetylcellulose, fortrinnsvis med en ionebytterkapasitet på 0,33 mekv/g,
bensy1-DEAE-cellulose,
bensoylert-naftoylert DEAE.
5. Fremgangsmåte ifølge hvert av kravene 1 til 4, karakterisert ved at den omfatter dyrking av diploide celler fra pattedyr, spesielt menneskeceller, spesielt fibroblastceller, eventuelt for dyrking av virus eller vaksine-produksjon.
6. Fremgangsmåte ifølge hvert av kravene 1 til 5, karakterisert ved dyrking av cellene på fiber eller fibrene som celle-aggregater, fortrinnsvis med i det vesentlige sfærisk eller sylindrisk form og spesielt til en diameter opp til 1000 pm og fortrinnsvis med en diameter på minst 10 pm i en mengde som overskrider et monoskikt av celler, idet celle-aggregatet innelukker i det minste deler av to eller flere fibre innenfor celle-aggregatet, fortrinnsvis fibre med en lengde på maksimalt 500 pm og fortrinnsvis en diameter på mellom 3 og 50 pm, idet dyrkingen fortrinnsvis utføres inntil celleantallet pr. ml i dispersjonen når minst 10 4 celler pr. ml dispersjon og fortrinnsvis til maksimalt 10 g celler pr. ml dispersjon, spesielt over et tidsrom på minst 1 dag og fortrinnsvis opptil 14 dager.
7. Fremgangsmåte ifølge hvert av kravene 1 til 6, karakterisert ved at konsentrasjonen av cellulosefibre i dyrkningsmediet er minst 0,01 mg/ml og fortrinnsvis maksimalt 500 mg/ml.
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SE8402742A SE454518B (sv) | 1984-05-21 | 1984-05-21 | Forfarande for odling av diploida celler i nervaro av cellulosafibrer |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
NO860180L true NO860180L (no) | 1986-01-20 |
Family
ID=20355970
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
NO860180A NO860180L (no) | 1984-05-21 | 1986-01-20 |
Country Status (6)
Country | Link |
---|---|
EP (1) | EP0216771A1 (no) |
JP (1) | JPS62500001A (no) |
DK (1) | DK19086A (no) |
NO (1) | NO860180L (no) |
SE (1) | SE454518B (no) |
WO (1) | WO1985005375A1 (no) |
Families Citing this family (7)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
DE3402927A1 (de) * | 1984-01-28 | 1985-08-08 | Pfeifer & Langen, 5000 Köln | Zellkulturmikrotraeger, verfahren zu seiner herstellung und seine verwendung zum zuechten von verankerungsabhaengigen zellen |
US4874810A (en) * | 1986-03-07 | 1989-10-17 | General Electric Company | Impact modified polyphenylene ether-polyamide compositions |
US9278730B2 (en) | 2009-12-30 | 2016-03-08 | Alex R. Kaye and Frances Kaye Trust | Brace for folding transom |
US8539900B2 (en) | 2009-12-30 | 2013-09-24 | Alex R. Kaye and Frances Kaye Trust | Folding transom for a collapsible boat |
JP5846550B2 (ja) * | 2011-05-02 | 2016-01-20 | 国立研究開発法人物質・材料研究機構 | 短繊維足場材料、短繊維−細胞複合凝集塊作製方法及び短繊維−細胞複合凝集塊 |
TW201738256A (zh) * | 2016-04-04 | 2017-11-01 | 日產化學工業股份有限公司 | 蛋白質產生方法 |
JP6799316B2 (ja) * | 2016-09-12 | 2020-12-16 | 国立研究開発法人物質・材料研究機構 | 配向性を有する短繊維−細胞複合凝集塊を製造するための方法 |
Family Cites Families (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
ZA776251B (en) * | 1976-11-11 | 1978-07-26 | Massachusetts Inst Technology | Improved cell culture microcarriers |
FR2396083A1 (fr) * | 1977-06-30 | 1979-01-26 | Merieux Inst | Procede de culture de virus |
US4352887A (en) * | 1979-10-29 | 1982-10-05 | Albert Einstein College Of Medicine Of Yeshiva University | Method and article for culturing differentiated cells |
JPS59164723A (ja) * | 1983-03-10 | 1984-09-17 | Koken:Kk | 再生コラーゲンフイブリルを含有する基質及びその製造方法 |
-
1984
- 1984-05-21 SE SE8402742A patent/SE454518B/sv not_active IP Right Cessation
-
1985
- 1985-05-21 JP JP60502558A patent/JPS62500001A/ja active Pending
- 1985-05-21 EP EP85902710A patent/EP0216771A1/en not_active Withdrawn
- 1985-05-21 WO PCT/SE1985/000213 patent/WO1985005375A1/en not_active Application Discontinuation
-
1986
- 1986-01-15 DK DK19086A patent/DK19086A/da not_active Application Discontinuation
- 1986-01-20 NO NO860180A patent/NO860180L/no unknown
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
EP0216771A1 (en) | 1987-04-08 |
JPS62500001A (ja) | 1987-01-08 |
DK19086D0 (da) | 1986-01-15 |
DK19086A (da) | 1986-03-03 |
WO1985005375A1 (en) | 1985-12-05 |
SE454518B (sv) | 1988-05-09 |
SE8402742D0 (sv) | 1984-05-21 |
SE8402742L (sv) | 1985-11-22 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP5264812B2 (ja) | Mdck細胞懸濁培養物において薬物または診断剤の活性成分を生成する方法 | |
CN101100657B (zh) | 大规模生产病毒抗原的方法 | |
AU2002338666B2 (en) | Multiplication of viruses in a cell culture | |
CN1147833A (zh) | 甲型肝炎病毒培养工艺 | |
JP2006320328A (ja) | ウィルス増殖のための不死化細胞系 | |
Berry et al. | Production of reovirus type‐1 and type‐3 from Vero cells grown on solid and macroporous microcarriers | |
KR101835100B1 (ko) | 부착성 세포를 배양하는 방법 | |
CN104152403B (zh) | 一种建立鹅胚上皮细胞系的方法及建立的鹅胚上皮细胞系 | |
NO860180L (no) | ||
US3935066A (en) | Cell lines | |
US9932562B2 (en) | Drain down and re-feed of microcarrier bioreactor | |
FI98377C (fi) | Adherentisti sitoutuneita soluja sisältävä matriisi ja menetelmä virus/virusantigeenin tuottamiseksi | |
US4169761A (en) | Process for the cultivation of viruses | |
CN106834209B (zh) | 高密度悬浮培养的bhk21细胞克隆株 | |
CN109666653B (zh) | 一种狂犬病疫苗病毒的传代培养方法、狂犬病疫苗的制备方法 | |
WO2024164480A1 (zh) | 猫杯状病毒培养方法及病毒液 | |
Moran | A microcarrier-based cell culture process for the production of a bovine respiratory syncytial virus vaccine | |
KR20190019776A (ko) | 무혈청배지 부유배양에 적응된 광견병 바이러스 생산 세포주 | |
CN106085947B (zh) | Mdck克隆细胞株及其应用 | |
CN110669738A (zh) | 一种基于细胞工厂的森林脑炎病毒的制备方法 | |
Hayle | Culture of respiratory syncytial virus infected diploid bovine nasal mucosa cells on cytodex 3 microcarriers | |
CN118956732A (zh) | 一种鸭眼角膜上皮细胞悬浮细胞株及其构建方法与应用 | |
RU2076905C1 (ru) | Способ суспензионного культивирования филовирусов в клеточных культурах на микроносителях | |
Kusano et al. | General characteristics of the cells transformed in vitro by human adenovirus type 12 | |
RU2496870C2 (ru) | Способ получения эпителиоподобных клеток легкого плода буйволицы для культивирования вирусов |