[go: up one dir, main page]

KR20000076602A - 푸린 뉴클레오티드의 제조법 - Google Patents

푸린 뉴클레오티드의 제조법 Download PDF

Info

Publication number
KR20000076602A
KR20000076602A KR1020000005405A KR20000005405A KR20000076602A KR 20000076602 A KR20000076602 A KR 20000076602A KR 1020000005405 A KR1020000005405 A KR 1020000005405A KR 20000005405 A KR20000005405 A KR 20000005405A KR 20000076602 A KR20000076602 A KR 20000076602A
Authority
KR
South Korea
Prior art keywords
precursor
purine
microorganism
synthesizing
nucleotide
Prior art date
Application number
KR1020000005405A
Other languages
English (en)
Other versions
KR100400338B1 (ko
Inventor
다까노유따까
이께다마사또
후지오다쓰로
Original Assignee
히라타 다다시
교와 핫꼬 고교 가부시끼가이샤
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 히라타 다다시, 교와 핫꼬 고교 가부시끼가이샤 filed Critical 히라타 다다시
Publication of KR20000076602A publication Critical patent/KR20000076602A/ko
Application granted granted Critical
Publication of KR100400338B1 publication Critical patent/KR100400338B1/ko

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28N-glycosides
    • C12P19/30Nucleotides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/93Ligases (6)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/12Transferases (2.) transferring phosphorus containing groups, e.g. kinases (2.7)
    • C12N9/1205Phosphotransferases with an alcohol group as acceptor (2.7.1), e.g. protein kinases
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/16Hydrolases (3) acting on ester bonds (3.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28N-glycosides
    • C12P19/30Nucleotides
    • C12P19/32Nucleotides having a condensed ring system containing a six-membered ring having two N-atoms in the same ring, e.g. purine nucleotides, nicotineamide-adenine dinucleotide

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

동일 발효조내에서 효율적으로 뉴클레오티드를 제조하기 위한 프로세스의 개발을 과제로 한다.
그 해결수단으로서, 본 발명에 의하면, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하는 능력을 가지고, 또한 이 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도 발현시킬 수 있는 DNA 를 도입한 미생물을 배지에 배양하고, 이 배양물 중에 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생성 축적시킨 후, 이 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도 발현시키고, 이 배양물 중에 이 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 생성 축적시키고, 이 배양물 중에서 이 푸린 뉴클레오티드를 채취하는 것을 특징으로 하는, 푸린 뉴클레오티드의 제조법 및 이 제조버에서 사용할 수 있는 미생물을 제공할 수 있다.

Description

푸린 뉴클레오티드의 제조법{PROCESS FOR PRODUCING PURINE NUCLEOTIDES}
본 발명은 조미료로서 큰 수요가 있는 푸린 뉴클레오티드의 제조법 및 이 제조법에 사용할 수 있는 미생물에 관한 것이다.
5'-구아닐산 (이하, GMP 로 약기함) 과 5'-이노신산 (이하, IMP 로 약기함) 은 강한 정미성 (呈味性) 을 나타내는 푸린 뉴클레오티드로서, 화학조미료 성분으로 널리 사용되고 있다.
이들 정미성 뉴클레오티드류의 제법으로서, 효모균체에서 추출한 RNA 를 리보 누클레아제 P1 에 의하여 가수분해한 후에 필요한 5'-뉴클레오티드를 분리 정제하는 방법 [Food Technol., 18, 287 (1964)]; IMP 를 생산하는 능력을 가지는 미생물을 사용하여 IMP 를 직접 발효생산하는 방법 [Agricultural and Biological Chemistry, 46, 2257 (1982)]; 이노신이나 구아노신 등의 뉴클레오티드류를 화학적 인산화에 의하여 뉴클레오티드로 변환시키는 방법 [Bulletin of the Chemical Society of Japan, 42, 3505 (1969)], 바실러스 메가테륨(Bacillus megaterium) 의 변이주를 사용하여 5-아미노4-이미다졸카르복시아미드리보시드 (이하, AICAR 로 약기함) 를 발효법으로 생산하고, AICAR 에서 화학적 합성법에 의하여 뉴클레오티드를 제조하는 방법 [Biotechnol. Bioeng., 9, 329, (1967), J. Org. Chem., 32, 1825 (1967)]; 5'-크산틸산 (이하, XMP 로 약기함) 생산성의 코리네박테리움 암모니아게네스 (Corynebacterium ammoniagenes)의 변이주를 배지에 배양하여 XMP 를 생성 축적시키고, 이어서 셀프 클로닝에 의하여 XMP 아미나아제 (별명 GMP 합성효소) 활성을 강화시킨 대장균을 배양하여 효소원으로 하고, XMP 에서 효소반응에 의하여 GMP 를 제조하는 방법 [Biosci. Biotech. Biochem., 61, 840 (1997), 일본 공개특허공보 233798/88 ] 등이 알려져 있다.
이상의 것을 정리하면, 지금까지 개발된 정미성 뉴클레오티드의 생산법은 원리적으로 다음의 3 가지 방법으로 대별할 수 있다 [타카오 쇼오이치 외편, 응용미생물학, 붕에이도 출판 (1996)] :
(1) 효모 RNA 를 미생물효소 또는 화학적으로 분해하는 방법 (RNA 분해법),
(2) 당과 질소원ㆍ인산원을 함유하는 배지에서 미생물의 변이주를 배양하고, 뉴클레오티드를 직접 생산시키는 방법 (직접 발효법),
(3) 발효법으로 뉴클레오티드합성의 중간체를 생산한 후, 화학적 또는 효소적으로 뉴클레오티드로 변환하는 방법 (발효와 화학합성 또는 효소전환의 복합프로세스) 이다.
상기 (1) 의 RNA 분해법은, 정미성이 있는 푸린 뉴클레오티드와 거의 등량의 피리미딘 뉴클레오티드가 부생되는 점에서 정제공정이 번잡해지지 않을 수 없다. 상기 (2) 의 직접 발효법은, 일반적으로 뉴클레오티드의 막 투과성이 장해가 되므로 세포 외에 상당량의 뉴클레오티드를 생성 축적할 수 있는 고생산균의 육종이 용이하지 않고, 경제적으로 만족할 수 있는 생산성을 얻기 어렵다. 특히 GMP 에 대해서는, 지금까지 직접생산에 대해서는 알려져 있지 않다. 단 XMP 는 예외적으로 상당량생성 축적하는 것이 알려져 있다 [타카오 쇼오이치 외편, 응용미생물학, 붕에이도 출판 (1996)]. 그 때문에 현재 경제적으로 유리한 정미성 뉴클레오티드의 제조법으로서 (3) 의 발효와 화학합성 또는 효소전환의 복합 프로세스가 공업적으로 널리 사용되고 있다.
이 복합 프로세스에서는 전체의 생산성 향상의 한 가지 포인트는 제 1 공정의 발효공정에 있어서의 뉴클레오티드 합성중간체의 생산수율을 높이는데 있다 (프로세스의 제 1 공정). 따라서, XMP, 구아노신 또는 이노신의 고생산 미생물이 많이 육종되고 있다 [Agricultural and Biological Chemistry, 42, 399 (1978), Agricultural and Biological Chemistry, 43, 1739 (1979), Agricultural and Biological Chemistry, 46, 2347 (1982)].
제 2 공정의 공정, 즉 화학적 또는 효소적으로 뉴클레오티드로 변환하는 공정도 여러 가지 방법이 개발되고 있다 (프로세스의 제 2 공정). 화학적 방법으로는 부위 특이적인 인산화 반응 (뉴클레오티드 →5' →뉴클레오티드) [Bulletin of the Chemical Society of Japan, 42, 3505 (1969) 이 공업적으로 사용되고 있다. 그러나, 화학적 인산화 반응을 위해서는 인산기 수용체인 뉴클레오티드를 필요한 순도까지 정제하는 중간 공정이 필요하고, 또한 발효에 사용되는 발효기외에 화학반응 용기의 사용이 필요하다. 따라서 아미나아제 또는 포스포릴라아제를 이용한 효소방법이 주목받고 있어, 여러 가지로 검토되고 있다. 지금까지 아미노화에 관해서는 XMP 아미나아제에 의한 방법이 알려져 있다 [타카오 쇼오이치 외편, 응용미생물학, 붕에이도 출판 (1996)].
또한, 인산화에 대해서는, 포스포트랜스퍼라아제, 키나아제 혹은 포스파타아제를 이용한 인산화법이 알려져 있고, 특히 키나아제 혹은 포스포타아제를 이용한 반응이 보다 효율이 좋은 방법으로 검토되고 있다. 예를 들어, 대장균의 이노신-구아노신 키나아제를 코드하는 유전자를 갖는 대장균주를 이용한 5'-뉴클레오티드의 제조법 (WO91/08286 호), 엑시구오박테리움 아세틸리캄(Exiguobacterium acetylicum) 의 이노신-구아노신 키나아제를 코드하는 유전자를 갖는 코리네박테리움 암모니아게네스 균주를 이용한 5'-뉴클레오티드의 제조법 (WO96/30501 호), 모르가네라 모르가니 (Morganella morganii)의 포스파타아제 유전자에 랜덤변이를 부여한 유전자를 갖는 대장균 주를 이용한 5'-뉴클레오티드의 제조법 (일본 공개특허공보 37785/97, 일본 공개특허공보 201481/98) 이 있다.
포스페이트 공여체로는, 여러 가지의 화합물이 검토되고 있는데, 예를 들어 P-니트로페닐포스페이트를 사용하는 방법 (일본 특허공보 2985/64), 무기인산을 사용한 방법 (일본 특허공보 1186/67, 일본 특허공보 44350/74), 폴리인산을 사용하는 방법 (일본 공개특허공보 56390/78), 아세틸포스페이트를 사용하는 방법 (일본 공개특허공보 82098/81), ATP 를 사용하는 방법 (일본 공개특허공보 230094/88), 폴리인산, 페닐포스페이트, 카르바밀포스페이트를 사용하는 방법 (일본 공개특허공보 37785/97), 피롤린산을 사용하는 방법 (일본 공개특허공보 37785/97, 일본 공개특허공보 201481/98) 등이 알려져 있다.
그러나, 이 방법들에서 사용하는 기질이 고가 또는 불안정하거나, 반응부생물이 발생하므로 정제공정이 번잡해지는 등의 이유에서 공업적으로 유리한 방법이라고는 할 수 없다. 그래서, 경제성을 충족시키는 실용적인 방법으로서, 미생물이 당대사의 과정에서 무기인산을 이용하여 AMP 또는 ADP 에서 ATP 를 재생시키는 ATP 재생계를 이용한 뉴클레오티드 생산 시스템이 개발되고 있다. 예를 들어, XMP 생산균이 가지고 있는 글루코오스를 대사하여 ATP 를 생합성하는 활성을 ATP 재생계로서 사용하는 방법이 있다. 이 ATP 재생계와, XMP 및 ATP 에서 GMP 를 생성하는 능력을 가지는 미생물의 XMP 아미나아제 활성을 공액시킴으로써 ATP 대신에 저렴한 글루코오스와 무기인산을 ATP 재생기질로 하는 GMP 의 제법이 있다 [Biosci. Biotech. Biochem., 61, 840, (1997)]. 또한, 이 방법에 있어서 효소로서 이노신 키나아제를 이용하는 IMP 의 제조법도 있다 (일본 공개특허공보 230094/88).
직접 발효에 의하여 XMP, 구아노신 또는 이노신을 생산하게 하는 발효공정과, 그 발효산물들을 효소적으로 GMP 또는 IMP 로 전환하는 반응공정으로 이루어지는 GMP 또는 IMP 의 제조 프로세스에서는 2 종의 미생물이 사용되고 있다.
즉, 프로세스의 제 1 공정인 발효공정에서는, XMP, 구아노신 또는 이노신의 생산균 (생산균) 으로서 육종된 변이주가 사용된다. 프로세스의 제 2 공정인 아미노화 또는 인산화를 행하는 반응공정에서는 XMP 아미나아제활성 또는 이노신-구아노신 키나아제활성을 가지는 단백질을 코드하는 유전자를 고발현화시킨 미생물(전환 미생물)이 사용된다.
제 2 공정의 반응에 있어서 필요해지는 ATP 는 제 2 공정의 전환균뿐만 아니라, 발효를 종료시킨 제 1 공정의 생산균이 가지고 있는 ATP 재생활성이 이용된다.
따라서, 제 2 공정의 반응공정은 XMP 아미나아제활성 또는 이노신-구아노신 키나아제활성과 ATP 재생활성을 2 균체간에서 공액시킨 시스템으로 되어 있다.
전체의 프로세스 개요는 아래와 같다.
먼저, 대형 발효조에서 생산균을 당과 질소원을 주원료로 하는 배지에 배양하여 XMP, 구아노신 또는 이노신을 생성 축적시킨다. 한편으로, 별도의 소형 발효조에서 전환균을 배양한다. 제 1 공정의 발효가 종료된 시점에서 이 대형 발효조에 별도로 배양한 전환균을 첨가하여 저렴한 에너지 공여체 및 인산기 공여체의 존재 하에서 인산화 또는 아미노화 반응을 행한다.
이상에서와 같은 효소반응에 의한 제조 프로세스는 화학적으로 인산화를 행하는 방법에 비하여 전술한 이유에 의하여 유리한 것이나, 전환균을 배양하기 위한 소형 발효조가 필요하여, 전환균을 첨가하는 만큼, 제 1 공정의 발효공정에서의 배지의 양을 줄일 필요가 있고, 따라서 목적하는 뉴클레오티드의 배치당 수득량이 저하되는 등의 관점에서 충분히 효율적인 프로세스라고는 할 수 없다.
본 발명은 동일 발효조내에서 효율적으로 푸린 뉴클레오티드를 제조하기 위한 프로세스의 개발을 과제로 한다.
본 발명자들은 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소의 유전자를, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하는 능력을 가진 발효균에 도입시키고, 그 발현을 발효공정 및 반응공정의 양 공정간에서 제어하여, 하나의 미생물만으로 푸린 뉴클레오티드의 전구물질의 발효에 이어서, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드의 전환반응을 하나의 발효조내에서 행할 수 있는, 보다 우수한 푸린 뉴클레오티드의 제조 프로세스가 될 가능성이 있는 것으로 보고 예의검토를 거듭하였다. 그 결과, 본 발명을 완성하기에 이르렀다.
도 1 은, 플라스미드 pLAC 857 의 구조를 나타낸 도면이다.
도 2 는, 플라스미드 pGUA 2 의 구조를 나타낸 도면이다.
도 3 은, 플라스미드 pIGK 2 의 구조를 나타낸 도면이다.
*도면의 주요부분에 대한 부호의 설명*
PL: PL프로모터
guaA: 대장균에서 유래하는 XMP 아미나아제 유전자
Cㆍglt ORI: 코리네박테리움 글루타미캄(Corynebacterium glutamicum) 복제 기점
Spcr: 스펙티노마이신 내성 유전자
c1857: 온도 감수성 리프레서 유전자
PICL: 코리네박테리움 글루타미캄에서 유래하는 이소시트레이트 리아제 유전자 발현억제영역
TICL: 코리네박테리움 글루타미캄에서 유래하는 이소시트레이트 리아제 유전자 터미네이터
igk: 대장균에서 유래하는 이노신-구아노신 키나아제 유전자
Kmr: 카나마이신 내성 유전자
APr: 암피실린 내성 유전자
Eㆍcoli ORI: 대장균 복제 기점
즉, 본 발명은 아래의 (1)∼(19) 에 관한 것이다.
(1) 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하는 능력을 가지고, 또한 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있는 DNA 를 도입한 미생물을 배지에 배양하고; 상기 배양물 중에 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생성 축적시킨 후; 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현시키고; 상기 배양물 중에 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 생성 축적시키고; 상기 배양물 중에서 상기 푸린 뉴클레오티드를 채취하는 것을 특징으로 하는, 푸린 뉴클레오티드의 제조법.
(2) 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 5'-크산틸산, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 5'-크산틸산아미나아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-구아닐산인, 상기 (1) 에 기재된 제조법.
(3) 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 구아노신, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 이노신-구아노신 키나아제 또는 포스파타아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-구아닐산인, 상기 (1) 에 기재된 제조법.
(4) 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 이노신, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 이노신-구아노신 키나아제 또는 포스파타아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-이노신산인, 상기 (1) 에 기재된 제조법.
(5) 미생물이 코리네박테리움속, 에쉘리히아속, 바실러스속으로 이루어지는 군에서 선택되는 미생물인, 상기 (1) 에 기재된 제조법.
(6) 미생물이 코리네박테리움 암모니아게네스인, 상기 (1) 에 기재된 제조법.
(7) 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가, 고온, 고 pH 및 고침투압에서 선택되는 조건으로, 또는 당질계의 탄소원에서 비당질계의 탄소원으로 전환함으로써 유도발현되는 것을 특징으로 하는, 상기 (1) 에 기재된 제조법.
(8) 비당질계의 탄소원이 아세트산 또는 아세트산염인, 상기 (7) 에 기재된 제조법.
(9) 푸린 뉴클레오티드 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있는 DNA.
(10) 고온, 고 pH 및 고침투압에서 선택되는 조건으로, 또는 당질계의 탄소원에서 비당질계의 탄소원으로 전환함으로써, 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있는, 상기 (9) 에 기재된 DNA.
(11) 비당질계의 탄소원이, 아세트산 또는 아세트산염인, 상기 (10) 에 기재된 DNA.
(12) DNA 가, pLAC 857 또는 pIGK 2 인, 상기 (9) 또는 (10) 에 기재된 DNA.
(13) 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하는 능력을 가지고, 또한 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있는 DNA 를 도입한 미생물.
(14) 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 5'-크산틸산, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 5'-크산틸산아미나아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-구아닐산인, 상기 (13) 에 기재된 미생물.
(15) 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 구아노신, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 이노신-구아노신 키나아제 또는 포스파타아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-구아닐산인, 상기 (13) 에 기재된 미생물.
(16) 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 이노신, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 이노신-구아노신 키나아제 또는 포스파타아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-이노신산인, 상기 (13) 에 기재된 미생물.
(17) 미생물이, 코리네박테리움속, 에쉘리히아속, 바실러스속으로 이루어지는 군에서 선택되는 미생물인, 상기 (13) 에 기재된 미생물.
(18) 미생물이, 코리네박테리움 암모니아게네스인, 상기 (13) 에 기재된 미생물.
(19) 미생물이, 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872/pLAC 857 (FERM BP-6639) 또는 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872/pIGK 2 (FERM BP-6638) 인, 상기 (18) 에 기재된 미생물.
본 발명은 직접 발효에 의하여 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하게 하는 발효공정과, 상기 발효공정에서 생산된 전구물질을 효소적으로 푸린 뉴클레오티드로 전환하는 반응공정을 단일 미생물을 사용하여 하나의 발효조내에서 연속적으로 행하는 프로세스이다.
상기 프로세스를 성립시키기 위하여, 본 발명자들이 알아낸 중요한 요건은 다음의 3 가지이다.
즉, 첫째로 직접 발효에 의하여 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하게 하는 발효공정에서는 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 코드하는 유전자의 발현이 효소에 실질적으로 영향을 미치지 않는 수준으로 억제되고 있다는 것.
상기 효소의 발현이 억제되지 않는 경우에는, 상기 효소의 활성에 의하여 발효 중에 세포내에 푸린 뉴클레오티드가 생성 축적되고, 하기 이유에 의하여 발효수율이 저하된다.
푸린 뉴클레오티드로서, GMP 가 축적된 경우에는 푸린 생합성 경로상의 건(鍵)효소의 피드백 제어가 유발되어, XMP 의 생산이 멈추어 버린다. IMP 가 축적된 경우에는 이노신 생성과의 사이에서 무익한 사이클 (Futile cycle) 이 형성되어 ATP 가 낭비되기 시작한다. 이렇게 세포내에서의 푸린 뉴클레오티드의 생성 축적은 발효수율의 저하를 초래하게 되어 경제적으로 불리하다.
둘째로, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성하는 반응공정에서는, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소활성이 충분히 유도되는 점,
셋째로, 발효를 끝내고 또한 유도처리를 행한 생산균에 충분한 ATP 재생활성과 전환반응에 관여한 인산화 또는 아미노화 활성이 유지되고, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성하는 반응공정에서 그것이 충분하게 기능하는 점.
이상의 3 가지이다.
본 발명에 사용되는 미생물은 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하는 능력을 가지고, 또한 ATP 재생활성을 가지는 미생물이면 야생주, 변이주, 세포융합주, 형질도입주 또는 재조합 DNA 기술을 사용하여 조성한 재조합주의 어느 한가지이라도 특별히 제한 받지 않는다. 이 미생물로서 바람직한 것으로는 핵산발효나 아미노산발효에 사용되고 있는 코리네박테리움속, 에쉘리히아속, 바실러스속 에 속하는 미생물을 들 수 있다. 강력한 ATP 재생활성을 가지는 코리네박테리움 암모니아게네스는 더욱 바람직한 미생물로 들 수 있다.
푸린 뉴클레오티드의 전구물질로는 XMP, 구아노신, 이노신, 아데노신 등을 들 수 있다.
ATP 재생활성이란 미생물이 당질을 에너지 공여 기질로서 대사하는 과정에서 무기인산을 이용하여 AMP 혹은 ADP 에서 ATP 를 재생시키는 활성을 말한다. 이 ATP 재생계는 해당계, TCA 사이클, 전자전달계 등의 당대사계 및 에너지대사계의 일부로서, 거의 모든 미생물이 그 활성을 가지고 있다.
본 발명에 사용되는 미생물의 구체예로는, 예를 들어 아래의 균주 및 이것들에서 유도되는 변이주를 들 수 있다.
코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872
코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 21295
코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 21477
코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13032
코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 14067
코리네박테리움 글루타미쿰 ATCC 13869
대장균 ATCC 14948
대장균 ATCC 11303
대장균 ATCC 9637
바실러스 서브틸리스 ATCC 14618
본 발명에 사용되는 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소로는 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소라면 어느 것이라도 사용할 수 있고, XMP 아미나아제, 이노신-구아노신 키나아제, 포스파타아제, 아데닐레이트 키나아제 등을 들 수 있다.
이들 효소를 코드하는 DNA 로서, 예를 들어 아래의 것을 들 수 있다.
XMP 아미나아제를 코드하는 유전자로서, 대장균에서 유래하는 것 [Nucleic Acids Res., 13, 1303 (1985)], 바실러스 서브틸리스에서 유래하는 것 [Nucleic Acids Res., 18, 6710 (1990)], 코리네박테리움 암모니아게네스 (Genbank accession no. g2765074)에서 유래하는 것 등을 들 수 있다.
이노신-구아노신 키나아제를 코드하는 유전자로서, 대장균에서 유래하는 것 (WO91/08286 호), 엑시구오박테리움 아세틸리캄 (Exiguobacterium acetylicum) 에서 유래하는 것 (WO96/30501 호) 등을 들 수 있다.
포스파타아제를 코드하는 유전자로서 모르가네라 모르가니에서 유래하는 것 (일본 공개특허공보 37785/97, 일본 공개특허공보 201481/98) 등을 들 수 있다.
아데닐레이트 키나아제를 코드하는 유전자로서 사카로미세스 세레비시에 (Saccharomyces cerevisiae)에서 유래하는 것 [J. Biol. Chem., 263, 19468 (1988)] 을 들 수 있다.
푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 코드하는 유전자는 공지 방법에 의하여 취득할 수 있다.
예를 들어, XMP 의 아미나아제를 코드하는 유전자의 경우에는, XMP 아미나아제 구조유전자 배열의 양 말단에 위치하는 배열을 기초로 하여 프라이머를 합성한다. 계속하여, 본 프라이머와 대장균 염색체 DNA, 바실러스 서브틸리스 염색체 DNA 또는 코리네박테리움 암모니아게네스 염색체 DNA 에서 폴리머라아제 체인 리액션법 (PCR 법) 에 의하여 XMP 아미나아제 구조유전자를 취득할 수 있다.
이노신-구아노신 키나아제를 코드하는 유전자의 경우에는, 이노신-구아노신 키나아제를 구조유전자 배열의 양 말단에 위치하는 배열을 기초로 하여 합성한 프라이머와 대장균 염색체 DNA 또는 엑시구오박테리움 아세틸리캄 염색체 DNA 에서 PCR 법에 의하여 이노신-구아노신 키나아제 구조유전자를 취득할 수 있다. 동시에, PCR 법을 사용함으로써 모르가네라 모르가니 염색체 DNA 에서 포스파타아제 구조유전자를, 또한 사카로미세스 세레비시에 염색체 DNA 에서 아데닐레이트 키나아제 구조유전자를 취득할 수 있다.
이렇게 취득된 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 코드하는 유전자는 적당한 유도성 발현 벡터의 유도발현 제어가 가능한 전사ㆍ번역 시그널의 지배 하에 배치함으로써, 이 유전자의 발현을 제어할 수 있는 재조합 플라스미드를 얻을 수 있다.
유도성발현 벡터로서는, 사용하는 미생물체에서 복제 가능함과 동시에 아래의 3 조건을 충족시키면 특별히 한정되지 않는다.
첫째, 직접 발효에 의하여 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산시키는 발효공정에서는 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 코드하는 유전자의 발현을 발효에 실질적으로 영향을 미치지 않는 수준에서 억제할 수 있을 것.
둘째, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성하는 반응공정으로 이행하기 전에 행하는 유도처리에 의하여, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소의 활성을 충분히 유도할 수 있을 것.
셋째, 이 유도방법이 유도처리 후에도 생산균에 충분한 ATP 재생활성과 전환활성을 유지할 수 있는 방법일 것.
상기 3 조건을 충족시키는 벡터로서, 예를 들어 PL프로모터/cI857 리프레서 유전자를 보유하고, 고온에서 유도되는 pPAC 31 (WO98/12343 호), lac 프로모터/lacIts 리프레서 유전자를 보유하고, 고온에서 유도되는 pBB 1 [Gene, 70, 415 (1988), PL프로모터/cI857 리프레서 유전자를 보유하고, 고 pH 로 유도되는 pRK 248 cIts [Gene, 97,125 (1991)], proU 발현제어영역을 보유하고, 고침투압 하에서 유도되는 pOSEX 2 [Gene, 151, 137 (1994)], trc 프로모터/lacIq리프레서 유전자를 보유하고, 이소프로필-β-D-티오갈락토시드 (IPTG) 로 유도되는 pTrc 99 A [Gene, 69, 301 (1988)], araBAD 프로모터/araC 리프레서 유전자를 보유하고, L-아라비노스로 유도되는 pAL 9181 [Appl. Microbiol. Biotechnol., 37, 205 (1992)], 당질계의 탄소원에서 비단질계의 탄소원으로 전환함으로써 유도되는 벡터 등의 대장균으로 구축되어 있는 유도성발현 벡터를 들 수 있다.
그리고, 이들 유도성발현 벡터상의, 발현재현에 관계되는 전사ㆍ번역 시그널 영역이 변이기술 또는 재편성 DNA 기술로 개변된 벡터도 동일하게 사용할 수 있다.
이들 기지의 유도성발현 벡터 또는 그것들로부터 더욱 개량된 벡터를 대장균 이외의 숙주로 이용하는 경우에는 이 숙주로 기능하는 복제 기점을 삽입하면 된다. 예를 들어, 코리네박테리움 암모니아게네스로 사용하는 경우에는 이 벡터에 코리네박테리움 암모니아게네스로 기능하는 코리네박테리움 글루타미캄에서 유래하는 플라스미드가 가지는 복제 기점 등을 삽입할 수 있다.
코리네박테리움 글루타미캄에서 유래하는 플라스미드로는, 예를 들어 pCG 1 (일본 공개특허공보 134500/82), pCG 2 (일본 공개특허공보 35197/83), pCG 4 (일본 공개특허공보 183799/82), PAM 330 (일본 공개특허공보 67699/83), pAG 1, pAG 3, pAG 14, pAG 50 (일본 공개특허공보 166890/87) 를 들 수 있다
코리네박테리움에 있어서, 온도를 상승시킴으로써 유도할 수 있는 벡터로는, 예를 들어 대장균에 있어서 고온에서 유도되는 벡터인 pPAC 31 에 함유되는 PL프로모터/cⅠ857 유전자와, 코리네박테리움 내에서 자립 복제할 수 있는 벡터를 연결하여 작제되는 플라스미드 벡터 등을 들 수 있고, 아세트산 등의 비당질 탄소원으로 유도 할 수 있는 벡터로는 pCEX 2 (일본 공개특허공보 224259/91) 등을 바람직한 벡터로서 들 수 있다.
한편, 이들 유도성발현 벡터상의 유전자 발현제어에 관계되는 전사-번역 시그널이, 사용되는 미생물내에서 기능하지 않거나, 기능해도 상기 3 요건을 충분히 충족시키지 못하는 경우에는 이 전사-번역 시그널 영역을 변이기술 또는 재조합 DNA 기술을 사용하여 상기 3 요건을 충분히 개량하거나, 이 미생물에 적용할 수 있는 유도발현 시스템을 새로이 개발할 필요가 있다. 전자의 경우에는, 사용되는 미생물에서 이미 알려진 전사-번역 시그널 배열을 참고하여, 예를 들어 부위돌연변이 (Site-derected-mutagenesis) 등의 방법에 의하여 실시할 수 있다. 후자의 경우에는, 대장균 등으로 구축된 전술한 바와 같은 일반적인 유도발현 시스템의 개발방법에 준하여 개발구축 할 수 있다
유도성 발현계를 구비한 미생물으로서, 바람직하게는 대장균에 있어서 고온에서 유도되는 벡터인 pPAC 31 에 함유되는 PL프로모터/cI857 유전자와, 코리네박테리움 내에서 자립 복제할 수 있는 벡터를 연결하여 작제되는 온도유도형 플라스미드 벡터, 또는 저렴한 아세트산의 첨가로 발현을 제어할 수 있는 pCEX 2 를 유전자 유도발현 시스템으로 사용하여 각각 조성한 코리네박테리움 암모니아게네스 등을 들 수 있다.
본 발명에서는, 상기 3 조건을 충족시키면 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 코드하는 유전자가 벡터 플라스미드상에 존재하거나, 염색체에 편입되어 있어도 문제는 없다. 즉, 이 유전자의 발현을 소망하는 바와 같이 제어할 수 있다면, 플라스미드의 보유주, 유전자의 염색체 편입주의 어느 것이어도 특별히 한정되지 않는다.
푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 코드하는 유전자를 함유하는 유도발현 플라스미드를 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하는 미생물에 도입하는 방법으로서, 프로토플라스트법, 전기펄스법, 염화칼슘법, Molecular Cloning, A Laboratory Manual, Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press (1989) (이하, 머레큐러ㆍ클로닝 제 2 판으로 약기함) 등에 기재된, 통상 사용되는 방법을 들 수 있다.
예를 들어, 숙주균으로서 코리네박테리움속 세균을 사용하는 경우에는, 프로트플라스트법 (일본 공개특허공보 183799/82), 전기펄스법 (일본 공개특허공보 207791/90) 이 특히 유효하다. 숙주균으로서 대장균을 사용하는 경우에는 염화칼슘법 [J. Mol. Biol., 53, 159 (1970)] 등도 사용할 수 있다.
이렇게 하여 얻어진 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 코드하는 유전자를 도입한 본 발명의 형질전환체를, 탄소원, 질소원, 무기물류, 다시 필요에 따라서 유기 미량 영양소를 함유하는 통상의 배지에서 배양하고, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생성 축적 후, 열처리 또는 아세트산 첨가 등의 유도처리를 실시함으로써 푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있다.
상기 발효공정에서 사용하는 배지내의 탄소원으로서, 상기 미생물에 의해 축적될 수 있는 임의의 탄소원을 사용할 수 있다.
상기 발효공정에서 사용되는 배지의 탄소원으로는, 글루코오스, 프럭토스, 슈크로스, 당밀, 폐당밀, 전분가수분해물 등의 탄수화물, 에탄올, 글리세린, 소르비톨 등의 알코올류, 피루브산, 젖산 등의 유기산, 글리신, 알라닌, 글루탐산, 아스파라트산 등의 아미노산 등, 이 미생물이 자화 (資化) 가능한 것이면 어느 것이나 사용할 수 있다. 이들 사용농도는 5∼30 % 가 바람직하다.
질소원으로는 암모니아, 염화암모늄, 황산암모늄, 질산암모늄, 탄산암모늄, 아세트산 암모늄, 인산암모늄 등의 각종 무기 및 유기 암모늄염, 우레아 각종 아미노산, 펩톤, NZ 아민, 육 추출물 (meat extract), 효모 추출물, 콘 스티프 리퀴어, 카세인 가수분해물, 피시 밀 (fish meal) 또는 그 소화물 등 여러 가지를 들 수 있다.
무기물로는, 칼륨 디히드로겐포스페이트, 디칼륨 히드로겐포스페이트, 황산마그네슘, 인산마그네슘, 염화나트륨, 황산제1철, 황산망간, 황산아연, 탄산칼슘 등을 사용할 수 있다.
사용하는 미생물이 아미노산, 핵산, 비타민 등 특정한 영양물질을 생육 (生育) 에 있어서 요구되는 경우에는 배지에 이들 물질을 적절한 양을 첨가한다.
배양은 진탕배양 또는 통기 교반배양 등의 호기(好氣)의 조건하에서 행한다. 배양온도는 일반적으로 26℃∼37℃ 가 최적이다. 배양기간은 통상 1 일∼5 일 동안이다.
푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 코드하는 유전자를 발현시키기 위한 유도처리조건으로는, 예를 들어
pPAC 31 또는 pBB 1 : 통기 교반 조건하에서 37℃∼42℃ 에서 1∼24 시간, pRK 248 cIts : pH 9 에서 1∼24 시간,
pOSEX 2 : 50 ∼300 mmol/l NaCl 존재 하에서 1∼24 시간,
pTrc 99 A : 0.1 ∼0.5mmol/l IPTG 존재 하에서 1∼24 시간,
pAL 9181 : 0.2% L-아라비노스 첨가조건 하에서 1∼24 시간,
pCEX 2 : 0.1%∼2% 아세트산 암모늄 또는 아세트산나트륨 첨가조건 하에서 1∼24 시간, 처리하는 것이 바람직하다
푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성하는 반응공정에 있어서, 계면활성제를 첨가하는 것이 바람직하다.
계면활성제로서는 세포막을 통한 푸린-뉴클레오티드의 투과를 촉진하는 계면활성제가 바람직하다.
적합한 예는, 폴리옥시에틸렌 스테아릴아민 (예를 들어, 나이민S-215 일본 유시사 제조), 세틸트리메틸암모늄 브로마이드, Cation FB, Cation F2-40 E 등의 양이온성 계면활성제, 나트륨 올레일아미드황산, 뉴레크스 TAB 및 라비졸 80 등의 음이온성 계면활성제, 폴리옥시에틸렌소르비탄 모노스테아레이트 (예를 들어 비이온 ST 221) 등의 양성 계면활성제는 통상 0.1∼50 ㎎/㎖, 바람직하게는 1∼20 ㎎/㎖ 의 농도로 사용된다.
푸린 뉴클레오티드의 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성하는 공정의 반응은 pH 6∼8 로 조정하고, 온도 20∼40℃ 로 유지하여 1∼48 시간 동안 행한다.
반응종료 후, 반응 혼합물중에 생성 축적된 푸린 뉴클레오티드를 채집하는 방법은, 균체를 제거하여 농축 정석 (晶析) 하는 방법, 활성탄처리법, 혹은 이온교환수지법 등의 공지 방법에 의하여 실시할 수 있다 [엔토오 이사오 등, 가가꾸 공학회 (편)[바이오세퍼레이션 프로세스 편람], 쿄오리츠 출판 (1996)].
이하에서 본 발명의 실시예를 나타내는데, 본 발명은 이들 실시예에 한정되는 것은 아니다. 유전공학적 수법은 미리 적시하지 않는 한, 머레큐러ㆍ클로닝 제 2 판에 기재된 방법에 준하여 행하였다.
[실시예]
실시예 1
PL프로모터 지배하에서 대장균의 XMP 아미나아제 유전자를 가지는 코리네박테리움 암모니아게네스의 XMP 생산균의 조성 및 이 미생물에 의한 GMP 의 생산
(1) XMP 아미나아제 유전자의 발현을 온도의 변화에 의하여 제어할 수 있는 유도성발현 플라스미드 pLAC 857 의 조성
열 유도성발현 플라스미드 pLAC 857 은 공지의 플라스미드 pPLA 66 에서 이하의 2 가지 공정을 거쳐 구축하였다. pPLA 66 은 PL프로모터 및 trpL 의 SD 서열의 하류에 XMP 아미나아제 유전자를 연결함으로써 조성된 XMP 아미나아제의 고발현 플라스미드이다 [Biosci. Biotech. Biochem., 61, 840 (1997)].
온도 감수성 리프레서 유전자 cI 857 을 플라스미드 pPLA 66 에, 이하의 방법으로 도입하였다.
pPLA 66 (1 ㎍)를 EcoR Ⅰ (5 단위) 및 BalⅡ (5 단위) 로 절단하였다. 이 절단물을 아가로스겔 전기영동법으로 분리하고, PL프로모터 및 대장균에서 유래하는 XMP 아미나아제 유전자 (guaA 유전자) 부분을 포함하는 DNA 단편을 QIAGEN 사 제조 QIAEX Ⅱ 를 사용하여 겔에서 회수하였다.
cI 857 유전자를 함유하는 플라스미드 pPAC 31 (WO98/12343 호) (1㎍)를 EcoR Ⅰ (5 단위) 및 BamH 1 (5 단위) 로 절단하였다. 이 절단물을 아가로스겔 전기영동으로 분리하고, cI 857 유전자, 암피실린 내성 유전자 및 대장균에서 유래하는 복제 기점을 함유하는 DNA 단편을 겔에서 회수하였다.
이 유전자를 함유하는 DNA 단편과 앞서 조제한 guaA 유전자를 함유하는 DNA 단편을 타카라 주조사에서 제조한 라이게이션 키트를 사용하여 연결처리하였다.
이 연결처리액을 사용하여 대장균 JM 109 (타카라 주조사 제조) 를 형질전환한 후, 100 ㎍/㎖ 암피실린을 함유하는 L 한천배지상에 도포하고, 암피실린에 내성이 된 형질전환체를 얻었다.
얻어진 형질전환체에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 DNA 를 추출하였다.
이 플라스미드를 각종 제한효소로 절단해석한 결과, PL프로모터 지배하에 연결된 XMP 아미나아제 유전자, cI 857 유전자, 암피실린 내성 유전자 및 대장균에서 자발적으로 복제가능한 플라스미드의 복제 기점으로 이루어지는 구조를 가지는 플라스미드 pLA 857 을 취득하였음이 확인되었다.
이 플라스미드 pLA 857 에, 코리네박테리움에서 자발적으로 복제가능한 플라스미드의 복제 기점을 아래의 방법으로 삽입하였다.
플라스미드 pLA 857 (1 ㎍)을 본 플라스미드상에 유일하게 존재하는 Pst Ⅰ (5 단위) 로 절단하고, 이 절단물을 아가로스겔 전기영동법으로 분리하여 겔에서 회수하고, pLA 857 의 Pst Ⅰ 절단물을 취득하였다.
코리네박테리움 암모니아게네스에서 복제할 수 있는 플라스미드 벡터 pCG 116 (일본 공개특허공보 265892/89) (1 ㎍) 를 Pst Ⅰ (5 단위) 로 절단하고, 재결합을 방지하기 위하여 알칼리포스파타제 처리에 의한 DNA 의 탈인산화 후, 페놀추출처리하고 에탄올 침전을 행하여, pCG 116 의 Pst Ⅰ 절단물을 취득하였다.
상기에서 취득한, pLA 857 의 Pst 1 절단물과 pCG 116 의 Pst 1 절단물을 상기 라이게네이션 키트를 사용하여 연결처리하였다.
이 연결처리에 의하여 취득한 DNA 1 ㎍ 을 사용하여, 전기펄스법 [Appl. Microbiol. Biotechnol., 30, 283 (1989)] 에 의하여 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872 주를 형질전환하고, 스펙티노마이신 100 ㎍/㎖ 를 함유하는 A 한전배지 [글루코오스 0.5 %, 펩톤 1 %, 육 추출물 0.5 %, 효모 추출물 0.5 %, 염화나트륨 0.25 %, 한천 1.5%, 아데닌 10 ㎎/1, 구아닌 10 ㎎/ℓ (pH 7.2)] 에 도포하였다.
스펙티노마이신에 내성이 된 형질전환체에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 DNA 를 추출하였다.
이 플라스미드를 각종 제한효소로 절단해석하고, 얻어진 형질전환주가 도 1 에 나타낸 목적의 구조를 가지는 플라스미드 pLAC 857 을 보유하고 있는 것을 확인하였다.
pLAC 857 을 가지는 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872/pLAC 857 은 부다페스트조약에 근거하여 1999 년 2 월 5 일부로 고오교기쥬츠인 세이메이코오가꾸기쥬츠 켄큐쇼, 니혼코쿠 이바라기켄 츠쿠바시 히가시 1 초오메 1 방 3 고 (우편번호 305-0048) 에 FERM BP-6639 로서 기탁되어 있다.
(2) FERM BP-1261 주에 pLAC 857 을 도입한 주가 가지는 XMP 아미나아제활성의 측정
코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872/pLAC 857 (FERM BP-6639) 에서 알칼리 용균법에 의하여 pLAC 857 을 추출하였다.
이 플라스미드를 사용하여 전기영동법에 의하여 코리네박테리움 암모니아게네스의 XMP 생산균 FERM BP-1261 (특허번호 제 2618383 호 : 아데닌의 리키 요구성 및 구아닌 요구성) 을 형질전환하였다.
스펙티노마이신에 내성이 된 형질전환체에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 DNA 를 추출하였다.
이 플라스미드를 각종 제한효소로 절단해석하고, 얻어진 형질전환체가 pLAC 857 을 보유하고 있는 것을 확인하였다.
pLAC 857 을 가지는 XMP 생산균 FERM BP-1261 주를, 스펙티노마이신 100 ㎍/㎖ 를 함유하는 배지 (A 한천배지로부터 한천을 제거하여 제조한 배지)에서, 30 ℃ 및 37 ℃ 조건하에서 24 시간 동안 배양하였다.
배양 후, 원심분리에 의하여 균체를 취득하였다.
이 균체를 100 mmol/l Tris-HCl (pH 7.0) 으로 2 회 세정한 후, 동일 완충액 10 ㎖ 에 현탁하였다.
이 균체 현탁액에 유리조각 (신마루엔타프라이제스사 제조 0.1∼0.2 φ) 10 g 을 첨가하고, 빙냉하면서 호모게나이저 (니혼세이기사 제조) 로 10 분 동안 파쇄처리하였다.
얻어진 처리액을 4 ℃ 에서 10 분 동안 원심 (14000 ×g) 하고, 상청을 세포추출액으로서 회수하였다.
사전에 42 ℃ 로 보온한 세포추출액을 첨가한 반응DOR [160 mmol/l Tris-HCl (pH8.6), 12 mmol/l ATP Na23H2O, 16 mmol/l MgSO47H2O, 40 mmol/l (NH4)2SO4] 1.15 ㎖ 에 0.1 ㎖ 의 0.3 mol/l XMP 를 첨가하여 42 ℃ 에서 반응을 개시하였다. 15 분 후에 반응액에 3.9 ㎖ 의 3.5 % 의 과염소산을 첨가하여 반응을 정지시켰다.
이 반응 정지액을 3000 rpm 으로 10 동안 원심분리 한 후, 상청의 290 ㎚ 에 있어서의 흡광도를 측정하였다. 1 분 동안 1 μ㏖ 의 GMP 를 생성시키는 활성을 1 단위 (U) 로 하고, 단백질 1 ㎎ 당의 비활성을 산출하였다. 단백질은 플로틴ㆍ어세이키트 (바이오라드사 제조) 를 사용하여 정량하였다.
결과를 제 1 표에 나타낸다. 30 ℃ 에서 배양한 균체에서는 활성이 검출되지 않는 반면, 37 ℃ 에서 배양한 균체는 활성이 검출되었다. 본 결과는 p LAC 857 을 가지는 FERM BP-1261 주에 있어서, XMP 아미나아제 유전자의 발현이 PL프로모터의 지배하에 있고, 이 효소활성을 온도에 의하여 제어할 수 있는 것을 나타내고 있다.
배양온도 비활성 (μ㏖/min/㎎ 단백질)
30 ℃ 검출되지 않음
37 ℃ 0.25
(3) pLAC 857 을 가지는 XMP 생산균 FERM BP-1261 주에 의한 GMP 의 생산
pLAC 857 을 가지는 FERM BP-1261 주를 스트렙토마이신 20 ㎍/㎖ 을 함유하는 A 한천배지상에서 30 ℃, 2 일 동안 배양한 후, 얻어진 균체를 스트렙토마이신 20 ㎍/㎖ 을 함유하는 60 ㎖ 의 C 시드 배지 [글루코오스 5 %, 효모 추출물 1 %, 펩톤 1 %, NaCl 0.25 %, 우레아 0.3 %, 아데닌 150 ㎎/ℓ, 구아닌 150 ㎎/ℓ (pH 7.2)] 를 첨가한 250 ㎖ 용량의 3각 플라스크에 균을 심고, 30 ℃, 24 시간 동안 진탕배양하였다.
얻어진 배양액 전량을 0.94 ℓ의 D 시트배지 [글루코오스 8.8 %, 육 추출물 1.7 %, 펩톤 1.7 %, KH2PO40.167 %, K2HPO40.167 %, MgSO4ㆍ7H2O 0.167 %, 아데닌 333 mg/l, 구아닌 350mg/l, FeSO4ㆍ7H2O 33 ㎎/ℓ, ZnSO4ㆍ7H2O 17 ㎎/ℓ, MnSO4ㆍ4∼6 H2O 6.7 ㎎/ℓ, β-알라닌 25 ㎎/ℓ, L-시스테인 33 ㎎/ℓ, 비오틴 167 ㎍/ℓ, CuSO4ㆍ5H2O 1.3 ㎎/ℓ, 티아민 8.3 ㎎/ℓ (pH 7.2)] 를 첨가한 2 ℓ용량의 발효조에 균을 심고, 5.5 mol/l 암모늄수로 pH 를 7.2 로 유지하면서, 30 ℃, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 24 시간 동안 배양하였다.
얻어진 배양액 (120 ㎖) 를, 0.88 ℓ 의 F 발효배지 [글루코오스 8 %, 오르토인산 1.67 %, KOH 1.29 %, MgSO4ㆍ7H2O 1.2 %, CaCl2ㆍ2H2O 123 ㎎/ℓ, FeSO4ㆍ7H2O 24.6 ㎎/ℓ, MnSO4ㆍ4∼6H2O 12.3 ㎎/ℓ, ZnSO4ㆍ7H2O 12.3 ㎎/ℓ, β-알라닌 18.5 ㎎/ℓ, L-시스테인 24.6 ㎎/ℓ, 니코틴산아미드 6.2 ㎎/ℓ, 히스티딘 24.6 ㎎/ℓ, 비오틴 185 ㎍/ℓ, CuSO4ㆍ5H2O 2.5 ㎎/ℓ, 아데닌 203 ㎎/ℓ, 구아닌 10 ㎎/ℓ (pH 7.2)] 를 첨가한 2 ℓ용량의 발효조에 균을 심고, 5.5 mol/l 암모늄수로 pH 를 7.2 로 유지하면서, 28 ℃, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 44 시간 동안 배양하였다.
배양 종료 후, 배지 상청 중의 XMP 및 GMP 의 축적량을 HPLC 를 사용하여 다음과 같이 하여 정량하였다.
HPLC 분석
칼럼: Asahipak GS-320H (아사히카세이사 제조)
용출액: 0.2 mol/l NaH2PO4(PH 3.0)
유속: 1 ㎖/min
검출: UV 254 ㎚
XMP 및 GMP 의 축적량은 UV 254 ㎚ 의 흡광도에 의하여 측정하고, 흡광강도를 스탠더드와 비교하여 정량하였다.
HPLC 분석의 결과, XMP 는 27.2 g/ℓ생성 축적되어 있으나, GMP 는 검출되지 않았다.
XMP 아미나아제 유전자를 유도발현시키기 위하여 배양 브로스를 40 ℃ 로 승온시고 5.5 mol/l 암모늄수로 pH 7.2 로 유지하면서, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 조건에서 6 시간 동안 열처리하였다.
이 열유도처리한 XMP 의 발효액에 글루코오스 2.5 %, 피트산 10 g/ℓ, MgSO4ㆍ7H2O 4.4 g/ℓ, Na2HPO49.36 g/ℓ, 아데닌 96.9 ㎎/ℓ, 나이민 S-215 10 g/ℓ를 첨가한 후, 5.5 mol/l 암모늄수로 pH 를 7.4 로 유지하면서, 40 ℃, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 24 시간 동안 반응시켰다.
반응 후, 배지 상청 중의 GMP 의 축적량을 상기 HPLC 분석 조건에서 정량하였다.
HPLS 분석 결과, 20.8 g/ℓ 의 생성 축적이 확인되었다.
실시예 2
이소시트레이트 리아제 유전자의 프로모터 지배 하에 코리네박테리움 암모니아게네스의 XMP 아미나아제 유전자를 가지는 코리네박테리움 암모니아게네스의 XMP 생산균의 조성 및 이 균주에 의한 GMP 의 생산
(1) PCR 법에 의한 XMP 아미나아제 유전자의 증폭 및 클로닝
코리네박테리움 암모니아게네스의 XMP 아미나아제 유전자의 단리는 염기서열에 기초하여 PCR 법으로 다음과 같이 행하였다.
먼저, XMP 아미나아제 유전자의 양 말단에 위치하고, 각각 제한효소 AflⅡ, BamHⅠ 절단부위를 가지는 서열번호 1 및 2 에 나타내는 올리고 뉴클레오티드를 합성하였다. 또한 주형으로 하는 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872 의 염색체 DNA 의 조제는 글리신 존재 하에서 배양한 균체를 라이소짐과 아크로모펩티다아제 처리하고, 프로토플라스트를 조제하는 방법 (일본 공개특허공보 225776/94) 에 따라서 행하였다.
염색체 DNA (0.1 ㎍) 과 프라이머로서, 이 올리고 뉴클레오티드 (0.25 μM) 및 탁트 DNA 폴리멜라아제 (타카라 주조사 제조) 2.5 유니트를 dATP, dCTP, dGTP, dTTP 각 200 μM, 50 mmol/l 염화칼륨, 1.5 mmol/l 염화마그네슘 및 0.0001 % 의 젤라틴을 함유하는 10 mmol/l 트리스-염산완충액 (pH 8.3) 0.1 ㎖ 에 첨가하고, PCR 을 행하였다.
PCR 은 94 ℃ 에서 90 초 동안, 50 ℃ 에서 120 초 동안, 72 ℃ 에서 120 초 동안의 반응을 1 사이클로 하여 10 사이클 반복하고, 94 ℃ 에서 90 초 동안, 40 ℃ 에서 120 초 동안, 72 ℃ 에서 120 초 동안의 반응을 1 사이클로 하여 10 사이클 반복하고, 다시 94 ℃ 에서 90 초 동안, 40 ℃ 에서 120 초 동안, 72 ℃ 에서 180 초 동안의 반응을 1 사이클로 하여 20 사이클 반복한 후, 72 ℃ 에서 360 초 동안 반응하는 조건으로 행하였다.
얻어진 반응액을 사용하여 아가로스겔 전기영동을 행하고, 목적하는 약 1.6 kb 의 DNA 단편을 회수하였다.
이 DNA 단편을 제한효소 AflⅡ (5 단위) 및 BamHⅠ (5 단위) 로 절단하고, DNA 단편의 양단이 AflⅡ 또는 BamHⅠ 로 처리된 약 1.6 kb 의 절단물을 아가로스겔 전기영동법으로 분리, 회수하였다.
(2) XMP 아미나아제 유전자의 발현을 탄소원에 의하여 제어할 수 있는 유도성발현 플라스미드 pGUA 2 의 조성
유도성발현 벡터 pCEX 2 (일본 공개특허공보 224259/91) 를 사용하여 XMP 아미나아제 유전자의 발현을 탄소원에 의하여 제어할 수 있는 플라스미드를 아래와 구축하였다.
pCEX 2 는 코리네박테리움 암모니아게네스의 이소시트레이트 리아제 유전자의 발현제어영역 및 전사종결 시그널 서열을 포함하는 벡터로서, 멀티클로닝 부위에 삽입된 외래 유전자의 발현은 당질 존재 하에서는 억제되고, 아세트산 등의 비당질 존재 하에서 유도된다.
pCEX 2 벡터 DNA (1 ㎍) 을 AflⅡ (0.5 단위) 로 부분 절단한 후, BamHⅠ (5 단위) 로 절단하고, 이소시트레이트 리아제 유전자의 발현억제영역, 전사종료 시그널영역, 스펙티노마이신 내성 유전자 및 코리네박테리움 암모니아게네스에서 자발적으로 복제가능한 플라스미드의 복제 기점을 포함하는 7.6 kb 의 DNA 단편을 아가로스겔 전기영동법에 의하여 분리, 회수하였다.
이 DNA 단편과 상기 실시예 2 (1) 에서 취득한 XMP 아미나아제 유전자의 PCR 증폭단편을 연결처리하고, 연결 DNA 를 취득하였다.
이 연결 DNA (1 ㎍)를 사용하고, 전기펄스법을 사용하여 코리네박테리움ㆍ암모니아게네스 ATCC 6872 주를 형질전환하고, 스펙티노마이신 100 ㎍/㎖ 를 함유하는 A 한천배지에 도포하였다.
스펙티노마이신에 내성이 된 형질전환체에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 DNA 를 추출하였다.
이 플라스미드 DNA 를 각종 제한효소로 절단해석하고, 얻어진 형질전환주가 도 2 에 나타낸 목적의 구조를 가지는 플라스미드 pGUA 2 를 가지는 것을 확인하였다.
(3) FERM BP-1261 주에 pGUA 2 를 도입한 주가 가지는 XMP 아미나아제 활성의 측정
pGUA 2 를 가지는 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872 주에서 알칼리 용균법으로 플라스미드 pGUA 2 를 추출하였다.
이 플라스미드를 사용하고, 전기펄스법에 의하여 코리네박테리움 암모니아게네스의 XMP 생산균 FERM BP-1261 (아데닌의 리키 요구성 및 구아닌 요구성) 을 형질전환하였다.
스펙티노마이신에 내성이 된 형질전환체에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 DNA 를 추출하였다.
이 플라스미드를 각종 제한효소로 절단해석한 결과를, 형질전환주가 pGUA 2 를 보유하고 있다는 것을 확인하였다.
pGUA 2 를 가지는 XMP 생산균 FERM BP-1261 주를, 스펙티노마이신 100 ㎍/㎖ 를 함유하는 A 배지 및 이 배지의 글루코오스를 아세트산 암모늄으로 대체한 배지의 2 종류의 배지에서 30 ℃ 에서 24 시간 동안 진탕 배양하였다.
얻어진 배양액에서 각각 균체를 취득하고, 실시예 1 (2) 와 동일하게 실시하여 세균추출액을 조제하였다.
이들 추출액을 사용하고, 이들 추출액 중의 XMP 아미나아제 활성을 실시예 1 (2) 에 기재된 방법에 준하여 측정하였다.
결과를 표 2 에 나타낸다.
글루코오스를 탄소원으로 하여 배양한 균체에서는 매우 낮은 수준의 활성밖에 검출되지 않은 반면, 2 % 아세트산 암모늄을 탄소원으로 하여 배양한 균체에서는 고수준의 활성이 검출되었다.
이 결과는, pGUA 2 를 가지는 FERM BP-1261 주에 있어서, XMP 아미나아제 유전자의 발현이 이소시트레이트 리아제 유전자의 프로모터 지배 하에 있고, 이 효소활성을 탄소원에 의하여 제어할 수 있는 것을 나타내고 있다.
탄소원 비활성 (μ㏖/min/㎎ 단백질)
글루코오스 0.05
아세트산 암모늄 0.38
(4) XMP 생산균 FERM BP-1261 주에 pGUA 2 를 도입한 주에 의한 GMP 의 생산
pGUA 2 를 가지는 FERM BP-1261 주를 사용하여, 실시예 1 (3) 과 동일한 배양조건에서 XMP 발효를 행하였다. 배양 종료 후의 배지 상청 중의 XMP 및 GMP 의 생성 축적량을 실시예 1 (3) 과 동일한 방법으로 정량하였다.
그 결과, XMP 의 축적량은 18.4 g/ℓ 이었다. GMP 는 검출되지 않았다.
발효 종료 후, XMP 아미나아제 유전자를 유도발현시키기 위하여 아세트산 암모늄을 최종 농도가 2 % 가 되도록 첨가하고, 5.5 mol/l 의 암모늄수로 pH 7.2 로 유지하면서 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 10 시간 동안 계속 배양하였다.
아세트산 암모늄 존재 하에서 유도처리를 실시한 이 배양액에 글루코오스 2.5 %, 피트산 10 g/ℓ, MgSO4ㆍ7H2O 4.4 g/ℓ, Na2HPO49.36 g/ℓ, 아데닌 96.9 ㎎/ℓ, 나이민 S-215 10 g/ℓ를 첨가한 후, 5.5 mol/l 암모늄수로 pH 를 7.4 로 유지하면서, 40 ℃, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 24 시간 동안 반응시켰다.
반응 후, 이 반응 혼합물의 배지 상청 중의 GMP 의 축적량을 실시예 1 (3) 에 기재된 방법에 준하여 정량하였다.
이 반응 혼합물에 GMP 는 14.4 g/ℓ으로 생성 축적되어 있었다.
실시예 3
이소시트레이트 리아제 유전자의 프로모터 지배 하에 대장균의 이노신-구아노신 키나아제 유전자를 가지는 코리네박테리움 암모니아게네스의 이노신 생산균의 조성 및 이 균주에 의한 IMP 의 생산
(1) PCR 법에 의한 이노신-구아노신 키나아제 유전자의 증폭 및 클로닝
대장균의 이노신-구아노신 키나아제 유전자의 단리는, 공지의 염기서열 (WO91/08286 호) 에 기초하여 PCR 법에 의하여 다음과 같이 실시하였다.
이노신-구아노신 키나아제 유전자의 양 말단에 위치하고, 각각 제한효소 AflⅡ, BamHⅠ 절단부위를 가지는 서열번호 3 및 4 에 나타내는 올리고 뉴클레오티드를 합성하였다.
이노신-구아노신 키나아제 유전자의 주형으로서, 대장균 HM70/pBM 2 주 (WO91/08286 호) 가 보유하는 플라스미드 pBM 2 를 사용하였다.
이 플라스미드 DNA (0.1 ㎍) 와 프라이머로서 이 올리고 뉴클레오티드 (0.25 μM 각각) 및 Taq DNA 폴리멜라아제 (타카라 주조사 제조, 2.5 유니트)를 dATP, dCTP, dGTP, dTTP 각 200 μM, 50 mmol/l 염화칼륨, 1.5 mmol/l 염화마그네슘 및 0.0001 % 의 젤라틴을 함유하는 10 mmol/l 트리스-염산완충액 (pH 8.3) 0.1 ㎖ 에 첨가하고, PCR 을 행하였다.
PCR 은 94 ℃ 에서 90 초 동안, 50 ℃ 에서 120 초 동안, 72 ℃ 에서 120 초 동안의 반응을 1 사이클로 하여 10 사이클 반복한 후, 94 ℃ 에서 90 초 동안, 40 ℃ 에서 120 초 동안, 72 ℃ 에서 120 초 동안의 반응을 1 사이클로 하여 10 사이클 반복하고, 다시 94 ℃ 에서 90 초 동안, 40 ℃ 에서 120 초 동안, 72 ℃ 에서 180 초 동안의 반응을 1 사이클로 하여 20 사이클 반복한 후, 72 ℃ 에서 360 초 동안 반응하는 조건으로 행하였다.
얻어진 PCR 반응산물과 PCR 산물 클로닝용 벡터-pT-Adv 벡터 (클론테크사 제조) 를 연결처리하였다.
이 연결처리에 의하여 취득된 DNA 1 ㎍ 를 사용하여 대장균 DH 5 α를 형질전환하고 암피실린 100 ㎍/㎖ 을 함유하는 L 한천배지에 도포하였다.
암피실린에 내성이 된 형질전환체에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 pT-Al 을 추출하였다.
이 플라스미드 pT-AI 의 구조를 각종 제한효소를 사용하여 해석하고, 이 플라스미드가 이노신-구아노신 키나아제 유전자 (1.3 kb), 암피실린 내성 유전자, 카나마이신 내성 유전자, 및 대장균 주에서 자발적으로 복제가능한 플라스미드의 복제 기점을 가지는 것을 확인하였다.
(2) 이노신-구아노신 키나아제 유전자의 발현을 탄소원에 의하여 제어할 수 있는 유도성 발현 플라스미드 pIGK 2 의 조성
유도발현 벡터 pCEX 2 (일본 공개특허공보 224259/91) 를 사용하여 이노신-구아노신 키나아제 유전자의 발현을 탄소원에 의하여 제어할 수 있는 플라스미드를 아래와 같이 구축하였다.
pCEX 2 벡터 DNA 1 ㎍ 를 Kpn Ⅰ (5 단위) 로 절단하고, 이소시트레이트 리아제 유전자의 발현제어영역, 전사종료 시그널영역, 스펙티노마이신 내성 유전자 및 코리네박테리움 글루타미캄에서 자발적으로 복제가능한 플라스미드의 복제 기점을 포함하는 7.6 kb 의 DNA 단편을 아가로스겔 전기영동법에 의하여 분리, 회수하였다.
상기 실시예 3 (1) 에서 얻은 이노신-구아노신 키나아제 유전자를 함유하는 플라스미드 pT-AI (1 ㎍) 를 Kpn Ⅰ (5 단위) 로 절단한 후, 탈인산처리하였다.
이 Kpn Ⅰ 절단 DNA 단편과 상기 pCEX 2 의 Kpn Ⅰ 절단단편을 연결처리하였다.
얻어진 연결혼합액을 사용하여, 대장균 DH 5α 를 형질전환 후, 100㎍/ml 암피실린을 함유하는 L 한천배지상에 도포하고, 암피실린 내성이 된 형질전환주를 얻었다.
얻어진 형질전환체에서, 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드를 추출하였다.
이 플라스미드를 각종 제한효소로 절단해석한 결과, 도 3 에 나타낸 목적의 구조를 가지는 플라스미드 pIGK 2 를 얻었다.
이 DNA (1 ㎍) 를 사용하고, 전기펄스법에 의하여 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872 주를 형질전환시키고, 스펙티노마이신 100 ㎍/㎖ 를 함유하는 A 한천배지에 도포하였다.
스펙티노마이신에 내성이 된 형질전환체에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 DNA 를 추출하고, pIGK 2 를 가지는 것을 확인하였다.
pIGK 2 를 가지는 코리네박테리움ㆍ암모니아게네스 ATCC 6872/pIGK 2 는 부다페스트조약에 기초하여 1999 년 2 월 5 일부로 공업기술원 생명공학 기술연구소, 니혼코쿠 이바라기켄 츠쿠바시 히가시 1 초오메 1 방 3 고 (우편번호 305-0046) 에 FERM BP-6638 로서 기탁되어 있다.
(3) FERM BP-2217 주에 pIGK 2 를 도입하여 제조된 균주의 이노신-구아노신 키나아제 활성의 측정
코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872/pIGK 2 (FERM BP-6638 호) 에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 pIGK 2 를 추출하였다.
이 플라스미드를 사용하고, 전기펄스법에 의하여 코리네박테리움 암모니아게네스의 이노신 생산균 FERM BP-2217 (일본특허번호 제2578496 호: 아데닌의 리키 요구성 및 구아닌 요구성) 을 형질전환하였다.
스펙티노마이신에 내성이 된 형질전환체에서 알칼리 용균법에 의하여 플라스미드 DNA 를 추출하였다.
이 플라스미드를 각종 제한효소로 절단해석하고, 얻어진 형질전환주가 pIGK 2 를 보유하고 있는 것을 확인하였다.
pIGK 2 를 가지는 이노신 생산균 FERM BP-2217 주를, 스펙티노마이신 100 ㎍/㎖ 를 함유하는 A 배지 및 이 배지의 글루코오스를 아세트산 암모늄으로 대체한 배지의 2 종류의 배지에서 30 ℃ 에서 24 시간 동안 배양하였다.
얻어진 배양액에서 균체를 취득하고, 이들 균체로부터 실시예 1 (2) 에 기재된 방법에 준하여 세포추출액을 조제하였다.
이들 추출액 중의 이노신-구아노신 키나아제의 활성을 이하의 방법으로 측정하였다.
미리 30 ℃ 로 보온한 반응액 [100 mmol/l HEPES 완충액 (pH 7.2), 10 mmol/l MgSO4, 50 mmol/l KCl, 1 mmol/l ATP, 1 mmol/l 이노신] 0.1 ㎖ 에 세포추출액 0.01 ㎖ 를 첨가하고, 30 ℃에서, 30 분 정도 반응시켰다.
반응 중에, 시간 경과에 따라서 반응액의 일부를 샘플링하고, 0.2 mol/l NaH2PO4(H3PO4로 pH 2.6 으로 조정) 을 사용하여 샘플링액을 1/20 으로 희석시켜 반응을 정지시켰다.
이 반응정지액 중의 이노신 및 IMP 의 생성량을, 아래의 HPLC 분석조건으로 정량하였다.
HPLC 분석조건
칼럼: Asahipak GS-320H (아사히카세이사 제조)
용출액: 0.2 mol/l NaH2PO4(PH 2.6)
유속: 1 ㎖/min
검출: UV 254 ㎚
이노신 및 IMP 의 축적량은 UV 254 ㎚ 의 흡광도에 의하여 측정하고, 흡광강도를 스탠더드와 비교함으로써 정량하였다. 1 분 동안에 1 μ㏖ 의 IMP 를 생성시키는 활성을 1 단위 (U) 로 하고, 단백질 1 ㎎ 당의 비활성을 산출하였다.
단백질은, 플로틴ㆍ어세이키트 (바이오라드사 제조) 를 사용하여 정량하였다.
결과를 제 3 표에 나타내었다. 글루코오스를 탄소원으로 하여 배양한 균체에서는 매우 낮은 수준의 활성밖에 검출되지 않은 것에 대하여, 2 % 아세트산 암모늄을 탄소원으로 하여 배양한 균체에서는 높은 수준의 활성이 검출되었다. 본 결과는, pIGK 2 를 가지는 FERM BP-2217 주에 있어서, 이노신-구아노신 키나아제 유전자의 발현이 이소시트레이트 리아제 유전자의 프로모터 지배 하에 있고, 이 효소활성을 탄소원에 의하여 제어할 수 있다는 것을 나타내고 있다.
탄소원 비활성 (μ㏖/min/㎎ 단백질)
글루코오스 0.02
아세트산 암모늄 0.34
(4) pIGK 2 를 가지는 이노신 생산균 FERM BP-2217 주에 의한 IMP 의 생산
pIGK 2 를 가지는 FERM BP-2217 주를 스트렙토마이신을 20 ㎍/㎖ 함유하는 A 한천배지상에서 30 ℃, 2 일 동안 배양하였다.
배양 후, 얻어진 균체를 스트렙토마이신을 20 ㎍/㎖ 함유하는 CI 시드 배지 60 ㎖ [글루코오스 5 %, 효모 추출물 1 %, 펩톤 1 %, NaCl 0.25 %, 우레아 0.25 %, 아데닌 300 ㎎/ℓ및 구아닌 100㎎/ℓ(pH 7.2)] 을 함유하는 250ml 의 어렌마이어 플라스크에 접종한후, 30℃ 에서 24 시간동안 진탕 배양한다.
수득한 배양물 전체를 0.94 l 의 DI 시드 배지 [글루코오스 7 %, 육 추출물 1 %, 펩톤 1 %, KH2PO40.1 %, K2HPO40.1 %, MgSO4ㆍ7H2O 0.1 %, 아데닌 300 ㎎/ℓ, 구아닌 300㎎/ℓ, FeSO4ㆍ7H2O 10 ㎎/ℓ, ZnSO4ㆍ7H2O 10 ㎎/ℓ, MnSO4ㆍ4∼6H2O 10 ㎎/ℓ, β-알라닌 16 ㎎/ℓ, L-시스테인 20 ㎎/ℓ, 비오틴 30 ㎍/ℓ, CuSO4ㆍ5H2O 2 ㎎/ℓ, 티아민 6 ㎎/ℓ (pH 7.2)] 를 첨가한 2 ℓ용량의 발효조에 균을 심고, 5.5 mol/l 암모늄수로 pH 를 7.2 로 유지하면서, 30 ℃, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 24 시간 동안 배양하였다.
얻어진 배양액 (120 ㎖) 를, 0.88 ℓ의 FⅠ발효배지 [글루코오스 8 %, CSL 2.07 %, KH2PO40.21 %, K2HPO40.21 %, MgSO4ㆍ7H2O 0.43 %, CaCl2ㆍ2H2O 105 ㎎/ℓ, FeSO4ㆍ7H2O 10.4 ㎎/ℓ, MnSO4ㆍ4∼6H2O 20.7 ㎎/ℓ, ZnSO4ㆍ7H2O 5.2 ㎎/ℓ, 판토텐산칼슘 10.4 ㎎/ℓ, L-시스테인 20.7 ㎎/ℓ, 니코틴산 5.2 ㎎/ℓ, 비오틴 93.8 ㎍/ℓ, CuSO4ㆍ5H2O 0.51 ㎎/ℓ, 아데닌 313 ㎎/ℓ (pH 7.2)] 를 첨가한 2 ℓ용량의 발효조에 균을 심고, 5.5 mol/l 암모늄수로 pH 를 7.2 로 유지하면서, 28 ℃, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 44 시간 동안 배양하였다.
배양 종료 후, 이 배양액의 상청 중의 이노신 및 IMP 의 생성 축적량을 실시예 3 (3) 에 기재된 방법에 준하여 정량하였다.
배양 상청 중의 이노신의 생성 축적량은 23.1 g/ℓ이고, IMP 는 검출되지 않았다.
배양 종료 후, 이노신-구아노신 키나아제 유전자를 유도발현시키기 위하여 아세트산 암모늄을 최종 농도가 2 % 가 되도록 첨가하고, 5.5 mol/l 의 암모늄수로 pH 7.2 로 유지하면서, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 10 시간 동안 계속 배양하였다.
얻어진 배양액에, 글루코오스 2.5 %, 피트산 10 g/ℓ, MgSO4ㆍ7H2O 4.4 g/ℓ, Na2HPO49.36 g/ℓ, 아데닌 96.9 ㎎/ℓ, 나이민 S-215 10 g/ℓ를 첨가한 후, 5.5 mol/l 암모늄수로 pH 를 7.4 로 유지하면서, 40 ℃, 교반 (600 rpm), 통기 (1 ℓ/min) 의 조건에서 24 시간 동안 반응시켰다.
반응 후, 반응 상청 중의 IMP 의 축적량을 실시예 3 (3) 에 기재된 방법에 준하여 정량하였다.
37.7 g/ℓ의 IMP 가 반응액 중에 생성 축적되어 있었다.
본 발명에 의하여 조미료로서 큰 수요가 있는 푸린 뉴클레오티드를 동일 발효조내에서 효율적으로 제조하기 위한 제조법 및 이 제조법에 사용할 수 있는 미생물을 제공할 수 있다.
〈110〉 KYOWA HAKKO KOGYO CO., LTD.
〈120〉 PROCESS FOR PRODUCING PURINE NUCLEOTIDES
〈130〉 1
〈150〉 JP 29738/99
〈151〉 1999-02-08
〈160〉 4
〈170〉 KOPATIN 1.5
〈210〉 1
〈211〉 47
〈212〉 DNA
〈213〉 Artificial Sequence
〈220〉
〈223〉 Synthetic DNA
〈400〉 1
ccgcggctta aggaagttac ctgtgtgact caacctgcaa caactcc 47
〈210〉 2
〈211〉 40
〈212〉 DNA
〈213〉 Artificial Sequence
〈220〉
〈223〉 Synthetic DNA
〈400〉 2
aaaggatcct agaagtttta ctcccactcg atggttcccg 40
〈210〉 3
〈211〉 47
〈212〉 DNA
〈213〉 Artificial Sequence
〈220〉
〈223〉 Synthetic DNA
〈400〉 3
ccgcggctta aggaagtgac tttgatgaaa tttcccggta aacgtaa 47
〈210〉 4
〈211〉 40
〈212〉 DNA
〈213〉 Artificial Sequence
〈220〉
〈223〉 Synthetic DNA
〈400〉 4
aaaggatcca cgataactta acgatcccag taagactctt 40

Claims (19)

  1. 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하는 능력을 가지고, 또한 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있는 DNA 를 도입한 미생물을 배지에 배양하고, 상기 배양물 중에 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생성 축적시킨 후, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현시키고, 상기 배양물 중에 상기 전구물질에서 상기 푸린 뉴클레오티드를 생성 축적시키고, 상기 배양물 중에서 상기 푸린 뉴클레오티드를 채취하는 것을 특징으로 하는, 푸린 뉴클레오티드의 제조법.
  2. 제 1 항에 있어서, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 5'-크산틸산, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 5'-크산틸산 아미나아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-구아닐산인 제조법.
  3. 제 1 항에 있어서, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 구아노신, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 이노신-구아노신 키나아제 또는 포스파타아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-구아닐산인 제조법.
  4. 제 1 항에 있어서, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 이노신, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 이노신-구아노신 키나아제 또는 포스파타아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-이노신산인 제조법.
  5. 제 1 항에 있어서, 미생물이 코리네박테리움속, 에쉘리히아속, 바실러스속으로 이루어지는 군에서 선택되는 미생물인 제조법.
  6. 제 1 항에 있어서, 미생물이 코리네박테리움 암모니아게네스인 제조법.
  7. 제 1 항에 있어서, 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가, 고온, 고 pH 및 고침투압에서 선택되는 조건을 변화시키거나, 또는 당질계의 탄소원에서 비당질계의 탄소원으로 전환함으로써 유도발현되는 것을 특징으로 하는 제조법.
  8. 제 7 항에 있어서, 비당질계의 탄소원이 아세트산 또는 아세트산염인 제조법.
  9. 푸린 뉴클레오티드 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있는 DNA.
  10. 제 9 항에 있어서, 고온, 고 pH 및 고침투압에서 선택되는 조건을 변화시키거나, 또는 당질계의 탄소원에서 비당질계의 탄소원으로 전환함으로써, 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있는 DNA.
  11. 제 10 항에 있어서, 비당질계의 탄소원이, 아세트산 또는 아세트산염인 DNA.
  12. 제 9 항 또는 제 10 항에 있어서, DNA 가 pLAC 857 또는 pIGK 2 인 DNA.
  13. 푸린 뉴클레오티드의 전구물질을 생산하는 능력을 가지고, 또한 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소를 유도발현할 수 있는 DNA 를 도입한 미생물.
  14. 제 13 항에 있어서, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 5'-크산틸산, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 5'-크산틸산아미나아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-구아닐산인 미생물.
  15. 제 13 항에 있어서, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 구아노신, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 이노신-구아노신 키나아제 또는 포스파타아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-구아닐산인 미생물.
  16. 제 13 항에 있어서, 푸린 뉴클레오티드의 전구물질이 이노신, 상기 전구물질에서 푸린 뉴클레오티드를 합성할 수 있는 효소가 이노신-구아노신 포스파타아제, 푸린 뉴클레오티드가 5'-이노신산인 미생물.
  17. 제 13 항에 있어서, 미생물이, 코리네박테리움속, 에쉘리히아속, 바실러스속으로 이루어지는 군에서 선택되는 미생물인 미생물.
  18. 제 13 항에 있어서, 미생물이, 코리네박테리움 암모니아게네스인 미생물.
  19. 제 18 항에 있어서, 미생물이, 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872/pLAC 857 (FERM BP-6639) 또는 코리네박테리움 암모니아게네스 ATCC 6872/pIGK 2 (FERM BP-6638) 인 미생물.
KR10-2000-0005405A 1999-02-08 2000-02-03 푸린 뉴클레오티드의 제조법 KR100400338B1 (ko)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2973899 1999-02-08
JP99-29738 1999-02-08

Publications (2)

Publication Number Publication Date
KR20000076602A true KR20000076602A (ko) 2000-12-26
KR100400338B1 KR100400338B1 (ko) 2003-10-01

Family

ID=12284459

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
KR10-2000-0005405A KR100400338B1 (ko) 1999-02-08 2000-02-03 푸린 뉴클레오티드의 제조법

Country Status (10)

Country Link
US (2) US20020192746A1 (ko)
EP (1) EP1029926A1 (ko)
KR (1) KR100400338B1 (ko)
CN (1) CN1267735A (ko)
AR (1) AR018697A1 (ko)
BR (1) BR0000323A (ko)
CA (1) CA2297613A1 (ko)
ID (1) ID24781A (ko)
MX (1) MXPA00001206A (ko)
TW (1) TWI222464B (ko)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20150027761A (ko) * 2012-07-03 2015-03-12 가부시키가이샤 지나리스 유용미생물 및 목적물질의 제조방법

Families Citing this family (15)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TWI222464B (en) * 1999-02-08 2004-10-21 Kyowa Hakko Kogyo Kk Process for producing purine nucleotides
KR100429925B1 (ko) * 2001-12-28 2004-05-03 씨제이 주식회사 5'-크산틸산을 생산하는 미생물
KR100542568B1 (ko) * 2003-12-10 2006-01-11 씨제이 주식회사 5'-크산틸산을 생산하는 미생물
WO2006065076A1 (en) * 2004-12-14 2006-06-22 Cj Corporation 5'-xmp aminase mutant
KR100959662B1 (ko) * 2008-01-04 2010-05-26 씨제이제일제당 (주) 이노신 생산능을 갖는 코리네박테리움속 미생물 및 이를이용한 이노신의 생산 방법
CN101503724B (zh) * 2009-03-16 2012-11-14 南京工业大学 一种利用生物磷酰化技术制备核苷酸的新方法
KR101210704B1 (ko) 2010-03-19 2012-12-10 씨제이제일제당 (주) 5'-크산틸산 및 5'-구아닐산 생산능이 향상된 미생물 및 이를 이용한 5'-크산틸산 또는 5'-구아닐산의 생산방법
DE102012024435A1 (de) 2012-12-14 2014-07-10 Forschungszentrum Jülich GmbH Verfahren zur Identifizierung einer Zelle mit gegenüber ihrem Wildtyp erhöhten intrazellulären Konzentration eines bestimmten Metaboliten, wobei die Veränderung der Zelle durch Rekombi-neering erreicht wird, sowie ein Verfahren zur Herstellung einer gegenüber ihrem Wildtyp genetisch veränderten Produktionszelle mit optimierter Produktion eines bestimmten Metaboliten, ein Verfahren zur Herstellung dieses Metaboliten, sowie dafür geeignete Nukleinsäuren
JP5426044B1 (ja) * 2013-05-30 2014-02-26 カゴメ株式会社 青果物の搾汁液の後味改善方法、飲食品の製造方法、及び飲食品
RU2542387C1 (ru) * 2013-09-27 2015-02-20 Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП "ГосНИИгенетика") БАКТЕРИЯ Bacillus subtilis, ПРОДУЦИРУЮЩАЯ 5`-АМИНОИМИДАЗОЛ-4-КАРБОКСАМИДРИБОЗИД (АИКАР), И СПОСОБ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКОГО СИНТЕЗА АИКАР ПУТЕМ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ТАКОЙ БАКТЕРИИ
KR101916611B1 (ko) * 2017-12-15 2018-11-07 씨제이제일제당 (주) 신규 폴리펩타이드 및 이를 이용한 imp 생산방법
KR101916622B1 (ko) * 2018-01-04 2018-11-07 씨제이제일제당 (주) 신규 폴리펩타이드 및 이를 이용한 imp 생산방법
CN109298086A (zh) * 2018-09-18 2019-02-01 江西省农业科学院农产品质量安全与标准研究所(江西省农业科学院农产品加工研究所) 一种同时测定鲜肉中多种呈味核苷酸的高效液相色谱方法与应用
CN112574934B (zh) * 2020-10-12 2022-05-06 廊坊梅花生物技术开发有限公司 高产鸟苷的工程菌及其构建方法与应用
CN112522350A (zh) * 2020-12-28 2021-03-19 广东肇庆星湖生物科技股份有限公司 一种提高鸟苷发酵菌株产率的方法

Family Cites Families (13)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
DE185092T1 (de) * 1984-03-12 1986-11-27 Kyowa Hakko Kogyo Co., Ltd., Tokio/Tokyo Verfahren zur herstellung von 5'-guanylsaeure.
US4655532A (en) * 1986-02-06 1987-04-07 Allied Corporation Circumferential grounding and shielding ring for an electrical connector
JPH0716431B2 (ja) * 1986-06-02 1995-03-01 協和醗酵工業株式会社 5′−グアニル酸の製造法
JPS63233798A (ja) * 1986-10-09 1988-09-29 Kyowa Hakko Kogyo Co Ltd 5′−グアニル酸の製造法
JP2886551B2 (ja) * 1989-05-26 1999-04-26 協和醗酵工業株式会社 発酵法による5’―イノシン酸の製造法
ATE132528T1 (de) * 1989-12-05 1996-01-15 Kyowa Hakko Kogyo Kk Inosin-guanosin-kinase
FR2668971A1 (fr) * 1990-11-14 1992-05-15 Merlin Gerin Boitier de protection d'un automate industriel.
KR100376635B1 (ko) * 1995-03-24 2003-06-12 아지노모토 가부시키가이샤 핵산의제조방법
JPH0937785A (ja) * 1995-05-25 1997-02-10 Ajinomoto Co Inc ヌクレオシド−5’−燐酸エステルの製造法
US5942012A (en) * 1995-06-09 1999-08-24 Tokyo Electron Limited Heat treatment apparatus
JP4304727B2 (ja) * 1996-11-21 2009-07-29 味の素株式会社 ヌクレオシド−5’−燐酸エステルの製造法
US7435560B1 (en) * 1997-07-18 2008-10-14 Ajinomoto Co., Inc. Method for producing purine nucleoside by fermentation
TWI222464B (en) * 1999-02-08 2004-10-21 Kyowa Hakko Kogyo Kk Process for producing purine nucleotides

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR20150027761A (ko) * 2012-07-03 2015-03-12 가부시키가이샤 지나리스 유용미생물 및 목적물질의 제조방법

Also Published As

Publication number Publication date
ID24781A (id) 2000-08-10
BR0000323A (pt) 2001-08-21
AR018697A1 (es) 2001-11-28
CN1267735A (zh) 2000-09-27
US20020192746A1 (en) 2002-12-19
MXPA00001206A (es) 2002-03-08
TWI222464B (en) 2004-10-21
CA2297613A1 (en) 2000-08-08
KR100400338B1 (ko) 2003-10-01
EP1029926A1 (en) 2000-08-23
US20040259212A1 (en) 2004-12-23

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US11697810B2 (en) Adenylosuccinate synthetase and method for producing purine nucleotides using the same
EP2115135B1 (en) A microorganism of corynebacterium genus having enhanced l-lysine productivity and a method of producing l-lysine using the same
KR100400338B1 (ko) 푸린 뉴클레오티드의 제조법
EP3725886A1 (en) Corynebacterium sp. microorganism producing purine nucleotide and method for producing purine nucleotide by using same
US8187840B2 (en) Microorganism producing inosine and method of producing inosine using the same
JP2001136982A (ja) N−アセチルノイラミン酸の製造法
JP2000295996A (ja) プリンヌクレオチドの製造法
JP2000295996A5 (ko)
EP0251489B1 (en) Process for producing 5'-guanylic acid
EP0458971B1 (en) Inosine guanosine kinase
US5874272A (en) Inosine-guanosine kinase
EP1844135B1 (en) Escherichia strain capable of converting xmp to gmp and maintaining the inactivated state of gene(s) associated with gmp degradation and methods of using the same
KR100857379B1 (ko) 포스포라이보실 아미노이미다졸 카복실라아제가 과발현된미생물 및 이를 이용한 5'-이노신산의 생산 방법
KR101056872B1 (ko) 핵산계 물질의 생산성이 향상된 코리네박테리움 속 미생물 및 그를 이용한 핵산계 물질의 생산 방법
KR100785248B1 (ko) purC 유전자가 과발현된 미생물 및 이를 이용한5'-이노신산의 생산방법
JP2003093091A5 (ko)
KR100547586B1 (ko) ushA 유전자가 불활성화된 재조합 에스케리키아속 미생물 및 이를 이용한 5'-구아닐산 합성효소를 배지 중에 축적시키는 방법
CA3050149C (en) Novel adenylosuccinate synthetase and method for producing purine nucleotides using the same
KR100463118B1 (ko) 데코이닌 내성을 갖는 대장균변이주
KR100463983B1 (ko) 유전자 재조합 미생물에 의한 5'-구아닐산의 제조방법
JP2999256B2 (ja) イノシングアノシンキナーゼ
TW202313980A (zh) 新穎水解麩醯胺酸gmp合成酶變體及使用該變體以製造嘌呤核苷酸的方法
KR20050060893A (ko) 5'-구아닐산의 효율적인 제조를 위한 재조합 미생물과이를 이용한 5'-구아닐산의 제조방법

Legal Events

Date Code Title Description
PA0109 Patent application

Patent event code: PA01091R01D

Comment text: Patent Application

Patent event date: 20000203

A201 Request for examination
PA0201 Request for examination

Patent event code: PA02012R01D

Patent event date: 20000527

Comment text: Request for Examination of Application

Patent event code: PA02011R01I

Patent event date: 20000203

Comment text: Patent Application

PG1501 Laying open of application
E902 Notification of reason for refusal
PE0902 Notice of grounds for rejection

Comment text: Notification of reason for refusal

Patent event date: 20020926

Patent event code: PE09021S01D

E701 Decision to grant or registration of patent right
PE0701 Decision of registration

Patent event code: PE07011S01D

Comment text: Decision to Grant Registration

Patent event date: 20030710

GRNT Written decision to grant
PR0701 Registration of establishment

Comment text: Registration of Establishment

Patent event date: 20030922

Patent event code: PR07011E01D

PR1002 Payment of registration fee

Payment date: 20030922

End annual number: 3

Start annual number: 1

PG1601 Publication of registration
LAPS Lapse due to unpaid annual fee
PC1903 Unpaid annual fee