JPH11508445A - Cytokines that induce apoptosis - Google Patents
Cytokines that induce apoptosisInfo
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Abstract
(57)【要約】 TRAILと称される新規なサイトカインは、癌細胞およびウイルス感染細胞を含めたある種の標的細胞のアポトーシスを誘導する。TRAILをコードしている単離DNA配列を、TRAILポリペプチドを製造する場合に有用な発現ベクターおよび形質転換された宿主細胞と一緒に開示する。TRAILを特異的に結合する抗体もまた提供する。 (57) [Summary] A novel cytokine called TRAIL induces apoptosis of certain target cells, including cancer cells and virus infected cells. An isolated DNA sequence encoding TRAIL is disclosed, along with expression vectors and transformed host cells useful in producing TRAIL polypeptide. Antibodies that specifically bind TRAIL are also provided.
Description
【発明の詳細な説明】 アポトーシスを誘導するサイトカイン 発明の背景 アポトーシスとして知られるプログラムされた細胞死は、壊死による細胞死と は異なる。アポトーシスは、胚形成、変態、内分泌依存性組織委縮、正常組織タ ーンオーバーおよび免疫胸腺細胞の(それらの抗原−受容体複合体によってまた はグルココルチコイドによって誘導される)死で起こる(Itoh ら,Cell 66:233 ,1991)。胸腺におけるT細胞の成熟中に、自己抗原を認識するT細胞は、アポ トーシス過程によって破壊されるが、他は正に選択される。ある種の自己エピト ープを認識する若干のT細胞(例えば、無能処理され且つある与えられた自己タ ンパク質の抗原決定基を与えられた)が、この排除過程を免れ、そして引続き自 己免疫疾患においてある役割を果たす可能性が示唆されている(Gammon ら,Imm unology Today 12:193,1991)。 Fasとして知られる細胞表面抗原は、アポトーシスを媒介すると報告されて おり、そして自己反応性T細胞のクローン排除においてある役割を果たすと考え られる(Itoh ら,Cell 66:233,1991;Watanabe-Fukunaga ら,Nature 356:314, 1992)。Fasに対する特異的モノクローナル抗体の架橋は、種々の細胞系にア ポトーシスを起こさせると報告されている(Yonehara ら,J.Exp.Med.,169:1747 ,1989;Trauth ら,Science,245:301,1989)。しかしながら、ある種の条件下に おいて、Fasに対する特異的モノクローナル抗体の結合は、新たに単離された T細胞に対して共刺激作用を有することがある(Alderson ら,J.Exp.Med.,178: 2231,1993)。 ラットFasリガンド(Suda ら,Cell,75:1169,1993)およびヒトFasリガ ンド(Takahashi ら,International Immunology 6:1567,1994)をコードしてい るDNAは単離されている。Fas抗原を発現する細胞に対するFasリガンド の結合は、アポトーシスを誘導することが実証された(Suda ら,上記、およびT akahashi ら,上記)。 アポトーシスにおいてある役割を果たす他の1種類または複数の分子の存在お よび同定の研究が望まれる。このような分子の同定は、アポトーシスを調節する 更に別の手段を提供するであろうし、更には、免疫系による自己寛容の発生およ び自己免疫疾患の病因の更に別の洞察を与えるであろう。 発明の概要 本発明は、新規なサイトカインタンパク質、更には、そのサイトカインをコー ドしている単離DNAおよびその単離DNAを含む発現ベクターを提供する。腫 瘍壊死因子(TNF)系列のリガンドのメンバーである新規なサイトカインの性 質には、ある種類の標的細胞のアポトーシスを誘導する能力が含まれる。したが って、このタンパク質をTNF関連アポトーシス誘導性リガンド(TRAIL) と称する。TRAILとの接触によって死滅する細胞の種類の中には、白血病、 リンパ腫および黒色腫細胞などの癌細胞並びにウイルスに感染した細胞がある。 TRAILポリペプチドを製造する方法は、TRAILの発現に適当な条件下 で、TRAILをコードしているDNAを含む組換え発現ベクターを用いて宿主 細胞を形質転換した後、発現されたTRAILポリペプチドを培養物から回収す ることを行う。TRAILポリペプチドに対して向けられる抗体もまた提供する 。 図面の簡単な説明 図1は、実施例8で記載の検定の結果を示す。その検定は、可溶性ヒトTRA ILポリペプチドが、白血病細胞系であるジャーカット細胞の死を誘導したこと を示した。 図2は、実施例11で記載の検定の結果を示す。可溶性ヒトTRAILポリペ プチドとの接触は、サイトメガロウイルスに感染したヒト線維芽細胞の死を誘導 したが、非ウイルス感染線維芽細胞を死滅させなかった。 発明の詳細な説明 ここにおいて、TRAILと称される新規タンパク質を、TRAILをコード しているDNAおよびTRAIL DNAを含む組換え発現ベクターと一緒に提 供する。組換えTRAILポリペプチドを製造する方法は、TRAILの発現に 適当な条件下において該組換え発現ベクターで形質転換された宿主細胞を培養し 、そして発現されたTRAILを回収することを行う。 本発明はまた、TRAILタンパク質を特異的に結合する抗体を提供する。一 つの実施態様において、抗体はモノクローナル抗体である。 TRAILタンパク質は、制限されるわけではいが、癌細胞およびウイルス感 染細胞を含む形質転換細胞などのある種類の標的細胞のアポトーシスを誘導する 。以下の実施例5、8、9および10で実証されるように、TRAILは、ヒト 白血病、リンパ腫および黒色腫細胞系のアポトーシスを誘導する。TRAILの 使用の中には、癌細胞を死滅させる場合の使用がある。TRAILは、更に、ウ イルス感染の治療で用いられる。サイトメガロウイルス(CMV)の感染は、ヒ ト線維芽細胞を、TRAILと接触した場合にアポトーシスに対して感受性にさ せたが、非感染線維芽細胞は、TRAILとの接触によって死滅しなかった(実 施例11を参照されたい)。 ヒトTRAILをコードしているDNAの単離を、以下の実施例1で記載する 。実施例1で単離されたヒトTRAIL DNAのヌクレオチド配列を配列番号 :1で示し、そしてそれによってコードされたアミノ酸配列を配列番号:2で示 す。このヒトTRAILタンパク質は、N末端細胞質ドメイン(アミノ酸1〜1 8)、膜貫通部分(アミノ酸19〜38)および細胞外ドメイン(アミノ酸39 〜281)を含む。細胞外ドメインは、受容体結合部分を有する。 このヒトTRAIL DNAを含有する組換えベクターで形質転換された大腸 菌(E.coli)株DH10B細胞は、1995年6月14日にアメリカン・タイプ ・カルチャー・コレクション(American Type Culture Collection)に寄託され 、そして寄託番号69849 を付与された。その寄託は、ブダペスト条約の条件に基 づいて行われた。寄託された菌株中の組換えベクターは、(実施例5で記載され た)発現ベクターpDC409である。そのベクターをSalIおよびNotI で消化し、そして配列番号:1で示された完全なコード領域を含むヒトTRAI LDNAをそのベクター中に連結させた。 第二ヒトTRAILタンパク質をコードしているDNAを実施例2で記載のよ うに単離した。このDNAのヌクレオチド配列を配列番号:3で示し、そしてそ れによってコードされたアミノ酸配列を配列番号:4で示す。そのコードされた タンパク質は、N末端細胞質ドメイン(アミノ酸1〜18)、膜貫通部分(アミ ノ酸19〜38)および細胞外ドメイン(アミノ酸39〜101)を含む。 配列番号:3のDNAは、配列番号:1のDNAの一部分を欠いているので、 ヒトTRAIL欠失変異体(huTRAILdv)クローンと称される。配列番 号1:のヌクレオチド18〜358は、配列番号:3のhuTRAILdvDN Aのヌクレオチド8〜348と同一である。配列番号1:のヌクレオチド359 〜506は、配列番号:3のクローン化DNAから失われている。その欠失は、 読み枠内で転位を引き起こし、その結果として、配列番号:4のアミノ酸101 の後にインフレーム停止コドンを生じる。したがって、配列番号:3のDNAは 、一部切除されたタンパク質をコードしている。配列番号:2のアミノ酸1〜9 0は、配列番号:4のアミノ酸1〜90と同一である。しかしながら、その欠失 のために、huTRAILdvタンパク質のC末端部分(配列番号:4のアミノ 酸91〜101)は、配列番号:2での対応する位置の残基とは異なる。完全長 さhuTRAILタンパク質とは対照的に、一部切除されたhuTRAILdv タンパク質は、ジャーカット細胞系のT細胞白血病細胞のアポトーシスを誘導す る能力を示さない。 マウスTRAILタンパク質をコードしているDNAもまた、実施例3で記載 のように単離された。このDNAのヌクレオチド配列を配列番号:5で示し、そ してそれによってコードされたアミノ酸配列を配列番号:6で示す。そのコード されたタンパク質は、N末端細胞質ドメイン(アミノ酸1〜17)、膜貫通部分 (アミノ酸18〜38)および細胞外ドメイン(アミノ酸39〜291)を含む 。このマウスTRAILは、アミノ酸レベルにおいて配列番号:2のヒトTRA ILと64%同一である。マウスTRAILヌクレオチド配列のコード領域は、 配列番号:1のヒトヌクレオチド配列のコード領域と75%同一である。 本発明の一つの実施態様は、N末端アミノ酸配列 MetAlaMetMetGluValGlnGlyG lyProSerLeuGlyGlnThr(配列番号:2および4のアミノ酸1〜15)を特徴とす るヒトTRAILタンパク質に関する。N末端アミノ酸配列 MetProSerSerGlyAl aLeuLysAspLeuSerPheSerGlnHis(配列番号:6のアミノ酸1〜15)を特徴とす るマウスTRAILタンパク質もまた、本明細書中において提供する。 本発明のTRAILタンパク質は、Fasリガンドとして知られるタンパク質 とは異なる(Suda ら,Cell,75:1169,1993;Takahashi ら,International Immu nology 6:1567,1994)。Fasリガンドは、Fasとして知られる受容体によっ ていくつかの細胞種のアポトーシスを誘導する。実施例5で実証されるように、 標的細胞のTRAIL誘導アポトーシスは、Fasによって媒介されない。配列 番号:2のヒトTRAILアミノ酸配列は、Takahashi ら,上記で示されている ヒトFasリガンドアミノ酸配列と約20%同一である。ヒトTRAILの細胞 外ドメインは、ヒトFasリガンドの細胞外ドメインと約28.4%同一である 。 本明細書中で開示されたアミノ酸配列は、TRAILがTNF系列のリガンド のメンバーであることを示す(Smith ら,Cell,73:1349,1993;Suda ら,Cell,7 5:1169,1993;Smith ら,Cell,76:959,1994)。ヒトTRAIL細胞外ドメイン アミノ酸配列とこの系列の他のタンパク質の細胞外ドメインのアミノ酸配列との 間の同一性%は次の通りである。Fasリガントで28.4%、リンホトキシン −βで22.4%、TNF−αで22.9%、TNF−βで23.1%、CD3 0リガンドで22.1%、そしてCD40リガンドで23.4%。 TRAILを、TNF−R系列の受容体の受容体を結合する能力について調べ た。結合分析は、Gearing ら(EMBO J.8:3667;1989)のスライドオートラジオグ ラフィー手順を用いて行われた。その分析は、ヒトCD30、CD40、4−1 BB、OX40、TNF−R(p80型)、CD27またはLTβR(TNFR −RPとしても知られる)に対するヒトTRAILの検出可能な結合を示さなか った。実施例5の結果は、ヒトTRAILがヒトFasを結合しないことを示し ている。 本発明のTRAILポリペプチドには、配列番号:2および6で示されたもの と異なるが、極めて相同であるアミノ酸配列を有するポリペプチドが含まれる。 例として、制限されるわけではないが、他の哺乳動物種に由来する同族体、変異 体(天然に存在する変異体および組換えDNA技術によって生じたもの両方)、 および望まれる生物学的活性を保持しているTRAILフラグメントが含まれる 。このようなポリペプチドは、配列番号:2および6のTRAILタンパク質の 生物学的活性を示し、好ましくは、配列番号:2または配列番号:6で示される アミノ酸配列と少なくとも80%同一(最も好ましくは、少なくとも90%同一 ) であるアミノ酸配列を含む。本発明のこれら実施態様を以下で更に詳細に記載す る。 TNF系列のタンパク質のC末端部分に位置する保存配列は、本明細書に援用 されている Smith ら(Cell,73:1349,1993,1353頁および図6を参照されたい) ;Suda ら(Cell,75:1169,1993,図7を参照されたい);Smith ら(Cell,76:95 9,1994,図3を参照されたい);および Goodwin ら(Eur.J.Immunol.23:2631,1 993,図7および 2638-39頁を参照されたい)で同定されている。保存される( 少なくとも大部分のTNF系列メンバーで)ヒトTRAILタンパク質のアミノ 酸の中には、配列番号:2の124〜125位(AH)、136位(L)、15 4位(W)、169位(L)、174位(L)、180位(G)、182位(Y )、187位(Q)、190位(F)、193位(Q)および275〜276位 (FG)のものがある。TRAILのもう一つの構造的特徴は、膜貫通部分のC 末端と、生物学的活性に最も重要であると考えられる細胞外ドメインの部分との 間のスペーサー部分である。細胞外ドメインのN末端に位置するこのスペーサー 部分は、配列番号:2のアミノ酸39〜94から成る。同様のスペーサーは、他 の系列メンバー、例えば、CD40リガンドで見出される。アミノ酸138〜1 53は、折りたたまれた(三次元)ヒトTRAILタンパク質のβシート間のル ープに相当する。 本明細書中で提供されるのは、膜結合TRAILタンパク質(細胞質ドメイン 、膜貫通部分および細胞外ドメインを含む)、並びに完全長さTRAILタンパ ク質の望まれる生物学的性質を保持しているTRAILフラグメントである。一 つの実施態様において、TRAILフラグメントは、細胞外ドメインの全部また は一部分を含むが、細胞膜上にそのポリペプチドを保持させると考えられる膜貫 通部分を欠いている、可溶性TRAILポリペプチドである。可溶性TRAIL タンパク質は、それらが発現される細胞から分泌されることができる。好都合に 、異種シグナルペプチドは、可溶性TRAILが発現時に分泌されるようにN末 端に融合される。 可溶性TRAILは、所望のタンパク質を発現する自然のままの細胞を、例え ば、遠心分離によって培地から分離し、そして所望のタンパク質の存在について その培地(上澄み)を検定することによって確認できる(そしてその不溶性膜結 合相対物と区別できる)。培地中のTRAILの存在は、そのタンパク質が細胞 から分泌されたことを示し、したがって、それはTRAILタンパク質の可溶型 である。天然に存在する可溶型のTRAILは、本発明によって包含される。 可溶型のTRAILの使用は、いくつかの用途に好都合である。組換え宿主細 胞からのタンパク質の精製は、可溶性タンパク質が細胞から分泌されるので容易 になる。更に、可溶性タンパク質は、概して、静脈内投与により適している。 可溶性TRAILポリペプチドの例は、完全な細胞外ドメイン(例えば、配列 番号:2のアミノ酸39〜281または配列番号:6のアミノ酸39〜291) を含有するものである。望まれる生物学的活性を保持している細胞外ドメインの フラグメントもまた提供する。このようなフラグメントには、好都合に、上記の ようにTNF系列のリガンドのタンパク質中で保存されるTRAILの部分が含 まれる。 可溶性TRAILポリペプチドの更に別の例は、細胞質ドメインおよび膜貫通 部分のみならず、上記のスペーサー部分の全部または一部分をも欠いているもの である。したがって、可溶性ヒトTRAILポリペプチドには、制限されるわけ ではないが、アミノ酸x〜281を含むポリペプチドが含まれ、ここにおいて、 xは、配列番号:2の39〜95位のアミノ酸のいずれかを表す。残基95がN 末端アミノ酸である実施態様では、完全なスペーサー部分が欠失していた。 可溶性ポリペプチドを含めたTRAILフラグメントは、多数の慣用的な技法 のいずれによっても製造することができる。望まれるTRAILフラグメントを コードしているDNA配列は、TRAILフラグメントの製造のために発現ベク ター中にサブクローン化してもよい。TRAILをコードしているDNA配列は 、好都合に、適当なリーダーまたはシグナルペプチドをコードしている配列に融 合される。所望のTRAILをコードしているDNAフラグメントは、既知の技 法を用いて経済的に合成することができる。DNAフラグメントはまた、完全長 さクローン化NDA配列の制限エンドヌクレアーゼ消化によって製造され且つア ガロースゲル上の電気泳動によって単離されうる。必要ならば、5′または3′ 末端を望まれる点まで再構成するオリゴヌクレオチドを、制限酵素消化によって 生 じたDNAフラグメントに対して連結させてもよい。このようオリゴヌクレオチ ドは、所望のコード配列の上流に制限エンドヌクレアーゼ切断部位を更に含み、 そしてコード配列のN末端に開始コドン(ATG)を置くことができる。 周知のポリメラーゼ連鎖反応(PCR)手順もまた、望まれるタンパク質フラ グメントをコードしているDNA配列を単離し且つ増幅させるのに用いることが できる。そのDNA配列の所望の末端を決定するオリゴヌクレオチドは、5′お よび3′プライマーとして用いられる。そのオリゴヌクレオチドは、更に、制限 エンドヌクレアーゼの認識部位を含んで、増幅されたDNAフラグメントの発現 ベクター中への挿入を容易にすることができる。PCR技術は、Saiki ら,Scie nce 239:487(1988);Recombinant DNA Methodology,Wu ら監修,Academic Press ,Inc.,サン・ディエゴ(1989),189-196頁;およびPCR Protocols:A Guide to Methods and Applications,Innis ら監修,Academic Press,Inc.(1990)で記載 されている。 当業者によって理解されるように、上で論及された各TRAILタンパク質そ れぞれの膜貫通部分は、疎水性ドメインのその種類を識別するための慣用的な判 定基準によって識別される。膜貫通部分の正確な境界は、上で示されたものとは 僅かに(おそらくは、両末端の5個以下のアミノ酸まで)異なることがありうる 。このような疎水性部分を識別するのに有用なコンピュータープログラムは入手 可能である。 本発明のTRAIL DNAには、cDNA、化学合成されたDNA、PCR によって単離されたDNA、ゲノムDNAおよびそれらの組合せが含まれる。ゲ ノムTRAIL DNAは、標準的な技法を用いる本明細書中で開示されたTR AIL cDNAに対するハイブリダイゼーションによって単離することができ る。TRAIL DNAから転写されたRNAもまた、本発明によって包含され る。 NCBIデータバンクの探索は、TRAIL DNAと同一の部分を有する5 種類の発現された配列標識(EST)を識別した。これらEST(NCBI寄託 番号T90422、T82085、T10524、R31020 およびZ36726)は、全てヒトcDN Aフラグメントである。NCBI記録は、ESTによってコードされたいずれの ポリペプチドも明らかにしないし、したとしても、その読み枠が何でありうるか を示さない。しかしながら、完全なTRAILコード領域の開示によって本明細 書中で示される読み枠の情報を用いてESTを発現させたとしても、コードされ たポリペプチドには、本請求の範囲で記載されたTRAILポリペプチドのアポ トーシス誘導性を有するものがないであろう。言い換えると、5種類のESTそ れぞれを開始メチオニンコドンから下流の発現ベクター中に挿入した場合、本明 細書中で説明された読み枠において、得られた発現されたポリペプチドには、ジ ャーカット細胞のアポトーシスを誘導するTRAILの細胞外ドメインの充分な 部分を含むものがないであろう。 本発明のいくつかの実施態様は、配列番号:1のヌクレオチド88〜933( ヒトTRAILコード領域);配列番号:1のヌクレオチド202〜933(ヒ トTRAIL細胞外ドメインをコードしている);配列番号:5のヌクレオチド 47〜922(マウスTRAILコード領域);および配列番号:5のヌクレオ チド261〜922(マウスTRAIL細胞外ドメインをコードしている)から 成る群より選択されるヌクレオチド配列を含む単離されたDNAを提供する。配 列番号:2および6のタンパク質の生物学的に活性なフラグメントをコードして いるDNAもまた提供する。更に別の実施態様には、配列番号:1のヌクレオチ ド370〜930および配列番号:5のヌクレオチド341〜919を含む配列 が含まれ、それらは、実施例7で記載の特定のヒトおよびネズミ可溶性TRAI Lポリペプチドをそれぞれコードしている。 遺伝コードの縮重のために、二つのDNA配列は異なることがありうるが、同 じアミノ酸配列をコードしている。本発明は、したがって、天然のヒトまたはネ ズミTRAIL cDNAのコード領域を含むDNAまたはそのフラグメントお よび、天然のTRAIL DNA配列に対して遺伝コードの結果として縮重した DNAから選択される、生物学的に活性なTRAILをコードしている単離され たDNA配列を提供する。 本明細書中で更に提供されるのは、組換え体および非組換え体両方の精製TR AILポリペプチドである。望まれる生物学的活性を保持している天然のTRA ILタンパク質の変異体および誘導体もまた、本発明の範囲内である。一つの実 施態様において、TRAIL変異体の生物学的活性は、天然のTRAILタンパ ク質の生物学的活性と本質的に同等である。TRAILの一つの望まれる生物学 的活性は、ジャーカット細胞の死を誘導する能力である。標的細胞のアポトーシ スを検出するための検定法は周知である。DNAラダー(laddering)は、アポ トーシスによる細胞死の特徴の中に含まれ、そしてアポトーシス細胞死を壊死細 胞死と区別する観察しうる現象の一つとして認められる。標的細胞の死すなわち アポトーシスを検出するのに適当な検定技法の例としては、実施例5および8〜 11で記載されたものがある。TRAILのもう一つの性質は、ジャーカット細 胞に対して結合する能力である。 TRAIL変異体は、例えば、天然のTRAILヌクレオチド配列の突然変異 によって得ることができる。本明細書中で論及されるTRAIL変異体は、天然 のTRAILと実質的に相同のポリペプチドであるが、それは、一つまたは複数 の欠失、挿入または置換のために、天然のTRAILのものとは異なるアミノ酸 配列を有する。本発明のTRAILをコードしているDNA配列は、天然のTR AIL DNA配列と比較した場合に、一つまたはそれ以上のヌクレオチドの付 加、欠失または置換を含む配列であるが、天然のTRAILタンパク質と本質的 に生物学的に同等であるTRAILタンパク質をコードしている該配列を包含す る。 変異体アミノ酸またはDNA配列は、好ましくは、天然のTRAIL配列と少 なくとも80%同一、最も好ましくは、少なくとも90%同一である。天然およ び突然変異体配列間の相同の度合い(同一%)は、例えば、この目的に一般的に 用いられるコンピュータープログラムを用いて二つの配列を比較することによっ て決定することができる。一つの適当なプログラムは、Devereux ら(Nucl.Acid s Res.12:387,1984)によって記載され且つウィスコンシン大学遺伝学コンピュ ーターグループ(UWGCG)から入手可能なGAPコンピュータープログラム、バ ージョン6.0である。そのGAPプログラムは、Smith および Waterman(Adv .Appl.Math 2:482,1981)によって変更されたように、Needleman および Wunsch (J.Mol.Biol.48:443,1970)の並列法を用いる。簡単にいうと、GAPプログラ ムは、一致する並列記号(すなわち、ヌクレオチドまたはアミノ酸)の数割る二 つの配 列の短い方の記号の全数として同一性を決定する。GAPプログラムの好ましい 暗黙パラメーターには、(1)ヌクレオチドのユナリー(unary)比較マト リックス(同一に対する1および非同一の0を含む)および Schwartz および D ayhoff 監修,Atlas of Protein Sequence and Structure,National Biomedical Research Foundation,353-358頁,1979 によって記載のような、Gribskov およ び Burgess,Nucl.Acids Res.14:6745,1986 の加重比較マトリックス;(2)そ れぞれのギャップに対する3.0のペナルティーおよびギャップ毎のそれぞれの 記号に対する追加の0.10ペナルティー;および(3)末端ギャップのペナル ティー無し、が含まれる。 天然のアミノ酸配列の変更は、多数の既知の技法のいずれによっても達成でき る。突然変異は、天然の配列のフラグメントに対して連結できる制限部位に隣接 した突然変異体配列含有オリゴヌクレオチドを合成することによって特定の遺伝 子座に導入することができる。連結後、得られた再構成配列は、所望のアミノ酸 挿入、置換または欠失を有する類似体をコードする。 或いは、オリゴヌクレオチドに支配された部位特異的突然変異誘発プロデュー サーを用いて、必要な置換、欠失または挿入によって変更された特定のコドンを 有する変更された遺伝子を提供することができる。このような変更を行う技術に は、Walder ら(Gene 42:133,1986);Bauer ら(Gene 37:73,1985);Craik(B ioTechniques,1985年1月,12-19);Smith ら(Genetic Engineering:Principle s and Methods,Plenum Press,1981);および米国特許第4,518,584号および同第 4,737,462号で記載されたものが含まれ、これらは本明細書中に援用される。 変異体は、保存的に置換された配列を含むことができ、天然のTRAILポリ ペプチドの1個またはそれ以上のアミノ酸残基は異なった残基で置き換えられる が、その保存置換されたTRAILポリペプチドは、天然のTRAILポリペプ チドの場合と本質的に同等の望まれる生物学的活性を保持していることが示され る。保存置換の例としては、TRAILの二次および/または三次構造を変化さ せないアミノ酸の置換がある。他の例には、所望の生物学的活性が、標的細胞上 の受容体に対して結合し且つその標的細胞のアポトーシスを誘導する能力である 場合の、受容体結合ドメインの外側のアミノ酸の置換が含まれる。ある与えられ たアミノ酸は、同様の物理科学的特性を有する残基で置き換えることができ、例 えば、1個の脂肪族残基を別のもの(Ile、Val、LeuまたはAlaなど を互いに)に置換できるし、または1個の極性残基を別のもの(LysとArg ;GluとAsp;またはGlnとAsn間など)に置換できる。他のこのよう な保存置換、例えば、同様の疎水性を有する部分全体の置換は周知である。保存 アミノ酸置換を含むTRAILポリペプチドは、天然のTRAILの望まれる生 物学的活性が保持されていることを確認するための本明細書中に記載された検定 の一つで試験することができる。このような保存的アミノ酸置換を含むTRAI LポリペプチドをコードしているDNAは、本発明によって包含される。 TNF系列のタンパク質のC末端部分に位置し且つ生物学的活性に重要である と考えられる保存アミノ酸は同定されている。これら保存配列は、Smith ら(Ce ll,73:1349,1993,1353頁および図6を参照されたい);Suda ら(Cell,75:1169 ,1993,図7を参照されたい);Smith ら(Cell,76:959,1994,図3を参照され たい);および Goodwin ら(Eur.J.Immunol.23:2631,1993,図7および2638-39 頁を参照されたい)で論及される。好都合に、保存アミノ酸は、保存置換配列を 生じた場合には変化しない。変化した場合、TNF系列の他のメンバーの等位置 で見出されるアミノ酸は置換される。 TRAILはまた、グリコシル基、脂質、リン酸塩、アセチル基等のような他 の化学残基との共有結合または凝集結合を形成することによってTRAIL誘導 体を生成するように修飾することができる。TRAILの共有結合誘導体は、T RAILアミノ酸側鎖上の官能基に対してまたはTRAILポリペプチド若しく はその細胞外ドメインのN末端若しくはC末端に化学残基を結合することによっ て製造することができる。本発明の範囲内のTRAILの他の誘導体には、N末 端またはC末端融合のような組換え体培養での合成などによる、他のタンパク質 またはポリペプチドとのTRAILの共有結合体若しくは凝集結合体またはその フラグメントが含まれる。例えば、結合体は、TRAILポリペプチドのN末端 にシグナルまたはリーダーポリペプチド配列(例えば、サッカロミセス属(Sacc haromyces)のα因子リーダー)を含むことができる。そのシグナルまたはリー ダーペプチドは、その合成部位から細胞膜または細胞壁の内側または外側部位へ の 結合体の転移を共翻訳によってまたは翻訳後に支配する。 TRAILポリペプチド融合は、TRAILの精製および識別を容易にするよ うに加えられるペプチドを含むことができる。このようなペプチドには、例えば 、ポリHisまたは米国特許第5,011,912号および Hopp ら,Bio/Technology 6: 1204,1988で記載された抗原識別ペプチドが含まれる。一つのこのようなペプチ ド 番号:7)であり、それは、極めて抗原性であり且つ特異的モノクローナル抗体 によって可逆的に結合したエピトープを与えるので、発現された組換えタンパク 質の迅速な検定および容易な精製を可能にする。この配列はまた、ウシ粘膜エン テロキナーゼによって Asp-Lys 対合直後の残基で特異的に切断される。このペ プチドのキャップ付き融合タンパク質は、更に、大腸菌での細胞内分解に対して 耐性でありうる。 4E11と称されるネズミハイブリドーマは、(米国特許第5,011,912号で記 載のように)ある種の二価金属陽イオンの存在下でペプチド DYKDDDDK(配列番 号:7)を結合するモノクローナル抗体を生じ、そしてアメリカン・タイプ・カ ルチ チドに対して融合した組換えタンパク質を生じるのに有用な発現系、並びに該ペ プチドを結合し且つ該組換えタンパク質を精製する場合に有用であるモノクロー ナル抗体は、Eastman Kodak Company,Scientific Imaging Systems,ニューヘ ブン,コネチカット州から入手可能である。 本発明は、更に、関連した天然パターングリコシル化を伴うまたは伴わないT RAILポリペプチドを含む。酵母または哺乳動物発現系で発現されたTRAI Lは、発現系の選択に応じて、分子量およびグリコシル化パターンが天然のTR AILポリペプチドと同様であってよいしまたは有意に異なっていてよい。大腸 菌などの細菌発現系でのTRAILポリペプチドの発現は、非グリコシル化分子 を与える。 TRAIL細胞外ドメイン中のグリコシル化部位は、酵母または哺乳動物発現 系を用いて均一な減少した炭水化物類似体(analog)を発現させながらグ リコシル化を妨げるように変更しうる。真核性ポリペプチド中のN−グリコシル 化部位は、アミノ酸トリプレットAsn−X−Yを特徴とし、ここにおいて、X はPro以外のいずれかのアミノ酸であり且つYはSerまたはThrである。 このトリプレットをコードしているヌクレオチド配列に対する適当な修飾は、A sn側鎖での炭水化物残基の結合を妨げる置換、付加または欠失を引き起こすで あろう。タンパク質中のN−グリコシル化部位を失活させる既知の方法には、米 国特許第5,071,972号および欧州特許第276,846号で記載されたものが含まれる。 潜在的なN−グリコシル化部位は、配列番号:2のヒトタンパク質中の109〜 111位および配列番号:6のネズミタンパク質中の52〜54位で見出される 。 もう一つの例において、生物学的活性に不可欠でないCys残基をコードして いる配列は、そのCys残基を欠失させるかまたは他のアミノ酸で置換させるよ うに変更されて、復元時の不正確な分子内ジスルフィド架橋の形成を妨げること ができる。他の変異体は、KEX2プロテアーゼ活性が存在する酵母系での発現 を促進させる隣接した二塩基性アミノ酸残基の修飾によって製造される。欧州特 許第212,914号は、タンパク質中のKEX2プロテアーゼプロセッシング部位を 失活させる部位特異的突然変異誘発の使用を開示している。KEX2プロテアー ゼプロセッシング部位は、Arg-Arg、Arg-Lys および Lys-Arg 対を変化させるよ うに残基を欠失、付加または置換することによって失活して、これら隣接した塩 基性残基の発生を排除する。Lys-Lys 対合は、KEX2切断に対してほとんど感 受性ではなく、そして Arg-Lys または Lys-Arg の Lys-Lys への変換は、KE X2部位の失活への保守的且つ好ましいアプローチを示す。潜在的KEX2プロ テアーゼプロセッシング部位は、配列番号:2のタンパク質中の89〜90位お よび149〜150位並びに配列番号:6のタンパク質中の85〜86位、13 5〜136位および162〜163位で見出される。 天然に存在するTRAIL変異体もまた、本発明によって包含される。このよ うな変異体の例は、選択的(altenative)mRNAスプライシング結 果から(TRAILは多エクソン遺伝子によってコードされるので)またはTR AILタンパク質のタンパク質分解切断から生じるタンパク質であり、ここにお いて、望まれる生物学的活性は保持されている。mRNAの選択的スプライシン グは、例えば、天然に存在する可溶型のタンパク質などの一部切断されているが 生物学的に活性なTRAILタンパク質を生じることができる。タンパク質分解 による変異には、例えば、TRAILタンパク質からの1個またはそれ以上の末 端アミノ酸のタンパク質分解除去による、異なった種類の宿主細胞における発現 でのN−またはC末端の相違が含まれる。更に、タンパク質分解切断は、可溶型 のTRAILを膜結合型のタンパク質から放出させることができる。対立遺伝子 変異体もまた、本発明によって包含される。オリゴマー 本発明は、二量体、三量体または高級オリゴマーなどのオリゴマーの形のTR AILポリペプチドを包含する。オリゴマーは、例えば、種々のTRAILポリ ペプチド上のシステイン残基間のジスルフィド結合によって、またはTRAIL ポリペプチド鎖間の非共有結合相互作用によって形成されうる。他の実施態様に おいて、オリゴマーは、TRAILポリペプチドに対して融合したペブチド残基 間の共有結合または非共有結合相互作用によって結合した2〜4種類のTRAI Lポリペプチドを含む。このようなペプチドは、ペプチドリンカー(スペーサー )であってよいし、またはオリゴマー化を促進する性質を有するペプチドであっ てよい。ロイシンジッパーおよび抗体に由来する若干のポリペプチドは、以下に 更に詳細に記載されるように、それらに対して結合したTRAILポリペプチド のオリゴマー化を促進しうるペプチドの中に含まれる。好ましくは、TRAIL ポリペプチドは可溶性である。 抗体由来ポリペプチド(Fcドメインを含む)の様々な部分に対して融合した 異種ポリペプチドを含む融合タンパク質の製造は、例えば、本明細書中に援用さ れる Ashkenazi ら(PNAS USA 88:10535,1991);Byrn ら(Nature 344:667,199 0);および Hollenbaugh および Aruffo(“Construction of Immunoglobulin Fusion Proteins”,Current Protocols in Immunology,補遺4中,10.19.1-10 .19.11頁,1992)によって記載されている。本発明の一つの実施態様において、 TRAIL二量体は、抗体に由来するFc部分ポリペプチドに対してTRAIL を融合することによって生成される。「Fcポリペプチド」という用語には、天 然の形および突然変異タンパク質の形、更には、二量体化を促進するヒンジ領域 を含有する一部切除されたFcポリペプチドが含まれる。好ましくは、Fcポリ ペ プチドは、可溶性TRAIL(例えば、細胞外ドメインだけを含む)に対して融 合される。 TRAIL/Fc融合タンパク質をコードしている遺伝子融合は、適当な発現 ベクター中に挿入される。TRAIL/Fc融合タンパク質は、極めて類似した 抗体分子を組立てることを可能にし、その結果、Fcポリペプチド間に鎖間ジス ルフィド結合が形成し、二価TRAILを生じる。他の実施態様において、TR AILは、抗体重鎖または軽鎖の可変部に置換されてもよい。融合タンパク質が 抗体の重鎖および軽鎖両方を用いて製造された場合、4個ものTRAIL細胞外 部分を含むTRAILオリゴマーを形成することが可能である。 一つの適当なFcポリペプチドは、ヒトIgG1に由来する天然のFc部分ポ リペプチドであり、これは、本明細書中に援用されるPCT出願第WO93/10151 号で記載されている。もう一つの有用なFcポリペプチドは、米国特許第5,457, 035号で記載されたFc突然変異タンパク質である。その突然変異タンパク質の アミノ酸配列は、アミノ酸19がLeuからAlaに変更され、アミノ酸20が LeuからGluに変更され、そしてアミノ酸22がGlyからAlaに変更さ れたこと以外はWO93/10151号で示された天然のFc配列のそれと同一である。 この突然変異タンパク質Fcは、免疫グロブリン受容体に対して減少した親和性 を示す。 或いは、オリゴマーTRAILは、ペプチドリンカーによって結合した2個ま たはそれ以上の可溶性TRAILポリペプチドを含んでいてよい。例として、米 国特許第5,073,627号(本明細書中に援用される)で記載されたペプチドリンカ ーが含まれる。ペプチドリンカーによって隔てられた多数のTRAILポリペプ チドを含む融合タンパク質は、慣用的な組換えDNA技術を用いて製造すること ができる。 オリゴマーTRAILポリペプチドを製造するもう一つの方法は、ロイシンジ ッパーの使用を必要とする。ロイシンジッパードメインは、それらが見出される タンパク質のオリゴマー化を促進するペプチドである。ロイシンジッパーは、初 めはいくつかのDNA結合タンパク質中で識別されたが(Landschulz ら,Scien ce 240:1759,1988)、それ以来、種々の異なったタンパク質中で見出されている 。 既知のロイシンジッパーの中には、天然に存在するペプチドおよび二量体化する または三量体化するそれらの誘導体がある。可溶性オリゴマーTRAILタンパ ク質を製造するのに適したロイシンジッパードメインの例は、本明細書中に援用 されるPCT出願第WO94/10308号で記載されたものである。溶液中で二量体化 するまたは三量体化するペプチドに対して融合した可溶性TRAILポリペプチ ドを含む組換え融合タンパク質は、適当な宿主細胞中で発現され、そして得られ た可溶性オリゴマーTRAILは、培養物上澄みから回収される。 TNF系列のタンパク質のいくつかのメンバーは、三量体の形で存在すると考 えられる(Beutler および Huffel,Science 264:667,1994;Banner ら,Cell 7 3:431,1993)。したがって、三量体TRAILは、増強された生物学的活性の利 点を与えることができる。好ましいロイシンジッパー部分は、三量体を優先的に 形成するものである。一つの例は、本明細書中に援用される Hoppe ら(FEBS Le tters 344:191,1994)および米国特許出願第08/446,922号で記載のように、肺界 面活性物質プロテインD(SPD)に由来するロイシンジッパーである。天然に 存在する三量体タンパク質に由来する他のペプチドは、三量体TRAILを製造 する場合に用いることができる。 実施例7で記載のように、CV−1/EBNA細胞中で発現された可溶性FL られるオリゴマーを自然に形成した。実施例8の検定におけるこの可溶性FLA 増大したが、これは、おそらくは、その抗体がTRAIL/受容体複合体の架橋 を促進したためである。本発明の一つの実施態様において、TRAILの生物学 的活性は、TRAILに架橋しうる抗体と一緒にTRAILを用いることによっ て増大する。死滅すべき細胞は、可溶性TRAILポリペプチドおよびこのよう な抗体両方と接触しうる。 Fc部分を欠いた抗体フラグメントを用いる。二価の形の抗体は、別々の二量体 AILポリペプチドと一緒に混合してよいしまたはインキュベートしてよい。発現系 本発明は、TRAILの発現のための組換え発現ベクター、および該発現ベク ターで形質転換された宿主細胞を提供する。何らかの適当な発現系を用いること ができる。ベクターは、哺乳動物、微生物、ウイルスまたは昆虫遺伝子に由来す るものなどの適当な転写または翻訳調節ヌクレオチド配列に対して機能的に結合 した(operably linked)、TRAILポリペプチドをコードし ているDNAを含む。調節配列の例としては、転写プロモーター、オペレーター またはエンハンサー、mRNAリボソーム結合部位、並びに転写および翻訳の開 始および終結を制御する適当な配列がある。ヌクレオチド配列は、調節配列がT RAIL DNA配列に機能的に関係する場合に機能的に結合している。したが って、プロモーターヌクレオチド配列は、そのプロモーターヌクレオチド配列が TRAIL DNA配列の転写を制御する場合にTRAIL DNA配列に対し て機能的に結合している。所望の宿主細胞中で複製する能力を与える複製起点、 および形質転換細胞を識別する選択遺伝子は、概して、発現ベクター中に包含さ れる。 更に、適当なシグナルペプチドをコードしている配列は、発現ベクター中に包 含されうる。シグナルペプチド(分泌リーダー)のDNA配列は、そのシグナル ペプチドを含む融合タンパク質としてTRAILが最初に翻訳されるように、T RAIL配列に対して枠内で融合されうる。目的の宿主細胞中で機能性であるシ グナルペプチドは、TRAILポリペプチドの細胞外分泌を促進する。シグナル ペプチドは、細胞からのTRAILの分泌時にTRAILポリペプチドから切断 される。 TRAILポリペプチドの発現に適当な宿主細胞としては、原核生物、酵母ま たは高等真核生物細胞がある。細菌、真菌、酵母および哺乳動物細胞宿主と一緒 に用いるのに適当なクローニングおよび発現ベクターは、例えば、Pouwels ら, Cloning Vectors:A Laboratory Manual,エルセビア,ニューヨーク(1985)に 記載されている。細胞不含翻訳系もまた、本明細書中で開示されたDNA構築物 に 由来するRNAを用いてTRAILポリペプチドを製造するのに用いることがで きる 原核生物には、グラム陰性またはグラム陽性微生物、例えば、大腸菌またはバ チルス属(Bacilli)が含まれる。形質転換に適当な原核生物宿主細胞には、例 えば、大腸菌、枯草菌(Bacillus subtilis)、ネズミチフス菌(Salmonella ty phimurium)、並びにシュードモナス属(Pseudomonas)、ストレプトミセス属( Streptomyces)およびブドウ球菌属(Staphylococcus)内の様々な他の種が含ま れる。大腸菌などの原核生物宿主細胞中において、TRAILポリペプチドは、 原核生物宿主細胞中の組換えポリペプチドの発現を促進するN末端メチオニン残 基を含むことができる。N末端Metは、発現された組換えTRAILポリペプ チドから切断されうる。 原核生物宿主細胞中で用いるための発現ベクターは、概して、1種類またはそ れ以上の表現型選択可能マーカー遺伝子を含む。表現型選択可能マーカー遺伝子 は、例えば、抗生物質耐性を与えるかまたは独立栄養要求を与えるタンパク質を コードしている遺伝子である。原核生物宿主細胞に有用な発現ベクターの例とし ては、クローニングベクターpBR322(ATCC37017)などの商業的に入手可 能なプラスミドに由来するものがある。pBR322は、アンピシリンおよびテト ラサイクリン耐性の遺伝子を有し、したがって、形質転換された細胞を識別する ための簡単な手段を提供する。適当なプロモーターおよびTRAIL DNA配 列は、pBR322 ベクター中に挿入される。他の商業的に入手可能なベクターと しては、例えば、pKK223-3(Pharmacia Fine Chemicals,ウプサラ,スウェ ーデン)およびpGEM1(Promega Biotec,マディソン,WI,米国)がある 。 組換え原核生物宿主細胞発現ベクターに一般的に用いられるプロモーター配列 としては、β−ラクタマーゼ(ペニシリナーゼ)、ラクトースプロモーター系( Chang ら,Nature 275:615,1978;および Goeddel ら,Nature 281:544,1979) 、トリプトファン(trp)プロモーター系(Goeddel ら,Nucl.Acids Res.8:4 057,1980;およびEP−A−36776号)およびtacプロモーター(Maniatis,M olecular Cloning:A Laboratory Manual,Cold Spring Harbor Laboratory,412頁 ,1982)がある。特に有用な原核生物宿主細胞発現系は、ファージλPLプロモ ータ ーおよびcI857ts熱不安定性リプレッサー配列を用いる。λPLプロモーター の誘導体を包含するアメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションから入手可 能なプラスミドベクターには、プラスミドpHUB2(大腸菌株JIM9,AT CC37092に内在する)およびpPLc28(大腸菌RR1,ATCC53082 に内 在する)が含まれる。 TRAILは、代わりに、酵母宿主細胞中で、好ましくは、サッカロミセス属 (Saccharomyces)(例えば、S.セレビシエ(cerevisiae))から発現させる ことができる。ピキア属(Pichia)またはクルイベロミセス属(Kluyveromyces )などの酵母の他の属を用いてもよい。酵母ベクターは、しばしば、2μ酵母プ ラスミドからの複製起点配列、自己複製配列(ARS)、プロモーター領域、ポ リアデニル化のための配列、転写終結のための配列および選択可能マーカー遺伝 子を有するであろう。酵母ベクターに適当なプロモーター配列には、特に、メタ ロチオネイン、3−ホスホグリセリン酸キナーゼ(Hitzeman ら,J.Biol.Chem.2 55:2073,1980)、またはエノラーゼ、グリセルアルデヒド−3−リン酸デヒドロ ゲナーゼ、ヘキソキナーゼ、ピルビン酸デカルボキシラーゼ、ホスホフルクトキ ナーゼ、グルコース−6−リン酸イソメラーゼ、3−ホスホグリセリン酸ムター ゼ、ピルビン酸キナーゼ、トリオースリン酸イソメラーゼ、ホスホグルコースイ ソメラーゼおよびグルコキナーゼなどの他の解糖酵素(Hess ら,J.Adv.Enzyme Reg.7:149,1968;および Holland ら,Biochem.17:4900,1978)のプロモーター が含まれる。酵母発現で用いるための他の適当なベクターおよびプロモーターは 、Hitzeman,EPA−73,657号で更に記載されている。もう一つの選択は、Russ ell ら,J.Biol.Chem.258:2674,1982)および Beier ら(Nature 300:724,1982 )によって記載されたグルコース抑制性ADH2プロモーターである。酵母およ び大腸菌両方で複製可能なシャトルベクターは、大腸菌中での選択および複製の ためのpBR322からのDNA配列(Ampr遺伝子および複製起点)を上記の酵 母ベクター中に挿入することによって構築することができる。 酵母α−因子リーダー配列は、TRAILポリペプチドの分泌を支配するのに 用いることができる。α−因子リーダー配列は、しばしば、プロモーター配列と 構造遺伝子配列との間に挿入される。例えば、Kurjan ら,Cell 30:933,1982 お よび Bitter ら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 81:5330,1984 を参照されたい。酵母 宿主からの組換えポリペプチドの分泌を促進するのに適当な他のリーダー配列は 、当業者に知られている。リーダー配列は、一つまたはそれ以上の制限部位を有 するようにその3′末端付近で修飾されていてもよい。これは、リーダー配列の 構造遺伝子に対する融合を促進するであろう。 酵母形質転換プロトコールは、当業者に知られている。一つのこのようなプロ トコールは、Hinnen ら,Proc.Natl.Acad.Sci.USA 75:1929,1978によって記載さ れている。Hinnen らプロトコールは、選択培地中でTrp+形質転換細胞につい て選択し、ここにおいて選択培地は、0.67%酵母窒素基剤、0.5%カザミ ノ酸、2%グルコース、10μg/mlアデニンおよび20μg/mlウラシル から成る。 ADH2プロモーター配列を含有するベクターによって形質転換された酵母宿 主細胞は、「豊富な」培地中で発現を誘導するために増殖させることができる。 豊富な培地の例は、1%酵母エキス、2%ペプトンおよび1%グルコースに80 μg/mlアデニンおよび80ug/mlウラシルを補足したものからなる。A DH2プロモーターの抑制解除は、グルコースが培地から消耗した場合に起こる 。 哺乳動物または昆虫宿主細胞培養系もまた、組換えTRAILポリペプチドを 発現させるのに用いることができた。昆虫細胞中での異種タンパク質の生産のた めのバキュロウイルス系は、Luckow および Summers,Bio/Technology 6:47(198 8)で論評されている。哺乳動物起原の樹立細胞系も用いることができる。適当な 哺乳動物宿主細胞系の例としては、サル腎細胞のCOS−7系(ATCC CR L1651)(Gluzman ら,Cell 23:175,1981)、L細胞、C127 細胞、3T3細胞 (ATCC CCL163)、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞、ヒー ラ細胞およびBHK(ATCC CRL10)細胞系、並びに McMahan ら(EMBO J.10:2821,1991)によって記載のアフリカミドリザル腎細胞系CVIに由来する CVI/EBNA細胞系(ATCC CCL70)がある。 哺乳動物宿主細胞発現ベクターの転写および翻訳制御配列は、ウイルスゲノム から切り出すことができるであろう。一般的に用いられるプロモーター配列およ びエンハンサー配列は、ポリオーマウイルス、アデノウイルス2、シミアンウイ ルス40(SV40)およびヒトサイトメガロウイルスに由来する。SV40ウ イルスゲノムに由来するDNA配列、例えば、SV40起原の初期および後期プ ロモーター、エンハンサー、スプライスおよびポリアデニル化部位は、哺乳動物 宿主細胞中での構造遺伝子配列の発現のための他の遺伝要素を提供するのに用い ることができる。ウイルス初期および後期プロモーターは、両方とも、ウイルス 複製起点をも有することができるフラグメントとしてウイルスゲノムから容易に 得られるので、特に有用である(Fiers ら,Nature 273:113,1978)。更に小さ いまたは更に大きいSV40フラグメントもまた、SV40ウイルス複製起点部 位に位置するHindIII部位からBglI部位まで伸長した約250bp配 列が包含されるという条件で用いることができる。 哺乳動物宿主細胞中で用いるための発現ベクターは、例えば、Okayama および Berg(Mol.Cell.Biol.3:280,1983)によって開示されたように構築することがで きる。C127 ネズミ乳房上皮細胞中での哺乳動物cDNAの安定した高レベル発 現に有用な系は、実質的には、Cosman ら(Mol.Immunol.23:935,1986)によって 記載のように構築することができる。Cosman ら,Nature 312:768,1984によって 記載された高発現ベクターPMLSV N1/N4は、ATCC 39890 として 寄託されている。更に別の哺乳動物発現ベクターは、EP−A−0367566号およ びWO91/18982号で記載されている。もう一つの選択として、ベクターはレトロ ウイルスに由来してもよい。更に別の適当な発現系は、以下の実施例で記載され る。 一つの好ましい発現系は、チャイニーズハムスター卵巣(CHO)細胞および PG5.7と称される発現ベクターを用いる。この発現ベクターは、本明細書中 に援用される1996年1月11日出願の米国特許出願第08/586,509号で記載されてい る。PG5.7成分には、CHO細胞ゲノムDNAのフラグメント、続いてCM V由来プロモーター、続いてアデノウイルス三部分リーダーをコードしている配 列、次に続いて、ジヒドロ葉酸レダクターゼ(DHFR)をコードしている配列 が含まれる。これら成分は、プラスミドベクターpGEM1(Promega,マディ ソン,WI)中に挿入された。TRAILポリペプチド(またはTRAILを含 有する融合タンパク質)をコードしているDNAは、三部分リーダーおよびDH FRをコードしているそれぞれの配列間に挿入することができる。当該分野で認 め られているように、メトトレキセートを培地に加えて、発現レベルを増加させる ことができる。 ベクターPG5.7中のCHO細胞ゲノムDNAのフラグメントは、TRAI Lの発現を促進する。CHO細胞から単離されたゲノムDNAのフラグメントを 含有するファージ溶解産物は、1996年1月4日にアメリカン・タイプ・カルチャ ー・コレクションに寄託され、そして寄託番号ATCC97411 を付与された。ベ クターPG5.7は、菌株寄託ATCC97411 中のCHOゲノムDNAインサー トのヌクレオチド8671〜14507を有する。 TRAILの発現のために、天然のシグナル配列、異種シグナル配列または哺 乳動物宿主細胞中で機能性のリーダーを欠いたII型タンパク質を加えることがで きる。例として、米国特許第4,965,195号で記載されたインターロイキン−7( IL−7)のシグナル配列、Cosman ら,Nature 312:768(1984)で記載されたイ ンターロイキン−2受容体のシグナル配列;EP367,566号で記載されたインタ ーロイキン−4受容体シグナルペプチド;米国特許第4,968,607号で記載された I型インターロイキン−1受容体シグナルペプチド;およびEP460,846号で記 載されたII型インターロイキン−1受容体シグナルペプチドがある。 好ましい発現系は、サイトメガロウイルス(CMV)に由来するリーダー配列 を用いる。実施例7は、一つのこのようなリーダーの使用を例証する。実施例7 号:7、上記)のN末端に融合し、次に、可溶性TRAILポリペプチドのN末 端に融合されるペプチド Met Ala Arg Arg Leu Trp Ile Leu Ser Leu Leu Ala V al Thr Leu Thr Val Ala Leu Ala Ala Pro Ser Gln Lys Ser Lys Arg Arg Thr S er Ser(配列番号:9)をコードしている発現ベクターで形質転換された。配列 番号:9の残基1〜29は、CMV由来リーダー配列を構成するが、残基30〜 32は、実施例7で記載された発現ベクターを構築する場合に用いられるオリゴ ヌクレオチドによってコードされる。一つの実施態様において、ポリHisペプ チド(例えば、6個のヒスチジン残基を含有するペプチド)をコードしているD 配列間に位置する。 このようなCMV由来リーダーペプチドを用いる発現系は、TRAIL以外の タンパク質を発現させるのに有用である。配列番号:9のアミノ酸1〜29をコ ードするDNA配列を含む発現ベクターを本明細書中で提供する。もう一つの実 施態様において、そのベクターは、配列番号:9のアミノ酸1〜28をコードす る配列を含む。望まれる異種タンパク質をコードしているDNAは、リーダーを コードしているDNAの下流で、しかもそれと同じ読み枠内に位置する。更に別 の残基(例えば、リンカーまたはプライマーによってコードされたもの)は、実 施例7で記載されたベクターによって例証されるように、リーダーおよび所望の 異種タンパク質をコードしているそれぞれの配列間に位置したDNAによってコ ードされうる。当該分野で理解されるように、発現ベクターは、リーダーおよび 異種タンパク質をコードしている配列に対して機能的に結合したプロモーターお よび何らかの他の所望の調節配列を含む。 配列番号:9で示されたリーダーペプチドは、29位のアルギニン残基の後で 切断されて、それに融合したタンパク質の成熟分泌型を生じることができる。或 いは、または更に、切断は、配列番号:9のアミノ酸20と21との間でまたは アミノ酸28と29との間で起こりうる。 当業者は、シグナルペプチドが切断される1か所または複数の位置が、用いら れる宿主細胞の種類、ネズミまたはヒトTRAILがベクターによって発現され るかどうか等のような因子によって変化しうることを理解するであろう。コンピ ュータープログラムによる分析は、主要な切断部位が、配列番号:9の残基20 と21との間でありうることを示す。残基22と23との間および残基27と2 8との間の切断もまた可能であると予想される。例示すると、可溶性ネズミTR AILポリペプチドの発現および分泌は、多数の位置でのCMV由来シグナルペ プチドの切断を引き起こした。分泌されたタンパク質の3種類の最も顕著な種類 は(下降順で)、配列番号:9のアミノ酸20と21との間の切断、アミノ酸2 2と23との間の切断およびアミノ酸27と28との間の切断を引き起こした。 異種組換えタンパク質を製造する方法は、このような発現ベクターで形質転換 された哺乳動物宿主細胞を、異種タンパク質の発現および分泌を促進する条件下 で培養し、そして培地からタンパク質を回収することを行う。CMVリーダーを 用いる発現系は、例として、制限されるわけではないが、コロニー刺激因子、イ ンターフェロン、インターロイキン、他のサイトカインおよびサイトカイン受容 体が挙げられる何らかの望まれるタンパク質を製造するのに用いることができる 。精製TRAILタンパク質 本発明は、上記の組換え発現系によって生産されうるしまたは天然に存在する 細胞から精製されうる精製TRAILタンパク質を提供する。所望の精製度は、 タンパク質の目的の用途に依りうる。比較的高い精製度は、例えば、そのタンパ ク質を in vivoで投与する場合に望まれる。好都合に、TRAILポリペプチド は、SDS−ポリアクリルアミゲル電気泳動(SDS−PAGE)によって他の タンパク質に該当するタンパク質バンドが検出できないように精製される。上で 論及されたように、示差グリコシル化、翻訳後プロセッシングでの変動等のため に、TRAILタンパク質に該当する多数のバンドがSDS−PAGEによって 検出されうることは当業者によって理解されるであろう。TRAILタンパク質 の標品は、異なった(非TRAIL)タンパク質に該当するバンドが見えなくな るまで精製されると考えられる。TRAILは、最も好ましくは、SDS−PA GEによる分析で単一タンパク質バンドで示されるようにほぼ均一になるまで精 製される。タンパク質バンドは、銀染色、クーマシーブルー染色または(タンパ ク質が放射性標識されている場合)オートラジオグラフィーによって目視するこ とができる。 TRAILタンパク質を製造する一つの方法は、TRAILをエンコードする DNA配列を含む発現ベクターで形質転換された宿主細胞を、TRAILが発現 されるような条件下で培養することを含む。次に、TRAILタンパク質を培養 物から(培地または細胞抽出物から)回収する。当業者が理解するように、組換 えTRAILを精製する手順は、用いられる宿主細胞の種類およびTRAILが 培地中に分泌されるか否かのような因子によって変化しうる。 例えば、組換えタンパク質を分泌する発現系を用いる場合、最初に、商業的に 入手可能なタンパク質濃縮フィルター、例えば、Amicon または Millipore Pell icon 限外濾過装置を用いてその培地を濃縮することができる。濃縮工程後、そ の濃縮物をゲル濾過基剤などの精製マトリックスに対して適用することができる 。 或いは、陰イオン交換樹脂、例えば、ジエチルアミノエチル(DEAE)側基を 有するマトリックスまたは支持体を用いることができる。マトリックスは、アク リルアミド、アガロース、デキストラン、セルロースまたはタンパク質精製にお いて一般的に用いられる他の種類でありうる。或いは、陽イオン交換工程を用い ることができる。適当な陽イオン交換体としては、スルホプロピル基またはカル ボキシメチル基を含む種々の不溶性マトリックスがある。スルホプロピル基が好 ましい。最後に、TRAILを更に精製するために、1回またはそれ以上の逆相 高速液体クロマトグラフィー(RP−HPLC)工程を、疎水性RP−HPLC 基剤(例えば、遊離の(pedant)メチルまたは他の脂肪族側基を有するシ リカゲル)を用いて用いることができる。前述の精製工程のいくつかまたは全部 を様々な組合せで用いて、精製TRAILタンパク質を提供することができる。 細菌培養で製造された組換えタンパク質は、宿主細胞の最初の破壊、遠心分離 、不溶性ポリペプチドの場合は細胞ペレットからまたは可溶性ポリペプチドの場 合は上澄み液からの抽出、続いて1回またはそれ以上の濃縮、塩析、イオン交換 、アフィニティー精製またはサイズ排除クロマトグラフィー工程によって単離す ることができる。最後に、最終精製工程としてRP−HPLCを用いることがで きる。微生物細胞は、凍結融解サイクル、音波処理、機械的破壊または細胞溶解 性剤の使用を含めた何らかの好都合な方法によって破壊することができる。 形質転換された酵母宿主細胞は、好ましくは、分泌ポリペプチドとしてTRA ILを発現するのに用いられる。これは、精製を簡単にする。酵母宿主細胞発酵 からの分泌組換えポリペプチドは、Urdal ら(J.Chromatog.296:171,1984)によ って開示されたものと同様の方法によって精製することができる。Urdal らは、 組換えヒトIL−2の精製のための、分離用HPLCカラム上での二つの逐次的 な逆相HPLC工程を記載している。 或いは、TRAILポリペプチドは、イムノアフィニティークロマトグラフィ ーによって精製することができる。TRAILを結合する抗体を含有するアフィ ニティーカラムは、慣用法によって製造することができ、そしてTRAILを精 製する場合に用いることができる。実施例4は、TRAILに対して向けられた モノクローナル抗体を生じる方法を記載している。TRAILの性質および使用 プログラムされた細胞死(アポトーシス)は、胚形成、変態、内分泌依存性組 織委縮、正常組織ターンオーバーおよび免疫胸腺細胞の死の際に起こる。プログ ラムされた細胞死の調節は、免疫系の正常な機能にとって極めて重要である。例 示すると、自己抗原を認識するT細胞は、胸腺におけるT細胞の成熟中にアポト ーシス過程によって破壊されるが、他のT細胞は正に選択される。ある種の自己 エピトープを認識する若干のT細胞(例えば、無能処理され且つある与えられた 自己タンパク質の抗原決定基を与えられた)が、この排除過程を免れ、そして引 続き自己免疫疾患においてある役割を果たす可能性が示唆されている(Gammon ら,Immunology Today 12:193,1991)。 不充分なアポトーシスは、ある種の症状に関係していたが、高水準のアポトー シス細胞死は他の疾患に関係していた。このような疾患を治療する場合にアポト ーシスを調節する薬剤を決定し且つ用いるのが望ましいことは理解される(Krom er,Advances in Immunology,58:211,1995;Groux ら,J.Exp.Med.175:331,1992 ;Sachs および Lotem,Blood 82:15,1993)。 アポトーシスを受けることに対するT細胞の異常な耐性は、リンパ球増加症、 リンパ節症、巨脾腫症、自己反応性T細胞の蓄積、自己免疫疾患、白血病の発症 およびリンパ腫の発症に関係していた(Kromer,上記;特に、214-215頁を参照 されたい)。逆に、T細胞の過度のアポトーシスは、リンパ球減少症、全身性免 疫不全および特異的免疫不全においてある役割を果たしていると示唆されてきた が、特殊な例は、伝染性単核細胞症およびサイトメガロウイルス感染に関係した ウイルス誘導免疫不全状態、並びに腫瘍に媒介された免疫抑制である(Kromer, 上記;特に、214頁を参照されたい)。HIVに感染した個体におけるCD4+T 細胞の減少は、アポトーシスによる不適当な活性化誘導細胞死(AICD)に起 因しうる(Groux ら,J.Exp.Med.175:331,1992)。 実施例5および8で実証されるように、TRAILは、ジャーカットクローン E6−1と称される急性T細胞白血病細胞系のアポトーシスを誘導する。したが って、TRAILは、プログラムされた細胞死の調節を含めたアポトーシスの研 究において有用な研究試薬である。ジャーカット細胞は、T細胞に由来する白血 病細胞系であるので、本発明のTRAILは、T細胞に由来する他の悪性細胞種 のような他の形質転換されたT細胞のアポトーシスにおいてTRAILが果たし うる役割の研究において用いられる。 TRAILはジャーカット細胞を結合し、更には、それらのアポトーシスを誘 導する。TRAILは、新たに単離されたネズミ胸腺細胞、または健康なヒトド ナーから新たに摘出された末梢血T細胞(PBT)の死を引き起こさなかった。 多数の用途は、TRAILのこれらの性質から生じる。 TRAILポリペプチドは、白血病細胞、またはTRAILが結合する何らか の他の細胞型を精製するのに用いることができる。白血病細胞は、例えば、患者 の血液から単離することができる。一つの実施態様において、細胞は、アフィニ ティークロマトグラフィーにより、TRAILを結合しているクロマトグラフィ ーマトリックスを用いて精製される。クロマトグラフィーマトリックスに対して 結合したTRAILは、完全長さタンパク質、細胞外ドメインを含むTRAIL フラグメント、TRAIL含有融合タンパク質または本明細書中に記載された他 の適当なTRAILポリペプチドでありうる。一つの実施態様において、可溶性 TRAIL/Fc融合タンパク質は、プロテインAまたはプロテインGカラムに 対して、Fc部分とプロテインAまたはプロテインGとの相互作用によって結合 する。或いは、TRAILは、フローサイトメトリーによって白血病細胞を単離 する場合に用いることができる。 このように精製された白血病細胞は、TRAILの結合後に死滅すると考えら れるが、その死滅した細胞はなお細胞表面抗原を有するであろうし、そして抗白 血病抗体を引き出す場合に免疫原として用いることができる。白血病細胞または それから単離された望まれる細胞表面抗原は、更に、ワクチン開発において用い られる。 TRAILは白血病細胞(ジャーカット細胞系)を結合し且つ死滅させるので 、TRAILはまた、白血病を治療する場合に有用でありうる。治療法は、白血 病細胞を有効量のTRAILと接触させることを含む。一つの実施態様において 、白血病患者の血液を ex vivo でTRAILポリペプチドと接触させる。TR AILは、適当なマトリックス上に固定されていてよい。TRAILは白血病細 胞を 結合するので、それらを患者の血液から除去した後、その血液を患者に戻す。 或いは、または更に、白血病患者から摘出された骨髄を、骨髄中の白血病細胞 の死を誘導するのに有効な量のTRAILと接触させることができる。骨髄は、 例えば、胸骨または腸骨稜から吸引され、そしてTRAILと接触して白血病細 胞を除去することができる。このように処置された骨髄を患者に戻す。 TRAILはまた、リンパ腫および黒色腫細胞に対して結合し且つそれらのア ポトーシスを誘導する(実施例5、9および10を参照されたい)。したがって 、白血病細胞に関して上に記載されたものと同様のTRAILの使用は、リンパ 腫および黒色腫細胞に応用できる。TRAILポリペプチドは、制限されるわけ ではないが、白血病、リンパ腫および黒色腫を含めた癌を治療する場合に用いる ことができる。一つの実施態様において、リンパ腫はバーキットリンパ腫である 。実施例9の表Iは、TRAILがいくつかのバーキットリンパ腫細胞系に対し て細胞毒性作用を有したことを示す。エプスタイン・バールウイルスは、バーキ ットリンパ腫の病因物質である。 TRAILポリペプチドはまた、ウイルス感染を治療する場合に用いられる。 TRAILとの接触は、サイトメガロウイルスに感染した細胞の死を引き起こし たが、実施例11で記載のように、感染していない場合の同様の細胞種の型を引 き起こさなかった。他のウイルスに感染した細胞を死滅させるTRAILの能力 は、実施例11で記載された検定を用いて確証されうる。このようなウイルスに は、制限されるわけではないが、脳心筋炎ウイルス、ニューカッスル病ウイルス 水泡性口内炎ウイルス、単純疱疹ウイルス、アデノウイルス−2、ウシウイルス 性下痢症ウイルス、HIVおよびエプスタイン・バールウイルスがある。 有効量のTRAILを、ヒトを含めたウイルス感染に苦しむ哺乳動物に対して 投与する。一つの実施態様において、TRAILは、インターフェロンと一緒に 用いられてウイルス感染を治療する。実施例11で記載された実験では、CMV に感染した細胞のγ−インターフェロンでの前処理は、TRAILによって媒介 された感染細胞の致死度を増加させた。TRAILは、癌細胞またはウイルス感 染細胞に対して細胞毒性作用を示す他の薬剤と一緒に投与することができる。 もう一つの実施態様において、TRAILは、細胞調製物、組織または、移植 される臓器中のウイルス感染細胞を死滅させるのに用いられる。例示すると、骨 髄を受容者に移植する前に、その骨髄をTRAILと接触させて、その中に存在 しうるウイルス感染細胞を死滅させることができる。 本発明のTRAILは、欠損したまたは不充分な量のTRAILによって(直 接的にまたは間接的に)媒介される何らかの疾患の治療法を開発するのに用いる ことができる。治療的有効量の精製TRAILタンパク質を、このような疾患に 苦しむ患者に対して投与する。或いは、TRAIL DNA配列は、このような 疾患の治療に対する遺伝子治療法を開発するのに用いることができる。天然のT RAILヌクレオチド配列の本明細書中での開示は、欠損TRAIL遺伝子の検 出および正常TRAILコード遺伝子でのその置換を可能にする。欠損遺伝子は 、in vitro 診断検定において、および本明細書中で開示された天然TRAIL ヌクレオチド配列と、この遺伝子に欠損があると疑われる患者に由来するTRA IL遺伝子の配列との比較によって検出することができる。 本発明は、精製TRAILおよび生理学的に許容しうる担体、希釈剤または賦 形剤を含む薬剤組成物を提供する。適当な担体、希釈剤および賦形剤は、受容者 に対して用いられる用量および濃度で無毒性である。このような組成物は、緩衝 剤、アスコルビン酸などの抗酸化剤、低分子量(約10残基未満)ポリペプチド 、タンパク質、アミノ酸、グルコース、スクロースまたはデキストリンを含めた 炭水化物、EDTAなどのキレート薬、グルタチオン並びに薬剤組成物中で一般 的に用いられる他の安定化剤および賦形剤を含んでいてよい。中性緩衝食塩水ま たは同種の(conspecific)血清アルブミンと混合された食塩水は、 適当な希釈剤の中に含まれる。組成物は、適当な賦形剤溶液(例えば、スクロー ス)を希釈剤として用いて凍結乾燥物として製剤化することができる。 治療的使用には、本発明の精製タンパク質を患者、好ましくはヒトに対して、 その指示症状に適当な方法で治療するために投与する。したがって、例えば、薬 剤組成物は局所的に、静脈内注射、連続注入、植込物からの徐放または他の適当 な技法によって投与することができる。適当な投薬量および投与頻度は、当然な がら、治療される指標症状の性状および重症度、所望の応答、患者の状態等のよ うな因子に依るであろう。 薬剤組成物中で用いられるTRAILタンパク質は、好ましくは、TRAIL タンパク質が、天然のまたは内因性起原の他のタンパク質を実質的に含まない、 望ましくは、製造過程からの残留タンパク質混入物を約1質量%未満しか含有し ないように精製される。このような組成物は、しかしながら、安定化剤、担体、 賦形剤または共治療薬として加えられた他のタンパク質を含有しうる。 本明細書中で開示されたTRAILコードDNAは、上で論評されたように、 TRAILポリペプチドの製造において用いられる。TRAILヌクレオチド配 列のフラグメントもまた有用である。一つの実施態様において、このようなフラ グメントは、本明細書中で開示されたヒトまたはネズミTRAIL DNAの少 なくとも約17個連続したヌクレオチド、更に好ましくは、少なくとも30個連 続したヌクレオチドを含む。本明細書中において、前記フラグメントのDNAお よびRNA相補鎖を、配列番号:1、3および5のTRAIL DNAの一本鎖 および二本鎖両方の形と一緒に提供する。 このようなTRAIL核酸フラグメントの使用の中には、ポリメラーゼ連鎖反 応(PCR)でのプローブとしてまたはプライマーとしての使用がある。一つの 例として、TRAILの細胞外ドメインに相当するプローブを用いることができ る。プローブは、in vitro 検定並びにノーザンおよびサザンブロットなどの方 法でTRAIL核酸の存在を検出する場合に用いられる。TRAILを発現する 細胞種もまた同定することができる。このような方法は周知であり、当業者は、 具体的な目的の用途に応じて適当な長さのプローブを選択することができる。P CRには、望まれるTRAIL DNA配列の末端に相当する5′および3′プ ライマーを用いて、慣用的な技法を用いてその配列を単離し且つ増幅させる。 TRAIL核酸の他の有用なフラグメントは、標的TRAILmRNA(セン ス)またはTRAIL DNA(アンチセンス)配列に対して結合できる一本鎖 核酸配列(RNAかまたはDNA)を含むアンチセンスまたはセンスオリゴヌク レオチドである。このようなフラグメントは、概して、少なくとも約14個のヌ クレオチド、好ましくは、約14〜約30個のヌクレオチドを含む。ある与えら れたタンパク質のcDNA配列に基づいてアンチセンスまたはセンスオリゴヌク レオチドを生成する能力は、例えば、Stein および Cohen,Cancer Res.48:2659 , 1988 および van der Krol ら,BioTechniques 6:958,1988 で記載されている。 標的核酸配列に対するアンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドの結合は 、二重らせんの促進された分解、転写または翻訳の未成熟終結を含めたいくつか の手段の一つによって、または他の手段によって翻訳(RNA)または転写(D NA)を阻止する二重らせんの形成を引き起こす。したがって、アンチセンスオ リゴヌクレオチドは、TRAILタンパク質の発現を阻止するのに用いることが できる。 アンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドは、更に、修飾された糖−リン 酸ジエステル主鎖(またはWO91/06629号で記載されたものなどの他の糖結合) を有するオリゴヌクレオチドを含み、ここにおいて、このような糖結合は、内因 性ヌクレアーゼに対して耐性である。耐性糖結合を含むこのようなオリゴヌクレ オチドは in vivo で安定である(すなわち、酵素的分解に耐えられる)が、標 的ヌクレオチド配列に対して結合できるように配列特異性を保持している。セン スまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドの他の例としては、WO90/10448号で 記載されたものなどの有機残基、およびポリ(L−リシン)などの、標的核酸配 列に対するオリゴヌクレオチドの親和性を増加させる他の残基に対して共有結合 するオリゴヌクレオチドがある。また更に、エリプティシンなどの挿入剤および アルキル化剤または金属錯体をセンスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドに 対して結合させて、標的ヌクレオチド配列に対するアンチセンスまたはセンスオ リゴヌクレオチドの結合特異性を変更することができる。 アンチセンスまたはセンスオリゴヌクレオチドは、例えば、CaPO4に媒介 されたDNAトランスフェクション、エレクトロポレーション、またはエプスタ イン・バールウイルスなどの他の遺伝子伝達ベクターを含めた何らかの遺伝子伝 達法によって、標的核酸配列を含有する細胞中に導入することができる。好まし くは、適当なレトロウイルスベクター中へアンチセンスまたはセンスオリゴヌク レオチドを挿入し、そしてその細胞を、挿入された配列を含有するレトロウイル スベクターと in vivo でかまたは ex vivo で接触させることによって、アンチ センスまたはセンスオリゴヌクレオチドを標的核酸配列含有細胞中に導入する。 適当なレトロウイルスベクターとしては、制限されるわけではないが、ネズミレ ト ロウイルスM−MuL V、N2(M−MuL Vに由来するレトロウイルス) 、またはDCT5A、DCT5BおよびDCT5Cと称される二重コピーベクタ ー(PCT出願WO90/13641号を参照されたい)がある。或いは、他のプロモー ター配列を用いてオリゴヌクレオチドを発現することができる。 センスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドはまた、WO91/04753号で記載 のように、リガンド結合分子との結合体の形成によって標的ヌクレオチド配列含 有細胞中へ導入することができる。適当なリガンド結合分子としては、制限され るわけではないが、細胞表面受容体、成長因子、他のサイトカイン、または細胞 表面受容体に対して結合する他のリガンドがある。好ましくは、リガンド結合分 子の結合は、その対応する分子若しくは受容体に対して結合するリガンド結合分 子の能力をほとんど妨げないし、またはセンス若しくはアンチセンスオリゴヌク レオチドまたはその結合型の細胞中への侵入をほとんど阻止しない。 或いは、センスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチドは、WO90/10448号で 記載のように、オリゴヌクレオチド−脂質複合体の形成によって標的核酸配列含 有細胞中へ導入することができる。センスまたはアンチセンスオリゴヌクレオチ ド−脂質複合体は、好ましくは、内因性リパーゼによって細胞内で解離する。TRAILと免疫反応性の抗体 本発明のTRAILタンパク質またはそれらの免疫原性フラグメントは、抗体 を生じさせる場合に用いることができる。本発明は、したがって、TRAILを 特異的に結合する抗体を提供する、すなわち、抗体は、(非特異的結合に対立す るものとして)抗体の抗原結合部位によってTRAILに対して結合する。 ポリクローナルおよびモノクローナル抗体は、慣用的な技法によって製造する ことができる。例えば、Monoclonal Antibodies,Hybridomas:A New Dimension i n Biological Analyses,Kennet ら(監修),Plenum Press,ニューヨーク(19 80);および Antibodies:A Laboratory Manual,Harlow および Land(監修) ,Cold Spring Harbor Laboratory Press,コールド・スプリング・ハーバー, NY,(1988)を参照されたい。TRAILと免疫反応性であるモノクローナル 抗体は、以下の実施例4で更に例証される。 慣用的な技法によって製造することができる、このような抗体の抗原結合性フ ラグメントも、また、本発明によって包含される。このようなフラグメントの例 としては、制限されるわけではないが、Fab、F(ab′)およびF(ab′ )2フラグメントがある。遺伝子工学技術によって製造された抗体フラグメント および誘導体もまた提供する。 本発明のモノクローナル抗体には、キメラ抗体、例えば、ネズミモノクローナ ル抗体のヒト化型が含まれる。このようなヒト化抗体は、既知の技法によって製 造することができ、そして抗体をヒトに投与する場合に低下した免疫原性の利点 を与える。一つの実施態様において、ヒト化モノクローナル抗体は、ネズミ個体 の可変部(またはちょうどその抗原結合部位)およびヒト抗体に由来する不変部 を含む。或いは、ヒト化抗体フラグメントは、ネズミモノクローナル抗体の抗原 結合部位およびヒト抗体に由来する(抗原結合部位を欠いた)可変部フラグメン トを含んでいてよい。キメラのおよび更に工学処理されたモノクローナル抗体の 製造法としては、Riechmann ら(Nature 332:323,1988)、Liu ら(PNAS 84:343 9,1987)、Larrick ら(Bio/Technology 7:934,1989)および Winter および Ha rris(TIPS 14:139,1993年5月)で記載されたものがある。 抗体の使用のうちには、in vitro でかまたは in vivo でTRAILポリペプ チドの存在を検出する検定での使用がある。抗体は、更に、アフィニティークロ マトグラフィーによってTRAILを精製する場合に用いられる。 標的細胞に対するTRAILの結合を更に阻止することができる抗体は、TR AILの生物学的活性を阻害するのに用いることができる。治療的方法は、TR AILで媒介された生物学的活性を阻害する場合の有効量のこのような抗体の i n vivo 投与を行う。したがって、TRAILによって直接的にかまたは間接的 に媒介されたまたは悪化した疾患を治療する。モノクローナル抗体は、概して、 このような治療的方法で用いるのに好ましい。 TRAILに対して向けられた抗体は、血栓性細小血管症を治療するのに有用 でありうる。一つのこのような疾患は、血栓性血小板減少性紫斑病(TTP)で ある(Kwaan,H.C.,Semin.Hematol.,24:71,1987;Thompson ら,Blood,80:1890, 1992)。TTPに関連した死亡率増加は、米国疾病管理センター(the U.S.Cent ers for Disease Control)(Torok ら,Am.J.Hematol.50:84,1995)によって報 告されている。 TTPに苦しむ患者(HIV+およびHIV-患者を含む)からの血漿は、皮膚 微小血管由来のヒト内皮細胞のアポトーシスを誘導するが、大きい血管由来では 誘導しない(Laurence ら,Blood,87:3245,1996年4月15日)。したがって、T TP患者の血漿は、アポトーシスを直接的にまたは間接的に誘導する1種類また はそれ以上の因子を有すると考えられる。以下の実施例13で記載された検定に おいて、TRAILに対して生じたポリクローナル抗体は、皮膚微小血管内皮細 胞のTTP血漿に誘導されたアポトーシスを阻害した。実施例13で示されたデ ータは、TRAILがTTP患者の血清中に存在し、そして微小血管内皮細胞の アポトーシスを誘導する場合にある役割を果たしうるということを示唆する。 もう一つの血栓性細小血管症は、溶血性尿毒症症候群(HUS)である(Moak e,J.L.,Lancet,343:393,1994;Melnyk ら,(Arch.Intern.Med.,155:2077,1995 ;Thompson ら,上記)。本発明の一つの実施態様は、(たとえそれが小児をも 襲うとしても)しばしば「成人HUS」と称される症状を治療するための抗TR AIL抗体の使用に関する。小児期/下痢関連HUSとして知られる疾患は、成 人HUSとは病因が異なる。 小血管の血栓形成を特徴とする他の症状は、抗TRAIL抗体を用いて治療す ることができる。このような症状としては、制限されるわけではないが、次のも のがある。小児AIDS患者の約5〜10%で見られる心臓の問題は、小血管の 血栓形成に関与していると考えられる。心臓内の微小血管系の故障は、多数の硬 化症患者で報告されてきた。もう一つの例として、全身性エリテマトーデス(S LE)の治療が考えられる。 一つの実施態様において、患者の血液または血漿を、抗TRAIL抗体と ex vivo で接触させる。抗体(好ましくは、モノクローナル抗体)は、慣用法によ って適当なクロマトグラフィーマトリックスに対して結合できる。患者の血液ま たは血漿は、マトリックスに対して結合した抗体を含有するクロマトグラフィー カラムを介して流れた後、患者に戻される。固定された抗体は、TRAILを結 合するので、TRAILタンパク質を患者の血液から除去する。 別の実施態様では、抗体を in vivo で投与し、この場合、遮断抗体を用いる の が望ましい。このような抗体は、標的細胞に対するTRAILの結合を阻害する 能力について抗体を調べることによるなどの何らかの適当な検定法を用いて識別 することができる。或いは、遮断抗体は、標的細胞に対するTRAILの結合の 生物学的作用を阻害する能力に関する検定で識別することができる。実施例12 は、遮断抗体を識別する一つの適当な方法を例示するが、ここにおいて、抗体は 、ジャーカット細胞のTRAILに媒介された溶解を阻害する能力について検定 される。 本発明は、したがって、TRAILに対して向けられた有効量の抗体の使用を 含む、血栓性細小血管症を治療する方法を提供する。本発明の抗体は、in vivo または ex vivo 手順で用いられて、微小血管内皮細胞に対するTRAILに媒 介された損傷(例えば、アポトーシス)を阻害することができる。 抗TRAIL抗体は、特定の疾患を治療する場合に有用な他の薬剤と一緒に用 いることができる。Laurence ら(Blood,87:3245,1996)によって報告された in vitro 実験において、微小血管内皮細胞のTTP血漿に媒介されたアポトーシ スの若干の減少は、抗Fas遮断抗体、アウリントリカルボン酸、または凍結沈 降物の消耗した正常血漿を用いることによって達成された。 したがって、患者は、Fas−リガンドに媒介された内皮細胞のアポトーシス を阻害する薬剤と、TRAILに媒介された内皮細胞のアポトーシスを阻害する 薬剤との組合せで治療されることができる。一つの実施態様において、抗TRA IL遮断抗体および抗FAS遮断抗体は、両方とも、TTPまたはHUSなどの 血栓性細小血管症を特徴とする疾患に苦しむ患者に対して投与される。Fas抗 原(CD95)に対して向けられた遮断モノクローナル抗体の例は、本明細書に 援用されるPCT出願公開第WO95/10540号で記載されている。 TRAILと免疫反応性である抗体および適当な希釈剤、賦形剤または担体を 含む薬剤組成物を、本明細書中において提供する。このような組成物の適当な成 分は、TRAILタンパク質を含有する組成物に関して上に記載された通りであ る。 次の実施例は、本発明の具体的な実施態様を例証するために与えられ、本発明 の範囲を制限すると解釈されるべきではない。 実施例1:ヒトTRAIL DNAの単離 本発明のヒトTRAILタンパク質をコードしているDNAは、次の手順によ って単離された。国立生物情報センター(the National Center for Biological Information)(NCBI)でのdbESTデータのTBLASTN探索は、疑 間配列 LVVXXXGLYYVYXQVXF(配列番号:8)を用いて行われた。この配列は、T NFリガンド系列の最も保存された部分に基づく(Smith ら,Cell,73:1349,199 3)。発現された配列tag(EST)ファイル、GenBank 寄託番号Z36726 は 、これら探索パラメーターを用いて識別された。GenBank ファイルは、このES Tが、ヒト心房cDNAライブラリーから得られたことを示した。 このESTファイルの3′および5′末端からの配列に基づく二つの30−b pオリゴヌクレオチドを合成した。3′末端からのオリゴヌクレオチドは、配列 TGAAATCGAAAGTATGTTTGGGAATAGATG(配列番号:1のヌクレオチド636〜665 の相補体)を有し、そして5′オリゴヌクレオチドは、TGACGAAGAGAGTATGAACAGC CCCTGCTG(配列番号:1のヌクレオチド291〜320)であった。オリゴヌク レオチドは、32Pγ−ATPおよびポリヌクレオチドキナーゼで5′末端に標識 された。二つのλgt10cDNAライプラリーは、これら標識されたオリゴヌ クレオチドの等モル混合物をプローブとして用いて慣用法によってスクリーニン グされた。一つのライブラリーは、ヒト心臓5′伸長cDNAライブラリー(St ratagene Cloning Systems,ラホヤ,CA)であった。もう一方は、次のように 製造された末梢血リンパ球(PBL)ライブラリーであった。PBLは、正常ヒ ト志願者から得られ、そして10ng/mlのOKT3(抗CD3抗体)および 10ng/mlのヒトIL−2で6日間処理された。PBL細胞を洗浄し、そし て500ng/mlのイオノマイシン(Calbiochem)および10ng/mlのP MAで4時間刺激した。メッセンジャーRNAを、刺激されたPBL細胞から単 離した。mRNA鋳型上で合成されたcDNAを、λgt10ファージベクター 組換えファージを、大腸菌株C600−HFL上にプレーティングし、そして 標準的なプラークハイブリダイゼーション技術を用いてスクリーニングした。ニ トロセルロースフィルターを二重反復試験でこれらプレートから引上げ、そして32 P標識オリゴヌクレオチドを用いて60mMトリスpH8.0、2mM ED TA、5xデンハート溶液、6xSSC、1mg/mlのn−ラウロイルサルコ シン、0.5% NP40および4μg/mlのSSサケ精子DNAの溶液中に おいて67℃で一晩中ハイブリッド形成させた。次に、フィルターを3xSSC 中において67℃で3分間洗浄した。 心臓5′伸長cDNAライプラリーから、一つの陽性プラークを約100万個 のプラークの中から得た。このクローンは、遺伝子の3′末端を含んでいなかっ た。PBLライプラリーを用いて、約50個の陽性プラークを500,000個 のプラークの中から得た。これら第一ラウンド陽性プラークから15個を採取し 、そして豊富なプールからのインサートを、ファージインサートを増幅するよう に設計されたオリゴヌクレオチドプライマーを用いて増幅させた。得られた生成 物を、1.5%アガロースゲル電気泳動によって分割し、ニトロセルロース上に ブロッティングし、そして標準的なサザンブロット技術によって、32Pで標識さ れた30マーオリゴヌクレオチドをプローブとして用いて分析した。サザン分析 によって最大バンドを生じた二つのプラーク採取物を2回目のスクリーニングに よって精製し、そして単離されたファージプラークを、上に記載されたのと同様 の手順を用いて得た。 単離されたファージからのDNAを、プレート溶解法によって製造し、そして cDNAインサートをEcoRIで切取り、トリスホウ酸EDTA緩衝液中1. (+)プラスミド中に連結した。次に、これらインサートを、慣用法によって配 列決定し、そして得られた配列を並列させた。 ヒトTRAIL DNAのヌクレオチド配列を配列番号:1で示し、そしてそ れによってコードされたアミノ酸配列を配列番号:2で示す。このヒトTRAI Lタンパク質は、N末端細胞質ドメイン(アミノ酸1〜18)、膜貫通部分(ア ミノ酸19〜38)および細胞外ドメイン(アミノ酸39〜281)を含む。こ のタンパク質の計算分子量は、32,508ダルトンである。 このTRAIL DNAを含有する組換えベクターで形質転換された大腸菌株 DH10B細胞は、1995年6月14日にアメリカン・タイプ・カルチャー・ コレクションに寄託され、そして寄託番号69849 を付与された。その寄託は、ブ ダペスト条約の条件に基づいて行われた。寄託された菌株中の組換えベクターは 、(実施例5で記載された)発現ベクターpDC409である。そのベクターを SalIおよびNotIで消化し、そして配列番号:1で示された完全なコード 領域を含むヒトTRAIL DNAをその消化されたベクター中へ連結させた。 実施例2:一部切除されたTRAILをコードしているDNAの単離 第二ヒトTRAILタンパク質をコードしているDNAを次のように単離した 。この一部切除されたTRAILは、ジャーカット細胞のアポトーシスを誘導す る能力を示さない。 PCR分析は、実施例1で記載された30マーを5′および3′プライマーと して用いて、実施例1での第一ラウンドプラーク採取物14個の内3個が、より 短い形のTRAIL DNAを含有していたことを示した。短い形の遺伝子から oning Systems,ラホヤ,CA)中に連結し、そして配列決定した。 このDNAのヌクレオチド配列を配列番号:3で示す。それによってコードさ れたアミノ酸配列を配列番号:4で示す。そのコードされたタンパク質は、N末 端細胞質ドメイン(アミノ酸1〜18)、膜貫通部分(アミノ酸19〜38)お よび細胞外ドメイン(アミノ酸39〜101)を含む。 配列番号:3のDNAは、配列番号:1のDNAのヌクレオチド359〜50 6を欠いているので、ヒトTRAIL欠失変異体(huTRAILdv)クロー ンと称される。その欠失は、読み枠内での転位を引き起こし、その結果として、 配列番号:4のアミノ酸101の後にインフレーム停止コドンを生じる。したが って、配列番号:3のDNAは、一部切除されたタンパク質をコードしている。 配列番号:2のアミノ酸1〜90は、配列番号:4のアミノ酸1〜90と同一で ある。しかしながら、その欠失のために、huTRAILdvタンパク質のC末 端部分(配列番号:4のアミノ酸91〜101)は、配列番号:2での対応する 位置の残基とは異なる。 huTRAILdvタンパク質は、TNF系列のタンパク質のメンバーのC末 端で見出される上記の保存領域を欠いている。このhuTRAILdvタンパク 質がジャーカット細胞のアポトーシスによる死を引き起こすことができないこと は、更に、生物学的活性に関するこれら保存領域の重要性を確証している。 実施例3:ネズミTRAILをコードしているDNA ネズミTRAILをコードしているDNAを次の手順によって単離した。ベク ターλZAP中にマウスT細胞系7B9に由来するcDNAを含むcDNAライ ブラリーを、Mosley ら(Cell 59:335,1989)で記載のように製造した。そのラ イブラリーからのDNAを、慣用的な技法によってニトロセルロースフィルター 上に移した。 ヒトTRAIL DNAプローブを用いて、そのフィルター上のハイブリッド 形成性マウスcDNAを識別した。二つの別々のプローブを2ラウンドのスクリ ーニングで用いた。ヒトTRAIL DNAを鋳型として用いて単離され且つ増 幅された長さ約400bpのPCR反応生成物を、第一ラウンドのスクリーニン グにおいてプローブとして用いた。これらPCR生成物は、ヒトTRAILコー ド領域のフラグメントから成った。第二ラウンドのスクリーニングで用いられた プローブは、配列番号:1のヒトTRAIL DNAの完全なコード領域から成 った。ランダムプライムドDNA標識キット(Stratagene,ラホヤ,CA)を用 いて、プローブを放射性標識した。 ハイブリダイゼーションを50%ホルムアミド中において37℃で行った後、 1xSSC、0.1%SDSを用いて50℃で洗浄した。両方のスクリーニング ラウンドで陽性であったマウスcDNAを単離した。 このDNAのヌクレオチド配列を配列番号:5で示し、そしてそれによってコ ードされたアミノ酸配列を配列番号:6で示す。そのコードされたタンパク質は 、N末端細胞質ドメイン(アミノ酸1〜17)、膜貫通部分(アミノ酸18〜3 8)および細胞外ドメイン(アミノ酸39〜291)を含む。このマウスTRA ILは、アミノ酸レベルにおいて配列番号:2のヒトTRAILと64%同一で ある。マウスTRAILヌクレオチド配列のコード領域は、配列番号:1のヒト ヌクレオチド配列のコード領域と75%同一である。 実施例4:TRAILを結合する抗体 この実施例は、TRAILを特異的に結合するモノクローナル抗体の製造を例 証する。このような抗体を生じさせる場合に用いることができる適当な免疫原と しては、制限されるわけではないが、精製TRAILタンパク質またはその免疫 原性フラグメント(例えば、細胞外ドメイン)、TRAILポリペプチドを含有 する融合タンパク質(例えば、可溶性TRAIL/Fc融合タンパク質)、およ び細胞表面上で組換えTRAILを発現する細胞がある。 モノクローナル抗体を産生させる既知の技法としては、米国特許第4,411,993 号で記載されたものがある。簡単にいうと、免疫原として完全フロイントアジュ バント中に乳化したTRAILを用いてマウスに免疫感作し且つ10〜100μ gの量で皮下または腹腔内に注射する。10〜12日後、免疫感作された被験動 物に、不完全フロイントアジュバント中に乳した追加のTRAILを追加免疫す る。その後、週1回〜週2回の免疫感作スケジュールで定期的にマウスに追加免 疫する。血清試料を、TRAIL抗体についてドットブロット検定またはELI ZA(酵素結合イムノソルベント検定)で調べるために、後眼窩出血または尾先 端切開によって定期的に採取する。 適当な抗体力価の検出後、陽性動物に、食塩水中のTRAILの最後の静脈内 注射を1回行う。3〜4日後、その被験動物を屠殺し、脾臓細胞を採取し、そし て脾臓細胞を、NSIまたは、好ましくは P3x63Ag8.653(ATCC CRL158 0)などのネズミ骨髄腫細胞系に融合させる。融合はハイブリドーマ細胞を生じ 、それらを、多段微量滴定プレート中の、非融合細胞、骨髄腫ハイブリッドおよ び脾臓細胞ハイブリッドの増殖を阻害するHAT(ヒポキサンチン、アミノプテ リンおよびチミジン)選択培地中に入れる。 ハイブリドーマ細胞を、精製TRAILに対する反応性についてELISAに より、Engvall ら(Immunochem.8:871,1971)でおよび米国特許第4,703,004号で 開示された技法の適応によってスクリーニングする。陽性ハイブリドーマ細胞は 、同系BALB/cマウスに腹腔内注射して、高濃度の抗TRAILモノクロー ナル抗体を含有する腹水を生じさせることができる。或いは、ハイブリドーマ細 胞を様々な技法によってフラスコまたはローラーボトル中の in vitro で増殖さ せることができる。マウス腹水中で生じたモノクローナル抗体は、硫酸アンモニ ウム沈殿に続いてゲル排除クロマトグラフィーによって精製することができる。 或 いは、プロテインAまたはプロテインGに対する抗体の結合に基づくアフィニテ ィークロマトグラフィーを、TRAILに対する結合に基づくアフィニティーク ロマトグラフィーと同様に用いることができる。 実施例5:DNAラダーアポトーシス検定 ヒトTRAILを発現させ、そしてアポトーシスを誘導するその能力について 調べた。ヒトTRAIL遺伝子のコード領域の3′および5′末端に対応したオ リゴヌクレオチドを合成し、そのオリゴヌクレオチドの末端にSalIおよびN otI制限部位を包含させた。ヒトTRAIL遺伝子のコード領域を、プライマ ーとしてこれらオリゴヌクレオチドを用いて標準的なPCR技術によって増幅さ せた。PCR反応生成物を制限エンドヌクレアーゼSalIおよびNotIで消 化した後、SalI/NotIで消化されたベクターpDC409 中に挿入した。 pDC409 は、哺乳動物細胞中で用いるための発現ベクターであるが、大腸菌細 胞中でも複製可能である。 pDC409 は、pDC406 と称される発現ベクター(本明細書に援用される M cMahan ら,EMBO J.10:2821,1991 およびPCT出願WO91/18982号で記載され た)に由来する。pDC406 は、SV40、エプスタイン・バールウイルスおよび pBR322 に由来する複製起点を有し、そして Dower ら,J.Immunol.142:4314( 1989)によって記載されたHAV−EOの誘導体である。pDC406 は、HAV −EOのアデノウイルス2三部分リーダー配列中に存在するイントロンの欠失に よりHAV−EOとは異なる。多重クローニング部位(多数の制限エンドヌクレ アーゼ切断部位を含む)に挿入されたDNAを、HIVおよびアデノウイルスに 由来する調節要素を用いて転写し且つ翻訳する。そのベクターはまた、アンピシ リン耐性を与える遺伝子を有する。 pDC409 は、mcsの外側のBglII部位が欠失したためにmcsBglII 部位が独特であるという点でpDC406 とは異なる。二つのPme1部位および 一つのSrf1部位をmcsに対して加え、そして3個の停止コドン(TAG) を、三つ全部の読み枠内で機能するようにmcsの下流に配置した。DNA配列 決定工程を助けるために、T7プライマー/プロモーターを加えた。 サル腎細胞系CV−1/EBNA−1(ATCC CRL10478)は、McMahan ら,上記によって記載のように、ヒトCMV中間体−初期エンハンサー/プロモ ーターから作動するエプスタイン・バールウイルス核抗原−1(EBNA−1) を構成性発現するEBNA−1をコードしている遺伝子を用いるCV−1細胞系 (ATCC CRL70)のトランスフェクションによって誘導された。EBNA −1遺伝子は、EBV複製起点を有するpDC409 などの発現ベクターのエピソ ーム複製を可能にする。 Falcon T175 フラスコ中で増殖したCV1/EBNA細胞を、15μgの「中 空」pDC409 かまたはヒトTRAILコード領域含有pDC409 でトランスフ ェクションした。形質転換された細胞を、37℃および10%CO2で3日間培 養した。次に、その細胞をPBSで洗浄し、50mM EDTA中において37 ℃で20分間インキュベートし、細胞スクレーパでフラスコから掻取り、そして PBS中で1回洗浄した。次に、その細胞を1%パラホルムアルデヒドPBS中 において4℃で10分間固定し、そしてPBS中で3回洗浄した。 ジャーカット細胞をこの検定において標的細胞として用いて、TRAIL発現 性細胞がそれらのアポトーシスを誘導できたかどうか確認した。ジャーカット細 胞系クローンE6−1は、アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクションから 寄託番号ATCC TIB152 として入手可能なヒト急性T細胞白血病細胞系で あり、Weiss ら(J.Immunol.133:123-128,1984)で記載されている。そのジャー カット細胞を、10%ウシ胎児血清並びに10μg/mlのストレプトマイシン およびペニシリンを補足されたRPMI培地中において細胞200,000〜5 00,000個/mlの密度まで培養した。これら細胞400万個/ウェルを、 6ウェルプレート中において培地2.5mlをもちいて、以下に示されたような 、固定細胞、Fasリガンドでトランスフェクションされた細胞からの上澄みお よび各種抗体の様々な組合せと一緒に同時培養した。 4時間後、細胞をPBS中で1回洗浄し、そしてデスクトップ遠心機中におい て1200RPMで5分間ペレットにした。そのペレットを再懸濁させ、そして 10mMトリス−HCl、10mM EDTA、pH7.5および0.2%トリ トンX-100 から成る緩衝液500μl中において4℃で10分間インキュベー トしたが、これは、細胞を溶解させるが、核はそのまま残す。次に、溶解産物を 、 4℃のミクロ遠心機中において14,000RPMで10分間回転させた。上澄 みを取出し、そして25:24:1のフェノール−クロロホルム−イソアミルア ルコール1mlで3回抽出した後、グリコーゲン担体(Sigma)1μgの存在下 においてNaOACおよびエタノールで沈殿させた。 得られたペレットを、10mMトリス−HCl、10mM EDTA、pH7 .5中に再懸濁させ、そしてRNアーゼA10μg/mlと一緒に37℃で20 分間インキュベートした。次に、DNA溶液を、トリスホウ酸EDTA緩衝液中 での1.5%アガロースゲル電気泳動によって分割し、臭化エチジウムで染色し 、そして紫外線を透照させながら写真撮影した。 結果は次の通りであった。pDC409 かまたはpDC409−TRAILでトラ ンスフェクションされた固定CV1/EBNA細胞は、検出可能なDNAラダー を生じなかった。ジャーカット細胞と一緒に同時培養されたpDC409−TRA IL固定細胞はDNAラダーを生じたが、ジャーカット細胞と一緒に同時培養さ れたpDC409 固定細胞は生じなかった。 DNAラダーはまた、pDC409 中のヒトFasリガンドをコードしているD NAでトランスフェクションされたCOS細胞からの濃縮上澄みと一緒にジャー カット細胞を同時培養した場合に見られた。その上澄みは、細胞表面からタンパ ク質分解によって放出される可溶性Fasリガンドを含有すると考えられる。F asリガンドに誘導されたDNAラダーは、Fasに対して向けられた可溶性遮 断モノクローナル抗体10μg/mlを加えることによって阻止されることがで きた。この同様の抗体は、pDC409−TRAIL細胞によってジャーカットD NAのラダーを阻害できなかったが、これは、TRAILがFasによるアポト ーシスを誘導しないことを示す。 同様の検定法において、pDC409−TRAILでトランスフェクションされ た固定CV1/EBNA細胞は、U937 細胞中でDNAラダーをもたらした。U 937(ATCC CRL1593)は、ヒト組織球リンパ腫細胞系である。エフェク ター対標的細胞の比率は1:4であった(ジャーカット標的細胞についての検定 の場合と同様)。 DNAラダーとして知られるパターンへの細胞性DNAのフラグメント化は、 アポトーシスの特徴である。前述の検定において、TRAILは、白血病細胞系 およびリンパ腫細胞系のアポトーシスを誘導した。 実施例6:ノーザンブロット分析 多数の異なった組織種でのTRAILの発現を、慣用的なノーザンブロット法 で分析した。様々な成人組織からのポリA+RNAを含有するノーザンブロット (多重組織ノーザンブロットIおよびII)は、Clonetech(パロ・アルト,CA )から入手した。他のプロットは、RNA試料を1.1%アガロース−ホルムア ルデヒドゲル上で分割し、製造者(Amersham Corporation)による指示通りに H ybond-N 上にブロッティングし、そしてメチレンブルーで染色してRNA濃度を 監視することによって作成された。ブロットは、ヒトTRAILの完全なコード 領域に対応するアンチセンスRNAリボプローブでプローブされた。 ヒトTRAILmRNAは、末梢血リンパ球、結腸、小腸、卵巣、前立腺、胸 腺、脾臓、胎盤、肺、腎臓、心臓、すい臓および骨格筋で検出された。TRAI L転写物は、大形細胞退生リンパ腫細胞系 Karpas 299(Fischer ら,Blood,72: 234,1988)でおよび扁桃T細胞で豊富であることが判った。TRAILメッセー ジは、Raji と称されるバーキットリンパ腫細胞系において僅かに存在した。 TRAILmRNAは、精巣、脳または肝でも、いくつかのT細胞系でも検出 されなかった。TRAIL転写物は、刺激されないかまたはPMAおよびカルシ ウムイオノホアで20時間刺激された新たに単離された末梢血T細胞(PBT) 中でほとんどまたは全く検出されなかった。 実施例7:可溶性TRAILポリペプチドの製造 配列番号:2のアミノ酸95〜281を含む可溶性ヒトTRAILポリペプチ ドを次のように製造した。このポリペプチドは、上で論評されたスペーサー部分 を欠いた細胞外ドメインのフラグメントである。 可溶性ヒトTRAILをコードしている発現ベクターは、次のアミノ酸配列( N末端〜C末端まで挙げられた)、すなわち、ヒトサイトメガロウイルス(C TRAILのアミノ酸95〜281をコードしているインフレームDNAを融合 および Hopp ら(Biotechnology 6:1204-1210,1988)で記載のように、それに対 して融合したタンパク質の精製を容易にする。 TRAILをコードしているDNAフラグメントを単離し、そしてポリメラー ゼ連鎖反応(PCR)によって、配列番号:2のアミノ酸95〜281をコード しているDNAフラグメントの末端を確定するオリゴヌクレオチドプライマーを 用いて増幅させた。3′プライマーは、TRAILコード配列の下流にNotI 部位を更に加えた31マーであった。5′プライマーは、TRAILコード配列 慣用法によって、上記のヒトTRAILcDNAを鋳型として用いて行われた。 反応生成物をSpeIおよびNotIで消化し、そしてSalIおよびNot Iで切断された発現ベクターpDC409(実施例5で記載された)中に挿入した 。CMV読み取り枠リーダーをコードしているSalI−SpeIフラグメント を形成するアニーリングされたオリゴヌクレオチドもまた、ベクター中に連結さ れた。CMV由来リーダーのアミノ酸配列を配列番号:9で示す。配列番号:9 のアミノ酸1〜29は、CMV DNAによってコードされるが、アミノ酸30 〜32は、ベクターを構築する場合に用いられたオリゴヌクレオチドによってコ ードされる。大腸菌細胞を連結反応混合物でトランスフェクションし、そして所 望の組換え発現ベクターをそこから単離した。 CV1−EBNA細胞(ATCC CRL10478;実施例5で記載された)を 、pDC409-Flag-shTRAILと称される組換えベクターでトランスフェクシ ョン るように培養した。培養物上澄みをトランスフフェクションの3日後に採取し、 入れた。次に、そのカラムをPBSで洗浄した。モノクローナル抗体M2は、Ho pp ら、上記で記載され、そして Kodak Scientific Imaging Systems,ニューヘ ブン,コネチカット州から入手可能である。50mMクエン酸塩を用いてカラム から800μl画分を溶離し、そして速やかに1Mトリス(pH8)0.45m l中で中和した。画分を10%グリセロールに調整し、そして必要とされるまで −20℃で貯蔵した。 Lは、SDS−ポリアクリルアミドゲル電気泳動(SDS−PAGE)によって ル濾過分析は、その分子が、溶液中において約80kDの大きさの多量体である ことを示唆する。理論によって拘束されたくはないが、そのゲル濾過分析は、可 成して、三量体が優先的に存在したことを示唆する。 CD409-Flag-smTRAILと称される発現ベクターを、同様の手順で構築した 。可溶性ネズミTRAILポリペプチドをコードしているDNAフラグメントを 単離し且つPCRによって増幅させた。配列番号:6のネズミTRAIL配列の アミノ酸99〜291をコードしているDNAの末端を確定するオリゴヌクレオ チドを、PCRにおいて5′および3′プライマーとして用いた。 実施例8:可溶性TRAILによる白血病細胞の溶解 実施例5において、ヒトTRAILを発現する細胞は、ジャーカット細胞(白 血病細胞系)のアポトーシスを誘導した。次の実験において、可溶性ヒトTRA ILポリペプチドはジャーカット細胞を死滅させた。 ジャーカット細胞を、10%ウシ胎児血清、100μg/mlストレプトマイ シンおよび100μg/mlペニシリンを補足したRPMI培地中で培養して、 細胞200,000〜500,000個/mlの密度とした。その細胞(96ウ ェルプレート中において100μlの容量で細胞50,000個/ウェル)を、 図1で示された試薬と一緒に20時間インキュベートした。「TRAIL supe. 」は、pDC409-Flag-shTRAIL(実施例7を参照されたい)でトランスフ ェクションされたCV1/EBNA細胞からの条件上澄み(10μl/ウェル) を意味する。「対照supe.」は、中空ベクターでトランスフェクションされたC V1/EBNA細胞からの上澄みを意味する。示されたところで、固定された抗 濃度で加え、そして4℃で一晩中かまたは37℃で2時間付着させた後、ウェル は吸引され、そしてPBSで2回洗浄されて非結合抗体を除去した。Fasリガ ンドまたは、Fasに対して向けられた遮断モノクローナル抗体であるM3(Al derson ら,J.Exp.Med.181:71,1995;およびPCT出願WO95/10540号)で処理 されたジャーカット細胞は、検定において指示通りに包含された。 このように処理された細胞の代謝的活性を、アラマルブルー(alamar Blue) 染料の代謝的変換によって次の手順で検定した。アラマルブルー変換は、アラマ ルブルー染料(Biosource International,カマリロ,CA)10μl/ウェル を加え、そして染料が加えられた時点での550〜600nmの光学濃度(OD )を、4時間後のOD550〜600nmから差引くことによって測定された。 染料の無変換を生存率0%とプロットし、そしてTRAILの不存在下の染料変 換濃度を生存率100%とプロットする。生存率%は、実験対対照培養物の染色 比に100を掛けることによって計算された。 結果を図1で示す。誤差バーは、4個の別々のウェルからの測定値の標準偏差 を表し、それらの値はこれら測定値の平均である。 TRAIL含有上澄みは、ジャーカット細胞の生存率の有意の減少を引き起こ した。細胞生存率のより大きな減少は、TRAIL含有上澄みおよび固定された える強さを増加させるということである。 Fasリガンドは、ジャーカット細胞を死滅させる能力を示した。抗Fas抗 体M3は、Fasリガンドの活性を阻害したが、TRAILの活性を阻害しなか った。 アラマルブルー検定での染料変換の変化が細胞死のためであったことを確証す るために、TRAILによって引き起こされた細胞生存率の低下を、トリパンブ ルーで細胞を染色することによって確証した。 実施例9:白血病およびリンパ腫細胞の溶解 実施例5および8において、TRAILは、白血病細胞系(ジャーカット)お よびリンパ腫細胞系(U937)のアポトーシスを誘導した。次の実験は、更に、 白血病およびリンパ腫細胞を死滅させるTRAILの能力を実証する。 表Iで示されたヒト細胞系を、10%ウシ胎児血清、100μg/mlストレ プトマイシンおよび100μg/mlペニシリンを補足したRPMI培地中で培 養して、細胞200,000〜500,000個/mlの密度とした。その細胞 (96ウェルプレート中において100μlの容量で細胞50,000個/ウェ ル)を、pDC409-Flag-shTRAILでトランスフェクションされたCV1/ EBNA細胞からの条件上澄み(10μl/ウェル)と一緒に20時間インキュ ベートした。 代謝的活性を、アラマルブルー染料の変換によって、実施例8で記載された検 定手順で検定した。結果を表Iで示す。 アラマルブルー検定での染料変換の変化が細胞死のためであったことを確証す るために、TRAILによって引き起こされた細胞生存率の低下を、トリパンブ ルーで細胞を染色することによって確証した。Flick および Gifford(J.Immuno l.Methods 68:167-175,1984)によって記載のように行われたクリスタルバイオ レット染色もまた、アラマルブルー検定で見られた結果を確証した。細胞死のア ポトーシス性は、トリバンブルー染色および顕微鏡によるアポトーシスフラグメ ント化の可視化によって確証された。 表Iで示されたように、多数の癌細胞系は、TRAILに媒介された死滅に対 して感受性であった。TRAILに媒介されたアポトーシスに対する更に別の細 胞種の感受性は、この実施例の項で記載された検定法を用いて確認することがで きる。 TRAILは、細胞系THP−1、K562、Karpas 299 およびMP−1に対し てほとんど細胞毒性作用を示さなかった。Karpas 299 としても知られるK299( DSM−ACC31)は、高級大形細胞退生リンパ腫(Fischer ら,Blood,72:234 ,1988)で診断された雄の末梢血から樹立された。MP−1は、自発的に誘導さ れるEBVで形質転換されたB細胞系である(Goodwin ら,Cell 73:447,1993) 。理論によって拘束されたくはないが、これら4種類の細胞系は、TRAILの 受容体を発現しないことがありうるし、またはアポトーシスを阻害する遺伝子の アップレギュレーションを特徴とすることがありうる。 a 結果は、各データポイントに関する4ウェルの平均±SEMである。 実施例10:TRAILの交差種活性 ヒトおよびネズミTRAILの種間交差反応性を次のように調べた。ネズミお よびヒトTRAILを、ヒト黒色腫細胞系A375(ATCC CRL1619)と一 緒にインキュベートした。これは付着性細胞系であるので、アラマルブルーより もむしろクリスタルバイオレット検定を用いて細胞生存率を決定した。A375 細 胞を、10%ウシ胎児血清、100μg/mlストレプトマイシンおよび100 μg/mlペニシリンを補足したDMEM中で培養した。その細胞(96ウェル プレート中において100μlの容量で細胞10,000個/ウェル)を、実施 例7で記載された可溶性ネズミTRAILと一緒に72時間インキュベートした 。クリスタルバイオレット染色は、Flick および Gifford(J.Immunol.Methods 68:167-175,1984)によって記載のように行われた。その結果は、ネズミおよび ヒトTRAILがA375 細胞を死滅させたという点で、ヒトおよびネズミTRA IL両方が、これらヒト細胞に対して活性であることを示した。 ネズミ細胞に対して作用するヒトTRAILの能力を、不死化されたネズミ線 維芽細胞系L929 を用いて調べた。L929 細胞のヒトかまたはネズミTRAIL とのインキュベーションは、クリスタルバイオレット染色で低下を引き起こすの で、ヒトおよびネズミTRAILはネズミ細胞(の誘導されたアポトーシス)に 対して活性であることが示された。クリスタルバイオレットの他に、細胞死はト リバンブルー染色によって確証された。 実施例11:CMV感染細胞の溶解 が、ウイルス感染細胞に対して細胞毒性作用を有することを示す。 正常なヒト歯肉線維芽細胞を、24ウェルプレート上において、10%CO2 、並びに10%ウシ胎児血清、100μg/mlストレプトマイシンおよび10 0μg/mlペニシリンを補足したDMEM培地中で密集するまで増殖させた。 線維芽細胞の試料は、図2で示されたように処理された。サイトカインの濃度は 、 ILを30ng/mlであった。TRAILを与えられた試料全てにも、TRA 倍重量過剰与えた。 指示されたサイトカインでの細胞の前処理は20時間であった。細胞をサイト メガロウイルス(CMV)に感染させるために、培地を吸引し、そして細胞を、 DMEM中において近似MOI(感染の多発性)5でCMVに感染させた。2時 間後、ウイルス含有培地をDMEMと取替え、そしてサイトカインを指示通り加 えた。24時間後、細胞をクリスタルバイオレット染料で記載通りに染色した( Flick および Gifford,1984,上記)。染色された細胞を水で2回洗浄し、2% デオキシコール酸ナトリウム200μlで破裂させ、水で5倍に希釈し、そして 570nmでのODを得た。最大染色%は、最も強い染色を示した試料に対して ODを標準化することによって計算された。同様の結果が、いくつかの独立した 実験から得られた。 図2で示された結果は、TRAILが、CMVに感染した線維芽細胞を特異的 に死滅させたことを示す。この細胞死は、γ−インターフェロンでの細胞の前処 理によって促進された。ウイルスに感染していない線維芽細胞がほとんど死滅し なかったことは、TRAILとの接触に起因した。 実施例12:遮断抗体を識別する検定 TRAILに対して向けられた遮断抗体は、TRAILの特定の生物学的活性 を阻害する能力に関して抗体を調べることによって識別することができる。次の 検定において、モノクローナル抗体を、TRAILに媒介されたジャーカット細 胞のアポトーシスを阻害する能力に関して調べた。ジャーカット細胞系は、実施 例5で記載されている。 抗体を産生するハイブリドーマ細胞系を、検定において用いた。ハイブリドーマ 培養物からの上澄みを、96ウェル微量滴定プレート中のRPMI完全培地中に RAIL融合タンパク質およびM2と称されるモノクローナル抗体は、実施例7 で記載されている。 ハイブリドーマ上澄みは、1:50(v/v)希釈(開始濃度)でおよびその 2倍連続希釈で用いられた。37℃、10%CO2で30分間インキュベーショ ン後、ジャーカット細胞50,000個/ウェルを加え、そしてインキュベーシ ョンを20時間続けた。 次に、細胞生存率を、アラマルブルー染料の代謝的変換を測定して算定した。 アラマルブルー変換検定法は、実施例8で記載されている。モノクローナル抗体 トーシスを阻害することが判った。 実施例13:TRAIL遮断実験 皮膚由来のヒト微小血管内皮細胞を、血栓性血小板減少性紫斑病(TTP)の 患者からの血漿または対照血漿を単独でかまたは抗TRAILポリクローナル抗 血清の存在下で用いて16〜18時間処理した。1:2000希釈の抗血清を用 いた。血漿は、以下の#1および#2で示される二人のTTP患者からであった 。検定で用いられた細胞は、MVEC−1(HMVEC 2753,Clonetics,サン ・ディエゴ,CAから購入された)およびMVEC−2(DHMVEC 30282, Cell Systems,カークランド,WAから購入された)であった。これら細胞の培 養物は、Laurence ら(Blood,87:3245,1996)で記載のように維持することがで きる。 結果は次の通りであった。示されたデータは、ヨウ化プロビジウムで染色され た細胞のDNAヒストグラムにより、そして「A0ピーク」は、アポトーシスピ ークを示す(Oyaizu ら,Blood,82:3392,1993;Nicoletti ら,J.Immunol.Metho ds,139:271,1991;および Laurence ら,Blood,75:696,1990を参照されたい)。 データは、TTP患者に由来する血漿が、ヒト由来の微小血管内皮細胞のアポ トーシスを誘導することを示す。このアポトーシスは、TRAILに対して向け られたポリクローナル性抗体によって阻害された。 DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION Cytokines that induce apoptosis Background of the Invention Programmed cell death, also known as apoptosis, is a combination of necrosis and cell death. Is different. Apoptosis is associated with embryogenesis, metamorphosis, endocrine-dependent tissue atrophy, Of immune thymocytes (by their antigen-receptor complex also Occur in death (induced by glucocorticoids) (Itoh et al., Cell 66: 233). , 1991). During maturation of T cells in the thymus, T cells that recognize self-antigens It is destroyed by the torsion process, but others are just selected. Some kind of self-epitopes Some T cells (eg, disabled and given a given self- (Provided with protein determinants) escaped this elimination process and continued It has been suggested that it may play a role in autoimmune diseases (Gammon et al., Imm. unology Today 12: 193, 1991). A cell surface antigen known as Fas has been reported to mediate apoptosis And plays a role in clonal elimination of autoreactive T cells (Itoh et al., Cell 66: 233, 1991; Watanabe-Fukunaga et al., Nature 356: 314, 1992). Cross-linking of a specific monoclonal antibody to Fas can affect a variety of cell lines. It is reported to cause potosis (Yonehara et al., J. Exp. Med., 169: 1747 Trauth et al., Science, 245: 301, 1989). However, under certain conditions The binding of the specific monoclonal antibody to Fas was May have a costimulatory effect on T cells (Alderson et al., J. Exp. Med., 178: 2231, 1993). Rat Fas ligand (Suda et al., Cell, 75: 1169, 1993) and human Fas Riga (Takahashi et al., International Immunology 6: 1567, 1994). DNA has been isolated. Fas ligand for cells expressing Fas antigen Binding has been demonstrated to induce apoptosis (Suda et al., Supra, and T akahashi et al., supra). The presence or absence of one or more other molecules that play a role in apoptosis And identification studies are desired. Identification of such molecules regulates apoptosis It will provide yet another means, and furthermore the development and self-tolerance of the immune system. And provide further insights into the etiology of autoimmune diseases. Summary of the Invention The present invention relates to a novel cytokine protein, And an expression vector comprising the isolated DNA. Tumor Sex of a novel cytokine that is a member of the tumor necrosis factor (TNF) family of ligands Quality includes the ability to induce apoptosis of certain types of target cells. But Thus, this protein is used as a TNF-related apoptosis-inducing ligand (TRAIL) Called. Some types of cells that die upon contact with TRAIL include leukemia, There are cancer cells, such as lymphoma and melanoma cells, and cells infected by the virus. A method for producing a TRAIL polypeptide may be performed under conditions suitable for TRAIL expression. Using a recombinant expression vector containing DNA encoding TRAIL After transforming the cells, the expressed TRAIL polypeptide is recovered from the culture. Do that. Also provided are antibodies directed against the TRAIL polypeptide . BRIEF DESCRIPTION OF THE FIGURES FIG. 1 shows the results of the assay described in Example 8. The assay uses soluble human TRA IL polypeptide induced death of Jurkat cell line, a leukemia cell line showed that. FIG. 2 shows the results of the assay described in Example 11. Soluble human TRAIL polypeptide Contact with peptides induces death of human fibroblasts infected with cytomegalovirus Did not kill non-viral infected fibroblasts. Detailed description of the invention Here, a novel protein, called TRAIL, encodes TRAIL Along with the recombinant expression vector containing the DNA and TRAIL DNA. Offer. Methods for producing recombinant TRAIL polypeptides are useful for expressing TRAIL. Culturing a host cell transformed with the recombinant expression vector under appropriate conditions; And recovering the expressed TRAIL. The present invention also provides an antibody that specifically binds a TRAIL protein. one In one embodiment, the antibodies are monoclonal antibodies. TRAIL proteins are not limited to cancer cells and viral Induces apoptosis in certain types of target cells, such as transformed cells, including stained cells . As demonstrated in Examples 5, 8, 9 and 10 below, TRAIL Induces apoptosis of leukemia, lymphoma and melanoma cell lines. TRAIL's Some uses are in killing cancer cells. TRAIL further Used in the treatment of ills infection. Cytomegalovirus (CMV) infection Make fibroblasts susceptible to apoptosis when contacted with TRAIL. However, uninfected fibroblasts did not die upon contact with TRAIL (actual See Example 11). Isolation of DNA encoding human TRAIL is described in Example 1 below. . The nucleotide sequence of human TRAIL DNA isolated in Example 1 is shown in SEQ ID NO: : 1 and the amino acid sequence encoded thereby is shown in SEQ ID NO: 2. You. This human TRAIL protein has an N-terminal cytoplasmic domain (amino acids 1-1). 8), the transmembrane part (amino acids 19-38) and the extracellular domain (amino acids 39 To 281). The extracellular domain has a receptor binding moiety. Large intestine transformed with a recombinant vector containing this human TRAIL DNA The E. coli strain DH10B cells were obtained on June 14, 1995 by American type. ・ Deposited with American Type Culture Collection , And accession number 69849. The deposit is made under the terms of the Budapest Treaty. It was done according to. The recombinant vector in the deposited strain was described in (Example 5). Ii) Expression vector pDC409. The vectors are SalI and NotI. And a human TRAI containing the complete coding region set forth in SEQ ID NO: 1. LDNA was ligated into the vector. The DNA encoding the second human TRAIL protein is described in Example 2. Isolated. The nucleotide sequence of this DNA is shown in SEQ ID NO: 3, and The amino acid sequence encoded thereby is shown in SEQ ID NO: 4. Its coded The protein consists of an N-terminal cytoplasmic domain (amino acids 1-18), a transmembrane Nos. 19-38) and the extracellular domain (amino acids 39-101). Since the DNA of SEQ ID NO: 3 lacks a part of the DNA of SEQ ID NO: 1, It is called the human TRAIL deletion mutant (huTRAILdv) clone. Array number Nucleotides 18 to 358 of No. 1 correspond to huTRAILdvDN of SEQ ID NO: 3. Identical to nucleotides 8-348 of A. Nucleotide 359 of SEQ ID NO: 1 ~ 506 is missing from the cloned DNA of SEQ ID NO: 3. The deletion is Causes transposition in the reading frame, resulting in amino acid 101 of SEQ ID NO: 4. Followed by an in-frame stop codon. Therefore, the DNA of SEQ ID NO: 3 is Encodes a partially truncated protein. Amino acids 1 to 9 of SEQ ID NO: 2 0 is identical to amino acids 1 to 90 of SEQ ID NO: 4. However, its deletion For the C-terminal part of the huTRAILdv protein (amino acid of SEQ ID NO: 4) Acids 91-101) are different from the residue at the corresponding position in SEQ ID NO: 2. Full length In contrast to the huTRAIL protein, the truncated huTRAILdv Protein induces apoptosis in T-cell leukemia cells of the Jurkat cell line Does not show the ability to DNA encoding mouse TRAIL protein is also described in Example 3. Was isolated as follows. The nucleotide sequence of this DNA is shown in SEQ ID NO: 5, and The amino acid sequence encoded thereby is shown in SEQ ID NO: 6. That code The isolated protein has an N-terminal cytoplasmic domain (amino acids 1-17), a transmembrane (Amino acids 18-38) and extracellular domain (amino acids 39-291) . This mouse TRAIL is a human TRA of SEQ ID NO: 2 at the amino acid level. 64% identical to IL. The coding region of the mouse TRAIL nucleotide sequence is 75% identical to the coding region of the human nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1. One embodiment of the present invention provides an N-terminal amino acid sequence MetAlaMetMetGluValGlnGlyG. lyProSerLeuGlyGlnThr (amino acids 1 to 15 of SEQ ID NOs: 2 and 4) Human TRAIL protein. N-terminal amino acid sequence MetProSerSerGlyAl aLeuLysAspLeuSerPheSerGlnHis (amino acids 1 to 15 of SEQ ID NO: 6) A mouse TRAIL protein is also provided herein. The TRAIL protein of the present invention is a protein known as Fas ligand. (Suda et al., Cell, 75: 1169, 1993; Takahashi et al., International Immu nology 6: 1567, 1994). Fas ligand is activated by a receptor known as Fas. Induces apoptosis in some cell types. As demonstrated in Example 5, TRAIL-induced apoptosis of target cells is not mediated by Fas. Array The human TRAIL amino acid sequence of No. 2 is shown in Takahashi et al., Supra. Approximately 20% identical to the human Fas ligand amino acid sequence. Human TRAIL cells The ectodomain is approximately 28.4% identical to the extracellular domain of human Fas ligand . The amino acid sequences disclosed herein show that TRAIL is a ligand of the TNF series (Smith et al., Cell, 73: 1349, 1993; Suda et al., Cell, 7). 5: 1169, 1993; Smith et al., Cell, 76: 959, 1994). Human TRAIL extracellular domain Between the amino acid sequence and the amino acid sequences of the extracellular domains of other proteins in this series The percent identity between is as follows: 28.4% Fasligant, lymphotoxin 22.4% for -β, 22.9% for TNF-α, 23.1% for TNF-β, CD3 22.1% for 0 ligand and 23.4% for CD40 ligand. Examining TRAIL for its ability to bind to receptors of the TNF-R series of receptors Was. Binding analysis was performed using the slide autoradiograph of Gearing et al. (EMBO J. 8: 3667; 1989). This was done using the luffy procedure. The analysis showed that human CD30, CD40, 4-1 BB, OX40, TNF-R (p80 type), CD27 or LTβR (TNFR -Also known as detectable binding of human TRAIL to RP) Was. The results of Example 5 show that human TRAIL does not bind human Fas ing. TRAIL polypeptides of the present invention include those set forth in SEQ ID NOs: 2 and 6. And polypeptides having amino acid sequences that are very homologous. By way of example and not limitation, homologues, mutations from other mammalian species Body (both naturally occurring variants and those produced by recombinant DNA technology), And TRAIL fragments that retain the desired biological activity . Such polypeptides include the TRAIL proteins of SEQ ID NOs: 2 and 6. Exhibits biological activity and is preferably represented by SEQ ID NO: 2 or SEQ ID NO: 6 At least 80% identical to the amino acid sequence (most preferably at least 90% identical) ) Including the amino acid sequence These embodiments of the invention are described in further detail below. You. Conserved sequences located in the C-terminal portion of proteins of the TNF series are incorporated herein by reference. Smith et al. (See Cell, 73: 1349, 1993, p. 1353 and FIG. 6). Suda et al. (Cell, 75: 1169, 1993; see FIG. 7); Smith et al. (Cell, 76:95 9, 1994, see FIG. 3); and Goodwin et al. (Eur. J. Immunol. 23: 2631, 1). 993, see FIG. 7 and pages 2638-39). Saved ( Amino acids of human TRAIL protein (at least for most members of the TNF series) Among the acids, positions 124 to 125 (AH), 136 (L), and 15 of SEQ ID NO: 2 4th (W), 169th (L), 174th (L), 180th (G), 182th (Y ), 187 (Q), 190 (F), 193 (Q) and 275-276 (FG). Another structural feature of TRAIL is that the transmembrane C Between the terminus and the portion of the extracellular domain considered to be most important for biological activity It is a spacer part between them. This spacer located at the N-terminus of the extracellular domain The portion consists of amino acids 39-94 of SEQ ID NO: 2. Similar spacers Family members, such as the CD40 ligand. Amino acids 138-1 53 is a loop between the β-sheets of the folded (three-dimensional) human TRAIL protein. Equivalent to Provided herein are membrane-bound TRAIL proteins (cytoplasmic domain , Transmembrane and extracellular domains), and full-length TRAIL proteins TRAIL fragments that retain the desired biological properties of the protein. one In one embodiment, the TRAIL fragment contains all or an extracellular domain. Contains a portion, but is thought to retain the polypeptide on the cell membrane A soluble TRAIL polypeptide lacking a porcine moiety. Soluble TRAIL Proteins can be secreted from the cells in which they are expressed. Conveniently The heterologous signal peptide is N-terminal such that soluble TRAIL is secreted during expression. Fused to the end. Soluble TRAIL can be used to identify intact cells expressing the desired protein, for example. Can be separated from the culture medium by centrifugation and the presence of the desired protein It can be confirmed by assaying the medium (supernatant) (and its insoluble membrane formation). Can be distinguished from the combined counterpart). The presence of TRAIL in the medium indicates that the protein From the TRAIL protein It is. Naturally occurring soluble forms of TRAIL are encompassed by the present invention. The use of soluble forms of TRAIL is advantageous for some applications. Recombinant host cells Purification of proteins from vesicles is easy as soluble proteins are secreted from the cells become. Furthermore, soluble proteins are generally more suitable for intravenous administration. Examples of soluble TRAIL polypeptides include the complete extracellular domain (eg, sequence (Amino acids 39 to 281 of SEQ ID NO: 2 or amino acids 39 to 291 of SEQ ID NO: 6) It contains. Of extracellular domains that retain the desired biological activity Fragments are also provided. Such fragments advantageously include the above Contains a portion of TRAIL that is conserved in the TNF family of ligand proteins. I will. Yet another example of a soluble TRAIL polypeptide is the cytoplasmic domain and transmembrane Not all or part of the above spacer part as well as the part It is. Thus, soluble human TRAIL polypeptides are But not including polypeptides comprising amino acids x-281, wherein x represents any one of amino acids 39 to 95 of SEQ ID NO: 2. Residue 95 is N In embodiments that are terminal amino acids, the complete spacer portion has been deleted. TRAIL fragments, including soluble polypeptides, can be obtained using a number of conventional techniques. Can be produced by any of the above methods. The desired TRAIL fragment The coding DNA sequence is used to express the expression vector for the production of the TRAIL fragment. May be subcloned into the sample. The DNA sequence encoding TRAIL is And, advantageously, the sequence encoding the appropriate leader or signal peptide. Are combined. A DNA fragment encoding the desired TRAIL can be obtained by known techniques. It can be synthesized economically using the method. DNA fragments are also full-length Produced by restriction endonuclease digestion of the cloned NDA sequence and It can be isolated by electrophoresis on a galose gel. 5 'or 3' if necessary Oligonucleotides that reconstitute the ends to the desired point are digested with restriction enzymes. Living The same DNA fragment may be ligated. Oligonucleotides like this Further comprises a restriction endonuclease cleavage site upstream of the desired coding sequence, An initiation codon (ATG) can then be placed at the N-terminus of the coding sequence. Well known polymerase chain reaction (PCR) procedures are also used to Used to isolate and amplify the DNA sequence encoding the fragment. it can. Oligonucleotides that determine the desired end of the DNA sequence are 5 'and And 3 'primer. The oligonucleotide is further restricted Expression of an amplified DNA fragment containing an endonuclease recognition site Insertion into a vector can be facilitated. PCR technology is available from Saiki et al., Scie. 239: 487 (1988); Recombinant DNA Methodology, supervised by Wu et al., Academic Press , Inc., San Diego (1989), pp. 189-196; and PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, supervised by Innis et al., Described in Academic Press, Inc. (1990) Have been. As will be appreciated by those skilled in the art, each of the TRAIL proteins and Each transmembrane segment is a conventional format for identifying its type of hydrophobic domain. Identified by standard. The exact boundaries of the transmembrane part are different from those shown above. Can differ slightly (probably up to 5 amino acids at each end) . Computer programs available to identify such hydrophobic moieties are available It is possible. The TRAIL DNA of the present invention includes cDNA, chemically synthesized DNA, and PCR. DNA, genomic DNA and combinations thereof. Get Nom TRAIL DNA is prepared using the TR disclosed herein using standard techniques. Can be isolated by hybridization to AIL cDNA You. RNA transcribed from TRAIL DNA is also encompassed by the present invention. You. A search of the NCBI databank found that the TRAIL DNA had the same portion as 5 Different expressed sequence tags (ESTs) were identified. These ESTs (deposited by NCBI) Nos. T90422, T82085, T10524, R31020 and Z36726) are all human cDN A fragment. The NCBI record contains any EST coded Does not reveal the polypeptide, and if so, what its reading frame could be Is not shown. However, with the disclosure of the complete TRAIL coding region, Even if the EST is expressed using the information in the reading frame indicated in the book, A polypeptide of the TRAIL polypeptide described in the claims. No one will have toxogenic properties. In other words, five types of ESTs When inserted into an expression vector downstream from the initiation methionine codon, In the reading frame described in the text, the resulting expressed polypeptide contains Sufficient of the extracellular domain of TRAIL to induce Nothing would include the part. Some embodiments of the present invention relate to nucleotides 88-933 of SEQ ID NO: 1 ( Human TRAIL coding region); nucleotides 202 to 933 of SEQ ID NO: 1 (human TRAIL encoding the extracellular domain); nucleotides of SEQ ID NO: 5 47-922 (mouse TRAIL coding region); and the nucleoside of SEQ ID NO: 5 From Tides 261 to 922 (encoding the mouse TRAIL extracellular domain) An isolated DNA comprising a nucleotide sequence selected from the group consisting of: Arrangement Encoding biologically active fragments of the proteins of SEQ ID NOs: 2 and 6 Provided DNA is also provided. In yet another embodiment, the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1 No. 370-930 and a sequence comprising nucleotides 341-919 of SEQ ID NO: 5 Which are the specific human and murine soluble TRAIs described in Example 7. Each encodes an L polypeptide. Due to the degeneracy of the genetic code, the two DNA sequences can differ, Encodes the same amino acid sequence. The present invention therefore relates to natural human or DNA or fragment thereof containing the coding region of P. TRAIL cDNA And degenerate as a result of the genetic code to the native TRAIL DNA sequence Isolated, encoding a biologically active TRAIL selected from DNA DNA sequences are provided. Further provided herein are purified TR, both recombinant and non-recombinant. AIL polypeptide. Natural TRA retaining desired biological activity Mutants and derivatives of the IL proteins are also within the scope of the present invention. One fruit In embodiments, the biological activity of the TRAIL variant is a native TRAIL protein. It is essentially equivalent to the biological activity of proteins. One desired biology of TRAIL An activity is the ability to induce the death of Jurkat cells. Apoptosis of target cells Assays for detecting viruses are well known. DNA laddering is an appointment Included in the characteristics of cell death by torsion and reduce apoptotic cell death to necrotic It is recognized as one of the observable phenomena that distinguishes from bleeding. The death of the target cell Examples of suitable assay techniques for detecting apoptosis include Examples 5 and 8- 11 are described. Another property of TRAIL is that The ability to bind to cells. TRAIL variants include, for example, mutations of the native TRAIL nucleotide sequence. Can be obtained by The TRAIL variants discussed herein are naturally-occurring A polypeptide substantially homologous to TRAIL of one or more of Amino acids different from those of native TRAIL due to deletion, insertion or substitution of Has an array. The DNA sequence encoding the TRAIL of the present invention may be a native TR The addition of one or more nucleotides when compared to the AIL DNA sequence. Sequences that include additions, deletions or substitutions, but are essentially identical to the native TRAIL protein. Encompasses said sequence encoding a TRAIL protein that is biologically equivalent to You. The variant amino acid or DNA sequence preferably has a minor sequence with the native TRAIL sequence. At least 80% identical, most preferably at least 90% identical. Natural and And the degree of homology (% identity) between the mutant and mutant sequences, for example, is generally determined for this purpose. By comparing the two sequences using the computer program used, Can be determined. One suitable program is Devereux et al. (Nucl.Acid Res. 12: 387,1984) and described at the University of Wisconsin Genetics Compu. GAP computer program, available from the UWGCG Version 6.0. The GAP program includes Smith and Waterman (Adv .Appl.Math 2: 482,1981), as modified by Needleman and Wunsch (J. Mol. Biol. 48: 443, 1970). In short, GAP program Is the number of matching parallel symbols (ie, nucleotides or amino acids) divided by two Distribution Determine identity as the total number of shorter symbols in a column. GAP program preferred The implicit parameters include (1) unary comparison matrices for nucleotides. Rix (including 1 for identical and 0 for non-identical) and Schwartz and D supervised by ayhoff, Atlas of Protein Sequence and Structure, National Biomedical Gribskov et al., As described by the Research Foundation, pages 353-358, 1979. And Burgess, Nucl. Acids Res. 14: 6745,1986, weighted comparison matrix; (2) 3.0 penalty for each gap and the respective An additional 0.10 penalty for the symbol; and (3) a terminal gap penalty. No tee, included. Alterations of the natural amino acid sequence can be accomplished by any of a number of known techniques. You. Mutation flanked by restriction sites that can be ligated to fragments of the native sequence Specific inheritance by synthesizing modified mutant sequence-containing oligonucleotides Can be introduced to the child. After ligation, the resulting rearranged sequence contains the desired amino acid Encodes analogs with insertions, substitutions or deletions. Alternatively, oligonucleotide-directed site-directed mutagenesis The specific codons altered by the necessary substitutions, deletions or insertions. An altered gene having the same can be provided. Technology to make such changes (Walder et al. (Gene 42: 133, 1986); Bauer et al. (Gene 37:73, 1985); Craik (B ioTechniques, January 1985, 12-19); Smith et al. (Genetic Engineering: Principle) and Methods, Plenum Press, 1981); and U.S. Patent Nos. 4,518,584 and No. 4,737,462, which are incorporated herein by reference. Variants can include conservatively substituted sequences, and can include native TRAIL poly One or more amino acid residues of the peptide are replaced by different residues However, the conservatively substituted TRAIL polypeptide is a native TRAIL polypeptide. Has been shown to retain the desired biological activity essentially equivalent to that of tide. You. Examples of conservative substitutions include altering the secondary and / or tertiary structure of TRAIL. Some amino acid substitutions are not allowed. In another example, the desired biological activity is on a target cell. Ability to bind to a receptor and induce apoptosis of its target cells In some cases, amino acid substitutions outside the receptor binding domain are included. Given Amino acids can be replaced with residues having similar physical and scientific properties. For example, replacing one aliphatic residue with another (such as Ile, Val, Leu or Ala) Can be substituted for each other) or one polar residue can be replaced by another (Lys and Arg Glu and Asp; or between Gln and Asn). Other like this Such conservative substitutions, for example, substitution of an entire moiety having similar hydrophobicity, are well known. Save TRAIL polypeptides containing amino acid substitutions are required to produce the desired native TRAIL. Assays described herein to confirm retention of physical activity Can be tested in one of the TRAI containing such conservative amino acid substitutions DNA encoding an L polypeptide is encompassed by the present invention. Located at the C-terminal part of TNF series proteins and important for biological activity Conserved amino acids that are believed to be have been identified. These conserved sequences are described in Smith et al. (Ce ll, 73: 1349, 1993, p. 1353 and FIG. 6); Suda et al. (Cell, 75: 1169). 1993, FIG. 7); Smith et al. (Cell, 76: 959, 1994; see FIG. 3). And Goodwin et al. (Eur. J. Immunol. 23: 2631,1993, FIG. 7 and 2638-39). Page). Conveniently, the conserved amino acids have a conservative substitution sequence. If it does, it does not change. If changed, the equiposition of other members of the TNF series The amino acids found in are replaced. TRAIL also contains other components such as glycosyl groups, lipids, phosphates, acetyl groups, etc. Induces TRAIL by forming a covalent or agglutination bond with a chemical residue It can be modified to produce a body. The covalent derivative of TRAIL is T To functional groups on RAIL amino acid side chains or to TRAIL polypeptide or By attaching a chemical residue to the N-terminus or C-terminus of its extracellular domain. Can be manufactured. Other derivatives of TRAIL within the scope of the present invention include N-terminal Other proteins, such as by synthesis in recombinant culture, such as terminal or C-terminal fusions Or a covalent or aggregated conjugate of TRAIL with a polypeptide or Fragments are included. For example, the conjugate is the N-terminus of the TRAIL polypeptide A signal or leader polypeptide sequence (eg, Saccharomyces (Sacc) haromyces). The signal or Lee Dipeptides from their synthesis site to sites inside or outside the cell membrane or cell wall of Governance of the conjugate is governed by co-translation or post-translation. TRAIL polypeptide fusions facilitate TRAIL purification and identification. And may be added to the peptide. Such peptides include, for example, No. 5,011,912 and Hopp et al., Bio / Technology 6: 1204, 1988. One such pepti Do No. 7), which is a highly antigenic and specific monoclonal antibody To give an epitope that is reversibly bound by the recombinant protein expressed. Allows for rapid assay of quality and easy purification. This sequence also contains the bovine mucosal It is specifically cleaved by telokinase at the residue immediately after Asp-Lys pairing. This page Peptide-capped fusion proteins are also suitable for intracellular degradation in E. coli. Can be resistant. A murine hybridoma designated 4E11 is described in (US Pat. No. 5,011,912). In the presence of certain divalent metal cations, the peptide DYKDDDDK (SEQ ID NO: No. 7), and produce a monoclonal antibody Ruchi Expression systems useful for producing recombinant proteins fused to Monochromes useful for binding peptides and purifying the recombinant protein Null antibodies are available from Eastman Kodak Company, Scientific Imaging Systems, New York. Available from Bun, Connecticut. The present invention further provides for T with or without associated native pattern glycosylation. RAIL polypeptide. TRAI expressed in yeast or mammalian expression systems L depends on the choice of the expression system, the TR of native molecular weight and glycosylation pattern It can be similar or significantly different from the AIL polypeptide. colon Expression of a TRAIL polypeptide in a bacterial expression system, such as a fungus, may be a non-glycosylated molecule. give. Glycosylation sites in the TRAIL extracellular domain may be yeast or mammalian expression A system for expressing uniform reduced carbohydrate analogs using the system It can be modified to prevent lycosylation. N-glycosyl in eukaryotic polypeptides The site of oxidation is characterized by the amino acid triplet Asn-XY, where X Is any amino acid except Pro and Y is Ser or Thr. Suitable modifications to the nucleotide sequence encoding this triplet are cause substitutions, additions or deletions that prevent the attachment of carbohydrate residues at the sn side chain. There will be. Known methods for inactivating N-glycosylation sites in proteins include rice. No. 5,071,972 and those described in EP 276,846. Potential N-glycosylation sites are from 109 to 109 in the human protein of SEQ ID NO: 2. Found at positions 111 and 52-54 in the murine protein of SEQ ID NO: 6 . In another example, encoding a Cys residue that is not essential for biological activity Existing sequence may have its Cys residue deleted or replaced with another amino acid. To prevent incorrect intramolecular disulfide bridge formation upon reconstitution Can be. Other variants are expressed in yeast systems where KEX2 protease activity is present. Produced by modification of adjacent dibasic amino acid residues to promote European Special No. 212,914 discloses a KEX2 protease processing site in a protein. Disclosed is the use of site-directed mutagenesis to inactivate. KEX2 Protea Zeprocessing sites alter the Arg-Arg, Arg-Lys and Lys-Arg pairs. Inactivation by deleting, adding or substituting residues as in Eliminates the generation of basic residues. Lys-Lys pairing is almost insensitive to KEX2 cleavage Not susceptible, and the conversion of Arg-Lys or Lys-Arg to Lys-Lys is Figure 2 shows a conservative and preferred approach to inactivation of the X2 site. Potential KEX2 Pro The protease processing site is located at positions 89-90 in the protein of SEQ ID NO: 2. And positions 149 to 150 and positions 85 to 86, 13 in the protein of SEQ ID NO: 6. Found at positions 5-136 and 162-163. Naturally occurring TRAIL variants are also encompassed by the present invention. This Examples of such mutants include alternative mRNA splicing ligation. From the fruit (since TRAIL is encoded by a multi-exon gene) or TR A protein that results from proteolytic cleavage of the AIL protein, And the desired biological activity is retained. mRNA alternative splicing Can be partially truncated, such as naturally occurring soluble proteins. A biologically active TRAIL protein can be produced. Proteolysis Mutations include, for example, one or more ends from the TRAIL protein. Expression in different host cell types by proteolytic removal of terminal amino acids At the N- or C-terminus. In addition, proteolytic cleavage is Of TRAIL can be released from membrane-bound proteins. Allele Variants are also encompassed by the present invention.Oligomer The invention relates to TRs in the form of oligomers, such as dimers, trimers or higher oligomers. AIL polypeptides. Oligomers include, for example, various TRAIL poly By disulfide bonds between cysteine residues on the peptide or TRAIL It can be formed by non-covalent interactions between polypeptide chains. In another embodiment Wherein the oligomer is a peptide residue fused to the TRAIL polypeptide 2-4 TRAIs bound by covalent or non-covalent interactions between L polypeptide. Such a peptide is a peptide linker (spacer ) Or a peptide having the property of promoting oligomerization. May be. Some polypeptides derived from leucine zippers and antibodies are listed below. As described in further detail, TRAIL polypeptides attached thereto Included in peptides that can promote the oligomerization of Preferably, TRAIL The polypeptide is soluble. Fused to various parts of an antibody-derived polypeptide (including the Fc domain) The production of fusion proteins comprising a heterologous polypeptide is, for example, incorporated herein by reference. Ashkenazi et al. (PNAS USA 88: 10535,1991); Byrn et al. (Nature 344: 667,199). 0); and Hollenbaugh and Aruffo (“Construction of Immunoglobulin Fusion Proteins ", Current Protocols in Immunology, Appendix 4, 10.19.1-10 .19.11, 1992). In one embodiment of the present invention, TRAIL dimer is expressed by TRAIL against Fc partial polypeptide derived from antibody. Generated by fusing The term “Fc polypeptide” includes Natural and mutein forms, as well as hinge regions that promote dimerization Truncated Fc polypeptides containing Preferably, Fc poly Pe Peptides are fused to soluble TRAIL (eg, containing only the extracellular domain). Are combined. Gene fusions encoding TRAIL / Fc fusion proteins can be expressed with appropriate expression Inserted into vector. The TRAIL / Fc fusion protein was very similar Allows the assembly of antibody molecules, resulting in interchain dislocation between the Fc polypeptides. A sulfide bond forms, resulting in bivalent TRAIL. In another embodiment, the TR AIL may be substituted for the variable region of an antibody heavy or light chain. The fusion protein As many as 4 extracellular TRAILs when produced using both the heavy and light chains of the antibody It is possible to form a TRAIL oligomer comprising a moiety. One suitable Fc polypeptide is a native Fc partial polypeptide derived from human IgG1. A polypeptide, which is described in PCT Application No. WO 93/10151, which is incorporated herein by reference. Number. Another useful Fc polypeptide is described in US Pat. No. 5,457, No. 035, the Fc mutein. Of that mutein In the amino acid sequence, amino acid 19 is changed from Leu to Ala, and amino acid 20 is changed to Ala. Leu was changed to Glu, and amino acid 22 was changed from Gly to Ala. Except that it is identical to that of the native Fc sequence shown in WO 93/10151. This mutein Fc has reduced affinity for immunoglobulin receptors Is shown. Alternatively, the oligomeric TRAIL may contain up to two TRAILs linked by a peptide linker. Or more soluble TRAIL polypeptides. Rice as an example Peptide linker described in National Patent No. 5,073,627, which is incorporated herein by reference. Is included. Multiple TRAIL polypeps separated by a peptide linker Tide-containing fusion proteins may be produced using conventional recombinant DNA techniques. Can be. Another method for producing oligomeric TRAIL polypeptides is Leucindi. Requires the use of a pper. Leucine zipper domains are found in them Peptides that promote the oligomerization of proteins. Leucine Zipper is the first Have been identified in several DNA binding proteins (Landschulz et al., Science ce 240: 1759, 1988), which has since been found in a variety of different proteins . Some of the known leucine zippers are naturally occurring peptides and dimerize Or those derivatives that trimerize. Soluble oligomer TRAIL tamper Examples of leucine zipper domains suitable for producing proteins are incorporated herein by reference. PCT Application No. WO 94/10308. Dimerization in solution TRAIL polypeptide fused to a peptide to be trimmed or trimerized The recombinant fusion protein containing the peptide is expressed in a suitable host cell and The soluble oligomer TRAIL is recovered from the culture supernatant. Some members of the TNF family of proteins are considered to exist in trimeric form. (Beutler and Huffel, Science 264: 667, 1994; Banner et al., Cell 7). 3: 431, 1993). Thus, trimeric TRAIL may benefit from enhanced biological activity. Can give points. Preferred leucine zipper moieties prefer trimers To form. One example is described in Hoppe et al. (FEBS Le tters 344: 191, 1994) and US patent application Ser. No. 08 / 446,922. Leucine zipper derived from the surfactant substance protein D (SPD). Naturally Other peptides derived from the present trimer protein produce trimeric TRAIL It can be used when doing. Soluble FL expressed in CV-1 / EBNA cells as described in Example 7. The resulting oligomer formed spontaneously. This soluble FLA in the assay of Example 8 Increased, probably because the antibody crosslinked the TRAIL / receptor complex. This is because of the promotion. In one embodiment of the present invention, TRAIL biology Activity is achieved by using TRAIL with antibodies that can crosslink TRAIL. Increase. Cells to be killed include soluble TRAIL polypeptide and such Contact with both antibodies. An antibody fragment lacking the Fc portion is used. Bivalent forms of antibodies are separated by separate dimers It may be mixed or incubated with the AIL polypeptide.Expression system The present invention relates to a recombinant expression vector for expressing TRAIL, and an expression vector for the same. A host cell transformed with the host cell. Use any suitable expression system Can be. Vectors can be derived from mammalian, microbial, viral or insect genes. Operably linked to appropriate transcriptional or translational regulatory nucleotide sequences, such as Encoding a TRAIL polypeptide, which is operably linked. Containing DNA. Examples of regulatory sequences include transcription promoters, operators Or enhancers, mRNA ribosome binding sites, and transcription and translation There are appropriate sequences to control the start and end. The nucleotide sequence is such that the regulatory sequence is T It is operably linked when it is operatively related to a RAIL DNA sequence. But Thus, the promoter nucleotide sequence is When controlling transcription of a TRAIL DNA sequence, Functionally coupled. An origin of replication that confers the ability to replicate in a desired host cell; And the selection genes that identify the transformed cells are generally included in the expression vector. It is. In addition, sequences encoding the appropriate signal peptide may be included in the expression vector. May be included. The DNA sequence of the signal peptide (secretory leader) As TRAIL is first translated as a fusion protein containing the peptide, T It can be fused in frame to the RAIL sequence. A system that is functional in the intended host cell Gunal peptides promote extracellular secretion of TRAIL polypeptides. signal Peptides are cleaved from TRAIL polypeptide upon secretion of TRAIL from cells Is done. Suitable host cells for expressing TRAIL polypeptide include prokaryotes, yeast and the like. Or higher eukaryotic cells. With bacterial, fungal, yeast and mammalian cell hosts Cloning and expression vectors suitable for use in are described, for example, in Pouwels et al. Cloning Vectors: A Laboratory Manual, Elsevier, New York (1985) Are listed. The cell-free translation system is also a DNA construct disclosed herein. To Can be used to produce TRAIL polypeptides using derived RNA. Wear Prokaryotes include gram-negative or gram-positive organisms, such as E. coli or bacteria. Includes the genus Bacilli. Prokaryotic host cells suitable for transformation include, for example, For example, E. coli, Bacillus subtilis, Salmonella typhi phimurium), Pseudomonas, Streptomyces ( Contains various other species within the genus Streptomyces and Staphylococcus It is. In prokaryotic host cells such as E. coli, TRAIL polypeptides N-terminal methionine residue that promotes expression of a recombinant polypeptide in a prokaryotic host cell Groups can be included. N-terminal Met is expressed recombinant TRAIL polypeptide Can be cleaved from the tide. Expression vectors for use in prokaryotic host cells are generally one or more. And more than one phenotype selectable marker gene. Phenotype selectable marker gene For example, proteins that confer antibiotic resistance or autotrophic requirements The encoding gene. Examples of expression vectors useful for prokaryotic host cells Commercially available such as cloning vector pBR322 (ATCC37017) Some are derived from functional plasmids. pBR322 comprises ampicillin and tet Has a gene for lacyclin resistance and thus identifies transformed cells Provide a simple means for Appropriate promoter and TRAIL DNA sequence The rows are inserted into the pBR322 vector. With other commercially available vectors For example, pKK223-3 (Pharmacia Fine Chemicals, Uppsala, Sweden) And pGEM1 (Promega Biotec, Madison, WI, USA). . Promoter sequences commonly used in recombinant prokaryotic host cell expression vectors Include β-lactamase (penicillinase), lactose promoter system ( Chang et al., Nature 275: 615,1978; and Goeddel et al., Nature 281: 544,1979). , Tryptophan (trp) promoter system (Goeddel et al., Nucl. Acids Res. 8: 4 And EP-A-36776) and the tac promoter (Maniatis, M. olecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, p.412 , 1982). A particularly useful prokaryotic host cell expression system is the phage λPLpromotion Data -And cI857ts thermolabile repressor sequences are used. λPLpromoter Available from the American Type Culture Collection, which includes derivatives of Functional plasmid vectors include plasmid pHUB2 (E. coli strain JIM9, AT CC37092) and pPLc28 (E. coli RR1, ATCC53082) Is included). TRAIL is alternatively present in yeast host cells, preferably in the genus Saccharomyces. (Saccharomyces) (eg, S. cerevisiae) be able to. Pichia or Kluyveromyces ) May be used. Yeast vectors are often 2μ yeast Origin of replication sequence from plasmid, self-replicating sequence (ARS), promoter region, Sequences for liadenylation, sequences for transcription termination and selectable marker inheritance Will have children. Suitable promoter sequences for yeast vectors include, in particular, meta- Rothionein, 3-phosphoglycerate kinase (Hitzeman et al., J. Biol. Chem. 2 55: 2073, 1980), or enolase, glyceraldehyde-3-phosphate dehydro Genase, hexokinase, pyruvate decarboxylase, Nase, glucose-6-phosphate isomerase, 3-phosphoglycerate , Pyruvate kinase, triosephosphate isomerase, Other glycolytic enzymes such as somerase and glucokinase (Hess et al., J. Adv. Enzyme Reg. 7: 149, 1968; and the promoter of Holland et al., Biochem. 17: 4900, 1978). Is included. Other suitable vectors and promoters for use in yeast expression are Hitzeman, EPA-73,657. Another option is Russ ell et al., J. Biol. Chem. 258: 2674, 1982) and Beier et al. (Nature 300: 724, 1982). ) Is the glucose repressible ADH2 promoter described by Yeast and Shuttle vectors that are replicable in both E. coli and E. coli DNA sequence from pBR322 (AmprGene and origin of replication) It can be constructed by insertion into a mother vector. Yeast α-factor leader sequence regulates TRAIL polypeptide secretion Can be used. The α-factor leader sequence is often associated with a promoter sequence. Inserted between the structural gene sequence. For example, Kurjan et al., Cell 30: 933,1982. And Bitter et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 81: 5330,1984. yeast Other leader sequences suitable for promoting secretion of the recombinant polypeptide from the host are , Known to those skilled in the art. The leader sequence has one or more restriction sites. May be modified near its 3 'end. This is the leader sequence It will promote fusion to structural genes. Yeast transformation protocols are known to those skilled in the art. One such professional The protocol is described by Hinnen et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 75: 1929, 1978. Have been. The protocol of T. Hinnen et al.+About transformed cells Where the selection medium is 0.67% yeast nitrogen base, 0.5% Acid, 2% glucose, 10 μg / ml adenine and 20 μg / ml uracil Consists of Yeast locus transformed by a vector containing the ADH2 promoter sequence Primary cells can be grown to induce expression in "rich" media. Examples of rich media include 80% 1% yeast extract, 2% peptone and 1% glucose. Consists of μg / ml adenine and 80 ug / ml uracil. A Derepression of the DH2 promoter occurs when glucose is depleted from the medium . Mammalian or insect host cell culture systems also provide recombinant TRAIL polypeptides. Could be used for expression. Production of heterologous proteins in insect cells Baculovirus systems are described in Luckow and Summers, Bio / Technology 6:47 (198 Commented on in 8). Established cell lines of mammalian origin can also be used. Appropriate An example of a mammalian host cell line is the COS-7 line of monkey kidney cells (ATCC CR L1651) (Gluzman et al., Cell 23: 175, 1981), L cells, C127 cells, 3T3 cells (ATCC CCL163), Chinese hamster ovary (CHO) cells, Cells and the BHK (ATCC CRL10) cell line, and McMahan et al. (EMBO J. 10: 2821, 1991) derived from the African green monkey kidney cell line CVI. There is a CVI / EBNA cell line (ATCC CCL70). The transcriptional and translational control sequences of the mammalian host cell expression vector contain the viral genome Could be cut out from Commonly used promoter sequences and And enhancer sequences include polyoma virus, adenovirus 2, Simian virus Derived from Lus 40 (SV40) and human cytomegalovirus. SV40 DNA sequences derived from the virus genome, for example, the early and late stages of SV40 origin. Motors, enhancers, splices and polyadenylation sites Used to provide other genetic elements for expression of a structural gene sequence in a host cell Can be The viral early and late promoters are both viral Easily from the viral genome as a fragment that can also have an origin of replication It is particularly useful because it can be obtained (Fiers et al., Nature 273: 113, 1978). Even smaller The larger or larger SV40 fragment also contains the SV40 viral origin of replication. About 250 bp extending from the HindIII site to the BglI site Can be used provided that the column is included. Expression vectors for use in mammalian host cells are described, for example, in Okayama and Berg (Mol. Cell. Biol. 3: 280, 1983). Wear. C127 Stable high-level expression of mammalian cDNA in murine mammary epithelial cells A currently useful system is substantially as described by Cosman et al. (Mol. Immunol. 23: 935,1986). It can be constructed as described. By Cosman et al., Nature 312: 768,1984 The described high expression vector PMLSV N1 / N4 was designated as ATCC 39890. Has been deposited. Yet another mammalian expression vector is EP-A-0367566 and And WO 91/18982. Alternatively, the vector is retro It may be derived from a virus. Yet another suitable expression system is described in the Examples below. You. One preferred expression system comprises Chinese hamster ovary (CHO) cells and An expression vector called PG5.7 is used. This expression vector is referred to herein. No. 08 / 586,509, filed Jan. 11, 1996, which is incorporated herein by reference. You. The PG5.7 component includes a fragment of CHO cell genomic DNA, followed by CM V-derived promoter followed by a sequence encoding the adenovirus tripartite leader. Sequence, followed by a sequence encoding dihydrofolate reductase (DHFR) Is included. These components are contained in the plasmid vector pGEM1 (Promega, Song, WI). TRAIL polypeptide (or containing TRAIL) DNA encoding the fusion protein) has a tripartite leader and DH It can be inserted between each sequence encoding FR. Approved in the field Me Add methotrexate to the media to increase expression levels as described be able to. A fragment of CHO cell genomic DNA in vector PG5.7 Promotes L expression. Fragments of genomic DNA isolated from CHO cells The phage lysate contained was from American Type Culture on January 4, 1996. -Deposited with the Collection and given the deposit number ATCC97411. Be PG5.7 is a CHO genomic DNA insert in the strain deposit ATCC97411. G of nucleotides 8671 to 14507. For expression of TRAIL, a native signal sequence, a heterologous signal sequence or Addition of a type II protein lacking a functional leader in mammalian host cells Wear. As an example, interleukin-7 (US Pat. No. 4,965,195) IL-7) signal sequence, described in Cosman et al., Nature 312: 768 (1984). Interleukin-2 receptor signal sequence; an interleukin-2 receptor described in EP367,566. -Leukin-4 receptor signal peptide; described in U.S. Patent No. 4,968,607 Type I interleukin-1 receptor signal peptide; and described in EP 460,846 There is a type II interleukin-1 receptor signal peptide listed. A preferred expression system is a leader sequence derived from cytomegalovirus (CMV). Is used. Example 7 illustrates the use of one such reader. Example 7 No. 7, supra) and then the N-terminus of the soluble TRAIL polypeptide. Met Ala Arg Arg Leu Trp Ile Leu Ser Leu Leu Ala V al Thr Leu Thr Val Ala Leu Ala Ala Pro Ser Gln Lys Ser Lys Arg Arg Thr S er Ser (SEQ ID NO: 9). Array Residues 1-29 of No. 9 constitute the CMV-derived leader sequence, but residues 30-29 32 is an oligo used when constructing the expression vector described in Example 7. Encoded by nucleotides. In one embodiment, the poly His pep D encoding a tide (eg, a peptide containing six histidine residues) Located between the arrays. An expression system using such a CMV-derived leader peptide is a system other than TRAIL. Useful for expressing proteins. Amino acids 1-29 of SEQ ID NO: 9 Provided herein is an expression vector comprising the DNA sequence to be loaded. Another fruit In an embodiment, the vector encodes amino acids 1-28 of SEQ ID NO: 9. Sequence. The DNA encoding the desired heterologous protein will serve as a leader It is located downstream of the encoding DNA and in the same reading frame. Yet another Of residues (eg, encoded by a linker or primer) As exemplified by the vector described in Example 7, the leader and the desired The DNA located between each sequence encoding the heterologous protein Can be loaded. As will be understood in the art, the expression vector comprises a leader and A promoter operably linked to the sequence encoding the heterologous protein; And any other desired regulatory sequences. The leader peptide represented by SEQ ID NO: 9 is located after the arginine residue at position 29. It can be cleaved to yield the mature secreted form of the protein fused to it. Some Alternatively, or additionally, the cleavage is between amino acids 20 and 21 of SEQ ID NO: 9 or It can occur between amino acids 28 and 29. One of skill in the art will recognize that one or more positions at which the signal peptide is cleaved can be used. Cell type, murine or human TRAIL to be expressed by the vector It will be appreciated that factors such as whether or not can vary. Compilation Analysis by a computer program showed that the major cleavage site was residue 20 of SEQ ID NO: 9. And 21 are possible. Between residues 22 and 23 and residues 27 and 2 It is anticipated that truncation between 8 and 8 is also possible. To illustrate, soluble murine TR Expression and secretion of AIL polypeptide is determined by CMV-derived signal pairs at a number of locations. Caused cleavage of the peptide. The three most prominent types of secreted proteins Is (in descending order) a truncation between amino acids 20 and 21 of SEQ ID NO: 9, amino acid 2 Cleavage between 2 and 23 and between amino acids 27 and 28 was caused. A method for producing a heterologous recombinant protein includes transforming such an expression vector. A mammalian host cell under conditions that promote expression and secretion of the heterologous protein. And recovering the protein from the medium. CMV leader The expression systems used are, by way of example and not limitation, colony stimulating factors, Interferons, interleukins, other cytokines and cytokine receptors Can be used to produce any desired protein, including the body .Purified TRAIL protein The invention can be produced by the above-described recombinant expression system or occurs naturally. Provide a purified TRAIL protein that can be purified from cells. The desired degree of purification is It may depend on the intended use of the protein. Relatively high purification, for example, This is desired when administering the protein in vivo. Advantageously, a TRAIL polypeptide Was analyzed by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The protein band corresponding to the protein is purified so that it cannot be detected. Above As mentioned, due to differential glycosylation, variations in post-translational processing, etc. In addition, a number of bands corresponding to TRAIL protein were identified by SDS-PAGE. It will be understood by those skilled in the art that it can be detected. TRAIL protein In the sample, bands corresponding to different (non-TRAIL) proteins were not visible. Is considered to be purified to TRAIL is most preferably SDS-PA Purify to near homogeneity as indicated by a single protein band by GE analysis. Made. Protein bands were stained with silver, Coomassie blue, or (If the material is radioactively labeled) Can be. One method of producing TRAIL protein encodes TRAIL TRAIL expresses host cells transformed with an expression vector containing a DNA sequence Culturing under the conditions as described. Next, culture TRAIL protein (From medium or cell extract). As those skilled in the art will appreciate, The procedure for purifying TRAIL depends on the type of host cell used and TRAIL. It may vary depending on factors such as whether secreted into the medium. For example, when using an expression system that secretes a recombinant protein, Available protein concentration filters, such as Amicon or Millipore Pell icon The medium can be concentrated using an ultrafiltration device. After the concentration step, Can be applied to purification matrices such as gel filtration bases . Alternatively, an anion exchange resin such as diethylaminoethyl (DEAE) side group A matrix or support having the same can be used. The matrix is Lilamide, agarose, dextran, cellulose or protein purification And other types commonly used. Alternatively, using a cation exchange step Can be Suitable cation exchangers include sulfopropyl groups or carboxyl groups. There are various insoluble matrices containing boxymethyl groups. Sulfopropyl group is preferred Good. Finally, to further purify TRAIL, one or more reverse phases High Performance Liquid Chromatography (RP-HPLC) Bases (e.g., those having free methyl or other aliphatic side groups) Rica gel). Some or all of the above purification steps Can be used in various combinations to provide a purified TRAIL protein. Recombinant protein produced in bacterial culture is first disrupted in host cells, centrifuged From the cell pellet for insoluble polypeptides or from soluble polypeptides. Extraction from the supernatant, followed by one or more concentration, salting out, ion exchange Isolated by affinity purification or size exclusion chromatography steps Can be Finally, RP-HPLC can be used as a final purification step. Wear. Microbial cells can be freeze-thaw cycles, sonication, mechanical disruption or cell lysis Destruction can be by any convenient method, including the use of sexual agents. The transformed yeast host cells preferably have TRA as a secreted polypeptide. Used to express IL. This simplifies purification. Yeast host cell fermentation Secreted recombinant polypeptide from Urdal et al. (J. Chromatog. 296: 171, 1984). Can be purified by a method similar to that disclosed in US Pat. Urdal et al. Two sequential steps on a preparative HPLC column for purification of recombinant human IL-2 A reverse-phase HPLC step is described. Alternatively, the TRAIL polypeptide is purified by immunoaffinity chromatography. Can be purified. Affiliates containing antibodies that bind TRAIL Column can be manufactured by conventional methods, and TRAIL is purified. It can be used when manufacturing. Example 4 was directed against TRAIL Methods for producing monoclonal antibodies are described.Properties and use of TRAIL Programmed cell death (apoptosis) involves embryogenesis, metamorphosis, endocrine-dependent Occurs during woven atrophy, normal tissue turnover and death of immune thymocytes. Blog Regulation of rammed cell death is critical for the normal functioning of the immune system. An example As shown, T cells recognizing self-antigens were apoptotic during T cell maturation in the thymus. Other T cells are positively selected, although destroyed by the cis process. Some kind of self Some T cells that recognize the epitope (eg, disabled and given a given Self-protein determinants) escaped this elimination process and It has been suggested that it may play a role in autoimmune diseases (Gammon Et al., Immunology Today 12: 193, 1991). Insufficient apoptosis was associated with certain symptoms, but high levels of apoptosis Cis cell death has been linked to other diseases. Apot for treating such diseases It is understood that it is desirable to determine and use agents that modulate lysis (Krom er, Advances in Immunology, 58: 211, 1995; Groux et al., J. Exp. Med. 175: 331, 1992. Sachs and Lotem, Blood 82:15, 1993). The abnormal resistance of T cells to undergo apoptosis is associated with lymphocytosis, Lymphadenopathy, splenomegaly, accumulation of autoreactive T cells, development of autoimmune diseases, leukemia And the development of lymphomas (Kromer, supra; especially see pages 214-215) I want to.) Conversely, excessive T cell apoptosis leads to lymphopenia, systemic immunity. Has been suggested to play a role in epidemic deficiency and specific immunodeficiency But special cases related to infectious mononucleosis and cytomegalovirus infection Virus-induced immunodeficiency conditions, as well as tumor-mediated immunosuppression (Kromer, See above; especially page 214). CD4 in HIV infected individuals+T Cell loss is caused by inappropriate activation-induced cell death (AICD) due to apoptosis. (Groux et al., J. Exp. Med. 175: 331, 1992). As demonstrated in Examples 5 and 8, TRAIL is a Jurkat clone Induces apoptosis in an acute T-cell leukemia cell line designated E6-1. But Thus, TRAIL may be used to study apoptosis, including the regulation of programmed cell death. It is a useful research reagent in research. Jurkat cells are leukemia derived from T cells Being a diseased cell line, the TRAIL of the present invention may TRAIL plays a role in apoptosis of other transformed T cells such as Used in studying the role of leap. TRAIL binds Jurkat cells and further induces their apoptosis Lead. TRAIL can be obtained from freshly isolated murine thymocytes, or from healthy humans. Did not cause the death of freshly removed peripheral blood T cells (PBT) from the donor. Numerous applications arise from these properties of TRAIL. The TRAIL polypeptide is a leukemia cell, or any TRAIL binding Can be used to purify other cell types. Leukemia cells, for example, Can be isolated from blood. In one embodiment, the cells are Affinity Chromatography binding TRAIL by tea chromatography -Purified using a matrix. For chromatography matrices Bound TRAIL is a full-length protein, TRAIL containing extracellular domain Fragment, TRAIL containing fusion protein or other described herein. A suitable TRAIL polypeptide. In one embodiment, the soluble The TRAIL / Fc fusion protein is loaded on a protein A or protein G column. On the other hand, binding by interaction between the Fc portion and protein A or protein G I do. Alternatively, TRAIL isolates leukemia cells by flow cytometry It can be used when doing. The leukemia cells thus purified are thought to die after TRAIL binding. But the dead cells will still have cell surface antigens, and It can be used as an immunogen when eliciting blood antibody. Leukemia cells or The desired cell surface antigen isolated therefrom is further used in vaccine development. Can be Because TRAIL binds and kills leukemia cells (Jurkat cell line) , TRAIL may also be useful in treating leukemia. The cure is white blood Contacting the diseased cells with an effective amount of TRAIL. In one embodiment The blood of a leukemia patient is contacted ex vivo with a TRAIL polypeptide. TR AIL may be immobilized on a suitable matrix. TRAIL is a leukemia cell Vesicle After binding, they are removed from the patient's blood and then the blood is returned to the patient. Alternatively or additionally, the bone marrow isolated from the leukemia patient is replaced with leukemia cells in the bone marrow. Can be contacted with an effective amount of TRAIL to induce the death of TRAIL. Bone marrow For example, it is aspirated from the sternum or iliac crest and contacts leukemia cells with TRAIL. The vesicles can be removed. The bone marrow thus treated is returned to the patient. TRAIL also binds to lymphoma and melanoma cells and Induce potosis (see Examples 5, 9 and 10). Therefore The use of TRAIL similar to that described above for leukemia cells, Applicable to tumor and melanoma cells. Why are TRAIL polypeptides restricted? Not used to treat cancer, including leukemia, lymphoma, and melanoma be able to. In one embodiment, the lymphoma is Burkitt's lymphoma . Table I in Example 9 shows that TRAIL was administered to several Burkitt lymphoma cell lines. To have a cytotoxic effect. Epstein-Barr virus It is the etiological agent of lymph node lymphoma. TRAIL polypeptides are also used in treating viral infections. Contact with TRAIL causes death of cells infected with cytomegalovirus However, as described in Example 11, a similar cell type type when not infected was drawn. Did not wake up. TRAIL's ability to kill cells infected by other viruses Can be confirmed using the assay described in Example 11. Such a virus Is, but is not limited to, encephalomyocarditis virus, Newcastle disease virus Vesicular stomatitis virus, herpes simplex virus, adenovirus-2, bovine virus There are sexually transmitted diarrhea virus, HIV and Epstein-Barr virus. An effective amount of TRAIL is administered to mammals suffering from viral infection, including humans Administer. In one embodiment, TRAIL is combined with interferon Used to treat viral infections. In the experiment described in Example 11, CMV Pretreatment of cells infected with γ-interferon is mediated by TRAIL Increased the lethality of infected cells. TRAIL is a cancer cell or viral It can be administered together with other drugs that show cytotoxic effects on the stained cells. In another embodiment, the TRAIL is a cell preparation, tissue or transplant. Used to kill virus-infected cells in the affected organ. For example, bone Prior to transplanting the marrow into the recipient, the bone marrow is contacted with TRAIL and present therein. Virus-infected cells can be killed. The TRAILs of the present invention are (directly) deficient or inadequate in quantity. Used to develop treatments for any disease mediated (directly or indirectly) be able to. A therapeutically effective amount of purified TRAIL protein can be used in such diseases Administer to patients suffering. Alternatively, the TRAIL DNA sequence may include such It can be used to develop gene therapy for the treatment of disease. Natural T The disclosure herein of the RAIL nucleotide sequence provides for the detection of a defective TRAIL gene. And its replacement with the normal TRAIL encoding gene. The missing gene Natural TRAIL disclosed in in vitro diagnostic assays, and herein Nucleotide sequence and TRA from patient suspected of being defective in this gene It can be detected by comparison with the sequence of the IL gene. The present invention relates to purified TRAIL and a physiologically acceptable carrier, diluent or excipient. There is provided a pharmaceutical composition comprising the excipient. Suitable carriers, diluents and excipients are Is non-toxic at the dosages and concentrations used for Such compositions may be buffered Agents, antioxidants such as ascorbic acid, low molecular weight (less than about 10 residues) polypeptides Including proteins, amino acids, glucose, sucrose or dextrin Common in carbohydrates, chelating drugs such as EDTA, glutathione, and pharmaceutical compositions It may contain other commonly used stabilizers and excipients. Neutral buffered saline Or saline mixed with conspecific serum albumin, Included in a suitable diluent. The composition can be prepared with a suitable excipient solution (eg, sucrose). Can be formulated as a lyophilizate using diluent as a diluent. For therapeutic use, the purified protein of the present invention can be administered to a patient, preferably a human, It is administered to treat the indicated condition in an appropriate manner. So, for example, drugs The pharmaceutical composition may be administered topically, by intravenous injection, continuous infusion, sustained release from an implant, or other suitable It can be administered by any technique. Appropriate dosages and frequency of administration are of course However, the nature and severity of the indicator condition being treated, the desired response, the condition of the patient, etc. Will depend on such factors. The TRAIL protein used in the pharmaceutical composition is preferably TRAIL The protein is substantially free of other proteins of natural or endogenous origin; Desirably, it contains less than about 1% by weight of residual protein contaminants from the manufacturing process. It is purified so as not to be. Such compositions, however, may comprise stabilizers, carriers, It may contain other proteins added as excipients or co-therapeutics. The TRAIL-encoding DNA disclosed herein, as reviewed above, Used in the manufacture of TRAIL polypeptide. TRAIL nucleotide sequence Row fragments are also useful. In one embodiment, such a flag is Fragments of the human or murine TRAIL DNA disclosed herein. At least about 17 contiguous nucleotides, more preferably at least 30 contiguous nucleotides Consecutive nucleotides. In the present specification, the DNA and the fragment And the RNA-complementary strand as a single strand of TRAIL DNA of SEQ ID NO: 1, 3 and 5. And provided in both double-stranded form. Some uses of such TRAIL nucleic acid fragments include polymerase chain reaction. Use as a probe or primer in a reaction (PCR). One As an example, a probe corresponding to the extracellular domain of TRAIL can be used. You. Probes are suitable for in vitro assays and for Northern and Southern blots. It is used when detecting the presence of TRAIL nucleic acid by the method. Express TRAIL Cell type can also be identified. Such methods are well known and those skilled in the art A probe having an appropriate length can be selected according to a specific purpose application. P The CR contains 5 'and 3' promoters corresponding to the ends of the desired TRAIL DNA sequence. Using a primer, the sequence is isolated and amplified using conventional techniques. Other useful fragments of TRAIL nucleic acids include target TRAIL mRNA (Sen). Or a single strand capable of binding to a TRAIL DNA (antisense) sequence Antisense or sense oligonucleotide containing nucleic acid sequence (RNA or DNA) Reotide. Such a fragment generally comprises at least about 14 nucleic acids. Nucleotides, preferably containing about 14 to about 30 nucleotides. Given Antisense or sense oligonucleotide based on the cDNA sequence of the The ability to produce reotide is described, for example, in Stein and Cohen, Cancer Res. 48: 2659. , 1988 and van der Krol et al., BioTechniques 6: 958,1988. The binding of the antisense or sense oligonucleotide to the target nucleic acid sequence is Some, including accelerated degradation of the double helix, immature termination of transcription or translation Translation (RNA) or transcription (D Causes the formation of a double helix that blocks NA). Therefore, antisense Ligonucleotides can be used to block TRAIL protein expression it can. The antisense or sense oligonucleotide may further comprise a modified sugar-phosphorus. Acid diester backbone (or other sugar linkages such as those described in WO 91/06629) Wherein the sugar linkage is endogenous. Resistant to sex nucleases. Such oligonucleotides containing resistant sugar linkages Otides are stable in vivo (ie, resistant to enzymatic degradation), but Sequence specificity so that it can bind to the target nucleotide sequence. Sen Other examples of antisense or antisense oligonucleotides are described in WO 90/10448. Organic residues such as those described, and target nucleic acid sequences such as poly (L-lysine) Covalent attachment to other residues that increase the affinity of the oligonucleotide for the sequence There are oligonucleotides that do. Still further, an intercalating agent such as ellipticin and Alkylating agents or metal complexes into sense or antisense oligonucleotides Binding to the antisense or sense oligonucleotide for the target nucleotide sequence. The binding specificity of the lignonucleotide can be altered. Antisense or sense oligonucleotides include, for example, CaPOFourIntermediary DNA transfection, electroporation, or Epsta Any gene transfer, including other gene transfer vectors such as invar virus Can be introduced into cells containing the target nucleic acid sequence. Preferred Alternatively, the antisense or sense oligonucleotide may be placed in a suitable retroviral vector. Insert a reotide and ligate the cell with a retrovirus containing the inserted sequence. Antibodies may be contacted in vivo or ex vivo with A sense or sense oligonucleotide is introduced into cells containing the target nucleic acid sequence. Suitable retroviral vectors include, but are not limited to, murine G Rovirus M-MuLV, N2 (retrovirus derived from M-MuLV) Or double-copy vectors designated DCT5A, DCT5B and DCT5C (See PCT application WO 90/13641). Or another promotion Oligonucleotides can be expressed using the promoter sequence. Sense or antisense oligonucleotides are also described in WO 91/04753 As described above, the formation of a conjugate with a ligand binding molecule It can be introduced into cells. Suitable ligand binding molecules are limited Cell surface receptors, growth factors, other cytokines, or cells There are other ligands that bind to surface receptors. Preferably, the ligand binding moiety The binding of a ligand is a ligand binding component that binds to its corresponding molecule or receptor. Does not substantially interfere with the ability of the offspring or has sense or antisense oligonucleotides Inhibits little entry of leotide or its conjugates into cells. Alternatively, sense or antisense oligonucleotides are described in WO 90/10448. As described, the formation of the oligonucleotide-lipid complex includes the target nucleic acid sequence. It can be introduced into cells. Sense or antisense oligonucleotide The do-lipid complex is preferably dissociated in the cell by endogenous lipase.Antibodies immunoreactive with TRAIL The TRAIL proteins of the present invention or immunogenic fragments thereof may be antibodies Can be used. The present invention therefore provides TRAIL Provide an antibody that specifically binds, i.e., the antibody (confers non-specific binding). Binds to TRAIL via the antigen binding site of the antibody). Polyclonal and monoclonal antibodies are produced by conventional techniques be able to. For example, Monoclonal Antibodies, Hybridomas: A New Dimension i n Biological Analyses, Kennet et al. (supervised), Plenum Press, New York (19 80); and Antibodies: A Laboratory Manual, Harlow and Land (supervised) , Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, See NY, (1988). Monoclonal immunoreactive with TRAIL Antibodies are further illustrated in Example 4 below. The antigen-binding function of such antibodies can be produced by conventional techniques. Fragments are also encompassed by the present invention. Example of such a fragment Include, but are not limited to, Fab, F (ab ') and F (ab' )TwoThere are fragments. Antibody fragments produced by genetic engineering technology And derivatives are also provided. The monoclonal antibodies of the present invention include chimeric antibodies, for example, murine monoclonals. Humanized forms of antibodies. Such humanized antibodies are produced by known techniques. And reduced immunogenicity when the antibody is administered to humans give. In one embodiment, the humanized monoclonal antibody is a murine individual Variable region (or just its antigen binding site) and constant region from human antibodies including. Alternatively, the humanized antibody fragment is an antigen of a murine monoclonal antibody Binding site and variable fragment from the human antibody (lacking the antigen binding site) May be included. Of chimeric and further engineered monoclonal antibodies Production methods include Riechmann et al. (Nature 332: 323, 1988) and Liu et al. (PNAS 84: 343 9,1987), Larrick et al. (Bio / Technology 7: 934,1989) and Winter and Ha rris (TIPS 14: 139, May 1993). Some uses of antibodies include TRAIL polypeptides in vitro or in vivo. There are uses in assays to detect the presence of tide. Antibodies can also be used for affinity chromatography. Used when purifying TRAIL by chromatography. Antibodies that can further block TRAIL binding to target cells are TR It can be used to inhibit the biological activity of AIL. Therapeutic methods are TR An effective amount of such an antibody in inhibiting AIL-mediated biological activity Administer n vivo. Therefore, directly or indirectly by TRAIL To treat diseases mediated by or worsened. Monoclonal antibodies are generally Preferred for use in such therapeutic methods. Antibodies directed against TRAIL are useful for treating thrombotic microangiopathy It can be. One such disease is thrombotic thrombocytopenic purpura (TTP). (Kwaan, H.C., Semin. Hematol., 24:71, 1987; Thompson et al., Blood, 80: 1890, 1992). Increased mortality rates associated with TTP have been reported by the US Centers for Disease Control (the U.S.Cent ers for Disease Control) (Torok et al., Am. J. Hematol. 50:84, 1995). It has been tell. Patients suffering from TTP (HIV+And HIV-Plasma from patients (including patients) Induces apoptosis of human endothelial cells from microvessels, but not from large vessels No induction (Laurence et al., Blood, 87: 3245, April 15, 1996). Therefore, T The plasma of TP patients is one or more that directly or indirectly induces apoptosis. Is thought to have more factors. The assay described in Example 13 below Polyclonal antibody raised against TRAIL was Inhibited apoptosis induced by TTP plasma in vesicles. The data shown in Example 13 Data indicate that TRAIL is present in the serum of TTP patients and that microvascular endothelial cells Suggests that it may play a role in inducing apoptosis. Another thrombotic microangiopathy is hemolytic uremic syndrome (HUS) (Moak e, J.L., Lancet, 343: 393, 1994; Melnyk et al., (Arch. Intern. Med., 155: 2077, 1995. Thompson et al., Supra). One embodiment of the present invention relates to Anti-TR to treat a condition often referred to as "adult HUS" It relates to the use of AIL antibodies. A disease known as childhood / diarrhea-related HUS The etiology is different from human HUS. Other conditions characterized by small vessel thrombus formation are treated with anti-TRAIL antibodies Can be These symptoms include, but are not limited to: There is Cardiac problems seen in about 5-10% of pediatric AIDS patients are small vessel It is thought to be involved in thrombus formation. Failure of the microvasculature in the heart It has been reported in patients with keratosis. As another example, systemic lupus erythematosus (S LE) is contemplated. In one embodiment, the patient's blood or plasma is treated with an anti-TRAIL antibody and ex Contact in vivo. Antibodies (preferably, monoclonal antibodies) are prepared by conventional methods. To a suitable chromatography matrix. The patient's blood Or plasma is chromatographic containing antibodies bound to a matrix After flowing through the column, it is returned to the patient. Immobilized antibody binds TRAIL As such, the TRAIL protein is removed from the patient's blood. In another embodiment, the antibody is administered in vivo, where a blocking antibody is used. of Is desirable. Such antibodies inhibit TRAIL binding to target cells Identify using any suitable assay, such as by examining antibodies for performance can do. Alternatively, a blocking antibody may inhibit binding of TRAIL to target cells. It can be identified by assays for the ability to inhibit a biological effect. Example 12 Illustrates one suitable method of identifying a blocking antibody, wherein the antibody is Assayed for the ability of Jurkat cells to inhibit TRAIL-mediated lysis Is done. The present invention therefore provides for the use of an effective amount of an antibody directed against TRAIL. Methods for treating thrombotic microangiopathy, including: The antibody of the present invention can be used in vivo Or used in ex vivo procedures to mediate TRAIL on microvascular endothelial cells. Mediated damage (eg, apoptosis) can be inhibited. Anti-TRAIL antibodies may be used in conjunction with other drugs that are useful in treating certain diseases. Can be. Reported by Laurence et al. (Blood, 87: 3245, 1996) in In vitro experiments, apoptosis mediated by TTP plasma of microvascular endothelial cells A slight reduction in serum was due to anti-Fas blocking antibody, aurin tricarboxylic acid, or cryoprecipitation. This was achieved by using depleted, depleted normal plasma. Thus, patients undergo Fas-ligand-mediated apoptosis of endothelial cells. And TRAIL-mediated endothelial cell apoptosis It can be treated in combination with an agent. In one embodiment, the anti-TRA Both IL blocking antibodies and anti-FAS blocking antibodies are available from TTP or HUS It is administered to patients suffering from a disease characterized by thrombotic microangiopathy. Fas anti Examples of blocking monoclonal antibodies directed against protogen (CD95) are described herein. It is described in PCT Application Publication No. WO 95/10540, which is incorporated by reference. Antibodies that are immunoreactive with TRAIL and a suitable diluent, excipient or carrier Provided herein are pharmaceutical compositions comprising the same. Suitable compositions of such compositions The components are as described above for the composition containing the TRAIL protein. You. The following examples are given to illustrate specific embodiments of the present invention, and Should not be construed as limiting the scope of Example 1: Isolation of human TRAIL DNA DNA encoding the human TRAIL protein of the present invention is obtained by the following procedure. Was isolated. The National Center for Biological Information) (NCBI) TBLASTN search for dbEST data This was performed using the intervening sequence LVVXXXGLYYVYXQVXF (SEQ ID NO: 8). This array is Based on the most conserved part of the NF ligand series (Smith et al., Cell, 73: 1349,199 3). The expressed sequence tag (EST) file, GenBank accession number Z36726 , Using these search parameters. The GenBank file is T indicated that it was obtained from a human atrial cDNA library. Two 30-b based sequences from the 3 'and 5' ends of this EST file p-oligonucleotide was synthesized. The oligonucleotide from the 3 'end has the sequence TGAAATCGAAAGTATGTTTGGGAATAGATG (nucleotides 636 to 665 of SEQ ID NO: 1) And the 5 'oligonucleotide comprises TGACGAAGAGAGTATGAACAGC CCCTGCTG (nucleotides 291 to 320 of SEQ ID NO: 1). Oligonuk Leotide is32Labeling at the 5 'end with Pγ-ATP and polynucleotide kinase Was done. The two λgt10 cDNA libraries were labeled with these labeled oligonucleotides. Screening by conventional methods using an equimolar mixture of nucleotides as a probe. Was done. One library is a human heart 5 'extended cDNA library (St. ratagene Cloning Systems, La Jolla, CA). The other is as follows This was a manufactured peripheral blood lymphocyte (PBL) library. PBL is normal And 10 ng / ml of OKT3 (anti-CD3 antibody) and Treated with 10 ng / ml human IL-2 for 6 days. Wash the PBL cells and 500 ng / ml ionomycin (Calbiochem) and 10 ng / ml P Stimulated with MA for 4 hours. Messenger RNA was isolated from stimulated PBL cells. Released. The cDNA synthesized on the mRNA template was converted to a λgt10 phage vector. The recombinant phage is plated on E. coli strain C600-HFL, and Screening was performed using standard plaque hybridization techniques. D The trocellulose filter is pulled from these plates in duplicate, and32 60 mM Tris pH 8.0, 2 mM ED using P-labeled oligonucleotide TA, 5x Denhardt's solution, 6xSSC, 1mg / ml n-lauroyl sarco Syn, in a solution of 0.5% NP40 and 4 μg / ml SS salmon sperm DNA At 67 ° C. overnight. Next, filter 3xSSC And washed at 67 ° C. for 3 minutes. Approximately 1 million positive plaques from heart 5 'elongated cDNA library Obtained from among plaques. This clone does not contain the 3 'end of the gene Was. Approximately 50 positive plaques were 500,000 using PBL Ripary Obtained from among plaques. Take 15 of these first round positive plaques And inserts from a rich pool to amplify phage inserts Amplification was performed using an oligonucleotide primer designed in the above. The resulting generation The products were resolved by 1.5% agarose gel electrophoresis and loaded on nitrocellulose. Blotted, and by standard Southern blot techniques,32Labeled with P The obtained 30-mer oligonucleotide was used as a probe for analysis. Southern analysis Of the two plaques that produced the largest band in the second screening Thus, purified and isolated phage plaques were used as described above. Using the procedure described in DNA from the isolated phage is produced by a plate lysis method, and The cDNA insert was excised with EcoRI and ligated in Tris borate EDTA buffer. (+) Ligation into plasmid. Next, these inserts are distributed by conventional methods. The sequences were sequenced and the resulting sequences were aligned. The nucleotide sequence of human TRAIL DNA is shown in SEQ ID NO: 1, and The amino acid sequence encoded thereby is shown in SEQ ID NO: 2. This human TRAI The L protein has an N-terminal cytoplasmic domain (amino acids 1 to 18), Amino acids 19-38) and the extracellular domain (amino acids 39-281). This Has a calculated molecular weight of 32,508 daltons. Escherichia coli strain transformed with the recombinant vector containing the TRAIL DNA DH10B cells were established on June 14, 1995 by American Type Culture. Deposited in the collection and given deposit number 69849. The deposit Made under the terms of the Dapest Treaty. The recombinant vector in the deposited strain is , Expression vector pDC409 (described in Example 5). The vector Complete code digested with SalI and NotI and shown in SEQ ID NO: 1 The human TRAIL DNA containing the region was ligated into the digested vector. Example 2: Isolation of DNA encoding truncated TRAIL DNA encoding the second human TRAIL protein was isolated as follows. . This truncated TRAIL induces apoptosis of Jurkat cells Does not show the ability to PCR analysis was performed using the 30 mer described in Example 1 with the 5 'and 3' primers. 3 of the 14 first round plaque harvests in Example 1 It was shown to contain a short form of TRAIL DNA. From the short form of the gene oning Systems, La Jolla, CA) and sequenced. The nucleotide sequence of this DNA is shown as SEQ ID NO: 3. Coded by it The amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 4. The encoded protein is N-terminal End cytoplasmic domain (amino acids 1-18), transmembrane portion (amino acids 19-38) and And the extracellular domain (amino acids 39-101). The DNA of SEQ ID NO: 3 corresponds to nucleotides 359-50 of the DNA of SEQ ID NO: 1. 6 lacking the human TRAIL deletion mutant (huTRAILdv) clone Called The deletion causes a transposition in the reading frame, and as a result, An in-frame stop codon occurs after amino acid 101 of SEQ ID NO: 4. But Thus, the DNA of SEQ ID NO: 3 encodes a partially truncated protein. Amino acids 1-90 of SEQ ID NO: 2 are identical to amino acids 1-90 of SEQ ID NO: 4 is there. However, due to the deletion, the C-terminal of the huTRAILdv protein The terminal portions (amino acids 91-101 of SEQ ID NO: 4) correspond to the corresponding SEQ ID NO: 2 Different from the residue at the position. huTRAILdv protein is a C-terminal member of the TNF family of proteins. It lacks the above conserved areas found at the edges. This huTRAILdv protein Quality cannot cause apoptotic death of Jurkat cells Further confirm the importance of these conserved regions with respect to biological activity. Example 3: DNA encoding murine TRAIL DNA encoding murine TRAIL was isolated by the following procedure. Baek CDNA line containing cDNA from mouse T cell line 7B9 in Bullies were produced as described by Mosley et al. (Cell 59: 335,1989). That la DNA from the library is filtered using conventional techniques on a nitrocellulose filter. Moved up. Hybridization on the filter using a human TRAIL DNA probe Forming mouse cDNA was identified. Two separate probes are used for two rounds of scripting. Used in the training. Isolated and amplified using human TRAIL DNA as a template The broadened PCR reaction product, approximately 400 bp in length, is used for the first round of screening. Used as a probe in the probe. These PCR products were Region fragments. Used in second round screening The probe consisted of the complete coding region of human TRAIL DNA of SEQ ID NO: 1. Was. For use with random primed DNA labeling kit (Stratagene, La Jolla, CA) And the probe was radiolabeled. After hybridization at 37 ° C. in 50% formamide, Washing was performed at 50 ° C. using 1 × SSC, 0.1% SDS. Both screenings The mouse cDNA that was positive in the round was isolated. The nucleotide sequence of this DNA is shown in SEQ ID NO: 5, and thereby The encoded amino acid sequence is shown in SEQ ID NO: 6. The encoded protein is , N-terminal cytoplasmic domain (amino acids 1-17), transmembrane portion (amino acids 18-3) 8) and the extracellular domain (amino acids 39-291). This mouse TRA IL is 64% identical to human TRAIL of SEQ ID NO: 2 at the amino acid level is there. The coding region of the mouse TRAIL nucleotide sequence is the human 75% identical to the coding region of the nucleotide sequence Example 4: Antibodies that bind TRAIL This example illustrates the production of a monoclonal antibody that specifically binds TRAIL. Testify. Suitable immunogens that can be used in raising such antibodies As such, but not limited to, purified TRAIL protein or its immunity Genomic fragments (eg, extracellular domains), containing TRAIL polypeptide Fusion proteins (eg, soluble TRAIL / Fc fusion proteins), and And cells expressing recombinant TRAIL on the cell surface. Known techniques for producing monoclonal antibodies include U.S. Patent No. 4,411,993. There are those described in the issue. Simply put, complete Freund's adjuvant as immunogen Mice were immunized with TRAIL emulsified in bunt and 10-100 μl Inject subcutaneously or intraperitoneally in the amount of g. 10-12 days later, immunized subject The product is boosted with additional TRAIL milked in incomplete Freund's adjuvant. You. Thereafter, the mice are periodically immunized once or twice a week with an immunization schedule. Quarantine. Serum samples were subjected to a dot blot assay for TRAIL antibody or ELI. Retro-orbital bleeding or caudal tip for ZA (enzyme-linked immunosorbent assay) Collect periodically by end-to-end incision. After detection of appropriate antibody titers, positive animals were given the last intravenous injection of TRAIL in saline. One injection is given. Three to four days later, the animals are sacrificed, spleen cells are harvested, and Spleen cells from NSI or, preferably, P3x63Ag8.653 (ATCC CRL158). Fused to a murine myeloma cell line such as 0). Fusion gives rise to hybridoma cells , In non-fused cells, myeloma hybrids and multi-stage microtiter plates. HAT (hypoxanthine, aminopte) inhibits the growth of Phosphorus and thymidine) in selective medium. Hybridoma cells were subjected to ELISA for reactivity to purified TRAIL. In Engvall et al. (Immunochem. 8: 871,1971) and in US Pat. No. 4,703,004. Screen by adaptation of the disclosed technique. Positive hybridoma cells Intraperitoneal injection into syngeneic BALB / c mice to give high concentrations of anti-TRAIL Ascites containing null antibodies can be generated. Or hybridoma Cells are grown in vitro in flasks or roller bottles by various techniques. Can be made. Monoclonal antibodies raised in mouse ascites were treated with ammonium sulfate. Purification can be achieved by gel exclusion chromatography following the precipitation of chromium. Some Or affinity based on the binding of antibodies to protein A or protein G. Affinity chromatography based on binding to TRAIL It can be used in the same way as for chromatography. Example 5: DNA ladder apoptosis assay About its ability to express human TRAIL and induce apoptosis Examined. The human TRAIL gene corresponds to the 3 ′ and 5 ′ ends of the coding region. The oligonucleotide is synthesized with SalI and N at the end of the oligonucleotide. An otI restriction site was included. The coding region of the human TRAIL gene was Amplified using standard PCR techniques with these oligonucleotides I let you. The PCR reaction products are digested with the restriction endonucleases SalI and NotI. After digestion, it was inserted into the vector pDC409 digested with SalI / NotI. pDC409 is an expression vector for use in mammalian cells, Can replicate in vesicles. pDC409 is an expression vector designated pDC406 (MDC, incorporated herein by reference). cMahan et al., described in EMBO J. 10: 2821, 1991 and PCT application WO 91/18982. ). pDC406 contains SV40, Epstein-Barr virus and It has an origin of replication derived from pBR322 and is described by Dower et al., J. Immunol. 142: 4314 ( 1989) is a derivative of HAV-EO. pDC406 is HAV Deletion of an intron present in the adenovirus 23 tripartite leader sequence of EO It is different from HAV-EO. Multiple cloning sites (multiple restriction endonucleases) DNA (including thease cleavage site) into HIV and adenovirus It is transcribed and translated using the derived regulatory elements. The vector is also Has a gene that confers phosphorus resistance. pDC409 had a deletion of the BglII site outside of the mecs, resulting in the deletion of the mecsBglII. It differs from pDC406 in that the sites are unique. Two Pme1 sites and One Srf1 site was added to mcs and three stop codons (TAG) Was placed downstream of the mcs to function in all three reading frames. DNA sequence A T7 primer / promoter was added to aid the decision step. The monkey kidney cell line CV-1 / EBNA-1 (ATCC CRL10478) was obtained from McMahan Et al., Human CMV Intermediate-Early Enhancer / Promoter as described above. Epstein-Barr Virus Nuclear Antigen-1 (EBNA-1) CV-1 cell line using a gene encoding EBNA-1 that constitutively expresses (ATCC CRL70) induced by transfection. EBNA -1 gene is the episode of an expression vector such as pDC409 having an EBV origin of replication. Enable replication CV1 / EBNA cells grown in Falcon T175 flasks were Transfection with "empty" pDC409 or pDC409 containing the human TRAIL coding region Was taken. The transformed cells are grown at 37 ° C. and 10% CO 2TwoCulture for 3 days Nourished. Next, the cells are washed with PBS and incubated in 50 mM EDTA at 37 ° C. Incubate at 20 ° C for 20 minutes, scrape the flask with a cell scraper, and Washed once in PBS. Next, the cells were placed in 1% paraformaldehyde in PBS. At 4 ° C. for 10 minutes and washed three times in PBS. Jurkat cells were used as target cells in this assay and TRAIL expression It was determined whether sex cells could induce their apoptosis. Jurkat fine Vesicular clone E6-1 was obtained from the American Type Culture Collection. A human acute T-cell leukemia cell line available under accession number ATCC TIB152 And described in Weiss et al. (J. Immunol. 133: 123-128, 1984). That jar Cut cells were treated with 10% fetal bovine serum and 10 μg / ml streptomycin. 200,000-5, cells in RPMI medium supplemented with and penicillin The cells were cultured to a density of 00000 / ml. 4 million cells / well Using 2.5 ml of medium in a 6-well plate, as indicated below Supernatant from fixed cells, cells transfected with Fas ligand And co-cultured with various combinations of various antibodies. After 4 hours, cells are washed once in PBS and placed in a desktop centrifuge. At 1200 RPM for 5 minutes. Resuspend the pellet, and 10 mM Tris-HCl, 10 mM EDTA, pH 7.5 and 0.2% Incubation for 10 minutes at 4 ° C. in 500 μl of a buffer consisting of This lyses the cells but leaves the nuclei intact. Next, the lysate , Spin at 14,000 RPM for 10 minutes in a 4 ° C. microcentrifuge. Supernatant And remove 25: 24: 1 phenol-chloroform-isoamyla After extracting three times with 1 ml of alcohol, in the presence of 1 μg of glycogen carrier (Sigma) Was precipitated with NaOAC and ethanol. The obtained pellet was mixed with 10 mM Tris-HCl, 10 mM EDTA, pH7. . 5 at 37 ° C. with 10 μg / ml RNase A. Incubated for minutes. Next, the DNA solution was added to a trisborate EDTA buffer solution. By electrophoresis on a 1.5% agarose gel and stained with ethidium bromide. , And photographed while transmitting ultraviolet light. The results were as follows. Tracing with pDC409 or pDC409-TRAIL The transfected fixed CV1 / EBNA cells have a detectable DNA ladder. Did not occur. PDC409-TRA co-cultured with Jurkat cells IL-fixed cells developed a DNA ladder, but were co-cultured with Jurkat cells. No fixed pDC409 cells were generated. The DNA ladder also contains a DNA encoding human Fas ligand in pDC409. Jars with concentrated supernatant from COS cells transfected with NA This was seen when cut cells were co-cultured. The supernatant is tamped from the cell surface. It is thought to contain soluble Fas ligand which is released by cytolysis. F The DNA ladder induced by the as ligand is a soluble shield directed against Fas. Can be blocked by adding 10 μg / ml of the monoclonal antibody. Came. This similar antibody was purified by Jurkat D by pDC409-TRAIL cells. The ladder of NA could not be inhibited because TRAIL was Cis is not induced. In a similar assay, transfected with pDC409-TRAIL Fixed CV1 / EBNA cells resulted in a DNA ladder in U937 cells. U 937 (ATCC CRL1593) is a human histiocytic lymphoma cell line. Effek The target to target cell ratio was 1: 4 (assay for Jurkat target cells). As in the case of). Fragmentation of cellular DNA into a pattern known as a DNA ladder Characteristic of apoptosis. In the above assay, TRAIL is a leukemia cell line. And induced apoptosis of lymphoma cell lines. Example 6: Northern blot analysis TRAIL expression in a number of different tissue types was determined by conventional Northern blotting. Was analyzed. Poly A from various adult tissues+Northern blot containing RNA (Multiple tissue Northern blots I and II) were obtained from Clonetech (Palo Alto, CA). ). The other plots show that the RNA samples were 1.1% agarose-forma Resolve on Rudehid gel and apply H as directed by the manufacturer (Amersham Corporation). Blot on ybond-N and stain with methylene blue to determine RNA concentration. Created by monitoring. Blot shows the complete code for human TRAIL The region was probed with an antisense RNA riboprobe. Human TRAIL mRNA is expressed in peripheral blood lymphocytes, colon, small intestine, ovary, prostate, breast It was detected in glands, spleen, placenta, lung, kidney, heart, pancreas and skeletal muscle. TRAI The L transcript is a large cell regression lymphoma cell line Karpas 299 (Fischer et al., Blood, 72: 234, 1988) and found to be abundant in tonsillar T cells. TRAIL message Di was slightly present in the Burkitt's lymphoma cell line called Raji. TRAIL mRNA is detected in testis, brain or liver, as well as some T cell lines Was not done. TRAIL transcripts are not stimulated or have PMA and calcium Freshly isolated peripheral blood T cells (PBT) stimulated with umionophores for 20 hours Little or no detected in. Example 7: Production of soluble TRAIL polypeptide Soluble human TRAIL polypeptide comprising amino acids 95-281 of SEQ ID NO: 2 Was manufactured as follows. This polypeptide is a spacer moiety discussed above. Is a fragment of the extracellular domain lacking An expression vector encoding soluble human TRAIL has the following amino acid sequence ( N-terminal to C-terminal), ie, human cytomegalovirus (C Fusion of in-frame DNA encoding amino acids 95-281 of TRAIL And Hopp et al. (Biotechnology 6: 1204-1210, 1988). To facilitate purification of the fused protein. Isolating a TRAIL-encoding DNA fragment, and Encodes amino acids 95 to 281 of SEQ ID NO: 2 by ze-chain reaction (PCR) Oligonucleotide primer to determine the end of the DNA fragment And amplified. The 3 'primer has a NotI downstream of the TRAIL coding sequence. It was a 31-mer with additional sites. The 5 'primer has a TRAIL coding sequence This was performed by a conventional method using the above-mentioned human TRAIL cDNA as a template. The reaction product is digested with SpeI and NotI and SalI and NotI Inserted into the expression vector pDC409 cut off with I (described in Example 5) . SalI-SpeI fragment encoding CMV open reading frame reader The annealed oligonucleotide that forms the DNA is also ligated into the vector. Was. The amino acid sequence of the CMV-derived leader is shown in SEQ ID NO: 9. SEQ ID NO: 9 Amino acids 1-29 are encoded by CMV DNA, ~ 32 correspond to the oligonucleotides used in constructing the vector. Loaded. E. coli cells are transfected with the ligation mixture and The desired recombinant expression vector was isolated therefrom. CV1-EBNA cells (ATCC CRL10478; described in Example 5) Transfection with a recombinant vector called pDC409-Flag-shTRAIL ® down And cultured as described above. The culture supernatant is collected 3 days after transfection, I put it. Next, the column was washed with PBS. Monoclonal antibody M2 is available from Ho pp et al., supra, and Kodak Scientific Imaging Systems, New York. Available from Bun, Connecticut. Column using 50 mM citrate Eluted 800 μl fractions and immediately added 0.45 m 1M Tris (pH 8) Neutralized in 1 l. Adjust fractions to 10% glycerol and until needed Stored at -20 ° C. L was determined by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). Filtration analysis shows that the molecule is a multimer of approximately 80 kD in solution Suggest that. Without wishing to be bound by theory, the gel filtration analysis is acceptable. To indicate that the trimer was preferentially present. An expression vector called CD409-Flag-smTRAIL was constructed in a similar procedure. . DNA fragments encoding soluble murine TRAIL polypeptides It was isolated and amplified by PCR. Of the murine TRAIL sequence of SEQ ID NO: 6 Oligonucleotides for defining the ends of DNA encoding amino acids 99-291 Tides were used as 5 'and 3' primers in PCR. Example 8: Lysis of leukemia cells by soluble TRAIL In Example 5, the cells expressing human TRAIL were Jurkat cells (white Apoptosis of hematopoietic cell lines). In the next experiment, soluble human TRA IL polypeptide killed Jurkat cells. Jurkat cells were transformed with 10% fetal bovine serum, 100 μg / ml streptomycin. Cultured in RPMI medium supplemented with syn and 100 μg / ml penicillin, The density was 200,000-500,000 cells / ml. The cells (96 50,000 cells / well in a volume of 100 μl in a well plate) Incubated with the reagents shown in FIG. 1 for 20 hours. "TRAIL supe. "Is transfected with pDC409-Flag-shTRAIL (see Example 7). Conditioned CV1 / EBNA cells from supernatant (10 μl / well) Means "Control supe." Indicates that the transfected C Supernatant from V1 / EBNA cells is meant. Where indicated, fixed anti After adding at a concentration and attaching overnight at 4 ° C or 2 hours at 37 ° C, the wells Was aspirated and washed twice with PBS to remove unbound antibody. Fas Riga Or M3 (Al), a blocking monoclonal antibody directed against Fas derson et al., J. Exp. Med. 181: 71, 1995; and PCT application WO 95/10540). Jurkat cells were included as indicated in the assay. The metabolic activity of the cells treated in this way was determined by using alamar Blue The assay was performed by the following procedure by metabolic conversion of the dye. Alamar Blue Conversion Alama Leblue dye (Biosource International, Camarillo, CA) 10 μl / well And the optical density (OD at 550-600 nm) at the time the dye is added ) Was determined by subtracting from the OD 550-600 nm after 4 hours. No conversion of the dye is plotted as 0% viability and dye conversion in the absence of TRAIL The exchange concentration is plotted as 100% viability. % Viability is based on staining of experimental versus control cultures Calculated by multiplying the ratio by 100. The results are shown in FIG. Error bars represent standard deviation of measurements from four separate wells. And their values are the average of these measurements. TRAIL-containing supernatant causes significant decrease in viability of Jurkat cells did. A greater decrease in cell viability was due to TRAIL-containing supernatant and fixed Is to increase strength. Fas ligand has shown the ability to kill Jurkat cells. Anti-Fas anti Body M3 inhibited Fas ligand activity but did not inhibit TRAIL activity Was. Confirm that the change in dye conversion in the Alamar Blue assay was due to cell death To reduce the cell viability caused by TRAIL, trypanbub Confirmed by staining cells with roux. Example 9: Lysis of leukemia and lymphoma cells In Examples 5 and 8, TRAIL was obtained from leukemia cell lines (Jurkat) and And induced apoptosis of a lymphoma cell line (U937). In the next experiment, 8 demonstrates the ability of TRAIL to kill leukemia and lymphoma cells. The human cell line shown in Table I was prepared using 10% fetal calf serum, 100 μg / ml strain. Culture in RPMI medium supplemented with peptomycin and 100 μg / ml penicillin To a density of 200,000-500,000 cells / ml. The cell (50,000 cells / well in 100 μl volume in 96 well plate ) Was transformed with CV1 / transfected with pDC409-Flag-shTRAIL. Incubate for 20 hours with conditioned supernatant from EBNA cells (10 μl / well) I was vate. Metabolic activity was determined by conversion of the alamar blue dye to the assay described in Example 8. The test was performed according to a standard procedure. The results are shown in Table I. Confirm that the change in dye conversion in the Alamar Blue assay was due to cell death To reduce the cell viability caused by TRAIL, trypanbub Confirmed by staining cells with roux. Flick and Gifford (J. Immuno l. Methods 68: 167-175, 1984) Red staining also confirmed the results seen in the Alamar Blue assay. Cell death Potentiosis was determined by trivan blue staining and apoptotic fragmentation by microscopy. Confirmed by visualization of printouts. As shown in Table I, a number of cancer cell lines respond to TRAIL-mediated killing. And was sensitive. Yet Another Specificity for TRAIL-Mediated Apoptosis Spore sensitivity can be confirmed using the assays described in this example. Wear. TRAIL was raised against cell lines THP-1, K562, Karpas 299 and MP-1. Had little cytotoxic effect. K299 (also known as Karpas 299 DSM-ACC31) is a high-grade large cell regression lymphoma (Fischer et al., Blood, 72: 234). , 1988) was established from peripheral blood of males. MP-1 is spontaneously induced. EBV-transformed B cell line (Goodwin et al., Cell 73: 447, 1993). . Without wishing to be bound by theory, these four cell lines are Genes that may not express the receptor or inhibit apoptosis It may be characterized by up-regulation. a Results are the mean ± SEM of 4 wells for each data point. Example 10: Cross-species activity of TRAIL Interspecies cross-reactivity of human and murine TRAIL was examined as follows. Rat And human TRAIL with human melanoma cell line A375 (ATCC CRL1619). Incubated in the beginning. Because this is an adherent cell line, Rather, cell viability was determined using the crystal violet assay. A375 thin The vesicles were treated with 10% fetal calf serum, 100 μg / ml streptomycin and 100% The cells were cultured in DMEM supplemented with μg / ml penicillin. The cells (96 wells 10,000 cells / well in a volume of 100 μl in a plate) Incubated with soluble murine TRAIL as described in Example 7 for 72 hours . Crystal violet staining was performed by Flick and Gifford (J. Immunol. 68: 167-175, 1984). The result is a rat and Human and murine TRA in that human TRAIL killed A375 cells. Both ILs have been shown to be active on these human cells. Immortalized murine lines to determine the ability of human TRAIL to act on murine cells The examination was performed using the fibroblast cell line L929. Human or murine TRAIL of L929 cells Incubation with causes a drop in crystal violet staining In human and murine TRAIL, murine cells (induced apoptosis) It was shown to be active. In addition to crystal violet, cell death Confirmed by Livan blue staining. Example 11: Lysis of CMV infected cells Has a cytotoxic effect on virus-infected cells. Normal human gingival fibroblasts were plated on a 24-well plate with 10% CO2.Two And 10% fetal calf serum, 100 μg / ml streptomycin and 10% Grow to confluence in DMEM medium supplemented with 0 μg / ml penicillin. Fibroblast samples were processed as shown in FIG. Cytokine concentration , IL was 30 ng / ml. All samples given TRAIL also had TRAIL A double weight excess was given. Pretreatment of cells with the indicated cytokines was for 20 hours. Cell site To infect megalovirus (CMV), the medium is aspirated and the cells are CMV was infected at an approximate MOI (multiple of infection) of 5 in DMEM. 2 o'clock After a while, replace the virus-containing medium with DMEM and add cytokines as indicated. I got it. After 24 hours, cells were stained with crystal violet dye as described ( Flick and Gifford, 1984, supra). Wash stained cells twice with water, 2% Rupture with 200 μl of sodium deoxycholate, dilute 5 times with water, and An OD at 570 nm was obtained. The maximum staining% is based on the sample that showed the strongest staining. Calculated by normalizing OD. Similar results, but some independent Obtained from experiments. The results shown in FIG. 2 indicate that TRAIL specifically identified fibroblasts infected with CMV. To indicate that he was killed. This cell death is induced by pretreatment of cells with γ-interferon. Promoted by the law. Fibroblasts not infected with the virus almost die The absence was due to contact with TRAIL. Example 12: Assay to identify blocking antibodies Blocking antibodies directed against TRAIL may be specific biological activities of TRAIL Can be identified by examining the antibody for its ability to inhibit. next In the assay, the monoclonal antibody was isolated from TRAIL-mediated Jurkat cells. The vesicles were examined for their ability to inhibit apoptosis. Jurkat cell line implemented This is described in Example 5. A hybridoma cell line producing the antibody was used in the assay. Hybridoma The supernatant from the culture was placed in RPMI complete medium in a 96-well microtiter plate. The RAIL fusion protein and the monoclonal antibody designated M2 were prepared in Example 7 It is described in. Hybridoma supernatants were prepared at a 1:50 (v / v) dilution (starting concentration) and at Used in two-fold serial dilutions. 37 ° C, 10% COTwoIncubation for 30 minutes After incubation, add 50,000 Jurkat cells / well and incubate For 20 hours. Next, cell viability was calculated by measuring the metabolic conversion of the alamar blue dye. The Alamar Blue Conversion Assay is described in Example 8. Monoclonal antibody It was found to inhibit tosis. Example 13: TRAIL blocking experiment Skin-derived human microvascular endothelial cells are converted to thrombotic thrombocytopenic purpura (TTP) Plasma from patients or control plasma alone or with anti-TRAIL polyclonal Treated for 16-18 hours with serum in the presence. Use antiserum diluted 1: 2000 Was. Plasma was from two TTP patients denoted # 1 and # 2 below . The cells used in the assay were MVEC-1 (HMVEC 2753, Clonetics, San Francisco). Diego, CA) and MVEC-2 (DHMVEC 30282, Cell Systems, Kirkland, WA). Culture of these cells Nutrition can be maintained as described by Laurence et al. (Blood, 87: 3245, 1996). Wear. The results were as follows. Data shown were stained with Providium iodide DNA histograms of the cells0The peak is the apoptotic peak. (Oyaizu et al., Blood, 82: 3392, 1993; Nicoletti et al., J. Immunol. Metho ds, 139: 271, 1991; and Laurence et al., Blood, 75: 696, 1990). The data show that plasma from TTP patients is apopotential for human microvascular endothelial cells. Induces tosis. This apoptosis is directed against TRAIL Inhibited by the polyclonal antibody.
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