JPH07203980A - 発酵法によるl−グルタミン酸の製造法 - Google Patents
発酵法によるl−グルタミン酸の製造法Info
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Abstract
ミン酸の生産能を向上させ、安価かつ効率的なL−グル
タミン酸の製造法を提供する。 【構成】 エシェリヒア属に属し、α−ケトグルタル酸
デヒドロゲナーゼ活性が欠損もしくは低下しかつホスホ
エノールピルベートカルボキシラーゼ活性とグルタメー
トデヒドロゲナーゼ活性が増幅された株を液体培地で培
養し、培養液中にL−グルタミン酸を生成蓄積せしめ、
これを採取することを特徴とする発酵法によるL−グル
タミン酸の製造法。
Description
ミン酸を製造するために使用される変異株および該変異
株を用いた発酵法によるL−グルタミン酸の製造法に関
する。L−グルタミン酸は食品、医薬品等として重要な
アミノ酸である。
バクテリウム属、コリネバクテリウム属またはミクロバ
クテリウム属に属するいわゆるグルタミン酸生産菌また
はそれらの変異株を用いた発酵法により製造されてきた
(アミノ酸発酵、学会出版センター、195〜215
頁、1986年)。その他の菌株を用いた発酵法による
L−グルタミン酸の製造法としては、バチルス属、スト
レプトミセス属、ペニシリウム属等の微生物を用いる方
法(米国特許第3,220,929号)、シュードモナ
ス属、アースロバクター属、セラチア属、キャンディダ
属等の微生物を用いる方法(米国特許第3,563,8
57号)等が知られている。従来の方法によりL−グル
タミン酸の生産性はかなり高まってはいるが、今後の需
要の一層の増大に応えるためには、さらに安価かつ効率
的なL−グルタミン酸の製造法の開発が求められてい
る。
速度の大きさ並びに遺伝子解析の進み方から将来的に優
れたL−グルタミン酸生産菌として利用される可能性を
有しているが、従来の報告では大腸菌によるL−グルタ
ミン酸の蓄積量は2.3g/lと極めて低いレベルにあ
った(J.Biochem.、第50巻、164〜16
5頁、1961年)。ところが最近、α−ケトグルタル
酸デヒドロゲナーゼ(以下、α−KGDHと略す)活性
が欠損もしくは低下した変異株が高いグルタミン酸生産
能を有することが報告された(仏国特許公開26801
78号)。
シェリヒア属に属する微生物のL−グルタミン酸生産能
をさらに向上させ、より安価でかつ効率的なL−グルタ
ミン酸の製造法を提供することにある。
変異株によるL−グルタミン酸の製造法について鋭意研
究を重ねた結果、α−KGDH活性が欠損もしくは低下
し、フォスフォエノールピルベートカルボキシラーゼ
(以下PPCと略す)活性とグルタメートデヒドロゲナ
ーゼ(以下GDHと略す)活性が増幅された変異株が高
いL−グルタミン酸生産能を持つことを見いだし、本発
明を完成するに至った。
欠損もしくは低下しかつPPC活性とGDH活性が増幅
されたL−グルタミン酸生産能を有する変異株、およ
び、 (発明2)エシェリヒア属に属し、α−KGDH活性が
欠損もしくは低下しかつPPC活性とGDH活性が増幅
されたL−グルタミン酸生産能を有する変異株を液体培
地に培養し、培養液中にL−グルタミン酸を生成蓄積せ
しめ、これを採取することを特徴とする発酵法によるL
−グルタミン酸の製造法である。
H活性が欠損もしくは低下した変異株の取得
る出発親株としては、エシェリヒア属に属する微生物で
病原性のない菌株が用いられる。具体的な例としては、
次のような株が挙げられる。
が欠損もしくは低下しL−グルタミン酸生産能を有する
変異株は以下のようにして調製される。
法、例えばX線や紫外線の照射あるいはN−メチル−
N’−ニトロ−N−ニトロソグアニジン(以下、NGと
略す)等の変異剤に接触せしめる等の方法を適用し変異
を導入する。
子組換え法、形質導入法、細胞融合法等を用いることに
よっても目的の変異を効率よく導入することができる。
欠損株の取得方法は以下の通りである。既に明らかにさ
れているα−ケトグルタル酸デカルボキシラーゼ遺伝子
(以下、sucA遺伝子と略す)の塩基配列(Eur.
J.Biochem.、第141巻、351〜359
頁、1984年)に基づいてプライマーを合成し、染色
体DNAを鋳型にしてPCR法によりsucA遺伝子を
増幅し、増幅したsucA遺伝子内に薬剤耐性遺伝子を
挿入し、機能を失ったsucA遺伝子を作成する。つい
で相同組換えを利用して染色体上のsucA遺伝子を薬
剤耐性遺伝子の挿入によりその機能を失ったsucA遺
伝子に置換する。
抜のためのより具体的な手段は次のようなものである。
変異株は、好気的培養条件下ではグルコースを含む最少
培地で生育できないかもしくは生育速度が著しく低下す
る。ところが、同一条件でもグルコースを含む最小培地
にコハク酸またはリジンおよびメチオニンを添加するこ
とにより通常の生育が可能となる。あるいは、嫌気的培
養条件下で培養するとグルコースを含む最少培地でも生
育可能となる(Molec.Gen.Genetic
s、第105巻、182〜190頁、1969年)。こ
れらの現象を指標として目的変異株の選抜が可能であ
る。
性が欠損もしくは低下した変異株の具体例としては次の
ものが挙げられる。 エシェリヒア・コリW3110sucA::Kmr
変異株は、さらにL−グルタミン酸の分解活性が低下し
た性質や、マレートシンターゼ(aceB)・イソシト
レートリアーゼ(aceA)・イソシトレートデヒドロ
ゲナーゼキナーゼ/フォスファターゼ(aceK)オペ
ロン(以下、aceオペロンと略す)の発現が構成的に
なった性質を併せ持つことが、L−グルタミン酸の生産
性向上の面から有利である。これらの性質については仏
国特許2680178号に記載されている。また、従来
よりL−グルタミン酸生産菌の性質として知られている
各種栄養要求性、薬剤耐性、薬剤感受性、または薬剤依
存性等の性質を持つことがL−グルタミン酸の生産性向
上の面から有利であることはいうまでもない。
株は、単一炭素源としてグルコースの代わりにL−グル
タミン酸を含む最少培地または単一窒素源として硫酸ア
ンモニウムの代わりにL−グルタミン酸を含む最少培地
で生育できないかもしくは生育速度が著しく低下する変
異株として分離できる。但し、栄養要求性を有する変異
株を用いる場合は、生育に必要な栄養素の必要最少限量
を当然培地に添加しなければならない。
異株は、フォスフォエノールピルベートシンターゼ欠損
株を親株とし、乳酸を炭素源とする最少培地で生育し、
ピルビン酸または酢酸・ピルビン酸を炭素源とする最少
培地では生育できない株として得られる他、好気的培養
条件下でα−KGDH欠損もしくは低下株の生育を改善
する変異株としても得られる(J.Bacterio
l.、第96巻、2185〜2186頁、1968
年)。
挙げられる。 エシェリヒア・コリAJ12628(FERMBP−3
854) エシェリヒア・コリAJ12624(FERMBP−3
853) エシェリヒア・コリAJ12628株は、α−KGDH
活性が低下し、さらにL−グルタミン酸の分解活性が低
下し、aceオペロンの発現が構成的になった性質を併
せ持つ変異株であり、エシェリヒア・コリAJ1262
4株は、α−KGDH活性が低下し、さらにL−グルタ
ミン酸の分解活性が低下した変異株である(仏国特許2
680178号参照)。
もしくは低下した変異株は、TCAサイクルのα−ケト
グルタル酸を経てL−グルタミン酸に至る生合成経路の
流れが改善されておりL−グルタミン酸の生産能が向上
している。またα−KGDH活性が欠損もしくは低下
し、かつ生成したL−グルタミン酸の分解活性が著しく
低い変異株や、これら性質に加えてさらにaceオペロ
ンが構成的に発現するために生育が改善した変異株で
は、L−グルタミン酸の生産性が向上している。
とGDH活性が増幅された変異株の取得
し、PPC活性とGDH活性が増幅された変異株の取得
を、エシェリヒア属に属し、α−KGDH活性が欠損も
しくは低下しL−グルタミン酸生産能を有する変異株を
出発親株として行った。しかし、エシェリヒア属に属す
る野生型の菌株を出発親株として行い、PPC活性とG
DH活性が増幅された変異株の取得を行った後にα−K
GDH活性が欠損もしくは低下するよう育種してもかま
わない。
れた変異株を調製するために使用される出発親株として
は、エシェリヒア属に属し、α−KGDH活性が欠損も
しくは低下しL−グルタミン酸生産能を有する変異株、
あるいはエシェリヒア属に属する微生物で病原性のない
野生型菌株が用いられる。具体的な例としては、次のよ
うな株が挙げられる。
854) エシェリヒア・コリAJ12624(FERMBP−3
853) (以上、エシェリヒア属に属し、α−KGDH活性が欠
損もしくは低下しL−グルタミン酸生産能を有する変異
株) エシェリヒア・コリK−12(ATCC10798) エシェリヒア・コリW3110(ATCC27325) エシェリヒア・コリB(ATCC11303) エシェリヒア・コリW(ATCC9637) (以上、エシェリヒア属に属する微生物で病原性のない
野生型菌株)
PCおよびGDHをコードする遺伝子を適当なプラスミ
ド上にクローニングし、得られたプラスミドを用いて宿
主となる上記出発親株を形質転換すればよい。形質転換
株の細胞内のPPCおよびGDHをコードする遺伝子
(以下、おのおのをppc遺伝子、gdhA遺伝子と略
する)のコピー数が上昇し、その結果PPC活性および
GDH活性が増幅される。
dhA遺伝子は一種類のプラスミド上にクローン化され
て宿主となる上記出発親株に導入されるか、もしくは共
存可能な二種類のプラスミド上に別々にクローン化され
て出発親株に導入される。
pc遺伝子およびgdhA遺伝子を宿主となる上記出発
親株の染色体DNA上に多コピー存在させることによっ
ても達成できる。エシェリヒア属に属する微生物の染色
体DNA上にppc遺伝子およびgdhA遺伝子を多コ
ピーで導入するには、染色体DNA上に多コピー存在す
る配列を標的に利用して相同組換えにより行う。染色体
DNA上に多コピー存在する配列としては、レペッティ
ブDNA、転移因子の端部に存在するインバーティッド
・リピートが利用できる。あるいは、特開平2−109
985号公報に開示されるようにppc遺伝子およびg
dhA遺伝子をトランスポゾンに搭載してこれを転移さ
せて染色体DNA上に多コピー導入することも可能であ
る。形質転換株の細胞内のppc遺伝子およびgdhA
遺伝子のコピー数が上昇し、その結果PPC活性および
GDH活性が増幅される。
上記の遺伝子増幅による以外にも、ppc遺伝子および
gdhA遺伝子のプロモーターを強力なものに置換する
ことによっても達成される。たとえば、lacプロモー
ター、trpプロモーター、trcプロモーター、ta
cプロモーター、ラムダファージのPRプロモーター、
PLプロモーター等が強力なプロモーターとして知られ
ている。ppc遺伝子およびgdhA遺伝子の発現が強
化されることによってPPC活性およびGDH活性が増
幅される。
のおのPPCもしくはGDH活性を欠失した変異株を用
いてその栄養要求性を相補する遺伝子を単離することに
よって取得できる。またエシェリヒア・コリのこれら遺
伝子は既に塩基配列が明かにされていることから(J.
Biochem.、第95巻、909〜916頁、19
84年、Gene、第27巻、193〜199頁、19
84年)それぞれの塩基配列に基づいてプライマーを合
成し、染色体DNAを鋳型にしてPCR法により取得す
ることが可能である。
H活性が欠損もしくは低下しかつPPC活性とGDH活
性が増幅されたL−グルタミン酸生産能を有する変異株
を用いた発酵法によるL−グルタミン酸の生産
が欠損もしくは低下しかつPPC活性とGDH活性が増
幅されたL−グルタミン酸生産能を有する変異株を用い
てL−グルタミン酸を生産せしめるには、炭素源、窒素
源、無機塩類、その他必要に応じてアミノ酸、ビタミン
等の有機微量栄養素を含有する通常の栄養培地を用いて
常法により行うことができる。合成培地または天然培地
のいずれも使用可能である。培地に使用される炭素源及
び窒素源は、使用菌の利用可能なものならばいずれの種
類を用いてもよい。
ル、フラクトース、シュクロース、マルトース、マンノ
ース、ガラクトース、澱粉加水分解物、糖蜜等の糖類が
使用され、その他、酢酸、クエン酸等の有機酸等も単独
あるいは他の炭素源と併用して用いられる。
ニウム、炭酸アンモニウム、塩化アンモニウム、リン酸
アンモニウム、酢酸アンモニウム等のアンモニウム塩ま
たは硝酸塩等が使用される。
ミン、脂肪酸、核酸、更にこれらのものを含有するペプ
トン、カザミノ酸、酵母エキス、大豆蛋白分解物等が使
用され、生育にアミノ酸等を要求する栄養要求性変異株
を使用する場合には要求される栄養素を補添する事が必
要である。
塩、カルシウム塩、鉄塩、マンガン塩等が使用される。
pHを5ないし9に制御しつつ通気培養を行う。培養中
にpHが下がる場合には、炭酸カルシウムを加えるか、
アンモニアガス等のアルカリで中和する。かくして10
時間ないし4日間程度培養することにより培養液中に著
量のL−グルタミン酸が蓄積される。
を採取する方法は、公知の回収方法に従って行えばよ
い。例えば培養液から菌体を除去した後に濃縮晶析する
方法あるいはイオン交換クロマトグラフィー等によって
採取される。
明する
リポアミドサクシニルトランスフェラーゼ遺伝子のクロ
ーニング エシェリヒア・コリK12株のsucA遺伝子および、
ジヒドロリポアミドサクシニルトランスフェラーゼ遺伝
子(以下、sucB遺伝子と略す)の塩基配列は既に明
かにされている。明らかにされているsucA遺伝子お
よびsucB遺伝子の塩基配列は、Eur.J.Bio
chem.、第141巻、351〜374頁、1984
年に開示されているが、同配列を配列表の配列番号7に
も記載した。327番目から3128番目に至る塩基配
列がsucA遺伝子のO.R.F.に相当し、3143
番目から4357番目に至る塩基配列がsucB遺伝子
のO.R.F.に相当する。報告されている塩基配列に
基づいて配列表配列番号1から4に示すプライマーを合
成し、エシェリヒア・コリW3110株の染色体DNA
を鋳型としてPCR法によりsucA遺伝子およびsu
cB遺伝子をそれぞれ増幅した。
マーは配列表配列番号1および2に示す塩基配列であ
り、配列表配列番号1はEur.J.Bioche
m.、第141巻、354頁、1984年に記載されて
いるsucA遺伝子の塩基配列図上の45番目から65
番目の塩基に至る配列に相当する。また、配列表配列番
号7として記載する塩基配列の45番目から65番目の
塩基に至る配列に相当する。
hem.、第141巻、364頁、1984年に記載さ
れているsucB遺伝子の塩基配列図上の3173番目
から3193番目までの配列に相当する。また、配列表
配列番号7として記載する塩基配列の3173番目から
3193番目の塩基に至る配列に相当する。
ライマーは配列表配列番号3および4に示す塩基配列で
あり、、配列表配列番号3はEur.J.Bioche
m.、第141巻、354頁、1984年に記載されて
いるsucA遺伝子の塩基配列図上の2179番目から
2198番目までの塩基配列に相当する。また、配列表
配列番号7として記載する塩基配列の2179番目から
2198番目の塩基に至る配列に相当する。
hem.第141巻、364頁、1984年に記載され
ているsucB遺伝子の塩基配列図上の4566番目か
ら4591番目の塩基配列に相当する。また、配列表配
列番号7として記載する塩基配列の4566番目から4
591番目の塩基に至る配列に相当する。 尚、suc
A遺伝子とsucB遺伝子はオペロンを成す。
DNAの回収は、常法によった(生物工学実験書、日本
生物工学会編、97ー98頁、培風館、1992年)。
リーエーリッヒ編、ストックトンプレス、1989年)
8頁に記載されている標準反応条件を用いた。
NAポリメラーゼにより平滑にし、ベクターであるpB
R322のEcoRV部位にクローニングした。pBR
322にsucA遺伝子をクローニングしたプラスミド
をpBR−sucA、同様にsucB遺伝子をクローニ
ングしたものをpBR−sucBと名づけた。以上の様
にして得られたプラスミドをエシェリヒア・コリJM1
09株に導入し、プラスミドを調製後、制限酵素地図を
作成し、報告されているsucA、sucB遺伝子の制
限酵素地図と比較し、クローニングされた遺伝子がsu
cA、sucB遺伝子であることを確認した。
nIおよびEcoRIで消化し、sucB遺伝子を含む
DNA断片を調製した。pBR−sucAをKpnIお
よびEcoRIで消化し、大断片を調製した。両者をT
4DNAリガーゼにより連結しpBR−sucABを作
成した。
色体DNA上のsucA遺伝子の破壊図2にエシェリヒ
ア・コリW3110株の染色体DNA上のsucA遺伝
子の破壊の概略を示す。
T4DNAポリメラーゼにより平滑末端化した。一方、
pUC4K(ファルマシアから購入)をPstIで消化
し、カナマイシン耐性遺伝子を含むDNA断片を調製
し、T4DNAポリメラーゼにより平滑末端化した。両
者をT4DNAリガーゼにより連結し、pBR−suc
A::Kmrを作成した。次に本プラスミドからカナマ
イシン耐性遺伝子を含むHindIII−EcoRI断
片を切り出し、この直鎖状DNAを用いてエシェリヒア
・コリジェネティックストックセンター(米国エール
大)から入手したエシェリヒア・コリJC7623株
(thr−1、araー14、leuB6、△(gpt
ーproA)62、lacY1、tsx−33、sup
E44、galK2、λー、racー、sbcB15、h
isG4、rfbD1、recB21、recC22、
rpsL31、kdgK51、xyl−5、mtl−
1、argE3、thi−1)を形質転換し、染色体D
NA上のsucA遺伝子がカナマイシン耐性遺伝子の挿
入されたsucA遺伝子(sucA::Kmr)に組換
えられた株を25μg/mlのカナマイシンを含むL培
地(バクトトリプトン 10g/l、酵母エキス 5g
/l、NaCl 5g/l、寒天 15g/l、pH
7.2)上で選択した。エシェリヒア・コリJC762
3株はrecBー、recCー、sbcBーの形質を有し
ているために直鎖状のDNAを用いて形質転換を行って
も頻度良く組換えをおこす。
12株それぞれから染色体DNAを調製し、KpnIで
消化し、sucA遺伝子を含むDNA断片をプローブに
してサザンハイブリダイゼイションを行い、12株全て
が染色体DNA上のsucA遺伝子がカナマイシン耐性
遺伝子の挿入されたsucA遺伝子に組換えられた株で
あることを確認した。pBR−sucAのsucA遺伝
子を含む2.6KbのEcoRI−HindIII断片
をプローブにしてサザンハイブリダイゼイションを行う
と野生株ではsucA遺伝子を含むDNA断片の中にK
pnI部位が存在するために5.2Kbと6.2Kbの
2本のバンドが現れるが、カナマイシン耐性遺伝子が挿
入されたsucA遺伝子に組換えられた株ではカンマイ
シン耐性遺伝子の挿入の際にKpnI部位が破壊されて
いるため11.4Kbの1本のバンドしか現れない。こ
の様にして得られたカナマイシン耐性のエシェリヒア・
コリJC7623(sucA::Kmr)株にP1ファ
ージを感染させ、溶菌液を調製後、エシェリヒア・コリ
W3110株にsucA::Kmrを形質導入した。P
1ファージによる形質導入は常法によった(生物工学実
験書、日本生物工学会編、75−76頁、培風館、19
92年)。カナマイシン耐性株として分離した株の内代
表株をW3110sucA::Kmrと名付けた。
シェリヒア・コリW3110株のα−KGDH活性をR
eed等の方法(Methods in Enzymo
logy、第13巻、55頁、1969年)により測定
した。その結果を表1に示す。 エシェリヒア・コリW
3110sucA::Kmr株にはα−KGDH活性は
検出されなかった。すなわち、エシェリヒア・コリW3
110sucA::Kmr株はα−KGDHを欠損して
いる株である。
gdhA遺伝子のクローニング sucAおよびsucB遺伝子のクローニングと同様に
PCR法によりgdhA遺伝子をクローニングした。F
ernando等により報告されているgdhA遺伝子
の塩基配列をもとにしてPCR用プライマーを合成し
た。gdhA遺伝子の塩基配列はGene、第27巻、
193〜199頁、1984年に開示されているが、配
列表の配列番号8としても記載した。PCR用プライマ
ーの塩基配列を配列表配列番号5及び6に示す。
195頁、1984年に記載されているgdhA遺伝子
の塩基配列図上の−191番目から−171番目の配列
に相当し、配列表配列番号8の3番目から23番目の配
列に相当する。
195頁、1984年に記載されているgdhA遺伝子
の塩基配列図上の1687番目から1707番目の塩基
までの配列に相当し、配列表配列番号8の1880番目
から1900番目の塩基までの配列に相当する。
染色体DNAを鋳型にして合成したプライマーを用いて
PCR法によりgdhA遺伝子を増幅し、得られたPC
R産物を精製後、T4DNAポリメラーゼで平滑末端に
した後、EcoRVで消化したpBR322に連結しプ
ラスミドpBRGDHを作成した。
するプラスミドの作成 図3にppc遺伝子とgdhA遺伝子を有するプラスミ
ドの構築方法を示した。pBR322のSalIサイト
にエシェリヒア・コリK−12株に由来するppc遺伝
子の全領域を含む4.4KbのSalI断片が挿入され
たプラスミドpS2(J.Biochem.、第9巻、
909〜916頁、1984年)をHindIIIで消
化し、T4DNAポリメラーゼで両末端を平滑末端にし
た。一方PCR法で合成したgdhA遺伝子を含むDN
A断片をT4DNAポリメラーゼで平滑末端にした。次
いで両者をT4DNAリガーゼで連結した。得られたプ
ラスミドで、エシェリヒア・コリジェネティックストッ
クセンター(米国エール大)より入手したGDH欠損株
エシェリヒア・コリPA340(thr−1、fhuA
2、leuB6、lacY1、supE44、gal−
6、λー、gdh−1、hisG1、rfbD1、ga
lP63、Δ(gltB−F)、rpsL19、mal
T1(λR)、xyl−7、mtl−2、argH1、
thi−1)を形質転換し、アンピシリン耐性でかつグ
ルタミン酸要求性を消失した株を分離した。この株より
プラスミドを調製し、制限酵素地図を作成し、本プラス
ミド上にppc遺伝子、gdhA遺伝子が存在すること
を確認し、本プラスミドをpGKと名付けた。
コリW3110sucA::KmrへのpS2、pBR
GDH、pGKの導入と培養評価 αKGDH欠損株エシェリヒア・コリW3110suc
A::KmrをpS2、pBRGDH、pGKでそれぞ
れ形質転換し、得られた形質転換株をそれぞれ表2の組
成の培地20mlを注入した500ml容振とうフラス
コに接種して、37℃にて培地中の糖が消費されるまで
振とう培養したところ、表3に示す結果が得られた。
転換株では宿主であるW3110sucA::Kmrに
比較して若干生育が低下したが、L−グルタミン酸の蓄
積量は宿主と変わらなかった。また、pBRGDHを導
入しGDH活性を増幅した株では生育が極めて悪く、驚
くことにL−グルタミン酸の蓄積量はW3110suc
A::Kmr株に比較して低下した。
DH活性を同時に増幅した形質転換株では生育は宿主と
変わらず、L−グルタミン酸蓄積量には顕著な増加が認
められた。ppc遺伝子とgdhA遺伝子を有するプラ
スミドpGKが導入されたエシェリヒア・コリW311
0sucA::Kmr株をAJ12949と名付けた。
エシェリヒア・コリAJ12949株は通商産業省工業
技術院生命工学工業技術研究所特許微生物寄託センター
に寄託されており、受託番号FERM P−14039
が付与されている。
mr株は寄託したAJ12949株より宿主細胞を損な
うことなく宿主細胞中のプラスミドを除去することによ
り得られる。プラスミドは宿主より自然に失われること
もあるし、除去操作によって除くこともできる(Bac
t. Rev.、第36巻、361〜405頁、197
2年)。他の除去操作の例は以下の通りである。AJ1
2949株をLブロス(バクトトリプトン 10g/
l、酵母エキス 5g/l、NaCl 5g/l、pH
7.2)に接種し、40℃で一晩培養後、培養液を適当
に希釈し、アンピシリンを含有しないL培地に塗布し、
37℃で一晩培養後出現したコロニーをアンピシリン1
00μg/mlを含むL培地に移植し、アンピシリン感
受性のコロニーを分離する。 かくして得られる株がW
3110sucA::Kmrである。
属する変異株のL−グルタミン酸生産能を高めることが
でき、L−グルタミン酸を安価かつ効率的に製造するこ
とができる。
プライマー 配列 ACGCGCAAGC GTCGCATCAG G
21
プライマー 配列 ATCGGCTACG AATTCAGGCA G
21
プライマー 配列 CCGGTCGCGG TACCTTCTTC 20
プライマー 配列 CGTAGACCGA ATTCTTCGTA TCGCTT 26
プライマー 配列 GGGTGGCAAA GCTTTAGCGT C 21
プライマー 配列 TCGAGAAGCA TGCATTATAT A 21
上のsucA遺伝子を破壊する過程を示す。
Claims (2)
- 【請求項1】 エシェリヒア属に属し、α−ケトグルタ
ル酸デヒドロゲナーゼ活性が欠損もしくは低下しかつフ
ォスフォエノールピルベートカルボキシラーゼ活性とグ
ルタメートデヒドロゲナーゼ活性が増幅されたL−グル
タミン酸生産能を有する変異株。 - 【請求項2】 エシェリヒア属に属し、α−ケトグルタ
ル酸デヒドロゲナーゼ活性が欠損もしくは低下しかつフ
ォスフォエノールピルベートカルボキシラーゼ活性とグ
ルタメートデヒドロゲナーゼ活性が増幅されたL−グル
タミン酸生産能を有する変異株を液体培地に培養し、培
養液中にL−グルタミン酸を生成蓄積せしめ、これを採
取することを特徴とする発酵法によるL−グルタミン酸
の製造法。
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