JP7610262B2 - 皮膚外用剤 - Google Patents
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Description
滅菌したGP液体培地2700gに、予め同培地で培養しておいたササユリ由来の酵母(サッカロマイセス・セレビシエ)の前培養液300gを添加し、30℃で通気しながら24時間培養した培養した。加熱殺菌した後、水酸化ナトリウム水溶液でpH8.5に調整し、3時間、攪拌しながら90℃で加熱処理した。この液をpH調整した後、濾過し1610gの酵母培養液抽出物を得た(固形分濃度1.13%)。
滅菌したGP液体培地2700gに、予め同培地で培養しておいたササユリ由来の酵母(サッカロマイセス・セレビシエ)の前培養液300g添加し、30℃で通気しながら24時間培養した。加熱殺菌した後、塩酸水溶液でpH2.5に調整し、3時間、攪拌しながら90℃で加熱処理した。この液をpH調整した後、濾過し1215gの酵母培養液抽出物を得た(固形分濃度1.07%)。
滅菌したGP液体培地2700gに、予め同培地で培養しておいたササユリ由来の酵母(サッカロマイセス・セレビシエ)の前培養液300g添加し、30℃で通気しながら24時間培養した。加熱殺菌した後、3時間、90℃で加熱処理した。この液をpH調整した後、濾過し1540gの酵母培養液抽出物を得た(固形分濃度0.62%)。
製造例1で示した方法で作製した酵母培養液抽出物を濃縮し、酵母培養液抽出物粉末を17g得た。これに水を少量加え溶解した後、少量のエタノール、及びD-マンニット833gを加え、撹拌しながら真空乾燥し、D-マンニット賦形化酵母培養液抽出物粉末850gを得た。
ハスの種子(渋皮を除去したもの)100gを粉砕し、精製水1900gを加えて懸濁液を調製し、加熱殺菌した。この懸濁液に乳酸菌(ラクトバチルス プランタラム)を108個/mL接種し、窒素気流下に37℃で3日間静置培養した。培養終了後加熱殺菌し、培養液をろ過して、ハス種子の乳酸菌発酵物溶液1415g(固形分濃度2.53%)を得た。
ヤブカンゾウの花部(蕾及び花弁を含む)の細切物150gに精製水1500gを加えて混合し、40℃で3時間抽出処理を行った。次に、抽出懸濁液を加熱殺菌後、酵母(サッカロミセス セレビシエ)を108個/mL接種し、窒素気流下に30℃で3日間静置培養した。培養終了後加熱殺菌し、培養液をろ過して、脱臭、脱色処理を行い、褐色透明の酵母発酵物溶液1110g(固形分濃度4.0%)を得た。これを精製水で3倍に希釈し、酵母発酵物溶液とした。
製造例1の抽出物溶液、製造例5の発酵物溶液及び製造例6の発酵物溶液を等量混合後、不溶物を濾過し、褐色透明の抽出物溶液混合溶液2920gを得た(固形分濃度2.53%)。
正常ヒト皮膚由来表皮細胞(NHEK)を、HuMedia KG2培地(クラボウ社製)を入れた96穴マイクロプレートに8×103個/穴播種し、37℃,5.0%CO2の条件下に1日間プレ培養した後、試料溶液として本発明試料1、比較試料1~3を含むHuMedia KG2培地を添加した。ここで、各試料の濃度は培地中の溶液としての終濃度が1.2%となるように調整した。その後、培養器底面からUV-Bランプ(Philips社製TL20W/12RS)を用いて約10mJ/cm2の紫外線照射を行い、同条件でさらに2日間培養した。
細胞膜上に発現したSCFの判定は以下の様にして行った。すなわち、培養上清を除去・洗浄後、細胞を固定し、HRP(horseradish peroxidase)ラベルされた抗SCF抗体を用いて細胞膜表面上のSCFの検出を行った。検出結果は、基質とHRPの反応によって得られた反応溶液の450nmにおける吸光度を測定し、SCF量とした。また、比較のために、上記試料溶液を含まない培地で細胞を培養したコントロール区も設定し、紫外線照射したコントロール(UV照射control)と、UV未照射のコントロール(UV未照射control)についても、SCF量を測定した。結果は、UV照射コントロールでのSCF値を100%として相対値で示した。
図1に示すように、本発明に係る組成物(本発明試料1)は、比較試料1~3と比較して、格段にすぐれたSCF合成抑制効果を有することが確認された。SCFは表皮細胞の表面で発現するタンパク質であり、これがメラノサイトの受容体と結合するとメラニンの合成が促進されることから、本発明に係る組成物はSCF合成を抑制することで、格段にすぐれた美白効果を発揮することが示唆される。
正常ヒト表皮細胞(NHEK)を、専用培地Humedia-KG2(クラボウ社製)に懸濁して96ウェルプレートに4×103個/穴播種し、37℃で1日間培養した後、培地に本発明に係る組成物(本発明試料1)を試料溶液として、当該培地の全量に対して溶液としての最終濃度が0.3%,0.45%,0.6%,0.9%,1.2%となるように添加し、さらに24時間培養した。次に培養器の底面から100mJ/cm2の紫外線B波を照射し、さらに2日間培養後、培養上清に分泌されたPGE2の量を、PGE2測定キット(カイマンケイミカル社製)を用いて測定した。なお、比較のために、上記試料溶液に代えてPBS(-)を添加し、かつ、紫外線を照射したコントロール(UV照射control)と、上記試料溶液に代えてPBS(-)を添加し、かつ、紫外線を照射しない未照射コントロール(UV未照射control)も設定した。試験結果の値は、UV照射controlでのPEG2量を100としたときのUV未照射control区と各試料添加区でのPEG2量の相対値を求め、各値をPGE2合成率(%)とした。
図2に示すように、本発明に係る組成物(本発明試料1)は、濃度依存的に格段にすぐれたプロスタグランジンE2抑制効果を有することが確認された。プロスタグランジンは、色素細胞におけるメラニンの合成を刺激する炎症因子であることから、本発明に係る組成物は、プロスタグランジンE2を抑制することで、格段にすぐれた美白効果を発揮することが示唆される。
正常ケラチノサイトNHEKを、Humedia KG2培地(クラボウ社製)を入れた24ウェルプレートに6×104個/穴播種し、翌日上清をPBS(-)に交換して紫外線照射(50mJ/cm2)を行った。紫外線照射後、上清をHumedia KB2培地(クラボウ社製)に交換し、培養を継続した。次に培養1日後の培養上清を分取した(紫外線照射上清)。また、比較として紫外線照射を行わない区を設定し、その他の操作は同様に行った区の培養上清も分取しておいた(紫外線未照射上清)。
一方、正常メラノサイトNHEMを、DermaLife培地(クラボウ社社製)を入れた96穴マイクロプレートに5×103個/穴播種し、37℃,5.0%CO2の条件下に1日間プレ培養した後、本発明に係る組成物(本発明試料1)を試料溶液として、当該培地の全量に対して溶液としての最終濃度が0.3%,0.45%,0.6%,0.9%,1.2%となるように添加し、さらに上記ケラチノサイトの紫外線照射上清も添加した。3日間培養後上清を捨て、PBS(-)で1回洗浄後、界面活性剤(Triton X-100)と5mM L-ドーパ溶液を添加して37℃で反応を行った後、マイクロプレートリーダー(Model 450、バイオラッド社製)を用い、波長490nmでドーパ値を測定した。なお、比較のために、上記試料溶液に代えてPBS(-)を添加し、かつ、紫外線を照射した上清を用いるコントロール(UV照射control)と、上記試料溶液に代えてPBS(-)を添加し、かつ、紫外線未照射の上清を使用するコントロール(UV未照射control)も設定した。試験結果の値は、UV照射controlでドーパ値を100としたときのUV未照射control区と各試料添加区でのドーパ値の相対値を求め、各値をチロシナーゼ活性率(%)とした。
図3に示すように、本発明に係る組成物(本発明試料1)は、濃度依存的に格段にすぐれたチロシナーゼ活性抑制効果を有することが確認されたことから、本発明に係る組成物組成物は、格段にすぐれた美白効果を発揮することが示唆される。
線維芽細胞NB1RGBを24ウェルプレートに6×104個/穴播種した。24時間培養後、本発明に係る組成物(本発明試料1)を試料溶液として添加し、底面より紫外線照射を行った。さらに24時間培養を行った。ここで、本発明試料1は、溶液としての最終濃度が0.3%,0.45%,0.6%,0.9%,1.2%となるように添加した。その後、それぞれの試験区の細胞をTrizol試薬(Invitrogen社製)500μLで回収した。回収した細胞に対してクロロホルム100μL添加して撹拌混合し12,500rpm、4℃の条件下で15分間遠心分離した後、水層のみを200μL分取した。回収した水層にイソプロパノール250μLを添加して撹拌混合し、12,500rpm、4℃の条件下で10分間遠心分離してtotalRNAの沈殿物を得た。totalRNAに75%冷エタノールを1mL添加して撹拌して洗浄し、12,500rpm、4℃条件下で10分間遠心分離して沈殿を回収した。回収したtotal RNAを所定のキット(PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Erase (Perfect Real Time)(タカラバイオ社製))を用いて逆転写反応し、cDNAを合成した。合成したcDNAをサンプルとして、Thermal Cycler Dice Real Time System Single(タカラバイオ社製)、及びSYBR Premix Ex TaqTM II(Perfect Real Time)[タカラバイオ社製]を用いて、ターゲット遺伝子の発現と、内部標準物質βアクチン遺伝子の発現の検出を行った。試験結果は、βアクチン遺伝子の発現量に対するターゲット遺伝子の相対発現量を算出した。本試験例4では、ヘパラン硫酸プロテオグリカン遺伝子(HSPG)の発現と、Hepatocyte Growth Factor (HGF)遺伝子の発現を評価した。
図4に示すように、本発明に係る組成物(本発明試料1)は、紫外線によって発現低下するHSPG遺伝子に対して、濃度依存的に格段にすぐれたHSPG遺伝子の発現亢進効果を有することが確認された。ヘパラン硫酸プロテオグリカン(HSPG)は、真皮からのメラニン合成刺激物質をブロックする役割が知られていることから、本発明に係る組成物組成物は、HSPG遺伝子の発現を亢進することで、基底膜を健全に保ち、格段にすぐれた美白効果を発揮することが示唆される。
1Mトリス-塩酸緩衝液0.15mL、1mM エチレンジアミン四酢酸・二ナトリウム塩溶液0.30mL、1mM キサンチン溶液0.30mL、0.75mM ニトロブル-テトラゾリウム溶液0.20mL、本発明に係る組成物(本発明試料1)0.10mL及び精製水1.90mLを混合して試験溶液を調製した。本発明試料1の濃度は、試験溶液中の溶液としての終濃度が0.3%,0.45%,0.6%,0.9%,1.2%となるように調製した。また、試験溶液において、本発明試料1に代えて30% 1,3-ブチレングリコール0.10mLを用いる他は上記試験溶液と同様の組成からなる混合液(コントロール)を調製した。又試験液において本発明試料1(0.10mL)に代えて、0.875Unit/mLのスーパーオキシドジスムターゼ溶液0.10mLを用いる他は上記試験溶液と同様の組成からなる混合液(陽性対照)を調製した。
上記試験溶液、又は試料無添加の混合液をそれぞれ37℃でインキュベートした後、これに1Unit/mL キサンチンオキシダーゼ溶液0.05mLを添加し、一定時間経過後(5分)、各被験液の570nmにおける吸光度(被験液中のスーパーオキシドアニオン量の指標)を測定した。結果は、コントロールの混合液の吸光度を100とした時の各試験溶液の吸光度の相対値(%)で示した。
図6に示すように、本発明に係る組成物(本発明試料1)は、濃度依存的に格段にすぐれたSOD様活性を有することが確認された。
本試験では、グルコースを介したBSA(アルブミン)の蛍光の発生により、AGEの発生抑制効果、すなわち、タンパク質糖化抑制効果を評価した。まず、本発明に係る組成物(本発明試料1)40μLと、50mg/mLのBSA水溶液40μLと、2.5Mのグルコース水溶液40μLと、PBS(-)溶液80μLを混合、攪拌して試料溶液を調製した。試料溶液は本発明試料1の終濃度が0.3%,0.45%,0.6%,0.9%,1.2%となるようにとなるよう調製した。次に、試料溶液を50℃で7日間静置し、7日後、各試料溶液について、蛍光発生(励起:355nm、放射:460nm:蛍光マイクロプレートリーダー(フルオロスキャンアセント、Thermo Fisher Scientific社製))を測定した。また、本発明試料1に代えて30%の1,3-ブチレングリコール溶液を用いた試料無添加(コントロール)の場合について同様の操作を行い、ここで得られた蛍光測定値に対する各試料溶液の蛍光測定値の相対値(%)を求め、タンパク質糖化率(%)とした。
図7に示す通り、本発明に係る組成物(本発明試料1)は、濃度依存的に格段にすぐれた糖化抑制効果を有することが確認された。
試験例7では、メラノサイトの刺激因子として知られるエンドセリン-1(ET-1)の受容体であるETBRの合成抑制効果を評価する。
正常ヒト表皮メラニン細胞を増殖添加剤含有DermaLife(登録商標)[クラボウ社製]にて96穴マイクロプレートに1×104個/穴播種し、37℃,5.0%CO2の条件下に1日間プレ培養した後、本発明に係る組成物(本発明試料1)を規定の濃度(溶液としての終濃度が0.3%,0.45%,0.6%,0.9%,1.2%)となるように調整した(登録商標)[クラボウ社製]を添加した。その後、培養器底面からUV-Bランプ(Philips社製TL20W/12RS)を用いて約15mJ/cm2の紫外線照射を行った。その後同条件でさらに2日間培養した。その後ETBR抗体を用いた免疫的検出を行った。すなわち、PBS(-)洗浄後、15%中性緩衝ホルマリン液を用いて細胞を30分処理して固定、0.2%Triton X-100溶液で1時間浸透処理、5倍希釈ブロッキングワンP(ナカライテスク社)溶液で2時間処理によるブロッキングを行った後、ETBR抗体を添加し、4℃で一昼夜静置した。その後PBS(-)洗浄し、蛍光ラベルした二次抗体を添加してさらに暗所で一定時間静置した。そのPBS(-)後洗浄し、蛍光強度の測定を行った。先ず二次抗体の蛍光ラベル(Alexa Fluor546)をEx=544nm、Em=590nmで測定し(蛍光マイクロプレートリーダー(フルオロスキャンアセント、Thermo Fisher Scientific社製))、その後、Hoechst33342によるDNA染色を行い、Ex=355nm、Em=460nmの測定を行った。それぞれの試験区のAlexa Fluor546の蛍光強度をHoechst33342の蛍光強度で割ることで、ETBRの生成度合いを求めた。試料溶液に代えてPBS(-)を添加した試料無添加の場合(対照)についても上記と同様の操作を行い、紫外線照射した区のETBR生成度合いに対する各試料添加時のETBR生成度合いの相対値を求め、ETBR生成量(%)とした。
試験例8では、メラノサイト刺激ホルモンであるαMSHの受容体MC1Rの合成抑制効果を評価した。
正常ヒト表皮メラニン細胞を増殖添加剤含有DermaLife(登録商標)[クラボウ社製]にて96穴マイクロプレートに1×104個/穴播種し、37℃,5.0%CO2の条件下に1日間プレ培養した後、試料溶液を規定の濃度(溶液として)となるように調整したDermaLife(登録商標)[クラボウ社製]を添加した。その後、培養器底面からUV-Bランプ(Philips社製TL20W/12RS)を用いて約15mJ/cm2の紫外線照射を行った。その後同条件でさらに2日間培養した。その後MC1R抗体を用いた免疫的検出を行った。すなわち、PBS(-)洗浄後、15%中性緩衝ホルマリン液を用いて細胞を30分処理して固定、0.2%Triton X-100溶液で1時間浸透処理、5倍希釈ブロッキングワンP(ナカライテスク社)溶液で2時間処理によるブロッキングを行った後、MC1R抗体を添加し、4℃で一昼夜静置した。その後PBS(-)洗浄し、蛍光ラベルした二次抗体を添加してさらに暗所で一定時間静置した。そのPBS(-)後洗浄し、蛍光強度の測定を行った。先ず二次抗体の蛍光ラベル(Alexa Fluor546)をEx=544nm、Em=590nmで測定し(蛍光マイクロプレートリーダー(フルオロスキャンアセント、Thermo Fisher Scientific社製))、その後、Hoechst33342によるDNA染色を行い、Ex=355nm、Em=460nmの測定を行った。それぞれの試験区のAlexa Fluor546の蛍光強度をHoechst33342の蛍光強度で割ることで、MC1Rの生成度合いを求めた。試料溶液に代えてPBS(-)を添加した試料無添加の場合(対照)についても上記と同様の操作を行い、紫外線照射した区のMC1R生成度合いに対する各試料添加時のMC1R生成度合いの相対値を求め、MC1R生成量(%)とした。
[成分] 部
ホホバ油 1.0
ポリオキシエチレン(5.5)セチルアルコール 5.0
メチルパラベン 0.1
製造例1の酵母培養物抽出物 1.0
製造例5の発酵物 1・0
製造例6の発酵物 1・0
グリセリン 5.0
1,3-ブチレングリコール 5.0
クエン酸ナトリウム 0.2
精製水 全量が100部となる量
処方例1に含まれる製造例1の酵母培養物抽出物に代えて、製造例2の酵母培養物抽出物1.0部を用いるほかは、処方例1と同様にして化粧水を得た。
処方例1に含まれる製造例1の酵母培養物抽出物に代えて、製造例3の酵母培養物抽出物2.0部を用いるほかは、処方例1と同様にして化粧水を得た。
[成分] 部
スクワラン 5.0
ヘキサラン 3.0
ホホバ油 1.0
ツバキ油 1.5
ポリオキシエチレン(20)ソルビタンモノステアレート 1.0
親油型ステアリン酸グリセリル 1.0
水添大豆レシチン 1.5
製造例1の酵母培養物抽出物 0.5
製造例5の発酵物 0.5
製造例6の発酵物 0.5
グリセリン 3.0
1,3-ブチレングリコール 2.0
カルボキシメチルセルロース 0.3
キサンタンガム 0.2
ヒアルロン酸ナトリウム 0.01
精製水 全量が100部となる量
[成分] 部
オリーブ油 5.0
ホホバ油 5.0
スクワラン 5.0
ベヘニルアルコール 2.0
パルミチン酸 2.5
製造例2の酵母培養物抽出物粉末 0.5
製造例5の発酵物 0.5
製造例6の発酵物 0.5
乳酸菌発酵米 2.0
水素添加レシチン 0.5
カルボキシビニルポリマー 0.3
アルギン酸ナトリウム 0.2
海藻抽出物 2.0
メチルパラベン 0.15
エチルパラベン 0.03
精製水 全量が100部となる量
[成分] 部
ステアリン酸 2.4
モノステアリン酸プロピレングリコール 2.0
セトステアリルアルコール 0.2
液状ラノリン 2.0
流動パラフィン 3.0
ミリスチン酸イソプロピル 8.5
プロピルパラベン 0.05
製造例3の酵母培養物抽出物粉末 0.5
製造例5の発酵物 0.5
製造例6の発酵物 0.5
カルボキシメチルセルロースナトリウム 0.2
ベントナイト 0.5
プロピレングリコール 4.0
トリエタノールアミン 1.1
メチルパラベン 0.1
酸化チタン 8.0
タルク 4.0
着色顔料 適量
精製水 全量が100部となる量
[成分] 部
N-ラウロイルメチルアラニンナトリウム 25.0
ヤシ油脂肪酸カリウム液(40%) 26.0
ヤシ油脂肪酸ジエタノールアミド 3.0
メチルパラベン 0.1
製造例1の酵母培養物抽出物粉末 0.5
製造例5の発酵物 0.5
製造例6の発酵物 0.5
1,3-ブチレングリコール 2.0
精製水 全量が100部となる量
[成分] 部
N-ヤシ油脂肪酸メチルタウリンナトリウム 10.0
ポリオキシエチレン(3)アルキルエーテル硫酸ナトリウム 20.0
ラウリルジメチルアミノ酢酸ベタイン 10.0
ヤシ油脂肪酸ジエタノールアミド 4.0
メチルパラベン 0.1
クエン酸 0.1
製造例1の酵母培養物抽出物粉末 0.5
製造例5の発酵物 0.5
製造例6の発酵物 0.5
1,3-ブチレングリコール 2.0
精製水 全量が100部となる量
[成分] 部
ポリオキシエチレン(10)硬化ヒマシ油 1.0
塩化ジステアリルジメチルアンモニウム 1.5
塩化ステアリルトリメチルアンモニウム 2.0
2-エチルヘキサン酸グリセリル 1.0
セタノール 3.0
ステアリルアルコール 1.0
メチルパラベン 0.1
製造例4の酵母培養物抽出物粉末 0.5
製造例5の発酵物 0.5
製造例6の発酵物 0.5
1,3-ブチレングリコール 5.0
精製水 全量が100部となる量
不織布に下記の成分を含浸させてシートマスクを得る。
[成分] 部
グリセリン 3.0
1、3-ブチレングリコール 2.0
メチルパラベン 0.2
クエン酸 0.1
クエン酸ナトリウム 0.3
キサンタンガム 1.0
水溶性コラーゲン 1.0
ヒアルロン酸ナトリウム 1.0
製造例1の酵母培養物抽出物 0.5
製造例5の発酵物 0.5
製造例6の発酵物 0.5
精製水 全量が100部となる量
Claims (1)
- ササユリ由来酵母の培養物抽出物或いはその濃縮物又は乾燥粉末と、ハス科ハス属に属するハスの種子の乳酸菌発酵物と、ユリ科ワスレグサ属のホンカンゾウ及び/又はヤブカンゾウの花部の酵母発酵物を有効成分とする皮膚外用剤。
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