JP7393451B2 - 細胞内生体発光共鳴エネルギ移動を用いた生物活性剤による細胞ターゲット結合の認知 - Google Patents

Description

関連出願の相互参照
本出願は、２０１２年１２月１２日に出願の米国仮特許出願６１／７３６，４２９号、２０１３年３月１５日に出願の米国仮特許出願第６１／７９４，４６１号及び２０１３年９月１９日に出願の米国仮特許出願第６１／８８０，０４８号の優先権を主張するものであり、これらそれぞれの全体は、参照事項としてここに包含される。
技術分野

本発明は、生物活性剤の細胞ターゲットとの細胞内結合の検出及び分析のための組成物及び方法を提供する。特に、蛍光体、生物発光リポータと融合される細胞ターゲット、又は生物発光リポータの部分、成分又はサブユニットに結合される生物活性剤と、細胞ターゲットと生物活性剤との相互作用を検出及び解析する方法が、ここに提供される。

細胞ターゲットによる分子種の相互作用は、細胞生理の理解と、新しい合成薬及び生物薬剤等の治療的介入の開発とに対して、きわめて重要である。特に、上記の相互作用が表現型の応答を媒介する生体細胞内において、ターゲットの関わりを正確かつ効率的に決定するための方法が、必要である。ターゲットの関わりを効率よく調べる能力は、処理のスクリーニングから始まり、薬物リードにヒットするスクリーニングの最適化、並びに治療関連した細胞ターゲットの発見及びキャラクタリゼーションまで網羅する発見プロセスに対して、幅広い影響を及ぼす。

小分子ライブラリによる表現型のベースのスクリーニングは、薬剤を発見する分野において重要な役割を演じている。このスクリーニングのアプローチを用いて、根底となっている細胞ターゲットの事前知識無しに、例えば病徴の緩和等、表現型の応答を引き出す能力に対して、化合物ライブラリをスクリーニングする。細胞生理を調整することが可能な、例えば小分子等の、生物活性剤を確認するため、このアプローチを用いることができるが、これらの小分子ヒットの生物学的関連性ターゲットを決定することは、大きな技術的な挑戦である。加えて、望ましい表現型の応答を促進する小分子は、オフターゲット相互作用により、生体内での負担をもたらし得る。薬剤選択性を予測し、かつ、潜在的副作用を最小にするためには、オフターゲット相互作用（例えば親和性の低下）を確認することも重要である。今日、生物活性剤のターゲットの特定に用いられる方法の大部分は、選択的部分（例えば、生物活性剤又は関連した化合物）及び選別部分（例えば、親和性タグ又は固体担体）を有する「二官能化」化合物を用いた複合細胞ライセートからのこれらのターゲットの濃縮に頼っている。この濃縮は、これらの化合物のターゲットに対する固有の親和性が不十分であるという化合物の結合特性に基づいているため、共有結合してターゲット（例えば、光クロスリンク）と結合するように、化合物類似体が設計されている。いずれのアプローチによっても、ターゲット分離の有効性及び特異性は重要であり、これらの方法の失敗率は高い。これらのアプローチの失敗は、ターゲットの捕捉が不十分なこと、又は非特異的捕捉のためにバックグラウンドが高いことが原因であり得る。この失敗への寄与因子としては、検出困難なこれらの相対的な弱い相互作用で、低～中程度の親和性により、複数のターゲットを結合している化合物と、検出された相互作用を特徴づけるための、着実で、直接的で、不偏の技術の不足と、相互作用が左右され得る本来の細胞環境内で、ターゲット分離を実行することができないことと、細胞内ターゲットの結合潜在能について、限られた情報しか提供されないことと、固体担体又は官能化小分子へ非特異的に結合することによる偽陽性相互作用の高いバックグラウンドと、が挙げられる。

ある実施形態では、本発明は、（ａ）発色団（例えば蛍光体）に結合される生物活性剤と、（ｂ）生物発光リポータに融合される細胞ターゲットと、（ｃ）生物発光リポータのための基質と、を含むＢＲＥＴアッセイシステムを提供する。ある実施形態では、生物活性剤は、小分子である。ある実施形態では、生物活性剤は、タンパク機能、例えば、酵素阻害剤又はレセプタ阻害剤、の阻害剤である。ある実施形態では、発色団は蛍光体である。ある実施形態では、蛍光体はカルボキシローダミン類似体である。ある実施形態では、生物発光リポータは、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ．１との配列同一性が、少なくとも７０ ％（例えば、７５ ％の同一性．．．８０ ％の同一性．．．８５ ％の同一性．．．９０ ％の同一性、９５ ％の同一性．．．９８ ％の同一性．．．９９ ％の同一性）のポリペプチドを含む。ある実施形態では、（ｂ）は、生物発光リポータの、部分、又はサブユニット、又は成分に融合される細胞ターゲットである。ある実施形態では、（ｂ）は、発光を生じるために他のポリペプチドと相互作用を必要とするポリペプチドに融合される細胞ターゲットである。ある実施形態では、（ａ）及び（ｂ）は、細胞中に存在する。ある実施形態では、（ｂ）は、例えば細胞ターゲット等、着目のタンパクとの融合タンパクとして、細胞内に表現される。ある実施形態では、例えば細胞ターゲットがタンパク錯体である等、細胞ターゲットは、２つ以上の成分、サブユニット又はポリペプチドから成る。ある実施形態では、例えば生物発光リポータはタンパク錯体である等、生物発光リポータは、２つ以上の成分、サブユニット又はポリペプチドから成る。ある実施形態では、（ａ）は細胞外で加えられ、細胞に進入する。ある実施形態では、（ａ）は、細胞内及び細胞を囲む培地の両方に存在する。ある実施形態では、（ａ）は、細胞に結合されて存在し、及び、細胞を囲む培地中に存在する。ある実施形態では、周囲培地の中に存在する（ａ）の量は、細胞中の量又は細胞に結合される量よりも非常に多く、例えば、少なくとも２倍多く、少なくとも５倍、１０倍、３０倍又は１００倍多い。ある実施形態では、細胞ターゲットは、生物活性剤の結合のパートナーである。ある実施形態では、生物発光リポータの発光スペクトルは、蛍光体の吸収スペクトルと重なる。ある実施形態では、生物活性剤の細胞ターゲットとの結合において、生物発光リポータによる基質の反応生成物への転換により、ＢＲＥＴによる蛍光体の励起及び蛍光体からの発光が、生じる。ある実施形態では、（ａ）は、発色団に結合される薬剤又は化合物のライブラリの１つである。ある実施形態では、（ａ）は、蛍光体に結合される薬剤又は化合物のライブラリの１つである。ある実施形態では、（ｂ）は、生物発光リポータに融合される複数の潜在的な細胞ターゲットの１つである。ある実施形態では、（ｂ）は、生物発光リポータに融合される複数の潜在的な細胞ターゲットの１つを表現する細胞のライブラリである。

ある実施形態では、本発明は、生物活性剤の細胞ターゲットへの結合を、検出し、分析し、特徴づける等の方法を提供する。ある実施形態では、細胞ターゲットは、主薬剤ターゲットであってもよい。ある実施形態では、細胞ターゲットは、生体内で好ましくない副作用を引き起こし得るオフターゲットの負担である。ある実施形態では、生物活性剤による細胞ターゲットへの結合は、識別可能な生体影響を有しなくてもよい。ある実施形態では、本発明は、（ａ）発色団（例えば、蛍光体）に結合される生物活性剤と、（ｂ）生物発光リポータに融合される細胞ターゲットと、（ｃ）生物発光リポータのための基質との１つ以上（例えばこれらそれぞれ）を含む細胞を提供する。ある実施形態では、生物活性剤の細胞ターゲットへの結合は、非共有結合である。ある実施形態では、発色団は蛍光体である。ある実施形態では、本発明は、（ａ）前記細胞ターゲットの、第１の波長（例えば、波長、分光分布等の範囲）でエネルギを発する生物発光リポータとの融合を、細胞内に発現させることと、（ｂ）蛍光体に結合した前記生物活性剤を、前記細胞に接触させることと、ここで、前記蛍光体は前記第１の波長でエネルギを受け取り、かつ、第２の波長（例えば、波長、分光分布などの範囲）でエネルギを発し、（c）前記生物発光リポータのための基質を前記細胞に接触させることと、（ｄ）前記第２の波長でエネルギを検出することと、ここで、前記第２の波長での前記エネルギの存在は、前記細胞ターゲットで前記生物活性剤の相互作用を示し、を含む、生物活性剤と細胞ターゲットとの間の相互作用を検出するための方法を提供する。

ある実施形態では、本発明は、（ａ）前記細胞ターゲットと生物発光リポータとの融合体を提供することと、（ｂ）前記融合体を、発色団（例えば、蛍光体）に結合される前記生物活性剤に、接触させることと、（ｃ）前記融合体を、前記リポータのための基質と接触させることと、（ｄ）前記発色団無しに前記基質と接触された前記融合体と比較した、放射光線の分光分布の変化を検出することと、を含む、生物活性剤と細胞ターゲットとの間の相互作用を検出するための方法を提供する。ある実施形態では、本発明は、（ａ）前記細胞ターゲットと生物発光リポータとの融合体を提供することと、（ｂ）前記融合体を、発色団（例えば、蛍光体）に結合した第１の生物活性剤と、前記第２の生物活性剤と、の両方に、接触させることと、（ｃ）前記融合体を、前記リポータのための基質に接触させることと、（ｄ）前記第２の生物活性剤無しに前記第１の生物活性剤及び前記基質に接触された前記融合体と比較した、放射光線の分光分布の変化を検出することを含む、第２の生物活性剤と細胞ターゲットとの相互作用を検出するための方法を提供する。ある実施形態では、放射光線の分光分布の変化は、前記第２の生物活性剤による前記第１の生物活性剤の置換に起因する。ある実施形態では、前記置換は、競合置換である。ある実施形態では、放射光線の分光分布の変化は、細胞ターゲットと生物活性剤との結合能を評価するために用いられる。ある実施形態では、前記第２の生物活性剤は、複数の生物活性剤の１つである。ある実施形態では、放射光線の分光分布の変化は、複数の生物活性剤の細胞ターゲットへの相対的な結合能を評価するために用いられる。ある実施形態では、前記第１及び前記第２の生物活性剤は、合成分子である。ある実施形態では、前記細胞ターゲットは、生体細胞、透過処理された細胞又は細胞ライセートである。ある実施形態では、放射光線の分光分布の変化は、２つの異なる波長又は２つの異なる波長範囲での光強度の比率を計測することで測定される。ある実施形態では、分光分布の変化は、経時的に検出される。ある実施形態では、発色団は蛍光体である。

ある実施形態では、本発明は、（ａ）蛍光体に結合される生物活性剤と、（ｂ）生物発光リポータの構造上補完的なペプチドに融合される第１の相互作用パートナーと、（ｃ）生物発光リポータの構造上補完的なポリペプチドに融合される第２の相互作用パートナーと、（ｄ）生物発光リポータのための基質と、を含み、第１及び第２の相互作用パートナーは相互作用して、相互作用錯体を形成し、第１の相互作用パートナー、第２の相互作用パートナー及び／又は相互作用錯体は、生物活性剤のための結合パートナーであるＢＲＥＴアッセイシステムを提供する。ある実施形態では、第１の相互作用パートナー及び第２の相互作用パートナーは、タンパク錯体を形成するために相互作用するタンパク又はポリペプチドである。ある実施形態では、第１の相互作用パートナー及び第２の相互作用パートナーは、構造上補完的なポリペプチドの相互作用によって接合される。ある実施形態では、構造上補完的なポリペプチド同士は、第１の相互作用パートナー及び第２の相互作用パートナーの相互作用によって接合される。ある実施形態では、第１の相互作用パートナー及び第２の相互作用パートナーの相互作用は、発光量の増加により測定される。ある実施形態では、第１及び第２の相互作用パートナーは、生物活性剤の存在下又は不存在下で、相互作用錯体を形成する。ある実施形態では、相互作用錯体は、生物活性剤のための結合パートナーであるが、第１又は第２の相互作用パートナー単独ではいずれも、生物活性剤のための結合パートナーとはならない。ある実施形態では、相互作用パートナーの一方は、生物活性剤のための結合パートナーであるが、他方はそうではない。ある実施形態では、相互作用錯体の生成は、生物活性剤の相互作用パートナーへの結合を必要とする。ある実施形態では、相互作用錯体生成は、生物活性剤の結合から独立してなされる。ある実施形態では、本発明は、（ａ）蛍光体に結合される生物活性剤と、（ｂ）生物発光リポータの構造上補完的なペプチドに融合される細胞ターゲットと、（ｃ）生物発光リポータの構造上補完的なポリペプチドと、（ｄ）生物発光リポータのための基質と、を含むＢＲＥＴアッセイシステムを提供する。ある実施形態では、生物発光リポータの補完的なペプチド及びポリペプチドは、協働して、活性生物発光リポータ酵素を生成する。ある実施形態では、補完的なペプチド並びにポリペプチドの細胞ターゲット及び対合に、生物活性剤を結合すれば、生物発光リポータ酵素により基質が反応生成物に転換し、これにより、ＢＲＥＴによる蛍光体の励起及び蛍光体から蛍光発光が生じる。

ある実施形態では、本発明は、（ａ）蛍光体に結合される生物活性剤と、（ｂ）生物発光リポータの補完的なペプチドに融合される第１の結合パートナーと、（ｃ）生物発光リポータの補完的なポリペプチドに融合される第２の結合パートナーと、（ｃ）生物発光リポータのための基質と、を含むアッセイシステムが提供される。ある実施形態では、生物発光リポータの補完的なペプチド及びポリペプチドは、協働して、活性生物発光リポータ酵素を生成する。ある実施形態では、第１及び第２の結合パートナーが相互作用すれば、生物活性剤は、相互作用のパートナーと結合して、補完的なペプチド及びポリペプチドの対合が発生し、生物発光リポータ酵素により、基質が反応生成物に転換して、その結果、ＢＲＥＴによる蛍光体の励起及び蛍光体からの蛍光発光が生じる。

ある実施形態では、生物活性剤は、蛍光又は発光クエンチャ（例えば、Ｄａｂｃｙｌ）に結合される。この実施形態では、結合していない生物活性剤の滴定は、シグナルにゲインを生じさせる。

ある実施形態では、本発明は、ここに記載されるシステムのいずれか（例えば、ＢＲＥＴイメージング、電荷結合素子カメラによる等）のイメージングを提供することにより、蛍光の位置（例えば、細胞内、細胞外の、その他）及び／又はシステムの成分（例えば、生物活性剤、細胞ターゲット等）の存在並びに／若しくは相互作用から生じるＢＲＥＴシグナルを、確認並びに／若しくは識別する。
ある実施形態では、ここに記載されるシステム及び方法（典型的な実施形態については実施例２３参照）は、細胞内選択性及び推定上の細胞ターゲットのパネルに対する生物活性剤の親和性の測定のために有用である。ある実施形態では、ＢＲＥＴに対する効果は、生物活性剤としてモニターされ／細胞ターゲット錯体は、競合的に阻害される。ある実施形態では、親和性は、競合破壊を介して発生するＩＣ５０値によって推量される。ある実施形態では、阻害剤の、細胞ターゲットの個々の領域への親和性は、生物発光リポータの遺伝子を細胞ターゲットの分別された領域に融合させることを介して、決定される。

図１は、本発明の実施形態の略図を示す。（Ａ）蛍光体が結合した生物活性剤及び生物発光リポータが結合された細胞ターゲット。（Ｂ）生物活性剤の細胞ターゲットへの結合。（Ｃ）リポータ基質を添加してＢＲＥＴを行う。（Ｄ）過剰な未結合生物活性剤による置換は、結果としてＢＲＥＴ及び蛍光の損失になる。 図２は、生体細胞中のＮＡＮＯＬＵＣ－ＨＤＡＣ６融合に対するＢＲＥＴアクセプタとして、２つの異なる蛍光体－ＳＡＨＡ誘導体のＢＲＥＴプロファイルを比較するグラフを示す。 図２は、生体細胞中のＮＡＮＯＬＵＣ－ＨＤＡＣ６融合に対するＢＲＥＴアクセプタとして、２つの異なる蛍光体－ＳＡＨＡ誘導体のＢＲＥＴプロファイルを比較するグラフを示す。 図３は、アッセイパフォーマンスにおける発現の希釈の効果を表すグラフを示す。第１のグラフは、ＮＡＮＯＬＵＣ融合ＨＤＡＣ６から蛍光体を結合されたＳＡＨＡの競合置換を用いて、ＢＲＥＴアッセイウインドウ上の発現の低下の効果を実証する。第２のグラフは、ＢＲＥＴアッセイウインドウ上の発現の低下の効果とともに、ＮａｎｏＬｕｃ－ヒスタミンＨＩレセプタへの薬剤トレーサ結合に対して観察された化合物潜在能（ＥＣ５０）を示す。 図３は、アッセイパフォーマンスにおける発現の希釈の効果を表すグラフを示す。第１のグラフは、ＮＡＮＯＬＵＣ融合ＨＤＡＣ６から蛍光体を結合されたＳＡＨＡの競合置換を用いて、ＢＲＥＴアッセイウインドウ上の発現の低下の効果を実証する。第２のグラフは、ＢＲＥＴアッセイウインドウ上の発現の低下の効果とともに、ＮａｎｏＬｕｃ－ヒスタミンＨＩレセプタへの薬剤トレーサ結合に対して観察された化合物潜在能（ＥＣ５０）を示す。 図４は、プロドラッグ処理のための細胞環境の必要条件を実証するグラフを示す。 図５は、不浸透性の薬剤トレーサのエントリを強化する透過化処理薬剤の使用の能力を実証するグラフを示す。 図５は、不浸透性の薬剤トレーサのエントリを強化する透過化処理薬剤の使用の能力を実証するグラフを示す。 図６は、ＮＡＮＯＬＵＣ融合ｐ３８からの蛍光体結合ＢＩＲＢ－誘導体の競合置換を表しているグラフを示す。 図７は、ＮＡＮＯＬＵＣ融合ｐ３８からの蛍光体結合ＢＩＲＢ誘導体の反応速度の測定を表しているグラフを示す。 図８は、典型的な蛍光体結合生物活性剤及びここに記載される実施形態において使用される他の化合物を示す。 図８は、典型的な蛍光体結合生物活性剤及びここに記載される実施形態において使用される他の化合物を示す。 図９は、ここに記載される実施形態におけるレニラルシフェラーゼ及びＮａｎｏＬｕｃルシフェラーゼとのｐ３８融合の比較を示す。 図９は、ここに記載される実施形態におけるレニラルシフェラーゼ及びＮａｎｏＬｕｃルシフェラーゼとのｐ３８融合の比較を示す。 図１０は、ＮＡＮＯＬＵＣ融合の発現が内因性のレベルに近ければ、薬剤トレーサとの高親和性相互作用が、最適なＳ／Ｂ比で実現されることを示す。 図１０は、ＮＡＮＯＬＵＣ融合の発現が内因性のレベルに近ければ、薬剤トレーサとの高親和性相互作用が、最適なＳ／Ｂ比で実現されることを示す。 図１１は、ＢＩＲＢ－ＴＯＭ接合体へ結合するＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８ａｌｐｈａの、ＢＩＲＢ－ＴＭＲ接合体と比較したドーズ応答曲線を示す。 図１２は、ＢＩＭ－ＴＯＭ接合体に結合するＰＫＣアルファ－ＮａｎｏＬｕｃの、ＢＩＭ－ＴＭＲ接合体と比較したドーズ応答曲線を示す。 図１３は、生体細胞中の具体的なＢＲＥＴ応答の検出を表すグラフを示す。 図１４は、Ｊｎｋ２、ｐ３８ベータ及びｐ３８アルファに対するＰＢＩ－４８３８の親和性を示す。 図１４は、Ｊｎｋ２、ｐ３８ベータ及びｐ３８アルファに対するＰＢＩ－４８３８の親和性を示す。 図１４は、Ｊｎｋ２、ｐ３８ベータ及びｐ３８アルファに対するＰＢＩ－４８３８の親和性を示す。 図１５は、Ｊｎｋ２、ｐ３８ベータ及びｐ３８アルファに対するＰＢＩ－４８３８の親和性を示す。 図１５は、Ｊｎｋ２、ｐ３８ベータ及びｐ３８アルファに対するＰＢＩ－４８３８の親和性を示す。 図１５は、Ｊｎｋ２、ｐ３８ベータ及びｐ３８アルファに対するＰＢＩ－４８３８の親和性を示す。 図１６は、野生型ＢＲＤ４対変異体ＢＲＤ４に対するＰＢＩ－４９６６の相対親和性を示す。 図１６は、野生型ＢＲＤ４対変異体ＢＲＤ４に対するＰＢＩ－４９６６の相対親和性を示す。 図１７は、本発明の方法を用いた薬剤トレーサの競合置換により、構造的に異なる化合物を特定することができることを示す。 図１７は、本発明の方法を用いた薬剤トレーサの競合置換により、構造的に異なる化合物を特定することができることを示す。 図１７は、本発明の方法を用いた薬剤トレーサの競合置換により、構造的に異なる化合物を特定することができることを示す。 図１８は、細胞内で蛍光体薬剤接合体を用いて薬剤／ターゲット相互作用をモニターする能力を示す。 図１９は、ＴＮＴにおける具体的なＢＲＥＴ応答を表するグラフを示す。 図２０は、ＮａｎｏＬｕｃ－ＥＧＦＲへの蛍光ラベルサイトカインの結合の測定を表するグラフを示す。治療用抗体、ベクティビックス、アービタックス及びハーセプチンの親和性は、サイトカインの競合置換によっても実証される。 図２０は、ＮａｎｏＬｕｃ－ＥＧＦＲへの蛍光ラベルサイトカインの結合の測定を表するグラフを示す。治療用抗体、ベクティビックス、アービタックス及びハーセプチンの親和性は、サイトカインの競合置換によっても実証される。 図２１は、補完的なペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４）単独で補完され、又はＴＭＲに接合される補完的なペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４）で補完される、補完的なポリペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）に対する、波長スキャンを含むものであり、効率的なエネルギ移動を実証する。 図２１は、補完的なペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４）単独で補完され、又はＴＭＲに接合される補完的なペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：４）で補完される、補完的なポリペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：５）に対する、波長スキャンを含むものであり、効率的なエネルギ移動を実証する。 図２２は、ＨａｌｏＴａｇ（ＮＬ－ＨＴ）に融合されるＮａｎｏＬｕｃ、及び、蛍光ノンクロロＴＯＭ（ＮＣＴ）ダイ（ＰＢＩ－５０７４）に結合される補完的なペプチドで補完される補完的なポリペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）、に対する波長スキャンを含む。 図２３は、三成分の相互作用の概略図を示し、ここでは、構造上補完的なペプチド及び生物発光タンパクのポリペプチドの錯体によるエネルギ移動を用いて、相互作用パートナーの相互作用を計測することが可能であることが示される。この概略図では、生物発光タンパクの補完的なポリペプチドに融合されるＧＰＣＲ（第１の相互作用パートナー）及び生物発光タンパクの補完的なペプチドに融合されるＧＰＣＲ相互作用タンパク（第２の相互作用パートナー）は、これらが（相互作用錯体を生成するために）相互作用する際に、生物発光錯体を生成する。これにより、二成分相互作用の測定が可能になる。エネルギ移動のための蛍光部分を支持する小分子ＧＰＣＲリガンドが、このシステムと相互作用するならば、エネルギ移動が生じる。したがって、二成分タンパク－タンパク相互作用及び三成分の薬剤－タンパク－タンパク相互作用は、同じ実験で計測することができる。 図２４は、１１Ｓペプチド及びＢＲＤ４の細胞発現融合体とＢＲＤ４リガンドに接合される外因付加ＮＣＴとの間のＢＲＥＴデータが、ＰＥＰ－８０（１１Ｓへの構造補完体）の存在に依存することを実証しているグラフを示すものであり、（Ａ）移植用提供強度、（Ｂ）アクセプタ強度である。 図２５は、１１Ｓペプチド及びＢＲＤ４の細胞発現融合体とｉＢＥＴに接合される外因付加ＮＣＴとの間のＢＲＥＴデータが、ＰＥＰ－８０（１１Ｓへの構造補完体）の存在に依存することを実証しているグラフを示すものであり、（Ａ）ＩμＭＰＥＰ－８０、（Ｂ）ＰＥＰ－８０対照が無い場合である。 図２６は、ＢＲＥＴシグナル（アクセプタ及びドナー強度）が、促進性１１Ｓ－ＢＲＤ４／１１４－ヒストンＨ３．３錯体に依存することを示す。 図２７は、蛍光ＢＲＤ４リガンド（ｉＢＥＴ－ＮＣＴ／ＰＢＩ－４９６６）が、１１Ｓ－ＢＲＤ４／１１４－ヒストンＨ３．３錯体を置換することができることを示す。 図２７は、蛍光ＢＲＤ４リガンド（ｉＢＥＴ－ＮＣＴ／ＰＢＩ－４９６６）が、１１Ｓ－ＢＲＤ４／１１４－ヒストンＨ３．３錯体を置換することができることを示す。 図２８は、１１Ｓ－ＢＲＤ４／１１４－ヒストンＨ３．３錯体の非蛍光性ｉＢＥＴ－１５１ＩＣ５０競合置換を示す。 図２９は、クラスＩ ＨＤＡＣｓ（ＨＤＡＣ１、２、３及び８）が、ＳＡＨＡのこれらの個々のターゲットに対する親和性及び選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭを伴う具体的なＢＲＥＴシグナルを発生することを示す。 図２９は、クラスＩ ＨＤＡＣｓ（ＨＤＡＣ１、２、３及び８）が、ＳＡＨＡのこれらの個々のターゲットに対する親和性及び選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭを伴う具体的なＢＲＥＴシグナルを発生することを示す。 図３０は、クラスＩＩｂ ＨＤＡＣｓ（ＨＤＡＣ６及び１０）は、ＨＤＡＣ６の分別された領域と同様に、ＳＡＨＡのこれらの個々のターゲットに対する親和性及び選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭによる具体的なＢＲＥＴが発生することを示す。 図３０は、クラスＩＩｂ ＨＤＡＣｓ（ＨＤＡＣ６及び１０）は、ＨＤＡＣ６の分別された領域と同様に、ＳＡＨＡのこれらの個々のターゲットに対する親和性及び選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭによる具体的なＢＲＥＴが発生することを示す。 図３１は、クラスＩＩａ ＨＤＡＣｓは、ＳＡＨＡのクラスＩ及びＩＩｂ ＨＤＡＣｓに対する選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭを伴う大きなＢＲＥＴを発生しないことを示す。 図３１は、クラスＩＩａ ＨＤＡＣｓは、ＳＡＨＡのクラスＩ及びＩＩｂ ＨＤＡＣｓに対する選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭを伴う大きなＢＲＥＴを発生しないことを示す。 図３１は、クラスＩＩａ ＨＤＡＣｓは、ＳＡＨＡのクラスＩ及びＩＩｂ ＨＤＡＣｓに対する選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭを伴う大きなＢＲＥＴを発生しないことを示す。 図３１は、クラスＩＩａ ＨＤＡＣｓは、ＳＡＨＡのクラスＩ及びＩＩｂ ＨＤＡＣｓに対する選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭを伴う大きなＢＲＥＴを発生しないことを示す。 図３１は、クラスＩＩａ ＨＤＡＣｓは、ＳＡＨＡのクラスＩ及びＩＩｂ ＨＤＡＣｓに対する選択性の報告に基づき予測される通りに、ＳＡＨＡ－ＴＯＭを伴う大きなＢＲＥＴを発生しないことを示す。 図３２は、ＢＲＥＴを介して決定される、ＳＡＨＡ－ ＴＯＭと錯体化される個々のＨＤＡＣ－ ＮａｎｏＬｕｃ融合体に対するＳＡＨＡの競合置換の結果を示す。これらの濃度反応曲線から、グラフの隣の表に示すようにＩＣ－５０値は算出可能である。 図３３（左）は、ＢＲＥＴを介して決定される、個々のＨＤＡＣ－ＮａｎｏＬｕｃ融合体に対するＩＣ－５０値とＫｉ値の間の変換を示す。Ｃｈｅｎｇ－Ｐｒｕｓｏｆｆ方程式は、この変換に用いられた。図３３（右）は、ＢＲＥＴを介して決定される、個々のＨＤＡＣ／ＮａｎｏＬｕｃ融合タンパクに対するＳＡＨＡの相対親和性を表している図を示す。 図３４は、特異性対照として、ＳＡＨＡの存在下又は不存在下における、細胞内ＨＤＡＣ１０－ＮＬｕｃ／ＰＢＩ－４９６８＋／－ＳＡＨＡ錯体のＢＲＥＴイメージングを示す。 図３５は、特異性対照として、ＳＡＨＡの存在下又は不存在下における、細胞内ＮＬｕｃ－ＨＤＡＣ６／ＰＢＩ－４９６８＋／－ＳＡＨＡ錯体のＢＲＥＴイメージングを示す。 図３６は、ＳＡＨＡ結合細胞内ＳＡＨＡ－ＴＯＭ（ＰＢＩ－４９６８）のＨＤＡＣ１０及びＨＤＡＣ６によるＢＲＥＴイメージング試験のドットプロット分析を示す。

本発明は、生物活性剤の細胞ターゲットへの細胞内結合の検出及び分析のための組成物及び方法を提供する。特に、蛍光体等の発色団に結合される生物活性剤、生物発光リポータタンパクに融合される潜在的な細胞ターゲット、及び、それらを有する細胞ターゲットと生物活性剤との相互作用（図１参照）を検出及び分析する方法が、ここに提供される。

第１の実体（例えば生物活性剤）と、第２の実体（例えば細胞ターゲット）との相互作用は、第１の実体に接続され、融合され、結合され、リンク等される第３の実体（例えば蛍光体）と、第２の実体に接続され、融合され、結合され、リンク等される第４の実体（例えば生物発光リポータタンパク）との間の、シグナル伝達（例えば、エネルギ伝達（例えば、蛍光、光エネルギ、共鳴、ＢＲＥＴによる等））によって生じるシグナルの検出／測定を通して、検出、特徴づけ、定量、分析等される。第１及び第２の実体の相互作用及び／又は結合は、第３及び第４の実体を、十分な程に近接させることにより、一方から他方へのシグナル伝達（例えば、エネルギ移動）を可能にする。ある実施形態では、第４の実体（例えば生物発光リポータタンパク）は、エネルギ（例えばその基質との相互作用に）を発し、発されたエネルギは、第３の実体（例えば、蛍光体）によって吸収されることにより、第３の実体が、第４の実体とははっきりと異なるエネルギ（例えば波長の異なる光）を発するようになる。この実施形態では、第４の実体の基質（例えば生物発光リポータ）のシステムへの添加に際して、第３の実体から発されるエネルギ（例えば第３の実体の放出最大光）の検出は、第１及び第２の実体の相互作用を示す。ある実施形態では、第４の実体（例えば、生物発光リポータタンパク）のシグナル出力の様々な状況下での測定に基づき、第１及び第２の実体の結合の所要時間、反応速度、親和性、強度及び／又は特異性が検出、計測、定量、決定、取調べ等される。

個別の実施形態では、生物発光リポータタンパクに融合される細胞ターゲット及び例えば蛍光体等の発色団に結合される生物活性剤が、提供される（例えば、細胞内、細胞外、ライセート内及び生体外等）。生物発光リポータタンパクの基質が、システムに加えられる。生物活性剤と細胞ターゲットとの間で相互作用（例えば結合）が発生したならば、生物発光リポータタンパク及び発色団（例えば蛍光体）は、ＢＲＥＴが発生するために十分な程に近接され、発色団（例えば、蛍光体）から検出可能なシグナルが発される。

ある実施形態では、相互作用（例えば錯体を生成する）して生物発光リポータタンパク（又はタンパク錯体）を生成することができる補完的なペプチド及びポリペプチドが、用いられる。ある実施形態では、補完的なペプチドは第１の相互作用パートナーに融合され、補完的なポリペプチドは第２の相互作用パートナーに融合される。ある実施形態では、第１及び第２の相互作用パートナーは、錯体（例えば相互間の結合による）を生成する。ある実施形態では、第１及び第２の相互作用パートナーは、その一方又は両方が生物活性剤と相互作用する場合は、相互作用錯体を生成する。ある実施形態では、第１及び第２の相互作用パートナーは、生物活性剤の存在下又は不存在下で、相互作用錯体を生成する。ある実施形態では、相互作用錯体の形成が、補完的なペプチド及びポリペプチドを接合し、生物発光リポータを生成する。ある実施形態では、生物発光リポータの形成は、相互作用錯体の形成の検出を可能にする。ある実施形態では、蛍光体は、生物活性剤に結合される。ある実施形態では、相互作用錯体が生成される際に、エネルギが蛍光体から生物発光リポータへ移動し、生物活性剤が、相互作用パートナーの一方又は相互作用錯体に結合される。ある実施形態では、蛍光体は、第１及び第２の相互作用パートナーの相互作用の検出又は測定を可能にする。ある実施形態では、蛍光体は、生物活性剤のその結合パートナー（例えば、第１の相互作用パートナー、第２の相互作用パートナー及び／又は相互作用錯体）への結合の検出又は測定を可能にする。

ある実施形態では、生物発光リポータの補完的なペプチドは、着目のターゲットに融合される。生物活性剤の着目のターゲットへの相互作用を検出又は計測するため、補完的なポリペプチド及び蛍光体に結合される生物活性剤が、提供される。ある実施形態では、生物発光リポータの補完的なペプチドは、着目のターゲットに融合され、生物発光リポータタンパクの補完的なポリペプチド及び蛍光体に結合される生物活性剤は、錯体のメンバーを多成分発光ドナーの成分にリンクすることにより、蛍光標識された例えば生物活性剤等のリガンドのタンパク錯体への近接度を検出する（例えばヘテロダイマー又はホモダイマーレセプタへの選択的リガンド結合を検出する）ために適用される。本出願を、このように用いて、疾患病理学における役割を有し得るタンパク錯体内で、ターゲットの関わりをモニターすることができる。

ある実施形態では、細胞ターゲット及び生物発光リポータ融合体は、アッセイを実行しようとする細胞内に発現される。ある実施形態では、融合体は、細胞ターゲットに対する本来の存在率で又はその付近で、発現される。ある実施形態では、蛍光体結合生物活性剤は、細胞外で加えられ（例えば培地に加えられ）、拡散、能動輸送、受動輸送、エンドサイトーシス又はあらゆる適切なメカニズムにより細胞に進入する。ある実施形態では、様々な量の蛍光体結合生物活性剤を細胞に加えて、結合反応速度論をアッセイし、結合親和力をアッセイし、十分なシグナルを提供等する。

特定の実施形態では、本発明は、生物活性剤と細胞ターゲット（例えば既知の又は未知の）との間の細胞内相互作用の検出のための、組成物、方法及びシステムを提供する。ある実施形態では、生物発光リポータ及び細胞ターゲットの融合体が、細胞内に発現される。生物活性剤は、蛍光体に結合され、細胞に導入される（例えば、蛍光体と生物活性剤との接合体は、細胞透過性である、細胞は透過処理される、等。）。生物発光リポータタンパクの基質は、生物活性剤の添加の前に、同時に、又は後に、細胞に添加される。蛍光体からの蛍光発光（ＢＲＥＴの結果として）の検出は、生物活性剤と細胞ターゲットとの間での細胞内相互作用（例えば結合）を示す。ある実施形態では、生物発光リポータに融合される細胞ターゲットは、自然な細胞存在率で（例えば、本来の細胞ターゲットと比較して、又は融合されたターゲットの固有の生物学的機能に適切なレベルで）、発現される。ある実施形態では、生物活性剤の細胞ターゲットとの相互作用が、細胞内で検出される。

ある実施形態では、生物活性剤と細胞ターゲットとの間の相互作用の特徴が、細胞の条件又はシステムの条件を変えることによって調べられる。例えば、ある実施形態では、細胞ターゲットの競合結合剤（例えば未結合の生物活性剤）を、細胞に加えて、蛍光体結合生物活性剤と競合させる。

ある実施形態では、生体発光リポータタンパクタグが付加された細胞ターゲットのライブラリが、提供される（例えば、溶液中、ライセート中、表面に固定、細胞内に発現、等。）。ある実施形態では、既知の細胞ターゲットが無い、又は、細胞ターゲットについての知識が不確かな又は不完全である状況で、生物活性剤が提供される。生物活性剤の細胞ターゲットは、ライブラリに生物活性剤を加えて、どの細胞ターゲット融合体が、生物活性剤が結合された蛍光体のＢＲＥＴによって誘発された蛍光を生じるかを決定することにより、決定される。ある実施形態では、タンパク融合体をコード化する核酸又は核酸を含んだベクター（例えば、プラスミド、ＢａｃＭａｍウイルス、レンチウイルスなど）の収集として、生体発光リポータタグ付加細胞ターゲットのライブラリが、提供される。ある実施形態では、生物発光リポータタンパクタグ付加細胞ターゲットが、細胞内に発現される。ある実施形態では、無細胞翻訳反応中の核酸を翻訳することにより、生物発光リポータタグ付加細胞ターゲットのライブラリが、提供される。ある実施形態では、細胞ターゲット融合体又は細胞ターゲット融合体を発現している細胞のライブラリは、マイクロプレートフォーマットで提供される。この実施形態では、生物活性剤（例えば、表現型のアッセイ又はスクリーンを通して確認されるもの等）の細胞ターゲットのライブラリ全体との相互作用を、ハイスループットな方法で調べる（例えば、細胞内に、ライセート中、溶液中等。）ことができる。ある実施形態では、生物発光リポータタグ付加細胞ターゲットは、タンパク集積を形成するために、固体表面に固定される。例えば、ある実施形態では、生物発光リポータに加えて、細胞ターゲットは、タグを有する又はタンパク（例えば、ＨＡＬＯＴＡＧ、プロメガ）に結合される融合体としても発現され、これにより、タンパクが固体表面（例えば、適切なリガンド（例えば、ＨＡＬＯＴＡＧリガンド）を示す表面）に共有結合で固定できるようになる。特定の実施形態では、潜在的な生物活性剤のライブラリ（例えばヒット化合物又は薬らしい小分子）が、システム（例えば、配列）に加えられ、そして、ＢＲＥＴを生じることができるあらゆるペアが識別される。ある実施形態では、生物活性剤のライブラリの全体又は一部の細胞ターゲットは、未知である。

特定の実施形態では、ここにおける組成物、方法及びシステムは、生物活性剤とエネルギアクセプタ（例えば、蛍光体、発色団）との接合体を提供する。ある実施形態では、生物活性剤は、細胞のバイオロジーと相互作用可能な、あらゆる小分子（例えば、＞２０００ダルトン、＞１０００ダルトン、＞５００ダルトン等）、巨大分子、合成分子又は分子複合体である。ある実施形態では、エネルギアクセプタは、エネルギ吸収（例えば共鳴エネルギ移動）によって誘発される場合に、シグナル（例えば、光、熱、化学反応、蛍光、共鳴エネルギ等）を発生、提示及び／又は発することができる実体である。ある実施形態では、生物活性剤及びエネルギアクセプタ（例えば、蛍光体、発色団）は、あらゆる適切な構造体又はメカニズム（例えば、融合体構築体として（例えばペプチドリンカーの存在下又は不存在下で）表現し、化学的に（例えば、直接又は間接的に）リンクし、酵素処理でリンクし、リンカー（例えば、ペプチド、核酸、ポリマー、エステル結合、ＰＥＧリンカー、炭素鎖等）によってリンクし等）により、融合、接続、結合その他がなされる。ある実施形態では、生物活性剤とエネルギアクセプタ（例えば、蛍光体に結合される生物活性剤）との接合体が、非自然の化学合成（例えば、自然細胞中に存在しない化学反応の意図的な実行）によって生成される。リンケージのタイプは、制限的であってはならない。

ここで用いられる例では、用語「生物活性剤」は一般に、あらゆる生理的又は薬理的に活性な物質又は検出のために適切な物質のことをいう。ある実施形態では、生物活性剤は、潜在的な治療的化合物（例えば小分子、ペプチド、核酸等）又は薬らしい分子である。ある実施形態では、生物活性剤は、非自然の化学合成（例えば、自然細胞中に存在しない化学反応の意図的な実行）によって生成される。ここに記載される実施形態で用いられる生物活性剤は、サイズ又は構造により制限されない。
特定の実施形態では、生物活性剤のライブラリ（例えば、＞１０の薬剤、＞５０の薬剤、＞１００の薬剤、＞５００の薬剤、＞１０００の薬剤、＞５０００の薬剤、＞１０，０００の薬剤、＞５０，０００の薬剤等）が、提供される。ある実施形態では、生物活性剤のライブラリをスクリーニングするためのシステム、方法及び組成物が、提供される。ある実施形態では、本発明は、表現型の効果及び／又は活性を発生させ、引き起こし、誘導する等の原因となるライブラリ中の生物活性剤を識別する手段を提供する。ある実施形態では、本発明は、生物活性剤（例えば、表現型の効果や活性の原因である生物活性剤）の細胞ターゲットを識別する手段を提供する。

ここで用いられる例では、用語「エネルギアクセプタ」は、あらゆる小分子（例えば、発色団）、巨大分子（例えば、自動蛍光タンパク、フィコビリンタンパク、ナノ粒子、表面等）、又はエネルギ吸収（例えば共鳴エネルギ移動）に応じて迅速に検出可能なシグナルを生成する分子複合体のことをいう。特定の実施形態では、エネルギアクセプタは、蛍光体又はその他の検出可能な発色団である。適切な蛍光体の非限定的な例としては、キサンテン誘導体（例えば、フルオレセイン、ローダミン、オレゴングリーン、エオシン、テキサスレッド等）、シアニン誘導体（例えば、シアニン、インドカルボシアニン、オキサカルボシアニン、チアカルボシアニン、メロシアニン等）、ナフタレン誘導体（例えば、ダンシル及びプロダン誘導体）、オキサジアゾール誘導体（例えば、ピリジルオキサゾール、ニトロベンズオキサジアゾール、ベンゾオキサジアゾール等）、ピレン誘導体（例えば、カスケードブルー）、オキサジン誘導体（例えば、ナイルレッド、ナイルブルー、クレシルバイオレット、オキサジン１７０等）、アクリジン誘導体（例えば、プロフラビン、アクリジンオレンジ、アクリジンイエロー等）、アリールメチン誘導体（例えば、オーラミン、クリスタルバイオレット、マラカイトグリーン等）、テトラピロール誘導体（例えば、ポルフィン、フタロシアニン、ビリルビン等）、ＣＦ ｄｙｅ（Ｂｉｏｔｉｕｍ）、ＢＯＤＩＰＹ（インビトロゲン）、ＡＬＥＸＡ ＦＬｕｏＲ（インビトロゲン）、ＤＹＬＩＧＨＴ ＦＬＵＯＲ（サーモサイエンティフィック、Ｐｉｅｒｃｅ）、ＡＴＴＯ及びＴＲＡＣＹ（シグマアルドリッチ）、ＦｌｕｏＰｒｏｂｅｓ（Ｉｎｔｅｒｃｈｉｍ）、ＤＹ及びＭＥＧＡＳＴＯＫＥＳ（Ｄｙｏｍｉｃｓ）、ＳＵＬＦＯ ＣＹ ｄｙｅ（ＣＹＡＮＤＹＥ、ＬＬＣ）、ＳＥＴＡＵ及びＳＱＵＡＲＥ ＤＹＥＳ（ＳＥＴＡ ＢｉｏＭｅｄｉｃａｌｓ）、ＱＵＡＳＡＲ及びＣＡＬ ＦＬＵＯＲ ｄｙｅｓ（Ｂｉｏｓｅａｒｃｈ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）、ＳＵＲＥＬＩＧＨＴ ＤＹＥＳ（ＡＰＣ、ＲＰＥ、ＰｅｒＣＰ、フィコビリソーム）（Ｃｏｌｕｍｂｉａ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ）、ＡＰＣ、ＡＰＣＸＬ、ＲＰＥ、ＢＰＥ（Ｐｈｙｃｏ－Ｂｉｏｔｅｃｈ）、自動蛍光タンパク（例えば、ＹＦＰ、ＲＦＰ、ｍＣｈｅｒｒｙ、ｍＫａｔｅ）、量子ドットナノクリスタル、等が挙げられる。ある実施形態では、蛍光体は、ローダミン類似体（例えば、カルボキシローダミン類似体）であり、これは例えば米国特許出願第１３／６８２，５８９号に記載されるそれら等であり、この文献の全体は、参照事項として本願に包含される。いくつかのこういった蛍光体はここでは、実施例８に記載される。ある実施形態では、ＢＲＥＴ効率は、エネルギアクセプタとしてのローダミン類似体（例えば、カルボキシローダミン類似体）の技術的な特徴によって、他の蛍光体と比較して大きく高められる。例えば、これらのダイは、ＥＣ５０が左方にシフトし、非特異的なバックグラウンドが低いが、それは、一部の実施形態で使用するためには有利である。

ここで用いられる例では、用語「ＴＯＭ」及び「ＮｏｎＣｈｌｏｒｏＴＯＭ」（又は、「ＮＣＴ」）は、同じタイプの蛍光体のことをいい、用途を通じて互換可能に用いられる。

特定の実施形態では、組成物、方法及びシステムは、ここでは、細胞ターゲットと生物発光リポータタンパク（例えば、ルシフェラーゼ）との融合体を提供する。ある実施形態では、細胞ターゲット及び生物発光リポータタンパクは、あらゆる適切な構造体又はメカニズム（例えば、融合体構築体として発現（例えば、ペプチドリンカーの存在下又は不存在下で）され、化学的にリンク（例えば、共有結合性又は非共有結合により）され、酵素にリンクされ、リンカー（例えば、ペプチド、核酸、他のポリマー（例えば、エステル結合、ＰＥＧリンカー、炭素鎖等））によってリンクされ、等）によって、融合、結合、接続等される。ある実施形態では、アミノ酸鎖（例えば、３～１００個アミノ酸）が、細胞ターゲットと生物発光リポータタンパクとを接続するために用いられる。ある実施形態では、細胞ターゲットも生物発光リポータも、その構造及び／又は機能について、融合体又はリンカーの存在によって影響を受ける（例えば大きく影響を受ける）ことはない。特定の実施形態では、リンカーは、活性又はこれら要素の一方又は両方ともを失わずに、融合を可能にする。別の実施形態では、アミノ酸リンカーは、蛍光体とのエネルギ移動のために伝えられる生物発光体を、適切に、離間及び／又は配向させる。

ある実施形態では、細胞ターゲットは、生物活性剤（例えば、小分子、タンパク、核酸、脂質等）のためのあらゆる適切な結合／相互作用パートナー（例えば、レセプタ、酵素、タンパク錯体）を含む。しかしながら、ある実施形態では、本発明を実行するためには、細胞ターゲットと生物活性剤間の相互作用についての知識が要求されない。特定の実施形態では、細胞ターゲットは、タンパク又はタンパク錯体であり、これは、生物活性剤に結合し、又はそうでなければ生物活性剤と相互作用（例えば、結合親和力を有した）する。さらなる特定の実施形態では、細胞ターゲットは、受容体タンパク又は酵素であり、これは、小分子生物活性剤に結合し、又はそうでなければ小分子生物活性剤と相互作用（例えば、結合親和力を有した）する。本発明は、細胞ターゲットの同一性、タイプ又はクラスによって制限されない。特定の実施形態では、何百、数千、数万の、さらにこれ以上の異なる細胞ターゲットのライブラリは、本発明への使用が見出される。細胞ターゲットの例としては、核酸（例えば、ＤＮＡ又はＲＮＡ）、多糖類又はポリペプチドを有するこれらのいずれかを含む錯体が含まれ得る。ある実施形態では、細胞ターゲットは、Ｇタンパク結合レセプタ又はプロテインキナーゼである。

特定の実施形態では、生物発光リポータは、ルシフェラーゼである。ある実施形態では、ルシフェラーゼは、ガウシア、鞘翅類（例えば、ホタル）、ウミシイタケ、ウミホタル、発光エビ、エクオリン、その変異体、その一部、その変形、及びここに記載されるシステム及び方法のために適切なあらゆる他のルシフェラーゼ酵素に見出されるそれらから選択される。ある実施形態では、生物発光リポータタンパクは、発光エビからの改質、改良されたルシフェラーゼ酵素（例えば、Ｐｒｏｍｅｇａ ＣｏｒｐｏｒａｔｉｏｎからのＮＡＮＯＬＵＣ酵素、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１、又は、少なくともそれとの同一性が７０％のシーケンス（例えば、＞７０ ％、＞８０ ％、＞９０ ％、＞９５ ％））である。ある実施形態では、生物発光リポータタンパクは、熱安定性のＰｈｏｔｕｒｉｓ ｐｅｎｎｓｙｌｖａｎｉｃａルシフェラーゼ又はそれと少なくとも７０ ％（例えば、＞７０ ％、＞８０ ％、＞９０ ％、＞９５ ％）の同一性を有する配列である。典型的な生物発光リポータは、例えば、米国特許出願番号第２０１０／０２８１５５２号及び米国特許出願番号第２０１２／０１７４２４２号に記載され、これらの文献の全体は、参照事項として本願に包含される。

ある実施形態では、生物発光リポータタンパクは、ＮＡＮＯＬＵＣを含む（米国特許出願番号第２０１０／０２８１５５２号及び米国特許出願番号第２０１２／０１７４２４２号を参照のこと、これらの文献の全体は、参照事項として本願に包含される）。ある実施形態では、生物発光リポータタンパクは、生物発光特徴を保持するＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１に対しての同一性が、少なくとも７０ ％（例えば、＞７０ ％、＞８０ ％、＞９０ ％、＞９５ ％）のポリペプチドを含む。特定の実施形態では、ＮＡＮＯＬＵＣ酵素又はその変形例の使用は、ここに記載されるＢＲＥＴアッセイの使用を可能にする特徴（例えば、シグナル強度、輝度、高い光出力、狭いスペクトラム等）を提供する。ある実施形態では、ＮＡＮＯＬＵＣの光出力が高いため、例えばＤＮＡエンコードＮＡＮＯＬＵＣ等、生理的に関連性のある状況下でのアッセイを遂行するために有用なアッセイ成分を、低濃度（例えば＞１μΜ、＞１００ｎＭ、＞１０ｎｍ、＞１ｎｍ等）とすることができる。ある実施形態では、ＮＡＮＯＬＵＣは、表現型スクリーンで識別される細胞ターゲットのキャラクテリゼーションにおいて、ＢＲＥＴが使用できるようになる。

ある実施形態では、生物発光リポータタンパクのための基質が提供される。ある実施形態では、生物発光リポータタンパクは基質を反応生成物に変換し、副生成物として光エネルギを発する。ある実施形態では、基質は、ルシフェラーゼ酵素のための基質である。ある実施形態では、基質は、セレンテラジン（例えばフリマジン）の構造変異種又は誘導体である。ある実施形態では、基質は、例えばＰｒｏｍｅｇａ社からのＮＡＮＯＬＵＣ酵素（例えば、ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：１）等、発光エビからの改質、改良されたルシフェラーゼ酵素のための基質である。ある実施形態では、生物発光リポータタンパクのためのプロ基質が提供され、これは、化学又は物理プロセス（例えば、加水分解、酵素反応、光開裂等）によって基質を生成する。ある実施形態では、プロ基質は、セレンテラジン、セレンテラジン誘導体、セレンテラジンの構造的又は機能的な等価物、セレンテラジンに実質的に（例えば構造的に及び／又は機能的に）等価な分子、又は機能的又は構造的にセレンテラジンと類似の分子、を含む。ある実施形態では、生物発光リポータタンパクは、セレンテラジン、セレンテラジン誘導体、セレンテラジンの構造又は機能的等価性、又はセレンテラジンの実質的な等価物を、セレンテラミド、セレンテラミド誘導体、セレンテラミドの構造的又は機能的な等価物、又はセレンテラミドの実質的な等価物に変換し、副生成物として光エネルギを放つ。

ある実施形態では、蛍光体及び生物発光リポータは、（例えば生物発光リポータの）発光と（例えば蛍光体の）励起スペクトラムとの十分な重複部分を示して、これら２つの間に（例えば無放射ダイポールダイポールカップリングにより）効率的なエネルギ移動を提供するように、選択される。ある実施形態では、生物発光リポータのピークの発光は、蛍光体のピークの発光によって、実質的に隔てられ、例えば波長で、少なくとも８０ｎｍ、１００ｎｍ、１２０ｎｍ、１４０ｎｍ等隔てられている。特定の実施形態の中に、蛍光体及び生物発光リポータペアのフォースター距離は、小さい（例えば、＞２０ｎｍ、＞１０ｎｍ、＞５ｎｍ、＞３ｎｍ等）。この実施形態では、フォースター距離が短いため、蛍光体と生物発光リポータとが、エネルギ移動発生するために非常に近接されなければならなくなるという要求が生じる。したがって、短いフォースター距離は、異常及び／又はバックグラウンドシグナル（例えば、蛍光体及び／又はリポータを拡散させることにより形成される）を引き下げる。

特定の実施形態では、着目のタンパクの及び／又は生物発光リポータに融合される細胞ターゲットの本来の存在率（又は本来の存在率に近い率）で伝達シグナルの検出が可能になるよう、十分に明るい蛍光体と生物発光リポータとのペアが、選択される。ある実施形態では、選択された蛍光体又は生物発光リポータが、不十分なエネルギ（光）発光しか生成しない場合、細胞ターゲットと生物発光リポータとの融合体を（例えば、本来の存在率を越え、生物学的に関連性のあるレベルを越え等）過剰発現させる必要があり、及び／又は、蛍光体結合生物活性剤の量を（例えば、潜在的毒性レベル、生理的に関連性のあるレベルを越え、速度実験が実行されることができる量より高く等）増加させなければならない。ある実施形態では、生物発光リポータ及び蛍光体の十分な輝度は、濃度及び比率の範囲で、生物活性剤及び細胞ターゲット相互作用の検出を可能にする。

ある実施形態では、表現型のアッセイ又は表現型のスクリーンから現れるヒット化合物の細胞ターゲットの識別のための組成物、方法及びシステムが提供される。ある実施形態では、表現型を引き起こすことができる生物活性剤の識別に続いて、蛍光体に結合される「ヒット化合物」を用いて、生体発光リポータタンパクへのリンケージを通して（例えば、生物活性剤が細胞ターゲットに結合する結果、生体発光リポータタンパクと蛍光体との間のＢＲＥＴになる）細胞ターゲットを識別する。この実施形態では、表現型は特定の生物活性剤と関連しているものの、その生物活性剤に対する相互作用パートナー（例えば、細胞ターゲット）は、知られていないか、又は、不確かである。ある実施形態では、蛍光体に結合される生物活性剤が、表現型を再生させることができるため、生物活性剤を蛍光体（又は生物発光リポータへの細胞ターゲット）に結合することが、細胞製本見本に影響を及ぼさず、及び／又は、その生物学的活性度を阻害しないことが、確認される。ある実施形態では、それぞれ生物発光リポータタンパク（例えば、ＮＡＮＯＬＵＣ）に融合される細胞ターゲットのライブラリの使用により、細胞ターゲットが難溶性であること又は本来の存在率が低いため、他の検査法（例えば、質量分析分析）と比較して、障害が少なくなる。ある実施形態では、このような検査法は、感度又は特異性のより大きな程度を提供する。ある実施形態では、生体発光リポータタンパクへのリンケージを通してのターゲット識別により、ターゲットの結合が非能率な又は不完全な場合においても、エネルギ移動を通しての検出が可能となる。ある実施形態では、生物活性剤（例えば、小分子）の細胞ターゲットへの結合は、競合バインディングアッセイ（図１Ｃ及び１Ｄを参照）を用いて特徴付けられる。ある実施形態では、ＢＲＥＴを用いれば、細胞ターゲットの上の同じ部位に結合する蛍光トレーサ（例えば蛍光体）の競合置換を用いて、生体細胞におけるヒット化合物の結合親和力の分析を行うことが可能になる。ある実施形態では、ここに記載されるシステム及び方法は、２つの異なる方法をターゲット識別に用いる能力を提供し、このように、細胞ターゲットを識別するためのより高い厳密性と、他のアプローチでの限界に取り組む補完的な方法とを提供する（例えば、ＢＲＥＴは、試験を通してターゲットとの平衡において生物活性剤を維持するという長所を提供する）。

ここに記載した実施形態の中では、薬剤の発見、薬剤の確認、薬剤ターゲットの発見又は薬剤ターゲットの確認に用いられることがわかったものもある。特定の実施形態では、生物活性剤（例えば薬らしい小分子）と細胞ターゲットとの間の結合相互作用が、検出、確認、及び／又は、特徴づけられる。ある実施形態では、細胞ターゲット（例えば、溶液中、ライセート中、表面上、細胞内等）に対する生物活性剤の相対的な結合親和力は、蛍光体に結合されていた生物活性剤を置換する能力により、決定が可能である。具体的に、第２の生物活性剤に対する第１の生物活性剤の結合親和力がより高いことが、結合された生物活性剤を置換するための第１の生物活性剤の濃度が、第２の生物活性剤と比べて低いことが要求されることにより、示される。結合された生物活性剤の置換は、細胞ターゲットに融合される生物発光リポータタンパクからのエネルギ移動の損失又は減少により、決定される。ある実施形態では、結合された生物活性剤を置換するために必要な生物活性剤の濃度を用いて、生物活性剤のための結合ＥＣ５０又は阻害定数（Ｋｉ）を評価する。ある実施形態では、それぞれが生物発光リポータタンパクに融合される１つ以上の細胞ターゲットから、それぞれが蛍光体に結合される１つ以上の生物活性剤を外す能力によって、新しい又は改質生物活性剤の発現は、導かれる。

ある実施形態では、細胞ターゲットに未知の結合親和力を有し得る化合物の収集は、蛍光体に結合される生物活性剤を置換する能力を決定することにより、生物発光タンパクに融合されるターゲットを結合する能力に対してスクリーニングされてもよい。ある実施形態では、化合物は、第２の細胞ターゲットと比較して優先的に第１の細胞ターゲットを結合する能力に対して、第２の生物活性ターゲットから第２の結合された生物活性剤を外すことと比較した、第１の結合された生物活性剤を第１の細胞ターゲットから外す彼らの能力によって、スクリーニングされる。ある実施形態では、第１及び第２の結合された生物活性剤は、同じである。

ある実施形態では、ここに記載されるシステム及び方法は、（例えば、ヒット化合物、研究リード、リード化合物等）生物活性剤の、野生型及び例えば標的タンパク等の細胞ターゲットの変異体バージョンに対しての親和性を決定する能力を提供する。ある実施形態では、親和性のキャラクタリゼーション及び蛍光ラベル生物活性剤（例えば、薬剤）の疾患関連性のある変異タンパクに対する選択性が、細胞内で実行されてもよい。このシステム及び方法は、選択的に、特異に、野生型又は変異タンパクを結合する生物活性剤（例えば、薬剤）を識別するためには、有用であり得る。

一次ターゲットに加えて、着目するターゲット、及び／又は既知のターゲット、生物活性剤（例えばヒット化合物）は、予想外の及び／又は意図しない細胞ターゲット（オフターゲット）に結合してもよい。場合によっては、生物活性剤のオフターゲット結合は、生物活性剤の投与に関する治療的効果及び／又は副作用の一部の原因となる。ある実施形態では、ここに記載されるシステム及び方法は、生物活性剤のオフターゲットを識別する能力を提供する。オフターゲット生物活性剤結合の同一性及び範囲を理解することにより、薬剤の薬理学に関する価値ある情報が提供される。

ある実施形態では、ここに記載されるシステム及び方法は、蛍光体で結合される生物活性剤が、生物発光リポータに融合される細胞ターゲットに結合される特徴（例えば、ＥＣ５０、Ｋｄ、結合率、環境の影響等）を評価する能力を提供する。ある実施形態では、結合の特性は、細胞ターゲットに関連した生化学、物理又は表現型の特性に関連する。ある実施形態では、ＢＲＥＴ錯体の形成又は溶解の速度論的特徴を用いて、結合していない生物活性剤の対合率又は分離率を推量することができる。ある実施形態では、これらの対合率／分離率は、無傷細胞内における個々のターゲットの薬剤滞留時間を評価するために用いることができる。ある実施形態では、このシステム及び方法は、エントロピ対エンタルピ相互作用に関する熱力学分子作用機構（ＭＭＯＡ）の研究に有用である。ある実施形態では、結合された生物活性剤は、細胞ターゲット上の別々の部位を通して、別々の薬剤によって取り外されてもよい。ある実施形態では、結合された生物活性剤の結合特性を用いて、細胞ターゲット上での、翻訳後修飾（例えば、開裂、リン酸エステル化、メチル化、アセチル化、脂質化等）、細胞内転位（例えば、核、ミトコンドリア、膜等への運動）、又はタンパク相互作用（例えば、他のタンパク、核酸、脂質等に対する相互作用）の影響を決定することができる。一例では、抗体の細胞ターゲットに対する結合特性を、結合された生物活性剤の結合特性に対するその影響により、決定する。ある実施形態では、結合された生物活性剤の結合特性を用いて、生物活性剤又は結合された蛍光体の化学修飾又は変化（例えば、細胞内物質代謝、イオン状態の変化等）の影響を決定してもよい。

ある実施形態では、細胞ターゲットは、一つ以上の分子成分を含んでいてもよい。例えば、ターゲットは、２つ以上のポリペプチドを含んでもよく、他の天然分子又は合成分子（例えば、接合団、コファクター、代謝産物、核酸、脂質、炭水化物等）をさらに備えてもよい。ある実施形態では、蛍光体に結合される生物活性剤は、最初に分子成分を結合し、結合された生物活性剤からのシグナルは、第１の分子成分に結合されるときに発生し、かつ、第１の分子成分は、第２の分子成分に隣接するように、生物発光リポータは第２の分子成分に融合される。

生物活性剤と細胞ターゲットとの間の相互作用の存在についての推測的な知識は、本発明を実行するために必要ではない。ある実施形態では、エネルギ移動による未知又はあらかじめ未確認の相互作用の検出及び／又は特徴付けが、提供される。ここに記載されるシステム、組成物及び方法の、ターゲット発見の他の方法に対する長所としては、（ある実施形態では）細胞内に発現される必要はない（例えば、検出可能なシグナルを発生させるのに十分なアクセプタ蛍光体の添加が可能）ために、使用可能な生物活性剤濃度の範囲が幅広いことと、細胞ターゲットの自然のタンパク濃度（例えば、過剰発現が検出のために十分なシグナルを得る必要がない）、プレートリーダ上で検出可能なシグナル（例えば、スループット検出が高く、イメージングが必要でない）、細胞中の相互作用の検出等が挙げられる。

ある実施形態では、生物活性剤（例えば、ヒット化合物）は、蛍光エネルギ受容体ダイに接合され、したがって、そのルシフェラーゼを融合された（例えば、ＮＡＮＯＬＵＣ融合）細胞ターゲットへの改質薬剤の結合により、ＮＡＮＯＬＵＣから受容体ダイへエネルギが移動する。このようなシステムは、生体細胞中で実行することができる同種のアッセイを提供する。ある実施形態では、標識化生物活性剤は、試験を通して細胞ターゲットとの平衡を維持し、親和性の低いヒット化合物と相互作用するターゲットの検出が可能になる。ある実施形態では、ＢＲＥＴにより、同じ結合部位に対して設計される蛍光トレーサの競合置換によって、生体細胞中の結合親和力の測定が可能になる。

ある実施形態では、エネルギドナーとしてＮＡＮＯＬＵＣの他のルシフェラーゼと比較した技術的な特徴により、ＢＲＥＴ効率は、大きく改良される。例えば、ＢＲＥＴに一般に用いられる他のルシフェラーゼに比べて、ＮＡＮＯＬＵＣは非常に明るいため、エネルギ移動が、細胞内に関連性のある生体活動を維持するためより適切である低い発現レベルでも定量化できるようになる。ある実施形態では、ＮＡＮＯＬＵＣの狭い発光スペクトラムは、受容体チャネル中のスペクトルの重なりを小さくすることにより、ダイナミックレンジを大きくする。ある実施形態では、スペクトラムの赤色に近い領域（６００～６５０ｎｍ）で放射する長波長受容体を用いて、ダイナミックレンジをさらに上げることができる。ある実施形態では、本発明の実施形態の開発中に複数のダイリガンドを評価した結果、その全体が参照事項として本願に包含される米国特許出願番号第１３／６８２，５８９号に記載される等のローダミン類似体（例えば、カルボキシローダミン類似体）は、ＮＡＮＯＬＵＣとの使用及び／又はここに記載されるＢＲＥＴ用途において、最適なダイナミックレンジをもたらすことが明らかになった。

実施例１
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、ＰＢＩトレーサ接合体の向上した性能が実証され、また、薬剤トレーサ用途の標準的なダイを有する接合体と比較された。この実施例では、スベロイルアニリドヒドロキサム酸（ＳＡＨＡ）の接合体、ヒストンデアセチラーゼ６（ＨＤＡＣ６）の阻害剤、及びＰＢＩダイ（ＳＡＨＡ－ＴＯＭ（ＰＢＩ－４９６８）、図８参照）又は標準的なダイ（ＳＡＨＡ－ＴＡＭＲＡ（ＰＢＩ－４９６７）、図８参照）が、ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ融合タンパク（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：３）を用いた細胞内ＢＲＥＴアッセイに利用された。

ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６融合タンパクをコード化するプラスミドＤＮＡを有するＦｕＧｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を用いて、ＨＥＫ２９３細胞がトランスフェクトされた。ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６ ＤＮＡは、プロモーターを持たないキャリヤーＤＮＡ（ｐＧＥＭ３Ｚ）で１：１０００に希釈され、９６－ウエルプレートフォーマット（２０，０００細胞／ウェルの接種密度）で、５０ｎｇ／ウェルの合計ＤＮＡの最終濃度を生成する。２４時間のトランスフェクション後、次いで、細胞は、モル過剰の非標識ＳＡＨＡ（特異性対照として）の存在下又は不存在下で、段階希釈トレーサにより培養された。薬剤トレーサによる平衡化の後、フリマジン（ＮａｎｏＬｕｃのためのセレンテラジン誘導体基質，Ｐｒｏｍｅｇａ社）が、２０ｕＭの濃度で加えられ、ＢＲＥＴが、Ｖａｒｉｏｓｋａｎルミノメータ上で定量された。非特異的シグナル（非標識ＳＡＨＡの存在下で）をＳＡＨＡトレーサ単独で発生するシグナルから減算することによって、特異的なＢＲＥＴシグナルが計算された。

図２の結果により、ＳＡＨＡ－ＴＯＭ（ＰＢＩ－４９６８）接合体／トレーサは、ＳＡＨＡ－ＴＭＲ（ＰＢＩ－４９６７）と比較して優れた特異的なＢＲＥＴシグナルを発生したことと、また、生体細胞内での結合に対して左にシフトされたＥＣ₅₀値を発生させたこととが、実証された。ＢＲＥＴ用途のための薬剤接合体として、他の一般的に用いられる蛍光体に対するＰＢＩ－４９６８ＴＯＭダイの利点は、競合バインディングアッセイ又はＮＡＮＯＬＵＣ融合タンパクライブラリを用いたターゲット識別（化学プロテオミクス）スクリーニングに適用することができる点である。

この実施例では、薬剤トレーサの既知の高親和性ターゲットに対する結合を示しているが、別の実施形態では、そのようなトレーサは、ＮＡＮＯＬＵＣ融合タンパクのライブラリと組み合わせて、ターゲットファミリーの中の相対的な薬剤親和性及び特異性をプロファイリングする。この実施形態では、プロファイリングの取り組みが、生体内での好ましくない薬剤副作用に関連し得る雑多な結合プロファイルを有する薬剤の識別に役立つ。

実施例２
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、ＢＲＥＴ用途のためのＮａｎｏＬｕｃの低い発現レベルの予想外の利点を実証した。

Ａ）ＨＥＫ２９３細胞は、Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤを用いて、ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６ ＤＮＡの量を変えてトランスフェクトされ、９６－ウエルプレートフォーマットで接種された。トランスフェクションのため、ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６ ＤＮＡは、プロモーターを持たないキャリヤーＤＮＡ（ｐＧＥＭ３Ｚ）で希釈された。最終的なＤＮＡ濃度／ウェルは、５０ｎｇ／ウェルに維持されたが、ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６ ＤＮＡは、１：１０、１：１００及び１：１０００（９６ウェルフォーマットで２０，０００の細胞／ウェルの接種密度）に希釈された。２４時間のトランスフェクション後、細胞は固定濃度（１μＭ）のＳＡＨＡ－ＴＯＭの存在下で、段階希釈ＳＡＨＡ（ＰＢＩ－４９６８，図８参照）接合体で処理された。２時間の培養の後、フリマジンを２０ｕＭまで加え、ＢＲＥＴがＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータ上に検出された。図３の結果では、ＢＲＥＴ用途のために適切なＳ／Ｂ比を実現するためには、ＮａｎｏＬｕｃ融合をコード化するＤＮＡの予想外に高い希釈が必要とされたことが実証された。

Ｂ）ＮａｎｏＬｕｃ－ヒスタミンＨＩ（ＧＰＣＲ）融合タンパクをコード化するＤＮＡは、未希釈から１：１０，０００までの範囲（プロモーターを持たないキャリヤーＤＮＡ（ｐＧＥＭ３Ｚ上記のように）で希釈して、一定量のＤＮＡ／トランスフェクションを上記のように維持する）でＤＮＡの量を変えて、ＨＥＫ２９３細胞にトランスフェクトされた。２４時間のトランスフェクション後、細胞を、メピラミン－ボディパイ－６３３（ＣｅｌｌＡｕｒａ）で段階希釈して、処理し、２時間平衡させた。次いで細胞は、２０ｕＭの濃度のフリマジンで処理され、ＢＲＥＴがＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで検出された。

図３Ｂの結果では、最適なシグナル対バックグラウンドで高い親和性相互作用を発生させるためには、ＮａｎｏＬｕｃ融合をコード化するＤＮＡの大量希釈が必要であることが示された。ＮａｎｏＬｕｃ融合タンパクを非常に低いレベルに希釈する能力は、競合バインディングアッセイ又はＮａｎｏＬｕｃ融合タンパクのターゲット識別（化学プロテオミクス）スクリーニングを含めて、様々なＢＲＥＴ用途の中に有益である。

実施例３
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、プロドラッグの結合を定量するための細胞内ＢＲＥＴ測定の予測値が、伝統的な生化学（活性ベースの）フォーマットと比較して実証された。この実施例は、天然プロドラッグ、ＦＫ２２８を含み、これは、ＨＤＡＣ６に活性化及び結合ができるようになるために細胞原形質の還元環境を必要とする。

前述のとおりＨＥＫ２９３細胞は、キャリヤーＤＮＡとの１：１０００希釈度で、ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６をコード化するＤＮＡでトランスフェクトされた。２４時間のトランスフェクション後、細胞は、固定濃度（１μＭ）のＳＡＨＡ－ＴＯＭ（ＰＢＩ－４９６８）接合対の存在下で、段階希釈天然プロドラッグ（ＦＫ－２２８）で培養された。比較のために、生化学、活性ベースのＨＤＡＣ６アッセイを、並行して行った。簡潔にいうと、ＦＫ－２２８（Ｓｅｌｌｅｃｋｃｈｅｍカタログ番号Ｓ３０２０）の３段階希釈が、９６－ウエルプレートのウェル内で、１００ ％のＤＭＳＯ中に１００Ｘで実行された。この１００Ｘ／１００ ％のＤＭＳＯ滴定シリーズのアリコート５μＬを、２４５μＬのＨＤＡＣ－ Ｇｌｏ（商標）Ι／ＩＩアッセイバッファ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）単独に加え、又は２Ｘ（０．５ｍＭ）ＤＴＴを補充した２４５μＬのＨＤＡＣ－Ｇｌｏ（商標）Ｉ／ＩＩアッセイバッファに加え、９６－ウエルプレートのウェル内に、ＦＫ－２２８の２Ｘ／２％ ＤＭＳＯマスター中間滴定系列を作った。このマスター中間滴定系列から、５つの複製が、白色の３８４－ウェルアッセイプレート（コーニング３６７３）のウェルから移動された。２Ｘ（２ｎＭ）ＨＤＡＣ ６（ＢＰＳ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅ社のカタログ番号５０００６）の５μＬ添加物を、ＩｎＭ ＨＤＡＣ６／ウェルの最終濃度のために、全てのウェルに加えた。酵素／阻害剤混合物１０μＬを、室温で４５分間、プレインキュベートさせた。ＨＤＡＣ－Ｇｌｏ（商標）Ｉ／ＩＩと等しい容量（１０μＬ）で、Ｆｉｎａｌ Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ Ｒｅａｇｅｎｔ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を、全てのウェル（２０μＬ最終アッセイ容量）に加え、そして、室温で１０分の培養の後、発光を計測した。全ての試験条件に対して、ＨＤＡＣ－Ｇｌｏ（商標）の Ｉ／ＩＩ基質の最終濃度は、５０μΜであった。ＧｒａｐｈＰａｄからのプリズム（商標）ソフトウェアを用いて、データをプロットした（Ｓ字形ドーズ応答 ― 傾斜が変化）（ＤＴＴ無し：塗り潰し丸； ０．２５ｍＭ ＤＴＴ：白四角）。

図４Ａ及び４Ｂの結果には、活性化するよう細胞により処理する必要のあるプロドラッグの結合を計測するための、細胞環境の必要条件を示す。

実施例４
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、透過化処理薬剤を使用して、細胞に不浸透性の薬剤トレーサを導入することが実証された。

ＨＥＫ２９３細胞は、前述のように、ＰＫＣアルファ（ＰＫＣa）－ＮａｎｏＬｕｃ又はＮａｎｏＬｕｃ－ＰＫＣアルファをコード化するＤＮＡで、ＤＮＡのプロモーターを持たないキャリヤーＤＮＡとの１：１０００の希釈で、トランスフェクトされた。２４時間のトランスフェクション後、細胞は、ジギトニン有り又は無しで、５０ｕｇ／ｍＬの最終濃度に処理された。細胞は、次いで、段階希釈したスタウロスポリン－ＰＢＩ－ダイ接合体で処理された（ＰＢＩ－５１２９，図８参照）。細胞は、結合のための特異性対照として、非抱合型スタウロスポリン５μＭの存在下又は不存在下で、共同培養された。トレーサによる２時間の平衡化の後、フリマジンが２０ｕＭの最終濃度に加えられ、ＢＲＥＴ比が、Ｖａｒｉｏｓｋａｎルミノメータ（図５Ａ及び５Ｂ）で計測された。

第２の実験では、全く同じにトランスフェクトされたＰＫＣａ－ ＮａｎｏＬｕｃ細胞は、５ｕＭ非標識スタウロスポリン（特異性対照）の存在下又は不存在下でのスタウロスポリン－ＴＯＭ（ＰＢＩ－５１２９，図８参照）トレーサの固定濃度による処理（５ｕＭ最終濃度）の前に、段階希釈ジギトニンで処理された（図５Ｃ）。

図５Ａ～Ｃは、不浸透性の薬剤トレーサのエントリを強化する透過化処理薬剤を使用する能力及びＮａｎｏＬｕｃ（商標）融合タンパクライブラリのＢＲＥＴ－ベースの化学プロテオミクススクリーニングに適用することを実証する。

実施例５
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、生体細胞中の相対的な薬剤親和性を計測するためのＮａｎｏＬｕｃ／ＢＲＥＴの使用を実証した。ある実施形態では、類似の実験が、ハイスループットな化学スクリーニングからリードを最適化するために構成される。

ＨＥＫ２９３細胞は、ＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８融合タンパクをコード化するＤＮＡでトランスフェクトされた（９６ウェルフォーマット中に５０ｎｇ／ウェルＤＮＡの最終濃度）。２４時間のトランスフェクション後、細胞は、０．５ｕＭ ＰＢＩ－４８３８の存在下で、段階希釈ＢＩＲＢ－７９６又はＰＢＩ－４８３５で処理された（ＢＩＲＢ接合誘導体，例えば、その全体が参照事項として本願に包含されるＵＳ１３／６８２，５８９を参照）。

２時間の平衡化の後、フリマジンを２０ｕＭの濃度に加え、ＢＲＥＴがＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。

図６は、ドーズ応答ＢＲＥＴ曲線が、ＰＢＩ－４８３５（「ＢＩＲＢ誘導体」）に対して、ＢＩＲＢ－７９６の既知の親和性を高く裏付けたことを実証する。非標識薬剤の相対親和性を計測する能力は、ＨＴＳスクリーニング、リード最適化、又は化学プロテオミクス用途に適用することができる。ある実施形態では、ハイスループットな化学スクリーニングから最適化されたヒット化合物を特徴づけるように、類似の実験が構成される（例えば、トレーサ置換に対してＩＣ５０値が低い化合物は、着目のターゲットに対する結合効率をより高く示す）。

実施例６
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、生体細胞中の薬剤結合の反応速度をモニターするためのＮａｎｏＬｕｃ／ＢＲＥＴの使用を実証した。ある実施形態では、ハイスループットな化学スクリーニングからリードを最適化するため、類似の実験が構成される。

ＨＥＫ２９３細胞は、ＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８融合体をコード化するＤＮＡでトランスフェクトされた（９６ウェルフォーマット中に５０ｎｇ／ウェルＤＮＡの最終濃度で）。２４時間のトランスフェクション後、細胞が、保護されたフリマジンにより、最終濃度が２０ｕＭとなるよう、２時間、前処理された（ＰＢＩ－４３７８、図８参照）。ＢＲＥＴは、３７°Ｃに設定されたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで、経時的に計測された。短い前読み出しの後、細胞は、（特異性対照として１μＭ ＢＩＲＢ７９６の存在下又は不存在下）ＰＢＩ－４８３８の濃度を変化させることで、刺激された。次いで、ＢＲＥＴ中の投与量及び時間依存性の増加が、速度論的に４時間モニターされた。

別個の実験では、トランスフェクトされた細胞は、安定したＢＲＥＴシグナルを発生させるために、２０μＭのＰＢＩ－４３７７及び１μＭのＰＢＩ－４８３８で前処理された。

短い前読み出しの後、細胞は、１μＭ非標識ＢＩＲＢ－７９６で刺激され、競合置換は、ＢＲＥＴによってリアルタイムでモニターされた。

図７Ａ－Ｂの結果は、生体細胞中のターゲットの関わりに関する反応速度の測定のために、ＢＲＥＴの使用が支持される。このフォーマットは、生体細胞中のＮａｎｏＬｕｃ融合タンパクのＨＴＳ又は化学プロテオミクススクリーニングのために利用することができる。ある実施形態では、ハイスループットな化学スクリーニングから最適化されたリード化合物を特徴づけるために、類似の実験が構成される（例えば、着目のターゲットに対する対合又は分離の反応速度を変化させる化合物）。一定量の相対的な化合物親和性を提供することに加えて、この速度論的ＢＲＥＴ測定法は、生化学的又は無傷細胞内でのターゲット滞留時間の定量評価を実現することができた。

実施例７
以下の実施例は、ＢＲＥＴを用いてイベントを結合する薬剤の細胞下局在化を識別するために、特異的なＮＡＮＯＬＵＣ基質（図８参照）又は酵素成分の使用に関するものである。

補完的なＮＡＮＯＬＵＣ酵素ポリペプチド又はペプチドの物理的分離により、ＮＡＮＯＬＵＣ（ドナー）シグナルの細胞外空間への分離を可能にする。例えば、小さなシグナルペプチドは、細胞表面受容体に遺伝子的に結合される。細胞培地への大型のシグナルポリペプチドの外因性添加と同時に、ドナーシグナルは、細胞外空間に分離される。このシグナル分離は、薬剤トレーサ結合／置換を含む様々なＢＲＥＴ用途で発生するシグナル／バックグラウンドを高める。

ある実施形態では、不浸透性のＮＡＮＯＬＵＣ基質が適用される場合は、完全長ＮＡＮＯＬＵＣタンパク融合体が利用される。

実施例８
以下は、本発明の実施形態において使用が見出される典型的な化合物の合成スキームを提供する。

Ｂｏｃ保護されたＳＡＨＡアミン
７－トリチロキシカルバモイルヘプタン酸（２００ｍｇ、４６３μｍｏｌ）が、３ｍｌのＤＭＦ中で、４－［（Ｎ－Ｂｏｃ）アミノメチル］アニリン（１１３ｍｇ、５１０μｍｏｌ）、ＨＢＴＵ（３５２ｍｇ、９２７μｍｏｌ）及びトリエチルアミン（１９４ｕＬ、１．４ｍｍｏｌ）と混合された。反応物を終夜撹拌し、その後、セライト上に吸着させ、ヘプタン中０～＞１００ ％の酢酸エチルの勾配で溶離するカラムクロマトグラフィにより、生成物が得られた。Ｍ＋Ｈ計算値：６３５．３；実測値：６３５．９

ＳＡＨＡアミン
０．２５ｍｌのＴＩＳを加えた２ｍｌのＤＣＭ中に、スベロイル（４－［（Ｎ－Ｂｏｃ）アミノメチル］アニリド）ヒドロキサム酸（２８６ｍｇ、４５０ｍｍｏｌ）を溶解した。次いでトリフルオロ酢酸（０．９ｍｌ）を加え、反応物を３０分間撹拌した。減圧下で溶媒を除去し、予備ＨＰＬＣにより未加工反応生成物を精製し、又は、これを更なる精製を行わずに用いた。

ＰＢＩ－４９６７ ＳＡＨＡ－ＴＡＭＲＡ

５滴のＴＥＡを加えたＤＭＦ１ｍｌ中４ｍｇ（７．６のμｍｏｌ）のテトラメチルローダミン６－スクシンイミジルエステルに、スベロイル［４－（アミノメチル）アニリド］ヒドロキサム酸の未加工反応生成物（２７ｍｇ）を、混合した。３０分後、反応物をＨ₂Ｏ及びＭｅＣＮで希釈し、予備ＨＰＬＣ（０．１ ％の水性ＴＦＡ中５～＞６０ ％のＭｅＣＮ）により、生成物を分離した。

適切な画分を真空凍結乾燥し、マゼンタ固体として望ましい生成物を生成した。Ｍ＋Ｈ計算値：７０６．３；実測値：７０６．６．

ＰＢＩ－４９６８ ＳＡＨＡ－ＴＯＭ

３滴のＴＥＡを加えたＤＭＦ０．８ｍｌ中の５ｍｇ（７．６μｍｏｌ）のＴＯＭ ６－スクシンイミジルエステルに、スベロイル［４－（アミノメチル）アニリド］ヒドロキサム酸未加工反応生成物（８ｍｇ）を混合した。３０分後、反応物をＨ₂Ｏ及びＭｅＣＮで希釈し、予備ＨＰＬＣ（０．１ ％の水性ＴＦＡ中５～＞６０ ％のＭｅＣＮ）により、生成物を分離した。適切な画分を真空凍結乾燥し、望ましい生成物を生成した。Ｍ＋Ｈ計算値：８３８．４；実測値：８３８．７

スタウロスポリン－アミン
スタウロスポリンｐ－ニトロフェニルカルバマート（３ｍｇ、４．８のμｍｏｌ）を、０．５ｍｌのＤＭＦ中に溶解し、過剰なカダベリンで処理した。反応物を、 ７０℃の油浴中で２時間加温し、次いでＨ₂Ｏで希釈し、ギ酸で酸性化し、２５％～＞７５％のＭｅＣＮで溶離する予備高速液体クロマトグラフィを、１０ｍＭ水性ＮＨ₄ＯＡｃ中で行った。
適切な画分を凍結乾燥し、わずかに黄色の固体を提供した。Ｍ＋Ｈ計算値：５９５．３；実測値：５９５．５

ＰＢＩ－５１２９スタウロスポリン－ＴＯＭ

スタウロスポリン５－アミノペンチルカルボキサミド（５ｍｇ、８．４μｍｏｌ）を、１ｍｌのＤＭＦ中に溶解し、トリエチルアミン及びＴＯＭ ６－ＳＥ（４ｍｇ、６μｍｏｌ）で処理した。反応物を、分析的ＨＰＬＣによってモニターした。反応終了後、ＭｅＣＮ及びＨ₂Ｏを加え、そして、少量のＡｃＯＨの添加により、ＴＥＡを中和した。予備ＨＰＬＣ（１０ｍＭのＮＨ４ＯＡｃ中に２５％～＞１００ ％のＭｅＯＨ）及び引き続いて濃縮を行うことにより、濃青色の固体１．８ｍｇを生成した。Ｍ＋Ｈ計算値：１１３９．５；実測値：１１３９．８．

ダサチニブ－ＴＯＭ
ＴＯＭペンチルアミン

ＴＯＭ ６－カルボキシル酸（２６ｍｇ、４６μｍｏｌ）を、トリエチルアミン２当量を含むＤＭＦ１ｍｌ中で撹拌し、ＴＳＴＵ（１７ｍｇ、５６．５μｍｏｌ、１．２当量）で処理し、反応物を、ＨＰＬＣによってモニターした。４０分後、反応物を、ＤＭＦ０．５ｍｌ中のカダベリン（９４ｍｇ、０．９２ｍｍｏｌ、２０当量）の溶液に加え、２０分間撹拌した。次いで、ＴＦＡの添加によって反応物を中和し、ＭｅＣＮ及び水で希釈した。
予備ＨＰＬＣ（０．１ ％の水性ＴＦＡ中２５～＞１００ ％のＭｅＣＮ）及び引き続いて真空凍結乾燥を行い、紫色の固体として望ましい製品を提供した。ＬＣＭＳ：（（Ｍ＋２Ｈ）／２）計算値：３２４．４；実測値：３２４．３．

ダサチニブ－ＴＯＭ

ダサチニブ（２５ｍｇ、５１μｍｏｌ）を、ｐ－ニトロフェニルクロロホルマート（１４ｍｇ、６９μｍｏｌ、１．３６当量）及びＤＭＦ：ＴＨＦが２：１の液０．９ｍｌ中３０ｕＬのＴＥＡと混合した。反応物を終夜撹拌し、次いで、３５ｍｇの追加のｐ－ニトロフェニルクロロホルマートを添加した。更に２４ｈ撹拌した後、０．５ｍｌのＤＭＦ及び３０ｕＬのＴＥＡ中ＴＯＭペンチルアミンが７ｍｇ（１０μｍｏｌ）の溶液に、反応物の１／２の容量を加えた。次いで、反応物を１時間撹拌し、その後、ＭｅＣＮ及び水による希釈及び予備ＨＰＬＣによる精製を行った。真空凍結乾燥は、紫色の固形として望ましい生成物を提供した。ＭＳ：（（Ｍ＋２Ｈ）／２）計算値：５８０．８；実測値：５８１．０．

パーバラノール－ＴＯＭ ＰＢＩ ５０７７

２０ｍｇのＴＥＡ（１９８μｍｏｌ）を含むＤＭＦ１ｍｌ中で、パーバラノール（１０ｍｇ、２３μｍｏｌ）を撹拌し、７．７ｍｇ（２５．４μｍｏｌ、１．１当量）のＴＳＴＵで処理した。３０分後、反応物をＥｔ２Ｏで希釈し、全反応物容量の１／２を、６ｍｇ（９μｍｏｌ）のＴＯＭ（５アミノペンチル）－６－カルボキサミドを含むバイアルに加えた。反応物３時間撹拌し、不安定な有機化合物類を、減圧下で除去した。得られたＤＭＦ溶液を水及びＭｅＣＮで希釈し、ＴＦＡで酸性化し、次いで生成物を、予備ＨＰＬＣ（０．１ ％の水性ＴＦＡ中に２５～＞１００％のＭｅＣＮ）によって分離し、引き続いて真空凍結乾燥を行い、３．５ｍｇの紫色の固体を生成した。
ＭＳ：Ｍ＋Ｈ計算値：１０６１．５，実測値：１０６１．６．

実施例９
本発明の化合物識別方法におけるウミシイタケルシフェラーゼ又はＮａｎｏＬｕｃルシフェラーゼの使用
ＨＥＫ２９３細胞に、脂質：ＤＮＡ比が３：１のＦｕｇｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）を用いてＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８アルファ又はウミシイタケリュック－ｐ３８アルファをコード化するプラスミドＤＮＡをトランスフェクトし、１ウェルにつき２０，０００セルの密度（ＤＮＡで５０ｎｇ／ウェルを生成）で、９６－ウエルプレートに接種した。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、１μＭのＢＩＲＢ７９６の存在／不存在下で、段階希釈ＰＢＩ－４８３８（ＴＯＭダイに接合されるＢＩＲＢ７９６誘導体）で培養した。細胞を、２時間３７℃で培養した。ＮａｎｏＬｕｃ－発現サンプルに、フリマジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。ウミシイタケリュック－発現サンプルに、天然のセレンテラジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６３０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。６３０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した。

図９は、ウミシイタケルシフェラーゼ及びＮａｎｏＬｕｃルシフェラーゼの双方を、本発明の方法に用いることができることを実証する。ＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８アルファ又はウミシイタケリュック－ｐ３８アルファを発現する細胞の段階希釈ＰＢＩ－４８３８での処理の際、ＢＲＥＴのドーズ依存性増加が観察される。非標識ＢＩＲＢ－７９６の飽和濃縮が、このＢＲＥＴシグナルをブロックすることができ、ｐ３８アルファのいずれかへのルシフェラーゼ融合体を用いた結合の特異性を示している。

実施例１０
ＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８アルファに対するＴＯＭ－ＢＩＲＢ対ＴＭＲ－ＢＩＲＢの比較 上記のように、Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤを用いて、ＨＥＫ２９３細胞を、ＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８アルファをコード化するプラスミドＤＮＡでトランスフェクトし、９６－ウエルプレート（ＤＮＡの５０ｎｇ／ウェルを生成）に接種した。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、１μＭのＢＩＲＢ７９６の存在／不存在下で、段階希釈ＰＢＩ－４８３８（ＴＯＭダイに接合されるＢＩＲＢ７９６誘導体）又はＰＢＩ－４８３６（ＴＭＲダイに接合されるＢＩＲＢ誘導体）で培養した。細胞を、２時間３７℃で培養した。ＮａｎｏＬｕｃ－発現サンプルに、フリマジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６３０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。６３０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した。

図１１は、細胞ベースのフォーマットでの標的タンパクへの結合に関して、ＴＭＲ付加体に対するＴＯＭ付加体の能力が向上している他の実施例を実証する。ＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８アルファ結合のドーズ応答曲線は、ＢＩＲＢ－ＴＭＲ接合体のための４５０ｎＭのＥＣ５０と比較したＢＩＲＢ－ＴＯＭ接合体のための４３８ｎＭのＥＣ５０を示している。この報告でのＢＩＲＢ－ＴＯＭの親和性は、ＢＩＲＢ－ＴＭＲと比較した文献報告とよく一致している（Ｃｈｅｍ Ｂｉｏｌ Ｄｒｕｇ Ｄｅｓ ２００９； ７４：５４７－５５９）。

実施例１１
ＢＩＭ－ＴＯＭの比較対ＰＫＣアルファ－ＮａｎｏＬｕｃに対するＢＩＭ－ＴＭＲ
上記のように、Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤを用いて、ＨＥＫ２９３細胞を、ＰＫＣアルファ－ＮａｎｏＬｕｃ（ｐＧＥＭ３ＺキャリヤーＤＮＡに１：１０００で希釈）をコード化するプラスミドＤＮＡでトランスフェクトし、９６－ウエルプレート（全ＤＮＡの５０ｎｇ／ウェルを生成）に接種した。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、５ｕＭのスタウロスポリンの存在／不存在下、段階希釈ＰＢＩ－５０７５（ＴＯＭダイに接合するＢＩＭ）又はＰＢＩ－５０５１（ＴＭＲダイに接合するＢＩＭ）で培養した。細胞を、２時間３７℃で培養した。ＮａｎｏＬｕｃ－発現サンプルに、フリマジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６３０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。６３０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した。特異的なＢＲＥＴシグナルを決定するため、トレーサ＋非標識スタウロスポリンの各々の濃度でのＢＲＥＴ比を、非標識スタウロスポリンの無いトレーサの各々の濃度のＢＲＥＴ比から減算した。

図１２は、透過処理された細胞フォーマットでの標的タンパクへの結合に関して、ＴＭＲ付加体に対するＴＯＭ付加体の能力が向上している他の実施例を実証する。ＰＫＣアルファ－ＮａｎｏＬｕｃ結合のドーズ応答曲線は、ＢＩＭ－ＴＭＲ接合体の極端に右側にシフトした能力と比較した、ＢＩＭ－ＴＯＭ接合体の４８３ｎＭのＥＣ５０を示す。この報告でのＢＩＭ－ＴＯＭの親和性は、ＢＩＭ－ＴＭＲと比較した文献報告とよく一致している（Ｊ Ｂｉｏｌ Ｃｈｅｍ． １９９１ Ａｕｇ ２５； ２６６（２４）：１５７７１－８１．）。

実施例１２
Ｐ３８／ＭＡＰＫの選択的な経路決定におけるターゲット識別
以下の実施例は、所与の系統学的ターゲットファミリー内での推定上のターゲットのパネルに対して、薬剤トレーサの選択性をプロファイリングする能力を実証することに役立つ。同様の実験的な構成を用いて、細胞内のＢＲＥＴを用い蛍光標識された薬剤のターゲットを識別してもよい。この構成は、オフターゲットインタラクタと同様に、結果として主薬剤の識別に導くことができる。複数のターゲットの関わりは、薬剤の雑多性及び潜在的な薬剤副作用を示し得る。この実施例は、一次及び二次ターゲットの両方のＢＲＥＴを介した相互作用を計測する能力を実証するのに役立つ。

ＨＥＫ２９３細胞を、脂質：ＤＮＡ比が３：１のＦｕｇｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を用いて、Ｎ末端又はＣ末端ＮａｎｏＬｕｃ融合体をコード化するプラスミドＤＮＡでトランスフェクトして、ＭＡＰＫ経路の様々なメンバー（Ｊｎｋｌ、Ｊｎｋ２、Ｊｎｋ３、ｐ３８アルファ、ｐ３８ベータ、ｐ３８ガンマ、Ｐ３８デルタ、又は、ＰＫＣアルファ又はＭＡＰＫ ８、９、１０、１４、１１、１２又は１３、ＰＫＣアルファのそれぞれ）を得て、１ウェルにつき２０，０００セルの密度で、９６－ウエルプレートに接種された（ＤＮＡの５０ｎｇ／ウェルを生成）。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、４μＭのＢＩＲＢ７９６の存在下又は不存在下、２μＭＰＢＩ－４８３８で培養される。細胞を、２時間３７℃で培養した。ＮａｎｏＬｕｃ－発現サンプルに、フリマジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６３０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。６３０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した。応答比を決定するため、トレーサのみによるＢＲＥＴ値を、トレーサ＋未改質ＢＩＲＢ７９６のＢＲＥＴ値で除した。

図１３は、Ｊｎｋ２、ｐ３８ベータ及びｐ３８アルファ（文献報告と一致）に対するＰＢＩ－４８３８の選択性を示す。ｐ３８アルファは、ＢＩＲＢ７９６の一次ターゲットとして認識される。しかしながら、Ｊｎｋ２及びｐ３８ベータ等のターゲットに対する相互作用は、潜在的なオフターゲット負担を示すことができた。予想されるように、ＰＢＩ－４８３８に結合したＰＫＣアルファ－ＮａｎｏＬｕｃ融合体は、ＢＩＲＢ７９６のこのターゲットの方への親和性が低いため、比較的小さい特異的なＢＲＥＴシグナルを示した。

実施例１３
親和性のｐ３８／ＭＡＰＫ経路決定におけるターゲット識別
以下の実施例は、所与の系統学的ターゲットファミリー内に推定上のターゲットのパネルに対して、薬剤トレーサの親和性をプロファイリングする能力を実証するのに役立つ。同様の実験的な構成を用いて、細胞中のＢＲＥＴを用いて、蛍光標識された薬剤の所与のターゲットへの親和性を特徴づけてもよい。

Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を用いて、脂質：ＤＮＡ比が３：１で、ＨＥＫ２９３細胞を、ＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８アルファ、ＮａｎｏＬｕｃ－ｐ３８ベータ、Ｊｎｋ２－ＮａｎｏＬｕｃ、ＰＫＣアルファ－ＮａｎｏＬｕｃ又はＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６をコード化するプラスミドＤＮＡにより、トランスフェクトし、１ウェルにつき２０，０００セルの密度（ＤＮＡ５０ｎｇ／ウェルを生成）で、９６－ウエルプレートに接種した。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を、無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、４ｕＭのＢＩＲＢ７９６の存在下又は不存在下、段階希釈ＰＢＩ－４８３８で培養した。細胞を、２時間３７℃で培養した。サンプルの別々のセットに対して、１μＭのＰＢＩ－４８３８の存在下、トランスフェクト細胞を、段階希釈ＢＩＲＢ７９６で処理した。ＮａｎｏＬｕｃ－発現サンプルに、フリマジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６３０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。６３０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した。

図１４及び１５は、ＰＢＩ－４８３８のＪｎｋ２、ｐ３８ベータ及びｐ３８アルファに対する見かけの親和性を実証する。予想されるように、ＰＫＣアルファ及びＨＤＡＣ６は、これらのターゲットへのＰＢＩ－４８３８の親和性が低いため、比較的小さい特異的なＢＲＥＴシグナルを示した。更に、Ｊｎｋ２、ｐ３８アルファ及びｐ３８ベータに対するＢＩＲＢ７９６の高い親和性は、細胞中の競合置換によって実証される。ターゲットの所与のセットへの薬剤トレーサの親和性（ＢＲＥＴの中に増加により）又は未改質の薬剤（競合置換により）を、順位づけるために、同様の実験を構成することができた。上記のように、Ｊｎｋ２及びｐ３８ベータ等のターゲットに対する高い親和性相互作用は、潜在的なオフターゲット負担を示すことができた。

実施例１４
野生型用薬剤トレーサ対標的タンパクの変異体バージョンの親和性決定
以下の実施例は、野生型対変異体標的タンパクに対する薬剤トレーサの相対親和性を計測する能力を実証することに役立つ。この実施例では、ＢＲＤ４（ブロモドメインを含有するタンパク４）の野生型及び変異体（Ｎ１４０Ａ／Ｎ４３３Ａ； ｉＢＥＴへの全結合能力が欠乏）に対しての、蛍光ラベルｉＢＥＴ化合物の親和性（ＢＲＤ４が結合した小分子阻害剤が、アセチル化ヒストンとの相互作用を防止する）を決定した。細胞内の疾患関連性の変異タンパクに対する、蛍光ラベル薬剤の親和性及び選択性を特徴づけるために、同様の実験的な構成を用いてもよい。このような実験は、特異に野生型又は変異体にタンパクを選択的に結合する薬剤を識別するために有用となり得る。

Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を用いて、脂質：ＤＮＡ比が３：１で、ＨＥＫ２９３細胞を、ＮａｎｏＬｕｃ－ＢＲＤ４又はＮａｎｏＬｕｃ－ＢＲＤ４（Ｎ１４０Ａ／Ｎ４３３Ａ）をコード化するプラスミドＤＮＡでトランスフェクトし、１ウェルにつき２０，０００セルの密度（ＤＮＡ５０ｎｇ／ウェルを生成）で、９６－ウエルプレートに接種した。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、１０μＭのｉＢＥＴの存在下／不存在下で、段階希釈ＰＢＩ－４９６６（ＴＯＭダイに接合されるｉＢＥＴ）で培養した。細胞を、２時間３７℃で培養した。ＮａｎｏＬｕｃ－発現サンプルに、フリマジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６３０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。６３０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した。

図１６は、野生型ＢＲＤ４対変異体ＢＲＤ４に対するＰＢＩ－４９６６の相対親和性を示す。予想されるように、変異体ＢＲＤ４で、右側にシフトした能力が観察され、ＰＢＩ－４９６６に対する親和性が低下することを示している。ターゲットの疾患関連性のある変異体への薬剤トレーサの親和性の順位をランク付けするために、同様の実験を構成することができた。この原理を、競合トレーサ置換により、野生型又は変異タンパクへの薬剤の相対親和性を計測することまで拡げることができた。ＢＲＥＴシグナルの増加が、ＮａｎｏＬｕｃ融合体への結合のみを表すので、この方法は、アッセイサンプル中に存在する同様の抗原の複雑な混合物中におけるターゲットの関わりを測定する測定法を可能にする。これらの抗原は、同様の特性を持つターゲットを含むことができたが、着目のターゲットと同一ではない（例えば、異種分析物対内在分析物又は変異体分析物対重量分析物等を識別する等）。

実施例１５
ターゲットの関わりを決定するための化合物パネルのスクリーニング
以下の実施例は、本発明の方法は、化合物パネルをスクリーニングすることにより、ターゲットの関わりを決定するために用いることができることを実証する。このスクリーニング方法を、同様に、より大きな化合物ライブラリ（例えばＬＯＰＡＣ）に拡げることができた。

Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤを用いて、ＨＥＫ２９３細胞をＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６ ＤＮＡでトランスフェクトし、９６－ウエルプレートのウェルに接種した。トランスフェクションのため、ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６ ＤＮＡを、プロモーターを持たないキャリヤーＤＮＡ（ｐＧＥＭ３Ｚ）で希釈した。最終的なＤＮＡ濃度／ウェルは、５０ｎｇ／ウェルのままであったが、ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６ ＤＮＡは、１：１０００（９６ウェルフォーマット中、２０，０００細胞／ウェルの接種密度で）で希釈された。２４時間のトランスフェクション後、固定濃度（１μＭ）のＳＡＨＡ－ＴＯＭ接合体（ＰＢＩ－４９６８）の存在下で、細胞を、段階希釈阻害剤（図１７参照）で処理した。２時間の培養の後、フリマジンを２０ｕＭまで加え、ＢＲＥＴがＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータ上に検出された。

図１７の結果によれば、本発明の方法を用いた薬剤トレーサの競合置換により、構造的に異なる化合物を識別することができることが実証される。更に、様々な化合物分類の相対的な能力を確かめることができる。この結果は、パノビノスタット又はＳＡＨＡのＨＤＡＣ６への高い結合効率と比較して、アピシジンのＨＤＡＣ６への結合効率は、ごく僅かである／無いことを示している。これは、直交アッセイフォーマットを使用した文献報告と一致している。所与のターゲットに対して、阻害剤ポテンシャルを有する新しい化学物を識別／特徴づけるために、このスクリーニング方法を、大きな化学ライブラリのハイスループットなスクリーニングを含むところにまで拡大することができた。

実施例１６
薬剤－ターゲット相互作用のモニタリング
スペクトルの重複部分の大きな蛍光体の存在下で、高レベルな非特異的ＢＲＥＴが、ルシフェラーゼを含んだ培地中で行われることが、一般に受け取られている（クーチュリエ，２０１２）。これは、ＢＲＥＴをハイスループットな化学スクリーニングに用いることへの負担として、記載されていた。以下の実施例は、ルシフェラーゼ、ＮａｎｏＬｕｃの存在下、ＢＲＥＴのためには問題であると一般に認識される濃度範囲の培地中で、蛍光体－薬剤接合体を用いて薬剤／ターゲット相互作用をモニターする能力を実証することに役立つ。

Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を用いて、脂質：ＤＮＡ比が３：１で、ＨＥＫ２９３細胞を、ＣＤＫ２－ＮａｎｏＬｕｃをコード化するプラスミドＤＮＡ（ｐＧＥＭ３ＺキャリヤーＤＮＡに１：１００を希釈した）でトランスフェクトし、そして、１ウェルにつき２０，０００セル（全ＤＮＡで５０ｎｇ／ウェルを生成）の密度で、９６－ウエルプレートのウェルに接種した。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、１０μＭのパーバラノールＢの存在下／不存在下、段階希釈ＰＢＩ－５０７７（ＴＯＭダイに接合されるパーバラノールＢ）で培養した。細胞を、２時間３７℃で培養した。

ＮａｎｏＬｕｃ－発現サンプルに、フリマジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６３０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。６３０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した（図１８）。

この実施例は、ＢＲＥＴを介して薬剤／ターゲット相互作用をモニターするために、培地の中に蛍光体トレーサの使用を支持する。サンプル（＋薬剤トレーサ）をパーバラノールＢ（未改質の薬剤）で共同培養することにより、ＮａｎｏＬｕｃとトレーサとの間の非特異的ＢＲＥＴシグナルを計測することができる。試験を行う痕跡濃度の範囲に亘って、このバックグラウンドＢＲＥＴシグナルは低かった。これらの結果は、ＮａｎｏＬｕｃ（ドナー）と蛍光体（受容体）との間のスペクトルの重複部分大きいにも拘わらず、薬剤トレーサとナノリュック－ターゲット融合体と間の特異的な結合を、細胞培地中でモニターすることが可能であることを実証する。

実施例１７
タンパク集積を用いたターゲットＩＤスクリーニング
以下の実施例では、無細胞発現を用いてＮａｎｏＬｕｃ融合体配列を発生させる能力及びＢＲＥＴによる薬剤結合及び相対親和性を測定する能力を実証する。

ＢＩＲＢ７９６の推定上のターゲット（ＭＡＰＫ及びＪｎｋファミリーのメンバー等）、ダサチニブの推定上のターゲット（Ｓｒｃ及びＬＣＫ等）並びに無関係なＨＤＡＣ６ネガティブ対照を含む１１のキナーゼ（Ｎ末端及びＣ末端ＮａｎｏＬｕｃ融合体）のパネルが、メーカーによって推薦されるＴｎＴ（商標登録）Ｔ７高速結合網状赤血球転写／翻訳システム（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）で発現され、２３の異なるＮａｎｏＬｕｃ融合体を有する配列を形成した。それぞれのＴＮＴ（商標登録）反応物を、ＰＢＳ中、１：１００で希釈し、９６－ウエルプレートのウェルへ反復標本を配置した。過剰な関連性の無い薬剤の存在下及び不存在下で、ＮａｎｏＬｕｃ融合体配列を、２つの異なるＴＯＭ薬剤トレーサ（ＢＩＲＢ－ＴＯＭ； ＰＢＩ－ ４８３８及びダサチニブ－ＴＯＭ； ＰＢＩ－５１７０）で、スクリーニングした。それぞれのＴＮＴ（商標登録）反応物に対し、２μＭのＢＩＲＢＴＯＭを有する４つの反復試験／２μＭ ＢＩＲＢ－ＴＯＭ＋４μＭ ＢＩＲＢ７９６を有する４つの反復試験（合計２ｘ９６－ウエルプレート）、並びに、１μＭのダサチニブ－ＴＯＭを有する４つの反復試験／１μＭダサチニブ－ＴＯＭ＋５μＭダサチニブによる４つの反復試験（合計２ｘ９６－ウエルプレート）、が実行された。反応物を、室温で２時間、一定混合で培養した。培養の後、フリマジンを、２０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６１０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータで計測された。６１０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した。応答比を決定するため、トレーサのみによるＢＲＥＴ値を、トレーサ＋未改質物のＢＲＥＴ値で除した。

結果（図１９）は、ＪＮｋ２、ＪＮｋ３、ＭＡＰＫ１４、ＭＡＰＫ１１及びＭＡＰＫ１３に対するＢＩＲＢ－ＴＯＭトレーサの選択性、並びに、ＡＢＬ１、Ｓｒｃ、ＬＣＫ、ＭＥＫ５、ＭＡＰＫ１１及びＭＡＰＫ１４に対するダサチニブ－ＴＯＭトレーサの選択性を実証し、これらは文献報告に一致していた。これらの結果は、細胞のない発現系に発現される推定上のターゲットのパネルに対して、薬剤トレーサのものをプロファイリングする能力、及び、ヒットを識別する能力、を実証する。この無洗浄タンパクＮａｎｏＬｕｃ融合体配列の構成により、主薬剤ターゲットの識別、並びにオフターゲットインタラクタが導かれ得る。

上記のスクリーニングの後、ＢＩＲＢ－ＴＯＭヒットを、ＢＩＲＢ－ＴＯＭトレーサへの結合親和力及びＢＩＲＢＴＯＭトレーサのＢＩＲＢ７９６との競合置換に関して、更に分析した。１０μＭのＢＩＲＢ７９６の存在下／不存在下で、段階希釈ＢＩＲＢ－ＴＯＭトレーサにより、希釈ＴＮＴ反応物の３つの反復試験体を培養することにより、ＢＩＲＢ－ＴＯＭトレーサへの結合親和力の実験を実行した。反応物を、一定混合により室温で２時間培養し、２０μＭの最終濃度でフリマジンを加えた後に、上記のように分析を行った。希釈ＴＮＴ反応物の３つの反復試験体を、２μＭのＢＩＲＢ－ＴＯＭトレーサの存在下、段階希釈ＢＩＲＢ７９６で培養することにより、競合置換実験を実行した。反応物を、一定混合により室温で２時間培養し、２０μＭの最終濃度でフリマジンを加えた後に、上記のように分析を行った。図１９の競合置換実験の結果によれば、ＢＩＲＢ７９６は、ＭＡＰＫ１４及びＪｎｋ２に対して最も高い親和性を示す一方、ＭＡＰＫ１１、ＭＡＰＫ１３及びＪｎｋ３に対しての親和性は低かったことが示される。文献報告に一致するように、ＢＩＲＢ７９６は、効率的にＭＡＰＫ１４と結合するが、他のＭＡＰＫ及びＪｎｋファミリーメンバーとも関わりを持つため、ＢＩＲＢ－７９６に対するオフターゲット負担を示している。薬剤への結合親和力について、細胞のない発現系に発現されかつタンパク配列スクリーニングで識別されるヒットを、ＢＲＥＴによりさらに分析することが可能であることを、これらの結果は実証する。更に、これらの結果は、ターゲットに関わる用途に対しての適切な分析物としてＮａｎｏＬｕｃタンパク融合体を発生させるためには、無細胞発現系を使用することを支持する。

実施例１８
ＮａｎｏＬｕｃ融合体の発現レベル
以下の実施例では、ＮａｎｏＬｕｃ融合体の発現が内因性のレベルに近い場合は、最適Ｓ／Ｂ比での薬剤トレーサとの高い親和性の相互作用が実現されることが実証される。前述のとおり、高い親和性の相互作用を実現するためには、ＮａｎｏＬｕｃＨＤＡＣ６ＤＮＡをキャリヤーＤＮＡで１：１０００に希釈することが必要であることが、実証された。この実施例では、ＮａｎｏＬｕｃ ＨＤＡＣ６ ＤＮＡの系列希釈の発現を、ウエスタンブロット解析を用いた内因性ＨＤＡＣ６の発現と比較した。

ＨＥＫ２９３細胞を、２．５ｘ１０⁵細胞／ウェルで、６穴プレートのウェルに接種し、ＮａｎｏＬｕｃ ＨＤＡＣ６ ＤＮＡの量を変えて、ＰＥＩでトランスフェクトした。ＮａｎｏＬｕｃ ＨＤＡＣ６ ＤＮＡを、非発現キャリヤーＤＮＡ（ｐＣＩ ｎｅｏ）で希釈した。ＤＮＡの最終濃度を２μｇ／ウェルのままとする一方、ＮａｎｏＬｕｃ ＨＤＡＣ６ ＤＮＡを、１：０、１：１０、１：１００、１：１０００及び１：１００００に希釈した。対照は、形質導入されなかった細胞であった。２４時間のトランスフェクション後、メディアを除去し、細胞を、ＰＢＳで洗浄し、４００μｌの哺乳類の溶解バッファ（Ｐｒｏｍｅｇａ）＋１：５０のＲＱ１ ＤＮＡ分解酵素（Ｐｒｏｍｅｇａ）＋１ｘＲＱ１バッファで、１０分間溶解させた。溶解に続いて、１３３μｌの４ＸＳＤＳ－ローディングバッファを、それぞれのウェルに加え、細胞ライセートを収集し、ＳＤＳ－ＰＡＧＥジェルで分析し、ＰＶＤＦ膜（インビトロゲン）へと電子移動させた。ＴＢＳバッファ中５％のＢＳＡ（Ｐｒｏｍｅｇａ）で、膜を１時間ブロックし、０．１ ％のトゥイーン（ＴＢＳＴ）を補ったＴＢＳ中のＨＤＡＣ６抗体（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ）の１：５００の希釈物により、４℃で、終夜プローブした。ＴＢＳＴ中で３回洗浄した後、ＴＢＳＴ中、抗ウサギＨＲＰ抗体（ジャクソン）で１時間、膜を培養した後、ＴＢＳＴで５回、ＴＢＳで１回、洗浄を行った。その後、膜をＰｒｏｍｅｇａからのＥＣＬ基質で１分間培養し、イメージクワントＬＡＳ４０００（ＧＥ）でスキャンを行った。結果（図１０）は、ＮａｎｏＬｕｃ ＨＤＡＣ６ ＤＮＡの１：１０００の希釈物が、内因性ＨＤＡＣ６の発現レベルと同程度の発現レベルであったことを示している。これは、最適Ｓ／Ｂ比で薬剤トレーサとの高い親和性相互作用を提供したと同じ希釈度である。

実施例１９
細胞表面受容体とＮａｎｏＬｕｃとの融合体への蛍光サイトカインの結合の定量化
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、蛍光ラベルサイトカインの競合置換により、細胞表面受容体に対する治療的抗体の相対親和性を計測する能力が実証された。この実施例では、市販品が入手可能なＴＡＭＲＡ－上皮成長因子（ＴＭＲ－ＥＧＦ； Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）が、ＮａｎｏＬｕｃ－ＥＧＦＲ（Ｈｅｒｌ）融合タンパクを発現する安定した細胞系を用いた細胞ＢＲＥＴアッセイに適用された。ＥＧＦの結合に干渉することが知られる治療的抗体との処理に際して、ＴＭＲ－ＥＧＦとＮａｎｏＬｕｃ－ＥＧＦＲとの間でのＢＲＥＴシグナルの発生を、防止することができる。

ｐＦ５ ＮａｎｏＬｕｃ－ＥＧＦＲプラスミドＤＮＡ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）及びＦｕＧｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ社）のトランスフェクションにより、ＨＥＫ２９３安定した細胞系を発生させた。トランスフェクションの後、Ｇ４１８選択により、安定した細胞系が発生し、その後、限定された希釈クローニングが行われた。ＮａｎｏＬｕｃ－ＥＧＦＲを発現するクローン由来細胞が、ウェル当たり２０，０００セルの密度で、９６－ウエルプレートに接種された。接種の２０時間後、培地を無血清ＯｐｔｉＭＥＭと交換し細胞は、血清欠乏状態になった。欠乏状態の後、細胞を、段階希釈ＴＭＲ－ＥＧＦ（Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）で処理した。ＴＭＲ－ＥＧＦとの平衡化に続いて、フリマジン（ＮａｎｏＬｕｃ； Ｐｒｏｍｅｇａ社のためのセレンテラジン誘導体基質）を、２０μＭの濃度で加え、ＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータでＢＲＥＴを定量した。その後の実験において、ＴＭＲ－ＥＧＦ（１０ｎｇ／ｍｌの最終濃度）による刺激への前に、ベクティビックス、アービタックス又はハーセプチン（ネガティブ対照）で細胞を前処理することにより、ＴＭＲ－ＥＧＦの抗体媒介置換を計測した。

図２０の結果により、ＮａｎｏＬｕｃに結合される細胞表面受容体への蛍光サイトカインの結合を定量するために、ＢＲＥＴを用いることができることが実証される。更に、サイトカイン結合を抑制することが可能な治療的抗体の親和性を、蛍光サイトカインの競合置換により、計測することができる。ベクティビックス及びアービタックスは、ＴＭＲ－ＥＧＦのＮａｎｏＬｕｃ－ＥＧＦＲへの結合を抑制することができた一方、ハーセプチン（Ｈｅｒｌへの親和性が無視できるＨｅｒ２バインダー）は、ＴＭＲ－ＥＧＦ結合を抑制することができなかった。この実施例では、蛍光サイトカインの競合置換により、治療的抗体（例えばベクティビックス、アービタックス等）又は他のバインダー（例えばサイトカイン生物系）の結合をモニターするために迅速に再構成可能なフォーマットで、蛍光サイトカインの既知の高親和性ターゲットへの結合を、ＢＲＥＴにより定量することができることが実証される。これは、細胞フォーマット中の生物学的製剤の相対的な能力を計測する技術として、ＢＲＥＴを使用する能力を実証する。

実施例２０
ＢＲＥＴ用途
ある実施形態では、本発明は、同時に、以下の３つの部分を検出／測定することが可能になる。（１）生体発光リポータタンパクのペプチド、及び（２）錯体を生成するための構造的補完体を通して相互作用する生物発光リポータタンパクのポリペプチド、及び（３）蛍光性の第３の部分（例えば、蛍光小分子）。

Ａ）この実施例は、構造上補完的なペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）及び生物発光錯体を生成するポリペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：７）から生成される生物発光錯体からのエネルギ移動を実証する。蛍光性ダイを、補完的なペプチドシーケンスに結合させた。代替的には、蛍光性タンパクは、ペプチド又はポリペプチド（例えば、遺伝子構造体から形成される）と融合（例えば、融合タンパク）することができた。

補完的なポリペプチドシーケンスを発現する大腸菌溶解ライセートが、調製された（ポリライセート）。４０μＬのポリライセートを、１０μＬ補完ペプチド（ｐｅｐ）又は蛍光標識補完ペプチド（ｐｅｐ－ＴＭＲ）と混合し、室温で１０分間培養した。５０ｍＭ ＨＥＰＥＳ ｐＨ ７．４中の錯体（フリマジン）の１００μＭ基質５０μＬを加え、室温で３０分間培養した。ＴＥＣＡＮ Ｍ１０００により、４００～７００ｎｍに亘って、発光を計測した。

図２１は、ポリ／Ｐｅｐ錯体（ドナー）からＴＭＲ（受容体）への非常に効率の良いエネルギ移動及び発光する光の波長に対応するレッドシフトを例示する。

Ｂ）この実施例は小分子濃度又は酵素活性を検出すること等の検出に、ＢＲＥＴを用いることを実証する。エネルギ移動は、距離に大きく依存するため、エネルギ移動の程度はしばしば、システムの配置に関連し得る。例えば、カルシウムをキレート化するポリペプチドの挿入を用いて、エネルギ移動の調節を通してカルシウム濃度を計測することができる。

上記のようにセンサーの立体配置的を変更することを通して、又は蛍光性部分からのセンサーの切断を通して、距離をも変える酵素が、ここに記載されるシステムによって測定可能である。錯体の１つの構造上補完的なメンバーが、生物発光リポータタンパクの構造上補完的なペプチド及びポリペプチドが相互作用する際にエネルギが移動する蛍光性部分に、結合される。これの一例は、ペプチドが、リンカー（例えば、ＤＥＶＤカスパーゼ－３切断部位）を介して、蛍光性ダイに接合されるように作製されたペプチドセンサーである。補完的なポリペプチドに曝露されるとき、エネルギ移動は観察される。カスパーゼ－３に曝露されるとき、蛍光性部分は錯体から放たれ、エネルギ移動は排除されるが、４６０ｎｍの発光は維持される。

補完的なポリペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：８）及びＮＬ－ＨＴ（ＨａｌｏＴａｇに融合されるＮａｎｏＬｕｃ）が、精製された。８ｐＭのＮＬ－ＨＴ２０μＬを、１００ｎΜのＰＢＩ－３７８１２０μＬと混合し（その全体が参照事項として本願に包含される米国特許出願番号第１３／６８２，５８９号参照）、室温で１０分間培養した。ＮａｎｏＧｌｏ ４０μＬ＋１００μＭのフリマジンを加え、ＴＥＣＡＮ Ｍ１０００により、３００～８００ｎｍに亘って、発光を計測した。

３３ｎｇ／ｕＬの補完的なポリペプチド（ＳＥＱ ＩＤ ＮＯ：６）２０μＬを、約５００μＭのＰＢＩ－５０７４（蛍光性ダイ－リンカー－相補ペプチド）２０μLと混合した。ＮａｎｏＧｌｏ ４０μＬ＋１００μＭのフリマジンを加え、ＴＥＣＡＮ Ｍ１０００により、３００～８００ｎｍに亘って、発光を計測した。

図２２は、相補ペプチド／ポリペプチド錯体（ドナー）からＰＢＩ－５０７４のＴＯＭダイ（アクセプタ）へのエネルギ移動、及び、発光する光の波長に対応するレッドシフトを例示する。

Ｃ）三成分の相互作用
生物発光リポータタンパクの構造上補完的なペアによるエネルギ移動を用いて、相互作用する３つの分子を計測することも可能である。一例は、生物発光リポータタンパクの補完的なポリペプチドに融合されるＧＰＣＲ及び相互作用の際に生物発光錯体生成する生物発光リポータタンパクの補完的なペプチドに融合されるＧＰＣＲ相互作用タンパクである。これにより、二成分相互作用の測定が可能になる。エネルギ移動のために蛍光性部分を支持する小分子ＧＰＣＲリガンドが錯体と相互作用するなら、エネルギ移動が発生する。したがって、二成分タンパク－タンパク相互作用及び三成分の薬剤－タンパク－タンパク相互作用は、同じ実験で計測される。また、蛍光分子は、タンパクペアとの相互作用の際に、シグナルを発生させるのみであり、これは不活性タンパク（図２３）と相互作用しているリガンドから、あらゆるシグナルを除去する。

実施例２１
多成分ドナーとのＢＲＥＴ
以下の実施例は、リガンド－レセプタ相互作用は、各ドナー成分が同時に存在することが、発光には必要である多成分発光ドナーからのエネルギ移動を介して、モニター可能であることを実証する。この実施例では、ドナーは、２つの補完的なサブユニット、１１Ｓポリペプチド及びＰＥＰ－８０ペプチドから成る。１１ＳポリペプチドはＢＲＤ４のＮ末端基に遺伝子的に結合され、融合タンパクが、ＨＥＫ２９３細胞中に発現した。発光は、フリマジン（）及びＰＥＰ－８０相補ポリペプチドの両方の存在下でのみ、融合タンパクから生じた（図２４Ａ）。フリマジンのみ（ｐｅｐ－８０ペプチド無し）で培養された細胞ライセートは、大きなドナーシグナル又はアクセプタシグナルを発生させなかった（図２４Ａ、２５Ａ）。蛍光性ＢＲＤ４リガンド（ｉＢＥＴ－ＮＣＴ）の溶液が適用される場合は、ＰＥＰ－８０ペプチド（図２４Ｂ、２５Ａ、２５Ｂ）の存在下でのみ、ドーズ依存性ＢＲＥＴシグナルが発生する。更に、シグナル特異性（図２５Ａ）を示す非蛍光性ＢＲＤ４リガンドにより、このＢＲＥＴシグナルは、競合結合の間に低減され得る。

Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤを用い、ＨＥＫ２９３細胞を１１Ｓ－ＢＲＤ４ ＤＮＡでトランスフェクトし、９６－ウエルプレートフォーマットに接種した。トランスフェクションのため、１１Ｓ－ＢＲＤ４ ＤＮＡを、プロモーターを持たないキャリヤーＤＮＡ（ｐＧＥＭ３Ｚ）で希釈した。最終的なＤＮＡ濃度／ウェルは、５０ｎｇ／ウェルに維持されたが、１１Ｓ－ＢＲＤ４ ＤＮＡは、１：１０（９６ウェルフォーマットにおいて２０，０００の細胞／ウェルの接種密度）に希釈された。２０時間のトランスフェクション後、細胞は、１μＭのＰＥＰ－８０ペプチドの存在下又は不存在下、ＯｐｔｉＭＥＭ＋５０ｕｇ／ｍＬジギトニンに溶解された。細胞は次いで、特異性対照としての１０μＭのｉＢＥＴの存在下又は不存在下、段階希釈ｉＢＥＴ－ＮＣＴ（ＰＢＩ－４９６６）で処理された。１時間の培養の後、フリマジンを１０μＭで加え、ＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータでＢＲＥＴを検出した。

この実施例で例示される概念は、錯体のメンバーを多成分発光ドナーの成分にリンクすることにより、蛍光標識されたリガンドのタンパク錯体への近接度を検出することにも適用可能である（例えばヘテロダイマー又はホモダイマーレセプタへ選択的に結合するリガンドを検出する）。疾患関連性のあるタンパク錯体内のターゲットの関わりをモニターするため、本出願をこのように用いることができた。

実施例２２
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、タンパク錯体からのエネルギ移動を介して、細胞内リガンド－レセプタ相互作用をモニターすることができることを実証し、この場合、２つのタンパクの間の相互作用が容易になるよう、発光ドナー成分が近接であることが、発光のためには必要となる。この実施例では、ドナーは、２つのサブユニット、１１Ｓペプチド及び１１４ペプチドを備えている。１１Ｓペプチドは、ＢＲＤ４のＮ末端基に遺伝子的に結合され、１１４ペプチドは、ヒストンＨ３．３のＣ末端に遺伝子的に結合された。これらの融合タンパクは、ＨＥＫ２９３細胞内で同時に発現された。両方の融合体構築体（図２６Ａ）の存在下でのみ、融合タンパクから発光が生じた。１１Ｓ－ＢＲＤ４単独、Ｈ３．３－１１４単独、又は様々な対照構築体を発現する細胞では、大きなドナーシグナル又はアクセプタシグナル（図２６）が発生しなかった。蛍光性ＢＲＤ４リガンド（ｉＢＥＴ－ＮＣＴ／ＰＢＩ－４９６６）の溶液を適用する場合、ドーズ依存性アクセプタシグナルは、１１Ｓ－ＢＲＤ４及びヒストンＨ３．３－１１４で同時トランスフェクトされるサンプルにのみ、発生した（図２７）。ＢＲＥＴ比（６１０／４５０）として発現される場合、１１Ｓ及び１１４のサブユニット及びｉＢＥＴ－ＮＣＴの促進性錯体、又はＮＡＮＯＬＵＣ－ＢＲＤ４及びｉＢＥＴ－ＮＣＴ促進性錯体からのみ、特異的なＢＲＥＴが観察された。更に、シグナル特異性を示す非蛍光性ＢＲＤ４リガンド（ＩＢＥＴ １５１）の競合結合を通して、このＢＲＥＴシグナルは、ドーズ依存の様式で低減した（図２８）。

ＢＲＤ４ ＤＮＡ融合体構築体＋／－ヒストンＨ３．３ ＤＮＡ融合体構築体と共にＦｕｇｅｎｅ ＨＤを用いて、ＨＥＫ２９３細胞をトランスフェクトし、９６－ウエルプレートフォーマットの中に接種した。トランスフェクションのため、リポータ構築体は、プロモーターを持たないキャリヤーＤＮＡ（ｐＧＥＭ３Ｚ）で希釈された。最終的なＤＮＡ濃度／ウェルは、５０ｎｇ／ウェルに維持されたが、しかしながら、それぞれのＤＮＡ発現構築体は、１：１０に希釈された（９６ウェルフォーマット中２０，０００の細胞／ウェルの接種密度）。２０時間のトランスフェクション後、細胞を、特異性対照としての１０μＭのｉＢＥＴ１５１の存在下又は不存在下、段階希釈ｉＢＥＴ－ＮＣＴ（ＰＢＩ－４９６６）で処理した。ｉＢＥＴ－１５１がドーズ依存性の様式でｉＢＥＴ－ＮＣＴトレーサと競合可能であったかを決定するため、固定濃度のｉＢＥＴ－ＮＣＴ／ＰＢＩ－４９６６トレーサ（２μＭ）の存在下で、トランスフェクト細胞を、順次希釈ｉＢＥＴ－１５１で処理した。１時間の培養の後、フリマジンを１０μＭで加え、ＶａｒｉｏｓｋａｎルミノメータでＢＲＥＴを検出した。

この実施例で例示される概念は、錯体のメンバーを多成分発光ドナーの成分にリンクすることにより、蛍光標識されたリガンドのタンパク錯体への近接度を検出することにも適用可能である（例えばヘテロダイマー又はホモダイマーレセプタへ選択的に結合するリガンドを検出する）。本出願を、タンパク錯体内でのターゲットの関わりをモニターするために、用いることができた。更に、この技術は、疾患関連性の細胞内タンパク錯体に対して選択的な化合物の識別又はキャラクタリゼーションを実現することができた。

実施例２３
本発明の実施形態の開発中に、実験が行われ、ＢＲＥＴを用いた所与の系統学的ターゲットファミリーの中での推定上のターゲットのパネルに対して、薬剤の細胞内選択性及び親和性をプロファイリングする能力を実証した。この実施例では、細胞中のクラスＩ／ＩＩ／ＩＶ（非ｓｉｒｔｕｉｎ）ＨＤＡＣｓのパネル全体に対して、ボリノスタット（ＳＡＨＡ）の関わりがプロファイリングされる。先ず、ＢＲＥＴを用いた様々なＮＡＮＯＬＵＣ／ＨＤＡＣ融合体に対して、蛍光性ＳＡＨＡ誘導体（ＳＡＨＡ－ＮＣＴ）をプロファイリングする。個々のＮＡＮＯＬＵＣ／ＨＤＡＣ融合体とＳＡＨＡトレーサとの間でエネルギ移動が一旦確認されれば、それぞれのエネルギ移動錯体の競合破壊により、ＳＡＨＡの親和性が決定される。次いで親和性を、それぞれの実験で生じたＩＣ５０値により、推量することができる。更に、個々の領域への阻害剤の親和性を、ターゲットタンパクの分別された領域へのＮＡＮＯＬＵＣの遺伝子の融合を介して、決定することができる。

細胞中の個々のＨＤＡＣｓへのＳＡＨＡトレーサ親和性の決定。非サーチュインヒストンデアセチラーゼ（ＨＤＡＣｓ １－１１）の全体のファミリーで、ＮＡＮＯＬＵＣ融合体をコード化するプラスミドＤＮＡにより、ヒーラー細胞をトランスフェクトした。１：１００の質量比でそれぞれのＤＮＡ構築体を希釈することにより、細胞をトランスフェクトしてｐＧＥＭ３ＺキャリヤーＤＮＡとし、３：１の脂質：ＤＮＡ比で、Ｆｕｇｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を用いて、脂質ＤＮＡ錯体を生成した。次いでトランスフェクト細胞を、１ウェルにつき２０，０００セルの密度で、９６－ウエルプレートに接種した（全収率がＤＮＡ５０ｎｇ／ウェル）。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、２０μＭのＳＡＨＡ（非特異的ＢＲＥＴを定量するために用いられる後者のサンプル）の存在下又は不存在下、段階希釈ＰＢＩ－４９６８で培養した。細胞を、３７℃で２時間培養した。ＮＡＮＯＬＵＣ－発現サンプルに対して、フリマジンを１０μＭの最終濃度で加えた。次いでＢＲＥＴが、４５０ｎｍのバンドパスフィルタ及び６１０ｎｍのロングパスフィルタを備えたＢＭＧ Ｃｌａｒｉｏｓｔａｒルミノメータで計測された。６３０チャネルのシグナルを４５０チャネルのシグナルで除して、ＢＲＥＴ比を決定した。具体的なバックグラウンド補正ＢＲＥＴ値を決定するため、トレーサのそれぞれの濃度の非特異的なＢＲＥＴ値を、トレーサ単独でのＢＲＥＴ値から減じた。

実施例２４
以下の実施例は、ＢＲＥＴイメージングを用いた単細胞溶解での化合物の細胞内ターゲットへの結合を計測する能力を実証することに役立つ。この実施例は、生体細胞内における、ＳＡＨＡ及びその蛍光性誘導体、ＳＡＨＡ－ＮＣＴ（ＰＢＩ－４９６８）の、ＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６及びＨＤＡＣｌ０－ＮａｎｏＬｕｃへの結合を示す。

ＢＲＥＴイメージングによる生体細胞中におけるＳＡＨＡ及びＳＡＨＡ－ＮＣＴのＨＰＡＣ６及びＨＤＡＣ１０への結合の測定。それぞれＨＤＡＣ６及びＨＤＡＣ１０でＮａｎｏＬｕｃ融合体をコード化するプラスミドＤＮＡで、ヒーラー細胞をトランスフェクトした。１：１００の質量比でそれぞれのＤＮＡ構築体を希釈することにより、細胞をトランスフェクトしてｐＧＥＭ３ＺキャリヤーＤＮＡとし、３：１の脂質：ＤＮＡ比でＦｕｇｅｎｅ ＨＤ（Ｐｒｏｍｅｇａ Ｃｏｒｐｏｒａｔｉｏｎ）を加えることによって脂質ＤＮＡ錯体を生成した。トランスフェクション錯体を、細胞懸濁液（細胞１ｘ１０⁵個／ｍｌ）に混合し、その後、底部がガラスの３５ｍｍディッシュに、ディッシュ当たり２００，０００セルの密度で表面被覆をした（全収率がＤＮＡで５０ｎｇ／ウェル）。２４時間のトランスフェクション後、細胞培地を無血清培地（Ｏｐｔｉ－ＭＥＭ）と交換し、１０ｍＭのＳＡＨＡの存在下又は不存在下、２ｍＭのＰＢＩ－４９６８で培養した。細胞を、２時間３７℃で培養した。ＮａｎｏＬｕｃ－発現サンプルに、フリマジンを１０μＭの最終濃度で加えた。オリンパスＬＶ２００バイオ発光顕微鏡を用いて、サンプルを撮像した。ＢＲＥＴによりＮａｎｏＬｕｃ－ＨＤＡＣ６又はＨＤＡＣ１０－Ｎａｎｏｌｕｃのいずれかに対するＰＢＩ－４９６８の結合及び置換を計測するため、４９５ｎｍのショートパスフィルタ及び５９０ｎｍのロングパスフィルタをそれぞれ用いて、順次的なイメージを取得した（図３４及び３５）。イメージ分析プログラムイメージを使用して、個々の細胞を代表するイメージセクションを量的に分析した。５９０のチャネルで得られた値を、４５０のチャネルの値で除すことにより、ＢＲＥＴ比を決定した。それぞれのサンプルに対して、最低１００個の細胞を分析した。全てのデータを、ドットプロットフォーマットで纏めた（図３６）。以下の３つの異なるサンプルから得られるＢＲＥＴ値の比較分析により、ＳＡＨＡ及びＳＡＨＡ－ＮＣＴの特異的な結合を実証した。
サンプル１－ネガティブ対照（非処理）。
サンプル２－ポジティブ対照（２ｍＭ ＰＢＩ－４９６８）。
サンプル３－トレーサ置換（２ｍＭ ＰＢＩ－４９６８＋１０ｍｍ ＳＡＨＡ）。

これらの結果により、単一細胞レベル上での、ＰＢＩ－４９６８並びにＳＡＨＡの、ＨＤＡＣファミリー（ＨＤＡＣ６及び１０）の異なるメンバーへの細胞取り込み及び特異的な結合が、実証される。これらの結果は、取り込みや結合の程度が細胞集団内で大きく変化することを、示唆している。イメージベースのＢＲＥＴアッセイフォーマットにより、単一細胞レベルでターゲットに特異的な化合物結合を分析して、細胞型、細胞集密度、細胞周期状態及び分析のために単細胞溶解を必要とする他の生理学的パラメータに基づく相違を決定することが可能になる。

本出願の中に説明され、及び／又は以下に列挙される、全ての出版物及び特許は、参照事項として本願に包含される。ここに記載された本発明の方法及び組成物の様々な修正及び変更が、本発明の範囲及び本質を逸脱しない範囲で、当業者に明らかである。本発明を、具体的な好ましい実施形態に関連して記載してきたが、請求の範囲で主張される本発明が、この具体的な実施形態に過度に限定されてはならないことを理解すべきである。実際、本発明を遂行するための記載されたモードの、関連性のある分野の当業者に明らかな様々な修正は、以下の特許請求の範囲内に収まることを意図するものである。

本発明のまた別の態様は、以下のとおりであってもよい。
〔１〕アッセイシステムであって、
（ａ）蛍光体に結合される生物活性剤と、
（ｂ）生物発光リポータに融合される細胞ターゲットと、
（ｃ）生物発光リポータの基質と、
を有するアッセイシステム。
〔２〕前記生物活性剤は、小分子である、前記〔１〕に記載のシステム。
〔３〕前記蛍光体は、カルボキシローダミン類似体である、前記〔１〕に記載のシステム。
〔４〕前記生物発光リポータは、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１と少なくとも７０％の配列同一性を有するポリペプチドを含む、前記〔１〕に記載のシステム。
〔５〕前記（ａ）及び前記（ｂ）が、細胞中に存在する、前記〔１〕に記載のシステム。
〔６〕前記（ｂ）が、融合体として細胞内に発現される、前記〔５〕に記載のシステム。
〔７〕前記（ａ）が、細胞外で加えられ、かつ、細胞に進入する、前記〔５〕に記載のシステム。
〔８〕前記細胞ターゲットが、生物活性剤の結合パートナーである、前記〔１〕に記載のシステム。
〔９〕前記生物発光リポータの発光スペクトラムが、前記蛍光体の吸収スペクトルと重なる、前記〔８〕に記載のシステム。
〔１０〕前記生物活性剤の前記細胞ターゲットへの結合において、前記生物発光リポータによる前記基質の反応生成物への変換により、ＢＲＥＴによる前記蛍光体の励起及び前記蛍光体からの蛍光発光が生じる、前記〔９〕に記載のシステム。
〔１１〕前記（ａ）は、前記蛍光体に結合される前記生物活性剤のライブラリの１つである、前記〔１〕に記載のシステム。
〔１２〕前記（ｂ）は、前記生物発光リポータに融合される複数の細胞ターゲットの１つである、前記〔１〕に記載のシステム。
〔１３〕前記生物活性剤又は前記蛍光体に結合される前記生物活性剤が、非自然の化学合成によって生成される、前記〔１〕に記載のシステム。
〔１４〕生物活性剤の細胞ターゲットへの結合を検出する方法であって、前記〔１〕～〔１３〕の一つに記載のシステムを有する、方法。
〔１５〕前記〔１〕～〔１３〕の一つに記載のシステムを有する、細胞。
〔１６〕生物活性剤と細胞ターゲットと間の相互作用を検出するための方法であって、
（ａ）前記細胞ターゲットの融合体及び第１の波長でエネルギを発光する生物発光リポータが、細胞内で発現することと、
（ｂ）蛍光体に結合した前記生物活性剤に、前記細胞を接触させることと、ここで、前記蛍光体は前記第１の波長でエネルギを受け、かつ、第２の波長でエネルギを発光し、
（ｃ）前記生物発光リポータの基質に、前記細胞を接触させることと、
（ｄ）前記第２の波長のエネルギを検出することと、ここで、前記第２の波長での前記エネルギの存在は、前記細胞ターゲットで前記生物活性剤の相互作用を示し、
を有する方法。

Claims (4)

1. アッセイシステムであって、
   （ａ）小分子蛍光体に結合された異なる生物活性小分子のライブラリ、
   （ｂ）細胞ターゲットと生物発光リポータのタンパク質融合体を発現する細胞、
   ここで、該生物活性小分子は、該細胞ターゲットと相互作用したときに、該細胞ターゲットに非共有結合的に結合することができ、かつ
   該生物発光リポータの発光スペクトラムが該小分子蛍光体の励起スペクトルと重なる；及び
   （ｃ）該生物発光リポータの基質；
   を含み、
   前記蛍光体は、カルボキシローダミン類似体である、前記システム。
2. 前記生物発光リポータは、ＳＥＱ ＩＤ Ｎｏ．１のポリペプチドを含む、請求項１に記載のシステム。
3. 前記生物活性小分子が細胞透過性である、請求項１に記載のシステム。
4. 生物発光リポータに融合された異なる細胞ターゲットを発現する複数の細胞を含む、請求項１に記載のシステム。

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