JP6960508B1 - 試料中のウイルス抗原を測定する方法、抗体セット及び試薬キット - Google Patents
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Abstract
Description
・CDRH1:TSGTGVS (配列番号1)
・CDRH2:HIYWDDDKRYNPSLKS (配列番号2)
・CDRH3:SNYGYDLDY (配列番号3)
・CDRL1:KASQNVGTNVV (配列番号4)
・CDRL2:SASYRYS (配列番号5)
・CDRL3:QQYNNYPLT (配列番号6)
・CDRH1:DYYMY (配列番号7)
・CDRH2:TISDGGSYTYYPDSVKG (配列番号8)
・CDRH3:AADYGGYFDY (配列番号9)
・CDRL1:SASQGISN (配列番号10)
・CDRL2:YTSSLHS (配列番号11)
・CDRL3:QQYSKLPYT (配列番号12)
・重鎖可変領域
QVTLKESGPGILQPSQTLSLTCSFSGFSLSTSGTGVSWIRQPSGKGLEWLAHIYWDDDKRYNPSLKSRLTVSKDTSGNQVFLKITSVDTADTATYYCARSNYGYDLDYWGQGTTLTVSS (配列番号13)
・軽鎖可変領域
DIVMTQSQKFMSTSVGDRVSVTCKASQNVGTNVVWYQQKPGQSPKALIYSASYRYSGVPDRFTGSGSGTDFTLTISNVQSEDLAEYFCQQYNNYPLTFGSGTKLEIKRA (配列番号14)
・重鎖可変領域
EVQLVESGGGLVKPGGSLKLSCAASGFTFSDYYMYWVRQTPEKRLEWVATISDGGSYTYYPDSVKGRFTISRDNAKNNLYLQMSSLKSDDTAKYYCARAADYGGYFDYWGQGTTLTVSS (配列番号15)
・軽鎖可変領域
DIQLTQTTSSLSASLGDRVTISCSASQGISNYLNWYQQKPDGTVKLLIYYTSSLHSGVPSRFSGSGSGTDYSLTISNLEPEDIATYYCQQYSKLPYTFGGGTKLEIKRA (配列番号16)
(1) 抗原の作製
SARS-CoVのゲノムRNA配列(GenBankのアクセッション番号:AY274119)を用いて、Fujimoto K.ら, 2008, J. Clin. Microbiol., vol.46, p.302-310に記載の方法により、SARS-CoVのNタンパク質をコードする全長cDNAを合成した。得られたcDNAを、pQE30ベクター(QIAGEN社)のHisタグ(6つのヒスチジン残基)をコードする配列の下流に組み込んで、SARS-CoV NP発現ベクターを得た。得られた発現ベクターを用いて、常法により、大腸菌にHisタグ付加組換え型Nタンパク質を発現させた。常法により、大腸菌を溶解して可溶性画分を取得し、組換え型Nタンパク質をHis-Trap HPカラム(QIAGEN社)で精製した。
作製した組換え型Nタンパク質及び完全フロイントアジュバントの混合物でBalb/cマウス(7週齢、メス)を免疫し、Kohler G.及びMilstein C., Nature, vol.256, pp.495-497, 1975に記載の方法により、SARS-CoVのNタンパク質に対する抗体を産生するハイブリドーマを作製した。得られたハイブリドーマについて、抗原に反応性を示す抗体を産生する株をELISA法により選択した。選択したハイブリドーマを限界希釈法によりクローニングし、抗体を安定に産生する株をさらに選択した。これにより、SARS-CoVのNタンパク質と特異的に結合する抗体を産生する2種のハイブリドーマを得た。以下、これらのハイブリドーマを「クローン1」及び「クローン2」とも呼ぶ。
取得した各ハイブリドーマの培養上清(10O mL)を0.22μmフィルタ一でろ過して不溶物を除去した。ろ過した培養上清を、1mLのProtein G-sepharose 4B(GE Healthcare社)を充填したカラムに通し、抗体をカラムに吸着させた。カラムから非特異吸着分を除去した後、カラムを酸性条件におくことでモノクローナル抗体を遊離させた。回収したモノクローナル抗体を、100倍量のリン酸緩衝生理食塩水(PBS)で透析して精製した。以下、クローン1のハイブリドーマの培養上精から精製したモノクローナル抗体を「第1抗体」とも呼び、クローン2のハイブリドーマの培養上精から精製したモノクローナル抗体を「第2抗体」とも呼ぶ。
取得した各ハイブリドーマからtotal RNAを抽出し、5'-RACE法により、重鎖及び軽鎖の可変領域を含む部位をコードするcDNAを合成した。得られたcDNAをプラスミドベクターに組み込み、各抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域をコードする塩基配列をシーケンシングにより解析した。取得した塩基配列からアミノ酸配列を予測し、カバット法に基づく各抗体の重鎖及び軽鎖の可変領域のアミノ酸配列を取得した。また、各CDRのアミノ酸配列を取得した。
・重鎖可変領域
QVTLKESGPGILQPSQTLSLTCSFSGFSLSTSGTGVSWIRQPSGKGLEWLAHIYWDDDKRYNPSLKSRLTVSKDTSGNQVFLKITSVDTADTATYYCARSNYGYDLDYWGQGTTLTVSS (配列番号13)
・軽鎖可変領域
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・CDRH1:TSGTGVS (配列番号1)
・CDRH2:HIYWDDDKRYNPSLKS (配列番号2)
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・重鎖可変領域
EVQLVESGGGLVKPGGSLKLSCAASGFTFSDYYMYWVRQTPEKRLEWVATISDGGSYTYYPDSVKGRFTISRDNAKNNLYLQMSSLKSDDTAKYYCARAADYGGYFDYWGQGTTLTVSS (配列番号15)
・軽鎖可変領域
DIQLTQTTSSLSASLGDRVTISCSASQGISNYLNWYQQKPDGTVKLLIYYTSSLHSGVPSRFSGSGSGTDYSLTISNLEPEDIATYYCQQYSKLPYTFGGGTKLEIKRA (配列番号16)
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・CDRL1:SASQGISN (配列番号10)
・CDRL2:YTSSLHS (配列番号11)
・CDRL3:QQYSKLPYT (配列番号12)
製造例で得た第1抗体及び第2抗体を用いて、全自動免疫測定装置のための試薬を調製し、これらの試薬によりSARS-CoV-2のNタンパク質を測定した。
ウイルス抗原として、SARS-CoV-2の組換え型Nタンパク質であるSARS-CoV-2 Nucleocapsid-His recombinant Protein (Sino Biological社)を用いた。この抗原を抽出試薬又は希釈用バッファーで希釈して、100 pg/mL、1,000 pg/mL又は10,000 pg/mLの濃度でウイルス抗原を含む抗原溶液を調製した。抽出試薬の組成は、0.3% NP-40 (ポリオキシエチレン(9)オクチルフェニルエーテル)、15 mM EDTA・2Na、60 mM NaOH、6 mM ACES (N-(2-アセトアミド)-2-アミノエタンスルホン酸)、0.22 M NaCl及び15 mM NaN3であり、pHは7.0であった。希釈用バッファーの組成は、80 mMトリエタノールアミン塩酸塩、1% BSA及び0.1% NaN3であり、pHは7.5であった。
R1試薬(捕捉抗体を含む試薬)は、第1抗体又は第2抗体を慣用の手法によりビオチンで標識して、R1試薬用バッファー(100 mM HEPES、150 mM NaCl、25 mM EDTA・2Na、2.5%カゼインNa、1% BSA、0.09% NaN3、0.015% Antifoam SI、pH7.5)に溶解して調製した。R1試薬中の各抗体の濃度は1μg/mLであった。R2試薬(固相)として、ストレプトアビジン固定化磁性粒子を含むHISCL R2試薬(シスメックス株式会社)を用いた。R3試薬(検出抗体を含む試薬)は、第1抗体又は第2抗体を慣用の手法によりアルカリホスファターゼ(ALP)で標識して、R3試薬用バッファー(100 mM MES、150 mM NaCl、1 mM MgCl2、0.1 mM ZnCl2、1% BSA、50 mg/LスカベンジャーALP、0.09% NaN3、0.015% Antifoam SI、pH6.5)に溶解して調製した。R3試薬中の各抗体の濃度は400 ng/mLであった。R4試薬(測定用バッファー)として、HISCL R4試薬(シスメックス株式会社)を用いた。R5試薬(基質溶液)として、CDP-Star(登録商標)を含むHISCL R5試薬(シスメックス株式会社)を用いた。磁性粒子の洗浄液として、HISCL洗浄液(シスメックス株式会社)を用いた。
上記のR1〜R5試薬を用いて全自動免疫測定装置HISCL-800(シスメックス株式会社)により、測定を行った。まず、捕捉抗体として第1抗体を用い、検出抗体として第2抗体を用いて測定を行った。具体的な操作は、次のとおりであった。第1抗体を含むR1試薬(60μL)に抗原溶液(10μL)を加えて混合した後、R2試薬(30μL)を加えて混合した。得られた混合液中の磁性粒子を集磁して上清を除き、HISCL洗浄液(300μL)を加えて磁性粒子を洗浄した。上清を除き、磁性粒子に、第2抗体を含むR3試薬(60μL)を添加して混合した。得られた混合液中の磁性粒子を集磁して上清を除き、HISCL洗浄液(300μL)を加えて磁性粒子を洗浄した。上清を除き、磁性粒子にR4試薬(50μL)及びR5試薬(100μL)を添加し、よく混合して、化学発光強度を測定した。次いで、捕捉抗体として第2抗体を用い、検出抗体として第1抗体を用いて測定を行った。この測定は、第1抗体を含むR1試薬に替えて、第2抗体を含むR1試薬を用い、第2抗体を含むR3試薬に替えて、第1抗体を含むR3試薬を用いたこと以外は上記と同様にして行った。また、バックグラウンドを測定するため、抗原溶液に替えて、抗原を含まない抽出試薬又は希釈用バッファーを用いたこと以外は上記と同様にして、測定を行った。各抗原溶液の測定値及びバックグラウンドから、測定のSN比を算出した。
各測定のSN比を表1に示す。表中、「測定1」とは、捕捉抗体として第1抗体を用い、検出抗体として第2抗体を用いた測定であり、「測定2」とは、捕捉抗体として第2抗体を用い、検出抗体として第1抗体を用いた測定である。「抗原溶液A」とは、希釈用バッファーを用いて調製した抗原溶液であり、「抗原溶液B」とは、抽出試薬を用いて調製した抗原溶液である。
第1抗体及び第2抗体をそれぞれ捕捉抗体及び検出抗体として用いる免疫学的測定により、SARS-CoV及びMEAS-CoVのNタンパク質を測定できるか否かを検討した。比較のため、SARS-CoV-2のNタンパク質も測定した。
ウイルス抗原として、製造例で作製したSARS-CoVの組換え型Nタンパク質、実施例1と同じ市販のSARS-CoV-2の組換え型Nタンパク質、及びMERS-CoVの組換え型Nタンパク質を用いた。なお、MERS-CoVの組換え型Nタンパク質は、公知のカイコ発現系を用いて常法により作製された。これらの組換え型Nタンパク質を実施例1の希釈用バッファーで希釈して、100 pg/mLの濃度で各ウイルス抗原を含む抗原溶液を調製した。
試薬は、実施例1で調製した第1抗体を含むR1試薬及び第2抗体を含むR3試薬、並びにHISCL R2試薬、HISCL R4試薬及びHISCL R5試薬(いずれもシスメックス株式会社)を用いた。これらの試薬を用いてHISCL-800(シスメックス株式会社)により、実施例1と同様にして、各抗原溶液を測定した。また、バックグラウンドとして、抗原溶液に替えて、抗原を含まない希釈用バッファーを用いたこと以外は上記と同様にして、測定を行った。各測定の発光強度(HISCLカウント値)を表2に示す。
表2から分かるように、SARS-CoV-2及びSARS-CoVのNタンパク質を測定したときの発光強度は、バックグラウンドに比べて顕著に高かった。一方、MERS-CoVのNタンパク質を測定したときの発光強度は、バックグラウンドと同程度であった。これらのことから、第1抗体及び第2抗体は、SARS-CoV-2及びSARS-CoVのNタンパク質とサンドイッチ免疫複合体を形成するが、MERS-CoVのNタンパク質とはサンドイッチ免疫複合体を形成しないことが示唆された。
第1抗体及び第2抗体をそれぞれ捕捉抗体及び検出抗体として用いる免疫学的測定により、HCoV-OC43、HCoV-NL63及びHCoV-229のウイルス抗原を測定できるか否かを検討した。
ウイルス抗原として、HCoV-OC43、HCoV-NL63及びHCoV-229Eの不活化溶液であるCoronavirus Strain: OC43 Lysate (1 mg)、Coronavirus Strain: NL63 Lysate (1 mg)及びCoronavirus Strain: 229E Lysate (1 mg)(いずれもZeptoMetrix社)を用いた。これらの不活化溶液は、精製したウイルスを、界面活性剤を含む溶液で溶解し、加熱により不活化して調製され、タンパク質を1 mg含む。これらの不活化溶液を実施例1の希釈用バッファーで希釈して、10 ng/mL、100 ng/mL又は1,000 ng/mLの濃度でタンパク質を含む抗原溶液を調製した。
実施例2と同じR1〜R5試薬を用いてHISCL-800(シスメックス株式会社)により、実施例1と同様にして、各抗原溶液を測定した。また、バックグラウンドとして、抗原溶液に替えて、抗原を含まない希釈用バッファーを用いたこと以外は上記と同様にして、測定を行った。各測定の発光強度(HISCLカウント値)を表3に示す。
表3から分かるように、HCoV-OC43、HCoV-NL63及びHCoV-229Eの不活化溶液に含まれるタンパク質を測定したときの発光強度は、バックグラウンドと同程度であった。このことから、第1抗体及び第2抗体は、HCoV-OC43、HCoV-NL63及びHCoV-229Eのウイルス抗原とはサンドイッチ免疫複合体を形成しないことが示唆された。
第1抗体及び第2抗体をそれぞれ捕捉抗体及び検出抗体として用いる免疫学的測定の検出限界を、SARS-CoV-2のNタンパク質を低濃度で含む抗原溶液を用いて検討した。
ウイルス抗原として、SARS-CoV-2 Nucleocapsid-His recombinant Protein (Sino Biological社)を用いた。この抗原をキャリブレータ希釈用バッファー又は実施例1の抽出試薬に添加して、1 pg/mL、2 pg/mL、3 pg/mL、4 pg/mL、5 pg/mL、又は10 pg/mLの濃度でウイルス抗原を含む抗原溶液を調製した。抗原溶液は、各濃度について10個ずつ調製した(n=10)。キャリブレータ希釈用バッファーとは、界面活性剤を含まず、検量線作成用の標準物質溶液を希釈するためのバッファーである。キャリブレータ希釈用バッファーの組成は、80 mMトリエタノールアミン塩酸塩、1% BSA及び0.1% NaN3であり、pHは7.5であった。
(2) 測定
実施例2と同じR1〜R5試薬を用いてHISCL-800(シスメックス株式会社)により、実施例1と同様にして、各抗原溶液を測定した。また、バックグラウンドとして、抗原溶液に替えて、抗原を含まないキャリブレータ希釈用バッファー又は抽出試薬を用いたこと以外は上記と同様にして、測定を行った。各抗原溶液についての発光強度(HISCLカウント値)の平均値(Av)、標準偏差(SD)及び変動係数(CV)を表4に示す。表中、「抗原溶液C」とは、キャリブレータ希釈用バッファーを用いて調製した抗原溶液であり、「抗原溶液D」とは、抽出試薬を用いて調製した抗原溶液である。また、抗原濃度に対して発光強度の平均値をプロットしたグラフを図2A及びBに示す。
図2A及びBから分かるように、SARS-CoV-2のNタンパク質を10 pg/mL以下の低い濃度で含む試料であっても、抗原濃度に応じたシグナルが検出された。表4より、キャリブレータ希釈用バッファーを用いて調製した抗原溶液については、検出限界(LoD)は1 pg/mL以上であり、抽出試薬を用いて調製した抗原溶液については、LoDは2 pg/mL以上であった。
SARS-CoV-2を含む市販の生体試料を本実施形態の測定方法及びPCR法で測定し、各方法で得られた測定値を比較して、本実施形態の測定方法とPCR法との間に相関が認められるか否かを検討した。
SARS-CoV-2感染患者の鼻咽頭拭い液(36検体)をCantor Bioconnect社より購入した。各検体(500μL)と実施例1の抽出試薬(500μL)とを混合して、抗原溶液を調製した。得られた抗原溶液は、免疫学的測定に用いた。また、QIAamp Viral RNA Mini kit (QIAGEN社)を用いて、上記の各検体からRNAを抽出した。得られたRNA溶液は、PCR法による測定に用いた。
実施例2と同じR1〜R5試薬を用いてHISCL-800(シスメックス株式会社)により、実施例1と同様にして、抗原溶液を測定した。また、バックグラウンドとして、抗原溶液に替えて、抗原を含まないキャリブレータ希釈用バッファーを用いたこと以外は上記と同様にして、測定を行った。
PCR法による測定は、国立感染症研究所により作成された「病原体検出マニュアル 2019-nCoV Ver.2.9.1」(令和2(2020)年3月19日)に記載の「TaqManプローブを用いたリアルタイムone-step RT-PCR法による2019-nCoVの検出」の手順に従って行った。リアルタイムRT-PCR試薬として、QuantiTect(登録商標) Probe RT-PCR kit (QIAGEN社)を用いた。増幅反応は、当該キットに添付のマニュアルに記載の条件を用いて行った。リアルタイムRT-PCRに用いたプライマーセット及びプローブの配列は下記のとおりであった。以下、「FAM」は蛍光色素(フルオロセインアミダイト)を示し、「BHQ」はブラックホールクエンチャーを示す。
Reverse:5'- GAGGAACGAGAAGAGGCTTG -3'(配列番号18)
Probe: 5'- FAM-ACTTCCTCAAGGAACAACATTGCCA-BHQ -3'(配列番号19)
X軸に発光強度(HISCLカウント値)をとり、Y軸にウイルスRNA濃度(copies/μL)をとったXY平面に、各検体についての本実施形態の測定方法及びPCR法による測定値をプロットした。得られたグラフを図3に示す。図3から分かるように、本実施形態の測定方法とPCR法との間に相関が認められることが示唆された。
12、22、32: 第1容器
13、23、33: 第2容器
34: 第3容器
14、24、35: 梱包箱
15、25、36: 添付文書
Claims (26)
- 捕捉抗体及び検出抗体を用いて試料中のウイルス抗原を測定する方法であって、
前記捕捉抗体と前記ウイルス抗原と前記検出抗体とを含むサンドイッチ免疫複合体を形成する工程を含み、
前記捕捉抗体が、配列番号1のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号2のアミノ酸配列を含むCDR2及び配列番号3のアミノ酸配列を含むCDR3を含む重鎖可変領域と、配列番号4のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号5のアミノ酸配列を含むCDR2及び配列番号6のアミノ酸配列を含むCDR3を含む軽鎖可変領域とを含み、
前記検出抗体が、配列番号7のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号8のアミノ酸配列を含むCDR2及び配列番号9のアミノ酸配列を含むCDR3を含む重鎖可変領域と、配列番号10のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号11のアミノ酸配列を含むCDR2及び配列番号12のアミノ酸配列を含むCDR3を含む軽鎖可変領域とを含む、
ウイルス抗原の測定方法。 - 前記捕捉抗体及び前記検出抗体が、SARS-CoV又はSARS-CoV-2のヌクレオタンパク質とサンドイッチ免疫複合体を形成するが、MERS-CoVのヌクレオタンパク質、並びに、HCoV-OC43、HCoV-NL63及びHCoV-229のウイルス抗原とはサンドイッチ免疫複合体を形成しない請求項1に記載の方法。
- 前記捕捉抗体が、配列番号13のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域と、配列番号14のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域とを含み、前記検出抗体が、配列番号15のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域と、配列番号16のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域とを含む請求項1又は2に記載の方法。
- 前記捕捉抗体及び前記検出抗体が、互いに同一又は異なって、IgG、還元型IgG、Fab、Fab'、F(ab')2、Fv、scFv、ダイアボディ又はトリアボディである請求項1〜3のいずれか1項に記載の方法。
- 前記試料が、生体試料である請求項1〜4のいずれか1項に記載の方法。
- 前記ウイルス抗原が、SARS-CoV又はSARS-CoV-2のヌクレオタンパク質である請求項1〜5のいずれか1項に記載の方法。
- 前記捕捉抗体が、固相に固定されている請求項1〜6のいずれか1項に記載の方法。
- 前記固相が、磁性粒子又はマイクロプレートである請求項7に記載の方法。
- 前記検出抗体が、標識物質で標識されている請求項1〜8のいずれか1項に記載の方法。
- 前記標識物質が、アルカリホスファターゼ、ペルオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、グルコシダーゼ、ポリフェノールオキシダーゼ、チロシナーゼ、酸性ホスファターゼ及びルシフェラーゼからなる群より選択される少なくとも1つの酵素である請求項9に記載の方法。
- 免疫学的測定法により試料中のウイルス抗原を測定するための抗体セットであって、
前記抗体セットが、前記免疫学的測定法において前記ウイルス抗原とサンドイッチ免疫複合体を形成する捕捉抗体及び検出抗体を含み、
前記捕捉抗体が、配列番号1のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号2のアミノ酸配列を含むCDR2及び配列番号3のアミノ酸配列を含むCDR3を含む重鎖可変領域と、配列番号4のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号5のアミノ酸配列を含むCDR2及び配列番号6のアミノ酸配列を含むCDR3を含む軽鎖可変領域とを含み、
前記検出抗体が、配列番号7のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号8のアミノ酸配列を含むCDR2及び配列番号9のアミノ酸配列を含むCDR3を含む重鎖可変領域と、配列番号10のアミノ酸配列を含むCDR1、配列番号11のアミノ酸配列を含むCDR2及び配列番号12のアミノ酸配列を含むCDR3を含む軽鎖可変領域とを含む、
ウイルス抗原測定用抗体セット。 - 前記捕捉抗体及び前記検出抗体が、SARS-CoV又はSARS-CoV-2のヌクレオタンパク質とサンドイッチ免疫複合体を形成するが、MERS-CoVのヌクレオタンパク質、並びに、HCoV-OC43、HCoV-NL63及びHCoV-229のウイルス抗原とはサンドイッチ免疫複合体を形成しない請求項11に記載の抗体セット。
- 前記捕捉抗体が、配列番号13のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域と、配列番号14のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域とを含み、前記検出抗体が、配列番号15のアミノ酸配列を含む重鎖可変領域と、配列番号16のアミノ酸配列を含む軽鎖可変領域とを含む請求項11又は12に記載の抗体セット。
- 前記捕捉抗体及び前記検出抗体が、互いに同一又は異なって、IgG、還元型IgG、Fab、Fab'、F(ab')2、Fv、scFv、ダイアボディ又はトリアボディである請求項11〜13のいずれか1項に記載の抗体セット。
- 前記試料が、生体試料である請求項11〜14のいずれか1項に記載の抗体セット。
- 前記ウイルス抗原が、SARS-CoV又はSARS-CoV-2のヌクレオタンパク質である請求項11〜15のいずれか1項に記載の抗体セット。
- 前記捕捉抗体が、固相に固定されている請求項11〜16のいずれか1項に記載の抗体セット。
- 前記固相が、磁性粒子又はマイクロプレートである請求項17に記載の抗体セット。
- 前記検出抗体が、標識物質で標識されている請求項11〜18のいずれか1項に記載の抗体セット。
- 前記標識物質が、アルカリホスファターゼ、ペルオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、グルコシダーゼ、ポリフェノールオキシダーゼ、チロシナーゼ、酸性ホスファターゼ及びルシフェラーゼからなる群より選択される少なくとも1つの酵素である請求項19に記載の抗体セット。
- 請求項1〜4のいずれか1項に記載の捕捉抗体及び検出抗体を含む、試薬キット。
- 前記捕捉抗体が、固相に固定されている請求項21に記載の試薬キット。
- 前記固相が、磁性粒子又はマイクロプレートである請求項22に記載の試薬キット。
- 前記検出抗体が、標識物質で標識されている請求項21〜23のいずれか1項に記載の試薬キット。
- 前記標識物質が、アルカリホスファターゼ、ペルオキシダーゼ、β−ガラクトシダーゼ、グルコシダーゼ、ポリフェノールオキシダーゼ、チロシナーゼ、酸性ホスファターゼ及びルシフェラーゼからなる群より選択される少なくとも1つの酵素である請求項24に記載の試薬キット。
- 前記酵素に対する基質をさらに含む、請求項25に記載の試薬キット。
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