JP6557646B2 - 上皮細胞成長因子受容体ターゲティング治療に対する癌の応答性を決定する方法 - Google Patents
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Description
本出願は、35 U.S.C. §119(e)下において、2004年3月31日に出願の米国仮出願第60/558,218号、2004年4月9日に出願の米国仮出願第60/561,095号、2004年4月27日に出願の米国仮出願第60/565,753号、2004年4月27日に出願の米国仮出願第60/565,985号、2004年5月25日に出願の米国仮出願第60/574,035号、2004年6月7日に出願の米国仮出願第60/577,916号、および2004年7月29日に出願の米国仮出願第60/592,287号の利益を主張し、これらの内容は、その全体が本明細書に参照として組み入れられる。
本発明は、National Institutes for Health (NIH)助成金番号RO1 CA 092824、P50 CA 090578、PO1 95281、および1K12CA87723-01によって支援されており、米国政府は、これらに対して一定の権利を有する。
上皮細胞癌、たとえば前立腺癌、乳癌、大腸癌、肺癌、膵癌、卵巣癌、脾臓癌、精巣癌、胸腺の癌などは、上皮細胞の異常な増殖が促進されることによって特徴づけられる疾患である。この増殖の促進により、最初に腫瘍形成が生じる。最終的には、他の器官部位への転移をも生じ得る。種々の癌の診断および治療は、進歩してきたが、これらの疾患は、なおもかなりの死亡率を生じる。
ゲフィチニブ(イレッサ(登録商標))などのチロシンキナーゼ阻害剤(TKI)療法は、上記癌で冒されている大多数の個体では有効でない。本発明の発明者らは、驚くべきことに、EGFRのキナーゼドメインに体細胞突然変異が存在するとイレッサ、タルセバなどのTKIに対するEGFRの感受性を実質的に増大することを発見した。たとえば、このような癌を有する患者の30%未満が現在のTKIによる治療に感受性であるが、EGFRキナーゼドメインに突然変異を有する患者の50%、より好ましくは60、70、80、90%以上が感受性である。加えて、これらの突然変異は、EGFRのキナーゼ活性を増大される。したがって、これらの突然変異を有する患者は、現在のチロシンキナーゼ阻害剤(TKI)療法、たとえばゲフィチニブに応答する可能性が高い。
を含む。
本発明は、癌に冒されている患者における上皮細胞成長因子受容体(EGFR)ターゲティング治療の有効な可能性を決定するための新規方法を提供する。本方法は、該患者のerbB 1遺伝子のキナーゼドメインにおける少なくとも1つの核酸相違の有無を検出することを含む。少なくとも1つの相違の存在は、EGFRターゲティング治療が有効である可能性が高いことを示す。好ましくは、核酸相違は、EGFRのキナーゼ活性を増大する。次いで、EGFRターゲティング治療で患者を治療することができる。本発明の一つの態様において、EGFRターゲティング治療は、チロシンキナーゼ阻害剤である。好ましい態様において、チロシンキナーゼ阻害剤は、アニリノキナゾリンである。アニリノキナゾリンは、合成アニリノキナゾリンであってもよい。好ましくは、合成アニリノキナゾリンは、ゲフィチニブまたはエルロチニブである。
「erbB 1」、「上皮細胞成長因子受容体」、および「EGFR」という用語は、本明細書において交換可能に使用され、たとえば、Carpenter et al. Ann. Rev. Biochem. 56:881-914 (1987)に開示されるような、天然の配列EGFRをいい、これらの変異体を含む(たとえば、Humphrey et al. PNAS (USA) 87:4207-4211 (1990)に記載の欠失変異体EGFR)。erbB 1は、EGFRタンパク質産物をコードする遺伝子をいう。
抗体断片、たとえばFab、Fab'、F(ab')2、およびFvのみからなる抗体であって、CDRが非ヒト供与源に由来し、かつIg分子の残りの部分またはこれらの断片がヒト抗体に由来する、好ましくはヒト抗体をコードする核酸配列から産生される抗体を記載するために使用される。
癌に冒されているか、または発症するリスクのある患者におけるerbB 1遺伝子のキナーゼドメインの相違の特定の相違または複数の相違の有無の検出は、さまざまな方法で行われる。このような試験は、一般に生体試料、たとえば組織生検、尿、糞便、痰、血液、細胞、組織掻爬、乳房吸引液、もしくはその他の細胞物質から収集したDNAまたはRNAを使用して行われ、PCR、対立遺伝子特異的プローブでのハイブリダイゼーション、酵素突然変異検出、ミスマッチの化学開裂、質量分析、またはミニシーケンシングを含むDNAシーケンシングを含む(しかし、これらに限定されるわけではない)種々の方法によって行うことができる。特定の態様において、対立遺伝子特異的プローブとのハイブリダイゼーションは、2つの形式:(1)多くのDNAチップ適用と同様に、固相(ガラス、シリコン、ナイロン膜)に結合された対立遺伝子特異的オリゴヌクレオチドおよび溶液中の標識された試料、または(2)結合された試料(たいてい、クローン化DNAまたはPCR増幅したDNA)および溶液中の標識されたオリゴヌクレオチド(ハイブリダイゼーションによるシーケンシングを可能するために対立遺伝子特異的か、または短い)。診断試験には、複数の相違の同時定量が可能な、相違のパネル(固体支持体上であることが多い)を含んでいてもよい。
一つの態様において、本発明は、PCRによって、またはライゲーション連鎖反応(LCR)で、試験生体試料中のerbB 1遺伝子のキナーゼドメインの変異体についてスクリーニングする方法を提供し(たとえば、Landegran, et al., 1988. Science 241: 1077-1080;および Nakazawa, et al., 1994. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 91: 360-364を参照されたい)、後者は、特にEGFR-遺伝子における点突然変異を検出するために有用であり得る(Abravaya, et al., 1995. Nucl. Acids Res. 23: 675-682を参照されたい)。本方法は、標的配列を増幅するための縮重プライマー(遺伝子の1つまたは複数の保存された領域に対応するプライマー)をデザインする工程、鋳型として、試験生体試料から得られたDNAまたはcDNAを使用して、プライマーで反応を増幅する工程、およびPCR産物を解析する工程を含む。対照試料に対する試験生体試料のPCR産物の比較は、試験生体試料における相違を示す。変化は、試験生体試料における核酸相違の有無のいずれかであることができる。
コドンは、実際には6重縮重以上を導入すると考えられるので、これらを回避することが好ましい。Lの場合、TTRおよびCTNは、YTN(8重縮重)を兼ね備えており、Rの場合、CGNおよびAGRは、MGN(8重縮重)を兼ね備えており、最後にSでは、TCNおよびAGYは、WSN(16重縮重)を兼ね備え得る。これらの3つ全ての場合において、6つが標的配列にマッチする。この特異性の喪失を回避するためには、これらの領域を回避するか、またはそれぞれが代わりの縮重コドンをもつ2つの集団、たとえばSについて一方のプールにTCNを、および他方にAGYを含む集団を作製することが好ましい。
Exonl9センスプライマー、
;Exon19アンチセンスプライマー、
;Exon21センスプライマー、
;およびExon21アンチセンスプライマー、
。
代わりの態様において、少なくとも1つの核酸相違の有無の検出は、上で同定したerbB 1遺伝子の所望の領域に対応する核酸配列をプローブと接触させる工程を含む。プローブは、たとえば、差動的結合またはハイブリダイゼーションによって、遺伝子の特定の形態もしくは存在、または特定の相違を区別することができる。したがって、例示的プローブは、核酸ハイブリダイゼーションプローブ、ペプチド核酸プローブ、ヌクレオチド含有プローブ(これは、少なくとも1つのヌクレオチド類似体も含む)、および抗体、たとえばモノクローナル抗体、並びに本明細書にて論議したその他のプローブを含む。当業者は、特定の特異性をもつプローブの調製に精通している。当業者であれば、塩濃度、温度、pHの変化、およびテトラメチル塩化アンモニウムなどのGC対AT塩基対の差動的親和性に影響を及ぼす種々の化合物の付加を含む種々の変数を、遺伝子の2つの変異型の間の識別を最適化するように調整することができることを認識するであろう(Current Protocols in Molecular Biology by F. M. Ausubel, R. Brent, R. E. Kingston, D. D. Moore, J. G. Seidman, K. Struhl および V. B. Chanda (Editors), John Wiley & Sons.を参照されたい)
本発明の固相支持体は、ヌクレオチド・ハイブリダイゼーションおよび合成を補助するために適した任意の固体物質並びに構造であることができる。好ましくは、固相支持体は、オリゴヌクレオチドまたはオリゴヌクレオチドプライマーを固定することができる少なくとも1つの実質的に堅い表面を含む。固相支持体は、たとえば、ガラス、合成重合体、プラスチック、硬い非メッシュ・ナイロン、またはセラミックで作製することができる。その他の適切な固体支持物質が公知であり、当業者が直ちに利用することができる。固体支持体のサイズは、DNAマイクロアレイ技術のために有用な任意の標準的マイクロアレイのサイズであることができ、サイズは、本発明の反応を行うために使用される特定の機械に合うように調整してもよい。オリゴヌクレオチドを固定するための固相支持体を誘導体化するための方法および材料は、当業者に公知であり、たとえば、米国特許第5,919,523号に記載されており、その開示は、参照として本明細書に組み入れられる。
もう一つの態様において、erbB 1遺伝子のキナーゼドメインにおけるキナーゼ活性を増大する核酸相違の有無は、質量分析法を使用して決定される。質量分析を行う核酸分子の適切な量を得るためには、増幅が必要かもしれない。本発明に使用するための適切な増幅手順の例は、以下を含む:クローニング(Sambrook et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd Edition(Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2001))、ポリメラーゼ連鎖反応法(PCR)(C. R. Newton and A. Graham, PCR, BIOS Publishers, 1994)、リガーゼ連鎖反応(LCR)(Wiedmam, M., et al., (1994) PCR Methods Appl. Vol. 3, Pp. 57-64; F. Barnay Proc. Natl. Acad. Sci USA 88, 189-93 (1991)、鎖置換増幅(SDA)(G. Terrance Walker et al., Nucleic Acids Res. 22, 2670-77(1994))、並びにRT-PCR(Higuchi, et al., Bio/Technology 11:1026-1030(1993))、対立遺伝子特異的増幅(ASA)、および転写に基づいたプロセスなどの変種。
(たとえば、シリカゲル、制御された細孔ガラス、磁性物質、セファデックス/セファロース、セルロース)、平坦な表面またはチップ(たとえば、グラスファイバーフィルタ、ガラス面、金属表面(鋼、金、銀、アルミニウム、銅、およびシリコン)、毛管、プラスチック(たとえば、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリアミド、ポリビニリデンジフルオライド膜、またはマイクロタイタープレート);またはビーズを含む同様の材料から作製されたピンもしくは櫛、またはウエハ(たとえば、シリコンウエハ)などの平らな表面のくぼみに配置された平坦な表面またはビーズを含む。
その他の好ましい態様において、少なくとも1つのキナーゼ活性を増大する核酸相違の有無を決定することには、少なくとも1つの核酸配列をシーケンシングすることを含む。シーケンシングは、少なくとも1つの相違部位を含む、erbB 1のキナーゼドメインの部分のシーケンシングを含み、複数のこのような部位を含んでいてもよい。好ましくは、部分は、500ヌクレオチド以下の長さ、より好ましくは100ヌクレオチド以下、および最も好ましくは45ヌクレオチド以下の長さである。このようなシーケンシングは、ジデオキシ終結法の使用(たとえば、色素標識されたジデオキシヌクレオチドの使用)、ミニシーケンシング、および質量分析法の使用を含む、当業者によって認識される種々の方法によって実施することができる。
一つの態様において、少なくとも1つのキナーゼ活性を増大する核酸相違の有無を決定することには、EGFRの下流の標的の活性化状態を決定することを含む。
したがって、選択的にEGFで誘導されるEGFR変異体内のC末端のチロシン残基の自己リン酸化は、下流のシグナリング経路の選択的活性化に十分に相関される。
変異体EGFRタンパク質を検出するための薬剤は、変異体EGFRタンパク質、好ましくは検出可能な標識をもつ抗体に対して結合することができる抗体である。抗体は、ポリクローナルであることができる、またはより好ましくは、モノクローナルであることができる。無処置の抗体、またはこれらの断片(たとえば、FabもしくはF(ab)2)を使用することができる。プローブまたは抗体に関して、「標識された」という用語は、検出可能な物質をプローブまたは抗体に結合する(すなわち、物理的に連結する)ことによるプローブまたは抗体の直接の標識化、並びに直接標識されている別の試薬との反応性によるプローブまたは抗体の間接的な標識化を包含することが企図される。間接的な標識化の例は、蛍光標識した二次抗体を使用する一次抗体の検出および蛍光標識したストレプトアビジンでビオチンを検出することができるように、ビオチンでのDNAプローブの末端標識化を含む。「生体試料」という用語は、被検者から単離された組織、細胞、および体液、並びに被検者内に存在する組織、細胞、および体液を含むことが企図される。すなわち、本発明の検出方法を使用して、インビトロ並びにインビボで、生体試料中の変異体EGFR mRNA、タンパク質、またはゲノムDNAを検出することができる。たとえば、変異体EGFR mRNAの検出のためのインビトロでの技術には、ノーザンブロット法およびインサイチューハイブリダイゼーション法を含む。変異体EGFRタンパク質の検出のためのインビトロでの技術は、酵素結合免疫吸着検定法(ELISA)、ウエスタンブロット、免疫沈降法、および免疫蛍光法を含む。変異体EGFRゲノムDNAの検出のためのインビトロでの技術は、サザンブロット法を含む。さらにまた、変異体EGFRタンパク質の検出のためのインビボの技術は、標識された抗変異体EGFRタンパク質抗体を被検者に導入することを含む。たとえば、抗体は、被検者内の存在および位置を標準的撮像技術によって検出することができる放射性マーカーで標識することができる。
とを比較する工程をさらに含む。
一つの態様において、本発明は、erbB 1遺伝子のキナーゼドメインにおける少なくとも1つのキナーゼ活性を増大する核酸相違の有無を決定することによって、癌に冒されているか、または発症するリスクのある患者に対する治療を選択するための方法を提供する。もう一つの態様において、相違は、複数の相違であることにより、1、2、3、またはそれ以上の遺伝子座位由来の相違を多数含んでいてもよい。
したがって、また本発明は、erbB 1遺伝子のキナーゼドメインにおける標的核酸を増幅するための縮重プライマーと増幅プロトコルおよび結果の解析を含む説明書とを含む予測用、診断用、および予後のキットを提供する。または、本キットは、増幅産物の増幅および解析を行うための緩衝液、酵素、および容器も含んでいてもよい。また、キットは、DNAマイクロアレイなどのその他のツールを含むスクリーニング、診断用、または予後のキットの成分であってもよい。好ましくは、本キットは、また、正常組織試料から単離された核酸、および/またはerbB 1遺伝子のキナーゼドメインに種々の相違を示す一連の試料などの、1つまたは複数の対照鋳型を提供する。
Exon19センスプライマー、
;Exon19アンチセンスプライマー、
;Exon21センスプライマー、
およびExon21アンチセンスプライマー、
さらなる態様において、本発明は、下流のEGFR標的(すなわち、STAT3、STAT5、およびAkt)の活性化レベルを検出する際に使用するための免疫学的なキットを提供する。このようなキットは、一般に、STAT3、STAT5、またはAktのリン酸化形態に対して免疫特異性を有する1つまたは複数の抗体を含む。
もう一つの態様において、本発明は、本発明の方法を実施するためのキットを提供する。一つの態様において、固体支持体上のerbB 1遺伝子のキナーゼドメインにおける相違の検出のためのキットが記載されている。本キットは、たとえば一回のアッセイ法で複数の相違を検出するための材料および試薬を含むことができる。本キットは、たとえば、固体支持体、標的ポリヌクレオチドの特定のセットのためのオリゴヌクレオチドプライマー、ポリメラーゼ連鎖反応法試薬および成分、たとえば、DNA合成のための酵素、標識化材料、並びにその他の洗浄のための緩衝液および試薬を含むことができる。また、本キットは、固体支持体上の特定の標的を増幅するためのキットの使用説明書を含んでいてもよい。本キットが、たとえば標的ポリヌクレオチドの特定のセットを増幅するために、固体支持体上にすでに固定されたプライマーセットを有する固体支持体上に調製された固体支持体を含む場合、このように調製された固体支持体の設計と構成は、上記されている。また、本キットは、固体支持体上で、たとえばインサイチュー型または固相型PCR法を使用してPCRを行うために必要な試薬を含み、この場合、支持体は、インサイチュー型PCR機器を使用してPCR増幅することができる。キットに含まれるPCR試薬は、通常のPCR緩衝液、耐熱性ポリメラーゼ(たとえば、Taq DNAポリメラーゼ)、ヌクレオチド(たとえば、dNTP)、並びにその他の成分および標識化分子(たとえば、上記の通りの直接的または間接的な標識化のため)を含む。本キットは、固定されたプライマーを単独で、または、代わりに溶液相プライマーと共に使用して、PCR増幅方法の実行を支援するように構築することができる。
したがって、このような製剤は、都合よくは、蒸留水、5%デキストロースの蒸留水または塩類溶液を含んでいてもよい。また、有用な製剤は、適切な溶媒での希釈により、上記の非経口投与のために適した溶液を生じる合物を含む濃縮溶液または固体を含む。
溶液、たとえばシロップ、エリキシル、乳剤、または頓服水剤として取り込むことができる。適切なキャリアは、デンプンまたは糖であってもよく、同じ性質の潤滑剤、調味料、結合剤、およびその他の材料を含んでいてもよい。
粒子または微粒子の複合体を、数日〜数月までの範囲の期間にわたる緩放のために移植することができる。たとえば、米国特許第4,906,474号、第4、925,673号、および第3,625,214号、並びにJein, TIPS 19: 155-157 (1998)を参照されたい(いずれの内容も、参照として本明細書に組み入れられる)。
が、虚血組織を囲む毛細管床にとどまるときは、薬剤をこれらが最も有効となり得る部位に局所投与することができる。たとえば、「Liposomal targeting of ischemic tissue」の表題のBaldeschweilerに対する米国特許第5,593,688号(その内容は、参照として本明細書に組み入れられる)に開示されるように、虚血組織をターゲットするために適したリポソームは、一般に約200ナノメートル未満であり、また典型的には単層の小胞である。
もう一つの態様において、本発明は、チロシンキナーゼ阻害剤での治療後にerbB 1遺伝子の相違を予測するための方法を開示する。チロシンキナーゼ阻害剤での癌治療に対する応答は、チロシンキナーゼ阻害剤に対して、または他の類似化合物に対する耐性を生じることが多いことが一般に公知である。このような耐性は、薬物標的に、たとえばEGFRに突然変異を獲得することによって生じると考えられる。このような突然変異を予測する(および、選択する)能力により、より望ましい治療を選択し、かつ再発をより少しにすることができる。
(しかし、これらに限定されるわけではない。)、現在公知の抗癌治療に対する耐性を与えるさらなるEGFR突然変異も本発明の範囲内である。耐性EGFR変異体は、このキナーゼ領域に高い相同性を有するタンパク質を含む関連したチロシンキナーゼドメインのキナーゼドメインにおいて同定される変異体に対して類似の変異体を有することが予測される。類似のタンパク質における突然変異を記載する論文は、BCR-ABLについて当技術分野において公知のものを含む。Bradford et al. Blood.2003 Jul 1;102(1):276-83, Epub 2003 Mar 06;Hochhaus et al., Leukemia. 2002 Nov;16(11):2190-6 ;and Al-Ali et al., Hematol J. 2004;5(1):55-60を参照されたい。
と類似するアミノ酸位置にて非野生型残基を有し、たとえば表S3Cおよび図9を参照されたい。これらのBCL-ABL残基は、それぞれEGFRの
に対応する。たとえば、表S3C、図9を参照されたい。
本発明の方法は、癌の発症の予後指標として使用される。または、本方法は、存在するが、いまだ診断されていないか、または検出不可能である段階にある癌を検出するために使用される。癌が発症するリスクのある患者を、本発明の方法を使用して、erbB 1遺伝子のキナーゼ活性を増大する核酸変異の存在についてスクリーニングする。erbB 1遺伝子のキナーゼドメインにおける相違の存在は、癌の存在または差し迫った存在を示す。したがって、erbB 1遺伝子のキナーゼドメインにおける相違の存在は、患者がEGFRでターゲットされる治療の利益を受けることを示唆する。本明細書に記載したように、EGFRでターゲットされる治療は、好ましくはチロシンキナーゼ阻害剤での治療である。
実施例1
腫瘍検体のヌクレオチド配列解析
L858RおよびdelL747-P753insS突然変異を部位特異的変異誘発を使用して全長EGFRコード配列に導入して、サイトメガロウイルス駆動発現構築物(pUSE、Upstate)に挿入した。Cos-7細胞には、1μgの発現構築物を使用してトランスフェクトし(Lipofectamine 2000、Invitrogen)、続いて18時間後に、ウシ胎児血清を欠いたDMEMに、5×104細胞/ウェル(12ウェル・プレート、Costar)で再びまいた。血清飢餓の16時間後、細胞を10ng/mlのEGF(SIGMA)で刺激した。ゲフィチニブ阻害を証明するために、EGF(100ng/mlのEGFで30分刺激)の添加前に、薬物を培地に3時間添加した。細胞可溶化物を100μLのLaemmli溶解緩衝液に調製し、続いて10% SDS-PAGEでタンパク質を分離して、PVDF膜に転移し、増強化学発光試薬(Amersham)を使用してウエスタンブロット解析した。EGFRの自己リン酸化は、リン酸化チロシンY-1068に対する抗体を使用して測定し、相当するタンパク質発現は、抗EGFR抗体を使用して示した(1:1000の作用濃度;Cell Signaling Technology)。
EGFR遺伝子を含む28エキソンを増幅するために、原発性腫瘍組織または腫瘍由来株化細胞をから単離したDNAを使用するポリメラーゼ連鎖反応法を使用した。使用したプライマー対は、以下の通りであった:Exon1、
アニーリング温度は、58℃(エキソン1、3、4、7〜10、12〜25、27、および28)、56℃(エキソン2、5、6、および26)、または52℃(エキソン11)であった。
Exon1、
二次PCR増幅は、以下のプライマー対を使用することにより行った:Exon1、
エキソン1の増幅のためのアニーリング温度は、54℃であった。一次および二次増幅の両方のためのアニーリング温度は、58℃(エキソン3、4、7〜10、12〜17、19〜25、27、および28)、56℃(エキソン2、5、6、および26)、または52℃(エキソン11および18)であった。
14の肺癌由来する株化細胞のパネルを、EGFR突然変異について解析した。これらは、NSCLC(N=5)、小細胞肺癌(N=6)、扁平上皮癌(N=1)、気管支カルチノイド(N=1)、および未知組織像(N=1)の腫瘍に由来した。具体的な株化細胞は、以下の通りであった:NCI-H460、NCI-522、HOP-92、NCIH841、NCIH734、NCIH2228、NCIH596、NCIH727、NCIH446、NCIH1781、NCIH209、NCIH510、NCIH82、NCIH865。加えて、64の癌由来株化細胞を、エキソン19および21の突然変異についてスクリーニングした。これらは、以下の組織像を表した:乳癌(BT549、BT483、UACC893、HS467T、HS578T、MCF7、MCF7-ADR、MDA-MB-15、MDA-MB-175、MDA-MB-231、MDA-MB-415、MDA-MB-436、MDA-MB-453、MDA-MB-468、T47D)、卵巣癌(ES-2、IGROV-1、MDAH2774、OV1063、OVCAR3、OVCAR4、OVCAR5、SKOV3、SW626)、CNS癌(SF-295、SNB-19、U-251、CCF-STTG1、SW-1088、SW-1783、T98G、M059K、A172、SK-N-DZ、SK-NMC)、白血病(CCRF-CEM、K562、MOLT-4、RPMI8226、SR)、前立腺癌(DU-145、PC-3)、大腸癌(COLO-205、HCT-116、HCT-15、HT-29、SW-620)、腎癌(786O、ACHN、CAKI-1、SN-12C、UO-31)、黒色腫(LOX-IMVI、M14、SKMEL2、UACC-62)、骨肉腫(SAOS-2)、および頭頚部癌(O11、O13、O19、O28、O22、O029、O12)。頭頚部癌株化細胞は、Dr. James Rocco, Massachusetts General Hospital/Massachusetts Eye and Ear Infirmaryによって提供された。他の全ての株化細胞は、ATCC(Manassas、VA)を通して入手可能である。
Exon19センスプライマー、
;Exon19アンチセンスプライマー、
;
Exon21センスプライマー、
およびExon21アンチセンスプライマー、
それぞれの試料について、1×Expand Long Template buffer 1 (Roche, Mannhein Germany)、50μMシーケンシング等級dATP(Amersham Biosciences, Cleveland OH)、50μMシーケンシング等級dCTP(Amersham Biosciences, Cleveland OH)、50μMシーケンシング等級dGTP(Amersham Biosciences, Cleveland OH)、50μMシーケンシング等級dTTP(Amersham Biosciences, Cleveland OH)、0.2μMセンスプライマー、0.2μMアンチセンスプライマー、1/6体積のTaq Start Antibody(1.1μg/lμl)(Clontech、Palo Alto、CA)と氷上で5分間プレインキュベートした1.25ユニットExpand Long Template酵素混合物(Taq DNAポリメラーゼ/Tgo DNAポリメラーゼ)(Roche、Mannhein Germany)、および25μlの最終体積までの水からなるPCR反応で20ngのゲノムDNAを増幅した。また、それぞれの一連の増幅には、DNA鋳型を除いたネガティブ対照を含む。両方のエキソンのためのPCRサイクリング条件は、95℃を2分間、続いて95℃を30s間、58℃を30s間、および72℃を45秒間を40サイクル、並びに72℃を10分間の最終伸張を4℃にて保持することによって、MJ-Research PTC-200またはPTC-225thermal-cycler (MJ-Research, Waltham MA)で行った。
;Exon19アンチセンスプライマー、
;
Exon21センスプライマー、
または
およびExon21アンチセンスプライマー、
シーケンシング反応をABI3100遺伝子アナライザーで電気泳動した。FacturaおよびSequence Navigatorソフトウェアを使用して、ヘテロ接合性の位置をマークし、評価のためにこれらを示した。二次ピークの高さが一次ピークの高さの30%以上高いヌクレオチド位置をヘテロ接合性としてマークし、センスおよびアンチセンスの両方を読みを解析することによって確認した。突然変異の存在を示す配列をもつ試料を再び増幅して、確認のためにシーケンスした。
イントロンのプライマーは、小文字で示し、下線を引いてある。
イントロンの配列は、小文字で示してある。
エキソンの配列は、大文字で示してある。
ゲフィチニブ応答者の臨床的特徴
進歩した化学療法不応性のNSCLCである患者は、Massachusetts General Hospitalでは、2000年以降単剤ゲフィチニブで治療してきた。FDAによる2003年5月の承認前に合計275人の患者を、同情的使用の拡張的自主プログラムの一部として、およびその日付後には市販供給を使用して、両方で治療した。この期間に、25人の患者が、有意な臨床効果を有することが臨床家によって同定された。有意な臨床応答は、測定可能な疾患をもつ患者に対しては、RECIST基準を使用して部分的応答と定義し、または腫瘍負担をこれらの基準を使用して定量化することができない患者に対しては、評価できる応答を2人の医師によって評価した。表1は、初診時に得た腫瘍検体が利用できた9症例の臨床的特徴を示す。その他のゲフィチニブ応答者については、最も一般には、診断検体が針吸引液による細胞診断に限られていたので、組織を入手できなかった。群として、9人の患者が、ゲフィチニブから実質的利益を受けた。薬物療法の開始からの生存期間の中央値は18ヶ月を上回り、および治療期間の中央値は16ヶ月を越える。以前の報告と一致して、ゲフィチニブ応答者は女性の有病率が高く、喫煙歴がなく、および気管支肺胞組織像をもつ腫瘍を有する(11, 12)。症例6は、ゲフィチニブ応答性のコホートを代表する。この患者は、32歳の男性で、喫煙歴なしであり、その人は、複数の脳病変および右肺に細気管支肺胞上皮癌と診断された疾患を示した。彼は、全脳放射線療法で治療し、続いて彼の腫瘍が応答しなかったものに対して一連の化学療法措置(カルボプラチンおよびゲムシタビン;ドセタキセル;ビノレルビン)によって治療した。機能状態が減退し、および進行性肺腫瘍負担を伴ったので、彼には、1日あたり250/mgのゲフィチニブでの療法を始めた。彼の息切れはすぐに改善され、治療開始の6週間後の肺CTスキャンでは、図1に示した劇的な改善を示した。
本発明者らは、ゲフィチニブに対して著明に応答するNSCLCの症例では、EGFRに体細胞突然変異がひそんでいるかもしれないと仮定し、これらの腫瘍において、この成長因子シグナリング経路が果たす必須の役割を示した。このような突然変異を探索するために、本発明者らは、最初に、神経膠腫(15)の特徴であるEGFRの細胞外ドメイン内の再配列について試験したが:何も検出されなかった。したがって、本発明者らは、個々のエキソンのPCR増幅を使用して、遺伝子の全てのコード領域をシーケンスした。ヘテロ接合性の突然変異が、8/9症例において観察され、その全てがEGFRのキナーゼドメインにクラスター形成していた(表2および図2)。4つの腫瘍では、アミノ酸746〜750(delE756-A750;症例1)、747〜750(delL747-T751insS;症例2)、および747〜752(delL747-P753insS;症例3および4)を除去するインフレームの欠失を有した。後の2つの欠失は、欠失中断点に新規コドンを生じることにより、セリン残基の挿入を伴った。意外なことに、これらの4つの欠失は、全ての症例で共有されるエキソン19内の4つのアミノ酸(コドン747〜750のロイシン、アルギニン、グルタミン酸、およびアラニン)の欠失が重複していた(図4aを参照されたい)。別の3つの腫瘍では、エキソン21内にアミノ酸置換:コドン858にてロイシンからアルギニンに(L858R;症例5および6)およびコドン861にてロイシンからグルタミンに(L861 Q;症例7)を有した。マウスegfr遺伝子に同じアミノ酸変化は、EGFRシグナリング(18)の変更を伴い、Dark Skin(dsk5)形質の原因となるため、L861Q突然変異は、特に興味がもたれる。キナーゼドメインにおける4つめのミスセンス突然変異は、エキソン18内のコドン719にてグリシンからシステインへの置換を生じた(G719C;症例8)。対応する正常組織が、症例1、4、5、および6に入手でき、かつ野生型配列だけを示したことから、腫瘍形成の間に突然変異が体細胞性に生じたことを示す。突然変異は、ゲフィチニブに応答することができなかったNSCLCの7つの症例において観察されなかった(P=0.0007;Fisher の両側直接確率検定)。
EGFR細胞外ドメインに影響を及ぼす再配列が広範に研究されてきた神経膠腫とは異なり(15)、NSCLCにおけるEGFR突然変異の頻度は定義されてこなかった。したがって、本発明者らは、ゲフィチニブ研究に無関係なNSCLCの25人の原発性症例(以前の臨床試験においてゲフィチニブ応答性と関連していた15人の気管支肺胞の組織像を含む(11,12))における遺伝子の全てのコード領域をシーケンスした。ヘテロ接合性の突然変異は、2つの気管支胞巣状癌において検出された。両症例では、ゲフィチニブ応答者(すなわち、delL747-P753insSおよびdelE746-A750(表2))において見いだされたものと同一のキナーゼドメインのインフレームの欠失を有した。EGFR突然変異においてクラスター形成が明らかなことを考慮して、本発明者らは、合計55の原発腫瘍および78の癌由来株化細胞におけるエキソン19および21をシーケンスし、多様な腫瘍型を示した(補助材料を参照されたい)。突然変異は検出されなかったことから、これらが、EGFRシグナリングが腫瘍形成において重要な役割を果たし得る癌のサブセットのみにおいて生じることが示唆される。
これらの突然変異によってコードされる機能的特性を研究するために、L747-S752insS欠失およびL858Rミスセンス変異体を培養細胞において発現させた。野生型および変異体構築物のCos-7細胞への一過性トランスフェクションでは、同等量の発現レベルを示し、突然変異がタンパク質安定性に影響を及ぼさないことを示した。EGFR活性化は、チロシン1068残基のリン酸化を測定することによって定量化し、一般に受容体自己リン酸化のマーカーとして使用した(19)。血清および関連する成長因子の非存在下では、野生型も変異体EGFRも自己リン酸化示さなかった(図3a)。しかし、EGFの添加により、野生型受容体と比較して、ミスセンスおよび欠失EGFR変異体の両方において2〜3倍の受容体活性化の増加を生じた。さらに、正常なEGFR活性化は、受容体インターナリゼーションと一致して、15分後にダウンレギュレートされたのに対して、2つの変異体受容体は、3時間までの間、連続して活性化を示した(図3a)。同様の結果は、EGFの添加後の総EGFRリン酸化を測定する抗体でも得られた(図示せず)。
EGFRのキナーゼドメイン内に突然変異がひそみ、したがって、ゲフィチニブ治療による増殖阻害に感受性である腫瘍細胞は、キナーゼドメイン内にさらに「第二の部位」の突然変異を受ける可能性があり、これは、ゲフィチニブに耐性を与えるが、これらが野生型EGFRと比較して増大されたEGFRシグナリングを示すという意味で、さらに「活性化している」。このようなゲフィチニブ耐性の変異体は、2つの散発性ヒトNSCLC株化細胞(すなわち、NCI-1650およびNCI-1975)から作製される。それぞれの株化細胞は、EGFRのキナーゼドメインにヘテロ接合性の突然変異を含み、したがって、ゲフィチニブに感受性であることが予想される。NCI-1650におけるEGFR突然変異は、エキソン19内の位置2480-2494(delLE746-A750)にて15ヌクレオチドのインフレームの欠失からなり、一方で、NCI-1975は、エキソン21内のヌクレオチド2818(L858R)にてGをTと置換するミスセンス突然変異を有する。NCI-H1975のL858R突然変異は、インビトロでゲフィチニブを活性化し、ゲフィチニブに対する感受性を増大させることが本明細書において示された。
受容体チロシンキナーゼの突然変異がNSCLCの原因となる役割を果たすかどうかを決定するために、本発明者らは、日本のNagoya City University Hospitalからの58試料とBrigham and Women’ s Hospital in Boston, Massachusettsからの61とからなる119の原発性NSCLC腫瘍のセットにおける体細胞の遺伝子の変化について探索した。腫瘍は、74人の男性および45人の女性患者からの70の肺腺癌と49のその他のNSCLC腫瘍を含み、これらの人はいずれも、EGFRキナーゼ阻害剤での治療を考証していなかった。
(Del-1;図6Cおよび8C;表S2)。別の腫瘍由来のEGFR DNAは、コドン752〜759の欠失を生じるヘテロ接合性の24ヌクレオチド・ギャップを示した(Del-2;図6C)。代表的なクロマトグラムを図8A-8Fに示してある。
受容体チロシンキナーゼのcDNA配列はGenBank(表S1の一覧表に記載されたアクセッション番号)から得て、ヒトゲノム構築(http://genome.ucsc.edu)に対してBLAT整列を使用してエキソン/イントロン境界を同定する。外部遺伝子特異的なプライマー対は、Primer3プログラムを使用して、それぞれの側に対して、エキソン配列と、少なくとも250bpの隣接するイントロン配列または隣接したエキソン配列とを増幅するようにデザインした(http://frodo.wi.mit.edu/primer3/primer3_code.html)。次いで、生じる予測単位複製配列を使用して、エキソンに隣接し(一般にエキソン/イントロン境界から50bpよりも大きい)かつ末端に添えたM13フォワードまたはリバースプライマー尾部を含む内部プライマーをデザインした。これらのネスト状プライマーセットを、対照DNA由来の適切な単位複製配列サイズおよび高品質の配列について試験した。47のチロシンキナーゼの受容体チロシンキナーゼ活性化ループをコードするエキソンを包含する単位複製配列が増幅され、Nagoya City University Medical Schoolからの58の原発性肺癌試料のセットにおいてシーケンスした。加えて、全長EGFRをカバーする単位複製配列も増幅した。
チロシンキナーゼエキソンおよび隣接イントロンの配列は、384ウェル形式のネスト状PCR構成で、特異的プライマーを使用して増幅した。それぞれのPCR反応には、5ngのDNA、1×HotStar Buffer、0.8mM dNTPs、1mM MgCl2、0.2U HotStar Enzyme(Qiagen、Valencia、CA)、並びに0.2μMフォワードおよびリバースプライマーを10μLの反応体積に含んだ。PCRサイクリングパラメーターは、以下の通りであった:95℃を15分の1サイクル、95℃を20s、60℃を30s、および72℃を1分の35サイクル、続いて72℃を3分の1サイクル。
フォワード(F)およびリバース(R)クロマトグラムは、Mutation Surveyor 2.03(SoftGenetics、State College、PA)、続いて手動再調査によってバッチで解析した。変異が一方または両方の方向で見いだされた高品質配列を候補突然変異として記録した。上記の様に、候補突然変異がひそむエキソンを本来のDNAから試料を増幅し、再びシーケンスした。
肺腫瘍検体は、Nagoya City University HospitalおよびBrigham and Womens’s Hospital(それぞれ、選別していない日本腫瘍およびゲフィチニブで治療下米国腫瘍)にて治療された非小細胞肺癌である患者から、および施設内倫理委員会下で研究が承認されたBrigham and Women’s Hospitalの匿名腫瘍バンク(選別していない米国試料)から得た。性、年齢、および組織学上の情報は、大部分の試料で入手できた。患者試料は、Dana-Farber Cancer Institute(13)にてゲフィチニブのオープンラベル臨床試験で治療した患者からも得た。ゲフィチニブに対する応答は、標準的基準を使用して定義した(A. B. Miller、B. Hoogstraten、M. Staquet, A. Winkler, 1981 Cancer 47, 207-14を参照されたい)。これらの研究のためにIRB承認を得た。
総RNAは、Trizol(登録商標)(Invitrogen、Carlsbad、CA)を使用して組織試料から単離し、RN easy(登録商標)mini-elute cleanup kit(Qiagen、Valencia、CA)を使用して精製する。cDNAは、Superscript II Reverse Transcriptase(Invitrogen Life technologies、Carlsbad、CA)で、製造業者の推奨に従って2μgの総RNAから転写する。その後のEGFRのPCR増幅のために、cDNAを鋳型として使用する。
2つのさらなるEGFRの突然変異が、2つの異なる腫瘍タイプで見いだされた。位置857(「G857V」)にてグリシン(G)をバリン(V)と置換したEGFR突然変異は、急性骨髄性白血病(AML)において同定された。転移性肉腫において、位置883(「L883S」)のロイシン(L)をセリン(S)で置換するEGFR突然変異。
NSCLC株化細胞に対するゲフィチニブの効果をインビトロで調べた。1つの株化細胞(H3255)は、特にゲフィチニブに感受性であり、40nMのIC50であった。その他の株化細胞は、より高いIC50を有した。たとえば、野生型株化細胞H1666は、2μMのIC50を有し、これは、変異体株化細胞よりも50倍高い。この株化細胞からのEGFRをシーケンスしたときに、L858Rミスセンス突然変異を含んだが、一方、その他の株化細胞は、EGFRに関して野生型であった。EGFR、更にはEGFRによるAKTおよびERKリン酸化を遮断するためには、EGFR野生型細胞と比較して(同一の効力を達成するために少なくとも100倍高濃度のゲフィチニブが必要であった)、より低濃度のゲフィチニブが必要とされた。これらの知見は、変異体受容体がゲフィチニブの効果により感受性であることを示唆する。また、本明細書において留意されたい。
腫瘍検体は、エルロチニブの有無にかかわらずカルボプラチン/パクリタキセルのランダム治験で治療した、進行したNSCLCである患者からのものを解析した。この治験の臨床的部分では、2つの治療アームにおいて同等の生存を証明した。腫瘍検体は、1076人の患者のうちの228人から、シーケンシングに利用できた。これらの患者の予備的臨床的特徴は、全体として、ベースライン人口統計、反応率、中央値、および全体の生存に関して、本グループと異ならない。
研究デザイン
本発明者らは、Massachusetts General Hospital (MGH)、Dana-Farber Cance Institute (DFCI) 、およびBrigham and Women’ s Hospital (BWH)にて2004年8月2日〜2005年1月までの体細胞EGFRキナーゼドメインのシーケンシングで調べたNSCLC患者の遡及コホート研究を行った。これらの3つの機関には、Dana-Farber/Partners Cancer Care(DF/PCC)(1年あたり約1,200人の肺癌患者を看護する学術ジョイントベンチャー癌センター)を含む。2004年8月には、EGFRキナーゼドメイン・シーケンシングをDF/PCCにて臨床用途のために利用できるようになった。臨床家は、試験で調べるため患者を選択することができるが、しかし、患者は、十分かつ適切に利用できる腫瘍検体を有することが必要であった。腫瘍細胞は、MGHおよびBWH参照病理学者による組織学的検査に基づいて、検体の少なくとも50%を含まなければならず、検体は、原発性もしくは転移性腫瘍からの切除、気管支鏡生検、もしくはコア針生検、または胸腔内液から細胞ブロックからでなければならなかった。まれな場合には、細針吸引液試料を適切に決定した。試料は、パラフィン包埋されているか、または凍結組織であることができる。扁平細胞腫瘍におけるEGFR突然変異は、低発病率であるために(62)、この診断である患者は、試験対象にはしなかった。
凍結したか、またはホルマリン固定した、いずれかをパラフィン包埋した(FFPE)腫瘍組織の連続切片を切断し、ガラススライド上に配置した。少なくとも50%の生存可能な腫瘍細胞からなる腫瘍組織領域を病理学者によって同定した。FFPE試料をキシレンおよびエタノールで抽出し、パラフィンを除去した。FFPEおよび凍結組織試料をプロテイナーゼKで一晩消化した。ゲノム・デオキシリボ核酸(DNA)を、標準的方法を使用して組織および末梢全血から抜いた。ゲノムDNAは、DNA Genotek-Oragene(登録商標)唾液キットを使用して、唾液試料から抽出した。
の5’末端に汎用配列を付加する。PCR産物は、色素-ターミネーターシーケンシングによって双方向的に直接シーケンスした。PCRは、5ng ゲノムDNA、2mM MgCl2、0.75μl DMSO、1 M ベタイン、0.2mM dNTPs、20pmol プライマー、0.2μl AmpliTaqGold(登録商標)(Applied Biosystems)、1×緩衝液(AmpliTaqGoldで供給される)を含む15μlの体積で、384ウェル・プレートで行った。熱サイクリング条件は、以下の通りであった:95℃、10分間;95℃、30秒間、60℃、30秒間、72℃、1分間を30サイクル;および72℃、10分間。PCR産物は、Ampure(登録商標)Magnetic Beads(Agencourt)で精製した。
本発明者らは、患者の人口統計学的および臨床的特徴とEGFR突然変異状態との間の一変量の関連を評価するために、ロジスティック回帰モデルを構築した。突然変異陽性状態の有意な予言者を同定するために、本発明者らは、予測的突然変異として、従来の研究で同定された独立変数、具体的には性、人種、組織像、および喫煙状態を含む多変数ロジスティック回帰モデルを構築した。6人の患者では、PCRを失敗した結果、EGFR突然変異データを失ったため、これらの解析から除外した。全ての解析は、SAS統計ソフトウェア(バージョン8.02、SAS Institute, Cary, NC)を使用して行った。
患者の特徴:
研究期間の間に臨床的癌治療の一部として体細胞のEGFRキナーゼドメイン・シーケンシングで調べたNSCLCである100人の患者の中で、平均年齢は、60.7年であり、63%が女性であった(表4)。大部分の患者は、白人(76%)またはアジア人(7%)であり、試験が命じられた時に、転移性疾患を有した(67%)。EGFR突然変異について試験したほとんど全ての患者(94%)は、腺癌、細気管支肺胞性の癌腫(BAC)特色をもつ腺癌、または純粋なBACを有した。患者の約1/3は、喫煙未経験者であった。EGFR試験について照会前に施された療法は、外科手術(50%)、胸部放射線療法(22%)、化学療法(47%)、およびEGFRに向けてターゲットされる療法(11%)を含んだ。
試験で調べてから結果を入手できるまでの平均延べ時間は、12営業日であった。提出した大部分の検体は、パラフィン包埋されていた(74%)。74のうちの6つのパラフィン包埋した検体(8%)では、PCR増幅に失敗したが、26全ての凍結検体はうまく増幅した。解釈可能な結果である94人の患者の中で、23人(24%)がEGFRキナーゼドメインに少なくとも1つの突然変異を有することが見いだされ、同定した合計25個の突然変異について、これらの患者のうちの2人が、それぞれ2つの点突然変異を示した(表5)。突然変異がある23人の患者の中で、9人(39%)が1つまたは複数の点突然変異を有し、12人(52%)は、エキソン19にインフレームの重複する欠失を有し、2人の患者(9%)は、エキソン20に重複を有した。点突然変異は、エキソン18および21にあり、5つの2818T>G(L858R)(、並びにそれぞれ1つの2371A>T(E709V)、2400G>A(G719S)、2401G>C(G719A)、2572G>A(R776H)、2788C>T(P848L)、および2827T>A(L861Q)を含んだ。点突然変異(P848L)のうちの1つは、腫瘍検体において、および頬側スワブから得られる単核細胞において、両方で検出された。突然変異は、エキソン22、23、または24では検出されなかった。
本発明者らの試料では、EGFR突然変異状態と年齢(p=0.61)、女性の性(p= 0.92)、アジア人(p=0.08)、または照会時の転移性疾患(p=0.43、表4)との間に有意な関連はなかった。非腺癌腫瘍組織である6人の患者では、だれも突然変異を有することが見いだされなかった。腺癌、BAC特色をもつ腺癌、および純粋BACである患者の中で、BAC/BAC特色とEGFR突然変異状態(p=0.35)との間に関連はなかった。
EGFR突然変異陽性患者は、EGFR突然変異陰性患者(11%、p<0.001)よりも、その後のEGFR-TKI治療(86%)を受けるための計画を実証する可能性が有意に高かった。臨床家は、EGFR結果が、症例の38%において、推奨された療法の優先順位に影響を及ぼすことを実証した。これらの症例には、試験が陰性であった試験を受けるよりも前にEGFR-TKI療法が推奨された23人の突然変異陽性患者のうちの14人(61%)と、EGFR-TKI療法が推奨されなかったか、または試験が陽性であった試験を受けた後で推奨された71人の突然変異陰性患者のうちの24人(34%)とを含んだ。
本発明者らは、最初に、本発明者らの機関にて、臨床的癌治療の一部として体細胞のEGFR突然変異についてスクリーニングを受けたNSCLCである100人の患者を研究し、本試験が可能であり、有意にNSCLC患者の治療に影響を与えることを見いだした。EGFR突然変異がひそむ患者は、突然変異のない患者よりもEGFR-TKI療法についての推奨を受ける可能性が有意に高かった。医師は、症例の1/3以上において、試験結果に基づいて彼らの治療推奨を調整し、転移性疾患である患者において、よりそのようにする可能性が高かった。本発明者らの患者試料において、医師は、数人の患者に対して、特に第一次または第二次治療に対して、化学療法以上にEGFR-TKIを優先させる決定をするのを補助するために、陽性なEGFR試験結果を使用した。しかし、陰性EGFR試験結果では、医師が選択した患者に対してEGFR-TKIを投与するのを防げなかった。試験結果が臨床的意思決定に影響を与えなかった患者の多くは、疾患を切除した早期段階であるか、または試験時にすでに転移性疾患のためにEGFR-TKIを受けていた。補助療法としてのEGFR-TKIの有用性は、わかっていなかったので、これは、合理的であり、EGFR突然変異が同定されていない小数の患者におけるEGFR-TKI療法に対しても利益があった(65、66〜70、71)。
非小細胞肺癌のためのEGFR遺伝子試験
標準的操作手順:
臨床徴候:
本試験は、非小細胞肺癌である個体について示してある。
分析原理
EGFR遺伝子試験は、EGFRのキナーゼドメインの突然変異を検出する遺伝子検査である。最初に、DNAを腫瘍生検から得る。次いで、EGFRの7つのエキソン(18、19、20、21、22、23、24)のDNA配列を直接、双方向性遺伝子シーケンシングによって決定する。次いで、得られた配列を公知のEGFR配列と比較してDNA配列変化を同定する。DNA配列変化が腫瘍組織において検出される場合、もとの組織試料に対して試験を繰り返す。変化がゲフィチニブまたはエルロチニブ応答者において以前に報告されていなかった場合、突然変異が構成的であるか(したがって、正常に生じている多型の可能性が高い)、または腫瘍組織において体細胞性に生じたかどうかを決定するために、試験を個々の血液試料でも行う。
最小でも100ngのDNAが組織試料から必要であった。注:DNAが極めて少量であれば、組織試料から抽出してもよい。このDNAの濃度は、正確に定量化しなくてもよい。
使用した対照
それぞれのエキソンについて2つのネガティブ対照(水)とポジティブ対照(ヒトDNA)をPCR反応に含める。ネガティブ対照は、得られた配列が汚染の結果ではないないことを確認するために、全ての手順を通じて続行するべきである。pGEMポジティブ対照およびABIアレイ対照は、シーケンシング工程に含める。
PCRのためのポジティブ対照は、ClontechヒトDNAか、または匿名の血液試料からのヒトDNAであり、4℃に貯蔵する。PCR反応のためのネガティブ対照は、室温に貯蔵されたHyPure分子生物学等級水である。pGEMポジティブ・シーケンシング反応対照およびABIアレイ対照は、-20℃に貯蔵する。
ポジティブPCR対照がないが、ネガティブ対照および試料を通用する場合、PCR結果は、パスとして命名し、シーケンシングを行う。ネガティブ対照がDNA増幅の徴候を示す場合、全反応を患者のDNAの新たなアリコートで繰り返す。pGEM対照がなく、かつ試験反応がない場合、実行したシーケンシングをPCR産物の第二のアリコートで繰り返す。シーケンシング対照が反応がなく、試験反応を通用する場合、シーケンシングを繰り返す必要はない。注:パラフィン包埋された組織試料からのDNA抽出は低収率であるため、外側PCR反応では、可視産物を生じないことが多い。内側PCR反応では、可視産物を生じるはずである。適切なPCR産物が得られたことを確認するために、ゲルで検出される産物のサイズを予想されるサイズと比較するべきである(下記を参照されたい)。内側PCR産物がゲル上に見えない場合、エキソン特異的PCR失敗が繰り返されるはずである。
ゲノムDNAのための全ての手順をPCRフード内(クリーンフードではない)で行った。
1. 氷上でTaqGoldおよびdNTPを融解する。
2. 下記の表を使用して、チューブ(eppendorfまたは15mlのチューブ)にマスター混合物を調製する。水、Betaine, 10×緩衝液、MgCl2、DMSO、Taq Gold、およびdNTPは、一覧表に記載した順序で添加するべきである。それぞれの試薬を添加すると共に、ピペット操作によって穏やかに上下して試薬を混合することが非常に重要である。
3. DNAは、等分する前にマスター混合物に添加するべきである。大量のマスター混合物を作製した後に、アリコートそれぞれの患者または態様のために分離したチューブに96μlのアリコートをとる(8rxnsのために十分)。5ng/μlの8μlのDNAを、96μlのマスター混合物に添加する。次いで、プレートの個々のウェルに13μlを添加するか、またはストリップチューブにおいて、多チャンネルピペッタでピペットする。
4. 全384-ウェル・プレートの反応のためには、約415反応のために十分なマスター混合物を作製する。
5. 気泡を除去するために、マスター混合物のプレートを回転させる。
6. 多数のプライマーセットを使用するならば、これらを別々のプレートにフォワードプライマーとリバースプライマーと共に96ウェル・プレートにいれると助けになるであろう。
7. 多チャンネルピペットを使用してプライマーを添加する。ピペット操作によって穏やかに上下して確実に混合する。
8. いずれの気泡も除去するために、プレートを回転させる。
9. 増幅するために下記のサイクルを使用する。
注:PCRは、384-ウェル・プレートで行う。
内側PCRの準備は、少数の例外もあるがほぼ外側PCRと同じである。
1. PCRフード内で外側PCRのために記載したように大量のマスター混合物を作製する。
2. 7つのストリップチューブにMMをアリコートをとり、384-ウェル・プレートへ12μlを多チャネルピペットする。
3. フォワードおよびリバース内側プライマーをそれぞれ1μL添加する。一時的に、プレートを封止する。
4. フードから取り出して、プレートを遠心沈殿し、PCR準備後の領域に進む。
5. 専用のピペットを使用して、1μlの外側PCR産物をそれぞれの反応にアリコートをとる。
6. 加熱封止して、再び回転する。
7. 外側と同じ増幅サイクルを実行する。
1. Ampure磁気ビーズのプレートを、ビーズの沈着がなくなるまでボルテックスする。
2. Ampureビーズの温度は、室温にてあることが非常に重要である。
3. Biomekの384-ウェルAmpureプロトコルを使用して、反応体積を12μLに変えて精製のために使用する試薬を適応する。これを行わない場合、誤りが生じる。
4. プログラム完了後、1ウェルあたり20μlのオートクレーブしたddH2Oでプレートに水分を添加する。水を添加する間に、ピペット操作によって穏やかに上下して確実に混合する。
5. いずれの気泡も除去するために、プレートを回転させる。
6. ビーズを析出するために、磁石上にプレートをおく。ここで、あなたは、1μLのDNAを準備シーケンシング反応に取り上げることができるはずである。残りを将来の使用のために-20℃に取っておく。
シーケンシング反応混合物の調製
1. 氷上で、暗所においてBigDye 3.1を融解する。
2. 下記の表を使用して、チューブ(eppendorfまたは15mlのチューブ)にマスター混合物を調製する。水、緩衝液、DMSO、およびBigDyeは、一覧表に記載されたに順に添加すべきである。
3. それぞれの試薬を添加すると共に、ピペット操作によって穏やかに上下して試薬を混合することが非常に重要である。
4. 汎用プライマーを使用するときは、シーケンシングのためのプライマーも、この時点でマスター混合物に添加することができる。プライマーが独特である場合、マスター混合物を384-ウェル・プレートにいれたあと、これを個々に添加するべきである。
5. 全384-ウェル・プレートの反応のためには、約415反応のために十分なマスター混合物を作製する。
6. 一旦マスター混合物が準備されれば、ストリップチューブの8つのウェルに混合物を分ける。(マスター混合物のアリコートをとるために貯蔵所を使用しない。それは、試薬の消耗である。)
7. ここで、多チャンネルピペットを使用してマスター混合物を384-ウェル・プレートにアリコートをとることができる。
8. 気泡を除去するために、マスター混合物のプレートを回転させる。
9. 多チャンネル・ピペットを使用してシーケンスするPCR産物を添加する。ピペット操作によって上下して確実に混合する
10. いずれの気泡も除去するために、プレートを回転させる。
11. 増幅するために下記のサイクルを使用する。
1.Cleanseq磁気ビーズのプレートをビーズの沈着がなくなるまでボルテックスする。
2. BiomekのCleanseq 384-ウェル・プレート・プログラムを使用して試料を精製する。
3. 一旦プログラムが行われたら、もとのプレートを-20℃に保存する。清潔な試料を含む新たなプレートをABI 3730を行うために準備する。
(注:PCR産物が300bpよりも短い場合、あなたは、3730にこれを置く前に試料を希釈しなければならないかもしれない)。
全ての陽性結果を、特定のエキソン(その中のDNA配列変化が、もとの組織試料に由来する患者のDNAの第二のアリコートから検出された)を増幅し、シーケンスすることによって繰り返される。加えて、患者の血液試料から抽出したDNAを平行して泳動し、検出された配列変化がゲフィチニブまたはエルロチニブ応答者において以前に検出されていなかったかどうかを、腫瘍組織と比較するべきである。
試験の感受性-体細胞のEGFRキナーゼドメイン突然変異の感受性は、NSCLCである個体の約13%に見いだされた(Paez JG et al.,2004)。加えて、体細胞のEGFRキナーゼドメイン突然変異は、ゲフィチニブ応答性であったNSCLCである13/14(92.8%)の個体においても見いだされた(Paez JG et al.,2004, Lynch, et al.,2004)。試験の技術的感受性の確認では、公知の突然変異に対する100%の感度を証明し、本発明者らの研究室におけるシーケンシング・プラットフォームの確認では、100%の感度を示す(下記の「技術の精度」を参照されたい)。モザイク試料の突然変異検出についての感度は、25%であることが決定された(すなわち、細胞混合物の50%にて存在するときに、ヘテロ接合性突然変異を検出することができる)。本発明者らは、20%までのパラフィン包埋された組織が高品質DNAを生じないことを見いだした。本発明者らは、これらの試料から配列情報を得ることができない。
1つまたは複数のエキソンにわたる大きな欠失は、特にヘテロ接合性に存在する場合、シーケンシング法によっては検出されない。キナーゼドメインの外側のEGFR遺伝子の突然変異は、本アッセイ法によっては検出されない。阻害剤をDNA試料中に存在させて、PCRによる増幅を防げてもよい。分解されたDNAは、分析可能なデータを生じなくてもよく、検体の再提出が必要であるかもしれない。ターゲットされたプライマー配列のまれな配列変異または二次構造は、PCR増幅に影響を及ぼす可能性があり、したがって、突然変異は、1つの対立遺伝子のその領域にないことがある。
ゲフィチニブ(イレッサ)は、上皮細胞成長因子受容体(EGFR)をターゲットするチロシンキナーゼ阻害剤であり、EGFRキナーゼドメインの突然変異を活性化することで、非小細胞肺癌(NSCLC)における劇的な臨床効果を誘導する。本発明者らは、これらの変異体EGFRが、AktおよびSTATシグナリング経路を選択的に活性化し、これが細胞生存を促進するが、増殖を誘導するErk/MAPKシグナリングに対して効果を有さないことを報告する。変異体EGFRを発現するNSCLCは、siRNAを媒介した変異体EGFRのノックダウンまたはAktおよびSTATシグナリングの薬理学的阻害剤での処置に続いて、広範なアポトーシスを受け、従来の化学療法剤によって誘導されるアポトーシスに対して比較的耐性であった。したがって、変異体EGFRは、NSCLCが依存的になる生存シグナルを選択的に伝達し、したがって、ゲフィチニブによるこれらのシグナルの阻害は、顕著な臨床効果の基礎をなし得る。
対照的に、アポトーシス経路は、変異体EGFRをもつ肺癌細胞では著しく異なっており:これらの株化細胞におけるsiRNAを媒介した変異体EGFRの特異的な不活性化は、迅速かつ大量のアポトーシスを生じた。L858R特異的siRNAをトランスフェクトした約90%のNCI-H1975細胞は、96時間以内に死滅し、delE746-A750特異的siRNAをトランスフェクトしたNCI-H1650細胞でも同様であった。いずれのEGFR突然変異に対する特異的SiRNAも、代わりの突然変異を発現する細胞に対しては全く効果を有さず、野生型および変異体EGFRの両方をターゲットするsiRNAは、野生型受容体のみを発現する細胞の生存度に対して最小限の効果を有したが、EGFR変異体を発現する系統では、迅速に細胞死が誘導された。siRNAsが対応するEGFR対立遺伝子を特異的にターゲットする能力は、トランスフェクトしたCOS7細胞において免疫ブロットによって確認した。したがって、変異体EGFRの発現は、これらの突然変異がひそむ肺癌におけるプロアポトーシスシグナルの抑制のために必須のように見える。野生型受容体のみを発現する肺癌細胞は、EGFR発現に対して同様の依存性を示さないという事実は、また、野生型EGFRを過剰発現するヒト腫瘍の相対的ゲフィチニブ非応答性の原因であるかもしれない。
免疫ブロッティング
培養細胞由来の可溶化液を氷冷RIPA溶解溶液(1%トリトンX-100、0.1% SDS、50mM Tris-HCl、pH 7.4、150mM NaCl、1mM EDTA、1mM EGTA、10mM β-グリセロール-リン酸、10mM NaF、1mMプロテアーゼ阻害剤を含むオルトバナジウム酸Na)中に調製した。12,000×gで10分間、4℃にて微量遠心管中で遠心分離することによって細片を除去した。浄化された可溶化液をゲルローディング緩衝液中で煮沸して、10%のSDS-PAGEよって分離した。タンパク質をニトロセルロースに電気転写して、特異的抗体で、続いて西洋ワサビペルオキシダーゼ抱合二次ヤギ抗体細胞シグナリング(Beverly(MA);1:2000)とのインキュベーションおよび増強された化学発光(DuPont NEN)で発色、続くオートラジオグラフィーで検出した。ホスホEGFR Y845、Y992、Y1045、Y1068、ホスホSTAT5(tyr694)、ホスホAKT(Ser473)、ホスホERKl/2(Thr202/Tyr204)、AKT、STAT5、およびERK1/2抗体は、New England Biolabs(Beverly、MA)から得た。総EGFR Ab20の抗体は、NeoMarkers(Fremont、CA)から得た。ホスホEGFRY1173抗体は、Upstate Biotechnology(Lake Placid、NY)からであり、総ホスホチロシン抗体PY-20は、Transduction Laboratory(Lexington、KY)からであった。全ての抗体は、1:1000希釈にて使用した。
野生型、L858、またはデルL747-P753insS突然変異をコードする全長EGFR発現構築物は、プラスミドpUSEampに標準的方法を使用してサブクローニングした。全ての構築物は、DNA配列解析によって確認した。
COS7細胞およびNMuMg(乳房の正常マウス上皮)細胞は、2mM L-グルタミンおよび50U/mlペニシリン/ストレプトマイシンの存在下において、10%ウシ胎児血清を含むDMEM(ダルベッコイーグル修飾培地中で培養した。NCI-H358、NCI-H1650、NCI-H1734、NCI-H1666、およびNCI-H1975ヒト肺癌株化細胞は、ATCC収集から得て、10%ウシ胎児血清、2mM L-グルタミン、50U/mlペニシリン/ストレプトマイシン、および1mM ピルビン酸ナトリウムを含むRPMI1640中で培養した。これらは、本文中では、それぞれ省略様式でH358、H1650、H1734、H1666、およびH1975と呼ぶ。COS7細胞の一過性トランスフェクションは、Lipofectamine 2000(Invitrogen;Carlsbad、Ca)を使用して行った。プラスミド(1μg)を10cmのディッシュ上の80%のコンフルエンスの細胞にトランスフェクトした。12時間後に、細胞を収集して、血清の非存在下で12-ウェル・プレートに再びまいた。次の日、細胞を30ng/mlのEGFで刺激した。安定なNMuMg株化細胞は、薬物選択可能なプラスミドpBABE puroとEGFR発現構築物を同時トランスフェクトし、続いて3μg/mlピューロマイシン中で選択することによって調製した。薬物抵抗性細胞のプールを解析のために使用した。安定にトランスフェクトされた細胞におけるEGFRの発現は、免疫ブロットによって確認した。
EGFR L858RのためのSiRNAは、ヌクレオチド配列
をターゲットするように設計し、一方、
配列をdelE745-A750のために使用した(Qiagen;Valencia、Ca)。EGFRの全ての形態をターゲットするために、ヒト野生型EGFRに対応する商業的に調製されたsiRNAをDharmacon(Lafayette, CO)から得た。siRNAsのトランスフェクションは、製造業者の説明書に従ってLipofectamine 2000(Invitrogen)で行った。細胞は、MTTアッセイ法を使用して96時間後に生存度をアッセイした。
10,000個の細胞を96ウェル・プレートの個々のウェルに播種した。6時間後に、培地を変えて、細胞をドキソルビシン(Sigma;St. Louis, MO)、シスプラチン(Sigma)、Fas-リガンド(ヒト活性化、cloneCH11;Upstate Biotechnology)、Ly294002(Sigma)、またはAG490(Calbiochem;La Jolla(Ca))の濃度を増大して存在させて維持した。96時間後に、MTTアッセイ法を使用して細胞の生存度を決定した。カスパーゼ免疫染色のためには、10,000個の細胞を10mmのカバーガラスに播種した。その翌日、これらには、siRNAをトランスフェクトした(詳細については、以前の節を参照されたい)。72時間後に、細胞を4%のパラホルムアルデヒド中で室温にて10分間固定した。これらを、その後0.5%のトリトンX-100中で5分間透過化させ、5%の正常ヤギ血清(NGS)中で1時間ブロックした。次いで、カバーガラスを1:100希釈の一次抗体(Cell Signalingからの切断型カスパーゼ-3 Asp 175 5A1)中で4℃にて一晩インキュベートした。その翌日、カバーガラスをPBS中で3回洗浄し、二次抗体(Jackson Immunoresearch ; West Grove, PAからのヤギ抗ウサギテキサスレッド抱合)の1:250希釈のDAPIの5%の正常ヤギ血清および0.5μg/mlにおいて(4’,6-ジアミジノ-2-フェニルインドール)溶液と共に1時間インキュベートした。PBS中で3回洗浄後、カバーガラスをMolecular Probes(Eugene, OR)からのProLong Gold抗退色試薬と共にのせた。
10μlの5mg/ml MTTの(チアゾリルブルー;Sigma)溶液を96ウェル・プレートのそれぞれのウェルに添加した。37℃にて2時間インキュベーション後、培地を除去し、100μlの酸性イソプロパノール(0.1N HCL)をそれぞれのウェルに添加することによってMTTを可溶化した。吸光度は、570nmにて分光測定で決定した。
H-358、H-1650、H-1734、およびH-1975細胞のための増殖曲線は、96ウェル・プレートの個々のウェルに1000個の細胞を播種することによって得た。それぞれの株化細胞は、8つの別々のウェルにまいた。連日、細胞を4%のホルムアルデヒド中で固定し、0.1%(w/v)クリスタルバイオレット溶液で染色した。次いで、クリスタルバイオレットを100μlの10%の酢酸に可溶して、相対的細胞数を決定するために、プレートリーダーを使用して吸光度を570mnにて測定した。
EGFR内に突然変異がひそむ散在性NSCLC株化細胞を同定するために、本発明者らは、上記の通りに15個のNSCLC株化細胞のパネル内のエキソン19および21をシーケンスした。株化細胞は、喫煙歴(NCI-H358、NCI-H650、NCI-H1650)に関係なく、気管支肺胞組織の腫瘍から、または非喫煙者(NCI-H1435、NCI-H1563、NCI-H1651、NCI-H1734、NCI-H1793、NCI-H1975、NCI-H2291、NCI-H2342、NCI-H2030、NCI-H1838、NCI-H2347、NCI-H2023)の中に生じた腺癌からの誘導に基いて、解析のために選択した。NCI-H1666は、野生型EGFRのみがひそむことが報告されていた(上記実施例を参照されたい)。全ての株化細胞は、ATCCから入手可能である。
*気管支肺胞の癌腫(BAC)の任意のエレメントをもつ腺癌(アデノ)をBACとして一覧表に記載してある。
†喫煙状態は、患者が侵入の12ヶ月前以内に一切タバコを吸わなかった場合、および患者が彼または彼女の生涯において100本未満のタバコしか吸わなかった場合、以前のとおりに定義した。
‡全体的生存は、ゲフィチニブ治療の開始から死ぬまでを測定した。
§EGFRは、表皮成長因子受容体遺伝子を意味する。
¶部分的応答は、固形腫瘍における反応評価基準を用いて評価した;これらの基準を用いて応答を測定することができない患者における大部分および少数の応答は、2人の医師によって評価した。
*ゲフィチニブに対する曝露のない25人の患者の中で、(気管支肺胞癌である15人、腺癌である7人、および大細胞型癌腫である3人)、2人(患者AおよびB)ー両者とも気管支肺胞癌-は、EGFR突然変異を有した。突然変異は、多様な組織型を示す14の肺癌株化細胞:非小細胞肺癌(6検体)、小細胞型肺癌(6検体)、気管支カルチノイド(1検体)および未知の型(1検体)では見いだされなかった。EGFR内で同定された多形性変異体は、以下を含んだ:ヌクレオチド1807におけるGの代わりにAの置換、ヌクレオチド2132におけるTの代わりにAの置換、および未知の機能的有意性の生殖系列変異体、チロシンキナーゼドメイン内のヌクレオチド3130におけるGの代わりにAの置換。
Adeno=腺癌、Adeno+BAC=細気管支肺胞性癌腫の特徴をもつ腺癌、BAC=同型接合体細気管支肺胞性癌腫
*この突然変異は、生殖系列変異体として同定された
Claims (23)
- (a)非小細胞肺癌を患うヒト患者から得られた生体試料に、以下の上皮細胞成長因子受容体(EGFR)遺伝子におけるヌクレオチド相違のうちの少なくとも1つに特異的なプライマーを添加するステップであって、該ヌクレオチド相違が、
(i)配列番号:512の719位のグリシンからシステインへの置換(G719C)または719位のグリシンからセリンへの置換(G719S)をもたらす、エキソン18内の変異、
(ii)配列番号:512のコドン747、748、および749において、少なくともアミノ酸ロイシン、アルギニン、およびグルタミン酸の欠失をもたらす、エキソン19内の枠内欠失、ならびに
(iii)配列番号:512の858位のロイシンからアルギニンへのアミノ酸置換(L858R)または861位のロイシンからグルタミンへのアミノ酸置換(L861Q)をもたらす、エキソン21内の変異
からなる群から選択される、ステップと、
(b)前記少なくとも1つのヌクレオチド相違を増幅するために増幅ステップを行うステップと、
(c)前記少なくとも1つのヌクレオチド相違が存在するか否かを検出するステップと、
を含むアッセイ方法。 - 前記生体試料が前記ヒト患者の血液から得られたものである、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記生体試料が血漿である、請求項2記載のアッセイ方法。
- 前記生体試料が前記ヒト患者の腫瘍生検から得られたものである、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記増幅がポリメラーゼ連鎖反応(PCR)により行われる、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記増幅が対立遺伝子特異的増幅である、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、719位のグリシンからシステインへの置換(G719C)をもたらすエキソン18内の変異である、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、配列番号:512の719位のグリシンからセリンへの置換(G719S)をもたらすエキソン18内の変異である、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、配列番号:512のコドン747、748、および749において、少なくともアミノ酸ロイシン、アルギニン、およびグルタミン酸の欠失をもたらす、エキソン19内の枠内欠失である、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、858位のロイシンからアルギニンへのアミノ酸置換(L858R)をもたらすエキソン21内の変異である、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、配列番号:512の861位のロイシンからグルタミンへのアミノ酸置換(L861Q)をもたらすエキソン21内の変異である、請求項1記載のアッセイ方法。
- 検出が、前記ヌクレオチド相違に特異的に結合する変異特異的プローブとのハイブリダイゼーションにより行われる、請求項1記載のアッセイ方法。
- 前記プローブが検出可能な標識を含む、請求項12記載のアッセイ方法。
- (a)非小細胞肺癌を患うヒト患者から得られた生体試料に、以下の上皮細胞成長因子受容体(EGFR)遺伝子におけるヌクレオチド相違のうちの少なくとも1つに特異的なプローブを添加するステップであって、該ヌクレオチド相違が、
(i)配列番号:512の719位のグリシンからシステインへの置換(G719C)または719位のグリシンからセリンへの置換(G719S)をもたらす、エキソン18内の変異、
(ii)配列番号:512のコドン747、748、および749において、少なくともアミノ酸ロイシン、アルギニン、およびグルタミン酸の欠失をもたらす、エキソン19内の枠内欠失、ならびに
(iii)配列番号:512の858位のロイシンからアルギニンへのアミノ酸置換(L858R)または861位のロイシンからグルタミンへのアミノ酸置換(L861Q)をもたらす、エキソン21内の変異
からなる群から選択される、ステップと、
(b)前記ヌクレオチド相違を含む核酸に前記プローブをハイブリダイズさせるために、ハイブリダイゼーションステップを行うステップと、
(c)前記相違の少なくとも1つが存在するか否かを検出するステップと、
を含むアッセイ方法。 - 前記生体試料が前記ヒト患者の血液から得られたものである、請求項14記載のアッセイ方法。
- 前記生体試料が血漿である、請求項15記載のアッセイ方法。
- 前記生体試料が前記ヒト患者の腫瘍生検から得られたものである、請求項14記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、719位のグリシンからシステインへの置換(G719C)をもたらすエキソン18内の変異である、請求項14記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、配列番号:512の719位のグリシンからセリンへの置換(G719S)をもたらすエキソン18内の変異である、請求項14記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、配列番号:512のコドン747、748、および749において、少なくともアミノ酸ロイシン、アルギニン、およびグルタミン酸の欠失をもたらす、エキソン19内の枠内欠失である、請求項14記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、858位のロイシンからアルギニンへのアミノ酸置換(L858R)をもたらすエキソン21内の変異である、請求項14記載のアッセイ方法。
- 前記ヌクレオチド相違が、配列番号:512の861位のロイシンからグルタミンへのアミノ酸置換(L861Q)をもたらすエキソン21内の変異である、請求項14記載のアッセイ方法。
- 前記プローブが検出可能な標識を含む、請求項14記載のアッセイ方法。
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