JP3942001B2 - 電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法 - Google Patents
電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法 Download PDFInfo
- Publication number
- JP3942001B2 JP3942001B2 JP34383599A JP34383599A JP3942001B2 JP 3942001 B2 JP3942001 B2 JP 3942001B2 JP 34383599 A JP34383599 A JP 34383599A JP 34383599 A JP34383599 A JP 34383599A JP 3942001 B2 JP3942001 B2 JP 3942001B2
- Authority
- JP
- Japan
- Prior art keywords
- gel
- electrophoresis
- range
- coexisting
- mol
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Fee Related
Links
- 238000001962 electrophoresis Methods 0.000 title claims description 51
- 229920002401 polyacrylamide Polymers 0.000 title claims description 42
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims description 28
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims description 28
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims description 21
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 21
- 239000000872 buffer Substances 0.000 claims description 78
- DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N Glycine Chemical compound NCC(O)=O DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 64
- 239000004471 Glycine Substances 0.000 claims description 31
- 239000003792 electrolyte Substances 0.000 claims description 27
- LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N tris Chemical compound OCC(N)(CO)CO LENZDBCJOHFCAS-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 27
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims description 20
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 claims description 14
- HRPVXLWXLXDGHG-UHFFFAOYSA-N Acrylamide Chemical compound NC(=O)C=C HRPVXLWXLXDGHG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 claims description 9
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 claims description 9
- 125000000129 anionic group Chemical group 0.000 claims description 6
- 239000003505 polymerization initiator Substances 0.000 claims description 6
- 125000002091 cationic group Chemical group 0.000 claims description 5
- MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N Serine Natural products OCC(N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- COLNVLDHVKWLRT-QMMMGPOBSA-N L-phenylalanine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC1=CC=CC=C1 COLNVLDHVKWLRT-QMMMGPOBSA-N 0.000 claims description 3
- QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N L-tryptophane Chemical compound C1=CC=C2C(C[C@H](N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-VIFPVBQESA-N 0.000 claims description 3
- QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N Tryptophan Natural products C1=CC=C2C(CC(N)C(O)=O)=CNC2=C1 QIVBCDIJIAJPQS-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims description 3
- 239000003431 cross linking reagent Substances 0.000 claims description 3
- COLNVLDHVKWLRT-UHFFFAOYSA-N phenylalanine Natural products OC(=O)C(N)CC1=CC=CC=C1 COLNVLDHVKWLRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 230000000379 polymerizing effect Effects 0.000 claims description 3
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 claims description 2
- FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N L-methionine Chemical compound CSCC[C@H](N)C(O)=O FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N 0.000 claims description 2
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 claims description 2
- MOTZDAYCYVMXPC-UHFFFAOYSA-N dodecyl hydrogen sulfate Chemical compound CCCCCCCCCCCCOS(O)(=O)=O MOTZDAYCYVMXPC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229940043264 dodecyl sulfate Drugs 0.000 claims description 2
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 229930182817 methionine Natural products 0.000 claims description 2
- 125000003607 serino group Chemical group [H]N([H])[C@]([H])(C(=O)[*])C(O[H])([H])[H] 0.000 claims description 2
- 239000000499 gel Substances 0.000 description 122
- 239000007983 Tris buffer Substances 0.000 description 23
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 20
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 14
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 14
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 12
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 9
- 239000000178 monomer Substances 0.000 description 9
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 9
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 7
- 238000013508 migration Methods 0.000 description 7
- 230000005012 migration Effects 0.000 description 7
- 239000012146 running buffer Substances 0.000 description 7
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N Acetic acid Chemical compound CC(O)=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M Sodium laurylsulphate Chemical compound [Na+].CCCCCCCCCCCCOS([O-])(=O)=O DBMJMQXJHONAFJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 6
- 230000007774 longterm Effects 0.000 description 6
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 5
- -1 and in particular Substances 0.000 description 5
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 4
- 238000006386 neutralization reaction Methods 0.000 description 4
- 239000007993 MOPS buffer Substances 0.000 description 3
- KWYHDKDOAIKMQN-UHFFFAOYSA-N N,N,N',N'-tetramethylethylenediamine Chemical compound CN(C)CCN(C)C KWYHDKDOAIKMQN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- ROOXNKNUYICQNP-UHFFFAOYSA-N ammonium peroxydisulfate Substances [NH4+].[NH4+].[O-]S(=O)(=O)OOS([O-])(=O)=O ROOXNKNUYICQNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 229910001870 ammonium persulfate Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 3
- 239000003550 marker Substances 0.000 description 3
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 3
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- SEQKRHFRPICQDD-UHFFFAOYSA-N N-tris(hydroxymethyl)methylglycine Chemical compound OCC(CO)(CO)[NH2+]CC([O-])=O SEQKRHFRPICQDD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 description 2
- 239000003638 chemical reducing agent Substances 0.000 description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 2
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 2
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 2
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 description 2
- 238000006116 polymerization reaction Methods 0.000 description 2
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 2
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 2
- KAKZBPTYRLMSJV-UHFFFAOYSA-N vinyl-ethylene Natural products C=CC=C KAKZBPTYRLMSJV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N β‐Mercaptoethanol Chemical compound OCCS DGVVWUTYPXICAM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- MTCFGRXMJLQNBG-REOHCLBHSA-N (2S)-2-Amino-3-hydroxypropansäure Chemical compound OC[C@H](N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- JKMHFZQWWAIEOD-UHFFFAOYSA-N 2-[4-(2-hydroxyethyl)piperazin-1-yl]ethanesulfonic acid Chemical compound OCC[NH+]1CCN(CCS([O-])(=O)=O)CC1 JKMHFZQWWAIEOD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- NUFBIAUZAMHTSP-UHFFFAOYSA-N 3-(n-morpholino)-2-hydroxypropanesulfonic acid Chemical compound OS(=O)(=O)CC(O)CN1CCOCC1 NUFBIAUZAMHTSP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RZQXOGQSPBYUKH-UHFFFAOYSA-N 3-[[1,3-dihydroxy-2-(hydroxymethyl)propan-2-yl]azaniumyl]-2-hydroxypropane-1-sulfonate Chemical compound OCC(CO)(CO)NCC(O)CS(O)(=O)=O RZQXOGQSPBYUKH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000007991 ACES buffer Substances 0.000 description 1
- 229920000936 Agarose Polymers 0.000 description 1
- 108700016232 Arg(2)-Sar(4)- dermorphin (1-4) Proteins 0.000 description 1
- 239000007995 HEPES buffer Substances 0.000 description 1
- 239000007987 MES buffer Substances 0.000 description 1
- DBXNUXBLKRLWFA-UHFFFAOYSA-N N-(2-acetamido)-2-aminoethanesulfonic acid Chemical compound NC(=O)CNCCS(O)(=O)=O DBXNUXBLKRLWFA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- JOCBASBOOFNAJA-UHFFFAOYSA-N N-tris(hydroxymethyl)methyl-2-aminoethanesulfonic acid Chemical compound OCC(CO)(CO)NCCS(O)(=O)=O JOCBASBOOFNAJA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920003171 Poly (ethylene oxide) Polymers 0.000 description 1
- 239000004372 Polyvinyl alcohol Substances 0.000 description 1
- XUIMIQQOPSSXEZ-UHFFFAOYSA-N Silicon Chemical compound [Si] XUIMIQQOPSSXEZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- UZMAPBJVXOGOFT-UHFFFAOYSA-N Syringetin Natural products COC1=C(O)C(OC)=CC(C2=C(C(=O)C3=C(O)C=C(O)C=C3O2)O)=C1 UZMAPBJVXOGOFT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000007997 Tricine buffer Substances 0.000 description 1
- QYKIQEUNHZKYBP-UHFFFAOYSA-N Vinyl ether Chemical compound C=COC=C QYKIQEUNHZKYBP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000003368 amide group Chemical group 0.000 description 1
- VAZSKTXWXKYQJF-UHFFFAOYSA-N ammonium persulfate Chemical compound [NH4+].[NH4+].[O-]S(=O)OOS([O-])=O VAZSKTXWXKYQJF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000012742 biochemical analysis Methods 0.000 description 1
- UDSAIICHUKSCKT-UHFFFAOYSA-N bromophenol blue Chemical compound C1=C(Br)C(O)=C(Br)C=C1C1(C=2C=C(Br)C(O)=C(Br)C=2)C2=CC=CC=C2S(=O)(=O)O1 UDSAIICHUKSCKT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 1
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 1
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 1
- NKLPQNGYXWVELD-UHFFFAOYSA-M coomassie brilliant blue Chemical compound [Na+].C1=CC(OCC)=CC=C1NC1=CC=C(C(=C2C=CC(C=C2)=[N+](CC)CC=2C=C(C=CC=2)S([O-])(=O)=O)C=2C=CC(=CC=2)N(CC)CC=2C=C(C=CC=2)S([O-])(=O)=O)C=C1 NKLPQNGYXWVELD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 1
- 238000004042 decolorization Methods 0.000 description 1
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- KCFYHBSOLOXZIF-UHFFFAOYSA-N dihydrochrysin Natural products COC1=C(O)C(OC)=CC(C2OC3=CC(O)=CC(O)=C3C(=O)C2)=C1 KCFYHBSOLOXZIF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000006073 displacement reaction Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- BXKDSDJJOVIHMX-UHFFFAOYSA-N edrophonium chloride Chemical compound [Cl-].CC[N+](C)(C)C1=CC=CC(O)=C1 BXKDSDJJOVIHMX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000005611 electricity Effects 0.000 description 1
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 1
- 150000002333 glycines Chemical class 0.000 description 1
- 239000003999 initiator Substances 0.000 description 1
- 238000011835 investigation Methods 0.000 description 1
- 230000005865 ionizing radiation Effects 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- ZIUHHBKFKCYYJD-UHFFFAOYSA-N n,n'-methylenebisacrylamide Chemical compound C=CC(=O)NCNC(=O)C=C ZIUHHBKFKCYYJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000007530 organic bases Chemical class 0.000 description 1
- 238000010979 pH adjustment Methods 0.000 description 1
- 229920002451 polyvinyl alcohol Polymers 0.000 description 1
- 229920000036 polyvinylpyrrolidone Polymers 0.000 description 1
- 239000001267 polyvinylpyrrolidone Substances 0.000 description 1
- 235000013855 polyvinylpyrrolidone Nutrition 0.000 description 1
- 238000004445 quantitative analysis Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 229910052710 silicon Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010703 silicon Substances 0.000 description 1
- 125000006850 spacer group Chemical group 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 229920003169 water-soluble polymer Polymers 0.000 description 1
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Description
【０００１】
【発明の属する技術分野】
この発明は，生化学医薬分析を目的とする長期保存可能な電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルは、蛋白質、糖質、脂質など生体を構成する重要な物質の検出及び定量分析を目的として、 生物学、医学、水産学、獣医学など多くの分野における基礎的研究手段として広く使用されている。特に、ポリアクリルアミドゲルは、人工的に合成された物質であるため、処方を変えることで分離特性の異なるゲルを容易に作成することができる。そのため、予め様々な分離特性を持つように量産されたプレキャストゲルを使用することで分析の手間を大幅に省くことができると共に、プレキャストゲルが均一で再現性が良いことから当該分野における生産および品質管理に貢献するところが大である。量産されたプレキャストゲルを供給するに際しては、保存安定性が良好であることが期待される。
【０００３】
従来、電気泳動用ポリアクリルアミドゲルは蛋白質の生化学医薬分析用に、オルンスタイン（Ｌ．Ｏｒｎｓｔｅｉｎ，Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．１２１，３２１−３４９（１９６４））とデービス（Ｂ．Ｊ．Ｄａｖｉｓ，Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．１２１, ４０４−４２７（１９６４））によって提案された方法や、レムリー（Ｕ．Ｋ．Ｌａｅｍｍｌｉ，Ｎａｔｕｒｅ２２７，６８０（１９７０））によって提案された方法が広く使用され、使用者がゲルを製造して使用してきた。特にドデシル硫酸ナトリウム（以下、ＳＤＳと略す）をゲルや泳動用緩衝液に添加することで手軽に蛋白質の分子量を推定できるレムリーの方法が広く普及している。レムリーの方法はゲル緩衝液としてトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（以下、トリスと略す）の塩酸による部分中和物を使用し、 泳動用緩衝液としてはトリス、グリシン塩を使用している（レムリーの泳動緩衝液）。この方法におけるゲル緩衝液ではｐＨが８．８になるようにトリスの約１０〜２０モル％を塩酸により部分中和する（レムリーのゲル緩衝液）。
【０００４】
しかしながら、レムリーのゲル緩衝液のｐＨでは、アミド基は経時的に加水分解反応を受ける。加水分解反応は低温条件でも進行し、 ポリアクリルアミドゲルは部分的にアニオン基を有することになる。この結果、蛋白質の泳動距離が短くなると共に分離像は不鮮明となるので、ゲルを長期に保存することは出来ない。このため、予め量産したゲルを供給するプレキャストゲルにおいては、保管期限を限定して供給する必要があり、保管期間中のゲルを安定させるため、保存安定性が良好であることが望まれている。
【０００５】
保存安定性の良いゲルを製造する方法に関しては、トリス、両性電解質及び酸から成るゲル緩衝液を内包した、長期保存安定性に優れ且つ測定可能な分子量範囲を著しく拡大したポリアクリルアミドゲルの製造方法が特開平４−１８４１６３公報に開示されている。この製造方法によるポリアクリルアミド電気泳動ゲルはレムリーの泳動用緩衝液を使用して分析可能であり、 両性電解質を含有するｐＨ４．０〜７．５のゲル緩衝液を内包することを特徴とし、その実施例においてｐＨ６．９〜７．４のゲルの製造が例示され、冷蔵保存で4 ヶ月の間は蛋白質の移動度に変化なく安定であるとされている。
【０００６】
このゲル緩衝液は、ポリアクリルアミドゲルの加水分解を抑制する目的でトリスの中和率を高く設定して、泳動ゲル中のトリス強酸部分とトリス弱酸部分の境界付近での電位勾配の変化を両性電解質の添加によって緩やかにし、 レムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルと同等の分画分子量範囲を持たせることを意図している。
【０００７】
しかし、ｐＨ６．９〜７．４の範囲のゲル緩衝液を内包したポリアクリルアミドゲルは冷蔵保存で5 ヶ月以上経過すると蛋白質の移動度に変化が現れる。またスラブゲルの場合、ゲルの形状が変化しガラスプレートがずれ易くなる。その結果、泳動分析上のハンドリングが悪くなり、ガラスのずれによるゲルの剥離などの問題も生ずる。ｐＨを６．８以下にすると保存安定性が更に向上することが推測されるが、泳動時間が長くなる、分離能が悪化すると言う問題があり、５ヶ月以上の保存安定性を持つ蛋白質の分離能が良好でかつ、レムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせたポリアクリルアミドゲルを得ることができなかった。
【０００８】
また、特表平９−５１２９０７公報には、中性ｐＨ長寿命プレキャスト電気泳動ゲルのためのシステムが表示されている。このシステムでゲル緩衝液はｐＨが中性付近の一価有機アミン又は置換アミンを含有し、 約6 〜７の間のｐＨに塩酸で滴定されている。泳動用緩衝液はＭＯＰＳ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、ＭＯＰＳＯ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ又はＴＡＰＳＯから成る群から選択される両性イオンを含み、 水酸化ナトリウム又は有機塩基で約７のｐＨに滴定されている。ゲル緩衝液、泳動緩衝液共に中性に設定することで、 ポリアクリルアミドゲルの加水分解を抑制すると同時に蛋白質が完全に還元されたままで分離されるような緩衝液システムである。この電気泳動用システムでは１２カ月の間は安定とされている。
【０００９】
しかし、特表平９−５１２９０７公報に表示されているシステムでは、専用の分子量マーカーを用いなければならない。また、特表平９−５１２９０７公報に表示されているポリアクリルアミドゲルは公知の泳動用緩衝液、例えば汎用に利用されているグリシンを含有するレムリーの泳動緩衝液を使用しても、泳動速度が極めて遅く蛋白質の分離分析に使用することが不可能である。
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
そこで、具体的には、冷蔵保存で6 ヶ月以上蛋白質の分離能及びゲルの形状共に安定で、かつレムリーのゲル緩衝液を使用して作成されたゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせたポリアクリルアミドプレキャストゲルを得る点について解決すべき課題がある。予め様々な分離特性を持つように量産されたプレキャストゲルは、保存安定性が良好であれば、保管有効期限を長く設定することが可能である。また、分析方法が普及しているレムリーの泳動緩衝液が使用できれば、使用者が経済的かつ効率的に分析を遂行することができる。
【００１１】
【課題を解決するための手段】
この発明の目的は，上記の課題を解決するものであり，保存安定性に優れ，保管有効期限が長く，また，分析方法が普及しているレムリーの泳動緩衝液を使用可能とする，長期保存安定性を有する電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法を提供することである。
【００１２】
本発明者らはレムリーの泳動用緩衝液が使用可能な長期安定性を持つ電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル、その製造方法及びその使用方法について鋭意検討した結果、以下の発明に到達した。すなわち、ゲル緩衝液のｐH を６．０〜６．８の範囲とし、トリス、グリシン、１種又は２種以上の共存両性電解質を含有した特定濃度の泳動ゲル緩衝液を使用することにより、半年から１年以上ゲルの形状、泳動像に変化の無いゲルを得ることが出来た。また、その使用方法及びそれを製造する方法も見出した。
【００１３】
この発明は、上記の目的を達成するため、次のように構成されている。即ち、この発明は、泳動用緩衝液の組成がトリス及び両性電解質を含有する水溶液である電気泳動法に用いるポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて、そのゲルが特定範囲の使用量のトリス、グリシン、特定の塩基解離定数、特定の添加量の両性電解質および、共存両性電解質とグリシンの濃度合計の濃度が特定範囲の両性電解質、および特定のｐＨである緩衝液を用いて調製されていることを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルに関する。即ち、この発明は、泳動用緩衝液の組成がトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン及び両性電解質を含有する水溶液である電気泳動法に用いるポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて、前記ゲルは、
（１）前記トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンの濃度が０．０７ｍｏｌ／Ｌ〜０．２ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり、
（２）前記両性電解質がグリシンと１種又は２種以上の共存両性電解質から成り、
１．前記共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂが８．３＜ｐＫｂ＜９．６の範囲にあり、
２．前記共存両性電解質の添加量が前記グリシンに対して０．１〜３０ｍｏｌ％の範囲にあり、
３．前記共存両性電解質と前記グリシンの濃度の合計が０．１〜０．３ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり、
（３）ｐＨが６．０〜６．８の範囲
にある緩衝液を用いて調製されていることを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルに関する。
【００１４】
この電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて、前記共存両性電解質が分子内にアニオン性基とカチオン性基を同数有するアミノ酸である。
【００１５】
更に、この電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて、前記共存両性電解質が、セリン、グルタミン、トリプトファン、メチオニン、又はフェニルアラニンである。
【００１６】
また、この発明は、アクリルアミド、多官能架橋剤、水、および前述の緩衝液の混合物を特定のｐＨ条件で重合開始剤の存在下に重合することを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルの製造方法に関する。即ち、この発明は、アクリルアミド、多官能架橋剤、水、並びに下記組成の緩衝液
（１）トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンの濃度が０．０７ｍｏｌ／Ｌ〜０．１ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり、
（２）両性電解質がグリシンと１種又は２種以上の共存両性電解質から成り、
１．前記共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂが８．３＜ｐＫｂ＜９．６の範囲にあり、
２．前記共存両性電解質の添加量が前記グリシンに対して０．１〜３０ｍｏｌ％の範囲にあり、
３．前記共存両性電解質と前記グリシンの濃度の合計が０．１〜０．３ｍｏｌ／Ｌの範囲にある
から成る混合物を、ｐＨが６．０〜６．８の範囲にある条件で重合開始剤の存在下に重合することを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルの製造方法に関する。
【００１７】
更に，この発明は，泳動用緩衝液としてドデシル硫酸塩が存在するトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン及びグリシンを含有する泳動用緩衝液を用い，請求項１〜３のいずれか１項に記載の電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルを用いることを特徴とする蛋白質の分離分析方法に関する。
【００１８】
【発明の実施の形態】
本発明のゲルは、ゲル中に含有する緩衝液の組成が、トリス、グリシン、１種又は２種以上の共存両性電解質からなり、ゲル中のトリス濃度は、０．０７ｍｏｌ／Ｌ〜０．２ｍｏｌ／Ｌ、好ましくは０．０８ｍｏｌ／Ｌ〜０．１ｍｏｌ／Ｌである。この範囲は、 レムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルと同等の泳動時間を有するために必要なゲル中のリーディングイオンの量を含有させることの出来る範囲である。ゲル中のトリス濃度が０．０７ｍｏｌ／Ｌよりも低い場合、泳動像全体が不鮮明となり蛋白質の分離分析に使用しがたいものとなる。ゲル中のトリス濃度が０．２ｍｏｌ／Ｌより高くなるとゲル中のリーディングイオン濃度が高くなり、泳動時間が延長し、分析の作業効率が悪くなる。
【００１９】
また、両性電解質はグリシンと１種又は２種以上の共存両性電解質から成り、共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂの範囲は８．３＜ｐＫｂ＜９．６、好ましくは９．０＜ｐＫｂ＜９．６である。グリシン単独ではゲル緩衝液のｐＨを７以下にした場合、レムリーのゲル緩衝液を用いて作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせることはできない。また、共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂがｐＫｂ＜８．３の場合、トリスよりもｐＫｂが低いことになるため、 ゲル緩衝液のｐＨを変化させ、 また分画分子量範囲を大幅に広くしてしまう。ｐＫｂ＞９．６の場合、グリシンよりも塩基解離定数が高いことになるため、ゲル内の電位勾配の変化を緩やかにする作用に寄与しない。９．０＜ｐＫｂ＜９．６であるセリン、トリプトファン、フェニルアラニン等を使用するとｐＫｂの低いものから順に陽極側へ移動し、 ゲル内の電位勾配の変化は緩やかなものとなる。従ってレムリーのゲル緩衝液を用いて作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせることができる。
【００２０】
また、共存両性電解質の添加量はグリシンに対して０．１〜３０ｍｏｌ％、好ましくは１〜２０ｍｏｌ％である。０．１ｍｏｌ％より低添加量の場合、レムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせる効果が現れず、逆に３０ｍｏｌ％よりも多く添加した場合は泳動像が不鮮明で実用に耐えないものとなる。
【００２１】
また、共存両性電解質とグリシンの濃度の合計が０．１〜０．３ｍｏｌ／Ｌであり、好ましくは０．１〜０．２ｍｏｌ／Ｌである。全両性電解質濃度が０．１ｍｏｌ／Ｌよりも少なく、０．３ｍｏｌ／Ｌより多くなると泳動像が不鮮明で実用に耐えないものとなる。
【００２２】
また、本発明に用いる両性電解質は、分子内にアニオン基とカチオン基を同数有するものが望ましく、 本発明のゲル緩衝液中では全てのアニオン性基と全てのカチオン性基が解離して電気的に中性となり、ｐＫｂ値よりも高いｐＨではアニオン性基のみが解離しカチオン性基の解離が抑制されるため負に帯電する。この為に上記両性電解質は実質的に１価の弱酸としての挙動を示す。
【００２３】
本発明のプレキャストゲル、その使用方法、およびその製造方法に使用するゲル緩衝液のｐＨは、６．０〜６．８であり、好ましくは６．３である。ｐＨ６．８よりも高い場合、ポリアクリルアミドゲルの加水分解が進行し易くなり、保管有効期限を長く持たせることが出来ない。ｐＨ６．０より低い場合、ポリアクリルアミドゲルとしての安定性は良好であるが、蛋白質の泳動像が不鮮明で実用に耐えないものとなる。ｐＨ６．８では冷蔵保存で6 ヶ月もち、さらにｐＨ６．３ではアクリルアミド自体のｐＨに近いため、 ｐＨ６．８に比べ加水分解速度が著しく減少する。その結果１年もの長期間ゲルの形状、泳動像共に変化は見られず安定である。
【００２４】
本発明のプレキャストゲルの使用方法は、トリス、及び両性電解質を含有する泳動用緩衝液を使用して蛋白質の分離分析をする方法であり、特にトリス０．０２５ｍｏｌ／Ｌ、グリシン０．１９２ｍｏｌ／Ｌ、ＳＤＳ０．１重量％である組成の泳動用緩衝液を使用することが望ましい。この組成はレムリーによって提案されたゲル緩衝液で、蛋白質の分離分析方法として広く普及しているため、使用者が経済的かつ効率的に分析を遂行することができる。グリシン以外の両性電解質、たとえばＭＯＰＳを含有した泳動用緩衝液を使用しても蛋白質の分離分析を行うことは出来るが、広く普及しているレムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルの分画分子量範囲よりも広くなってしまう。
【００２５】
本発明のプレキャストゲルの製造方法は、ゲル緩衝液のｐＨ調整と両性電解質の添加以外は、従来公知の電気泳動用ポリアクリルアミドゲルの製造方法に従って製造することができる。例えば、アクリルアミドと共存する架橋を目的とした水溶性ジビニル化合物としては、Ｎ，Ｎ' −メチレンビスアクリルアミド（以下、ＢＩＳと略す）が最も多用されているが、その他Ｎ，Ｎ' −ジアリル酒石酸アミド等の一般的なジビニル化合物も使用することができる。
【００２６】
本発明のプレキャストゲルの製造方法におけるモノマー水溶液には、ゲルに弾力性を持たせゲル強度を向上させるため、アガロース、ポリアクリルアミド、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリエチレンオキサイド、ポリメチルビニルエーテル等の水溶性ポリマーを含有させることもできる。他のモノマーを共重合することもできる。
【００２７】
本発明のプレキャストゲルの製造方法におけるモノマーの重合は、重合開始剤、紫外線照射および電離性放射線の照射により発生するラジカルによって行われる。重合開始剤としては、過硫酸アンモニウム（以下、ＡＰＳと略す）等の過酸化物と、Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチルエチレンジアミン（以下、ＴＥＭＥＤと略す）等の還元剤を併用するレドックス型の重合開始剤が賞用されるが、これら特に限定されるものではない。上記過酸化物及び還元剤は全モノマーに対し、 ０．０５〜５％（重量／容量）が使用される。また、重合温度は開始剤が機能する温度であれば特に限定されないが、通常１５〜５０℃の範囲が好ましい。
【００２８】
【実施例】
以下、実施例により本発明を実施例により説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
実施例１
横幅１２ｃｍ、縦１０ｃｍの長方形のガラス板と、上部に凹状の切り込みの入った同寸法のガラス板の間に、厚さ１ｍｍのスペーサーとモノマー液が漏れないようにシリコンのシールを挟みガラスプレートを組み立てる。アクリルアミド濃度１０％（％Ｔ）、ＢＩＳ濃度５％（％Ｔ）、並びに表１に記載する濃度の緩衝液組成から成るモノマー溶液に対し、ＡＰＳ０．００２５ｍｏｌ／ＬおよびＴＥＭＥＤ０．００７５ｍｏｌ／Ｌとなるように添加混合後、プレート内に注入し、２５℃下で重合させ、電気泳動用ポリアクリルアミドゲルを得た。
そのポリアクリルアミドゲルを用いて市販の蛋白質分子量マーカーを電気泳動し、移動距離を測定した。
【表１】
【００２９】
蛋白質分子量マーカーは、２−メルカプトエタノール、ＳＤＳを用いて処理し、７重量％グリセリン及び０．０５重量％ブロモフェノールブルー（以下、ＢＰＢと略す）を加えて試験に供した。泳動用緩衝液の組成はトリス０．０２５ｍｏｌ／Ｌ、グリシン０．１９２ｍｏｌ／Ｌ、ＳＤＳ０．１重量％のレムリー処方である。電気泳動は２０ｍＡ定電流で行い、ＢＰＢの泳動末端が下から５ｍｍの所で通電を中止した。染色は、０．２５重量％クマシーブリリアントブルー（以下、ＣＢＢと略す）Ｇ−２５０、１０容量％酢酸、３０容量％メタノール溶液中で振とう機を使用して４５分間行い、脱色は７容量％酢酸、３容量％メタノール溶液中で振とう機を使用して９０分間行った。
表２は製造直後の移動度であり、また表３は５℃で６ヶ月間保存後の移動度である。移動度とは蛋白質の移動距離をパーセントで表したものである。
【表２】
【表３】
【００３０】
ゲル緩衝液の酸による中和率の低いレムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルは、高ｐＨの為に長期保存により移動度が低下し、分離能が悪化する。トリスの中和率を上げ、 ゲル緩衝液中に両性電解質としてグリシンのみ添加した場合、長期保存による移動度低下は見られないが低分子領域が検出されない。また、ｐＨを６．８とし、グリシンと共存両性電解質としてトリシン（８．３＞ｐＫｂ）を添加した場合、分画分子量範囲を大幅に広くしてしまう。
【００３１】
これに対し、９．０＜ｐＫｂ＜９．６であるセリンをグリシンと共存両性電解質として使用するとｐＫｂの低いものから順に陽極側へ移動し、 ゲル内の電位勾配の変化は緩やかなものとなる。従ってトリスの中和率を上げ、 緩衝液ｐＨを６．８または６．３にしてもレムリーのゲル緩衝液を用いて作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせることができ、また長期保存による移動度低下は見られない。
【００３２】
実施例２
実施例１と同様のガラスプレートを用い、表４に記載する濃度の緩衝液組成から成るモノマー組成でポリアクリルアミドゲルを製造し、実施例１と同一条件で電気泳動を行った結果を表５に示す。
【表４】
【表５】
【００３３】
実施例３
実施例１と同様のガラスプレートを用い、アクリルアミド濃度１０％（％Ｔ）、ＢＩＳ濃度５％（％Ｔ）、並びに表１に記載する試料−１の緩衝液組成から成るモノマー溶液で１０％ポリアクリルアミドゲルを製造し、表６に記載する泳動用緩衝液で実施例１と同様に電気泳動を行った結果を表７に示す。
【表６】
【表７】
【００３４】
本発明のプレキャストゲルの使用方法は、トリス、及び両性電解質を含有する泳動用緩衝液を使用して蛋白質の分離分析をする方法であり、特にレムリーによって提案されたトリス０．０２５ｍｏｌ／Ｌ、グリシン０．１９２ｍｏｌ／Ｌ、ＳＤＳ０．１重量％である組成の泳動用緩衝液を使用することが望ましい（試料−５）。レムリーの方法は蛋白質の分離分析方法として広く普及しているため、使用者が経済的かつ効率的に分析を遂行することができる。グリシン以外の両性電解質、たとえばＭＯＰＳを含有した泳動用緩衝液（比較試料−５）を使用しても蛋白質の分離分析を行うことは出来るが、広く普及しているレムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルの分画分子量範囲よりも広くなってしまう。
【００３５】
実施例４
実施例１と同様のガラスプレートを用い、アクリルアミド濃度１０％（％Ｔ）、ＢＩＳ濃度５％（％Ｔ）、並びに表８に記載する濃度の緩衝液組成から成るモノマー溶液緩衝液組成で１０％ポリアクリルアミドゲルを製造し、５℃下に１２ヶ月間保存し、テンシロン万能試験機（株式会社オリエンテック、型式Ｕ−２１２９）でガラスプレートを上下に引っ張り、その引っ張り強度を測定した結果を表９に示す。
【表８】
【表９】
【００３６】
ゲル緩衝液のｐＨを下げることで蛋白質の移動度のみならず、プレキャストゲルの形状も安定に保つことができる。ポリアクリルアミドゲルは加水分解すると膨潤し易くなり、プレキャストゲルのガラスプレートがずれやすくなる。ｐＨ７．５では加水分解は進行し易く、 ガラスプレートをずらすのに必要な力( 引っ張り強度) は５℃保存２ヶ月後には約１／３となる。それに対し、ｐＨ６．８では５℃保存６ヶ月までガラスプレートの引っ張り強度は製造直後と同程度を保っており、さらにｐＨ６．３ではアクリルアミド自体のｐＨに近いため、 ｐＨ６．８に比べ加水分解速度が著しく減少する。その結果１年もの長期間ゲルの形状に変化は見られず安定である。
【００３７】
【発明の効果】
本発明は，トリス，及び両性電解質，特にグリシンを含有する泳動緩衝液を使用する分離分析用の電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法に関するものであり，長期保存可能であるので，高品質のゲルを広範囲に供給することが可能である。
【発明の属する技術分野】
この発明は，生化学医薬分析を目的とする長期保存可能な電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法に関する。
【０００２】
【従来の技術】
電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルは、蛋白質、糖質、脂質など生体を構成する重要な物質の検出及び定量分析を目的として、 生物学、医学、水産学、獣医学など多くの分野における基礎的研究手段として広く使用されている。特に、ポリアクリルアミドゲルは、人工的に合成された物質であるため、処方を変えることで分離特性の異なるゲルを容易に作成することができる。そのため、予め様々な分離特性を持つように量産されたプレキャストゲルを使用することで分析の手間を大幅に省くことができると共に、プレキャストゲルが均一で再現性が良いことから当該分野における生産および品質管理に貢献するところが大である。量産されたプレキャストゲルを供給するに際しては、保存安定性が良好であることが期待される。
【０００３】
従来、電気泳動用ポリアクリルアミドゲルは蛋白質の生化学医薬分析用に、オルンスタイン（Ｌ．Ｏｒｎｓｔｅｉｎ，Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．１２１，３２１−３４９（１９６４））とデービス（Ｂ．Ｊ．Ｄａｖｉｓ，Ａｎｎ．Ｎ．Ｙ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．１２１, ４０４−４２７（１９６４））によって提案された方法や、レムリー（Ｕ．Ｋ．Ｌａｅｍｍｌｉ，Ｎａｔｕｒｅ２２７，６８０（１９７０））によって提案された方法が広く使用され、使用者がゲルを製造して使用してきた。特にドデシル硫酸ナトリウム（以下、ＳＤＳと略す）をゲルや泳動用緩衝液に添加することで手軽に蛋白質の分子量を推定できるレムリーの方法が広く普及している。レムリーの方法はゲル緩衝液としてトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（以下、トリスと略す）の塩酸による部分中和物を使用し、 泳動用緩衝液としてはトリス、グリシン塩を使用している（レムリーの泳動緩衝液）。この方法におけるゲル緩衝液ではｐＨが８．８になるようにトリスの約１０〜２０モル％を塩酸により部分中和する（レムリーのゲル緩衝液）。
【０００４】
しかしながら、レムリーのゲル緩衝液のｐＨでは、アミド基は経時的に加水分解反応を受ける。加水分解反応は低温条件でも進行し、 ポリアクリルアミドゲルは部分的にアニオン基を有することになる。この結果、蛋白質の泳動距離が短くなると共に分離像は不鮮明となるので、ゲルを長期に保存することは出来ない。このため、予め量産したゲルを供給するプレキャストゲルにおいては、保管期限を限定して供給する必要があり、保管期間中のゲルを安定させるため、保存安定性が良好であることが望まれている。
【０００５】
保存安定性の良いゲルを製造する方法に関しては、トリス、両性電解質及び酸から成るゲル緩衝液を内包した、長期保存安定性に優れ且つ測定可能な分子量範囲を著しく拡大したポリアクリルアミドゲルの製造方法が特開平４−１８４１６３公報に開示されている。この製造方法によるポリアクリルアミド電気泳動ゲルはレムリーの泳動用緩衝液を使用して分析可能であり、 両性電解質を含有するｐＨ４．０〜７．５のゲル緩衝液を内包することを特徴とし、その実施例においてｐＨ６．９〜７．４のゲルの製造が例示され、冷蔵保存で4 ヶ月の間は蛋白質の移動度に変化なく安定であるとされている。
【０００６】
このゲル緩衝液は、ポリアクリルアミドゲルの加水分解を抑制する目的でトリスの中和率を高く設定して、泳動ゲル中のトリス強酸部分とトリス弱酸部分の境界付近での電位勾配の変化を両性電解質の添加によって緩やかにし、 レムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルと同等の分画分子量範囲を持たせることを意図している。
【０００７】
しかし、ｐＨ６．９〜７．４の範囲のゲル緩衝液を内包したポリアクリルアミドゲルは冷蔵保存で5 ヶ月以上経過すると蛋白質の移動度に変化が現れる。またスラブゲルの場合、ゲルの形状が変化しガラスプレートがずれ易くなる。その結果、泳動分析上のハンドリングが悪くなり、ガラスのずれによるゲルの剥離などの問題も生ずる。ｐＨを６．８以下にすると保存安定性が更に向上することが推測されるが、泳動時間が長くなる、分離能が悪化すると言う問題があり、５ヶ月以上の保存安定性を持つ蛋白質の分離能が良好でかつ、レムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせたポリアクリルアミドゲルを得ることができなかった。
【０００８】
また、特表平９−５１２９０７公報には、中性ｐＨ長寿命プレキャスト電気泳動ゲルのためのシステムが表示されている。このシステムでゲル緩衝液はｐＨが中性付近の一価有機アミン又は置換アミンを含有し、 約6 〜７の間のｐＨに塩酸で滴定されている。泳動用緩衝液はＭＯＰＳ、ＭＥＳ、ＡＣＥＳ、ＭＯＰＳＯ、ＴＥＳ、ＨＥＰＥＳ又はＴＡＰＳＯから成る群から選択される両性イオンを含み、 水酸化ナトリウム又は有機塩基で約７のｐＨに滴定されている。ゲル緩衝液、泳動緩衝液共に中性に設定することで、 ポリアクリルアミドゲルの加水分解を抑制すると同時に蛋白質が完全に還元されたままで分離されるような緩衝液システムである。この電気泳動用システムでは１２カ月の間は安定とされている。
【０００９】
しかし、特表平９−５１２９０７公報に表示されているシステムでは、専用の分子量マーカーを用いなければならない。また、特表平９−５１２９０７公報に表示されているポリアクリルアミドゲルは公知の泳動用緩衝液、例えば汎用に利用されているグリシンを含有するレムリーの泳動緩衝液を使用しても、泳動速度が極めて遅く蛋白質の分離分析に使用することが不可能である。
【００１０】
【発明が解決しようとする課題】
そこで、具体的には、冷蔵保存で6 ヶ月以上蛋白質の分離能及びゲルの形状共に安定で、かつレムリーのゲル緩衝液を使用して作成されたゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせたポリアクリルアミドプレキャストゲルを得る点について解決すべき課題がある。予め様々な分離特性を持つように量産されたプレキャストゲルは、保存安定性が良好であれば、保管有効期限を長く設定することが可能である。また、分析方法が普及しているレムリーの泳動緩衝液が使用できれば、使用者が経済的かつ効率的に分析を遂行することができる。
【００１１】
【課題を解決するための手段】
この発明の目的は，上記の課題を解決するものであり，保存安定性に優れ，保管有効期限が長く，また，分析方法が普及しているレムリーの泳動緩衝液を使用可能とする，長期保存安定性を有する電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法を提供することである。
【００１２】
本発明者らはレムリーの泳動用緩衝液が使用可能な長期安定性を持つ電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル、その製造方法及びその使用方法について鋭意検討した結果、以下の発明に到達した。すなわち、ゲル緩衝液のｐH を６．０〜６．８の範囲とし、トリス、グリシン、１種又は２種以上の共存両性電解質を含有した特定濃度の泳動ゲル緩衝液を使用することにより、半年から１年以上ゲルの形状、泳動像に変化の無いゲルを得ることが出来た。また、その使用方法及びそれを製造する方法も見出した。
【００１３】
この発明は、上記の目的を達成するため、次のように構成されている。即ち、この発明は、泳動用緩衝液の組成がトリス及び両性電解質を含有する水溶液である電気泳動法に用いるポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて、そのゲルが特定範囲の使用量のトリス、グリシン、特定の塩基解離定数、特定の添加量の両性電解質および、共存両性電解質とグリシンの濃度合計の濃度が特定範囲の両性電解質、および特定のｐＨである緩衝液を用いて調製されていることを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルに関する。即ち、この発明は、泳動用緩衝液の組成がトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン及び両性電解質を含有する水溶液である電気泳動法に用いるポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて、前記ゲルは、
（１）前記トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンの濃度が０．０７ｍｏｌ／Ｌ〜０．２ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり、
（２）前記両性電解質がグリシンと１種又は２種以上の共存両性電解質から成り、
１．前記共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂが８．３＜ｐＫｂ＜９．６の範囲にあり、
２．前記共存両性電解質の添加量が前記グリシンに対して０．１〜３０ｍｏｌ％の範囲にあり、
３．前記共存両性電解質と前記グリシンの濃度の合計が０．１〜０．３ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり、
（３）ｐＨが６．０〜６．８の範囲
にある緩衝液を用いて調製されていることを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルに関する。
【００１４】
この電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて、前記共存両性電解質が分子内にアニオン性基とカチオン性基を同数有するアミノ酸である。
【００１５】
更に、この電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて、前記共存両性電解質が、セリン、グルタミン、トリプトファン、メチオニン、又はフェニルアラニンである。
【００１６】
また、この発明は、アクリルアミド、多官能架橋剤、水、および前述の緩衝液の混合物を特定のｐＨ条件で重合開始剤の存在下に重合することを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルの製造方法に関する。即ち、この発明は、アクリルアミド、多官能架橋剤、水、並びに下記組成の緩衝液
（１）トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンの濃度が０．０７ｍｏｌ／Ｌ〜０．１ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり、
（２）両性電解質がグリシンと１種又は２種以上の共存両性電解質から成り、
１．前記共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂが８．３＜ｐＫｂ＜９．６の範囲にあり、
２．前記共存両性電解質の添加量が前記グリシンに対して０．１〜３０ｍｏｌ％の範囲にあり、
３．前記共存両性電解質と前記グリシンの濃度の合計が０．１〜０．３ｍｏｌ／Ｌの範囲にある
から成る混合物を、ｐＨが６．０〜６．８の範囲にある条件で重合開始剤の存在下に重合することを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルの製造方法に関する。
【００１７】
更に，この発明は，泳動用緩衝液としてドデシル硫酸塩が存在するトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン及びグリシンを含有する泳動用緩衝液を用い，請求項１〜３のいずれか１項に記載の電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルを用いることを特徴とする蛋白質の分離分析方法に関する。
【００１８】
【発明の実施の形態】
本発明のゲルは、ゲル中に含有する緩衝液の組成が、トリス、グリシン、１種又は２種以上の共存両性電解質からなり、ゲル中のトリス濃度は、０．０７ｍｏｌ／Ｌ〜０．２ｍｏｌ／Ｌ、好ましくは０．０８ｍｏｌ／Ｌ〜０．１ｍｏｌ／Ｌである。この範囲は、 レムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルと同等の泳動時間を有するために必要なゲル中のリーディングイオンの量を含有させることの出来る範囲である。ゲル中のトリス濃度が０．０７ｍｏｌ／Ｌよりも低い場合、泳動像全体が不鮮明となり蛋白質の分離分析に使用しがたいものとなる。ゲル中のトリス濃度が０．２ｍｏｌ／Ｌより高くなるとゲル中のリーディングイオン濃度が高くなり、泳動時間が延長し、分析の作業効率が悪くなる。
【００１９】
また、両性電解質はグリシンと１種又は２種以上の共存両性電解質から成り、共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂの範囲は８．３＜ｐＫｂ＜９．６、好ましくは９．０＜ｐＫｂ＜９．６である。グリシン単独ではゲル緩衝液のｐＨを７以下にした場合、レムリーのゲル緩衝液を用いて作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせることはできない。また、共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂがｐＫｂ＜８．３の場合、トリスよりもｐＫｂが低いことになるため、 ゲル緩衝液のｐＨを変化させ、 また分画分子量範囲を大幅に広くしてしまう。ｐＫｂ＞９．６の場合、グリシンよりも塩基解離定数が高いことになるため、ゲル内の電位勾配の変化を緩やかにする作用に寄与しない。９．０＜ｐＫｂ＜９．６であるセリン、トリプトファン、フェニルアラニン等を使用するとｐＫｂの低いものから順に陽極側へ移動し、 ゲル内の電位勾配の変化は緩やかなものとなる。従ってレムリーのゲル緩衝液を用いて作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせることができる。
【００２０】
また、共存両性電解質の添加量はグリシンに対して０．１〜３０ｍｏｌ％、好ましくは１〜２０ｍｏｌ％である。０．１ｍｏｌ％より低添加量の場合、レムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせる効果が現れず、逆に３０ｍｏｌ％よりも多く添加した場合は泳動像が不鮮明で実用に耐えないものとなる。
【００２１】
また、共存両性電解質とグリシンの濃度の合計が０．１〜０．３ｍｏｌ／Ｌであり、好ましくは０．１〜０．２ｍｏｌ／Ｌである。全両性電解質濃度が０．１ｍｏｌ／Ｌよりも少なく、０．３ｍｏｌ／Ｌより多くなると泳動像が不鮮明で実用に耐えないものとなる。
【００２２】
また、本発明に用いる両性電解質は、分子内にアニオン基とカチオン基を同数有するものが望ましく、 本発明のゲル緩衝液中では全てのアニオン性基と全てのカチオン性基が解離して電気的に中性となり、ｐＫｂ値よりも高いｐＨではアニオン性基のみが解離しカチオン性基の解離が抑制されるため負に帯電する。この為に上記両性電解質は実質的に１価の弱酸としての挙動を示す。
【００２３】
本発明のプレキャストゲル、その使用方法、およびその製造方法に使用するゲル緩衝液のｐＨは、６．０〜６．８であり、好ましくは６．３である。ｐＨ６．８よりも高い場合、ポリアクリルアミドゲルの加水分解が進行し易くなり、保管有効期限を長く持たせることが出来ない。ｐＨ６．０より低い場合、ポリアクリルアミドゲルとしての安定性は良好であるが、蛋白質の泳動像が不鮮明で実用に耐えないものとなる。ｐＨ６．８では冷蔵保存で6 ヶ月もち、さらにｐＨ６．３ではアクリルアミド自体のｐＨに近いため、 ｐＨ６．８に比べ加水分解速度が著しく減少する。その結果１年もの長期間ゲルの形状、泳動像共に変化は見られず安定である。
【００２４】
本発明のプレキャストゲルの使用方法は、トリス、及び両性電解質を含有する泳動用緩衝液を使用して蛋白質の分離分析をする方法であり、特にトリス０．０２５ｍｏｌ／Ｌ、グリシン０．１９２ｍｏｌ／Ｌ、ＳＤＳ０．１重量％である組成の泳動用緩衝液を使用することが望ましい。この組成はレムリーによって提案されたゲル緩衝液で、蛋白質の分離分析方法として広く普及しているため、使用者が経済的かつ効率的に分析を遂行することができる。グリシン以外の両性電解質、たとえばＭＯＰＳを含有した泳動用緩衝液を使用しても蛋白質の分離分析を行うことは出来るが、広く普及しているレムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルの分画分子量範囲よりも広くなってしまう。
【００２５】
本発明のプレキャストゲルの製造方法は、ゲル緩衝液のｐＨ調整と両性電解質の添加以外は、従来公知の電気泳動用ポリアクリルアミドゲルの製造方法に従って製造することができる。例えば、アクリルアミドと共存する架橋を目的とした水溶性ジビニル化合物としては、Ｎ，Ｎ' −メチレンビスアクリルアミド（以下、ＢＩＳと略す）が最も多用されているが、その他Ｎ，Ｎ' −ジアリル酒石酸アミド等の一般的なジビニル化合物も使用することができる。
【００２６】
本発明のプレキャストゲルの製造方法におけるモノマー水溶液には、ゲルに弾力性を持たせゲル強度を向上させるため、アガロース、ポリアクリルアミド、ポリビニルアルコール、ポリビニルピロリドン、ポリエチレンオキサイド、ポリメチルビニルエーテル等の水溶性ポリマーを含有させることもできる。他のモノマーを共重合することもできる。
【００２７】
本発明のプレキャストゲルの製造方法におけるモノマーの重合は、重合開始剤、紫外線照射および電離性放射線の照射により発生するラジカルによって行われる。重合開始剤としては、過硫酸アンモニウム（以下、ＡＰＳと略す）等の過酸化物と、Ｎ，Ｎ，Ｎ’，Ｎ’−テトラメチルエチレンジアミン（以下、ＴＥＭＥＤと略す）等の還元剤を併用するレドックス型の重合開始剤が賞用されるが、これら特に限定されるものではない。上記過酸化物及び還元剤は全モノマーに対し、 ０．０５〜５％（重量／容量）が使用される。また、重合温度は開始剤が機能する温度であれば特に限定されないが、通常１５〜５０℃の範囲が好ましい。
【００２８】
【実施例】
以下、実施例により本発明を実施例により説明するが、本発明はこれら実施例に限定されるものではない。
実施例１
横幅１２ｃｍ、縦１０ｃｍの長方形のガラス板と、上部に凹状の切り込みの入った同寸法のガラス板の間に、厚さ１ｍｍのスペーサーとモノマー液が漏れないようにシリコンのシールを挟みガラスプレートを組み立てる。アクリルアミド濃度１０％（％Ｔ）、ＢＩＳ濃度５％（％Ｔ）、並びに表１に記載する濃度の緩衝液組成から成るモノマー溶液に対し、ＡＰＳ０．００２５ｍｏｌ／ＬおよびＴＥＭＥＤ０．００７５ｍｏｌ／Ｌとなるように添加混合後、プレート内に注入し、２５℃下で重合させ、電気泳動用ポリアクリルアミドゲルを得た。
そのポリアクリルアミドゲルを用いて市販の蛋白質分子量マーカーを電気泳動し、移動距離を測定した。
【表１】
蛋白質分子量マーカーは、２−メルカプトエタノール、ＳＤＳを用いて処理し、７重量％グリセリン及び０．０５重量％ブロモフェノールブルー（以下、ＢＰＢと略す）を加えて試験に供した。泳動用緩衝液の組成はトリス０．０２５ｍｏｌ／Ｌ、グリシン０．１９２ｍｏｌ／Ｌ、ＳＤＳ０．１重量％のレムリー処方である。電気泳動は２０ｍＡ定電流で行い、ＢＰＢの泳動末端が下から５ｍｍの所で通電を中止した。染色は、０．２５重量％クマシーブリリアントブルー（以下、ＣＢＢと略す）Ｇ−２５０、１０容量％酢酸、３０容量％メタノール溶液中で振とう機を使用して４５分間行い、脱色は７容量％酢酸、３容量％メタノール溶液中で振とう機を使用して９０分間行った。
表２は製造直後の移動度であり、また表３は５℃で６ヶ月間保存後の移動度である。移動度とは蛋白質の移動距離をパーセントで表したものである。
ゲル緩衝液の酸による中和率の低いレムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルは、高ｐＨの為に長期保存により移動度が低下し、分離能が悪化する。トリスの中和率を上げ、 ゲル緩衝液中に両性電解質としてグリシンのみ添加した場合、長期保存による移動度低下は見られないが低分子領域が検出されない。また、ｐＨを６．８とし、グリシンと共存両性電解質としてトリシン（８．３＞ｐＫｂ）を添加した場合、分画分子量範囲を大幅に広くしてしまう。
【００３１】
これに対し、９．０＜ｐＫｂ＜９．６であるセリンをグリシンと共存両性電解質として使用するとｐＫｂの低いものから順に陽極側へ移動し、 ゲル内の電位勾配の変化は緩やかなものとなる。従ってトリスの中和率を上げ、 緩衝液ｐＨを６．８または６．３にしてもレムリーのゲル緩衝液を用いて作成したゲルの測定対象と同等の分画分子量範囲を持たせることができ、また長期保存による移動度低下は見られない。
【００３２】
実施例２
実施例１と同様のガラスプレートを用い、表４に記載する濃度の緩衝液組成から成るモノマー組成でポリアクリルアミドゲルを製造し、実施例１と同一条件で電気泳動を行った結果を表５に示す。
【表４】
実施例３
実施例１と同様のガラスプレートを用い、アクリルアミド濃度１０％（％Ｔ）、ＢＩＳ濃度５％（％Ｔ）、並びに表１に記載する試料−１の緩衝液組成から成るモノマー溶液で１０％ポリアクリルアミドゲルを製造し、表６に記載する泳動用緩衝液で実施例１と同様に電気泳動を行った結果を表７に示す。
【表６】
本発明のプレキャストゲルの使用方法は、トリス、及び両性電解質を含有する泳動用緩衝液を使用して蛋白質の分離分析をする方法であり、特にレムリーによって提案されたトリス０．０２５ｍｏｌ／Ｌ、グリシン０．１９２ｍｏｌ／Ｌ、ＳＤＳ０．１重量％である組成の泳動用緩衝液を使用することが望ましい（試料−５）。レムリーの方法は蛋白質の分離分析方法として広く普及しているため、使用者が経済的かつ効率的に分析を遂行することができる。グリシン以外の両性電解質、たとえばＭＯＰＳを含有した泳動用緩衝液（比較試料−５）を使用しても蛋白質の分離分析を行うことは出来るが、広く普及しているレムリーのゲル緩衝液を使用して作成したゲルの分画分子量範囲よりも広くなってしまう。
【００３５】
実施例４
実施例１と同様のガラスプレートを用い、アクリルアミド濃度１０％（％Ｔ）、ＢＩＳ濃度５％（％Ｔ）、並びに表８に記載する濃度の緩衝液組成から成るモノマー溶液緩衝液組成で１０％ポリアクリルアミドゲルを製造し、５℃下に１２ヶ月間保存し、テンシロン万能試験機（株式会社オリエンテック、型式Ｕ−２１２９）でガラスプレートを上下に引っ張り、その引っ張り強度を測定した結果を表９に示す。
【表８】
ゲル緩衝液のｐＨを下げることで蛋白質の移動度のみならず、プレキャストゲルの形状も安定に保つことができる。ポリアクリルアミドゲルは加水分解すると膨潤し易くなり、プレキャストゲルのガラスプレートがずれやすくなる。ｐＨ７．５では加水分解は進行し易く、 ガラスプレートをずらすのに必要な力( 引っ張り強度) は５℃保存２ヶ月後には約１／３となる。それに対し、ｐＨ６．８では５℃保存６ヶ月までガラスプレートの引っ張り強度は製造直後と同程度を保っており、さらにｐＨ６．３ではアクリルアミド自体のｐＨに近いため、 ｐＨ６．８に比べ加水分解速度が著しく減少する。その結果１年もの長期間ゲルの形状に変化は見られず安定である。
【００３７】
【発明の効果】
本発明は，トリス，及び両性電解質，特にグリシンを含有する泳動緩衝液を使用する分離分析用の電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法に関するものであり，長期保存可能であるので，高品質のゲルを広範囲に供給することが可能である。
Claims (5)
- 泳動用緩衝液の組成がトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン及び両性電解質を含有する水溶液である電気泳動法に用いるポリアクリルアミドプレキャストゲルにおいて，前記ゲルは，
（１）前記トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンの濃度が０．０７ｍｏｌ／Ｌ〜０．２ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり，
（２）前記両性電解質がグリシンと１種又は２種以上の共存両性電解質から成り，
１．前記共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂが８．３＜ｐＫｂ＜９．６の範囲にあり，２．前記共存両性電解質の添加量が前記グリシンに対して０．１〜３０ｍｏｌ％の範囲にあり，３．前記共存両性電解質と前記グリシンの濃度の合計が０．１〜０．３ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり，
（３）ｐＨが６．０〜６．８の範囲にある緩衝液を用いて調製されていることを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル。 - 前記共存両性電解質が，分子内にアニオン性基とカチオン性基を同数有するアミノ酸であることを特徴とする請求項１に記載の電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル。
- 前記共存両性電解質が，セリン，グルタミン，トリプトファン，メチオニン，又はフェニルアラニンであることを特徴とする請求項１又は２に記載の電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル。
- アクリルアミド，多官能架橋剤，水，並びに下記組成の緩衝液
（１）トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタンの濃度が０．０７ｍｏｌ／Ｌ〜０．１ｍｏｌ／Ｌの範囲にあり，
（２）両性電解質がグリシンと１種又は２種以上の共存両性電解質から成り，１．前記共存両性電解質の塩基解離定数ｐＫｂが８．３＜ｐＫｂ＜９．６の範囲にあり，２．前記共存両性電解質の添加量が前記グリシンに対して０．１〜３０ｍｏｌ％の範囲にあり，３．前記共存両性電解質と前記グリシンの濃度の合計が０．１〜０．３ｍｏｌ／Ｌの範囲にあることから成る混合物を，ｐＨが６．０〜６．８の範囲にある条件で重合開始剤の存在下に重合することを特徴とする電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルの製造方法。 - 泳動用緩衝液としてドデシル硫酸塩が存在するトリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン及びグリシンを含有する泳動用緩衝液を用い，請求項１〜３のいずれか１項に記載の電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲルを用いることを特徴とする蛋白質の分離分析方法。
Priority Applications (7)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP34383599A JP3942001B2 (ja) | 1999-12-02 | 1999-12-02 | 電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法 |
| US09/890,710 US6726821B1 (en) | 1999-12-02 | 2000-11-30 | Polyacrylamide precast gels for electrophoresis, process for producing the same and electroporesis method by using the gels |
| PCT/JP2000/008465 WO2001040789A1 (fr) | 1999-12-02 | 2000-11-30 | Gels de polyacrylamide premoules pour l'electrophorese, procede de production de ces derniers et procede d'electrophorese dans lequel on utilise ces gels |
| KR1020017006718A KR100718191B1 (ko) | 1999-12-02 | 2000-11-30 | 전기영동용 폴리아크릴아미드프리캐스트겔, 그 제조방법및 그 겔을 사용한 전기영동법 |
| CNB008022941A CN1247990C (zh) | 1999-12-02 | 2000-11-30 | 电泳用的聚丙烯酰胺预制凝胶,其制法以及使用该凝胶的电泳法 |
| AU16496/01A AU769771B2 (en) | 1999-12-02 | 2000-11-30 | Polyacrylamide precast gels for electrophoresis, process for producing the same and electrophoresis method by using the gels |
| EP00979027.0A EP1167962B1 (en) | 1999-12-02 | 2000-11-30 | Polyacrylamide precast gels for electrophoresis, process for producing the same and electrophoresis method by using the gels |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP34383599A JP3942001B2 (ja) | 1999-12-02 | 1999-12-02 | 電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法 |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| JP2001159621A JP2001159621A (ja) | 2001-06-12 |
| JP3942001B2 true JP3942001B2 (ja) | 2007-07-11 |
Family
ID=18364617
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| JP34383599A Expired - Fee Related JP3942001B2 (ja) | 1999-12-02 | 1999-12-02 | 電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法 |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| JP (1) | JP3942001B2 (ja) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2009025135A1 (ja) | 2007-08-17 | 2009-02-26 | Hymo Corporation | 電気泳動用プレキャストゲル、その製造方法及びその使用方法 |
Families Citing this family (11)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP2002277438A (ja) * | 2001-03-22 | 2002-09-25 | Hymo Corp | 電気泳動ゲル、その製法及びその使用法 |
| US7056426B2 (en) * | 2003-01-17 | 2006-06-06 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Pre-cast electrophoresis slab gels with extended storage life |
| US20040140215A1 (en) * | 2003-01-17 | 2004-07-22 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Pre-cast electrophoresis slab gels with extended storage life |
| JP4320210B2 (ja) * | 2003-05-01 | 2009-08-26 | 株式会社日立ハイテクノロジーズ | 電気泳動装置 |
| JP4838358B2 (ja) * | 2007-08-17 | 2011-12-14 | ハイモ株式会社 | 電気泳動用プレキャストゲル、その製造方法及びその使用方法 |
| US20100213060A1 (en) | 2009-02-23 | 2010-08-26 | Bio-Rad Laboratories, Inc. | Aqueous transfer buffer |
| JP5619165B2 (ja) * | 2009-08-24 | 2014-11-05 | ライフ テクノロジーズ コーポレーション | 高速高分離能のゲル電気泳動のためのシステム |
| JP5967751B2 (ja) * | 2011-12-16 | 2016-08-10 | ハイモ株式会社 | 電気泳動用プレキャストゲル、その製造方法および使用方法 |
| JP6453326B2 (ja) * | 2014-07-04 | 2019-01-23 | アトー株式会社 | 電気泳動用ゲル緩衝液及び電気泳動用ポリアクリルアミドゲル |
| WO2017066711A1 (en) * | 2015-10-14 | 2017-04-20 | Life Technologies Corporation | Electrophoresis gel with extended shelf life and high performance |
| JP7228199B2 (ja) * | 2020-05-22 | 2023-02-24 | アトー株式会社 | ゲル用組成物、ゲル、プレキャストゲル。 |
Family Cites Families (9)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB8724528D0 (en) * | 1987-10-20 | 1987-11-25 | Amersham Int Plc | Biological testing |
| WO1992004625A1 (de) * | 1990-08-29 | 1992-03-19 | Budin Michov | Proteintrennung durch sds-elektrophorese in einem homogenen gel unter verwendung eines tris-formiat-taurinat-puffersystems und dafür geeignete homogene elektrophoreseplatten |
| JP2588059B2 (ja) * | 1990-11-19 | 1997-03-05 | ハイモ株式会社 | 電気泳動用ポリアクリルアミドゲルの製造方法 |
| JPH0634602A (ja) * | 1992-07-20 | 1994-02-10 | Dai Ichi Pure Chem Co Ltd | ゲル電気泳動法 |
| US5578180A (en) * | 1994-03-31 | 1996-11-26 | Novel Experimental Technology | System for PH-neutral longlife precast electrophoresis gel |
| JP3076200B2 (ja) * | 1994-06-28 | 2000-08-14 | ハイモ株式会社 | 電気泳動用ゲル、その製造方法および電気泳動法 |
| SE9404141D0 (sv) * | 1994-11-30 | 1994-11-30 | Pharmacia Biotech Ab | New buffer system for electrophoresis |
| JP3967516B2 (ja) * | 2000-02-29 | 2007-08-29 | ハイモ株式会社 | Ｄｎａの電気泳動法 |
| JP3967517B2 (ja) * | 2000-03-02 | 2007-08-29 | ハイモ株式会社 | Ｄｎａの電気泳動方法 |
-
1999
- 1999-12-02 JP JP34383599A patent/JP3942001B2/ja not_active Expired - Fee Related
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2009025135A1 (ja) | 2007-08-17 | 2009-02-26 | Hymo Corporation | 電気泳動用プレキャストゲル、その製造方法及びその使用方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2001159621A (ja) | 2001-06-12 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| KR100718191B1 (ko) | 전기영동용 폴리아크릴아미드프리캐스트겔, 그 제조방법및 그 겔을 사용한 전기영동법 | |
| JP2588059B2 (ja) | 電気泳動用ポリアクリルアミドゲルの製造方法 | |
| JP3942001B2 (ja) | 電気泳動用ポリアクリルアミドプレキャストゲル，その製造方法及び蛋白質の分離分析方法 | |
| JP3313712B2 (ja) | 界面動電法およびクロマトグラフィー法におけるポリアクリルアミドマトリックスのための新規な配合物 | |
| EP1979410B1 (en) | Compositions and methods for improving resolution of biomolecules separated on polyacrylamide gels | |
| JP5619165B2 (ja) | 高速高分離能のゲル電気泳動のためのシステム | |
| US7422670B2 (en) | System for pH-neutral stable electrophoresis gel | |
| JP2002277438A (ja) | 電気泳動ゲル、その製法及びその使用法 | |
| EP1401860A1 (en) | Increased solubilisation of hydrophobic proteins | |
| US9448202B2 (en) | Electrophoresis buffer for extending the useful electrophoresis life of an electrophoresis gel | |
| JP2016105107A (ja) | より速い泳動、分解の改善、および保存期間の延長を目的とした電気泳動バッファー | |
| EP1263772A1 (en) | Improved electrophoresis gels | |
| JP5967751B2 (ja) | 電気泳動用プレキャストゲル、その製造方法および使用方法 | |
| EP2404167A1 (en) | Long-lasting precast electrophoresis gel | |
| JP2003004702A (ja) | 高分解能電気泳動用ゲルの製造方法 | |
| WO2000067009A1 (en) | Mixed buffers in gel electrophoresis systems | |
| KR0183040B1 (ko) | 전기영동용(電氣泳動用) 폴리아크릴아미드 겔의 제조방법 | |
| Righetti et al. | [10] Isoelectric focusing in immobilized pH gradients | |
| JP3076200B2 (ja) | 電気泳動用ゲル、その製造方法および電気泳動法 | |
| JP3967517B2 (ja) | Ｄｎａの電気泳動方法 | |
| JP2001242139A (ja) | Ｄｎａの電気泳動法 | |
| JP7228199B2 (ja) | ゲル用組成物、ゲル、プレキャストゲル。 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| A621 | Written request for application examination |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621 Effective date: 20060214 |
|
| A131 | Notification of reasons for refusal |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131 Effective date: 20060905 |
|
| A521 | Written amendment |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523 Effective date: 20061017 |
|
| TRDD | Decision of grant or rejection written | ||
| A01 | Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01 Effective date: 20070320 |
|
| A61 | First payment of annual fees (during grant procedure) |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61 Effective date: 20070329 |
|
| R150 | Certificate of patent or registration of utility model |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20130413 Year of fee payment: 6 |
|
| FPAY | Renewal fee payment (event date is renewal date of database) |
Free format text: PAYMENT UNTIL: 20140413 Year of fee payment: 7 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| R250 | Receipt of annual fees |
Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250 |
|
| LAPS | Cancellation because of no payment of annual fees |