JP3921583B2 - 20−heteアンタゴニストおよびアゴニスト - Google Patents
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Description
(連邦後援研究または開発に関する供述)
本研究は、その一部は、国立保健研究所(NIH)からの許可HL−29587、HL−36279およびGM31278により支援された。米国政府は、本発明に対して所定の権利を有するものである。
【0002】
(発明の背景)
近年の研究により、様々な血管床の血管平滑筋細胞が、20−ヒドロキシエイコサテトラエン酸(20−HETE)の形成を触媒する酵素である、シトクロムP450 4Aおよび関連ファミリー(CYP 4A)の酵素を発現することが示されている。20−HETEは、腎、脳および骨格筋の細動脈の強力な収縮剤(EC50<10−8M)である。それは、KCaチャネルの遮断に続きVSM細胞を脱分極させることにより、およびL型Ca2+チャネルのコンダクタンスを増加させることにより、Ca2+侵入を促進する(ハーダー・デー、J.Va sc.Research 34:237−243、1997;ローマン・アール、News in Physiological Sceinces、1999、印刷中)。腎臓では、20−HETEはまた、腎尿細管細胞により産生され、ここで、それは、近位尿細管および厚いヘンレ係蹄上行脚でのナトリウム輸送の調節に関与している。ヒトおよびウサギの肺では(ローマン・アール、上記、1999)、20−HETEはまた、気道により産生され、ここで、それは、強力な内因産生気管支拡張剤として作用する(ズー・デー、Am.J.Resp.Cell Mol.Biol.19:121−128、1998;ヤコブズ・イー・アール、Am.J.Physiol.1999、印刷中)。
【0003】
血管緊張、腎機能、および気道抵抗の調節における20−HETEの重要性にも関わらず、その作用メカニズムはほとんど知られていない。近年の研究により、20−HETEに対する血管収縮神経応答およびそのナトリウム輸送に対する阻害作用は、PKCおよびMAPキナーゼシグナル伝達カスケードの活性化に関連していることが示された(サン・シー・‐ダブリュー、Hypertension 33:414−418、1999)。これらの経路の活性化は、通常、受容体媒介事象により引き起こされるが、現在、20−HETE受容体の証拠は全くない。現在までに、20−HETEが膜かサイトゾルタンパク質に結合するのかどうかを決定する、または、血管収縮神経応答が20−HETEに特異的であるのか、それとも非常に近い関連した類似体により模倣できるかどうかを決定する研究は全く発表されていない。
【0004】
(発明の簡単な要約)
本発明は、ラット腎から顕微解剖した小葉間動脈における血管収縮神経応答の構造決定基を決定するために、一連の20−HETE類似体を用いた構造活性研究を実施するために設計された研究を起源とする。
【0005】
1つの実施形態において、本発明は、患者に有効量の20−HETEアゴニストまたはアンタゴニストを供給する段階を含む、患者の血管直径を減少させるか、または20−HETEが血管直径を減少させるのを防ぐ方法。
【0006】
好ましくは、該化合物は、以下の式で示される:
【0007】
【化2】
【0008】
R1は、カルボン酸;フェノール;アミド;イミド;スルホンアミド;スルホンイミド;活性メチレン;1,3−ジカルボニル;アルコール;チオール;アミン;テトラゾールまたは他のヘテロアリールからなる群から選択される。
【0009】
R2は、カルボン酸;フェノール;アミド;イミド;スルホンアミド;スルホンイミド;活性メチレン;1,3−ジカルボニル;アルコール;チオール;アミン;テトラゾールまたは他のヘテロアリールからなる群から選択される。
【0010】
Wは、炭素鎖(C1〜C25)であり、直鎖、環式、または枝分れ鎖であってよく、S、O、NまたはSeなどのヘテロ原子を含んでよい。
【0011】
Yは、炭素鎖(C1〜C25)であり、直鎖、環式、または枝分れ鎖であってよく、S、O、NまたはSeなどのヘテロ原子を含んでよい。
【0012】
sp<3中心は、ビニル;アリール;ヘテロアリール;シクロプロピル;およびアセチレン部分からなる群から選択される。
【0013】
Xは、ヘテロ原子を有するまたは有さないアルキル(直鎖、枝分れ鎖、環式または多環式)基;またはビニル;アリール;ヘテロアリール;シクロプロピル;またはアセチレン基である。
【0014】
m=0、1、2、3、4または5であり、n=0、1、2、3、4、または5である。
【0015】
該方法の好ましい実施形態において、該化合物はアゴニストであり、血管直径が減少するか、または細気管支平滑筋が拡張する。この実施形態において、該化合物は20−HETEアゴニストである。好ましくは、該アゴニスト化合物は、21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸;20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸;およびジメチル20−HETEからなる群から選択される。
【0016】
該方法の別の実施形態において、該化合物は20−HETEアンタゴニストであり、血管直径は内因性20−HETEによる減少から防がれる。好ましくは、該化合物は、5(S)−HETE;15(S)−HETE;19(S)−HETE;19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸(C19類似体);および20−ヒドロキシエイコサ6(Z),15(Z)−ジエン酸(Ps逆20−HETE)からなる群から選択される。
【0017】
別の実施形態において、本発明は、有効量の20−HETEアゴニストまたはアンタゴニストを供給する段階を含む、患者の治療法である。
【0018】
別の実施形態において、該患者は、糖尿病、妊娠中毒症(子癇前症)、肝腎症候群、シクロスポリン誘導腎毒性、脳血管痙攣、卒中、および高血圧症の群から選択された疾患を有し、該患者の過度の内因産生20−HETEの血管収縮神経作用は、20−HETEアンタゴニストで処置すると緩和される。
【0019】
別の実施形態において、該患者は、敗血症ショックまたは一酸化窒素シンターゼの誘導に関連した他の炎症性疾患を有し、症状を軽減させるに十分な量の20−HETEアンタゴニストで処置する。
【0020】
別の実施形態において、患者を、顆粒または新生物組織の血管新生を防ぐために、20−HETEアンタゴニストで処置する。この処置により、血液供給は減少し、腫瘍の成長は防がれる。
【0021】
別の実施形態において、該患者は、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群および高血圧症の群から選択された状態を有し、患者を、利尿効果が得られ、血液量を減少させ、水腫を防ぐに十分な量の20−HETEアゴニストで処置する。
【0022】
別の実施形態において、該患者は喘息を有し、20−HETEアゴニストは、収縮した気道を拡張させるために、吸入療法として送達される。
【0023】
別の実施形態において、該患者は肺性高血圧症を有してよく、20−HETEまたは20−HETEアゴニストを、肺循環を拡張させるために注入する。
【0024】
別の実施形態において、患者は、脳血管損傷、血管痙攣、片頭痛または群発性頭痛、卒中またはコカイン誘導血管痙攣を有してよく、患者を、血流を増加させ症状を軽減させるために20−HETEアンタゴニストで処置する。
【0025】
本発明はまた、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの群から選択される化合物および薬学的に許容される担体を含む、薬学的製剤である。該製剤は、好ましくは、19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、20−ヒドロキシエイコサ 6(Z),15(Z)−ジエン酸、20ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸、ジメチル 20−HETE 21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、N−メチルスルホニル−20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエンアミド、またはN−メチルスルホニル−20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエンアミドおよび薬学的に許容される担体からなる群から選択される。
【0026】
本発明の特徴は、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストが提供されることである。20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストを記載した一般式もまた提供される。
【0027】
本発明の別の特徴は、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの治療使用が記載されることである。
【0028】
本発明の他の特徴、目的および利点は、明細書、特許請求の範囲および図面の検討後に明らかになろう。
【0029】
(発明の詳細な説明)
1つの実施形態において、本発明は、患者に有効量の20−HETEアンタゴニストまたはアゴニストを供給する段階を含む、患者の血管直径を減少させるか、または20−HETEが血管直径を減少させるのを防ぐ方法である。
【0030】
本発明の好ましい実施形態において、該化合物は以下の式で示される:
【0031】
【化3】
【0032】
R1は、好ましくは、カルボン酸;フェノール;アミド;イミド;スルホンアミド;スルホンイミド;活性メチレン;1,3−ジカルボニル;アルコール;チオール;アミン;テトラゾールおよび他のヘテロアリール基からなる群から選択される。
【0033】
R2は、好ましくは、カルボン酸;フェノール;アミド;イミド;スルホンアミド;スルホンイミド;活性メチレン;1,3−ジカルボニル;アルコール;チオール;アミン;テトラゾールおよび他のヘテロアリールからなる群から選択される。
【0034】
Wは、炭素鎖(好ましくはC1〜C25)であり、直鎖、環式、または枝分れ鎖であってよい。Wは、S、O、NおよびSeなどのヘテロ原子を含み得るか、またはアリールまたはヘテロアリール部分を含み得る。
【0035】
Yは、炭素鎖(好ましくはC1〜C25)であり、直鎖、環式、または枝分れ鎖であってよい。Yは、S、O、NまたはSeなどのヘテロ原子を含んでよく、アリールまたはへテロアリール部分を含み得る。
【0036】
sp<3中心は、好ましくは、ビニル;アリール;ヘテロアリール;シクロプロピル;およびアセチレン基から選択される。
【0037】
Xは、アルキル(および直鎖、枝分れ鎖、または環式であってよい)、多環式;ビニル;アリール;ヘテロアリール;シクロプロピル;またはアセチレン部分であり、ヘテロ原子を含み得る。
【0038】
mは、0、1、2、3、4または5であり、およびnは、0、1、2、3、4、または5である。
【0039】
全ての我々の具体的な例において、最初の炭素はカルボキシル基であった。しかし、これは、我々の一般的な構造で詳述したように、別の型のイオン化可能な基で置換できる(図6A)。該化合物は、一対の二重結合、および鎖の20〜21炭素上にヒドロキシル基があれば、アゴニストであった。(イオン化可能な基C1と、C20またはC21上の反応基の間の全距離は、20〜21炭素長の炭素鎖の距離に等しいが、鎖は、O、SまたはNなどの他の原子を含み得る。)この位置にヒドロキシル基がなければアンタゴニストであった。
【0040】
これらの構造活性研究から、我々は、図6Aに示した20−HETE作用のアゴニストおよびアンタゴニストの構造についての一般的なスキームを提唱する。アゴニストおよびアンタゴニストは両方共、推定上の受容体とのアンカー点として貢献する、カルボキシルまたは他のイオン化可能な基を、分子の一端に必要とする。それらはまた、アクセプター部位で分子を安定化させるためにπ結合を形成できる、C1から14〜15炭素に等しい距離にある二重結合または他の官能基(カルボキシルまたはイオン化可能な基)を必要とする。アゴニストはまた、受容体と相互作用する、ヒドロキシル、または、水素結合可能な他のイオン化可能なすなわち官能基を、炭素1上のイオン化可能な基から20または21炭素に等価な距離に有する。アンタゴニストは類似した構造を有するが、20〜21炭素上に反応基がない。
【0041】
さらに、我々の原型例により、鎖の19炭素上に位置するヒドロキシルまたは他の官能基は、アンタゴニスト活性を増強させることが示される。
【0042】
下記の実施例は、ラット腎から顕微解剖した小葉間動脈における血管収縮神経応答の構造決定基を調べるために、我々が合成し試験した様々な類似体化合物を特徴づけている。これらの研究から、我々はまた、20−HETEに対する特異的なアゴニストおよびアンタゴニストを発見した。
【0043】
1つの実施形態において、本発明は、該化合物が、20−HETEのアゴニストまたはアンタゴニストのいずれかである、上記の式の様々な化合物の使用法である。
【0044】
1つの実施形態において、該化合物はアゴニストであり、血管直径は減少する。好ましくは、該化合物は、二重結合から5〜6炭素にヒドロキシル基を有し、21−HETE、ps20−HETEおよびジメチル20−HETEからなる群から選択される。
【0045】
別の実施形態において、該化合物は、20−HETEアンタゴニストであり、血管直径は、20−HETEによる減少から防がれる。好ましくは、該化合物は、二重結合から5〜6炭素に位置しないOH基を有し、5(S)−HETE、15(S)−HETE、19(S)−HETE、19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸および20−ヒドロキシエイコサ 6(Z),15(Z)−ジエン酸からなる群から選択される。
【0046】
本発明の化合物は、例において下記した化合物合成の記載と類似して作製できる。
【0047】
下記の例を参照として、化合物が20−HETEアゴニストであるか、あるいはアンタゴニストであるかを最も容易に決定し得る。化合物が患者の血管直径を減少させる場合、該化合物は20−HETEアゴニストである。
【0048】
「患者の血管直径を減少させる」により、出願人は、方法において下記した減少を意味する。出願人は、血管をガラスマイクロピペット上にのせ、様々な試験化合物に曝露させる、単離血管の試験系を記載した。我々は、少なくとも20%の血管直径の減少が、化合物が20−HETEアゴニストであることを示すものと信じる。
【0049】
我々はまた、20−HETEアンタゴニスト活性試験を以下に開示する。この分析において、試験化合物は、試験化合物の添加前および後に作成した20−HETEに対する累積用量応答曲線により分析した。5−HETEまたは15−HETEなどの、あるアンタゴニストの添加により、20−HETEに対する血管収縮神経応答は遮断された。我々は、適切なアンタゴニストは、同じように血管収縮神経応答を遮断すると考える。
【0050】
我々は、20−HETEのアゴニストおよびアンタゴニストを、インビボ(in vivo)でヒト患者の治療的に使用することを提唱する。インビトロで単離血管の直径を減少させる薬物は、インビボでも作用することは当分野では公知である。ゾウ・エー・ピー(Zou, A.P.)、Am.J.Physiol.270:R226−R237、1996;ゾウ・エー・ピー、Am.J.Physiol.266:F275−F282、1994;ハーダー・デー・アール、上記、1997;アロンソ−ガリシア・エム(Alonso−Galicia,M.)、Hypertension 29:320−325、1997。)
別の実施形態において、本発明は、ある治療的適用における、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの使用である。好ましくは、20−HETEアンタゴニストおよびアゴニストは、上記した式で示される。
【0051】
我々は、20−HETEアンタゴニストは、例において下記したように、患者の20−HETEの内因産生の増加を緩和するために使用され得ると考える。この調節は、冠動脈疾患、糖尿病、妊娠中毒症(子癇前症)、肝腎症候群、シクロスポリン誘導腎毒性、脳血管痙攣、卒中、または高血圧症を有する患者に有用であり得る。
【0052】
我々はまた、20−HETEアンタゴニストは、例において下記したように、敗血症ショックまたは一酸化窒素合成誘導に関連した他の炎症性疾患を有する患者の処置に有用であり得ると考える。
【0053】
別の実施形態において、我々は、20−HETEアンタゴニストは、新生物組織顆粒の血管新生を防ぎ得、例において下記したように癌の処置に有用であり得ると考える。
【0054】
我々はまた、20−HETEアゴニストは、例において下記したある治療的使用を有すると考える。1つの実施形態において、アゴニストは、利尿効果を提供し得、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群および高血圧症の患者に有用であり得る。
【0055】
別の実施形態において、20−HETEアゴニストは、喘息患者に有用であり得る。好ましくは、該化合物は、例において下記したように吸入療法として送達される。
【0056】
別の実施形態において、患者は、肺性高血圧症を有してよく、20−HETEまたは20−HETEアゴニストを、肺循環を拡張させるために注入する。
【0057】
別の実施形態において、患者は、脳血管損傷、血管痙攣、片頭痛または群発性頭痛、卒中またはコカイン誘導血管痙攣を有し得、血流を増加させ症状を軽減させるために20−HETEアンタゴニストで処置する。
【0058】
別の実施形態において、本発明は、以下の化合物の1つおよび薬学的に許容される担体を含む薬学的製剤である:
20−ヒドロキシエイコサン酸S(20−HETE)、
19−ヒドロキシノナデカン酸(sC19類似体)、
19S−HETE、
20,20 ジメチル−20−HETE、
20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸(ps 20−HETE)、
20−ヒドロキシエイコサ 6(Z),15(Z)−ジエン酸(ps逆20−HETE)、
19−ヒドロキシ−ノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸(C19類似体)、
21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸(21−HETE)、
N−メチルスルホニル−20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエンアミド、および
N−メチルスルホニル−20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエン酸。
【0059】
例
総論
近年の研究により、アラキドン酸(AA)は、主に、腎臓および末梢血管系において、P4504A依存性経路により、20−ヒドロキシエイコサテトラエン酸(20−HETE)に代謝されること、および、20−HETEは、腎臓および末梢血管緊張の調節、腎機能および動脈圧の長期制御における重要な二次メッセンジャーとして貢献することが示された。これに関し、20−HETEは、血管平滑筋細胞におけるCa++−活性化K+チャネルの開口を阻止する強力な血管収縮剤である。それは、KCaチャネルの遮断に続きVSM細胞を脱分極させることにより、およびL型Ca2+チャネルのコンダクタンスを増加させることにより、Ca2+侵入を促進する(ハーダー・デー・アール、上記、1997;ローマン・アール・ジェイ(Roman,R.J.)、上記、1999)。20−HETE形成阻害剤は、経壁圧上昇に対する、腎、脳および末梢細動脈の筋原性応答およびインビボでの腎および脳血流の自己調節を遮断する(ハーダー・デー・アール等、上記、1997;ゾウ・エー等、上記、1996;ゾウ・エー・ピー等、上記、1994)。それらはまた、血管収縮神経応答エンドセリン、AIIおよびNOシンターゼ阻害剤(オエカン・エー・オー(Oyekan,A.O.)、Am.J.Physiol.274:R52−R61、1998;サン・デー・‐ダブリュー等、Circ.Res.83:1069−1079、1998)、組織PO2の上昇に対する血管収縮神経応答、(ハーダー・デー・アール、Circ.Res.79:54−61、1996;ロンバード・ジェイ・エイチ(Lombard,J.H.)、Am.J.Physiol.276:H503−H507、1999)、血管平滑筋および腎メサンギウム細胞における成長因子の分裂促進作用(リン(Lin)等、Am.J.Physiol.269:F806−F816、1995;ウディン(Uddin)等、Hypertension 31:242−247、1998)、および自然発症高血圧症ラットおよび他の高血圧症実験モデルにおける高血圧症の発達(ローマン等、Am.J.Hypertension 10:638−678、1997)を減弱させる。
【0060】
腎臓において、20−HETEはまた、腎尿細管細胞により産生され、ここで、それは、近位尿細管および厚いヘンレ係蹄上行脚においてナトリウム輸送の調節に関与している。(ローマン・アール・エス、上記、1999)。20−HETEはまた、ヒトおよびウサギの肺の気道により産生され、ここで、それは、強力な内因産生気管支拡張剤として貢献する(ズー等、上記、1998;ヤコブズ等、上記、1999)。
【0061】
腎機能、血管緊張、および気道抵抗の調節における20−HETEの重要性にも関わらず、その作用メカニズムはほとんど知られていない。近年の研究により、20−HETEの分裂促進作用および血管緊張およびナトリウム輸送に対するその効果が、PKCおよびMAPキナーゼシグナル伝達カスケードの活性化と関連していることが示された。(サン・シー・‐ダブリュー等、上記、1999)。これらの経路の活性化は、通常、受容体媒介事象により引き起こされる。しかし、現在、20−HETE受容体の証拠は以前に全く発表されていない。20−HETEが、膜タンパク質に結合するか、または、20−HETEの血管収縮神経特性は、他の類似体により模倣できるかどうかを決定する研究は以前に全くなかった。
【0062】
従って、本研究の目的は、ラット腎から顕微解剖した小葉間動脈における血管収縮神経応答の構造決定基を調べるために、一連の合成20−HETE類似体を用いて構造活性研究を実施することであった。
【0063】
方法
総論
実験は、ハーラン スプラーギュ−ダウレー(Sprague−Dawley)研究所(インディアナポリス、インディアナ)から購入した10〜12週令の老雄スプラーギュ−ダウレーラットで実施した。ラットは、ウィスコンシン医科大学の動物ケア施設で飼い、これは、米国実験動物ケア認定協会により承認されている。動物が自由に食物および水に近づけるようにした。動物を含む全プロトコルが、ウィスコンシン医科大学の動物ケア委員会による承認を受けた。
【0064】
単離血管の研究
小葉間細動脈(内径70〜120μm)を、ラット腎から顕微解剖した。血管を、95%O2−5%CO2ガス混合物で平衡化し37℃に維持した生理学的食塩水を含む灌流チャンバー中のガラスマイクロピペット上にのせた。血管を、ピペットに固定し、側枝を、10〜0の絹の縫合糸で縛った。流入ピペットを、腔内の灌流圧を制御する加圧貯蔵所に接続し、これを、トランスデューサーを使用して監視したコーベ(Cobe)、レークウッド(Lakewood)、コロラド)。血管は、顕微解剖の前に測定したインビボの長さに伸ばした。流出カニューレをはずし、腔内圧を、実験中90mmHgに維持した。血管直径は、立体顕微鏡(カール ツアイス(Carl Zeiss),Inc.、ドイツ)、CCTVテレビカメラ(KP−130AU、日立、日本)、ビデオカセットレコーダー(AG−7300、パナソニック、日本)、テレビモニタ(CVM−1271、ソニー、日本)およびビデオ測定システム(VIA−100、ボッケラー インストゥルメント(Boeckeler Instrument) Co.、トゥーソン(Tucson)、アリゾナ)からなるビデオシステムで測定した。
【0065】
灌流液および浴の組成物は、(mM単位で)119NaCl、4.7KCl、1.17MgSO4、1.6CaCl2、12NaHCO3、1.18NaH2PO4、0.03EDTAおよび10グルコース、pH7.4であった。インドメタシン(5μM)、バイカレイン(baicalein)(0.5μM)および17−ODYA(1μM)を、浴に加え、シクロオキシゲナーゼ、リポキシゲナーゼおよびシトクロムP450経路を介した、エイコサノイドの内因性形成および代謝を遮断した。平衡期間後、累積用量応答曲線を、各20−HETE類似体について作成した。
【0066】
20−HETEへの血管収縮神経応答に対する、ヒドロキシル基の位置の効果
これらの実験は、単離加圧ラット腎小葉間動脈の直径に対する、5(S)−、8(S)−、12(S)−、15(S)−、および19(S)−HETEの増加濃度の効果を調べた。これら全ての類似体が、20−HETEと同数の炭素、二重結合および分子量を有する(図1)。これらの化合物と20−HETEの間の主な違いは、炭素鎖に沿ったOH基の位置である。追加の実験を、アラキドン酸および20−カルボキシアラキドン酸、これは、20−HETEとは構造的に類似しているが、20番目の炭素上にヒドロキシル基を欠失しており、および保存された1番目および20番目の炭素上のカルボキシ−およびヒドロキシ−部分を有する20−ヒドロキシエイコサ−6,15−ジエン酸(逆20−HETE)を用いて実施した。累積用量応答曲線は、インドメタシン、バイカレイン、および17−ODYAの存在下で、各化合物(10−8〜10−6M)について作成した。血管直径は、浴に化合物を添加した2〜3分後に記録した。
【0067】
20−HETEへの血管収縮神経応答に対する二重結合および炭素鎖長の効果
我々は、次に、20−HETEへの血管収縮神経応答に対する、二重結合および炭素鎖長の重要性を調べた。これらの研究において、20−HETE分子の二重結合を除去して、部分的および飽和20−HETE誘導体(20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)ジエン酸;20−ヒドロキシエイコサン酸、図1)を作製した。20−HETEはまた、1個の炭素分を短くして、19−炭素類似体(19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、図1)を作製し、また、二重結合を除去し、飽和19−炭素類似体(19ヒドロキシノナデカン酸、図1)を作製した。さらに、1個の炭素を20−HETE分子に加え、21−炭素類似体(21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、図1)を作製し、最後に20番目の炭素上の水素原子を、メチル基で置換した(20,20−ジメチル−20−HETE)。平衡化期間後、これらの類似体に対する累積用量応答曲線(10−8〜10−6M)を、インドメタシン、バイカレイン、および17−ODYAの存在下で作成した。血管直径を、これらの化合物を浴に添加した2〜3分後に記録した。
【0068】
20−HETEアンタゴニスト活性
20−HETEの不活性類似体を、さらに、アンタゴニスト活性について試験した。これらの実験において、20−HETEに対する累積用量応答曲線(10−8〜10−6M)を、5(S)−HETE(0.5μM)、8(S)−HETE(1μM)、12(S)−HETE(0.5μM)、15(S)−HETE(1μM)、19(S)―HETE(1μM)、C19−類似体(1μM)、アラキドン酸(1μM)、20−カルボキシ−アラキドン酸(1μM)、逆20−HETE(1μM)、飽和20−HETE(1μM)、および飽和C19−類似体(1μM)を浴に添加する前および後に作成した。血管直径を、各用量の20−HETEを浴に添加した2〜3分後に記録した。
【0069】
薬物および化学物質
全ての化学物質は、分析グレードであった。インドメタシンは、シグマケミカルズ(Sigma Chemicals)(セントルイス、ミズーリ)から得た。5(S)−、8(S)−、12(S)、15(S)、および19(S)−HETE、バイカレインおよび17−ODYAは、バイオモル コーポレーション(Biomol Corp.)(プリモウス ミーティング)(Plymouth Meeting)、ペンシルヴェニア)から購入した。20−HETE、逆20−HETE、19−炭素類似体、ジメチル20−HETE、21−HETE、20−カルボキシアラキドン酸、および飽和および部分飽和C19および20−HETE類似体は、全て下記のように合成した。
【0070】
20−HETEおよび類似体の化学合成
以下の製剤は、図1、8A、B、C、D、EおよびFに関する。
【0071】
20−HETE(9b)の調製:激しく撹拌している、−40℃のメチル 14,15−ジヒドロキシエイコサトリエノエート(1)(700mg、1.98mmol)の無水CH2Cl2(30mL)溶液に、Pb(OAc)4(890mg、2.00mmol)を2分間かけて滴下して加えた(スキーム1;図8A)。30分後、反応混合物を、シリカゲルのパッドを通して、無機塩を除去した。フィルターケーク(filter cake)をEtOAc/ヘキサン(1:1、30mL)で洗浄し、合わせた濾液を真空で蒸発させると、アルデヒド2(435mg、87%)が不安定な無色油状物として得られ、これは次の段階に直ちに使用した。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.60−1.78(m、2H)、2.00−2.15(m、2H)、2.30(t、J〜7.4Hz、2H)、2.70−2.85(m、4H)、3.18−3.28(m、2H)、3.65(s、3H)、5.28−5.75(m、6H)、9.65(t、J〜1.8Hz、1H);TLC:EtOAc/ヘキサン(1:1)、Rf〜0.5。
【0072】
水素化ホウ素ナトリウム(139mg、3.65mmol)を、粗2(435mg、1.76mmol)のMeOH/CH2Cl2(1:2、10mL)撹拌溶液に滴下して加えた。45分後、混合物を減圧下で濃縮し、残渣を、SiO2 カラムクロマトグラフィーにより、EtOAc/ヘキサン(2:3)を使用して精製すると、アルコール3(350mg、80%)が無色油状物として得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.60−1.75(m、2H)、2.04−2.15(m、2H)、2.25−2.38(m、4H)、2.72−2.85(m、4H)、3.65(t、J〜7.2Hz、2H)、3.68(s、3H)、5.28−5.60(m、6H);TLC:EtOAc/ヘキサン(1:1)、Rf〜0.39。
【0073】
トリフェニルホスフィン(495mg、1.89mmol)を、撹拌している0℃の3(340mg、1.35mmol)および四臭化炭素(585mg、1.75mmol)の乾燥CH2Cl2(15mL)溶液に滴下して加えた。40分後、溶媒を真空で除去し、残渣を、SiO2カラムクロマトグラフィーにより、溶出液としてCH2Cl2を使用して精製すると、ブロミド4(375mg、88%)が流動性無色油状物として得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.64−1.75(m、2H)、2.04−2.15(m、2H)、2.25−2.36(m、2H)、2.60−2.70(m、2H)、2.75−2.84(m、4H)、3.38(t、J〜7.2Hz、2H)、3.65(s、3H)、5.30−5.60(m、6H);TLC:EtOAc/ヘキサン(1:1)、Rf〜0.61。
【0074】
LiOH水溶液(2mLの1M溶液)を0℃の4(375mg、1.19mmol)のテトラヒドロフラン(THF)/H2O(5:1、20mL)溶液に滴下して加えた。周囲温度で12時間撹拌した後、pHを、1Mシュウ酸水溶液を使用して4.5に調整し、THFを減圧下で蒸発させた。残渣をH2O(15mL)で希釈し、EtOAc(3×10mL)で抽出した。合わせた有機抽出物を、H2O(15mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、蒸発させると、ブロモ酸5(318mg、89%)が無色油状物として得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.63−1.76(m、2H)、2.08−2.16(m、2H)、2.40(t、J〜7.1Hz、2H)、2.60−2.70(m、2H)、2.75−2.86(m、4H)、3.40(t、J〜7.2Hz、2H)、5.30−5.55(m、6H);TLC:EtOAc/ヘキサン(3:1)、Rf〜0.34。
【0075】
トリフェニルホスフィン(524mg、2mmol、3.5当量)とブロモ酸5(305mg、1mmol)の混合物の乾燥CH3CN(6mL)溶液を、封管中85℃で60時間加熱した。溶媒蒸発およびMeOH/CH2Cl2(5:95)を使用したSiO2クロマトグラフィー精製により、ホスホニウム塩6(530mg、92%)が粘性の吸湿性油状物として得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.55−1.70(m、2H)、1.96−2.10(m、2H)、2.40(t、J〜7.1Hz、2H)、2.42−2.60(m、2H)、2.62−2.70(m、4H)、3.75−3.88(m、2H)、5.20−5.50(m、6H)、7.65−7.80(m、15H);TLC:MeOH/CH2Cl2(1:7)、Rf〜0.21。
【0076】
リチウムビス(トリメチルシリル)アミド(0.32mLの1M THF溶液)を、6(90mg、0.16mmol)のTHF/ヘキサメチルホスホルアミド(HMPA)(4:1、2.5mL)の−78℃溶液に滴下して加えた。混合物は次第にイリドに特徴的な濃黄色の呈色を発達させた。反応混合物を、−40℃で1時間保ち、−78℃に再度冷却し、アルデヒド12b(30mg、0.133mmol)の無水THF(1mL)溶液を滴下して加えた。さらに1.5時間後、反応物を、50%NH4OAc水溶液でクエンチし、EtOAc(3×10mL)で抽出し、合わせた有機抽出物を、H2O(2×5mL)、食塩水(5mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、溶媒を真空で蒸発させた。残渣を、MeOH/Et2O(1:5、4mL)に再度溶解し、過剰のエーテル性のジアゾメタンを用いて0℃で0.5時間処理した。全ての揮発性物質の除去、およびEtOAc/ヘキサン(1:10)を使用して得られた油状物をSiO2クロマトグラフィー精製することにより、シリル−エステル7bおよびΔ14,15−トランス−7b(8:1、73%)の混合物が得られ、これは、より簡便には次の段階後に分割した。7b/Δ14,15−トランス−7bの混合物の1H NMR(250MHz、CDCl3):δ0.84(s、9H)、1.20−1.75(m、8H)、2.00−2.18(m、4H)、2.30(t、J〜7.5Hz、2H)、2.72−2.85(m、6H)、3.60(t、J〜7.3Hz、2H)、3.65(s、3H)、5.30−5.40(m、8H)、7.38−7.45(m、6H)、7.59−7.68(m、4H);TLC:EtOAc/ヘキサン(1:2)、Rf〜0.62。
【0077】
7b/Δ14,15−トランス−7b(63mg、0.11mmol)およびn−テトラブチルアンモニウムフルオライド(0.22mmol、5当量)のTHF(8mL)溶液を、室温で3時間維持した。溶媒を蒸発させ、残渣をEtOAc(10mL)に溶解し、その後、H2O(2×5mL)、食塩水(8mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で濃縮した。Et2O/ヘキサン(7:3)を使用した残渣のカラムクロマトグラフィー(SiO2)により、エステル8bおよびそのΔ14,15−トランス−異性体(77%)の混合物が無色油状物として得られ、これは、ヘキサン/EtOH(99.4:0.6)を用いて無勾配で6mL/分で溶出したバリアン(Varian)マイクロソーブ(Microsorb) Si 5μ(10×250mm)カラム上でHPLCにより分割し、205nmで監視した(8b:Rt〜32.4分;Δ14,15−トランス−8b:Rt〜34.8分)。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.25−1.75(m、8H)、2.00−2.20(m、5H)、2.30(t、J〜7.5Hz、2H)、2.72−2.85(m、6H)、3.65(t、J〜7.3Hz、2H)、3.70(s、3H)、5.30−5.50(m、8H)。
【0078】
NaOH水溶液(0.149mLの1M溶液、0.149mmol)を、0℃の8b(12.4mg、0.037mmol)のTHF/H2O(3:1、2mL)溶液に加えた。周囲温度で一晩撹拌した後、反応混合物をH2O(3mL)で希釈し、1Mシュウ酸水溶液を滴下して加えることによりpH6.5に調整し、その後、EtOAc(3×3mL)で抽出した。合わせた有機抽出物を、H2O(10mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、蒸発させると、20−HETE(9b)(8.5mg、72%)が、標準サンプルと全ての点で一致する無色油状物として得られた。1HPLC:Phenomenex Nucleosil 5μ C18(4.6×250mm)カラムは、CH3CN/H2O/HOAc(49.95:49.95:0.1)からCH3CN/HOAc(99.9:0.1)まで、40分間かけて1mL/分で線形溶出し、205nmで監視した(Rt〜18分)。TLC:MeOH/CH2Cl2(1:10)、Rf〜0.45。
【0079】
アルデヒド12bの調製:tert−ブチルクロロジフェニルシラン(400mg、1.45mmol)およびAgNO3(250mg、1.47mmol)を、1,6−ヘキサンジオール(10b)(343mg、2.90mmol)のTHF/ピリジン(15:1、32mL)(eq.1)の溶液に加えた。12時間暗闇で撹拌した後、反応混合物を、セライト床を通して濾過し、フィルターケークをTHF(10mL)で洗浄した。合わせた濾液を蒸発させ、残渣を、SiO2カラムクロマトグラフィーにより、MeOH/CH2Cl2(1:49)を使用して精製すると、11b(495mg、シリル化剤に基づき96%)が得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.04(s、9H)、1.16−1.70(m、8H)、3.48−3.76(m、4H)、7.38−7.44(m、6H)、7.61−7.66(m、4H);TLC:MeOH/CH2Cl2(5:95)、Rf〜0.49。
【0080】
新しく蒸留した塩化オキサリル(353mg、2.78mmol)を、−78℃のメチルスルホキシド(DMSO)(543mg、6.95mmol)の無水CH2Cl2(5mL)溶液に加えた。10分後、シリルエーテル11b(495mg、1.39mmol)のCH2Cl2(3mL)溶液を、滴下して加え、混合物をさらに1.5時間撹拌した。トリエチルアミン(702mg、6.95mmol)を加え、混合物を20℃まで30分間かけて加温し、その後、飽和NaHCO3水溶液に注ぎ、層を分離した。水層をさらにCH2Cl2(2×10mL)で抽出した。合わせた有機抽出物を食塩水(15mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、蒸発させ、残渣を、SiO2カラムクロマトグラフィーにより、CH2Cl2を使用して精製すると、アルデヒド12b(450mg、92%)が得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.04(s、9H)、1.36−1.80(m、8H)、2.24−2.52(m、2H)、3.64(t、J〜6Hz、2H)、7.32−7.44(m、6H)、7.63−7.70(m、4H)、9.72(t、J〜1.8Hz、1H);TLC:MeOH/CH2Cl2(1:49)、Rf〜0.71。
【0081】
19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸(9a)および21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸(9c)の調製:C19−相同体9aおよびC21−相同体9cを、それぞれ、ウィッティヒ塩6およびアルデヒド12aおよび12c(eq.1)を使用して、9b(スキーム1)に記載したのと同じ方法および同等な収率で調製した。積分以外の、9aおよび9cのTLC特徴およびNMRスペクトルは、ほとんど9bと同一であった。
【0082】
20,20−ジメチル−20−HETE(19)の調製:
アルゴン下、MeLi(1.4M Et2O溶液、10.4mL、14.6mmol)を、撹拌している室温のメチル6−ヘプテノエート(13)(946mg、6.65mmol)の無水Et2O(30mL)溶液に滴下して加えた(スキーム2;図8B)。12時間後、反応混合物を、5%塩酸の添加によりpH4に調整し、EtOAc(3×10mL)で抽出した。合わせた有機抽出物をNa2SO4で乾燥させ、全ての揮発性物質を真空で除去すると、次段階に直接使用するのに十分純粋なアルコール14(950mg、100%)が得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.22(s、6H)、1.26−1.46(m、6H)、2.03−2.18(m、2H)、4.92−5.08(m、2H)、5.72−5.90(m、1H);TLC:EtOAc/ヘキサン(1:4)、Rf〜0.38。
【0083】
アルコール14(870mg、6.1mmol)、3,4−ジヒドロ−2H−ピラン(DHP)(1.12mL、12.2mmol)およびピリジニウムp−トルエンスルホネート(PPTS)(153mg、0.61mmol)の混合物のCH2Cl2(43mL)溶液を、周囲温度で12時間撹拌し、その後、Et2O(50mL)で希釈し、濾過した。濾液を真空で蒸発させ、残渣をEtOAc/ヘキサン(5:95)を使用してSiO2上クロマトグラフィーにかけると、THPエーテル15(1.13g、82%)が無色油状物として得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.19(s、3H)、1.21(s、3H)、1.30−1.42(m、4H)、1.42−1.58(m、6H)、1.60−1.68(m、1H)、1.75−1.90(m、1H)、2.01−2.12(m、2H)、3.38−3.44(m、1H)、3.90−3.99(m、1H)、4.67−4.70(m、1H)、4.92−5.08(m、2H)、5.72−5.90(m、1H);TLC:EtOAc/ヘキサン(15:85)、Rf〜0.64。
【0084】
0℃のTHPエーテル15(565mg、2.5mmol)のCH2Cl2(10mL)溶液を、10分間連続的なO3流で飽和させた。アルゴンを用いて過剰のO3をパージした後、ニート(neat)Me2S(1mL)を加え、混合物を室温で2時間撹拌した。全揮発性物質を真空で蒸発させ、溶出液としてEtOAc/ヘキサン(15:85)を使用してSiO2上で残渣をクロマトグラフィー精製すると、アルデヒド16(390mg、68%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.18(s、3H)、1.21(s、3H)、1.40−1.80(m、12H)、2.43(dt、J〜1.5および6.4Hz、2H)、3.40−3.52(m、1H)、3.90−4.00(m、1H)、4.68−4.74(m、1H)、9.78(t、J〜1.5Hz、1H);TLC:EtOAc/ヘキサン(1:9)、Rf〜0.19。
【0085】
アルゴン下、リチウムビス(トリメチルシリル)アミド(0.3mLの1M溶液、0.30mmol)を、−78℃のホスホニウム塩6(82mg、0.15mmol)のTHF/HMPA(4:1、5mL)懸濁液にゆっくりと加えた。反応混合物を、−78℃でさらに30分間撹拌し、−40℃まで1時間加温し、その後、−78℃に再度冷却した。アルデヒド16(43mg、0.19mmol)のTHF(1.5mL)溶液を、上記の黄色のイリド溶液に−78℃で滴下して加えた。1.2時間後、反応物を、50%NH4OAc水溶液でクエンチし、EtOAc(3×20mL)で抽出した。合わせた有機抽出物を、H2O(5mL)、食塩水(5mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をEt2Oに溶解し、過剰のエーテル性のCH2N2で15分間処理した。全揮発性物質を真空で蒸発させ、残渣をPTLC[SiO2:Et2O/ヘキサン(7:3)、Rf〜0.56]を介して精製すると、THP−エステル17(35mg、53%)が無色油状物として得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):δ1.20(s、3H)、1.23(s、3H)、1.23−1.85(m、12H)、1.95−2.20(m、4H)、2.34(t、J〜7.6Hz、2H)、2.70−2.90(m、6H)、3.35−3.50(m、1H)、3.68(s、3H)、3.85−4.00(m、1H)、4.68−4.74(m、1H)、5.20−5.45(m、8H)。
【0086】
THP−エステル17(35mg、0.08mmol)とPPTS(2mg)の混合物のMeOH(1mL)溶液を、室温で1時間撹拌した。溶媒を真空で蒸発させ、残渣をPTLC[SiO2:Et2O/ヘキサン(7:3)、Rf〜0.38]を介して精製すると、ヒドロキシ−エステル18(23mg、80%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.23(s、6H)、1.31−1.52(m、6H)、1.71(五重線、J〜7.2Hz、2H)、2.02−2.20(m、4H)、2.35(t、J〜7.4Hz、2H)、2.74−2.90(m、6H)、3.67(s、3H)、5.25−5.46(m、8H)。
【0087】
エステル18(11mg、0.03mmol)とLiOH水溶液(0.17mLの1M溶液、0.17mmol)の混合物のTHF/H2O(4:1、2.5mL)溶液を、室温で12時間撹拌した。反応物のpHを、1Mシュウ酸水溶液の添加により4に調整し、酸性化した溶液を、EtOAc(3×5mL)で抽出した。合わせた有機抽出物をH2O(10mL)、食塩水(10mL)で洗浄し、真空で蒸発させると、酸20,20−ジメチル−20−HETE(19)(9.8mg、93%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.21(s、6H)、1.30−1.52(m、6H)、1.71(五重線、J〜7.3Hz、2H)、2.03−2.20(m、4H)、2.33(t、J〜7.6Hz、2H)、2.72−2.87(m、6H)、5.25−5.45(m、8H)。
【0088】
14,15−デヒドロ−20−HETE(26)の調製:エステル7b(1.0g、1.74mmol)とLiOH(9mLの1M溶液、9mmol)の混合物のTHF/H2O(4:1、20mL)溶液を室温で12時間撹拌し、その後、有機溶媒を真空で蒸発させた(スキーム3;図8B)。残渣をH2O(10mL)で希釈し、1Mシュウ酸でpH5.5に酸性化し、EtOAc(3×50mL)で抽出した。合わせた有機抽出物をH2O(50mL)、食塩水(50mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させると酸20(960mg、98%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.03(s、9H)、1.20−1.42(m、4H)、1.44−1.60(m、2H)、1.67(五重線、J〜7.1Hz、2H)、1.92−2.18(m、4H)、2.34(t、J〜7.2Hz、2H)、2.68−2.88(m、6H)、3.63(t、J〜7.4Hz、2H)、5.25−5.46(m、8H)、7.28−7.47(m、6H)、7.55−7.70(m、4H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:4)、Rf〜0.15。
【0089】
酸20(960mg、1.72mmol)と1,1’−カルボニルジイミダゾール(Im2CO)(418mg、2.58mmol)の混合物の乾燥CH2Cl2(35mL)溶液を、40分間室温で撹拌し、その後、カニューレを介して、撹拌している、触媒性の量のイミダゾールリチウムを含む、0℃のエーテル 3.5M H2O2溶液(20mL、69mmol)に移した。5分後、反応混合物をCH2Cl2(25mL)で希釈し、粉末KH2PO4(1.4g、10.32mmol)を加え、0℃でさらに5分間撹拌し続けた。得られた懸濁液を、綿栓を通して、無水Na2SO4(3g)のCH2Cl2(30mL)懸濁液を含むアルゴンを流したフラスコに濾過した。反応混合物を室温でアルゴン雰囲気下で12時間貯蔵し、濾過し、食塩水(40mL)で、試験した水層が、過酸化水素のためのデンプン−I2紙で陰性になるまで洗浄した。有機層を真空で蒸発させ、残渣をEt2O/MeOH(3:1、15mL)に溶解し、これに、過剰のエーテル性のCH2N2をゆっくりと、黄色の呈色が15分間持続するまで加えた。真空で溶媒を除去し、残渣をSiO2カラム上でクロマトグラフィー精製すると、回収された7b(200mg)を伴って、エポキシド21(650mg、65%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.05(s、9H)、1.29−1.65(m、8H)、1.73(五重線、J〜7.2Hz、2H)、2.12(dt、J〜6.3および12.5Hz、2H)、2.18−2.47(m、2H)、2.34(t、J〜7.4Hz、2H)、2.67−3.00(m、6H)、3.64(s、3H)、3.66(t、J〜7.1Hz、2H)、5.28−5.58(m、6H)、7.30−7.50(m、6H)、7.60−7.74(m、4H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:4)、Rf〜0.39。
【0090】
アルゴン下、エポキシド21(650mg、1.1mmol)のペルオキシド非含有THF(5mL)の溶液を、撹拌している0℃のAcOH/THF/飽和KBr水溶液(20:4:3、27mL)の混合物に滴下して加えた。10時間後、反応混合物を真空で4分の1の容量までに減らし、H2O(10mL)で希釈し、3回Et2Oで抽出した。合わせたエーテル抽出物を、10%NaHCO3水溶液、H2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で乾燥させるため蒸発させた。残渣を短いSiO2カラムに通すと、ブロモヒドリン22(700mg、94%)が分離不可能な位置異性体混合物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.05(s、9H)、1.16−1.48(m、4H)、1.49−1.64(m、2H)、1.71(五重線、J〜7.3Hz、2H)、1.80−2.07(m、2H)、2.13(dt、J〜6.5および13.3Hz、2H)、2.35(t、J〜7.3Hz、2H)、2.42(t、J〜6.5Hz、1H、D2O交換可能)、2.66−2.95(m、4H)、3.41−3.57(m、1H)、3.64(t、J〜7.2Hz、2H)、3.65(s、3H)、4.00−4.15(m、1H)、5.27−5.61(m、6H)、7.27(m、6H)、7.59−7.70(m、4H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:4)、Rf〜0.39。
【0091】
ブロモヒドリン22(700mg、1.05mmol)のアセトン(4mL)溶液を、−20℃のジョーンズ試薬(0.7mLの2M溶液、1.57mmol)のアセトン(15mL)溶液に滴下して加えた。反応物を、過剰のi−PrOHのゆっくりとした添加により30分後にクエンチし、濾過して、クロム塩を除去し、濾液を真空で蒸発させた。残渣をH2O(10mL)とEt2O(8mL)の間に分配した。層を分離し、水性画分をEt2Oでさらに2回抽出した。合わせたエーテル抽出物を食塩水(10mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をSiO2カラム上で精製すると、ブロモ−ケトン23(500mg、72%)が無色油状物として得られ、これは次段階に直ちに使用した。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.07(s、9H)、1.20−1.80(m、8H)、2.02−2.17(m、2H)、2.34(t、J〜7.4Hz、2H)、2.64−2.91(m、4H)、3.40−3.54(m、2H)、3.64(s、3H)、3.66(t、J〜6.1Hz、2H)、4.17−4.85(m、1H)、5.25−5.70(m、6H)、7.30−7.48(m、6H)、7.60−7.78(m、4H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:4)、Rf〜0.46。
【0092】
ブロモ−ケトン23(400mg、0.599mmol)、トシルヒドラジン(224mg、1.199mmol)およびヒドロキノン(7mg、0.06mmol)の混合物を、CH2Cl2/HOAc(2:1、9mL)中、室温でアルゴン雰囲気下で32時間撹拌し、その後、H2O(20mL)で希釈し、Et2O(3×50mL)で抽出した。合わせたエーテル抽出物をH2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。SiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アセチレン24(140mg、41%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.05(s、9H)、1.41−1.60(m、6H)、1.72(五重線、J〜7.2Hz、2H)、1.97−2.19(m、4H)、2.31(t、J〜7.3Hz、2H)、2.68−2.84(m、4H)、2.85−2.98(m、2H)、3.63(t、J〜7.1Hz、2H)、3.65(s、3H)、5.29−5.50(m、6H)、7.33−7.48(m、6H)、7.63−7.72(m、4H);TLC:SiO2、Et2O/ヘキサン(1:1)、Rf〜0.53。
【0093】
シリルメチルエステル24(140mg、0.245mmol)とn−テトラブチルアンモニウムフルオライド(1.2mLの1M溶液、1.2mmol)の混合物の無水THF(5mL)溶液を、0℃でアルゴン雰囲気下で12時間撹拌し、その後、真空で乾燥させるため蒸発させた。残渣をEtOAc(50mL)に溶解し、H2O(30mL)、食塩水(30mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をSiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、ヒドロキシ−エステル25(50mg、62%)が不安定な無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.36−1.67(m、6H)、1.72(五重線、J〜7.3Hz、2H)、2.02−2.24(m、4H)、2.33(t、J〜7.5Hz、2H)、2.75−2.88(m、4H)、2.89−3.00(m、2H)、3.65(t、J〜6.8Hz、2H)、3.67(s、3H)、5.30−5.53(m、6H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:3)、Rf〜0.14。
【0094】
エステル25(4.8mg、0.014mmol)およびLiOH(72μlの1M溶液、0.072mmol)を、室温で、THF/H2O(5:2、1.5mL)中、アルゴン雰囲気下で12時間撹拌した。反応混合物を1Mシュウ酸でpH6.5に調整し、3回EtOAcで抽出した。合わせた有機抽出物を、H2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させると、アセチレン酸26(4.7mg、>95%)が不安定な無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.35−1.65(m、6H)、1.71(五重線、J〜7.3Hz、2H)、2.02−2.24(m、4H)、2.37(t、J〜7.3Hz、2H)、2.70−2.88(m、4H)、2.89−2.99(m、2H)、3.67(t、J〜6.4Hz、2H)、5.28−5.54(m、6H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(3:7)、Rf〜0.15。
【0095】
19(S)−HETE(34)および19(R)−HETE(36)の調製:4−ブロモブテン(1.31g、9.76mmol)のエーテル溶液(2mL)を、0℃で、新しく活性化したマグネシウム削り屑(238mg、9.79mmol)のEt2O(7mL)懸濁液に滴下して加えた(スキーム4;図8D)。反応物は室温まで加温し、3時間維持した。得られた均一の淡黄色のグリニャール溶液28を、カニューレを介して、正の窒素圧下、CuCN(88mg、0.98mmol)の乾燥THF(10mL)撹拌懸濁液に−20℃で移した。20分後、(S)−(−)−プロピレンオキシド(27)(94.6mg、1.62mmol)を、手際よく均一な銅塩溶液に加え、その後、0℃で12時間撹拌した。反応物を飽和NH4Cl水溶液でクエンチし、EtOAc(3×10mL)で抽出した。合わせた有機抽出物を、H2O(2×10mL)、食塩水(50mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をSiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルコール29(623mg、81%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.20(d、J〜6.7Hz、3H)、1.32−1.37(m、4H)、1.91−2.12(m、2H)、3.80−3.82(m、1H)、4.93−5.05(m、2H)、5.79−5.88(m、1H);TLC:SiO2、Et2O/ヘキサン(1:1)、Rf〜0.52。
【0096】
AgNO3(543mg、3.21mmol)およびtert−ブチルクロロジフェニルシラン(840mg、3.05mmol)を、アルコール29(317mg、2.78mmol)のTHF/ピリジン(14:1、10mL)の室温溶液に連続的に加えた。12時間後、反応混合物を、セライトパッドを通して濾過し、フィルターケークをEt2O(10mL)で洗浄した。濾液水層を分離し、Et2O(2×10mL)で抽出し、合わせたエーテル抽出物を飽和CuSO4水溶液、H2O(2×50mL)、食塩水(50mL)で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、全ての揮発性物質を減圧下で除去した。残渣をSiO2カラムクロマトグラフィー(5%Et2O/ヘキサン)により精製すると、シリルエーテル30(820mg、84%)が流動性無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ1.05(s、9H)、1.08(d、J〜6.4Hz、3H)、1.32−1.60(m、4H)、1.92−2.01(m、2H)、3.80−3.92(m、1H)、4.91−5.00(m、2H)、5.70−5.81(m、1H)、7.33−7.48(m、6H)、7.64−7.75(m、4H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:9)、Rf〜0.9。
【0097】
オゾンを、0℃の30(500mg、1.42mmol)の乾燥CH2Cl2(5mL)溶液に15分間泡立て、その時点に、TLC分析により出発物質は残っていないことが判明した。反応混合物に簡潔にアルゴンを流し、その後、過剰のMe2S(2mL)を撹拌しながら加え、その際混合物を室温にまで加温した。12時間後、全ての揮発性物質を真空で除去し、残渣をSiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルデヒド31(387mg、77%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.05(s、9H)、1.08(d、J〜6.2Hz、3H)、1.39−1.50(m、2H)、1.51−1.70(m、2H)、2.29(dt、J〜1.8および7.1Hz、2H)、3.78−3.95(m、1H)、7.32−7.49(m、6H)、7.62−7.73(m、4H)、9.67(t、J〜1.8Hz、1H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:9)、Rf〜0.39。
【0098】
アルデヒド31(1.81mg、0.507mmol)とイリド6(220mg)のウィッティヒ縮合、および12から7への変換(スキーム1)で記載したようにジアゾメタンを使用した付加物のエステル化により、付加物32(144mg、66%)が、PTLC精製[SiO2:EtOAc/ヘキサン(1:4)、Rf〜0.64]後に、無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.05(s、9H)、1.07(d、J〜6.3Hz、3H)、1.30−1.49(m、4H)、1.72(五重線、J〜7.3Hz、2H)、1.90−2.03(m、2H)、2.05−2.15(m、2H)、2.33(t、J〜7.4Hz、2H)、2.64−2.89(m、6H)、3.67(s、3H)、3.75−3.90(m、1H)、5.20−5.47(m、8H)、7.28−7.49(m、6H)、7.62−7.71(m、4H)。
【0099】
ヒドロキシ−エステル33(210mg、78%)が得られる32(450mg)の脱シリル化は、7から8への変換(スキーム1)に記載した方法に従った。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.20(d、J〜6.3Hz、3H)、1.40−1.53(m、4H)、1.71(五重線、J〜7.4Hz、2H)、2.06−2.17(m、4H)、2.33(t、J〜7.4、2H)、2.74−2.88(m、6H)、3.68(s、3H)、3.75−3.86(m、1H)、5.32−5.49(m、8H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:3)、Rf〜0.23。
【0100】
アルゴン雰囲気下、ジエチルアゾジカルボキシレート(DEAD)(68mg、0.387mmol)を、手際よく、撹拌している室温のアルコール33(100mg、0.299mmol)、Ph3P(102mg、0.389mmol)、および安息香酸(48mg、0.389mmol)の乾燥ベンゼン(3mL)溶液に加えた。2時間後、全ての揮発性物質を真空除去し、残渣をSiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、ベンゾエート35(109mg、83%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、250MHz):δ1.37(d、J〜6.2Hz、3H)、1.41−1.53(m、2H)、1.61−1.79(m、4H)、2.10(q、J〜7.3Hz、4H)、2.32(t、J〜7.4Hz、2H)、2.75−2.90(m、6H)、3.69(s、3H)、5.18(m、1H)、5.34−5.46(m、8H)、7.45(t、J〜7.1Hz、2H)、7.56(t、J〜7.1Hz、1H)、8.04(d、J〜7.1Hz、2H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:3)、Rf〜0.54。
【0101】
エステル33および35の、それぞれ、対応する19(S)−HETE(34)および19(R)−HETE(36)への加水分解は、18から19への変換(スキーム2;図8B)に記載したように行った。
【0102】
20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸(50)の調製:アルゴン下、5−ヘキシン酸(37)(3.4g、30.35mmol)のEt2O(6mL)溶液を、撹拌している0℃のLiAlH4(860mg、22.7mmol)のEt2O(20mL)溶液に滴下して加えた(スキーム5;図8E)。反応混合物を室温にし、3時間維持し、その後、0℃に冷却し、飽和Na2SO4水溶液でクエンチした。得られた懸濁液をセライト床を通して濾過し、フィルターケークをEt2Oで洗浄した。合わせたエーテル濾液を、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させると、さらに精製せずに次段階で使用するのに十分純粋な無色油状物として5−ヘキシン−1−オール(38)(3.02g、91%)が得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ3.67−3.69(m、2H)、2.25(dt、J〜2.4および6.4Hz、2H)、1.96(t、J〜2.4Hz、1H)、1.57−1.72(m、4H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(3:7)、Rf〜0.38。
【0103】
tert−ブチルクロロジフェニルシラン(10.1g、36.97mmol)を、5分間かけて、室温のアルコール38(3.02g、30.81mmol)およびイミダゾール(2.51g、36.97mmol)のCH2Cl2(25mL)溶液に加えた。12時間後、反応混合物を、CH2Cl2(70mL)で希釈し、H2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をSiO2カラム(5%EtOAc/ヘキサン)により精製すると、シリルエーテル39(8.4g、86%)が淡黄色の油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ7.65(dd、J〜1.6および7.6Hz、4H)、7.35−7.42(m、6H)、3.65(t、J〜6.8Hz、2H)、2.19−2.22(m、2H)、1.92−1.94(m、1H)、1.55−1.71(m、4H)、1.10(s、9H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(15:85)、Rf〜0.56。
【0104】
n−BuLi(0.66mLの1.6Mヘキサン溶液、1.05mmol)を、−40℃のシリルエーテル39(320mg、0.96mmol)のTHF(6mL)溶液に滴下して加え、その後、無水HMPA(1.5mL)を添加した。1時間後、1−ブロモ−7−(テトラヒドロピラニルオキシ)ヘプタン(ニーランド(Neeland)等、J.Org.Chem.59:7383−7394、1994)(40)(291mg、1.05mmol)のTHF(2mL)溶液を、ゆっくりと加えた。反応混合物を2時間かけて室温にし、その温度で12時間維持し、その後、飽和NH4Cl水溶液を使用して0℃でクエンチした。混合物を3回Et2Oで抽出し、合わせたエーテル抽出物を、H2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をSiO2カラムクロマトグラフィー(5%EtOAc/ヘキサン)により精製すると、付加物41(310mg、63%)が流動性油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ7.66(dd、J〜1.6および7.6Hz、4H)、7.35−7.42(m、6H)、4.56−4.58(m、1H)、3.83−3.88(m、1H)、3.71−3.75(m、1H)、3.67(t、J〜6Hz、2H)、3.46−3.50(m、1H)、3.34−3.39(m、1H)、2.11−2.16(m、4H)、1.78−1.88(m、2H)、1.42−1.77(m、12H)、1.29−1.41(m、6H)、1.08(s、9H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(15:85)、Rf〜0.70。
【0105】
アセチレン41(2.01g、3.93mmol)とピリジニウムp−トルエンスルホネート(98mg、0.393mmol)の混合物のMeOH(12mL)溶液を室温で12時間撹拌し、その後、真空で濃縮した。残渣をEtOAc/ヘキサン(1:9)を使用してSiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルコール42(1.61g、92%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ7.66(dd、J〜1.6および7.6Hz、4H)、7.35−7.41(m、6H)、3.67(t、J〜6.4Hz、2H)、3.59−3.65(m、2H)、2.11−2.17(m、4H)、1.62−1.68(m、2H)、1.52−1.60(m、4H)、1.41−1.49(m、2H)、1.32−1.39(m、6H)、1.04(s、9H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(2:3)、Rf〜0.33。
【0106】
四臭化炭素(124mg、0.373mmol)、PPh3(98mg、0.373mmol)、およびピリジン(31μl、0.373mmol)を、連続的に、0℃のアルコール42(140mg、0.311mmol)のCH2Cl2(5mL)溶液に加えた。3時間後、全ての揮発性物質を真空で除去し、残渣をSiO2カラムクロマトグラフィー(2%EtOAc/ヘキサン)により精製すると、ブロミド43(148mg、91%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ7.66(dd、J〜1.6および8Hz、4H)、7.35−7.41(m、6H)、3.67(t、J〜6.2Hz、2H)、3.38(t、J〜6.4Hz、2H)、2.11−2.16(m、4H)、1.84(五重線、J〜7.4Hz、2H)、1.62−1.67(m、2H)、1.55−1.61(m、2H)、1.31−1.48(m、8H)、1.04(s、9H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:9)、Rf〜0.58。
【0107】
アルゴン雰囲気下、n−BuLi(0.45mLの1.6Mヘキサン溶液、0.72mmol)を、−40℃の7−(テトラヒドロピラン−2−イルオキシ)−1−ヘプチン(ベストマン・エイチ・ジェイ(Bestmann,H.J.)等、Synthesis 1239−1241、1992)(44)(60mg、0.65mmol)のTHF(8mL)およびHMPA(2mL)溶液に滴下して加えた。1時間後、ブロミド43(376mg、0.72mmol)のTHF(1mL)溶液を導入し、その後、反応混合物を1時間かけて室温まで加温した。周囲温度でさらに16時間後、反応物を、飽和NH4Cl水溶液でクエンチし、Et2O(3×6mL)で抽出した。合わせた有機抽出物を、H2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣を、溶出液として5%EtOAc/ヘキサンを使用して、SiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、ビス−アセチレン45(84mg、61%)が淡黄色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ7.66(dd、J〜1.6および8Hz、4H)、7.35−7.41(m、6H)、4.55−4.57(m、1H)、3.84−3.89(m、1H)、3.70−3.76(m、1H)、3.67(t、J〜6.2Hz、2H)、3.47−3.52(m、1H)、3.35−3.41(m、1H)、2.10−2.17(m、8H)、1.88−1.92(m、1H)、1.41−1.65(m、19H)、1.28−1.40(m、6H)、1.04(s、9H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:9)、Rf〜0.7。
【0108】
水素雰囲気下、NaBH4(32mg、0.8mmol)を、ニッケル(II)アセテートテトラヒドレート(200mg、0.8mmol)のEtOH(600mL)撹拌溶液に滴下して加えた。30分後、45(5.80g、16mmol)のEtOH(50mL)溶液を、続いて、新しく蒸留したエチレンジアミン(4.8g)を加えた。不均一な混合物を室温で水素下(1atm)で3時間維持し、その後、Et2O(600mL)で希釈し、SiO2のパッドを通して濾過した。濾液を真空で濃縮すると、ジエン46(4.40g、84%)が無色油状物として得られ、これは、さらに精製する必要がなかった。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ.66(dd、J〜1.6および8Hz、4H)、7.35−7.41(m、6H)、5.30−5.35(m、4H)、4.55−4.57(m、1H)、3.70−3.76(m、1H)、3.65(t、J〜6.4Hz、2H)、3.47−3.50(m、1H)、3.35−3.40(m、1H)、1.96−2.09(m、8H)、1.80−1.91(m、1H)、1.65−1.79(m、1H)、1.51−1.62(m、8H)、1.21−1.42(m、16H)、1.04(s、9H);TLC:SiO2、EtOAc/ヘキサン(1:9)、Rf〜0.75。
【0109】
46(196mg、0.311mmol)とn−テトラブチルアンモニウムフルオライド(1.55mLの1M THF溶液、1.55mmol)の混合物のTHF(4mL)溶液を、室温で3時間撹拌し、その後、真空で蒸発させて乾燥させた。残渣を、溶出液として10%EtOAc/ヘキサンを使用して、SiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルコール47(102mg、84%)が淡黄色の油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ5.34−5.40(m、4H)、4.56−4.58(m、1H)、3.84−3.89(m、1H)、3.70−3.76(m、1H)、3.62−3.65(m、2H)、3.47−3.52(m、1H)、3.35−3.41(m、1H)、1.96−2.09(m、8H)、1.79−1.90(m、1H)、1.62−1.78(m、1H)、1.51−1.61(m、8H)、1.22−1.43(m、16H);TLC:EtOAc/ヘキサン(3:7)、Rf〜0.52。
【0110】
アルコール47(11.4mg、0.036mmol)およびピリジニウムジクロメート(PDC)(81mg、0.216mml)の乾燥DMF(1.5mL)溶液を、室温で20時間撹拌し、その後、H2O(2mL)で希釈し、EtOAc(3×5mL)で抽出した。合わせた有機抽出物を、H2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、蒸発させた。残渣をEt2O/MeOH(4:1、3mL)に溶解し、過剰のCH2N2に0℃で30分間曝露させた。全ての揮発性物質を真空で除去し、残渣をPTLC[SiO2、EtOAc/ヘキサン(2:3)、Rf〜0.65]により精製すると、エステル48(7mg、62%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ5.35−5.41(m、4H)、4.56−4.58(m、1H)、3.84−3.89(m、1H)、3.70−3.76(m、1H)、3.66(s、3H)、3.47−3.52(m、1H)、3.35−3.41(m、1H)、2.31(t、J〜7.6Hz、2H)、1.94−2.09(m、8H)、1.78−1.90(m、1H)、1.64−1.78(m、1H)、1.45−1.62(m、6H)、1.21−1.42(m、16H)。
【0111】
上記のTHP−エステル48(7mg、0.016mmol)およびPPTS(1mg)の溶液を、MeOH(1mL)中室温で撹拌した。12時間後、溶媒を真空で除去し、残渣をEtOAc(4mL)に溶解し、H2O、食塩水で洗浄し、乾燥し、蒸発させて乾燥させた。残渣をPTLC(SiO2、EtOAc/ヘキサン(2:3)、Rf〜0.42)により精製すると、ヒドロキシ−エステル49(4.3mg、80%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ5.36−5.42(m、4H)、3.67(s、3H)、3.66(t、J〜6.8Hz、2H)、2.31(t、J〜7.2Hz、2H)、1.99−2.08(m、8H)、1.68(五重線、J〜7.2Hz、2H)、1.55−1.61(m、2H)、1.28−1.39(m、15H)。
【0112】
ヒドロキシ−エステル49(11mg、0.034mmol)の加水分解は、室温で一晩、THF/H2O(5:1、2mL)中NaOH(H2O中0.134mLの1M水溶液)を使用して達成された。THFは、真空で除去し、残りの水性混合物は1Mシュウ酸を使用してpH4に酸性化した。得られた濁った懸濁液は、EtOAc(3×5mL)で抽出し、合わせた抽出物は、H2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させた。残渣をPTLC[SiO2:EtOAc/ヘキサン(1:1)、Rf〜0.3]により精製すると、20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸(50)(8mg、78%)が淡黄色の油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、300MHz):δ5.36−5.42(m、4H)、3.66(t、J〜6.8Hz、2H)、2.35(t、J〜7.5Hz、2H)、1.98−2.11(m、8H)、1.69(五重線、J〜7.5Hz、2H)、1.56−1.60(m、2H)、1.28−1.39(m、15H)。
【0113】
20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエン酸(54)の調製:ジエン46(92mg、0.146mmol)とPPTS(10mg)の混合物のMeOH(4mL)溶液を、室温で一晩維持し、真空で濃縮してメタノールを除去し、EtOAc(20mL)で希釈し、H2O、食塩水で洗浄し、Na2SO4で乾燥させ、真空で蒸発させて乾燥させた(スキーム6)。残渣をSiO2カラムクロマトグラフィーにより精製すると、アルコール51(62mg、79%)が無色油状物として得られた。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ7.66(dd、J〜1.6および8Hz、4H)、7.35−7.41(m、6H)、5.36−5.42(m、4H)、3.61−3.67(m、4H)、1.96−2.09(m、8H)、1.55−1.66(m、6H)、1.22−1.41(m、15H)、1.04(s、9H);TLC:EtOAc/ヘキサン(2:3)、Rf〜0.45。
【0114】
アルコール51(62mg)を、47から48への転換(スキーム5)に記載したようにエステル52(65%)に変換した。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ7.66(dd、J〜1.6および8Hz、4H)、7.35−7.41(m、6H)、5.35−5.42(m、4H)、3.66(s、3H)、3.63−3.66(m、2H)、2.31(t、J〜7.6Hz、2H)、1.94−2.06(m、8H)、1.60−1.65(m、2H)、1.55−1.60(m、2H)、1.26−1.48(m、14H)、1.04(s、9H);TLC:EtOAc/ヘキサン(1:1)、Rf〜0.62。
【0115】
シリル−エステル52(28mg)を、46から47への転換(スキーム5;図8E)に記載したように、アルコール53(11mg、80%)に脱シリル化した。1H NMR(CDCl3、400MHz):δ5.35−5.42(m、4H)、3.66(s、3H)、3.62−3.65(m、2H)、2.31(t、J〜7.6Hz、2H)、1.98−2.08(m、8H)、1.51−1.69(m、4H)、1.22−1.49(m、15H);TLC:SiO2:EtOAc/ヘキサン(2:3)、Rf〜0.45。
【0116】
エステル53(10mg)を、49から50への転換(スキーム5;図8E)に記載したように、酸54(8mg、78%)に変換した。1H NMR(CDCl3、300MHz):δ5.30−5.42(m、4H)、3.66(dt、J〜0.9および6.3Hz、2H)、2.35(t、J〜7.2Hz、2H)、1.98−2.09(m、8H)、1.54−1.67(m、4H)、1.24−1.50(m、15H);TLC:EtOAc/ヘキサン(1:1)、Rf〜0.3。
【0117】
20−ヒドロキシエイコサン酸(55)および19−ヒドロキシノナデカン酸(56)の調製:エステル8b(5mg)と10%Pd/C(2mg)の混合物のEtOH/EtOAc(9:1、3mL)溶液を、水素圧(1atm)下で8時間撹拌した。等容積のEt2Oで希釈した後、反応混合物をセライトパッドを通して濾過し、フィルターケークをEt2O(4mL)で洗浄した。合わせた濾液の蒸発により、メチル20−ヒドロキシエイコサノエート(5mg、98%)が無色ゴム状物として得られた。1H NMR(250MHz、CDCl3):(1.20−1.42(m、30H)、1.51−1.68(m、4H)、2.32(t、J〜7.3Hz、2H)、3.65(t、J〜6.6Hz、2H)、3.68(s、3H);TLC:EtOAc/ヘキサン(3:7)、Rf〜0.37。
【0118】
LiOH(45μlの1M水溶液)を、撹拌している室温の、上記のエステル(5.2mg、0.015mmol)のTHF/H2O(5:1、1.5mL)溶液に加えた。10時間後、pHを、1Mシュウ酸を使用して4に調整し、反応混合物をEtOAc(3×4mL)で抽出した。合わせた有機抽出物を真空で蒸発させると、20−ヒドロキシエイコサン酸(55)(4.5mg、92%)が固体(融点86℃)として得られた。1H NMR(250MHz、CD3OD):δ1.20−1.45(m、30H)、1.45−1.63(m、4H)、2.28(t、J〜7.4Hz、2H)、3.55(t、J〜6.5Hz、2H);TLC:EtOAc/ヘキサン(3:7)、Rf〜0.08。19−ヒドロキシノナデカン酸(56)は、エステル8aから類似の方法で調製した。
【0119】
エイコサテトラエン−1,20−二酸:エス・マンナ(S.Manna)等、Tetrahedron Lett.24:33−36、1983に記載のように、20−HETE(9a)から84%収率で調製。
【0120】
統計
平均値±1 SEMを提示する。グループ間およびグループ内での平均値の差異の有意性は、反復測定の分散分析、続いて、ダンカン多重範囲試験を使用して決定した。両側試験を使用してP値が<0.05を、有意であると考えた。
【0121】
結果
20−HETEへの血管収縮神経応答における、ヒドロキシル基の位置の効果
20−HETE誘導体に対する血管収縮神経応答を、図2に提示する。腎小葉間細動脈において、20−HETE(10−8〜10−6M)は、濃度依存的な直径の減少を引き起こした(−4.3±0.8〜−22.5±1.5μm、n=7)(図2A)。血管直径を減少させた20−HETEの閾値濃度は、10nMであった。これに対し、5(S)−、8(S)−、12(S)、15(S)、および19(S)−HETEは、1μMの濃度でさえ、腎小葉間動脈の直径に対して全く有意な効果を及ぼさなかった(図2A)。
【0122】
20−HETEへの血管収縮神経応答における他の構造特徴の重要性
20−HETEへの血管収縮神経応答における、炭素鎖長を変化させることの効果は、図2Bに提示する。21−炭素およびジメチル誘導体は、20−HETEと全く同様に強力な血管収縮剤であった。しかし、20−炭素上にヒドロキシル基がないアラキドン酸、20−HETEの19−炭素類似体および20−カルボキシ−アラキドン酸は、血管直径に対して全く有意な効果を及ぼさなかった。同様に、分子の三次構造を変化させるために二重結合を削除した飽和20−HETE誘導体は、血管直径に対して全く効果を及ぼさなかった(図2B)。これに対し、4個中2個のみ二重結合を除去した部分飽和20−HETE誘導体は、20−HETEと同様に強力な収縮剤であった(図2B)。興味深いことに、部分飽和逆20−HETE類似体における炭素1および20上のヒドロキシル−およびカルボキシ−基の位置を逆転させることにより、アゴニスト活性は消失した(図2B)。
【0123】
20−HETEアンタゴニスト活性の決定基
我々はまた、不活性20−HETE類似体が、20−HETEに対する血管収縮神経応答のアンタゴニストとして貢献し得るかどうかについて研究した。20−HETEに対する用量応答曲線を、浴に0.5〜1mMの異なる類似体を添加する前および後に、単離灌流腎血管で作成した。対照条件下で、20−HETE(10−8〜10−6M)は、用量依存的な内径の減少を引き起こした(−6.4±1.2から−21.8±1.0μm、n=10)(図3A)。5−(n=5)または15−HETE(n=5)を浴に添加することにより、20−HETEに対する血管収縮神経応答は完全に遮断された(図3A)。同様に、19−HETEの添加後、C19−類似体(n=6)または部分飽和逆20−HETE(n=3)を浴に添加すると、20−HETEに対する応答は完全に消失した(図3B)。
【0124】
他の実験では、ヒドロキシル基を、20−HETEの疎水性頭部の近くに移動することの、アンタゴニスト活性に対する効果を調べた。この研究では、20−HETE(10−8〜10−6M)は、対照条件下で、−5.3±0.6から−19.2±1.9μm(n=7)へと血管直径の減少を引き起こした(図4A)。8(S)−または12(S)−HETE(1μM)の添加は、20−HETEへの血管収縮神経応答に対して有意な効果を及ぼさなかった(図4A)。8(S)−HETEの存在下で、20−HETE(10−8〜10−6M)は、依然として、これらの血管直径を、−2.8±0.7から−16.9±0.2μm(n=3)へと減少させた。同様に、12(S)−HETEの存在下で、20−HETE(10−8〜10−6M)は、依然として、血管直径の、−5.5±1.7から−16.2±2.9μm(n=5)への減少を引き起こした(図4A)。
【0125】
ヒドロキシル基のない20−HETE類似体は、20−HETEへの血管収縮神経応答の真の競合的アンタゴニストとして貢献することを示す。例えば、アラキドン酸(1μM)は、期待された通り、1μMの20−HETEに対する血管収縮神経応答を50%減少させた(図4B)。しかし、20−カルボキシ−AAには、有意なアンタゴニスト特性が全くなかった(図4B)。
【0126】
我々は、次に、20−HETEアンタゴニスト活性に対する二重結合の重要性について評価した。これらの実験において、20−HETE(10−8〜10−6M)は、これらの血管の直径を−5.1±0.5から−18.9±0.8μm(n=10)に減少させた(図4B)。飽和19−炭素類似体を浴に添加することにより、20−HETEに対する血管収縮神経応答は約50%減少した(図4B)。同様に、飽和20−HETE誘導体もまた、競合的アンタゴニスト活性を示した(図4B)。この化合物の存在下で、20−HETE(10−8〜10−6M)のみが、血管直径を、−0.9±1.3から−7.0±2.9μm(n=5)へと減少させた(図4B)。
【0127】
我々がアゴニストまたはアンタゴニスト活性を実証した具体的な化合物の例の要約は、図5に提示する。図5から理解されるように、既知のアゴニストおよびアンタゴニスト特性を有する本明細書で記載した全ての化合物が、非極性頭部と20−HETEのようなループ構造を必要とし、また、20−炭素の近くにヒドロキシル基またはいくつかの他の反応基を必要とする。化合物が、二重結合から5〜6炭素に等価な距離にヒドロキシル基または反応基を有する場合、それはアゴニストである。OH基が二重結合から僅か4炭素またはいずれかに位置する場合、それはアンタゴニストである。これらの具体例から、我々は、図6に、アゴニストおよびアンタゴニスト活性に必要とされるより一般的な構造の記載を導いた。また、本明細書で記載したアッセイを使用してアゴニストまたはアンタゴニスト活性を示す、本明細書で提示した情報に基づき予測される、関連した構造の具体例も示す(図7)。
【0128】
議論
本研究で、一連の20−HETE類似体の血管効果を、この化合物に対する血管収縮神経応答の構造決定基を決定するために調べた。我々の結果により、20−炭素上にヒドロキシル基がないことにより、20−HETEとは異なるアラキドン酸は、腎小葉間動脈を収縮しないことが示される。同様に、ヒドロキシル基が他の炭素上に位置する、5−、8−、12−、15−および19−HETEは、血管直径に対して全く効果を及ぼさない。さらに、20−HETEの19−炭素誘導体もまた、血管緊張に対して全く効果を及ぼさなかった。これに対し、21−HETEおよびジメチル20−HETEは、20−HETEと同等に強力な収縮剤である。これらの結果により、20−HETEに対する血管収縮神経応答は、20または21炭素上のヒドロキシル基の存在に決定的に依存していることが示される。
【0129】
我々はまた、血管収縮神経特性に対する20−HETEの三次構造の重要性を調べた。20−HETEおよび他のエイコサノイドの特徴的なループ構造は、分子の二重結合間の相互作用により決定される。それ故、飽和および部分飽和20−HETE類似体に対する血管応答を、天然化合物のものと比較した。我々は、飽和20−HETE類似体は、血管緊張に対して全く効果を及ぼさないが、5、6および14、15−炭素間の二重結合が損なわれていない部分飽和類似体は、血管収縮神経活性を保持することを発見した。これらの知見により、20−HETEのループ構造もまた、その血管収縮神経特性に重要であることが示される。
【0130】
本研究でおそらく最も感極まる知見は、血管収縮神経活性のない20−HETE類似体がアンタゴニストとして貢献できるということであろう。これに関して、アラキドン酸、5−、15−、19−HETEおよび19−HETEおよびC19類似体は全て、20−HETEに対する血管収縮神経応答の非常に効果的なアンタゴニストであった。また、アンタゴニスト活性の予測構造決定基もあった。従って、20−HETEのループ構造の疎水性性質を保持することは、アンタゴニスト活性に重要であることが示される。例えば、分子の頭部近くにヒドロキシル基を有する、12−または8−HETEのような分子は、推定上の20−HETE結合部位と相互作用できず、20−HETEに対する血管収縮神経応答に拮抗しなかった。このことから、11(S)−および7(S)−HETEおよび8、9−および11、12−EETsおよびDiHetesは、20−HETEアンタゴニストとして効果がないことが予測される。
【0131】
我々はまた、20−HETE類似体の二重結合および損なわれていないループ構造は、アンタゴニスト活性の重要な決定基であることを発見した。これに関して、20−HETEの飽和C19−およびC20−類似体は、20−HETEに対する血管収縮神経応答の拮抗において、親化合物ほど効果的ではなかった。アゴニスト活性をもつ類似体についての我々の知見と類似して、我々は、唯一対の二重結合が、アンタゴニスト活性の維持に必要であることを発見した。これに関して、部分飽和逆20−HETE類似体は、20−HETEに対する血管収縮神経応答を完全に遮断した。この化合物は特に興味深い。なぜなら、それは、8、9−および11、12−炭素の二重結合の除去により、シクロオキシゲナーゼおよびリポキシゲナーゼ酵素によるこの化合物の代謝が遮断されるために、他の類似体よりも生物学的により安定であるからである。この化合物の安定性は、β酸化およびエステル化による代謝を遮断する、イオン化可能なスルホンイミド基の添加により増強できる。この基の添加は、近年、インビボ生物学的利用能を増強し、20−HETE、EETs、およびメカニズムに基づく、20−HETE合成阻害剤の生物活性を変化させないと報告されている(イミグ(Imig)等、Hypertension 33(第2部):408−413、1999)。
【0132】
20−HETEの血管収縮神経作用には明確な構造要求があり、密接に関連した不活性類似体は20−HETEアンタゴニストとして貢献するという本知見は、20−HETE受容体の最初の証拠を提供する。しかし、この受容体の性質は、依然として決定されていない。古典的な受容体は、一般に、膜の細胞外表面と結合し、7トランスメンブランドメインファミリータンパク質のメンバーである。20−HETEの、カリウムチャネル活性、血管緊張および成長、並びに腎尿細管におけるナトリウム輸送に対する効果は、PKCおよび/またはMAPキナーゼチロシンキナーゼ活性の活性化に関連している(サン等、上記、1999)。20−HETEは、細胞外受容体に作用するホルモンまたは傍分泌ホルモンではなくむしろ、キナーゼ活性の細胞内脂質アクチベーターとしてDAGのように作用するようである。
【0133】
近年の研究により、20−HETEは、腎血流、尿細管糸球体フィードバック、腎ナトリウム輸送、肺機能、および数多くの血管作用性ホルモンおよび成長因子に対する分裂促進応答および血管収縮神経応答の自己調節に、二次メッセンジャーとして重要な役割を果たすことが示されている(ローマン、上記、1999)。AAのP450代謝物の形成は、遺伝および実験モデルの高血圧症(ステック・デー・イー(Stec,D.E.)等、Hypertension 271:1329−1336、1996;サセルドチ・デー(Sacerdoti,D.)等、Science 243:388−390、1989;ステック・デー・イー等、Hypertension 27:564−568、1996)、糖尿病(イマオカ・エス(Imaoka,S.)等、Biochem.Biophys.Res.Comm.152:680−687、1988)、肝腎症候群(サセルドチ・デー等、J.Clin.Invest.100:1264−1270、1997)および妊娠中毒症で変化する。20−HETEはまた、アンギオテンシンII、エンドセリン、および一酸化窒素シンターゼ阻害剤の血管収縮神経作用、およびPTH、ドーパミン、AII、ブラジキニン、エンドセリン、バソプレッシンおよびTNFの、腎のナトリウム輸送に対する阻害効果に寄与する(ローマン・アール・ジェイ、上記、1999)。腎および肺機能の調節、血管緊張および動脈圧の制御にこの物質は重要な役割を果たしていることから、20−HETEアンタゴニストおよび安定な類似体は、これらの疾患のいくつかの処置における治療効力を有し得るようである。少なくとも、これらの類似体は、研究者に、20−HETEシグナル伝達経路、並びに腎および心血管機能の制御におけるこの物質の役割を調査するための非常に重要で新しいツールを提供する。
【0134】
類似体およびアンタゴニストの使用
シトクロムP450酵素によるアラキドン酸の腎代謝
長年、シクロオキシゲナーゼおよびリポキシゲナーゼ酵素は、アラキドン酸(AA)を代謝し、また、形成された産物は、腎機能と血管緊張の両方に影響を及ぼすことが認識されてきた(マクギフ・ジェイ・シー(McGiff,J.C.)、Ann.Rev.Pharmacol.Toxicol.31:339−369、1991)。しかし、ここ10年で新規なAA代謝経路が出現した。実際、近年の研究により、身体中の小血管、腎の糸球体および尿細管、および肺血管系および気道において、AAは、主に、シトクロムP450酵素により、エポキシエイコサトリエン酸(EETs)、ジヒドロキシエイコサトリエン酸(DiHETEs)および19−および20−ヒドロキシエイコサテトラエン酸(19−および20HETE)に代謝されることが示されている。また現在、これらの代謝物は、血管緊張、腎機能、肺機能の調節に、二次メッセンジャーとして中心的な役割を果たし、また、様々な疾患状態の血管および腎臓に対する、マイトジェンの有害な効果を媒介することが明らかになっている(ハーダー・デー・アール等、J.Vasc.Rev.32:79−92、1995;ラーマン・エム(Rahman,M.)等、Am.J.Hypertens.10:356−365、1997;マクギフ・ジェイ・シー、上記、1991)。
【0135】
シトクロムP450 4Aファミリーの酵素(CYP 4A)は、20−HETEの形成を触媒する。この酵素のファミリーの13個の異なるアイソフォームをコード化するcDNAが、現在、様々な種で同定されている。CYP 4A11およびCYP 4F2は、ヒト腎で発現され、CYP 4F2は、人間の20−HETEの形成に主に関与するアイソフォームであることが示されている(シンプソン・エー・イー・シー・エム(Simpson,A.E.C.M)、Gen.Pharmac.28:351−359、1997)。CYP 4A1、4A2、4A3、および4A8の4個のアイソフォームが、ラット腎からクローン化されている。CYP 4A8を除く全てが、アラキドン酸と共にインキュベートした場合に20−HETEを産生する。CYP 4A2および4A3アイソフォームのメッセージは、身体中の小細動脈、腎の糸球体および尿細管および気道および肺の血管系に発現される。同様に、CYP 4Aタンパク質は、腎および脳動脈、腎および気道および肺の血管系に検出できる(ズー等、上記、1998;ヤコブズ等、上記、1999)。小血管、腎および肺組織は全て、AAとインキュベートした場合に20−HETEを産生する。
【0136】
多くの因子が、シトクロムP450酵素の発現を調節する。CYP 4A1および4A3 mRNAおよびタンパク質は、新生児ラット腎では高度に発現されているが、成体期になりレベルは下降する。これに対し、CYP 4A2タンパク質は、新生児腎では発現されていないが、年齢と共にレベルは増加し、成体ラット腎に発現される主なアイソフォームとなる(オマタ・ケー(Omata,K.)等、Am.J.Physiol.262:F8−F16、1992)。近位尿細管において、アンギオテンシンII(AII)は、EETsの形成を増加させるが、上皮成長因子(EGF)、ドーパミンおよび副甲状腺ホルモン(PTH)は、20−HETEの形成を増加させる(リン・エフ、上記、1995;オミナト・エム(Ominato,M.)、J.Membrane Biol.152:235−243、1996;ラーマン・エム等、上記、1997)。TALHでは、様々なペプチドホルモンが、20−HETEの形成を増加させる(フレーザー・エル・ダブリュー(Frazier,L.W.)およびティー・ヨリオ(T.Yorio)、Proc.Soc.Exp.Biol.Med.201:229−243、1992;マクギフ・ジェイ・シー、上記、1991)。腎および血管系におけるCYP 4Aタンパク質の発現は、高塩分食餌を与えたラットにおいてダウンレギュレートされており、これは、循環AIIレベルが静脈内注入により維持される場合、防ぐことができる。これに対し、高塩分摂取は、腎におけるCYP 2C23の発現およびEETsの形成を増加させる(マキタ・ケー(Makita,K.)等、FASEB J.10:1456−1463、1996)。
【0137】
腎CYP 4A活性は、グルココルチコイド、鉱質コルチコイド、およびプロゲステロンにより増加する。クロフィブラートなどの抗脂血症剤は、肝および腎において、CYP 4A1および3の発現および20−HETEの合成を誘導する(マクギフ・ジェイ・シー、上記、1991;シンプソン・エー・イー・シー・エム、上記、1997)。フェノバルビトール、3−メチルクロロアンテレン、および3,4ベンゾ(ア)ピレンなどの他のP450酵素誘導物質は、腎CYP 4A活性を変化させない(シンプソン・エー・イー・シー・エム、上記、1997)。AII、バソプレッシン、およびエンドセリンなどの様々な重要な心血管ホルモンが、ホスホリパーゼを活性化し、20−HETEの合成および放出を増加させ、20−HETEはこれらのアゴニストに対する血管収縮神経応答に寄与する(シンプソン・エー・イー・シー・エム、上記、1997)。
【0138】
CYP 4A活性は、糖尿病、妊娠中毒症、肝腎症候群、シクロスポリン誘導腎毒性において、および様々なモデルの高血圧症において上昇している(マキタ・ケー等、上記、1996;ラーマン・エム等、上記、1997)。妊娠中毒症、肝腎症候群、シクロスポリン誘導腎毒性および高血圧症は全て、血管での20−HETEの過産生により媒介され得る、強力な腎および末梢血管収縮を特徴とする疾患である。20−HETEの過産生はまた、血管壁の肥大を生じ、管腔を狭窄する成長因子として作用し得る。これにより最終的に、全てこれらの疾患の長期の結果である、心臓発作、卒中または腎不全がもたらされる。これらの観察により、20−HETEの合成阻害剤またはその作用のアンタゴニストは、最終的には死亡率および罹患率の多くを説明する腎および血管機能に対する、これらの疾患の有害な影響を防ぐ上で治療効果を有するであろうことが示唆される。
【0139】
我々は、血圧を下げ、血管の狭窄を防ぐために、毎日の基礎として、経口で活性な長時間作用する20−HETEアンタゴニストで患者を処置することを提唱する。
【0140】
血管緊張調節における20−HETE
身体中の小血管は、CYP 4A2 mRNAおよびタンパク質を発現し、AAと共にインキュベートした場合に20−HETEをよく産生する。20−HETEは、血管平滑筋細胞の強力な収縮剤である(EC50<10−8M)。それは、KCaチャネルの遮断に続き腎VSM細胞を脱分極させることにより、およびL型Ca2+チャネルのコンダクタンスを増加させることにより、Ca2+侵入を促進する(ハーダー・デー・アール等、上記、1995)。20−HETE形成阻害剤は、VSM細胞のKCaチャネルを活性化する。この効果は、nM濃度の20−HETEにより逆転できる。これらの知見により、20−HETEは、通常、身体中の小血管で産生され、ここで、それは、KCaチャネルの活性を調節する細胞内二次メッセンジャーとして貢献することが示される(ゾー・エー・ピー等、上記、1996)。
【0141】
血管緊張調節における20−HETEの役割の要約は、図9に提示する。膜伸展、血管作用性ホルモンおよびマイトジェンは、ホスホリパーゼCを活性化し、続くIP3の上昇により、細胞内Ca2+貯蔵の放出が引き起こされる。しかし、細胞内Ca2+濃度の上昇は、KCaチャネルを活性化し、膜過分極が生じ、電位感受性チャネルを通るCa2+流入は制限される。これは、逆効果であり、血管収縮に対抗する。それ故、細胞内Ca2+貯蔵の放出後にVSMのKCaチャネルの活性化に対して緩衝するいくつかのメカニズムが存在するに違いない。これが、20−HETEが重要な役割を果たしていると考えられる場所である。細胞内Ca2+濃度の上昇により、Ca2+感受性ホスホリパーゼAおよびDAGリパーゼは活性化され、アラキドン酸を放出する。アラキドン酸は、腎VSM細胞のKCaチャネルを遮断する20−HETEに変換され、膜脱分極、Ca2+流入増強、血管収縮神経応答の延長が生じる。このスキームによると、20−HETEは、ホスホリパーゼを活性化し、細胞内カルシウムを放出する、膜伸展および全ての他の血管作用性ホルモンおよび成長因子に対する血管収縮神経応答を調節する、重要な二次メッセンジャーとして貢献する。
【0142】
20−HETEは、インビボおよびインビトロ(in vitro)の両方において、血管緊張の調節にこの役割を果たすという考慮すべき証拠が現在ある。これに関して、アラキドン酸は、単離灌流動脈の、経壁圧上昇に対する筋原性応答を増強させ、20−HETE形成阻害剤は、この応答を完全に遮断する(ハーダー・デー・アール等、上記、1995)。20−HETE形成阻害剤は、インビボで、腎および脳血流の自己調節を遮断する(ゾー・エー・ピー等、上記、1994)。それらはまた、バソプレッシン、アンギオテンシンII、エンドセリンおよびノルエピネフリンに対する血管収縮神経応答を、インビボおよびインビトロの両方で減弱する。
【0143】
20−HETEはまた、腎の尿細管糸球体フィードバック(TGF)応答のメディエータまたはモジュレーターである。この結論は、20−HETEの形成に関与する酵素は、腎の密集斑で発現され(イトウ・オー(Ito,O.)等、Am.J.Physiol.274:F395−F414、1998)、また、20−HETEは、腎導入細動脈の強力な収縮剤である(ゾー・エー・ピー等、上記)という知見に基づく。ヘンレ係蹄を灌流する液体にAAを添加することにより、インビボでのラットのTGF応答が増強され、また、TGF応答は、尿細管灌流液へのP450阻害剤の添加により遮断されるという観察はさらにこの仮説を支持する。さらに、20−HETE含有溶液を用いてヘンレ係蹄を灌流することにより、インビボでのラットにおける化合物の内因性形成の遮断後にTGF応答は回復する。これらの研究により、20−HETEは、TGFのメディエータとして貢献するか、または、密集斑により放出されるいくつかの他のメディエータに対する血管収縮神経応答を伝達するための、導入細動脈のレベルでの二次メッセンジャーとして作用することが示唆される(ゾー・エー・ピー等、上記、1994)。
【0144】
より近年の研究により、20−HETEはまた、血管酸素センサーとして貢献し得、組織への酸素送達の変化に関連した血管緊張の変化を媒介し得ることが示された。この結論は、腎および脳細動脈の20−HETEの産生は、インキュベート培地の酸素張力に決定的に依存しているという我々の知見に基づく(ハーダー・デー・アール等、上記、1996)。この反応のKmは、50トルであり、これは、身体中の組織に見られるPO2の次元である。さらに、近年の我々のグループの研究により、20−HETE形成阻害剤および本明細書で記載したいくつかの20−HETE受容体アンタゴニストは、組織PO2の上昇に対する血管収縮神経応答、および、高血圧症の用量依存的モデルの発達の中心である組織酸素送達の上昇に対する全身自己調節応答を遮断することが示された。これらの知見により、20−HETEアンタゴニストは、塩感受性型の高血圧症の治療に治療価値を有することが示唆される。
【0145】
これに関して、経口活性20−HETEアンタゴニストを用いた患者の処置により、身体中の血管に対する20−HETEの血管収縮神経効果が遮断され、血圧は下がる。それはまた、血管壁に対する20−HETEの成長促進効果も遮断し、よって、心臓発作、卒中および他の腎不全をもたらす、腎、脳および冠動脈の狭窄は軽減する。
【0146】
血管緊張の制御における20−HETE一酸化窒素相互作用
数多くの研究により、NOの緊張性放出は、身体中の血管収縮神経の緩衝に重要な役割を果たしていることが示されている。一般には、NOに対する血管拡張応答は、cGMPの上昇により媒介されると考えられているが、NOが、cGMP非依存性であるK+チャネルおよび血管緊張に対して効果を及ぼすという証拠が増加している。NOは、シトクロムP450 4A酵素のヘムに結合し、腎および脳細動脈の20−HETEの形成を阻害する(サン等、上記、1998;アロンソ−ガリシア・エム等、Am.J.Physiol.275:F370−F378、1998)。また、20−HETE形成阻害は、腎および脳循環の両方においてNOのcGMP非依存性効果を媒介するという証拠がある。これに関して、NOは、VSM細胞のKCaチャネルを活性化し、小血管を拡張させる。しかし、これらの効果は、グアニリルシクラーゼまたはPKGの阻害剤により遮断できないので、cGMP非依存性である(サン・シー・ダブリュー等、上記、1998)。K+チャネルおよび血管緊張に対するNOの効果は、浴に外因性20−HETEを添加することにより、NO誘導20−HETEレベル下降を防ぐことにより完全に遮断できる(サン・シー・ダブリュー等、上記、1998)。これらの知見により、NOは、20−HETEの形成を阻害し、これは、腎VSM細胞のKCaチャネルを活性化することにより、NOに対する血管拡張応答のcGMP非依存性成分を媒介することが示される(アロンソ−ガリシア・エム等、上記、1998;サン・シー・ダブリュー、Circ.Res.83:1−11、1998)。
【0147】
他の研究において、20−HETE形成阻害剤は、腎および脳循環において一酸化窒素に対する血管拡張応答および無傷動物の血圧の下降を遮断することが判明した(アロンソ−ガリシア・エム等、上記、1997)。それらはまた、敗血症ショックモデルの一酸化窒素シンターゼの誘導に関連した血圧下降および脳血流充血を防ぐ。これらの知見により、20−HETE受容体アンタゴニストは、一酸化窒素シンターゼの誘導に関連した敗血症ショックおよび他の炎症疾患モデルの治療に治療効果を有することが示される。
【0148】
これに関して、一酸化窒素は、ショックで過産生され、血圧を器官機能を維持できないレベルにまで下げることが知られている。20−HETEアンタゴニストは、NOの作用を遮断するので、20−HETEアンタゴニストの静脈内投与で敗血症ショック患者を処置することにより、一酸化窒素の影響は軽減し、正常な血圧および心臓、腎臓および脳の灌流が回復する。この処置は、おそらく、毒性剤または感染が消失するまでの短期(1−3日間)である。
【0149】
一酸化窒素シンターゼ阻害剤ではなくむしろ20−HETEアンタゴニストを使用する利点は、該アンタゴニストが、効果部位で一酸化窒素の作用を遮断することであり、よって、すでに患者がショックとなった後に使用できる。さらに、一酸化窒素シンターゼ阻害剤とは異なり、20−HETEアンタゴニストは、基線組織血流を下げない。実際、NOシンターゼ阻害剤により生じる著名な血管収縮神経は、著名な虚血性終末器官傷害を生じ、ショックの治療にこれらの薬剤を使用できない。
【0150】
腎臓機能の調節におけるP450エイコサノイド
腎臓の様々なネフロン区域のナトリウム輸送の調節における、二次メッセンジャーとしてのAAのP450代謝物の役割はまた、近年、動的な新しい分野として出現した。近位尿細管のナトリウム再吸収に対するこれらの化合物の効果の要約は、ローマン等、上記、1999に提示される。いくつかの研究所により、20−HETEは、近位尿細管により産生されるAAの一次代謝物であり、20−HETEは、Na−K−ATPアーゼのαサブユニットのPKC誘導リン酸化を増強することにより、このネフロン区域のNa−K−ATPアーゼ活性を阻害することが報告されている(アペリア・エー(Aperia,A.)等、Adv.Pharmacol.42:870−876、1998;オミナト・エム等、上記、1996)。
【0151】
続く研究により、ドーパミンおよびPTHの、近位尿細管のNa−K−ATPアーゼ活性およびナトリウム輸送に対する阻害効果は、PLA2の活性化および20−HETEの形成増強に関与することが示された。また、P450阻害剤は、近位尿細管再吸収に対するAIIの阻害効果を遮断できるという証拠がある。この効果は、5、6EETの増強された形成と関連し、これは、近位尿細管細胞の頂端膜へのNH3、Na+−H+交換体の転位に影響を及ぼす(ラーマン・エム等、上記、1997)。
【0152】
20−HETEはまた、TALHのクロライド輸送の調節に主な役割を果たす。エスカランテ(Escalante)およびマギフ(マギフ・ジェイ・シー、上記、1991)は、初めて、20−HETEは、TALH細胞で産生されるAAの主要な代謝物であり、それは、このネフロン区域でNa+−H+−2Cl−共輸送を阻害することを報告した。その後のパッチクランプ研究により、20−HETEは、TALH細胞の頂端膜の70−pS K+チャネルを遮断することが判明した(ワング(Wang)等、J.Gen.Physiol.106:727−743、1995)。このチャネルの遮断は、Na+−H+−2Cl−輸送体を介した輸送におけるK+利用能を制限し、TALHにおけるカチオン(Na+、K+、Ca2+およびMg2+)の受動再吸収の主な駆動力として貢献する管腔の正の経上皮電位を減少させる。この見解と一致して、インビトロで灌流した単離TALHの経上皮電位およびクロライド輸送を、P450阻害剤は、増加させ、20−HETEは減少させる。より近年の研究により、P450阻害剤がまた、AII、ブラジキニン、エンドセリン、バソプレッシンおよびTALHのナトリウム輸送に対する細胞内Ca2+濃度上昇の阻害効果を遮断することが示されている。腎でのナトリウム輸送調節における20−HETEの重要性から、安定な20−HETE類似体は利尿剤であり、従って、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群および高血圧症などのナトリウム保持状態の治療に治療効果があるようである。
【0153】
水腫および細胞外容量増大を特徴とするこれらのナトリウム保持状態では、経口活性で安定な20−HETE類似体の投与により、20−HETEは通常、近位尿細管およびTALHでのナトリウム輸送を阻害するため、腎で蓄積され、ナトリウムおよび水の尿細管再吸収を阻害することが期待される。このプロセスは、最初の炭素上へのグルクロニド基の添加により薬物の尿への排泄を促進するために、カルボン酸基上に基を添加することにより促進され得る。尿細管再吸収阻害は、ナトリウム排泄を増加させ、血液および細胞外容量を減少させ、これらの状態の水腫の重度を減少させる。
【0154】
高血圧症の病理発生における20−HETEの役割
いくつかの観察により、20−HETEの腎形成の変化が、遺伝および実験モデルの高血圧症の発達に役割を果たすことが示唆される。これに関して、P4504A2遺伝子は、自然発症高血圧症ラット(SHR)の腎で選択的に過剰発現され(サデロチ・デー(Saderoti,D.)等、上記、1989;ステック・デー等、上記、1996)、これは、腎における20−HETEの産生と関連し、増強させる。20−HETE産生阻害剤の投与は、SHRの動脈圧を下げ、高血圧症の発達を防ぐことができる(サデロチ・デー等、上記、1989)。20−HETEは、強力な血管収縮剤であるので(ハーダー・デー・アール等、上記、1995;ゾー・エー・ピー等、上記、1996)、20−HETEは、腎血管抵抗およびTGF応答を上昇させることにより、SHRの圧力ナトリウム利尿関係の再設定に寄与し得る(ローマン・アール・ジェイ、Am.J.Hypertension、3:893−900、1990)。20−HETE形成阻害剤はSHRの上昇した腎血管緊張を逆転するという知見は、この仮説を支持する(イミグ・ジェイ等、Am.J.Physiol.266:H1879−H1885、1994)。より近年に、我々はまた、P4504A遺伝型が、この集合において、基線平均動脈圧と同時分離するかどうかを決定するために、遺伝連鎖分析を完了した(スティー・デー・エフ(Stee,D.F.)等、上記、1996)。しかし、高い塩分摂取に曝露させたF2ラットのP4504A遺伝型と動脈圧の変化の間に、有意な連鎖が検出された。これらの研究により、20−HETEは、SHRの腎および末梢血管緊張の上昇に寄与し、P4504A遺伝子型は、このモデルの塩感受性決定基を現すことが示される。これらの研究により、20−HETEアンタゴニストは、抗高血圧症作用を有し、このモデルの高血圧症に関連した虚血糸球体損傷のいくつかを防ぐことを助けることが示唆される。
【0155】
ダール塩感受性(S)ラットは、正常圧ラットと同じ量のナトリウムおよび水を排泄するために、高い腎灌流圧を必要とし(ローマン・アール・ジェイ等、Am.J.Hypertension、1997)、これは、主に、厚いヘンレ係蹄上行脚のCl−輸送の上昇に起因する(イトウ等、Hypertension 33(第2部):419−423、1999)。P4504Aファミリーの酵素によるAAの腎代謝における異常性は、ダールSラットにおけるループCl−輸送の増加および高血圧症の発達に寄与し得ることが示唆される5系統の証拠が現在ある。これに関して、20−HETEの形成およびP4504Aタンパク質レベルは、ダールSラットのヘンレ係蹄で減少している(ステック・デー・イー等、上記、1996)。外因性20−HETEの投与は、ループCl−輸送を規格化する(ローマン・アール・ジェイ等、上記、1997)。P4504A2遺伝子の遺伝マーカーは、ダールSラットの高血圧症の発達と同時分離し、クロフィブラートを用いた20−HETE腎産生の誘導により、ダールSラットの高血圧症の発達が防がれ(ステック・デー・イー等、上記、1996)、20−HETE腎形成の阻害は、高塩分食餌を投与した正常圧ラット株の高血圧症を引き起こす(ステック・デー・イー等、Hypertension、29:315−320、1997)。
【0156】
これらの結果は、P4504A2遺伝子座を、ダールSラットにおける腎機能の変化および高血圧症の発達に寄与する候補遺伝子として関係づけ、20−HETEアゴニストを用いた補充療法は、塩感受性高血圧症に治療効果を有することを示唆する。これに関して、安定な経口活性20−HETEアゴニストの経口投与により、ナトリウムの尿細管再吸収は阻害され、ナトリウム排泄は増加し、血液量および血圧は下降する。
【0157】
また、20−HETEは、実験モデル高血圧症に関連した血管緊張上昇および終末器官傷害に寄与するという証拠がある。これに関して、20−HETE形成遮断により、アンギオテンシンIIの慢性投与、エンドセリンおよび一酸化窒素シンターゼ遮断により生じる動脈圧の上昇は減弱する。(ローマン等、上記、1999)。また、20−HETE形成の遮断により、鉱質コルチコイド高血圧症の発達は減弱し、このモデルの高血圧症に関連した腎傷害および心肥大も防がれる。オエカン・エー・デー等、Am.J.Physiol.276:R000−R000、1999(印刷中)。これらの研究により、20−HETE受容体アンタゴニストが、高血圧剤としての効力を有し、様々なモデルの高血圧症における腎および心末端器官傷害の防止において有益な効果を提供し得ることが示唆される。
【0158】
肺機能の調節における20−HETEの役割
ウサギおよびヒトの肺において、20−HETEの効果は、末梢血管系で見られるものとは反対である。ヤコブ・イー・エー等、上記、1999は、近年、ヒト、ウサギ、およびイヌ肺動脈および気管支環は全て、アラキドン酸とインキュベートした場合に20−HETEをよく産生することを報告している。20−HETEは、肺動脈および細気管支環の強力な拡張剤である。20−HETEに対する血管拡張応答は、無傷内皮に依存し、シクロオキシゲナーゼ依存性である。20−HETEは、肺組織から血管拡張性シクロオキシゲナーゼ産物の放出を刺激するか、または、20−HETE自身が、シクロオキシゲナーゼを介して、拡張性産物に代謝される。これらの研究により、20−HETEおよび20−HETEアゴニストは、肺性高血圧症患者の肺血管系の拡張に有用であることが示される。
【0159】
ヒト細気管支組織において、20−HETEアゴニストは、強力な気管支拡張剤である。ヤコブ・イー・エー等、上記、1999。ナノモル濃度のこれらのアゴニストにより、喘息の標準的な臨床試験である、カルバコールにより産生される細気管支緊張の上昇は完全に遮断される。これらの研究により、安定な20−HETEアゴニストは、喘息の治療の吸入気管支拡張剤として有用であることが示される。それらは、喘息吸入器に使用する他の薬剤(β−アゴニスト、ステロイド)の気管支拡張効果に耐性のある患者に特に有用であり得る。
【0160】
20−HETEの分裂促進作用
血管緊張および腎ナトリウム輸送の調節以外に、20−HETEが、腎および血管組織の両方において、血管作用性剤および成長因子の分裂促進作用を媒介する証拠が増加している。これに関して、EETsおよび20−HETEは、様々な細胞型においてチミジン取込みを増加させる。P450阻害剤は、培養糸球体メサンギアム細胞において、血清、バソプレッシン、EGFおよびホルボールエステルに対する成長応答を減弱させる。20−HETE(10−9M)は、培養したLLC−PK1およびOK細胞の成長を促進し、P450阻害剤は、これらの細胞におけるEGFの分裂促進作用を遮断する(リン・エフ等、上記、1995)。最後に、20−HETEは、MAPキナーゼシグナルトランスダクションカスケードを活性化し、20−HETE産生の上昇は、培養大動脈VSM細胞におけるEGFの分裂促進効果を媒介する。(ウディン等、上記、1998)。これらの観察により、20−HETEは、メサンギアム細胞の増殖、および高血圧症、糖尿病および免疫損傷に関連した糸球体硬化症の発達に重要な役割を果たし得ることが示唆される。これに関して、20−HETEアンタゴニストは、糖尿病、高血圧症、シクロスポリン腎毒性および様々な腎炎症性疾患に関連した卒中、心疾患および腎傷害の発症を増加させる血管の狭窄を防ぐ治療効力を有する。さらに、20−HETEは、腫瘍形成に関与する様々な成長因子の分裂促進作用および血管形成作用を媒介するので、20−HETEアンタゴニストは、新生物組織の血管新生およびまたは成長を防ぐことにより、抗癌剤として有用であるようである。
【0161】
我々は、患者に、血管成長および肥大を制限し、心臓、腎臓および脳における虚血器官傷害(心臓発作、卒中および腎疾患)を防ぐ、経口活性で安定な20−HETEアンタゴニストを投与することを考える。癌療法において、20−HETE経路の遮断により、腫瘍への血管成長は制限され得る。
【0162】
要約
腎機能および血管緊張の調節におけるAAのP450代謝物の役割は、急速に拡張している分野であるが、いくつかの一般的な概念はすでに出現している。第一に、VSM細胞は20−HETEを産生し、この物質は、筋原性応答、TGF、血管肥大、K+チャネル活性の調節による血管収縮剤および拡張剤に対する血管応答において重要な役割を果たす二次メッセンジャーとして貢献する。第二に、AAのP450代謝物は、近位尿細管およびTALHにおいてよく産生され、ナトリウム輸送調節の二次メッセンジャーとして貢献する。最後に、AAのP450代謝物の腎形成は、高血圧症、糖尿病、肝腎症候群および妊娠において変化する。腎および血管機能の調節および様々なマイトジェンの成長促進効果の媒介におけるこの経路の重要性から、AAのP450代謝物は、これらの疾患に関連した腎機能の変化および血管緊張に寄与するようである。また、20−HETE受容体アンタゴニストは、敗血症ショック、高血圧症、糖尿病、喘息、糸球体疾患および癌などの様々な状態の治療に広範な治療効力を有するようである。
【図面の簡単な説明】
【図1】 図1は、本明細書で記載した様々な20−HETE類似体のいくつかの一連の構造である。
【図2A】 図2AおよびBは、単離腎小葉間動脈の直径に対する、様々な20−HETE類似体の効果を比較したグラフである。
【図2B】 図2AおよびBは、単離腎小葉間動脈の直径に対する、様々な20−HETE類似体の効果を比較したグラフである。
【図3A】 図3AおよびBは、単離腎小葉間動脈における20−HETEへの血管収縮神経応答に対する、様々な類似体のアンタゴニスト活性のグラフである。
【図3B】 図3AおよびBは、単離腎小葉間動脈における20−HETEへの血管収縮神経応答に対する、様々な類似体のアンタゴニスト活性のグラフである。
【図4A】 図4AおよびBは、単離腎小葉間動脈における20−HETEへの血管収縮神経応答に対する、他の類似体のアンタゴニスト活性のグラフである。
【図4B】 図4AおよびBは、単離腎小葉間動脈における20−HETEへの血管収縮神経応答に対する、他の類似体のアンタゴニスト活性のグラフである。
【図5】 図5は、本明細書で記載した具体的な20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの構造の模式図である。
【図6】 図6は、一般的な20−HETEアゴニスト/アンタゴニストの図であり、アゴニストおよびアンタゴニストの合成スキームを提供する。
【図7A】 図7A、Bは、一連の適切な化合物の例である。
【図7B】 図7A、Bは、一連の適切な化合物の例である。
【図8A】 図8A、B、C、D、EおよびFは、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図8B】 図8A、B、C、D、EおよびFは、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図8C】 図8A、B、C、D、EおよびFは、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図8D】 図8A、B、C、D、EおよびFは、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図8E】 図8A、B、C、D、EおよびFは、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図8F】 図8A、B、C、D、EおよびFは、20−HETEアゴニストおよびアンタゴニストの一連の合成スキームである。
【図9】 図9は、血管における20−HETEの作用を記載したスキームである。
【図10】 図10は、腎近位尿細管における20−HETEの作用を記載したスキームである。
【図11】 図11は、腎の厚い上行ヘンレ係蹄における20−HETEの作用を記載したスキームである。
Claims (13)
- 有効量の20−HETEアゴニストを含む、血管直径を減少させる薬学的製剤であって、前記20−HETEアゴニストが、[1]21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、[2]20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸、及び[3]20,20−ジメチル−20−ヒドロキシエイコサテトラエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、血管直径を減少させる薬学的製剤。
- 利尿効果を引き起こすに十分な量の20−HETEアゴニストを含む、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群または高血圧症の治療のための薬学的製剤であって、前記20−HETEアゴニストが、[1]21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、[2]20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸、及び[3]20,20−ジメチル−20−ヒドロキシエイコサテトラエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、鬱血性心不全、肺水腫、肝腎症候群または高血圧症の治療のための薬学的製剤。
- 疾患症状を軽減させるために、ナトリウム排泄を促進するに十分な量の20−HETEアゴニストを含む、塩感受性型の高血圧症の治療のための薬学的製剤であって、前記20−HETEアゴニストが、[1]21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、[2]20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸、及び[3]20,20−ジメチル−20−ヒドロキシエイコサテトラエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、塩感受性型の高血圧症の治療のための薬学的製剤。
- 疾患症状を軽減させるに十分な量の20−HETEアゴニストを含む、喘息の治療のための薬学的製剤であって、前記20−HETEアゴニストが、[1]21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、[2]20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸、又は[3]20,20−ジメチル−20−ヒドロキシエイコサテトラエン酸である、喘息の治療のための薬学的製剤。
- 前記製剤が喘息に適用され、前記化合物が吸入療法として送達される、請求項4の薬学的製剤。
- 20−HETEアゴニストを含み、20−HETEアゴニストを注入して肺性循環を拡張する、肺性高血圧症の症状を軽減するための薬学的製剤であって、前記20−HETEアゴニストが、[1]21−ヒドロキシヘンエイコサ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、[2]20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸、及び[3]20,20−ジメチル−20−ヒドロキシエイコサテトラエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、肺性高血圧症の症状を軽減するための薬学的製剤。
- 前記化合物が20−ヒドロキシエイコサ−5(Z),14(Z)−ジエン酸であり、かつ薬学的に許容される担体を含む、請求項1〜6のいずれか1項に記載の薬学的製剤。
- 有効量の20−HETEアンタゴニストを含む、20−HETEが血管直径を減少させるのを防ぐ薬学的製剤であって、前記20−HETEアンタゴニストが、[1]5(S)−HETE、[2]15(S)−HETE、[3]19(S)−HETE、[4]19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、及び[5]20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、20−HETEが血管直径を減少させるのを防ぐ薬学的製剤。
- 血管における過度の20−HETE形成の血管収縮神経作用を遮断するに十分な量の20−HETEアンタゴニストを含む、高血圧症、糖尿病、妊娠中毒症、肝腎症候群、脳血管痙攣またはシクロスポリン誘導腎毒性の治療のための薬学的製剤であって、前記20−HETEアンタゴニストが、[1]5(S)−HETE、[2]15( S)−HETE、[3]19(S)−HETE、[4]19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、及び[5]20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、高血圧症、糖尿病、妊娠中毒症、肝腎症候群、脳血管痙攣またはシクロスポリン誘導腎毒性の治療のための薬学的製剤。
- 疾患症状を軽減させるに十分な量の20−HETEアンタゴニストを含む、敗血症ショックの治療のための薬学的製剤であって、前記20−HETEアンタゴニストが、[1]5(S)−HETE、[2]15(S)−HETE、[3]19(S)−HETE、[4]19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、及び[5]20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、敗血症ショックの治療のための薬学的製剤。
- 疾患の症状を軽減させるに十分な量の20−HETEアンタゴニストを含む、新生物組織の成長または血管新生を防ぐための薬学的製剤であって、前記20−HETEアンタゴニストが、[1]5(S)−HETE、[2]15(S)−HETE、[3]19(S)−HETE、[4]19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、及び[5]20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、新生物組織の成長または血管新生を防ぐための薬学的製剤。
- 血流を増加させ、かつ症状を軽減するに有効な量の20−HETEアンタゴニストを含む、脳血管損傷、血管痙攣、片頭痛または群発性頭痛、卒中またはコカイン誘導血管痙攣の治療のための薬学的製剤であって、前記20−HETEアンタゴニストが、[1]5(S)−HETE、[2]15(S)−HETE、[3]19(S)−HETE、[4]19−ヒドロキシノナデカ−5(Z),8(Z),11(Z),14(Z)−テトラエン酸、及び[5]20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエン酸からなる群から選択される少なくとも1つの化合物である、脳血管損傷、血管痙攣、片頭痛または群発性頭痛、卒中またはコカイン誘導血管痙攣の治療のための薬学的製剤。
- 前記化合物が20−ヒドロキシエイコサ−6(Z),15(Z)−ジエン酸であり、かつ薬学的に許容される担体を含む、請求項8〜12のいずれか1項に記載の薬学的製剤。
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