JP3714940B2

JP3714940B2 - Ｒｎａ抽出方法、および生体材料の分析方法

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Publication number: JP3714940B2
Application number: JP2003378516A
Authority: JP
Inventors: 善寛山下; 智也桜井; 範人久野; 憲孝内田; 敏昭横林
Original assignee: Hitachi High Technologies Corp
Current assignee: Hitachi High Tech Corp
Priority date: 2003-11-07
Filing date: 2003-11-07
Publication date: 2005-11-09
Anticipated expiration: 2023-11-07
Also published as: US20090111114A1; US20050123965A1; EP1529841A1; DE602004009022T2; DE602004009022D1; EP1529841B1; JP2005137295A; CN100537590C; CN1637012A

Description

本発明はＲＮＡを含有する生物材料からのＲＮＡ抽出や、ＲＮＡを含有する生物材料の分析方法に関する。

ＤＮＡは生物の全遺伝子情報を担う物質である一方、ＲＮＡはＤＮＡの遺伝子情報を基に生体内のタンパク質合成に関わる重要な役割を担う物質である。近年、ＤＮＡの解析により多数の生物種の遺伝子配列情報が明らかになった。これに次いで、ＲＮＡの解析による遺伝子機能解明の重要性が増しており、生物材料からＲＮＡを単離する操作が不可欠となっている。ＲＮＡの解析方法としては、主に逆転写ポリメラーゼチェインリアクション（ＲＴ−ＰＣＲ）、ノーザンブロット等がある。

これらの解析法において良好な解析結果を得る為には、高純度なＲＮＡを用いることが要求される。特にＲＴ−ＰＣＲにおいては、ＲＮＡがＤＮＡと混在する場合、ＲＮＡの解析が困難となる。従って、生物材料からのＲＮＡ抽出においては、細胞に混在するＤＮＡ、タンパク質、脂質、糖、などからＲＮＡが高い精製度で単離されることが望まれる。

一般的なＲＮＡ抽出方法として、ＡＧＰＣ法がある。ＡＧＰＣ法は、（1）生物材料をチオシアン酸グアニジン溶液により溶解し、酸性緩衝溶液、フェノール溶液、クロロホルム溶液を順次添加、混合し、（2）遠心分離によりＲＮＡを含む水相と、変性タンパク質と不溶化ＤＮＡを含む有機溶媒相と水相の中間層に分離し、（3）ＲＮＡを含む水相にエタノールあるいはイソプロパノールを添加して（4）不溶化したＲＮＡを遠心分離により選択的に沈殿させる。

フェノール、クロロホルム等の劇毒物を使用せず、エタノール沈殿あるいはイソプロパノール沈殿などの比較的長時間を要する操作を必要としない核酸抽出方法として、カオトロピック剤の存在下で核酸がシリカに結合する性質を利用して、アガロースゲルから核酸を回収する方法、また、カオトロピック剤とシリカ粒子を用いて生物材料から核酸を抽出する方法がある。しかし、これらの方法は、ＲＮＡとＤＮＡの選択性を持たず、抽出核酸はＲＮＡとＤＮＡの混合物となる。従って、ＲＮＡ解析のために、抽出核酸に含まれるＤＮＡを除去する操作が必要となる場合がある。ＤＮＡ除去は主にＤＮＡ分解酵素処理により行われ、次いで、必要に応じて酵素除去操作を行う。ＤＮＡ除去操作にはＤＮＡ分解酵素により、一般的に1時間程度の処理時間を要する。また、酵素除去には主にフェノール・クロロホルム抽出、エタノール沈殿、などの煩雑な操作が要求され、ＲＮＡの損失も生じる。

カオトロピック剤と有機溶媒の存在下でＲＮＡがシリカに結合する性質を利用し、ＲＮＡを選択的に抽出する方法がある（下記特許文献１）。この方法は、カオトロピック剤にエタノール、イソプロパノール等の極性有機溶媒を添加することで、ＤＮＡ／ＲＮＡとシリカの結合特性の差異を制御し、ＲＮＡを選択的にシリカへ結合させる。しかし、この方法においてもＲＮＡの選択性は不十分であり、抽出核酸に混入するＤＮＡの除去操作を必要とする。
特開２００２−１８７８９７号公報

本発明は、ＲＮＡを含有する生物材料から、安全、迅速、簡便な操作により高純度なＲＮＡを選択的に抽出し、分析する方法を提供することを目的とする。

発明者らは、所定濃度のカオトロピック剤と所定濃度の有機溶媒の存在下において、ＲＮＡが極めて高い選択性でシリカに結合することを見出し、本発明であるＲＮＡ選択的抽出・分析方法の確立に至った。

本発明では、遊離状態のＲＮＡを含有する生物材料に、所定濃度のカオトロピック剤と所定濃度の有機溶媒を混合し、混合液に核酸結合性固相を接触させ、ＲＮＡが結合した核酸結合性固相を洗浄し、ＲＮＡが結合した核酸結合性固相からＲＮＡを溶離することに関する。また、得られたＲＮＡを逆転写ポリメラーゼチェインリアクション（ＲＴ−ＰＣＲ）で分析することに関する。

本発明により、極めて高純度にＲＮＡを抽出できる。また、抽出産物がＤＮＡをほとんど含まない為、ＲＮＡを損なう虞のあるＤＮＡ除去操作しなくとも、ＤＮＡに敏感なＲＮＡ分析方法であるＲＴ−ＰＣＲ等を行うことができ、生体試料を高精度に分析できる。

以下、上記及びその他の本発明の新規な特徴と効果について、図面を参酌して説明する。尚、図面はもっぱら説明のために用い、権利範囲を限定するものでは無い。

ＲＮＡを含有する生物材料としては、全血、血清、喀痰、尿等、生体組織、培養細胞、培養細菌、等の生物試料、あるいは、素精製状態のＲＮＡを含む物質等を対象とすることができる。

生物材料の溶解は、乳鉢、超音波、マイクロウエーブ、ホモジナイザーなどによる物理的な方法、あるいは、界面活性剤、タンパク質変性剤などによる化学的な方法、あるいは、タンパク質分解酵素による生化学的な方法、及び、それらを組み合わせた方法により行われる。

カオトロピック剤としては、ヨウ化ナトリウム、ヨウ化カリウム、チオシアン酸ナトリウム、チオシアン酸グアニジン、塩酸グアニジン、などが好ましく例示される。
また、有機溶媒としては、脂肪族エーテル、脂肪族エステル、脂肪族ケトンの中から選ばれた２から１０個の炭素数を有する化合物の１種または２種以上の組み合わせが使用可能である。

脂肪族エーテルとして、好ましくは、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル、プロピオングリコールジメチルエーテル、プロピオングリコールジエチルエーテル、ジエチレングリコールジメチルエーテル、ジエチレングリコールジエチルエーテル、テトラヒドロフラン、及び1.4-ジオキサンが使用される。

脂肪族エステルとして、好ましくは、プロピレングリコールモノメチルエーテルアセテート、乳酸エチルが使用される。
脂肪族ケトンとして、好ましくは、アセトン、ヒドロキシアセトン、メチルケトンが使用される。

本発明のＲＮＡ選択的抽出方法はシリカとＲＮＡの選択的結合効果に基づくものであり、この効果は所定濃度のカオトロピック剤と所定濃度の有機溶媒の存在下で得られる。

カオトロピック剤としてチオシアン酸グアニジン、有機溶媒としてジエチレングリコールジメチルエーテルを用いた場合、混合液におけるチオシアン酸グアニジン濃度1.0〜4.0mol/l、ジエチレングリコールジメチルエーテル濃度10〜30％において、高純度のＲＮＡが良好な回収率で得られる。特に、混合液におけるチオシアン酸グアニジン濃度を1.5〜2.0mol/l、ジエチレングリコールジメチルエーテル濃度を15〜25％においては、極めて高純度のＲＮＡが高回収率で得られる。

また、カオトロピック剤としてチオシアン酸グアニジン、有機溶媒として乳酸エチルを用いた場合、混合液におけるチオシアン酸グアニジン濃度1.0〜4.0mol/l、乳酸エチル濃度20〜40％において高純度のＲＮＡが良好な回収率で得られる。特に、混合液におけるチオシアン酸グニジン濃度1.5〜2.5mol/l、乳酸エチル濃度25〜35％において、極めて高純度のＲＮＡが高回収率で得られる。

核酸結合性固相としては、ガラス粒子、シリカ粒子、ガラス繊維濾紙、シリカウール、あるいは、それら破砕物、ケイソウ土など、酸化ケイ素を含有する物質が好ましく例示される。

混合液と核酸結合性固相の接触は、固相と混合液を容器内で攪拌、混合する方法、あるいは、固相を固定化したカラムなどに混合液を通過させる方法により行う。固相と混合液を接触させた後、固相と混合液を分離する。

核酸が結合した核酸結合性固相の洗浄は、例えば、固相に洗浄液を接触させた後、固相から洗浄液を分離することで行う。洗浄液としては、固相に結合した核酸を溶離せず、且つ、非特異的結合物の除去を効率的に行うために、少なくとも75%濃度のエタノールの使用が好ましい。

核酸を核酸結合性固相から溶離する手段は、固相に溶離液を接触させ、固相に結合した核酸を溶離液へ溶出させた後、固相から溶離液を分離することで行う。溶離液としては、ＲＮＡ分解酵素除去、あるいはＲＮＡ分解酵素失活化処理を行った水や低塩濃度緩衝液などを用いる。また、溶離を加温下で行うことにより、溶離効率は向上する。
核酸を溶出させた溶離液は、直ちに逆転写ポリメラーゼチェインリアクションに用いることもできる。

本実施例では、カオトロピック剤としてチオシアン酸グアニジン、有機溶媒としてジエチレングリコールジメチルエーテルを用いた培養細胞からのＲＮＡ抽出を行う。

＜ＲＮＡの抽出＞
第１工程として、マウスMyeloma(大日本製薬社製Sp/0-Ag14)培養細胞（１０^６個程度）のペレットに、細胞溶解液（チオシアン酸グアニジン4mol/l、10mmol/l MES-KOH、pH6.5）600μｌを添加し、ホモジナイザー（マイクロテック・ニチオン社製 HANDY MICRO HOMOGENIZER）により細胞を破砕し、細胞内の核酸を遊離状態とした。

第２工程として、遊離状態の核酸を含む細胞溶解液に、極性有機溶媒としてジエチレングリコールジメチルエーテル水溶液（２０、４０、６０、８０、１００容量％）600μｌを添加する。この時、混合液におけるチオシアン酸グアニジン濃度は2mol/l、ジエチレングリコールジメチルエーテル濃度は、10、20、30、40、50容量%となる。

第３工程として、図１に示すような、ポリプロピレン製チップ先端部に核酸結合性固相としてシリカウール（東芝ケミカル社製 Bグレード）５mgを充填した核酸捕捉用チップにシリンジ（テルモ社製２５mlシリンジ）を装着し、遊離状態の核酸、細胞溶解液、ジエチレングリコールジメチルエーテルを含む溶液を吸引、排出することで、核酸と固相を接触させ、分離する。

第４工程として、核酸捕捉用チップにより、洗浄液（８０容量％エタノール水溶液）1200μｌを吸引、排出することで、固相と洗浄液を接触させ、分離し、固相の非特異的結合物を除去する。

第５工程として、核酸捕捉用チップにより、溶離液（DEPC処理水）1００μｌを吸引、排出することで、固相と溶離液を接触させ、分離し、精製状態の核酸を含む溶離液を得る。

＜抽出ＲＮＡの評価＞
溶離液の一部を1.25％アガロースゲル（FMC社製 Reliant RNA Gel System）により電気泳動を行い、エチジウムブロミド染色後にトランスイルミネーターを用いてUV照射下で写真撮影を行った結果を図２に示す。レーン１、２はジエチレングリコールジメチルエーテル水溶液４０容量％を用いた場合、レーン３、４はジエチレングリコールジメチルエーテル水溶液６０容量％を用いた場合、レーン５、６はジエチレングリコールジメチルエーテル水溶液８０容量％を用いた場合、レーン７、８はジエチレングリコールジメチルエーテル水溶液１００容量％を用いた場合の抽出核酸を示す。

電気泳動により核酸は分子量に応じて分離され、上部からゲノムＤＮＡ、28ＳｒＲＮＡ、18ＳｒＲＮＡ、ｔＲＮＡのバンドが示される。図２より、ジエチレングリコールジメチルエーテル水溶液４０容量％を用いた場合において、ゲノムＤＮＡがほとんど認められず、極めて高い純度のＲＮＡが高回収率で得られることが示される。一方、ジエチレングリコールジメチルエーテル水溶液６０から１００容量％を用いた場合では、抽出核酸に多量のゲノムＤＮＡを含有することが示される。また、ジエチレングリコールジメチルエーテル水溶液２０容量％を用いた場合では、抽出核酸はほとんど得られなかった。

本実施例では、カオトロピック剤としてチオシアン酸グアニジン、有機溶媒として乳酸エチルを用いた培養細胞からのＲＮＡ抽出を行う。
＜ＲＮＡの抽出＞
第２工程以外は実施例１と同様の方法で行った。以下、第２工程についていて記述する。

第２工程として、遊離状態の核酸を含む細胞溶解液に、極性有機溶媒として乳酸エチル水溶液（２０、４０、６０、８０、１００容量％）600μｌを添加する。この時、混合液におけるチオシアン酸グアニジン濃度は2mol/l、乳酸エチル濃度は、10、20、30、40、50容量%となる。

＜抽出ＲＮＡの評価＞
実施例１と同様の方法で電気泳動を行った結果を図３に示す。レーン１は乳酸エチル水溶液６０容量％を用いた場合、レーン２は乳酸エチル水溶液８０容量％を用いた場合、レーン３は乳酸エチル水溶液１００容量％を用いた場合の抽出核酸を示す。

これより、乳酸エチル水溶液６０容量％を用いた場合において、ゲノムＤＮＡがほとんど認められず、極めて高い純度のＲＮＡが高回収率で得られることが示される。一方、乳酸エチル水溶液８０、１００容量％を用いた場合では、抽出核酸に多量のゲノムＤＮＡを含有することが示される。また、乳酸エチル水溶液２０、４０容量%を用いた場合は、抽出核酸はほとんど得られなかった。

比較例

カオトロピック剤としてチオシアン酸グアニジン、有機溶媒としてエタノールを用いるＲＮＡ抽出キット（QIAGEN社製RNeasy Mini Kit）による培養細胞からのＲＮＡ抽出を行った。この方法は上記特許文献１に記載の方法に準じるものである。

＜ＲＮＡの抽出＞
実施例１と同じマウスMyelom培養細胞（１０^６個程度）のペレットから、QIAGEN社製RNeasy Mini Kitを用いて、キットに添付されるプロトコルに従って、ＲＮＡ抽出を行った。

＜抽出ＲＮＡの評価＞
実施例１と同様の方法で電気泳動を行った結果を図４に示す。これより、RNeasy Mini Kitを用いた場合においては、抽出核酸にゲノムＤＮＡが含まれることが示された。

＜抽出核酸を用いたＲＴ−ＰＣＲ＞
実施例１により得た抽出核酸、および比較例の方法により得た抽出核酸を用いたＲＴ−ＰＣＲを行った。

実施例１及び比較例の方法により得た抽出核酸から、ＤＮＡ除去操作を行わず、全ＲＮＡ 2.5μgを含む核酸溶液を調製した。この核酸溶液に、逆転写酵素（インビトロジェン社製 SuperScriptII）、Oligo(dT)プライマーを含む逆転写用試薬を加えて最終液量を20μlとして、42℃、50分間保温し、逆転写反応によりｍＲＮＡを鋳型とするｃＤＮＡを合成した。

次いで、逆転写反応後溶液2μl、及び0.2μlに、イントロンを含まないマウスβアクチン遺伝子領域を標的とするＰＣＲ用プライマー（東洋紡社製Mouse β-actin RT-PCR Primer Set）、耐熱性ＤＮＡポリメラーゼ（アプライドバイオシステムズ社製 AmpliTaq Gold DNA polymerase）とＰＣＲ用試薬を加えて最終液量を50μlとして、94℃、15秒間、55℃、30秒間、72℃、1分間を30サイクルをサ―マルサイクラー（PERKIN ELMAR社製 GeneAmp PCR System 9600）を用いて行った。

また、ネガティブコントロールとして、逆転写反応を行わない逆転写未反応溶液2μl、及び0.2μを用い、ポジティブコントロールとしてＰＣＲ用プライマー（東洋紡社製 Mouse β-actin RT-PCR Primer Set）に付属されるマウスβアクチン由来ＤＮＡを用いてＰＣＲを行った。

ＰＣＲ反応後溶液を3％アガロースゲル（FMC社製 Nusieve 3:1 Agarose）により電気泳動を行い、エチジウムブロミド染色後にトランスイルミネーターを用いてUV照射下で写真撮影を行った結果を図５に示す。

図５において、レーン１は、実施例１の方法により得た抽出核酸を用いて逆転写反応を行い、逆転写反応後溶液2μlからＰＣＲした場合の増幅産物、レーン２は、実施例１の方法により得た抽出核酸を用いて逆転写反応を行い、逆転写反応後溶液0.2μlからＰＣＲした場合の増幅産物、レーン３は、実施例１の方法により得た抽出核酸を用いて逆転写反応を行わず、逆転写未反応溶液2μlからＰＣＲした場合の増幅産物、レーン４は実施例１の方法により得た抽出核酸を用いて逆転写反応を行わず、逆転写反未応溶液0.2μlからＰＣＲした場合の増幅産物を示す。

レーン５は、比較例の方法により得た抽出核酸を用いて逆転写反応を行い、逆転写反応後溶液2μlからＰＣＲした場合の増幅産物、レーン６は、比較例の方法により得た抽出核酸を用いて逆転写反応を行い、逆転写反応後溶液0.2μlからＰＣＲした場合の増幅産物、レーン７は、比較例の方法により得た抽出核酸を用いて逆転写反応を行わず、逆転写未反応溶液2μlからＰＣＲした場合の増幅産物、レーン８は比較例の方法により得た抽出核酸を用いて逆転写反応を行わず、逆転写未反応溶液0.2μlからＰＣＲした場合の増幅産物を示す。レーン９は、ポジティブコントロールとしてマウスβアクチン由来ＤＮＡを用いてＰＣＲを行った場合の増幅産物を示す。

この結果、レーン１、２、５、６、７、９において、マウスβアクチン遺伝子由来の540bpの増幅産物が確認された。実施例１の方法により得た抽出核酸においては、逆転写反応を行わなかった場合に増幅産物（レーン３、４）が確認されなかったことから、逆転写反応を行った場合における増幅産物（レーン１、２）がｍＲＮＡに由来するものであり、抽出核酸からゲノムＤＮＡ除去を行うことなくＲＴ−ＰＣＲが可能であることを示している。

一方、比較例の方法により得た抽出核酸においては、逆転写反応を行わない逆転写未反応溶液2μlを用いた場合において増幅産物（レーン７）が得られた。これは、抽出核酸に含まれるゲノムＤＮＡに由来する増幅産物であり、逆転写反応を行った逆転写反応溶液2μlを用いたＰＣＲの増幅産物（レーン５）はｍＲＮＡ、及びゲノムＤＮＡに由来する増幅産物の混合物となり、正常なＲＴ−ＰＣＲが行えないことを示している。このことから、比較例の方法により得た抽出核酸からＲＴ−ＰＣＲを行う為には、抽出核酸のゲノムＤＮＡを除去することが必要となる。

実施例１及び実施例２において用いた核酸捕捉用チップ。実施例１における抽出核酸の電気泳動結果。実施例２における抽出核酸の電気泳動結果。比較例における抽出核酸の電気泳動結果。ＲＴ−ＰＣＲ産物の電気泳動結果。

Claims

ＲＮＡを含有する生物材料に、ジエチレングリコールジメチルエーテル、カオトロピック剤、酸化ケイ素を含有する核酸結合性固相を混合してＲＮＡを選択的に固相へ結合させ、
ＲＮＡと結合した固相を液相から分離し、
固相を洗浄し、
固相からＲＮＡを溶離するＲＮＡ抽出方法であって、
ＲＮＡを含有する生物材料、ジエチレングリコールジメチルエーテル及びカオトロピック剤からなる混合液におけるカオトロピック剤濃度が１．０〜４．０ｍｏ１／１であり、
上記混合液におけるジエチレングリコールジメチルエーテル濃度が１０〜２５％である方法。
請求項１に記載のＲＮＡ抽出方法であって、前記カオトロピック剤が、ヨウ化ナトリウム、ヨウ化カリウム、チオシアン酸ナトリウム、チオシアン酸グアニジン、塩酸グアニジンから選択される１種以上であるＲＮＡ抽出方法。
請求項１に記載のＲＮＡ抽出方法であって、前記チオシアン酸グアニジンの所定濃度が、ＲＮＡを含有する生物材料、ジエチレングリコールジメチルエーテル及びカオトロピック剤からなる混合液における濃度で、１．０〜４．０ｍｏｌ／ｌであり、上記混合液におけるジエチレングリコールジメチルエーテル濃度が１０〜２５％であるＲＮＡ抽出方法。
請求項１に記載のＲＮＡ抽出方法であって、前記チオシアン酸グアニジンの所定濃度が、ＲＮＡを含有する生物材料、ジエチレングリコールジメチルエーテル及びカオトロピック剤からなる混合液における濃度で、１．５〜２．０ｍｏｌ／ｌであり、上記混合後の混合液におけるジエチレングリコールジメチルエーテル濃度が１５〜２５％であるＲＮＡ抽出方法。
請求項１乃至４のいずれかに記載のＲＮＡ抽出方法であって、前記酸化ケイ素を含有する核酸結合性固相が、ガラス粒子、シリカ粒子、ガラス繊維濾紙、シリカウール、あるいは、それら破砕物、ケイソウ土であるＲＮＡ抽出方法。
請求項１乃至５のいずれかに記載のＲＮＡ抽出方法であって、前記ＲＮＡを含有する生物材料が、全血、血清、喀痰、尿、生体組織、培養細胞、または培養細菌であるＲＮＡ抽出方法。
請求項１乃至６のいずれかに記載のＲＮＡ抽出方法であって、前記洗浄液がエタノールであるＲＮＡ抽出方法。
請求項１乃至７のいずれかに記載のＲＮＡ抽出方法であって、前記溶離液が、ＲＮＡ分解酵素除去、あるいはＲＮＡ分解酵素失活化処理を行った水や低塩濃度緩衝液であるＲＮＡ抽出方法。
ＲＮＡを含有する生物材料に、ジエチレングリコールジメチルエーテル、カオトロピック剤、酸化ケイ素を含有する核酸結合性固相を混合してＲＮＡを選択的に固相へ結合させ、
ＲＮＡと結合した固相を液相から分離し、
固相を洗浄し、
固相からＲＮＡを溶離し、
得られたＲＮＡを逆転写ポリメラーゼチェインリアクション（ＲＴ−ＰＣＲ）で増幅する生物材料の分析方法であって、
ＲＮＡを含有する生物材料、ジエチレングリコールジメチルエーテル及びカオトロピック剤からなる混合液におけるカオトロピック剤濃度が１．０〜４．０ｍｏ１／１であり、
上記混合液におけるジエチレングリコールジメチルエーテル濃度が１０〜２５％である方法。
請求項９に記載の生物材料の分析方法であって、前記カオトロピック剤が、ヨウ化ナトリウム、ヨウ化カリウム、チオシアン酸ナトリウム、チオシアン酸グアニジン、塩酸グアニジンから選択される１種以上であるＲＮＡ抽出方法。
請求項９に記載の生物材料の分析方法であって、前記チオシアン酸グアニジンの所定濃度が、ＲＮＡを含有する生物材料、ジエチレングリコールジメチルエーテル及びカオトロピック剤からなる混合液における濃度で、１．０〜４．０ｍｏｌ／ｌであり、上記混合液におけるジエチレングリコールジメチルエーテル濃度が１０〜２５％である生物材料の分析方法。
請求項９に記載の生物材料の分析方法であって、前記チオシアン酸グアニジンの所定濃度が、ＲＮＡを含有する生物材料、ジエチレングリコールジメチルエーテル及びカオトロピック剤からなる混合液における濃度で、１．５〜２．０ｍｏｌ／ｌであり、上記混合液におけるジエチレングリコールジメチルエーテル濃度が１５〜２５％である生物材料の分析方法。
請求項９乃至１２のいずれかに記載の生物材料の分析方法であって、前記酸化ケイ素を含有する核酸結合性固相が、ガラス粒子、シリカ粒子、ガラス繊維濾紙、シリカウール、あるいは、それら破砕物、ケイソウ土である生物材料の分析方法。
請求項９乃至１３のいずれかに記載の生物材料の分析方法であって、前記ＲＮＡを含有する生物材料が、全血、血清、喀痰、尿、生体組織、培養細胞、または培養細菌である生物材料の分析方法。
請求項９乃至１４のいずれかに記載の生物材料の分析方法であって、前記洗浄液がエタノールである生物材料の分析方法。
請求項９乃至１５のいずれかに記載の生物材料の分析方法であって、前記溶離液が、ＲＮＡ分解酵素除去、あるいはＲＮＡ分解酵素失活化処理を行った水や低塩濃度緩衝液である生物材料の分析方法。