JP3119680B2 - 新規抗生物質バルヒマイシン、その製造方法およびそれを含有する抗菌剤 - Google Patents
新規抗生物質バルヒマイシン、その製造方法およびそれを含有する抗菌剤Info
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Description
【0001】本発明は、放線菌(Actinomycete)培養株
番号Hoechst India Limited Y−86,21022から
の、バルヒマイシン(Balhimycin)と命名された、新規
の糖ペプチド抗生物質に関する。バルヒマイシンは、糖
ペプチド類に属する抗菌性抗生物質と記述することがで
きる。糖ペプチド抗生物質は、主としてグラム陽性菌に
対して作用する、スペクトルの狭い抗生物質である。メ
シチリン抵抗性黄色ブドウ球菌(S. aureus, MRS
A)株に対するそれらの活性が、それらをMRSAによ
って起こる感染症の治療に価値のある薬剤としている。
糖ペプチド抗生物質はまた、獣医学の分野において成長
促進剤として有用である。糖ペプチド抗生物質について
は、Topics in Antibiotic Chemistry, 5:119(1980)、
Journal ofAntibiotics, 38:561(1985)、Journal of A
ntibiotics, 40:924(1987)、Journal of Organic Chem
istry, 54:983(1989)に記載されている。
番号Hoechst India Limited Y−86,21022から
の、バルヒマイシン(Balhimycin)と命名された、新規
の糖ペプチド抗生物質に関する。バルヒマイシンは、糖
ペプチド類に属する抗菌性抗生物質と記述することがで
きる。糖ペプチド抗生物質は、主としてグラム陽性菌に
対して作用する、スペクトルの狭い抗生物質である。メ
シチリン抵抗性黄色ブドウ球菌(S. aureus, MRS
A)株に対するそれらの活性が、それらをMRSAによ
って起こる感染症の治療に価値のある薬剤としている。
糖ペプチド抗生物質はまた、獣医学の分野において成長
促進剤として有用である。糖ペプチド抗生物質について
は、Topics in Antibiotic Chemistry, 5:119(1980)、
Journal ofAntibiotics, 38:561(1985)、Journal of A
ntibiotics, 40:924(1987)、Journal of Organic Chem
istry, 54:983(1989)に記載されている。
【0002】しかしながら、本明細書に記載するバルヒ
マイシンは、既知のすべての糖ペプチドと分子式が異な
っていて、したがって、本発明の主題を形成するもので
ある。さらに、分子量および分子式を検索のキーとして
実施したChemical Abstractsオンライン検索によって、
化合物の新規性も確認されている。
マイシンは、既知のすべての糖ペプチドと分子式が異な
っていて、したがって、本発明の主題を形成するもので
ある。さらに、分子量および分子式を検索のキーとして
実施したChemical Abstractsオンライン検索によって、
化合物の新規性も確認されている。
【0003】バルヒマイシンの製造に使用された微生
物、培養株番号Hoechst India Limited Y−86,21
022(以下、Y−86,21022と呼ぶ)は、イン
ド、ヒマラヤのThamuの森林から採取された土壌サンプ
ルから単離された。微生物Y−86,21022は放線
菌目(Actinomycetales)に属する。微生物Y−86,21
022は、1990年4月6日、ブダペスト条約の条件
下に、Deutsche Sammlungvon Mikroorganismenに寄託さ
れ、DSM5908として受け入れられている。
物、培養株番号Hoechst India Limited Y−86,21
022(以下、Y−86,21022と呼ぶ)は、イン
ド、ヒマラヤのThamuの森林から採取された土壌サンプ
ルから単離された。微生物Y−86,21022は放線
菌目(Actinomycetales)に属する。微生物Y−86,21
022は、1990年4月6日、ブダペスト条約の条件
下に、Deutsche Sammlungvon Mikroorganismenに寄託さ
れ、DSM5908として受け入れられている。
【0004】本発明はさらに他の態様として、培養株番
号Hoechst India Limited Y−86,21022、その
突然変異株および変異株から新規な抗生物質、バルヒマ
イシンを製造する方法を提供する。この方法は、Y−8
6,21022、その突然変異株および変異株の培養株
を、炭素および窒素源、無機養素塩ならびに微量元素を
含有する栄養培地中、好気的条件下に培養し、その培養
培地から上記抗生物質を単離、精製するものである。炭
素源としては、デンプン、グルコース、スクロース、デ
キストリン、フルクトース、糖密、グリセロール、ラク
トースまたはガラクトースが使用できる。好ましい炭素
源はグリセロールである。窒素源としては、大豆ミー
ル、落花生ミール、酵母エキス、肉エキス、ペプトン、
麦芽エキス、コーンスティープリカー、ゼラチンまたは
カザミノ酸が使用できる。好ましい窒素源は大豆ミール
である。無機養素塩としては、リン酸水素ナトリウム、
リン酸水素カリウム、食塩、塩化カルシウム、炭酸カル
シウム、硝酸カリウム、硫酸アンモニウムまたは硫酸マ
グネシウムが使用される。微量元素は、鉄、マンガン、
銅、亜鉛もしくはコバルトまたは他の重金属の塩であっ
てよい。
号Hoechst India Limited Y−86,21022、その
突然変異株および変異株から新規な抗生物質、バルヒマ
イシンを製造する方法を提供する。この方法は、Y−8
6,21022、その突然変異株および変異株の培養株
を、炭素および窒素源、無機養素塩ならびに微量元素を
含有する栄養培地中、好気的条件下に培養し、その培養
培地から上記抗生物質を単離、精製するものである。炭
素源としては、デンプン、グルコース、スクロース、デ
キストリン、フルクトース、糖密、グリセロール、ラク
トースまたはガラクトースが使用できる。好ましい炭素
源はグリセロールである。窒素源としては、大豆ミー
ル、落花生ミール、酵母エキス、肉エキス、ペプトン、
麦芽エキス、コーンスティープリカー、ゼラチンまたは
カザミノ酸が使用できる。好ましい窒素源は大豆ミール
である。無機養素塩としては、リン酸水素ナトリウム、
リン酸水素カリウム、食塩、塩化カルシウム、炭酸カル
シウム、硝酸カリウム、硫酸アンモニウムまたは硫酸マ
グネシウムが使用される。微量元素は、鉄、マンガン、
銅、亜鉛もしくはコバルトまたは他の重金属の塩であっ
てよい。
【0005】培養株番号Y−86,21022の培養
は、28〜32℃の温度、6.0〜8.0のpHにおいて行
われる。とくに、培養株番号Y−86,21022は2
9℃(±1℃)、pH約7.0において培養される。
は、28〜32℃の温度、6.0〜8.0のpHにおいて行
われる。とくに、培養株番号Y−86,21022は2
9℃(±1℃)、pH約7.0において培養される。
【0006】発酵は、好ましくは60〜72時間、本発
明の抗生物質の至適収率が得られる時間行われる。発酵
はとくに、振盪フラスコ中、また実験室発酵槽中、液内
培養条件下で、68〜72時間行われる。所望により、
発酵槽中には消泡剤たとえばDesmophenR(ポリオール、
Bayer-AG Leverkusen, 西独)を使用することができ
る。発酵の進行および本発明の化合物の形成は、高圧液
体クロマトグラフィー(HPLC)により、また既知の
微生物寒天平板拡散検定法を用いブドウ球菌種に対する
培養培地の生物活性を測定することにより検出できる。
好ましい培養株は、文献記載のベータラクタム抗生物
質、メチシリンに対して抵抗性を示すことが知られてい
る黄色ブドウ球菌3066である。
明の抗生物質の至適収率が得られる時間行われる。発酵
はとくに、振盪フラスコ中、また実験室発酵槽中、液内
培養条件下で、68〜72時間行われる。所望により、
発酵槽中には消泡剤たとえばDesmophenR(ポリオール、
Bayer-AG Leverkusen, 西独)を使用することができ
る。発酵の進行および本発明の化合物の形成は、高圧液
体クロマトグラフィー(HPLC)により、また既知の
微生物寒天平板拡散検定法を用いブドウ球菌種に対する
培養培地の生物活性を測定することにより検出できる。
好ましい培養株は、文献記載のベータラクタム抗生物
質、メチシリンに対して抵抗性を示すことが知られてい
る黄色ブドウ球菌3066である。
【0007】バルヒマイシンは、適当な吸着剤、たとえ
ば活性炭、Diaion HP-20R(ポリスチレン−ジビニルベ
ンゼン共重合体をベースとした多孔性樹脂、Mitsubishi
Chemical Industries, 日本)、またはAmberliteR XAD
(ポリスチレン−アクリル酸エステルをベースとした多
孔性樹脂、Rohm &Haas Co., 米国)上への直接吸着によ
って培養培地から単離できる。好ましい吸着剤はDiaion
HP-20である。バルヒマイシンは、これらの吸着剤か
ら、水、メタノール、アセトン、アセトニトリルまたは
これらの適当な配合物のような移動相を用いて溶出させ
ることができる。好ましい溶出液は含水メタノールまた
はアセトンである。
ば活性炭、Diaion HP-20R(ポリスチレン−ジビニルベ
ンゼン共重合体をベースとした多孔性樹脂、Mitsubishi
Chemical Industries, 日本)、またはAmberliteR XAD
(ポリスチレン−アクリル酸エステルをベースとした多
孔性樹脂、Rohm &Haas Co., 米国)上への直接吸着によ
って培養培地から単離できる。好ましい吸着剤はDiaion
HP-20である。バルヒマイシンは、これらの吸着剤か
ら、水、メタノール、アセトン、アセトニトリルまたは
これらの適当な配合物のような移動相を用いて溶出させ
ることができる。好ましい溶出液は含水メタノールまた
はアセトンである。
【0008】バルヒマイシンを含有する上述の活性溶出
液は濃縮し、また多くの方法でさらに精製することがで
きる。たとえば、活性炭、AmberliteXAD−4および7、
Diaion HP-20による再吸着および溶出;Sephadex LH-20
RまたはGシリーズゲル(Pharmacia Fine Chemicals A
B, スエーデン)により溶出液として水、メタノール、
アセトンまたはこれらの適当な配合物を用いたゲル濾
過;pH範囲6.5〜8.5においてIRC−50(H+)
を用い、溶出液を0.1N HClとしたイオン交換クロ
マトグラフィー;あるいはシリカ、逆相シリカのような
改良シリカ、たとえばオクタデシルジメチルシリル化シ
リカ(RP−18)、中性アルミナ等の吸着剤上での中
圧液体クロマトグラフィー(MPLC)が使用できる。
さらに、所定の多成分溶媒系による向流クロマトグラフ
ィーも上述の目的に使用できる。好ましい精製方法に
は、RP−18上、溶出液として塩または酸のような適
当な添加物を含有する含水メタノールまたはアセトニト
リルを用いる反復MPLCが包含される。
液は濃縮し、また多くの方法でさらに精製することがで
きる。たとえば、活性炭、AmberliteXAD−4および7、
Diaion HP-20による再吸着および溶出;Sephadex LH-20
RまたはGシリーズゲル(Pharmacia Fine Chemicals A
B, スエーデン)により溶出液として水、メタノール、
アセトンまたはこれらの適当な配合物を用いたゲル濾
過;pH範囲6.5〜8.5においてIRC−50(H+)
を用い、溶出液を0.1N HClとしたイオン交換クロ
マトグラフィー;あるいはシリカ、逆相シリカのような
改良シリカ、たとえばオクタデシルジメチルシリル化シ
リカ(RP−18)、中性アルミナ等の吸着剤上での中
圧液体クロマトグラフィー(MPLC)が使用できる。
さらに、所定の多成分溶媒系による向流クロマトグラフ
ィーも上述の目的に使用できる。好ましい精製方法に
は、RP−18上、溶出液として塩または酸のような適
当な添加物を含有する含水メタノールまたはアセトニト
リルを用いる反復MPLCが包含される。
【0009】バルヒマイシンは、たとえば、HCl、H
2SO4、クエン酸、乳酸、コハク酸、酢酸、トリフルオ
ロ酢酸のような無機酸および有機酸により、既知方法
で、その医薬的に許容される塩に変換できる。
2SO4、クエン酸、乳酸、コハク酸、酢酸、トリフルオ
ロ酢酸のような無機酸および有機酸により、既知方法
で、その医薬的に許容される塩に変換できる。
【0010】バルヒマイシンの物理化学的性質およびス
ペクトル的性質を以下の表1に示す。
ペクトル的性質を以下の表1に示す。
【0011】
【表1】
【0012】バルヒマイシンおよびその生理学的に耐容
性のある塩は、たとえば経口的に、筋肉内に、または静
脈内に投与できる。活性物質としてバルヒマイシンを含
有する医薬組成物も本発明の主題である。本発明の医薬
組成物は、上記化合物を、1種または2種以上の医薬的
に耐容性のある補助剤および/または賦形剤、たとえば
充填剤、乳化剤、滑沢剤、遮蔽フレーバー、着色剤また
は緩衝剤と混合し、適当な医薬剤形たとえば錠剤、コー
ト錠、カプセルまたは非経口投与に適当な懸濁液もしく
は溶液に変換することによって製造できる。補助剤およ
び/または賦形剤の例としては、トラガントゴム、乳
糖、タルク、寒天、ポリグリコール、エタノールおよび
水を挙げることができる。非経口投与に適当な好ましい
剤形は水中懸濁液または溶液である。活性物質はビヒク
ルまたは希釈剤を用いないでそのまま、適当な剤形たと
えばカプセルとして投与することもできる。
性のある塩は、たとえば経口的に、筋肉内に、または静
脈内に投与できる。活性物質としてバルヒマイシンを含
有する医薬組成物も本発明の主題である。本発明の医薬
組成物は、上記化合物を、1種または2種以上の医薬的
に耐容性のある補助剤および/または賦形剤、たとえば
充填剤、乳化剤、滑沢剤、遮蔽フレーバー、着色剤また
は緩衝剤と混合し、適当な医薬剤形たとえば錠剤、コー
ト錠、カプセルまたは非経口投与に適当な懸濁液もしく
は溶液に変換することによって製造できる。補助剤およ
び/または賦形剤の例としては、トラガントゴム、乳
糖、タルク、寒天、ポリグリコール、エタノールおよび
水を挙げることができる。非経口投与に適当な好ましい
剤形は水中懸濁液または溶液である。活性物質はビヒク
ルまたは希釈剤を用いないでそのまま、適当な剤形たと
えばカプセルとして投与することもできる。
【0013】本発明の化合物またはその生理学的に耐容
性のある酸付加塩の適当な用量は、体重約60kgの成人
で約0.1〜20g/日、好ましくは0.5〜4g/日で
ある。
性のある酸付加塩の適当な用量は、体重約60kgの成人
で約0.1〜20g/日、好ましくは0.5〜4g/日で
ある。
【0014】投与は1個の単位剤形または一般的には多
数個の単位剤形によって行うことができる。1個の単位
剤形を用いる場合には、活性物質約50〜4,000m
g、好ましくは約500〜2,000mgを含有させること
ができる。
数個の単位剤形によって行うことができる。1個の単位
剤形を用いる場合には、活性物質約50〜4,000m
g、好ましくは約500〜2,000mgを含有させること
ができる。
【0015】本発明の特徴をさらに以下の実施例により
明らかにする。
明らかにする。
【0016】実施例1 培養株Y−86,21022の
土壌からの単離 (a) 栄養単離培地の組成 トーモロコシデンプン 10.0g カゼイン 1.0g ペプトン 1.0g 酵母エキス 1.0g K2HPO4 0.5g 寒天粉末 13.0g 脱イオン水 1.0l pH 7.5
土壌からの単離 (a) 栄養単離培地の組成 トーモロコシデンプン 10.0g カゼイン 1.0g ペプトン 1.0g 酵母エキス 1.0g K2HPO4 0.5g 寒天粉末 13.0g 脱イオン水 1.0l pH 7.5
【0017】(b) 土壌平板培養および単離 インド、ヒマラヤ、Thamuの森林から採取した土壌10
gを、250mlのエルレンマイヤーフラスコ中90mlの
滅菌脱イオン水に加え、ロータリーシェーカー上で2時
間振盪した(220rpm)。この土壌懸濁液を10倍ず
つ10-5まで系列希釈した。最終希釈液から、懸濁液1
mlを滅菌したガラスペトリ皿(直径15cm)の中央に置
き、ついでこれに、抗カビ剤としてアンホテリシンB
25mcg/mlを補充した上記単離培地約50mlを注ぎ、
45℃に冷却し、プレートを完全に混合した。土壌懸濁
液と培地の混合物を放置して沈積させ、28℃(±1
℃)で7日間インキュベートした。ペトリ皿を定期的に
観察し、増殖した微生物中から培養株番号Y−86,2
1022を単離した。
gを、250mlのエルレンマイヤーフラスコ中90mlの
滅菌脱イオン水に加え、ロータリーシェーカー上で2時
間振盪した(220rpm)。この土壌懸濁液を10倍ず
つ10-5まで系列希釈した。最終希釈液から、懸濁液1
mlを滅菌したガラスペトリ皿(直径15cm)の中央に置
き、ついでこれに、抗カビ剤としてアンホテリシンB
25mcg/mlを補充した上記単離培地約50mlを注ぎ、
45℃に冷却し、プレートを完全に混合した。土壌懸濁
液と培地の混合物を放置して沈積させ、28℃(±1
℃)で7日間インキュベートした。ペトリ皿を定期的に
観察し、増殖した微生物中から培養株番号Y−86,2
1022を単離した。
【0018】実施例 2 培養株Y−86,21022の維持 維持培地の組成 培養株番号Y−86,21022は以下の培地上で維持
した。
した。
【0019】 麦芽エキス 10.0g 酵母エキス 4.0g グルコース 4.0g 寒天粉末 13.0g 脱イオン水 1.0l pH 7.0 上記成分を加熱して完全に溶解したのち、試験管に分配
し、ついで121℃で20分間滅菌した。試験管を冷却
し、傾斜位置で放置して固化させた。斜面寒天に、ワイ
ヤーループで、増殖させた培養株Y−86,21022
号を線条接種し、28℃(±1℃)で良好な増殖が観察
されるまでインキュベートした。良好に増殖した培養液
は冷蔵庫中に+8℃で保存した。
し、ついで121℃で20分間滅菌した。試験管を冷却
し、傾斜位置で放置して固化させた。斜面寒天に、ワイ
ヤーループで、増殖させた培養株Y−86,21022
号を線条接種し、28℃(±1℃)で良好な増殖が観察
されるまでインキュベートした。良好に増殖した培養液
は冷蔵庫中に+8℃で保存した。
【0020】実施例 3 培養株Y−86,21022の振盪フラスコ中での発酵
種培地の組成 グルコース 15.0g 大豆ミール 15.0g コーンスティープリカー 5.0g CaCO3 2.0g 脱イオン水 1000ml pH 7.0 上記の種培地を500mlのエルレンマイヤーフラスコに
80ml量ずつ分配し、20分間オートクレーブ処理し
た。フラスコを室温に冷却し、ついで各フラスコに例2
の上述のよく増殖した培養株1白金耳を接種し、ロータ
リーシェーカー上、240rpm、29℃(±1℃)で7
2時間振盪して、種培養株を得た。
種培地の組成 グルコース 15.0g 大豆ミール 15.0g コーンスティープリカー 5.0g CaCO3 2.0g 脱イオン水 1000ml pH 7.0 上記の種培地を500mlのエルレンマイヤーフラスコに
80ml量ずつ分配し、20分間オートクレーブ処理し
た。フラスコを室温に冷却し、ついで各フラスコに例2
の上述のよく増殖した培養株1白金耳を接種し、ロータ
リーシェーカー上、240rpm、29℃(±1℃)で7
2時間振盪して、種培養株を得た。
【0021】製造培地の組成 グリセロール 15.0g 大豆ミール 10.0g CaCO3 1.0g NaCl 5.0g CoCl2 0.001g 脱イオン水 1000ml pH 7.0 製造培地を500mlのエルレンマイヤーフラスコに60
mlずつ分配し、121℃で20分間オートクレーブ処理
した。フラスコを冷却し、ついで上述の種培養株を接種
した(1% v/v)。発酵はロータリーシェーカー
上、240rpm、温度29℃(±1℃)で68時間行っ
た。
mlずつ分配し、121℃で20分間オートクレーブ処理
した。フラスコを冷却し、ついで上述の種培養株を接種
した(1% v/v)。発酵はロータリーシェーカー
上、240rpm、温度29℃(±1℃)で68時間行っ
た。
【0022】抗生物質の産生は、HPLCにより、また
既知の様式でのウエル拡散法を用いS. aureus 3066に対
する生物活性を試験することにより、定量された。収穫
後、培養培地を遠心分離し、バルヒマイシンを培養濾液
から、例4の記載のようにして単離し、精製した。
既知の様式でのウエル拡散法を用いS. aureus 3066に対
する生物活性を試験することにより、定量された。収穫
後、培養培地を遠心分離し、バルヒマイシンを培養濾液
から、例4の記載のようにして単離し、精製した。
【0023】実施例 4 培養株Y−86,21022号の発酵槽中での培養振盪
フラスコ中での種培養の調製 実施例3の種菌用培地を、1lのエルレンマイヤーフラ
スコ中に160ml量分配し、20分間オートクレーブ処
理した。接種菌体はこれらのフラスコ中で実施例3の記
載のように増殖させた。
フラスコ中での種培養の調製 実施例3の種菌用培地を、1lのエルレンマイヤーフラ
スコ中に160ml量分配し、20分間オートクレーブ処
理した。接種菌体はこれらのフラスコ中で実施例3の記
載のように増殖させた。
【0024】大規模発酵 製造培地の組成 グリセロール 15.0g 大豆ミール 10.0g CaCO3 1.0g NaCl 5.0g 脱イオン水 100ml pH 6.8 150lのMarubishi発酵槽中100lの製造培地を、
消泡剤 Desmophen 30mlとともに、そのまま121℃
で24時間滅菌し、29°±1℃に冷却し、上述の種培
養3lを接種した。発酵は以下の条件で進行させた。
消泡剤 Desmophen 30mlとともに、そのまま121℃
で24時間滅菌し、29°±1℃に冷却し、上述の種培
養3lを接種した。発酵は以下の条件で進行させた。
【0025】 温度 29℃(±5℃) 撹拌 110〜120rpm 通気 80〜100epm 収穫時間 69〜72時間 抗生物質の産生はS. aureus 3066に対する生物活性でモ
ニタリングした。発酵を停止したとき、培養培地のpHは
6.0〜7.0であった。培養培地を収穫後、遠心分離
し、抗生物質バルヒマイシンを以下に記載するように培
養濾液から単離し、精製した。
ニタリングした。発酵を停止したとき、培養培地のpHは
6.0〜7.0であった。培養培地を収穫後、遠心分離
し、抗生物質バルヒマイシンを以下に記載するように培
養濾液から単離し、精製した。
【0026】バルヒマイシンの単離および精製 実施例4で得られた収穫培地約100lを遠心分離して
菌糸体から分離した。得られた培地濾液(80l、pH
6.5)を、水中5lのDiaionHP-20のカラムに通過させ
た。カラムを40lの脱イオン水で洗浄すると、洗液は
無色となった。次に、カラムを1M NaCl水溶液8
l、ついで脱イオン水10lで洗浄した。この過程を1
回反復した。次に、カラムを30% MeOH水溶液9
lで洗浄し、最後に75% MeOH水溶液5lで溶出
し、1lのサイズで分画を収集した。これらの溶出液中
のバルヒマイシンの存在は、メチシリン抵抗性微生物で
あるStaphylococcus aureus 3066に対するその活性でモ
ニタリングした。活性な溶出液を真空下40〜45℃で
約1lに濃縮し、凍結乾燥すると、粗製のバルヒマイシ
ン38gから粉末として得られた。
菌糸体から分離した。得られた培地濾液(80l、pH
6.5)を、水中5lのDiaionHP-20のカラムに通過させ
た。カラムを40lの脱イオン水で洗浄すると、洗液は
無色となった。次に、カラムを1M NaCl水溶液8
l、ついで脱イオン水10lで洗浄した。この過程を1
回反復した。次に、カラムを30% MeOH水溶液9
lで洗浄し、最後に75% MeOH水溶液5lで溶出
し、1lのサイズで分画を収集した。これらの溶出液中
のバルヒマイシンの存在は、メチシリン抵抗性微生物で
あるStaphylococcus aureus 3066に対するその活性でモ
ニタリングした。活性な溶出液を真空下40〜45℃で
約1lに濃縮し、凍結乾燥すると、粗製のバルヒマイシ
ン38gから粉末として得られた。
【0027】上述の粗製物質を次に、各10gの3つの
バッチに分けて、床容量1.2lの6.5×55cmガラス
カラムに充填したRP−18上中圧液体クロマトグラフ
ィー(MPLC)に付した。カラムは0.1%トリフル
オロ酢酸(TFA)を含む水2l、ついで0.1%TF
A含有水中5%アセトニトリル(4l)、7.5%アセ
トニトリル(9l)および10%アセトニトリル(2
4.5l)で溶出した。バルヒマイシンは500mlサイ
ズの分画で収集され、in vitro抗生物質活性によってモ
ニタリングした10%アセトニトリル溶出液中に溶出し
た。活性な溶出液を高真空下、40℃で濃縮し、ついで
凍結乾燥すると、バルヒマイシン2.1gが淡黄色の粉
末として得られた。この過程3回で、粗製物質30gか
ら計6.3gの半精製バルヒマイシンが得られた。
バッチに分けて、床容量1.2lの6.5×55cmガラス
カラムに充填したRP−18上中圧液体クロマトグラフ
ィー(MPLC)に付した。カラムは0.1%トリフル
オロ酢酸(TFA)を含む水2l、ついで0.1%TF
A含有水中5%アセトニトリル(4l)、7.5%アセ
トニトリル(9l)および10%アセトニトリル(2
4.5l)で溶出した。バルヒマイシンは500mlサイ
ズの分画で収集され、in vitro抗生物質活性によってモ
ニタリングした10%アセトニトリル溶出液中に溶出し
た。活性な溶出液を高真空下、40℃で濃縮し、ついで
凍結乾燥すると、バルヒマイシン2.1gが淡黄色の粉
末として得られた。この過程3回で、粗製物質30gか
ら計6.3gの半精製バルヒマイシンが得られた。
【0028】このようにして得られた半精製バルヒマイ
シン6.3gを、各2.1gの3バッチで、床容量500
mlの6.0×45mmガラスカラムに充填したRP−18
上、MPLCに付して最終的に精製した。カラムを、
0.1%TFA含有の水1l、ついで0.1%TFA含有
の水中それぞれ5%および7.5%アセトニトリル2l
および1.5lで洗浄した。バルヒマイシンは0.1%T
FA含有の水中10%アセトニトリルで溶出させ、各2
50mlの分画を、220mmで作動するUV検出器および
in vitro抗生物質検定の両者によってモニタリングし
た。計8lの活性な溶出液を高真空下、40℃で濃縮
し、ついで凍結乾燥すると、バルヒマイシンが白色粉末
の形のトリフルオロアセテート塩として600mg得られ
た。半精製バルヒマイシン6.3gから精製バルヒマイ
シン1.8gが得られた。
シン6.3gを、各2.1gの3バッチで、床容量500
mlの6.0×45mmガラスカラムに充填したRP−18
上、MPLCに付して最終的に精製した。カラムを、
0.1%TFA含有の水1l、ついで0.1%TFA含有
の水中それぞれ5%および7.5%アセトニトリル2l
および1.5lで洗浄した。バルヒマイシンは0.1%T
FA含有の水中10%アセトニトリルで溶出させ、各2
50mlの分画を、220mmで作動するUV検出器および
in vitro抗生物質検定の両者によってモニタリングし
た。計8lの活性な溶出液を高真空下、40℃で濃縮
し、ついで凍結乾燥すると、バルヒマイシンが白色粉末
の形のトリフルオロアセテート塩として600mg得られ
た。半精製バルヒマイシン6.3gから精製バルヒマイ
シン1.8gが得られた。
【0029】バルヒマイシンの生物学的性質 バルヒマイシンの抗菌活性を、各種細菌の増殖を阻止す
るのに必要なMIC値として表2に示す。
るのに必要なMIC値として表2に示す。
【0030】
【表2】
【図1】バルヒマイシンの保持時間を示すチャート。
【図2】バルヒマイシンの1H NMRスペクトル図。
───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.7 識別記号 FI C12P 21/00 A61K 37/02 //(C12N 1/20 C12R 1:01) (C12P 21/00 C12R 1:01) (72)発明者 マヘシユ・ビトハルバイ・パテル インド国ボンベイ400080.ムランド/ウ エスト.ビー・ピークロスロード2.1 /ナンドジヤ (72)発明者 カルヤナプラム・ラージヤゴパラン・デ シカン インド国ボンベイ400080.ムランド/ウ エスト.エル・ビー・エス・マルグ.オ ツプジヨンソン.クリシユナクンジユ4 (72)発明者 エツラ・コテスワラ・サトヤ・ビジヤヤ クマル インド国ボンベイ400080.ムランド/ウ エスト.ダルガロード.ヘキストクオー ターズ ケイ−3 (72)発明者 ビマル・ナレツシユ・ガングリ インド国ボンベイ400071.チエンブー ル.セントラルアベニユー173 (72)発明者 ユルゲン・ブルームバハ インド国ボンベイ400006.ニランドリ. ネピーアンシーロード(番地なし) (72)発明者 ハンス−ヴオルフラム・フエールハーバ ー ドイツ連邦共和国イートシユタイン/タ ウヌス.トーマス−マン−シユトラ−セ 5アー (72)発明者 ヘルベルト・コグラー ドイツ連邦共和国デー−6233ケルクハイ ム/タウヌス.ブレスラウアーシユトラ ーセ39 (58)調査した分野(Int.Cl.7,DB名) C07K 2/00 C07K 14/195 C12P 21/00 A61K 38/00 C12N 1/20 BIOSIS(DIALOG) WPI(DIALOG) CA(STN) REGISTRY(STN) EPAT(QUESTEL)
Claims (7)
- 【請求項1】 放線菌種Y−86,21022(DSM
5908)により生産され、高分解FABマススペクト
ル法により測定したM+H+測定値m/zが1446.4204
で、UVmax(水)が208及び285nmで、分子式がC66H
73Cl2N9O24である抗菌活性を有する化合物バルヒマ
イシン又は医薬的に許容される塩。 - 【請求項2】 請求項1記載のバルヒマイシンを製造す
るにあたり、放線菌種Y−86,21022(DSM5
908)、その突然変異株および/または変異株を、炭
素および窒素源、無機養素塩ならびに微量元素を含有す
る栄養培地中、好気的条件下に培養し、この化合物を培
養培地から慣用方法で単離、精製する方法。 - 【請求項3】 培養は約28〜32℃の温度において、
約6〜8のpHで行われる請求項2記載の方法。 - 【請求項4】 発酵は68〜72時間行われる請求項2
または3に記載の方法。 - 【請求項5】 発酵は液内発酵として行われる請求項2
〜4のいずれかに記載の方法。 - 【請求項6】 請求項1記載の化合物を含有し、さらに
医薬組成物の製造に慣用される補助剤および/または賦
形剤を適宜含む抗菌剤。 - 【請求項7】 請求項1記載の化合物を生産する放線菌
種Y−86,21022(DSM5908)。
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DE19926770A1 (de) | 1999-06-11 | 2000-12-14 | Basf Ag | Nukleinsäurefragment und Vektor, enthaltend eine Halogenase, sowie ein Verfahren zur Halogenierung chemischer Verbindungen |
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