JP2024023290A

JP2024023290A - がんの治療のための方法および組成物

Info

Publication number: JP2024023290A
Application number: JP2023193160A
Authority: JP
Inventors: ミュラー、アレクサンダー、ジェイ．; J Muller Alexander; モンダル、アルピタ; Mondal Arpita; デイ、スーヴィック; Dey Souvik; プレンダーガスト、ジョージ、シー．; c prendergast George
Original assignee: Lankenau Institute for Medical Research
Current assignee: Lankenau Institute for Medical Research
Priority date: 2017-09-14
Filing date: 2023-11-13
Publication date: 2024-02-21
Also published as: WO2019055786A1; US20200261414A1; EP3681498A4; EP3681498A1; ES2935729T3; EP3681498B1; JP2020534289A; EP4176876A1; US20240374566A1

Abstract

【課題】がんの治療のための新規の組成物および方法を提供する。【解決手段】対象においてがんを治療、阻害、および／または予防する方法であって、前記方法は、１）インドールアミン２，３ジオキシゲナーゼ－１（ＩＤＯ１）による少なくとも１つの誘導、活性、またはシグナル伝達の阻害剤を前記対象に投与する工程と、２）少なくとも１つの第２の薬剤を前記対象に投与する工程であって、前記第２の薬剤は、栄養素／酸素飢餓をがん細胞に課すことによって、またはがん細胞において栄養素／酸素飢餓を利用することによって作用する、少なくとも１つの抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤である、工程とを有する、方法である。【選択図】なし

Description

この出願は、３５Ｕ．Ｓ．Ｃ．§１１９（ｅ）に基づいて、２０１７年９月１４日に提出された米国仮特許出願番号６２／５５８，５７３に優先権を主張する。前述の出願は、参照により本明細書に組み込まれる。

本発明は、化学療法の分野に関する。具体的には、本発明は、がんの治療のための新規の組成物および方法を提供する。

血管新生は腫瘍の成長に重要である（Cao et al. (2011）Sci. Transl. Med., 3:114rv3)。しかし、正常組織の血管新生の厳密に制御された過程とは異なり、腫瘍の血管新生は、網膜や肺などの組織の虚血によって引き起こされるものとよく似た、血管の過度の無秩序な成長によって特徴づけられる（Carmeliet, P.（2003）Nat. Med., 9：653-660）。血管新生の分野における創発的な概念は、病理学的腫瘍血管系を正常化することにより、化学療法および放射線療法の有効性が高まるというものである。したがって、腫瘍の病原性血管新生を利用する薬剤の新しい相乗的な組み合わせが求められている。

本発明の一態様によれば、対象におけるがんを治療、阻害（例えば、低減）、および／または予防するための方法が提供される。この方法は、トリプトファン分解および／またはこの過程に応答する下流経路の誘導または活性の少なくとも１つの阻害剤を投与する工程；および、少なくとも１つの第２の薬剤を投与する工程を有し、前記第２の薬剤は、がん細胞に栄養物／酸素飢餓を課すことによって、またはがん細胞における栄養物／酸素飢餓を利用することによって作用する抗血管新生剤／抗血管新生剤および／または治療剤である。特定の実施形態では、方法は、インドールアミン２，３－ジオキシゲナーゼ－１（ＩＤＯ１）の阻害剤と前記第２の薬剤との投与を有する。投与された薬剤の組み合わせは、薬剤の個々の活性と比較して、相乗的に作用して、対象におけるがんを阻害、治療、および／または予防する。特定の実施形態では、ＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤は、小分子阻害剤（例えば、１－メチル－トリプトファン）である。

本発明の別の態様によれば、対象におけるがんを治療、阻害、および／または予防するための組成物も提供される。

図１Ａは、ＩＤＯ１がある場合とない場合のマウスにおける４Ｔ１肺転移の特異的増殖の画像を提供する。同所性４Ｔ１乳腺腫瘍細胞移植後５週間でＢＡＬＢ／ｃＷＴおよびＩｄｏ１^－／－マウスの転移負荷を視覚化するためにインドインクで染色した肺の画像を提供する。図１Ｂは、ＷＴおよびＩｄｏ１^－／－マウスにおける４Ｔ１肺転移内の抗－Ｃａｖ１による血管およびＤＡＰＩによる核の免疫蛍光染色の代表的な画像を提供する。図１Ｃは、ＷＴおよびＩｄｏ１^－／－マウス（Ｎ≧３マウス）の４Ｔ１肺転移内の抗－Ｃａｖ１陽性染色によって特徴づけられる血管新生密度の定量的評価を提供する。データは、平均値±ＳＥＭとしてグラフ化され、有意性は両側スチューデントのｔ検定によって決定される。図２Ａは、同所性の４Ｔ１乳腺腫瘍細胞移植後３．５週間から３日にわたって、１日２回、ビヒクルまたは５０ｍｇ／ｋｇのエパカドスタットを経口投与（ｐ．ｏ．）したＷＴマウスから調製した肺標本の転移領域内の抗－Ｃａｖ１による血管およびＤＡＰＩによる核の免疫蛍光染色の代表的な画像を提供する。図２Ｂは、同所性４Ｔ１乳房腫瘍細胞移植後、３日後の評価（Ｎ≧３マウス）の後、３．５週間で５０ｍｇ／ｋｇシクロホスファミドの注射を単一の腹腔内投与で受けた第３陽性対照コホートとともにビヒクルまたはエパカドスタットのいずれかを３日にわたって投与されたＷＴマウスの肺転移内の抗－Ｃａｖ１陽性染色によってマークされた血管新生密度の定量的評価を提供する。データは平均値±ＳＥＭとしてグラフ化され、ダネットの多重比較検定を用いた一元配置分散分析によって有意性が決定される。図３Ａは、同所性４Ｔ１乳腺腫瘍細胞移植後のＩｄｏ１^－／－およびＩｆｎｇ^－／－Ｉｄｏ１^－／－マウスから調製された肺標本の転移領域内の抗－Ｃａｖ１による血管およびＤＡＰＩによる核の免疫蛍光染色の代表的な画像を提供する。図３Ｂは、同所性４Ｔ１乳腺腫瘍細胞移植後のＷＴ、Ｉｄｏ１^－／－、Ｉｆｎｇ^－／－およびＩｆｎｇ^－／－Ｉｄｏ１^－／－マウスの肺転移内の抗－Ｃａｖ１陽性染色によってマークされた血管新生密度の定量的評価を提供する（Ｎ≧３マウス）。データは平均±ＳＥＭとしてグラフ化され、Ｔｕｋｅｙの多重比較検定を使用した一元配置分散分析によって有意性が決定される。図３Ｃは、同所性４Ｔ１乳腺腫瘍細胞移植後５週間のＩｄｏ１^－／－およびＩｆｎｇ^－／－Ｉｄｏ１^－／－マウスの転移負荷を視覚化するためのインディアインクによる肺の染色の画像を提供する。図３Ｄは、２グループのログランク検定によって有意性が評価された１×１０^４４Ｔ１細胞（Ｎ≧１７マウス）の同所生着後のＷＴ、Ｉｄｏ１^－／－、Ｉｆｎｇ^－／－およびＩｆｎｇ^－／－Ｉｄｏ１^－／－マウスのコホートのカプランマイヤー生存曲線を提供する。図４Ａは、同所性４Ｔ１乳房腫瘍細胞移植後のＷＴ、Ｉｌ６^－／－、Ｉｆｎｇ^－／－およびＩｆｎｇ^－／－Ｉｌ６^－／－マウスから調製された肺標本の転移領域内の抗－Ｃａｖ１による血管およびＤＡＰＩによる核の免疫蛍光染色の代表的な画像を提供する。図４Ｂは、同所性４Ｔ１乳房腫瘍細胞移植後のＷＴ、Ｉｌ６^－／－、Ｉｆｎｇ^－／－およびＩｆｎｇ^－／－Ｉｌ６^－／－マウスの肺転移内の抗－Ｃａｖ１陽性染色によってマークされた血管新生密度の定量的評価を提供する（Ｎ≧３マウス）。データは平均±ＳＥＭとしてグラフ化され、Ｔｕｋｅｙの多重比較検定を使用した一元配置分散分析によって有意性が決定される。図４Ｃは、同所性４Ｔ１乳腺腫瘍細胞移植後５週間のＩｌ６^－／－およびＩｆｎｇ^－／－Ｉｌ６^－／－マウスの転移負荷を視覚化するためのインディアインクによる肺の染色の画像を提供する。図４Ｄは、２グループのログランク検定によって有意性が評価された１×１０^４４Ｔ１細胞（Ｎ≧９マウス）の同所生着後のＷＴ、Ｉｌ６^－／－、Ｉｆｎｇ^－／－およびＩｆｎｇ^－／－Ｉｌ６^－／－マウスのコホートのカプランマイヤー生存曲線を提供する。図５Ａは、抗－ＩＤＯ１および抗－ＣＤ４５抗体による転移性肺結節および脾臓の免疫蛍光染色の画像を提供する。図５Ｂは、抗－ＩＤＯ１および抗－Ｇｒ１抗体または抗－ＩＤＯ１および抗ＣＤ－１１ｂ抗体を用いた転移性肺結節の免疫蛍光染色の画像を提供する。図６Ａは、４Ｔ１肺転移から単離された免疫細胞のフローサイトメトリーデータを提供する。図６Ｂは、抗－ＩＤＯ１および抗－ＣＤ１１ｂ抗体を用いたＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋およびＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－分類済み細胞集団の蛍光顕微鏡画像を提供する。図６Ｃは、マウスに移植された分類済みＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋またはＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞が切除されたマトリゲルプラグの画像と、抗－カベオリン－１抗体で染色された切除されたプラグの浸潤性血管新生の蛍光顕微鏡画像を提供する。図６Ｄは、切除されたマトリゲルプラグの血管密度の定量化を提供する。図７Ａは、同所性４Ｔ１乳腺腫瘍細胞生着の３．５週間後から３日にわたって、１日２回、ビヒクルまたは５０ｍｇ／ｋｇのエパカドスタットを経口投与（ｐ．ｏ．）したＷＴマウスから調製した肺標本の転移領域内の抗－Ｃａｖ１抗体による血管およびＤＡＰＩによる核の免疫蛍光染色の代表的な画像を提供する。図７Ｂは、Ｈｙｐｏｘｙｐｒｏｂｅ^ＴＭタンパク質付加物に対する抗体による低酸素領域の免疫蛍光染色と、図７Ａと同じ肺標本からの転移領域内のＤＡＰＩによる核の免疫蛍光染色の代表的な画像を提供する。図８Ａは、同所性４Ｔ１乳腺腫瘍細胞生着の３．５週間後から３日にわたって、１日２回、ビヒクルまたは４００ｍｇ／ｋｇインドキシモドを３日間にわたって経口（ｐ．ｏ．）投与したＷＴマウスから調製した肺標本の転移領域内の抗－Ｃａｖ１抗体による血管とＤＡＰＩによる核の免疫蛍光染色の代表的な画像を提供する。図８Ｂは、Ｈｙｐｏｘｙｐｒｏｂｅ^ＴＭタンパク質付加物に対する抗体による低酸素領域の免疫蛍光染色と、図８Ａと同じ肺標本からの転移領域内のＤＡＰＩによる核の免疫蛍光染色の代表的な画像を提供する。

慢性炎症は、活発な調査の領域である間質と腫瘍の間の複雑かつ動的な相互作用を通じて腫瘍プロモーションを促進することができる微小環境コンテキストを提供する（Peek et al. (2005) Cancer Res., 65:8583-8586）。変異原性腫瘍の開始と炎症性腫瘍プロモーションが明確に分離可能な２段階の化学発がんの実験モデルでは、ＩＤＯ１（インドールアミン２，３－ジオキシゲナーゼ１）は、炎症性腫瘍を促進する環境の重要な要素として識別されている（Muller et al. (2008) Proc. Natl. Acad. Sci., 105:17073-17078）。酵素的に、ＩＤＯ１は必須アミノ酸のトリプトファンを異化するが、正常なトリプトファンのホメオスタシスを維持する酵素ではなく、これは進化的に収束する肝臓酵素ＴＤＯ２（トリプトファンジオキシゲナーゼ２）の役割である。むしろ、ＩＤＯ１はさまざまな組織、特に粘膜表面に沿って発現することができ、炎症性サイトカインＩＦＮγ（インターフェロン－γ）によって強く誘導される（Taylor et al. (1991) FASEB J., 5:2516-2522）。免疫機能のレギュレーターとしてのＩＤＯ１の概念化は、ＩＤＯ１によるトリプトファンの枯渇が細胞傷害性Ｔ細胞の活性化を抑制できるという観察から明らかになった（Munn et al., 1999）。ＩＤＯ１経路阻害剤１ＭＴ（１－メチル－トリプトファン）がＴ細胞依存性の同種異系マウスの拒絶反応を誘発できるという実証（Munn et al. (1998) Science 281:1191-1193）は、ＩＤＯ１の概念を寛容原性の行為者として劇的に強固にした。腫瘍抑制遺伝子Ｂｉｎ１の喪失とＩＤＯ１の調節不全および腫瘍の免疫逃避を関連づけるその後の知見（Muller et al. (2005) Nat. Med., 11:312-319）は、腫瘍が「外来」胎児を保護して腫瘍免疫監視を克服するためにこのメカニズムを適切にするかもしれないという当然の命題の実験的実証を提供した。さらに、ＩＤＯ１は腫瘍細胞内で直接発現されると（免疫編集が機能している可能性がある場合）腫瘍の発生に寄与するが、非悪性間質内でのその発現は腫瘍の発生にも寄与することが示されている（Munn et al. (2004) J. Clin. Invest., 114:280-290）。

肺はＩＤＯ１の構成的レベルが比較的高い臓器であるため、肺における腫瘍の発生が研究されてきた（Takikawa et al. (1986) J. Biol. Chem., 261:3648-3653）。ＩＤＯ１の遺伝的喪失は、ｄｅｎｏｖｏ肺がんのトランスジェニックマウスモデルと、転移性乳がんの同所性移植片モデルの両方で、肺腫瘍負荷の著しい減少をもたらした。どちらの場合も、これはＩｄｏ１^－／－動物における有意な生存利益に変換された(Smith et al. (2012) Cancer Discov., 2:722-735)。

上記で説明したように、血管新生は腫瘍の発生に重要である(Cao et al. (2011) Sci. Transl. Med., 3(114):114rv113)。厳密に制御されている生理学的血管新生とは異なり、がんでは、網膜や肺などの組織の虚血によって引き起こされるのとよく似た、血管の過度の無秩序な成長がある。虚血の実験モデルでは、免疫細胞が過剰な血管系の剪定と血管新生の制限に重要であることが示されている(Ishida et al. (2003) Nat. Med., 9:781-788; Wagner et al. (2008) Am. J. Physiol. Lung Cell. Mol. Physiol., 294:L351-357)。したがって、免疫は腫瘍においても重要な抗血管新生の役割を果たす可能性がある。

腫瘍の血管新生に関する重要なチェックの１つは、炎症性サイトカインＩＦＮγである。直接的な腫瘍細胞殺傷ではなく、ＩＦＮγによって誘発された腫瘍血管系の喪失は、ＣＤ４^＋およびＣＤ８^＋Ｔ細胞媒介腫瘍拒絶の両方の主要なメカニズムであるとされている(Qin et al. (2000) Immunity 12:677-686; Qin et al. (2003) Cancer Res., 63:4095-4100)。炎症性サイトカインＩＦＮγは、ＩＤＯ１の主要な誘導因子である(Yoshida et al. (1981) Proc. Natl. Acad. Sci., 78:129-132)。したがって、ＩＤＯ１は負のフィードバック能力で作用して、ＩＦＮγの腫瘍抑制性抗血管新生効果を弱める可能性がある。特に、ＩＤＯ１は炎症性サイトカインＩＬ６（インターロイキン６）の誘導を増強することができ(Smith et al. (2012) Cancer Discov., 2:722-735)、これは腫瘍の新血管新生因子として関与している(Middleton et al. (2014) Crit. Rev. Oncol. Hematol., 89:129-139; McClintock et al. (2005) J. Appl. Physiol., 99:861-866)。本明細書では、ＩＤＯ１がこれら２つの競合する炎症性サイトカイン、ＩＦＮγとＩＬ６間のインターフェイスでの統合に対応する血管新生をサポートする重要な役割を持っていることが示されている。

本発明は、がんの阻害（例えば、軽減、減速など）、予防、および／または治療のための組成物および方法を提供する。本発明はまた、病原性血管新生の阻害、予防、および／または治療のための組成物および方法を提供する。この方法は、トリプトファン分解の誘導または活性および／またはこのプロセスに応答する下流経路の少なくとも１つの阻害剤、および、標的組織（例えば、がん細胞または腫瘍）に栄養素／酸素飢餓を課すことによって、または標的組織（「治療剤」）の栄養素／酸素飢餓を対象（例えば、それを必要とする対象（例えば、がんを有する対象））に利用することによって作用する、少なくとも１つの抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤を投与する工程を有する。特定の実施形態では、方法は、ＩＤＯ１の阻害剤の投与を含む。

対象に投与される薬剤は、少なくとも１つの担体（例えば、薬学的に許容される担体）を有する単一の組成物と共に含まれ得る。あるいは、薬剤は別々に投与されてもよい（例えば、少なくとも１つの担体（例えば、薬学的に許容される担体）を有する別々の組成物で投与される）。特定の実施形態において、薬剤は、連続的および／または同時に投与され得る。例えば、ＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤は、抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤の前、後、および／または同時に投与することができる。同様に、抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤は、ＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤の前、後、および／または同時に投与することができる。薬剤が同時に投与されない場合、薬剤は、薬剤が患者において相乗的に作用することができるように十分な時間内に投与されるべきである。

上記のように、方法は、トリプトファン分解の誘導または活性、またはこのプロセスに応答する下流経路の少なくとも１つの阻害剤を対象に投与する工程を有する。特定の実施形態では、阻害剤は小分子阻害剤（例えば、ＩＤＯ１の小分子阻害剤）である。特定の実施形態では、阻害剤は阻害性核酸分子（例えば、アンチセンス、ｓｉＲＮＡ、ｓｈＲＮＡなど）またはそれをコードするベクターである。特定の実施形態では、阻害剤は、阻害されるタンパク質に免疫学的に特異的な抗体または抗体フラグメント（例えば、中和抗体；例えば、抗－ＩＤＯ１抗体またはそのフラグメント）である。特定の実施形態では、ＩＤＯ１阻害剤は、ＩＤＯ１を標的とするペプチドベースのワクチンである（例えば、Iversen et al. (2014) Clin. Cancer Res., 20:221-32）。特定の実施形態では、ＩＤＯ１阻害剤はＩＤＯ２を実質的に阻害しない。

小分子ＩＤＯ１阻害剤の例は、ＰＣＴ／ＵＳ２０１４／０２２６８０（例えば、イミダゾイソインドールに関連する三環式化合物；式Ｉ－Ｖの化合物）、ＰＣＴ／ＵＳ２０１２／０３３２４５（例えば、縮合イミダゾール誘導体；式ＩまたはＩＩの化合物）、ＰＣＴ／ＵＳ２０１０／０５４２８９（例えば、イミダゾール誘導体；式Ｉ－ＶＩＩＩの化合物）、ＰＣＴ／ＵＳ２００９／０４１６０９（例えば、式Ｉ－ＶＩＩＩの化合物）、ＰＣＴ／ＵＳ２００８／５７０３２（例えば、ナフトキノン誘導体；式Ｉ、ＩＩ、またはＩＩＩの化合物）、ＰＣＴ／ＵＳ２００８／０８５１６７（例えば、式Ｉ－ＸＬＩＶの化合物）、ＰＣＴ／ＵＳ２００６／４２１３７（例えば、式Ｉの化合物）、ＰＣＴ／ＵＳ２００６／０１７９８３（例えば、式Ｉの化合物）、ＰＣＴ／ＵＳ２００４／００５１５５（例えば、フェニル－ＴＨ－ＤＬ－ｔｒｐ（３－（Ｎ－フェニル－チオヒダントイン）－インドール）、プロぺニル－ＴＨ－ＤＬ－ｔｒｐ（３－（Ｎ－アリル－チオヒダントイン）－インドール）およびメチル－ＴＨ－ＤＬ－ｔｒｐ（３－（Ｎ－メチル－チオヒダントイン）－インドール））、ＰＣＴ／ＵＳ２００４／００５１５４（例えば、式ＩまたはＩＩの化合物）、米国特許第７，７０５，０２２号（例えば、式Ｉの化合物）、米国特許第８，００８，２８１号（例えば、フェニル－ＴＨ－ＤＬ－ｔｒｐ（３－（Ｎ－フェニル－チオヒダントイン）－インドール）、プロぺニル－ＴＨ－ＤＬ－ｔｒｐ（３－（Ｎ－アリル－チオヒダントイン）－インドール）およびメチル－ＴＨ－ＤＬ－ｔｒｐ（３－（Ｎ－メチル－チオヒダントイン）－インドール））、米国特許第７，７１４，１３９号（例えば、式ＩまたはＩＩの化合物）、米国特許出願公開第２０１４００６６６２５号明細書（例えば、縮合イミダゾール誘導体；式ＩまたはＩＩの化合物）、米国特許出願公開第２０１３０１７７５９０号明細書（例えば、Ｎ－ヒドロキシアミジノ複素環；式Ｉ－ＩＩＩの化合物）、米国特許出願公開第２０１４００２３６６３号明細書（例えば、１，２，５－オキサジアゾール；式Ｉの化合物）、米国特許出願公開第２００８０１４６６２４号明細書（例えば、アミジン；式ＩまたはＩＩの化合物）、米国特許出願公開第２００８０１１９４９１号明細書（例えば、アミジノ複素環；式Ｉ－ＩＶの化合物）、米国特許出願公開第２００８０１８２８８２号明細書（例えば、Ｎ－ヒドロキシアミジノ複素環；式Ｉの化合物）、米国特許出願公開第２００８０２１４５４６号明細書（例えば、Ｎ－ヒドロキシアミジノ複素環；式Ｉの化合物）、米国特許出願公開第２００６０２５８７１９号明細書（例えば、式Ｉの化合物）、Banerjee et al. (2008) Oncogene 27:2851-2857（例えば、ブラシニン誘導体）およびKumar et al. (2008) J. Med. Chem., 51:1706-1718（例えば、フェニル－イミダゾール－誘導体）に提供されている。特定の実施形態において、ＩＤＯ１阻害剤はプロドラッグである（例えば、米国特許出願公開第２０１７００２２１５７号明細書および米国仮出願第６２／５５５，７２６号を参照）。特にそこに提供されるＩＤＯ１阻害剤に関して、すべての参考文献を参照により本明細書に組み込む。

特定の実施形態において、ＩＤＯ１阻害剤はエパカドサット（INCB024360, Incyte; Wilmington, DE; Liu et al. (2010) Blood 115(17):3520-3530; Koblish et al. (2010) Mol. Cancer Ther., 9(2):489-498）、ナボキシモド（NLG919, GDC-0919, RG6078; NewLink Genetics/Genentech）、ＢＭＳ－９８６２０５（F001287, Hunt et al., AACR 2017, Abstract 4964）、ＰＦ－０６８４０００３（Wythes et al, SITC 2016, Abstract 253）、または、ベータラパコン（３，４－ジヒドロ－２，２－ジメチル－２Ｈ－ナフトール［１，２－ｂ］ピラン－５，６－ジオン、Flick et al. (2013) Int. J. Tryp. Res. 6:35-45）である。

特定の実施形態において、ＩＤＯ１誘導阻害剤はピルビン酸エチル（Muller, et al. (2010) Cancer Res. 70:1845-1853）またはグリベック（イマチニブ、Balachandran et al. (2011) Nat. Med. 17:1094-1100）である。特定の実施形態において、ＩＤＯ１経路阻害剤（例えば、下流シグナル伝達経路の阻害剤）は、１－メチル－トリプトファン、特に１－メチル－Ｄ－トリプトファン（インドキシモド、ＮＬＧ－８１８９、１－メチル－Ｄ－トリプトファン；NewLink Genetics）であり、塩およびプロドラッグを含み（米国特許出願公開第２０１７００２２１５７号明細書）、またはそれを有するラセミ混合物である。

ＩＤＯ１発現の阻害剤は、これに限定されないが、ＪＡＫ／ＳＴＡＴ（例えば、ＪＡＫ、ＳＴＡＴ３、ＳＴＡＴ１）（Du et al. (2000) J. Interferon Cytokine Res., 20:133-142, Muller et al. (2005) Nature Med., 11:312-319; Yu et al. (2014) J. Immunol., 193:2574-2586）、ＮＦκＢ（Muller et al. (2005) Nature Med., 11:312-319; Muller et al. (2010) Cancer Res., 70:1845-1853）、ＫＩＴ（Balachandran et al. (2011) Nature Med., 17:1094-1100）、ＭＥＴ（Rutella et al. (2006) Blood 108:218-227; Giannoni et al. (2014) Haematologica 99:1078-1087）、ＲＡＳ／ＲＡＦ／ＭＥＫ（Liu (2010) Blood 115:3520-3530）、アリール炭化水素受容体（ＡＨＲ）（Bessede et al. (2014) Nature 511:184-190; Litzenburger et al. (2014) Oncotarget 5:1038-1051）、または、血管内皮増殖因子受容体（ＶＥＧＦＲ）（Marti et al. (2014) Mem Inst Oswaldo Cruz 109:70-79）の阻害剤を含む。特定の実施形態において、阻害剤は、ＶＥＧＦＲの阻害剤ではない。

ＩＤＯ１下流シグナル伝達経路の阻害剤は、これに限定されないが、ＧＣＮ２（Munn et al. (2005) Immunity 22:633-642; Muller (2008) Proc Nat Acad Sci., 105:17073-17078）、Ｃ／ＥＢＰ相同たんぱく質１０（ＣＨＯＰ－１０、ｇａｄｄ１５３としても知られる、本明細書においては、ＣＨＯＰと称する；Munn et al. (2005) Immunity 22:633-642）、活性化転写因子４（ＡＴＦ４；Munn et al. (2005) Immunity 22:633-642; Thevenot et al. (2014) Immunity 41:389-401）、または、アリール炭化水素受容体（ＡＨＲ）（Opitz et al. (2011) Nature 478:197-203; Litzenburger et al. (2014) Oncotarget 5:1038-1051）、または、ラパマイシン（ｍＴＯＲ）またはプロテインキナーゼＣ（ＰＫＣ）－θの哺乳類標的の活性化因子（Metz et al. (2012) Oncoimmunology 1:1460-1468）の阻害剤を含む。特定の実施形態では、ＩＤＯ１下流シグナル伝達経路の阻害剤は、ＩＬ６の阻害剤（例えば、ＩＬ６に免疫学的に特異的な抗体）である。

特定の実施形態において、ＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤と共に投与される薬剤は、栄養／酸素飢餓（例えば、飢餓または低酸素状態）を課すことによって作用する、または、標的組織内の栄養／酸素飢餓を利用する抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤である。例えば、抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤は、これに限定されないが、１）抗脈管形成剤／抗血管新生剤、２）低酸素活性化プロドラッグまたは生体還元性薬物、３）低酸素症への反応を利用する標的薬（例えば、ＨＩＦ－標的薬）、または４）栄養素や酸素欠乏によるストレスへの反応を利用する分子標的薬（代謝拮抗剤、ＵＰＲ阻害剤など）であり得る。

特定の実施形態において、抗脈管形成剤／抗血管新生剤は抗血管新生活性を有する化学療法剤である。特定の実施形態において、抗脈管形成剤／抗血管新生剤は、１つまたは複数のＶＥＧＦ受容体への結合を含むＶＥＧＦ活性を中和、遮断、阻害、抑止、低減または妨害することができるＶＥＧＦアンタゴニストである。例えば、ＶＥＧＦアンタゴニストは、これに限定されないが、抗－ＶＥＧＦ抗体、ＶＥＧＦトラップ、抗－ＶＥＧＦＲ抗体、ＶＥＧＦＲ阻害剤、サリドマイド、ＤＩ１４－Ｎｏｔｃｈ阻害剤、抗チューブリン血管破壊剤（ＶＤＡ）、アンジオポエチン－Ｔｉｅ２阻害剤、一酸化窒素シンターゼ（ＮＯＳ）阻害剤、カチオン性ポリアミノ酸デンドリマー、ラパマイシン、エベロリムス、テムセロリムス、低分子量ヘパリン、ＳＰＡＲＣ（オステオネクチン）ペプチド、ベバシズマブ、ラニビズマブ、ラムシルマブ、アフリベルセプト、インターロイキン１７（ＩＬ－１７）、ＤＣ１０１、スニチニブ、ソラフェニブ、パゾパニブ、ＡＭＧ７０６、セディラニブ、バンデタニブ、バルガテフ、ブリバニブ、ＸＬ－１８４、アキシチニブ、チボザニブ、サリドマイド、ラナリドマイド、ＤＭＸＡＡ、ナドロパリン、２，５－ジメチル－セレコキシブ、シクロホスファミド、ＨＢＣ、および、タスキニモドであり得る。

低酸素活性化プロドラッグ／生体還元剤の例は、これに限定されないが、ＰＲ－１０４（Proacta; La Jolla, CA, Patterson, et al. (2007) Clin. Cancer Res. 13:3922-3932）、エボフォスファミド（TH-302, Duan, et al. (2008) J. Med. Chem. 51:2412-2420）、および、タルロキソチニブ（ＴＨ－４０００）、アパジクオン（EO9; Oostveen, et al. (1987) Tetrahedron 43:255-262）、バノキサントロン（AQ4N; Raleigh, et al. (1998) Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 42:763-767）、チラパザミン（TPZ; (Shinde, et al. (2009) J. Am. Chem. Soc. 131:14220-14221）、ＳＮ３００００（CEN-209; Hicks, et al. (2010) Clin. Cancer Res. 16:4946-4957）、ＣＨ－０１（Cazares-Korner, et al. (2013) ACS Chem. Biol. 8:1451-1459）、ＢＣＣＡ６２１Ｃ（Lindquist, et al. (2013) Tumour Microenv. Ther. 1:46-55）、Ｏ６－アルキルグアニンＤＮＡアルキルトランスフェラーゼ阻害剤（Zhu, et al. (2013) J. Med. Chem. 56:1355-1359）、低酸素選択的ＥＧＦＲ阻害剤（Karnthaler-Benbakka, et al. (2014) Agnew Chem. Int. Ed. Engl. 53:12930-12935）、または、低酸素症を標的としたｓｉＲＮＡ（Perche, et al. (2014) Agnew Chem. Int. Ed. Engl. 53:3362-3366）を含む。

特定の実施形態において、低酸素症に対する応答を利用する分子標的薬は、阻害剤ＨＩＦ－１α／ＨＩＦ－１β活性（例えば、ＨＩＦ－１α阻害剤）である。ＨＩＦ活性阻害剤の例は、Ｗｉｇｅｒｕｐら（Pharmacol. Ther. (2016) 164:152-169）によって提供されている（参照により本明細書に組み込まれている）。特定の実施形態において、ＨＩＦ－１α阻害剤は、ｍＲＮＡ／タンパク質発現の阻害剤（例えば、ＰＩ３Ｋ阻害剤（例えば、ワートマニン、ＬＹ９４００２、ＧＤＣ－０９４１、ＰＩ－１０３）、ｍＴＯＲ阻害剤（例えば、ラパマイシン、ＰＰ２４２）、アミノフラボン、グリセオリン、トポテカン、ＰＥＧ－ＳＮ３８、ＥＺＮ－２９６８、２ＭＥ２、ＥＮＭＤ－１１９８、ゲルダナマイシンおよび類似体、ボリノスタット、ＹＣ－１、ＰＸ－４７８、ＰＸ－１２、プレウロチン、強心配糖体、ＦＭ１９Ｇ１１、ＨＩＦ－２α翻訳阻害剤）、ＨＩＦ－α／ＨＩＦ－１β二量体化阻害剤（例えば、アクリフラビン、ＰＴ２３８５）、ＤＮＡ結合阻害剤（例えば、エキノマイシン、ポリアミド）、および転写活性阻害剤（例、ケトミン、ボルテゾミブ、アンホテリシンＢ、トリプトライド、ＡＪＭ２９０、ＡＷ４６４）である。

特定の実施形態において、栄養素または酸素欠乏によって誘発されたストレスに対する応答を利用する分子標的薬は代謝拮抗物質である。特定の実施形態において、代謝拮抗剤は、２－メルカプトプロピオニルグリシンジスルフィド（TTL-315; DuHadaway et al. (2016) Oncotarget 7(7):7372-7380）、グルコース欠乏を条件とする方法で細胞生存を阻止するジスルフィド含有化合物である。特定の実施形態において、薬剤は、これに限定されないが、米国特許第２０１４００７９８１２号に列挙されたジスルフィド含有化合物である。例えば、ジスルフィド含有化合物は、ジアルキルジスルフィド（例えば、少なくとも1つの硫黄原子を含む低級アルキルのジスルフィド）またはジアリールジスルフィドであり、ここにおいて、ジスルフィドのメンバーは、同じ（対称ジスルフィド）または異なる（非対称ジスルフィド）であり得る。他の実施形態において、ジスルフィド含有化合物は、チアミンを有するジスルフィド、例えば、これに限定されないが、チアミンジスルフィド、チアミンプロピルジスルフィド、およびチアミンテトラヒドロフリルジスルフィドである。他の実施形態において、例示的なジスルフィド含有化合物は、これに限定されないが、ヒドロキシエチルジスルフィド（ＨＥＤＳ；メルカプトエタノール（ＭＥ）のジスルフィド）、メルカプトプロピオニルグリシン（ＭＰＧ）のジスルフィド、ＭＰＧおよび低級アルキルのジスルフィド、ＭＰＧおよびＭＥのジスルフィド、メスナ（２－スルファニルエタンスルホネート）のジスルフィド、ＭＰＧおよびメスナのジスルフィド、および、ＭＥおよびメスナのジスルフィドを含む。特定の実施形態において、ジスルフィド含有化合物は、ＭＰＧのジスルフィドである。特定の実施形態において、ジスルフィド含有化合物は、ＨＥＤＳである。

特定の実施形態において、栄養素または酸素欠乏ストレスに対する応答を利用する分子標的薬は、細胞ストレスシグナル伝達経路に向けられている。ストレスシグナル伝達経路の例は、これに限定されないが、小胞体ストレス応答（ＵＰＲ）および抗酸化応答を含む。ＵＰＲに対抗する薬剤の例は、ＧＳＫ２６５６１５７、プロテインキナーゼＲ（ＰＫＲ）様小胞体キナーゼ（ＰＥＲＫ）の非常に選択的な小分子阻害剤である（Axten et al. (2013) ACS Med Chem Lett 4(10):964-968）。ＰＥＲＫは、真核生物の開始因子２（ｅＩＦ２）をリン酸化することにより、ＵＰＲの逐次的な活性化を仲介し、生理的ストレス状態の緩和に合わせたストレスシグナル伝達を活性化しながら、グローバルキャップ依存性翻訳を停止する（Tabas and David et al (2012) Nat Cell Biol 13(3): 184-190）。ＰＥＲＫの活性化は、その微小環境の重度の低酸素状態に反応してさまざまな腫瘍で広く示され、腫瘍細胞の効果的な生存と増殖に重要であることが示されている（Bi et al (2005) EMBO J 24 (19): 3470-3481）。ＰＥＲＫ阻害剤（ＧＳＫ２６５６１５７およびＧＳＫ２６０６４１４）は、マウス、ラット、およびイヌにおいて、低から中程度の血液クリアランスを伴う良好な経口バイオアベイラビリティを有することが示されている（Axten et al. (2013) ACS Med Chem Lett 4(10):964-968: Atkins et al (2013) Cancer Res. 73(6): 1993-2002; Axten et al (2012) J. Med. Chem. 55(16):7193-207）。ＧＳＫ２６５６１５７による治療は、大幅な体重減少および/またはPERKが高度に発現している膵臓インスリン産生への影響なしに、マウスにおけるさまざまなヒト異種移植腫瘍の成長の遅延をもたらした（Atkins et al (2013) Cancer Res. 73(6): 1993-2002）。抗酸化応答に対する薬剤の例は、限定するものではないが、ＺｎＰＰＩＸ、ＰＥＧ－ＺｎＰＰＩＸ、およびＳＭＡ－ＺｎＰＰＩＸである。低酸素症は、腫瘍微小環境でのＲＯＳの不均衡を引き起こし、次に、腫瘍細胞での抗酸化応答の誘発に関与する遺伝子を調節するマスターレギュレーター転写因子ＮＲＦ２を活性化する。効果的な阻害剤はまだＮＲＦ２に対して開発されていないが、その主な下流標的ヘムオキシゲナーゼ１（ＨＯ－１）は、阻害の標的として成功している。ＨＯ－１は、ヘムを一酸化炭素（ＣＯ）、ビリベルジン、および第一鉄に分解する律速の抗酸化酵素である。ＮＲＦ２とともに、ＨＯ－１発現は低酸素活性化ＰＥＲＫおよびＨＩＦ１ａによって調節され、腎細胞がんや前立腺がんなどのさまざまな腫瘍で上方制御され、放射線療法や光線力学療法に対する耐性を付与することが示されている（Dey, et al. (2015) JCI 125(7):2592-608; Lee, et al. (1997) J. Biol. Chem., 272(9):5375-5381; Berberat, et al. (2005) Clin. Cancer Res., 11(10):3790-3798）。ＨＯ－１酵素活性の阻害剤である亜鉛プロトポルフィリンＩＸ（ＺｎＰＰＩＸ）は、マウスのリンパ腫、肺がん、肉腫の軽減に有効であることが示されている（Jozkowicz, et al. (2007) Antiox Redox Sig 9(12):2099-2117）。ＰＥＧ－ＺｎＰＰＩＸやＳＭＡ－ＺｎＰＰＩＸなどの改善されたより溶解性の高いＨＯ－１阻害剤は、抗腫瘍の可能性があり、マウスでの副作用が少ないことが示されている（Sahoo, et al. (2002) Bioconjug Chem 13(5):1031-1038）。

特定の実施形態において、本発明の組成物および方法を使用して治療され得るがんは、これらに限定されないが、前立腺がん、結腸直腸がん、膵臓がん、子宮頸がん、胃がん（stomach cancer）（胃がん（gastric cancer））、子宮内膜がん、脳腫瘍、神経膠芽腫、肝臓がん、膀胱がん、卵巣がん、精巣がん、頭頸部がん、咽喉がん、皮膚がん、黒色腫、基底がん、中皮腫、リンパ腫、白血病、食道がん、乳がん、横紋筋肉腫、肉腫、肺がん、小細胞肺がん、非小細胞がん、副腎がん、甲状腺がん、腎がん、骨がん、および、絨毛がんを含む。特定の実施形態では、がんは腫瘍を形成する。特定の実施形態では、がんは肺がんである。特定の実施形態では、がんは肺転移を含む。特定の実施形態では、がんは、腫瘍におけるＩＤＯ発現造血細胞の浸潤を含む。

１）少なくとも１つのＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤、および／または、２）栄養素／酸素飢餓を標的組織に課すことによって、または標的組織において栄養素／酸素飢餓を利用することによって作用する少なくとも１つの抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤を有する組成物も本発明に含まれる。組成物は、少なくとも１つの担体（例えば、薬学的に許容される担体）をさらに含み得る。特定の実施形態において、組成物は、１）少なくとも１つのＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤、２）少なくとも１つの抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤、および３）少なくとも１つの担体（例えば、薬学的に許容される担体）を有する。本発明はまた、少なくとも１つのＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤を含む第１の組成物、および、少なくとも１つの抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤を含む第２の組成物を有するキットを包含する。第１および第２の組成物は、少なくとも１つの担体（例えば、薬学的に許容される担体）をさらに含み得る。第１および第２の組成物の担体は同じである必要はない。

本発明の薬剤（例えば、少なくとも１つのＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤、および、栄養素／酸素飢餓を標的組織に課すことによって、または標的組織において栄養素／酸素飢餓を利用することによって作用する、少なくとも１つの抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤）は、一般に、医薬製剤として患者に投与される。本明細書で使用される「患者」という用語は、ヒトまたは動物の対象を指す。これらの薬剤は、がんの治療のために医師の指導の下で治療的に使用されてもよい。

本発明の薬剤を有する医薬製剤は、水、緩衝生理食塩水、エタノール、ポリオール（例えば、グリセロール、プロピレングリコール、液体ポリエチレングリコールなど）、ジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）、油、洗剤、懸濁剤またはそれらの適切な混合物などの許容される媒体での投与用に都合よく製剤化され得る。選択された媒体中の薬剤の濃度は変動し得るものであり、媒体は、医薬製剤の所望の投与経路に基づいて選択され得る。従来の媒体または薬剤が投与される薬剤と適合しない場合を除いて、医薬製剤におけるその使用が企図される。

特定の患者への投与に適した本発明による薬剤の用量および投与計画は、患者の年齢、性別、体重、一般的な病状、および薬剤が投与されている特定の状態と重症度を考慮して、医師により決定され得る。医師はまた、薬剤の投与経路、薬剤を組み合わせることができる薬学的な担体、および薬剤の生物活性を考慮することができる。

適切な医薬製剤の選択は、選択された投与方法に依存する。例えば、本発明の薬剤は、任意のがん性組織または周囲領域への直接注射によって投与され得る。この場合、医薬製剤は、がん組織と適合性のある媒体に分散された薬剤を含む。

薬剤はまた、血流への静脈内注射により、または皮下、筋肉内もしくは腹腔内注射により非経口的に投与されてもよい。非経口注射用の医薬製剤は、当技術分野で知られている。抗体を投与する方法として非経口注射が選択された場合、生物学的効果を発揮するために十分な量の分子が標的細胞に到達することを確実にするための手順を踏む必要がある。薬剤またはそれらが送達される医薬製剤の親油性は、分子がそれらの標的位置によりよく到達できるように増加させることができる。

本発明の薬剤を有効成分として医薬担体と緊密に混合して含有する医薬組成物は、従来の医薬配合技術に従って調製することができる。担体は、投与に望まれる製剤の形態に応じて、多種多様な形態をとることができる。経口剤形の薬剤の調製において、通常の製薬媒体のいずれかを使用することができるものであり、例えば、経口液体製剤（例えば、懸濁液、エリキシル剤および溶液など）の場合、水、グリコール、油、アルコール、香味剤、保存剤、着色剤などを使用することができ、経口固形製剤（例えば、粉末、カプセルおよび錠剤など）の場合、デンプン、糖、希釈剤、造粒剤、潤滑剤、結合剤、崩壊剤などの担体を使用することができる。それらの投与の容易さのために、錠剤およびカプセルは、固形医薬担体が明らかに使用される場合、最も有利な経口投薬単位形態を代表する。必要に応じて、錠剤は標準的な手法で糖衣または腸溶性コーティングすることができる。非経口剤の場合、担体は通常滅菌水を含むが、例えば溶解性を助けるため、または保存目的のために他の成分が含まれていてもよい。注射用懸濁液も調製することができ、その場合、適切な液体担体、懸濁剤などを使用することができる。

本発明の医薬製剤は、投与の容易さおよび投薬量の均一性のために単位剤形形態で処方され得る。本明細書で使用される単位剤形は、治療を受けている患者に適した医薬製剤の物理的に別個の単位を指す。各投薬量は、選択された医薬担体と関連して所望の効果をもたらすように計算された量の有効成分を含むべきである。適切な単位剤形を決定するための手順は、当業者によく知られている。単位剤形は、患者の体重に基づいて比例して増減することができる。特定の病的状態を緩和するための適切な濃度は、当技術分野で知られているように、投与量濃度曲線計算によって決定することができる。

本発明に従って、本発明の薬剤の投与のための適切な単位剤形は、動物モデルにおける薬剤の毒性を評価することによって決定され得る。本発明の薬剤の様々な濃度を、ヒト腫瘍が移植されたマウスに投与することができ、最小および最大投薬量は、治療の結果としての腫瘍サイズおよび副作用の有意な減少の結果に基づいて決定することができる。適切な単位剤形はまた、他の標準的な抗がん剤と組み合わせた薬剤の効力を評価することによって決定され得る。薬剤の単位剤形は、腫瘍のより大きな収縮および／または成長速度の低下に従って、個々に、または各抗がん治療と組み合わせて決定することができる。

本発明の薬剤を有する組成物は、病理学的症状が軽減または緩和されるまで、適切な間隔で、例えば少なくとも１日２回以上投与され、その後、投与量が維持レベルに減らされてもよい。特定の場合の適切な間隔は、通常、患者の状態に依存する。

定義
以下の定義は、本発明の理解を容易にするために提供されるものである：

単数形「ａ」、「ａｎ」、および「ｔｈｅ」には、文脈から明らかにそうでないと指示されていない限り、複数の指示対象が含まれる。

化合物または医薬組成物の「治療的有効量」は、特定の障害または疾患の症状を予防、阻害、治療、または軽減するのに有効な量を指す。例えば、「治療的有効量」は、対象におけるがんの負担を軽減するのに十分な量を指す場合がある。

「薬学的に許容される」とは、連邦政府または州政府の規制機関による承認、または米国薬局方またはその他の一般的に認められている薬局方に記載されている動物、特にヒトでの使用を承認したことを示す。

「担体」は、例えば、希釈剤、アジュバント、賦形剤、補助剤または本発明の活性剤と共に投与されるビヒクルを指す。薬学的に許容される担体は、落花生油、大豆油、鉱油、ゴマ油などの、石油、動物、植物または合成起源のものを含む、水および油などの無菌の液体であり得る。水または生理食塩水ならびにデキストロースおよびグリセロール溶液が、特に注射可能な溶液のための担体として好ましく使用される。適切な薬学的な担体は、Ｅ．Ｗ．Ｍａｒｔｉｎによる「Remington's Pharmaceutical Sciences」（Mack Publishing Co., Easton, PA）、Gennaro, A. R., Remington: The Science and Practice of Pharmacy（Lippincott, Williams and Wilkins）、Liberman, et al., Eds., Pharmaceutical Dosage Forms, Marcel Decker, New York, N.Y、および、Kibbe, et al., Eds., Handbook of Pharmaceutical Excipients, American Pharmaceutical Association, Washingtonに記載されている。

本明細書で使用される場合、「予防する」という用語は、状態を発症するリスクがある対象の予防的治療を指し、その結果、対象が状態を発症する確率が低下することを指す。

本明細書で使用される「治療する」という用語は、患者の状態（例えば、１つ以上の症状）の改善、状態の進行の遅延などを含む、疾患に苦しむ患者に利益を与える任意のタイプの治療を指す。

本明細書で使用される「宿主」、「対象」、および「患者」という用語は、ヒトなどの哺乳動物を含む任意の動物を指す。

本明細書で使用される「小分子」という用語は、比較的低分子量（例えば、２，０００未満）を有する物質または化合物を指す。典型的には、小分子は有機物であるが、タンパク質、ポリペプチド、または核酸ではない。

「小さい干渉ＲＮＡ（ｓｉＲＮＡ）」という用語は、短い（典型的には長さが３０ヌクレオチド未満、特に１２～３０または２０～２５ヌクレオチドの長さ）二本鎖ＲＮＡ分子を指す。通常、ｓｉＲＮＡは、ｓｉＲＮＡのターゲットとなる遺伝子の発現を調節する。ｓｉＲＮＡ分子を同定および合成する方法は当技術分野で公知である（例えば、Ausubel et al. (2006) Current Protocols in Molecular Biology, John Wiley and Sons, Incを参照）。本明細書で使用される場合、ｓｉＲＮＡという用語は、短いヘアピンＲＮＡ分子（ｓｈＲＮＡ）を含み得る。典型的には、ｓｈＲＮＡ分子は、配列の１つが遺伝子標的に相補的である小さなループ配列によって分離された短い相補的配列からなる。ｓｈＲＮＡ分子は通常、エンドヌクレアーゼによって細胞内でｓｉＲＮＡに処理される。ｓｉＲＮＡ分子に対する例示的な修飾は、米国特許出願公開第２００５００３２７３３号明細書に提供されている。ｓｉＲＮＡ分子の発現のための発現ベクターは、好ましくは、構成的または調節され得る強力なプロモーターを使用する。そのようなプロモーターは当技術分野で周知であり、これに限定されないが、ＲＮＡポリメラーゼＩＩプロモーター、Ｔ７ＲＮＡポリメラーゼプロモーター、およびＲＮＡポリメラーゼＩＩＩプロモーターＵ６およびＨ１が含まれる（例えば、Myslinski et al. (2001) Nucl. Acids Res., 29:2502 09を参照）。

「アンチセンス核酸分子」または「アンチセンスオリゴヌクレオチド」は、目的のタンパク質の発現を阻害するために選択された配列（例えば、翻訳開始部位および／またはスプライス部位）を標的（相補的）とする核酸分子（例えば、一本鎖分子）を含む。そのようなアンチセンス分子は、典型的には長さが約１５～約５０ヌクレオチド、より具体的には約１５～約３０ヌクレオチドであり、しばしばｍＲＮＡ分子の翻訳開始部位に及ぶ。逆方向の標的核酸分子の全配列を含むアンチセンス構築物もまた生成され得る。任意の既知のヌクレオチド配列を標的とするアンチセンスオリゴヌクレオチドは、標準的な方法に従ってオリゴヌクレオチド合成によって調製することができる。

「抗体」または「抗体分子」は、特定の抗原に結合する、抗体およびそのフラグメントを含む、任意の免疫グロブリンである。本明細書中で使用される場合、抗体または抗体分子は、無傷の免疫グロブリン分子、免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な部分、および免疫グロブリン分子の免疫学的に活性な部分の融合を企図する。

抗体は、天然に存在する抗体であってもよいし、合成または修飾抗体であってもよい（例えば、組換えにより作製された抗体；キメラ抗体；二重特異性抗体；ヒト化抗体；ラクダ科動物抗体など）。抗体は、少なくとも１つの精製タグを含み得る。特定の実施形態では、フレームワーク抗体は抗体フラグメントである。抗体フラグメントは、これに限定されないが、シングルドメイン（Ｄａｂ；例えば、単一の可変軽鎖または重鎖ドメイン）Ｆａｂ、Ｆａｂ’、Ｆ（ａｂ’）_２、およびＦ（ｖ）を含む免疫グロブリンフラグメント、および、これに限定されないが、ｓｃＦｖ、ｓｃＦｖ２、ｓｃＦｖ－Ｆｃ、ミニボディ、ダイアボディ、トリアボディ、およびテトラボディを含むこれらの免疫グロブリンフラグメントの（例えばリンカーを介した）融合を含む。抗体はまた、少なくとも１つの抗体または抗体フラグメントを含むタンパク質（例えば、融合タンパク質）であり得る。

本発明の抗体はさらに修飾されてもよい。例えば、抗体はヒト化され得る。特定の実施形態では、抗体（またはその一部）は、抗体または抗体フラグメント構築物の骨格に挿入される。例えば、本発明の抗体の可変軽ドメインおよび／または可変重ドメインは、別の抗体構築物に挿入され得る。抗体を組換えにより作製する方法は、当技術分野で周知である。実際、特定の抗体および抗体フラグメント構築物のための市販のベクターが利用可能である。

本発明の抗体はまた、他の成分に結合体化／連結され得る。例えば、抗体は、少なくとも１つの細胞透過性ペプチド、検出可能な薬剤、造影剤、またはコントラスト剤に作動可能に連結され得る（例えば、必要に応じて、リンカーを介して共有結合される）。本発明の抗体はまた、少なくとも１つの精製タグ（例えば、Ｈｉｓ－タグ）を含み得る。特定の実施形態では、抗体は、細胞透過性ペプチドにコンジュゲートされる。

本明細書で使用される「免疫学的に特異的」という用語は、目的のタンパク質または化合物の１つまたは複数のエピトープに結合するが、抗原性生体分子の混合集団を含むサンプル中の他の分子を実質的に認識および結合しないタンパク質／ポリペプチド、特に抗体を指す。

以下の実施例は、本発明の様々な実施形態を例示するために提供される。それらは、決して本発明を限定することを意図していない。

実施例
実施例１
材料および方法
トランスジェニックマウス系統
ＢＡＬＢ／ｃおよびＣ５７ＢＬ／６系統バックグラウンドの遺伝子導入Ｉｄｏ１^－／－マウスを得た。ＢＡＬＢ／ｃ系統バックグラウンドの遺伝子導入Ｉｄｏ２^－／－マウスの開発が記載されている（Metz et al. (2014) Int. Immunol., 26:357-367）。ＢＡＬＢ／ｃ系統バックグラウンドの遺伝子導入Ｉｆｎｇ^－／－およびＩｌ６^－／－マウス系統、および、ＷＴＢＡＬＢ／ｃおよびＣ５７ＢＬ／６系統は、ＪａｃｋｓｏｎＬａｂｏｒａｔｏｒｙ（ＢａｒＨａｒｂｏｒ，ＭＥ）から取得した。

４Ｔ１腫瘍細胞転移
４Ｔ１マウス乳がん由来細胞株を用いた肺転移研究（Aslakson et al. (1992) Cancer Res., 52:1399-1405）は、５０μｌの無血清培地中の１×１０^４細胞を第４乳房脂肪パッドに注入して同所性腫瘍を確立し、それが自然に肺に転移することにより行われた。肺転移の負担を視覚化するために、肺を１５％インドインク染料で膨らませ、洗浄し、フェケテ液で漂白した。肺転移血管系の免疫蛍光検出のために、肺を５０％ＯＣＴで膨らませ、ＯＣＴブロックで凍結した後、ＣｒｙｏＪａｎｅテープトランスファーシステムを使用して４μｍの切片を作製した。転移性結節内の血管は、ウサギ抗マウスＣａｖｅｏｌｉｎ１ポリクローナル抗体（Cat. #3238S, Cell Signaling Technology, Boston, MA）を用いた蛍光染色によって可視化された。転移性結節内の血管密度を定量的に評価するために、40×の対物レンズを備えたＺｅｉｓｓ倒立顕微鏡でマウスの肺ごとに複数のフィールドを取得した。フィールドごとの正のＣａｖ１信号に対応するピクセル密度をＡｄｏｂｅＰｈｏｔｏｓｈｏｐで決定し、これらの値を平均して、マウスごとの全体的な平均値を決定した。ＩＤＯ１阻害剤治療研究では、４Ｔ１生着後３．５週間で転移が確認されたマウスに、１００μｌのビヒクル（３％Ｎ，Ｎ－ジメチルアセトアミド、１０％２－ヒドロキシプロピル－β－シクロデキストリン）中、５０ｍｇ／ｋｇのエパカドスタット（ChemieTek; Indianapolis, IN）が７２時間にわたってｂ．ｉ．ｄ．（１日２回）強制経口投与され、７２時間以上経過した時点で、分析のために動物を安楽死させた。陽性対照動物に、１００μｌ滅菌生理食塩水中の５０ｍｇ／ｋｇシクロホスファミド（Baxter; Deefield、IL）の腹腔内（ｉ．ｐ．）注射を１回行い、分析のために７２時間後に安楽死させた。

免疫蛍光顕微鏡に基づく、肺転移、原発腫瘍、脾臓の免疫細胞とＩＤＯ１発現細胞の可視化のために、切除した組織サンプルをＯＣＴブロックで凍結した後、ＣｒｙｏＪａｎｅテープトランスファーシステムを使用して４μｍの切片を作製した。免疫細胞は、製造元の指示に従って、ＦＩＴＣ（Cat. #103122, Biolegend）に結合した汎免疫細胞表面マーカーＣＤ４５に対する抗体、または、ＦＩＴＣにコンジュゲートしたＭＤＳＣｓ（骨髄由来サプレッサー細胞）Ｇｒ１（Cat. #108419, Biolegend）とビオチンにコンジュゲートしたＣＤ１１ｂ（Cat. #101204, Biolegend）を特徴づけるための特異的マーカーに対する抗体、続いて、ストレプトアビジン集合Ｃｙ３（Cat. #405215, Biolegend）を用いた染色後、免疫顕微鏡法により免疫細胞を可視化した。細胞におけるＩＤＯ１の発現は、（Thomas et al. 20114 J Cell Biochem. 115:391-396）に記載されているように、ＩＤＯ１特異的マウスモノクローナル抗体４Ｂ７（Cat. #MABF850, Millipore）で染色した後、ＦＩＴＣコンジュゲートヤギ抗マウス二次抗体（Cat. #F0257, Sigma）またはＣｙ３コンジュゲートヤギ抗マウス二次抗体（Cat. #M30010, Life Technologies）で染色することにより視覚化した。ＩＤＯ１を発現する免疫細胞集団を４Ｔ１肺転移から分離するために、ｇｅｎｔｌｅＭＡＣＳＯｃｔｏＤｉｓｓｏｃｉａｔｏｒ（Miltenyi Biotec）およびＴｕｍｏｒＤｉｓｓｏｃｉａｔｉｏｎＫｉｔ（Cat. #130-096-730, Miltenyi Biotec）を製造元の指示に従って使用し、切除した転移性肺組織から単一細胞懸濁液を調製し、製造元の指示に従って、αＣＤ４５標識磁気ビーズ（Cat. #130-052-301, Miltenyi Biotec）を使用して免疫細胞全体を単離した。ＩＤＯ１を発現するＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞集団は、ＦＡＣＳＡｒｉａ（Becton Dickinson）セルソーターを使用したＦＡＣＳ（蛍光活性化細胞選別）により、総免疫細胞集団から分離された。従来のＭＤＳＣ（骨髄由来サプレッサー細胞）を表す、より多くのＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞集団は、非ＩＤＯ１発現対照集団として同時に分離された。選別のために、ＣＤ４５^＋細胞を、ＰｅｒＣＰにコンジュゲートしたαＧｒ１抗体とＦＩＴＣにコンジュゲートしたαＣＤ１１ｂ抗体で染色した。ＦＡＣＳベースの細胞分離の有効性を評価するために、Ｇｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－およびＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋細胞集団の両方からの細胞を、Ｃｙｔｏｓｐｉｎ３を使用してスライドに貼り付け、ＤＡＰＩおよびＩＤＯ１特異的マウスモノクローナル抗体４Ｂ７で染色した後、Ｃｙ３コンジュゲートヤギ抗マウス二次抗体（Cat. #M30010, Life Technologies）で染色した。ＩＤＯ１を発現する細胞がｉｎｖｉｖｏで血管新生を誘発する能力を直接評価するために、２５０μＬＰＢＳ内の２ｘ１０^６の選別細胞を２５０μＬのマトリゲルと氷上で混合し、レシピエントマウスの背部に皮下注射してマトリゲルプラグを形成した。移植後９日で、マトリゲルプラグを切除し、写真を撮り、凍結切片化のためにＯＣＴブロックで凍結した。マトリゲルプラグ内の血管は、ウサギ抗マウスカベオリン１ポリクローナル抗体（Cat. #3238S, Cell Signaling Technology）を用いた蛍光染色によって可視化された。血管密度の定量化のために、Ｚｅｉｓｓ倒立顕微鏡で複数のフィールドを取得し、上記のようにＡｄｏｂｅＰｈｏｔｏｓｈｏｐを使用して分析した。

統計分析
Ｐｒｉｓｍ６（GraphPad Software、Inc.）を使用して、グラフ化と統計分析を行った。棒グラフを平均±ＳＥＭとしてプロットし、必要に応じて、対応のない両側スチューデントのｔ検定またはＴｕｋｅｙの多重比較検定またはＤｕｎｎｅｔｔの多重比較検定を使用した一元配置分散分析によって統計的有意性を決定した。カプランマイヤー生存曲線の有意性は、２グループのログランク検定によって決定された。Ｐ値の範囲は次のように示される：＊＊＊＊，Ｐ<０．０００１；＊＊＊，Ｐ<０．００１；＊＊，Ｐ<０．０１；＊，Ｐ<０．０５；ｎｓ，重要ではない。

結果
同所移植された４Ｔ１乳腺癌腫瘍で攻撃されたＩｄｏ１^－／－（Ｉｄｏ１ホモ欠損）マウスは、ＷＴ（野生型）の対照と比較して、肺転移の発達に著しい遅延を示した（図１Ａ）。Ｉｄｏ１^－／－宿主で転移が形成された場合、それらはＷＴ動物で形成されたものよりも血管密度が低いことが観察され（図１Ｂ）、その有意性は定量分析によって確認された（図１Ｃ；Δ＝２．６－フォールド、Ｐ<０．０１）。この発見は、肺の４Ｔ１転移の血管新生が、ＩＤＯ１を欠くマウスでは損なわれていることを示している。

遺伝的データは、ＩＤＯ１酵素活性の薬理学的阻害剤が病的な血管新生を減少させる治療上の可能性があることを示唆している。エパカドスタットは、確立された４Ｔ１肺転移を有するマウスに７２時間にわたって強制経口投与によって投与された。エパカドスタット（ＩＮＣＢ０２４３６０）はＩＤＯ１の特異的低分子阻害剤である（Liu et al. (2010) Blood 115:3520-3530）。エパカドスタットによる治療は、陽性対照化合物のシクロホスファミドの効果に匹敵する、ビヒクルのみと比較して、転移性腫瘍血管新生の有意な減少をもたらした（Δ＝３．２－フォールド、Ｐ<０．０１）（Ibe et al. (2001) J. Exp. Med., 194:1549-1559）（図２Ａおよび２Ｂ）。これらの結果は、薬理学的阻害によるＩＤＯ１の酵素活性の遮断が、ＩＤＯ１が血管新生をサポートする能力を妨害するのに十分であることを確認している。

炎症性サイトカインＩＦＮγは、ＩＤＯ１の主要な誘導因子である。ＩＦＮγが効果的な抗腫瘍免疫にとって重要であるという実質的な証拠があり（Beatty et al. (2001) Immunol. Res., 24:201-210）、腫瘍新生血管系のＩＦＮγ誘発性減少は作用機序の可能性がある（Qin et al. (2000) Immunity 12:677-686; Qin et al. (2003) Cancer Res., 63:4095-4100）。ここで、４Ｔ１肺転移の血管新生に対する宿主動物のＩＦＮγとＩＤＯ１の両方の喪失の影響を調べた。Ｉｄｏ１^－／－宿主で形成された転移は、野生型コントロールで形成されたものと比較して、有意に低い血管密度を示し、一方、二重ノックアウトマウスにおけるＩＦＮγとＩＤＯ１の両方の喪失は、ＩＤＯ１喪失のみの４Ｔ１転移血管新生に対する効果を完全に打ち消した（図３Ａおよび３Ｂ）。ＩＤＯ１の喪失は、肺転移負荷の減少により、同所性４Ｔ１腫瘍に挑むマウスに有意な生存利益をもたらす（Smith et al. (2012) Cancer Discov., 2:722-735）。これに関連して、二重ノックアウトマウスでＩＤＯ１と一緒にＩＦＮγが同時に失われると、肺転移負荷の軽減と、ＩＤＯ１のみを失うことで観察される生存利益の両方が打ち消された（図３Ｃおよび３Ｄ）。これらのデータは、血管新生と転移生存に対するＩＤＯ１とＩＦＮγの相殺効果の間の驚くべき対応を示しており、ＩＤＯ１がＩＦＮγの抗血管新生活性に及ぼす拮抗作用が、この転移モデルにおけるその腫瘍形成促進的役割に直接リンクしていることを示している。

ＩＤＯ１の喪失は４Ｔ１転移モデルにおけるＩＬ６誘導の減弱と関連しており、外因性ＩＬ６の提供により転移感受性を回復させることができる（Smith et al. (2012) Cancer Discov., 2:722-735）。ＩＬ６の喪失は４Ｔ１肺転移の血管新生に影響を与え、Ｉｌ６^－／－動物から得られた転移性腫瘍は野生型対照と比較して有意に減少した血管密度を示した（図４Ａおよび４Ｂ）。この場合も、ＩＦＮγの同時消失により、ＩＬ６単独の消失で観察された血管密度の低下が抑止された（図４Ａおよび４Ｂ）。同様に、ＩＬ６の損失は、肺転移負荷の明らかな減少と、同所性４Ｔ１腫瘍に挑むマウスの生存利益、ＩＦＮγの同時損失により失われた利益の増加に関連する（図４Ｃおよび４Ｄ）。血管新生および転移の感受性に対するＩＬ６損失およびＩＤＯ１損失の影響の対応する類似性は、これらのプロセスに対するＩＤＯの影響の重要な下流メディエーターとして機能するＩＬ６と一致している。

ＩＤＯ１酵素活性の上昇は、肺における４Ｔ１転移増殖と一致する（Smith et al. (2012) Cancer Discov., 2:722-735）。ＩＤＯ１が発現している細胞の種類を決定するために、ＩＤＯ１特異的抗体を使用して、組織サンプル中のＩＤＯ１の存在を蛍光顕微鏡で検出した。転移性肺結節の免疫蛍光染色により、ＩＤＯ１は腫瘍浸潤性免疫細胞で発現され、腫瘍細胞自体では発現されないことが明らかになった（図５Ａ）。ＩＤＯ１^＋免疫細胞は肺転移に集中していたが、原発性４Ｔ１腫瘍にも脾臓にも集中しておらず、特定のＩＤＯ１発現サブタイプが４Ｔ１肺転移に局在するか、ＩＤＯ１がこの特定の微小環境で特異的に上昇していることを示唆している（図５Ａ）。さらなる評価により、４Ｔ１肺転移のＩＤＯ１^＋細胞も細胞表面マーカーＧｒ１に陽性であることが明らかになった（図５Ｂ）。Ｇｒ１は、ＭＤＳＣ（骨髄由来サプレッサー細胞）と呼ばれる免疫細胞集団のマウスを定義するマーカーの１つである。ＭＤＳＣを識別するために最も一般的に使用される他のマーカーはＣＤ１１ｂであるが、予期せずＩＤＯ１発現はこのマーカーと共局在しなかった。したがって、ＩＤＯ１は、古典的なＭＤＳＣに関連するが、それとは異なる免疫細胞の集団で発現する。免疫抑制活性のために熱心に研究されてきたＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋ＭＤＳＣｓとは異なり、Ｇｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞集団に関する情報はほとんど報告されておらず、これらの細胞とＩＤＯ１発現との関連性はこれまでにない。

血管新生をサポートする上でのＩＤＯ１を発現するＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞集団の役割を機能的に評価するために、これらの細胞は４Ｔ１肺転移から分離された。総ＣＤ４５^＋免疫細胞をフローサイトメトリーで分類し、Ｇｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－サブセットを分離した（図６Ａ）。従来のＭＤＳＣを表すはるかに普及しているＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋細胞集団は、ＩＤＯ１非発現比較細胞集団として同時に分離された。これらの分類された細胞集団の蛍光顕微鏡分析により、ＩＤＯ１陽性はＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞に限定され、ＣＤ１１ｂ陽性はＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋細胞に限定されたことが確認された（図６Ｂ）。特定の細胞集団がｉｎｖｉｖｏで血管新生を促進する能力を評価するために、マトリゲルと混合したＦＡＣＳ分離細胞を皮下に埋め込み、皮下プラグを形成した。９日後、切除されたプラグは、目視および連続切片の免疫蛍光染色の両方により、浸潤性の血管新生について評価された。Ｇｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞で調製されたプラグは、細胞が添加されていない陰性対照プラグと比較して、顕著な血管新生の証拠を示した（図６Ｃ）。定量的には、これはＧｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞の存在に関連する血管密度の１９０倍の増加になり（図６Ｄ）、この単離された細胞集団が血管新生を促進するのに十分であることを確認する。対照的に、Ｇｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋細胞で調製されたプラグでは、血管新生のわずかな証拠しか観察されず（図６Ｃ、６Ｄ）、この活性は、無差別に未成熟骨髄細胞と関連しているのではなく、むしろＣＤ１１ｂ^－サブタイプに特異的であることを示している。Ｇｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋細胞におけるＩＤＯ１の発現が血管新生を促進する能力に寄与するかどうかを評価するために、ＦＡＣＳ分離細胞をＩｄｏ１^－／－マウスで確立された４Ｔ１肺転移から調製した。ＷＴマウスから得られた細胞とは対照的に、Ｉｄｏ１^－／－Ｇｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^－細胞は、Ｇｒ１^＋ＣＤ１１ｂ^＋の対照と同様に血管新生を促進するのに効果がなく（図６Ｃ、６Ｄ）、ＩＤＯ１はこれらの細胞が血管新生を促進する能力に不可欠であることを示している。

本明細書で提供されるデータは、病的な血管新生をサポートする上でのＩＤＯ１の明確な生物学的役割を確立し、ＩＤＯ１が２つの競合する炎症性サイトカイン、ＩＦＮγとＩＬ６間の調節インターフェースでの統合を通じてこの結果を促進することを示す。血管新生は、ＩＤＯ１の喪失により大幅に減少し、この効果は、ＩＤＯ１の主要な誘導因子であるＩＦＮγの同時喪失により完全に逆転した。ＩＤＯ１依存性発現を示すことが知られているＩＬ６の喪失は、同様に、ＩＦＮγ依存性であると決定された血管新生の減少をもたらした。直接的な腫瘍の関連性は、同所性４Ｔ１肺転移モデルで確認され、このモデルでは、血管新生、転移性腫瘍負荷、および生存に対する対応する効果が観察された。

ＩＤＯ１の寛容原性の特性は広範囲にわたって調査されてきましたが、ＩＤＯ１が血管新生にも影響を与える可能性は、現時点では一般的に認識されておらず、生物学的に関連性があるとは明確に確立されていない。特に、外因性ＩＤＯ１を過剰発現するように設計されたヒト異種移植腫瘍は血管密度の増加を示す（Nonaka et al. (2011) Int. J. Oncol., 38:113-120; Li et al. (2006) J. Invest. Dermatol., 126:128-136）。正常な肺血管新生は、ＩＤＯ１ホモ欠損マウスでも減少する（Smith et al. (2012) Cancer Discov., 2:722-735）。現在のデータは、血管新生をサポートするための内因性ＩＤＯ１の重要性を示し、ＩＤＯ１依存性の血管新生と肺転移の発生との間の明確な相関関係を示している。現在のデータは、ＩＤＯ１を炎症性サイトカインＩＦＮγおよびＩＬ６との調節相互作用にリンクすることにより、この効果の根拠を説明する機構的な証拠も提供する。

樹状細胞やマクロファージなどの免疫細胞での発現に加え、内皮細胞でのＩＤＯ１発現も確認されている（Blaschitz, et al. (2011) PLoS One 6:e21774）。生化学的に、ＩＤＯ１はトリプトファンを異化することにより、２つの異なる代謝経路を介して信号を送ることができ、１つは下流のトリプトファン異化代謝物に応答し、もう１つはトリプトファン自体の枯渇に応答する。両方のメカニズムは、ＡＨＲ（アリール炭化水素受容体）を介したキヌレニンシグナル伝達、またはＧＣＮ２（ｇｅｎｅｒａｌｎｏｎｄｅｒｅｐｒｅｓｓｉｂｌｅ２）を介したアミノ酸枯渇シグナル伝達を介したＩＬ６の正の制御に関連付けられている（Dinatale et al. (2010) Toxicol. Sci., 115:89-97; Liu et al. (2014) Mol. Cell. Biol., 34:428-438）。

血管新生のサポートにおけるＩＤＯ１の役割を確立することに加えて、本明細書に提供されたデータは、薬理学的阻害剤の使用が血管新生に対する効果的な介入戦略であることを示している。４Ｔ１転移モデルでは、確立された血管新生した転移を宿すマウスにエパカドスタットを投与すると、治療に応答して血管新生のレベルが低下した。したがって、この結果は、血管新生の発達をサポートするＩＤＯ１の役割を単に繰り返すのではなく、ＩＤＯ１阻害剤による治療が確立された血管新生ネットワークを効果的に低下させることを示している。シクロホスファミドの抗血管作用はＩＦＮγ依存性であり（Ibe et al. (2001) J. Exp. Med., 194:1549-1559）、直接リンクされていない場合は、ＩＤＯ１による機械的収束も示唆されている。

ＩＤＯ１小分子阻害剤は、腫瘍に対する効果的な免疫応答を可能にするのに役立つとの想定に基づいて、現在さまざまな癌の臨床試験で評価されている。しかし、この研究は、血管新生も関与していることを示している。血管新生および転移の生存に対するＩＤＯ１、ＩＦＮγおよびＩＬ６の損失の効果の間に確立された明確な相互関係は、ＩＦＮγが腫瘍に対して及ぼす抗血管新生効果の重要性の他の指標と一致している（Qin et al. (2000) Immunity 12:677-686; Qin et al. (2003) Cancer Res., 63:4095-4100）。したがって、ＩＤＯ１阻害剤で得られた臨床結果を評価するときは、特に肺転移の状況で、腫瘍血管系への影響をさらに考慮する必要がある。

血管新生の分野における創発的な概念は、病理学的腫瘍の脈管構造を正常化することにより、化学療法および放射線療法の効果が高まるというものである。異なるマウス腫瘍モデルでＩＤＯ１シグナル伝達阻害剤と化学療法剤の組み合わせで得られる相乗的反応が観察されている（Hou et al. (2007) Cancer Res., 67:792-801; Muller et al. (2005) Nat. Med., 11:312-319）。さらに、臨床試験では、ＩＤＯ１経路阻害剤であるインドキシモドが腫瘍をサルベージ化学療法に対して感作するように見えることが指摘され（Soliman et al. (2013) J. Clin. Oncol., 31(suppl): abstr 3069）、化学療法の反応を改善する血管の正常化と一致している。ＩＤＯ１阻害はまた、シクロホスファミドなどの特定の化学療法薬によって誘発されるＩＦＮγ依存性の抗血管新生効果を高める可能性があり、これは、正常な宿主細胞でのＩＦＮγ受容体発現を必要とする方法で腫瘍血管の破壊により媒介される大きな血管新生腫瘍の免疫依存性拒絶を引き起こすことが報告されている（Ibe et al. (2001) J. Exp. Med. 194:1549-1559）。ＩＤＯ１によってＩＦＮγの抗血管新生効果に課される負のフィードバック制約を排除することにより、ＩＤＯ１阻害剤は、シクロホスファミドおよびタキサンなどの抗血管新生活性を有すると識別されている他の化学療法薬に対する治療反応のこの側面を強化できる（Bocci et al. (2002) Cancer Res., 62:6938-6943）。

実施例２
材料および方法
腫瘍低酸素症を検討しているＩＤＯ１阻害剤治療研究では、４Ｔ１生着後３．５週間で転移が確立したマウスに、１００μｌビヒクル（３％Ｎ，Ｎ－ジメチルアセトアミド、１０％２－ヒドロキシプロピル－β－シクロデキストリン）に５０ｍｇ／ｋｇのエパカドスタット（ChemieTek; Indianapolis, IN）を７２時間にわたってｂ．ｉ．ｄ．（１日２回）経口強制投与、または、１００μｌビヒクル（０．５％Ｔｗｅｅｎ８０／０．５％メチルセルロースｖ／ｖ水溶液）に４００ｍｇ／ｋｇのインドキシモド（Sigma-Aldrich; St. Louis, MO）を７２時間にわたってｂ．ｉ．ｄ．（１日２回）経口強制投与した。

４Ｔ１肺転移内の低酸素領域を視覚化するために、Ｈｙｐｏｘｙｐｒｏｂｅ^ＴＭＧｒｅｅｎＫｉｔ（Hydroxyprobe、Inc .; Burlington、MA）が製造元の指示に従って使用された。安楽死の１時間前に、マウスに６０ｍｇ／ｋｇのＨｙｐｏｘｙｐｒｏｂｅ^ＴＭ（塩酸ピモニダゾール）を静脈内注射した。肺の切片は、ピモニダゾールのタンパク質付加物に特異的に結合する供給者から提供されたＦＩＴＣ標識マウスＩｇＧ１モノクローナル抗体（４．３．１１．３）で染色された。

結果
上記のように、ＩＤＯ１阻害剤の投与により、転移性腫瘍の血管新生が減少した（図２）。ここでは、腫瘍への血液供給の不足による低酸素症の対応する増加が発生するかどうかが決定された。具体的には、ＩＤＯ１阻害剤であるエパカドスタットを、確立された４Ｔ１肺転移を有するマウスに７２時間にわたって強制経口投与した。安楽死の前に、この実験のマウスは、組織内の低酸素領域を優先的に標識する試薬であるＨｙｐｏｘｙｐｒｏｂｅ^ＴＭの注射も受けた。免疫蛍光共焦点顕微鏡の画像を図７に示す。エパカドスタットによる治療は、ビヒクルのみと比較して転移性腫瘍の血管新生の明らかな減少をもたらした（図７Ａ）。同様に、エパカドスタット治療後の転移性腫瘍のＨｙｐｏｘｙｐｒｏｂｅ^ＴＭ染色は、切片全体に存在する緑色の染色の領域によって証明されるように、ビヒクル治療対照と比較して低酸素の明らかな証拠を示した（図７Ｂ）。ＩＤＯ１経路阻害剤インドキシモドで処理した４Ｔ１担癌マウスでも同様の結果が得られた（図８Ａおよび８Ｂ）。これらの結果は、腫瘍から栄養素と酸素を奪うことで血管新生を妨害するＩＤＯ１阻害剤の利用を示し、癌細胞の酸素／栄養素飢餓を標的とする、または悪用する薬剤に対する感受性を高める。これらの結果は、腫瘍から栄養素と酸素を奪うことで血管新生を妨害するＩＤＯ１阻害剤の利用を示し、癌細胞の酸素／栄養素飢餓を標的とする、または利用する薬剤に対する感受性を高める。

本発明が関係する最新技術をより完全に説明するために、前述の明細書ではいくつかの刊行物および特許文書が引用されている。これらの引用のそれぞれの開示は、参照により本明細書に組み込まれる。

本発明の好ましい実施形態のいくつかを上で説明し、具体的に例示してきたが、本発明がそのような実施形態に限定されることは意図されていない。特許請求の範囲に記載されているように、本発明の範囲および精神から逸脱することなく、様々な修正を行うことができる。

Claims

対象においてがんを治療、阻害、および／または予防する方法であって、前記方法は、
１）インドールアミン２，３ジオキシゲナーゼ－１（ＩＤＯ１）による少なくとも１つの誘導、活性、またはシグナル伝達の阻害剤を前記対象に投与する工程と、
２）少なくとも１つの第２の薬剤を前記対象に投与する工程であって、前記第２の薬剤は、栄養素／酸素飢餓をがん細胞に課すことによって、またはがん細胞において栄養素／酸素飢餓を利用することによって作用する、少なくとも１つの抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤である、工程と
を有する、方法。
請求項１記載の方法において、前記がんは肺がんである、方法。
請求項１記載の方法において、前記がんは肺転移を有するものである、方法。
請求項１記載の方法において、前記阻害剤は、直接ＩＤＯ１阻害剤である、方法。
請求項４記載の方法において、前記ＩＤＯ１阻害剤は、小分子阻害剤である、方法。
請求項５記載の方法において、前記ＩＤＯ１阻害剤は、１－メチル－トリプトファンである、方法。
請求項１記載の方法において、前記第２の薬剤は、抗脈管形成剤／抗血管新生剤、低酸素活性化プロドラッグまたは生体還元剤、低酸素症への反応を利用する分子標的薬、および、栄養素や酸素欠乏によるストレスへの反応を利用する分子標的薬からなる群から選択される、方法。
請求項７記載の方法において、前記低酸素活性化プロドラッグまたは生体還元剤は、ＰＲ－１０４、エボフォスファミド、および、タルロキソチニブからなる群から選択される、方法。
請求項７記載の方法において、前記低酸素症への反応を利用する分子標的薬は、ＨＩＦ－１α阻害剤である、方法。
請求項７記載の方法において、前記第２の薬剤は、２－メルカプトプロピオニルグリシンジスルフィド、または、ヒドロキシエチルジスルフィド（ＨＥＤＳ）である、方法。
請求項７記載の方法において、前記第２の薬剤は、プロテインキナーゼＲ（ＰＫＲ）様小胞体キナーゼ（ＰＥＲＫ）阻害剤である、方法。
請求項１１記載の方法において、前記ＰＥＲＫ阻害剤はＧＳＫ２６５６１５７である、方法。
少なくとも１つのインドールアミン２，３ジオキシゲナーゼ－１（ＩＤＯ１）シグナル伝達の阻害剤と、栄養素／酸素飢餓をがん細胞に課すことによって、またはがん細胞において栄養素／酸素飢餓を利用することによって作用する、抗脈管形成剤／抗血管新生剤および／または治療剤と、少なくとも１つの薬学的に許容な担体とを有する組成物。