JP2002525119A

JP2002525119A - レセプターに基づくアンタゴニストならびに作製および使用の方法

Info

Publication number: JP2002525119A
Application number: JP2000572379A
Authority: JP
Inventors: ニールスタール，; ジョージディー．イアンコポウロス，
Original assignee: Regeneron Pharmaceuticals Inc
Current assignee: Regeneron Pharmaceuticals Inc
Priority date: 1998-09-25
Filing date: 1999-09-22
Publication date: 2002-08-13
Anticipated expiration: 2019-09-22
Also published as: ES2267300T3; NZ510720A; DE122010000023I1; DE69922269T2; ATE336583T1; IL142103A; DE69922269D1; WO2000018932A3; NO20011513D0; CA2345109A1; HK1045847B; DK1229047T3; NO20011513L; DE69932832T2; AU6499499A; JP3902728B2; FR10C0025I2; HK1045847A1; CA2345109C; IL142103A0

Abstract

(57)【要約】本発明は、サイトカインと結合して非機能性複合体を形成し得る融合ポリペプチドを提供する。この融合ポリペプチドをコードする核酸配列、ならびにこの融合ポリペプチドの作製および使用の方法もまた提供される。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】本出願は、１９９８年９月２５日出願の米国仮出願番号第６０／１０１，８５
８号の優先権を主張する、１９９９年５月１９日出願の米国出願番号０９／３１
３，９４２号の優先権を主張する。本出願を通じて、種々の刊行物が引用される
。これらの刊行物の開示は、本明細書においてその全体が本出願への参考として
援用される。

【０００２】（発明の背景）生物学的活性が変化することを発見したが、毛様神経栄養因子（ＣＮＴＦ）、
白血病阻害因子（ＬＩＦ）、オンコスタチンＭ（ＯＳＭ）およびインターロイキ
ン−６（ＩＬ−６）は、規定されたサイトカインのファミリー（本明細書におい
ては、以降、サイトカインの「ＣＮＴＦファミリー」と呼ぶ）を含む。これらの
サイトカインが一緒にグループ分けされるのは、その構造的類似性の距離によっ
てであり［Ｂａｚａｎ，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｎ７：１９７〜２０８（１９９１）；
ＲｏｓｅおよびＢｒｕｃｅ、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ
８８：８６４１〜８６４５（１９９１）］、そして、おそらく、より重要なこと
には、それらが「β」シグナル伝達レセプター成分を共有するからである［Ｂａ
ｕｍａｎｎら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６５：１９８５３〜１９８６２（１
９９３）；Ｄａｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０５〜１８０８（１９
９３）；Ｇｅａｒｉｎｇら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５５：１４３４〜１４３７（１
９９２）；Ｉｐら、Ｃｅｌｌ６９：１１２１〜１１３２（１９９２）；Ｓｔａ
ｈｌら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：７６２８〜７６３１（１９９３）；
ＳｔａｈｌおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ、Ｃｅｌｌ７４：５８７〜５９０（
１９９３）］。このファミリーのサイトカインによるレセプター活性化は、これ
らのβ成分のホモ二量体化、またはヘテロ二量体化のいずれかから生じる［Ｄａ
ｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０５〜１８０８（１９９３）、Ｍｕｒ
ａｋａｍｉら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０８〜１８１０（１９９３）；Ｓ
ｔａｈｌおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ、Ｃｅｌｌ７４：５８７〜５９０（１
９９３）］。ＩＬ−６レセプター活性化は、ＩＬ−６シグナルトランスデューサ
ー［Ｈｉｂｉら、Ｃｅｌｌ６３：１１４９〜１１５７（１９９０）］として最
初に同定されたタンパク質である、ｇｐ１３０のホモ二量体化を必要とする［Ｍ
ｕｒａｋａｍｉら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０８〜１８１０（１９９３）
、Ｈｉｂｉら、Ｃｅｌｌ６３：１１４９〜１１５７（１９９０）］。ＣＮＴＦ
，ＬＩＦおよびＯＳＭレセプター活性化は、ｇｐ１３０とＬＩＦＲβとして既知
の第２のｇｐ１３０関連タンパク質（これは、ＬＩＦへの結合能力によって最初
に同定された［Ｇｅａｒｉｎｇら、ＥＭＢＯＪ．１０：２８３９〜２８４８（
１９９１）］）との間のヘテロ二量体化から生じる［Ｄａｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎ
ｃｅ２６０：１８０５〜１８０８（１９９３）］。

【０００３】 β成分に加えて、これらのサイトカインのいくつかはまた、特異性決定「α」
成分を必要とする。この成分は、その組織分布がβ成分よりも限定されており、
そのため特定のサイトカインの細胞標的を決定する［ＳｔａｈｌおよびＹａｎｃ
ｏｐｏｕｌｏｓ、Ｃｅｌｌ７４：５８７〜５９０（１９９３）］。従って、Ｌ
ＩＦおよびＯＳＭは、応答する細胞上のｇｐ１３０およびＬＩＦＲβの存在のみ
を必要とし得る、広範に活性な因子である。一方、ＣＮＴＦは、ＣＮＴＦαを必
要とし［ＳｔａｈｌおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ、Ｃｅｌｌ７４：５８７〜
５９０（１９９３）］、そしてＩＬ−６は、ＩＬ−６Ｒαを必要とする［Ｋｉｓ
ｈｉｍｏｔｏら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５８：５９３〜５９７（１９９２）］。Ｃ
ＮＴＦＲα（Ｄａｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５９：１７３６〜１７３９（１
９９３）およびＩＬ−６Ｒα［Ｈｉｂｉら、Ｃｅｌｌ６３：１１４９〜１１５
７、Ｍｕｒａｋａｍｉら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０８〜１８１０（１９
９０）；Ｔａｇａら、Ｃｅｌｌ５８：５７３〜５８１（１９８９）］の両方は
、可溶性タンパク質として機能し得る。このことは、それらが細胞間シグナル伝
達分子と相互作用しないが、そのリガンドは適切なシグナル伝達βサブユニット
と相互作用することを補助するように働くという概念と一致する［Ｓｔａｈｌお
よびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ、Ｃｅｌｌ７４：５８７〜５９０（１９９３）］
。

【０００４】他のサイトカイン系からのさらなる証拠もまた、二量体化が、全てのサイトカ
インレセプターがシグナル伝達を開始する共通の機構を提供するという概念を支
持する。成長ホルモン（ＧＨ）は、この点に関して働くおそらく最良の例である
。結晶学的研究は、それぞれのＧＨ分子が２つの異なるレセプター結合部位を含
むことを示した。この両方の部位は、レセプター中の同じ結合ドメインにより認
識され、ＧＨの単一分子が２つのレセプター分子に係わり合うことを可能にする
［ｄｅＶｏｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５５：３０６〜３１２（１９９２）］。
二量体化は、引き続いて生じ、これはＧＨ上の部位１での１つのレセプター分子
への最初の結合、続いて、第２のレセプター分子への部位２の結合を伴う［Ｆｕ
ｈら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５６：１６７７〜１６８０（１９９２）］。エリスロ
ポエチン（ＥＰＯ）レセプターを用いる研究はまた、レセプター活性化における
二量体化の重要性と一致する。なぜなら、ＥＰＯレセプターは、システイン残基
を導入し、そしてジスルフィド結合二量体を生じる単一のアミノ酸変化により構
成的に活性化され得るからである［Ｗａｔｏｗｉｃｈら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．
Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９：２１４０〜２１４４（１９９２）］。

【０００５】レセプター活性化のための重要な工程であるβサブユニットのホモ二量体化ま
たはヘテロ二量体化に加えて、第２の重要な特徴は、サイトカインのＣＮＴＦフ
ァミリーによる最終レセプター複合体の形成が、リガンドが順序立てられた様式
でレセプター成分に首尾良く結合するような機構を通じて生じることである［Ｄ
ａｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０５〜１８１８（１９９３）；Ｓｔ
ａｈｌおよびＹａｎｃｏｐｏｌｕｓ、Ｃｅｌｌ７４：５８７〜５９０（１９９
３）］。従って、ＣＮＴＦは、最終的にＬＩＦＲβを補充してβ成分（これは、
次いで、シグナル伝達を開始する）のヘテロ二量体を形成する前に、まずＣＮＴ
ＦＲαに結合し、複合体を形成し、次いでこれはｇｐ１３０に結合して、単一の
β成分のみを有するためにシグナル伝達成分ではない中間体（本明細書ではαβ
１中間体と呼ぶ）を形成する。ＩＬ−６Ｒαに結合したＩＬ−６およびｇｐ１３
０の単一分子を含有する類似の中間体は、直接単離されていないが、本発明者ら
は、その遠い関連物であるＣＮＴＦに対する類似性によってそれが存在するとい
うこと、および最終活性化ＩＬ−６レセプター複合体が２つのｇｐ１３０モノマ
ーを補充するという事実を推論した。要するに、これらの知見は、一般的サイト
カインレセプター複合体の構造についての提案（図１）をもたらした。ここで、
各サイトカインは、以下の３つまでのレセプター結合部位を有し得る：任意のα
特異性決定成分に結合する部位（α部位）、第１のβシグナル伝達成分に結合す
る部位（β１部位）、および第２のβシグナル伝達成分に結合する部位（β２部
位）［ＳｔａｈｌおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ、Ｃｅｌｌ７４：５８７〜５
９０（１９９３）］。これらの３つの部位は、シグナル伝達を開始するために重
要な、複合体形成における最終工程（β成分二量体化を生じる）を伴う、連続的
な様式で用いられる［Ｄａｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０５〜１８
１８（１９９３）］。レセプター活性化の詳細およびＣＮＴＦに関する非機能性
β１中間体の存在という知識により、ＣＮＴＦは、特定の環境下でＩＬ−６に対
する高親和性アンタゴニストであるという知見が導かれた。そして、これは、以
下に詳細に記載するように、サイトカインのＣＮＴＦファミリーに対するリガン
ドまたはレセプターに基づくアンタゴニストを設計するための戦略的基礎を提供
する。

【０００６】一旦、サイトカイン結合がレセプター複合体形成を引き起こすと、β成分の二
量体化が、広範な種々の基質のリン酸化を生じる細胞内チロシンキナーゼ活性を
活性化する［Ｉｐら、Ｃｅｌｌ６９：１２１−１１３２（１９９２）］。チロ
シンキナーゼ活性のこの活性化は、下流の現象に重要であると思われる。なぜな
らばチロシンのリン酸化をブロックするインヒビターは、遺伝子誘導のような後
の現象をも妨げるからである［Ｉｐら、Ｃｅｌｌ６９：１２１−１１３２（１
９９２）；ＮａｋａｊｉｍａおよびＷａｌｌ、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１
１：１４０９−１４１８（１９９１）］。近年、本発明者らは、Ｊａｋ１、Ｊａ
ｋ２、およびＴｙｋ２（Ｊａｋ／Ｔｙｋキナーゼといわれる）［Ｆｉｒｍｂａｃ
ｈ−Ｋｒａｆｔら、Ｏｎｃｏｇｅｎｅ５：１３２９−１３３６（１９９０）；
Ｗｉｌｋｓら、Ｍｏｌ．Ｃｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１１：２０５７−２０６５（１９
９１］を含み、かつ他のサイトカインでのシグナル伝達［Ａｒｇｅｔｓｉｎｇｅ
ｒら、Ｃｅｌｌ７４：２３７−２４４（１９９３）；Ｓｉｌｖｅｎｎｏｉｎｅ
ｎら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９０：８４２９−８４
３３（１９９３）；Ｖｅｌａｚｑｕｅｚら、Ｃｅｌｌ７０：３１３−３２２（
１９９２）；Ｗｉｔｔｈｕｈｎら、Ｃｅｌｌ７４：２２７−２３６（１９９３
）］に関与する、非レセプターチロシンキナーゼの新たに発見したファミリーは
、リガンドの非存在化でβサブユニットのｇｐ１３０およびＬＩＦＲβの細胞質
ドメインと予め会合（ｐｒｅａｓｓｏｃｉａｔｅ）し、そしてリガンドの付加の
際にチロシンがリン酸化および活性化される［Ｓｔａｈｌら、Ｓｃｉｅｎｃｅ
２６３：９２−９５（１９９４）］ことを実証した。従って、これらのキナーゼ
は、リガンドが細胞の外側に結合する結果として、細胞の内側で活性化される細
胞内シグナル伝達の最も近い工程であると思われる。この系に基づく特異的アン
タゴニストまたはアゴニスト活性に関して低分子の収集物をスクリーニングする
ためのアッセイ系は、以下に記載される。

【０００７】サイトカインのＣＮＴＦファミリーは、潜在的なアンタゴニストおよびアゴニ
ストの両方の治療的適用を提供する、広範な種々の生理学的プロセスにおいて重
要な役割を果たす。

【０００８】（発明の要旨）本発明の１つの目的は、サイトカインに関連した疾患または障害の処置におい
て有用であるサイトカインアゴニストの産生である。

【０００９】本発明の別の目的は、サイトカインに関連した疾患または障害の処置のために
開示されたサイトカインアンタゴニストの使用である。例えば、本明細書中に記
載されるＩＬ−６アンタゴニストは、骨粗しょう症、癌の原発性および続発性の
影響（多発性骨髄腫、または悪液質を含む）の処置に用いられ得る。

【００１０】本発明の別の目的は、サイトカインレセプターの新規のアゴニストおよびアン
タゴニストを同定するために有用なスクリーニング系の開発である。

【００１１】本発明の別の目的は、サイトカインのアゴニストおよびアンタゴニストとして
作用する低分子を同定するために有用なスクリーニング系の開発である。

【００１２】本発明の別の目的は、サイトカインのＣＮＴＦファミリーのメンバーの新規の
アゴニストおよびアンタゴニストを同定するために有用なスクリーニング系の開
発である。

【００１３】本発明の別の目的は、サイトカインのＣＮＴＦファミリーのアゴニストまたは
アンタゴニストとして作用する低分子を同定するために有用なスクリーニング系
の開発である。

【００１４】（発明の詳細な説明）本発明は、サイトカインを結合して非機能性複合体を形成し得る融合ポリペプ
チドをコードする単離された核酸分子を提供し、これは以下を含む：ａ）サイトカインのレセプターの特異性決定成分の細胞外ドメインのサイトカ
イン結合部分のアミノ酸配列を含む、第１の融合ポリペプチド成分をコードする
ヌクレオチド配列；ｂ）サイトカインのレセプターのシグナル伝達成分の細胞外ドメインのサイト
カイン結合部分のアミノ酸配列を含む、第２の融合ポリペプチド成分をコードす
るヌクレオチド配列；およびｃ）多量体化成分のアミノ酸配列を含む、第３の融合ポリペプチド成分をコー
ドするヌクレオチド配列。

【００１５】「サイトカイン結合部分」により意味されるものは、サイトカインを結合する
ために必要な細胞外ドメインの最小部分である。サイトカインレセプターに特徴
的な定義は、最も簡単に図式化した（ｃａｎｏｎｉｃａｌ）システインを含む２
つのフィブロネクチン様ドメインの存在およびＷＳＸＷＳボックスの存在である
ことが、当業者により容認される（Ｂａｚａｎ，Ｊ．Ｆ．、１９９０、ＰＮＡＳ
８７：６９３４−６９３８）。サイトカインのレセプターの結合成分およびサ
イトカインのレセプターのシグナル伝達成分の細胞外ドメインをコードする配列
はまた、本発明の融合ポリペプチドを作製するために使用され得る。同様に、サ
イトカインのレセプターの成分のより大きい部分をコードするより長い配列が使
用され得る。しかし、細胞外ドメインより小さいフラグメントがサイトカインを
結合するように機能し、従って、本発明が、サイトカイン結合部分として、サイ
トカインを結合するために必要な細胞外ドメインの最小部分を含む融合ポリペプ
チドを意図することが意図される。

【００１６】本発明は、サイトカインのレセプターの「特異性決定成分」およびサイトカイ
ンのレセプターの「シグナル伝達成分」を含む。サイトカインレセプターの特定
の成分またはサブユニットを命名するために使用される命名法に関わらず、当業
者は、レセプターのいずれの成分またはサブユニットが、そのサイトカインの細
胞標的の決定を担うかを認識し、従って、いずれの成分が「特異性決定成分」を
構成するかを知る。

【００１７】同様に、使用される命名法に関わらず、当業者は、レセプターのいずれの成分
またはサブユニットが「シグナル伝達成分」を構成するかを知る。本明細書中で
使用される場合、「シグナル伝達成分」は、特異性決定成分ではなく、かつ特異
性決定成分の非存在下ではサイトカインを結合しないかまたは弱く結合するネイ
ティブのレセプターの成分である。ネイティブのレセプターにおいて、「シグナ
ル伝達成分」は、シグナル伝達に関与し得る。

【００１８】例えば、いくつかのサイトカインレセプターはαおよびβと命名される成分を
有するが、ＩＬ−４レセプターは、ＩＬ−２Ｒγと呼ばれるシグナル伝達成分を
有する。しかし、どんな名称が成分と関連するかに関わらず、当業者は、ＩＬ−
４レセプターのいずれの成分がシグナル伝達成分であるかを知る。従って、本発
明を実施するためおよびＩＬ−４に対する高親和性トラップを作製するために、
当業者は、以下を含む単離された核酸を作製する：ＩＬ−４レセプターの特異性
決定成分（ＩＬ−４Ｒα）の細胞外ドメインのサイトカイン結合部分のアミノ酸
配列を含む、第１の融合ポリペプチド成分をコードするヌクレオチド配列；ＩＬ
−４レセプターのシグナル伝達成分（ＩＬ−２Ｒγ）の細胞外ドメインのサイト
カイン結合部分のアミノ酸配列を含む、第２の融合ポリペプチド成分をコードす
るヌクレオチド配列；および、ＩＬ−４に対する高親和性トラップを作製するた
めの、多量体化成分（例えば、ＩｇＧのＦｃドメイン）のアミノ酸配列を含む、
第３の融合ポリペプチド成分をコードするヌクレオチド配列。

【００１９】本発明に従ってサイトカインアンタゴニスト調製するために使用され得るレセ
プター成分のいくつかのさらなる例を、表１に示す。表１は、制限するためでは
なく例示のために、特定のサイトカインレセプターの特異性決定成分として機能
するそれらの成分およびシグナル伝達成分として機能するそれらの成分を記載す
るために科学文献で使用された、変動した命名法のいくつかを示す。

【００２０】

【表１】多くの参考文献のうちのほんのわずかだけが表１に引用され、そしてそれらは
以下のように示される：１．ＳａｔｏおよびＭｉｙａｊｉｍａ、ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎｓｉ
ｎＣｅｌｌＢｉｏｌｏｇｙ６：１７４−１７９（１９９４）−第１７６頁
、第９行〜第１６行を参照のこと；２．Ｍｉｙａｊｉｍａら、ＡｎｎｕａｌＲｅｖｉｅｗｏｆＩｍｍｕｎｏｌ
ｏｇｙ１０：２９５−３３１（１９９２）−第２９５頁、第４行〜第２９６頁
、第１行；第３０５頁、最終段落を参照のこと；３．Ｋｏｎｄｏら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６２：１８７４−１８７７（１９９３）
−第１８７４頁、カラム１および２を参照のこと；４．Ｈｉｌｔｏｎら、ＥＭＢＯＪｏｕｒｎａｌ１３：４７６５−４７７５（
１９９４）−第４７６６頁、カラム１、第２０行〜第２４行を参照のこと；５．ＳｔａｈｌおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ、Ｃｅｌｌ７４：５８７−５９
０（１９９３）−第５８７頁、カラム２、第１５行〜第２２行を参照のこと；６．Ｂａｓｓｉｎｇら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｈｅ
ｍｉｓｔｒｙ２６９：１４８６１−１４８６４（１９９４）−第１４８６１頁
、カラム２、第１行〜第９行および第２１行〜第２８行を参照のこと；７．Ｋｏｔｅｎｋｏら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＳｃｉ
ｅｎｃｅ２７０：２０９１５−２０９２１（１９９５）−第２０９１５頁、要
約の第１行〜第５行を参照のこと；８．Ｇｒｅｅｎｆｅｄｅｒら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌ
Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ２７０：１３７５７−１３７６５（１９９５）−第１３７
５７頁、カラム１、第６行〜カラム２、第３行、およびカラム２、第１０行〜第
１２行；第１３７６４頁、カラム２、最後の３行、および第１３７６５頁、カラ
ム１、第１行〜第７行を参照のこと；９．ＬｅｂｒｕｎおよびＶａｌｅ、ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｅｌｌＢｉｏｌｏ
ｇｙ１７：１６８２−１６９１（１９９７）−第１６８２頁、要約、第２行〜
第６行を参照のこと；１０．ＫｅｎｎｅｄｙおよびＰａｒｋ、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＣｌｉｎｉｃａ
ｌＩｍｍｕｎｏｌｏｇｙ１６：１３４−１４３（１９９６）−第１３４頁、
要約の第１行〜第７行；第１３６頁、カラム２、第１行〜第５行を参照のこと；
１１．Ｗｅｓｃｈｅら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＢｉｏｌｏｇｉｃａｌＣｈｅ
ｍｉｓｔｒｙ２７２：７７２７−７７３１（１９９７）第７７３１頁、第２０
行〜第２６行を参照のこと。

【００２１】Ｋｏｔｅｎｋｏらは、活性ＩＬ−１０レセプター複合体のために、およびＩＬ
−１０誘導性のシグナル伝達事象を開始するために必須な、アクセサリー鎖とし
て機能することが報告されている、ＩＬ−１０Ｒ２（ＩＬ−１０Ｒβ）鎖を、最
近同定した（Ｓ．Ｖ．Ｋｏｔｅｎｋｏら、ＴｈｅＥＭＢＯＪｏｕｒｎａｌ，
１９９７，第１６巻：５８９４−５９０３）。さらなるサイトカインおよびそれ
らのレセプターは、ＣｕｒｒｅｎｔＢｉｏｌｏｇｙＬｔｄ．／Ｇａｒｌａｎ
ｄＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＩｎｃ．（版権１９９６）によって出版された、Ｃ
ｈａｒｌｅｓＡ．Ｊａｎｅｗａｙ，Ｊｒ．およびＰａｕｌＴｒａｖｅｒｓに
よる、Ｉｍｍｕｎｏｂｉｏｌｏｇｙ，ＴｈｅＩｍｍｕｎｅＳｙｓｔｅｍＩ
ｎＨｅａｌｔｈａｎｄＤｉｓｅａｓｅ，第２版の付録ＩＩ、Ａ：９頁に記
載される。

【００２２】本発明の融合ポリペプチドをコードする核酸配列を調製する際に、融合ポリペ
プチドの第１の成分、第２の成分、および第３の成分は、宿主ベクター系によっ
て発現された場合に、融合ポリペプチドのモノマー種を生成する、ヌクレオチド
の単一の鎖にコードされる。次いで、このようにして発現されたモノマーは、多
量体となる成分（第３の融合ポリペプチド成分）間の相互作用によって、多量体
となる。この様式で融合ポリペプチドを産生することは、第１および第２の成分
が、別個の分子として産生され、次いで多量体となった場合に生じる、ヘテロ二
量体混合物の精製のための必要性を回避する。例えば、１９９５年１１月２８日
に発行された米国特許第５，４７０，９５２号は、ＣＮＴＦまたはＩＬ−６アン
タゴニストとして機能するヘテロ二量体タンパク質の産生を記載する。このヘテ
ロ二量体は、適切なアルファ（α）成分およびベータ（β）成分とともに同時ト
ランスフェクトされた細胞株から精製される。次いで、ヘテロ二量体は、例えば
、調製用の非変性ポリアクリルアミドゲルからの受動的溶出の方法を使用して、
または、高圧陽イオン交換クロマトグラフィーを使用することによって、ホモ二
量体から分離される。この精製工程の必要性は、本発明の方法によって回避され
る。

【００２３】さらに、１９９６年４月１８日に公開された、ＤｉｍｅｒｉｃＩＬ−４Ｉ
ｎｈｉｂｉｔｏｒｓという表題のＰＣＴ国際出願ＷＯ９６／１１２１３は、出願
人が、２つのＩＬ−４レセプターがポリマー性スペーサーによって結合されるホ
モ二量体を調製し、そしてＩＬ−４レセプターが、ポリマー性スペーサーによっ
てＩＬ−２レセプターγ鎖に連結されているヘテロ二量体を調製したことを言及
する。記載されたポリマー性スペーサーは、ポリエチレングリコール（ＰＥＧ）
である。２つのレセプター成分、ＩＬ−４ＲおよびＩＬ−２Ｒγは、別個に発現
され、そして精製される。次いで、ＰＥＧ化（ｐｅｇｙｌａｔｅｄ）ホモ二量体
およびヘテロ二量体は、二官能性ＰＥＧ試薬を使用して、成分を互いに結合させ
ることによって産生される。このような時間を消費し、かつコストのかかる精製
およびＰＥＧ化工程の必要性を回避することが、本発明の利点である。

【００２４】本発明の１つの実施態様において、第１の成分をコードするヌクレオチド配列
は、第２の成分をコードするヌクレオチド配列の上流にある。本発明の別の実施
態様において、第１の成分をコードするヌクレオチド配列は、第２の成分をコー
ドするヌクレオチド配列の下流にある。第１の融合ポリペプチド成分、第２の融
合ポリペプチド成分、および第３の融合ポリペプチド成分の順番が再配列される
、本発明のさらなる実施態様が準備され得る。例えば、第１の成分をコードする
ヌクレオチド配列が１と命名され、第２の成分をコードするヌクレオチド配列が
２と命名され、そして第３の成分のヌクレオチド配列が３と命名される場合、５
’から３’まで読まれるような本発明の単離された核酸における成分の順番は、
以下の６つの組み合わせのいずれかであり得る：１、２、３；１、３、２；２、
１、３；２、３、１；３、１、２；または３、２、１。

【００２５】本発明のさらなる実施態様において、融合ポリペプチドによって結合されるサ
イトカインは、インターロイキン−２、インターロイキン−３、インターロイキ
ン−４、インターロイキン−５、インターロイキン−６、インターロイキン−７
、インターロイキン−９、インターロイキン−１１、インターロイキン−１３、
インターロイキン−１５、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、オンコスタ
チンＭ、白血病阻害因子、およびカルジオトロフィン（ｃａｒｄｉｏｔｒｏｐｈ
ｉｎ）−１からなる群より選択されるサイトカインの造血素ファミリーのメンバ
ーであり得る。

【００２６】本発明のさらなる実施態様において、融合ポリペプチドによって結合されるサ
イトカインは、ＩＦＮ−γ、ＩＦＮ−α、およびＩＦＮ−βからなる群より選択
されるサイトカインのインターフェロンファミリーのメンバーであり得る。

【００２７】本発明のさらなる実施態様において、融合ポリペプチドによって結合されるサ
イトカインは、Ｂ７．１（ＣＤ８０）およびＢ７．２（Ｂ７０）からなる群より
選択されるサイトカインの免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバーであり
得る。

【００２８】本発明のなおさらなる実施態様において、融合ポリペプチドによって結合され
るサイトカインは、ＴＮＦ−α、ＴＮＦ−β、ＬＴ−β、ＣＤ４０リガンド、Ｆ
ａｓリガンド、ＣＤ２７リガンド、ＣＤ３０リガンド、および４−１ＢＢＬから
なる群より選択されるサイトカインのＴＮＦファミリーのメンバーであり得る。

【００２９】本発明のさらなる実施態様において、融合ポリペプチドによって結合されるサ
イトカインは、インターロイキン−１、インターロイキン−１０、インターロイ
キン−１２、インターロイキン−１４、インターロイキン−１８、およびＭＩＦ
からなる群より選択されるサイトカインであり得る。

【００３０】特異性の決定およびシグナル伝達は、サイトカインのＴＧＦ−β／ＢＭＰファ
ミリーにおけるのと類似の機構によって生じるので（Ｄ．Ｋｉｎｇｓｌｅｙ，Ｇ
ｅｎｅｓ＆Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，１９９４，８：１３３−１４６；Ｊ．
Ｗｒａｎａ，ＭｉｎｅｒＥｌｅｃｔｒｏｌｙｔｅＭｅｔａｂ，２４：１２０
−１３０（１９９８）；Ｒ．ＤｅｒｙｎｃｋおよびＸ．Ｆｅｎｇ，Ｂｉｏｃｈｉ
ｍｉｃａｅｔＢｉｏｐｈｙｓｉｃａＡｃｔａ１３３３（１９９７）Ｆ１
０５−Ｆ１５０；ならびにＪ．ＭａｓｓａｇｕｅおよびＦ．Ｗｅｉｓ−Ｇａｒｃ
ｉａ，「Ｓｅｒｉｎｅ／ｔｈｒｅｏｎｉｎｅＫｉｎａｓｅＲｅｃｅｐｔｏｒ
ｓ：ＭｅｄｉａｔｏｒｓｏｆＴｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇＧｒｏｗｔｈＦ
ａｃｔｏｒＢｅｔａＦａｍｉｌｙＳｉｇｎａｌｓ」ＣａｎｃｅｒＳｕｒ
ｖｅｙｓ、第２７巻：ＣｅｌｌＳｉｇｎａｌｉｎｇ、１９９６、Ｉｍｐｅｒｉ
ａｌＣａｎｃｅｒＲｅｓｅａｒｃｈＦｕｎｄを参照のこと）、本発明は、
ＴＧＦ−β／ＢＭＰファミリーのメンバーであるサイトカインについての高親和
性のアンタゴニストを産生するために使用され得る。

【００３１】従って、本発明のさらなる実施態様において、融合ポリペプチドによって結合
されるサイトカインは、ＴＧＦ−β１、ＴＧＦ−β２、ＴＧＦ−β３、ＢＭＰ−
２、ＢＭＰ−３ａ、ＢＭＰ−３ｂ、ＢＭＰ−４、ＢＭＰ−５、ＢＭＰ−６、ＢＭ
Ｐ−７、ＢＭＰ−８ａ、ＢＭＰ−８ｂ、ＢＭＰ−９、ＢＭＰ−１０、ＢＭＰ−１
１、ＢＭＰ−１５、ＢＭＰ−１６、子宮内膜出血関連因子（ＥＢＡＦ）、増殖分
化因子−１（ＧＤＦ−１）、ＧＤＦ−２、ＧＤＦ−３、ＧＤＦ−５、ＧＤＦ−６
、ＧＤＦ−７、ＧＤＦ−８、ＧＤＦ−９、ＧＤＦ−１２、ＧＤＦ−１４、ミュー
ラー阻害物質（ＭＩＳ）、アクチビン−１、アクチビン−２、アクチビン−３、
アクチビン−４、およびアクチビン−５からなる群より選択されるＴＧＦ−β／
ＢＭＰファミリーのメンバーであり得る。

【００３２】本発明の代替的な実施態様において、特異性決定成分、シグナル伝達成分、ま
たはその両方は、単鎖Ｆｖによって置換され得る。単鎖Ｆｖ（ｓｃＦｖ）は、合
成ペプチドのストレッチによって、軽鎖のＶ領域に連結された重鎖のＶ領域のみ
を有する短縮型Ｆａｂである。例えば、本明細書中に参考として援用される、Ｃ
ａｍｂｒｉｄｇｅＡｎｔｉｂｏｄｙＴｅｃｈｎｏｌｏｇｙＬｉｍｉｔｅｄ
に与えられた、米国特許第５，５６５，３３２号；同第５，７３３，７４３号；
同第５，８３７，２４２号；同第５，８５８，６５７号および同第５，８７１，
９０７号を参照のこと。従って、本発明は、例えば、サイトカインを結合して、
機能的でない複合体を形成し得る融合ポリペプチドをコードする単離された核酸
分子を意図し、この複合体は、サイトカインのレセプターの成分を決定する特異
性の細胞外ドメインのサイトカイン結合部分のアミノ酸配列を含む第１の融合ポ
リペプチド成分をコードするヌクレオチド配列；サイトカインのレセプターの成
分を決定する特異性の細胞外ドメインのサイトカイン結合部分が結合する部位と
異なる部位でサイトカインを結合し得るｓｃＦｖのアミノ酸配列を含む第２の融
合ポリペプチド成分をコードするヌクレオチド配列；および、多量体となる成分
のアミノ酸配列を含む第３の融合ポリペプチド成分をコードするヌクレオチド配
列を含む。あるいは、特異性決定成分は、シグナル伝達成分が結合する部位とは
異なるサイトカイン上の部位に結合するｓｃＦｖによって置換され得る。従って
、本発明は、サイトカインを結合して、機能的でない複合体を形成し得る融合ポ
リペプチドをコードする単離された核酸分子を意図し、この複合体は、サイトカ
インのレセプターのシグナル伝達成分の細胞外ドメインのサイトカイン結合部分
が結合する部位とは異なるサイトカイン上の部位に結合するｓｃＦｖのアミノ酸
配列を含む第１の融合ポリペプチド成分をコードするヌクレオチド配列；サイト
カインのレセプターのシグナル伝達成分の細胞外ドメインのサイトカイン結合部
分のアミノ酸配列を含む第２の融合ポリペプチド成分をコードするヌクレオチド
配列；および、多量体となる成分のアミノ酸配列を含む第３の融合ポリペプチド
成分をコードするヌクレオチド配列を含む。

【００３３】別の実施態様において、本発明は、サイトカインを結合して、機能的でない複
合体を形成し得る融合ポリペプチドをコードする単離された核酸分子を意図し、
この複合体は、サイトカイン上の部位に結合する第１のｓｃＦｖのアミノ酸配列
を含む第１の融合ポリペプチド成分をコードするヌクレオチド配列；第１のｓｃ
Ｆｖが結合する部位とは異なるサイトカイン上の部位に結合する第２のｓｃＦｖ
のアミノ酸配列を含む第２の融合ポリペプチド成分をコードするヌクレオチド配
列；および、多量体となる成分のアミノ酸配列を含む第３の融合ポリペプチド成
分をコードするヌクレオチド配列を含む。

【００３４】ｓｃＦｖを含む上記の実施態様のすべてにおいて、本発明はまた、第１の成分
をコードするヌクレオチド配列が、第２の成分をコードするヌクレオチド配列の
上流である実施態様；第１の成分をコードするヌクレオチド配列が、第２の成分
をコードするヌクレオチド配列の下流である実施態様；ならびに、第１の融合ポ
リペプチド成分、第２の融合ポリペプチド成分、および第３の融合ポリペプチド
成分の順番が再配列される、本発明のさらなる実施態様を意図する。例えば、第
１の成分をコードするヌクレオチド配列が１と命名され、第２の成分をコードす
るヌクレオチド配列が２と命名され、そして第３の成分のヌクレオチド配列が３
と命名される場合、５’から３’まで読まれるような本発明の単離された核酸に
おける成分の順番は、以下の６つの組み合わせのいずれかであり得る：１、２、
３；１、３、２；２、１、３；２、３、１；３、１、２；または３、２、１。

【００３５】本発明の好ましい実施態様において、多量体となる成分は、免疫グロブリン由
来のドメインを含む。より具体的には、免疫グロブリン由来ドメインは、ＩｇＧ
のＦｃドメイン、ＩｇＧの重鎖、およびＩｇＧの軽鎖からなる群より選択され得
る。別の実施態様において、多量体となる成分は、最初の５つのアミノ酸（シス
テインを含む）が取り除かれて、Ｆｃ（ΔＣ１）と呼ばれる多量体となる成分を
生成したＦｃドメインであり得る。あるいは、多量体となる成分は、最初の５つ
のアミノ酸中のシステインが別のアミノ酸（例えば、セリンまたはアラニン）に
よって置換されたＦｃドメインであり得る。

【００３６】本発明はまた、本発明の単離された核酸分子によってコードされる融合ポリペ
プチドを提供する。好ましくは、その融合ポリペプチドは、第３の多量体となる
成分の機能によって、多量体形態である。好ましい実施態様において、その多量
体は二量体である。適切な多量体となる成分は、免疫グロブリン重鎖ヒンジ領域
をコードする配列（Ｔａｋａｈａｓｈｉら、１９８２，Ｃｅｌｌ２９：６７１
−６７９）；免疫グロブリン遺伝子配列、およびその部分である。本発明の好ま
しい実施態様において、免疫グロブリン遺伝子配列、とりわけ、Ｆｃドメインを
コードするものは、第３の多量体となる成分をコードするように使用される。

【００３７】本発明はまた、本明細書中に記載されるような本発明の核酸分子を含むベクタ
ーを意図する。

【００３８】本明細書中に記載されるような本発明の核酸を含む発現ベクターもまた提供し
、ここで、この核酸分子は、発現制御配列に作動可能に連結される。融合ポリペ
プチドの産生のための宿主ベクター系もまた提供し、これは、融合ポリペプチド
の発現に適切な宿主細胞内に導入された本発明の発現ベクターを含む。適切な宿
主細胞は、細菌細胞（例えば、Ｅ．ｃｏｌｉ）、酵母細胞（例えば、Ｐｉｃｈｉ
ａｐａｓｔｏｒｉｓ）、昆虫細胞（例えば、Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａｆｒｕｇ
ｉｐｅｒｄａ）、または哺乳動物細胞（例えば、ＣＯＳ細胞、ＣＨＯ細胞、２９
３細胞、ＢＨＫ細胞またはＮＳ０細胞）であり得る。

【００３９】本発明はまた、本発明の融合ポリペプチドを産生する方法を提供し、この方法
は、本明細書中に記載の宿主ベクター系の細胞を、融合ポリペプチドが産生可能
な条件下で培養する工程、およびこのように産生された融合ポリペプチドを回収
する工程による。

【００４０】本発明は、サイトカイン（例えばＣＮＴＦファミリーのサイトカイン）によっ
て共有されるレセプター成分に基づく新規アンタゴニストを提供する。

【００４１】本明細書中に記載の発明は、α特異性決定成分を利用する、任意のサイトカイ
ンに対するアンタゴニストの産生を意図し、このα特異性決定成分は、サイトカ
インと結合した場合に、第１のβシグナル伝達成分に結合して非機能性中間体を
形成し、次いで、この中間体は、第２のβシグナル伝達成分に結合して、βレセ
プター二量体化および引き続くシグナル伝達を生じる。本発明に従って、レセプ
ターの可溶性α特異性決定成分（ｓＲα）およびサイトカインレセプターの第１
のβシグナル伝達成分（β１）の細胞外ドメインが結合して、ヘテロ二量体（ｓ
Ｒα：β１）を形成し、このヘテロ二量体は、サイトカインと結合して、非機能
性複合体を形成することによってサイトカインに対するアンタゴニストとして作
用する。

【００４２】実施例１に記載されるように、ＣＮＴＦおよびＩＬ−６は、β１レセプター成
分ｇｐ１３０を共有する。ＣＮＴＦが、ＣＮＴＦＲαおよびｇｐ１３０と共に中
間体を形成するという事実は、ＬＩＦＲβを欠失する細胞において実証され得（
実施例１）、ここで、ＣＮＴＦとＣＮＴＦＲαとの複合体は、ｇｐ１３０と結合
し、そしてＩＬ−６およびＩＬ−６Ｒαによるｇｐ１３０のホモ二量体化を妨げ
、これによって、シグナル伝達をブロックする。これらの研究は、リガンドの存
在下で、非機能的中間体複合体（リガンド、そのαレセプター成分およびそのβ
１レセプター成分からなる）が形成され得る場合に、この複合体が、リガンドの
作用を効果的にブロックすることを示すので、これらの研究は、本明細書中に記
載のＩＬ−６アンタゴニストの開発の基礎を提供する。他のサイトカインは、他
のβ１レセプター成分（例えば、ＬＩＦＲβ）を使用し得、これらもまた、本発
明に従ってアンタゴニストを産生するために使用され得る。

【００４３】従って、例えば、本発明の１つの実施態様において、ＩＬ−６またはＣＮＴＦ
の効果的なアンタゴニストは、それらのレセプターのα特異性決定成分（それぞ
れ、ｓＩＬ−６ＲαおよびｓＣＮＴＦＲα）の細胞外ドメインとｇｐ１３０の細
胞外ドメインとのヘテロ二量体からなる。この合成されたヘテロ二量体は、本明
細書中以降、それぞれ、ｓＩＬ−６Ｒα：β１およびｓＣＮＴＦＲα：β１と称
し、それぞれ、ＩＬ−６またはＣＮＴＦに対する高親和性トラップとして機能し
、従って、サイトカインを、それらのレセプターのネイティブな膜結合形態とシ
グナル伝達複合体を形成させないようにさせる。

【００４４】レセプターの細胞外部分由来のドメインと結合する可溶性リガンドは、これら
のリガンドに対するトラップとして幾分効果的であり、そして従ってアンタゴニ
ストとして作用することが示されたが［Ｂａｒｇｅｔｚｉら、ＣａｎｃｅｒＲ
ｅｓ．５３：４０１０−４０１３（１９９３）；ら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃ
ａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９：８６１６−８６２０（１９９２）；Ｍｏｈｌｅｒ
ら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５１：１５４８−１５６１（１９９３）；Ｎａｒａ
ｚａｋｉら、Ｂｌｏｏｄ８２：１１２０−１１２６（１９９３）］、ＩＬ−６
レセプターおよびＣＮＴＦレセプターは、αレセプター成分がリガンド結合ドメ
インを構成し、これらのドメインが、これらのリガンドと共に、可溶性形態でレ
セプターアゴニストとして効果的に機能するという点で通常ではない［Ｄａｖｉ
ｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５９：１７３６−１７３９（１９９３）；Ｔａｇａら
、Ｃｅｌｌ５８：５７３−５８１（１９８９）］。本発明に従って調製された
ｓＲα：β１ヘテロ二量体は、機能的中間体を作製することなくピコモル濃度の
範囲の親和性でこれらのリガンドと結合する（ＰＣ１２Ｄ細胞に対するＣＮＴＦ
についての結合研究に基づいて）、これらのリガンドに対する効果的なトラップ
を提供する。本明細書中に記載の技術を適用して、特異性を付与するα−成分、
ならびにこのα−特異性成分に結合される場合に、いずれかの成分単独よりもサ
イトカインに対するより高い親和性を有するβ成分を利用して、任意のサイトカ
インに対するサイトカイントラップを開発し得る。従って、本発明に従うアンタ
ゴニストは、以下のアンタゴニストを含む：インターロイキン１〜インターロイ
キン５［ＩＬ−１、Ｇｒｅｅｎｆｅｄｅｒら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２７０
：１３７５７−１３７６５（１９９５）；Ｇｕｏら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．
２７０：２７５６２−２７５６８（１９９５）］、ＩＬ−２；［Ｔａｎｉｇｕｃ
ｈｉら、欧州特許第０３８６２８９−Ａ号および同第０３８６３０４−Ａ号（１
９９０）；Ｔａｋｅｓｈｉｔａら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５７：３７９−３８２（
１９９２）］；ＩＬ−３；［Ｋｉｔａｍｕｒａら、Ｃｅｌｌ６６：１１６５−
１１７４（１９９１）］、ＩＬ−４；［Ｉｄｚｅｒｄａら、Ｊ．Ｅｘｐ．Ｍｅｄ
．１７１：８６１−８７３（１９９０）］、ＩＬ−５；［Ｔａｖｅｒｎｅｉｒら
、Ｃｅｌｌ６６：１１７５−１１８４（１９９１）］、ＩＬ−１１［（Ｃｈｅ
ｒｅｌら、ＥＭＢＬ／ＧｅｎＢａｎｋ／ＤＤＢＪデータベースへのＤｉｒｅｃｔ
Ｓｕｂｍｉｓｓｉｏｎ；登録番号Ｚ３８１０２）］、インターロイキンン１５
［ＩＬ−１５；Ｈｅｍａｒら、Ｊ．ＣｅｌｌＢｉｏｌ．１２９５：５５−６４
（１９９５）；Ｔａｎｉｇｕｃｈｉら、欧州特許第０３８６２８９−Ａ号および
同第０３８６３０４−Ａ号（１９９０）；Ｔａｋｅｓｈｉｔａら、Ｓｃｉｅｎｃ
ｅ２５７：３７９−３８２（１９９２）］、顆粒球−マクロファージコロニー
刺激因子［ＧＭ−ＣＳＦ；Ｈａｙａｓｈｉｄａら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａ
ｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９７：９６５５−９６５９（１９９０）］、ＬＩＦ、γイ
ンターフェロン［ＩＦＮγ；Ａｇｕｅｔら、Ｃｅｌｌ５５：２７３−２８０（
１９８８）；Ｓｏｈら、Ｃｅｌｌ７６：７９３−８０２（１９９４）］、およ
びトランスフォーミング増殖因子β［ＴＧＦβ；Ｉｎａｇａｋｉら、Ｐｒｏｃ．
Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９０：５３５９−５３６３［１９９３）
］。

【００４５】 αレセプター細胞外ドメインおよびβレセプター細胞外ドメインは、当業者に
公知の方法を使用して調製され得る。ＣＮＴＦＲαレセプターは、クローン化さ
れ、配列決定され、そして発現されている［Ｄａｖｉｓら、（１９９１）Ｓｃｉ
ｅｎｃｅ２５３：５９−６３（本明細書中にその全体が参考として援用される
）］。ＬＩＦＲβおよびｇｐ１３０のクローニングは、Ｇｅｒｉｎｇら、ＥＭＢ
ＯＪ．１０：２８３９−２８４８（１９９１），Ｈｉｂｉら、Ｃｅｌｌ６３
：１１４９−１１５７（１９９０）および公開ＰＣＴ出願ＷＯ９３／１０１５１
（１９９３年５月２７日公開）（これら全ては、本明細書中にそれら全体が参考
として援用される）に記載される。

【００４６】本発明の実施に有用なレセプター分子は、原核生物発現系または真核生物発現
系における、クローニングおよび発現によって調製され得る。この組換えレセプ
ター遺伝子は、かなり多数の方法を利用して発現および精製され得る。この因子
をコードする遺伝子は、細菌発現ベクター（例えば、ｐＣＰ１１０のような（し
かし、これに限定されない））内にサブクローニングされ得る。

【００４７】組換え因子は、安定な生物学的に活性なタンパク質の引き続く形成を可能にす
る任意の技術によって精製され得る。例えば、これらに限定されないが、この因
子は、可溶性タンパク質または封入体のいずれかとして細胞から回収され得、こ
れらから、８Ｍ塩酸グアニジンおよび透析によって定量的に抽出され得る。因子
のさらなる精製のために、従来のイオン交換クロマトグラフィー、疎水性相互作
用クロマトグラフィー、逆相クロマトグラフィーまたはゲル濾過が、使用され得
る。

【００４８】ｓＲα：βヘテロ二量体レセプターは、βレセプターヘテロ二量体の産生を記
載する「ＲｅｃｅｐｔｏｒｆｏｒＯｎｃｏｓｔａｔｉｎＭａｎｄＬｅ
ｕｋｅｍｉａＩｎｈｉｂｉｔｏｒｙＦａｃｔｏｒ」という表題の公開ＰＣＴ
出願ＷＯ９３／１０１５１（１９９３年５月２７日公開）に記載されるように、
公知の融合領域を使用して操作され得るか、またはこれらは、化学的手段による
細胞外ドメインの架橋によって調製され得る。利用されるドメインは、α成分お
よびβ成分の細胞外ドメイン全体からなり得るか、またはこれらは、ｓＲα：β
１複合体においてそのリガンドおよび他の成分と複合体を形成する能力を維持す
る、それらの変異体またはフラグメントからなり得る。例えば、以下の実施例４
に記載されるように、ＩＬ−６アンタゴニストは、その３つのフィブロネクチン
様ドメインを欠失するｇｐ１３０を使用して調製される。

【００４９】本発明の１つの実施態様において、細胞外ドメインは、ロイシンジッパーを使
用して操作される。ヒト転写因子ｃ−ｊｕｎおよびｃ−ｆｏｓのロイシンジッパ
ードメインは、１：１の化学量論で安定なヘテロ二量体を形成することが示され
ている［ＢｕｓｃｈおよびＳａｓｓｏｎｅ−Ｃｏｒｓｉ，ＴｒｅｎｄｓＧｅｎ
ｅｔｉｃｓ６：３６−４０（１９９０）；Ｇｅｎｔｚら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２
４３：１６９５−１６９９（１９８９）］。ｊｕｎ−ｊｕｎホモ二量体もまた形
成することが示されているが、これらは、ｊｕｎ−ｆｏｓヘテロ二量体より安定
性が約１０００分の１未満である。ｆｏｓ−ｆｏｓホモ二量体は、検出されなか
った。

【００５０】ｃ−ｊｕｎまたはｃ−ｆｏｓのいずれかのロイシンジッパードメインは、キメ
ラ遺伝子を遺伝的に操作することによって、上記のレセプター成分の可溶性ドメ
インまたは細胞外ドメインのＣ末端にインフレームで融合される。これらの融合
は直接的であり得るか、またはこれらの融合は、可撓性リンカードメイン（例え
ば、ヒトＩｇＧのヒンジ領域）、または種々の長さおよび組み合わせで、低分子
アミノ酸（例えば、グリシン、セリン、スレオニンまたはアラニン）からなるポ
リペプチドリンカーを使用し得る。さらに、キメラタンパク質は、Ｈｉｓ−Ｈｉ
ｓ−Ｈｉｓ−Ｈｉｓ−Ｈｉｓ−Ｈｉｓ（Ｈｉｓ６）［配列番号１］によってタグ
化されて、金属キレートクロマトグラフィーにより迅速な精製を可能にし得るか
、そして／または抗体が利用可能なエピトープによってタグ化されて、ウェスタ
ンブロット、免疫沈降、またはバイオアッセイにおける活性の欠損／ブロッキン
グでの検出を可能にし得る。

【００５１】別の実施態様において、以下の実施例３に記載されるように、ｓＲα：β１ヘ
テロ二量体は、ヒトＩｇＧ１のＦｃ−ドメインを使用することを除き、類似の方
法を使用して調製される［Ａｒｕｆｆｏら、Ｃｅｌｌ６７：３５−４４（１９
９１）］。後者とは反対に、ヘテロ二量体の形成は、Ｆｃ−ドメインを保持する
キメラ分子がジスルフィド結合されたホモ二量体として発現されるので、生化学
的に活性化されるはずである。従って、ホモ二量体は、鎖間ジスルフィドの破壊
に有利であるが、鎖内ジスルフィドに影響を及ぼさない条件下で還元され得る。
次いで、異なる細胞外部分を有するモノマーは、等モル量で混合され、そして酸
化されてホモ二量体およびヘテロ二量体の混合物を形成する。この混合物の成分
は、クロマトグラフィー技術によって分離される。あるいは、この型のヘテロ二
量体の形成を、レセプター成分の可溶性部分または細胞外部分（これに、ｈＩｇ
ＧのＦｃ−ドメインが続き、これに上記のｃ−ｊｕｎロイシンジッパーまたはｃ
−ｆｏｓロイシンジッパーのいずれかが続く）からなる分子を遺伝的に操作およ
び発現することによって偏向し得る［Ｋｏｓｔｅｌｎｙら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ
．１４８：１５４７−１５５３（１９９２）］。これらのロイシンジッパーは、
ヘテロ二量体を主に形成するので、これらは、所望の場合、ヘテロ二量体の形成
を駆動するために使用され得る。ロイシンジッパーを使用する記載されたキメラ
タンパク質について、これらはまた、金属キレートまたはエピトープでタグ化さ
れ得る。このタグ化ドメインは、金属キレートクロマトグラフィーによって迅速
な精製のために使用され得るか、そして／または抗体によってウェスタンブロッ
ト、免疫沈降、またはバイオアッセイにおける活性の減損／ブロッキングでの検
出を可能にするために使用され得る。

【００５２】さらなる実施態様において、ヘテロ二量体は、二量体の形成を駆動するドメイ
ン由来の他の免疫グロブリンを使用して調製され得る。このようなドメインとし
ては、例えば、ＩｇＧの重鎖（Ｃγ１およびＣγ４）、ならびにヒト免疫グロブ
リンのカッパ（κ）軽鎖およびラムダ（λ）軽鎖の定常領域が挙げられる。Ｃγ
の軽鎖とのヘテロ二量体化は、ＣγのＣＨ１ドメインと軽鎖（ＣＬ）の定常領域
との間で生じ、そして単一のジスルフィド架橋を介して２つのドメインの共有結
合によって安定化される。従って、実施例４に記載されるように、構築物は、こ
れらの免疫グロブリンドメインを使用して調製される。あるいは、免疫グロブリ
ンドメインは、二量体化を駆動するＴ細胞レセプター成分から誘導され得るドメ
インを含む。本発明の別の実施態様において、ｓＲα：β１ヘテロ二量体は、可
撓性リンカーループを利用してキメラ分子として発現することによって調製され
得る。このキメラタンパク質をコードするＤＮＡ構築物は、それが、可撓性ルー
プによって共に直列（「ヘッド−ヘッド」）に融合された２つの可溶性ドメイン
または細胞外ドメインを発現するように設計される。このループは、全体的に人
工的（例えば、一定間隔でセリンまたはスレオニンによって干渉されるポリグリ
シン反復）であり得るか、天然に存在するタンパク質（例えば、ｈＩｇＧのヒン
ジ領域）から「拝借」され得る。分子は、融合される可溶性ドメインまたは細胞
外ドメインの順序が、スイッチされる（例えば、ｓＩＬ６Ｒα／ループ／ｓｇｐ
１３０またはｓｇｐ１３０／ループ／ｓＩＬ−６Ｒα）か、そして／またはルー
プの長さおよび組成が変更されるように操作され、所望の特徴を有する分子の選
択を可能にする。

【００５３】あるいは、本発明に従って作製されたヘテロ二量体は、適切なα成分およびβ
成分で同時トランスフェクトされた細胞株から精製され得る。ヘテロ二量体は、
当業者に利用可能な方法を使用してホモ二量体から分離され得る。例えば、限定
量のヘテロ二量体は、調製用の非変性ポリアクリルアミドゲルからの受動的溶出
によって回収され得る。あるいは、ヘテロ二量体は、高圧カチオン交換クロマト
グラフィーを使用して精製され得る。優れた精製は、ＭｏｎｏＳカチオン交換
カラムを使用して得られている。

【００５４】遊離ＣＮＴＦまたはＩＬ−６を結合することによってアンタゴニストとして作
用するｓＲα：β１ヘテロ二量体に加えて、本発明はまた、新規な特性を有する
ＩＬ−６の操作された変異バージョンの使用を企図し、この新規な特性は、ＩＬ
−６のバージョンを、ＩＬ−６Ｒαおよび１個のｇｐ１３０分子に結合させるこ
とを可能にするが、第２のｇｐ１３０に係合して、β成分ホモ二量体化を完了す
ることができない。そのため、任意のＩＬ−６応答性細胞に対する有効なＩＬ−
６アンタゴニストとして作用する。ＩＬ−６およびＣＮＴＦレセプター複合体の
構造についての本発明者らのモデルは、これらのサイトカインがα、β１および
β２レセプター成分を結合するための異なる部位を有することを示す［Ｓｔａｈ
ｌおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ，Ｃｅｌｌ７４：５８７−５９０（１９９３
）］。これらの部位の各々を含む重要なアミノ酸残基の変異は、所望のアンタゴ
ニスト特性を有する新規な分子を生じる。β１部位の除去は、αレセプター成分
になお結合し得るが、β１成分には結合せず、これによって、ナノモル濃度の親
和性を有するアンタゴニストを含む分子を与える。ＩＬ−６（ＩＬ−６β２−）
のβ２部位を含む重要なアミノ酸残基の変異は、ＩＬ−６Ｒαおよび第１のｇｐ
１３０単量体に結合するが、第２のｇｐ１３０に係合せず、従って、機能的に不
活性であり得る分子を与える。同様に、ＣＮＴＦ β２部位の変異は、ＣＮＴＦ
Ｒαおよびｇｐ１３０を結合するが、ＬＩＦＲβを係合せず、これによって非機
能的β１中間体を形成することによりＣＮＴＦ作用と拮抗する（ａｎｔａｇｏｎ
ｉｚｅ）分子（ＣＮＴＦβ２−）を与える。ＣＮＴＦが高親和性を有するβ１中
間体を形成する、上記の結合結果に基づくと、ＣＮＴＦβ２−およびＩＬ−６β
２−はともに、１０ｐＭの範囲の親和性を有するアンタゴニストを構成する。

【００５５】種々の手段を用いて、所望の特性を有するＩＬ−６またはＣＮＴＦの変異を作
製および同定する。ＩＬ−６またはＣＮＴＦをコードするＤＮＡの標準的方法に
よるランダム変異誘発を用い、次いで、産物の収集物を分析して、以下に概説さ
れるように所望の新規な特性を有する変異したサイトカインを同定し得る。遺伝
子操作による変異誘発を、組換えタンパク質の機能的ドメインの構造的組織化を
評価するために、広範に用いてきた。いくつかの異なるアプローチは、欠失また
は置換の変異誘発を行うことに関して文献に記載された。最も成功したものは、
アラニンスキャニング変異誘発［ＣｕｎｎｉｎｇｈａｍおよびＷｅｌｌｓ（１９
８９），Ｓｃｉｅｎｃｅ２４４：１０８１−１０８５］およびホモログスキャ
ニング変異誘発［Ｃｕｎｎｉｎｇｈａｍら、（１９８９）、Ｓｃｉｅｎｃｅ２
４３：１３３０−１３３６］であるようであるこのような方法を用いたＩＬ−６またはＣＮＴＦ核酸配列の標的化された変異
誘発を使用して、ＣＮＴＦβ２−、またはＩＬ−６β２−候補物を生成し得る。
標的化された変異誘発に適切な領域の選択は、系統的に行われるか、または各因
子に対するモノクローナル抗体のパネルを用いて、αレセプター成分単独に対す
るサイトカインの結合または上記のαβ１ヘテロ二量体可溶性レセプターに対す
るサイトカインの結合後に露出され得るサイトカインの領域をマッピングするこ
とにより研究から決定され得る。同様に、サイトカイン単独でのもしくは上記の
αレセプター成分もしくはαβ１ヘテロ二量体可溶性レセプターに結合した複合
体における化学的修飾または限定されたタンパク質分解、次いで、保護領域もし
くは露出領域の分析は、潜在的なβ２結合部位を明らかにし得る。

【００５６】所望の特性を有するＣＮＴＦまたはＩＬ−６α変異体を同定するためのアッセ
イは、適切に応答性の細胞株に対するＩＬ−６またはＣＮＴＦの作用を高親和性
でブロックする能力を包含する［Ｄａｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５９：１７
３６−１７３９（１９９３）；Ｍｕｒａｋａｍｉら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃ
ａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８８：１１３４９−１１３５３（１９９１）］。このよ
うなアッセイとしては、ＣＮＴＦもしくはＩＬ−６によって駆動される細胞の増
殖、生存性、またはＤＮＡ合成、あるいは因子の結合がＣＡＴまたはβ−ガラク
トシダーゼのようなレポーターの生成を誘導する細胞株の構築が挙げられる［Ｓ
ａｖｉｎｏら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９０：４０６
７−４０７４（１９９３）］。

【００５７】あるいは、種々の変異体の特性は、レセプターベースのアッセイを用いて評価
され得る。１つのこのようなアッセイは、エピロープタグ化［Ｄａｖｉｓら、Ｓ
ｃｉｅｎｃｅ２５３：５９−６３（１９９１）］ｓＲα：β１試薬を用いて上
記のｓＲα：β１レセプターヘテロ二量体を結合する能力について変異体をスク
リーニングすることからなる。さらに、エピトープタグ化可溶性β２試薬がβ１
ヘテロ二量体の存在下でサイトカインに結合するか否かを評価することによって
β２部位の存在または非存在についてプローブし得る。例えば、ＣＮＴＦのみが
、ＣＮＴＦＲαおよびｇｐ１３０両方の存在化でＬＩＦＲβ（β２成分）に結合
する［Ｄａｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０５−１８０８（１９９３
）；Ｓｔａｈｌら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：７６２８−７６３１（１
９９３）］。従って、可溶性ＬＩＦＲβ試薬は、可溶性ｓＲα：β１二量体ｓＣ
ＮＴＦＲα：β１の存在下でＣＮＴＦに結合するのみである。ＩＬ−６について
は、ｓＲα：β１試薬がＩＬ−６Ｒα：β１であり、そしてβ２部位についての
プローブは、エピトープタグ化されたｓｇｐ１３０である。従ってＣＮＴＦのβ
２−変異体は、ｓＲα：β１試薬を結合するものとして同定され、このことによ
り、サイトカインのαおよびβ１部位がインタクトであったが、β２試薬を結合
しなかったことを示す。

【００５８】さらに、本発明は、Ｊａｋ１、Ｊａｋ２およびＴｙｋ２または任意の他のシグ
ナル伝達成分（例えば、ＣＬＩＰ）からなる群より選択されるβ−レセプター成
分またはシグナル伝達成分のリン酸化を測定することによって潜在的なβ２−変
異体の活性を検出または測定する方法を提供する。これは、サイトカインのＣＮ
ＴＦファミリーのメンバーに応答してリン酸化されることが決定される。

【００５９】本明細書中に記載されるシグナル伝達成分を発現する細胞は、天然にそのよう
なことを行うか、またはそのようなことを行うために遺伝子操作されたかのいず
れかであり得る。例えば、Ｖｅｌａｚｑｕｅｚら、Ｃｅｌｌ，Ｖｏｌ．７０：３
１３−３２２（１９９２）に記載されるように得られるＪａｋ１およびＴｙｋ２
コード核酸配列は、当該分野で知られた任意の公知の方法を用いて、形質導入、
トランスフェクション、マイクロインジェクション、エレクトロポレーションに
よって、トランスジェニック動物などを通じて細胞に導入され得る。

【００６０】本発明によれば、細胞を潜在的なアンタゴニストに曝露し、そしてβ成分また
はシグナル伝達成分のいずれかのチロシンリン酸化が、潜在的なアンタゴニスト
の非存在下での同じ成分のチロシンリン酸化と比較される。本発明の別の実施態
様において、上記の細胞と、潜在的なアンタゴニストを接触させることから得ら
れたチロシンリン酸化は、親ＣＮＴＦファミリーメンバーに曝された同じ細胞の
チロシンリン酸化と比較される。このようなアッセイにおいて、細胞は、細胞外
レセプター（α成分）を発現しなければならないか、またはこの細胞は、可溶性
レセプター成分の存在下で試験薬剤に曝され得るかのいずれかである。従って、
例えば、ＣＮＴＦのアゴニストまたはアンタゴニストを同定するために設計され
たアッセイ系において、この細胞は、α成分ＣＮＴＦＲα、β成分ｇｐ１３０お
よびＬＴＦＲβならびにシグナル伝達成分（例えば、Ｊａｋ１）を発現し得る。
細胞は、試験薬剤に曝され、そしてβ成分またはシグナル伝達成分のいずれかの
チロシンリン酸化は、ＣＮＴＦの存在下で生じたリン酸化パターンと比較される
。あるいは、試験薬剤への曝露から生じるチロシンリン酸化は、試験薬剤の非存
在下で生じるリン酸化と比較される。あるいは、例えば、ＩＬ−６についてのア
ッセイ系は、β成分ｇｐ１３０およびシグナル伝達タンパク質（例えば、Ｊａｋ
１、Ｊａｋ２またはＴｙｋ２）を発現する細胞を、可溶性ＩＬ−６レセプターと
ともに試験薬剤に曝す工程を包含し得る。

【００６１】本発明の別の実施態様において、上記のアプローチを用いて、リガンド結合、
レセプター複合体形成、および引き続くシグナル伝達のプロセスにおける種々の
工程において作用する低分子アンタゴニストをスクリーニングする方法を開発す
る。リガンド−レセプター相互作用を潜在的に妨げる分子は、可溶性レセプター
と上記のリガンドとの間の複合体形成の干渉を評価することによりスクリーニン
グされる。あるいは、ＩＬ−６またはＣＮＴＦがレポーター遺伝子の応答を誘導
する細胞ベースのアッセイは、低分子または天然産物のライブラリーに対してス
クリーニングされて、潜在的なアンタゴニストを同定する。アンタゴニスト活性
を示すこれらの分子は、他の因子（例えば、ＧＭ−ＣＳＦまたはレセプターチロ
シンキナーゼを活性化するニューロトロフィン３のような因子）に応答する細胞
ベースのアッセイに対して再スクリーニングされて、ＣＮＴＦ／ＩＬ−６／ＯＳ
Ｍ／ＬＩＦファミリーの因子に対するそれらの特異性を評価する。このような細
胞ベースのスクリーニングを用いて、シグナル伝達プロセスにおける多くの標的
のいずれかを阻害するアンタゴニストを同定する。

【００６２】１つのこのようなアッセイ系において、アンタゴニストに対して特異的な標的
は、Ｊａｋ／Ｔｙｋファミリーのキナーゼ［Ｆｉｒｍｂａｃｈ−Ｋｒａｆｔ，Ｏ
ｎｃｏｇｅｎｅ５：１３２９−１３３６（１９９０）；Ｗｉｌｋｓら、Ｍｏｌ
．ｅｌｌ．Ｂｉｏｌ．１１：２０５７−２０６５（１９９１）］と、レセプター
βサブユニットとの相互作用である。上記のように、ＬＩＦＲβおよびｇｐ１３
０は、細胞質タンパク質チロシンキナーゼのＪａｋ／Ｔｙｋファミリーのメンバ
ー（これは、リガンド誘導性β成分二量体化に応答して活性化される）と予め会
合する（Ｓｔａｈｌら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６３：９２−９５（１９９３））。
従って、細胞の細胞質に進入し得、そしてβ成分とＪａｋ／Ｔｙｋキナーゼとの
間の相互作用を破壊し得る低分子は、潜在的に、全ての引き続く細胞内シグナル
伝達をブロックし得る。このような活性は、低分子が、精製β成分とＪａｋ／Ｔ
ｙｋキナーゼの関連する結合ドメインの間の相互作用をブロックする能力を評価
したインビトロスキームでスクリーニングされ得る。あるいは、当業者は、ツー
ハイブリッド相互作用システムを用いてＪａｋ／Ｔｙｋキナーゼに結合するβ成
分の酵母ベースのアッセイを阻害し得る分子について容易にスクリーニングし得
る［Ｃｈｉｅｎら、Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．８８：９５７８−
９５８２（１９９１）］。このような系において、２つのタンパク質（β成分お
よびＪａｋ／Ｔｙｋキナーゼまたはこの例におけるその関連するドメイン）の間
の相互作用は、便利なマーカー（例えば、β−ガラクトシダーゼ）の生成を誘導
する。低分子の収集物を、２つのコントロールタンパク質間の相互作用を阻害す
ることなく、所望の相互作用を破壊する能力について試験する。このスクリーニ
ングの利点は、β成分とＪａｋ／Ｔｙｋキナーゼとの間の相互作用を阻害する前
に、試験化合物が細胞に進入するという要件である。

【００６３】本明細書中に記載のＣＮＴＦファミリーのアンタゴニストは、サイトカインで
あるＣＮＴＦおよびＩＬ−６に結合するか、またはこれと競合するかのいずれか
である。従って、これらのサイトカインは、ＣＮＴＦまたはＩＬ−６により媒介
される疾患または障害を処置するために有用である。例えば、ＩＬ−６アンタゴ
ニストの治療的用途としては以下が挙げられる：１）骨粗鬆症（閉経後の女性においてまたは卵巣摘出によりエストロゲンレベ
ルが低下することにより悪化し得る）において、ＩＬ−６は、骨の吸収を導く破
骨細胞生成（ｏｓｔｅｏｃｌａｓｔｏｇｅｎｅｓｉｓ）の重要なメディエーター
であるようである［Ｈｏｒｏｗｉｔｚ，Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：６２６−６２
７（１９９３）；Ｊｉｌｋａら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５７：８８−９１（１９９
２）］。重要なことには、ＩＬ−６は、エストロゲン枯渇状態において主要な役
割を果たすにすぎないようであり、そして明らかに正常骨の維持に最小限に関与
する。このことと一致して、ＩＬ−６に対する機能ブロック（ｆｕｎｃｔｉｏｎ
−ｂｌｏｃｋｉｎｇ）抗体は、破骨細胞の数を減少させ得るという実験的証拠を
示す［Ｊｉｌｋａら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２５７：８８−９１（１９９２）］。エ
ストロゲン置換治療もまた使用される一方で、子宮内膜癌および乳癌の危険性が
増加することを含み得る副作用が存在するようである。従って、本明細書中に記
載されるＩＬ−６アンタゴニストは、正常レベルまで破骨細胞生成を低減させる
ためにより特異的である２）ＩＬ−６は、オートクラインまたはパラクリン様式のいずれかで作用して
腫瘍形成を促進するすることにより、複数の骨髄腫に直接関与するようである［
ｖａｎＯｅｒｓら、ＡｎｎＨｅｍａｔｏｌ．６６：２１９−２２３（１９９
３）］。さらに、上昇したＩＬ−６レベルは、所望でない二次的作用（例えば、
骨吸収、高カルシウム血症、および悪液質）を生じ；限られた研究では、ＩＬ−
６またはＩＬ−６Ｒａに対する機能ブロック抗体は、いくらかの効力を有する［
Ｋｌｅｉｎら、Ｂｌｏｏｄ７８：１１９８〜１２０４（１９９１）；Ｓｕｚｕ
ｋｉら、Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．２２：１９８９−１９９３（１９９２）
］。従って、本明細書中で記載されるＩＬ−６アンタゴニストは、二次的作用お
よび腫瘍増殖の阻害の両方に有益である３）ＩＬ−６は、おそらく、脂肪組織におけるリポタンパク質リパーゼ活性を
低減する［Ｇｒｅｅｎｂｅｒｇら、ＣａｎｃｅｒＲｅｓｅａｒｃｈ５２：４
１１３〜４１１６（１９９２）］ことによりＡＩＤＳおよび癌に関連する悪液質
を導く腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）のメディエーターであり得る［Ｓｔｒａｓｓｍａ
ｎｎら、Ｊ．Ｃｌｉｎ．Ｉｎｖｅｓｔ．８９：１６８１−１６８４（１９９２）
］。従って、本明細書中に記載されるアンタゴニストは、このような患者におい
て悪液質を緩和または軽減する際に有用である。

【００６４】これらのまたは他のＣＮＴＦファミリーに関連する疾患または障害を処置する
ために有用な効果的用量は、当業者に公知の方法を用いて決定され得る［例えば
、Ｆｉｎｇｌら、ＴｈｅＰｈａｒｍａｃｏｌｏｇｉｃａｌＢａｓｉｓｏｆ
Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ，ＧｏｏｄｍａｎおよびＧｉｌｍａｎ編、Ｍａｃｍ
ｉｌｌａｎＰｕｂｌｉｓｈｉｎｇＣｏ．，ＮｅｗＹｏｒｋ，１〜４６頁（
１９７５）］。本発明に従う使用のための薬学的組成物は、インビボで投与する
前に、薬理学的に受容可能な液体、固体、または半固体のキャリア中に、キャリ
アもしくは標的化分子（例えば、抗体、ホルモン、増殖因子など）に結合された
、ならびに／またはリポソーム、マイクロカプセル、および徐放性調製物（アン
タゴニスト発現細胞を含む）に組み込まれた上記のアンタゴニストを含む。例え
ば、この薬学的組成物は、水溶液中（例えば、滅菌水、生理食塩水、リン酸緩衝
液またはデキストロース溶液）中に１つ以上のアンタゴニストを含み得る。ある
いは、この活性薬剤は、固体（例えば、ろう）または半固体（例えば、ゼラチン
様）処方物中に含まれ得、これらの処方物は、このような処置が必要な患者に移
植され得る。投与経路は、当該分野で公知の任意の投与様式（静脈内、鞘内（ｉ
ｎｔｒａｔｈｅｃａｌｌｙ）、皮下（関連する組織への注射によって）、動脈内
、鼻腔内、経口、または移植デバイスを介してが挙げられるが、これらに限定さ
れない）であり得る。

【００６５】投与は、身体全体にかまたは局所領域において、本発明の活性薬剤の分布を生
じ得る。例えば、神経系の遠位領域を含むいくつかの条件において、薬剤の静脈
内投与または鞘内投与が、所望され得る。いくつかの状況において、活性薬剤を
含む移植片が、病変領域中にかまたはその近辺に配置され得る。適切な移植片に
は、ゲル泡状物（ｇｅｌｆｏａｍ）、ろう、または微粒子ベースの移植片が挙げ
られるがこれらに限定されない。

【００６６】（実施例）（実施例１：ＣＮＴＦは、ＧＰ１３０に対する結合について、ＩＬ−６と競合
する）（材料および方法）（材料）ＩＬ−６に応答するＰＣ１２細胞のクローン（ＰＣ１２Ｄ）を、ＤＮ
ＡＸから得た。ラットＣＮＴＦを、記載される通りに調製した（Ｍａｓｉａｋｏ
ｗｓｋｉら、Ｊ．Ｎｅｕｒｏｃｈｅｍ．５７：１００３〜１００１２（１９９１
））。ＩＬ−６およびｓＩＬ−６Ｒαを、Ｒ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓから購入した
。抗血清を、ｇｐ１３０のＣ末端に近い領域に由来するペプチド（配列：ＣＧＴ
ＥＧＱＶＥＲＦＥＴＶＧＭＥ）（配列番号２）に対して、記載される方法（Ｓｔ
ａｈｌら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：７６２８〜７６３１（１９９３）
）によってウサギにおいて惹起した。抗ホスホチロシンモノクローナル４Ｇ１０
を、ＵＢＩから購入し、そしてＥＣＬについての試薬を、Ａｍｅｒｓｈａｍから
購入した。

【００６７】（シグナル伝達アッセイ）ＰＣ１２Ｄのプレート（１０ｃｍ）を、無血清培地
（ＲＰＭＩ１６４０＋グルタミン）中で１時間飢餓させ、次いで、示された濃度
で添加されたラットＣＮＴＦの存在または非存在下で、ＩＬ−６（５０ｎｇ／ｍ
Ｌ）＋ｓＩＬ−６Ｒ（１ｍｇ／ｍＬ）と、３７℃で５分間インキュベートした。
次いで、サンプルを、抗ｇｐ１３０免疫沈降に供し、ＳＤＳ−ＰＡＧＥし、そし
て記載されるように抗ホスホチロシンイムノブロッティングした（Ｓｔａｈｌら
、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：７６２８〜７６３１（１９９３））。

【００６８】（結果）ＣＮＴＦがＩＬ−６応答をブロックする能力を、ＩＬ−６Ｒα、ｇｐ１３０、
およびＣＮＴＦＲαを発現するがＬＩＦＲβを発現しないＰＣ１２細胞株（ＰＣ
１２Ｄと呼ばれる）を使用して測定した。推定されるように、これらの細胞は、
ＩＬ−６に応答するが、ＣＮＴＦに応答しない（図２）。なぜなら、ＬＩＦＲβ
は、ＣＮＴＦシグナル伝達のために必要とされる成分であるからである（Ｄａｖ
ｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：５９〜６３（１９９３））。他の細胞株での
結果（Ｉｐら、Ｃｅｌｌ６９：１１２１〜１１３２（１９９２））に従って、
ＰＣ１２Ｄ細胞は、２ｎＭＩＬ−６に応答して、ｇｐ１３０（ならびにＣＬＩ
Ｐと呼ばれる種々の他のタンパク質）のチロシンリン酸化を生じる（図２）。組
換え可溶性ＩＬ−６Ｒα（ｓＩＬ−６α）の添加は、他のいくつかの系で報告さ
れているように、ｇｐ１３０チロシンリン酸化のレベルを増強させる（Ｔａｇａ
ら、Ｃｅｌｌ５８：５７３〜５８１（１９８９））。しかし、ＩＬ−６との２
ｎＭＣＮＴＦの同時添加は、ｇｐ１３０のチロシンリン酸化を激しく減少させ
る。わずかなｇｐ１３０リン酸化応答は、ＣＮＴＦ、ＩＬ−６、およびｓＩＬ−
６Ｒαの存在下で残存するが、ＣＮＴＦ濃度が８ｎＭへと四倍に増加する場合に
これは消去される。したがって、ＣＮＴＦＲαを含むがＬＩＦＲβを含まないＩ
Ｌ−６応答性細胞において、ＣＮＴＦは、ＩＬ−６作用のかなり強力なアンタゴ
ニストである。

【００６９】（実施例２．ＣＮＴＦＲα：βへのＣＮＴＦの結合）（材料および方法）（ＣＮＴＦ結合のスキャッチャード分析）¹²⁵Ｉ−ＣＮＴＦを記載される通り
に調製し、そして精製した（Ｓｔａｈｌら、ＪＢＣ２６８：７６２８〜７６３
１（１９９３））。飽和結合研究を、２０ｐＭ〜１０ｎＭの範囲の¹²⁵Ｉ−ＣＮ
ＴＦの濃度を使用して、ＰＣ１２細胞で行った。結合を単層の細胞上で直接的に
行った。培地をウェルから取り除き、そして細胞をリン酸緩衝化生理食塩水（Ｐ
ＢＳ；ｐＨ７．４）、０．１ｍＭバシトラシン、１ｍＭＰＭＳＦ、１ｍｇ／ｍ
ｌロイペプチン、および１ｍｇ／ｍｌＢＳＡからなるアッセイ緩衝液で１回洗
浄した。細胞を¹²⁵Ｉ−ＣＮＴＦ中で、室温で２時間インキュベートし、続いて
アッセイ緩衝液で２回素早く洗浄した。細胞を１％ＳＤＳを含むＰＢＳで溶解
し、そしてＰａｃｋａｒｄＧａｍｍａＣｏｕｎｔｅｒで９０〜９５％の効率
で計数した。非特異的結合を、１００倍過剰の未標識ＣＮＴＦの存在によって規
定した。特異的な結合は、７０％〜９５％の範囲であった。

【００７０】（結果）ＣＮＴＦＲα：β１へのＣＮＴＦの結合についての平衡定数を、ＰＣ１２Ｄ細
胞に対する、ヨード化したＣＮＴＦ結合のスキャッチャード分析から見積もった
（図３）。このデータは、９ｐＭおよび３．４ｎＭの解離定数を有する２部位フ
ィット（２ｓｉｔｅｆｉｔ）と一致した。低親和性部位は、ＣＮＴＦＲαと
のＣＮＴＦの相互作用に対応し、これは、およそ３ｎＭのＫｄを有する（Ｐａｎ
ａｙｏｔａｔｏｓら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６８：１９０００〜１９００
３（１９９３））。本発明者らは、ＣＮＴＦ、ＣＮＴＦＲα、およびｇｐ１３０
を含む中間体として高親和性複合体を解釈する。Ｅｗｉｎｇ肉腫細胞株（ＥＷ−
１）は、ＣＮＴＦＲα、ｇｐ１３０、およびＬＩＦＲβを含み、従って、ＣＮＴ
Ｆに応答して頑強なチロシンリン酸化を与え、１ｎＭおよび１０の解離定数を有
する非常に類似の２部位フィットを示す。従って、ＣＮＴＦは、ＣＮＴＦＲαお
よびｇｐ１３０のみを含む複合体に同程度の高親和性で結合することが明らかで
ある。これは、ＬＩＦＲβをさらに含む複合体に結合するので、従って本明細書
中に記載されるｓＲα：βアンタゴニストを作製する実現性を実証する。

【００７１】（実施例３．サイトカインリガンドトラップを生成するための方法）（ウイルスストックの生成）Ｓｐｏｄｏｐｔｅｒａｆｒｕｇｉｐｅｒｄａから得られるＳＦ２１昆虫細胞
を、ＧｉｂｃｏＳＦ９００ＩＩ培地中で、１×１０⁶細胞／ｍＬの密度まで２
７℃で増殖させた。ＧＰ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓ₆（図４）またはＩＬ６Ｒａ−Ｆ
ｃ（図５）のいずれかについての個々のウイルスストックを、低い多重度（ｍｕ
ｌｔｉｐｌｉｃｉｔｙ）０．０１〜０．１ＰＦＵ／細胞でバイオリアクターに添
加し、感染を開始した。この感染プロセスを、５〜７日間続けさせ、実質的な細
胞溶解を損なうことなく最大のウイルス複製を可能にした。この細胞懸濁液を無
菌的に滅菌遠心ビンにアリコートし、そして細胞を遠心分離により取り除いた。
細胞を含まない上清を、無菌ビンに収集し、そしてさらなる使用まで４℃で貯蔵
した。

【００７２】ウイルス力価を、Ｏ’Ｒｅｉｌｌｙ、ＭｉｌｌｅｒおよびＬｕｃｋｏｗにより
記載されるようにプラークアッセイにより決定した。この方法を、２×１０⁶細
胞で播種される、６０ｍｍ組織培養ディッシュ中で行う。ストックの連続希釈を
、付着した細胞に加え、そしてこの混合物を、ウイルスが個々の細胞に吸着され
ることを可能にするように揺り動かしながらインキュベートした。アガーの重層
を加え、そしてプレートを、２７℃で５〜７日間インキュベートする。ニュート
ラルレッドでの生存細胞の染色は、環状プラークの結果を示し、これは、ウイル
ス力価を与えるために計数された。

【００７３】（タンパク質産生のための細胞の同時感染）未感染ＳＦ２１細胞を、４０ＬのＳＦ９００ＩＩ培地を含む６０ＬのＡＢＥ
Ｃバイオリアクター中で増殖させた。温度を、２７℃に制御し、そして溶存酸素
レベルを、注入口での気体の流動における酸素の流速を制御することによって５
０％の飽和度に維持した。２×１０⁶細胞／ｍＬの密度に達した場合に、これら
の細胞を、ＭｉｌｌｉｐｏｒｅＰｒｏｓｔａｋ０．６５ミクロン膜を備える
接線方向フロー濾過デバイスを備えた低剪断流動滅菌可能ポンプを使用して、２
０Ｌの用量まで、バイオリアクター内で濃縮した。濃縮した新鮮な無菌増殖培地
を、このバイオリアクターにゆっくりと添加し、一方、濾過システムは、ダイア
フィルトレーション（ｄｉａｆｉｌｔｒａｔｉｏｎ）によって使用済み増殖培地
を取り除き続ける。２容量の交換（４０Ｌ）が行われた後に、さらなる２０Ｌの
新鮮培地を、このバイオリアクターに加えて、４０Ｌの本来の容量にこれらの細
胞を再懸濁させた。この細胞密度を、血球計を使用して生存細胞を計数すること
によってもう一度決定した。

【００７４】各々のウイルスストックの必要とされる量を、細胞密度、ウイルス力価および
感染の所望される多重度（ＭＯＩ）に基づいて算定した。５：１、５：２、１０
：２、および１０：４のウイルスストック比（ＩＬ６Ｒα−Ｆｃ対ＧＰ１３０−
Ｆｃ−Ｈｉｓ₆）は、全てが、有意な量のヘテロ二量体の産生を生じた。理想的
なウイルスストック比は、各々の２つのホモ二量体からのヘテロ二量体の精製の
容易さに非常に依存する。ＩＬ６Ｒα−Ｆｃホモ二量体は、固定化金属親和性ク
ロマトグラフィーによって、下流を除去することが比較的に容易である。ウイル
ス感染比は、下流をクリアすることがより困難であるＧＰ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓ ₆ ホモ二量体の形成を最小化するように選択されている。感染のために選択され
たＧＰ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓ₆ウイルスストックの相対量は、得られたホモ二量
体をクリアするための精製方法が改善されたような、連続的なバッチで増大した
。

【００７５】ウイルスストックを、単一の容器中にて無菌的に混合し、次いで、バイオリア
クターに移した。これは、ＳＦ２１細胞の同調化した感染を生じる。この感染を
３〜４日間、進行させて、ヘテロ二量体タンパク質の最大の産生に十分な時間を
可能にする。

【００７６】（回収およびプロテインＡクロマトグラフィー精製）バイオリアクタープロセスの感染期の終わりに、これらの細胞を、１０ｆｔ²
ＭｉｌｉｐｏｒｅＰｒｏｓｔａｋフィルター（０．６５ミクロン）孔サイズを
使用して、バイオリアクター中で濃縮した。このフィルターを通過する、細胞を
含まない透過物を、清潔なプロセス容器中に収集した。濾過操作の終わりに、タ
ンパク質産物を含む透過流動物のｐＨを、１０ＮＮａＯＨで８．０に調製した
。得られた沈澱を、０．８ミクロンデプスフィルター（Ｓａｒｔｏｒｉｏｕｓ）
、続いて０．２ミクロンフィルターに抽出物を強制的に通すことによって除去し
た。十分な０．５ＭＥＤＴＡストックを、５ｍＭの最終濃度を与えるように添
加した。濾過したタンパク質溶液を、１００〜２００ｍＬのＰｈａｒｍａｃｉａ
ＰｒｏｔｅｉｎＡＳｅｐｈａｒｏｓｅ４ＦａｓｔＦｌｏｗを備える
１０ｃｍの直径のカラム（ＰＢＳで平衡化した）上に充填した。プロテインＡ（
ＰｒｏｔｅｉｎＡ）は、３つの組換えタンパク質産物の各々のＦｃ−Ｆｃドメ
インに対して非常に高親和性を有する。このことは、細胞を含まない抽出物中の
他のタンパク質がこのカラムを通じて流れる間にこれらの組換えタンパク質産物
が結合することを可能にする。充填後に、このカラムを、さらなる３５０ｍＭ
ＮａＣｌを含むＰＢＳでベースラインまで洗浄した。ＩｇＧ−Ｆｃタグ化タンパ
ク質を、０．５Ｍ酢酸を用いてか、または０．１Ｍクエン酸および０．２Ｍリン
酸二ナトリウム緩衝液の減少ｐＨ勾配を用いてかのいずれかで、低いｐＨで、溶
出させた。Ｔｒｉｓ塩基またはリン酸二ナトリウムを、この溶出させたタンパク
質に添加し、低ｐＨ条件への長期の曝露を回避した。

【００７７】プールされたタンパク質を、ＰＢＳまたはＨＥＰＥＳ緩衝液中にダイアフィル
トレーションし、そして１ｍＭヨードアセトアミドで誘導体化して、各Ｆｃドメ
インのヒンジ領域付近の遊離システイン上に露出したスルフヒドリル基を保護し
た。これは、タンパク質のジスルフィド媒介性凝集を防止する。名目上３０キロ
ダルトンのカットオフを有する６ｆｔ²Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅｓｐｉｒａｌｗ
ｏｕｎｄ限外濾過膜を使用して、緩衝液の交換を行った。総タンパク質を、ダイ
アフィルトレーション緩衝液をブランクとして使用して、２８０ｎｍでのＵＶ吸
光度によって決定した。ヘテロ二量体タンパク質および２つのホモ二量体タンパ
ク質の相対量を、６％Ｔｒｉｓ−Ｇｌｙｓｉｎｅゲル（Ｎｏｖｅｘ）を使用して
、ＳＤＳＰＡＧＥゲル電気泳動によって決定した。次いで、ゲルをクマシー染
色し、脱染色溶液に一晩移した。Ｓｈｉｍａｄｚｕ走査デンシトメーターを使用
して、ＳＤＳＰＡＧＥゲル上の個々のタンパク質バンドの相対強度を決定した
。ピーク領域比を使用して、カラムプール画分中でのヘテロ二量体およびホモ二
量体の各々の画分を計算する。

【００７８】（固定化した金属親和性クロマトフラフィー精製）ＧＰ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓ₆融合タンパク質のＣ末端上の６つのヒスチジン残
基は、２つのホモ二量体からのヘテロ二量体ＩＬ６アンタゴニストの分離の優れ
た分子の取扱いを提供する。ＧＰ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓ₆部分の各々のＣ末端ヒ
スチジン上のイミダゾール基は、いくつかの２価の金属（銅、ニッケル、亜鉛、
コバルト、鉄およびカルシウムを含む）との強力な結合定数を有する。ＩＬ６Ｒ
α−Ｆｃホモ二量体は、Ｃ末端ヒスチジン残基を有さないので、これは、明らか
に最も低親和性を有する。ＩＬ６Ｒα−Ｆｃ−ＧＰ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓ₆ヘテ
ロ二量体は、一本鎖セットの６つのヒスチジンを有し、このことは、これが金属
に対してより大きな親和性を有することを生じ、一方、Ｇｐ−１３０−Ｆｃ−Ｈ
ｉｓ₆ホモ二量体が、２つのセットの６つのヒスチジンを有し、各々が、これが
金属親和性カラムに対する３つのＩｇＧタグ化タンパク質の最高の親和性を生じ
る。従って、溶出緩衝液において漸増量のイミダゾールでの、３つのタンパク質
の選択的溶出は、以下の順番でこれらのタンパク質を溶出させる。１．ＩＬ６Ｒα−Ｆｃホモ二量体２．ＩＬ６Ｒα−Ｆｃ−ＧＰ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓヘテロ二量体３．ＧＰ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓホモ二量体１００ｍＬのＰｈａｒｍａｃｉａＣｈｅｌａｔｉｎｇＳｅｐｈａｒｏｓｅＦａｓｔＦｌｏｗを含む直径２６ｍｍのカラムを、カラムの溶出液中に顕著
な緑色が観察されるまで、硫酸ニッケル溶液で飽和した。次いで、このカラムを
数カラム容量の脱イオン水で洗浄し、次いで、５０ｍＭＨＥＰＥＳ、４０ｍＭ
イミダゾール、ｐＨ８．０で平衡化する。固定されたニッケルへのイミダゾー
ルの結合は、緑色から青色への変化を生じる。イミダゾールを、４０ｍＭの最終
濃度までタンパク質充填物に添加した。タンパク質充填物へのイミダゾールの添
加は、ＩＬ６Ｒα−Ｆｃホモ二量体の結合を減少させ、残りの２種に対する利用
可能な表面領域を増加させる。充填後、このカラムを、安定なベースラインが回
復されるまで、数カラム容量の５０ｍＭＨＥＰＥＳ、８０ｍＭイミダゾール
、ｐＨ８．０で洗浄した。ヘテロ二量体が、選択的に、数カラム容量にわたる５
０ｍＭＨＥＰＥＳ、１５０ｍＭイミダゾール、ｐＨ８．０とともに溶出された
。上記の節に記載されるように、タンパク質画分をプールし、そしてＰＢＳにダ
イアフィルトレーションした。

【００７９】（実施例４．リガンドトラップを構築する代替方法）上記のように、ＣＮＦによるレセプター活性化、ならびにＩＬ−６およびＩＬ
−１１による類似するレセプター活性化は、指示された配列の結合事象に続く（
図６）。サイトカインは、初めに、その同族のＲαに低い親和性で結合する（Ｋ
ｄ＝３〜１０ｎＭ）；これは必要な工程である−同族のＲαを発現しない細胞は
同族のサイトカインに応答しない。サイトカイン・Ｒα複合体は、第１のシグナ
ル伝達成分（ｇｐ１３０）に関連し、高い親和性複合体を形成する（ＣＮＴＦ・
ＣＮＴＦＥＲα・ｇｐ１３０複合体については、１０ｐＭのオーダーのＫｄ）。
この複合体は、それがシグナル伝達を引き起こすシグナル伝達成分の二量体化で
ある場合に、シグナルを伝達しない（ＳｔａｈｌおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ
，Ｊ．Ｎｅｕｒｏｂｉｏｌｏｇｙ２５：１４５４〜１４６６（１９９４）；Ｓ
ｔａｈｌら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６７：１３４９〜１３５３（１９９５）；Ｄａ
ｖｉｓら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０５〜１８０８（１９９３）；Ｓｔａ
ｈｌら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６３：９２〜９５（１９９４）；Ｍｕｒａｋａｍｉ
ら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０８〜１８１０（１９９３）。少なくとも、
ＩＬ−６の場合には、サイトカイン・Ｒα・シグナルトランデューサーヘテロ三
量体の複合体は、続いて、別の同様の複合体と会合し、六量体の複合体を形成す
る（図６）（Ｗａｒｄら、Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．２６９：２３２８６〜２３
２８９（１９９４））。生じたシグナルトランデューサーの二量体化（ＩＬ−６
（Ｍｕｒａｋａｍｉら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０８〜１８０１０（１９９
３））およびＩＬ−６の場合におけるｇｐ１３０、ＣＮＴＦ（Ｄａｖｉｓら、Ｓ
ｃｉｅｎｃｅ２６０：１８０５〜１８０８（１９９３））の場合におけるｇｐ
１３０およびＬＩＦＲ）はシグナル伝達を引き起こす。

【００８０】初めに生成されたヘテロ二量体分子は、ｇｐ１３０の細胞外ドメインと結合し
た可溶性Ｒα成分を含んだ。これらの分子は、高親和性サイトカイン・Ｒα・ｇ
ｐ１３０複合体を模倣することが示され、そしてそれらの同族サイトカインの高
親和性アンタゴニストととして振舞う（図７）。これらの分子を作製するために
、ｇｐ１３０の細胞外ドメインが、それぞれ、ＩＬ−６およびＣＮＴＦ、ＩＬ−
６αおよびＣＮＴＦＲαについてのαレセプター成分と組み合わせられた。ｇｐ
１３０の細胞外ドメインとＲαを連結するために、可溶性Ｒα−成分およびｇｐ
１３０がヒトＩｇＧ１のＦｃ部分と融合され、それぞれＲα−Ｆｃおよびｇｐ１
３０−Ｆｃを産生した。Ｆｃドメインが主に選択されたが、それは単に、自然に
ジスルフィド結合性二量体を形成するためだけではない。Ｒα−Ｆｃ・ｇｐ１３
０−Ｆｃを含むヘテロ二量体分子が発現され、精製され、そしてその同族のリガ
ンドの高度に強力なアンタゴニストとして振舞うことが示された。さらに、どの
サイトカインが結合され、そして捕獲されるかを特定するαレセプター成分の選
択であるため（適切なＲαの非存在下において、サイトカインとｇｐ１３０との
測定可能な結合は存在しない）、これらの分子は、その同族のサイトカインに対
して高度に特異的であることが見出された。

【００８１】本発明者らは、その設定によって、さらなる有益な特徴（例えば、安定性、Ｆ
ｃレセプター媒介性クリアランス、または減少したエフェクター機能（例えば、
補体結合））を有し得る、異なるヘテロマーの可溶性レセプターリガンドトラッ
プの操作を可能にするこの技術の伸展を本明細書中に記載する。さらに、記載さ
れる技術は、哺乳動物における任意のヘテロマータンパク質または他の適切なタ
ンパク質発現系（レセプター、リガンドを使用するヘテロマー分子、および酵素
または触媒抗体のような触媒成分が挙げられるが、これらに限定されない）の操
作のための適合性を証明するはずである。

【００８２】（材料および方法）（ヘテロマーの免疫グロブリン重鎖／軽鎖の可溶性レセプターに基づく、ＩＬ
−６に対するリガンドトラップ遺伝子工学）本明細書中に記載されるＩＬ−６トラップが、ヒトｇｐ１３０、ヒトＩＬ−６
αレセプター（ＩＬ−６Ｒα）、結合領域（Ｊ）を有するか、もしくは有しない
ヒトＩｇＧ１（Ｃγ１）（Ｌｅｗｉｓら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＩｍｍｎｏｌ
ｏｇｙ１５１：２８２９〜２８３８（１９９３））またはＩｇＧ４（Ｃγ４）
の重鎖（Ｃγ）の定常領域、ならびに異なるｊペプチド（ｊ）を有するか、もし
くは有しないヒト免疫グロブリン（Ｉｇ）のカッパ（κ）およびラムダ（λ）（
Ｃｈｅｕｎｇら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＶｉｒｏｌｏｇｙ６６：６７１４〜
６７２０（１９９２））軽鎖の定常領域を使用して操作された。この設計は、Ｃ
γドメインがλまたはκ軽鎖とヘテロ二量体化する天然の能力を利用する。Ｃγ
と軽鎖とのヘテロ二量体化は、ＣγのＣＨ１ドメインと軽鎖（ＣＬ）の定常領域
との間で生じ、１つのジスルフィド結合を介するその２つのドメインの共有結合
により安定化される。発明者は、ヒトＩｇＧ１のＦｃドメインと同様に、Ｃγと
ＣＬとの組み合わせを使用して、一方の鎖上のｇｐ１３０の細胞外ドメインおよ
びもう一方の鎖上のＩＬ−６Ｒαの細胞外ドメインから構成されるジスルフィド
結合されたヘテロマーのタンパク質を産生し得ると判断した。Ｆｃに基づくそれ
らの対応物と同様に、このようなタンパク質が、ＩＬ−６に対する高親和性リガ
ンドトラップであり、そしてＩＬ−６応答細胞上の天然レセプターとＩＬ−６の
相互作用を阻害する結果として、従って、ＩＬ−６アンタゴニストとして機能す
ることが想定された。さらに、全長Ｃγ領域を使用する構築物は、多くの抗体と
同様に、Ｃγ鎖のホモダイマーを形成し、２つの「軽鎖」および２つの「重鎖」
を含む抗体様分子を生じる（図８）。この設計の潜在的な利点は、それはより親
密にＩＬ−６・ＩＬ−６Ｒα・ｇｐ１３０複合体を模倣し得、そして匹敵する単
一ヘテロ二量体よりもリガンドに対するより高い親和性を示し得ることである。
ＣＨ１ドメインのみから構成されるＣγの短縮バージョンを使用することにより
、さらなる設計が組み込まれる。これらは、レセプターκ融合タンパク質とヘテ
ロ二量体分子を形成し、従って、抗体のＦａｂフラグメントと類似する。すべて
の可溶性レセプターＩｇキメラ遺伝子は、プラスミドベクター（哺乳動物発現に
適切なベクター（ＣＯＳモンキー腎臓細胞、チャイニーズハムスター卵巣細胞[
ＣＨＯ]、およびｒａｓ形質転換線維芽細胞[ＭＧ−ｒａｓ]）が挙げられるが、
限定されない）において操作され得、そして効率的な翻訳のために各キメラ遺伝
子の初めにＫｏｚａｋ配列（ＣＧＣＣＧＣＣＡＣＣＡＴＧＧＴＧ）を
含み得る。標準的な遺伝子工学方法論を使用して、操作が実行された。各構築物
が、ＤＮＡ配列決定、哺乳動物発現、続いて、適切な抗体を用いるウエスタンブ
ロット法によるリガンドの結合および解離を決定する生物物理学的アッセイ、お
よび増殖阻害アッセイ（後述されるような、ＸＧ−１）により確認された。これ
らのキメラタンパク質を操作するために利用されるドメインが、適切な制限部位
に隣接されるので、他のキメラタンパク質（ＩＬ−１、ＩＬ−２、ＩＬ−３、Ｉ
Ｌ−４、ＩＬ−５、ＧＭ−ＣＳＦ、ＬＩＦ、ＩＬ−１１、ＩＬ−１５、ＩＮＦγ
、ＴＧＦβなどのような因子に対するレセプターの細胞外ドメインを使用するキ
メラを含む）を操作するためにこれらのドメインを使用することが可能である。
ＩＬ−６トラップを作製する際に利用される各成分についてにアミノ酸座標が、
下記に列挙される（注記：番号付けは開始メチオニンを＃１として始まる；長い
配列は、２０アミノ酸についての１文字コードを使用して列挙される）。

【００８３】（ａ）ヒトｇｐ１３０を使用する構築物：（ｉ）ｇｐ１３０−Ｃγ１を、インフレームでｇｐ１３０の細胞外ドメイン（
アミノ酸１〜６１９）をＳｅｒ−Ｇｌｙ架橋に融合させること、次に、Ｃγ１お
よび終止コドンを含む３３０アミノ酸を融合させることにより操作した（図９）（ｉｉ）ｇｐ１３０−Ｊ−Ｃγ１を、Ｊペプチド（アミノ酸配列：ＧＱＧＴＬ
ＶＴＶＳＳ）をＳｅｒ−Ｇｌｙ架橋とＣγ１配列との間に挿入したことを除いて
、ｇｐ１３０−Ｃγ１と同様の様式で操作した（図９参照のこと）（ｉｉｉ）ｇｐ１３０Δ３ｆｉｂｒｏ−Ｃγ１を、インフレームで、その３つ
のフィブロネクチン様ドメインを有しないｇｐ１３０の細胞外ドメインを融合さ
せることにより操作した（図１０）。このキメラタンパク質の残りの部分は、ｇ
ｐ１３０−Ｃγ１と同一である（ｉｖ）ｇｐ１３０−Ｊ−ＣＨ１を、Ｃγ１領域の代わりに、Ｃγ１のＣＨ１
部分のみが使用されたことを除いて、ｇｐ１３０−Ｃγ１について記載されるこ
とと同一の様式において操作した（図１１）。この構築物のＣ末端ドメインは、
ＩｇＧの重鎖と軽鎖とのヘテロ二量体化の原因であるシステイン残基を含むヒン
ジ部分を含む。Ｃγ１ホモ二量体化に関与する２つのシステイン残基を含むその
ヒンジ部分を、ＣＨ２およびＣＨ３ドメインと共に欠失させた（ｖ）ｇｐ１３０−Ｃγ４を、Ｃγ１の代わりに、Ｃγ４が使用されたことを
除いて、ｇｐ１３０−Ｃγ１について記載されることと同一の様式において操作
した（図１２）。さらに、ＲｓｒＩＩＤＮＡ制限部位を、Ｃγ４ドメインのヒ
ンジ領域において２つのサイレントな塩基変異を導入することにより、操作した
。このＲｓｒｓＩＩ部位は、他の所望される遺伝子工学技術操作（例えば、ｇｐ
１３０−Ｃγ４と同等のＣＨ１の構築）を可能にする（ｖｉ）ｇｐ１３０−κを、Ｃγ１領域の代わりに、ヒトＩｇのκ軽鎖の定常
領域を使用したことを除いて、ｇｐ１３０−Ｃγ１について記載されることと同
一の様式において操作した（図１３）（ｖｉｉ）ｇｐ１３０−Ｊ−κを、ｊペプチド（アミノ酸配列：ＴＦＧＱＧＴ
ＫＶＥＩＫ）をＳｅｒ−Ｇｌｙ架橋とκ領域との間に挿入したことを除いて、ｇ
ｐ１３０−Ｊ−κについて記載されることと同一の様式において操作した。

【００８４】（ｖｉｉｉ）ｇｐ１３０−λを、Ｃγ１の代わりに、ヒトＩｇのλ軽鎖（Ｃｈ
ｅｕｎｇら、ＪｏｕｒｎａｌｏｆＶｉｒｏｌｏｇｙ６６：６７１４〜６７
２０（１９９２））の定常領域を使用したことを除いて、ｇｐ１３０−Ｃγ１に
ついて記載されることと同一の様式において操作した（図１４）。

【００８５】（ｂ）ヒトＩＬ−６Ｒαを使用する構築物：（ｉ）ＩＬ６Ｒα−Ｃγ１を、インフレームで、ＩＬ−６Ｒα（Ｙａｍａｓａ
ｋｉら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２４１：８２５〜８２８（１９８８））のアミノ酸１
〜３５８（これは、ＩＬ−６Ｒα（図１５）の細胞外ドメインを含む）をＡｌａ
−Ｇｌｙ架橋に融合させ、続いて、Ｃγ１および終止コドンを含む３３０アミノ
酸を融合させることにより操作した（ｉｉ）ＩＬ６Ｒα−κを、Ｃγ１の代わりに、ｇｐ１３０−κのために利用
するκドメイン（図１３）を使用したことを除いて、ＩＬ６Ｒα−Ｃγ１につい
て記載されるように操作した（ｉｉｉ）ＩＬ６Ｒα−ｊ−κを、ｇｐ１３０−ｊ−κについて記載されるｊ
ペプチドをＡｌａ−Ｇｌｙ架橋とκドメインとの間に配置したことを除いて、Ｉ
Ｌ６Ｒα−κについて記載されるように操作した（ｉｖ）さらなる３つの構築物（ＩＬ６Ｒα３１３−Ｃγ１、ＩＬ６Ｒα３１
３−κ、およびＩＬ６Ｒα３１３−ｊ−κ）を、アミノ酸１〜３１３（図１６）
から構成されるＩＬ−６Ｒαの短縮形態を使用するように操作した。各これらの
構築物を、インフレームで、上記のＣγ１、κ−ドメインおよびｊ−κ−ドメイ
ンが続く、Ｔｈｒ−Ｇｌｙ架橋を有するＩＬ６Ｒα３１３を融合することにより
作製した。これらの構築物を、ｇｐ１３０Δ３ｆｉｂｒｏ由来の構築物を補完す
るために操作した。

【００８６】（リガンドトラップの発現および精製）可溶性ｇｐ１３０および可溶性ＩＬ−６Ｒαの共有結合性ヘテロ二量体を産生
するために、ｇｐ１３０−Ｉｇキメラタンパク質を、対を補完する際に、適切な
ＩＬ−６Ｒα−Ｉｇキメラタンパク質とともに同時発現させた。対応する発現ベ
クターを、適切な哺乳動物細胞株に安定に、または一過性でのいずれかで同時ト
ランスフェクトすることにより、同時発現を達成した。生じたジスルフィド結合
性ヘテロ二量体を、いくつかの異なる方法（固定化プロテインＡまたはプロテイ
ンＧ上のアフィニティークロマトグラフィー、リガンドベースのアフィニティー
クロマトグラフィー、イオン交換、およびゲルろ過が挙げられるが、限定されな
い）によって馴化培地から精製した。

【００８７】重／軽レセプター融合タンパク質の精製のために使用される方法の型の例は以
下の通りである：ｇｐ１３０−Ｃγ１・ＩＬ−６Ｒα−κを、２つの異なるベク
ター（ｇｐ１３０−Ｃγ１およびＩＬ−６Ｒα−κをそれぞれコードする）を同
時トランスフェクトすることにより、ＣＯＳ細胞において発現させた。２日間の
トランスフェクション後、血清なしの馴化培地（４００ｍｌ）を収集し、そして
Ｃγ１保有タンパク質をアフィニティークロマトグラフィーにより、１ｍｌより
も多くのＰｒｏｔｅｉｎＡＳｅｐｈａｒｏｓｅ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）で精
製した。この工程において産生された物質をさらに、第二のアフィニティークロ
マトグラフィー工程により、ｇｐ１３０−Ｃγ１・ＩＬ−６Ｒα−κ複合体から
ｇｐ１３０−Ｃγ１二量体を除去するために（ｇｐ１３０−Ｃγ１二量体はＩＬ
−６に結合しない）、組換えヒトＩＬ−６を用いて誘導された１ｍｌよりも多く
のヒトＮＨＳ活性化Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）で精製した。こ
の方法により産生されたタンパク質は、ＳＤＳ−ＰＡＧＥ、その後の銀染色によ
り証明されるように（図１７）、９０％より高いの純度であった。類似のプロト
コールが、他の重／軽レセプターヘテロ二量体の精製のために、首尾良く使用さ
れてきた。

【００８８】（結果）（免疫グロブリン重鎖／軽鎖レセプター融合アンタゴニストの生物学的活性）精製したリガンドトラップを、種々の異なるアッセイにおいて、それらがＩＬ
−６を結合する能力について試験した。例えば、リガンドトラップに結合するＩ
Ｌ−６の解離速度を、抗ＩＬ−６モノクローナル中和抗体Ｂ−Ｅ８［Ｂｒｏｃｈ
ｉｅｒら、Ｉｎｔ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ１７：４１〜
４８（１９９５）、およびその中の参考文献］からのＩＬ−６の解離速度と並行
して測定した。この型の実験の例を、図１８に示す。この実験において、２０ｐ
Ｍ ¹²⁵Ｉ−ＩＬ−６（１０００μＣｉ／ｍｍｏｌ；Ａｍｅｒｓｈａｍ）を、５
００ｐＭのｇｐ１３０−Ｃγ１・ＩＬ−６Ｒα−κまたは５００ｐＭのｍＡｂ
Ｂ−Ｅ８のいずれかとともに、２０時間プレインキュベートした。この時点で、
１０００倍過剰（２０ｎＭ）の「冷」ＩＬ−６を添加した。定期的に、この反応
のアリコートを取り出し、このリガンドトラップまたはＢ−Ｅ８を、プロテイン
Ｇ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅを用いて沈殿させ、そして結合したままである¹²⁵Ｉ−
ＩＬ−６のｃｐｍの数を決定した。明確に、リガンドトラップからのヒト¹²⁵Ｉ
−ＩＬ６の解離速度は、非常にゆっくりであった−３日後、最初の計数の約７５
％が、なおこのリガンドトラップに結合されていた。対照的に、この計数の５％
未満は、３日後にこの抗体に結合されたままであった。この結果は、これらのリ
ガンドトラップからのこのリガンドの解離速度が非常にゆっくりであることを実
証する。

【００８９】異なるセットの実験において、リガンドトラップがリガンドの存在下で多量体
化（ｍｕｌｔｉｍｅｒｉｚｅ）する能力を試験した。この例を、図１９に示す。
ｇｐ１３０−Ｆｃ・ＩＬ−６Ｒα−Ｆｃとｇｐ１３０−Ｃ_H１・ＩＬ−６Ｒα−
κとのＩＬ−６誘導化結合を、ｇｐ１３０−Ｃ_H１・ＩＬ−６Ｒα−κ（これは
、それ自体プロテインＡを結合しない）がＩＬ−６依存性様式でｇｐ１３０−Ｆ
ｃ・ＩＬ−６Ｒα−Ｆｃの存在下においてプロテインＡ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅに
よって沈殿され得るか否かを試験することにより決定した（図９）。プロテイン
Ａ−Ｓｅｐｈａｒｏｓｅによるｇｐ１３０−Ｃ_H１・ＩＬ−６Ｒα−κの沈殿を
、抗κ特異的ＨＲＰ結合体を用いるウエスタンブロッティングによって決定した
。この抗κ特異的ＨＲＰ結合体は、ｇｐ１３０−Ｆｃ・ＩＬ−６Ｒα−Ｆｃを検
出しない。ｇｐ１３０−Ｃ_H１・ＩＬ−６Ｒα−κは、ｇｐ１３０−Ｆｃ・ＩＬ
−６Ｒα−ＦｃおよびＩＬ−６の両方が存在した場合にのみ、プロテインＡ−Ｓ
ｅｐｈａｒｏｓｅによって沈殿され得る。この結果は、結論的に、ＩＬ−６がリ
ガンドトラップ多量体化を誘導し得ることを示し、そして、このリガンドトラッ
プが６量体サイトカイン・Ｒα・シグナルトランスデューサー複合体を模擬し得
ることをさらに示す（図１）。リガンド誘導多量体化は、インビボにおけるサイ
トカイン・リガンドトラップ複合体の除去において重要な役割を果たし得る。

【００９０】異なるリガンドトラップの生物学的活性を、リガンド依存性細胞増殖を測定す
るアッセイにおいてさらに試験し得る。いくつかの細胞増殖アッセイが、ＩＬ−
６について存在し、そしてそれらは、細胞株（例えば、Ｂ９、ＣＥＳＳまたはＸ
Ｇ−１）を利用する。ＸＧ−１細胞株を使用するこの型のアッセイの例を、以下
に示す：ＸＧ−１は、ヒト多発性骨髄腫に由来する細胞株である（Ｚｈａｎｇら
、Ｂｌｏｏｄ８３：３６５４〜３６６３（１９９４））。ＸＧ−１は、生存お
よび増殖のために外因的に供給されたヒトＩＬ−６に依存する。ＸＧ−１株に対
するＩＬ−６のＥＣ₅₀は、約５０ｐｍｏｌ／ｍｌである。いくつかの異なるＩＬ
−６トラップがＸＧ−１細胞のＩＬ−６依存性増殖をブロックする能力を、ＸＧ
−１培養物中で５０ｐｇ／ｍｌのＩＬ−６とともに、増加する量の精製したリガ
ンドトラップをインキュベートすることによって試験した。試験したリガンドト
ラップを、上記の方法と類似の方法によって発現および精製させた。試験した全
てのリガンドトラップは、用量依存性様式においてＸＧ−１のＩＬ−６依存性増
殖を阻害することが見出された（図２０）。試験した５つの異なるトラップのう
ち、ｇｐ１３０−Ｃγ１・ＩＬ−６Ｒα−κは、最も活性であり、そして抗体Ｂ
−Ｅ８と同じ、ＩＬ−６に対する中和活性を本質的に提示する。１０倍モル濃度
過剰程に少ないｇｐ１３０−Ｃγ１・ＩＬ−６Ｒα−κまたはＢ−Ｅ８のいずれ
かは、ＩＬ−６の活性を完全にブロックした（Ａ５７０−６５０の読み＝０．３
ＡＵは、ＸＧ−１細胞のいかなる増殖にも対応しない）。１００倍モル濃度過剰
において、試験したリガンドトラップの全ては、ＩＬ−６の活性を完全にブロッ
クした。この観察された阻害は、ＣＮＴＦ活性をブロックするｇｐ１３０−Ｆｃ
・ＣＮＴＦＲα−Ｆｃリガンドトラップも、ｇｐ１３０−Ｆｃホモ二量体も、Ｉ
Ｌ−６よりも１０００倍モル濃度過剰に使用される場合でさえＩＬ−６に対して
いかなるブロック活性をも示さない（データは示さず）ので、高度に選択性であ
る。このデータは、ヘテロマーの免疫グロブリン重鎖／軽鎖レセプターに基づく
リガンドトラップ機能が、これらの同族リガンドの選択的な高親和性アンタゴニ
ストとして機能することを実証する。

【００９１】（実施例５−融合ポリペプチド成分のクローニング）ヒトサイトカインレセプターの細胞外ドメインを、組織ｃＤＮＡ（ＣＬＯＮＴ
ＥＣＨ）を使用する標準的なＰＣＲ技術によって得、発現ベクターであるｐＭＴ
２１（ＧｅｎｅｔｉｃｓＩｎｓｔｉｔｕｔｅ，Ｉｎｃ．）にクローン化し、そ
してその配列を、ＡＢＩ３７３ＡＤＮＡシークエンサーおよびＴａｑＤｉ
ｄｅｏｘｙＴｅｒｍｉｎａｔｏｒＣｙｃｌｅＳｅｑｕｅｎｃｉｎｇＫｉ
ｔ（ＡｐｐｌｉｅｄＢｉｏｓｙｓｔｅｍｓ，Ｉｎｃ．，ＦｏｓｔｅｒＣｉｔ
ｙ，ＣＡ）を使用する標準的な技術によって配列決定した。ＩＬ−４Ｒαについ
て、Ｇｅｎｂａｎｋ配列Ｘ５２４２５からのヌクレオチド２４１〜８６８（アミ
ノ酸２４〜２３１に対応する）を、クローン化した。ＩＬ−２Ｒγについて、Ｇ
ｅｎｂａｎｋ配列Ｄ１１０８６からのヌクレオチド１５〜７７６（アミノ酸１〜
２３３に対応する）を、クローン化した。ＩＬ−６Ｒαについて、Ｇｅｎｂａｎ
ｋ配列Ｘ５２４２５からのヌクレオチド５２〜１０４４（アミノ酸１〜３３１に
対応する）を、クローン化した。ｇｐ１３０について、Ｇｅｎｂａｎｋ配列Ｍ５
７２３０からのヌクレオチド３２２〜２１１２（アミノ酸３０〜６１９に対応す
る）を、クローン化した。ＩＬ−１ＲＡｃＰについて、Ｇｅｎｂａｎｋ配列ＡＢ
００６３５７からのヌクレオチド１〜１０７４（アミノ酸１〜３５８に対応する
）を、クローン化した。ＩＬ−１ＲＩについて、Ｇｅｎｂａｎｋ配列Ｘ１６８９
６からのヌクレオチド５５〜９９９（アミノ酸１９〜３３３に対応する）を、ク
ローン化した。

【００９２】（実施例６−融合ポリペプチド（サイトカイントラップ）の生成）サイトカイントラップをコードするヌクレオチド配列を、標準的なクローニン
グ技術およびＰＣＲ技術によって、個々にクローン化したＤＮＡ（上記）から構
築した。各々の場合において、第１の融合ポリペプチド成分をコードする配列を
、多量体化成分として第２の融合ポリペプチド成分をコードする配列、続いてＦ
ｃドメイン（ヒトＩｇＧ１のヒンジ領域、ＣＨ２領域およびＣＨ３領域）に融合
するように、配列をインフレームで構築した。いくつかの場合において，余分な
ヌクレオチドを、第１の融合ポリペプチド成分をコードする配列と第２の融合ポ
リペプチド成分をコードする配列との間にインフレームで挿入して、２つの成分
間にリンカー領域を付加した（図２１Ａ〜図２１Ｄ−トラップ４２４；図２４Ａ
〜図２４Ｆ−トラップ４１２；および図２６Ａ〜図２６Ｅ−トラップ５６９を参
照のこと）。

【００９３】ＩＬ−４トラップである４２４（図２１Ａ〜図２１Ｄ）、６０３（図２２Ａ〜
図２２Ｄ）および６２２（図２３Ａ〜図２３Ｄ）について、ＩＬ−２Ｒγ成分は
、ＩＬ４Ｒα成分次いでＦｃ成分の前の５’である。ＩＬ−６トラップである４
１２（図２４Ａ〜図２４Ｆ）および６１６（図２５Ａ〜図２５Ｆ）について、Ｉ
Ｌ−６Ｒα成分は、ｇｐ１３０成分次いでＦｃドメインの前の５’である。ＩＬ
−１トラップである５６９（図２６Ａ〜図２６Ｅ）について、ＩＬ−１ＲＡｃＰ
成分は、ＩＬ−１ＲＩ成分次いでＦｃドメインの前の５’である。最終的な構築
物を、哺乳動物発現ベクターであるｐＣＤＮＡ３．１（ＳＴＲＡＴＡＧＥＮＥ）
へクローン化した。

【００９４】５６９配列（図２６Ａ〜図２６Ｅ）において、ヌクレオチド１〜１０７４は、
ＩＬ１ＲＡｃＰ成分をコードし、ヌクレオチド１０７５〜１０９８は、リンカー
領域をコードし、ヌクレオチド１０９９〜２０４３は、ＩＬ１ＲＩ成分をコード
し、そしてヌクレオチド２０４４〜２７３０は、Ｆｃドメインをコードする。

【００９５】４１２配列（図２４Ａ〜図２４Ｆ）において、ヌクレオチド１〜９９３は、Ｉ
Ｌ６Ｒα成分をコードし、ヌクレオチド９９４〜１０２３は、リンカー領域をコ
ードし、ヌクレオチド１０２４〜２８１４は、ｇｐ１３０成分をコードし、そし
てヌクレオチド２８１５〜３５０４は、Ｆｃドメインをコードする。

【００９６】６１６配列（図２５Ａ〜図２５Ｆ）において、ヌクレオチド１〜９９３は、Ｉ
Ｌ６Ｒα成分をコードし、ヌクレオチド９９４〜２７８４は、ｇｐ１３０成分を
コードし、そしてヌクレオチド２７８５〜３４７４は、Ｆｃドメインをコードす
る。

【００９７】４２４配列（図２１Ａ〜図２１Ｄ）および６２２配列（図２３Ａ〜２３Ｄ）に
おいて、ヌクレオチド１〜７６２は、ＩＬ２Ｒγ成分をコードし、ヌクレオチド
７６３〜７７１は、リンカー領域をコードし、ヌクレオチド７７２〜１３９５は
、ＩＬ４Ｒα成分をコードし、そしてヌクレオチド１３９６〜２０８２は、Ｆｃ
ドメインをコードする。

【００９８】最後に、６０３配列（図２２Ａ〜図２２Ｄ）において、ヌクレオチド１〜７６
２は、ＩＬ２Ｒγ成分をコードし、ヌクレオチド７６３〜１３８６は、ＩＬ４Ｒ
α成分をコードし、そしてヌクレオチド１３８７〜２０７３は、Ｆｃドメインを
コードする。

【００９９】ＤＮＡ構築物を、当業者に周知の標準的な技術によって、ＣＯＳ細胞へ一過的
にトランスフェクトするか、またはＣＨＯ細胞へ安定にトランスフェクトするか
のいずれかを行った。上清を、標準的な技術によりプロテインＡアフィニティー
クロマトグラフィーおよびサイズ排除クロマトグラフィーによって回収および精
製した（例えば、ＨａｒｌｏｗおよびＬａｎｅ、Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ−ＡＬ
ａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ、ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ
Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、１９８８を参照のこと）。

【０１００】（実施例７：ＴＦ−１（ＡＴＣＣ）細胞を使用するＩＬ−４バイオアッセイプ
ロトコル）（必要な試薬および装置）（ＭＴＴ色素溶液：）ＭＴＴ（３−［４，５−ジメチルチアゾール−２−イル］）（Ｓｉｇｍａカタ
ログ＃Ｍ２１２８）作業濃度：Ｃａ⁺²、Ｍｇ⁺²を含まない２００ｍｌＰＢＳ中で５ｍｇの無水Ｍ
ＴＴを溶解する濾過滅菌し、−２０℃でアリコートを保存する。（安定化溶液：）１０００ｍｌに対して、１００ｇＳＤＳ、９５０ｍｌｄＨ₂Ｏ、５０ｍｌジメチルホルムアミドおよび８５０μｌ濃塩酸を合わせる０．４５μｍフィルターユニットで濾過滅菌する室温で保存する。

【０１０１】（ＴＦ−１細胞増殖培地：）ＲＰＭＩ１６４０、１０％ＦＢＳ、Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ、２ｍＭＬ−グ
ルタミン。

【０１０２】（その他：）０．４％ＴｒｙｐａｎＢｌｕｅＳｔａｉｎ、希釈のための滅菌チューブ
、滅菌９６ウェル細胞培養プレート（Ｆａｌｃｏｎ＃３０７２）、血球計、遠
心分離機、ＥＬＩＳＡプレートリーダー、１５μｌ、２５μｌ、５０μｌおよび
１００μｌ容量のマルチチャネルピペット、滅菌試薬リザーバー、滅菌ピペット
チップ、グローブ。

【０１０３】（アッセイプロトコル）（Ａ．アッセイプレートの調製）１．滅菌９６ウェル組織培養プレートを、種々の濃度のＩＬ−４および１０ｎ
ＭＩＬ−４アンタゴニストとともに、ウェルあたり５０μｌの増殖培地を含む
ように調製する。これは、ＩＬ−４の作業希釈物（アッセイされるべき最高濃度
の４倍である）を調製することによってなされ得る。分離チューブにおいて、Ｉ
Ｌ−４の２倍連続希釈を行う。各希釈物の２５μｌを、このプレートに渡って１
つの行に添加する（すなわち、行Ａは最高濃度を得、行Ｇは最低濃度を得る）。
ＩＬ−４を含まない２５μｌの増殖培地を行Ｈに添加する。試験されるべきアン
タゴニストを、最終濃度の４倍であるストックを作製することによって調製する
。２５μｌを三連（ｔｒｉｐｌｉｃａｔｅ）セットのＩＬ−４含有ウェルに添加
する（列１、２、３、Ａ〜Ｈ）。行Ｈにおいてアンタゴニストを含むことを確認
する２．ポジティブコントロールとして、アンタゴニストを有さない１つのセット
を残す。これらのウェルは、ＩＬ−４および培地のみを含む３．アッセイのために使用されるべき細胞を調製する前に、加湿した５％Ｃ
Ｏ₂インキュベーター中で３７℃にて１〜２時間、このプレートをインキュベー
トする。

【０１０４】（Ｂ．細胞の調製）４．細胞を、増殖因子を含まないアッセイ培地中での遠心分離によって２回洗
浄する５．細胞数およびトリパンブルー生存度を決定し、そして細胞を、アッセイ培
地中で８×１０⁵／ｍｌの最終濃度に懸濁する６．５０μｌの細胞懸濁物（４０，０００細胞）を、このプレートの全てのウ
ェルへ分配する。ここで、総容量は、１００μｌ／ウェルであるべきであ７．加湿５％ＣＯ₂インキュベーター中で３７℃にて６８時間プレートをイン
キュベートする。

【０１０５】（Ｃ．発色）８．６８時間のインキュベートの後、１５μｌのＭＴＴ色素溶液を各ウェルに
添加する９．加湿５％ＣＯ₂インキュベーター中で３７℃にて４時間プレートをインキ
ュベートする１０．４時間後、１００μｌの可溶化溶液を各ウェルに添加する。プレートを
密封した容器中で一晩静置して、ホルマザン結晶を完全に可溶化させる１１．５７０／６５０ｎｍの吸光度を記録する。

【０１０６】（結果）図２７は、４ＳＣ３７５と命名したＩＬ−４トラップ（これは、ＩＬ−２Ｒγ
−ｓｃｂ−ＩＬ４Ｒα−ＦｃΔＣ１の融合ポリペプチドである）は、ＴＦ１細胞
バイオアッセイにおいて、ＩＬ４ＲαＦｃΔＣ１単独よりも、ＩＬ−４アンタゴ
ニストとして数オーダーの程度良好であることを示す。

【０１０７】図２８は、４ＳＣ３７５と命名したＩＬ−４トラップが、ＴＦ１細胞バイオア
ッセイにおいて、４ＳＣ４２４と命名したＩＬ−４トラップ（これは、ＩＬ−４
Ｒα成分を豊富に有するＩＬ−２Ｒγ成分を有するＩＬ−２Ｒγ−ＩＬ４Ｒα−
ＦｃΔＣ１の融合ポリペプチドである）と等しいアンタゴニスト活性を示すこと
を示す。

【０１０８】（実施例８：ＸＧ−１細胞を使用するＩＬ−６バイオアッセイプロトコル）（必要な試薬および機器）（ＭＴＴ色素溶液：）ＭＴＴ（３−［４，５−ジメチルチアゾール−２−イル］）（Ｓｉｇｍａカタ
ログ番号Ｍ２１２８）作用濃度：Ｃａ⁺²、Ｍｇ⁺²なしで、２００ｍｌのＰＢＳ中に５ｍｇの無水ＭＴ
Ｔを溶解させる滅菌濾過し、そしてアリコートを−２０℃にて貯蔵する。

【０１０９】（可溶化溶液：）１０００ｍｌについて、１００ｇのＳＤＳ、９５０ｍｌのｄＨ₂Ｏ、５０ｍｌ
のジメチルホルムアミド、および８５０μｌの濃塩酸を合わせる０．４５μｍのフィルターユニットで濾過滅菌する室温にて保存する。

【０１１０】（アッセイ培地：）ＲＰＭＩ１６４０、１０％ＦＢＳ、Ｐｅｎ／Ｓｔｒｅｐ、２ｍＭＬ−グ
ルタミン、５０μＭメルカプトエタノール。

【０１１１】（他：）０．４％トリパンブルー染色液、希釈のための滅菌チューブ、滅菌９６ウェ
ル細胞培養プレート（Ｆａｌｃｏｎ＃３０７２）、血球計、遠心分離機、ＥＬＩ
ＳＡプレートリーダー、１５、２５、５０および１００μｌ容量のマルチチャン
ネルピペット、滅菌試薬リザーバー、滅菌ピペットチップ、手袋。

【０１１２】（アッセイプロトコル）（Ａ．アッセイプレートの調製）１．様々な濃度のＩＬ−６および１０ｎＭのＩＬ６アンタゴニストとともに、
１ウェルあたり５０μｌの増殖培地を含むように、滅菌９６ウェル組織培養プレ
ートを調製する。これを、アッセイされるべき最高濃度の４倍であるＩＬ−６の
作業希釈物を調製することによって行い得る。別々のチューブにおいて、ＩＬ−
６の２倍希釈系列を行う。２５μｌの各希釈物を、プレートを横切る１つの横列
に添加する（すなわち、横列Ａは最高濃度を得、横列Ｇは最低濃度を得る）。Ｉ
Ｌ−６を含まない２５μｌの増殖培地を横列Ｈに添加する。試験されるべきアン
タゴニストを、最終濃度の４倍のストックを作製することによって調製する。Ｉ
Ｌ−６含有ウェルの三連のセットに２５μｌを添加する（縦列１、２、３、Ａか
らＨ）。横列Ｈ中にアンタゴニストが含まれることを確認する。代表的なＩＬ−
６滴定を、２００ｎｇ／ｍｌにて開始し、３．１ｎｇ／ｍｌに至るまでする２．陽性コントロールとして、アンタゴニストなしの１つのセットを残す。こ
れらのウェルは、アンタゴニストに代わって、ＩＬ−６および培地を含む３．アッセイのために使用されるべき細胞を調製する前に、加湿５％ＣＯ₂イ
ンキュベーター中で３７℃にて１〜２時間プレートをインキュベートする。

【０１１３】（Ｂ．細胞の調製）４．増殖因子を含まないアッセイ培地で、遠心分離（１０００ＲＰＭにて５分
間）によって細胞を２回洗浄する５．細胞数およびトリパンブルー生存度を決定し、そしてアッセイ培地中８×
１０⁵／ｍｌの最終濃度まで細胞を懸濁する６．５０μｌの細胞懸濁物（４００００細胞）を、プレートの全てのウェルに
分配する。総容量は、ここで、１００μｌ／ウェルであるはずである７．加湿５％ＣＯ₂インキュベーター中で３７℃にて６８時間プレートをイン
キュベートする。

【０１１４】（Ｃ．発色）８．６８時間にて、１５μｌの色素溶液を各ウェルに添加する９．加湿５％ＣＯ₂インキュベーター中で３７℃にて４時間プレートをインキ
ュベートする１０．４時間後、１００μｌの可溶化溶液を各ウェルに添加する。プレートを
密封した容器中で一晩静置して、ホルマザン結晶を完全に可溶化させる１１．５７０／６５０ｎｍの吸光度を記録する。

【０１１５】（結果）図２９は、図２４Ａ〜図２４Ｆに記載したＩＬ−６トラップ（６ＳＣ４１２Ｉ
Ｌ６Ｒ−ｓｃｂ−ｇｐｘ−ＦｃΔＣ１）が、ＸＧ１バイオアッセイにおいて、ヒ
トＩＬ−６−ＢＥ８に対する中和化モノクローナル抗体よりも、良好なＩＬ−６
のアンタゴニストであることを示す。

【０１１６】（実施例９：ＩＬ１トラップについてのＭＲＣ５バイオアッセイ）ＭＲＣ５ヒト肺線維芽細胞は、ＩＬ−６を分泌することによりＩＬ−１に応答
し、従って、ＩＬ−１トラップがＩＬ−６のＩＬ−１依存性産物をブロックする
能力をアッセイするために利用された。ＩＬ−１トラップ１ＳＣ５６９（図２６
Ａ〜図２６Ｅ）を、ＩＬ−１−ＲＩ．Ｆｃ（これは、Ｆｃドメインに融合したＩ
Ｌ−１Ｉ型レセプターの細胞外ドメインである）に対して試験した。

【０１１７】ＭＲＣ５細胞を、培地中１ｍｌあたり１×１０⁵細胞にて懸濁し、そして０．
１ｍｌの細胞を、９６ウェル組織培養プレートのウェルにプレートする（１ウェ
ルあたり１０，０００細胞）。プレートを、加湿５％ＣＯ₂インキュベーター中
で３７℃にて２４時間インキュベートする。

【０１１８】可変用量のＩＬ−１トラップおよび組換えヒトＩＬ−１を、９６ウェル組織培
養ディッシュ中でプレインキュベートし、そして３７℃にて２時間インキュベー
トする。次いで、０．１ｍｌのこの混合物を、ＩＬ−１トラップの最終濃度が１
０ｎＭであり、かつＩＬ−１の最終濃度が２．４ｐＭ〜５ｎＭの範囲であるよう
に、ＭＲＣ５細胞を含む９６ウェルプレートに添加する。コントロールウェルは
、トラップ単独を含むか、または何も含まない。

【０１１９】次いで、プレートを、加湿５％ＣＯ₂インキュベーター中で３７℃にて２４時
間インキュベートする。上清を収集し、そしてＲ＆ＤＳｙｓｔｅｍｓＱｕａ
ｎｔｉｋｉｎｅＩｍｍｕｎｏａｓｓａｙＫｉｔを製造業者の指示書に従って
使用して、ＩＬ−６のレベルをアッセイする。

【０１２０】（結果）図３０は、トラップ５６９（図２６Ａ〜図２６Ｅ）がＩＬ−１の効果を拮抗し
得、かつＩＬ−１での処理の際のＭＲＣ５細胞からのＩＬ−６産生をブロックし
得ることを示す。１０ｎＭの濃度にて、トラップ５６９は、３ｎＭのＩＬ−１濃
度まで。ＩＬ−６の産生をブロックし得る。対照的に、ＩＬ−１ＲＩ．Ｆｃは、
ＩＬ−１のより弱いアンタゴニストである。それは、約１０〜２０ｐＭまでＩＬ
−１の効果をブロックし得るのみである。従ってトラップ５６９は、ＩＬ−１の
ブロックにおいて、ＩＬ１ＲＩ．Ｆｃより約１００倍良好である。

【０１２１】（実施例１０：ＩＬ１３／ＩＬ１４単一鎖トラップの構築）１．ＩＬ−４α．ＩＬ−１３Ｒα１．Ｆｃと命名されたＩＬ−１３／ＩＬ−１
４二重（ｄｕａｌ）トラップを作製するために、ヒトＩＬ−４Ｒα細胞外ドメイ
ン（図３１Ａ〜図３１Ｇのヌクレオチド＃１〜６９３に対応する）およびヒトＩ
Ｌ−１３Ｒα１細胞外ドメイン（図３１Ａ〜図３１Ｇのヌクレオチド＃７００〜
１６６５に対応する）を、標準的なＰＣＲ技術によって増幅し、そしてヒトＦｃ
配列（図３１Ａ〜図３１Ｇのヌクレオチド＃１６７１から２３５５に対応する）
を含む発現ベクターｐＭＴ２１に連結し、このように、Ｎ末端からＣ末端までの
ヒトＩｇＧ１の、ＩＬ−４Ｒα、ＩＬ−１３Ｒα１、およびヒンジ、ＣＨ２およ
びＣＨ３領域からなる融合タンパク質を作製した。さらに、アミノ酸配列Ｓｅｒ
Ｇｌｙを有する２アミノ酸リンカー（図３１Ａ〜図３１Ｇのヌクレオチド＃６９
４〜６９９に対応する）を、ＩＬ−４ＲαとＩＬ−１３Ｒα１との間にインフレ
ームで構築し、そしてアミノ酸配列ＴｈｒＧｌｙを有する２アミノ酸リンカー（
図３１Ａ〜図３１Ｇのヌクレオチド＃１６６６から１６７１に対応する）を、Ｉ
Ｌ−１３Ｒα１とＦｃ部分との間にインフレームで構築した。全ての配列を、標
準的な技術によって配列確認した。次いで、ＩＬ−４α．ＩＬ−１３Ｒα１．Ｆ
ｃコード配列を、標準的な分子生物学技術を使用して、発現ベクターｐＣＤＮＡ
３．１（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）にサブクローニングした。

【０１２２】２．ＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４α．Ｆｃと命名されたＩＬ−１３／ＩＬ−４
二重トラップを作製するために、ＩＬ−１３Ｒα１細胞外ドメイン（図３２Ａ〜
図３２Ｇのヌクレオチド＃１〜１０２９に対応する）およびヒトＩＬ−４Ｒα（
図３２Ａ〜図３２Ｇのヌクレオチド＃１０６０〜１６９２に対応する）を、標準
的なＰＣＲ技術によって増幅し、そしてヒトＦｃ配列（図３２Ａ〜図３２Ｇのヌ
クレオチド＃１６９９から２３８２に対応する）を含む発現ベクターｐＪＦＥ１
４に連結して、Ｎ末端からＣ末端までのヒトＩｇＧ１の、ＩＬ−１３Ｒα１、Ｉ
Ｌ−４Ｒα、およびヒンジ、ＣＨ２およびＣＨ３領域からなる融合タンパク質を
作製した。さらに、アミノ酸配列ＧｌｙＡｌａＰｒｏＳｅｒＧｌｙＧｌｙＧｌｙ
ＧｌｙＡｒｇＰｒｏを有する１０アミノ酸リンカー（図３２Ａ〜図３２Ｇのヌク
レオチド＃１０３０から１０５９に対応する）を、ＩＬ−１３Ｒα１と１ＩＬ−
４Ｒαとの間にインフレームで構築し、そしてアミノ酸配列ＳｅｒＧｌｙを有す
る２アミノ酸リンカー（図３２Ａ〜図３２Ｇのヌクレオチド＃１６９３から１６
９８に対応する）を、ＩＬ−４ＲαとＦｃ部分との間にインフレームで構築した
。全ての配列を、標準的な技術によって配列確認した。次いで、ＩＬ−１３Ｒα
１．ＩＬ−４α．Ｆｃのコード配列を、標準的な分子生物学技術を使用して、発
現ベクターｐＣＤＮＡ３．１（Ｓｔｒａｔａｇｅｎｅ）にサブクローニングした
。

【０１２３】（実施例１１：ＩＬ−４α．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃおよびＩＬ−１３Ｒα１
．ＩＬ−４α．Ｆｃの発現）ＤＨ１０Ｂ細胞におけるｐＣＡＥ８０１（ＩＬ−４α．ＩＬ−１３Ｒα１．Ｆ
ｃをコードするＤＮＡベクター構築物）およびｐＣＡＥ８０２（ＩＬ−１３Ｒα
１．ＩＬ−４α．ＦｃをコードするＤＮＡプラスミド構築物）の大規模（１Ｌ）
培養物を、ＬＢ＋アンピシリン中で一晩増殖させ、そしてプラスミドＤＮＡを、
ＱｉａｇｅｎＥｎｄｏｆｒｅｅＭｅｇａＫｉｔを製造業者のプロトコルに
従って用いて抽出した。精製したプラスミドＤＮＡの濃度を、ＵＶ分光計および
蛍光測定機において決定した。このプラスミドＤＮＡをまた、ＢｂｓＩ、Ｘｍｎ
ＩおよびＮｃｏＩ制限酵素でのアリコートの消化によって確認した。全ての制限
酵素消化フラグメントは、１％アガロースゲルにおいて、予測したサイズに対応
した。

【０１２４】４０の１５ｃｍペトリプレートに、４×１０⁶細胞／プレートの密度で、ＣＨ
Ｏ−Ｋ１／Ｅ１Ａ細胞を播種した。プレーティング培地は、ＧｉｂｃｏＨａｍ
’ｓＦ１２ｗ／１０％ＨｙｃｌｏｎｅＦｅｔａｌＢｏｖｉｎｅＳｅｒ
ｕｍ（ＦＢＳ）＋ペニシリン／ストレプトマイシンであり、グルタミンを補充し
た。次の日に、各プレートを、ＧｉｂｃｏＯｐｔｉｍｅｍおよびＧｉｂｃｏ
Ｌｉｐｏｆｅｃｔａｍｉｎｅを１２ｍｌの容量で製造業者のプロトコルに従って
使用して、６μｇのｐＣＡＥ８０１、またはｐＣＡＥ８０２でトランスフェクト
した。トランスフェクションミックスを細胞に添加した４時間後、１２ｍｌ／プ
レートのＯｐｔｉｍｅｍｗ／１０％ＦＢＳを添加した。プレートを、５％Ｃ
Ｏ₂インキュベーター中で３７℃にて一晩インキュベートした。次の日に、培地
を各プレートから除去し、そして２５ｍｌの発現培地（ＧｉｂｃｏＣＨＯ−Ｓ
−ＳＦＭＩＩｗ／グルタミン＋１ｍＭ酪酸ナトリウム）を添加した。この
プレートを３７℃にて３日間インキュベートした。

【０１２５】インキュベーションの３日後、この培地を各プレートから取り出し、そしてス
イングバケツローター中で４００ｒｐｍにて遠心分離して、細胞をペレットにし
た。その上清を滅菌１リットル瓶にデカントし、そして発現したタンパク質を以
下に記載のように精製した。

【０１２６】（実施例１２．培養培地からのＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．Ｆｃおよび
ＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃタンパク質の精製）（１．ＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．Ｆｃの精製）ヒトＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃをＣＨＯ細胞にて一過性発現させ
、そして上清を上記のようにプレートトランスフェクションから収集した。分泌
されたタンパク質の発現を、サンドイッチＥＬＩＳＡによって、それぞれヤギ抗
ｈＩｇＧ（γ鎖特異的；Ｓｉｇｍａ１−３３８２）捕捉抗体およびレポート抗
体、ならびにヤギ抗ｈＩｇＧ（Ｆｃ特異的）−ＦＩＴＣ結合体（ＳｉｇｍａＦ
９５１２）捕捉抗体およびレポート抗体を使用して決定した。収量は、馴化培地
１リットルあたり５．８〜９．２ｍｇ（平均７．５ｍｇ）の範囲であった。完全 ^TM プロテアーゼインヒビター錠剤（ＲｏｃｈｅＤｉａｇｎｏｓｔｉｃｓＣｏ
ｒｐ．）をこの培地に溶解した（１錠剤／Ｌ）。この馴化培地を滅菌濾過（０．
２２μｍ孔径）した後、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＰＢＳ緩衝液（ＬｉｆｅＴｅ
ｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）（ｐＨ７．４）で事前に平衡化した５ｍＬＨｉＴｒａ
ｐ（登録商標）ＰｒｏｔｅｉｎＡアフィニティーカラム（Ａｍｅｒｓｈａｍ
ＰｈａｒｍａｃｉａＢｉｏｔｅｃｈ）上に、４℃でローディングした。流速は
約１〜２ｍＬ／分であった。このカラムをＰＢＳ緩衝液を用いて徹底的に洗浄し
、このカラムから非特異的に結合したタンパク質を除去した。ＩＬ−４Ｒα．Ｉ
Ｌ−１３Ｒα１．Ｆｃを、２０ｍＭクエン酸ナトリウム、１５０ｍＭＮａＣｌ
（ｐＨ３．５）を使用して溶出した。この溶出物をすぐに、１ＭＴｒｉｓ−Ｏ
Ｈを用いた滴定によって中和した。タンパク質を含有する画分をプールし、そし
てすぐに４℃のＰＢＳ緩衝液（ｐＨ７．４）中で透析した。ＰｒｏｔｅｉｎＡ
精製からの回収分は、６．８ｍｇ（７３％）であった。ＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１
３Ｒα１．Ｆｃを、ＰＢＳ、５％（容量／容量）グリセロール（ｐＨ７．４）で
事前に平衡化したｓｕｐｅｒｏｓｅ６カラム（２５ｍＬベッド容量；Ａｍｅｒ
ｓｈａｍＰｈａｒｍａｃｉａＢｉｏｔｅｃｈ）を使用して、周囲の温度でサ
イズ排除クロマトグラフィーによりさらに精製した。流速は、０．５ｍL／分で
あった。タンパク質画分を、クマシー染色した非還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび還
元ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ＮｏｖｅｘＮｕＰＡＧＥ４〜１２％Ｂｉｓ−Ｔｒｉ
ｓゲル）から評価した。画分を、保存的にプールし、凝集したタンパク質の量を
減らした。全体の収量は５１％（４．４ｍｇ）であり、ＳＤＳ−ＰＡＧＥにより
判定した場合に９７％の純度であった。精製したＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα
１．Ｆｃを、非還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（４〜１２％
Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ）、分析的サイズ排除クロマトグラフィー（Ｔｏｓｏｈａａ
ｓＴＳＫＧ４０００ＳＷＸＬ）、Ｎ末端配列決定、およびヤギ抗ｈＩｇＧ−Ｈ
ＲＰ結合体（ＰｒｏｍｅｇａＷ４０３Ｂ）を用いたイムノブロット、そしてま
たマウスモノクローナル抗ｈＩＬ−４Ｒα（Ｒ＆ＤＭＡＢ２３０）に続き、抗
ｍＩｇＧ−ＨＲＰ結合体（ＰｒｏｍｅｇａＷ４０２Ｂ）を２次抗体として用い
たイムノブロットにより分析した。

【０１２７】（２．ＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃの精製）ヒトＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．ＦｃをＣＨＯ細胞にて一過性発現させ
、そして上清を前記のようにプレートトランスフェクションから収集した。分泌
したタンパク質の発現を、ヤギ抗ＩｇＧ（γ鎖特異的；Ｓｉｇｍａ１−３３８
２）捕捉抗体およびレポート抗体、ならびにヤギ抗ｈＩｇＧ（Ｆｃ特異的）−Ｆ
ＩＴＣ結合体（ＳｉｇｍａＦ９５１２）捕捉抗体およびレポート抗体を使用し
て、サンドイッチＥＬＩＳＡにより決定した。収量は、馴化培地１リットルあた
り８．８ｍｇであった。完全^TMプロテアーゼインヒビター錠剤（ＲｏｃｈｅＤ
ｉａｇｎｏｓｔｉｃｓＣｏｒｐ．）をこの培地に溶解した（１錠剤／Ｌ）。こ
の馴化培地を滅菌濾過（０．２２μｍ孔径）した後、Ｄｕｌｂｅｃｃｏ’ｓＰ
ＢＳ緩衝液（ＬｉｆｅＴｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）（ｐＨ７．４）で事前に平
衡化した５ｍＬＨｉＴｒａｐ（登録商標）ＰｒｏｔｅｉｎＡアフィニティー
カラム（ＡｍｅｒｓｈａｍＰｈａｒｍａｃｉａＢｉｏｔｅｃｈ）上に、４℃
でローディングした。流速は約１〜２ｍＬ／分であった。このカラムをＰＢＳ緩
衝液を用いて徹底的に洗浄し、このカラムから非特異的に結合したタンパク質を
除去した。ＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃを、２０ｍＭクエン酸ナトリ
ウム、１５０ｍＭＮａＣｌ（ｐＨ３．５）を使用して溶出した。この溶出物を
すぐに、１ＭＴｒｉｓ−ＯＨを用いた滴定によって中和した。タンパク質を含
有する画分をプールし、そしてすぐに４℃のＰＢＳ緩衝液（ｐＨ７．４）中で透
析した。ＰｒｏｔｅｉｎＡ精製からの回収分は、３．８ｍｇ（４３％）であっ
た。ＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃを、ＰＢＳ、５％（容量／容量）グ
リセロール（ｐＨ７．４）で事前に平衡化したｓｕｐｅｒｏｓｅ６カラム（２
５ｍＬベッド容量；ＡｍｅｒｓｈａｍＰｈａｒｍａｃｉａＢｉｏｔｅｃｈ）
を使用して、周囲の温度でのゲル濾過クロマトグラフィーによりさらに精製した
。流速は、０．５ｍL／分であった。タンパク質画分を、クマシー染色した非還
元ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥ（ＮｏｖｅｘＮｕＰＡＧＥ
４〜１２％Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓゲル）から評価した。画分を、保存的にプールし
、凝集したタンパク質の量を減らした。全体の収量は１７％であり、ＳＤＳ−Ｐ
ＡＧＥにより判定した場合に９５％の純度であった。精製したＩＬ−１３Ｒα１
．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃを、非還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥおよび還元ＳＤＳ−ＰＡＧＥ
（４〜１２％Ｂｉｓ−Ｔｒｉｓ）、分析的ゲル濾過クロマトグラフィー（Ｔｏ
ｓｏｈａａｓＴＳＫＧ４０００ＳＷＸＬ）、Ｎ末端配列決定、およびヤギ抗ｈ
ＩｇＧ−ＨＲＰ結合体（ＰｒｏｍｅｇａＷ４０３Ｂ）を用いたイムノブロット
、そしてまたマウスモノクローナル抗ｈＩＬ−４Ｒα（Ｒ＆ＤＭＡＢ２３０）
に続き、抗ｍＩｇＧ−ＨＲＰ結合体（ＰｒｏｍｅｇａＷ４０２Ｂ）を２次抗体
として用いたイムノブロットにより分析した。

【０１２８】（実施例１３．ＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃおよびＩＬ−１３Ｒα
１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃによる、ＩＬ−４およびＩＬ−１３のブロック）（材料および方法）（ＴＦ１バイオアッセイ）ＴＦ１細胞を、増殖培地（１０ｎｇ／ｍｌＧＭ−
ＣＳＦ、ＲＰＭＩ１６４０、１０％ＦＢＳ、Ｌ−グルタミン、ペニシリン、
ストレプトマイシン）にて維持した。このバイオアッセイのために、細胞をアッ
セイ培地（上記と同様であるが、ＧＭ−ＣＳＦを除く）にて２回洗浄し、次いで
アッセイ培地５０μｌにて２×１０⁵細胞でプレートした。この精製したＩＬ−
４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃおよびＩＬ−１３Ｒα．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃタ
ンパク質をアッセイ培地に希釈して、濃度４０ｎＭにした。各トラップ２５μｌ
をこの細胞に添加した。ＩＬ−１３またはＩＬ−４のいずれかをアッセイ培地中
で４０ｎＭまで希釈し、次いでアッセイ培地中での２倍希釈シリーズを作製した
。次いで、ＩＬ−１３またはＩＬ−４のいずれか２５μｌを、この細胞およびト
ラップを含有するウェルに添加した。次いで、細胞を、３６℃にて５％ＣＯ₂に
約７０時間インキュベートした。ＴＦ１細胞増殖の程度を、製造業者のプロトコ
ル（Ｐｒｏｍｅｇａ，Ｉｎｃ．）に従って、ＭＴＳアッセイにより測定した。

【０１２９】（結果）ＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃおよびＩＬ−１３Ｒα．ＩＬ−４Ｒα
．ＦｃトラップがヒトＩＬ−１３およびヒトＩＬ−４活性の両方をブロックする
能力を、前記のようなＴＦ１バイオアッセイにて測定した。ＩＬ−１３は、ＴＦ
１細胞の増殖を刺激し、濃度０．２ｎＭで最大半分増殖（ｈａｒｆ−ｍａｘｉｍ
ａｌｇｒｏｗｔｈ）であった。濃度１０ｎＭのＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα
１．ＦｃまたはＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃトラップいずれかの添加
により、約２ｎＭまで、ＩＬ−１３誘導性増殖をブロックする（図３３）。約４
〜５ｎＭのＩＬ−１３濃度で、ＴＦ１細胞の増殖が５０％阻害される。ＴＦ１細
胞はＩＬ−４に対してより感受性であり、ＩＬ−４は、ＴＦ１細胞の増殖を刺激
し、約０．０２ｎＭの濃度で最大半分増殖である。濃度１０ｎＭのＩＬ−４Ｒα
．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃまたはＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃいずれ
かの添加により、約１ｎＭまで、ＩＬ−４誘導性増殖がブロックされる（図３４
）。約３〜４ｎＭのＩＬ−４濃度で、ＴＦ１細胞の増殖が５０％阻害される。こ
れらの結果は、濃度１０ｎＭのＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃおよびＩ
Ｌ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃは両方とも、ＩＬ−１３およびＩＬ−４の
両方が細胞性応答を刺激する能力をブロックし得ることを示す。

【０１３０】（実施例１４．ＩＬ−１トラップによる、注入されたＩＬ−１のインビボでの
ブロック）ＩＬ−１は、プロ炎症性サイトカインである。ＩＬ−１の全身投与は、動物に
おいて急性応答（一過性高血糖症、低インスリン血症（ｈｙｐｏｉｎｓｕｌｉｎ
ｅｍｉａ）、発熱、食欲不振、およびインターロイキン−６（ＩＬ−６）の血清
レベルの増加を含む）を惹起することが示されている（Ｒｅｉｍｅｒｓ、１９９
８）。マウスはマウスＩＬ−１およびヒトＩＬ−１の両方に応答性であるので、
ヒトＩＬ−１を使用し得、そしてヒト特異的ＩＬ−１アンタゴニストのインビボ
結合効果を評価し得る。この急性マウスモデルを使用して、ヒトＩＬ−１トラッ
プが、内因性投与されたヒトＩＬ−１のインビボ効果と拮抗する能力を決定した
。これは、このヒトＩＬ−１トラップのインビボでの効力の迅速な指標を提供し
、そしてこれを、分子選択を補助するためのアッセイとして使用し得る。

【０１３１】（実験設計）マウスに、ヒトＩＬ−１（０．３μｇ／ｋｇ）の皮下注射を行った。ヒトＩＬ
−１注射の２４時間前に、この動物を、ビヒクルまたは１５０倍モル過剰のヒト
ＩＬ−１トラップ（０．５４ｍｇ／ｋｇ）のいずれかで事前処理した。屠殺の２
時間前（２６時間）に、このマウスに、ヒトＩＬ−１（０．３μｇ／ｋｇ）の２
回目の注射を行った。血液サンプルを種々の時点で収集し、そして血清をＩＬ−
６レベルについてアッセイした。

【０１３２】（結果）ヒトＩＬ−１の内因性投与は、血清ＩＬ−６レベルの劇的な誘導を生じた。１
５０倍モル過剰で、ヒトＩＬ−１トラップは、ＩＬ−６の増加を完全にブロック
した（図３５）。さらに、このヒトＩＬ−１トラップの効果は、少なくともさら
に２４時間の間持続し、ＩＬ−１を再投与した場合でさえＩＬ−６の増加を妨げ
た（図３５）。このような長期間持続する効力は、ＩＬ−１トラップの毎日の注
射が、長期の適用に必要でないかもしれないことを示唆する。

【０１３３】（実施例１５：ＩＬ−４トラップがカニクイザルにおいてヒトＩＬ−４に対す
る生理学的応答をブロックする能力の評価）ヒトＩＬ−４の全身投与が、カニクイザルにおいて全身応答を惹起した（Ｇｕ
ｎｄｅｌら、１９９６）。従って、ヒトＩＬ−４をブロックする際のＩＬ−４ト
ラップの有効性を、これらに応答を測定することによって示し得る。

【０１３４】（実験設計）この実験は、３つのパートからなる：ヒトＩＬ−４＋ビヒクル（パート１）、
ヒトＩＬ−４＋ＩＬ−４トラップ（パート２）、およびヒトＩＬ−４＋ビヒクル
（パート３）。ヒトＩＬ−４（２５μｇ／ｋｇ）を１日２回、４日間皮下注射し
、そしてＩＬ−４トラップ（８ｍｇ／ｋｇ）およびビヒクルを５日間毎日静脈に
与えた。このＩＬ−４トラップの注射は、ヒトＩＬ−４投与の１日前に始めた。
全血を毎日、ＣＤ１６についてのフローサイトメトリー分析のために収集し、そ
して血漿を得て、サイトカイン単球走化性タンパク質１（ＭＣＰ−１）について
アッセイした。ＣＤ１６およびＭＣＰ−１は、ヒトおよびサルの両方におけるＩ
Ｌ−４媒介性炎症のマーカーである。

【０１３５】（結果）ヒトＩＬ−４の存在下で、ＭＣＰ−１は２．５倍増加し、そしてＩＬ−４トラ
ップにより有意にブロックされた（図３６Ａ）。同様に、末梢血におけるＣＤ１
６陽性リンパ球の存在の減少が、ＩＬ−４トラップにより減弱された（図３６Ｂ
）。休息期間の後、このサルにヒトＩＬ−４を再び注射し、そしてヒトＩＬ−４
に対するこの動物の応答性を再確認した（図３６Ａおよび３６Ｂ）。このことは
、ＭＣＰ−１応答およびＣＤ１６応答の阻害がＩＬ−４トラップにより有意に媒
介されることを示唆した。

【０１３６】（実施例１６：ＩＬ−４誘導性ＩｇＥ分泌に対するＩＬ−４トラップの効果）抗マウスＩｇＤ抗体の注射が、正常なマウスにおいてＩＬ−４媒介性のＩｇＥ
増加を刺激することが示された。このモデルは、ＩＬ＝４アンタゴニスト（例え
ば、可溶性ＩＬ−４レセプターおよび抗ＩＬ−４モノクローナル抗体）を評価す
るために広範に使用されている（Ｓａｔｏら、１９９３）。本発明者らは、この
モデルを使用して、このＩＬ−４トラップがＩｇＥのＩＬ−４媒介性増加をブロ
ックするか否かの能力を評価することを決定した。

【０１３７】（実験設計）抗マウスＩｇＤ（１００μｌ／マウス、皮下）を注射したＢＡＬＢ／Ｃマウス
を無作為に３群に分けた。各々に、ビヒクル、マウスＩＬ−４トラップ（１ｍｇ
／ｇ、皮下）、またはマウスＩＬ−４に対するモノクローナル抗体（１ｍｇ／ｋ
ｇ、皮下）のいずれかを与えた（３〜５日目）。血清を種々の時点で収集し、そ
してＩｇＥレベルについてアッセイした。

【０１３８】（結果）マウスＩＬ−４トラップまたはマウスＩＬ−４抗体での処理は、両方とも、こ
のマウスモデルにおいて、ＩＬ−４媒介性ＩｇＥ増加と有意に拮抗した（図３７
）。これは、このマウスＩＬ−４トラップがマウスＩＬ−４に結合し、そして内
因性ＩＬ−４によりインビボで惹起される生理学的応答と拮抗することを示唆す
る。

【０１３９】本発明は、本明細書中に記載される特定の実施態様により範囲が制限されるべ
きではない。実際、本明細書中に記載されるものに加えての種々の改変が、上記
の説明および添付の図面から、当業者に明らかになる。このような改変は、添付
の特許請求の範囲の範囲内にあることが意図される。

【図面の簡単な説明】

【図１】図１は、一般的なサイトカインレセプターのモデルにおけるレセプター成分の
結合を順序付けて示す。このモデルは、サイトカインが、３つまでのレセプター
結合部位を含み、かつ任意のα成分を最初に結合し、次いでβ１に結合し、次い
でβ２に結合することにより、それらのレセプター成分と相互作用することを示
す。多くのサイトカインレセプターについてのβ成分は、細胞質タンパク質チロ
シンキナーゼのＪａｋ／Ｔｙｋファミリーと、膜基部（ｐｒｏｘｉｍａｌｒｅ
ｇｉｏｎ）（斜線の四角）を通じて相互作用する。β成分およびＪａｋ／Ｔｙｋ
キナーゼのチロシンのリン酸化（Ｐ）により図式化されるように、β成分の二量
体化の際にのみ、シグナル伝達が開始される。

【図２】図２は、ＣＮＴＦが、ＩＬ６Ｒα、ｇｐ１３０、ＣＮＴＦＲαを発現するが、
ＬＩＦＲβを発現しないＰＣ１２細胞株（ＰＣ１２Ｄと呼ぶ）におけるＩＬ−６
応答を阻害することを示す。無血清の（ｓｅｒｕｍ−ｄｅｐｒｉｖｅｄ）ＰＣ１
２Ｄ細胞を、示されるように、ＣＮＴＦの存在下または非存在下でＩＬ−６（５
０ｍｇ／ｍｌ）を加えてインキュベートした。いくつかのプレートもまた、示さ
れるように、可溶性ＩＬ６Ｒα（１ｍｇ／ｍＬ）または可溶性ＣＮＴＦＲα（１
ｍｇ／ｍＬ）を与えた。細胞溶解物を、抗ｇｐ１３０による免疫沈降に供し、そ
して抗ホスホチロシンを用いてイムノブロットした。ｇｐ１３０のチロシンのリ
ン酸化は、ＣＮＴＦの同時添加の際にブロックされる、ＩＬ−６レセプター系の
ＩＬ−６誘導活性化を示す。

【図３】図３は、ＰＣ１２Ｄ細胞上のヨウ素化ＣＮＴＦ結合のスキャッチャード分析を
示す。ＰＣ１２Ｄ細胞を、特異的な結合を決定するために、過剰の非放射性競合
物の存在下または非存在下で、種々の濃度のヨウ素化ＣＮＴＦと共にインキュベ
ートした。この図は、特異的に結合したヨウ素化ＣＮＴＦの量のスキャッチャー
ドプロットを示し、そして９ｐＭおよび３．４ｎＭの解離定数を有する２つの結
合部位と合致するデータを与える。

【図４】図４は、ヒトｇｐ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓ₆のアミノ酸配列を示す。アミノ酸１
〜６１９は、ヒトｇｐ１３０（Ｈｉｂｉら、Ｃｅｌｌ６３：１１４９−１１５
７（１９９０））に由来する。アミノ酸番号２が、コードＤＮＡ配列におけるコ
ザック配列に適応するために、ＬｅｕからＶａｌに変化していることに注意のこ
と。ｇｐ１３０−Ｆｃ−Ｈｉｓ６のシグナルペプチドを斜体にしている（アミノ
酸１〜２２）。Ｓｅｒ−Ｇｌｙ架橋を、太字で示す（アミノ酸６２０、６２１）
。アミノ酸６６２〜８５３は、ヒトＩｇＧ１のＦｃドメイン（Ｌｅｗｉｓら、Ｊ
．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５１：２８２９−２８３８（１９９３））に由来する。（
＋）により、２つのＦｃドメインを連結する鎖間ジスルフィド架橋を形成するＦ
ｃの前のＩｇＧヒンジの２つのシステイン（アミノ酸番号６３２および６３５）
に印を付ける。ヘキサヒスチジン（ｈｉｓｔｉｎｅ）タグを、太字／斜体で示す
（アミノ酸番号８５４〜８５９）。（・）は、停止コドンの位置を示す。

【図５】図５は、ヒトＩＬ−６Ｒα−Ｆｃのアミノ酸配列を示す。鍵となる：アミノ酸
１〜３５８は、ヒトＩＬ−６Ｒα（Ｙａｍａｓａｋｉら、Ｓｃｉｅｎｃｅ２４
１：８２５−８２８（１９９８））に由来する。アミノ酸番号２が、コードＤＮ
Ａ配列におけるコザック配列に適応するために、ＬｅｕからＶａｌに変化してい
ることに注意のこと。ＩＬ−６Ｒα−Ｆｃのシグナルペプチド（アミノ酸１〜１
９）は、斜体にしている。Ａｌａ−Ｇｌｙ架橋を、太字で示す（アミノ酸３５９
、３６０）。アミノ酸３６１〜５９２は、ヒトＩｇＧ１のＦｃドメイン（Ｌｅｗ
ｉｓら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１５１：２８２９−２８３８（１９９３））に由
来する。（＋）により、２つのＦｃドメインを連結する鎖間ジスルフィド架橋を
形成するＦｃの前のＩｇＧヒンジの２つのシステイン（アミノ酸番号３７１およ
び３７４）に印を付ける。（・）は、停止コドンの位置を示す。

【図６】図６は、ＣＮＴＦ／ＩＬ−６／ＩＬ−１１レセプター系を示す。６量体シグナ
ル伝達レセプター複合体の順序付けられた形成を、概略的に示す。サイトカイン
は、Ｒαと会合して、不可欠なサイトカイン・Ｒα複合体（Ｋｄは約５ｎＭであ
る）を形成する。次いで、この低親和性複合体は、最初のシグナル伝達成分（β
１と印を付けた）と会合し、高親和性サイトカイン・Ｒα・β１複合体（Ｋｄは
約１０ｐＭである）を形成する。ＩＬ−６Ｒαの場合では、この成分はｇｐ１３
０である。この三量体高親和性複合体は、次いで、別のこのような複合体と会合
する。この複合体の形成は、シグナル伝達を生じる。なぜならば、それは２つの
シグナル伝達成分（それぞれ、β１およびβ２と印を付けた）の二量体化を伴う
からである（（Ｗａｒｄら、Ｊ．Ｂｉｏ．Ｃｈｅｍ．２６９：２３２８６−２３
２８９（１９９４）；ＳｔａｈｌおよびＹａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ，Ｊ．Ｎｅｕｒ
ｏｂｉｏｌｏｇｙ２５：１４５４−１４６６（１９９４）；Ｓｔａｈｌおよび
Ｙａｎｃｏｐｏｕｌｏｓ，Ｃｅｌｌ７４：５８７−５９０（１９９３））から
適応される）。

【図７】図７は、ＩＬ−６についてのヘテロ二量体レセプターに基づくリガンドトラッ
プの設計を示す。このヘテロ二量体リガンドトラップは、２つのジスルフィド間
連結したタンパク質（ｇｐ１３０−ＦｃおよびＩＬ−６Ｒα−Ｆｃ）から構成さ
れる。ｇｐ１３０−Ｆｃ・ＩＬ−６Ｒα−Ｆｃ複合体（上部パネル）は、高親和
性サイトカイン・Ｒα・β１複合体（下部パネル）を模倣することが示される。
このリガンドトラップは、ＩＬ−６を隔離することによりアンタゴニストとして
機能し、従ってＩＬ−６−応答性細胞上でネイティブなレセプターと相互作用す
ることに利用できないようにする。

【図８】図８は、ヘテロマーイムノグロブリン重鎖／軽鎖レセプター融合体を示す。重
鎖／軽鎖レセプター融合分子の例を、概略的に示す。ｇｐ１３０の細胞外ドメイ
ンは、Ｃγに融合するのに対して、ＩＬ−６Ｒαの細胞外ドメインは、κ鎖の定
常領域（κ）に融合される。この鎖間ジスルフィド架橋（Ｓ−Ｓ）もまた示す。

【図９】図９は、ｇｐ１３０−Ｃγ１のアミノ酸配列を示す。鍵となる：アミノ酸１〜
６１９は、ヒトｇｐ１３０（Ｈｉｂｉら、Ｃｅｌｌ６３：１１４９−１１５７
（１９９０））に由来する。Ｓｅｒ−Ｇｌｙ架橋を、太字で示す。アミノ酸６６
２〜６５１は、ヒトＩｇＧ１の定常領域（Ｌｅｗｉｓら、Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．
１５１：２８２９−２８３８（１９９３））に由来する。（＊）は、停止コドン
の位置を示す。

【図１０】図１０は、ｇｐ１３０Δ３ｆｉｂｒｏのアミノ酸配列を示す。鍵となる：アミ
ノ酸１〜３３０は、ヒトｇｐ１３０（Ｈｉｂｉら、Ｃｅｌｌ６３：１１４９−
１１５７（１９９０））に由来する。他の記号は、図９に記載されるとおりであ
る。

【図１１】図１１は、Ｊ−ＣＨ１のアミノ酸配列を示す。鍵となる：Ｓｅｒ−Ｇｌｙ架橋
を、太字で示す。Ｊ−ペプチドを斜体で示す。ＣＨ１ドメインに下線を付す。

【図１２】図１２は、Ｃγ４のアミノ酸配列を示す。鍵となる：Ｓｅｒ−Ｇｌｙ架橋を、
太字で示す。アミノ酸２〜２３９は、Ｃγ４配列を含む。

【図１３】図１３は、κドメインのアミノ酸配列を示す。鍵となる：Ｓｅｒ−Ｇｌｙ架橋
を、太字で示す。アミノ酸２〜１０８は、κドメインを含む。Ｃ末端システイン
（アミノ酸１０８）は、κドメインとＣγのＣＨ１ドメインとのジスルフィド結
合に関与するものである。

【図１４】図１４は、λドメインのアミノ酸配列を示す。鍵となる：Ｓｅｒ−Ｇｌｙ架橋
を、太字で示す。アミノ酸２〜１０６は、λドメインを含む（Ｃｈｅｕｎｇら、
Ｊ．Ｖｉｒｏｌ．６６：６７１４−６７２０（１９９２））。Ｃ末端システイン
（アミノ酸１０６）は、λドメインとＣγのＣＨ１ドメインとのジスルフィド結
合に関与するものである。

【図１５】図１５は、可溶性ＩＬ−６Ｒαドメインのアミノ酸配列を示す。鍵となる：ア
ミノ酸１〜３５８は、可溶性ＩＬ−６Ｒαドメインを含む（Ｙａｍａｓａｋｉら
、Ｓｃｉｅｎｃｅ２４１：８２５−８２８（１９８８））。Ａｌａ−Ｇｌｙ架
橋を、太字で示す。

【図１６】図１６は、可溶性ＩＬ−６Ｒα３１３ドメインのアミノ酸配列を示す。鍵とな
る：アミノ酸１〜３１３は、短縮したＩＬ−６Ｒαドメイン（ＩＬ−６Ｒα３１
３）を含む。Ｔｈｒ−Ｇｌｙ架橋を、太字で示す。

【図１７】図１７は、ｇｐ１３０−Ｃγ１・ＩＬ−６Ｒα−κの精製を示す。４％〜１２
％のＳＤＳ−ＰＡＧＥ勾配ゲルは、非還元条件下で泳動した。タンパク質を、銀
による染色によって可視化した。レーン１：ＰｒｏｔｅｉｎＡＳｅｐｈａｒ
ｏｓｅ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ）により精製した約１００ｎｇの物質。レーン２分
子サイズ標準（Ａｍｅｒｓｈａｍ）。レーン３：ＩＬ−６アフィニティークロマ
トグラフィー工程によるさらなる精製の後に本明細書で示される、Ｐｒｏｔｅｉ
ｎＡで精製した物質。ｇｐ１３０−Ｃγ１二量体［（ｇｐ１３０−Ｃγ１）₂
］、１つのＩＬ−６Ｒα−κと会合したｇｐ１３０−Ｃγ１二量体［（ｇｐ１３
０−Ｃγ１）₂・（ＩＬ−６Ｒα−κ）₁］、および２つのＩＬ−６Ｒα−κと会
合したｇｐ１３０−Ｃγ１二量体［（ｇｐ１３０−Ｃγ１）₂・（ｇｐ１３０−
Ｃγ１）₂］の位置を、示し、ならびに分子サイズ標準についてのサイズを、キ
ロダルトン（２００、１００、および４６）で示す。

【図１８】図１８は、ＩＬ−６が、リガンドトラップからゆっくりと解離することを示す
。重鎖／軽鎖レセプターに基づくリガンドトラップ（ｇｐ１３０−Ｃγ１・ＩＬ
−６Ｒα−κ）からのＩＬ−６の解離速度を、中和モノクローナル抗体Ｂ−Ｅ８
（ＢＥ８ＭＡｂ）によって得た解離速度と比較した。

【図１９】図１９は、ＩＬ−６が、リガンドトラップの多量体化を誘導し得ることを示す
。（Ａ）２つの異なるリガンドトラップを概略的に示し、そしてプロテインＡに
結合するそれらの能力に従って列挙する。ｇｐ１３０−Ｆｃ・ＩＬ-６Ｒα−Ｆ
ｃ（ＧＦ６Ｆ）が、そのＦｃドメインを介してプロテインＡに結合するのに対し
て、ｇｐ１３０−ＣＨ１・ＩＬ−６Ｒα−κ（Ｇ１６Ｋ）は、プロテインＡに結
合しない。（Ｂ）印を付けた、ＧＦ６Ｆ±ＩＬ−６、Ｇ１６Ｋ±ＩＬ−６、また
はＧＦ６ＦおよびＧ１６Ｋ±ＩＬ−６の混合物からＰｒｏｔｅｉｎＡ−Ｓｅｐ
ｈａｒｏｓｅを用いて沈殿させたタンパク質の抗κウエスタンブロット。

【図２０】図２０は、ＩＬ−６依存性ＸＧ−１細胞増殖の阻害を示す。ＸＧ−１細胞［Ｚ
ｈａｎｇら、Ｂｌｏｏｄ８３：３６５４−３６６３（１９９４）］を、増殖ア
ッセイのために、ＩＬ−６由来の細胞を５時間飢餓させることによって、調製し
た。アッセイを、ＲＰＭＩ＋１０％ウシ胎仔血清＋ペニシリン／ストレプトマイ
シン＋０．０５０ｎＭ２−メルカプトエタノール＋グルタミン中、９６ウェル
組織培養皿に配置した。１ウェルあたり０．１ｍｌのこの培地を使用した。細胞
を、アッセイの開始に１ｍｌあたり２５０，０００の密度で懸濁した。ＩＬ−６
±リガンドトラップまたは抗体の添加の７２時間後、ＭＴＴアッセイを、記載（
Ｐａｎａｙｏｔａｔｏｓら、Ｂｉｏｃｈｅｍｉｓｔｒｙ３３：５８１３−５８
１８（１９９４））のように行った。利用された異なるリガンドトラップを列挙
する。

【図２１】図２１Ａ〜２１Ｄ：４２４と命名された、サイトカインＩＬ−４を結合して非
機能性複合体を形成し得る融合ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列およ
びその推定アミノ酸配列。

【図２２】図２２Ａ〜２２Ｄ：６０３と命名された、サイトカインＩＬ−４を結合して非
機能性複合体を形成し得る融合ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列およ
びその推定アミノ酸配列。

【図２３】図２３Ａ〜２３Ｄ：６２２と命名された、サイトカインＩＬ−４を結合して非
機能性複合体を形成し得る融合ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列およ
びその推定アミノ酸配列。

【図２４】図２４Ａ〜２４Ｆ：４１２と命名された、サイトカインＩＬ−６を結合して非
機能性複合体を形成し得る融合ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列およ
びその推定アミノ酸配列。

【図２５】図２５Ａ〜２５Ｆ：６１６と命名された、サイトカインＩＬ−６を結合して非
機能性複合体を形成し得る融合ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列およ
びその推定アミノ酸配列。

【図２６】図２６Ａ〜２６Ｅ：５６９と命名された、サイトカインＩＬ−１を結合して非
機能性複合体を形成し得る融合ポリペプチドをコードするヌクレオチド配列およ
びその推定アミノ酸配列。

【図２７】図２７：４ＳＣ３７５と命名された、ＩＬ−２Ｒγ−ｓｃｂ−ＩＬ４Ｒα−Ｆ
ｃΔＣ１の融合ポリペプチドであるＩＬ−４トラップが、ＴＦ１細胞バイオアッ
セイにおいて、ＩＬ４ＲαＦｃΔＣ１単独よりもＩＬ−４アンタゴニストとして
数倍の大きさでより良好であることを示す。

【図２８】図２８：４ＳＣ３７５と命名されたＩＬ−４トラップが、ＩＬ−４Ｒα成分を
豊富にもつＩＬ−２Ｒγ成分を有するＩＬ−２Ｒγ−ＩＬ４Ｒα−ＦｃΔＣ１の
融合ポリペプチドである４ＳＣ４２４と命名されたＩＬ−４トラップ（図２１Ａ
〜２１Ｄに記載）と等価に、ＴＦ１細胞バイオアッセイにおいてアンタゴニスト
活性を表すことを示す。

【図２９】図２９：図２４Ａ〜２４Ｆに記載されたＩＬ６トラップ（６ＳＣ４１２ＩＬ
６Ｒ−ｓｃｂ−ｇｐｘ−ＦｃΔＣ１）が、ヒトＩｌ−６−ＢＥ８に対するモノク
ローナル中和抗体よりも、ＸＧ１バイオアッセイにおいてＩＬ−６の良好なアン
タゴニストであることを示す。

【図３０】図３０：トラップ１ＳＣ５６９（図２６Ａ〜２６Ｅに記載）が、ＩＬ−１の効
果と拮抗し得、そしてＩＬ−１での処置の際に、ＭＲＣ５細胞からのＩＬ−６産
生をブロックし得ることを示す。

【図３１】図３１Ａ〜３１Ｇ：ＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．Ｆｃ単鎖トラップ構築
物のヌクレオチド配列およびコードされるアミノ酸配列を示す。

【図３２】図３２Ａ〜３２Ｇ：ＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃ単鎖トラップ構築
物のヌクレオチド配列およびコードされるアミノ酸配列を示す。

【図３３】図３３：ＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃおよびＩＬ−１３Ｒα１．Ｉ
Ｌ−４Ｒα．ＦｃによるＩＬ−１３のブロッキング。１０ｎＭの濃度での、ＩＬ
−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃトラップまたはＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４
Ｒα．Ｆｃトラップのいずれかの添加は、約２ｎＭまでＩＬ−１３誘導増殖をブ
ロックする。約４〜５ｎＭのＩＬ−１３濃度で、ＴＦ１細胞の増殖を５０％阻害
する。

【図３４】図３４：ＩＬ−４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃおよびＩＬ−１３Ｒα１．Ｉ
Ｌ−４Ｒα．ＦｃによるＩＬ−４のブロッキング。１０ｎＭの濃度での、ＩＬ−
４Ｒα．ＩＬ−１３Ｒα１．ＦｃまたはＩＬ−１３Ｒα１．ＩＬ−４Ｒα．Ｆｃ
のいずれかの添加は、約１ｎＭまでＩＬ−４誘導増殖をブロックする。約３〜４
ｎＭのＩＬ−４濃度で、ＴＦ１細胞の増殖を５０％阻害する。

【図３５】図３５：ヒトＩＬ−１トラップは、外因的に投与されたｈｕＩＬ−１のインビ
ボ効果をブロックする。ＢＡＬＢ／ｃマウスに、時間０でｈｕＩＬ−１（０．３
μｇ／ｋｇ）の皮下注射を与えた。ｈｕＩＬ−１注射の２４時間前に、ビヒクル
または１５０倍モル濃度過剰ｈｕＩＬ−１トラップのいずれかで動物を前処置し
た。屠殺（２６時間）の２時間前に、このマウスを、ｈｕＩＬ−１の二次接種（
０．３μｇ／ｋｇ、皮下）で再チャレンジした。血液サンプルを種々の時点で回
収し、そして血清をＩＬ−１レベルについてアッセイした（平均±ＳＥＭ；１群
あたりｎ＝５として表す）。

【図３６】図３６Ａおよび図３６Ｂ：ヒトＩＬ−４トラップは、サルにおいてヒトＩＬ−
４の効果と拮抗する。図３６Ａ：示されるように、カニクイザルを３つのパート
で処置した。ヒトＩＬ−４（２５μｇ／ｋｇ）を４日間、毎日２回皮下注射し、
そしてヒトＩＬ−４トラップ（８ｍｇ／ｍｌ）およびビヒクルを５日間（ヒトＩ
Ｌ−４投与の１日前に開始する）、毎日静脈内に与えた。血漿を毎日回収し、そ
してＭＣＰ−１レベルをアッセイした。結果を、平均±ＳＥＭ；ｎ＝４として表
した。（ＡＮＯＶＡｐ＜０．０００７；Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ：パート２
対パート１、ｐ，０．０５；パート２対パート３、ｐ，０．０５；パート１対パ
ート３、有意でない）。図３６Ｂ：示されるように、カニクイザルを３つのパー
トで処置した。ヒトＩＬ−４（２５μｇ／ｋｇ）を４日間、毎日２回皮下注射し
、そしてヒトＩＬ−４トラップ（８ｍｇ／ｍｌ）およびビヒクルを５日間（ヒト
ＩＬ−４投与の１日前に開始する）、毎日静脈内に与えた。ＣＤ１６についての
フローサイトメトリー分析のために、全血を毎日回収した。結果を、平均±ＳＥ
Ｍ；ｎ＝４として表した。（ＡＮＯＶＡｐ＜０．０４２；Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａ
ｍｅｒ：パート２対パート１、ｐ＜０．０５；パート２対パート３およびパート
１対パート３、有意でない）。

【図３７】図３７：マウスＩＬ−４トラップは、マウスにおいてＩＬ−４媒介性ＩｇＥ増
加を部分的に予防した。抗マウスＩｇＤ（１００μｌ／マウス、皮下）で注射さ
れたＢＡＬＢ／Ｃマウスを無作為に３群に分け、各々（３〜５日目に）ビヒクル
、マウスＩＬ−４トラップ（１ｍｇ／ｋｇ、皮下）、またはマウスＩＬ−４に対
するモノクローナル抗体（１ｍｇ／ｋｇ、皮下）のいずれかを受けた。血清を種
々の時点で回収し、そしてＩｇＥレベルについてアッセイした。結果を、平均±
ＳＥＭ（１群あたりｎ＝５）として表した。（ＡＮＯＶＡｐ＝０．０００２；
Ｔｕｋｅｙ−Ｋｒａｍｅｒ：ビヒクル対ＩＬ−４トラップ，ｐ＜０．０１；ビヒ
クル対ＩＬ−４抗体、ｐ＜０．００１；ＩＬ−４トラップ対ＩＬ−４抗体、有意
でない）。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｃ１２Ｎ 5/10 Ａ６１Ｐ 19/10 Ｃ１２Ｐ 21/02 35/00 // Ａ６１Ｋ 38/00 (Ｃ１２Ｐ 21/02 ＣＡ６１Ｐ 19/10 Ｃ１２Ｒ 1:91） 35/00 Ｃ１２Ｎ 15/00 ＺＮＡＡ (Ｃ１２Ｐ 21/02 5/00 ＢＣ１２Ｒ 1:91）Ａ６１Ｋ 37/02 (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＴＺ，ＵＧ，ＺＷ )，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＳ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷ (72)発明者イアンコポウロス，ジョージディー．アメリカ合衆国ニューヨーク 10598，ヨークタウンハイツ，バプティストチャーチロード 1519 Ｆターム(参考） 4B024 AA01 AA11 BA61 BA63 CA07 DA02 DA05 DA06 DA12 EA04 GA11 HA03 4B064 AG01 AG20 AG26 CA02 CA06 CA10 4B065 AA26X AA90X AA90Y AA91X AA93X AB01 AC14 BA02 CA24 CA44 CA46 4C084 AA02 AA06 AA07 BA01 BA08 BA22 BA23 CA53 CA56 DA45 NA14 ZA972 ZB262 4H045 AA10 BA10 BA41 CA40 DA01 DA75 EA20 FA72 FA73 FA74 GA26

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】サイトカインに結合して非機能性複合体を形成し得る融合ポ
リペプチドをコードする単離された核酸分子であって、以下：ａ）サイトカインレセプターの特異性決定成分の細胞外ドメインのサイトカイ
ン結合部分のアミノ酸配列を含む第１の融合ポリペプチド成分をコードするヌク
レオチド配列；ｂ）サイトカインレセプターのシグナル伝達成分の細胞外ドメインのサイトカ
イン結合部分のアミノ酸配列を含む第２の融合ポリペプチド成分をコードするヌ
クレオチド配列；およびｃ）多量体化成分のアミノ酸配列を含む第３の融合ポリペプチド成分をコード
するヌクレオチド配列、を含む、単離された核酸分子。
【請求項２】前記第１の成分をコードする前記ヌクレオチド配列が、前記
第２の成分をコードする前記ヌクレオチド配列の上流にある、請求項１の核酸分
子。
【請求項３】前記第１の成分をコードする前記ヌクレオチド配列が、前記
第２の成分をコードする前記ヌクレオチド配列の下流にある、請求項１の核酸分
子。
【請求項４】請求項１に記載の単離された核酸分子であって、前記サイト
カインレセプターが、インターロイキン−２、インターロイキン−３、インター
ロイキン−４、インターロイキン−５、インターロイキン−６、インターロイキ
ン−７、インターロイキン−９、インターロイキン−１１、インターロイキン−
１３、インターロイキン−１５、顆粒球マクロファージコロニー刺激因子、オン
コスタチンＭ、ならびに白血病阻害因子およびカルジオトロフィン−１からなる
群より選択されるサイトカインの造血素ファミリーのメンバーについてのレセプ
ターである、単離された核酸分子。
【請求項５】請求項１に記載の単離された核酸分子であって、前記サイト
カインレセプターが、ＩＦＮ−γ、ＩＦＮ−α、およびＩＦＮ−βからなる群よ
り選択されるサイトカインのインターフェロンファミリーのメンバーについての
レセプターである、単離された核酸分子。
【請求項６】請求項１に記載の単離された核酸分子であって、前記サイト
カインレセプターが、Ｂ７．１（ＣＤ８０）およびＢ７．２（Ｂ７０）からなる
群より選択されるサイトカインの免疫グロブリンスーパーファミリーのメンバー
についてのレセプターである、単離された核酸分子。
【請求項７】請求項１に記載の単離された核酸分子であって、前記サイト
カインレセプターが、ＴＮＦ−α、ＴＮＦ−β、ＬＴ−β、ＣＤ４０リガンド、
Ｆａｓリガンド、ＣＤ２７リガンド、ＣＤ３０リガンドおよび４−１ＢＢＬから
なる群より選択されるサイトカインのＴＮＦファミリーのメンバーについてのレ
セプターである、単離された核酸分子。
【請求項８】請求項１に記載の単離された核酸分子であって、前記サイト
カインレセプターが、ＴＧＦ−β１、ＴＧＦ−β２、ＴＧＦ−β３、ＢＭＰ−２
、ＢＭＰ−３ａ、ＢＭＰ−３ｂ、ＢＭＰ−４、ＢＭＰ−５、ＢＭＰ−６、ＢＭＰ
−７、ＢＭＰ−８ａ、ＢＭＰ−８ｂ、ＢＭＰ−９、ＢＭＰ−１０、ＢＭＰ−１１
、ＢＭＰ−１５、ＢＭＰ−１６、子宮内膜出血関連因子（ＥＢＡＦ）、成長分化
因子−１（ＧＤＦ−１）、ＧＤＦ−２、ＧＤＦ−３、ＧＤＦ−５、ＧＤＦ−６、
ＧＤＦ−７、ＧＤＦ−８、ＧＤＦ−９、ＧＤＦ−１２、ＧＤＦ−１４、ミューラ
ー阻害物質（ＭＩＳ）、アクチビン−１、アクチビン−２、アクチビン−３、ア
クチビン−４、およびアクチビン−５からなる群より選択されるＴＧＦ−β／Ｂ
ＭＰファミリーのメンバーについてのレセプターである、単離された核酸分子。
【請求項９】請求項１に記載の単離された核酸分子であって、前記サイト
カインレセプターが、インターロイキン−１、インターロイキン−１０、インタ
ーロイキン−１２、インターロイキン−１４、インターロイキン−１８、および
ＭＩＦからなる群より選択されるサイトカインについてのレセプターである、単
離された核酸分子。
【請求項１０】前記多量体化成分が免疫グロブリン由来ドメインを含む、
請求項１に記載の単離された核酸分子。
【請求項１１】請求項１０に記載の単離された核酸分子であって、前記免
疫グロブリン由来ドメインが、ＩｇＧのＦｃドメイン、ＩｇＧの重鎖、およびＩ
ｇＧの軽鎖からなる群より選択される、単離された核酸分子。
【請求項１２】請求項１に記載の単離された核酸分子によりコードされる
融合ポリペプチド。
【請求項１３】サイトカインと結合して、請求項１２に記載の融合ポリペ
プチドの多量体を含む非機能性複合体を形成し得る、組成物。
【請求項１４】前記多量体が二量体である、請求項１３に記載の組成物。
【請求項１５】請求項１に記載の核酸分子を含む、ベクター。
【請求項１６】請求項１に記載の核酸分子を含む発現ベクターであって、
該核酸分子が発現制御配列に作動可能に連結される、発現ベクター。
【請求項１７】融合ポリペプチドの生成のための宿主−ベクター系であっ
て、安定な宿主細胞中に請求項１６の発現ベクターを含む、宿主−ベクター系。
【請求項１８】前記適切な宿主細胞が、細菌細胞、酵母細胞、昆虫細胞、
または哺乳動物細胞である、請求項１７に記載の宿主−ベクター系。
【請求項１９】前記適切な宿主細胞がＥ．ｃｏｌｉである、請求項１７に
記載の宿主−ベクター系。
【請求項２０】前記適切な宿主細胞がＣＯＳ細胞である、請求項１７に記
載の宿主−ベクター系。
【請求項２１】前記適切な宿主細胞がＣＨＯ細胞である、請求項１７に記
載の宿主−ベクター系。
【請求項２２】前記適切な宿主細胞が２９３細胞である、請求項１７に記
載の宿主−ベクター系。
【請求項２３】前記適切な宿主細胞がＢＨＫ細胞である、請求項１７に記
載の宿主−ベクター系。
【請求項２４】前記適切な宿主細胞がＮＳ０細胞である、請求項１７に記
載の宿主−ベクター系。
【請求項２５】請求項１７の宿主−ベクター系の細胞を、融合ポリペプチ
ドの生成を可能にし、そしてそのように生成した融合ポリペプチドを回収する条
件下で増殖させる工程を包含する、融合ポリペプチドを生成するための方法。