JP2002510648A

JP2002510648A - ヒアルロナンシンターゼをコードする核酸およびその使用方法

Info

Publication number: JP2002510648A
Application number: JP2000542035A
Authority: JP
Inventors: ディエンジェリス，ポウル
Original assignee: ボードオブリージェンツオブザユニヴァーシティーオブオクラホマ
Priority date: 1998-04-02
Filing date: 1999-04-01
Publication date: 2002-04-09
Anticipated expiration: 2019-04-01
Also published as: EP1832662B1; IL138803A0; BR9909346A; JP4490581B2; CA2326821C; WO1999051265A1; AU3548599A; AU770903B2; CZ20003576A3; ATE501275T1; JP4887333B2; EP1832662A2; DE69943276D1; CN101275143A; WO1999051265A9; CN1327894C; JP2008283974A; EP1832662A3; CN1304317A; EP1073460A4

Abstract

(57)【要約】本発明は、酵素的に活性な細菌ムルトシダ（ｂａｃｔｅｒｉａｌｍｕｌｔｏｃｉｄａ）ヒアルロン酸シンターゼ（ＰｍＨＡＳ）をコードするコード領域セグメントを有する核酸セグメント、及びヒアルロン酸シンターゼとそのヒアルロン酸産物を産生する組換え細胞の調製におけるこの核酸セグメントの使用に関する。本発明はまた、ワクチン接種において使用するためのＰ．ムルトシダの「ノックアウト」突然変異菌株を構築する上でのＰｍＨＡＳの使用に関する。本発明はさらに、家畜のＰ．ムルトシダ感染の圃場検査での診断試験におけるＰｍＨＡＳの使用に関する。

Description

【発明の詳細な説明】

【０００１】（関連出願についての関連資料）本発明は、１９９８年４月２日に提出された「パスツレラ・ムルトシダ（ＰＡ
ＳＴＵＲＥＬＬＡＭＵＬＴＯＣＩＤＡ）から得られる特徴的なヒアルロナンシンターゼ」と題される、全体的にここに参照して直ちに組込まれる米国仮特許出
願第６０／０８０，４１４号に関連する。本発明は、１９９８年１０月２６日に
提出された「ヒアルロナンシンターゼ遺伝子およびその使用」と題される、全体
的にここに参照して直ちに組込まれる米国仮特許出願第０９／１７８，８５１号
に対する一部継続でもある。

【０００２】（発明の背景）１．発明の分野本発明は、パスツレラ・ムルトシダ（Ｐａｓｔｕｒｅｌｌａｍｕｌｔｏｃｉｄａ）から得られるヒアルロナンシンターゼをコードするＤＮＡ配列に関する。
さらに詳細には、本発明は、外来宿主中でヒアルロナンシンターゼを発現するこ
とができるように、組換え構築にかける能力のあるパスツレラ・ムルトシダ（Ｐ
ａｓｔｕｒｅｌｌａｍｕｌｔｏｃｉｄａ）から得られるヒアルロナンシンターゼをコードするＤＮＡ配列に関する。本発明は、（１）変化するサイズ分布のヒ
アルロナンポリマーを作り、（２）置換基または付加塩基糖を組込むヒアルロナ
ンポリマーを作り、（３）新しくそして新規な動物ワクチンを開発し、そして（
４）動物の病原体の検出および同定のための新しくそして新規な診断用試験を開
発するために、パスツレラ・ムルトシダから得られるヒアルロナンシンターゼを
コードするＤＮＡ配列を使用する方法にも関する。

【０００３】２．背景技術の簡単な説明多糖ヒアルロン酸（「ＨＡ」）またはヒアルロナンは、構造的そして認識の両
方の役割を果たす高等動物の必須成分である。哺乳類および鳥類では、ＨＡは、
皮膚、関節滑膜液、および眼球の硝子体液に多量に存在する。ある種の病原性細
菌、特にグラム陽性ＡおよびＣ群のストレプトコッカス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃ
ｃｕｓ）およびグラム陰性のパステレラ・ムルトシダＡ型は、それらの脊椎動物
宿主で見られるＨＡ分子と同じ化学構造を示すＨＡを含む細胞外莢膜を生じる。
この「分子擬態」は、被包多糖に対する強力な抗体応答をさせる試みを阻止する
。対照的に、他の細菌によって産生される様々な構造を示す莢膜多糖は、しばし
ば非常に抗原性がある。ＨＡ莢膜も、病原体が貧食作用を含む宿主防御をかわす
のを明らかに助ける。

【０００４】歴史的には、この分野の研究者らは、パスツレラ（Ｐａｓｔｕｒｅｌｌａ）か
ら得られるヒアルロナン・シンターゼ（「ＨＡＳ」）をクローニングまたは同定
するのに成功していない。ＡおよびＣ群のストレプトコッカスから得られる細菌
ＨＡＳ酵素は同定され、そしてクローニングされている。ストレプトコッカス・
ビオゲネス（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｐｙｏｇｅｎｅｓ）から得られるＨａｓＡは、明確に同定されるべき最初のＨＡＳであった。この内在性膜タンパク
質は、基質として細胞内ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃを活用す
る。新生ＨＡ鎖は、膜を通して押出されて、細胞外莢膜を形成する。キセノプス
タンパク質ＤＧ４２も、ＨＡＳと決定された。ＨＡＳ１、ＨＡＳ２およびＨＡＳ
３と称されるＤＧ４２のいくつかのヒトおよびネズミ相同体も同定されている。
アミノ酸レベルでこれらの分子でクローン化された哺乳類の酵素の中に考慮すべ
き類似性があるが、しかしそれらは、様々な染色体上にある。Ｐ．ムルトシダか
ら得られる特徴的なＨＡＳは、ストレプトコッカス、ＰＢＣＶ−１ウイルスまた
は高等動物から得られる、先にクローン化された酵素に特には似てはいない一次
構造を示す。

【０００５】Ａ９８Ｒと呼ばれるＯＲＦを有するウイルス性ＨＡＳは、ストレプトコッカス
の、そして脊椎動物の酵素に２８−３０％同一であると同定された。ＰＢＣＶ−
１（パラメシウム・ブルサリア（Ｐａｒａｍｅｃｉｕｍｂｕｒｓａｒｉａ）のクロレラウイスル）は、そのクロレラ様緑色藻類宿主の感染の直後に確かなＨＡ
多糖を産生する。Ａ９８Ｒは、炭化水素ポリマーを産生すると同定された最初に
ウイルスでコードされる酵素である。

【０００６】家禽コレラの原因媒体であるカーターＡ型のＰ．ムルトシダは、米国の家禽産
業での経済損失の大きな原因である。被包親株が素早く増え、そして１から２日
以内に死をもたらす場合、Ｐ．ムルトシダの非莢膜突然変異体は、静脈注射後に
、七面鳥の血流で繁殖しない。非莢膜である自然発生的突然変異株も、野生型よ
り伝染性の強さが１０⁵倍小さかったが、しかし開示された突然変異体（以降に記述されるとおり）以前の全ての事例で遺伝的欠陥の特性は、知られていなかっ
た。

【０００７】パスツレラの細菌性病原体は、米国農業に酷い損失を生じる。Ｐ．ムルトシダ
の細胞外多糖莢膜は、主要な毒性因子と提示された。Ａ型莢膜は、宿主の体内の
正常な多糖と同一であり、したがって、免疫系に見分けがつかない多糖、主にＨ
Ａから構成される。この「分子擬態」は、貧食作用および補体依存性溶解のよう
な宿主防御を妨げる。さらに、ＨＡは、そのポリマーが宿主の体の正常な成分で
あるので、強力には免疫原性でない。しかし、異なる多糖から構成される他の細
菌の莢膜は、通常、免疫応答の主要な標的である。莢膜ポリマーに対して発生さ
れる抗体は、しばしば、微生物の排除および長期免疫性の原因である。

【０００８】病原体の毒力の原因である因子を知ることは、聡明にそして有効にその疾病に
勝つ方法についての鍵を提供する。Ａ型Ｐ．ムルトシダでは、毒力因子の内の１
つは、非免疫原性ＨＡの保護的シールト、つまり宿主防御のためのほとんど越え
られない防御壁である。いくつかの株は、保護用のＨＡ莢膜に依存するように見
えないが、しかし、宿主機構を保持するための他の未知の因子を活用する。選択
的に、これらの株は、古典的試験によって検出されない、より小さな莢膜を保有
する可能性がある。

【０００９】家禽および特に七面鳥については、家禽コレラは、破壊的でありうる。数種の
被包株の内のいくつかから１，０００個の細胞が、２４−４８時間で七面鳥を死
滅させる。家禽コレラは、北米で経済的に重要な疾病である。１９８０年代後半
に行われた研究では、七面鳥産業における家禽コレラの影響の内のいくつかが示
される。すなわち、（ｉ）家禽コレラが、全ての病気の１４．７から１８％を引
起こすこと、（ｉｉ）１つの州だけで、年間の損失は、６００，０００ドルであ
ったこと、（ｉｉｉ）病気の一団を抗生物質で処置するのには、０．４０ドル／
一羽を費やすこと、そして（ｉｖ）感染を防止するための処置には０．１２ドル
／一羽を費やすことである。

【００１０】Ａ型Ｐ．ムルトシダのある種の株は、肺炎の病巣を引起こし、そしてストレス
の掛かった家畜に発熱をもたらす。飼育場での体重増における継続した減少は、
重大な損失を引起こす。ウシの株は、家禽コレラ株とある程度区別がつくが、し
かし、宿主範囲の優位性におけるこれらの差異についての分子的根拠はまだ明ら
かでない。Ａ型も、ブタでの肺炎の半分の原因となる。Ｄ型Ｐ．ムルトシダは、
ブタでの非常に上位の疾病である萎縮性鼻炎でのその関わり合いについて最もよ
く知られている。

【００１１】Ｄ型莢膜ポリマーは、ある種の型のグルイコサミノグリカンであると思われる
未知構造を有する。これは、ＨＡを含むポリマーと同じファミリーである。この
疾病は、ボルデテラ・ブロンキセプチカ（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａｂｒｏｎｃｈｉｓｅｐｔｉｃａ）によっても促進されるが、しかしその症状は、両方の細菌種
が存在するときなおさら悪い。Ｆ型は、家禽コレラ事例の約１０％を引起こすと
概算される。この場合に、莢膜ポリマーは、ＨＡではなくて、コンドロイチンと
称される関連ポリマーである。

【００１２】最近、家禽範囲での疾病防止は、厳密な衛生と同様に、２つの要素、ワクチン
および抗生物質によって実現される。この分野には多くの血液型があり、そして
ワクチンは、全病原体種の限定された部分集合に対してただ有効であるので、最
初の選択の有用性は、制限される。死滅細胞のワクチンは、困難な強制注射によ
って行われ、そして得られる保護は高くない。したがって、この経路は、通常、
交配動物のために保留される。さらに有効な生細胞ワクチンは、水供給を介して
送出させることができるが、しかし数千の集団に均等に投与するのは困難である
。さらに、生の「非毒性」ワクチンは、しばしばそれ自身が疾病を引起こす可能
性があるか、そうでなければ鳥は、ストレスがかかるかまたは病気である。この
予測不可能の最も共通の理由は、これらの毒性のない株が、未知または特徴づけ
られていない遺伝子での自発的変異から生じたことである。生および死滅ワクチ
ンへの繰返しの選択的露出を利用するプロトコールは、いくつかの血液型での課
題に対してのみ鳥類を保護することができる。

【００１３】第二の疾病防止選択は、抗生物質である。これらは、感染を防止するために補
助治療用量で、または感染鳥内で家禽コレラと戦うために高用量で使用される。
疾病を有する鳥類の含有率は、薬剤治療で下降しうるが、しかし時期よくそして
集中的な処置が必要である。抗生物質の遅れた投与または時期尚早な中止は、し
ばしば、慢性家禽コレラ、そして不治宣告および需要が逸するに至る膿瘍または
病巣を有する病気の鳥になる。さらに、Ｐ．ムルトシダの耐性株は、継続して生
じ、そして医薬品費用が高いので、この解決法は、長期傾向では魅力的でない。
さらに、Ｆ型Ｐ．ムルトシダは、北米での家禽コレラの５−１０％を引起こしう
る。Ａ型株に導かれるワクチンは、それが、将来、主要な病原体として現れる場
合、この他の莢膜型に対して十分に保護できない。家畜およびブタ産業では、総
体的に成功したワクチンはない。予防の抗生物質処置は、体重増での損失を回避
するために使用されるが、しかしこの選択は、高価でありそして微生物耐性の問
題を被りやすい。

【００１４】本発明では、保護的細菌性ＨＡ莢膜を作成するときに含まれる酵素は、遺伝子
／ＤＮＡレベルで同定された。これらの酵素の同定は、宿主にＨＡ生合成をさせ
ない特異的阻害剤で病原体の莢膜合成を遮断することによって疾病介入に至る。
例えば、ＨＡまたはＰ．ムルトシダＨＡシンターゼの制御因子を作るのに使用さ
れる基質を擬態する薬剤は、細菌のＨＡ多糖の産生を止め、そしてそれにより莢
膜形成を遮断する。これは、微生物および宿主系での類似しない影響を示す多く
の最近の抗生物質に対する直接相似である。Ｐ．ムルトシダＨＡシンターゼおよ
び脊椎動物ＨＡシンターゼはタンパク質レベルで非常に異なるので、このアプロ
ーチ法は好ましい。したがって、その酵素も、反応機構または基質結合部位の上
で異なるようである。

【００１５】その保護的莢膜のシールドをいったん奪われたＰ．ムルトシダは、宿主防御の
ための明らかにいっそう傷つきやすい標的である。貧食作用は、非莢膜微生物に
よって容易に巻込まれ、そして破壊される。宿主補体複合体は、細菌の感受性外
側膜に到達し、そして引裂く。抗体は、Ｐ．ムルトシダ中の体細胞血液型を決定
するリポ多糖および表面タンパク質のような、新たに暴露された免疫原に対して
さらに容易に発生される。これらの抗体は、免疫応答の上で後に非莢膜細胞に結
合することがいっそうできる。したがって、ワクチン注射からの免疫応答は、い
っそう効果的であり、そしていっそう費用に効果的である。莢膜阻害薬剤は、家
禽コレラの処置に対する実質的付加物である。

【００１６】本発明およびＡ型Ｐ．ムルトシダの莢膜生合成の使用は、他の莢膜血液型の理
解の助けとなる。ＤＮＡプローブは、ＤおよびＦ型が類似の相同体を保有するこ
とを立証するためにＡ型莢膜遺伝子に使用された。

【００１７】高分子量のＨＡも、化粧品から眼科手術までに及ぶ広範な種々の有用な使用法
を示す。高粘性についてのその能力およびその高い生物適合性のため、ＨＡは、
硝子体液の代替として眼科手術での特定の使用法を見出す。ＨＡは、ＨＡの関節
内注射による外傷性関節炎について競走馬を処置するのにも使用されており、髭
剃りクリームでは、潤滑剤として、そして種々の化粧品では、高い粘性のその物
理化学的特性および長期間湿度を保持するその能力のために使用される。実際に
、１９９７年の８月には、米国食品医薬品局は、影響を及ぼされた関節に直接的
にこのような高分子量ＨＡを注射することを通して、重篤な関節炎の処置におけ
る高分子量ＨＡの使用を認可した。一般に、使用されるＨＡの分子量が高ければ
それだけよい。これは、ＨＡ溶液の粘性がその溶液中の個々のＨＡポリマーの分
子の平均分子量とともに増加するからである。不幸にも、１０⁷までの範囲内のもののような非常に高い分子量のＨＡは、最近利用できる単離手段によって得る
ことは困難であった。

【００１８】これらまたは他の困難に向けて、純度が高いか、または製造の容易さのような
、１つまたはそれ以上の改善された特性を示すＨＡを生成するために使用するこ
とができる新規方法および構築物の必要性がある。特に、最近、市販で入手可能
であるものより、多量の比較的高い分子量で、比較的純粋なＨＡの生成のための
方法論を開発する必要がある。改変された構造を示すＨＡ（ＨＡΔ_mod）と同様に、改変されたサイズ分布を示すＨＡ（ＨＡΔサイス゛）の生成についての方法論を開発することができる、さらに別の必要性がある。

【００１９】したがって、本発明は、莢膜生合成に含まれるＡ型Ｐ．ムルトシダ遺伝子を機
能的に特徴づけ、家禽コレラでの毒力因子として莢膜の役割を評価し、そしてＤ
およびＦ型莢膜生合成に関与した相同性遺伝子を得た。この情報で、ワクチンは
、ＨＡＳを産生しない「ノックアウト」Ｐ．ムルトシダ遺伝子を利用しながら開
発された。これらの非莢膜の非毒性株は、家禽コレラ用のワクチンとして作用す
るか、発熱をもたらす能力を示す。

【００２０】（発明の要旨）本発明は、ＨＡを産生する新規ＨＡＳに関する。種々の分子生物学の技術を使
用して、新規ＨＡＳについての遺伝子は、家禽コレラ病原体Ａ型Ｐ．ムルトシダ
で見出された。パスツレラ．ムルトシダから得られるこの新規ＨＡＳ（「ＰｍＨ
ＡＳ」）を、クローン化し、そして他の種の細菌で機能性があることが示された
。

【００２１】したがって、ＨＡの新規源が同定された。ＰｍＨＡＳのＤＮＡ配列は、破壊バ
ージョンとの相同な組換えによって正常な微生物遺伝子をノックアウトさせた後
に、Ｐ．ムルトシダ細菌の強力に弱毒化したワクチン株を生成するのにも使用し
うる。さらに、ＰｍＨＡＳのＤＮＡ配列は、家禽、家畜、ヒツジおよびブタの農
業病原体である関連Ｐ．ムルトシダ型についての診断用細菌型プローブの製造を
可能にする。

【００２２】（発明の詳細な説明）本発明の少なくとも１つの実施形態を詳細に説明する前に、本発明は、その用
途について、以下の説明で規定されるか、または図面で例示される構成要素の構
築および配列の詳細に限定されないと理解されるべきである。本発明は、他の実
施形態、または種々の方法で実施または行う能力がある。さらに、ここに使用さ
れる言い回しおよび用語が、説明の目的のものであって、限定として考慮される
べきでないことも理解すべきである。

【００２３】ここで使用される用語「核酸セグメント」および「ＤＮＡセグメント」は、相
互交換可能に使用され、そして特定の種の総ゲノムＤＮＡなしに単離されたＤＮ
Ａ分子に該当する。したがって、ここに使用される場合の「精製」ＤＮＡまたは
核酸セグメントは、非関連のゲノムＤＮＡ、例えば総パスツレラ・ムルトシダま
たは例えば哺乳類宿主ゲノムＤＮＡからまだ単離されていないか、またはそれな
しに精製されていないヒアルロネートシンターゼ（「ＨＡＳ」）コーディング領
域を含むＤＮＡセグメントに該当する。用語「ＤＮＡセグメント」に含まれるの
は、ＤＮＡセグメントおよびそのようなセグメントの類似のフラグメント、さら
に例えばプラスミド、コスミド、ファージ、ウイルスを含めた組換えベクターな
どである。

【００２４】同様に、単離または精製ＰｍＨＡＳ遺伝子を含むＤＮＡセグメントは、他の自
然発生遺伝子またはタンパク質をコードする配列から実質的に単離されたＨＡＳ
コーディング配列を含めたＤＮＡセグメントに該当する。この点で、用語「遺伝
子」は、機能性タンパク質、ポリペプチドまたはペプチドをコードする単位に該
当することが簡便のために使用される。当業者に解釈されるように、この機能的
用語は、ゲノム配列、ｃＤＮＡ配列またはその組合せを含む。「他のコーディン
グ配列から実質的に単離された」は、目的の遺伝子、この場合ＰｍＨＡＳが、Ｄ
ＮＡセグメントのコーディング領域の明らかな部分を形成すること、およびＤＮ
Ａセグメントが、大型染色体フラグメントまたは他の機能性遺伝子またはＤＮＡ
コーディング領域のような自然に生じるコーディングＤＮＡの大部分を含まない
ことを意味する。もちろん、これは、最初に単離されたときにＤＮＡセグメント
に該当し、そして、ヒトの手によってセグメントに後に加えられたか、または意
図して残された遺伝子またはコーディング領域を排除しない。

【００２５】原核生物源の使用に関連したある種の利点のため、だれでも原核生物Ｐ．ムル
トシダからのＨＡＳ遺伝子の単離での最高の利点を実感しそうである。そのよう
な利点の１つは、一般的に、真核生物の酵素は、真核生物の宿主でのみ達成され
うる明らかな後期翻訳修飾を必要としうることである。これは、得られる任意の
真核生物のＨＡシンターゼ遺伝子の適用性を限定する傾向にある。さらに、当業
者は、原核生物の酵素遺伝子が使用されると思われる遺伝的操作の時間および容
易さの点で別の利点に気づきそうである。これらの追加の利点としては、（ａ）
ゲノムのサイズが比較的小さく、したがって、対応するゲノムライブラリーのス
クリーニングの量が減少されるため、原核生物の遺伝子の単離が容易なこと、お
よび（ｂ）原核生物の遺伝子の全てのサイズのコーディング領域が、イントロン
の不在によって明らかに小さいため、操作が容易なことが挙げられる。さらに、
ＰｍＨＡＳ遺伝子（すなわち酵素）の産物が、後期翻訳修飾を必要とする場合、
これらは、その遺伝子が由来する類似の原核生物の細胞環境（宿主）で達成され
るのが最良である。

【００２６】好ましくは、本発明に関するＤＮＡ配列は、さらに、選択組換え宿主中の配列
の発現を可能にする遺伝子制御領域を含む。もちろん、使用される制御領域の特
性は、一般に、想像される特定の使用法（例えば、宿主クローニング）によって
変化する。

【００２７】特定の実施形態では、本発明は、単離ＤＮＡセグメントおよびＰｍＨＡＳ遺伝
子をコードするＤＮＡ配列を組込む組換えベクターに関し、そしてそれは、その
アミノ酸配列内に配列番号１によるアミノ酸配列を含む。さらに、他の特定の実
施形態では、本発明は、パスツレラ・ムルトシダＨＡＳに対応する、単離ＤＮＡ
セグメントおよびそのアミノ酸配列内にＨＡＳ遺伝子またはＤＮＡのアミノ酸配
列を含む遺伝子、そして特にＨＡＳ遺伝子またはｃＤＮＡをコードするＤＮＡ配
列を組込む組換えベクターに関する。例えば、ＤＮＡセグメントまたはベクター
が、全長のＨＡＳタンパク質をコードするか、またはＨＡＳタンパク質を発現す
るときに使用されることが意図される場合、好ましい配列は、基本的に、配列番
号１で規定されるとおりのものである。

【００２８】切断ＰｍＨＡＳも、配列番号１で規定されるとおりの好ましい配列の定義の範
囲内にはいる。例えば、ｃ末端では、およそ２７０−２７２アミノ酸は、その配
列から排除される可能性があり、そしてまだ機能するＨＡＳを有する。当業者は
、ＰｍＨＡＳのいずれかの末端から簡単にアミノ酸を除去することは、達成する
ことができる。このような切断配列がまだＨＡＳを産生する能力があるかどうか
を決定するために、その配列の切断バージョンで、ＨＡＳ活性について簡単に確
認しなければならない。

【００２９】ＨＡシンターゼ活性を示す核酸セグメントは、ここに記述される方法によって
単離されうる。用語「基本的に配列番号１で規定されるとおりの配列」は、その
配列が、配列番号１の一部に実質的に対応し、そして配列番号１のアミノ酸と一
致しないか、またはそれと生物学的に機能性の等価な、比較的少ないアミノ酸を
有することを意味する。用語「生物学的に機能性の等価な」は、当業界で十分に
理解され、そしてさらにここに詳細に、基本的に配列番号１に規定されるような
配列を有し、ＨＡまたはヒアルロン酸被覆物を産生する原核生物の能力に関連す
る遺伝子として定義される。

【００３０】当業界は、核酸セグメントに構造変化（すなわち、保存または半保存アミノ酸
置換をコードすること）を起させ、そしてさらに、その酵素または機能性活性を
保存する開業医の能力の例が充実している。例えば、（１）Ｒｉｓｌｅｒら、「
構造的に関連性のあるタンパク質でのアミノ酸置換。パターン認識アプローチ法
」、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２０４巻：１０１９−１０２９頁（１９８８年）[ 「アミノ酸側鎖の観察される交換性により…、ただ４つの群が概説される；（ｉ
）ＩｌｅおよびＶａｌ；（ｉｉ）ＬｅｕおよびＭｅｔ、（ｉｉｉ）Ｌｙｓ、Ａｒ
ｇおよびＧｌｎ、および（ｉｖ）ＴｙｒおよびＰｈｅ」]；（２）Ｎｉｅｆｉｎｄら、「タンパク質モデル化についてのアミノ酸類似性係数および主鎖折畳みア
ノールから由来される配列の並び」、Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．２１９巻：４８１
−４９７頁（１９９１年）［類似性パラメーターは、アミノ酸置換を設計させる
］；および（３）Ｏｖｅｒｉｎｇｔｏｎら、「環境特異的アミノ酸置換表：タン
パク質折畳みの第三テンプレートおよび検出」、ＰｒｏｔｅｉｎＳｃｉｅｎｃｅ、１巻：２１６−２２６頁（１９９２年）［「地域環境の関数として観察され
る置換のパターンの解析では、区別できるパターンがあることが示される．．．
」、適合性変化が起りうる。］参照。

【００３１】これらの資料および数えられないその他のものでは、当業者は、核酸配列が示
されると、その機能性を変化させることなしに、核酸配列に対する置換および変
化をなすことができたであろうことが示される。さらに、置換された核酸セグメ
ントは、非常に一致し、そしてその純粋な親に関するそれの酵素的活性を保持す
る可能性があり、そしてさらにいっそうそこにハイブリッド形成することに失敗
しうる。

【００３２】本発明には、Ｐ．ムルトシダから得られる酵素的に活性なヒアルロネートシン
ターゼをコードする核酸セグメントＰｍＨＡＳが開示される。当業者は、本発明
の範囲および請求項の外に逸脱することなしに、配列番号２に列記されるＰｍＨ
ＡＳ核酸セグメントに置換が行われうることを予測する。標準化されそして受諾
される機能的に等価なアミノ酸置換は、表Ａに表される。

【００３３】

【表１】

【００３４】本発明の別の好ましい実施形態は、配列番号１によるタンパク質をコードする
精製核酸セグメントであり、そして組換えベクターとして定義される。ここで使
用される用語「組換えベクター」は、ＨＡＳタンパク質をコードする核酸セグメ
ント、またはそのフラグメントを含むように改変されたベクターに該当する。組
換えベクターは、さらに、上記核酸セグメントをコードするＨＡＳに操作的に結
合されたプロモーターを含む発現ベクターとして定義することもできる。

【００３５】本発明の別の好ましい実施形態は、ＨＡＳ遺伝子を含む組換えベクターで組換
えられた宿主細胞である。好ましい組換え宿主細胞は、原核生物細胞でありうる
。別の実施形態では、組換え宿主細胞は、真核生物の細胞である。ここで使用さ
れる用語「操作された」または「組換え」細胞は、ＨＡＳをコードする遺伝子の
ような組換え遺伝子が導入された細胞に該当することが意図される。したがって
、操作された細胞は、組換えで導入される遺伝子を含まない自然発生の細胞と区
別しうる。操作された細胞は、ヒトの手を介して導入された遺伝子または遺伝子
類を有するような細胞である。組換えで導入された遺伝子は、ｃＤＮＡ遺伝子の
形態であるか、ゲノム遺伝子のコピーのいずれかであるか、または特定の導入遺
伝子に自然には結合しないプロモーターに隣接して位置づけられる遺伝子を含む
。

【００３６】好ましい実施形態では、ＨＡシンターゼをコードするＤＮＡセグメントは、さ
らに、特定の宿主によって同類の配列の複製を可能にする、複製の起点または「
レプリコン」として機能的に当業界で知られるＤＮＡセグメントを含む。このよ
うな起点は、ＨＡシンターゼＤＮＡ配列がライゲートされる、染色体外に配置さ
れそして複製するキメラセグメントまたはプラスミドの製造を可能にする。さら
に好ましい例では、使用される起点は、バイオテクノロジー用途に適切な細菌宿
主での複製の能力のあるものである。しかし、クローニングされたＤＮＡセグメ
ントのいっそうの多才さについては、その使用が達成される他の宿主系（シャト
ルベクターのような）によって認識される起点を選択的にまたは付加的にさえ使
用することが望ましい可能性がある。

【００３７】多数の高等生物でクローニングまたは発現について使用される可能性のあるＳ
Ｖ４０、ポリオーマまたはウシ乳頭腫ウイルス起点のような他の複製起点の単離
および使用は、当業者によく知られている。ある種の実施形態では、本発明は、
適切な複製起点と一緒に、そして、選択制御領域の制御下でＨＡシンターゼコー
ディング遺伝子配列を含む組換え形質転換ベクターの点で定義することができる
。

【００３８】したがって、本開示の点で、他の手段が、ＨＡＳ遺伝子またはｃＤＮＡを得る
のに使用されうることは、当業者に予測される。例えば、パスツレラの他の株を
含めた多数の源から、またはｃＤＮＡライブラリーのような真核生物の源から得
られる遺伝子またはｃＤＮＡの全補体を含むポリメラーゼ連鎖反応またはＲＴ−
ＰＣＲで産生されたＤＮＡフラグメントを得ることができる。実質的に、任意の
分子クローニングアプローチ法は、本発明によるＤＮＡフラグメントの発生のた
めに使用することができる。したがって、一般に、ＤＮＡ単離に使用される特定
の方法での唯一の限定は、単離核酸が、生物学的に機能性の等価なＨＡシンター
ゼをコードすることである。

【００３９】一旦、ＤＮＡが単離されると、それは、選択ベクターと一緒にライゲートされ
る。実質的に、任意のクローニングベクターを使用して、本発明による利点を認
識することができる。典型的に有用なベクターとしては、原核生物に使用するた
めのプラスミドおよびファージ、そして真核生物に使用するためのウイルス性ベ
クターさえ挙げられる。例としては、ｐＫＫ２２３−３、ｐＳＡ３、組換えラム
ダ、ＳＶ４０、ポリオーマ、アデノウイルス、ウシ乳頭腫ウイルスおよびレトロ
ウイルスが挙げられる。しかし、特定の利点は、ラクトコッカス（Ｌａｃｔｏｃ
ｏｃｃｕｓ）またはバシルス（Ｂａｃｉｌｌｕｓ）株の両方およびイー・コリで
複製の能力のあるベクターが使用される場合に最終的に認識されると考えられる
。

【００４０】ＤａｏおよびＦｅｒｒｅｔｔｉのｐＳＡ３ベクターまたはＴｒｉｅｕ−Ｃｕｏ
ｔらのｐＡＴ１９ベクターによって例示されるもののようなベクターは、イー・
コリのような簡便に操作される宿主でクローナルコロニー選択を行い、続いてＨ
Ａの産生用の食用等級のラクトコッカスまたはバシルス株に連続で差戻すことを
可能にする。これらは良性で、そしてある種の食品およびバイオテクノロジー製
品の生産に使用される十分に研究された生物である。これらは、ＨＡ前駆体の到
達性を増加させるために遺伝子投与（すなわち、増幅によってＨＡシンターゼ遺
伝子の余剰コピーを供すること）および／または追加の遺伝子の封入を通してＨ
Ａを合成するラクトコッカスまたはバシルス株の能力を増すことができる点で有
利である。ＨＡを合成する細菌の固有の能力も、ＨＡシンターゼ遺伝子を担持す
るプラスミドの余剰コピーの形成または増幅を通して増大されうる。この増幅は
、プラスミドのコピー数で、したがって、ＨＡシンターゼ遺伝子コピー数で１０
倍までの増加の要因となることができる。

【００４１】ＨＡシンターゼ遺伝子コピー数を更に増す別の手段は、遺伝子の複数コピーを
プラスミドへ挿入することである。別の技術は、ＨＡＳ遺伝子を染色体ＤＮＡに
組込ませることを含む。この余剰増幅は、細菌性ＨＡシンターゼ遺伝子のサイズ
が小さいので、特に適している。ある種の計画では、染色体ＤＮＡをライゲート
したベクターが、選択宿主中で挿入ＤＮＡを発現する能力のあるベクターの使用
を介して、イー・コリのような、クローナルスクリーニングの目的のために選択
される宿主に、遺伝子導入するのに使用される。

【００４２】ある種の特定の他の実施形態では、本発明は、基本的に配列番号２に規定され
るとおりの核酸配列を、それらの配列内に含む単離ＤＮＡセグメントおよび組換
えベクターに関する。用語「配列番号２に基本的に規定されるとおり」は、上に
記述されるものと同じ意味で使用され、そして核酸配列は、配列番号２の部分に
実質的に対応し、そして配列番号２のコドンに同一でないか、または機能的に等
価である比較的少数のコドンを有することを意味する。用語「機能的に等価なコ
ドン」は、アルギニンまたはセリンについての６個のコドンのように表Ａに規定
されるのと同じアミノ酸をコードするコドンに該当してここに使用され、そして
生物学的に等価なアミノ酸をコードするコドンにも該当する。

【００４３】アミノ酸および核酸配列は、その配列が、タンパク質発現および酵素活性が考
慮される生物学上のタンパク質活性の維持を含めて、上に規定される条件に適合
する限り、付加ＮまたはＣ末端アミノ酸または５’または３’核酸配列のような
付加残基を含み、そしてやはりまだ、ここに開示される配列の内の１つで基本的
に規定されるとおりでありうることも分かる。末端配列の付加は、特に、例えば
、コーディング領域の５’または３’部分のいずれかの間に挟まる種々の非コー
ディング配列を含みうるか、または遺伝子内に起ることが知られる種々の内部配
列を含みうる核酸配列に行う。さらに、残基は、ＮまたはＣ末端アミノ酸から除
去することができ、そして、その配列が、同様に上に規定される条件に適合する
限り、やはりまだここに開示される配列の内の１つに基本的に規定されるとおり
である。

【００４４】保存および半保存置換と同様に遺伝子コードの縮重を可能にするので、配列番
号２のヌクレオチドと一致する、約４０％と約８０％との間、またはより好まし
くは、約８０％と約９０％との間、またはさらに好ましくは、約９０％と約９９
％との間のヌクレオチドを示す配列は、「配列番号２に基本的に規定されるとお
り」である配列である。配列番号２に規定されるものと基本的に同じである配列
は、標準または低い緊縮ハイブリッド形成条件下で配列番号２の補体を含む核酸
セグメントにハイブリッド形成する能力がある配列としても機能的に定義されう
る。適切な標準ハイブリッド形成条件は、当業者によく知られており、そしてこ
こに明確に規定される。

【００４５】ここに使用される場合、用語「標準ハイブリッド形成条件」は、実質的に相補
な核酸セグメントが、標準ワトソン−クリック塩基対を形成するような条件を記
述するのに使用される。ｐＨ、温度、塩濃度、ホルムアミドおよびスルホン酸ジ
メチルのような薬剤の存在、ハイブリッド形成しているセグメントの長さ等のよ
うな結合またはハイブリッド形成の特異的を決定する多数の因子が知られている
。短い核酸セグメントが、ハイブリッド形成に使用されることが予測されるとき
、例えば、ハイブリッド形成のために約１４と約１００ヌクレオチドとの間のフ
ラグメント、塩および温度の好ましい条件としては、４０−５０℃で、１．２−
１．８×ＨＰＢが挙げられる。

【００４６】当然、本発明は、配列番号２に規定される配列に相補であるか、または基本的
に相補であるＤＮＡセグメントも包含する。「相補性」がある核酸配列は、標準
ワトソン−クリック相補性規則による塩基対の能力のあるものである。ここに使
用される場合、用語「相補的配列」は、上に規定されるのと同じヌクレオチド比
較によって評価することができるとおり、または配列番号２の核酸セグメントに
ハイブリッド形成する能力があると規定されるとおり、実質的に相補性がある核
酸配列を意味する。

【００４７】コーディング配列それ自身の長さに関係なく、本発明の核酸セグメントは、プ
ロモーター、ポリアデニル化シグナル、付加制限酵素部位、多クローニング部位
、エピトープタグ、ポリヒスチジン領域、他のコーディングセグメント等のよう
な、それらの全長が、相当に変化しうるような他のＤＮＡ配列と組合せることが
できる。したがって、ほとんど任意の長さの核酸フラグメントを、製造の容易さ
および意図される組換えＤＮＡプロトコールでの使用によって好ましく限定され
る総延長で使用できることが予想される。

【００４８】当然、本発明が、配列番号１および２の特定のアミノ酸および核酸配列に限定
されないことも分かる。したがって、組換えベクターおよび単離ＤＮＡセグメン
トは、ＨＡＳコーディング領域それら自身、塩基コーディング領域での選択され
た改変または修飾に耐えるコーディング領域を様々に含むことができるか、また
はそれらは、ＨＡＳコーディング領域を含むにもかかわらず、大型ポリペプチド
をコードすることができるか、または様々なアミノ酸配列を示す生物学的に機能
性の等価なタンパク質またはペプチドをコードしうる。

【００４９】本発明のＤＮＡセグメントは、生物学的に機能性の等価なＨＡＳタンパク質お
よびペプチドを包含する。このような配列は、核酸配列およびその結果コードさ
れるタンパク質内で自然に発生することが知られているコドン縮重および機能的
等価の結果として生じうる。選択的に、機能的に等価なタンパク質またはペプチ
ドは、交換されるべきアミノ酸の特性を考慮することに基づいて、タンパク質構
造での変化を操作することができる組換えＤＮＡ技術の使用を介して作成するこ
とができる。ヒトによって設計される変化は、分子レベルでＨＡシンターゼ活性
を試験するために、部位依存性突然変異誘発技術の使用、例えば、酵素活性に対
するか、またはＨＡＳタンパク質の抗原性に対する改善を導入すること、または
ＨＡＳ突然変異体を試験することを導入することができる。

【００５０】さらに、ＨＡＳコーディング配列に対する特異的変化は、改変されたサイズ分
布または構造形態を示すＨＡを産生するようになることができる。当業者は、Ｈ
ＡＳコーディング配列が、様々なポリマーのサイズおよび／または機能的許容性
を示すヒアルロン酸を産生する能力が順にある改変されたヒアルロネートシンタ
ーゼを産生する方法で操作することができることを予測する。例えば、ＨＡＳコ
ーディング配列は、ヒアルロネートシンターゼが、改変糖基質特異性を示すよう
な方法で改変されて、その結果ヒアルロネートシンターゼが、先に組込まれなか
った糖または糖誘導体のような、様々な構造を組込む新たなヒアルロン酸様ポリ
マーを作成することができる。この新たに組込まれる糖は、様々な機能特性を示
す改質ヒアルロン酸、小さいかまたは大きいポリマーサイズ／分子量を示すヒア
ルロン酸またはその両方を生じることができるであろう。そのＨＡＳコーディン
グ配列を示された当業者によって予測されるとおり、変化および／または置換を
、これらの望まれる特性および／またはサイズ修飾が達成できるようにＨＡＳコ
ーディング配列に行うことができる。

【００５１】ここで使用される用語「修飾構造」は、糖または誘導体を含むヒアルロン酸ポ
リマーが、天然に生じるＨＡ多糖で正常に見られないことを示す。用語「修飾さ
れたサイズ分布」は、生来の酵素で正常に見られないサイズ分布のヒアルロン酸
分子の合成に該当する。操作されたサイズは、正常なものよりはるかに小さいか
、または大きい可能性がある。

【００５２】異なるサイズの様々のヒアルロン酸産物は、医薬品送出の領域での使用を示し
、そして改変された構造を示す酵素の発生は、異なるサイズのヒアルロン酸と混
合することができる。新脈管形成および損傷治癒での使用は、約２０の単糖のヒ
アルロン酸ポリマーが、良好な量で製造することができる場合に潜在的に大きい
。小型のヒアルロン酸オリゴ糖についての別の特定の使用法は、医療目的で使用
される組換え・ヒトタンパク質の安定化にある。このようなタンパク質での主要
な問題は、血液からのそれらのクリアランスおよび生物学上の半減期が短いこと
である。この問題に対する１つの解決策は、タンパク質が循環からあまり早く排
除されることを避ける小型分子シールドを結合することである。非常に小さな分
子量のヒアルロン酸は、この役割に十分に適応し、そして非免疫原性および生物
適合性である。医薬品またはタンパク質に付着される大きな分子量のヒアルロン
酸は、ヒアルロン酸の細胞内取り込レセプターを有する細網内皮細胞系を標的に
するのに使用できる。

【００５３】この開示を示された当業者は、ヒアルロネートシンターゼによって作られるヒ
アルロン酸ポリマーのサイズ分布が、様々のサイズを供するように制御できる数
種の方法があることを予測する。第一に、製品サイズの速度論的制御は、温度を
減少させ、酵素反応の時間を減少させることによって、そして１種または両方の
糖ヌクレオチド基質の濃度を減少させることによって変えることができる。これ
らの変数のいくらかまたは全てを減らすと、量の少なくそしてサイズの小さなヒ
アルロン酸産物を供与する。これらのアプローチ法の欠点は、生成物の収量も減
少され、そして日々またはバッチからバッチ毎の再現性を達成するのが困難であ
る可能性がある。

【００５４】第二は、大型のヒアルロン酸産物を合成する酵素の固有の能力の改変である。
タンパク質に対する変化は、特異的アミノ酸の置換、欠失および付加（または代
謝工程を介しての補欠分子族の導入さえ）を含めた組換えＤＮＡ技術によって操
作できる。本質的に遅い酵素を生じるこのような変化は、その後、速度論的手段
によってヒアルロン酸サイズの再現性制御をいっそう可能にできる。最終のヒア
ルロン酸のサイズ分布は、酵素の特定の特徴によって決定され、そしてそれは、
配列中の特定のアミノ酸に依存する。ストレプトコッカスの酵素と真核生物のヒ
アルロネートシンターゼとの間で厳密に保存される２０％の残基の内でも、その
酵素を作ることができるヒアルロン酸ポリマーのサイズを制御するか、またはそ
れに大いに影響を及ぼす特徴的な位置に一組のアミノ酸がある。これらの残基の
内のいずれかでの特異的変化は、修飾されたサイズ分布を示すＨＡ産物を産生す
る改質ＨＡＳを産生できる。ヒアルロン酸が放出される前に酵素を作ることがで
きるヒアルロン酸の固有のサイズを減らすｓｅＨＡＳ、ｓｐＨＡＳ、ｐｍＨＡＳ
またはｃｖＨＡＳに対する操作変化は、生来の酵素より小さいかまたは潜在的に
大きいサイズのヒアルロン酸産物を産生する強力な手段を提供する。

【００５５】最後は、低分子量ヒアルロン酸を作成する特異的ヒアルロニダーゼで分解させ
て作成される大きな分子量のヒアルロン酸である。しかし、この実施は、再現性
を達成するのが非常に困難であり、そしてだれもが、ヒアルロニダーゼおよび歓
迎されない消化産物を除去するためにヒアルロン酸を注意深く再度精製しなけれ
ばならない。

【００５６】構造的に改質されたヒアルロン酸は、所望のＨＡＳまたはｓｐＨＡＳ中の特定
のアミノ酸を変化させることによって、ヒアルロン酸産物のサイズ分布を変える
より概念的には差異がない。Ｎアセチル基が失われている（ＵＤＰ−ＧｌｃＮ）
か、または別の化学的に有用な基に置換されているＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの誘導
体は、特に有用であると予測される。強力な基質特異性は、保存される２０％の
ものの中でアミノ酸の特定の部分集合に依るに違いない。これらの残基の１つま
たはそれ以上に対する特異的変化は、生来の酵素より、１つまたはそれ以上の基
質と特異性が低く相互作用する機能性シンターゼを作り出す。この改変酵素は、
その後、選択的に天然または特定の糖ヌクレオチドを利用して、以下の目的のた
めに様々な化学が使用されることを可能にするように設計された糖誘導体を組込
むことができる。すなわち、（ｉ）共有結合する特異的医薬品、タンパク質、ま
たは一般のまたは標的にされる医薬品送出、放射性手段のための構造的に改質さ
れたヒアルロン酸に対する毒素など、（ｉｉ）それ自身、またはゲル、または強
力な物理特性を示す他の三次元生物材料を達成するための他の支持体と共有架橋
結合するヒアルロン酸、および（ｉｉｉ）生物適合性フィルムまたは単層を作る
表面と共有結合するヒアルロン酸である。

【００５７】本発明は、ＨＡを産生する新規ＨＡＳに関する。種々の分子生物学技術を使用
して、新規ＨＡＳ用の遺伝子は、家禽コレラ病原体Ａ型のパスツレラ・ムルトシ
ダに見られる。パスツレラ・ムルトシダから得られるこの新たなＨＡＳすなわち
ＰｍＨＡＳは、クローン化され、そして他の種の細菌で機能性があることが示さ
れた。ＰｍＨＡＳタンパク質は、真正のＨＡ多糖を重合する。

【００５８】ＰｍＨＡＳで形質転換された組換えイー・コリによって産生される炭化水素は
、カートリッジＨＡ結合タンパク質によって認識され、そしてＨＡリアーゼ消化
に感受性がある。これらの薬剤の両方は、当業者によって、ＨＡ多糖に特異的で
あると考えられる。さらに、ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの両
方は、生体外でのＨＡ合成のために必要とされる。アジド−ＵＤＰ−Ｇｌｃでな
くて、アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびアジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃは、Ｐｍ
ＨＡＳに特異的に光組込みされる。ストレプトコッカスのＨａｓＡおよびキセノ
プス（Ｘｅｎｏｐｕｓ）のＤＧ４２の場合のように、１つのポリペプチド種Ｐｍ
ＨＡＳは、２つの区別できる糖基を新生ＨＡ鎖に移行することは明らかである。

【００５９】イー・コリ、ネイセリア・メヒンギチジス（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａｍｅｎｉｎｇｉｔｉｄｉｓ）、およびヘモフィルス・インフルエンザエ（Ｈｅｍｏｐｈｉｌ
ｕｓｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ）を含めた多くの被包グラム陰性細菌は、オペロンで組織化される莢膜生合成の原因である遺伝子のクラスターを保有する。これら
のオペロンは、しばしば、（ｉ）糖ヌクレオチド前駆体合成のために必要とされ
る酵素、（ｉｉ）エキソ多糖を重合するグリコシルトランスフェラーゼ、および
（ｉｉｉ）多糖輸出に関連したタンパク質をコードする遺伝子を含有する。Ａ型
Ｐ．ムルトシダＨＡ莢膜オペロンは、（ｉ）ＫｆａＡ類縁体、（ｉｉ）ＨＡシン
ターゼ、および（ｉｉｉ）推定ＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼを含む。Ｐ．ム
ルトシダ非莢膜突然変異体ＨおよびＬ中のＴｎ９１６構成要素は、ＨＡＳ遺伝子
に直接介入されないが、しかしむしろＫｆａＡ相同遺伝子に配置された。

【００６０】ＰｍＨＡＳが、多糖を作るのに必須である少なくとも数種の遺伝子の遺伝子座
に存在するので、莢膜遺伝子の内のいずれか１つでの病巣または損傷は、パスツ
レラのＨＡ産生および莢膜形成に影響を及ぼし得る。したがって、隣接遺伝子を
破壊することによって、ワクチンを作ることもできる。例えば、ＵＤＰ−Ｇｌｃ
デヒドロゲナーゼを除去または破壊する場合、入手可能なＨＡシンターゼのため
の前駆体糖はなく、そしてＨＡは作ることができない。さらに、Ｋｆａまたは他
の輸送関連の遺伝子を死滅させる場合、それにより微生物によって表面ＨＡを作
らない。したがって、天然のパスツレラ微生物中でのＨＡシンターゼの産物、す
なわち、ＨＡ莢膜は、（ａ）前駆体形成を破壊するか、または（ｂ）重合機構を
破壊するか、または（ｃ）輸送機構を破壊することによって停止させることがで
きる。

【００６１】アミノ酸レベルで、ＰｍＨＡＳは、当業者が予測するのと同じくらい他のクロ
ーン化ＨＡＳに類似ではない。２つの強力な短いモチーフ、ＰｍＨＡＳの残基４
７７−４８０でのＤＧＳ（Ｓ／Ｔ）（配列番号１９）および残基５２７−５２９
でのＤＳＤは、ＨａｓＡに存在する。別の類似のＤＧＳ含有モチーフは、ＰｍＨ
ＡＳの残基１９６−１９８で繰返し見られる。第一のモチーフのＤＧおよびＤＳ
Ｄは、全ＨＡＳで保存される。しかし、全ての先にクローン化されたＨＡＳに見
られる数種の完全に保存されたモチーフ（（Ｓ／Ｇ）ＧＰＬＸＸＹ（配列番号２
０）、ＧＤＤＲＸＬＴＮ（配列番号２１）、およびＬＸＱＱＸＲＷＸＫＳ（Ｙ／
Ｆ／Ｗ）（Ｆ／Ｃ）ＲＥ（配列番号２２））は、ＰｍＨＡＳには不在である。そ
の代わりに、様々な細菌グリコシルトランスフェラーゼは、Ｐ．ムルトシダＨＡ
Ｓタンパク質の中心部分にある配列といっそう密接に整列する。ＧｌｃＮＡｃ、
ガラクトース、またはＧａｌＮＡｃ基を移すことが示されたか、または検出され
たこれらの酵素は、ＰｍＨＡＳの大まかに３分の１の大きさであり、そしてそれ
らのアミノ酸末端配列は、ＰｍＨＡＳポリペプチドの中央、すなわち残基４３０
−５４０と一緒に並ぶ。

【００６２】ＰｍＨＡＳの第一の４２０個の残基の区分は、哺乳類のＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃ
：ポリペプチドＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼの部分とある種の類似性を示
す。これらの観察は、ＰｍＨＡＳ内の可能なドメイン構造の反映でありうる。Ｐ
ｍＨＡＳの最後のおよそ３４０個の残基は、配列データベース中の他の全てと明
らかに類似でない。したがって、Ｐ．ムルトシダＨＡＳは、特徴的であり、そし
て最も、全ての新たなクラスのＨＡＳのプロトタイプのようである。

【００６３】ＰｍＨＡＳは、それぞれ、ストレプトコッカスのウイルス、または脊椎動物の
ＨＡＳすなわち、９７２対４１７−５８８残基の大まかに二倍の大きさである。
さらに、ＰｍＨＡＳおよび他の既知ＨＡＳの水治療法プロットは類似でない。ワ
ールドワイドウェブ上で当業者に十分に知られそして入手可能なＴＭＰＲＥＤプ
ログラムを利用して、ＰｍＨＡＳが、ただ２つの候補膜間螺旋状物（残基１７０
と５１０に中心が置かれる）を有することが推定され、そしてそのタンパク質の
両方の末端は、細胞質に配置される。幾何学的に、これらの推定は、Ｐ．ムルト
シダのポリペプチド（約３４０残基）の三分の一が細胞質の外側に位置すること
を暗示する。他方、ＨＡＳの他のクラスについての様々な位相が、推定される。

【００６４】ストレプトコッカスのＨＡＳのレポーター酵素融合解析では、様々の位相配列
が、タンパク質のカルボキシルの半分で（ｉ）アミノ酸末端に近い２つの膜間螺
旋状物、（ｉｉ）推定細胞質ドメイン、続いて（ｉｉｉ）３つの膜結合領域から
構成されるこの酵素に存在することが確認される。膜結合領域の間の連結ループ
は、むしろ短く（４−１０残基）、したがって、そのポリペプチド鎖の大半部分
は、おそらく、細胞外に露出しない。

【００６５】以下の詳細な実験ステップおよび結果の検討では、本発明が新規で特徴的なＰ
ｍＨＡＳに関することが確認される。

【００６６】１．ＰｍＨＡＳの分子クローニングＴｎ９１６挿入突然変異誘発およびプローブ発生を最初に完了した。Ｔｎ９１
６を使用して、破壊し、そしてＰ．ムルトシダのＨＡ生合成遺伝子座をタグ付け
した。非複製プラスミドｐＡＭ１５０上のＴｎ構成要素を、電気穿孔法によって
野生型被包Ｐ．ムルトシダ株（ＡＴＣＣ番号１５７４２号）に導入した。改変コ
ロニー形態を、斜め照射での黙視試験によって最初にスクリーニングした。野生
型株は、虹色（赤色と緑色の色合い）を表す大型ムコイド（「湿潤」外観）コロ
ニーを形成する。同様に、虹色を欠く「乾燥剤」コロニーを選択し、そして画線
接種した。墨汁染色および光顕微鏡を第二のスクリーンとして使用して、被包の
状態を評価した。突然変異染色体中のＴｎ構成要素の位置を、サザン分析によっ
てマッピングした。

【００６７】数種の独立に選択した突然変異体から得られるＴｎを破壊した部位でのＤＮＡ
配列を、タグ付け染色体ＤＮＡの直接ジデオキシ配列分析によって得た。簡便に
は、Ｔｎ９１６構成要素の１２ｋｄ部分および突然変異染色体ＤＮＡのＨｈａＩ
消化によって発生されるＰ．ムルトシダＤＮＡの短い領域から構成されるキメラ
ＤＮＡフラグメントは、アガロースゲル電気泳動によって精製された（野生型Ｈ
ｈａＩゲノムフラグメントの全ては、７ｋｂより少ないか、または等しい）。キ
メラ・フラグメントは、³³ＰターミネーターおよびＴｎ９１６右腕末端プライマ
ー（５’−ＧＡＣＣＴＴＧＡＴＡＡＡＧＴＧＴＧＡＴＡＡＧＴＣＣ−３’（配列
番号２３））を用いたサイクルシーケンシング反応でテンプレートとしての役割
を果たす。配列データを、ＰＣＲプライマーを設計するのに使用した。ゲル精製
ＰＣＲ産物を、ベーリング・マンハイム社（ＢｏｅｈｒｉｎｇｅｒＭａｎｎｈｅｉｍ）によって製造され、そして当業者によく知られたハイプライムシステム
を活用するジゴキシゲニンで標識した。

【００６８】次のステップは、機能性ＨＡＳ遺伝子座の単離であった。Ｓａｕ３Ａで部分的
に消化した野生型ＤＮＡのλライブラリーを、ストラタジーン社（Ｓｔｒａｔａ
ｇｅｎｅ）によって製造されるＢａｍＨＩ切断λＺａｐ発現ベクターシステムを
用いて作成した。プラーク釣り上げ物をジゴキシゲニン標識ＰＣＲ産物とのハイ
ブリッド形成によってスクリーニングした。エッシェリキア・コリＸＬＩ−Ｂｌ
ｕｅＭＲＦ’を、個々の精製した陽性λクローンおよびＥｘＡｓｓｉｓｔヘルパ
ーファージで同時感染させて、ファージミドを得た。生じたファージミドを、イ
ー・コリＸＬＯＬＲ細胞に遺伝子導入させて、プラスミドを回収した。

【００６９】プラスミドを、ＨＡ多糖産生により適切な宿主、すなわちイー・コリＫ５（株
Ｂｉ８３３７−４１）に形質転換させた。この株は、ほとんどの実験室株では明
らかなレベルで見ることができないＨＡ生合成のために必要とされる基質である
ＵＤＰ−ＧｌｃＡを産生する。さらに、Ｋ５は、イー・コリでの莢膜多糖輸送に
不可欠である多くの他の遺伝子を保有する。発現研究に使用される別の宿主は、
ポリシアル酸莢膜を産生し、そして全ての同じ一般的莢膜多糖輸送機構をＫ５と
して保有するが、高レベルのＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼを有しないＫ１株
の非莢膜誘導体であるイー・コリＥＶ５であった。

【００７０】完全に定義された培地中で育成される候補プラスミドとしたイー・コリ形質転
換体の培養物を、細胞ペレットを、摂氏９５度で、２分間、８Ｍ尿酸、０．０１
％ＳＤＳで抽出したこと以外は先に記述したとおりＨＡ多糖産生について試験し
た。当業者によく知られているファルマシア・バイオテック社（Ｐｈａｒｍａｃ
ｉａＢｉｏｔｅｃｈＩｎｃ．）によって製造されるＨＡ試験アッセイでは、０
．１μｇ／ｍｌより大きいか、または等しい濃度で、ＨＡを検出するために特異
的ＨＡ結合タンパク質が使用される。ＨＡ濃度の複数測定を平均化した。細菌培
養物中のＨＡ濃度を、Ａ₆₀₀値を測定し、そして細菌のμｇＨＡ／ｍｌ／Ａ₆₀₀と
してデータを表すことによって、細胞数での差異を正常化させた。５．８ｋｂ挿
入物を有する１つのプラスミドｐＰｍ７Ａは、ＨＡを産生する能力を有するイー
・コリＫ５を与えた。ベクタープラスミドだけを有する細胞によって産生される
ＨＡはなかった。ｐＰｍΔ６ｅと呼ばれるおよそ３．３ｋｂ挿入物を含むｐＰｍ
７Ａの切断誘導体は、イー・コリＫ５に形質転換させるときにＨＡの生合成を指
示することができる。したがって、ｐＰｍΔ６ｅＤＮＡに対応するｐＰｍ７Ａプ
ラスミドの両方の鎖の配列を決定した。我々がＰｍＨＡＳと称する単独の完全な
９７２残基のＯＲＦが見出されたが、それは配列番号１で示される。対応のヌク
レオチド配列は、配列番号２に示される。

【００７１】その後、組換えＰ．ムルトシダＨＡＳの発現が始められる。ｐＰｍ７Ａ挿入物
中のＰｍＨＡＳＯＲＦは、推定アミノ末端およびカルボキシル末端の近くの配列（大文字表記のコドン：センス、５’−ｇｃｇａａｔｔｃａａａｇｇａｃａｇ
ａａａＡＴＧＡＡｃＡＣＡＴＴＡＴＣＡＣＡＡＧ−３’（配列番号２４）、およ
びアンチセンス、５’−ｇｇｇａａｔｔｃｔｇｃａｇｔｔａＴＡＧＡＧＴＴＡＴ
ＡＣＴＡＴＴＡＡＴＡＡＴＧＡＡＣ−３’（配列番号２５）；開始および終止コ
ドンはそれぞれ太文字で）に対応するＴａｑポリメラーゼおよびプライマーを用
いて、１３サイクルのＰＣＲによって増幅された。コドン２（Ｔ→Ｃ）を、イー
・コリ中のタンパク質産生を増加させるように改変（イタリック小文字）した。
プライマーは、発現プラスミドｐＫＫ２２３−３（ｔａｃプライマー、ファルマ
シア社）へのクローニングを促進するＥｃｏＲＩおよびＰｓｔＩ制限部位（下線
付き文字）も含む。生じた組換え構築物ｐＰｍＨＡＳを、イー・コリＳＵＲＥ細
胞（ストラタジーン）に形質転換させ、そしてこの株を、生体外ＨＡＳアッセイ
のための膜製造の源として使用した。Ｌｏｇ層培養物（ＬＢブロス、摂氏３０度
）を、収穫前の３時間、０．５ｍＭイソプロピルチオガラクトシドで誘導した。
プラスミドを、イー・コリＫ５にも形質転換させた。生じた株を、光顕微鏡およ
び浮遊密度遠心によって莢膜の存在について試験した。Ｋ５細菌培養物は、イソ
プロピルチオガラクトピラノシド付加が、ＬＢまたは明らかに定義された培地中
のＨＡ濃度を増加させないので、日常的に誘導されなかった。

【００７２】その後、生来のＰ．ムルトシダＨＡＳの光アフィニティー標識を行った。放射
性標識ＵＤＰ糖類縁体［³²Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡ（３ｍＣｉ／μＭｏｌ
）および［³²Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ（２．５ｍＣｉ／μＭｏｌ）を
製造し、そして文献に記述され、そして当業者に知られるとおり精製した。紫外
線で照射する（２５４ｎｍ、９０秒）前に、氷上で３０秒間、５０ｍＭトリス、
２０ｍＭのＭｇＣｌ₂、ｐＨ７（最終濃度、２０μＭ）中のＰ．ムルトシダ野生型から得られる膜製品を、いずれかのプローブでインキュベートした。ＳＤＳ−
ポリアクリルアミドゲル電気泳動分析の前にそのタンパク質を、５％トリクロロ
酢酸で沈殿させた。照射ステップが省かれた場合、組込まれる放射性標識はなか
った。特異性対照として、１０倍モル過剰の正常なＵＤＰ糖を、プローブおよび
膜と同時にインキュベートした。［³²Ｐ］アジド−ＵＤＰ−Ｇｌｃ（３ｍＣｉ／
μＭｏｌ）も、別の対照として使用した。

【００７３】数回の巡回の突然変異誘発によって製造されるおよそ８×１０⁴Ｔｎ含有形質転換体を、コロニー形態での差異についてスクリーニングした。墨汁を用い光顕
微鏡によって、小さな虹色でないコロニー（ｎ＝４）から得た細胞は、検出可能
な莢膜を保有しなかった（非莢膜）のに対して、培地等級分け虹色コロニー（ｎ
＝８）から得られる細胞は、野性型の約１０−２５％の直径の莢膜（微細莢膜）
を有するようである。同じＨｉｎｄＩＩＩまたはＢｓｔＸＩゲノムフラグメント
にマッピングされるＴｎ構成要素を有するＨおよびＬと称される非莢膜突然変異
体の内の２つは、およそ１０^-3の速度で、野生型コロニー形態に復帰した。各復
帰突然変異体中のＴｎ構成要素は、サザン分析によって判断されるとおり、元の
位置から削られ、そして異なる新たな位置に再挿入した。他方、全ての非莢膜サ
ブクローンは、元の位置にＴｎ構成要素を保持した。明らかなＨＡＳ活性が、突
然変異体Ｈ細胞から膜製品に検出されるものはなかったのに対して、実質的なＨ
ＡＳ活性は、野生型細胞から得られた（それぞれ、０．７対１２０ピコモルの移
入ＧｌｃＡ／ｍｇタンパク質／ｈより少ないか、または等しい）。これらの知見
では、突然変異体ＨおよびＬ中のＴｎ構成要素が、実際に、ＨＡ生合成遺伝子座
を破壊する原因であることが示唆される。

【００７４】２つの非莢膜突然変異体のＴｎ挿入部位の間のギャップに橋渡しするために、
突然変異体Ｌ染色体ＤＮＡテンプレートを用いたＰＣＲは、突然変異体Ｈ破壊部
位ＰｍＨＦにある配列に由来するプライマー（５’−ＣＴＣＣＡＧＣＴＧＴＡＡ
ＡＴＴＡＧＡＧＡＴＡＡＡＧ−３’（配列番号２６））、およびＴｎ９１６の左
末端に対応するプライマーであるＴｎＬ２（５’−ＧＣＡＣＡＴＡＧＡＡＴＡＡ
ＧＧＣＴＴＴＡＣＧＡＧＣ−３’（配列番号２７））で行われた。特異的なおよ
そ１ｋｂのＰＣＲ産物を得た。代替的に、ＰｍＨＲ（ＰｍＨＦの逆補体）または
Ｔｎ９１６右腕プライマーが置換される場合、形成される産物はなかった。ＰＣ
Ｒ産物を、ハイブリッド形成プローブとして使用して、Ｐ．ムルトシダＨＡＳの
機能性コピーを得た。

【００７５】およそ１０⁴個のプラークをスクリーニングした後、６つの陽性ハイブリッド形成プラークが見られ、そしてこれらのプラークは、プラスミドに変換された。
１つのプラスミドｐＰｍ７Ａは、イー・コリＫ５が、生体内でＨＡを生成させる
（２０μｇＨＡ／ｍｌ／細菌のＡ₆₀₀）ことが分かった。対照プラスミドを有するイー・コリＫ５は、ＨＡを産生しなかった（０．０５μｇＨＡ／ｍｌ／細菌の
Ａ₆₀₀より少ないか、または等しい）。イー・コリＸＬＯＲまたはイー・コリＥＶ５細胞（ＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼ活性を欠く）は、それらがｐＰｍ７
Ａプラスミドを含む場合でさえＨＡを産生しない（０．０５μｇＨＡ／ｍｌ／細
菌のＡ₆₀₀より少ないか、または等しい）。この遺伝上の証拠は、ｐＰｍ７Ａの挿入物が、機能性ＵＤＰ−Ｇｌｃデヒドロゲナーゼ酵素をコードしないことを暗
示する。

【００７６】ＨＡ生合成（８５μｇＨＡ／ｍｌ／Ｋ５細菌のＡ₆₀₀）を指示する能力がある最小の挿入物ｐＰｍΔ６ｅを有するｐＰｍ７Ａプラスミドの切断誘導体は、配列
番号１に示されるとおり９７２残基のタンパク質をコードする単独の完全なＯＲ
Ｆを含んだ。配列番号１中の明らかなプロモーターは存在しなかったが、太字の
ヌクレオチド−１０から−７に中心をとって標識された推定リボソーム結合部位
があり、そしてＴＭＰＲＥＤによって推定される２つの推定膜間領域に下線を付
けた（残基１６２−１８２、および５０３−５２２）。配列番号１のＰｍＨＡＳ
は、ストレプトコッカスＨａｓＡの大きさの２倍大きい。このタンパク質は、Ｐ
．ムルトシダから得られるＨＡシンターゼＰｍＨＡＳである。推定Ｍ_rは、１１１，９２３であり、そして算定等電点は、６．８４である。配列番号２は、Ｐｍ
ＨＡＳについてのヌクレオチド配列である。

【００７７】このＰｍＨＡＳは、タンパク質配列データベースのＢＬＡＳＴＰ調査での照会
として使用された。ＰｍＨＡＳの中心の位置（残基４３６−５３６）は、ストレ
プトコッカス、ビブリオ（Ｖｉｂｒｉｏ）、ネイセリア（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ）
およびスタフィロコッカスを含めた、リポ多糖のエキソ多糖または炭化水素部分
を形成する広範な属から得られる細菌のグリコシルトランスフェラーゼに最も相
同性がある（最小合計可能性、図１に示されるとおり１０^-22−１０^-10）。図１
では、Ｐ．ムルトシダＨＡＳおよび他のグリコシルトランスフェラーゼの配列の
列が図面で描かれる。ＭＵＬＴＡＬＩＮ列は、ＰｍＨＡＳの中心領域（残基４３
６−５３６）は、他のエキソ多糖（ストレプトコッカス・サーモフィルス（Ｓｔ
ｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓｔｈｅｒｍｏｐｈｉｌｕｓ）ＥｐｓＩ、１４型エス．ニューモニアエ（Ｓ．ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）Ｃｐｓ１４Ｊ）、またはリポ多糖
の炭化水素部分（エイチ．インフルエンザエＬｇｔＤ相同）を産生する種々の酵
素のアミノ酸末端部分に最も類似する。ほんのわずかの可能性のある実施例が、
図１に示される。エス．ピオゲネス（Ｓ．ｐｙｏｇｅｎｅｓ）ＨａｓＡ（残基６
１−１６８）は、ＰｍＨＡＳのこの表示領域に対する類似性を限定した。

【００７８】最も注目すべき配列類似性は、ＤＧＳＴＤ（配列番号２８）およびＤＸＤＤ（
配列番号２９）モチーフである。予想外に、０．３３の最小の合計可能性を示す
ＨＡＳＡを有するストレプトコッカス、ウイルスまたは脊椎動物のＨＡＳに対す
るＰｍＨＡＳの明らかな全体的類似性はなかった。ストレプトコッカスのＨａｓ
Ａの唯一の短い領域が、ＰｍＨＡＳと共に納得する手段で並び、そして図１に示
される。

【００７９】ＰｍＨＡＳの最初の半分の少数のセグメントは、哺乳類のＵＤＰ−ＧａｌＮＡ
ｃ：ポリペプチドＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼの部分とも類似である。そ
のトランスフェラーゼは、およそ１０^-3の最小の合計可能性を示すムチン型タン
パク質のｏ−グリコシル化を開始させる酵素である（図２）。図２に示されると
おり、ＰｍＨＡＳの残基３４２−３８３の配列の列は、哺乳類のＵＤＰ−Ｇａｌ
ＮＡｃ：ポリペプチドＧａｌＮＡｃ−トランスフェラーゼの残基３６２−４０４
に最も類似である。図１および２の両方で、同一の残基は、太字でそして下線が
付されており、そして共通シンボルは、ＩまたはＶで！、Ｎ、Ｄ、ＥまたはＱの
いずれでも＃、ＦまたはＹで％である。酸性残基のクラスターは、配列を通して
よく保存されている。

【００８０】ＰｍＨＡＳの下流の部分的ＯＲＦ（２７残基）は、イー・コリ、サルモネラ・
ティフィムリウム（Ｓａｌｍｏｎｅｌｌａｔｙｐｈｉｍｕｒｉｕｍ）およびストレプトコッカス・ニューモニアエを含めた細菌から得られる数種のＵＤＰ−Ｇ
ｌｃデヒドロゲナーゼのアミノ末端に非常に類似性がある（６７−７４％一致）
。元来のｐＰｍ７Ａクローンでの重度の切断は、デヒドロゲナーゼ活性を完全に
失う結果になることが予測される。ＰｍＨＡＳの上流の他のＯＲＦ（６２３残基
）は、１０^-52の最小の総可能性を示す、細胞の外に莢膜多糖を輸送するのに推定的に関与するタンパク質であるイー・コリＫ５ＫｆａＡタンパク質に非常に相同性がある。

【００８１】ＰｍＨＡＳについて推定サイズ９７２残基（１１２ｋＤａ）は、Ｐ．ムルトシ
ダ野生型から得られる膜標品の光アフィニティー標識によって確認された。［³² Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよび［³²Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃプ
ローブの両方が、ＵＶ依存性手段でおよそ１１０ｋＤａのタンパク質に光組込み
を行った。図３は、ＵＤＰ−糖類縁体を有するＰｍＨＡＳの光アフィニティー標
識である。［³²Ｐ］アジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよび［³²Ｐ］アジド−ＵＤＰ−
ＧｌｃＮＡｃを、野生型Ｐ．ムルトシダから単離される膜標品（４５μｇのタン
パク質）とインキュベートさせ、そしてＵＶ光で照射した。１０％ＳＤＳ−ＰＡ
ＧＥゲルのオートラジオグラム（５日露出）は、図３に示される。両方のプロー
ブは、ＵＶ依存性手段でおよそ１１０ｋＤａのタンパク質を光標識する（「−」
レーン）。光組込みの特異性を評価するために、平行のサンプルは、反応混合液
が１０倍過剰の非標識競合物（それぞれＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃまたはＵＤＰ−Ｇ
ｌｃＡ、「＋」レーンと記した）を含むこと以外は、同一に処理した。バンドの
強さは、「−」レーンに比較して減っている。標準は、ｋＤａで記される。

【００８２】対応の未標識の天然のＵＤＰ−糖前駆体との競合は、プローブ光組込みの範囲
を下げた。平行する実験で、正常なＨＡ前駆体の類縁体である［³²Ｐ］アジド−
ＵＤＰ−Ｇｌｃは、この１１０ｋＤａのタンパク質を標識しなかった。さらに、
Ｔｎ突然変異体に由来する膜は、このタンパク質へのアジド−ＵＤＰ−ＧｌｃＡ
光取込みの量がないか、または非常に低いかのいずれかを示した。図４に示され
るおとり、野生型（Ｗ）または種々の非莢膜Ｔｎ突然変異体（Ａ、ＧまたはＨ）
から得られる膜標品（６０μｇのタンパク質）を、［³²Ｐ］アジド−ＵＤＰ−Ｇ
ｌｃＡで光標識にかけた。およそ１１０ｋＤａのタンパク質の付近にあるオート
ラジオグラムの領域は、図４に示される。ＡおよびＧサンプル中に光取込みは見
られなかった。Ｈサンプル中の光標識の範囲が小さいのは、この特定の突然変異
体で観察される逆行の速度が遅いためである。Ｗサンプル中の光アフィニティー
標識タンパク質のサイズは、クローン化ＰｍＨＡＳのＯＲＦの推定Ｍ_rによく対応する。

【００８３】ベクターｐＫＫ２２３−３のみを有する細胞から得られるサンプルでなく、Ｐ
ｍＨＡＳプラスミドを含むイー・コリＳＵＲＥ細胞に由来する膜は、ＵＤＰ−Ｇ
ｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの両方で供給されるときにＨＡを生体外で合
成した（それぞれ、２５に対して１．５ピコモルＧｌｃＡトランスファー／ｍｇ
タンパク質／時間より少ないか、または等しい）。ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃが排除
される場合、または二価の金属イオンがＥＤＴＡとキレート化される場合、［¹⁴ Ｃ］ＧｌｃＡの取込みは観察されなかった。組換えＨＡＳに由来するＨＡＳ活性
は、Ｍｎ²⁺がＭｇ²⁺より少なくとも１０倍大きな活性を刺激するので、野生型Ｐ
．ムルトシダの膜から得られる酵素に類似した。

【００８４】組換えイー・コリの培養物は、標識ＨＡ結合タンパク質を利用する放射分析で
ＨＡ多糖の存在についても試験した。ＰｍＨＡＳを有するイー・コリＫ５は、４
６０μｇＨＡ／ｍｌ／Ａ₆₀₀を産生した。ｐＫＫ２２３−３ベクターのみを有するＫ５細胞は、ＨＡを産生しなかった（０．０５μｇＨＡ／ｍｌ／Ａ₆₀₀より少ないかまたは等しい）。比較すると、同じ培地で育成される野生型Ｐ．ムルトシ
ダ野生型は、１１００μｇＨＡ／ｍｌ／Ａ₆₀₀を産生した。ＰｍＨＡＳを有するイー・コリＫ５は、細胞が被包されるこのような高いレベルのＨＡを生じた。図
５、パネルＡに示されるとおり、墨汁染色を用いた組換えイー・コリの光マイク
ログラフ（１，０００×倍率）は、ＰｍＨＡＳを有するイー・コリＫ５細胞が、
細胞の周囲を白色ハロとして表す実質的な莢膜を作ることを示す。

【００８５】組換え株の莢膜の半径は、およそ０．２−０．５μｍ（０．５μｍの細菌細胞
幅を呈する）であった。この莢膜は、ヒツジの精巣ヒアルニダーゼまたはストレ
プトマイセスＨＡリアーゼのいずれかで処理することによって取除くことができ
る。図５パネルＢで示されるとおり、莢膜材料は、ストレプトマイセスＨＡリア
ーゼで簡便に処理することによってイー・コリＫ５（ｐＰｍＨＡＳ）細胞から取
除かれる。したがって、ＰｍＨＡＳは、ＨＡ多糖の重合を指示する。

【００８６】生来のＫ５宿主株も、ｐＫＫ２２３−３ベクターを含む形質転換体のいずれも
、光学顕微鏡によって測定されるときに、十分に観察しうる莢膜を保有しない。
ｐＰｍＨＡＳを有するＫ５細胞は、浮遊密度遠心によって被包されるとも思われ
る。組換え細胞が、５８％ｍパコール（Ｐｅｒｃｏｌｌ）クッションの頂上に浮
いていたのに対して、ベクター対照細胞またはヒアルロニダーゼ処理組換え細胞
は、パコールクッションを通してペレット化した。

【００８７】イー・コリＫ５中のｐ／ＰｍＨＡＳプラスミドは、組換えＨＡをＰｍＨＡＳで
作成するための第一世代系である。他の最適化ベクターおよび／または宿主は、
より多くの収量を示し、そしてこれらの多くの最適化ベクターおよび／または宿
主は、本発明に使用されることがここに予測される。この開示を与えられると、
当業者は、このようなベクターおよび／または宿主を最大限に利用する能力があ
る。

【００８８】２．ＰｍＨＡＳの酵素学的特徴づけタンパク質は、ウシの血清アルブミン鎖を利用するクマシン染料結合アッセイ
によって測定した。多くのムコシドコロニーを形成する非常に毒性のある七面鳥
株である、Ｐ．ムルトシダ野生型（アメリカン・タイプ・カルチャー・コレクシ
ョン１５７４２）を、摂氏３７度で、好気性条件下で、脳／心臓融合培養基で維
持した。ＴｎＡと称される、小さな「乾燥剤」コロニーを形成したその株の非莢
膜突然変異体は、ここに記述される新たに記述されたＴｎ９１６挿入物の突然変
異誘発法によって生成される。

【００８９】ＨａｓＡを含む組換えプラスミドを用いて、イー・コリからＨＡシンターゼを
生成する方法の改善によって、Ｐ．ムルトシダから得られる総量の膜を製造した
。細胞を、激しく振盪させながら、中間対数期（０．４−０．８Ａ₆₀₀）まで育成し、そしてその後ヒツジ精巣ヒアルロニダーゼ（シグマＶ型、２０単位／最終
ｍＬ）を、加えて莢膜を除去した。４０分後、細胞を氷上で冷却し、そして遠心
によって収穫した（１５分間、２０００×ｇ）。細胞を、懸濁および遠心の繰返
しによって二回洗浄し、そして細胞ペレットを、摂氏−８０度で保存できた。特
に示されないかぎり、氷上で以下のステップの全てを行った。

【００９０】プロテアーゼ阻害剤ペプスタチンおよびロイペプチンを含有する、２０％しょ
糖および３０ｍＭトリス（ｐＨ８．０）の最初の培養量を１／４００で、ピペッ
ト採取することによって、細胞を再懸濁させた。リソザイム消化（０．１ＭのＥ
ＤＴＡ中に４ｍｇ／ｍＬ酵素の懸濁量の１／１０を添加、４０分インキュベーシ
ョン）を使用し、続いて超音波破砕（電力設定３、３０秒のオン／オフの３回サ
イクル、小探針を有するヒートシステムＷ−３８０）することによって、細胞溶
解を行った。超音波処理ステップの前に、チオグリコール酸ナトリウムをその混
合液に添加し（最終濃度０．１ｍＭ）、続いてフッ化フェニルメタンスルホニル
を添加した。残りの操作全てで、ＰＢＳも、新たに加えたチオグリコレートを同
じ濃度で含有した。

【００９１】溶解産物を、ＤｎエースおよびＲｎエース（各々１μｇ／ｍＬ、摂氏４度で１
０分）で処理し、そして低速遠心分離（１時間、１００００×ｇ）によって、細
胞破砕物を除去した。上清画分を、ＰＢＳで６倍に希釈し、そして膜画分を、超
遠心分離（１時間、１０００００×ｇ）によって回収した。１０ｍＭのＭｇＣｌ ₂ を含むＰＢＳ中での懸濁を繰返し、続いて超遠心分離することによって、ペレットを二回洗浄した。金属特異性研究で使用される膜標品を生成するために、Ｍ
ｇＣｌ₂を除外し、そして洗浄ステップの間、０．２ｍＭのＥＤＴＡＡに交換した。膜標品を５０ｍＭトリス（ｐＨ７）および０．１ｍＭチオグリコレート中で
、１−３ｍｇ／ｍＬタンパク質の濃度で懸濁させ、そして摂氏−８０度で保存し
た。

【００９２】糖ヌクレオチド前駆体ＵＤＰ−［¹⁴Ｃ］ＧｌｃＡ（０．２７Ｃｉ／ミリモル、
ＩＣＮ）から由来する放射性標識を、高い分子量の産物に組込むことによって、
ＨＡシンターゼ活性を、定常的に検出させた。図面の凡例に記述される種々のア
ッセイ緩衝液は、０．３ｍＭのＤＴＴも含有した。反応混合液に膜を添加し、摂
氏３７度でインキュベートすることによって、アッセイ（最終量１００μＬ）を
開始させた。１時間後、ＳＤＳ（最終２％）を添加し、そして混合することによ
って、反応を終結させた。速度論的研究のために、ペーパークロマトグラフィー
（６５：３５エタノール／１Ｍ酢酸アンモニウム（ｐＨ５．５）を用い、ワット
マン３Ｍ）で降下させることによって、産物および前駆体を分離した。ペーパー
クロマトグラムの起点にあるＨＡ多糖を、液体シンチレーション計測の前に水で
溶出させた。酵素の量を限定することによって、５％未満の前駆体が消費される
条件下で、アッセイを典型的に行った。

【００９３】真正のＨＡへの組込みを実証するための対照は、必要とされる第二の糖ヌクレ
オチド前駆体を除外すること、またはストレプトマイセス・ヒアルロリチカス（
Ｓｔｒｅｐｔｏｍｙｃｅｓｈｙａｌｕｒｏｌｙｔｉｃｕｓ）から得られる特異的ヒアルロニダーゼを使用して消化させることを含む。ＰＢＳ中のセファクリル
Ｓ−２００（ファルマシア社）を用いたゲル濾過クロマトグラフィーを、最適化
アッセイ条件下で、生体外で形成される放射性標識ポリマーの分子量を評価する
のに使用した。終結後、カラムにかける前に、それらを、２分間、摂氏９５度に
加熱し、そして遠心分離（７分間、１５０００×ｇ）によって等級分けすること
を除いて、ペーパークロマトグラフィーに関して、これらのサンプルを処理した
。

【００９４】ＥＤＴＡ（０．２ｍＭ）を使用して、アッセイ混合液中に存在する任意の金属
イオンをキレート化させて、ＨＡＳ活性の金属依存性を実証した。Ｍｇ、Ｍｎ、
Ｃｕ、ＣｏおよびＮｉを含めた種々の二価金属を、それらの塩化塩として試験し
た。他の放射性標識前駆体を、一定に、そして飽和濃度で保持しながら、糖ヌク
レオチド濃度を滴定することによって、基質のＫ_m値を概算した。これらの研究については、ＵＤＰ−［¹⁴Ｃ］ＧｌｃＡ前駆体と同様に、ＵＤＰ−［³Ｈ］ＧｌｃＮＡｃ（３０Ｃｉ／ミリモル、ＮＥＮ）を使用した。

【００９５】Ｐ．ムルトシダ細胞は、十分に目視できる細胞外ＨＡ莢膜を生じ、そしてスト
レプトコッカスのＨａｓＡは、膜間タンパク質であるので、家禽コレラ病原体の
膜標品を試験した。初期の試験では、超音波処理のみに由来する粗膜画分は、ス
トレプトコッカスのＨＡＳ活性を測定するためのものに類似する条件下で分析さ
れるときに、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ依存性ＵＤＰ−［¹⁴Ｃ］ＧｌｃＡを、ＨＡ（
約０．２ピコモルのＧｌｃＡ移入（μｇのタンパク質）^-1ｈ^-1）に組込む場合、
非常に低い濃度を保持した。組換えＨａｓＡプラスミドを有するイー・コリから
得られる酵素も、最初の単離に対する組換え体であった。これらの結果は、類似
の方法によってストレプトコッカスから得られる簡単に検出できる量と対照的で
あった。

【００９６】超音波処理と共同してプロテアーゼ阻害剤の存在下での氷冷リソザイム処理を
用いた選択的製造プロトコールは、グラム陰性細菌の両方の種からのＨＡＳ活性
の実質的な回収を可能にする。５−１０ピコモルのＧｌｃＡ移入（μｇのタンパ
ク質）^-1ｈ^-1の特異的活性は、新規方法で野生型Ｐ．ムルトシダの粗膜について
日常的に得られた。ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの不在下で、ＵＤＰ−［¹⁴Ｃ］Ｇｌｃ
Ａから得られる放射性活性（両方の糖前駆体と同一のアッセイの１％未満）で、
高い分子量材料に組込まれるものは実質的にない。非莢膜突然変異体から製造さ
れる膜ＴｎＡは、両方の糖ヌクレオチド前駆体で補足したときに、検出可能なＨ
Ａ活性を保有しない。セファクリルＳ−２００カラムを用いたゲル濾過分析では
、材料が、空隙体積に溶出するので、生体外合成される¹⁴Ｃ標識産物の主要部の
分子マスが、≧８×１０⁴Ｄａであることを示す。このような値は、少なくとも４００モノマーから構成されるＨＡ分子に対応する。この産物は、ストレプトマ
イセス・ヒアルロニダーゼ消化に対しても感受性があるが、プロナーゼ処理に対
しては耐性がある。

【００９７】ＨＡＳアッセイのパラメーターを、Ｐ．ムルトシダの膜によりＵＤＰ−糖の多
糖への組込みを最大限にするのに変化させた。ストレプトコッカスのＨａｓＡは
、Ｍｇ²⁺を必要とし、したがって、この金属イオンは、Ｐ．ムルトシダ膜の最初
のアッセイに含まれる。Ｐ．ムルトシダＨＡＳは、トリス型緩衝液中でｐＨ６．
５から８．６まで、最大限でｐＨ７で比較的活性がある（図７）。図７には、Ｐ
．ムルトシダＨＡＳ活性のｐＨ依存性が描かれている。膜（３８μｇのタンパク
質）によって触媒されたＨＡ多糖への［¹⁴Ｃ］ＧｌｃＡの組込みを、種々のｐＨ
値（５０ｍＭトリス／２−（Ｎ−（モルフォリノ）エタンスルホン酸、ビス−ト
リス／ＨＣｌ、またはトリス／ＨＣｌ；主要な緩衝液イオン特異的効果で際立っ
たものはなかった）で緩衝される反応液中で測定した。インキュベーション混合
液は、２０ｍＭのＭｇＣｌ₂、１２０μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＡ（４．５×１０⁴ｄ
ｐｍ／アッセイ）、および３００μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃをも含んだ。最適
な緩衝液ｐＨ７トリスを用いたアッセイの組込みを１００％活性に設定した。中
性付近で最適な広範なｐＨが観察された。

【００９８】ＨＡＳ活性は、少なくとも１時間、中性ｐＨで、インキュベーション時間に関
して直線状であった。Ｐ．ムルトシダ酵素は、５０ｍＭトリス（ｐＨ７）および
２０ｍＭのＭｇＣｌ₂を含有する反応液に１００ｍＭのＮａＣｌを添加すると、およそ５０％まで糖組込みが減少するので、高いイオン強度で明らかに活性が低
かった。

【００９９】Ｐ．ムルトシダＨＡＳの金属イオン特異性は、ｐＨ７で評価された（図８）。
図８には、ＨＡＳ活性の金属依存性が描かれている。ＨＡの産生を、濃度が増加
しているＭｇ（円）またはＭｎ（四角）イオンの存在下で測定した。０．２ｍＭ
のＥＤＴＡで再洗浄した膜（４６μｇのタンパク質）を、５０ｍＭトリス（ｐＨ
７）、１２０μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＡ（４．５×１０⁴ｄｐｍ／アッセイ）、および３００μＭのＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ中の金属イオンの混合液中で、１時間イ
ンキュベートした。金属の存在しないバックグランド（２２ｄｐｍ）を、各点か
ら減じた。Ｍｎは、Ｍｇよりいっそう効果的であった。

【０１００】ＥＤＴＡの存在下、金属不含の条件下で、放射性標識した前駆体の多糖への組
込みは、検出可能でなかった（最大のシグナルの＜０．５％）。Ｍｎ²⁺は、試験
金属（Ｍｇ、Ｍｎ、Ｃｏ、ＣｕおよびＮｉ）について最低のイオン濃度で、最高
の組込み速度を示した。Ｍｇ²⁺は、１０倍高い濃度であるが、Ｍｎ²⁺刺激の約５
０％を示した。１０ｍＭにあるＣｏ²⁺またはＮｉ²⁺は、低いレベルの活性を支持
したが（１ｍＭのＭｎ²⁺アッセイのそれぞれ２０％または９％）、１０ｍＭのＣ
ｕ²⁺を補足された膜は不活性であった。実際に、１０ｍＭのＣｕ²⁺および２０ｍ
ＭのＭｇ²⁺を膜標品と混合して、多糖への標識の組込みはほとんどなかった（Ｍ
ｇのみの値の＜０．８％）。

【０１０１】Ｐ．ムルトシダＨＡＳの当初の特徴づけを、Ｍｇ²⁺の存在下で行った。その糖
ヌクレオチド前駆体についての酵素の結合アフィニティーは、見かけのＫ_M値を測定することによって評価した。多糖への［¹⁴Ｃ］ＧｌｃＡまたは［³Ｈ］ＧｌｃＮＡｃの組込みは、それぞれ、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃまたはＵＤＰ−ＧｌｃＡ
の可変の濃度で監視された（それぞれ図９および図１０）。

【０１０２】図９では、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ濃度へのＨＡＳ活性依存性が描かれている。
５０ｍＭトリス（ｐＨ７）、２０ｍＭのＭｇＣｌ₂および８００μＭのＵＤＰ− ＧｌｃＡ（¹⁴Ｃの１．４×１０⁵ｄｐｍ）を含む緩衝液中のＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの濃度を増やしながら、膜（２０μｇのタンパク質）を１時間インキュベート
した。バックグランド放射性活性（同一のアッセイであるが、ＵＤＰ−ＧｌｃＮ
Ａｃを添加せず）を各点から除した。滴定でのＨＡ（平均およそ７８０ｄｐｍ／
時間）への最高の特異的組込み速度は、１００％までの正常化についてＶ_MAXと定義された。

【０１０３】図１０には、ＵＤＰ−ＧｌｃＡ濃度へのＨＡＳ活性依存性が描かれている。図
９に記述されたものと平行な実験では、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃの量を１ｍＭのＵ
ＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ（³Ｈの２．７×１０⁵ｄｐｍ）で増加させて、同じ一般的緩
衝液およびアッセイ条件下でインキュベートした。バックグランド放射性活性（
ＵＤＰ−ＧｌｃＡを添加しないアッセイ）を各点から除した。データは、図９で
のように表される。Ｖ_MAXでの特異的組込みは、およそ７３０ｄｐｍ／時間に平均化した。

【０１０４】Ｍｇ²⁺含有緩衝液では、ＵＤＰ−ＧｌｃＡについては〜２０μＭ、そしてＵＤ
Ｐ−ＧｌｃＮＡｃについては〜７５μＭの見かけのＫ_M値は、図１１に示される滴定データのハンス−ウルフプロット（［Ｓ］／ｖ対［Ｓ］）を利用して決定し
た。図１１には、Ｖ_MAXおよびＫ_Mのハンス−ウルフプロット評価が描かれている
。図９（四角）および図１０（円）を生じるために使用される特定の組込みデー
タを、［Ｓ］／ｖ対［Ｓ］としてグラフ化した。１／Ｖ_MAXに対応する平行の斜面では、糖ヌクレオチド前駆体についての最大の速度が、等しかったことが示さ
れる。−Ｋ_Mを示すｘ軸切片は、それぞれ、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃおよびＵＤＰ −ＧｌｃＡについては７５および２０μＭのＫ_Mを得た。

【０１０５】両方の糖のＶ_MAX値は、斜面が平衡であるので同じであった。Ｍｇ²⁺を用いたアッセイから得られる結果の比較では、ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃについてのＫ_M値は、〜１０５μＭまで、約２５−５０％まで増大され、そして最大は、Ｍｎ²⁺の
存在下で２−３倍の因子まで増大された。これらの値は、表Ｉで表される。

【０１０６】

【表２】

【０１０７】先に述べられたとおり、病原体Ｐ．ムルトシダおよびエス．ピオゲネス（Ｓ．
ｐｙｏｇｅｎｅｓ）のＨＡ莢膜は、宿主防御の回避を助ける毒性因子である。い
ずれかの細菌源から得られるＨＡシンターゼ酵素は、ＵＤＰ−糖を利用するが、
しかしそれらは、ｐＨおよび金属イオン依存性およびＫ_M値に関してある程度異なる速度論的最適条件を有する。両方の酵素は、ｐＨ７で最も活性である。しか
し、ＰｍＨＡＳは、少なくともｐＨ８．６までのｐＨ最適条件のアルカリ側でよ
く機能する。他方、報告されたところによれば、ｓｐＨＡＳは、わずかに酸性の
ｐＨでいっそう活性を示し、そしてｐＨ７．４以上で比較的不活性である。Ｐ．
ムルトシダ酵素は、生体外アッセイ条件下で、Ｍｇ²⁺よりいっそう有効にＭｎ²⁺ を利用する。ＰｍＨＡＳは、ストレプトコッカスのＨａｓＡより密接にＵＤＰ−
糖を結合する。粗膜中のＰｍＨＡＳについて測定されたＫ_M値は、ストレプトコッカスの膜で見られるＨＡＳから得られるものより各基質について約２−３倍低
い。

【０１０８】３．ワクチン接種のためのＰｍＨＡＳの使用ＰｍＨＡＳのＤＮＡ配列も、破壊バージョンを用いた相同な組換えによって、
正常な微生物遺伝子をノックアウトした後、Ｐ．ムルトシダ細菌の潜在的に弱毒
化したワクチン株を生成するのに使用することができる。さらに、ＰｍＨＡＳの
ＤＮＡ配列は、家禽、家畜、ヒツジおよびブタの農業病原体である関連Ｐ．ムル
トシダ型についてのプローブの型を決める診断用細菌の生成を可能にする。

【０１０９】区別できる莢膜抗原を有する細菌病原体Ｐ．ムルトシダの少なくとも５つの異
なる型がある。多くはＡ型株によって引起こされる家禽コレラまたは鳥類パスツ
レラ症は、市販の家禽での広範で、経済的に損傷を与える疾病である。家禽コレ
ラの急性突発は、通常、鳥類が、ちょうど死の数時間前にしばしば現れる症状と
して急に死ぬときにのみ検出される。Ｐ．ムルトシダの毒性についての分子的根
拠については、ほとんど知られていないが、明らかに、病原体の毒性株の内の１
つは、多糖莢膜を保有し、そしてそれらのコロニーは、寒天プレート上でムコシ
ドまたは「湿潤」形態を表す。白血球細胞は、細菌を巻込みそして不活性化する
ことに困難を示し、そして補体複合体は、細菌膜と接触して、溶菌を起すことが
できない。おそらく、家禽コレラの疾病の９０−９５％の原因であるカーターＡ
型Ｐ．ムルトシダの主要な莢膜成分は、多糖ＨＡであり、そしてＨＡは、動物界
の実質的に全ての構成要素での免疫応答は是認しない。免疫応答が起るときでさ
え、自己免疫反応の影響のため鳥類についての問題がある。Ａ型Ｐ．ムルトシダ
株は、ブタおよびウシの肺炎性パスツレラ症の主要な原因でもあり、そして家畜
に発熱を移す。

【０１１０】２つの他のＰ．ムルトシダ莢膜型、Ｄ型およびＦ型は、あまりよく研究されて
いないが、しかし北米では優勢な病原体である。Ｆ型は、家禽コレラの事例の約
５−１０％から単離される。Ｄ型も、家畜、ヒツジおよびブタでの肺炎の原因で
ある。これらの家畜動物の肺炎の病巣からの単離物は、莢膜型から分析され、そ
して約２５−４０％は、Ｄ型であり、そして残りはＡ型であった。さらに、Ｄ型
株は、ブタの萎縮性鼻炎に密接に関与する。これらのＤ型およびＦ型微生物の莢
膜は、未知構造を有する様々な多糖から構成されるが、それらは、明らかにコン
ドロイチンに類似し、脊椎動物の体内で優勢な分子である。（β１，４）Ｇｌｃ
Ａ（β１，３）ＧａｌＮＡｃ単位を繰返すコンドロイタンの一般的な骨格構造は
、ＨＡに非常に類似する。したがって、Ｄ型およびＦ型多糖は、免疫原性が乏し
いことは驚くべきことでない。

【０１１１】典型的には、先の感染（またはワクチン接種）から由来する細菌表面成分に対
する抗体は、白血球細胞が、貧食作用中に細菌に付着するための重要な手段であ
る。この特徴は、通常、疾病と戦う上で免疫応答を厳密に効果的にする。したが
って、ＨＡまたはコンドロイタン様糖のような非免疫原性ポリマーから構成され
る莢膜の存在が、宿主防御の全ての層の効力を約束する。ヒトの病原体であるス
トレプトコッカス・ピオゲネスも、宿主防御からそれ自身を保護するために、分
子「擬態」としてＨＡ莢膜を使用する。非莢膜性エス．ピオゲネス突然変異体は
、血液中で生存できず、そしてマウスでの野生型より１００倍毒性が低い。多く
の毒性イー・コリ株は、宿主分子を擬態し、そして免疫系をかわす上で細胞を助
ける他の多糖から構成される莢膜を保有する。全てのこれらの病原性細菌の莢膜
は、疾病に勝つために克服されなければならない賢明な進化適応物である。

【０１１２】先の調査は、Ｐ．ムルトシダの莢膜および毒性でのその役割に焦点を置いた。
Ａ型家禽株に関しては、野生型被包細菌および種々の非莢膜形態を、単離宿主防
御（白血球細胞および補体）による生存挑戦に対する、または生きている家禽の
感染および死滅を起させるそれらの能力について試験した。非莢膜細胞は、特に
、（ａ）自発的に生じる突然変異体、（ｂ）化学的に誘導された突然変異体、ま
たは（ｃ）特異的ＨＡ分解酵素であるヒアルロニダーゼ［ＨＡエース］で処理し
た野生型細菌であった。一般に、莢膜欠損Ａ型細菌は、生体外で宿主防御を単離
することによっていっそう十分に死滅される。

【０１１３】七面鳥血清は、突然変異体およびＨＡエース処理細胞の両方を死滅させる一方
で、野生型細胞は増大した。死滅能力が、細菌とインキュベートする前に血清の
加熱またはカルシウムキレート剤処理によって失われるので、補体系は必然的に
関与する。その被包野生型細胞は、複合体が結合するが、細胞を溶菌できないこ
とを示す不活性化なしに、血清中の補体のレベルを消費するか、または減少させ
る。七面鳥マクロファージおよび異好球が、野生型細胞よりいっそう貪欲に非莢
膜の毒性およびＨＡエース処理細胞の両方を貧食作用する。

【０１１４】生きている動物実験では、自発的突然変異体は、ＬＤ₅₀（すなわち、試験動物
の５０％についての死滅用量）によって評価されるとおり、対応する野生型親株
より１０³から１０⁵倍毒性が低かった。この莫大な差異は、Ａ型株による貧食作
用での莢膜の重要さを示す。生きている七面鳥での細菌の死も、被包に左右され
る。唯一野生型細菌が、肝臓で生存した。注射の１５から２４時間後、野生型細
胞は、未被包突然変異体より１０⁵倍高い濃度で血液中に見られた。ＨＡ莢膜の別の役割は、付着およびコロニー化である。脊椎動物の体内のある種の細胞は、
それらの表面に特異的ＨＡ結合タンパク質を保有する。潜在的に、細菌は、この
タンパク質／ＨＡ相互作用を介して宿主に付着することができるであろう。

【０１１５】同様に、Ｄ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの莢膜は、微生物に貧食作用に対する
耐性を供与する毒性因子として関与している。Ｄ型またはＦ型細胞は、コンドロ
イチナーゼで処理し、それらの微生物は、それらの莢膜を失い、そして生体外で
いっそう十分に貧食した。さらに、これらのポリマーは、強力な免疫原性ではな
い。生体内試験から、被包Ｄ型株は、ブタでさらに重篤な鼻内病巣を生じ、そし
て未被包変異体よりマウスで低いＬＤ₅₀を示した（それぞれ１０²対１０^7-8）。

【０１１６】しかし、上で研究されたＡおよびＤ型突然変異体の場合には、それらの欠陥の
遺伝的特性は、知られておらず、そして突然変異をマッピングする容易な方法は
なかった。特に、化学的突然変異誘発では、任意の表示された「突然変異体」中
で１回以上の突然変異があるようである。さらに、ＨＡ産生は、「非莢膜」突然
変異体中で完全に根絶されることは示されなかった。コロニー形態学、光学顕微
鏡または化学的試験によって検出できない薄い莢膜は、まだ存在する可能性があ
った。小さな莢膜でさえ検出するために、さらに敏感な放射および浮遊密度アッ
セイが必要とされる。これらの新たな方法を利用すると、数種の毒性アッセイで
使用され、そして非莢膜性であると報告される１つの株は、実際に非常に薄い莢
膜を保有する。したがって、真正な非莢膜株からの影響を決定することが重要で
ある。

【０１１７】歴史的には、Ｐ．ムルトシダの莢膜産生に関与する遺伝子は知られていなかっ
た。関連属ヘモフィルス・インフルエンザエ（Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ）中の別の細胞の莢膜遺伝子座を残す数種の遺伝子がマッピング
され、そしてシーケンシングされたが、生合成装置の分子の詳細は、入手可能で
なかった。非常によく研究されたグラム陰性生物であるイー・コリでさえ、莢膜
形成の遺伝子座が、十分にマッピングされ、そして数種の莢膜型についてのＤＮ
Ａ配列が得られたけれども、各々の推定遺伝子産物の正確な役割は、よく理解さ
れてはいない。

【０１１８】ストレプトコッカス・ピオゲネスのＨＡ生合成遺伝子座のクローニングおよび
シーケンシングが報告されている。Ｐ．ムルトシダのようなこの微生物は、ヒト
防御をかわすためにＨＡ莢膜を利用する。ＨＡオペロンは、およそ４ｋｂのＤＮ
Ａで前後に並んで配列される３つの遺伝子を含む。第一の遺伝子ｈａｓＡは、２
つの糖ヌクレオチド前駆体ＵＤＰ−ＧｌｃＡおよびＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃを重合
してＨＡ多糖を形成する、４５．１ｋＤａのＨＡシンターゼをコードする。第二
の遺伝子ｈａｓＢは、ＵＤＰ−グルコース（ＵＤＰ−Ｇｌｃ）を、ＨＡ生合成の
ためのＵＤＰ−ＧｌｃＡに変換する４５．５ｋＤａのＵＤＰ−グルコースデヒド
ロゲナーゼをコードする。第三の遺伝子ｈａｓＣは、ＵＴＰおよびグルコース−
１−ホスフェートからＵＤＰ−Ｇｌｃを形成する３４ｋＤａのＵＤＰ−グルコー
スピロホスホリラーゼをコードする。莢膜生合成用のＵＤＰ−糖を形成すること
に打ち込んでいる補助的酵素がある。染色体中のどこにでも残る別の「ハウスキ
ーピング」遺伝子は、細菌の正常な代謝経路のためのＵＤＰ−Ｇｌｃを供給する
。ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃは、細胞壁合成でのその役割のため全ての真正細菌に存
在する。したがって、ＨＡシンターゼおよびデヒドロゲナーゼは、異種細菌中の
ＨＡ多糖合成を指示するだた２つの内在性タンパク質である。膜間螺旋状物を有
する膜タンパク質であると仮定されるエス．ピオゲネスＨＡシンターゼは、おそ
らく、ＨＡを重合し、そして細胞の外側に成長する多糖鎖を輸送する両方を行う
。

【０１１９】上で先に検討されるとおり、Ｐ．ムルトシダ中のＨＡの莢膜産生の原因である
遺伝子が単離され、そしてシーケンシングされている（例えば、配列番号１およ
び２参照）。この遺伝子は、本発明の一部として開示され、そして請求される。
先にも検討されたとおり、Ｐ．ムルトシダ莢膜のポリマーは、ジレンマを宿主防
御に引起こす。ＰｍＨＡＳ遺伝子配列情報を用いて、ＨＡ合成遺伝子「ノックア
ウト」を有する組換えて生成されるＰ．ムルトシダ株は、Ｐ．ムルトシダの細菌
莢膜の合成を破壊する。ワクチンとして「ノックアウト」株を用いて、宿主生物
が、この分野にある病原体による誘発を防ぐことが可能になる。

【０１２０】上で検討されるとおり、多用途で証明されている変異原であるＴｎ９１６は、
種々の明らかに準ランダムな位置でＰ．ムルトシダの染色体に挿入する。Ｔｎは
、電気穿刺を介して「自殺」プラスミド、すなわち、Ｐ．ムルトシダで複製でき
ないものの上の細胞に導入された。Ｔｎは集結し、約４，０００事象／マイクロ
グラムのＤＮＡの頻度で、プラスミドを飛び去り（ｊｕｍｐｅｄｏｆｆ）、そしてゲノムに導入された。生じる子孫は、Ｔｎ９１６から得られるテトラサイク
リン耐性遺伝子を保有し、そしてその薬剤によって容易に選択できた。

【０１２１】さらに上に検討されるのは、毒性の親株から得られる莢膜生合成で欠けている
独立のトランスポゾン突然変異体のパネルが、発生されることであった。およそ
１０⁵遺伝子導入したコロニーの視覚的および生化学的スクリーニングの組合せを使用した後、２つのクラスの莢膜欠損は、微細莢膜の、または非莢膜の突然変
異体を生じることが分かった。第一のクラス（７つの独立な株）は、ＨＡの非常
に小さな莢膜を保有し、したがって微細莢膜と称される。被包野生型株は、培地
プレート上の虹色コロニーである大型ムコイドを生じ、そして個々の細胞は、光
学顕微鏡で測定すると細胞体の直径におよそ等しい厚みを有する莢膜を形成する
。比較では、微細莢膜の株は、培地プレート上でいくぶん乾燥剤のようであるよ
り小さな虹色のコロニーを形成する。個々の細胞の莢膜の厚みは、野生型の四分
の一（またはそれ未満）の桁数である。

【０１２２】４つの突然変異体（４つの独立株）は、培地プレート上で小さな乾燥コロニー
を形成する真に非莢膜性であるように見えた。光学顕微鏡によって検出される莢
膜はなかった。被包の状態によって、非莢膜株の浮遊密度は、ヒアルロニダーゼ
処理によってそれらの莢膜をはがれた野生型細胞と等しかった。これらの株も、
ＨＡシンターゼ活性を欠いた。内在性放射標識ＵＤＰ−糖前駆体を、これらの突
然変異体から由来する標品に添加したが、ＨＡ多糖は形成されなかった。

【０１２３】非莢膜性突然変異体の内の２つＴｎＨおよびＴｎＬは、約１０^-3の頻度で、興
味ある特性を保有し、野生型莢膜表現型を示す偶発的な復帰突然変異体が、培地
プレートに現れた。復帰突然変異体細胞は、ＨＡ多糖のための光学顕微鏡および
放射アッセイによって考えられるとおり、野生型莢膜を保有した。分子上の説明
では、時折、Ｔｎが、莢膜遺伝子（付加または欠失した塩基なし）から正確に削
り、そして染色体内のどこかほかの所に介入することである。培地プレート上の
生じた被包子孫は十分に観察可能である。この可逆的現象は、これらの２つの株
の中のＴｎが、莢膜合成に必要な重要な部位を突然変異させる原因であったとい
う古典的な遺伝的根拠である。しかし、この相対的不安定さのため、Ｔｎ由来の
突然変異体は、弱毒化ワクチン株に適正でない。ある頻度で、毒性型が生じうる
。

【０１２４】サザンブロティングを使用して、元来の非莢膜突然変異体と被包復帰突然変異
体の両方でＴｎの位置をマッピングした。ＴｎＨおよびＴｎＬは、図１２に示さ
れるとおりＨｉｎｄＩＩＩまたはＢｓｔＸＩ消化後のパターンによって考えられ
るのと同じ遺伝子座中にＴｎ構成要素を有する。図１２は、Ｔｎ突然変異体のサ
ザンブロットマッピングである。莢膜突然変異体、被包復帰突然変異体および対
照の寄せ集めから得られる染色体ＤＮＡを、ＨｉｎｄＩＩＩで消化させた。ＤＮ
Ａを、ゲル電気泳動によって分離させ、そしてサザンブロット分析にかけた。Ｔ
ｎプローブは、内部制限部位のため各トランスポゾンについての２つのバンドを
認識した（大型の１０ｋｂおよび小型の５ｋｂの腕を形成する）。Ｔｎプローブ
は、Ｔｎなしで親株から得られるＤＮＡとハイブリッド形成しない（レーン０）
。非莢膜性突然変異体ＴｎＨ（Ｈ）およびＴｎＬ（Ｌ）または個々の被包復帰突
然変異体（下線付き文字で示される）の別々のコロニーに由来する複数のＤＮＡ
標品を実行させた。Ｔｎの２個のコピーを通常に有する（予備培養した株の内の
１つは、３個のコピーを有した）ＴｎＬ以外は、全ての突然変異体は、単回のＴ
ｎ構成要素挿入を示した。ＴｎＷ（Ｗ）は、ムコイドＴｎ含有対照株である。２
３．１、９．４および６．６ｋｂ（頂部から底部まで）についてのラムダＨｉｎ
ｄＩＩＩマーカー（λ）の位置を印した。

【０１２５】非莢膜性突然変異体ＨおよびＬ（ＨＡシンターゼ活性を示さない）、および代
表的微細莢膜の突然変異体ＴｎＤ（Ｄ）中のＴｎ構成要素は、同じ位置にマッピ
ングする。ムコイド表現型に対する復帰で、関連のＴｎ構成要素は、それぞれの
場合に新たな位置に移動した。突然変異体から得られる破壊ＤＮＡを、この遺伝
子座から単離し、そしてプローブは、莢膜遺伝子のために生成された。

【０１２６】連続配列分析では、ＴｎＨおよびＴｎＬ挿入がおよそ１ｋｂ部分であることが
決定された。全ての場合に、これらの突然変異体遺伝子座の復帰突然変異体は、
当初の位置でＴｎを失い、そして異なる位置で新たなＴｎを得た（すなわち、図
１２、下線付き文字を有するレーン）。代替的に、被包形態に対する微細莢膜の
突然変異体の内のいずれかの観察された復帰は無かった。微細莢膜の突然変異体
（ＴｎＤによって型分けされた）の全ての原因であるＴｎは、ＴｎＨおよびＴｎ
Ｌ突然変異体と同じ１７キロベースのＨｉｎｄＩＩＩフラグメントにマッピング
した。同様に、ＢｓｔＸＩでマッピングすることによって、この同時位置決めを
確認した。

【０１２７】他の非莢膜性突然変異体ＴｎＡおよびＴｎＧでは、Ｔｎ構成要素は、他の不適
切な遺伝子中に配置され、そしてＨＡ莢膜遺伝子座に、自発的突然変異によって
機能性を失わせた。偶発的で自発的な突然変異が予測されるべきである。実際、
ストレプトコッカスの莢膜遺伝子座の同様の研究で、１３の株の内１２は、自発
的突然変異の結果であった。

【０１２８】Ｔｎ９１６挿入の突然変異誘発を、Ｐ．ムルトシダのＨＡ莢膜生合成に関与し
たＤＮＡを同定し、そしてクローン化するのに使用した。この技術を達成させる
上で、３つのステップが使用された。すなわち、（ｉ）Ｔｎ９１６の末端にある
ＤＮＡに対応するプライマーを利用するＴｎ挿入部位にある宿主ＤＮＡをシーケ
ンシングすること、（ｉｉ）新たな配列に基づいた莢膜遺伝子のためのＰＣＲプ
ライマーを設計して、２つのＴｎ構成要素の間のＤＮＡセグメントを増幅するこ
と、および（ｉｉｉ）ハイブリダイゼーションプローブとして莢膜遺伝子座特異
的ＰＣＲ産物を利用する機能性クローンのためにラムダウイルス中にある野生型
ゲノムライブラリーをスクリーニングすることである。

【０１２９】Ｔｎに隣接するＰ．ムルトシダＤＮＡを得る上で主要なステップは、ここに参
照して完全に組込まれるＤｅＡｎｇｌｉｓ，Ｐ．Ｌ．、「パスツレラ・ムルトシ
ダのトランスポゾンＴｎ９１６挿入性突然変異誘発および破壊部位の直接シーケ
ンシング」、ＭｉｃｒｏｂｉａｌＰａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ（１９９８年）で完全に記述された最近処方された直接シーケンシング技術を使用することであっ
た。全ての莢膜型から得られるＰ．ムルトシダ・ゲノムは、制限酵素ＨｈａＩに
ついての多くの部位を含む。したがって、消化物中のほとんどすべてのＤＮＡフ
ラグメントは、７キロベース（ｋｂ）より小さく、そして図１３、レーン「０」
に示される。

【０１３０】図１３には、Ｔｎ破壊部位の配列分析についてのキメラＤＮＡテンプレートが
表される。この方法を通して、Ｔｎ９１６構成要素によって中断される任意の遺
伝子のＤＮＡ配列は、迅速にそして直接的に得ることができる。その方法は、Ｔ
ｎ構成要素、および制限酵素ＨｈａＩに対するＡ型Ｐ．ムルトシダのゲノムの判
別感受性で利用する。１６ｋｂＴｎ構成要素は、消化で１２および４ｋｂフラグ
メントになる唯一のＨｈａＩ部位を有する。したがって、Ｔｎ構成要素によって
中断された任意の遺伝子は、別の１２ｋｂのＤＮＡを有する。ＨｈａＩフラグメ
ントのサイズでの増加は、従来のアガロース電気泳動によって残りの染色体ＤＮ
ＡからＴｎタグ付き遺伝子の解像を容易にさせる。この０．７％ゲルは、Ｔｎ無
しの親株（レーン０）、および数種のＴｎ含有突然変異体（Ｔｎ突然変異体レー
ン）から得られる染色体ＤＮＡのＨｈａＩ消化パターンを示す。ラムダ／Ｈｉｎ
ｄＩＩＩマーカー（レーンＳ）は、ｋｂで印される。およそ１３−１７ｋｂで移
行するキメラＴｎ／ゲノムＤＮＡフラグメント（矢印で印される）は、Ｔｎ突然
変異体のみで見られる。レーンＬは、３つのキメラバンドを有すること、この特
定の突然変異体は、３つのＴｎ構成要素を有することに注目されたい（図１２参
照）。

【０１３１】キメラＤＮＡは、単離して、シーケンシングテンプレートとして直接使用され
うる。必要とされるクローンまたはＰＣＲはない。アガロースゲル電気泳動によ
って残りの小さなゲノムフラグメントから十分に分離される、生じる大型キメラ
ＤＮＡ分子は、サイクルシーケンシング反応中でテンプレートとしての役割を果
たす。Ｔｎ９１６の右腕末端に対応するシーケンシングプライマーは、破壊ＤＮ
Ａに外側に伸長を指示する。したがって、突然変異体ＤＮＡの破壊部位での配列
データは、ＰＣＲ増幅またはテンプレートＤＮＡをクローニングすることなく、
日常的に得ることができる。

【０１３２】新たな配列情報は、ＴｎＬおよびＴｎＨ突然変異体の間のＤＮＡの領域の増幅
のためのＰＣＲプライマーを設計するのに使用した。Ａ型Ｐ．ムルトシダのＨＡ
生合成遺伝子座の略図を示す図１４に概説されるとおり、特異的な１ｋｂ産物を
、ハイブリダイゼーションプローブとして使用して、Ａ型Ｐ．ムルトシダの莢膜
生合成オペロンの５．８ｋｂ部分を得た。図１４が描くとおり、イー・コリ中の
ＨＡの生合成を指示できるＡ型ゲノムＤＮＡクローンの挿入物をシーケンシング
した。開放読取り枠が、多糖輸送中に関与されるイー・コリ分子に類似する２つ
のタンパク質ＫｐｓおよびＫｆａＡ、すなわち、ＨＡ多糖を重合するＨＡシンタ
ーゼ、および前駆体形成酵素、ＵＤＰ−グルコースデヒドロゲナーゼをコードす
ることが分かった。元のプラスミドの欠失分析では、無傷のＨＡシンターゼは、
異種細菌中のＨＡ産生に不可欠であることが示された。ＴｎＨおよびＴｎＬに対
応する元のＴｎ挿入の位置を、星印で印した。Ｔｎ挿入事象は、ＨＡシンターゼ
およびデヒドロゲナーゼ遺伝子の下流の発現を終結させる極性の突然変異を明ら
かに引起こした。したがって、配列分析を使用することによって、イー・コリＫ
ｆａＡに類似である新規ＰｍＨＡＳおよび推定多糖輸送相同体の無傷の開放読取
り枠が見られた。データでは、ＵＤＰ−ＧｌｃＡ前駆体を作るＵＤＰ−Ｇｌｃデ
ヒドロゲナーゼ相同体、および別の輸送媒体タンパク質イー・コリｋｐｓ遺伝子
相同体は、ＨＡシンターゼの付近に存在することも示された。

【０１３３】Ｐ．ムルトシダから得られる単独の１１０ｋＤａのタンパク質ＰｍＨＡＳは、
イー・コリ中のＨＡ莢膜産生を指示する。プラスミド上でＰｍＨＡＳと共に産生
される組込み細胞の莢膜は、毒性の野生型株と同じ厚みであった。莢膜性材料は
、特異的ＨＡリアーゼ消化に対するその過敏性、および選択的ＨＡ結合タンパク
質とのその反応性によって真正なＨＡと考えられた。興味深くは、ＰｍＨＡＳは
、アミノ酸レベルで他のＨＡＳにそれほど類似ではない。

【０１３４】Ｐ．ムルトシダの安定な同質遺伝子の突然変異体を作るために、ピー．ヘモリ
チカで使用される突然変異誘発法の修飾を使用した。ＨＡシンターゼの二重交差
によって標的にされた不活性化のためのノックアウト・カセットを作成した。プ
ロモーター無しのクロラムフェニコール耐性遺伝子（ｃａｔ）を、全ＰｍＨＡＳ
開放読取り枠（ＸｈｏＩ部位で）の中央に挿入し、Ｐ．ムルトシダ中で安定には
複製しないプラスミド（ｐＫＫ２２３−３）にクローン化させた。プラスミドを
、被包野生型株に形質転換させ、そして細胞を、クロラムフェニコールを有する
培地に載せた。標的遺伝子へ介入させたとき、無傷のＰｍＨＡＳタンパク質はも
はや形成されない。ｃａｔ遺伝子は、内在性莢膜遺伝子プロモーターによって転
写される。下流遺伝子であるＵＤＰ−グルコースデヒドロゲナーゼは、影響を及
ぼされないにちがいない。したがって、真の同質遺伝子突然変異体が形成される
。

【０１３５】３つの同質遺伝子の非莢膜性突然変異体が、単離された。これらの突然変異体
の内、光学顕微鏡および墨汁染色下で莢膜を有すると検出されたものはなかった
。ＨＡシンターゼは、ＤＮＡおよび生化学的レベルの両方で破壊された。例えば
、表ＩＩ参照。ＰｍＨＡＳ酵素の一部に対して向けられた抗体を用いたウエスタ
ンブロット分析によって、非莢膜のノックアウト突然変異体は、野生型親で見ら
れるＰｍＨＡＳ酵素のものであるおよそ１１０ｋＤａバンドを失っていた。表Ｉ
Ｉ中のデータとの組合せ（多糖産生を欠く）で、機能性ＰｍＨＡＳで、ノックア
ウト株に見られるものはなかった。

【０１３６】ある種の領域は、種々の莢膜型の遺伝子の間で共通であるか、または非常に類
似する。これは、図１５で描かれるＤまたはＦ型ＤＮＡのサザンブロット分析で
示される。図１５で描かれるとおり、Ａ、ＦまたはＤ型株から得られる染色体Ｄ
ＮＡは、ＨｉｎｄＩＩＩまたはＥｃｏＲＩ（各プローブについてそれぞれ、右ま
たは左レーン）で消化させ、そしてサザンブロットにかけた。Ａ型から得られる
ｋｆａＡ相同体（Ｋ）またはＨＡシンターゼ（Ｈ）遺伝子のいずれかの領域に対
応するジゴキシゲニン標識ＰＣＲ産物プローブを、他の莢膜型の細菌中の相同な
配列を検出するのに使用した（星印の付いたバンド）。ＫｆａＡ相同体は、Ｆお
よびＤ型の両方に現れる。非常に類似なシンターゼ相同体は、Ｆ型で見られたが
、Ｄ型では見られなかった。プローブは、ライブラリーをスクリーニングするの
に適切である。ラムダ／ＨｉｎｄＩＩＩ標準を、キロベースで印す。

【０１３７】Ｆ型は、両方のプローブに類似する領域を示す一方で、Ｄ型は、輸送媒体タン
パク質プローブにのみ類似した。図１６に示されるとおり、ＰＣＲを、Ａ型配列
に対応する数種の組のプライマーと共に使用して、ＤまたはＦ型ゲノムＤＮＡを
増幅した。Ａ型プライマーを用いた異種ＤＮＡのＰＣＲは、図１６に描かれてい
る。Ａ型株のｋｆａＡ相同遺伝子（パネルＡ）またはＨＡシンターゼ遺伝子（パ
ネルＢ）に対応する種々のプライマー対を、様々の莢膜型と共に、数種の他のＰ
．ムルトシダ株から単離されるゲノムＤＮＡを増幅するのに使用した。Ｔａｑ酵
素を用いて４０サイクル（９４℃、３０秒；４２℃、３０秒；７２℃、６０秒）
のポリメラーゼ連鎖反応を行った。

【０１３８】反応混合物を、１％アガロースゲル上で分離させ、そしてエチジウム（レーン
：Ａ、Ａ型；Ｄ、Ｄ型；Ｆ、Ｆ型；０、テンプレートなしの対照）で染色した。
標準（Ｓ）は、１００ｂｐラダーであり、１および０．５ｋｂバンドは、矢印で
印をする。Ｐ−Ｉプライマー対は、全ての３つの莢膜型のための産物を示すが、
しかしＤ型産物は、他の産物より小さい。Ｐ−ＩＩおよびＰ−ＩＩＩ対は、Ａお
よびＦ型ＤＮＡのみを増幅する。対照的に、Ｐ−ＩＶおよびＰ−Ｖ対は、Ａ型の
みを増幅する。ＡおよびＦ型莢膜遺伝子座が、Ｄ型より互いにいっそう類似する
ようである。Ｐ−Ｉプライマー対から得られるＰＣＲ産物は、他の型から得られ
る莢膜遺伝子座のための優れたハイブリダイゼーションプローブとして役割を果
たす。

【０１３９】プライマーの全ての組合せが、異種テンプレートＤＮＡを有するＰＣＲ産物を
得るとはかぎらない。ＨＡシンターゼまたは莢膜多糖輸送媒体の類縁体をコード
するＦ型遺伝子の０．２−１ｋｂ部分を増幅した。さらに増幅されたのは、輸送
媒体タンパク質をコードするＤ型ゲノムの１ｋｂ領域であった。数種のＰＣＲ産
物の配列分析は、同質のなお区別しうる配列を示した。全体で、このデータは、
ＡおよびＦ型株が、互いにいっそう関連し、そしてＤ型に類似しないことを示唆
する。ＡおよびＦ型ＫｆａＡ相同体およびイー・コリＫｆａＡの配列比較は、図
１７に示される。Ｐ−Ｉプライマーの組（図１６参照）を用いたＦ型ＤＮＡの増
幅によって生成されるＰＣＲ産物を、ゲル精製し、そして元のプライマーの内の
一つでシーケンシングした。ＡおよびＦ型配列は、アミノ酸レベルで非常に類似
性があることが分かった。タンパク質配列のこの部分配列では、この領域で、配
列が、いくつかのミスマッチを伴いおおかた同一であることが示された（差異は
、図１７で下線を付された）。全体で、Ｐ．ムルトシダ配列は、イー・コリＫｆ
ａＡタンパク質と全く相同であり、そしてそれは、多糖輸送に関与する（同一の
残基は、図１７で太字にする）。これらのＰＣＲ産物は、ＤまたはＦ型ゲノムラ
イブラリーから得られる機能性莢膜遺伝子座を得るためのハイブリダイセーショ
ンプローブとして有用でもある。クローン化ＤＮＡも、遺伝子ノックアウトプラ
スミドの構築を可能にする。ここで、生じる突然変異体株は、毒性アッセイまた
はワクチンに有用である。

【０１４０】Ｐ．ムルトシダの細菌莢膜の産生は、少なくとも以下のステップを含む。すな
わち、（ｉ）糖ヌクレオチド前駆体の合成、（ｉｉ）莢膜多糖を形成する前駆体
の重合、および（ｉｉｉ）莢膜組立てが起る細胞外空間への多糖の輸出または輸
送である。もちろん、酵素レベルまたは酵素活性を制御する潜在的制御遺伝子ま
たは因子があるが、しかし焦点は、その経路の主要な構造的酵素にある。イー・
コリでは、この工程についての酵素をコードする候補２型莢膜遺伝子は、細菌染
色体上の単独部位で共に配置される。様々な構造を有する莢膜を作るイー・コリ
株は、上のステップ（ｉ）および（ｉｉ）のための酵素を変化させるが、しかし
全ては、ステップ（ｉｉｉ）についての共通輸送／輸出機構を共有するようであ
る。

【０１４１】エス．ピオゲネスで、単一の内在性膜酵素が、前駆体糖を重合し、そして膜を
越えてＨＡ多糖を輸送することが知見された。Ａ型Ｐ．ムルトシダは、細菌の莢
膜産生のための３つの生合成ステップの各々に関与する４つの異なる遺伝子を有
する（図１４参照）。タンパク質レベルでのイー・コリ相同体に対するＰ．ムル
トシダの多糖輸送媒体の類似性で、ある種の他の莢膜遺伝子の一般的機能性も、
これら２つの種と類似性がありうることが示唆される。

【０１４２】家禽コレラでの毒性因子としての莢膜の役割が、評価された。細菌莢膜および
毒性の研究に対抗される落し穴および警告を避けるために、定義した突然変異体
を、野生型微生物と比較した。破壊された莢膜遺伝子を有する同質遺伝子のＡ型
突然変異体を、生体内で生きている家禽を感染させるのと同様に、生体外で宿主
防御を予め存在するか、予備免疫することを避けるそれらの能力について試験し
た。ここに上で記述される方法によって、安定な同質遺伝子の突然変異体を生成
した。プラスミド上のＰｍＨＡＳ遺伝子の破壊バージョン（図１８参照）および
相同の組換えを使用して、ヒアルロナン莢膜を作る能力を失った組換えＰ．ムル
トシダ株を作り出した。株は、さらに、ＤＮＡおよび生化学レベルの両方で分析
した。我々は、サザンブロットおよびＰＣＲ分析の両方により、機能性ＨＡシン
ターゼ遺伝子を、ｃａｔカセット破壊を含む欠損遺伝子に換えられることを知見
した（図１９参照）。

【０１４３】遺伝子破壊の確認は、図１９で示される。パネルＡは、サザンブロット分析で
ある。種々の株から得られる染色体ＤＮＡを、ＨｉｎｄＩＩＩで消化し、０．７
％アガロースゲルで分離し、そしてニトロセルロースに移した。ブロットを、Ｐ
．ムルトシダＨＡＳ遺伝子プローブとハイブリッド形成させた。ＰｍＨＡＳ遺伝
子中の内部ＨｉｎｄＩＩＩ制限部位のため、２つのバンドを検出した。レーンＭ
は、ムコイド形質転換体であり、レーンＫＯは、非莢膜のノックアウト突然変異
体であり、レーンＰは親株である。６７０ｂｐのｃａｔカセットの添加は、ＫＯ
レーン上の上部バンドのサイズ移行を起させる（矢印で印される）。

【０１４４】図１９のパネルＢは、ＰＣＲ分析である。種々の株から得られる細胞溶解産物
中のＤＮＡを、ＰｍＨＡＳのＸｈｏＩ部位を挟む一対のオリゴヌクレオチドプラ
イマーを用いた３５サイクルのＰＣＲによって増幅させた。正常の野生型遺伝子
から得られるアンプリコンの長さは、６５０塩基対である。ＰＣＲ反応物は、１
％アガロースゲル上で分離され、そして臭化エチジウムで可視化させた。レーン
Ｍは、ムコイド形質転換体である。レーンＫＯは、非莢膜のノックアウト突然変
異体である。レーンＰは、親株である。レーンＣは、クローン化ＰｍＨＡＳプラ
スミド対照である。そしてレーンＳは、サイズ標準である。ノックアウト突然変
異体テンプレートによって産生されるＰＣＲ産物は、およそ１，３００ｂｐであ
る（矢印で印を付けた）。このバンドは、６７０ｂｐのｃａｔカセットおよびＰ
ｍＨＡＳに由来する６５０ｂｐから構成される。野生型アンプリコンで、ノック
アウト株の反応物で検出されるものはなく、したがって、二重乗換現象によって
導かれる相同な組換えが生じた。

【０１４５】さらに、ＨＡ多糖のための敏感な放射性化学アッセイを利用して、突然変異体
株はＨＡを産生しないことが分かったが、種々の株のＨＡ産生を列記する表IIに
示される。

【０１４６】

【表３】

【０１４７】表IIに列記される株は、ここに上で概略される特異的放射アッセイを用いてＨ
Ａ多糖の存在について試験される種々の株の一夜培養物であった。分光光度計に
よって培養物を正常化させ、そしてデータは、６００ｎｍでの１．０の吸光度で
培養物中のＨＡの濃度として表された。野生型親またはムコイドの被包形質転換
体は、実質的な量のＨＡを合成した。対照的に、検出可能なＨＡで、非莢膜のノ
ックアウト突然変異体（ＫＯ）によって産生されるものはない。したがって、毒
性での莢膜の役割を評価できるであろう。使用される方法論は、Ｐ．ムルトシダ
の他の突然変異体を構築するのにも使用できるであろうし、そして本発明の開示
を示された当業者は、このような手法を達成できるであろう。

【０１４８】動物試験は、相補突然変異体対照および野生型Ａ型Ｐ．ムルトシダに対するそ
の突然変異体の生体内病原性を比較した。Ａ型パスツレラ・ムルトシダＡＴＣＣ
１５７４２（家禽コレラを起す）のノックアウト株は、毒性試験のために、アイ
オワ州エイムス（Ａｍｅｓ，Ｉｏｗａ）にあるＵＳＤＡリサーチ・ステーション
に届けられた。標的とされた相同の組換えを用いて、ノックアウト株の莢膜生合
成を破壊し、そしてノックアウト株は、１，０００倍少ない毒性であることが推
定された。

【０１４９】毒性試験は、ワクチン株としてＫＯ株の安全性を調べるために行った。七面鳥
の卵を、クリーン条件下で孵化させ、そして２週齢まで育成させた。若鶏に種々
の濃度の細菌（野生型親またはノックアウト株のいずれか）を注射した。細菌数
は、プレート塗布後の分光学およびコロニー計測によって計測した。動物に筋肉
内に注射し、そして生物学的混合ペンに載せた。接種した若鶏（１０倍ステップ
で約８０から１０⁷個の細菌までの範囲における細菌投与当たり６または７の群）を観察した。一般的外観、活性のレベルおよび罹患率を６日間調べた。死亡ま
たは瀕死の鳥を、解剖し、そして病巣、腫瘍の存在、および臓器不全について調
べた。生体内実験の結果は、表IIIに要約される。

【０１５０】

【表４】

【０１５１】この型の試験の要点は、病原体の被包に関して感染の一般的傾向を評価するこ
とであった。各決定について、白色七面鳥を、滴定量の細菌ＩＭを接種した。七
面鳥の症状および死を測定し、そして突然変異体の相対的毒性を比較するために
表に表した。保護試験は、免疫した七面鳥が、野生型毒性生物による誘発を生き
延びることができるかを決定するために実行する。

【０１５２】家畜およびウサギを感染するＡ型ノックアウト株も、製造された。免疫された
動物が、野生型毒性生物での誘発に生き延びることができるかどうかを決定する
保護試験と同様に、これらのノックアウト株の病原性の両方を決定するために、
試験は、生体内で行われた。

【０１５３】２つの主要な型の保護実験を行った。最初に、消極的免疫化を行う。１匹のニ
ワトリに、潜在性ワクチンＫＯ株を感染させ、そしてその血清のサンプル（保護
的抗体を有する）を、接種後約１−２週に取る。この血清または誘導された精製
抗体を、実験を受けたことのないニワトリに注射する。実験を受けたことのない
ニワトリを、野生型株で誘発させる。保護的抗体を受ける場合、トリは、ほかの
致命的野生型細菌での誘発に生き残る。

【０１５４】第二に、有効な免疫化を行う。この場合に、同じニワトリは、強力なワクチン
ＫＯ株で連続して感染させ、そして数週間後、トリを、正常に致命的用量の野生
型細菌で検証した。この場合に、抗体依存性および細胞依存性免疫を試験する。

【０１５５】本発明を使用して、多糖の親密な構造的類似性のために種々の被包型のＰ．ム
ルトシダの莢膜遺伝子座での類似性があることが推定される。本発明は、相同な
Ｆ型Ｐ．ムルトシダ遺伝子（「ＰｍＣＳ」）にも関する。ＰｍＣＳ配列情報は、
配列番号３で供される。Ｆ型遺伝子は、Ａ型遺伝子とおよそ８５％同一であり、
そして配列比較は、図２０で示される。この相同性は、図１５、図１６および図
１７に示されるとおり、サザンブロッティングおよびＰＣＲによって、クローン
化Ａ型莢膜遺伝子とＤおよびＦ型ゲノムの特定の領域との間のＤＮＡレベルで見
られる。ラムダファージ中のＦ型ゲノムＤＮＡのライブラリーを、スクリーニン
グして、相同な莢膜遺伝子座を単離した。ラムダファアージ中のＤ型ゲノムＤＮ
Ａのライブラリーを、スクリーニングして、相同な莢膜遺伝子座を単離し、そし
て当業者は、Ｄ型莢膜遺伝子座が、ＡおよびＦ型と正確に同じ方法で測定するこ
とができることを予測し理解する。ＡおよびＦ型ＰｍＨＡＳ配列は、８９％類似
である。

【０１５６】ＰＣＲ産物のハイブリダイゼーションプローブ（図１６）を使用し、ＨＡＳ相
同体およびＫｆａ相同体を結合することによって、Ｆ型多糖シンターゼ遺伝子を
得た。Ｆ型株から得られるゲノムＤＮＡおよびＫｆａから得られる適切なプライ
マーおよびシンターゼ領域を用いて、３ｋｂアンプリコンを産生した。この材料
を、ジゴキシゲニンで標識させ、そしてクローン、および続いてラムダＺＡＰ発
現ライブラリー中のＦ型ゲノムＤＮＡライブラリーから得られるプラスミドを得
るのに使用した（Ａ型クローニングについて記述されるとおり）。陽性でハイブ
リッド形成するクローンをシーケンシングした。Ａ型ＨＡシンターゼ遺伝子Ｐｍ
ＨＡＳの場合のように、イー・コリ中のｐＫＫ２２３−３（ファルマシア）ベク
ター中の発現によって、機能を調べた。この酵素は、生体外で、ＵＤＰ−Ｇａｌ
ＮＡｃおよびＵＤＰ−ＧｌｃＡを、コンドロイチン分子について予測されるとお
りの高い分子量のポリマーに組込んだことが分かった。

【０１５７】莢膜の多糖シンターゼを、抗体およびウエスタンブロット分析で監視した。シ
ンターゼ酵素の共有される相同な領域（１２−２０アミノ酸残基）に対応する合
成ペプチドに対する抗体を発生させた。ウエスタンブロットでは、Ａ型およびＦ
型Ｐ．ムルトシダの両方が、ＳＤＳ−ＰＡＧＥによって、免疫反応性の１１０ｋ
Ｄａタンパク質を有することが確認された。

【０１５８】図２１は、生来の、そして組換えＰｍＨＡＳタンパク質のウエスタンブロット
分析である。イー・コリ中で作成される生来のＰｍＨＡＳおよび種々の組換え切
断ＰｍＨＡＳ由来のタンパク質を、ＳＤＳ−ＰＡＧＥゲル上で比較した。組換え
サンプルについては、総溶解産物（Ｔ）、膜（Ｍ）および細胞質（Ｃ）を、抗−
ＰｍＨＡＳ抗体を用いたウエスタンブロッティングにかけた。生来のパスツレラ
・ムルトシダに見られる元のタンパク質（Ｐｍ、レーンＷ；矢印で印された）が
約１１０ｋＤａに移行する。ノックアウト・ワクチン株（ＫＯレーン）は、この
バンドを失っている。生来のＰｍＨＡＳおよびカルボキシル末端の一部を失う組
換えバージョン（ＰｍΔＣＣ）は、ＨＡシンターゼ活性を有した。他の切断構築
物は、不活性であった。

【０１５９】４．診断用途でのＰｍＨＡＳの使用本発明は、その分野でＡ、ＤおよびＦ型Ｐ．ムルトシダまたはピー．ヘモリチ
カの同定を促進する有用なプローブの産生にも関する。特定の株が、動物に存在
するという診断は、最近、制限分析の後、血液学、凝集またはＤＮＡフィンガー
プリンティングによって決定される。先の２つの方法は、問題が多く、頻繁に誤
った同定を生じ、そして抗血清をタイプ分けする源によって変化する。カーター
型Ａ、ＤおよびＦ型の莢膜血液学は、これらのポリマーが、免疫原がこのように
乏しいので抗体さえ使用しない。実際に、酵素的消化またはアクリフラビンとの
細胞凝集に関与する困難なアッセイを、日常的に使用する。ＤＮＡフィンガープ
リンティングは、正確であるが、しかし、それは、ファイル上の莫大な型の株の
集約的知識に依存する。莢膜特異的プライマーの組は、特に、最小限の取扱いで
、そして予備培養なしに、半日で病原性単離物を同定する迅速で容易なＰＣＲ分
析を使用することによって、これらの疫学的研究を十分に行うのに使用される。
一旦、病原体が同定されると、抗生物質またはワクチンの選択に、いっそう洗練
された決定をなすことができる。

【０１６０】Ｐ．ムルトシダの型を素早く確かめる莢膜ＤＮＡ情報の使用法の有用性は、最
近のタイプ分け方法についての問題の点で明らかである。ハイブリダイゼーショ
ンまたはＰＣＲ基礎のタイプ分けのいずれかが、実施でき、敏感で、そして迅速
であると想像される。１つの特定の実施形態は、その特徴の長所により、適切な
ハイブリダイセーション条件下で際立たせることができる（例えば、相補的遺伝
子およびプローブは、ハイブリッド形成してシグナルを生じる一方で、別の莢膜
型から得られる同一でない遺伝子は、ハイブリッド形成せず、したがって、シグ
ナルが得られない）、適切に標識されたか、またはタグ付けされたシンターゼＤ
ＮＡプローブ（または、莢膜型の中で異なる莢膜遺伝子座遺伝子を伸長させるこ
とによって）を保持することである。別の特定の実施形態は、莢膜型を区別でき
るＰＣＲプライマーを設計することである。正しいサイズのアンプリコンは、特
定の莢膜型を示す。別の際立った莢膜型を示すアンプリコンはない。

【０１６１】技術の最近の現状で、単回反応で区別できるそして異なるサイズのバンドを示
すいくつかのＰＣＲプライマー対が想像できる。このような複合法は、多くの反
応を同時に行うことを可能にする。種々の莢膜生合成遺伝子座、特にシンターゼ
のＤＮＡ配列の知識は、これらの試験が種々の病原性株を迅速に区別させる。

【０１６２】したがって、本発明によって、上に規定される目的および利点を十分に満足さ
せるＰ．ムルトシダの単離およびシーケンシングされたＰｍＨＡＳおよびノック
アウト株を作成および使用する方法を供することのようである。本発明は、それ
らの特定の実施形態に関連して記述されているが、多くの改変、修飾および変動
が、当業者に明らかであるという証拠である。したがって、付随の請求項の概念
および広範な範囲内に入る全てのこのような改変、修飾および変動を受け入れる
ことが意図される。

【０１６３】

【配列表】

【０１６４】

【０１６５】

【０１６６】

【配列表】

【図面の簡単な説明】

【図１】ＰｍＨＡＳのＰ．ムルトシダおよび他の細菌から得られる他のグリコトランス
フェラーゼの部分的配列図である。図１におけるＰｍＨＡＳ配列は、配列番号１
０であり、図１におけるＥｐｓＩ配列は、配列番号１１であり、図１におけるＣ
ｐｓ１４Ｅ配列は、配列番号１２であり、図１におけるＬｇｔＤ配列は、配列番
号１３であり、図１におけるＳｐＨａｓＡ配列は、配列番号１４であり、そして
図１における共通配列は、配列番号１５である。

【図２】哺乳類ＵＤＰ−ＧａｌＮＡｃ：ポリペプチドＧａｌＮＡｃ−トランスフェラー
ゼ（配列番号１７）の残基３６２−４０４に比較した場合のＰｍＨＡＳの残基３
４２−３８３の配列図（配列番号１６）である。図２における共通配列は、配列
番号１８である。

【図３】ＰｍＨＡＳのＵＤＰ−糖類縁体を用いた光アフィニティー標識研究のオートラ
ジオグラム表示である。

【図４】ＰｍＨＡＳの種々のＴｎ突然変異体でのＰｍＨＡＳの減少されたか、または不
在の光アフィニティー標識を表すオートラジオグラムである。

【図５】組換え・イー・コリ（Ｅ．ｃｏｌｉ）でのＨＡ産生を表示する光マイクログラ
フを示す。

【図６】ＰｍＨＡＳの構築および発現ベクターへのそのサブクローニングを図で表す。

【図７】ＰｍＨＡＳ活性のｐＨ依存性を示す。

【図８】ＨＡＳ活性の金属依存性を示す。

【図９】ＵＤＰ−ＧｌｃＮＡｃ濃度でのＨＡＳ依存性を示す。

【図１０】ＵＤＰ−ＧｌｃＡ濃度でのＨＡＳ依存性を示す。

【図１１】Ｖ_MAXおよびＫ_mのハンス−ウルフプロット評価である。

【図１２】Ｔｎ突然変異体のサザンブロットマッピングである。

【図１３】Ｔｎ破壊部位の配列分析のためのキメラＤＮＡテンプレートを示す。

【図１４】Ａ型Ｐ．ムルトシダのＨＡ生合成遺伝子座の部分の図表表示である。

【図１５】Ａ型莢膜遺伝子プローブでの種々の莢膜型のＰ．ムルトシダのサザンブロット
分析である。

【図１６】種々のＡ型プライマーを用いたＡ型ＤＮＡおよび異種ＤＮＡのＰＣＲの電気泳
動図である。

【図１７】Ａ型（配列番号５）およびＦ型（配列番号４）ＫｆａＡ相同体およびイー・コ
リ（配列番号６）ＫｆａＡの部分的配列比較である。

【図１８】野生型ＨＡＳ遺伝子対ノックアウト変異体遺伝子の概略図である。

【図１９】サザンブロットおよびＰＣＲ分析による非莢膜性のノックアウト突然変異体の
分子生物学的確認である。

【図２０】Ａ型およびＦ型Ｐ．ムルトシダの配列比較である。図２０におけるＰｍＨＡＳ
配列は、配列番号７であり、図２０におけるＰｍＣＳ配列は、配列番号８であり
、そして図２０における共通配列は、配列番号９である。

【図２１】生来の、そして組換えＰｍＨＡＳタンパク質のウエスタンブロット分析である
。

───────────────────────────────────────────────────── フロントページの続き (51)Int.Cl.⁷ 識別記号ＦＩテーマコート゛(参考）Ｃ１２Ｎ 1/19 Ｃ１２Ｎ 1/19 ４Ｂ０６５ 1/21 1/21 ４Ｃ０７６ 5/10 9/00 ４Ｃ０８５ 9/00 Ｃ１２Ｐ 19/04 Ｃ 15/09 ＺＮＡＣ１２Ｑ 1/02 Ｃ１２Ｐ 19/04 1/68 ＡＣ１２Ｑ 1/02 Ｇ０１Ｎ 33/48 Ｍ 1/68 33/53 ＭＧ０１Ｎ 33/48 33/566 33/53 Ｃ１２Ｎ 5/00 Ａ 33/566 15/00 ＺＮＡＡ (81)指定国ＥＰ(ＡＴ，ＢＥ，ＣＨ，ＣＹ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＳ，ＦＩ，ＦＲ，ＧＢ，ＧＲ，ＩＥ，ＩＴ，ＬＵ，ＭＣ，ＮＬ，ＰＴ，ＳＥ)，ＯＡ(ＢＦ，ＢＪ，ＣＦ，ＣＧ，ＣＩ，ＣＭ，ＧＡ，ＧＮ，ＧＷ，ＭＬ，ＭＲ，ＮＥ，ＳＮ，ＴＤ，ＴＧ)，ＡＰ(ＧＨ，ＧＭ，ＫＥ，ＬＳ，ＭＷ，ＳＤ，ＳＬ，ＳＺ，ＵＧ，ＺＷ)，ＥＡ(ＡＭ，ＡＺ，ＢＹ，ＫＧ，ＫＺ，ＭＤ，ＲＵ，ＴＪ，ＴＭ)，ＡＥ，ＡＬ，ＡＭ，ＡＴ，ＡＵ，ＡＺ，ＢＡ，ＢＢ，ＢＧ，ＢＲ，ＢＹ，ＣＡ，ＣＨ，ＣＮ，ＣＵ，ＣＺ，ＤＥ，ＤＫ，ＥＥ，ＥＳ，ＦＩ，ＧＢ，ＧＤ，ＧＥ，ＧＨ，ＧＭ，ＨＲ，ＨＵ，ＩＤ，ＩＬ，ＩＮ，ＩＳ，ＪＰ，ＫＥ，ＫＧ，ＫＰ，ＫＲ，ＫＺ，ＬＣ，ＬＫ，ＬＲ，ＬＳ，ＬＴ，ＬＵ，ＬＶ，ＭＤ，ＭＧ，ＭＫ，ＭＮ，ＭＷ，ＭＸ，ＮＯ，ＮＺ，ＰＬ，ＰＴ，ＲＯ，ＲＵ，ＳＤ，ＳＥ，ＳＧ，ＳＩ，ＳＫ，ＳＬ，ＴＪ，ＴＭ，ＴＲ，ＴＴ，ＵＡ，ＵＧ，ＵＺ，ＶＮ，ＹＵ，ＺＡ，ＺＷＦターム(参考） 2G045 AA25 AA28 BB20 CB17 CB21 CB30 DA12 DA13 DA14 DA20 DA30 DA80 FA16 FA26 FA29 FB02 FB03 FB04 FB05 FB09 JA01 JA20 4B024 AA10 AA13 BA07 CA04 DA06 EA02 EA03 EA04 EA06 GA14 GA19 HA14 4B050 CC03 DD02 LL01 LL03 LL05 4B063 QA01 QA18 QA19 QQ06 QQ42 QQ53 QQ67 QR55 QR62 QR69 QR75 QR80 QS24 QS25 QS34 4B064 AF11 CA02 CA19 CC24 CE08 DA01 DA11 4B065 AA01Y AA26X AB01 AC14 BA03 CA22 CA27 CA44 CA45 4C076 CC07 EE37 4C085 AA35 BA18 CC07 DD21 EE01

Claims

【特許請求の範囲】

【請求項１】Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロン酸シンター
ゼをコードするコード領域を含む精製核酸セグメント。
【請求項２】配列番号１のＰ．ムルトシダヒアルロン酸シンターゼをコー
ドする、請求項１の精製核酸セグメント。
【請求項３】前記精製核酸セグメントが、配列番号２によるヌクレオチド
配列を含む、請求項１の精製核酸セグメント。
【請求項４】配列番号２のヌクレオチド配列にハイブリダイズすることが
できる、酵素的に活性なヒアルロン酸シンターゼをコードするコード領域を有す
る精製核酸セグメント。
【請求項５】配列番号２のヌクレオチド配列と比較したとき半保存的又は
保存的アミノ酸コドンの変化を有する、酵素的に活性なヒアルロン酸シンターゼ
をコードするコード領域を有する精製核酸セグメント。
【請求項６】プラスミド、コスミド、ファージ、又はウイルスベクターか
ら成る群から選択される組換えベクターで、Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性
なヒアルロナンシンターゼをコードするコード領域を有する精製核酸セグメント
をさらに含む組換えベクター。
【請求項７】精製核酸セグメントが配列番号１のＰ．ムルトシダヒアルロ
ナンシンターゼをコードする、請求項６の組換えベクター。
【請求項８】精製核酸セグメントが配列番号２によるヌクレオチド配列を
含む、請求項６の組換えベクター。
【請求項９】プラスミドが発現ベクターをさらに含む、請求項６の組換え
ベクター。
【請求項１０】発現ベクターが、酵素的に活性なＰ．ムルトシダヒアルロ
ナンシンターゼコード領域に操作的に連結されたプロモーターを含む、請求項９
の組換ベクター。
【請求項１１】Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロナンシンタ
ーゼをコードするコード領域を有する精製核酸セグメントを含む組換えベクター
で形質転換された原核細胞である、組換え宿主細胞。
【請求項１２】精製核酸セグメントが配列番号１のＰ．ムルトシダヒアル
ロナンシンターゼをコードする、請求項１１の組換え宿主細胞。
【請求項１３】精製核酸セグメントが配列番号２によるヌクレオチド配列
を含む、請求項１１の組換え宿主細胞。
【請求項１４】宿主細胞がヒアルロン酸を産生する、請求項１３の組換え
宿主細胞。
【請求項１５】酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼが、改変された構
造を有するヒアルロン酸ポリマーを産生することができる、請求項１１の組換え
宿主細胞。
【請求項１６】酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼが、改変されたサ
イズ分布を有するヒアルロン酸ポリマーを産生することができる、請求項１１の
組換え宿主細胞。
【請求項１７】Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロナンシンタ
ーゼをコードするコード領域を有する精製核酸セグメントを含む組換えベクター
でトランスフェクトされた真核細胞である、組換え宿主細胞。
【請求項１８】精製核酸セグメントが配列番号１のＰ．ムルトシダヒアル
ロナンシンターゼをコードする、請求項１７の組換え宿主細胞。
【請求項１９】精製核酸セグメントが配列番号２によるヌクレオチド配列
を含む、請求項１７の組換え宿主細胞。
【請求項２０】宿主細胞がヒアルロン酸を産生する、請求項１９の組換え
宿主細胞。
【請求項２１】酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼが、改変された構
造を有するヒアルロン酸ポリマーを産生することができる、請求項１７の組換え
宿主細胞。
【請求項２２】酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼが、改変されたサ
イズ分布を有するヒアルロン酸ポリマーを産生することができる、請求項１７の
組換え宿主細胞。
【請求項２３】組換えベクターがＰ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒ
アルロナンシンターゼをコードするコード領域を有する精製核酸セグメントを含
み、前記組換えベクターを導入するために電気穿孔される、組換え宿主細胞。
【請求項２４】精製核酸セグメントが配列番号１のＰ．ムルトシダヒアル
ロナンシンターゼをコードする、請求項２３の組換え宿主細胞。
【請求項２５】精製核酸セグメントが配列番号２によるヌクレオチド配列
を含む、請求項２３の組換え宿主細胞。
【請求項２６】宿主細胞がヒアルロン酸を産生する、請求項２５の組換え
宿主細胞。
【請求項２７】酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼが、改変された構
造を有するヒアルロン酸ポリマーを産生することができる、請求項２３の組換え
宿主細胞。
【請求項２８】酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼが、改変されたサ
イズ分布を有するヒアルロン酸ポリマーを産生することができる、請求項２３の
組換え宿主細胞。
【請求項２９】Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロナンシンタ
ーゼをコードするコード領域を有する精製核酸セグメントを含む組換えベクター
で形質導入される、組換え宿主細胞。
【請求項３０】精製核酸セグメントが配列番号１のＰ．ムルトシダヒアル
ロナンシンターゼをコードする、請求項２９の組換え宿主細胞。
【請求項３１】精製核酸セグメントが配列番号２によるヌクレオチド配列
を含む、請求項２９の組換え宿主細胞。
【請求項３２】宿主細胞がヒアルロン酸を産生する、請求項３１の組換え
宿主細胞。
【請求項３３】酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼが、改変された構
造を有するヒアルロン酸ポリマーを産生することができる、請求項２９の組換え
宿主細胞。
【請求項３４】酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼが、改変されたサ
イズ分布を有するヒアルロン酸ポリマーを産生することができる、請求項２９の
組換え宿主細胞。
【請求項３５】Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロナンシンタ
ーゼポリペプチドを含む精製組成物。
【請求項３６】配列番号１によるアミノ酸配列を有するポリペプチドを含
む精製組成物。
【請求項３７】ＤＮＡサンプルを入手するステップと；ＤＮＡサンプルを配列番号２による精製核酸セグメントに接触させるステップ
と；ＤＮＡサンプルと精製核酸セグメントをハイブリダイズし、それによってハイ
ブリダイズした複合体を形成するステップと；複合体を検出するステップと；を含む、ＤＮＡ種を検出するための方法。
【請求項３８】細菌細胞サンプルを入手するステップと；細菌細胞サンプルからの少なくとも１個の核酸を配列番号２による精製核酸セ
グメントに接触させるステップと；少なくとも１個の核酸と精製核酸セグメントをハイブリダイズし、それによっ
てハイブリダイズした複合体を形成するステップと；ハイブリダイズした複合体の存在がＰ．ムルトシダヒアルロナンシンターゼを
コードするｍＲＮＡを発現する細菌株の指標となる、ハイブリダイズした複合体
を検出するステップと；を含む、Ｐ．ムルトシダヒアルロナンシンターゼをコードするｍＲＮＡを発現する細菌細胞を検出するための方法。
【請求項３９】Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロナンシンタ
ーゼをコードするコード領域を有する精製核酸セグメントを、ＵＤＰ‐ＧｌｃＮ
Ａｃ及びＵＤＰ‐ＧｌｃＡを産生する酵素をコードする核酸セグメントを含む宿
主生物に導入するステップと；宿主生物を培地で増殖させ、ヒアルロン酸を分泌させるステップと；分泌されたヒアルロン酸を回収するステップと；を含む、ヒアルロン酸を生産するための方法。
【請求項４０】ヒアルロン酸を回収するステップが、分泌されたヒアルロ
ン酸を培地から抽出することを含む、請求項３９に記載の方法。
【請求項４１】抽出したヒアルロン酸を精製するステップをさらに含む、
請求項４０に記載の方法。
【請求項４２】宿主生物を増殖させるステップで、宿主生物が構造的に改
変されたヒアルロン酸を分泌する、請求項３９に記載の方法。
【請求項４３】宿主生物を増殖させるステップで、宿主生物が改変された
サイズ分布を有するヒアルロン酸を分泌する、請求項３９に記載の方法。
【請求項４４】あらかじめ選択された薬剤と、Ｐ．ムルトシダからのヒア
ルロナンシンターゼによって産生されるヒアルロン酸の有効量を含む、製薬組成
物。
【請求項４５】ヒアルロン酸が配列番号１のＰ．ムルトシダヒアルロナン
シンターゼによって産生される、請求項４４の製薬組成物。
【請求項４６】ヒアルロン酸の分子量が改変され、それによって免疫応答
を回避することができる改変された分子量の製薬組成物を生成する、請求項４４
に記載の製薬組成物。
【請求項４７】ヒアルロン酸の分子量が改変され、それによって改変され
た分子量の製薬組成物に親和性を有する患者の体内の特異的組織又は細胞型を標
的することができる改変された分子量の製薬組成物を生成する、請求項４４に記
載の製薬組成物。
【請求項４８】（ａ）配列番号２による核酸配列；（ｂ）配列番号２による核酸配列に相補的な核酸配列；（ｃ）配列番号２による核酸配列にハイブリダイズする核酸配列；及び（ｄ）配列番号２の相補的核酸配列にハイブリダイズする核酸配列；から成る群から選択される、酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼをコードす
る精製・分離された核酸配列。
【請求項４９】基本的にＰ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロナ
ンシンターゼをコードする核酸セグメントから成る精製・分離された核酸セグメ
ント。
【請求項５０】宿主細胞がヒアルロン酸を発現するように、請求項１、２
又は３に記載の分離核酸セグメントで形質転換された又はトランスフェクトされ
た原核又は真核宿主細胞。
【請求項５１】基本的に、Ｐ．ムルトシダをコードするという生物学的特
性を有するように、配列番号２による核酸セグメントを十分に複製する核酸セグ
メントを有するたＰ．ムルトシダからのヒアルロナンシンターゼをコードする核
酸セグメントから成る、分離核酸セグメント。
【請求項５２】請求項５１に記載のｃＤＮＡ配列。
【請求項５３】宿主細胞がヒアルロン酸を発現するように、請求項５１に
記載の核酸セグメントで形質転換された又はトランスフェクトされた原核又は真
核宿主細胞。
【請求項５４】配列番号２によるヌクレオチド配列にハイブリダイズする
ことができ、Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロナンシンターゼをコ
ードするコード領域を有する、精製核酸セグメント。
【請求項５５】（Ａ）配列番号１による核酸セグメント；（Ｂ）配列番号２によるヌクレオチド配列；（Ｃ）（Ａ）又は（Ｂ）で定義された核酸セグメント又はその断片にハイブリダ
イズする核酸セグメント；及び（Ｄ）遺伝コードの縮退がない限り、あるいは機能的に等しいアミノ酸をコード
していない限り、（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）で定義された核酸セグメントにハイ
ブリダイズする核酸セグメント；から成る群から選択される、Ｐ．ムルトシダからの酵素的に活性なヒアルロン酸シンターゼをコードするコード領域を有する精製核酸セグメント。
【請求項５６】 ‐非複製プラスミド上に破壊された莢膜遺伝子カセットを
作製するステップと； ‐染色体遺伝子を有するパスツレラ（Ｐａｓｔｕｒｅｌｌａ）菌株に破壊された
遺伝子カセットを導入するステップと； ‐パスツレラ菌株の染色体遺伝子を破壊された遺伝子カセットと組み換えて、そ
れによって突然変異パスツレラ菌株を創造するステップと； ‐突然変異パスツレラ菌株をスクリーニングするステップと； ‐ワクチンとしての使用に適した突然変異菌株を選択するステップと；を含む、Ｐ．ムルトシダについてのワクチンを製造するための方法。
【請求項５７】 ‐少なくとも１つの破壊された莢膜遺伝子を有するパスツ
レラ菌株； ‐破壊された莢膜遺伝子座を有するパスツレラ菌株； ‐破壊された多糖類生合成遺伝子を有するパスツレラ菌株； ‐破壊された多糖類シンターゼ遺伝子を有するパスツレラ菌株；及び ‐破壊されたＨＡシンターゼ遺伝子を有するパスツレラ菌株；から成る群から選択される、パスツレラ・ムルトシダ（パスツレラ・ムルトシダ
）についての生弱毒化ワクチン。
【請求項５８】 ‐動物から採取した細菌サンプルのＤＮＡ抽出物にハイブ
リダイズすることができる莢膜遺伝子プローブ又はプローブの混合物を供給する
ステップと； ‐莢膜遺伝子プローブと細菌サンプルをハイブリダイゼーション反応チェンバー
においてインキュベートするステップと； ‐細菌サンプル間の相補性を識別することができるハイブリダイゼーション検出
系を供給するステップと；を含む、家畜におけるパスツレラ・ムルトシダ感染を検出するための方法。
【請求項５９】 ‐動物由来のサンプルからの細菌サンプルのＤＮＡ抽出物
を増幅することができる莢膜遺伝子のＰＣＲプライマー対又はプライマー対の混
合物； ‐莢膜遺伝子ＰＣＲプライマーと細菌サンプルに関して熱サイクルＰＣＲを実施
し、それによってアンプリコンを提供するための手段； ‐アンプリコンを検出するための手段；及び ‐アンプリコンを莢膜特異的群に分けるための手段；を含む、家畜においてＰ．ムルトシダを検出するための診断試験。
【請求項６０】配列番号３のＰ．ムルトシダコンドロイチンシンターゼを
コードする、請求項１の精製核酸セグメント。
【請求項６１】ヒアルロン酸シンターゼをコードするコード領域を含む核
酸セグメント。
【請求項６２】酵素的に活性なヒアルロン酸シンターゼをコードするコー
ド領域を有する核酸セグメント。
【請求項６３】酵素的に活性なヒアルロン酸シンターゼをコードするコー
ド領域を有する精製核酸セグメント。
【請求項６４】ヒアルロナンシンターゼをコードするコード領域を有する
核酸セグメントをさらに含む組換えベクター。
【請求項６５】ヒアルロナンシンターゼをコードするコード領域を有する
核酸セグメントを含む組換えベクターで形質転換される組換え宿主細胞。
【請求項６６】ヒアルロナンシンターゼをコードするコード領域を有する
核酸セグメントを含む組換えベクターでトランスフェクトされる組換え宿主細胞
。
【請求項６７】組換えベクターがヒアルロナンシンターゼをコードするコ
ード領域を有する核酸セグメントを含み、前記組換えベクターを導入するために
電気穿孔される、組換え宿主細胞。
【請求項６８】ヒアルロナンシンターゼをコードするコード領域を有する
核酸セグメントを含む組換えベクターで形質導入される組換え宿主細胞。
【請求項６９】ヒアルロナンシンターゼポリペプチドを含む組成物。
【請求項７０】配列番号１によるアミノ酸配列を有するポリペプチドを含
む組成物。
【請求項７１】サンプルを核酸セグメントに接触させるステップと；ＤＮＡサンプルと核酸セグメントをハイブリダイズし、それによってハイブリ
ダイズした複合体を形成するステップと；を含む、ＤＮＡ種を検出するための方法。
【請求項７２】細菌細胞サンプルからの少なくとも１個の核酸を核酸セグ
メントに接触させるステップと；少なくとも１個の核酸と核酸セグメントをハイブリダイズし、それによってハ
イブリダイズした複合体を形成するステップと；を含む、ヒアルロナンシンターゼをコードするｍＲＮＡを発現する細菌細胞を検
出するための方法。
【請求項７３】ヒアルロナンシンターゼをコードするコード領域を有する
核酸セグメントを宿主生物に導入するステップと；宿主生物を培地で増殖させ、ヒアルロン酸を分泌させるステップと；を含む、ヒアルロン酸を生産するための方法。
【請求項７４】薬剤とヒアルロナンシンターゼによって産生されるヒアル
ロン酸の有効量を含む製薬組成物。
【請求項７５】（ａ）配列番号２による核酸配列；（ｂ）配列番号２による核酸配列に相補的な核酸配列；（ｃ）配列番号２による核酸にハイブリダイズする核酸配列；及び（ｄ）配列番号２の相補的核酸配列にハイブリダイズする核酸配列；から成る群から選択される、ヒアルロナンシンターゼをコードする核酸配列。
【請求項７６】ヒアルロナンシンターゼをコードする核酸セグメントを含
む核酸セグメント。
【請求項７７】宿主細胞がヒアルロン酸を発現するように、請求項１、２
又は３に記載の核酸セグメントで形質転換された又はトランスフェクトされた宿
主細胞。
【請求項７８】ヒアルロナンシンターゼをコードするという生物学的特性
を有するように、配列番号２による核酸セグメントを十分に複製する核酸セグメ
ントを有するたヒアルロナンシンターゼをコードする核酸セグメントを含む核酸
セグメント。
【請求項７９】宿主細胞がヒアルロン酸を発現するように、請求項７８に
記載の核酸セグメントで形質転換された又はトランスフェクトされた宿主細胞。
【請求項８０】配列番号２によるヌクレオチド配列にハイブリダイズする
ことができ、ヒアルロナンシンターゼをコードするコード領域を有する核酸セグ
メント。
【請求項８１】（Ａ）配列番号１による核酸セグメント；（Ｂ）配列番号２によるヌクレオチド配列；（Ｃ）（Ａ）又は（Ｂ）で定義された核酸セグメント又はその断片にハイブリダ
イズする核酸セグメント；及び（Ｄ）遺伝コードの縮退がない限り、あるいは機能的に等しいアミノ酸をコード
していない限り、（Ａ）、（Ｂ）及び（Ｃ）で定義された核酸セグメントにハイ
ブリダイズする核酸セグメント；から成る群から選択される、ヒアルロン酸シンターゼをコードするコード領域を
有する核酸セグメント。
【請求項８２】 ‐非複製プラスミド上に破壊された莢膜の遺伝子カセット
を作製するステップと； ‐染色体遺伝子を有する細菌株に破壊された遺伝子カセットを導入するステップ
と； ‐細菌株の染色体遺伝子を破壊された遺伝子カセットと組み換えて、それによっ
て突然変異細菌株を創造するステップと； ‐突然変異細菌株をスクリーニングするステップと； ‐ワクチンとしての使用に適した突然変異菌株を選択するステップと；を含む、ワクチンを製造するための方法。
【請求項８３】 ‐少なくとも１つの破壊された莢膜遺伝子を有する細菌株
； ‐破壊された莢膜遺伝子座を有する細菌株； ‐破壊された多糖類生合成遺伝子を有する細菌株； ‐破壊された多糖類シンターゼ遺伝子を有する細菌株；及び ‐破壊されたＨＡシンターゼ遺伝子を有する細菌株；から成る群から選択されるワクチン。
【請求項８４】 ‐動物から採取した細菌サンプルのＤＮＡ抽出物にハイブ
リダイズすることができる莢膜遺伝子プローブ又はプローブの混合物を供給する
ステップと； ‐莢膜遺伝子プローブと細菌サンプルをハイブリダイゼーション反応チェンバー
においてインキュベートするステップと； ‐細菌サンプル間の相補性を識別することができるハイブリダイゼーション検出
系を供給するステップと；を含む、細菌感染を検出するための方法。
【請求項８５】 ‐動物由来のサンプルからの細菌サンプルのＤＮＡ抽出物
を増幅することができる莢膜遺伝子のＰＣＲプライマー対又はプライマー対の混
合物； ‐莢膜遺伝子ＰＣＲプライマーと細菌サンプルに関して熱サイクルＰＣＲを実施
し、それによってアンプリコンを提供するための手段； ‐アンプリコンを検出するための手段；及び ‐アンプリコンを莢膜特異的群に分けるための手段；を含む、細菌を検出するための診断試験。