[go: up one dir, main page]

HU222984B1 - Eljárás molekulák in vitro bevezetésére élő sejtek citoszoljába, fotoszenzibilizáló vegyület alkalmazásával - Google Patents

Eljárás molekulák in vitro bevezetésére élő sejtek citoszoljába, fotoszenzibilizáló vegyület alkalmazásával Download PDF

Info

Publication number
HU222984B1
HU222984B1 HU9800153A HU9800153A HU222984B1 HU 222984 B1 HU222984 B1 HU 222984B1 HU 9800153 A HU9800153 A HU 9800153A HU 9800153 A HU9800153 A HU 9800153A HU 222984 B1 HU222984 B1 HU 222984B1
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
molecules
compound
cytosol
cells
photosensitizing
Prior art date
Application number
HU9800153A
Other languages
English (en)
Other versions
HUT77469A (hu
Inventor
Kristian Berg
Johan Moan
Kirsten Sandviq
Original Assignee
Photocure As
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Photocure As filed Critical Photocure As
Publication of HUT77469A publication Critical patent/HUT77469A/hu
Publication of HU222984B1 publication Critical patent/HU222984B1/hu

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K47/00Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/50Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient the non-active ingredient being chemically bound to the active ingredient, e.g. polymer-drug conjugates
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K41/00Medicinal preparations obtained by treating materials with wave energy or particle radiation ; Therapies using these preparations
    • A61K41/0057Photodynamic therapy with a photosensitizer, i.e. agent able to produce reactive oxygen species upon exposure to light or radiation, e.g. UV or visible light; photocleavage of nucleic acids with an agent
    • A61K41/0071PDT with porphyrins having exactly 20 ring atoms, i.e. based on the non-expanded tetrapyrrolic ring system, e.g. bacteriochlorin, chlorin-e6, or phthalocyanines
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Immobilizing And Processing Of Enzymes And Microorganisms (AREA)
  • Catalysts (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)

Abstract

A találmány egyik tárgya eljárás molekulák in vitro bevezetésére élősejtek citoszoljába fotoszenzibilizáló vegyületek és afotoszenzibilizáló vegyületek által abszorbeált fény alkalmazásával,amelynek az a lényege, hogy a) az élő sejtekhez hozzáadják afotoszenzibilizáló vegyületet és a bejuttatandó molekulá(ka)t, amelyekadott esetben rögzítve lehetnek azonos vagy eltérőhordozómolekulákhoz; b) ezután ezeket endolitikusan vagy más módonátjuttatják az endoszómákba, lizoszómákba vagy más, intracellulárismembránnal határolt sejtrészlegekbe; majd c) a sejteket afotoszenzibilizáló vegyület abszorpciós spektrumának megfelelőhullámhosszúságú fénynek teszik ki változó dózisokban, a kívánttúlélési aránytól függően, így az endoszomális, lizoszomális vagy más,intracelluláris sejtalkotó membránokat szétzúzzák, és a citoszolbabejuttatandó molekulákat a citoszolban kibocsátják, amelynek során afénnyel aktivált fotoszenzibilizáló vegyület maga nem pusztítja el asejtek többségét. Az eljárás során a fotoaktivált fotoszenzibilizálóvegyület nem pusztítja el a sejteket. A találmány tárgya továbbá egykészítmény is, amely neoplasztikus vagy más celluláris folyamatok invitro módosítására szolgál meleg vérű állatokban vagysejttenyészetekben, valamint egy olyan készlet is, amely a találmányszerinti eljárás végrehajtásához van előirányozva. Ugyancsak tárgya atalálmánynak fotoszenzibilizáló vegyület alkalmazása is, molekulák élősejtek citoszoljába in vitro bevezetésére szolgáló készítményalkalmazása is, amely az alábbi lépésekből áll: az élő sejtekhezhozzáadják a fotoszenzibilizáló vegyületet és a bejuttatandómolekulá(ka)t, amelyek adott esetben rögzítve lehetnek azonos vagyeltérő hordozómolekulákhoz; ezután ezeket endolitikusan vagy más módonátjuttatják az endoszómákba, lizoszómákba vagy más, intracellulárismembránnal határolt sejtrészlegekbe; majd a sejteket afotoszenzibilizáló vegyület abszorpciós spektrumának megfelelőhullámhosszúságú fénynek teszik ki változó dózisokban a kívánttúlélési aránytól függően, így az endoszomális, li- zoszomális vagymás intracelluláris sejtalkotó membránokat szétzúzzák, és a citoszolbabejuttatandó molekulákat a citoszolban kibocsátják, amelynek során afénnyel aktivált fotoszenzibilizáló vegyület maga nem pusztítja el asejtek többségét. ŕ

Description

KIVONAT
A találmány egyik tárgya eljárás molekulák in vitro bevezetésére élő sejtek citoszoljába fotoszenzibilizáló vegyületek és a fotoszenzibilizáló vegyületek által abszorbeált fény alkalmazásával, amelynek az a lényege, hogy
a) az élő sejtekhez hozzáadják a fotoszenzibilizáló vegyületet és a bejuttatandó molekulá(ka)t, amelyek adott esetben rögzítve lehetnek azonos vagy eltérő hordozómolekulákhoz;
b) ezután ezeket endolitikusan vagy más módon átjuttatják az endoszómákba, lizoszómákba vagy más, intracelluláris membránnal határolt sejtrészlegekbe; majd
c) a sejteket a fotoszenzibilizáló vegyület abszorpciós spektrumának megfelelő hullámhosszúságú fénynek teszik ki változó dózisokban, a kívánt túlélési aránytól függően, így az endoszomális, lizoszomális vagy más, intracelluláris sejtalkotó membránokat szétzúzzák, és a citoszolba bejuttatandó molekulákat a citoszolban kibocsátják, amelynek során a fénnyel aktivált fotoszenzibilizáló vegyület maga nem pusztítja el a sejtek többségét.
Az eljárás során a fotoaktivált fotoszenzibilizáló vegyület nem pusztítja el a sejteket.
A találmány tárgya továbbá egy készítmény is, amely neoplasztikus vagy más celluláris folyamatok in vitro módosítására szolgál meleg vérű állatokban vagy sejttenyészetekben, valamint egy olyan készlet is, amely a találmány szerinti eljárás végrehajtásához van előirányozva. Ugyancsak tárgya a találmánynak fotoszenzibilizáló vegyület alkalmazása is, molekulák élő sejtek citoszoljába in vitro bevezetésére szolgáló készítmény alkalmazása is, amely az alábbi lépésekből áll: az élő sejtekhez hozzáadják a fotoszenzibilizáló vegyületet és a bejuttatandó molekulá(ka)t, amelyek adott esetben rögzítve lehetnek azonos vagy eltérő hordozómolekulákhoz; ezután ezeket endolitikusan vagy más módon átjuttatják az endoszómákba, lizoszómákba vagy más, intracelluláris membránnal határolt sejtrészlegekbe; majd a sejteket a fotoszenzibilizáló vegyület abszorpciós spektrumának megfelelő hullámhosszúságú fénynek teszik ki változó dózisokban a kívánt túlélési aránytól függően, így az endoszomális, lizoszomális vagy más intracelluláris sejtalkotó membránokat szétzúzzák, és a citoszolba bejuttatandó molekulákat a citoszolban kibocsátják, amelynek során a fénnyel aktivált fotoszenzibilizáló vegyület maga nem pusztítja el a sejtek többségét.
A leírás terjedelme 24 oldal (ezen belül 13 lap ábra)
HU 222 984 B1
HU 222 984 Bl
A találmány tárgya eljárás molekulák élő sejtek citoszoljába történő in vitro bevezetésére fotoszenzibilizáló vegyületek és ez utóbbiak által abszorbeált fény alkalmazásával. A találmány fotoszenzibilizáló vegyület olyan készítmény előállításához való alkalmazására is vonatkozik, amely molekulák élő sejtek citoszoljába történő in vitro bevezetésére szolgál. A találmány tárgya továbbá készítmény neoplasztikus vagy más celluláris folyamatok in vitro módosítására meleg vérű állatokban vagy sejttenyészetekben. Ugyancsak tárgya a találmánynak egy, az eljárás foganatosítására szolgáló készlet is.
A molekulák legnagyobb része nem képes könnyen áthatolni a sejtmembránokon. A molekuláknak az élő sejtek citoszoljába történő bevezetésére szolgáló eljárások jól alkalmazhatók a biológiai folyamatok befolyásolására és tanulmányozására. A napjainkban leggyakrabban alkalmazott módszerek közé tartoznak - egyebek mellett - például a következők: mikroinjektálás; vörösvérsejt-kísértettel (red blood cell ghost; a hemoglobinját elvesztett vörösvérsejttel) médiáit fúzió és liposzómafuzió; pinoszómák ozmitikus lízise; töredékfeltöltés; elektroporáció; valamint kalcium-foszfát- és vírusmediált transzfektálás. Ezek az eljárások ugyan alkalmasak a tenyészetben lévő sejtek vizsgálatára, ugyanakkor azonban gyakran nehezen kivitelezhetők, időigényesek, nem elég hatékonyak, vagy jelentős sejtpusztulást idéznek elő. így az olyan, biológiai és orvosi kutatásokban, illetve terápiás folyamatokban történő felhasználás szempontjából, amelyekben a sejtek megtartják funkcionális jellegüket, a jelenleg használatos módszerek nem tekinthetők optimális megoldásoknak.
Jól ismert, hogy a porfirinek és más fotoszenzibilizáló (fényérzékenyítő) vegyületek citotoxikus hatást váltanak ki a sejteken és szöveteken. Ezek az effektusok azon a tényen alapulnak, hogy a fotoszenzibilizáló vegyületek megvilágítás hatására a sejtek és a sejtstruktúrák membránjait szétbomlasztó szinglett (nascens) oxigént tesznek szabaddá; ha a roncsolás kiterjedt, ez akár a sejt elhalását is eredményezheti. Ezeket a hatásokat már jelenleg is felhasználják a neoplasztikus betegségek számos típusának a kezelésére. Az ilyen jellegű kezelést fotodinamikus terápiának (photodynamic therapy, PDT) nevezik, amelynek során egy fotoszenzibilizáló és tumorlokalizáló festék injektálása után a tumorrégiót fénnyel megvilágítják. A citotoxikus hatást főleg a szinglett oxigén képződése váltja ki. A szinglett oxigén reaktív intermediernek rendkívül rövid (<0,04 ps) az élettartama a sejtekben. így a fotodinamikus terápia a megvilágítás ideje alatt és csak a szinglett oxigén képződési helyeinek közvetlen közelében fejti ki primer citotoxikus hatását. A szinglett oxigén a proteinekkel (hisztidinnel, triptofánnal, metioninnal, ciszteinnel, tirozinnal), a DNS-sel (guaninnal), a telítetlen zsírsavakkal és a koleszterinnel reakcióba lép, amelynek során az említett anyagok oxidálódnak. A fotodinamikus terápia egyik előnye az, hogy a meg nem világított szövetek nem károsodnak. Számos szabadalmi dokumentum foglalkozik a fotodinamikus terápiának a nemkívánatos sejtpopulációk, például a neoplasztikus sejtek elroncsolására irányuló felhasználásával. Igen sok szabadalmi dokumentum tárgyát képezik fotodinamikus vegyületek. Ezek egy része önmagukban az ilyen jellegű vegyületekre vonatkozik, mások pedig a fotodinamikus vegyületeknek az olyan immunglobulinokkal alkotott konjugátumaival foglalkoznak, amely immunglobulinok a neoplasztikus sejtreceptor-determinánsokat megcélozva fokozzák a komplexek sejtspecifitását. Bizonyos fotokémiai vegyületek, például a hematoporfinszármazékok különleges hajlamot mutatnak a rosszindulatú sejtekben történő koncentrálódásra. A nemkívánatos sejtek elpusztítására szolgáló eljárásokat és vegyületeket ismertetnek - egyebek mellett - például a következő szabadalmi dokumentumokban: 173 319 számú norvégiai szabadalmi leírás, 90 0731, 90 2634, 90 1018, 94 1548, 85 1897, 93 4837, 92 4151 és 89 1491 számú norvégiai szabadalmi bejelentés. Ezek a szabadalmak/szabadalmi bejelentések a jelen bejelentés elsőbbségi napja, vagyis 1994. 08. 08. előtt már nyilvánosságra kerültek.
A PCT/US93/00683 számú nemzetközi bejelentésben, amelynek közzététele a jelen találmányi bejelentés elsőbbségi napja előtt megtörtént, egy olyan hatóanyagbejuttató rendszert ismertetnek, amely kopolimer hordozókhoz kapcsolva egy rákellenes hatóanyagot és egy fotoaktiválható hatóanyagot tartalmaz. A beadás során a komplex pinocitózis vagy fagocitózis útján belép a sejt belső terébe, majd az endoszómák, valamint a lizoszómák belsejében lokalizálódik. A lizoszómákban az antineoplasztikus vegyület és a polimer közötti kötés elhidrolizál, aminek eredményeként az antineoplasztikus vegyület passzív diffúzióval képes a lizoszómamembránon áthatolva bejutni a citoszolba. Ily módon ennek az eljárásnak a felhasználhatósága erősen korlátozott, mivel csak olyan kis méretű molekulával rendelkező vegyületek bejuttatására alkalmazható, amelyek képesek a lizoszómamembránokon átdiffundálni. Miután elegendő időt hagytak a diffúzióhoz, bekapcsolnak egy, a fotoaktiválható vegyület aktiválásához megfelelő hullámhosszúságú és energiájú fényforrást. A rákellenes hatóanyag és a fotoaktiválható hatóanyag kombinált hatása elroncsolja a sejtet. A fotoaktiválható vegyületek valamennyi ismert felhasználása a sejtstruktúrának a sejt elhalásához vezető kiterjedt elroncsolására irányul. Ez idáig nem ismert olyan eljárás, amely arra irányulna, hogy az endoszóma/lizoszóma membránok lokalizált széttöredezése után a membránon áthatolni nem képes molekulákat lehessen bejuttatni a citoszolba.
A GB 2 209 468 A lajstromszámú brit szabadalmi leírásból fényérzékenyítő szereket tartalmazó liposzómák ismerhetők meg, amelyeket ha fényhatásnak tesznek ki, destabilizálják a lipid-kettősréteget, és ezáltal stimulálják a liposzómák fúzióját és/vagy a liposzómák membránkötött alkotórészeinek a cseréjét. Ebben az esetben tehát liposzómákat alkalmaznak molekulák sejtekbe intemalizálásához.
A jelen találmány tárgya eljárás molekuláknak tenyészetben vagy szövetekben lévő élő sejtek citoszoljába történő bejuttatására, amelynek során a sejteket egy fotoaktiválható vegyülettel és a citoszolba bejuttatandó egy- vagy többfajta molekulával kezeljük, ahol a fotoaktiválható vegyület és az egy- vagy többfajta moleku2
HU 222 984 Bl la felvételét különféle hordozókkal segíthetjük elő, majd a sejteket alkalmas hullámhosszúságú és energiájú fénnyel megvilágítva az endoszóma-, valamint lizoszómamembránokat elroncsoljuk, és az egy- vagy többfajta molekulát bejuttatjuk a citoszolba anélkül, hogy a sejtek legnagyobb része elvesztené működőképességét. A fotoszenzibilizátor és a citoszolba bejuttatandó egyvagy többfajta molekula tetszés szerint kapcsolható alkalmas hordozókhoz, melyek lehetnek ugyanazok vagy különbözőek, megkönnyítve az adott molekulák felvételét, melynek során a hordozók a bevitelhez mind a fotoszenzibilizátorhoz, mind a molekulához, vagy csak a fotoszenzibilizátorhoz, vagy csak a molekulához kapcsolódnak.
A kitűzött célt a találmány értelmében olyan, molekulák élő sejtek citoszoljába in vitro bevezetésére szolgáló eljárással oldottuk meg fotoszenzibilizáló vegyületek és a fotoszenzibilizáló vegyületek által abszorbeált fény alkalmazásával, amely eljárásnak az a lényege, hogy
a) az élő sejtekhez hozzáadjuk a fotoszenzibilizáló vegyületet és a bejuttatandó molekulá(ka)t, amely(ek) adott esetben rögzítve lehet(nek) azonos vagy eltérő hordozómolekulákhoz;
b) ezután ezeket endolitikusan vagy más módon átjuttatjuk az endoszómákba, lizoszómákba vagy más, intracelluláris membránnal határolt sejtrészlegekbe; majd
c) a sejteket a fotoszenzibilizáló vegyület abszorpciós spektrumának megfelelő hullámhosszúságú fénynek tesszük ki változó dózisokban a kívánt túlélési aránytól függően, így az endoszomális, lizoszomális vagy más intracelluláris sejtalkotó membránokat szétzúzzuk, és a citoszolba bejuttatandó molekulákat a citoszolban kibocsátjuk, amelynek során a fénnyel aktivált fotoszenzibilizáló vegyület maga nem pusztítja el a sejtek többségét.
Az eljárás egy előnyös foganatosítási módja szerint az említett hordozómolekulákat rögzítjük mind a citoszolban kibocsátandó vegyülethez, mind a fotoszenzibilizáló vegyülethez; vagy legalább egy hordozót rögzítünk a citoszolban kibocsátandó vegyülethez, és egy másik, hasonló vagy eltérő hordozót rögzítünk a fotoszenzibilizáló vegyülethez. Az is előnyös lehet, ha a citoszolban az alábbi molekulák valamelyikét bocsátjuk ki: DNS, oligo(dezoxi)nukleotidok, mRNS, antiszensz DNS, cukrok, fehéqék, peptidek, membránon át nem hatoló gyógyszerek, egyéb, membránon át nem hatoló vegyületek, valamint az említett molekulák kovalensen vagy nem kovalensen kötött kombinációi; célszerűen a citoszolba fehérjéket vagy peptideket bocsátunk ki. Az is célszerű lehet, ha a citoszolban fehéqe-szintetikusaktivitást módosító anyagokat bocsátunk ki.
Az eljárás egy másik foganatosítási módjára az jellemző, hogy a citoszolban gelomint, szeporint vagy agrosztint vagy ezek valamely kombinációját bocsátjuk ki. Egy további eljárási ismérvnek megfelelően fotoszenzibilizáló vegyületként a következő vegyületek valamelyikét adjuk az élő sejtekhez: porfirinok, ftalocianinok, purpurinok, klozinok, benzoporfirinok, naftalocianinok, kationos festékek, tetraciklinek és lizoszomatrop gyenge bázisok, valamint származékaik; ebben az esetben előnyös, ha fotoszenzibilizáló vegyületként a szomszédos fenilcsoportokon két szulfonátcsoporttal rendelkező tetrafenil-porfirint, azaz TPPS2a-t, vagy négy szulfonátcsoporttal rendelkező znezo-tetrafenil-porfint, vagyis TPPS4-et, vagy a szomszédos fenilcsoportokon két szulfonátcsoporttal rendelkező alumínium-ftalocianint, vagyis AlPcS2a-t, vagy mindezek bármely kombinációját adjuk az élő sejtekhez. Előnyös lehet továbbá, ha hordozómolekulákként helyre irányuló molekulákat rögzítünk, amelyek megkönnyítik a fotoszenzibilizáló vegyület vagy a citoszolban kibocsátandó molekulák felvételét; valamint ha a túlélő sejtek hányadosát a fény mennyiségének a fotoszenzibilizáló vegyület koncentrációjának figyelembevételével történő megválasztásával szabályozzuk.
A találmány tárgyát képezi egy készítmény (kompozíció) is neoplasztikus vagy más celluláris folyamatok in vitro módosítására meleg vérű állatokban vagy sejttenyészetekben, amelynek az a lényege, hogy tartalmaz egy, a citoszolban kibocsátandó, membránon át nem hatoló vegyületet, és egy fotoszenzibilizáló vegyületet, amely fénnyel történő aktiválás hatására szétzúzza az intracelluláris sejtmembránokat; a nevezett komponensek adott esetben hozzákapcsolhatók azonos vagy különböző hordozómolekulákhoz annak érdekében, hogy megkönnyítsék az átjutást az intracelluláris sejtrészlegekbe, például endoszómákba, lizoszómákba, vagy más intracelluláris részlegekbe. E készítmény egy kiviteli alakjára az jellemző, hogy az említett hordozómolekulák rögzítve vannak mind a citoszolban kibocsátandó, celluláris folyamatokat módosító vegyülethez, mind a fotoszenzibilizáló vegyülethez; vagy legalább egy hordozó van rögzítve a citoszolban kibocsátandó vegyülethez, és egy másik, hasonló vagy eltérő hordozó van rögzítve a fotoszenzibilizáló vegyülethez. Célszerű lehet, ha az említett, a citoszolban kibocsátandó vegyület egy antineoplasztikus vegyület; előnyösen az antineoplasztikus vegyület gelonin.
Egy másik készítményismérvnek megfelelően a citoszolban kibocsátandó vegyület DNS, oligo(dezoxi)nukleotidok, mRNS, antiszensz DNS, cukrok, fehéqék, peptidek, membránon át nem hatoló gyógyszerek, más, membránon át nem hatoló molekulák valamelyike, vagy az említett molekulák valamely kovalensen vagy nem kovalensen összekapcsolt kombinációja. Előnyös lehet, ha a fotoszenzibilizáló vegyületek porfirinok, ftalocianinok, purpurinok, klorinok, benzoporfirinok, naftalocianinok, kationos festékek, tetraciklinek és lizoszomotrop gyenge bázisok, vagy mindezek származékai; ebben az esetben a fotoszenzibilizáló vegyületet tetrafenil-porfinként szulfonátcsoporttal szomszédos fenilcsoportok képezhetik.
Egy másik készítményismérvnek megfelelően a hordozómolekula helyre irányuló molekula, amely megkönnyíti a fotoszenzibilizáló vegyület vagy a citoszolban kibocsátandó molekulák felvételét.
A készítmény egyik további ismérve, hogy rákterápiában alkalmazható.
A készítmény egy további kiviteli alakjára az jellemző, hogy az említett, a citoszolban kibocsátandó vegyület DNS, oligo(dezoxi)nukleotid, mRNS vagy antiszensz
HU 222 984 Bl
DNS, vagy az említett molekulák kovalensen vagy nem kovalensen kötött kombinációi, génterápiákon való alkalmazáshoz.
Az eljárás foganatosítására szolgáló készletre az jellemző, hogy tartalmazza a fotoszenzibilizáló vegyületeket, a szállítandó molekulákat, és kívánt esetben tartalmaz olyan hordozóvegyületeket, amelyek megkönnyítik ezeknek a molekuláknak a szállítását.
Az ugyancsak a találmány tárgyát képező, molekulák élő sejtek citoszoljába in vitro bevezetésére szolgáló készítmény gyártásához fotoszintetizáló vegyület alkalmazásának az a lényege, hogy a nevezett alkalmazás az alábbi lépésekből áll:
a) az élő sejtekhez hozzáadjuk a fotoszenzibilizáló vegyületet és a bejuttatandó molekulá(ka)t, amelyek adott esetben rögzítve lehetnek azonos vagy eltérő hordozómolekulákhoz;
b) ezután ezeket endolitikusan vagy más módon átjuttatjuk az endoszómákba, lizoszómákba vagy más, intracelluláris membránnal határolt sejtrészlegekbe; majd
c) a sejteket a fotoszenzibilizáló vegyület abszorpciós spektrumának megfelelő hullámhosszúságú fénynek tesszük ki változó dózisokban a kívánt túlélési aránytól függően, így az endoszomális, lizoszomális vagy más intracelluláris sejtalkotó membránokat szétzúzzuk, és a citoszolba bejuttatandó molekulákat a citoszolban kibocsátjuk, amelynek során a fénnyel aktivált fotoszenzibilizáló vegyület maga nem pusztítja el a sejtek többségét.
Célszerű, ha az említett hordozómolekulák, szállítandó molekulák és fotoszenzibilizáló molekulák a 2-9. igénypontok bármelyikében meghatározottak; valamint ha a túlélő sejtek hányadosát a fény mennyiségének a fotoszenzibilizáló vegyület koncentrációjának figyelembevételével történő megválasztásával szabályozzuk. Az alkalmazási találmányunk például génterápiához vagy rák kezelésére alkalmazható.
A találmány szerinti eljárás előnyösen alkalmazható rákkal kapcsolatos állatok kezelésére szolgáló gyógyszer előállításához.
A találmány szerinti eljárással tehát bármely molekula bejuttatható élő sejt citoszoljába, és ezt követően a molekulák hozzáférhetők a citoszolban, és a sejtek megtartják működőképességüket. Ezt úgy érjük el, hogy a sejteket egy célkiválasztó immunglobulinokkal és a citoszolba bejuttatandó molekulákkal összekapcsolt vagy azoktól elkülönített fotoaktiválható vegyülettel és hordozómolekulákkal kezeljük, a sejtek felveszik a fotoaktiválható vegyületet, amely az endoszómákban, liposzómákban vagy más sejtalkotókban lokalizálódik, majd a sejteket a fotoszenzibilizáló vegyület aktiválására alkalmas hullámhosszúságú fénnyel világítjuk meg, amelynek eredményeként csak az endoszóma, lizoszóma és egyéb sejtalkotó membránok roncsolódnak, és a molekulák bejutnak a citoszolba anélkül, hogy a fotoaktiválható vegyület hatására és az endoszóma/lizoszóma tartalom lehetséges hatására a sejtek elveszítenék működőképességüket.
Bizonyított tény, hogy számos hatóanyag, egyebek mellett például a di- és tetraszulfonált alumínium-ftalocianin, a szulfonált tetrafenil-porfmok (TPPSn), a níluskék, a chlorin-e6 származékok, az uroporfirin I, a filloeritrin, valamint a hematoporfirin és a metilénkék a tenyészetben lévő sejtek endoszómáiban és lizoszómáiban lokalizálódik. A legtöbb esetben ez az endocitikus aktivitás következménye. Megfigyeltük, hogy a sejtek lizoszómáiban fotoszenzibilizátorokat tartalmazó sejtek megvilágítása a lizoszómákat permeábilissé teszi, és így a fotoszenzibilizátorok szabaddá válnak. Bizonyos esetekben, például a TPPS2a és a TPPS! esetében a fotodinamikus terápia után jelentős enzimaktivitást figyeltünk meg a citoszolban, ami azt jelzi, hogy a lizoszóma tartalma szabaddá válva bejut a citoszolba, mégpedig anélkül, hogy a lizoszóma tartalma elveszítené aktivitását. A fotoszenzibilizáló festékeknek ez a hatása - a találmány szerinti megoldás értelmében - felhasználható az endocitizált molekuláknak az endoszómákból és lizoszómákból történő kiszabadítására.
A molekuláknak a sejtcitoplazmába történő bevezetését úgy valósíthatjuk meg, hogy először a sejteket egy olyan fotoszenzibilizáló festékkel és a sejtek citoszoljába bejuttatandó egy vagy több olyan molekulával, valamint adott esetben olyan hordozómolekulákkal és olyan immunglobulinokkal kezeljük, amelyek mindegyike elsősorban az endoszómákban és/vagy a lizoszómákban lokalizálódik. Másodszor a sejteket vagy szöveteket egy fotodinamikus reakció redukálására alkalmas hullámhosszúságú és energiájú fénnyel megvilágítjuk. Ez a fotodinamikus reakció a lizoszóma- és/vagy endoszómamembránok roncsolódását eredményezi, és így a vesiculák tartalma szabaddá válva bejut a citoszolba.
A találmány szerinti megoldás lényegét az 1. ábra mutatja be. Elengedhetetlen feltétel, hogy a fotoszenzibilizátor és a sejtekbe bevezetendő molekula ugyanabban a sejtalkotóban helyezkedjen el. Hangsúlyozni kell azt is, hogy a külsőleg hozzáadott molekulák a lizoszómáktól és az endoszómáktól eltérő intracelluláris sejtalkotókban, például a Golgi-apparátusban és az endoplazmatikus reticulumban akkumulálódhatnak. Ilyen esetekben az ugyanazon sejtalkotókban lokalizálódó fotoszenzibilizáló molekulák fénnyel kombinálva felhasználhatók ugyanazokra a célokra, mint amelyeket a fentiekben említettünk, biztosítva azt, hogy a fénymennyiség és a fotoszenzibilizáló vegyület kombinációja nem károsítja a sejtek működőképességét.
A jelen találmány azon az in vitro bizonyításunkon alapul, amelynek értelmében egy fotoszenzibilizátor, például a TPPS2a (a TPPS2a egy olyan tetrafenil-porfm, amely a szomszédos fenilcsoportokon két szulfonátcsoportot tartalmaz) fénnyel kombinálva a sejtek nagyobb részének elpusztítása nélkül képes kiváltani a funkcionálisan intakt lizoszómatartalom szabaddá válását. Ugyanilyen hatás érhető el akkor is, ha más fotoszenzibilizáló vegyületeket alkalmazunk önmagukban, vagy pedig más olyan molekulákkal vagy részecskékkel társítva/kapcsolva, amelyeket a fotoszenzibilizátoroknak az endoszómákhoz/lizoszómákhoz vagy más intracelluláris sejtalkotókhoz történő irányításához vektorokként
HU 222 984 Bl használunk. Az ilyen vektorok szövet- vagy sejtspecifikus antitestek vagy más olyan ligandok lehetnek, amelyek a sejtfelülethez kötődnek, és így fokozzák a fotoszenzibilizátomak a receptormediált endocitózis útján történő felvételét. Egy másik vektor például a helyreállított LDL-részecskék alkalmazása lehet. A receptormediált endocitózis ezeket a részecskéket is felveszi. A natív LDL-hez történő előzetes kötéshez képest ily módon növelhető az egy LDL-részecskére eső fotoszenzibilizátor molekulák és az LDL-részecskékhez kapcsolódó kötések száma.
A találmány szerinti megoldás nemcsak in vitro alkalmazható, hanem in situ kezeléssel vagy ex vivő kezelés, majd a kezelt sejtek injektálása útján in vivő is felhasználható. Az endoszómákba és lizoszómákba történő felvétel ugyanúgy fokozható, mint ahogyan azt az in vitro kezeléssel kapcsolatban ismertettük. Valamennyi szövet mindaddig kezelhető, amíg a célsejtek felveszik a fotoszenzibilizátort, és a fény megfelelően bejuttatható a fotoszenzibilizátorhoz.
A jelen találmány alapját egy fotoszenzibilizátor és a fény együttesen alkotja. A fotoszenzibilizátomak abszorbeálnia kell a fényt, illetve a fénynek ki kell váltania a fotoszenzibilizátomak egy geijesztett állapotát. Az alkalmazott hullámhossztartomány értéke az adott fotoszenzibilizátortól függ. A megvilágításnak nem kell szükségszerűen monkromatikusnak vagy párhuzamosítottnak (kollimáltnak) lennie. Minden, megfelelő hullámhosszokon emittáló fényforrás felhasználható.
Úgy tűnik, hogy a találmány szerinti fotodinamikus hatás - meglepő módon - semlegesíti a szabaddá váló lizoszómatartalom potenciális citotoxikus hatását. Bebizonyítottuk, hogy az NHIK 3025 sejtek tenyészetében a TPPS2a fotodinamikus hatása alapvetően gátolja a lizoszomális katepszint. Ez a találmány szerinti megoldásnak egy rendkívül váratlan hatása, amely - a molekuláknak az endoszomális/lizoszomális membránok széttörése útján a citoszolba történő bejuttatása után hozzájárul a sejtek életképességének és működőképességének fenntartásához.
Kísérleti példák és klinikai felhasználás
1. Rákkezelés
Számos fotoszenzibilizátor elsődlegesen a neoplasztikus szövetekben akkumulálódik. A tumorokban történő felhalmozódásnak a környező szövetekhez viszonyított szelektivitása két-háromszoros, de ez a szorzó bizonyos esetekben, például az agyszövetekben nagyobb, például harmincszoros is lehet. A találmány szerinti megoldás alkalmazásával bejuttathatok a citoszolba az olyan, a rák kezelésének szempontjából klinikai jelentőségű molekulák is, amelyeket egyébként a citoszol csak igen gyengén vagy egyáltalán nem vesz fel. Az ilyen típusú molekulák egyik példája az alábbiakban részletezett gelonin. Ugyanakkor azonban számos más molekula is felhasználható, akár önmagában, akár pedig más molekulákhoz (például antitestekhez, transzferrinhez, fotoszenzibilizátorhoz, helyreállított LDL-részecskéken lévő apoB-hez) kapcsolva. Az ilyen kombinációs kezelés előnye az, hogy 1. a tumorszövetek mélyebb rétegeiben fokozott citotoxikus hatás lép fel, mivel a lizoszómák és endoszómák széttöredezéséhez a fény kisebb és szubtoxikus dózisai is elegendőek; 2. nagyobb a toxin specifitása, mivel a fotodinamikus terápia csak a tumor helyének területét érinti.
2. Génterápia
A génterápia, azaz géneknek a beteg sejtekbe történő terápiás célú bevitele, ígéretes módszer számos genetikai rendellenesség, például rák, cisztikus fibrosis, cardiovascularis betegségek és nagyszámú egyéb betegség kezelésére. Jelenleg a legnagyobb probléma a transzfekció, amelynek in vivő kell megtörténnie, illetve bizonyos esetekben végrehajtható ex vivő is. Napjainkban a leggyakrabban alkalmazott vektorok, azaz a DNS-molekulálmak a sejtekbe történő bejutását elősegítő struktúrák, különböző típusú vírusok, különösen retro- és adenovírusok. Ezeknek a módszereknek a hátrányai közé tartozik például a vektor gyenge stabilitása, a korlátozott specifitás, a gyenge eredményesség, valamint az, hogy vírus-DNS-t kell humán sejtekbe bejuttatni.
Az endoszómák és/vagy litoszómák fotokémiai úton indukált széttöredezésének segítségével a DNS, akár antiszensz DNS-ként, akár teljes génekként, bevezethető a sejtekbe. A kezelés in vivő végrehajtható.
3. Kísérleti felhasználás
A találmány szerinti megoldás felhasználható rendkívül sokféle molekulának a tenyészetben lévő sejtekbe történő bevezetésére; ilyenek például a gének, az antitestek, a manipulált proteinek és az olyan vegyületek, amelyek egyébként a plazmamembránon általában nem képesek áthatolni.
A találmány szerinti megoldás illusztrálására, illetve részletesebb bemutatásához a mellékelt ábrákat használjuk fel, amelyeket röviden az alábbiakban ismertetünk.
1. ábra: Az ábra azt mutatja be, hogy a találmány szerinti megoldás alkalmazásával hogyan juttathatók be különféle molekulák a celluláris citoszolba. Az I fázisban a fotoszenzibilizátor (S) és a kiválasztott molekulák (M) sejtek általi endocitózisa játszódik le (az ábrán az endocitikus folyamatot iniciáló plazmamembrán invagináció látható). AII fázisban mindkét anyag ugyanabba a vesiculába záródik. Amikor a vesiculát megvilágítjuk, a vesicula membránja széttöredezik, és a vesicula tartalma szabaddá válik.
2. ábra: Az ábra NHIK 3025 sejtekben a geloninnal, TPPS2a jelenlétében vagy TPPS2a nélkül végzett kezelés és 50 másodperces megvilágítás utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése a következő: O, TPPS2a+fény;·, - TPPS2a-fény; V, + TPPS2a-fény; ▼, - TPPS2a+fény. A sejteket 3,2 pg/ml TPPS2a-val és a megadott koncentrációjú geloninnal egy éjszakán keresztül kezeltük. Valamennyi esetben ugyanolyan fénymennyiséget alkalmaztunk. A proteinszintézist úgy határoz5
HU 222 984 Bl tűk meg, hogy 24 órával a megvilágítás után mértük a proteinekbe beépült [3H]leucin mennyiségét.
3. ábra: Az ábra a TPPS2a-val és csak fénnyel (O), illetve 0,2 pg/ml geloninnal kombinációban (V) vagy a 2. ábránál ismertetetteknek megfelelően 2,0 pg/ml geloninnal kezelt sejtek esetén nyert dózis-válasz görbéket mutatja be.
4. ábra: Az ábra NHIK 3025 sejtekben a 3,2 pg/ml
TPPS^-val és fénnyel, 0,2 pg/ml gelonin jelenlétében vagy gelonin nélkül végzett kezelés utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése a következő: ·, TPPS2a-gelonin; O, TPPS2a+gelonin. A sejteket gelonin jelenlétében vagy gelonin nélkül egy éjszakán keresztül reagáltattuk a TPPS^-val, és a jelzett fénymennyiségeket alkalmaztuk. A proteinszintézist a proteinekbe beépült [3H]leucin mennyiségének mérésével határoztuk meg.
5. ábra: Az ábra V79 sejtekben a 25 pg/ml
AlPcS2-vel és fénnyel, 1 pg/ml gelonin jelenlétében vagy gelonin nélkül végzett kezelés utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése a következő: fotoszenzibilizátor+toxinjO, fotoszenzibilizátor.
6. ábra: Az ábra H146 sejtekben a 0,3 pg/ml
TPPS2a-val és fénnyel, 1 pg/ml gelonin jelenlétében vagy gelonin nélkül végzett kezelés utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése azonos az 5. ábránál megadottakkal.
7. ábra: Az ábra V79 sejtekben az 1 pg/ml
TPPS2a-val és fénnyel, 1 pg/ml gelonin jelenlétében vagy gelonin nélkül végzett kezelés utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése azonos az 5. ábránál megadottakkal.
8. ábra: Az ábra NHIK 3025 sejtekben a 3,2 pg/ml
TPPS^-val és fénnyel, 1 pg/ml agrosztin jelenlétében vagy agrosztin nélkül végzett kezelés utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése azonos az 5. ábránál megadottakkal.
9. ábra: Az ábra NHIK 3025 sejtekben a 3,2 pg/ml
TPPS2a-val és fénnyel, 1 pg/ml saporin jelenlétében vagy saporin nélkül végzett kezelés utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése azonos az 5. ábránál megadottakkal.
10. ábra: Az ábra NHIK 3025 sejtekben a
0,25 pg/ml 3-THPP-vel és fénnyel, 1 pg/ml gelonin jelenlétében vagy gelonin nélkül végzett kezelés utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése azonos az 5. ábránál megadottakkal.
11. ábra: Az ábra COS-7 sejtekben a 3 pg/ml
TPPS2a-val és fénnyel, 1 pg/ml gelonin jelenlétében vagy gelonin nélkül végzett kezelés utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése azonos az 5. ábránál megadottakkal.
12. ábra: Az ábra NHIK 3025 sejtekben a geloninnal, TPPS4 jelenlétében vagy TPPS4 nélkül végzett kezelés és 50 másodperces megvilágítás utáni proteinszintézist mutatja be. A szimbólumok jelentése a következő: , TPPS4+fény; ▼, - TPPS4-fény; ó, + RPPS4-fény. A sejteket 75 pg/ml TPPS4gyel és a megadott koncentrációjú geloninnal egy éjszakán keresztül kezeltük. Valamennyi esetben ugyanolyan fénymennyiséget alkalmaztunk. A proteinszintézist úgy határoztuk meg, hogy 24 órával a megvilágítás után mértük a proteinekbe beépült [3H]leucin mennyiségét.
13. ábra: Az ábra OHS-sejtekben mutatja be a proteinszintézist a következő kezelés után: 18 óra TPPS2a-val, majd 4 óra TPPS^ nélkül és 3 pg/ml gelonin jelenlétében vagy gelonin nélkül a megvilágítás előtt. A négyórás időtartam alatt a lizoszóma proteindegradáció megakadályozása érdekében a sejteket 50 pM chloroquine-ban vagy 10 mM ammónium-kloridban inkubáltuk.
A következőkben az alábbi, nem korlátozó jellegű példákon keresztül mutatjuk be részletesebben a találmány szerinti megoldást.
1. példa
Ez a példa azt kívánja bemutatni, hogy a fotodinamikus kezelés hatására felszabadul és a citoszolba bejut egy, a proteinszintézist gátló vegyület.
Számos növényi toxin oly módon öli el a sejteket, hogy a toxin belép a citoszolba, és enzimatikusan inaktiválja a riboszomális funkciót. A legtöbb citotoxikus növényi protein két, diszulfidhidakkal összekapcsolt, A és B polipeptidláncból áll. A B lánc funkciója az, hogy a proteint hozzákösse a sejtek felületéhez, míg az A lánc hordozza az enzimatikus aktivitást. A gelonin egy olyan növényi toxin, amely sejtmentes rendszerekben hatásosan gátolja a proteinszintézist, viszont intakt sejtekre csak gyenge hatást fejt ki, illetve az intakt sejtekkel szemben hatástalan. Az intakt sejtek esetén tapasztalt gyenge citotoxikus hatás feltehetően annak a következménye, hogy a geloninban nincsen B lánc.
NHIK 3025 sejteket (I) általános képletű TPPS2aval és geloninnal, együttesen vagy egymástól elkülönítve inkubáltunk 18 órán keresztül, majd ezt követően a sejteket egy órán keresztül TPPS2a-ban és geloninmentes médiumban inkubáltuk, mielőtt a sejteket megvilágítottuk.
A nevezett sejteket a Norvégián Rádium Hospitalban fejlesztették ki, és ott, a Dept. 1 of Biophisicsnél, név szerint Dr. Kristian Bergnél (Montebello, N-U310, Oslo, Norvégia) rendelkezésre állnak.
A proteinszintézist a megvilágítás után 24 órával mértük. A fotodinamikus kezelés, amely önmagában a sejtek
HU 222 984 Bl
10-20%-át elpusztítja, a proteinszintézist 30-40%-kal csökkentette (2. ábra). Amint az a 2. ábrán látható, a gelonin fény jelenlétében vagy fény nélkül bizonyos mértékig önmagában is gátolja a proteinszintézist. Viszont a PDT és gelonin kombináció IC50=0,2 pg/ml geloninkoncentráció mellett teljes mértékben gátolja a proteinszintézist. Ez azt jelzi, hogy a fotodinamikus kezelés nélkül a gelonin lényegében nem jut be a citoszolba. Ez a példa azt jelzi, hogy a TPPS2a és a fény alkalmas funkcionálisan intakt makromolekuláknak a sejtcitoszolba történő bejuttatására.
á2 (I)
TPPS4: — SO3-;
TPPS2C* ^-1ί3 = ^θ3 Í R-2t4 = Hj
TPPS2a: R1,2=SO3-;R3i4=H;
TPPSp Rj=SO3-; R2_4=H.
2. példa
Ez a példa azt mutatja be, hogy hogyan használhatjuk fel a festék által abszorbeált hullámhosszúságú fény mennyiségét a túlélő sejtfrakció méretének meghatározásához.
NHIK 3025 sejteket az 1. példában ismertetetteknek megfelelően TPPS2a-val és geloninnal inkubáltunk.
A sejtek klonogén túlélését a megvilágítás után 24 órával mértük. Amint az a 3. ábrán látható, a TPPS^val és a fénnyel gyakorlatilag az összes sejtet elpusztítottuk, amikor növeltük a megvilágítást. Ez összhangban van a nemkívánatos sejtek PDT-vel történő elpusztítására vonatkozó korábbi megfigyelésekkel. Ha a rendszerhez gelonint adunk, a túlélési arány csökken, ami annak a következménye, hogy a gelonin gátlóhatást fejt ki a proteinszintézisre, jelezve azt, hogy a gelonin szabaddá válva bejut a citoszolba. A hozzáadott gelonin koncentrációjának növelésével több gelonin jut be a citoszolba, amit a sejtek fokozott fényinaktivációs érzékenysége jelez.
A találmány szerinti megoldás ennek megfelelően lehetőséget kínál minden egyes esetben egy adott túlélési szint beállítására, valamint a fotoszenzibilizáló vegyület és a megvilágítás olyan kombinációjának a megválasztására, amely a sejtek kívánt frakcióját életben tartja.
3. példa
Ez a példa azt mutatja be, hogy a fénymennyiségek változtatásával hogyan szabályozható a citoszolban a szabaddá vált geloninnak a relatív proteinszintézis által meghatározott mennyisége.
NHIK 3025 sejteket az 1. példában ismertetetteknek megfelelően TPPS2a-val és geloninnal inkubáltunk.
A 4. ábrán látható, hogy az 50 másodperces toxikus dózis feletti fénymennyiségek növelték a citoszolban a relatív proteinszintézissel meghatározott geloninfrakciót.
A 4-11. példa különböző sejtvonalakon, valamint különböző fotoszenzibilizátorokkal és toxinokkal mutatja be a találmány szerinti eljárás alkalmazását. A fotoszenzibilizátorok intracelluláris lokációja lizoszomális (TPPS4, TPPS2a, AlPcS2a) és extralizoszomális (3.HTPP). A leírásban alkalmazott rövidítések jelentései a következők: AlPcS2a=a szomszédos fenilcsoportokon két szulfonátcsoporttal rendelkező alumínium-ftalocianin; TPPS4=négy szulfonátcsoporttal rendelkező mezotetrafenil-porfin; TPPS2a=a szomszédos fenilcsoportokon két szulfonátcsoporttal rendelkező zwezo-tetrafenil-porfin; 3-THPP=tetra(hidroxi-fenil)-porfin. A következő sejtvonalakat alkalmazzuk: NHIK 3025=humán cervixből in situ előállított karcinómasejtek; V79 (ATCC CCL93)=kínaihörcsög-tüdőfíbroblasztok; COS-7 (ATCC CRL-1651)=SV40-transzformált afrikai kabócamajom-vesesejtek (CV1 emberszabású majomszerű sejtek); OHS=humán osteosarcomasejtek; és H146 (ATCC HTB-173)=kis sejtes tüdőráksejtek. Valamennyi kísérletet az 1. példában ismertetetteknek megfelelően hajtottuk végre. Az OHS-t a Norvégián Rádium Hospitalban fejlesztették ki, és azok ott bárki számára rendelkezésre állnak, a Dept. of Biophisicsnél dr. Kristian Bergnél (Montebello, NO31U Oslo, Norvégia).
4. példa
Ez a példa az AlPcS2a fotoszenzibilizátor V79 sejtekben, taxinként geloninnal és gelonin nélkül történő alkalmazására vonatkozik (5. ábra). Egy specifikus fénymennyiség (besugárzási idő) megválasztásával azt igazoljuk, hogy taxin nélkül csak nagyon kis sejtkárosodás alakul ki, amit a proteinszintézisben tapasztalt csekély mértékű csökkenés bizonyít, ugyanakkor geloninnal a proteinszintézis rendkívül nagy mértékben csökken. Ez azt mutatja, hogy a geloninmolekuláknak a sejtekbe a lizoszómákon keresztül történő bejutása még úgy sem okozza a sejtek lényeges károsodását, hogy az AlPcS2a intracelluláris lokalizációja lizoszomális [Moan, J., Berg, K., Anholt, H., and Madslien, K., „Sulfonated alumínium phtalocyanines as sensitisers fór photochemotherapy. Effects of small light doses on localization, dye fluorescence and photosensitivity in V79 cells.”, Int. J. Cancer, 58, 865-870 (1994)].
5. példa
Ez a példa azt mutatja be, hogy a gelanin toxinnak a H146 sejtekbe történő transzportja nem befolyásolja
HU 222 984 Bl hátrányosan a sejtek életképességét (6. ábra). Ismert, hogy a TPPS2a a sejtben lizoszomálisan lokalizált [Berg., K., Western, A., Bommer, J., and Moan, J., „Intracellular localisation of sulfonated meso-tetraphenylporphines in a humán carcinoma cell line.”, Photochem. Photobiol., 52, 481-487 (1990); Berg, K., Madslien, K., Bommer, J. C., Oftebro, R., Winkelman, J. C., and Moan, J., „Light induced relocalization os sulfonated meso-tetraphenylporphines in NHIK 3025 cells and effects os dose ffactionation.”, Photochem. Photobiol., 53, 203-210 (1991); Berg, K. and Moan, J., „Lysosomes as photochemical targets.”, Int. J. Cancer, 59, 814-822 (1994)].
6. példa
A példa a találmány szerinti eljárás V79 sejtekben, TPPS2a mint fotoszenzibilizátor alkalmazásával történő alkalmazását mutatja be (7. ábra).
7. példa
Ebben a példában az agrosztin toxint TPPS2a fotoszenzibilizátor alkalmazásával NHIK 3025 sejtekbe transzportáljuk (8. ábra).
8. példa
Ebben a példában a saporin toxint TPPS2a fotoszenzibilizátor alkalmazásával NHIK 3025 sejtekbe transzportáljuk (9. ábra).
9. példa
Összehasonlító példa. Ha egy olyan fotoszenzibilizátort (3-THPP) alkalmazunk, amely nem jut be az encocitikus vesiculumokba (azaz az endoszómákba és lizoszómákba) [Peng, Q., Danielsen, Η. E., and Moan, J., „Potent photosenzitizers fór photodynamic therapy of cancer: Applications of confocal laser scanning microscopy fór fluorescence detection of photosensitizing fluorophores in neoplactic cells and tissues.” Proceedings of Microscopy, Holography, and Interferometry in Biomedicine, SPIE, Vol. 2083:71-82 (1994)], a 3HTPP-nek a proteinszintézisre gyakorolt hatásában nincs észrevehető különbség abból a szempontból, hogy a folyamat gelonin jelenlétében vagy pedig gelonin nélkül játszódik le (10. ábra). Tehát a gelonin nem jut be a sejtek citoszoljába.
10. példa
Ebben a példában a gelonint TPPS2a fotoszenzibilizátor alkalmazásával COS-7 sejtekbe transzportáljuk a találmány szerinti megoldásnak megfelelően (11. ábra).
11. példa
Ebben a példában a gelonint TPPS2a fotoszenzibilizátor alkalmazásával OHS-sejtekbe transzportáljuk a találmány szerinti megoldásnak megfelelően (13. ábra). Ebben a sejtvonalban jelentős proteindegradáció történik a lizoszómákban; ezt a proteindegradációt a jelen példában úgy gátoljuk, hogy a sejteket 4 órán keresztül 50 μΜ chloquine-ban vagy 10 mM ammónium-kloridban inkubáljuk.
12. példa
Az 1. példához hasonlóan, ebben a példában azt mutatjuk be, hogy a geloninkoncentráció függvényében miként jut be a gelonin az NHIK 3025 sejtekbe, amikor a sejteket TPPS4-gyel és a gelonin különböző koncentrációival inkubáltuk, majd megvilágítottuk (12. ábra). Amikor a sejteket csak geloninnal inkubáltuk, majd megvilágítottuk, vagy pedig TPPS4-gyel és geloninnal inkubáltuk, de megvilágítást nem alkalmaztunk, a gelonin nem jutott be a sejtekbe.
A példák azt igazolják, hogy különféle molekulák sokféle sejt sejtcitoszoljába bejuttathatok különféle fotoszenzibilizátorok és fénymennyiségek alkalmazásával. A sejteket el nem ölő fotoszenzibilizátorok és fénymennyiségek alkalmazása után az exogén molekulák mindaddig bejuttathatok a sejtcitoszolba, amíg a bevezetendő molekulák és a fotoszenzibilizátorok ugyanazokba a sejtalkotókba transzportálódnak. A biológiai komponensekre gyakorolt fotokémiai hatást az adott összetevőben lévő fotoszenzibilizátor mennyisége, az alkalmazott fénymennyiség és a fényforrás spektrális tulajdonságai határozzák meg. A tenyészetben lévő sejtekre gyakorolt fotokémiai hatást legjobban úgy értékelhetjük, hogy a kezelés után 24 órával vagy még hosszabb idő elteltével a sejtek túlélését mérjük. Huszonnégy órával a kezelés után a sejtpusztulásra gyakorolt hatás és a proteinszintézisre gyakorolt hatás között szoros összefüggés áll fenn.

Claims (26)

  1. SZABADALMI IGÉNYPONTOK
    1. Eljárás molekulák in vitro bevezetésére élő sejtek citoszoljába fotoszenzibilizáló vegyületek és a fotoszenzibilizáló vegyületek által abszorbeált fény alkalmazásával, azzal jellemezve, hogy
    a) az élő sejtekhez hozzáadjuk a fotoszenzibilizáló vegyületet és a bejuttatandó molekulá(ka)t, amely(ek) adott esetben rögzítve lehet(nek) azonos vagy eltérő hordozómolekulákhoz;
    b) ezután ezeket endolitikusan vagy más módon átjuttatjuk az endoszómákba, lizoszómákba vagy más, intracelluláris membránnal határolt sejtrészlegekbe; majd
    c) a sejteket a fotoszenzibilizáló vegyület abszorpciós spektrumának megfelelő hullámhosszúságú fénynek tesszük ki változó dózisokban a kívánt túlélési aránytól függően, így az endoszomális, lizoszomális vagy más intracelluláris sejtalkotó membránokat szétzúzzuk, és a citoszolba bejuttatandó molekulákat a citoszolban kibocsátjuk, amelynek során a fénnyel aktivált fotoszenzibilizáló vegyület maga nem pusztítja el a sejtek többségét.
  2. 2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az említett hordozómolekulákat rögzítjük mind a citoszolban kibocsátandó vegyűlethez, mind a fotoszenzibilizáló vegyűlethez; vagy legalább egy hordozót rögzítünk a citoszolban kibocsátandó vegyűlethez, és egy másik, hasonló vagy eltérő hordozót rögzítünk a fotoszenzibilizáló vegyűlethez.
    HU 222 984 Bl
  3. 3. Az 1. vagy 2. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a citoszolban az alábbi molekulák valamelyikét bocsátjuk ki: DNS, oligo(dezoxi)nukleotidok, mRNS, antiszensz DNS, cukrok, fehéqék, peptidek, membránon át nem hatoló gyógyszerek, egyéb, membránon át nem hatoló vegyületek, valamint az említett molekulák kovalensen vagy nem kovalensen kötött kombinációi.
  4. 4. A 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a citoszolba fehérjéket vagy peptideket bocsátunk ki.
  5. 5. Az 1-4. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a citoszolban fehéqe-szintetikusaktivitást módosító anyagokat bocsátunk ki.
  6. 6. A 3. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a citoszolban gelonint, szeporint vagy agrosztint, vagy ezek valamely kombinációját bocsátjuk ki.
  7. 7. Az 1-6. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy fotoszenzibilizáló vegyületként a következő vegyületek valamelyikét adjuk az élő sejtekhez: porfirinok, ftalocianinok, purpurinok, klozinok, benzoporfirinok, naftalocianinok, kationos festékek, tetraciklinek és lizoszomatrop gyenge bázisok, valamint származékaik.
  8. 8. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy fotoszenzibilizáló vegyületként a szomszédos fenilcsoportokon két szulfonátcsoporttal rendelkező tetrafenil-porfirint, azaz TPPS2a-t, vagy négy szulfonátcsoporttal rendelkező zwezo-tetrafenil-porfint, vagyis TPPS4-et, vagy a szomszédos fenilcsoportokon két szulfonátcsoporttal rendelkező alumínium-ftalocianint, vagyis AlPcS^-t, vagy mindezek bármely kombinációját adjuk az élő sejtekhez.
  9. 9. Az 1-8. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy hordozómolekulákként helyre irányuló molekulákat rögzítünk, amelyek megkönnyítik a fotoszenzibilizáló vegyület vagy a citoszolban kibocsátandó molekulák felvételét.
  10. 10. Az 1-9. igénypontok bármelyike szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a túlélő sejtek hányadosát a fény mennyiségének a fotoszenzibilizáló vegyület koncentrációjának figyelembevételével történő megválasztásával szabályozzuk.
  11. 11. Készítmény neoplasztikus vagy más celluláris folyamatok in vitro módosítására meleg vérű állatokban vagy sejttenyészetekben, azzal jellemezve, hogy tartalmaz egy, a citoszolban kibocsátandó, membránon át nem hatoló vegyületet, és egy fotoszenzibilizáló vegyületet, amely fénnyel történő aktiválás hatására szétzúzza az intracelluláris sejtmembránokat; a nevezett komponensek adott esetben hozzákapcsolhatók azonos vagy különböző hordozómolekulákhoz annak érdekében, hogy megkönnyítsék az átjutást az intracelluláris sejtrészlegekbe, például endoszómákba, lizoszómákba vagy más intracelluláris részlegekbe.
  12. 12. A 11. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az említett hordozómolekulák rögzítve vannak mind a citoszolban kibocsátandó, celluláris folyamatokat módosító vegyülethez, mind a fotoszenzibilizáló vegyülethez; vagy legalább egy hordozó van rögzítve a citoszolban kibocsátandó vegyülethez, és egy másik, hasonló vagy eltérő hordozó van rögzítve a fotoszenzibilizáló vegyülethez.
  13. 13. A 11. vagy 12. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az említett, a citoszolban kibocsátandó vegyület egy antineoplasztikus vegyület.
  14. 14. A 13. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az antineoplasztikus vegyület gelonin.
  15. 15. All. vagy 12. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a citoszolban kibocsátandó vegyület DNS, oligo(dezoxi)nukleotidok, mRNS, antiszensz DNS, cukrok, fehérjék, peptidek, membránon át nem hatoló gyógyszerek, más, membránon át nem hatoló molekulák valamelyike, vagy az említett molekulák valamely kovalensen vagy nem kovalensen összekapcsolt kombinációja.
  16. 16. A 11-15. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a fotoszenzibilizáló vegyületek porfirinok, ftalocianinok, purpurinok, klorinok, benzoporfirinok, naftalocianinok, kationos festékek, tetraciklinek és lizoszomatrop gyenge bázisok, vagy mindezek származékai.
  17. 17. A 16. igénypont szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a fotoszenzibilizáló vegyületet tetrafenilporfinként szulfonátcsoporttal szomszédos fenilcsoportok képezik.
  18. 18. A 11-17. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy a hordozómolekula helyre irányuló molekula, amely megkönnyíti a fotoszenzibilizáló vegyület vagy a citoszolban kibocsátandó molekulák felvételét.
  19. 19. A 11-18. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy rákterápiában alkalmazható.
  20. 20. A 11., 12. vagy 16-18. igénypontok bármelyike szerinti készítmény, azzal jellemezve, hogy az említett, a citoszolban kibocsátandó vegyület DNS, oligo(dezoxijnukleotid, mRNS vagy antiszensz DNS, vagy az említett molekulák kovalensen vagy nem kovalensen kötött kombinációi, génterápiákon való alkalmazáshoz.
  21. 21. Készlet az 1-9. igénypont szerinti eljárás kivitelezésére, azzal jellemezve, hogy tartalmazza a fotoszenzibilizáló vegyületeket, a szállítandó molekulákat, és kívánt esetben tartalmaz olyan hordozóvegyületeket, amelyek megkönnyítik ezeknek a molekuláknak a szállítását.
  22. 22. Fotoszenzibilizáló vegyület alkalmazása molekulák élő sejtek citoszoljába in vitro bevezetésére szolgáló készítmény előállítására, azzal jellemezve, hogy a nevezett alkalmazás az alábbi lépésekből áll:
    a) az élő sejtekhez hozzáadjuk a fotoszenzibilizáló vegyületet és a bejuttatandó molekulá(ka)t, amelyek adott esetben rögzítve lehetnek azonos vagy eltérő hordozómolekulákhoz;
    b) ezután ezeket endolitikusan vagy más módon átjuttatjuk az endoszómákba, lizoszómákba vagy más, intracelluláris membránnal határolt sejtrészlegekbe; majd
    c) a sejteket a fotoszenzibilizáló vegyület abszorpciós spektrumának megfelelő hullámhosszúságú fénynek tesszük ki változó dózisokban a kívánt túl9
    HU 222 984 Bl élési aránytól függően, így az endoszomális, lizoszomális vagy más intracelluláris sejtalkotó membránokat szétzúzzuk, és a citoszolba bejuttatandó molekulákat a citoszolban kibocsátjuk, amelynek során a fénnyel aktivált fotoszenzibilizáló vegyü- 5 let maga nem pusztítja el a sejtek többségét.
  23. 23. A 22. igénypont szerinti alkalmazás, azzal jellemezve, hogy az említett hordozómolekulák, szállítandó molekulák és fotoszenzibilizáló molekulák a 2-9. igénypontok bármelyikében meghatározottak.
  24. 24. A 22. vagy 23. igénypont szerinti alkalmazás, azzal jellemezve, hogy a túlélő sejtek hányadosát a fény mennyiségének a fotoszenzibilizáló vegyület koncentrációjának figyelembevételével történő megválasztásával szabályozzuk.
  25. 25. A 22-24. igénypontok bármelyike szerinti alkalmazás génterápiához vagy rák kezeléséhez.
  26. 26. Az 1. igénypont szerinti eljárás alkalmazása rákkal kapcsolatos állapotok kezelésére (alkalmas gyógy10 szer előállítására).
HU9800153A 1994-09-08 1995-09-04 Eljárás molekulák in vitro bevezetésére élő sejtek citoszoljába, fotoszenzibilizáló vegyület alkalmazásával HU222984B1 (hu)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
NO943327A NO180167C (no) 1994-09-08 1994-09-08 Fotokjemisk fremgangsmåte til å innföre molekyler i cellers cytosol
PCT/NO1995/000149 WO1996007432A1 (en) 1994-09-08 1995-09-04 Transfer of molecules into the cytosol of cells

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT77469A HUT77469A (hu) 1998-05-28
HU222984B1 true HU222984B1 (hu) 2004-01-28

Family

ID=19897382

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU9800153A HU222984B1 (hu) 1994-09-08 1995-09-04 Eljárás molekulák in vitro bevezetésére élő sejtek citoszoljába, fotoszenzibilizáló vegyület alkalmazásával

Country Status (20)

Country Link
US (3) US5876989A (hu)
EP (1) EP0783323B1 (hu)
JP (1) JP4148328B2 (hu)
KR (2) KR100529967B1 (hu)
CN (1) CN1222309C (hu)
AT (1) ATE209507T1 (hu)
AU (1) AU700797B2 (hu)
BR (1) BRPI9508825B8 (hu)
CA (1) CA2199290C (hu)
CZ (1) CZ65897A3 (hu)
DE (1) DE69524238T2 (hu)
ES (1) ES2163527T3 (hu)
FI (1) FI121328B (hu)
HK (1) HK1004110A1 (hu)
HU (1) HU222984B1 (hu)
MX (1) MX9701676A (hu)
NO (1) NO180167C (hu)
NZ (2) NZ293008A (hu)
PT (1) PT783323E (hu)
WO (1) WO1996007432A1 (hu)

Families Citing this family (83)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NO180167C (no) 1994-09-08 1997-02-26 Photocure As Fotokjemisk fremgangsmåte til å innföre molekyler i cellers cytosol
US6210356B1 (en) * 1998-08-05 2001-04-03 Ekos Corporation Ultrasound assembly for use with a catheter
US6176842B1 (en) * 1995-03-08 2001-01-23 Ekos Corporation Ultrasound assembly for use with light activated drugs
DE69840046D1 (de) * 1997-03-19 2008-11-06 Lucid Inc Zellchirurgie unter benutzung konfokaler mikroskopie
US6676626B1 (en) 1998-05-01 2004-01-13 Ekos Corporation Ultrasound assembly with increased efficacy
US6582392B1 (en) * 1998-05-01 2003-06-24 Ekos Corporation Ultrasound assembly for use with a catheter
US6835393B2 (en) * 1998-01-05 2004-12-28 University Of Washington Enhanced transport using membrane disruptive agents
US6399769B1 (en) * 1998-01-20 2002-06-04 Kimberly-Clark Worldwide, Inc. Method of making sulfanatophenyl substituted porphines
GB9905911D0 (en) * 1999-03-15 1999-05-05 Photocure As Method
AU6871800A (en) * 1999-09-09 2001-04-17 Center For Advanced Science And Technology Incubation, Ltd. Method of piercing membrane and apparatus therefor
US20040220100A1 (en) * 2000-07-21 2004-11-04 Essentia Biosystems, Inc. Multi-component biological transport systems
IL154044A0 (en) * 2000-07-21 2003-07-31 Essentia Biosystems Inc Multi-component pharmaceutical compositions containing a complex of a positively charged backbone and a negatively charged backbone and methods for the preparation thereof
BRPI0115794B1 (pt) * 2000-11-29 2015-09-15 Pci Biotech As método para introduzir uma molécula em uma célula, composição farmacêutica, e, uso de uma molécula de transferência associada com um veículo viral e um agente fotossensibilizante ou de uma célula
ES2383516T3 (es) * 2000-11-29 2012-06-21 Pci Biotech As Internalización fotoquímica para suministrar moléculas en el citosol
US20020098472A1 (en) * 2000-11-30 2002-07-25 Erlach Julian Van Method for inserting a microdevice or a nanodevice into a body fluid stream
US20020137901A1 (en) * 2001-01-22 2002-09-26 Cavanaugh Philip Gerard Synthesis, and photodynamic therapy-mediated anti-cancer, and other uses of chlorin e6-transferrin
AU2002250034A1 (en) * 2001-02-08 2002-08-19 Sequitur, Inc. Methods of light activated release 0f ligands from endosomes
CN1313158C (zh) * 2001-06-20 2007-05-02 大日本住友制药株式会社 促进核酸转移的方法
GB0121023D0 (en) * 2001-08-30 2001-10-24 Norwegian Radium Hospital Res Compound
EP1647232B1 (en) 2001-12-03 2011-08-17 Ekos Corporation Catheter with multiple ultrasound radiating members
US7141044B2 (en) * 2001-12-11 2006-11-28 Ekos Corporation Alternate site gene therapy
ATE529512T1 (de) 2002-02-01 2011-11-15 Life Technologies Corp Doppelsträngige oligonukleotide
EP1572902B1 (en) * 2002-02-01 2014-06-11 Life Technologies Corporation HIGH POTENCY siRNAS FOR REDUCING THE EXPRESSION OF TARGET GENES
US20060009409A1 (en) 2002-02-01 2006-01-12 Woolf Tod M Double-stranded oligonucleotides
US8226629B1 (en) 2002-04-01 2012-07-24 Ekos Corporation Ultrasonic catheter power control
US20040248094A1 (en) * 2002-06-12 2004-12-09 Ford Lance P. Methods and compositions relating to labeled RNA molecules that reduce gene expression
GB0215534D0 (en) * 2002-07-04 2002-08-14 Ecole Polytech Selective photochemotherapy using oligonucleotide targeting agents
US20040029275A1 (en) * 2002-08-10 2004-02-12 David Brown Methods and compositions for reducing target gene expression using cocktails of siRNAs or constructs expressing siRNAs
US6921371B2 (en) * 2002-10-14 2005-07-26 Ekos Corporation Ultrasound radiating members for catheter
JP2006517790A (ja) * 2003-01-09 2006-08-03 インヴィトロジェン コーポレーション ポリペプチド−核酸複合体の細胞の送達および活性化
US7332477B2 (en) * 2003-07-10 2008-02-19 Nitto Denko Corporation Photocleavable DNA transfer agent
EP1667732B1 (en) * 2003-09-29 2010-04-21 Nitto Denko Corporation Biodegradable polyacetals for in vivo polynucleotide delivery
WO2005061717A1 (ja) * 2003-12-19 2005-07-07 Dainippon Sumitomo Pharma Co., Ltd. 新規な核酸導入法
US9211248B2 (en) 2004-03-03 2015-12-15 Revance Therapeutics, Inc. Compositions and methods for topical application and transdermal delivery of botulinum toxins
AU2005218665A1 (en) 2004-03-03 2005-09-15 Revance Therapeutics, Inc. Compositions and methods for topical application and transdermal delivery of botulinum toxins
SG150570A1 (en) 2004-03-03 2009-03-30 Revance Therapeutics Inc Compositions and methods for topical diagnostic and therapeutic transport
GB0415263D0 (en) * 2004-07-07 2004-08-11 Norwegian Radium Hospital Res Method
US20060094781A1 (en) * 2004-11-04 2006-05-04 Syneron Medical Ltd. Method of treating extracellular matrix
FR2877943B1 (fr) * 2004-11-16 2008-09-05 Univ De Coimbra Nouveaux derives de porphyrine, notamment chlorines et/ou bacteriochlorine, et leurs applications en therapie photodynamique
US20090247464A1 (en) 2005-03-03 2009-10-01 Revance Therapeutics, Inc. Compositions and Methods for Topical Application and Transdermal Delivery of an Oligopeptide
BRPI0608249A2 (pt) 2005-03-03 2009-12-08 Revance Therapeutics Inc formulação, método para aplicação tópica e kit para distribuição transdérmica de toxina botulìnica
US7674452B2 (en) * 2005-03-16 2010-03-09 Nitto Denko Corporation Polymer coating of cells
BRPI0501037B8 (pt) * 2005-03-18 2021-07-27 Fund De Amparo A Pesquisa Do Estado De Sao Paulo uso de crotamina e composição
EP1948230A4 (en) * 2005-11-17 2010-03-10 Revance Therapeutics Inc COMPOSITIONS AND METHODS FOR TOPICAL APPLICATION AND TRANSDERMAL DELIVERY OF BOTULIN TOXINES WITH A REDUCED NUMBER OF NON-TOXIC PROTEINS
WO2007109584A1 (en) * 2006-03-16 2007-09-27 University Of Washington Temperature-and ph-responsive polymer compositions
GB0613753D0 (en) * 2006-07-11 2006-08-23 Norwegian Radium Hospital Res Method
EP2099496A2 (en) * 2006-12-08 2009-09-16 Massachusetts Institute of Technology Delivery of nanoparticles and/or agents to cells
US20080226551A1 (en) * 2006-12-29 2008-09-18 Revance Therapeutics, Inc. Transport Molecules Using Reverse Sequence HIV-TAT Polypeptides
MX2009007068A (es) * 2006-12-29 2009-07-10 Revance Therapeutics Inc Composiciones y metodos de aplicacion topica y suministro transdermico de toxinas botulinicas estabilizadas con fragmentos de polipeptido provenientes de hiv-tat.
US10182833B2 (en) 2007-01-08 2019-01-22 Ekos Corporation Power parameters for ultrasonic catheter
US7981688B2 (en) 2007-03-08 2011-07-19 University Of Washington Stimuli-responsive magnetic nanoparticles and related methods
WO2009002881A1 (en) 2007-06-22 2008-12-31 Ekos Corporation Method and apparatus for treatment of intracranial hemorrhages
WO2009079415A1 (en) * 2007-12-14 2009-06-25 Ekos Corporation Ultrasound pulse shaping
GB0811955D0 (en) 2008-06-30 2008-07-30 Pci Biotech As Method
US8426214B2 (en) * 2009-06-12 2013-04-23 University Of Washington System and method for magnetically concentrating and detecting biomarkers
GB0914286D0 (en) 2009-08-14 2009-09-30 Pci Biotech As Method
GB0914287D0 (en) 2009-08-14 2009-09-30 Pci Biotech As Compositions
US9080933B2 (en) 2009-11-09 2015-07-14 University Of Washington Through Its Center For Commercialization Stimuli-responsive polymer diagnostic assay comprising magnetic nanoparticles and capture conjugates
US20110117668A1 (en) * 2009-11-09 2011-05-19 University Of Washington Through Its Center For Commercialization Self-powered smart diagnostic devices
GB201208548D0 (en) * 2012-05-15 2012-06-27 Pci Biotech As Compound and method
US20160040128A1 (en) 2013-03-15 2016-02-11 Pci Biotech As Method
GB2517707B (en) * 2013-08-28 2020-09-02 Pci Biotech As A device for light-induced rupture of endocytic vesicles to effect the delivery of an antigen
ES2959398T3 (es) 2013-08-28 2024-02-26 Pci Biotech As Compuesto y método para vacunación e inmunización
US10973896B2 (en) 2014-04-11 2021-04-13 Pci Biotech As Treatment or prevention of melanoma using photochemical internalization of a melanoma antigen
CA2959207A1 (en) 2014-08-28 2016-03-03 Pci Biotech As Expression of an antigenic molecule on the surface of a cell using a photosensitizing agent and a cytokine
GB201503776D0 (en) 2015-03-05 2015-04-22 Pci Biotech As Compound and method
CN107708581B (zh) 2015-06-10 2021-11-19 Ekos公司 超声波导管
JP2019530718A (ja) 2016-10-14 2019-10-24 ピーシーアイ バイオテック エイエス ゲムシタビンのTPCS−2a誘導性光化学的内在化を用いた胆管癌の処置
GB201718631D0 (en) 2017-11-10 2017-12-27 Pci Biotech As Method
GB201801169D0 (en) * 2018-01-24 2018-03-07 Pci Biotech As Method
JP2021531345A (ja) 2018-07-16 2021-11-18 ディーシープライム・ベスローテン・フェンノートシャップDcprime B.V. 腫瘍ワクチン接種に用いるための組合せ製品
WO2020217226A1 (en) 2019-04-25 2020-10-29 Dcprime B.V. Methods of tumor vaccination
CN110711249B (zh) * 2019-09-19 2020-10-27 北京化工大学 一种溶酶体膜包覆纳米颗粒的制备方法
US20210322471A1 (en) 2020-03-27 2021-10-21 Dcprime B.V. In vivo use of modified cells of leukemic origin for enhancing the efficacy of adoptive cell therapy
US12091681B2 (en) 2020-03-27 2024-09-17 Mendus B.V. Ex vivo use of modified cells of leukemic origin for enhancing the efficacy of adoptive cell therapy
CN114163508B (zh) * 2020-09-11 2024-07-16 王月志 能破坏细胞的氨基酸序列及相关核苷酸序列和相关的应用
US20220168407A1 (en) 2020-11-05 2022-06-02 Dcprime B.V. Use of tumor-independent antigens in immunotherapies
GB202101726D0 (en) 2021-02-08 2021-03-24 Pci Biotech As Method
EP4304633A1 (en) 2021-03-12 2024-01-17 Mendus B.V. Methods of vaccination and use of cd47 blockade
GB202115451D0 (en) 2021-10-27 2021-12-08 Pci Biotech As Method
WO2024068795A1 (en) 2022-09-27 2024-04-04 Pci Biotech As Method for releasing viral vectors
GB202301312D0 (en) 2023-01-30 2023-03-15 Pci Biotech As Method and product
GB202404168D0 (en) 2024-03-22 2024-05-08 Pci Biotech As Method

Family Cites Families (41)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
AU563827B2 (en) 1982-07-01 1987-07-23 Millipore Corp. Filtration apparatus
US4649151A (en) * 1982-09-27 1987-03-10 Health Research, Inc. Drugs comprising porphyrins
US4704255A (en) 1983-07-15 1987-11-03 Pandex Laboratories, Inc. Assay cartridge
US5066274A (en) * 1985-04-30 1991-11-19 Nippon Petrochemicals Company, Ltd. Tetrapyrrole therapeutic agents
US5076950A (en) 1985-12-20 1991-12-31 Syntex (U.S.A.) Inc. Magnetic composition for particle separation
US4895706A (en) 1986-10-28 1990-01-23 Costar Corporation Multi-well filter strip and composite assemblies
US5095030A (en) * 1987-01-20 1992-03-10 University Of British Columbia Wavelength-specific cytotoxic agents
HU204856B (en) 1987-08-12 1992-02-28 Orszagos Mueszaki Fejlesztesi Process for releasing cell mixtures and tissues from undesired populations and for producing monoclonal antibody - hematoporphyrin conjugates
NO891491L (no) * 1987-08-12 1989-04-11 Peter Nemeth Prosedyre for befrielse av celleblandinger og vev for uoenskede populasjoner.
GB8721108D0 (en) * 1987-09-08 1987-10-14 Salford University Of Liposomes
US5284647A (en) * 1988-03-18 1994-02-08 Schering Aktiengesellschaft Mesotetraphenylporphyrin complex compounds, process for their production and pharmaceutical agents containing them
US5256532A (en) 1988-05-02 1993-10-26 Zynaxis Technologies, Inc. Methods, reagents and test kits for determination of subpopulations of biological entities
US4925736A (en) * 1988-07-06 1990-05-15 Long Island Jewish Medical Center Topical hematoporphyrin
GB8905001D0 (en) 1989-03-04 1989-04-19 Univ Leicester Screening for natural products of microbial metabolism
US4935498A (en) * 1989-03-06 1990-06-19 Board Of Regents, The University Of Texas System Expanded porphyrins: large porphyrin-like tripyrroledimethine-derived macrocycles
US5567687A (en) * 1989-03-06 1996-10-22 University Of Texas Texaphyrins and uses thereof
US5328470A (en) * 1989-03-31 1994-07-12 The Regents Of The University Of Michigan Treatment of diseases by site-specific instillation of cells or site-specific transformation of cells and kits therefor
US5059619A (en) * 1989-06-14 1991-10-22 Quadra Logic Technologies, Inc. Stable freeze-dried polyhematoporphyrin ether/ester
DE3919873A1 (de) 1989-06-19 1990-12-20 Behringwerke Ag Magnetische protein-konjugate, verfahren zu ihrer herstellung und ihre verwendung
GB8916859D0 (en) 1989-07-24 1989-09-06 Dynal As Hapten linking
GB8929297D0 (en) 1989-12-29 1990-02-28 Dynal As Method of separation
US5200084A (en) 1990-09-26 1993-04-06 Immunicon Corporation Apparatus and methods for magnetic separation
US5491068A (en) 1991-02-14 1996-02-13 Vicam, L.P. Assay method for detecting the presence of bacteria
US5179120A (en) * 1991-06-28 1993-01-12 Cytopharm, Inc. Porphycene compounds for photodynamic therapy
PL165249B1 (pl) * 1991-10-29 1994-11-30 Wojskowa Akad Tech Sposób otrzymywania soli kompleksowych hematoporfiryny i jej pochodnych PL PL PL PL PL PL PL
US5376546A (en) * 1991-11-04 1994-12-27 Xoma Corporation Analogs of ribosome-inactivating proteins
US5258453A (en) * 1992-01-21 1993-11-02 University Of Utah Drug delivery system for the simultaneous delivery of drugs activatable by enzymes and light
DE69331467T2 (de) * 1992-03-16 2002-11-07 Isis Pharmaceuticals, Inc. Oligonukleotide modulation von protein kinase c
CA2131090A1 (en) 1992-03-20 1993-09-21 Peter Leonard Grant Method and apparatus for the analysis of biological material
WO1993022443A1 (en) * 1992-04-24 1993-11-11 Sri International In vivo homologous sequence targeting in eukaryotic cells
AU2593192A (en) 1992-09-14 1994-04-12 Oystein Fodstad Detection of specific target cells in specialized or mixed cell population and solutions containing mixed cell populations
AU680843B2 (en) * 1992-11-03 1997-08-14 Gene Shears Pty. Limited TNF-alpha ribozymes and degradation resistant mRNA derivatives linked to TNF-alpha ribozymes
FR2700010B1 (fr) 1992-12-24 1995-03-17 Rocher Yves Biolog Vegetale Méthode et dispositif pour tester la réactivité de cellules à l'égard de produits.
US5374531A (en) 1993-03-22 1994-12-20 Zynaxis, Inc. Immunoassay for determination of cells
US5861310A (en) * 1993-11-03 1999-01-19 Dana-Farber Cancer Institute Tumor cells modified to express B7-2 with increased immunogenicity and uses therefor
US5491084A (en) * 1993-09-10 1996-02-13 The Trustees Of Columbia University In The City Of New York Uses of green-fluorescent protein
US6015897A (en) * 1993-12-07 2000-01-18 Neorx Corporation Biotinamido-n-methylglycyl-seryl-o-succinamido-benzyl dota
US5514340A (en) 1994-01-24 1996-05-07 Magnetix Biotechnology, Inc. Device for separating magnetically labelled cells
NO180658C (no) 1994-03-10 1997-05-21 Oeystein Fodstad Fremgangsmåte og anordning for deteksjon av spesifikke målceller i spesialiserte eller blandede cellepopulasjoner og opplösninger som inneholder blandede cellepopulasjoner
NO180167C (no) * 1994-09-08 1997-02-26 Photocure As Fotokjemisk fremgangsmåte til å innföre molekyler i cellers cytosol
US5872007A (en) * 1995-02-17 1999-02-16 Hybridon, Inc. CAPL-specific oligonucleotides and methods of inhibiting metastatic cancer

Also Published As

Publication number Publication date
PT783323E (pt) 2002-03-28
CN1222309C (zh) 2005-10-12
US20020155099A1 (en) 2002-10-24
WO1996007432A1 (en) 1996-03-14
NO943327D0 (no) 1994-09-08
CA2199290C (en) 2010-10-26
EP0783323B1 (en) 2001-11-28
EP0783323A1 (en) 1997-07-16
CN1164829A (zh) 1997-11-12
BRPI9508825B1 (pt) 2020-12-22
US5876989A (en) 1999-03-02
US6680301B2 (en) 2004-01-20
KR970705415A (ko) 1997-10-09
MX9701676A (es) 1998-04-30
KR20040004402A (ko) 2004-01-13
NO180167C (no) 1997-02-26
NO943327L (no) 1996-03-11
NZ293008A (en) 2001-04-27
CA2199290A1 (en) 1996-03-14
BRPI9508825B8 (pt) 2021-07-06
BR9508825A (pt) 1998-01-06
AU700797B2 (en) 1999-01-14
JPH10508295A (ja) 1998-08-18
ATE209507T1 (de) 2001-12-15
KR100529967B1 (ko) 2005-11-22
NO180167B (no) 1996-11-18
HK1004110A1 (en) 1998-11-20
ES2163527T3 (es) 2002-02-01
DE69524238D1 (de) 2002-01-10
HUT77469A (hu) 1998-05-28
JP4148328B2 (ja) 2008-09-10
FI970983L (fi) 1997-03-07
US20030134813A1 (en) 2003-07-17
DE69524238T2 (de) 2002-07-18
KR100395615B1 (ko) 2003-12-31
FI970983A0 (fi) 1997-03-07
CZ65897A3 (en) 1997-10-15
FI121328B (fi) 2010-10-15
AU3534795A (en) 1996-03-27
NZ509519A (en) 2004-10-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
HU222984B1 (hu) Eljárás molekulák in vitro bevezetésére élő sejtek citoszoljába, fotoszenzibilizáló vegyület alkalmazásával
Kwiatkowski et al. Photodynamic therapy–mechanisms, photosensitizers and combinations
Berg et al. Porphyrin‐related photosensitizers for cancer imaging and therapeutic applications
Dougherty et al. Photodynamic therapy
Phillips The photochemistry of sensitisers for photodynamic therapy
Reddi Role of delivery vehicles for photosensitizers in the photodynamic therapy of tumours
Moan Porphyrin-sensitized photodynamic inactivation of cells: a review
Garland et al. Designing photosensitizers for photodynamic therapy: strategies, challenges and promising developments
Selbo et al. Photochemical internalisation: a novel drug delivery system
Cincotta et al. Novel photodynamic effects of a benzophenothiazine on two different murine sarcomas
Boyle et al. Biological activities of phthalocyanines. XIV. Effect of hydrophobic phthalimidomethyl groups on the in vivo phototoxicity and mechanism of photodynamic action of sulphonated aluminium phthalocyanines
EP2308508A1 (en) Photodynamic therapy using chemoluminescence and a ligand-photosensitiser conjugate
Guardiano et al. Tetra-n-propylporphycene as a tumour localizer: pharmacokinetic and phototherapeutic studies in mice
Abels et al. Targeting of the tumor microcirculation by photodynamic therapy with a synthetic porphycene
Moor et al. Mechanisms of photodynamic therapy
Jori et al. Strategies for tumor targeting by photodynamic sensitizers
CZ9727U1 (cs) Prostředek pro modifikaci buněčných zejména nádorových procesů
Peng Correlation of intracellular and intratumoral photosensitizer distribution with photodynamic effect
Kostron et al. Photodynamic Therapy
Wang Studies of photochemical internalisation: mechanisms and strategies in cancer therapeutics
Reich et al. Liposome-administered tetramethylhematoporphyrin (TMHP) as a photodynamic agent for bladder tumor cells
Woodhams et al. Julie Tzu-Wen Wang
Jori et al. Phthalocyanines as phototherapeutic agents for tumors
Phillips The photochemistry of sensitisers for photodynamic therapy zyxwvutsrqpon
Calzavara-Pinton et al. photosensitizer distribution with photodynamic effect

Legal Events

Date Code Title Description
HFG4 Patent granted, date of granting

Effective date: 20031127