[go: up one dir, main page]

HU201803B - Process for producing polypeptides forming the agent of anti-malaria vaccine - Google Patents

Process for producing polypeptides forming the agent of anti-malaria vaccine Download PDF

Info

Publication number
HU201803B
HU201803B HU86505A HU50586A HU201803B HU 201803 B HU201803 B HU 201803B HU 86505 A HU86505 A HU 86505A HU 50586 A HU50586 A HU 50586A HU 201803 B HU201803 B HU 201803B
Authority
HU
Hungary
Prior art keywords
polypeptide
asn
protein
pro
coli
Prior art date
Application number
HU86505A
Other languages
English (en)
Other versions
HUT40917A (en
Inventor
Mitchell Stuart Gross
James Francis Young
Original Assignee
Smithkline Beckman Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Smithkline Beckman Corp filed Critical Smithkline Beckman Corp
Publication of HUT40917A publication Critical patent/HUT40917A/hu
Publication of HU201803B publication Critical patent/HU201803B/hu

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/44Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from protozoa
    • C07K14/445Plasmodium
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P33/00Antiparasitic agents
    • A61P33/02Antiprotozoals, e.g. for leishmaniasis, trichomoniasis, toxoplasmosis
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02ATECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Description

A malária súlyos, széles körben elterjedt betegség, amely ellen - éveken át tartó erőfeszítések ellenére - még nem sikerült vakcinát előállítani (Science, 226 679/1984/). Kísérletesen már sikerült emlősöket - beleértve az embert is - védetté tenni a malária kórokozója, a Plasmodium okozta fertőzések ellen, besugárzott sporozoitokkal végzett vakcinálással (Clyde és munkatársai: Am. J. Tropp. Med. Hyg. 24, 397 /1975/ és Rieckman és munkatársai: Bull. WHO 57(Supp. 1) 261 /1979/). Yoshida és munkatársai (Science 207,71 /1980/) ismertették, hogy a fenti védettséget - legalábbis részben - a sporozoit felületén levő egyik proteinnel, a circumsporozoií (CS) proteinnel szembeni antitestek nediálják. A CS-proteinek ellen termelődött monoklonális antitestek in vitro semlegesítik a fertőzőképességet és in vivő védik az állatot. Úgy tűnik, hogy a CS-proteinek az egyes fajokon belül erősen megőrződnek az evolúció során, de különböző fajokban erősen eltérőek
Négy Plasmodium fajt ismerünk, amelyek az embert fertőzhetik. Ezek a P. falciparum, a P. vivax, a P. ovale és a P. malariae, az utóbbi kettő sokkal ritkábban fordul elő. A tudományos érdeklődés szempontjából fontosak még a P. berghei és a P. knowlesi, mivel ezen fajok gazdaszervezetei a rágcsálók, illetve a majmok
A P. knowlesi CS-protein je egy 12 aminosavból álló szekvencia 12 egymás utáni ismétlődését tartalmazza. Zavala és munkatársai (J. Exp. Med. 157, 1947 /1983/) szerint az ismétlődő egység a fő immunogén a P. knowlesi CS-protinen, a fenti megállapítást azokra a kísérletekre alapozták, amelyek azt mutatták, hogy az ismétlődő egységek elleni antitestek blokkolják az anti-sporozoit antiszérum hozzáférhetőségét a szolubilizált sporozoit proteinhez. Gysin és munkatársa (J.Exp.Med. 160,935/1984/) megállapították hogy a P. knowlesi CS-proteinjének egymás utáni ismétlődő egységeit képviselő szintetikus, 24 aminosavból álló peptid semlegesíti a virulens sporozoitok fertőzőképességét majmok esetén.
Colman és munkatársai (WΟ 84-2922-A, nyilvánosságra kerülés: 1984.08.02.) ismertették a P. knowlesi CS-protein ismétlődő egységét kódoló régió egy részének klónozását és béta-laktamázzal és béta-galaktozidázzal fuzionálva annak annak kifejeződését. Nussenzweig és munkatársai (US 4 466 917) ismertették a P44 proteinnek nevezett sporozoit proteint, és annak klónozását és kifejeződését E. coliban.
Enea és munkatársai (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 81, 7520 /1984/) is találtak egy hasonló ismétlődő egység szerkezetet a P. cynomologi CS-proteinjében,
Kemp és munkatársai (WO 84 02917-A) leírták a P. falciparum cDNS-ének klónozását és kifejeződését E. coliban.
Dame és munkatársai (Science 225,593 /1984/) leírták a P. falciparum CS-proteinjének klónozását és kifejezését E. coliban. A protein eszerint közel 412 aminosavból áll, átlagos molekulatömege 44000, és egy tetrapeptid 41 egymás utáni ismétlődését foglalja magában. Az ismétlődő szakaszból származó szintetikus 7-, 11-és 15-tagúpeptid-töredékek kötődnek a CS-proteinnel szembeni monok2 lonális antitestekhez.
A találmány tárgya egyrészt eljárás a Plasmodium falciparum CS-protein ismétlődő egységét vagy annak egy részét kódoló szekvenciát tartalmazó E. coli expressziós vektor előállítására.
A találmány tárgya továbbá a találmány szerinti eljárással előállított expressziós vektorral transzfomált E. coli tenyészettel a P. falciparum CS-protein 16 vagy annál több egymás után ismétlődő egységét tartalmazó polipeptid előállítására és annak tisztítására az E. coli tenyészetből.
Az 1 a. ábra a CS-proteint kódoló szekvenciát tartalmazó P. falciparum genom DNS egy régiójának részleges endonukleázos hasításával nyert géntérképe.
A találmány szerinti eljárással előállított polipeptid az E. coliban termelődő 16 vagy több egymás után ismétlődő CS-protein egységet tartalmaz. Ez ugyan nem azonos a CS-proteinnel, de tartalmazhatja a CS-protein bizonyos, az ismétlődő egységtől eltérő részeit is. A. P. falciparum ismétlődő egysége egy tetrapeptid, amelynek szekvenciája az alábbi:
-Asn-Ala-Asn-Pro-, a képletben Asn aszparagint, Alá alanint és Pro prolint jelent.
A találmány szerinti eljárással előállított polipeptidben a fenti tetrapeptid variációi is előfordulhatnak, feltéve, hogy nem csökkentik jelentősen a velük szembeni antitestek reaktivitását a P. falciparum CS-proteinnel. Például Dame és munkatársai (Science 225,593 /1984/) világosan kifejtik, hogy a P. falciparum természetes CS-proteinjének 41 ismétlődő tetrapeptid egysége közül 37 szekvenciája Asn-Ala-Asn-Pro, míg 4 tetrapeptid szekvenciája Asn-Val-Asp-Pro - az utóbbi rövidítések közül Val jelentése valin és Asp jelentése aszparaginsav -. A polipeptid ismétlődő egységeinek előnyösen több, mint fele úgynevezett működő szekvenciának, azaz -Asn-Ala-Asa-Pro- szekvenciának felel meg.
A találmány szerinti eljárással előállított polipeptid előnyösenkb. 16-112ismétlődő egységet tartalmaz.
A találmány szerinti eljárással előállított polipeptid hibrid is lehet, vagyis nem-CS-protein ismétlődő egységet tartalmazó fúziós polipeptid. A fenti nem-CS-protein ismétlődő szekvencia hordozó molekulaként szolgálhat, az immunogén tulajdonságok fokozására, vagy a rekombináns mikroorganizmusban a klónozás és expresszió megkönnyítésére. Másik lehetőség, hogy a fenti kiegészítő szekvenciák más sporozoit-immunogénként, más Plasmodiumimmunogénként és/vagy más nem-Plasmodium-immunogénként szolgáló egy vagy több helyet hordoznak, A találmány csak azokra a CS-proteinekrenem vonatkozik, amelyek gyakorlatilag hasznosítható mennyiségben nem fejeződnek ki megbízhatóan E. coliban, és nem szükségesek a P. falciparum elleni immunizáláshoz.
A találmány szerinti eljárással közelebbről az alábbi polipeptidek állíthatók elő:
Rtet32 polipeptidek, amelyek legalább 16 ismétlődő egységet tartalmaznak, és azok C-terminális végéhez a pBR322 tetraciklin-rezisztencia (tetR) génjéből származó kb. 32 N-terminális aminosav kapcsolódik;
-2HU 201803 Β
Rtet86 polipeptidek, amelyek legalább 16 ismétlődő egységet tartalmaznak, és C-terminális végükhöz egy tetR gén termék van fuzionálva;
RNS1 polipeptidek, amelyeklegalább 16 ismétlődő egységet tartalmaznak, és azok C-terminális végéhez az NS1 227 aminosavja kapcsolódik;
NSIRpolipeptidek, amelyeklegalább 16 ismétlődő egységet tartalmaznak, és azok N-terminális végéhez az NS1 N-terminális 81 aminosavja van fuzionálva;
RG polipeptidek, amelyek legalább 16 ismétlődő egységet tartalmaznak, és azok C-terminális végéhez egy glicin-aminosavmaradék kapcsolódik;
RLA polipeptidek, amelyek legalább 16 ismétlődő egységet tartalmaznak, és azok C-terminális végéhez egy leucin-arginin aminosav-maradék kapcsolódik;
RN polipeptidek, amelyek legalább 16 ismétlődő egységet tartalmaznak, és azok C-terminális végéhez egy Asn-Thr-Val-Ser-Ser- szekvencia kapcsolódik
A CS-protein ismétlődő egységeket genetikailag kódoló szekvenciát ismert módon állítjuk elő, például szintézissel; vagy, előnyösebben, P. falciparumból a m-RNS reverz transzkripciójával, például Ellis és munkatársai (Natúré 302,536/1983/) módszerével; vagy a P. falciparum genom DNS-éből származó érintetlen gén közvetlen klónozásával, például Dame és munkatársai fent idézettmódszere szerint. Az 1 .a ábra a CS-proteint kódoló régiót szemlélteti. AP. falciparumot és annak sporozoitjait fertőzött emberből vagy moszkitóból nyerhetjük.
A CS-proteint vagy annak egy részét kódoló szekvencia klónozása után ismert módon előállíthatjuk annak egy al-fragmentumát, amely az ismétlődő egységet vagy annak egy részét kódolja. A CS-protein génben levő megfelelő hozzáférhető restrikciós helyeket az la. ábrán szemléltetjük Előnyösek az Xho Π helyek Az Xho Π-vel végzett hasítással egy
N-Asp-Pro -[(Asm-Ala-Asn-Pro) i s(Asn-ValAsp-Pro) i ]n-C képletű, 16 ismétlődő egységet kódoló szekvencia válik szabadddá, a fenti képletben n értéke 1. Több tandem XHo Π fragmentumot a megfelelő orientációban használva hosszabb ismétlődő egységeket kapunk, azaz a fenti képletben n értéke
1-nél nagyobb lesz.
A szintetikus eljárások jól ismertek, és kereskedelmi forgalomban levő DNS-szintetizátorok alkalmazásával végrehajthatók Szintézissel előállítható olyan oligonukleotid, amely lényegében a fenti aminosavaknak megfelelő kodonokat tartalmazza, és ugyanazon Xho Π végeket vagy más hasítási helyeket tartalmaz a végeken. A fenti szintetikus oligonukleotidok eltérhetnek a természetes 64 kodontól, és vagy ugyanezen aminosavakat kódolhatják, vagy egy olyan polipeptidet, amelyben kis számú, előnyösen kb. nyolcnál kevesebb eltérő aminosavvan, feltéve, hogy ezzel a polipeptid immunológiai védőképessége nem csökken jelentősen. A szintetikus kódoló szekvencia például a teljes működő szekvenciát kódolja, amelynek képlete (-Asn-Ala-Asn-Pro-)n, és n értéke legalább 16.
A polipeptidet kódoló szekvenciát egy E. coli expressziós vektorba illeszthetjük, amelyek többsége ismert és hozzáférhető. A találmány szerinti polipeptidek magas szintű expressziója E. coliban meglepő, a termék szokatlan aminosav-összetétele - kb. 50% aszparagin, 25% alanin és 25% prolin - miatt. Mint azt alább ismertetjük, tapasztalataink szerint a kódoló szekvencia jól cxpresszálható a lambdaPL promoteréböl és a lambda dl riboszoma-kötőhelyéből álló regulátor elem használatával, amint azt a pASl plazmid tartalmazza (Rosenberg és munkatársai: Meth. Enzym. 101,123 /1983/ és Shatzman és munkatársai: Experimental Manipulation of Gene Expression, szerk. M. Inouye, Academic Press, New York, 1982). ApASl hordozza a replikáció pBR322 kezdetét, egy ampicillin-rezisztencia markert, és a lambdából származó fragmentumoksorát, beleértve a PL-t, N-antiterminációs funkciójú felismerő helyeket (NutL és NutR), az rho-fűggő transzkripciós terminációs szignált (tRl) és a cfi riboszoma-kötőhelyet, amely magában foglalja a cH transzlációt iniciáló helyet, amelynek G-maradékát közvetlenül egy Bam Hl hasítási hely követi. A pASl a pKC30cII-ből származtatható oly módon, hogy a pKC30cH cH-pBR322 csatlakozásánál levő Bam Hl hely és a cH ATG közötti nukleotidokat töröljük, és a molekulát újra összekapcsoljuk, hogy a Bam Hl helyetközvetlenülazATG-tőllefeléregeneráljuk.A pKC30dI-t úgy szerkeszthet jük meg, hogy a lambda
1,3 kb-ből álló Hae fragmentumát - amely a cH gént hordozza - a pKC30 Hpa I helyébe illesztjük, Rosenberg és munkatársai, illetve Shatzman és munkatársai fent idézett módszerei szerint. A pKC30-at Shimitake és munkatársai (Natúré 292,128 /1981/) ismertették, ez egy pBR322 származék, amely a pBR322 tetR génjében a Hind ül és Bam Hl helyek közé illesztve egy 2,4 kb-ból álló lambda Hind ΙΠBam Hl fragmentumot tartalmaz. A pAS 1-hez hasonló szerkezetet ismertettek Courtney és munkatársai (Natúré 373, 149/1985/) is. ApASl az American Type CultureCollection-nél (Rockville,Maryland, Amerikai Egyesült Államok) van letétbe helyezve, ATCC 39262 számon. A találmány szerinti expressziós vektort úgy állítjuk elő, hogy a kódoló szekvenciát működőképes helyzetben - azaz helyes orientációban és megfelelő leolvasási rendben - ismert módszerrel egy E. coli expressziós vektor regulátor deméhez kötjük.
A fenti módon kifejeződött polipeptidet a szokásos fehérje-elválasztási módszerekkel választjuk el és tisztítjuk az azt termelő tenyészetből. A tisztítást például az alábbi lépésekből álló djárással végezhetjük: 1) a sejteket clroncsoljuk, 2) a sejt-törmeléktől megtisztítjuk a rendszert, 3) a találmány szerinti eljárással előállított polipeptideket elválasztjuk a tisztított sejt-extraktumban levő egyéb polipeptidektől, 4) a maradék szennyeződést, így a maradék polipeptidet, szénhidrátot, nukleinsavat és/vagy lipopoliszacharidot egy befejező tisztítási művelettel eltávolítjuk.
Az első lépést úgy hajthatjuk végre, hogy például lizozimet vagy más lizáló vagy pcrmeabillzáló szert adunk a rendszerhez, vagy a sejteket mechanikusan vagy ultrahangos kezeléssel roncsoljuk el. Az extraktum tisztítására szolgáló centrifugálás vagy ult3
-3HU 201803Β raszűrés előtt felületaktív szert adunk a rendszerhez, a találmány szerinti eljárással előállított polipeptidek oldatban tartására.
A találmány szerinti eljárás egyik lényeges elemét az a felismerés képezi, hogy a találmány szerinti eljárással előállított bizonyos polipeptideket úgy választhat juk el igen nagy hatékonysággal az egyéb polipeptidektől, ha a tisztított extraktumot a protein oldatban tartására adott detergens beadagolása után közel 80 ’C-ra melegítjük. Azt tapasztaltuk, hogy ha az extraktumot 80 ’C-on legalább 4 percen át melegítjük, csaknem az összes bakteriális polipeptid kicsapódik, anélkül, hogy a lényegében az ismétlődő egységekből álló, vagy az ismétlődő egységek más, nem hőre denaturálódó szekvenciákhoz való kapcsolódásából álló polipeptidek denaturálódnának. A denaturált bakteriális polipeptideket centrifugálással tömöríthet jük és eltávolíthatjuk A fenti eljárás azRtet32, RG, RLA és Rteteó polipeptidek tisztítására használható. Közelebbről, a fenti eljárást sikeresen alkalmaztuk az R16tet32, R32tet32, R48tet32, R64tet32, R48G, R32LA és Rlóteteó tisztítására, amint azt a példákban ismertetjük, míg azRlóNSl és R32NS1 melegítése ezen polipeptidek kicsapódását okozta.
A találmány szerinti eljárással előállított polipeptidet tovább tisztíthatjuk, például szelektív kicsapószer hozzáadásával, majd egy kromatográfiás lépéssel, például ioncserélő kromatográfiával vagy fordított fázisú nagynyomású folyadékkromatográfiával.
A találmány szerinti eljárással előállított vakcinában a találmány szerinti eljárással előállított polipeptid vizes, előnyösen fiziológiáspH-npufferőit oldatát közvetlenül használhatjuk. A találmány szerinti eljárással előállított polipeptidet - liofilizálás után vagy anélkül - különféle ismert adjuvánsokon is abszorbeálhatjuk vagy azokkal keverhetjük. A fenti adjuvánsok többek között alumínium-hidroxid, muramil-dipeptid vagy szaponinok, így Quil A lehetnek. További alkalmazási módként például a polipeptid mikrorészecskékbe - például liposzomákba - való kapszilázását említhetjük. Úgy is eljárhatunk, hogy a polipeptidet egy immunstimuláló makromolekulával - például elölt Bordatellával vagy egy tetanusz toxoiddal - kapcsoljuk össze.
A vakcinák előállítását például a New Trends and Development in Vaccines, szerk. Voller és munkatársai, Üniversity Park Press, Baltimore, Maryland, Amerikai Egyesült Államok, 1978 irodalmi helyen ismertetik általánosan. A liposzomákba való kapszulázást például Fullerton (US-PS 4 235 877) ismertette. A proteinek makromolekulákhoz kapcsolását például Likhide (US-PS4 372 945) és Armor és munkatársa (US-PS 4 474 757) írtak le. A Quil A használatát például Dalsgaard ésmunkatársai (Acta Vet. Scand. 18,349/1977/) munkájából ismerjük.
A vakcina-dózisokban a polipeptid mennyiségét úgy választjuk meg, hogy azzal az immunprotektív válasz elérhető legyen, a szokásos vakcinák hátrányos mellékhatásai nélkül. A fenti dózis az alkalmazott specifikus polipeptidtől, valamint attól függ, hogy a vakcina adjuvánst is tartalmaz-e. Általában minden egyes dózis 1-1000 μg, előnyösen 10-200 μg polipeptidet tartalmazhat. Az egyes vakcinák op4 timális dózisát szokásos módon, például az antitesttiter meghatározásával vagy a kezelendő alany más válaszának mérésével határozhatjuk meg. Az első vakcinálást követően a kezelt alany előnyösen kb. 4 hét múlva újabb adagot kap, és ezt követően minden hónapban megismételjük az adagolást, egészen a fertőzésveszély fennállásáig.
A találmányt közelebbről - a korlátozás szándéka nélkül - az alábbi példákkal kívánjuk ismertetni. A
CS-proteint kódoló szekvenciát James Webrtől (Waltér Reed Army Institute fór Research) kaptuk, egy standard E. coli klónozó vektorba, a pUC8-ba (Bethesda Research Laboratories, Inc., Gaithersburg, MD, Amerikai Egyesült Államok) az Eco Rí helynél illesztett XmPF 1 (Dame és munkatársai, fent idézve) 2337 bázispárból álló Eco Rí fragmens formájában (lásd la. ábra). A kapott pUC8 származékot a továbbiakban pUC8 1. klóronnak nevezzük.
1. példa
CS-protein származék μg tisztított pUC8 1. klón plazmid DNS-t 100 egység Stul 100 egység Rsal restrikciós endonukleázokkal emésztünk, 400 μΐ puffer-közegben (amelynek összetétele 50 mmól/1 Tris, pH 7,5, 50 mmól/1 NaCl, 1 mmól/1 ditiotreitol (DTT) és 10 mmól/1 MgCb), 37 ’C-on, 1,5 órán át. A kapott, a CS-protein első 18 aminosavját kódoló, 1216 bázisból álló fragmentumot 5% poli(akril-amid)-gélen elektroforézissel (PAGE) választjuk el.
pgpASl expressziós vektor 200 μΐ puffer-közegben 1,5 órán át, 37 ’C-on 25 egység Bam Hl restrikciós endonukleázzal emésztünk. A szétvágott plazmidot ezután DNS-polimeráz nagy fragmen35 tummal (Klenow, 5 egység; 20 mmól/1 Tris-HCl, pH 7,5,7 mmól/1 MgCb, 60 mmól/1 NaCl, 6 mmól/12merkapto-etanol és 0,25 mmól/1 a négy dezoxinukleotid-trifoszfát mindegyikéből; 25 ’C, 15 perc kezeljük, a Bam Hl helynél a vég betöltésére.
A CS-gén fragmentum 1 μg-ját ezután 100 ng fenti vektorral kötjük össze, 30 μΐ ligáz-pufferben (50 mmól/1 Tris, pH 7,5, 1 mmól/1 DTT, 10 mmól/1 MgCl2, 100 μπιό1/1 rATP), 1 egység T4-DNS ligáz segítségével, 16 órás reakcióidőt alkalmazva, 4 °C45 on. A ligációs elegyet E. coli MM294C1+ törzsbe (Ann. N.Y., Acad. Sci. 478,233-248) transzformáljuk, ampicillin-rezisztens telepeket kapunk, és ezeket vizsgáljuk a CS-gén fragmentum pASl-bc való beépülése szempontjából. Egy megfelelő szerkeze50 tűnek talált plazmidot (pCSP) azonosítás után E. coli
N5151 törzsbe transzformálunk (clts857) (Mol.Cell.Biol. 5(5), 1015-1024, 1985) és a teljes hosszúságú CS-protein expressziója szempontjából vizsgáljuk. (A protein N-terminálisánál a 18 amino55 sav törlése az autentikus CS-protein hasított szignál-peptidjének felelne meg.) A sejteket Luria-Bertani tápközegben (LB) tenyésztjük 32 ’C-on, amíg a tenyészet abszorpciója 650 nm-en (Aöso) eléri a 0,6 értéket, majd a hőmérsékletet 2 órán át 42 ’C-on tartjuk, az expressziós plazmid PL-promotere transzkripciójának beindítására és a CS-protein származék ezt követő transzlációjára. A sejttenyészetből 1 ml-es mintákat veszünk, tömörítjük, lizáló pufferben (10 mmól/1 Tris-HCl, pH 7,8,25 térfogat% glicerin, 2% 2-merkapto-etanol, 2% nátrium-dode-4HU 201803 Β
Ί cil-szulfát (SDS), 0,1% brómfenolkék) újraszuszpendáljuk és 105 ’C-os melegítő egységben 5 percen át melegítjük. A proteineket SDS-PAGE segítségével elválasztjuk (13% akril-amid, 30:0,8 akrilamid:bisz(akril-amid) arány). A proteineket nitrocellulózra visszük és az E. coliban termelődött CSprotein ún. western biot analízissel mutatjuk ki, a P. falciparum tetrapeptid ismétlődő szakaszával reagáló öt monoklonális antitestet használva (Dame és munkatársai fent idézett munkája).
2. példa
R16tet86 polipeptid
100 pg tisztított pUC8 1. klón DNS-t 40 egység Xho II restrikciós endonukleázzal emésztünk, 400 pl puffer-közegben, 37 'C-on, 16 órán át. ACSprotein 16 tetrapeptid ismétlődő egységét kódoló, 192 bázispárból álló fragmentumot ezután PAGE segítségével izoláljuk. ApASl expressziós vektortaz
1. példában ismertetett módon Bam Hl restrikciós endonukleázzal hasítjuk. 1 p.g 192 bázispárból álló Xho Π fragmentumot 100 ng pAS 1-hez kötünk, annak Bam Hl helyén, az 1. példában leírt módon. A ligációs elegyet E. coli MM294Q+ törzsbe transzformáljuk. Egy, a pASl Bam ΙΠ helyén megfelelő orientációban egy 192 bázispárból álló Xho Π fragmentumot tartalmazó klórt azonosítottunk, a plazmid Bam HI-Hind Π fragmentumának poli(akrilamid) gél-elektroforézisével, amelynek Hin Π helye a tetR géntől lefelé helyezkedik el, és a Bam Hl hely a cll ATG és a beillesztett fragmentum csatlakozásánál van a helyesen orientált plazmidban. A fenti pR16tet86 plazmid szerkezete az alábbi: pBR322 PL ismétlődő egység tetR S pBR322
BH BB ahol BH jelentése Bam Hl hely, B jelentése Bán Π hely és 8 jelentése terminációs kodon.
A pR16tet86-tal transzformáljuk az E. coli N5151 törzset (clts857) és a CS-protein tetrapeptid ismétlődő egységének termelődése szempontjából vizsgáljuk, western biot analízissel. A képződött protein szerkezete az alábbi:
N-Met-Asp-Pro- (Asn-Ala-Pro)is-(Asn-ValAsp-Pro)i-T86-C ahol T86 a pASl-ben levő tetraciklin rezisztencia génből származó 86 aminosavat jelenti. Az N-terminális metionin (Met) aminosavmaradék szintén a vektorból származott, közelebbről a cll protein iniciációs kodonból.
24. példa
R32tet86 és R48tet&6polipeptidek pg tisztított pR16tet86plazmid DNS-t 25 egység Bam Hl restrikciós endonukleázzal emésztünk 200 pj puffer-közegben, 37 ’C-on, 2 órán át. A fenti DNS 100 ng-ját ezután 1 pg fent ismertetett 192 bázispárból álló Xho Π fragmentummal kapcsoljuk össze. Előállítjuk az alábbi szekvenciájú polipeptideket kódoló expressziós vektorokat:
N-Met-Asp-Pro- [Asn-Ala-Asn-Pro) 15-(AsnVal-Asp-Pro) i ]n-T86-C, ahol n értéke 2 (R32tet86), vagy n értéke 3 (R48tet8ó), és azokat E. coliban fejezzük ki. Azokat a pASl kiónokat, amelyekben n értéke 2 vagy 3, elválasztjuk azoktól a kiónoktól, amelyekben n értéke 2-től vagy 3-tól eltérő, mint azt fent ismertettük. Mindenegyes vizsgált klón ahelyes orientációban tartalmazza a beépült fragmentumot. Mind az R32tet86, mind az R48tet86 közel azonos mértékben expresszálódott az R16tet86-tal, amint azt immun-lenyomatos analízissel (immunoblotting) kimutattuk.
Az Rtet86proteinek immun-lenyomatos analízisével kimutatható volt a termékek heterogén összetétele, amelyet Coomassie Brilliant Blue R-250-es festéssel nem lehetett látni. Ezek a proteinek úgy tűnik, hogy közel fele mennyiségben az alább ismertetett Rtet32 polipeptidekből állnak. Úgy tűnt, hogy a kisebb degradációs termékek mérete arányos a kiónban levő tetrapeptid ismétlődő egységek számával. A fenti proteinek instabilitása a heterológ COOH-terminális vég degradációjának tulajdonítható valószínűleg.
3. példa
R16tet32 polipetid pg tisztított pR16tet8öDNS-t 25 egység Banll restrikciós endonukleázzal hasítunk, 200 pl pufferközegben, 37 C-on, 2 órán át. A fenti hasított DNS 100 ng-ját ezután ligázzal zárjuk. A fenti művelet eredményeként töröltünk egy 14 bázispártról álló Bán Π fragmentumot, és egy terminációs kodon alakult ki éppen a megmaradt Bán II helytől lefelé. Az így kapott pRl 6tet 32 plazmidot használjuk fel E. coli N5151 törzsben az R16tet32 kifejezésére, majd a tenyészetből tisztítjukazR16tet32-t.AzR16tet32-t tartalmazó E.coli 30 g-ját (nedves tömeg) 200 ml A-puffrben (50 mmól/1 Tris-HCl, pH 8,0, 2 mmól/1 etiléndiamín-tetraecetsav (EDTA), 0,1 mmól/1 ditiotreitol, 5 térfogat% glicerin) újraszuszpendáljuk. 0,2 mg/ml végkoncentrációban lizozimet adunkhozzá, és azelegyet jégen 30 percen át inkubálva lizáljuk a sejteket. Az elegyet ezután Waring homogenizátorban 3 percen át magas fordulatszámot alkalmazva kezeljük, majd 1 percen át Brason 350 szonikátorban ultrahangos kezeléssel szétnyirjuk a bakteriális DNS-t. 0,1 vegyes% végkoncentrációban nátrium-dezoxi-kolátot adunk az elegyhez, és 30 percen át centrifugálva eltávolítjuk a sejt-törmelékeket. A felülúszót egy lombikban összegyűjtjük és forró vízfürdőn 10 percen át inkubáljuk, majd 12000g-vel 30 percen át centrifugáljuk. Azt tapasztaltuk, hogy közel az összes E. coli protein kicsapódott a hőkezelési lépés alatt, és kiülepedett a centrifugáláskor, míg az R16tet32 protein oldatban maradt és a felülúszóban gyűlt össze. A felülúszót öszszegyűjtjük és 20%-os telítettséget biztosító koncentrációban lassan ammónium-szulfátot adunk hozzá. A fenti módon szelektíven kicsapódott R16tet32-t centrifugálással (12000 g, 30 perc) öszszegyűjtjük. Ezen a ponton az R16tet32 protein 95%-nál nagyobb tisztaságú, az egyéb szennyező bakteriális proteinek tekintetében.
Az egyéb anyagok - például proteinek, szénhidrátok, nukleinsavak vagy lipopoliszacharidok - által okozott maradék szennyezést egy végső kromatográfiás tisztítással - például ioncserélőskromatográfiával, fordított fázisú nagynyomású folyadékkromatográfiával, fenil-Sepharose kromatográfiával,
-5HU 201803Β méret szerinti elválasztással stb. - távolíthat jukel. A képződött tisztított R16tet32 közel 5%-át teszi ki az összes E. coli proteinnek, azaz 30-60 mg/1 koncentrációjú, amintaztCoomassieBluefestésselmegállapítottuk.
Az Rl 6tet32 szekvenciája az alábbi:
N-Met-Asp-Pro- [(Asna-Ala-Asn-Pro) 1 s(AsnVal-Asp-Pro)i]n-T32-C, n értéke 1 és T32 a tetraciklin rezisztencia génből származó 32 aminosavat jelenti. Közelebbről, a T32 szekvenciája az alábbi:
-Leu-Arg-Arg-Thr-His-Arg-Gly-Arg-His-His
-Arg-Arg-His-Arg-Cys-Gly-Cis-Trp-Arg-Leu-Ty r-Arg-Arg-His-His-Arg-Trp-Gly-Arg-Ser-Gly-Se r-C, a megmaradt Bán Π hely a 30. és 31. aminosav között van.
3A. példa
R32tet32& R48tet32polipeptidek
Lényegében a 3. példa szerint eljárva állítjuk elő az R32tet32-t és R48tet32-t (azaz egy olyan R16tet32-nek megfelelő szekvenciát, amelyben n értéke 2, illetve 3) E. coliban, és azonos hozammal és tisztasági fokkal izoláljuk, mint azR16tet32-t. Kiindulási vektorként pR32tet86-ot, illetve R48tet86-ot használunk.
3B. példa
R64tet32 és R80tet32 polipeptid p,g tisztított pR48tet32 plazmid DNS-t 25 egység Bam ΗΙ-val emésztünk 200 μΐ puffer-közegben, 37 ’C-on, 2 órán át. 100 ng fenti DNS-t ezután 1 ^g fent ismertetett, 192 bázispárt tartalmazó Xho Π fragmentummal kapcsolunk össze. Előállítjuk az alábbi szekvenciájú polipeptideket kódoló plazmid expressziós vektorokat:
N-Met-Asp-Pro- [(Asn-Ala-Asn-Pro) 1s-(AsnVal-Asp-Pro)i]nT32-C, ahol n értéke 4 (R64tet32) vagy n értéke 5 (R80tet32), ésazokatE. coliban kifejezzük. Azokat apASl kiónokat, amelyekben n értéke 4 vagy 5, azoktól a kiónoktól, amelyekben n értéke 4-től vagy 5 tői eltérő, a fent leírt módon elválasztjuk. Az R64tet32, és az R80tet32 közel azonos mértékben expresszálódott, mint az R48tet32. Az R64tet32-t lényegében az R16tet32, R32tet32 és R48tet32 előállításával kapcsolatban ismertetett módon tisztítjuk.
3C. példa
R96tet32 és Rll 2tet32 polipeptid
Lényegében a 3B. példában leírtak szerint eljárva állítjuk elő az R96tet32 és Rl 12tet32 polipeptideket (amelyek képletében n értéke 6, illetve 7), az R48tet32-vel közel azonos mennyiségben.Kiindulásí vektorként pR80tet32-t használunk.
Noha a tisztított Rtet32 polipeptidekben észlelhető bizonyos mértékű heterogenitás immun-lenyomatos módszerrel a reakcióképes fő foltok összhangban vannak a protein-festéssel kimutatható sávokkal. Az SDS-PAGE módszerrel meghatározott molekulatömegek a vártnál kb. kétszer nagyobbak, noha az egyes proteinek vándorlása minden egyes előállított polipeptid esetén arányos a tetrapeptid ismétlődő egységek számával. Néhány esetben meghatároztuk az Rtet32 peptidek aminosav-összetételét is, amelyek a várt értékeknek megfeleltek.
4. példa
R16G polipeptid
A pAS 1 Bam Hl helyére egy
5’-AGTCCCGGGTGACTAGCTGA -3’
3’ GGCCCACTGACTGACTCTAG -5’ szekvenciájú szintetikus kötőt illesztve pTerm-et állítunk elő. 10 pg pASl-et 25 egység Bam Hl-vel emésztünk. 100 ng Bam ΙΠ-vel hasított pASl-et 20 ng szintetikus kötővel kötünk össze, és a pTerm plazmidot mint a pASl Bam Hl helyén egy beépült kötő-szekvenciát tartalmazó plazmidot azonosítjuk. A fenti vektorban megmarad a Bam Hl hely, és a TGA terminációs kodonoknak a cH protein ÁTG iniciációs kodonjától lefelé való beillesztését eredményezi, mind a három leolvasási rendszerben.
ApRl 6G plazmidot úgy állítjuk elő, hogy a pUC8
1. kiónjából származó 192 bázispárból álló Xho Π fragmentumot a pTerm Bam Hl helyre illesztjük, és kiválasztjuk a fent ismertetett módon azokat a kiónokat, amelyek megfelelő orientációban tartalmaznak egyetlen Xho Π betoldást.
A pR16G-t lényegében a fent ismertetett módon klónozzuk és fejezzük ki E. coliN5151 törzsben.
Az Rl 6G szekvenciája az alábbi:
N-Met-Asp-Pro- [(Asn-Ala-Asn-Pro) 15-(AsnVal-Asp-Pro) i]n-Gly-C, ahol n értéke 1.
A fenti proteinben nincs aromás gyűrűs aminosavmaradék, így a képződött polipeptid mennyiségét nem tudjuk Coomassie Brilliant Blue R-25-es festéssel vizuálisan meghatározni. A CS-proteinre specifikus 5 monoklonális antitesttel végzett immun-lenyomatos analízis (lásd Dame és munkatársai fent idézett munkája) szerint a kívánt polipeptid közel 1%-át teszi ki az összes sejt-proteinnek, az R16tct32-vel összehasonlítva, amely utóbbinál lehetséges Coomassie Brilliant Blue R-25-es festéssel meghatározni a protein-tartalmat.
4A. példa
R32G, R48G, R64 G, R80G és R112G polipeptid
Az R32G, R48G, R64G, R80G és Rl 12G polipeptideket - amelyek szekvenciája azonos azRl 6Gvel, de n ér teke 2,3,4,5, illetve - a 4. példában ismertetett módon E. coli N5151 törzsben termeljük. A fenti polipeptidek közel azonos mennyiségben képződnek, mint az R16G. Az R48G-t lényegében a 3. példában leírtak szerint tisztítjuk.
5. példa
Rl 6LA és R32LA polipeptid
A pAS 1 Bam Hl helyére egy
5’-AGTCCCGCTGCGTT -3’
GCGACGACAACTAG-5’ szekvenciájú szintetikus kötőt illesztve pTerm2-t állítunk elő, lényegében a 4. példában leírt módon. A pTerm2-ben megmarad a Bam Hl hely. A pUC8 1. kiónból származó 192 bázispárból álló Xho Π frag-6HU 201803Β mentumot a fent ismertett módon illesztjük be a pTerm2 Bam Hl helyére. ApRl 6LA és pR32La kiónokat, amelyek egy, illetve kétXhoII beillesztést tartalmaznak a megfelelő orientációban, lényegében a fent ismertetett módon választjuk ki. Az R32LA-t lényegében a 3. példában leírt módon tisztítjuk
ApR16LA-t és pR32LA-tafenti ismertetettmódon klóznozzuk és fejezzük ki E. coli N5151 törzsben.
Az R16LA és R32La szekvenciája az alábbi:
N-Met-Asp-Pro- [(Asn-Ala-Asn-Pro) 15-(AsnVal-Asp-Pro) i ]n-Leu-Arg-C, ahol n értéke 1, illetve 2. A C-termínális leucin és arginin a pTerm2-ben levő szintetikus kötőből származik.
Az R16LA közel 1%-át teszi ki az E. coli összes proteinjének, míg az R32La az összes sejt-proteinnek közel 5%-a.
6. példa
R16NS1 polipeptid
A pAS2deltaEH plazmidot úgy állítjuk elő, hogy a pAS 1 pBR322 eredetű nem létfontosságú Eco Rí Hind ΙΠ régióját töröljük 10 pg pASl-et 20 egység Eco Rl-vel és 20 egység Hind ΠΙ-mal hasítunk, 200 pl puffer-közegben, DNS-polimerázzal (Klenow) kezeljük, ligázzal zárjuk, és E. coliba transzfomráljuk, lényegében a fent ismertetett módon. Azonosítunk egy olyan kiónt, amelyből a 29 bázispárból álló Eco Rí - Hind ΙΠ fragmens törölve van.ApASldeltaEH Bam Hl helyére beillesztjük a pAPR8011236 bázispárból álló Bam Hl fragmentumát (Young és munkatársai: Proc. Natl. Acad. Sci. U.S A,, 80,6105 /1983/), amely az influenza vírus (A/PR/8/34) NS1 kódoló régióját tartalmazza, ami 861 virális eredetű bázispárból és a pBR322-ből származó 375 bázispárból áll. A kapott pASldeItaEH/801 plazmid az autentikus NSl-et (230 aminosav) kódolja. A fenti plazmidban megmarad a Bam Hl hely, a cll transzlációt indító hely és az NS1 kódoló szekvencia között.
pg pASldeltaEH/801 plazmidot 20 egység Eco Rl-vel és 20 egység Sál I-gyel hasítunk, 200 pl nagy ionerősségű pufferben (50 mmól/1 Tris-HCl, pH7,5,1 mmól/lDTT, 10 mmól/1 MgCl2,100 mmól/1 NaCl), 37 ’C-on 2 órán keresztül, DNS-pollmeráz nagy fragmentummal (Klenow) kezeljük és ligázzal zárjuk, lényegében a fenti leírtak szerint. Izolálunk egy olyan kiónt, amelyből a650 bázispárt tartalmazó EcoRI-SalIrégiótörölvevan.AfentipNSldeltaES plazmid az autentikus NS 1 -et kódolja.
A pR16NSl plazmidot úgy állítjuk elő, hogy a pUC8 1. kiónjából származó 192 bázispárt tartalmazó Xho Π fragmentumot a pNSldeltaES plazmid Bam Hl helyére illesztjük, és lényegében a fent ismertetett módon kiválasztjuk azokat a kiónokat, amelyek megfelelő orientációban tartalmaznak egyetlen Xho Π betoldást.
A pR16NSl-et E. coliban klónozzuk és kifejezzük, és az RÍ6NSl-et lényegében a fentiek szerint tisztítjuk, azzal az eltéréssel, hogy a forralást elhagyjuk.
AzRlőNSl szekvenciája az alábbi:
N-Met-Asp-Pro- [(Asn-Ala-Asn-Pro) i s-(AsnVal-Asp-Pro)i]n-N227, ahol n értéke 1 és N227 az NS1 -bői származó 227 aminosavat jelenti.
A fenti módon előállított R16NS1 készítményben az R16NS1 a protein-tartalom több, mint 80%ára becsülhető, a forralás vagy ioncserélős lépés nélkül. AzRlőNSl meglepően magas, közel 25%-át képezi az összes sejt-proteinnek.
6A. példa
R32NS1.R48NS1 ésR64NSl polipeptid
Az R32NSl-et (amelynek szekvenciája az Rl6NSl-ével azonos, azn értéke 2) lényegében a 3. példában leírtak szerint fejezzük ki E. coliban és tisztítjuk abból, a forralás elhagyásával. Az R32NS1 az R16NSl-gyel közel azonos mértékben képződik, cs tisztasága is közel azonos.
Az R48NSl-et (amelynek szekvenciája az R16NSl-ével azonos, és n értéke 3), és az R64NS1et (n értéke 4 az R16NS1 képletében) lényegében a fentiek szerint eljárva állítjuk elő E. coliban. Az R48NS1 közel 10%-át, azR64NSl közel 5%-át teszi ki az E. coli összes protein-tartalmának.
7. példa
NS1R48 polipeptid
A pR48tet86plazmldot Bam ΗΙ-vel hasítjuk és DNS-polimerázzal (Klenow) töltjük be a véget, lényegében a fent leírt módon. A plazmidot eztuán Bán Π-vel hasítjuk, a fent ismertetett módon, ily módon egy 672 bázispárból álló, 3 Xho fragmentumot hordozó fragmentum és 96 bázispár válik szabaddá a tetraciklin rezisztencia génből.
pg pASldeltaEH/801 plazmidot 20 egység Nco I-gyel hasítunk 200 pl nagy ionerősségű pufferben, 37 °C-on 2 órán át, és a véget DNS-polimeráz nagy fragmentummal (Klenow) töltjük be, a fent ismertetett módon. Az NSl-ben az Nco I hely a 81. aminosavnak megfelelő kodonban van. A plazmidot ezután Bán Π-vel hasítjuk a fent ismertetett módon, ezáltal töröljük a megmaradt NS1 kodonokat és a tetraciklin rezisztencia gén egy részét, és pASldelta/801-1 plazmidot kapunk.
A 672 bázispárból álló Bam Hl (betöltött végű) Bán Π fragmentumot a pASldetaEH/801-1 plazmádba illesztve állítjuk elő a pNS 1R48 plazmidot. A fentiplazmidotazelőzőekben ismertetett módon fejezzük ki E. coliban. A kapott NS1R48 szekvenciája az alábbi:
N-81N-Asp-Pro- [(Asn-Ala-Asn-Pro) 15-(AsnVal-Asp-Pro)i]n-T32-C, ahol 8 IN az NS1 N-terminális 81 amiuosavját jelenti, n értéke 3, és T32 jeletnése a fent megadott. Az NS 1R48 az összes sejt-protein közel 5%-át képezi.
8. példa
R32N polipeptid pg pR32NSl plazmidot 25 egység Hind ΙΠmal hasítunk, 200 pl puffer-közegben, 2 órán át 37 ’C-on, és a véget DNS-polimerázzal töltjük be, afent ismertetett módon, pR32NSl-l plazmidot kapunk. A Hind ΙΠ hely az NS 1 kódoló régiójában az 5. aminosav-maradékot kódoló kodonban van. 100 ng p32NSl-l -et ezután a fent ismertetett módon ligázzal zárunk. A kapott pR32N plazmid most egy TAA terminációs kodont tartalmaz az NS1 kódoló szekvencia 5. kodonjában. A pR32N plazmidot a fenti7
-7HU 201803Β ekben ismertetett módon használjuk az R32N polipeptid előállítására E. coliban.
AzR32N szekvenciája az alábbi:
N-Met-Asp-Pro- [(Asn-Ala-Asn-Pro) i s-(AsnVal-Asp-Pro)i]n-N5-C, 5 ahol n értéke 2 és N5 az NS1 génből származó 5 aminosavat jelenti. Közelebbről, az N5 az alábbi szekvenciának felel meg:
Asn-Thr-Val-Ser-Ser-C.
Az R32N az E. coli összes proteinjének közel 5%- 10 át teszi ki.
9. példa
Antitest-válasz -ELISA
AzR16tet32, R32tet32 és R48tet32 rekombináns 15 proteineket a fentiek szerint tisztítjuk, 0,01 mól/1 koncentrációjú foszfáttal puff erőit sóoldattal (pH 7,0) szemben (PBS) dializáljuk, alikvotokra osztjuk és -80 ’C-on tárol juk. Az előállított proteineket PBSsel, alumínium-hidroxiddal (alum) vagy komplett 20 Freund-féle adjuvánssal (CFA) összekeverve 0,5 ml-es dózisokat készítünk, amelyek protein-tartalma 50 gg. A CFA-t (GIBCO, Grand Island, New York,USA)ésantigéntPBS-ben 1:1 arányban emulgeáljuk, 30 perces keveréssel, mechanikus keverő- 25 berendezésben. Az alumot gyógyszerkönyvi tisztaságú alumínium-hidroxid-gélből készítjük, PBS-sel végzett hígítással. Az antigént 4 ’C-on, 12 órán át rotációs keverőben keverve adszorbeáljuk az alumon. A szuszpenziót további 12 órán át ülepedni 30 hagyjuk, majd a felülúszó megfelelő mennyiségét leöntjük, hogy0,80 mg Al-t és50 pg rekombináns proteint kapjunk dózisonként.
6-8 hetes C57B1/6 egereket (Jackson Laboratories, Bar Harbor, Maine USA) (csoportonként 5 álla- 35 tót) szubkután vagy intraperitoneális úton összesen 50 pg proteinnel immunizálunk. Az állatoknak az első immunizálás után 4 héttel ugyanezen módon újabb dózist adunk, azzal azeltéréssel, hogy azoknak az állatoknak, amelyek az immunogént CFA-ban 40 kapták, a proteint nem-komplett Freund-féle adjuvánsban (IFA) emulgeálva adjuk. Egy hét elteltével a farok elvéreztetésével kapott teljes vért összegyűjtve, 4 ‘C-on megakaszt juk és centrifugálással elkülönít jük és a felhasználásig -80 ’C-on tároljuk a szérű- 45 mókát.
Az egyes szérumok reakcióképességét egy 16 aminosavból álló szintetikus pepiiddel szemben amely a P. falciparum CS-protein négy ismétlődő egységének [(Asn-Ala-Asn-Pro)4] felel meg - en- 50 zimhez kötött immun-szorbens vizsgálattal (ELISA) vizsgáljuk, Dame és munkatársai (Science225, 593/1984/) módszere szerint. A mikrotitráló lemezek lyukainak bevonására marha-szérumalbuminhoz (BSA) kapcsolt szintetikus peptid anti- 55 gént használunk. 50 pl (0,1 pg) 0,01 mól/1 koncentrációjú foszfáttal puff erőit sóoldattal (pH 7,0) (PBS) hígított vizsgálandó antigént pipettázunk a polisztirol mikrotitráló lemezek (Immunion 2 DynatechLaboratories, Alexandria, VA, USA) lyukaiba, és egy 60 éjszakán át szobahőmérsékleten (kb. 22 ’C) tartjuk.
A lyukak tartalmát ezután leszivatjuk, gátló pufferral (BB, amelynek összetétele: 1,0% BSA, 0,5% kazein, 0,005% timerszol és 0,0005% fenolvörös PBSben) tölt jük fel és 1 órán át szobahőmérsékleten tart- 65 juk. Az egér-szcrumot sorozathígításos módszerrel BB-vel hígítjuk, és minden egyes lyukba 50 pJ-t mérünk belőle. A lemezeket szobahőmérsékleten 2 órán át inkubáljuk, majd a lyukakat leszivatjuk, háromszor mossuk PBS-0,05% Tween 20 (PBS-TW20) eleggyel és 50 pl, 10% hővel inaktivált emberi szérumot tartalmazó PBS-sel 1/500-szorosára hígított kecske anti-egér IgG-vel konjugált torma-peroxidázt (H+I) (Bio-Rad Laboratories, Richmond, CA, USA) mérünk az egyes lyukakba. Egy óra elteltével a lyukak tartalmát leszivatjuk, háromszor mossuk PBS-TW20-szal és 150 pl szubsztrátot (1 mg 2,2’azino-di(3-etil-benztiazolin-6-szulfonsav)/l ml
O, 005% hidrogén-peroxidot tartalmazó 0,1 mól/1 koncentrációjú cilrát-foszfát puffer, pH 4,0, a hidrogén-peroxidot közvetlenül felhasználás előtt adjuk a pufferhez) mérünk minden egyes lyukba. Egy óra elteltével 414 nm-en meghatározzuk az abszorpciót, ELISA lemez-leolvasó (Titertek Multiskan, Flow Laboratories Inc., McLcan, VA) segítségével.
AzR16tet32, R32tet32 ésR48tet32 polipeptidek mindegyike olyan antitest-termelést váltott ki, amely ELISA tesztben reakcióképes volt. Az R16tet32, önmagában alkalmazva, kevésbé volt immunogén tulajdonságú, mint az R32tet32 vagy az R48tel32. Az alum és a CFA növelte a három találmány szerinti eljárással előállított protein immunogén tulajdonságát, és még 102 000-en felüli titer esetén is észlelhető antitest legalább egy vizsgálatban.
10. példa
Antitest-válasz - IFA
A 9. példa szerinti antiszérum vizsgálataink szerint erősen reagált autentikus P. falciparum CS-proteinnel, indirekt immunofluoreszcens antitest vizsgálatban (IFA). P. knowlesi, P. cynomologi, P. viva és
P. gallunaceum elleni reaktivitást nem tapasztaltunk. Az R32tet32-vel szembeni antiszérum csekély reaktivitást mutatott P. berghei ellen. Ez az eredmény összhangban van Hockmeyer és munkatársai (Proc. 3d Int’l. Symp. Immunobioi. Proteins Peptides, szerk. Atassi, M.Z., Plenum New York /nyomdában/) azon megfigyelésével, miszerint a P. falcíparummal szembeni bizonyos Mab-ok (minőklonális antitestek) reagálnak a P. breghei sporozoitokkal IFA vizsgálatban.
A sporozotikat fertőzött moszkitók nyálmirigyéből preparáljuk, lényegében Bosworth (J. Párásítók. 61, 769 /1975/) módszere szerint, sóoldattal vagy 0,5% BSA-t tartalmazó Médium 199-cel (GIBCO) hígítjuk, hemaci tóméiért alkalmazva számoljuk és 2000-5000 sporozoit/10 pl értékre hígítjuk. 10 ples alikvotokat mérünk a többlyukú, nyomott IFA-lemez minden egyes lyukába, szobahőmérsékleten, levegővel szárítjuk és -80 ’C-on tároljuk.
Az IFA-vizsgálatokat azzal kezdjük, hogy 20 pl térfogatú, BB-vel 1/100-szorosára hígított szérumot szélesztünk a szárított sporozoitokat tartalmazó IFA-lemez lyukaiba. Nedves kamrában, szobahőmérsékleten, 20 percen át végzett inkubálás után a szérumoldatokat leszivatjuk és a lyukakat 2 csepp PBS-sel mossuk. Az egyes lyukakba ezután 20 pl, BB-vel l:40-szeresére hígított, fluoreszcein-izotiocianáthoz kapcsolt kecske anti-egér antitestet (Kirkegard és Perry, Gaithersburgh, MD, USA) adunk.
-8HU 201803Β
Szobahőmérsékleten 20 percen át tartó inkubálás után a lyukakat ismét kimossuk 2 csepp PBS-sel, glicerinben tárgylemezre helyezzük és UV-fényben 500-szoros nagyítással meghatározzuk a fluoreszcenciát.
7. példa
CSP-reakció
R16tet32-vel, R32tet32-vel és R48tet32-vel immunizált egerekből származó szérumok erős CSPpozitív reakciókat adnak, amint az az 1. táblázat adataiból látható. Adjuváns nélkül alkalmazva csak az R16tet32-re nem termelődik olyan antitest, ami pozitív CSP-reakciót adna, míg CFA-val vagy atommal együtt adva mind a három találmány szerinti eljárással előállított protein olyan antitest-termelést indukál, amely erős CSP-reakciókat ad.
1. táblázat: R16tet32, R32tet32 ésR48tet32 elleni antiszérum CSP-reaktivitása
Adjuváns Antiszérum R32tet32 R48tet32
R16tet32
- 0/25(-) 17/25(2+) 21/25(4+)
CFA 23/25(4+) 21/25(4+) 21/25(4+)
atom 25/25(4+) 25/25(4+) 16/27(2+-4+)
A CSP-reakciókat lényegében Vanderberg és munkatársai (Mii. Med. 734(Supp. 1), 1183 /1969/) módszere szerint hajtjuk végre. 5 μΐ mintát, amely 500-1000 moszkitó nyálmirigyből származó P. falciparum sporozitot tartalmaz Médium 199-ben újraszuszpendálva, mikroszkóp tárgylemezen 5 μΐ szérummal keverünk össze, vazelinnel szegélyezett zárólemezzel lefedjük és 37 ’C-on 1 órán át inkubáljuk. A reakciót fázis-kontraszt mikroszkóppal értékeljük ki, 400-szoros nagyítást alkalmazva. Minden egyes szérum-mintában 25 véletlenszerűen választott sporozoitot vizsgálunk meg, és feljegyezzük a CSP-pozitív organizmusok számát. A CSP-reaktivitás mértékét - Vanderberg és munkatársai fenti idézett módszere szerint meghatározva - zárójelben tüntet jük fel. A (-) érték azt jelenti, hogy nem észlelhető CSP-reaktivitás; (2+) szemcsés csapadék megjelenését jelenti a sporozoitokfelületén; (4+) hosszú, fonalszerű filamentum megjelenését jelzi a sporozoitok egyik végén. A normál egérszérum, vagy a csak CFA-val immunizált egérből származó szérum nem váltki kimutathatómértékű CSP-reakciót,párhuzamos vizsgálatokban.
12. példa
Hepatocita-blokkolás
A 9. példa szerinti szérumokat in vitro inváziógátlás szempontjából is megvizsgáljuk, az eredményeket a 2. táblázatban ismertet jük.
2. táblázat: P. falciparum sporozoitok HepG2 A16 hepatoma sejtek elleni inváziójának gátlása
Adjuváns Antiszérum
R16 R32 R48
46 95 92
CFA 76 92 94
alum 100 100 96
Az eredmények szerint az R32tet32 és R48tet32 proteinek erősen blokkoló hatású antitestek képződését indukálják, meg adjuváns nélkül is. Az R16tet32 kevésbé hatásos erősen blokkoló hatású antitestek kiváltásában, csak atomhoz adszorbeálva fejt ki megfelelő hatást. Afen ti eredmény összhangban van az R16tet32-re termelt antiszérum esetén megfigyelt gyenge CSP-reaktivitással és alacsony ELISA-titerekkel.
A sporozoit-invázió gátlásának vizsgálatát tenyésztett sejteken lényegében Hollingdale és munkatársai (J. Immunoi. 32,909 /1984/) módszere szerint végezzük. Az R16tet32-vel, R32tct32-vel és R48tet32-vel immunizált egerekből nyert szérumot azon képessége szempontjából vizsgáljuk, hogy milyen mértékben tudja meggátolni A P. falciparum sporozoitok invázióját tenyésztett sejtek ellen. A szérumot a tápközeggel hígítjuk és l;20-szoros végső hígításban (térfogat/térfogat) HepG2-A16 sejttenyészethez (Am. J. Trop. Med. Hyg. 32, 682-684 (1983) adjuk. A tenyészetekhez ezután 1200040000 moszkitó nyálmirigyből nyert P. falciparum sporozoitot adunk és 5% szén-dioxidot tartalmazó atmoszférában 37 'C-on 3 órán át inkubáljuk, Dulbecco-féle foszfáttal puffferőit sóoldattal (PBS) öblítjük, metanolban fixáljuk és PBS-sel kétszer öblítjük
Azokat a sporozoitokat, amelyek bejutottak a sejtbe, immunperoxidáz antitest vizsgálattal (IPA) tesszük láthatóvá (Hollingdale és munkatársai fent idézett munkája szerint). Az IPA vizsgálatot úgy végezzük, hogy a fixált tenyészetet először P. falciparummal szembeni Mab-bal (2F1.1, lásd Dame cs munkatársai fent idézett munkája) kezeljük, majd torma-peroxidázhoz kapcsolt nyúl anti-egér immun-globulinnal inkubáljuk és 3,3-diamino-benzidinnel megfestjük. A tenyésztett sejtekbe bejutott sporozoitok számát úgy határozzuk meg, hogy megszámoljuk a teljes preparátumban a sejten belüli parazitákat, Leitz mikroszkópot használva, 250-szeres nagyítás mellett, sötétkét színszűrővel. A vizsgálatokat vagy két, vagy három párhuzamos mintát vizsgálva hajtjuk végre, és minden egyes sejttenyészethez azonos számú sporozoitot adunk egy kísérlctsorozaton belül. Agátlást a találmány szerinti polipeptidekkel szembeni immunszérum által kifejtett sporozoit-inváziós %-os csökkentésével adjuk meg, normál egérszérum kontrollokhoz viszonyítva, ahol a CS-reaktív Mab 2F1.1 100%-os gátlást fejt ki a sporozoit-invázió ellen, 1/20-as hígításban.
A találmány szerinti eljárással előállított RLA, R16NS1 és R32NS1 rekombináns polipeptidekct is hasonlóképpen vizsgáltuk, ELISA és IFA vizsgálatokkal, és azt tapasztaltuk, hogy azok hasonlóképpen olyan antitestet indukálnak, amely reagál a 16 aminosavból álló szintetikus polipeptiddel, és így pozitív CSP-reakciót adnak. Előnyösek az R32tet32 és R32LA proteinek, viszonylagos homogenitásuk,
-9HU 201803Β képződési szintjük és könnyű előállításuk következtében.
A szintetikusan előállított vakcinák esetén elsődleges fontosságú, hogy a szintetikus immunogénnel szemben termelődő antitest felismeri-e az autenti- 5 kus molekulát, és vajon az antitest rendelkezik-e a megfelelő védelem kialakításához szükséges biológiai tulajdonságokkal. Az immunfluoreszcencia vizsgálat és a CSP-reakció eredménye szerint az E. coliban termelt polipeptidekkel szemben képződő 10 antitest reagál a sporozoit felületével, és így felismeri az autentikus GS-proteint. Állatkísérletekben és emberben is kimutatták, hogy a CSP-antitest jelenléte jelentősen összefügg a protektív immunitással.
Az a tény, hogy a találmány szerinti eljárással előál- 15 lított proteinek ellen termelődő an titestek gátol ják a humán hepatoma sejtek sporozoitok általi invázióját in vitro, igen jelentős. Hollingdale ésmunkatársai (lásd fent idézett munkájuk) kimutatták, hogy mind a P.falciparúm, mint a P. vivax elleni Mab-ok, vala- 20 mint a fenti malária-fajok ellen immunis emberekből nyert poliklonális szérum is gátolják a sporozoitinváziót. Ezért a sporozoitok invázió-gátlásának in vitro vizsgálata megfelelő vizsgálati módszert jelent a protektiv antitestek kimutatására. Afent ismerte- 25 tett vizsgálatok eredményei összességükben azt mutatják, hogy a találmány szerinti eljárással előállított vakcinát a humán gyógyászatban P. falciparum által okozott fertőzések elleni védelemre használhatjuk. 30
Á találmány szerinti eljárással előállított rekombináns proteinek immun-válasza Freund-féle komplett ad juvánssal vagy alummal egyaránt növelhető, amint azt ELISA-titerük, felületi reaktivitásuk (IFA és CSP) és sporozoit-inváziót gátló hatásuk 35 vizsgálatakor megállapítottuk. A Freund-féle komplett adjuváns emberben nem használható, mivel lázat okoz,granulomákat vált ki és tuberkulin-túlérzékenységet eredményez. Az alumot jelenleg már bevezetett vakcinákban - például a dif téria és a teta- 40 nusz toxoid valamint az egyik legújabb vakcina, a Hepatitis B esetén - is használják adjuvánsként. Hatékonysága és a humán gyógyászatban régóta tartó biztonságos használata bizonyított.
13. példa
Vakcina előállítása
A találmány szerinti eljárás értelmében például az alábbi módon készíthetünk vakcinát.
3%-os vizes, pufferolt alumínium-hidroxid-ol- 50 dathoz (10 mmól/1 nátrium-foszfát, 150 mmól/1 NaCl, pH 6,8; szűréssel sterilizálva) ugyanezen összetételű pufferben oldva adjuk keverés közben a talalmanyszerinti eljárássá! előállított polipeptidet, a pepiidre nézve 100 ug/ml, az Al -ra nézve
1,0 mg/ml végkoncentrációban. A pH-t 6,6 értéken tartjuk. Az elegyet egy éjszakán át 0 ‘C körüli hőmérsékleten tartjuk. 0,005% végkoncentrációban timerszolt adunk hozzá. A pH-t ellenőrizzük, és szükséges esetben 6,8-ra állítjuk. 60
Noha a találmány szerinti eljárást a fentiekben részletesen ismertettük, beleértve az előnyös megoldásokat is, nyilvánvaló, hogy a találmány oltalmi körét nem kívánjuk a fenti megoldásokra korlátozni, hanem az ismertetett megoldások összes módosítá- 65 sai is a találmány oltalmi körébe tartoznak.

Claims (9)

1. Eljárás az ember Plasmodium falciparum által okozott fér tőzése elleni vakcina hatóanyagát képező polipeptid előállítására, azzal jellemezve, hogy a Plasmodium falciparum CS-protein 16-112 AsnAla(Val)-Asn(Asp)-Pro ismétlődő egységét - ahol az Asn-Ala-Asn-Pro ismétlődő egység az összes ismétlődő egység legalább 80%-át teszi ki - kódoló DNS-szekvenciát és kívánt esetben ehhez fuzionálva egy heterológ peptidet kódoló DNS-szekvenciát tartalmazó DNS-t egy regulátor elemhez működőképesen kapcsolva valamely E. coli expressziós vektorba illesztjük, a vektorral E. colit transzformálunk, a transzformált E. colit tenyésztjük ésa képződött polipeptidet a tenyészetből elválasztjuk és tisztítjuk.
2. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az ismétlődő egységet kódoló szekvenciaként a CS-proteint kódoló szekvencia XhoIIXhoII régióját vagy annak egymás utáni ismétlődéseit használjuk.
3. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy az (Asn-Ala-Asn-Pro)is-(Asn-ValAsp-Pro) i ismétlődő egységet kódoló szekvenciát illesztjük az expressziós vektorba.
4. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy kódoló szekvenciaként az Rtet32 polipeptidet, Rtet86 polipeptidet, RNS1 polipeptidet, NS ÍR polipeptidet, RG polipeptidet, RLA polipeptidet, RN polipeptidet kódoló szekvencia egyikét illesztjük az expressziós vektorba.
5. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy kódoló szekveniaként az
Rl6tet86,
R32tet86,
R48tct86,
R16tet32,
R32tet32,
R48tet32,
R64tet32,
R80tet32,
R96tet32,
R112tet32,
R16G
NS1R48,
R32G,
R48G,
R64G,
R80G,
R112G,
R16LA,
R32LA,
R16NS1,
R32NS1
R48NS1,
R64NS1
R32N polipeptidek egyikét kódoló szekvenciát illesztjük az expressziós vektorba.
6. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy kódoló szekvenciaként az R32tet32 vagy R32LA polipeptidet kódoló szekvenciát illesztjük az expressziós vektorba.
7. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a kódoló szekvenciát regulátor elemként a PL-promotert és a cll transzlációt iniciáló helyet magában foglaló cll riboszoma-kötőhelyet tartalmazó elemhez kapcsoljuk működőképesen.
8. A 7. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy a kódoló szekvenciát regulátor elemként a pASl regulátor elemhez kapcsoljuk működőképe-10HU 201803Β sen.
9. Az 1. igénypont szerinti eljárás, azzal jellemezve, hogy elválasztási és tisztítási lépésként először a transzformált E. coli sejtek extraktumához detergenstadunk,azextraktumotmelegítveabakteriális proteineket kicsapjuk, és a felülúszóban levő polipeptidet szokásos módon tovább tisztítjuk.
HU86505A 1985-02-07 1986-02-06 Process for producing polypeptides forming the agent of anti-malaria vaccine HU201803B (en)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US69911585A 1985-02-07 1985-02-07

Publications (2)

Publication Number Publication Date
HUT40917A HUT40917A (en) 1987-03-30
HU201803B true HU201803B (en) 1990-12-28

Family

ID=24808000

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
HU86505A HU201803B (en) 1985-02-07 1986-02-06 Process for producing polypeptides forming the agent of anti-malaria vaccine

Country Status (19)

Country Link
EP (1) EP0191748B1 (hu)
JP (2) JPH0698005B2 (hu)
CN (1) CN86100979A (hu)
AP (1) AP17A (hu)
AT (1) ATE82322T1 (hu)
AU (1) AU603054B2 (hu)
DE (1) DE3687071T2 (hu)
DK (1) DK62486A (hu)
EG (1) EG17878A (hu)
ES (1) ES8704975A1 (hu)
GR (1) GR860351B (hu)
HU (1) HU201803B (hu)
IL (1) IL77788A0 (hu)
MY (1) MY102249A (hu)
NZ (1) NZ215034A (hu)
OA (1) OA08199A (hu)
PT (1) PT81967B (hu)
YU (1) YU18186A (hu)
ZA (1) ZA86797B (hu)

Families Citing this family (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
ATE78869T1 (de) * 1985-02-07 1992-08-15 Smithkline Beecham Corp Malaria-impfstoff.
IT1187710B (it) * 1985-07-25 1987-12-23 Eniricerche Spa Composizione peptidica utile per la preparazione di vaccini per la malaria e di kit diagnostici per la determinazione di affezioni malariche
EP0252588A3 (en) * 1986-05-12 1989-07-12 Smithkline Beecham Corporation Process for the isolation and purification of p. falciparum cs protein expressed in recombinant e. coli, and its use as a vaccine
EP0254862A1 (en) * 1986-06-26 1988-02-03 BEHRINGWERKE Aktiengesellschaft Vaccines against protozoan parasites
WO1988003533A1 (en) * 1986-11-04 1988-05-19 Syntro Corporation Construction of synthetic dna and its use in large polypeptide synthesis
IT1198225B (it) * 1986-12-04 1988-12-21 Eniricerche Spa Polipeptidi immunologicamente attivi utili per la preparazione di vaccini antimalaria e di kits diagnostici per la determinazione di anticorpi antisporozoita
EP0278940A3 (en) * 1987-01-30 1988-12-07 Smithkline Biologicals S.A. Hepatitis b virus surface antigens and hybrid antigens containing them
JPH0222300A (ja) * 1987-02-02 1990-01-25 Swiss Serum & Vaccine Inst Bern 免疫原性接合体およびその製法ならびに免疫を生ぜしめる方法
AT388934B (de) * 1987-11-13 1989-09-25 Wellcome Found Rekombinationskonjugatprotein und neue vakzinen
ATE95188T1 (de) * 1987-12-23 1993-10-15 Immuno Ag Zellulaere amphipatische proteine in aggregierten formen und verfahren zur herstellung und reinigung diese proteine.
NZ233494A (en) * 1989-05-03 1993-08-26 Smithkline Beecham Corp Polypeptides comprising plasmodium surface protein with a reduced number of repeating immunogenic determinants fused to a carrier protein; vectors coding therefor and vaccines
CA2031468A1 (en) * 1989-12-08 1991-06-09 Mitchell S. Gross Malaria vaccine
NZ596223A (en) 2009-05-05 2014-04-30 Cadila Healthcare Ltd Combined measles-malaria vaccine
US20180153945A1 (en) * 2016-12-05 2018-06-07 The United States Of America, As Represented By The Secretary Of Agriculture Oral e. coli vector-based vaccine for prevention of coccidiosis in poultry

Family Cites Families (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4466917A (en) * 1981-02-12 1984-08-21 New York University Malaria vaccine
GB2145092B (en) * 1983-01-28 1988-04-07 Univ New York Protective peptide antigen
AU569722B2 (en) * 1983-01-28 1988-02-18 Saramane Pty Ltd Expression of plasmodium falciparum polypeptides from cloned cdna
WO1985003724A1 (en) * 1984-02-21 1985-08-29 National Research Development Corporation Improvements in or relating to the production of malaria vaccines
US4707357A (en) * 1984-06-26 1987-11-17 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Army Immunologically active peptides capable of inducing immunization against malaria and genes encoding therefor

Also Published As

Publication number Publication date
YU18186A (en) 1988-06-30
JPS61181387A (ja) 1986-08-14
DK62486A (da) 1986-08-08
NZ215034A (en) 1989-07-27
OA08199A (en) 1987-10-30
DE3687071D1 (de) 1992-12-17
AP17A (en) 1988-04-02
PT81967A (en) 1986-03-01
DK62486D0 (da) 1986-02-07
IL77788A0 (en) 1986-07-31
DE3687071T2 (de) 1993-03-25
EP0191748A1 (en) 1986-08-20
HUT40917A (en) 1987-03-30
JPH0698005B2 (ja) 1994-12-07
AU603054B2 (en) 1990-11-08
AP8600020A0 (en) 1986-02-01
ZA86797B (en) 1986-09-24
ES551656A0 (es) 1987-04-16
CN86100979A (zh) 1986-12-17
JPH07102150B2 (ja) 1995-11-08
MY102249A (en) 1992-05-15
EP0191748B1 (en) 1992-11-11
JPH07170995A (ja) 1995-07-11
AU5293686A (en) 1986-08-14
ATE82322T1 (de) 1992-11-15
PT81967B (pt) 1988-07-01
ES8704975A1 (es) 1987-04-16
EG17878A (en) 1991-06-30
GR860351B (en) 1986-06-05

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Anders et al. Immunisation with recombinant AMA-1 protects mice against infection with Plasmodium chabaudi
Young et al. Expression of Plasmodium falciparum circumsporozoite proteins in Escherichia coli for potential use in a human malaria vaccine
Lowell et al. Proteosome-lipopeptide vaccines: enhancement of immunogenicity for malaria CS peptides
HU201803B (en) Process for producing polypeptides forming the agent of anti-malaria vaccine
AU639588B2 (en) Malaria vaccine comprising an immunogenic polypeptide
Pessi et al. Lack of H‐2 restriction of the Plasmodium falciparum (NANP) sequence as multiple antigen peptide
JP4145145B2 (ja) マラリア・プラスモジウム抗原ポリペプチドse36、その精製方法、並びにこれより得られる抗原を用いるワクチン及び診断剤
US9028843B2 (en) Malaria vaccine
EP0544781B1 (en) New peptides and their use
AU634837B2 (en) Malaria vaccine
JP2000506381A (ja) マラリア原虫msp―1のc末端断片を含む組換えタンパク質
Locher et al. Reduction of disulfide bonds in Plasmodium falciparum gp195 abolishes the production of growth-inhibitory antibodies
Itoh et al. The correlation of protective effects and antibody production in immunized chickens with recombinant R7 vaccine against Leucocytozoon caulleryi
EP0398540A1 (en) Malaria vaccine
Millet et al. Inhibitory activity against sporozoites induced by antibodies directed against nonrepetitive regions of the circumsporozoite protein of Plasmodium vivax
Chai The humoral response to a chemically defined synthetic vaccine comprised of epitopes derived from the circumsporozoite protein of Plasmodium berghei
PT100757A (pt) Polipeptidos aptos para induzir "in vivo"anticorpos capazes de inibir a invasao de globulos vermelhos por merozoitos de "p.falciparum", produtos aparentados e sua aplicacao na producao de composicoes de vacinacao

Legal Events

Date Code Title Description
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee
HMM4 Cancellation of final prot. due to non-payment of fee