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ES2230555T3 - Vacuna acelular. - Google Patents

Vacuna acelular.

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Publication number
ES2230555T3
ES2230555T3 ES96112324T ES96112324T ES2230555T3 ES 2230555 T3 ES2230555 T3 ES 2230555T3 ES 96112324 T ES96112324 T ES 96112324T ES 96112324 T ES96112324 T ES 96112324T ES 2230555 T3 ES2230555 T3 ES 2230555T3
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ES
Spain
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vaccine
pertussis
antigen
kda
filamentous hemagglutinin
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ES96112324T
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English (en)
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Pavel Novotny
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Medeva Holdings BV
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Medeva Holdings BV
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Publication date
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    • A61K39/02Bacterial antigens
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    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
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Abstract

SE DESCRIBE UNA VACUNA ACELULAR QUE PROPORCIONA PROTECCION CONTRA LAS INFECCIONES POR BORDETELLA PERTUSSIS. LA VACUNA SE BASA EN LA COMBINACION SINERGICA DE DOS ANTIGENOS DE B. PERTUSSIS, UN ANTIGENO DE 69 KDA Y UN ANTIGENO FILAMENTOSO DE HEMAGLUTININA.

Description

Vacuna acelular.
La presente invención se relaciona con composiciones vacunales acelulares de Bordetella pertussis.
Bordetella pertussis causa una grave y debilitante enfermedad en humanos, siendo los niños particularmente susceptibles, que se mantiene bajo control en los países desarrollados mediante programas de inmunización a gran escala. Se ha visto que la inmunización es un factor muy importante en la reducción de la enfermedad y que el fallo en la vacunación puede dar lugar a una mayor incidencia de la enfermedad. Prácticamente en todas las áreas, la inmunización es efectuada usando una vacuna de células enteras de B. pertussis que ha resultado ser relativamente efectiva en la prevención de la enfermedad. Sin embargo, recientemente, la preocupación sobre las reacciones adversas a las vacunas ha llevado a una menor aceptación de las vacunas y a un debate acerca de su uso continuado.
Algunas de las reacciones adversas observadas incluyen fiebre, reacciones locales y chillidos persistentes. La incidencia de fiebre y de chillidos persistentes ha sido estimada en un 7% de los pacientes (Wardlaw y col., Medical Microbiology, Vol. 2, Immunisation against Bacterial Disease, 1983).
Con la baja incidencia actual de la enfermedad en los países desarrollados con los programas de inmunización, la razón beneficio/riesgo está pobremente definida y muchos clínicos creen que el riesgo de inoculación supera a los beneficios obtenidos gracias a la inmunización. Como resultado de ello, muchos niños no son inoculados y existe ahora, en consecuencia, un riesgo de pandemia de tos ferina. Ciertamente, en los últimos años ha aumentado la incidencia de la tos ferina y la morbilidad infantil resultante, al haber disminuido el uso de la vacuna de células enteras. Se ha dirigido, por lo tanto, un considerable esfuerzo de investigación hacia el desarrollo de vacunas pertussis mejoradas y, especialmente, de vacunas acelulares que carezcan de los componentes asociados a los efectos tóxicos de las vacunas de células enteras, que han causado estas preocupaciones, incorporando al mismo tiempo los componentes necesarios para proteger frente a la enfermedad.
La búsqueda de una vacuna de B. pertussis acelular más segura y efectiva se ha visto obstaculizada, en parte, por la escasez de información en cuanto a la identidad y a los mecanismos de acción de los restos patógenos, tóxicos y protectores de B. pertussis contenida en las vacunas de células enteras. Se ha concentrado, por lo tanto, el trabajo en el aislamiento y la purificación de 20 ó más antígenos de superficie del organismo B. pertussis y en la caracterización de su capacidad para inducir reacciones inmunes (véase, por ejemplo, J. Am. Med. Soc., 248 (1), 22-23). Como ejemplos de antígenos que se han sugerido para investigación, se incluyen el factor promotor de la linfocitosis (toxina pertussis/LPF), la hemaglutinina filamentosa (FHA), el lipopolisacárido (LPS), los aglutinógenos, la toxina dermonecrótica (DNT), las toxinas termolábiles y termoestables, el factor inhibidor de los leucocitos polimorfonucleares, la adenilato ciclasa y otros componentes superficiales. Otros antígenos candidatos propuestos para investigación incluyen la citotoxina traqueal y diversas proteínas de la membrana externa.
L. Pillemer (Proc. Soc. Exp. Biol. Med. (1950), 75, 704-705) desarrolló una vacuna de extracto precoz que se basaba en células rotas de B. pertussis y que resultó proporcionar protección, pero que no fue adooptada comercialmente debido la toxicidad de la preparación.
Como ejemplos de vacunas más recientes de extractos de B. pertussis que han sido sugeridas, se incluyen las descritas en la Descripción de la Patente UK 2.083.358A (Takeda), que conllevan la eliminación de la endotoxina de los sobrenadantes de cultivo; en la Descripción de la Patente Francesa 2.047.886 (Institut Mérieux), que conlleva la extracción de una suspensión microbiana con un surfactante aniónico; y en la Descripción de la Patente Japonesa 58-222032 (Teijin), que consiste en una vacuna de proteínas subunitarias basada en la toxina pertussis
(LPF).
Gran parte del trabajo llevado a cabo sobre las vacunas pertussis acelulares se concentra en la posibilidad de basar dicha vacuna en LPF. Sin embargo, se cree que algunos de los efectos adversos hasta la fecha observados como asociados a la vacunación pertussis están relacionados con la toxina. En combinación con el toxoide del tétanos o de la difteria y LPS, es capaz de inducir encefalopatía experimental en ratones susceptibles (L. Steinman y col., Nature (1982), 299, 738-740; Redhead y col., Workshop on B. pertussis, Nat. Inst. of Biol. Standards & Controls, Holy Hill, Hampstead, London, 1983). Así, algunos clínicos creen que el LPF puede ser posiblemente responsable de lesiones cerebrales, en caso de que dichas complicaciones aparezcan tras la vacunación.
No obstante, los estudios realizados hasta la fecha han generado datos que han conducido a una creencia general de que el LPF es una parte esencial de cualquier vacuna acelular (Bacterial Vaccines, 1984, Capítulo 3, Manclark y col., Editor Germanier).
Se ha estudiado una nueva vacuna acelular, actualmente disponible en Japón, en pruebas clínicas controladas en Suecia. Esta vacuna incluye la toxina pertussis (LPF) y FHA o LPF solo (Lancet, 1. 995, 1988). Sin embargo, esta vacuna ha demostrado no ser tan efectiva como una vacuna de células enteras, dando sólo una protección de aproximadamente el 69%.
Aparte del pobre efecto protector, se produjeron tres muertes en el grupo de la vacuna basada en toxina, que pueden estar posiblemente asociadas a la vacuna. Considerando todos estos datos, las Autoridades Sanitarias Suecas se negaron a autorizar esta así llamada "Vacuna Japonesa" en Suecia.
Esta prueba clínica, sin embargo, es una ilustración de la creencia de que el antígeno LPF es un componente esencial de la vacuna, ya que se ha sugerido que la tos ferina es una enfermedad mediada por toxina y que la protección de ratones en la prueba de protección de ratones frente a pertussis sólo depende de la presencia de un LPF activo en la preparación (Pittman, M., 1984: The Concept of Pertussis as A Toxin-Mediated Disease, Pediatric Infection Disease, 3, 467-486). Se cree que estas suposiciones son incorrectas.
La hemaglutinina filamentosa (FHA) es una proteína que tiene un peso molecular de entre 107 y 130 kDa y aparece como filamentos al microscopio electrónico. Es una hemaglutinina la que es inhibida por el colesterol.
Muchos grupos de investigación han sugerido que la FHA puede ser un importante inmunógeno y candidato vacunal. (Para una revisión, véase Bacterial Vaccines, 1984, Capítulo 3, Manclark y col., Editor Germanier). Nuestros datos muestran, sin embargo, que la FHA sola sólo proporciona una protección mínima.
El antígeno de 69 kDa de pertussis es una proteína de la membrana externa que es termoestable y puede ser preparada por métodos conocidos en la técnica (véase EP0162639). El uso de 69 kDa por sí solo no es tan eficaz como la vacuna de células enteras.
De Magistris y col. (J. Exp. Med., 168, 1351-1362 (1998)) describe el resultado de un estudio para investigar las respuestas humorales y celulares en adultos que habían sufrido de pertussis en la niñez. Se obtuvieron clones de células T.
El presente inventor ha visto que la vacuna 69 kDa/FHA es más potente que 69 kDa/LPF y al menos tan potente, si no más, que la vacuna de células enteras. La combinación de 69 kDa y FHA es ventajosa, ya que no se requiere el LPF y, en consecuencia, se reducen las posibilidades de efectos adversos. Adicionalmente, una vacuna bivalente que contenga sólo 69 kDa y FHA será claramente más segura y barata de fabricar que una vacuna trivalente que contenga también LPF.
Aparte de eso, mediante una combinación apropiada de antígenos pertussis, la dosis efectiva igual de la combinación sugerida es hasta 15 veces menor que, por ejemplo, la de una combinación de la proteína 69 kDa y LPF.
Por lo tanto, según la presente invención, se presenta una vacuna acelular consistente en el antígeno 69 kDa de Bordetella pertussis, el antígeno hemaglutinina filamentosa de Bordetella pertussis, un adyuvante y una solución salina, estando presentes el antígeno 69 kDa y el antígeno de la hemaglutinina filamentosa en una proporción de pesos de entre 1:10 y 1:1 y siendo la vacuna al menos tan potente como la vacuna de células enteras de referencia Británica 66/84 en la prueba de Kendrick.
La proporción entre el antígeno 69 kDa y FHA es preferiblemente de aproximadamente 1:1.
La formulación vacunal incluye un adyuvante para estimular la respuesta inmune y así aumentar el efecto de la vacuna. Como adyuvantes convenientes para uso en la presente invención, se incluyen, por ejemplo, hidróxido de aluminio y fosfato de aluminio.
Convenientemente, se presentan formulaciones vacunales que contienen una concentración final de proteína antigénica en el rango de 0,01 a 5 mg/ml, preferiblemente de 0,03 a 2 mg/ml, más preferiblemente de 0,3 mg/ml. Tras la formulación, la vacuna puede ser incorporada a un recipiente estéril, el cual es entonces sellado y guardado a una baja temperatura, por ejemplo 4ºC, o puede ser liofilizado.
Con objeto de inducir inmunidad en el hombre frente a la tos ferina, se pueden administrar una o más dosis de la vacuna adecuadamente formulada. Se recomienda que cada dosis sea de 0,1 a 2 ml, preferiblemente de 0,2 a 1 ml, más preferiblemente de 0,5 ml de vacuna.
La vacuna puede ser usada en un método de inducción de inmunidad frente a la tos ferina en el hombre. Las vacunas según la presente invención pueden ser administradas por cualquier método convencional para la administración de vacunas, incluyendo la oral y la parenteral. El tratamiento puede consistir en una sola dosis o en una pluralidad de dosis a lo largo de un período de tiempo. La invención incluye el uso del antígeno 69 kDa de Bordetella pertussis, del antígeno de la hemaglutinina filamentosa de Bordetella pertussis, de un adyuvante y de una solución salina para la fabricación de una vacuna acelular para el tratamiento profiláctico de un mamífero susceptible a la infección por B. pertussis, donde la vacuna contiene el antígeno 69 kDa y el antígeno de la hemaglutinina filamentosa en una razón de pesos de entre 1:10 y 1:1 y es al menos tan potente como la vacuna de células enteras de referencia Británica 66/84 en la prueba de Kendrick.
Ejemplo 1 Preparación de la hemaglutinina filamentosa (FHA)
Se puede preparar la FHA por métodos bien conocidos en la técnica (véase Araih y Munoz J.J. (1970), Infect. Immunology, 25, 764-767; Ashworth y col. (1982), Infect. Immun., 37, 1278-1281; Cowell y col., Bacterial Vaccines, p. 371-379, Seminars in Infectious Diseases, Vol. IV (1982); Sato y col. (1983), Infect. Immun., 41. 313-320). Sin embargo, la FHA fue preparada en el siguiente procedimiento según el siguiente protocolo.
Purificación de la FHA: Se hicieron crecer B. pertussis Tomaha o BP357 (mutante en el transposón Tn5 de AA. Weiss y col. (1983) que no segrega el LPF) o W28\DeltaLPF obtenido de R. Rappulbi en medio de Stainer y Scholte (0,05 Tris) en matraces Costar de 650 ml (150 ml en cada uno) durante 5 días a 37ºC (Sato y col., 1983, antes citado). Antes de la centrifugación (30 min. a 6.000 x g), se añadió 1,10-fenantrolina 50 \muM monohidrato como inhibidor de la proteolisis a los cultivos. Se aplicó el sobrenadante libre de células, ajustado a pH 8,7 (usando NaOH 5N) a una columna de 30 x 350 mm de Hidroxiapatito Esferoidal (BHD) a una velocidad de flujo de 500 ml/h. (Todas las operaciones a temperatura ambiente). Se lavó entonces la columna en la sal fría (+4ºC) hasta conseguir una línea basal estable a una velocidad de flujo de 50 ml/h con (a) tampón fosfato 10 mM, pH 8,0, (b) tampón fosfato 100 mM, pH 8,0, y finalmente (c), se eluyó el material retenido con NaCl 0,5 N en tampón fosfato 100 mM, pH 7,0. Se juntaron las fracciones pico que aglutinaban las células rojas de la sangre de ganso (se añadieron volúmenes de 10 \mul de cada fracción suspendidos en 50 \mul de PBS e igual cantidad de células sanguíneas de ganso al 0,5% lavadas y se incubaron durante 1-2 horas a 37ºC). Se dializó el pool durante la noche contra 20-30 volúmenes de tampón Bis-Tris/HCl 0,025 M, pH 7,1, a 4ºC. Se recogió la FHA precipitada en una centrífuga (20 min. a 8.000 x g). La siguiente etapa se inspiró en Cowell y col. (1983), quienes vieron que la FHA (así como el LPF) es soluble en tampón de beta-alanina 40 mM, pH 3,5. Se solubilizó la FHA precipitada en el menor volumen posible de tampón de \beta-alanina (3,57 g de \beta-alanina y 0,35 g de ácido fórmico por litro), se eliminaron los insolubles por centrifugación y se aplicó el sobrenadante transparente a una columna (25 x 80 mm) de Ultrogel AcA 34 ó Aca 44 equilibrada y eluida con el mismo tampón para eliminar impurezas. El material hemaglutinante retenido apareció en un pico eluido por tampón Tris/HCl 0,05 M que contenía NaCl 0,5 M (pH 7,2). Las fracciones del pico principal y que tenían propiedades hemaglutinantes fueron reunidas y mantenidas congeladas o reprecipitadas por diálisis contra tampón Bis-Tris/HCl 0,025 M, pH 7,1, y disueltas en un volumen menor de tampón de \beta-alanina. La solubilidad es de aproximadamente 3,0 mg de FHA/ml. El producto final así obtenido, ya fuera de la cepa Tomaha, BP357 o W28 LPF, no contiene cantidad detectable de LPF, según se midió por ensayo en células CHO (que era negativo a una concentración de 2-3 \mug de FHA por un solo pocillo que contenía 200 \mul de cultivo de tejidos; sensibilidad de la prueba: 1-2 pg de LPF por pocillo dan una aglutinación positiva) o por sensibilización a la histamina. Se inyectaron ratones N:NIH-S con dosis de 50 \mug de FHA intraperitonealmente y se inocularon 4 días después mediante inyección intraperitoneal de 4 mg de clorhidrato de histamina. Ninguno de ellos murió. El material congelado (a -20 ó -40ºC) a pH ácido parece estable, según se juzgó por su reactividad ELISA y su aspecto en SDS-PAGE. Forma prevalentemente tres fuertes bandas en la región de 150-100 kD.
Ejemplo 2
Se preparó antígeno 69 kDa según los procedimientos señalados en la solicitud de patente Europea publicada Nº 0.162.639 usando la cepa BP357 ó W28\DeltaLPF de B. pertussis y se inmunopurificó usando el anticuerpo monoclonal BB05 - depositado en el Public Health Laboratory Service Centre for Applied Microbiology and Research, Porton Down, Salisbury Wiltshire SP4 0JG, Reino Unido, bajo el Nº 90020103 el 1 de Febrero de 1990.
Ejemplo 3
Prueba de Kendrick. Se realizó ésta según los Requerimientos de la O.M.S. para la Vacuna Pertussis utilizando ratones NIH-S exogámicos (OLAC, categoría 3, libres de la mayoría de los patógenos, incluyendo B. bronchiseptica) de 14-16 g de peso. Se inocularon los antígenos, en volúmenes de 0,5 ml, intraperitonealmente como mezcla y consistían en una dilución superior y tres diluciones seriadas de razón 3. Al cabo de dos semanas, se inoculó a los ratones intracerebralmente usando la cepa de inoculación recomendada 18-323 (-400 DL_{50}). Se usó el número de supervivientes de cada grupo para el cálculo de la potencia relativa con respecto a la Vacuna Pertussis de Referencia Británica 66/84 usando un programa de análisis de probits de líneas paralelas. Se realizó también una prueba comparativa usando la vacuna 69 kDa/LPF. En la Tabla 1, se muestran los resultados. En este experimento, la proteína 69 kDa y la FHA se originaban de la cepa BP357.
TABLA 1
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1
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Los datos fueron computados según la metodología del análisis de probits de líneas paralelas. En la Figura 1 se muestran los resultados.
Los resultados muestran claramente que la vacuna 69 kDa/FHA es más potente que la 69 kDa/LPF y al menos tan potente, si no más, como la vacuna de células enteras.
Ejemplo 4
Se usaron combinaciones y/o antígenos individuales originados de la cepa W28\DeltaLPF de Bordetella pertussis en otra prueba de Kendrick. Como en esta cepa el gen de la toxina completa ha sido bloqueado, la posibilidad de que estas preparaciones estuviesen contaminadas por LPF es nula. El(los) antígeno(s) fueron inoculados en volúmenes de 0,5 ml intraperitonealmente, individualmente o en mezclas, y consistían en una dosis superior y tres diluciones seriadas de razón cuatro. Después de dos semanas, se inoculó a los ratones intracerebralmente usando una cepa de inoculación 18-323 (aproximadamente 400 DL_{50}). Se usó el número de supervivientes de cada grupo para el cálculo de la potencia relativa con respecto a la Vacuna Pertussis de Referencia Británica 66/84 usando un programa de análisis de probits de líneas paralelas. Se usó la Referencia británica 66/84 a la dilución superior, que contenía 0,5 U.I., y tres diluciones seriadas de razón cuatro. En la tabla 2 y en la figura 2, se muestran los resultados.
TABLA 2
2

Claims (14)

1. Un método para la preparación de una vacuna acelular para el tratamiento profiláctico de un mamífero susceptible a la infección por B. pertussis, cuyo método consiste en mezclar el antígeno 69 kDa de Bordetella pertussis, el antígeno de la hemaglutinina filamentosa de Bordetella pertussis, un adyuvante y una solución salina en cantidades que dan el antígeno 69 kDa y el antígeno de la hemaglutinina filamentosa en una razón de pesos de entre 1:10 y 1:1, donde la vacuna es al menos tan potente como la vacuna de células enteras de referencia Británica 66/84 en la prueba de Kendrik.
2. Un método según la reivindicación 1, donde la vacuna está desprovista de la toxina de B. pertussis.
3. Un método según la reivindicación 1 ó 2, donde el antígeno 69 kDa y el antígeno de la hemaglutinina filamentosa están en una razón de pesos de aproximadamente 1:1.
4. Un método según la reivindicación 1, 2 ó 3, donde la proteína antigénica aparece en una concentración en el rango de 0,01 a 5,0 mg/ml.
5. Utilización del antígeno 69 kDa de Bordetella pertussis, del, antígeno de la hemaglutinina filamentosa de Bordetella pertussis, de un adyuvante y de una solución salina para la fabricación de una vacuna acelular para el tratamiento profiláctico de un mamífero susceptible a la infección por B. pertussis, donde la vacuna contiene el antígeno 69 kDa y el antígeno de la hemaglutinina filamentosa en una razón de pesos de entre 1:10 y 1:1 y es al menos tan potente como la vacuna de células enteras de referencia Británica 66/84 en la prueba de Kendrick.
6. Una utilización según la reivindicación 5, donde la vacuna está desprovista de la toxina de B. pertussis.
7. Un uso según la reivindicación 5 ó 6, donde el antígeno 69 kDa y el antígeno de la hemaglutinina filamentosa están en una razón de pesos de aproximadamente 1:1.
8. Un método según la reivindicación 5, 6 ó 7, donde la concentración de la proteína antigénica en la vacuna está en el rango de 0,01 a 5,0 mg/ml.
9. Una vacuna acelular consistente en el antígeno 69 kDa de Bordetella pertussis, el antígeno de la hemaglutinina filamentosa de Bordetella pertussis, un adyuvante y una solución salina, estando presentes el antígeno 69 kDa y el antígeno de la hemaglutinina filamentosa en una razón de pesos de entre 1:10 y 1:1 y siendo la vacuna al menos tan potente como la vacuna de células enteras de referencia Británica 66/84 en la prueba de Kendrik.
10. Una vacuna según se reivindica en la reivindicación 9, que está desprovista de la toxina de B. pertussis.
11. Una vacuna según se reivindica en la reivindicación 9 ó 10, donde la razón es de aproximadamente 1:1.
12. Una vacuna según se reivindica en cualquiera de las reivindicaciones 9 a 11, donde la concentración de proteína antigénica está en el rango de 0,01 a 5,0 mg/ml.
13. Una vacuna según se reivindica en cualquiera de las reivindicaciones 9 a 12 para uso en un método de tratamiento del organismo humano o animal mediante terapia.
14. Una vacuna según se reivindica en cualquiera de las reivindicaciones 9 a 12 para uso en un método de inducción de inmunidad frente a la tos ferina en el hombre.
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