DE3712334C2 - Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung - Google Patents
Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer HerstellungInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Züchten von
HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische
Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer
Herstellung.
AIDS (Acquired Immune Deficiency Syndrome), eine sich
weltweit epidemisch ausbreitende Krankheit, wird durch
HIV-Viren (Human Immunodeficiency Virus) - auch HTLV III
(Human T-cell Leukämie Virus Typ III) oder LAV
(Lymphadenopathy Associated Virus) genannt - hervorgerufen
(Science 220, 859 (1983)). Nachweis dieser Erkrankung, die
eine lange Latenzperiode haben kann, gelingt durch den
Nachweis der HIV-Antikörper, die sich im Blut der Patienten
finden. Verschiedene kommerzielle Teste dieser Art sind
inzwischen bekannt und werden routinemäßig eingesetzt, um
einerseits AIDS-Erkrankungen zu diagnostizieren und
andererseits Blutkonserven zu überprüfen, um eine Ausbreitung
der Krankheit bei Blutübertragungen zu verhindern.
Kürzlich wurde nunmehr gefunden, daß neben den bekannten
HIV-Viren (im folgenden als HIV-1 bezeichnet), noch weitere
AIDS-auslösende Viren bei gewissen Patienten vorkommen und
mit den bekannten HIV-1-Testen nicht oder nur schwach
reagieren. Diese werden im folgenden als HIV-2 bezeichnet. Da
die Gefahr einer Infektion und Erkrankung mit HIV-2 genauso
schwerwiegend ist wie mit HIV-1, war es zur Diagnose und
Prophylaxe notwendig, auch geeignete Diagnostica gegen HIV-2-
Viren zu finden.
Der Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde, Mittel und
Verfahren zur Verfügung zu stellen, mit denen HIV-2-Viren
hergestellt und HIV-2-Antikörper schnell und sicher in
entsprechenden Proben nachgewiesen werden können.
Diese Aufgabe wird durch die in den Ansprüchen näher gekenn
zeichneten Maßnahmen gelöst.
Seren von Risikopatienten bezüglich einer Infektion mit HIV
wurden im Western Blot, mit Immunfluoreszenz und in ver
schiedenen kommerziellen ELISAs auf HIV-1-Antikörper ge
testet. Seren, die in den genannten Testsystemen nur schwach
reagierten, wurden daraufhin im Western Blot auf HIV-2 (HTLV
IV) Antikörper getestet. Auf diese Weise konnten Patienten
seren selektiert werden, die im HIV-1 Test kaum oder gar
nicht, im HIV-2 Test aber deutlich reagierten.
Die Züchtung von HIV-2-Viren kann durch direkte Infektion
einer geeigneten T-Lymphozytenkultur (z. B. HUT 78, Molt 3, K
37, CEM oder HT, wie sie in WO 85-04897 beschrieben sind)
mit dem Serum eines HIV-2 positiven Patienten erfolgen. Dazu
wird eine solche Kultur, die etwa 10⁶ bis 10⁷ Zellen/ml in
einem geeigneten Kulturmedium enthält und mit ca. 2 µg/ml
Polybren versetzt ist, mit etwa 10% des infizierten Serums
versetzt und unter CO₂-Atmosphäre bei 37°C so lange (1-6 Wo
chen) gehalten, bis Synzytienbildung und blasige Dege
neration der Zellen die Virusproduktion anzeigt.
Die Viren können in bekannter Weise aus dieser Kultur, bei
spielsweise durch Versetzen des Überstandes mit Natrium
chlorid/Polyethylenglycol und Abzentrifugieren des Prä
zipitats bei ca. 2000 U/min oder durch Ultrazentrifugation
gewonnen werden.
Die weitere Reinigung kann z. B. durch Zentrifugation im
Dichtegradienten erfolgen, wobei die HIV-2-Viren wie andere
Retroviren eine Dichte von 1,16 aufweisen.
Vorteilhafter als die Infektion mit Serum ist es jedoch, aus
dem Blut von mit HIV-2 infizierten Patienten die Lymphozyten
abzutrennen und diese in einem geeigneten Kulturmedium,
welches Phytohemagglutinin (PHA) und Interleukin-2
(TCGF-T-cell growth factor) zur Wachstumsstimulierung ent
hält, etwa 3 Tage anzuzüchten und danach 1-3 mal auf einer
Zellkultur, die gegen HIV zythopathogen reagiert, bei
spielsweise Nabelschnurlymphozyten, zu passagieren, bevor
diese Kultur in einer Verdünnung von 1 : 10 bis 1 : 5 zum In
fizieren der obigen permanenten Zell-Linien verwendet wird.
Der schnell auftretende zytopathogene Effekt erlaubt es, die
nicht mit HIV-2 infizierten Kulturen rasch zu erkennen und
auszusondern.
Sobald einmal eine entsprechende HIV-2-Zellkultur gewonnen
ist, wird man diese für weitere Infizierungen verwenden und
sich den Umweg über die Patientenselektion sparen.
Die im folgenden verwendeten HIV-2-Viren sind als Kultur in
HUT-78-Zellen gemäß Art. 28 Budapester Vertrag bei der
European Collection of Animal Cell Cultures (PHLS), Porton
Down, Salisbury, England hinterlegt unter Nummer
HIY-2/PEI 402.
Der Nachweis der HIV-2-Antikörper beruht in jedem Fall auf
der spezifischen Antikörper/Antigen-Reaktion mit den
HIV-2-Viren und dem Nachweis der dabei gebildeten Komplexe.
Als Antigen kann dabei außer dem Virus selbst auch ein
aktives Fragment, d. h. ein spezielles Protein aus der Hülle
oder dem Kern des Virus oder auch Virus-haltige Zellen
verwendet werden.
Die Grundlagen dieser Methode sind von Towbin, Proc. Nat.
Acad. Sci, USA 76, 4350-4354 (1979) beschrieben. Analog dazu
werden die HIV-2-Viren lysiert, auf Natriumdodecylsulfat
(SDS)-haltigem Polyacrylamidgel die enthaltenen Proteine
elektrophoretisch aufgetrennt und elektrophoretisch auf eine
Nitrocelluloseschicht übertragen. Danach werden auf der
Nitrocellulose vorhandene proteinbindende Stellen mit Rin
derserumalbumin abgesättigt, die Schicht getrocknet und in
Streifen parallel zur Elektrophoreserichtung geschnitten.
Bei Inkubation mit einem Testserum werden nunmehr nur noch
die HIV-2-Antikörper, welche mit den HIV-2-Virus Proteinen
reagieren können, gebunden und andere im Serum enthaltene
Proteine ausgewaschen. Bei Inkubation mit einem markierten
anti-human IgG- oder IgM-Antiserum lagert sich dieses nun
mehr wiederum an den HIV-2-Antikörper an, so daß aufgrund
der Markierung nunmehr der ternäre Komplex nachgewiesen
werden kann. Als Markierung ist es üblich, mit 125-Jod die
Tyrosinanteile des Antikörperproteins selbst zu sub
stituieren und die Radioaktivität der so gebildeten Komplexe
durch Auflegen eines Fotopapiers auf den Nitro
cellulosestreifen zu messen (RIA-Verfahren) oder die Anti
körper mit einem leicht nachzuweisenden Enzym (Peroxidase;
alkalische Phosphatase Galactoseidase) zu kuppeln und den
Komplex durch Umsetzen mit den geeigneten Reagenzien (z. B.
H₂O₂/Benzidinderivat; p-Nitrophenylphosphat; Galactosid/
Leucofarbstoff) anzufärben (ELISA-Verfahren) oder den Anti
körper an einen Fluoreszenzfarbstoff zu binden und die Fluo
reszenz des gebildeten Komplexes direkt auszuwerten (IFA-
Verfahren).
Für diesen Test werden die Vertiefungen einer
Mikrotiterplatte aus Polystyrol mit etwa 0,5 µg Proteinlysat
von HIV-2-Viren oder einer entsprechenden Menge der Viren in
einer Pufferlösung überzogen und durch Trocknen bzw. Fällen
mit Alkohol oder Aceton fixiert. Zusätzliche Bindungsstellen
für Protein werden durch Rinderserumalbumin abgesättigt,
bevor das Testserum zugegeben wird, so daß nur noch
HIV-2-Protein-Antikörper an die entsprechenden Antigene
gebunden wird. Durch Umsetzen mit einem Enzym-markierten
anti-human IgG- oder IgM-Antiserum wird dann ein
nachweisbarer ternärer Immunkomplex gebildet (s. o.). Durch
die Bindung des Antigens an die Trägeroberfläche ist es
möglich, zwischen den einzelnen Inkubationsschritten
Reagenzüberschüsse auszuwaschen und dadurch Störungen der
nächsten Reaktion zu vermeiden. Die Farbreaktion des
ternären Komplexes wird nach einer definierten Zeit
abgestoppt und das Ergebnis üblicherweise mit einem Scanner
ausgewertet.
Anstelle der Mikrotiterplatten ist es auch möglich, die
Virus-Antigene an die Wand einer Küvette oder an Kügelchen
aus Polystyrol zu binden und so die Testanordnung in an sich
bekannter Weise zu modifizieren.
Anstelle einer Polystyroloberfläche, die bekanntermaßen
Proteine fixiert, können auch andere geeignete Materialien
verwendet werden.
Ferner ist es möglich, statt der beschriebenen einfachen
"Sandwich"-Methode die Markierung über mehrere "Zwischen
antikörper" zu fixieren oder dem Testserum eine definierte
Menge eines markierten HIV-2-Antigens zuzusetzen und so
einen "kompetiven" Test zu bilden. Für weitere Variationen
wird auf die zahlreichen Publikationen dieser Methoden ver
wiesen.
Bei diesem Test werden HIV-2-Viren enthaltene Zellen direkt
in einer Pufferlösung (ca. 50 µl) auf Objektträger auf
gebracht, getrocknet und mit Alkohol/Aceton fixiert. Die
Teste können in diesem Zustand bei -20°C gelagert werden.
Zur Testdurchführung wird ca. 20 µl Testserum 1 : 10 in PBS
(phosphate buffered saline) zugefügt und 1 Std. bei 37°C
inkubiert, gewaschen und mit einer verdünnten Lösung von
Fluorescein-konjugiertem anti-human IgG oder IgM eingefärbt
und die Fluoreszens unter einem Mikroskop ausgewertet.
Die vorstehenden Methoden sollen nur einen generellen Einblick
ermöglichen. Dem Fachmann bekannte Methoden zur Zellzüchtung und
Vermehrung von Viren sowie für andere Immunteste bekannte und
entsprechend anzuwendende Methoden sollen deshalb ebenfalls von
der Erfindung umfaßt werden.
Bei gleichzeitiger Anwendung von erfindungsgemäßen HIV-2- und
bekannten HIV-1-Viruspräparaten lassen sich insbesondere für die
Untersuchung von Blutkonserven geeignete Mittel zum Nachweis beider
Viren herstellen.
In den folgenden Beispielen sind bevorzugte Ausgestaltungen wie
dergegeben, ohne daß die Erfindung darauf beschränkt werden soll.
Aus 10 ml heparinisiertem Vollblut einer HIV-2 positiven Patientin
wurden die mononukleären Zellen über einen Ficoll-Gradienten ge
reinigt. Die gereinigten mononukleären Zellen wurden 3 Tage mit
PHA stimuliert und mit 10% Interleukin 2 RPMI 1640 (20% FKS)
kultiviert. Es erfolgte eine dreimalige Passagierung auf Nabel
schnurlymphozyten, die auf oben genannte Art angereichert wurden.
Sodann erfolgte eine zellgebundene Übertragung auf die permanenten
T-Lymphomlinie HUT 78. Diese Kulturen wurden permanent mit 2 µg/ml
Polybren gehalten. Nach ca. 4 Wochen Kultivierung der Zellen
zeigte sich ein für die HIV-Gruppe typischer zytopathischer Effekt
mit Synzytienbildung und folgender blasiger Degeneration der Zel
len. Der Nachweis der nun beginnenden Virusproduktion wurde über
einen Reversen Transcriptase-Nachweis geführt.
Für diesen Test werden 30 ml Zellkultur-Überstand bei 100 000 G
eine Stunde lang zentrifugiert und das Pellet dann im RT Assay
getestet. Die RT-Testung erbrachte 40 000 CPM bei einem background
von 2000 CPM.
Der Western Blot, durchgeführt mit in oben beschriebener Weise
gewonnenem Antigen, erbrachte das typische Bandenmuster des HIV-2.
HIV-2 infizierte und nicht-infizierte T-Lymphozyten (HUT 78) wer
den 2mal in PBS gewaschen und in PBS auf 4-6 × 10⁷-Zellen/ml re
suspendiert. Je 2 µl (ca. 10⁵ Zellen) der infizierten und
nicht-infizierten Zellen werden getrennt auf maskierte, entfettete
Objektträger aufgebracht und über Nacht bei Raumtemperatur ge
trocknet.
Je ein Paar von Objektträgern wird mit 20 µl Test- und Kon
trollserum in einer Verdünnung in PBS von 1 : 20 und 1 : 40 be
aufschlagt und bei 37°C 30 Min. in einer feuchten Kammer inkubiert.
Danach wird 2mal 10 Min. mit PBS gewaschen, getrocknet, mit 20 µl
FITC-markiertem anti-human IgG beaufschlagt, erneut 30 Min. bei
37°C inkubiert und gewaschen. Die so eingefärbten Zellen werden
mit 50% Glycerin in PBS konserviert und mit einem Fluor
eszenzmikroskop (Leitz HBO 200; 300fache Vergrößerung) aus
gewertet.
5 mg/ml hochgereinigte HIV-2-Viren werden 1 : 1 mit einer Lösung von
1% Triton X-100 in 5 mM Natriumcarbonatpuffer pH 9,6 versetzt und
30 Min. auf 56°C erwärmt, um die Viren zu inaktivieren. Die Sus
pension wird auf Raumtemperatur abgekühlt, 1 : 500 mit 50 mM Na
triumcarbonatpuffer pH 9,6 verdünnt, in ELISA-Plastiknäpfchen
gefüllt und 16 Std. bei 4°C gehalten, um die Antigene an die Ge
fäßwand zu binden. Danach wird der Rest der Lösung ausgegossen und
die Näpfchen mit destilliertem Wasser gewaschen und getrocknet.
Nun werden die Näpfchen mit 200 µl einer Lösung von 0,1% Rin
derserumalbumin und 2% Kaninchenserum in 50 mM Natrium
carbonatpuffer pH 9,6 gefüllt, 1 Std. bei 37°C inkubiert und mit
0,05% Tween-20 in PBS gewaschen, bevor 100 µl Testlösung (Serum
1 : 100 mit PBS + 005% Tween verdünnt) eingefüllt und 90 Min. bei
37°C inkubiert wird. Reste des Testserums werden durch 2maliges
Waschen mit 0,05% Tween-20 und 0,5% Kaninchenserum in PBS und
2maliges Waschen in 0,5% Kaninchenserum in PBS entfernt. Danach
wird 100 µl einer Lösung aus Kaninchen anti-human IgG, konjugiert
mit Peroxidase 1 : 1000 in 0,05% Tween-20 in PBS zugefügt, 60 Min.
bei 37°C inkubiert und wie zuvor 4 × gewaschen. Anschließend wird
eine Lösung aus 10 mg o-Phenylendiamin und 10 µl H₂O₂ (30% in
Phosphatpuffer pH 6,8) zugegeben, 30 Min. bei 20°C gehalten und
die Reaktion mit 2 N Schwefelsäure abgestoppt. Die Reaktion wird
anhand der gelben Farbe bei 486 nm gemessen.
150 mg HIV-2 Viren werden in einer Lösung von 350 µl Puffer
(2% SDS, 2% Glycerin, 0,1 M Tris-HCl pH 6,8, 20 mM PMSF
(Phenylmethylsulfonylfluorid), 0,2% Bromphenolblau, 0,5%
β-Mercaptoethanol) lysiert, auf eine SDS-Polyacrylamidgelplatte
16 cm × 16 cm aufgetragen und mit einer Spannung von 180 V die
Virusproteine elektrophoretisch getrennt. Nach einer Zeit von ca.
4 h wird ein Nitrocellulosefilter aufgelegt und die Proteinbanden
mit einer Spannung von 60 V in 3,5 min elektrophoretisch
übertragen. Das Nitrocellulosefilter wird mit 1% BSA
(Rinderserumalbumin) und 1% Gelatine in PBS, pH 7,4 getränkt,
getrocknet und in Streifen von 0,5 cm Breite geschnitten. Zur
Verwendung werden die Streifen mit einer Pufferlösung 1 aus 10%
foetalem Kälberserum, 1% BSA und 0,1% Triton X-100 in PBS 90 min
bei 20°C befeuchtet und anschließend je 1 Streifen mit einer 1:
100 Verdünnung des Testserums in dem vorstehenden Puffer 1
inkubiert. Die Inkubationszeit ist dabei abhängig von der
Temperatur. 90 min bei 37°C, 120 min bei 20°C und 16 Stunden bei
4°C haben sich bewährt.
Die Streifen werden nach der Inkubation 3 mal 15 min mit dem Puf
fer 1 gewaschen, bevor sie mit einer 1 : 1000 Verdünnung von
anti-human IgG - Antiserum, Peroxidase - konjugiert in 2,5 ml
Pufferlösung 1 60 min bei 20°C inkubiert wurden.
Überschüssiges Antiserum wird 3 mal 15 min mit Pufferlösung 1 und
3 mal 15 min mit PBS, pH 7,4 ausgewaschen.
Zum Anfärben werden die Streifen mit einer Lösung aus 50 mg 3.3-
Diaminobenzidin und 50 µl Wasserstoffperoxid in 100 ml PBS, pH 7,4,
20 min bei 20°C inkubiert. Die Reaktion wird durch 3 mal 15 min
Waschen mit destilliertem Wasser gestoppt, die Streifen getrocknet
und photometrisch ausgewertet. Es zeigen sich bei den HIV-2
antikörperpositiven Seren die für HIV-2 charakterischen Banden
bei 26kd, 32kd, 51kd, 55kd, 65kd, 130kd. Beim Kreuztest mit
bekannt HIV-1 positiven Seren ergibt sich keine oder nur eine
schwache Reaktion gegen p26 (gag) und/oder yp 32 (env).
Alle drei vorstehenden Teste können in gleicher Weise auch mit
einem Gemisch aus HIV-1- und HIV-2- Präparaten durchgeführt werden,
wobei eine gleichzeitige Prüfung auf beide Antikörper erfolgt.
Natürlich kann nur im Western-Blot-Test durch die
unterschiedlichen Banden eine Unterscheidung erfolgen.
Claims (8)
1. Verfahren zum Gewinnen von HIV-2-Viren, dadurch gekennzeichnet, daß
eine Kultur von permanenten T-Lymphozyten-Zellen mit Serum oder
Leucozyten eines HIV-2 infizierten Patienten oder einer HIV-2 infizierten
Zellkultur versetzt und unter geeigneten Kulturbedingungen weitergezüchtet
wird und nach Ausbildung einer ausreichenden Viruskonzentration aus der
Kultur in üblicher Weise die Viren oder Virus-haltige Zellen isoliert werden.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die im Serum
bzw. in Leucozyten infizierter Patienten enthaltenen HIV-2-Viren zunächst ein
oder mehrfach in Lymphozyten-Kulturen passagiert und angereichert werden,
auf die sie stark zytopathisch wirken, bevor sie auf eine permanente Zellkultur
übertragen werden.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die
permanente Zellkultur HUT 78, Molt 3, CEM oder HT ist.
4. Permanente T-Lymphozyten-Zellkultur, welche HIV-2-Viren enthält.
5. Zellkultur nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß es eine HUT
78-Kultur ist, welche unter der Bezeichnung HIV-2 PEI 402 bei PHLS
hinterlegt ist.
6. Mittel zum Nachweis von HIV-2-Antikörpern, enthaltend
HIV-2-Viruspräparate gemäß einem der Ansprüche 1-3 sowie
Reagenzien zum Nachweis von HIV-2-Virus/HIV-2-Antikörper-
Komplexen.
7. Mittel gemäß Anspruch 6, zur Verwendung in einem Western Blot-,
ELISA- oder Immunfluoreszenzverfahren.
8. Mittel gemäß Anspruch 6 oder 7, dadurch gekennzeichnet, daß zum
gleichzeitigen Nachweis von HIV-1-Antikörpern ein HIV-1-Virus enthalten ist.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19873712334 DE3712334C2 (de) | 1987-04-11 | 1987-04-11 | Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
DE19873712334 DE3712334C2 (de) | 1987-04-11 | 1987-04-11 | Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
DE3712334A1 DE3712334A1 (de) | 1988-10-20 |
DE3712334C2 true DE3712334C2 (de) | 1995-04-27 |
Family
ID=6325435
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
DE19873712334 Expired - Fee Related DE3712334C2 (de) | 1987-04-11 | 1987-04-11 | Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
DE (1) | DE3712334C2 (de) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5876732A (en) * | 1995-03-07 | 1999-03-02 | Akzo Nobel, N.V. | Human T-cell line infected with HIV-2 which secretes functionally intact HIV-2 GP160 |
Family Cites Families (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
FR2592893A1 (fr) * | 1986-01-15 | 1987-07-17 | Pasteur Institut | Population de lymphocytes t4 specifiques du virus lav, leur procede d'obtention et leur application a la production de ce virus. |
-
1987
- 1987-04-11 DE DE19873712334 patent/DE3712334C2/de not_active Expired - Fee Related
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US5876732A (en) * | 1995-03-07 | 1999-03-02 | Akzo Nobel, N.V. | Human T-cell line infected with HIV-2 which secretes functionally intact HIV-2 GP160 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
DE3712334A1 (de) | 1988-10-20 |
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