[go: up one dir, main page]

DE3712334C2 - Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung - Google Patents

Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung

Info

Publication number
DE3712334C2
DE3712334C2 DE19873712334 DE3712334A DE3712334C2 DE 3712334 C2 DE3712334 C2 DE 3712334C2 DE 19873712334 DE19873712334 DE 19873712334 DE 3712334 A DE3712334 A DE 3712334A DE 3712334 C2 DE3712334 C2 DE 3712334C2
Authority
DE
Germany
Prior art keywords
hiv
viruses
virus
culture
cell culture
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Fee Related
Application number
DE19873712334
Other languages
English (en)
Other versions
DE3712334A1 (de
Inventor
Reinhard Prof Dr Kurth
Albrecht Dr Werner
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
BUNDESREPUBLIK DEUTSCHLAND VERTRETEN DURCH DEN BU
Original Assignee
Paul-Ehrlich-Institut
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Paul-Ehrlich-Institut filed Critical Paul-Ehrlich-Institut
Priority to DE19873712334 priority Critical patent/DE3712334C2/de
Publication of DE3712334A1 publication Critical patent/DE3712334A1/de
Application granted granted Critical
Publication of DE3712334C2 publication Critical patent/DE3712334C2/de
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Fee Related legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N7/00Viruses; Bacteriophages; Compositions thereof; Preparation or purification thereof
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/569Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
    • G01N33/56983Viruses
    • G01N33/56988HIV or HTLV
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2740/00Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011Details
    • C12N2740/10011Retroviridae
    • C12N2740/16011Human Immunodeficiency Virus, HIV
    • C12N2740/16051Methods of production or purification of viral material

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Virology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • AIDS & HIV (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Die Erfindung betrifft ein Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung.
AIDS (Acquired Immune Deficiency Syndrome), eine sich weltweit epidemisch ausbreitende Krankheit, wird durch HIV-Viren (Human Immunodeficiency Virus) - auch HTLV III (Human T-cell Leukämie Virus Typ III) oder LAV (Lymphadenopathy Associated Virus) genannt - hervorgerufen (Science 220, 859 (1983)). Nachweis dieser Erkrankung, die eine lange Latenzperiode haben kann, gelingt durch den Nachweis der HIV-Antikörper, die sich im Blut der Patienten finden. Verschiedene kommerzielle Teste dieser Art sind inzwischen bekannt und werden routinemäßig eingesetzt, um einerseits AIDS-Erkrankungen zu diagnostizieren und andererseits Blutkonserven zu überprüfen, um eine Ausbreitung der Krankheit bei Blutübertragungen zu verhindern.
Kürzlich wurde nunmehr gefunden, daß neben den bekannten HIV-Viren (im folgenden als HIV-1 bezeichnet), noch weitere AIDS-auslösende Viren bei gewissen Patienten vorkommen und mit den bekannten HIV-1-Testen nicht oder nur schwach reagieren. Diese werden im folgenden als HIV-2 bezeichnet. Da die Gefahr einer Infektion und Erkrankung mit HIV-2 genauso schwerwiegend ist wie mit HIV-1, war es zur Diagnose und Prophylaxe notwendig, auch geeignete Diagnostica gegen HIV-2- Viren zu finden.
Der Erfindung liegt daher die Aufgabe zugrunde, Mittel und Verfahren zur Verfügung zu stellen, mit denen HIV-2-Viren hergestellt und HIV-2-Antikörper schnell und sicher in entsprechenden Proben nachgewiesen werden können.
Diese Aufgabe wird durch die in den Ansprüchen näher gekenn­ zeichneten Maßnahmen gelöst.
A. Gewinnung von HIV-2-Viren 1. Patientenselektion
Seren von Risikopatienten bezüglich einer Infektion mit HIV wurden im Western Blot, mit Immunfluoreszenz und in ver­ schiedenen kommerziellen ELISAs auf HIV-1-Antikörper ge­ testet. Seren, die in den genannten Testsystemen nur schwach reagierten, wurden daraufhin im Western Blot auf HIV-2 (HTLV IV) Antikörper getestet. Auf diese Weise konnten Patienten­ seren selektiert werden, die im HIV-1 Test kaum oder gar nicht, im HIV-2 Test aber deutlich reagierten.
HIV-2-Anzucht
Die Züchtung von HIV-2-Viren kann durch direkte Infektion einer geeigneten T-Lymphozytenkultur (z. B. HUT 78, Molt 3, K 37, CEM oder HT, wie sie in WO 85-04897 beschrieben sind) mit dem Serum eines HIV-2 positiven Patienten erfolgen. Dazu wird eine solche Kultur, die etwa 10⁶ bis 10⁷ Zellen/ml in einem geeigneten Kulturmedium enthält und mit ca. 2 µg/ml Polybren versetzt ist, mit etwa 10% des infizierten Serums versetzt und unter CO₂-Atmosphäre bei 37°C so lange (1-6 Wo­ chen) gehalten, bis Synzytienbildung und blasige Dege­ neration der Zellen die Virusproduktion anzeigt.
Die Viren können in bekannter Weise aus dieser Kultur, bei­ spielsweise durch Versetzen des Überstandes mit Natrium­ chlorid/Polyethylenglycol und Abzentrifugieren des Prä­ zipitats bei ca. 2000 U/min oder durch Ultrazentrifugation gewonnen werden.
Die weitere Reinigung kann z. B. durch Zentrifugation im Dichtegradienten erfolgen, wobei die HIV-2-Viren wie andere Retroviren eine Dichte von 1,16 aufweisen.
Vorteilhafter als die Infektion mit Serum ist es jedoch, aus dem Blut von mit HIV-2 infizierten Patienten die Lymphozyten abzutrennen und diese in einem geeigneten Kulturmedium, welches Phytohemagglutinin (PHA) und Interleukin-2 (TCGF-T-cell growth factor) zur Wachstumsstimulierung ent­ hält, etwa 3 Tage anzuzüchten und danach 1-3 mal auf einer Zellkultur, die gegen HIV zythopathogen reagiert, bei­ spielsweise Nabelschnurlymphozyten, zu passagieren, bevor diese Kultur in einer Verdünnung von 1 : 10 bis 1 : 5 zum In­ fizieren der obigen permanenten Zell-Linien verwendet wird. Der schnell auftretende zytopathogene Effekt erlaubt es, die nicht mit HIV-2 infizierten Kulturen rasch zu erkennen und auszusondern.
Sobald einmal eine entsprechende HIV-2-Zellkultur gewonnen ist, wird man diese für weitere Infizierungen verwenden und sich den Umweg über die Patientenselektion sparen.
Die im folgenden verwendeten HIV-2-Viren sind als Kultur in HUT-78-Zellen gemäß Art. 28 Budapester Vertrag bei der European Collection of Animal Cell Cultures (PHLS), Porton Down, Salisbury, England hinterlegt unter Nummer HIY-2/PEI 402.
B. Nachweis von HIV-2-Antikörpern
Der Nachweis der HIV-2-Antikörper beruht in jedem Fall auf der spezifischen Antikörper/Antigen-Reaktion mit den HIV-2-Viren und dem Nachweis der dabei gebildeten Komplexe. Als Antigen kann dabei außer dem Virus selbst auch ein aktives Fragment, d. h. ein spezielles Protein aus der Hülle oder dem Kern des Virus oder auch Virus-haltige Zellen verwendet werden.
1. Western Blot Test
Die Grundlagen dieser Methode sind von Towbin, Proc. Nat. Acad. Sci, USA 76, 4350-4354 (1979) beschrieben. Analog dazu werden die HIV-2-Viren lysiert, auf Natriumdodecylsulfat (SDS)-haltigem Polyacrylamidgel die enthaltenen Proteine elektrophoretisch aufgetrennt und elektrophoretisch auf eine Nitrocelluloseschicht übertragen. Danach werden auf der Nitrocellulose vorhandene proteinbindende Stellen mit Rin­ derserumalbumin abgesättigt, die Schicht getrocknet und in Streifen parallel zur Elektrophoreserichtung geschnitten. Bei Inkubation mit einem Testserum werden nunmehr nur noch die HIV-2-Antikörper, welche mit den HIV-2-Virus Proteinen reagieren können, gebunden und andere im Serum enthaltene Proteine ausgewaschen. Bei Inkubation mit einem markierten anti-human IgG- oder IgM-Antiserum lagert sich dieses nun­ mehr wiederum an den HIV-2-Antikörper an, so daß aufgrund der Markierung nunmehr der ternäre Komplex nachgewiesen werden kann. Als Markierung ist es üblich, mit 125-Jod die Tyrosinanteile des Antikörperproteins selbst zu sub­ stituieren und die Radioaktivität der so gebildeten Komplexe durch Auflegen eines Fotopapiers auf den Nitro­ cellulosestreifen zu messen (RIA-Verfahren) oder die Anti­ körper mit einem leicht nachzuweisenden Enzym (Peroxidase; alkalische Phosphatase Galactoseidase) zu kuppeln und den Komplex durch Umsetzen mit den geeigneten Reagenzien (z. B. H₂O₂/Benzidinderivat; p-Nitrophenylphosphat; Galactosid/ Leucofarbstoff) anzufärben (ELISA-Verfahren) oder den Anti­ körper an einen Fluoreszenzfarbstoff zu binden und die Fluo­ reszenz des gebildeten Komplexes direkt auszuwerten (IFA- Verfahren).
2. ELISA-Verfahren (Enzyme linked immunadsorbend assay)
Für diesen Test werden die Vertiefungen einer Mikrotiterplatte aus Polystyrol mit etwa 0,5 µg Proteinlysat von HIV-2-Viren oder einer entsprechenden Menge der Viren in einer Pufferlösung überzogen und durch Trocknen bzw. Fällen mit Alkohol oder Aceton fixiert. Zusätzliche Bindungsstellen für Protein werden durch Rinderserumalbumin abgesättigt, bevor das Testserum zugegeben wird, so daß nur noch HIV-2-Protein-Antikörper an die entsprechenden Antigene gebunden wird. Durch Umsetzen mit einem Enzym-markierten anti-human IgG- oder IgM-Antiserum wird dann ein nachweisbarer ternärer Immunkomplex gebildet (s. o.). Durch die Bindung des Antigens an die Trägeroberfläche ist es möglich, zwischen den einzelnen Inkubationsschritten Reagenzüberschüsse auszuwaschen und dadurch Störungen der nächsten Reaktion zu vermeiden. Die Farbreaktion des ternären Komplexes wird nach einer definierten Zeit abgestoppt und das Ergebnis üblicherweise mit einem Scanner ausgewertet.
Anstelle der Mikrotiterplatten ist es auch möglich, die Virus-Antigene an die Wand einer Küvette oder an Kügelchen aus Polystyrol zu binden und so die Testanordnung in an sich bekannter Weise zu modifizieren.
Anstelle einer Polystyroloberfläche, die bekanntermaßen Proteine fixiert, können auch andere geeignete Materialien verwendet werden.
Ferner ist es möglich, statt der beschriebenen einfachen "Sandwich"-Methode die Markierung über mehrere "Zwischen­ antikörper" zu fixieren oder dem Testserum eine definierte Menge eines markierten HIV-2-Antigens zuzusetzen und so einen "kompetiven" Test zu bilden. Für weitere Variationen wird auf die zahlreichen Publikationen dieser Methoden ver­ wiesen.
3. IFA (Immunofluorescence assy)
Bei diesem Test werden HIV-2-Viren enthaltene Zellen direkt in einer Pufferlösung (ca. 50 µl) auf Objektträger auf­ gebracht, getrocknet und mit Alkohol/Aceton fixiert. Die Teste können in diesem Zustand bei -20°C gelagert werden. Zur Testdurchführung wird ca. 20 µl Testserum 1 : 10 in PBS (phosphate buffered saline) zugefügt und 1 Std. bei 37°C inkubiert, gewaschen und mit einer verdünnten Lösung von Fluorescein-konjugiertem anti-human IgG oder IgM eingefärbt und die Fluoreszens unter einem Mikroskop ausgewertet.
Die vorstehenden Methoden sollen nur einen generellen Einblick ermöglichen. Dem Fachmann bekannte Methoden zur Zellzüchtung und Vermehrung von Viren sowie für andere Immunteste bekannte und entsprechend anzuwendende Methoden sollen deshalb ebenfalls von der Erfindung umfaßt werden.
Bei gleichzeitiger Anwendung von erfindungsgemäßen HIV-2- und bekannten HIV-1-Viruspräparaten lassen sich insbesondere für die Untersuchung von Blutkonserven geeignete Mittel zum Nachweis beider Viren herstellen.
In den folgenden Beispielen sind bevorzugte Ausgestaltungen wie­ dergegeben, ohne daß die Erfindung darauf beschränkt werden soll.
Beispiel 1 Herstellung von HIV-2-Viren
Aus 10 ml heparinisiertem Vollblut einer HIV-2 positiven Patientin wurden die mononukleären Zellen über einen Ficoll-Gradienten ge­ reinigt. Die gereinigten mononukleären Zellen wurden 3 Tage mit PHA stimuliert und mit 10% Interleukin 2 RPMI 1640 (20% FKS) kultiviert. Es erfolgte eine dreimalige Passagierung auf Nabel­ schnurlymphozyten, die auf oben genannte Art angereichert wurden. Sodann erfolgte eine zellgebundene Übertragung auf die permanenten T-Lymphomlinie HUT 78. Diese Kulturen wurden permanent mit 2 µg/ml Polybren gehalten. Nach ca. 4 Wochen Kultivierung der Zellen zeigte sich ein für die HIV-Gruppe typischer zytopathischer Effekt mit Synzytienbildung und folgender blasiger Degeneration der Zel­ len. Der Nachweis der nun beginnenden Virusproduktion wurde über einen Reversen Transcriptase-Nachweis geführt.
Für diesen Test werden 30 ml Zellkultur-Überstand bei 100 000 G eine Stunde lang zentrifugiert und das Pellet dann im RT Assay getestet. Die RT-Testung erbrachte 40 000 CPM bei einem background von 2000 CPM.
Der Western Blot, durchgeführt mit in oben beschriebener Weise gewonnenem Antigen, erbrachte das typische Bandenmuster des HIV-2.
Beispiel 2 Immunfluoreszenz-Test
HIV-2 infizierte und nicht-infizierte T-Lymphozyten (HUT 78) wer­ den 2mal in PBS gewaschen und in PBS auf 4-6 × 10⁷-Zellen/ml re­ suspendiert. Je 2 µl (ca. 10⁵ Zellen) der infizierten und nicht-infizierten Zellen werden getrennt auf maskierte, entfettete Objektträger aufgebracht und über Nacht bei Raumtemperatur ge­ trocknet.
Je ein Paar von Objektträgern wird mit 20 µl Test- und Kon­ trollserum in einer Verdünnung in PBS von 1 : 20 und 1 : 40 be­ aufschlagt und bei 37°C 30 Min. in einer feuchten Kammer inkubiert. Danach wird 2mal 10 Min. mit PBS gewaschen, getrocknet, mit 20 µl FITC-markiertem anti-human IgG beaufschlagt, erneut 30 Min. bei 37°C inkubiert und gewaschen. Die so eingefärbten Zellen werden mit 50% Glycerin in PBS konserviert und mit einem Fluor­ eszenzmikroskop (Leitz HBO 200; 300fache Vergrößerung) aus­ gewertet.
Beispiel 3 ELISA-Test
5 mg/ml hochgereinigte HIV-2-Viren werden 1 : 1 mit einer Lösung von 1% Triton X-100 in 5 mM Natriumcarbonatpuffer pH 9,6 versetzt und 30 Min. auf 56°C erwärmt, um die Viren zu inaktivieren. Die Sus­ pension wird auf Raumtemperatur abgekühlt, 1 : 500 mit 50 mM Na­ triumcarbonatpuffer pH 9,6 verdünnt, in ELISA-Plastiknäpfchen gefüllt und 16 Std. bei 4°C gehalten, um die Antigene an die Ge­ fäßwand zu binden. Danach wird der Rest der Lösung ausgegossen und die Näpfchen mit destilliertem Wasser gewaschen und getrocknet. Nun werden die Näpfchen mit 200 µl einer Lösung von 0,1% Rin­ derserumalbumin und 2% Kaninchenserum in 50 mM Natrium­ carbonatpuffer pH 9,6 gefüllt, 1 Std. bei 37°C inkubiert und mit 0,05% Tween-20 in PBS gewaschen, bevor 100 µl Testlösung (Serum 1 : 100 mit PBS + 005% Tween verdünnt) eingefüllt und 90 Min. bei 37°C inkubiert wird. Reste des Testserums werden durch 2maliges Waschen mit 0,05% Tween-20 und 0,5% Kaninchenserum in PBS und 2maliges Waschen in 0,5% Kaninchenserum in PBS entfernt. Danach wird 100 µl einer Lösung aus Kaninchen anti-human IgG, konjugiert mit Peroxidase 1 : 1000 in 0,05% Tween-20 in PBS zugefügt, 60 Min. bei 37°C inkubiert und wie zuvor 4 × gewaschen. Anschließend wird eine Lösung aus 10 mg o-Phenylendiamin und 10 µl H₂O₂ (30% in Phosphatpuffer pH 6,8) zugegeben, 30 Min. bei 20°C gehalten und die Reaktion mit 2 N Schwefelsäure abgestoppt. Die Reaktion wird anhand der gelben Farbe bei 486 nm gemessen.
Beispiel 4 Western Blot-Test
150 mg HIV-2 Viren werden in einer Lösung von 350 µl Puffer (2% SDS, 2% Glycerin, 0,1 M Tris-HCl pH 6,8, 20 mM PMSF (Phenylmethylsulfonylfluorid), 0,2% Bromphenolblau, 0,5% β-Mercaptoethanol) lysiert, auf eine SDS-Polyacrylamidgelplatte 16 cm × 16 cm aufgetragen und mit einer Spannung von 180 V die Virusproteine elektrophoretisch getrennt. Nach einer Zeit von ca. 4 h wird ein Nitrocellulosefilter aufgelegt und die Proteinbanden mit einer Spannung von 60 V in 3,5 min elektrophoretisch übertragen. Das Nitrocellulosefilter wird mit 1% BSA (Rinderserumalbumin) und 1% Gelatine in PBS, pH 7,4 getränkt, getrocknet und in Streifen von 0,5 cm Breite geschnitten. Zur Verwendung werden die Streifen mit einer Pufferlösung 1 aus 10% foetalem Kälberserum, 1% BSA und 0,1% Triton X-100 in PBS 90 min bei 20°C befeuchtet und anschließend je 1 Streifen mit einer 1: 100 Verdünnung des Testserums in dem vorstehenden Puffer 1 inkubiert. Die Inkubationszeit ist dabei abhängig von der Temperatur. 90 min bei 37°C, 120 min bei 20°C und 16 Stunden bei 4°C haben sich bewährt.
Die Streifen werden nach der Inkubation 3 mal 15 min mit dem Puf­ fer 1 gewaschen, bevor sie mit einer 1 : 1000 Verdünnung von anti-human IgG - Antiserum, Peroxidase - konjugiert in 2,5 ml Pufferlösung 1 60 min bei 20°C inkubiert wurden. Überschüssiges Antiserum wird 3 mal 15 min mit Pufferlösung 1 und 3 mal 15 min mit PBS, pH 7,4 ausgewaschen.
Zum Anfärben werden die Streifen mit einer Lösung aus 50 mg 3.3- Diaminobenzidin und 50 µl Wasserstoffperoxid in 100 ml PBS, pH 7,4, 20 min bei 20°C inkubiert. Die Reaktion wird durch 3 mal 15 min Waschen mit destilliertem Wasser gestoppt, die Streifen getrocknet und photometrisch ausgewertet. Es zeigen sich bei den HIV-2 antikörperpositiven Seren die für HIV-2 charakterischen Banden bei 26kd, 32kd, 51kd, 55kd, 65kd, 130kd. Beim Kreuztest mit bekannt HIV-1 positiven Seren ergibt sich keine oder nur eine schwache Reaktion gegen p26 (gag) und/oder yp 32 (env).
Alle drei vorstehenden Teste können in gleicher Weise auch mit einem Gemisch aus HIV-1- und HIV-2- Präparaten durchgeführt werden, wobei eine gleichzeitige Prüfung auf beide Antikörper erfolgt. Natürlich kann nur im Western-Blot-Test durch die unterschiedlichen Banden eine Unterscheidung erfolgen.

Claims (8)

1. Verfahren zum Gewinnen von HIV-2-Viren, dadurch gekennzeichnet, daß eine Kultur von permanenten T-Lymphozyten-Zellen mit Serum oder Leucozyten eines HIV-2 infizierten Patienten oder einer HIV-2 infizierten Zellkultur versetzt und unter geeigneten Kulturbedingungen weitergezüchtet wird und nach Ausbildung einer ausreichenden Viruskonzentration aus der Kultur in üblicher Weise die Viren oder Virus-haltige Zellen isoliert werden.
2. Verfahren nach Anspruch 1, dadurch gekennzeichnet, daß die im Serum bzw. in Leucozyten infizierter Patienten enthaltenen HIV-2-Viren zunächst ein oder mehrfach in Lymphozyten-Kulturen passagiert und angereichert werden, auf die sie stark zytopathisch wirken, bevor sie auf eine permanente Zellkultur übertragen werden.
3. Verfahren nach Anspruch 1 oder 2, dadurch gekennzeichnet, daß die permanente Zellkultur HUT 78, Molt 3, CEM oder HT ist.
4. Permanente T-Lymphozyten-Zellkultur, welche HIV-2-Viren enthält.
5. Zellkultur nach Anspruch 4, dadurch gekennzeichnet, daß es eine HUT 78-Kultur ist, welche unter der Bezeichnung HIV-2 PEI 402 bei PHLS hinterlegt ist.
6. Mittel zum Nachweis von HIV-2-Antikörpern, enthaltend HIV-2-Viruspräparate gemäß einem der Ansprüche 1-3 sowie Reagenzien zum Nachweis von HIV-2-Virus/HIV-2-Antikörper- Komplexen.
7. Mittel gemäß Anspruch 6, zur Verwendung in einem Western Blot-, ELISA- oder Immunfluoreszenzverfahren.
8. Mittel gemäß Anspruch 6 oder 7, dadurch gekennzeichnet, daß zum gleichzeitigen Nachweis von HIV-1-Antikörpern ein HIV-1-Virus enthalten ist.
DE19873712334 1987-04-11 1987-04-11 Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung Expired - Fee Related DE3712334C2 (de)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19873712334 DE3712334C2 (de) 1987-04-11 1987-04-11 Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
DE19873712334 DE3712334C2 (de) 1987-04-11 1987-04-11 Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung

Publications (2)

Publication Number Publication Date
DE3712334A1 DE3712334A1 (de) 1988-10-20
DE3712334C2 true DE3712334C2 (de) 1995-04-27

Family

ID=6325435

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
DE19873712334 Expired - Fee Related DE3712334C2 (de) 1987-04-11 1987-04-11 Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung

Country Status (1)

Country Link
DE (1) DE3712334C2 (de)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5876732A (en) * 1995-03-07 1999-03-02 Akzo Nobel, N.V. Human T-cell line infected with HIV-2 which secretes functionally intact HIV-2 GP160

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
FR2592893A1 (fr) * 1986-01-15 1987-07-17 Pasteur Institut Population de lymphocytes t4 specifiques du virus lav, leur procede d'obtention et leur application a la production de ce virus.

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5876732A (en) * 1995-03-07 1999-03-02 Akzo Nobel, N.V. Human T-cell line infected with HIV-2 which secretes functionally intact HIV-2 GP160

Also Published As

Publication number Publication date
DE3712334A1 (de) 1988-10-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
DE3587969T2 (de) Testverfahren zum nachweis von menschlichem lymphotropischem virus.
EP0770679B1 (de) HCV-spezifische Peptide, Mittel dazu und ihre Verwendung
DE3752319T2 (de) Prozess zur rekombinanten Herstellung von HIV-2 - Proteinen sowie Zellen, die HIV-2 - Proteine exprimiert
DE3783282T2 (de) Varianten von lav-viren, deren dns- und proteinkomponenten und deren verwendung, insbesondere zu diagnostischen zwecken und zur herstellung von immunogenen zusammensetzungen.
DE69027812T2 (de) Verfahren zur Zurichtung eines verbesserten Western-Blott-Immuntestverfahrens
DE68916421T2 (de) Synthetische peptidantigene zum nachweis von htlv-1-infektionen.
DE3789333T2 (de) Menschlicher monoklonaler Antikörper gegen Lymphadenopathie assozierten Virus.
EP0673948A1 (de) Von einem Retrovirus aus der HIV-Gruppe abgeleitete Peptide und deren Verwendung
DE60013124T2 (de) Reverse transkriptase testsatz, dessen benutzung, und verfahren zur analyse der rt-aktivität in biologischen proben
EP0972198B2 (de) Verfahren zur simultanen bestimmung von hiv-antigenen und hiv-antikörpern
DE19920704C1 (de) Verwendung eines gegen Harn-Trypsin-Inhibitors gerichteten Antikörpers für die Diagnose des Ausbruchs von AIDS
DE3712334C2 (de) Verfahren zum Züchten von HIV-2-Viren, dazu geeignete Zellkulturen sowie diagnostische Mittel zum Nachweis von HIV-2-Viren und Verfahren zu ihrer Herstellung
DE3636540A1 (de) Verfahren zur bestimmung von anti-hiv, mittel dazu und ihre verwendung in diesem verfahren
Aoki et al. Seroepidemilogy of human T‐lymphotropic retrovirus type I (HTLV‐I) in residents of niigata prefecture, Japan. Comparative studies by indirect immunofluorescence microscopy and enzyme‐linked immunosorbent assay
JPH0439999B2 (de)
DE60007195T2 (de) Antikörper und Diagnostizierverfahren zur Pestivirusdiagnose
DE69009066T3 (de) SIV cpz-ant Retrovirus und seine Anwendungen.
DE69119445T2 (de) Analysemethode für infektiöse Pferdeanämie-Viren (EIA-Virus)
DE3788424T2 (de) Testverfahren des menschlichen b-lymphotropen virus (hblv).
EP0273333A2 (de) Verfahren zum immunologischen Nachweis von Mykobakterien im Sputum sowie monoklonale Antikörper zur Durchführung des Verfahrens
EP0428656B1 (de) Humane zellinie lc5 sowie deren verwendung
EP0213106A2 (de) Verfahren zum Nachweis von Antikörpern und Verfahren zur Herstellung eines Mittels zum Nachweis von Antikörper
DE4233646C2 (de) Retrovirus aus der HIV-Gruppe und dessen Verwendung
Cleland Acrosome formation in bandicoot spermiogenesis
EP0538703A1 (de) Verfahren zum Nachweisen der An- oder Abwesenheit von Epstein-Barr-Virus Infektionen

Legal Events

Date Code Title Description
8110 Request for examination paragraph 44
D2 Grant after examination
8364 No opposition during term of opposition
8327 Change in the person/name/address of the patent owner

Owner name: BUNDESREPUBLIK DEUTSCHLAND, VERTRETEN DURCH DEN BU

8339 Ceased/non-payment of the annual fee