DE19525282A1 - Expressionskassetten zur heterologen Expression von Proteinen in der Hefe Yarrowia lipolytica unter Kontrolle des regulierbaren Promotors der Isocitratlyase - Google Patents
Expressionskassetten zur heterologen Expression von Proteinen in der Hefe Yarrowia lipolytica unter Kontrolle des regulierbaren Promotors der IsocitratlyaseInfo
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Description
Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Konstruktion von Expressionskassetten, die zur
heterologen Expression von Proteinen in der Hefe Yarrowia (Y.) lipolytica unter Kontrolle des
regulierbaren Promotors der Isocitratlyase (ICL1 Gen) dieser Hefe geeignet sind.
Sie betrifft ferner die Klonierung des vollständigen ICL1-Promotors, der notwendig ist für die
Realisierung des Verfahrens.
Anwendungsgebiet der Erfindung ist die Biotechnologie, vor allem die Nutzung zur Expression
von Oligopeptiden und Proteinen in Y. lipolytica und insbesondere die sich daraus ergebende
Möglichkeit, zielgerichtet mikrobielle Stoffwandlungen mit Hilfe der in der Hefe heterolog
exprimierten Enzyme durchzuführen.
Die Isocitratlyase (ICL, EC 4.1.3.1) ist ein Enzym des Glyoxylat-Zyklus, welcher in pro- und
eukaryotischen Mikroorganismen, Protozoa, Mollusken, Insekten und Pflanzen nachgewiesen
werden konnte. In Säugern ist er dagegen nur in einigen Geweben und nur zu bestimmten
Entwicklungsabschnitten nachweisbar (Übersicht bei Vanni et al. 1990 Comp Biochem Physiol
95B: 431-458). Dieser anaplerotische Stoffwechselweg ist notwendig für die Verwertung von
Ethanol, Acetat, Fettsäuren und n-Alkanen als Kohlenstoff- und Energiequelle durch
Mikroorganismen, wie Bakterien, Hefen und Pilze. Intermediate des Tricarbonsäure-Zyklus
(Succinat, Oxalacetat) werden durch den Glyoxylat-Zyklus aus dem im Metabolismus vermehrt
entstehenden Acetyl-CoA wieder nachgebildet und in die anabolen Wege (Gluconeogenese,
Aminosäuresynthese) eingeschleust.
Heute liegen zur Biochemie und genetischen Regulation des Glyoxylatzyklus und besonders der
ICL in Mikroorganismen (E. coli, Hefen wie Y. lipolytica, C. tropicalis, S. cerevisiae, Pilze wie
Aspergillus nidulans, Neurospora crassa) zahlreiche Daten vor. Mutanten in den Strukturgenen
der ICL, MS und ACS sowie den regulatorischen Genen wurden isoliert und untersucht. Es
gelang unter anderem die Klonierung der ICL-Gene aus den oben angeführten Mikroorganismen
(siehe Barth and Scheuber 1993 Mol Gen Genet 241: 422-430).
Die Expression der Schlüsselenzyme des Glyoxylat-Zyklus ICL und Malatsynthase (MS, EC
4.1.3.2) wird in den bisher untersuchten Hefen S. cerevisiae, C. tropicalis und Y. lipolytica auf
der transkriptionellen (Induktion/Katabolitrepression) und der posttranslationalen Ebene
(Katabolitinaktivierung und metabolische Regulation durch Metaboliten bzw. durch
Phosphorylierung/Dephosphorylierung) stark reguliert (Barth 1985 Curr Genet 10: 119-124,
Kujau et al. 1992 Yeast 8: 193-203, Barth and Scheuber 1993 Mol Gen Genet 241: 422-430,
weitere Literatur siehe Vanni et al. 1990 Comp Biochem Physiol 95B: 431-458).
Es wurde gezeigt, daß Intermediate des Metabolismus (offensichtlich Acetyl-CoA) der
induzierend wirkenden C-Quellen notwendig sind für die Induktion der Isocitratlyase. Das
induzierend wirkende Acetyl-CoA wird bei Wachstum auf Ethanol, Acetat, Fettsäuren und n-
Alkanen verstärkt, dagegen beim Wachstum auf Glucose nur geringfügig gebildet, und die ICL-
Synthese wird reprimiert. Glycerol als C-Quelle wirkt dereprimierend auf die ICL. Die stark
exprimierte ICL kann bis zu 5% des zellulären Proteins betragen (Vanni et al. 1990 Comp
Biochem Physiol 95B: 431-458). Demnach steht im ICL1-Gen offensichtlich ein gut regulierbarer
Promotor aus Y. lipolytica zur Verfügung, der für die heterologe Expression von Proteinen in
diesem Wirt genutzt werden kann.
Seit Klonierung der ersten Gene aus Y lipolytica (LEU2, XPR2) wird diese nicht-konventionelle
Hefe auf ihrer Nutzbarkeit zur heterologen Proteinexpression untersucht.
- Y. lipolytica ist besonders durch ihre ausgeprägte Eigenschaft von praktischem Interesse, eine Reihe von hochmolekularen Proteinen zu sezernieren (Übersicht bei Ogrydziak 1993 Critical Rev , Biotechnol 13: 1-55), darunter eine alkalische extrazelluläre Protease (AEP), mindestens 3 saure Proteasen, Lipasen bzw. Esterasen, eine Ribonuklease, eine Phosphodiesterase, sowie alkalische und saure Phosphatasen. Das steht im Gegensatz zur Hefe S. cerevisiae, die natürlicherweise keine größeren Proteine in Medium ausscheidet.
Dadurch ist die Hefe Y lipolytica (neben weiteren nicht-konventionellen Hefen wie Pichia
pastoris und Kluyveromyces lactis) von potentiellem Interesse für ihre Anwendung zur
extrazellulären Produktion von heterologen Proteinen (Heslot 1990 Adv Biochem Eng/Biotechnol
43: 43-73; Buckholz and Gleeson 1991 Bio/Technology 9: 1067-1072; Romanos et al. 1992
Yeast 8: 423-488; Ogrydziak 1993 Critical Rev Biotechnol 13: 1-55; Sudbery 1994 Yeast 10:
1707-1726).
Bisher wurden in Y lipolytica eine Reihe heterologer Proteine extra- und intrazellulär exprimiert,
darunter bakterielle Proteine, wie die β-Galactosidase (lacZ Gen) und die β-Glucuronidase (gusA)
aus E. coli unter Kontrolle der LEU2-, LYS5-, XPR2- und PHO2-Promotoren, sowie das
Hefeprotein Invertase (SUC2 Gen) aus S. cerevisiae unter Kontrolle des XPR2-Promotors
(Literaturangaben in den aufgeführten Übersichtsartikeln).
Von besonderem Interesse war die Expression und Sekretion einer Reihe Proteine höherer
Eukaryonten, die auch von kommerziellem Interesse sein können, wie der Blut-Gerinnungsfaktor
XIIIa des Menschen (XPR2-Promotor, Tharaud et al. 1992 Gene 121: 111-119), das
Prochyrnosin des Rindes (YPR2 und LEU2-Promotor, Davidow et al. 1987, European Patent
Applications EP 220864 B1, and EP 86307839; Franke et al. 1988 Develop Indust Mircobiol
29: 43-57; Nicaud et al. 1991 J Biotechnol 19: 259-270), das α1-Interferon des Schweines (Heslot
et al. 1990 In: Nga BH and Lee YK /Eds/, Microbiology Applications in Food Biotechnology,
Elsevier Science, Amsterdam, pp 27-45; Nicaud et al. 1991 J Biotechnol 19: 259-270), das
Anaphylatoxin C5a des Menschen (XPR2-Promotor, Davidow et al. 1987 European Patent
Application EP 86307839), der gewebespezifische Plasminogen Aktivator (tPA) des Menschen
(XPR2-Promotor, Franke et al. 1988 4th ASM Conf Genet Mol Biol Industrial Microoganisms,
Bloomington, Indiana, Abtstracts p37, sowie das Hepatitis B Virus Oberflächenantigen (preS2-
HBsAg) unter Kontrolle des XPR2-Promotors (Hamsa und Chattoo 1994 Gene 143: 165-170).
Neben den aufgeführten Berichten zur Expression und Sekretion von Proteinen sollte die
alkanverwertende Hefe Y. lipolytica ein interessanter Wirt für die Expression von
membranständigen (ER) Proteinen, insbesondere von Cytochrom P450 Enzymen sein, da sie eine
Reihe von spezifischen Eigenschaften einer alkanverwertenden Hefe (Aufnahme, Transport
hydrophober Substrate und günstige Bedingungen für den Elektronentransfer zum P450)
aufweist, die für die biotechnologische Nutzung zur Biotransformation kommerziell interessanter
Verbindungen von Vorteil sein können.
Wie aus der oben angeführten Aufzählung hervorgeht, wurden für die heterologe Expression von
Proteinen in Y. hpolytica bisher hauptsächlich der XPR2- und der LEU2-Promotor genutzt. Der
XPR2-Promotor ist am besten charakterisiert und zeigt die bisher für Y. lipolytica höchste
Promotorstärke, insbesondere nach gezielter Modifikation (Blanchin-Roland et al. 1994 Mol Cell
Biol 14: 327-338). Der XPR2-Promotor ist jedoch relativ komplex durch pH und die N- und C-
Quellen reguliert, und erfordert die Kultivierung in einem Medium mit viel Pepton. Die Natur des
eigentlichen Induktors ist jedoch nicht bekannt (Blanchin-Roland et al. 1994 Mol Cell Biol 14:
327-338). Die Sekretionssignale (in der Pre-Pro-Sequenz) für die extrazelluläre alkalische
Protease wurden, wie oben aufgeführt, vor allem zur Produktion und Sekretion einer Reihe von
kommerziell interessanten heterologen Proteinen (Übersichten bei Heslot 1990 Adv Biochem
Eng/Biotechnol 43: 43-73; Buckholz and Gleeson 1991 Bio/Technology 9: 1067-1072; Romanos
et al. 1992 Yeast 8: 423-488; Ogrydziak 1993 Critical Rev Biotechnol 13: 1-55; Sudbery 1994
Yeast 10: 1707-1726) mit Y. lipolytica genutzt. Der LEU2-Promotor ist dagegen nicht als stark
einzuschätzen (Gaillardin and Ribet 1987 Curr Genet 11: 369-375).
Es gibt deshalb immer noch einen Bedarf an starken, regulierbaren Promotoren für die Hefe Y.
lipolytica, wofür offensichtlich die stark exprimierten Gene PYK1 oder ICL1 (Strick et al. 1992
Gene 118: 65-72, sowie 1994 Gene 140: 141-143, Barth and Scheuber 1993 Mol Gen Genet 241:
422-430) in Frage kommen.
Das Anliegen der Erfindung ist es, mit der Anwendung des ICL1-Promotors einen Beitrag zur
Erschließung weiterer regulierbarer Promotoren für Y. lipolytica zu leisten, die Stärke dieses
Promotors für eine heterologe Expression mit Hilfe des lacZ Genes aus E. coli einzuschätzen, und
dessen Eignung für die heterologe Expression von Cytochrom P450 in Y. lipolytica zu testen.
Die Erfindung hat das Ziel, ein neues, gut regulierbares Expressionssystem für heterologe Gene in
der Hefe Yarrowia (Y.) lipolytica zur Verfügung zu stellen. Es soll auf der Basis des
regulierbaren Promotors des ICL1 Genes (kodierend für die Isocitralyase) der Hefe Yarrowia
lipolytica durch eine einfache Kulturführung zur Expression von heterologen Proteinen führen,
die unter anderem auf Grund ihrer Eigenschaften zu mikrobiellen Stoffwandlungsprozessen
eingesetzt werden können. Der Erfindung liegt die Aufgabe zugrunde, die Hefe Y. lipolytica
durch die Konstruktion geeigneter Expressionskassetten und deren Transformation in die Hefe
gentechnisch so zu verändern, daß sie bei Kultivierung auf Medien mit geeigneter
Kohlenstoffquelle heterologe Proteine exprimiert.
Diese Aufgabe wird durch die Klonierung des ICL1-Genes, insbesondere seines vollständigen
Promotors, aus Y. lipolytica und die dadurch ermöglichte Konstruktion von neuen
Expressionskassetten mit dem regulierbaren Promotor dieses Genes gelöst.
Das erfindungsgemäße Verfahren ist dadurch gekennzeichnet, daß Expressionskassetten zur
heterologen Expression von Proteinen in Y. lipolytica, bestehend aus dem vollständigen Promotor
(2196 bp) und Terminator (275 bp) des Isocitratlyase Genes (ICL1) und dem zu exprimierenden
heterologen Gen (beispielsweise das lacZ Gen aus E. coli, P450 Gene oder cDNA
unterschiedlicher Herkunft), konstruiert werden.
Das geschieht durch Modifikation des 3′-Endes des Promotors des ICL1-Genes aus Y. lipolytica
mittels PCR (vor oder hinter dem Intron im ICL1 Gen) zur Einführung eines entsprechenden
Restriktonsortes und die dadurch durch einfache Klonierung ermöglichte Fusion mit dem zu
exprimierenden heterologen Gen und dem daran angeschlossenen ICL1-Terninator, bzw. durch
den direkten Anschluß des zu exprimierenden heterologen Genes hinter dem T₃₆₀G₃₆₁ des ICL1-
Genes mittels rekombinanter PCR.
Diese neu konstruierten Expressionskassetten werden dann in das Grundgerüst eines in Y.
lipolytica autonom replizierenden Vektors, beispielsweise pINA237, pYLI131, oder pYLI131D,
umkloniert.
Mit Hilfe dieser neu konstruierten Vektoren werden die Expressionskassetten in einer geeigneten
Form in entsprechende Rezipientenstämme der Hefe Y. lipolytica transformiert, was sowohl durch
integrative Transformation in das Genom als auch durch Transformation mit diesen autonon
replizierenden Vektoren möglich ist.
Durch Kultivierung der entsprechenden Transformanden der Hefe Y. hpolytica in
Mineralsalzmedien mit induzierend wirkenden Kohlenstoffquellen werden die Proteine durch die
Hefe synthetisiert und intrazellulär angereichert. Induzierend wirkende Kohlenstoffquellen können
sein Ethanol, Acetat, Fettsäuren oder n-Alkane.
Kernpunkt der Erfindung ist die Sequenz des neu klonierten vollständigen Promotors der
Isocitratlyase der Hefe Y. lipolytica. Davon abgeleitet werden Vektoren zur gentechnischen
Veränderung von Y. lipolytica konstruiert, die, aufbauend auf dem Grundgerüst des Vektors
pINA237, Expressionskassetten, bestehend aus dem vollständigen ICL1-Promotor (2196 bp),
dem zu exprimierenden heterologen Gen und dem ICL1-Terminator (275 bp) kloniert in den
pBR322 Teil des Vektors, enthaften.
Eine für die Durchführung der Erfindung wichtige Besonderheit besteht darin, daß mit dem
vollständigen ICL1-Promotor ein durch einfachen Wechsel der C-Quellen gut regulierbarer
Promotor genutzt wird, der die heterologe Expression von Proteien in Y. lipolytica durch eine
einfache Kulturführung und unter Einsatz von kostengünstigen C-Quellen wie Ethanol oder
Acetat gestattet.
Das erfindungsgemäße Verfahren zeichnet sich dadurch aus, daß die konstruierten
Expressionskassetten mit dem vollständigen ICL1-Promotor die Expression heterologer Proteine
in Y. lipolytica gewährleisten, deren Anteil am Gesamtprotein mindestens 3% (wie für die β-
Galactosidase aus E. coli gezeigt) betragen kann. Der ICL1-Promotor gehört demnach zu den
durch die C-Quelle einfach regulierbaren Promotoren für Y lipolytica, seine Promotorstärke liegt
im Bereich des bisher beschriebenen stärksten Promotors für das XPR2 Gen aus dieser Hefe.
Die Erfindung soll nachfolgend durch Ausführungsbeispiele erläutert werden
B204-12C (MATA met6 spol),
B204-12C-112 (MATA met6 spol GPR1),
Rezipientenstämme zur Transformation von Y. lipolytica:
B204-12A-213 (M4TB leu2 ura3) und
B512-3 (MATA iclic leu2 met6).
B204-12C-112 (MATA met6 spol GPR1),
Rezipientenstämme zur Transformation von Y. lipolytica:
B204-12A-213 (M4TB leu2 ura3) und
B512-3 (MATA iclic leu2 met6).
Alle Stämme entstammen der Stammsammlung von Dr. G. Barth (Biozentrum der Universität
Basel/Technische Universität Dresden).
E. coli/Y. lipolytica-Shuttle-Vektoren:
pINA237 - Der E. coli/Y. hpolyllca-Shuttle-Vektor pINA237 trägt neben dem CEN-ARS18 Gen zur autonomen Replikation in Y. lipolytica das homologe LEU2-Gensowie einen Anteil von pBR322 zur Amplifikation in E. coli. Die Kopiezahl dieses Vektors in Y. lipolytica liegt bei 1-3 pro Zelle (Fournier et al. 1993, Proc Natl Acad Sci USA 90: 4912-4916).
pINA237 - Der E. coli/Y. hpolyllca-Shuttle-Vektor pINA237 trägt neben dem CEN-ARS18 Gen zur autonomen Replikation in Y. lipolytica das homologe LEU2-Gensowie einen Anteil von pBR322 zur Amplifikation in E. coli. Die Kopiezahl dieses Vektors in Y. lipolytica liegt bei 1-3 pro Zelle (Fournier et al. 1993, Proc Natl Acad Sci USA 90: 4912-4916).
pYLI131 - Der Vektor pYLI131 wurde aus einer einer Genbank (konstruiert aus 2-8 kb
großen Sau3A-Fragmenten der chromosomalen DNA des Stammes B204-12C-211 ligiert in
den BamHI-Restriktionsort des Vektors pINA237) durch Komplementation in der icl1-
Mutante B512-3 (MATA icl1c leu2 met6) direkt kloniert (Abb. 1).
pUCEK2L - lacZ am ATG₃₁₉ des ICL1 angeschlossen und in pUC118 kloniert (Abb. 4).
Oligonukleotide zur PCR:
Sa2 : 5-′ ATG GTG TCG ACA AGG AGA TGG CGC CCA ACA G 3′
3SS: 5′ GCT GTT GCA TGC CTG GGT TAG TAC GGG ACA GAT G 3′
5SS: 5′ GGA TAC TGC ATG CTT TGT ATG CTT GGT CA 3′
Oligonukleotid 1: 5′ GCGGCCGCGTCGACGCGG 3′
Oligonukleotid 2: 5′ GATCCCGCGTCGACGCGGCCGCCAT 3′
Sa2 : 5-′ ATG GTG TCG ACA AGG AGA TGG CGC CCA ACA G 3′
3SS: 5′ GCT GTT GCA TGC CTG GGT TAG TAC GGG ACA GAT G 3′
5SS: 5′ GGA TAC TGC ATG CTT TGT ATG CTT GGT CA 3′
Oligonukleotid 1: 5′ GCGGCCGCGTCGACGCGG 3′
Oligonukleotid 2: 5′ GATCCCGCGTCGACGCGGCCGCCAT 3′
Das ICL1-Gen mit einem nicht vollständigen Promotor (Promotorvariante A-225 bp) liegt in dem
15,75 kb großen Expressionsvektor pYLI131 vor (Abb. 1). Dieser Vektor wurde durch
Direktklonierung in Hefe gewonnen, wobei eine icl1-Mutation des Stammes B5 12-3 mit einer im
BamHI-Ort des Expressionsvektors pINA237 angelegten Genbank (durch Ligation partiell
Sau3A-verdauter DNA-Fragmente des Stammes B204-12C-112 in den BamHI Ort des Vektors)
transformiert wurde. Die Selektion der Transformanden auf den Phänotyp Ace⁺ (Acetat
verwertend) bzw. Eth⁺ Ethanol verwertend) führte schließlich zur direkten Klonierung des
Vektors pYLI131 in Y. lipolytica, der ein funktionell aktives ICL1-Gen trägt.
Der Vektor pYLI131 enthält das ICL1-Gen (Abb. 2) innerhalb eines vollständig sequenzierten
Bereiches von 2.5 kb am Anfang eines 7.8 kb Y. hpolytica DNA Fragmentes. Ursprünglich war
ein Promotorbereich von 544 bp bis zum ATG₃₁₉ als funktionell ausreichend angenommen worden
(Abb. 2). Das ICL1-Gen besteht weiter aus einem für das ICL-Protein kodierenden offenen
Leserahmen (ORF) von 1625 bp, einem angenommenen Terminatorbereich von 275 bp vom
Stopcodon TAA (1982 bp) bis zumBarnHI-Ort (2254 bp, entspricht 5696 bp in Abb. 1).
Um den funktionellen Terminatorbereich einzugrenzen, wurde aus dem Vektor pYLI131 (vgl.
Abb. 1) zum einen das SalI₈₄₄/BamHI₇₉₇₉-Fragment (469 bp) und zum anderen das BamHI7979-5696
Fragment (2283 bp) isoliert. Der Vektor pINA237 wurde SalI/BamHI geöffnet und mit den
isolierten Fragmenten aus dem pYLI131 der Vektor pYIL131A (10,44 kp) konstruiert, der wie
pYLI131 die Promotorvariante A enthält. Die Fähigkeit dieser Vektoren zur funktionellen
Expression der ICL und der β-Galactosidase (Abb. 6) unterscheidet sich jedoch nicht.
Damit konnte experimentell gezeigt werden, daß der 5.3 kb große, nichtsequenzierte Bereich Y.
lipolylica-DNA, der sich im Vektor pYLI131 vor dem BamHI-Ort bei 5696 bp (zerstörter
BamHI Ort bei 374 bp bis BamHI Ort bei 5696 bp) befindet (siehe Abb. 1), keinen Einfluß auf die
Termination der Transkription und damit auf die Expression des ICL1- und des lacZ-Genes hat
(siehe Abb. 5 und 6).
In der Nucleotidsequenz des ICL1-Genes im Vektor pYLI131 konnten im Bereich des ICL1-
Promotors und -Strukturgens konservierte Intronsequenzen von Y. lipolytica gefunden werden,
wie sie aus zwei Y. lipolytica Genen (PYK - Pyruvatkinase, SEC14 - Phosphatidylinositol/
Phosphatidylcholin-Transferprotein) bekannt waren (Abb. 2 und 3).
Für die Klonierung des ICL1-Promotors wurde die chromosomale DNA aus dem Hefestamm
Yarrowia lipolylica B204-12C (MATA met6 spol) nach Kultivierung auf YPD-Vollmedium
präpariert und nach Inkubation mit verschiedenen Restriktionsendonukleasen (SalI, XhoI und
NcoI und in Kombinationen) im Southernblot analysiert. Die zur Detektion der ICL1-Sequenz
verwendete Sonde (987 bp) wurde aus dem Vektor pYLI131 als BaMHI-31-KpnI₉₅₆-Fragment
gewonnen, welches den Intronbereich und für den N-terminalen Teil des ICL Protein kodierenden
Bereich enthielt (vgl. Abb. 2).
Mit XhoI/NcoI-Fragmenten genomischer DNA der Größe 2,7-3,3 kb wurde durch Klonierung in
den durch SalI/NcoI-Verdau vorbereiteten Vektor pUCBM21 (Boehringer Mannheim) eine
angereicherte Genbank hergestellt. Das Screening dieser angereicherten Genbank durch
Koloniehybridisierung erneut mit der BarnHI/KpnI-Sonde lieferte mehre stark hybridisierende
Einzelklone. Von diesen wurden die Plasmide isoliert, durch Restriktionsanalyse ihre Identität
festgestellt, und das klonierte Fragment wurde vollständig sequenziert. Das Plasmid pUCIPD
enthält in einem 2,9 kb Insert den Promotorbereich bis -2176 bp und einen Teil des ICL-
Strukturgens bis zum NcoI Ort bei 702 bp (Abb. 2 und 3). Die Sequenz des vollstandigen ICL1
Promotors wurde bestimmt und ist in Abb. 3 dargestellt. Die bisher im pYLI131 vorliegende
Sequenz der Promotorvariante A beginnend vom Sau3A-Ort bei -225 bp bis zum NcoI-Ort bei
702 bp im Strukturgen stimmt mit der Sequenz des neu klonierten vollständigen ICL1-Promotors
vollständig überein.
Zur Nutzung des vollständigen ICL1-Promotors zur homologen und heterologen Expression von
Proteinen wurde dieser in den Vektor pINA237 nach geeigneter Modifizierung umkloniert.
Zur Umklonierung der unter Punkt 2 beschriebenen Sequenz in den für die Expression von
Proteinen in Y. lipolytica geeigneten Vektor pINA237 wurde dieser modifiziert, um den sonst
nicht vorhandenen Spaltort NotI einzufügen. Dazu wurde nach partieller Spaltung mit der
Restriktase SphI und vollständiger Spaltung mit der Restriktase BamHI eine
Oligonukleotidsequenz (Oligonukleotide 1 und 2, siehe 1.) durch Ligation eingefügt, wodurch
gleichzeitig der SphI-Spaltort zerstört wurde. In den so gewonnenen Vektor pINA237Not wurde
die ICL1-Promotorsequenz BamHI/NotI und die ICL1-Strukturgensequenz als BamHI-Fragment
ligiert. Das dabei entstehende Plasmid pYLI131D enthält das vollständige ICL1-Gen (vgl. Abb. 5
und 6), das eine mit dem chromosomal codierten ICL1-Gen vergleichbare Expressionhöhe und
Reprimierbarkeit durch Glucose zeigte.
Eine vergleichbare Klonierung der ICL1-Promotorsequenz BamHI/SalI und der ICL1-
Strukturgensequenz als BamIHI-Fragment ergab den Vektor pYLI131C (vgl. Abb. 5).
Zur funktionellen heterologen Expression in Y. lipolytica wurde das lacZ Gen aus E. coli mit dem
des ICL1-Promotor (Promotorvarianten A, C und D) fusioniert (Abb. 5 und 6).
Dazu wurden der ICL1-Promotor des Vektor pYLI131 durch PCR am 3′S (Primer Sa2 und 3SS)
und am 5′S (Primer Sa2 und 5SS) mit einem SphI-Ort modifiziert, um einen Anschluß des lacZ
Genes durch Klonierung zu ermöglichen. Diese modifizierten Promotorfragmente wurden kloniert
und in die entsprechend vorbereiteten Plasmide pUCEK2L bzw. pUCEK21L umkloniert (Abb.
4A).
Nach Gewinnung der modifizierten Promotoren, wurden zunächst verschiedene
Expressionskassetten im pUC118 vorbereitet, die aus den entsprechenden ICL1-
Promotorvarianten, dem Reportergen lacZ und dem ICL-Terminator (275 bp) bestanden.
Die Expressionskassettten wurden als BamHI-Fragmente in die entsprechenden
Expressionsvektoren pYLI131, bzw. pYLI131A, 131C, und 131D kloniert. Der Klonierungweg
für diese Expressionsvektoren ist am Beispiel pIL25 in der Abb. 4 dargestellt, da der im Verlauf
dieser Klonierung hergestellte Vektor pUCEK4L als Ausgangspunkt für weitere Klonierungen
benutzt wurde. Für die Klonierung stand der Vektor pUCEK2L zur Verfügung, in dem das lacZ
Gen zwischen dem ICL1-Promotor mit Anschluß am ATG₃₁₉ und dem ICL Terminator im
pUC118 als Expressionskassette (EK2L) vorlag.
Die Vektoren pIL22, pIL24 und pIL25 sind auf der Basis des Plasmids pYLI131
(Promotorvariante A) kloniert worden.
Die Klonierung der Expressionsvektoren pIL31, pIL32 und pIL33 erfolgte auf Grundlage des
Plasmids pUCEK4L (lacZ am 3′S angeschlossen) und der Expressionsvektoren pYLI131A, C und
D. Bei diesen Vektoren ist der nichtsequenzierte Teil Y. lipolytica DNA nach dem BamHI-Ort bei
5696 bp im pYLI131 (siehe Abb. 1 und Abb. 2) eliminiert. Die in diesen Vektoren enthaltenen
Expressionskassetten sind in Abb. 5 dargestellt.
Mit den Plasmiden pIL24 bis pIL33 konnte die heterologe Expression der β-Galactosidase (lacZ)
bei Anschluß an verschiedenen Stellen des ICL-Promotors in Transformanden des Y. lipolytica
Stammes B204-12A-213 gezeigt werden (Abb. 6).
Die Expression durch die verwendeten Promotorvarianten A, C und D ist durch die C-Quellen
Glucose und Ethanol unterschiedlich regulierbar und zeigt deutliche Unterschiede in der
Expressionshöhe. Die ursprünglich vorhandene Promotorvariante A (225bp) zeigte dabei eine
durch Wachstum auf Ethanol induzierbare Expression des lacZ-Genes, angeschlossen sowohl am
5′-splicing site als auch am 3′-splicing site, wobei der Anschluß am 3′S eine etwa verdoppelte
Expressionshöhe zeigte (Abb. 6). Ein Anschluß am ATG319 im Intron führte jedoch zu keiner
lacZ-Expression. Die für die Promotorvariante A gefündene relativ geringe Expressionshöhe für
lacZ geht einher mit dem Ausbleiben der Repression durch Glucose. Durch die Klonierung des
vollständigen ICL1-Promotors und den daraus abgeleiteten Promotorvarianten D (2176bp) und C
(880bp) wurden um den Faktor 7,8 bzw. 4,9 höhere Expressionsraten der β-Galactosidase mit
einem Maximalwert nach 10-12 h Wachstum auf Ethanol erreicht. Gleichzeitig ist die
Glucoserepression wieder nachweisbar. Demnach sind die längeren Promotorvarianten C und D
für eine heterologe Expression von Proteinen in Y. lipolytica besser geeignet.
Das Auftreten der Glucoserepression in Abhängigkeit von der Länge des eingesetzten Promotors
(in C oder D, nicht jedoch in A) wurde auch bei der plasmidcodierten Expression des homologen
ICL1 Strukturgenes in der icl1-Defektmutante B512-3 von Y. lipolytica gefunden. Die
Expressionshöhe der ICL ist jedoch bei diesen Promotorvarianten etwa vergleichbar und
durchläuft ein Optimum bei etwa 8-12 h, was auf die komplexes Regulation der ICL-Aktivität
auch aufposttranslationaler Ebene zurückzuführen ist.
Ein Vergleich der Daten zur Expression der β-Galactosidase mit dem stärksten vorhandenen und
bisher am häufigsten zur heterologen Expression in Y. lipolytica verwendeten XPR2-Promotor
(Blanchin-Roland et al. 1994 Mol Cell Biol 14: 327-338) ergab, daß vergleichbare Werte mit dem
ICL1-Promotor erreichbar sind.
Das Plasmid trägt innerhalb von 7,8 kb Y. lipolytica-DNA den 1625 bp großen ORF für das
ICL1-Struturgen (ICL1), ein 584 bp Fragment des ICL-Promotors (ICLp), inklusive 358 bp
Intronbereich (vgl. Abb. 2), und den ICL-Terminator (ICLT 275bp). Die restlichen 5,3 kb
(zerstörter BamHI Ort bei 374 bp bis Bamin Ort bei 5696 bp) dieses DNA Fragmentes
(YLDNA) sind nicht sequenziert. Das Plasmid basiert auf dem in Y. lipolytica durch die CENARS18
Region autonom replizierenden und für das LEU2-Gen kodierenden Vektor pINA237. Die
Y Lipolytica DNA mit dem ICL1-Gen wurde als Sau3A Fragment in den BamHI-Ort (bei 374 bp)
des pINA237 ligiert.
Dargestellt ist der 2,5 kb große sequenzierte Ausschnitt aus dem Vektor pYLI131 am Anfang des
7,8 kb Sau3A Fragmentes, das in den BamHI-Ort des Vektor pINA237 kloniert ist (vgl. Abb. 1).
Konservierte Intron Sequenzen: 5′S = 5′-splicing site (GTGAGT2-7), 3′S = 3′-splicing site (CAG357-
359); Die zwischen den unterstrichenen Splicing-Orten liegende nur kursiv geschriebene Sequenz
TACTAAC349-356 wird als branchlng point Sequenz bezeichnet.
Das nach Splicen neu entstehende A₁T₃₃₆₀G₃₆₁ als AUG codierend für den angenommenen
Translationsstart des ICL-Proteins ist hervorgehoben.
Der Promotor besitzt eine Größe von 2176 bp vom A₁ aus gerechnet und liegt in einem 2882 bp
Fragment im Plasmid pUCIPD kloniert vor. Die Sequenz des Promotors ist ab dem Sau3A-Ort
bei -225 bp (Promotorvariante A) stromabwärts bis zum NcoI-Ort bei 702 bp vollkommen
identisch mit der Sequenz des ICL1-Genes im Vektor pYLI131 bzw. mit der von Barth und
Scheuber (1993 Mol Gen Genet 241: 422-430) publizierten Sequenz des ICL1-Strukturgenes.
Die klein geschriebene Sequenz bis -2201 bp stammt aus dem Klonierungsvektor pUCBM21 und
enthält die Orte NotI (-2197 bp), Kpn1 und ApaI. Die für nachfolgende Klonierungen der
Promotorvarianten C und D (siehe Abb. 4 und 5) verwendeten Restriktionsorte SalI (-880 bp)
und NotI (-2197 bp) sind wie die Orte Sau3A (-225 bp) und BamHI (-32 bp) fett dargestellt. Das
postulierte Intron ist eingerahmt, die Splicingsignale sind fett und kursiv dargestellt. Nach
erfolgtem Splicen wurde als neuer Translationsstart das A₁T₃₆₀G361 (fett und größer dargestellt)
entstehen (vgl. Abb. 2).
A: Klonierung der Expressionskassette im pUCEK4L ausgehend von Vektor pUCEK2L.
Insertion des Oligonukleotids siehe Oligonukleotide 1 und 2 unter 1. TF - Transformation. PCR
mit den Primern Sa2 und 3SS, vgl. 1.
B: Gewinnung des Expressionsvektors pIL25 durch Umklonierung der EK4L in den Hefevektor
pYLI131.
Die Expressionskassetten EK2L, EK3L, EK4L wurden in das Plasmid pYLI131 (resultierend in
den entsprechenden Vektoren pIL22, pIL24, pIL25), bzw. die Expressionskassette EK4L wurde
in die Vektoren pIYL131A, 131C und 131D (resultierend in pIL31-pIL33) umk1oniert, wie in
Abb. 4 prinzipiell dargestellt. PA = Promotorvarante A bis -225 bp, PC = Promotorvariante C bis
-880 bp, PD = Promotorvariante D bis -2176 bp (2176 bp), I = Intron, lacZ= lacZ-Strukturgen, T
= Terminator, N = nichtsequenzierter Bereich Y. lipolytica DNA, SA = Sau3A′ B = BamHI, S =
SalI (vgl. Abb. 2).
Die β-Galactosidase Aktivität wurde im zellfreien Extrakt mit o-Nitrophenyl-β-D-galactosid
(ONPG) als Substrat bestimmt (1.0 entspricht 130 nmol/min × mg Protein) nach KultMerung der
Transformanden des Stammes B204-12A-213 (M4TB leu2 ura3) im Miniinalmedium YNB
(supplementiert mit Uracil) mit den C-Quellen 1% Ethanol (induzierend) bzw. 1% Ethanol in
Anwesenheit von 2% Glucose zur Bestimmung der Katabolitrepression durch Glucose. Die Werte
wurde nach 8-12 Stunden Kultivierung im Maximum der Expression bestimmt.
Claims (10)
1. Expressionskassetten zur heterologen Expression von Proteinen in der Hefe Yarrowia
(Y.) lipolytica, dadurch gekennzeichnet, daß sie aus dem vollständigen Promotor
des ICL1-Genes von Y. lipolytica, dem zu exprimierenden heterologen Gen und dem
Terminator des ICL1 Genes bestehen.
2. Expressionskassette nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß sie in das Grundgerüst eines in Y. lipolytica autonom
replizierenden Vektors, vorzugsweise pINA237, eingebaut wird.
3. Expressionskassette nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß sie durch integrative Transformation in das Genom von
Y. lipolytica eingebaut wird.
4. Expressionskassette nach Anspruch 1 und 3,
dadurch gekennzeichnet, daß sie vorzugsweise in den LEU2 Ort des Genoms von
Y. lipolytica eingebaut wird.
5. Expressionskassette nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß sie die vollständige Promotorsequenz des ICL1 Genes aus
Y lipolytica enthält, wie sie in der Abb. 3 in ihrer Nucleotidsequenz aufgeführt ist.
6. Verfahren zum Aufbau der Expressionskassette nach Anspruch 1,
dadurch gekennzeichnet, daß der Promotor des ICL1 Genes aus Y. lipolytica durch
Klonierung in einem Vektor für E. coli isoliert wird, dieser Promotor nach Modifikation
seines 3′-Endes mittels PCR (vor oder hinter dem Intron im ICL1 Gen) mit dem zu
exprimierenden heterologen Gen und dem ICL1-Teminator fusioniert wird, bzw. durch
rekombinante PCR das zu exprimierende heterologe Gen direkt hinter dem T₃₆₀G₃₆₁ des
ICL1-Genes fusioniert wird.
7. Verfahren zum Aufbau der Expressionskassette nach Anspruch 6,
dadurch gekennzeichnet, daß der vollständige ICL1-Promotor aus einer angereicherten
Genbank im Vektor pUCBM21 kloniert wird, die in Form von 2,7-3,3 kb Fragmenten
nach einem NcoI/XhoI-Verdau von genomischer DNA aus Y. lipolytica im entsprechend
vorbereiteten Vektor pUCBM21 (NcoI/SalI) erhalten wurde.
8. Verfahren zum Aufbau der Expressionskassette nach Anspruch 6,
dadurch gekennzeichnet, daß die Expressionskassette in einen Vektor, welcher für die
Transformation von Y. lipolytica geeignet ist, umkloniert wird.
9. Verfahren zum Aufbau der Expressionskassette nach Anspruch 6,
dadurch gekennzeichnet, daß die Expressionskassette in einen der Vektoren pINA237,
pYLI131, pYLI131A, pYLI131C, oder pYLI131D, welche für die Transformation von
Y. lipolytica geeignet sind, umkloniert wird.
10. Verfahren zur Verwendung von mit einer Expressionskassette gemäß Anspruch 1-5
transformierten Hefezellen, dadurch gekennzeichnet, daß die entsprechenden
Transformanden der Hefe Y. lipolytica in Mineralsalzmedien mit induzierend
wirkenden Kohlenstoffquellen (Ethanol, Acetat, Fettsäuren oder n-Alkane)
kultiviert und dadurch die heterolog zu exprimierenden Proteine durch die Hefe
synthetisiert werden.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE1995125282 DE19525282A1 (de) | 1995-06-29 | 1995-06-29 | Expressionskassetten zur heterologen Expression von Proteinen in der Hefe Yarrowia lipolytica unter Kontrolle des regulierbaren Promotors der Isocitratlyase |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DE1995125282 DE19525282A1 (de) | 1995-06-29 | 1995-06-29 | Expressionskassetten zur heterologen Expression von Proteinen in der Hefe Yarrowia lipolytica unter Kontrolle des regulierbaren Promotors der Isocitratlyase |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| DE19525282A1 true DE19525282A1 (de) | 1997-01-02 |
Family
ID=7766569
Family Applications (1)
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|---|---|---|---|
| DE1995125282 Withdrawn DE19525282A1 (de) | 1995-06-29 | 1995-06-29 | Expressionskassetten zur heterologen Expression von Proteinen in der Hefe Yarrowia lipolytica unter Kontrolle des regulierbaren Promotors der Isocitratlyase |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| DE (1) | DE19525282A1 (de) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2000003008A3 (de) * | 1998-07-10 | 2000-04-27 | Univ Dresden Tech | Rekombinante haploide oder diploide yarrowia lipolytica zellen zur funktionellen heterologen expression von cytochrom p450 systemen |
| WO2002044388A1 (en) * | 2000-11-30 | 2002-06-06 | Novo Nordisk A/S | Production of heterologous polypeptides in yeast |
| US6861237B2 (en) | 2000-11-30 | 2005-03-01 | Novo Nordisk A/S | Production of heterologous polypeptides in yeast |
| DE10333144B4 (de) * | 2002-07-16 | 2006-06-29 | Technische Universität Dresden | Verfahren zur biotechnologischen Herstellung von Citronensäure mit einer genetisch veränderten Hefe Yarrowia lipolytica |
-
1995
- 1995-06-29 DE DE1995125282 patent/DE19525282A1/de not_active Withdrawn
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2000003008A3 (de) * | 1998-07-10 | 2000-04-27 | Univ Dresden Tech | Rekombinante haploide oder diploide yarrowia lipolytica zellen zur funktionellen heterologen expression von cytochrom p450 systemen |
| WO2002044388A1 (en) * | 2000-11-30 | 2002-06-06 | Novo Nordisk A/S | Production of heterologous polypeptides in yeast |
| US6861237B2 (en) | 2000-11-30 | 2005-03-01 | Novo Nordisk A/S | Production of heterologous polypeptides in yeast |
| DE10333144B4 (de) * | 2002-07-16 | 2006-06-29 | Technische Universität Dresden | Verfahren zur biotechnologischen Herstellung von Citronensäure mit einer genetisch veränderten Hefe Yarrowia lipolytica |
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