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CN102597219B - 人胚胎干细胞的分化 - Google Patents

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Abstract

本发明提供促进多能干细胞分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞的方法，所述表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3。

Description

人胚胎干细胞的分化
相关专利申请的交叉引用
本发明要求于2009年7月20日提交的第61/226,929号专利申请的优先权。
技术领域
本发明提供方法来促进多能干细胞分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞，这些细胞共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3。
背景技术
用于I型糖尿病的细胞替代疗法的进展以及可移植胰岛的缺乏已使得注意力集中在开发适于移植物移入的胰岛素生成细胞或β细胞的来源上。一种方法是从多能干细胞例如胚胎干细胞产生功能性β细胞。
在脊椎动物的胚胎发育中，多能干细胞可在称为原肠胚形成的过程中产生包括三个胚层(外胚层、中胚层和内胚层)的细胞群体。诸如甲状腺、胸腺、胰腺、肠和肝脏之类的组织将从内胚层，经由中间阶段发育而来。该过程中的中间阶段是形成定形内胚层。定形内胚层细胞可表达多种标志物，如HNF3β、GATA4、MIXL1、CXCR4和SOX17。
定形内胚层分化成胰腺内胚层导致形成胰腺。胰腺内胚层细胞表达胰-十二指肠同源盒基因PDX1。在不存在PDX1时，胰腺形成腹胰芽和背胰芽后不再发育。因而，PDX1表达标志着胰腺器官发生中的一个关键步骤。除了其他细胞类型，成熟的胰腺还包括外分泌组织和内分泌组织。外分泌和内分泌组织来自胰腺内胚层的分化。
据报道，从小鼠的胚胎细胞衍生出了带有胰岛细胞特征的细胞。例如，Lumelsky等人(Science 292：1389，2001)报道了小鼠胚胎干细胞向类似于胰岛的胰岛素分泌结构的分化。Soria等人(Diabetes 49：157，2000)报道，小鼠胚胎干细胞衍生的胰岛素分泌细胞使链脲佐菌素诱导的糖尿病小鼠血糖恢复正常。
在一个例子中，Hori等人(PNAS 99：16105，2002)公开了用磷酸肌醇3-激酶的抑制剂(LY294002)处理小鼠胚胎干细胞得到了类似β细胞的细胞。
又如，Blyszczuk等人(PNAS 100：998，2003)报道了从组成型表达Pax4的小鼠胚胎干细胞产生产胰岛素的细胞。
Micallef等人报道，视黄酸可以调控胚胎干细胞定向形成PDX1阳性胰腺内胚层。在对应于胚胎的原肠胚形成末期的期间，加入胚胎干细胞分化第4天的培养物中时视黄酸在诱导Pdx1方面最有效(Diabetes 54：301，2005)。
Miyazaki等人报道过表达Pdx1的小鼠胚胎干细胞系。他们的结果显示，外源Pdx1表达在所得的分化细胞中明显增强了胰岛素、生长抑素、葡糖激酶、神经元素3、p48、Pax6和HNF6基因的表达(Diabetes 53：1030，2004)。
Skoudy等人报道，激活素A(TGF-β超家族的成员)能上调小鼠胚胎干细胞中的胰腺外分泌基因(p48和淀粉酶)和内分泌基因(Pdx1、胰岛素和胰高血糖素)的表达。使用1nM激活素A时观察到了最大的效果。他们还观察到，胰岛素和Pdx1 mRNA的表达水平不受视黄酸的影响；然而，3nM FGF7处理导致了Pdx1的转录水平升高(Biochem.J.379：749，2004)。
Shiraki等人研究了能特异性增强胚胎干细胞分化成Pdx1阳性细胞的生长因子的作用。他们观察到，TGF-β2可再现地产生更高比例的Pdx1阳性细胞(Genes Cells.2005年6月；10(6)：503-16)。
Gordon等人阐明了在不存在血清的情况下和在存在激活素连同Wnt信号转导抑制剂的情况下从小鼠胚胎干细胞诱导brachyury[阳性]/HNF3β[阳性]内胚层细胞(US 2006/0003446A1)。
Gordon等人(PNAS，第103卷，第16806页，2006年)声称：“Wnt和TGF-β/nodal/激活素信号转导同时为前原条的产生所必需”。
然而，胚胎干细胞发育的小鼠模型可能不会完全模拟高等哺乳动物(例如人)中的发育程序。
Thomson等人从人胚泡分离出了胚胎干细胞(Science 282：114，1998)。同时，Gearhart及其同事从胎儿生殖腺组织衍生出了人胚胎生殖(hEG)细胞系(Shamblott等人，Proc.Natl.Acad.Sci.USA 95：13726，1998)。与可简单通过与白血病抑制因子(LIF)一起培养来防止分化的小鼠胚胎干细胞不一样，人胚胎干细胞必须维持在非常特殊的条件下(美国专利No.6,200,806；WO 99/20741；WO 01/51616)。
D’Amour等人描述了在高浓度激活素和低血清的存在下产生人胚胎干细胞衍生的定形内胚层的富集培养物(Nature Biotechnology 2005)。将这些细胞移植到小鼠的肾囊下，导致分化成具有某些内胚层器官的特性的更成熟细胞。在加入FGF-10之后，人胚胎干细胞衍生的定形内胚层细胞可进一步分化成Pdx1阳性细胞(US 2005/0266554A1)。
D’Amour等人(Nature Biotechnology-24，1392-1401(2006))声称：“我们已开发出一种将人胚胎干(hES)细胞转化成能够合成胰腺激素如胰岛素、胰高血糖素、生长抑素、胰多肽和生长素释放肽的内分泌细胞的分化方法。该方法通过引导细胞经过通向能表达内分泌激素的细胞的类似定形内胚层、肠管内胚层、胰腺内胚层和内分泌前体的各阶段，来模拟体内胰腺器官发生”。
又如，Fisk等人报道了用于从人胚胎干细胞产生胰岛细胞的系统(US2006/0040387A1)。在这种情况下，分化途径分成三个阶段。首先用丁酸钠和激活素A的组合使人胚胎干细胞分化成内胚层。然后将细 胞与TGF-β拮抗剂(如成头蛋白(Noggin))结合EGF或β细胞素一起进行培养，以产生Pdx1阳性细胞。通过烟酰胺诱导终末分化。
在一个例子中，Benvenistry等人声称：“我们得出结论认为，Pdx1的过表达提高了胰腺富集基因的表达，胰岛素表达的诱导可能需要另外的仅存在于体内的信号”(Benvenistry等人，Stem Cells 2006；24：1923-1930)。
又如，Grapin-Botton等人声称：“Ngn3的早期活化几乎完全诱导胰高血糖素阳性细胞，同时耗竭了胰腺祖细胞库。从E11.5开始，PDX1祖细胞具备了分化成胰岛素[阳性]和PP[阳性]细胞的能力”(Johansson KA等人，Developmental Cell 12，457-465，2007年3月)。
因此，仍明显需要开发用于建立能扩增以满足目前临床需要，同时又保持分化成胰腺内分泌细胞、胰腺激素表达细胞或胰腺激素分泌细胞的潜力的多能干细胞系的条件。我们已采取备选方法，通过产生表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群来提高人胚胎干细胞向胰腺内分泌细胞分化的效率，其中所述细胞群共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3。
发明内容
在一个实施例中，本发明提供一种方法将多能干细胞群分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群，该细胞群共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3，所述方法包括以下步骤：
a.培养多能干细胞，
b.使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞，以及
c.通过用补充有FGF7的第一培养基处理表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞，然后将所述细胞在补充有FGF7、能够抑制BMP的因子、激活素A、视黄酸和刺猬蛋白信号传导通路抑制剂的第二培养基中培养，使表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达 胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，所述表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3。
附图说明
图1示出了在根据实例1所述方法处理的细胞中，在第3阶段第4天时，激活素A对NKX6.1、PDX1、PTF1α和ARX的表达的影响。收集重复样品用于实时PCR分析。该图表示各基因相对于对照组(浅灰色柱条)的诱导倍数。深灰色柱条表示用FGF7、环巴胺-KAAD、视黄酸、20ng/ml激活素A和成头蛋白处理过的细胞。黑色条表示用FGF7、环巴胺-KAAD、视黄酸、50ng/ml激活素A和成头蛋白处理过的细胞。
图2示出了免疫荧光图象，显示了NKX6.1(分图a、c和e)和NGN3(分图b、d和f)在下列细胞中的表达：用FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺处理过的细胞(分图a和b)或用FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+20ng/ml激活素A处理过的细胞(分图c和d)，以及用FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+Alk5抑制剂II处理的细胞(分图e和f)。
图3示出了免疫荧光图象，显示了PDX1(分图a和c)、CDX2(分图b和d)在下列细胞中的表达：用含有1％B27+FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+20ng/ml激活素A的DMEM-高葡萄糖处理过的细胞(分图a和b)，以及用含有1％B27+FGF7+成头蛋白+视黄酸+KAAD-环巴胺+20ng/ml激活素A的DMEM/F12-高葡萄糖处理过的细胞(分图c和d)。
具体实施方式
为了以不受限制的方式清晰说明本公开，将本发明的具体实施方式分成下列描述或阐明本发明某些特征、实施例或应用的小节。
定义
干细胞是由它们在单细胞水平上既自我更新又分化产生子代细胞的能力来定义的未分化细胞，包括自我更新祖细胞、非更新祖细胞和末端分化细胞。干细胞还由它们的以下能力来表征：从多个胚层(内胚层、中胚层和外胚层)体外分化成多种细胞谱系的功能细胞的能力，以及在移植后产生多个胚层的组织的能力和在注射到胚泡后基本上促成大多数的组织(如果不是所有的组织的话)的能力。
干细胞根据其发育潜能分为：(1)全能，指能够产生所有的胚胎和胚胎外细胞类型；(2)多能，指能够产生所有的胚胎细胞类型；(3)专能，指能够产生细胞谱系的亚群，但在特定组织、器官或生理系统内能产生所有的细胞(例如造血干细胞(HSC)可产生的后代细胞包括：HSC(自我更新)、局限于血细胞的寡能祖细胞以及作为血液正常组分的所有细胞类型和成分(如血小板))；(4)寡能，指能够产生比多能干细胞更有限的细胞谱系亚群；以及(5)单能，指能够产生单一细胞谱系(如生精干细胞)。
分化是未特化的(“未定向的”)或特化不足的细胞获得特化细胞(如神经细胞或肌肉细胞)的特征的过程。分化的细胞或诱导分化的细胞是已经在细胞谱系中占据更特化的(“定向的”)位置的细胞。术语“定向的”当应用到分化的过程时，指在分化途径中已经进行到这么一种程度的细胞：在正常环境下，它会继续分化成特定的细胞类型或细胞类型子集，且在正常环境下不能分化成另一细胞类型或回复到分化不足的细胞类型。去分化指细胞回复到细胞的谱系当中特化(或定向)不足的地位的过程。本文所用的“细胞的谱系”限定细胞的遗传关系，即它来自哪些细胞和它能产生什么细胞。细胞谱系将细胞定位于发育和分化的遗传计划内。谱系特征性标志指与所关注谱系的细胞的表型明确相关的特征，可用来评估未定向细胞向所关注谱系的分化。
如本文所用，“表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞”或“第1阶段细胞”或“第1阶段”是指表达下列标志物中的至少一种的细胞：SOX-17、GATA4、HNF3β、GSC、CER1、Nodal、FGF8、Brachyury、 Mix样同源盒蛋白、FGF4CD48、脱中胚蛋白(EOMES)、DKK4、FGF17、GATA6、CXCR4、C-Kit、CD99或OTX2。表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞包括原条前体细胞、原条细胞、中内胚层细胞和定形内胚层细胞。
如本文所用，“表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞”是指表达下列标志物中的至少一种的细胞：PDX1、HNF1β、PTF1α、HNF6、NKX6.1或HB9。表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞包括胰腺内胚层细胞、原肠管细胞和后前肠细胞。
如本文所用，“定形内胚层”指具有在原肠胚形成过程中从上胚层产生的细胞的特性并形成胃肠道及其衍生物的细胞。定形内胚层细胞表达下列标志物：HNF3β、GATA4、SOX17、Cerberus、OTX2、goosecoid、C-Kit、CD99和MIXL1。
如本文所用，“标志物”是在所关注细胞中差异表达的核酸或多肽分子。关于这一点，差异表达意指阳性标志物的水平增加，而阴性标志物的水平降低。标志物核酸或多肽的可检测水平，在所关注细胞中充分地高于或低于在其他细胞中，使得可使用多种本领域公知的方法中的任何一种将所关注细胞与其他细胞鉴别和区分开来。
如本文所用，“胰腺内分泌细胞”或“胰腺激素表达细胞”指能够表达下列激素中的至少一种的细胞：胰岛素、胰高血糖素、生长抑素和胰多肽。
多能干细胞的分离、扩增和培养
多能干细胞的表征
多能干细胞可以表达一种或多种阶段特异性胚胎抗原(SSEA)3和4，以及可使用称为Tra-1-60和Tra-1-81的抗体检测的标志物(Thomson等人，Science 282：1145 1998)。多能干细胞体外分化导致丧失SSEA-4、Tra 1-60和Tra1-81的表达(如果存在的话)，并增加SSEA-1的表达。未分化的多能干细胞通常具有碱性磷酸酶活性，该酶可通过用4％多聚甲醛固定细胞，然后用Vector Red作为底物显影 来检测，如生产商所描述(Vector Laboratories，Burlingame Calif)。未分化的多能干细胞还通常表达Oct-4和TERT，这可通过RT-PCR检测。
增殖的多能干细胞的另一理想表型是分化成所有三个胚层即内胚层、中胚层和外胚层组织的细胞的潜能。多能干细胞的多能性可例如通过这样来证实：将细胞注射进重症联合免疫缺陷(SCID)小鼠中，用4％多聚甲醛固定所形成的畸胎瘤，然后对它们进行组织学检验以确定是否存在来自三个胚层的细胞类型。作为另外一种选择，可以通过产生胚状体并评估胚状体中三个胚层相关的标志物的存在来确定多能性。
可以使用标准G带技术并与已公布的相应灵长类物种的核型相比较来分析增殖的多能干细胞系的核型。希望获得具有“正常核型”的细胞，其意指细胞为整倍体，其中所有人染色体都存在并且没有明显的改变。
多能干细胞的来源
可使用的多能干细胞的类型包括确立多能细胞系。非限制性例子是确立的人胚胎干细胞系或人胚胎生殖细胞系，例如人胚胎干细胞系H1、H7和H9(WiCell)。另外合适的是取自已在不存在饲养细胞的情况下培养的多能干细胞群体的细胞。同样合适的是突变型人胚胎干细胞系，例如BG01v(BresaGen，Athens，GA)。
多能干细胞的培养
在一个实施例中，通常在饲养细胞层上培养多能干细胞，饲养细胞可以多种方式支持多能干细胞。作为另一种选择，在培养系统中培养多能干细胞，所述培养系统基本上不含饲养细胞，但同样支持多能干细胞的增殖而不会进行实质分化。使用通过此前培养另一细胞类型而调理过的培养基来支持多能干细胞在无饲养细胞的培养物中生长而不分化。作为另一种选择，用化学成分确定的培养基来支持多能干细胞在无饲养细胞的培养物中生长而不分化。
例如，Reubinoff等人(Nature Biotechnology 18：399-404(2000))和Thompson等人(Science，1998年11月6日：第282卷，第5391期，第1145-1147页)公开了用小鼠胚胎成纤维细胞饲养细胞层来培养来自人胚泡的多能干细胞系。
Richards等人(Stem Cells 21：546-556，2003)评价了一组共11种不同的人成体、胎儿和新生儿饲养细胞层在支持人多能干细胞培养方面的能力。Richards等人声称：“在成人皮肤成纤维细胞饲养层上培养的人胚胎干细胞系保持了人胚胎干细胞形态并保持了多能性”。
US20020072117公开了可产生支持灵长类多能干细胞在无饲养细胞的培养物中生长的培养基的细胞系。所采用的细胞系是从胚胎组织获得或从胚胎干细胞分化而来的间质细胞系和成纤维细胞样细胞系。US20020072117还公开了所述细胞系作为原代饲养细胞层的用途。
又如，Wang等人(Stem Cells 23：1221-1227，2005)公开了使人多能干细胞在衍生自人胚胎干细胞的饲养细胞层上长期生长的方法。
又如，Stojkovic等人(Stem Cells 2005 23：306-314，2005)公开了衍生自人胚胎干细胞自发分化的饲养细胞体系。
在另一个例子中，Miyamoto等人(Stem Cells 22：433-440，2004)公开了得自人胎盘的饲养细胞来源。
Amit等人(Biol.Reprod 68：2150-2156，2003)公开了衍生自人包皮的饲养细胞层。
又如，Inzunza等人(Stem Cells 23：544-549，2005)公开了来自人出生后包皮成纤维细胞的饲养细胞层。
US6642048公开了可支持灵长类多能干(pPS)细胞在无饲养细胞的培养物中生长的培养基以及可用于产生这种培养基的细胞系。US6642048声称：“本发明包括从胚胎组织获得或从胚胎干细胞分化而来的间质细胞系和成纤维细胞样细胞系。在本公开中描述并阐明了用于衍生这种细胞系、处理培养基以及用该调理培养基培育干细胞的方法”。
又如，WO2005014799公开了用于哺乳动物细胞维持、增殖和分化的条件培养基。WO2005014799声称：“通过鼠细胞(特别是分化并永生化的转基因肝细胞，称为MMH(Met鼠肝细胞))的细胞分泌活性对根据本发明制备的培养基进行调理”。
又如，Xu等人(Stem Cells 22：972-980，2004)公开了一种从人胚胎干细胞衍生物获得的调理培养基，所述干细胞衍生物已经过遗传修饰而过表达人端粒酶逆转录酶。
又如，US20070010011公开了一种用于维持多能干细胞的化学成分确定的培养基。
一种备选的培养系统采用补充有能促进胚胎干细胞增殖的生长因子的无血清培养基。例如，Cheon等人(BioReprod DOI：10.1095/biolreprod.105.046870，2005年10月19日)公开了一种无饲养细胞的无血清培养系统，其中胚胎干细胞维持在补充有能引发胚胎干细胞自我更新的不同生长因子的未经调理的血清替代(SR)培养基中。
又如，Levenstein等人(Stem Cells 24：568-574，2006)公开了使用补充有bFGF的培养基，在不存在成纤维细胞或调理培养基的情况下长期培养人胚胎干细胞的方法。
又如，US20050148070公开了一种在无血清且无成纤维细胞饲养细胞的成分确定的培养基中培养人胚胎干细胞的方法，该方法包括： 在含有白蛋白、氨基酸、维生素、矿物质、至少一种转铁蛋白或转铁蛋白替代品、至少一种胰岛素或胰岛素替代品的培养基中培养干细胞，该培养基基本上无哺乳动物胎儿血清且含有至少约100ng/ml能激活成纤维细胞生长因子信号转导受体的成纤维细胞生长因子，其中该生长因子的供给来源不是仅为成纤细胞饲养层，该培养基支持干细胞在无饲养细胞或调理培养基的情况下以未分化状态增殖。
又如，US20050233446公开了一种用于培养干细胞，包括未分化的灵长类原始干细胞的限定培养基。在溶液中，此培养基与培养中的干细胞相比基本上是等渗的。在给定的培养物中，特定的培养基包含基础培养基和各为一定量的bFGF、胰岛素和抗坏血酸，所述一定量的bFGF、胰岛素和抗坏血酸为支持原始干细胞进行实质上非分化性生长所必需的。
又如，US6800480声称：“在一个实施例中，提供了用于以基本上未分化状态培养灵长类来源的原始干细胞的细胞培养基，其包括低渗透压、低内毒素基础培养基，此培养基对于支持灵长类来源的原始干细胞的生长是有效的。该基础培养基混合了有效支持灵长类来源的原始干细胞生长的营养血清和选自饲养细胞和衍生自饲养细胞的胞外基质组分的基质。该培养基还包含非必需氨基酸、抗氧化剂和选自核苷和丙酮酸盐的第一生长因子”。
又如，US20050244962描述：“在一个方面，本发明提供了一种培养灵长类胚胎干细胞的方法。在基本上不含哺乳动物胎血清(优选也基本上不含任何动物血清)的培养物中，并在存在由不只是成纤维细胞饲养层的来源提供的成纤维细胞生长因子情况下培养干细胞。在优选的形式中，通过添加足量的成纤维细胞生长因子，使得之前为维持干细胞培养物所需的成纤维细胞饲养层变为非必需的”。
在另外的例子中，WO2005065354公开了一种基本上无饲养细胞和无血清的成分确定的等渗培养基，其包含：a.基础培养基；b.bFGF，其量足以支持实质上上未分化的哺乳动物干细胞生长；c.胰岛素，其 量足以支持实质上未分化的哺乳动物干细胞生长；和d.抗坏血酸，其量足以支持实质上未分化的哺乳动物干细胞生长。
又如，WO2005086845公开了一种维持未分化的干细胞的方法，所述方法包括使干细胞暴露于转化生长因子-β(TGF-β)蛋白家族的成员、成纤维细胞生长因子(FGF)蛋白家族的成员或烟酰胺(NIC)，所述成员或烟酰胺的量足以维持细胞处于未分化状态达足以实现所需结果的一段时间。
可将多能干细胞接种至合适的培养基质上。在一个实施例中，合适的培养基质是胞外基质成分，例如衍自基底膜的成分，或者可形成黏着分子受体-配体偶联物的一部分的成分。在一个实施例中，合适的培养基质是MATRIGEL(Becton Dickenson)。MATRIGEL是得自Engelbreth-Holm Swarm肿瘤细胞的可溶性制剂，其在室温下胶凝而形成重构的基底膜。
其他的细胞外基质组分和组分混合物适合作为替代物。取决于所扩增的细胞类型，这可包括单独的层粘连蛋白、纤连蛋白、蛋白聚糖、巢蛋白、硫酸乙酰肝素等或者它们的各种组合。
可在存在可促进细胞存活、增殖和保持理想特性的培养基存在的情况下，以合适的分布将多能干细胞接种于所述基质上。所有这些特性可得益于对接种分布的认真考虑并可容易地由本领域技术人员确定。
合适的培养基可由下列组分制成，例如达尔伯克氏改良伊格尔培养基(Dulbecco′s modified Eagle′s medium，DMEM)，Gibco货号11965-092；敲除达尔伯克氏改良伊格尔培养基(Knockout Dulbecco′s modified Eagle′s medium，KO DMEM)，Gibco货号10829-018；Ham′s F12/50％ DMEM基础培养基；200mM L-谷氨酰胺，Gibco货号15039-027；非必需氨基酸溶液，Gibco 11140-050；β-巯基乙醇，Sigma货号M7522；人重组碱性成纤维细胞生长因子(bFGF)，Gibco货号13256-029。
由多能干细胞形成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞
在一个实施例中，本发明提供了由多能干细胞产生表达胰腺内胚
层谱系特征性标志物的细胞的方法，该方法包括以下步骤：
a.培养多能干细胞，
b.使所述多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞，以及
c.使所述表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞。
在本发明的一个方面，表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX-2和NGN3。
多能干细胞向表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞的分化
表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞的形成可通过在进行特定方案之前或之后检测该标志物的存在来确定。多能干细胞通常不表达这类标志物。因而，当细胞开始表达它们时即检测到多能细胞的分化。
可通过本领域的任何方法或通过本发明提出的任何方法，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据D’Amour等人，Nature Biotechnology 23，1534-1541(2005)中公开的方法，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据Shinozaki等人，Development 131，1651-1662(2004)中公开的方法，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据McLean等人，Stem Cells 25，29-38(2007)中公开的方法，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据D’Amour等人，Nature Biotechnology 24，1392-1401(2006)中公开的方法，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可通过将多能干细胞在含有激活素A的培养基中在不存在血清的情况下培养，然后将所述细胞与激活素A和血清一起培养，再然后将所述细胞与激活素A和另一浓度的血清一起培养，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在Nature Biotechnology 23，1534-1541(2005)中进行了公开。
例如，可通过将多能干细胞在含有激活素A的培养基中在不存在血清的情况下培养，然后将所述细胞与激活素A和另一浓度的血清一起培养，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在D’Amour等人，Nature Biotechnology，2005中进行了公开。
例如，可通过将多能干细胞在含有激活素A和Wnt配体的培养基中在不存在血清的情况下培养，然后移除Wnt配体并将所述细胞与激活素A和血清一起培养，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在Nature Biotechnology 24，1392-1401(2006)中进行了公开。
例如，可根据转让给LifeScan，Inc.的系列号为11/736,908的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞，使多能干细胞分化为表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据转让给LifeScan，Inc.的系列号为11/779,311的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞，使多能干细胞分化为表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据系列号为60/990,529的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据系列号为61/076,889的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据系列号为No.61/076,900的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据系列号为61/076,908的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
例如，可根据系列号为61/076,915的美国专利申请中公开的方法处理多能干细胞，使多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。
表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞向表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞的分化
在一个实施例中，通过在补充有FGF7的第一培养基中培养表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞，然后将所述细胞在补充有FGF7、能够抑制BMP的因子、激活素A、视黄酸和刺猬蛋白信号传导通路抑制剂的第二培养基中培养，使表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，所述表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3。
在一个实施例中，FGF7可以按约50pg/ml至约50μg/ml的浓度使用。在一个实施例中，FGF7按50ng/ml的浓度使用。
在一个实施例中，能够抑制BMP的因子为成头蛋白。成头蛋白可以按约500ng/ml至约500μg/ml的浓度使用。在一个实施例中，成头蛋白以100ng/ml的浓度使用。
激活素A可以按约2ng/ml至100ng/ml的浓度使用。在一个实施例中，激活素A按20ng/ml的浓度使用。在一个备选实施例中，激活素A按50ng/ml的浓度使用。
视黄酸可以按约1nM至约1mM的浓度使用。在一个实施例中，视黄酸按1μM的浓度使用。
在一个实施例中，刺猬蛋白信号传导通路抑制剂为环巴胺-KAAD。环巴胺-KAAD可以按约0.025mM至约2.5μM的浓度使用。在一个实施例中，环巴胺-KAAD按0.25μM的浓度使用。
可通过将处理过的细胞群体暴露于可特异性识别由表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞表达的蛋白质标志物的试剂(如抗体)来确定分化效率。
用于评估蛋白质标志物和核酸标志物在培养的或分离的细胞中的表达的方法是本领域的标准方法。这些方法包括定量逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)、RNA印迹、原位杂交(参见例如“Current Protocols in Molecular Biology”(Ausubel等人编辑，2001年增刊))，以及免疫测定如切片材料的免疫组织化学分析、蛋白质印迹，以及对于可在完整细胞中触及的标志物，有流式细胞分析(FACS)(参见例如，Harlow和Lane，Using Antibodies：A Laboratory Manual，New York：Cold Spring Harbor Laboratory Press(1998))。
多能干细胞的特征是本领域技术人员熟知的，并且其他特征有待继续辨别。多能干细胞标志物包括(例如)下列标志物中的一种或多种的表达：ABCG2、cripto、FOXD3、CONNEXIN43、CONNEXIN45、OCT4、SOX2、Nanog、hTERT、UTF1、ZFP42、SSEA-3、SSEA-4、Tra 1-60、Tra 1-81。
在用本发明方法处理多能干细胞后，可通过使处理过的细胞群体暴露于特异性识别由表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞表达的蛋白质标志物(如CXCR4)来纯化分化的细胞。
适用于本发明的多能干细胞包括(例如)人胚胎干细胞系H9(NIH代码：WA09)、人胚胎干细胞系H1(NIH代码：WA01)、人胚胎干细胞系H7(NIH代码：WA07)以及人胚胎干细胞系SA002(Cellartis，Sweden)。表达下列多能细胞特征性标志物中的至少一种的细胞也适用于本发明：ABCG2、cripto、CD9、FOXD3、CONNEXIN43、CONNEXIN45、OCT4、SOX2、Nanog、hTERT、UTF1、ZFP42、SSEA-3、SSEA-4、Tra 1-60和Tra 1-81。
定形内胚层谱系特征性标志物选自SOX17、GATA4、HNF3β、GSC、CER1、NODAL、FGF8、Brachyury、Mix样同源盒蛋白、FGF4 CD48、脱中胚蛋白(EOMES)、DKK4、FGF17、GATA6、CXCR4、C-Kit、CD99和OTX2。适用于本发明的是表达至少一种定形内胚层谱系特征性标志物的细胞。在本发明的一个方面，表达定形内胚层系特征性标志物的细胞为原条前体细胞。在另一方面，表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞是中内胚层细胞。在另一方面，表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞是定形内胚层细胞。
胰腺内胚层谱系特征性标志物选自PDX1、HNF1β、PTF1α、HNF6、HB9和PROX1。适用于本发明的是表达至少一种胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞。在本发明的一个方面，表达胰内胚层系特征性标志物的细胞为胰内胚层细胞。
表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞的形成
在一个实施例中，还可以使由本发明方法产生的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞(共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3)进一步分化为表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
可通过本领域的任何方法或通过本发明提出的任何方法，使表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
例如，可通过将根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞在含有毒蜥外泌肽-4的培养基中进行培养，然后除 去含有毒蜥外泌肽-4的培养基，并随后将所述细胞在含有毒蜥外泌肽1、IGF-1和HGF的培养基中进行培养，来使表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在D’Amour等人，Nature Biotechnology，2006中进行了公开。
例如，通过在含有DAPT(Sigma-Aldrich，MO)和毒蜥外泌肽4的培养基中培养表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，使根据本发明方法获得的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在D’Amour等人，Nature Biotechnology，2006中进行了公开。
例如，通在含有毒蜥外泌肽4的培养基中培养表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，使根据本发明方法获得的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。此方法的一个例子在D’Amour等人，Nature Biotechnology，2006中有所公开。
例如，根据转让给LifeScan，Inc.的系列号为11/736,908的美国专利中公开的方法，通过用抑制Notch信号传导通路的因子处理表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，使根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
例如，根据转让给LifeScan，Inc.的系列号为11/779,311的美国专利中公开的方法，通过用抑制Notch信号传导通路的因子处理表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，使根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
例如，根据转让给LifeScan，Inc.的系列号为60/953,178的美国专利中公开的方法，通过用抑制Notch信号传导通路的因子处理表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，使根据本发明的方法得到的表 达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
例如，根据转让给LifeScan，Inc.的系列号为60/990,529的美国专利中公开的方法，通过用抑制Notch信号传导通路的因子处理表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，使根据本发明的方法得到的表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞进一步分化成表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。
胰腺内分泌谱系特征性标志物选自NGN3、NEUROD、ISL1、PDX1、NKX6.1、PAX4、NGN3和PTF-1α。在一个实施例中，胰腺内分泌细胞能够表达以下激素中的至少一种：胰岛素、胰高血糖素、生长抑素和胰多肽。适用于本发明的是表达至少一种胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞。在本发明的一个方面，表达胰内分泌系特征性标志物的细胞为胰内分泌细胞。胰内分泌细胞可为表达胰激素的细胞。作为另外一种选择，胰内分泌细胞可为分泌胰激素的细胞。
在本发明的一个方面，胰腺内分泌细胞是表达β细胞谱系特征性标志物的细胞。表达β细胞谱系特征性标志物的细胞表达PDX1以及下列转录因子中的至少一种：NGN3、NKX2.2、NKX6.1、NEUROD、SL1、HNF3β、MAFA、PAX4和PAX6。在本发明的一个方面，表达β细胞谱系特征性标志物的细胞是β细胞。
疗法
在一个方面，本发明提供了一种用于治疗患有1型糖尿病，或有发展1型糖尿病风险的患者的方法。在一个实施例中，本方法涉及对多能干细胞进行培养，使多能干细胞体外分化成β-细胞谱系，以及将β-细胞谱系的细胞移植到患者体内。在一个替代实施例中，本方法涉及对多能干细胞进行培养，使多能干细胞体外分化成表达胰腺内胚层细胞谱系特征性标志物的细胞(共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3)，以及将所述共表达PDX1、NKX6.1但不表达CDX2和NGN3的胰腺内胚层谱系的细胞移植到患者体内。
在另一个方面，本发明提供了一种用于治疗患有2型糖尿病，或有发展2型糖尿病风险的患者的方法。在一个实施例中，本方法涉及对多能干细胞进行培养，使多能干细胞体外分化成β-细胞谱系，以及将β-细胞谱系的细胞移植到患者体内。在一个替代实施例中，本方法涉及对多能干细胞进行培养，使多能干细胞体外分化成表达胰腺内胚层细胞谱系特征性标志物的细胞(共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3)，以及将所述共表达PDX1、NKX6.1但不表达CDX2和NGN3的胰腺内胚层谱系的细胞移植到患者体内。
如果合适，可用有利于该植入细胞存活和功能的药剂或生物活性剂对患者进行进一步处理。这些试剂可包括(例如)胰岛素、TGF-β家族的成员(包括TGF-β1、2和3)、骨形态发生蛋白(BMP-2、BMP-3、BMP-4、BMP-5、BMP-6、BMP-7、BMP-11、BMP-12和BMP-13)、成纤维细胞生长因子-1和-2、血小板衍生生长因子-AA和-BB、血小板富集血浆、胰岛素生长因子(IGF-I、II)、生长分化因子(GDF-5、GDF-6、GDF-7、GDF-8、GDF-10、GDF-15)、血管内皮细胞衍生生长因子(VEGF)、多效蛋白(pleiotrophin)、内皮素等等。其他药物化合物可包括(例如)烟酰胺、高血糖素样肽-I(GLP-1)和高血糖素样肽-II、GLP-1和2模拟体、毒蜥外泌肽-4、视黄酸、甲状旁腺激素、MAPK抑制剂例如美国已公布的专利申请2004/0209901和美国已公布的专利申请2004/0132729中所公开的化合物。
可使多能干细胞在移植进接受者前分化成胰岛素生成细胞。在一个特定的实施例中，在移植进接受者之前，使多能干细胞完全分化成β-细胞。作为另一种选择，可将多能干细胞以未分化状态或部分分化的状态移植进接受者中。可在该接受者中发生进一步分化。
可将定形内胚层细胞或，作为另一选择，胰腺内胚层细胞，或作为另一种选择，β细胞作为分散细胞进行移植，或可使这些细胞形成簇，可将这些细胞簇输注进肝门静脉内。作为另一种选择，可将细胞设置在生物相容性的可降解聚合物型支持物中、多孔的非可降解性装 置中或可进行封装以保护其免受宿主免疫应答的破坏。可将细胞移植进接受者中的合适位置内。植入位点包括(例如)肝脏、天然的胰腺、肾包膜下空间、网膜、腹膜、浆膜下空间、肠、胃或皮下袋。
为了增强植入细胞的进一步分化、存活率或活性，可在施用细胞之前、与之同时或之后施用额外的因子，例如生长因子、抗氧化剂或抗炎剂。在某些实施例中，利用生长因子使所施用的细胞在体内分化。这些因子可由内源性细胞分泌并原位暴露于所施用的细胞。可通过本领域已知的内源生长因子或外源给予的生长因子的任意组合来诱导植入细胞进行分化。
移植中所用的量取决于多种因素，包括患者的状况和对该疗法的响应，并且可由本领域技术人员确定。
在一个方面，本发明提供了一种用于治疗患有糖尿病，或有发展糖尿病风险的患者的方法。该方法涉及培养多能干细胞、使培养的细胞体外分化成β-细胞谱系，以及将该细胞掺入三维支持物中。在移植进患者前，可使细胞在该支持物上体外维持。作为另一种选择，可将容纳有该细胞的支持物直接移植进患者中而无需进行额外的体外培养。可任选将至少一种有利于植入细胞的存活和功能的药剂掺入该支持物中。
适用于本发明目的的支持材料包括可用于组织修复的组织模板、导管、屏障物和贮器。具体地讲，已经在体外和体内用于生物组织重建或再生，以及用于递送趋化剂来诱导组织生长的泡沫、海绵、凝胶、水凝胶、纺织物和非织造结构形式的合成材料和天然材料适用于实践本发明的方法。参见，例如在美国专利5,770,417、美国专利6,022,743、美国专利5,567,612、美国专利5,759,830、美国专利6,626,950、美国专利6,534,084、美国专利6,306,424、美国专利6,365,149、美国专利6,599,323、美国专利6,656,488、美国已公布的专利申请2004/0062753A1、美国专利4,557,264和美国专利6,333,029中所公开的材料。
为了形成掺有药剂的支承体，可在形成支承体前将药剂与聚合物溶液混合。作为另一种选择，可将药剂涂覆于制好的支持物上，优选在存在药物载体的情况下进行。药物可以液体、细分固体或任何其他合适的物理形式存在。作为另一种选择，可将赋形剂添加至支持物中以改变药剂的释放速率。在一个备选实施例中，将至少一种为抗炎化合物的药物化合物(例如在美国专利6,509,369中所公开的化合物)掺入支持物中。
可将至少一种为抗凋亡化合物的药物化合物(例如在美国专利6,793,945中所公开的化合物)掺入支持物中。
可将至少一种为纤维变性抑制剂的药物化合物(例如在美国专利6,331,298中所公开的化合物)掺入支持物中。
支持物还可掺有至少一种能够增强血管生成的药物化合物，例如美国已公布的专利申请2004/0220393和美国已公布的专利申请2004/0209901中所公开的化合物。
支持物还可掺有至少一种为免疫抑制化合物的药物化合物，例如美国已公布的专利申请2004/0171623中所公开的化合物。
支持物还可掺有至少一种为生长因子的药物化合物，例如TGF-β家族的成员(包括TGF-β1、TGF-β2和TGF-β3)、骨形态发生蛋白(BMP-2、BMP-3、BMP-4、BMP-5、BMP-6、BMP-7、BMP-11、BMP-12和BMP-13)、成纤维细胞生长因子-1和-2、血小板衍生生长因子-AA和-BB、血小板富集血浆、胰岛素生长因子(IGF-I、IGF-II)、生长分化因子(GDF-5、GDF-6、GDF-8、GDF-10、GDF-15)、血管内皮细胞衍生生长因子(VEGF)、多效蛋白、内皮素等等。其他药物化合物可包括(例如)烟酰胺、缺氧诱导因子1-α、高血糖素样肽-I(GLP-1)、GLP-1和GLP-2模拟体、毒蜥外泌肽-4、nodal、成头蛋白、NGF、视黄酸、甲状旁腺激素、腱生蛋白-C、弹性蛋白原、凝血酶衍生的肽、凯萨林菌素(cathelicidin)、防御素(defensin)、层粘连蛋白、含有粘附性细胞外基质蛋白例如纤粘蛋白和玻璃粘连蛋白的细胞结合结构域和 肝素结合结构域的生物肽、MAPK抑制剂(例如在美国已公布的专利申请2004/0209901和美国已公布的专利申请2004/0132729中所公开的化合物)。
可通过将细胞简单地沉积在该支架上来实现将本发明细胞掺入支架中。细胞可通过简单扩散进入支架中(J.Pediatr.Surg.23(1 Pt 2)：3-9(1988))。已经发展了若干其他方法来增强细胞接种的效率。例如，已经将转瓶用于将软骨细胞接种于聚乙醇酸支架上(Biotechnol.Prog.14(2)：193-202(1998))。用于细胞接种的另一种方法是利用离心，这种离心产生最小的应力给接种的细胞并增强接种效率。例如，Yang等人开发了一种细胞接种方法(J.Biomed.Mater.Res.55(3)：379-86(2001))，称为离心细胞固定(Centrifugational Cell Immobilization，CCI)。
本发明通过(但不限于)以下实例进一步说明。
实例1
人多能干细胞向表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞(共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3)的分化
本实例说明，激活素A可与成头蛋白和视黄酸联合使用来促进NKX6.1表达的上调。简言之，将人胚胎干细胞系H1的细胞在MATRIGELTM(1∶30稀释)涂布的平皿和补充有2％BSA、100ng/ml激活素A、20ng/ml WNT-3a、8ng/ml bFGF的RPMI培养基上培养一天，然后用补充有2％BSA、100ng/ml激活素A、8ng/ml bFGF的RPMI培养基再处理两天(第1阶段)，接下来
a.用DMEM/F12+2％BSA+50ng/ml FGF7+0.25μM环巴胺-KAAD处理三天(第2阶段)，然后
b.用DMEM-高葡萄糖+1％B27+50ng/ml FGF7+0.25μM环巴胺-KAAD+2μM视黄酸(RA)+100ng/ml成头蛋白+20ng/ml激活素A或50ng/ml激活素A处理四天(第3阶段)。
作为对照，用补充有1％B27、50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)和100ng/ml成头蛋白的高葡萄糖DMEM处理单独的细胞群。
在第3阶段的第4天对培养物进行取样，一式两份，然后用实时PCR对胰腺标志物的表达进行分析。 
如图1所示，在第3阶段的第4天，用激活素A处理使NKX6.1的表达水平升高，比未接受激活素A的细胞所观察到的表达水平更高。由激活素A介导的NKX6.1的表达水平与激活素A的剂量成比例增加。在第3阶段的第4天也观察到了细胞中NGN3表达的下调。
为了确定TGF-β通路是否参与促进表达胰腺内分泌谱系特征性标志物的细胞(共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3)的形成，按下列步骤处理细胞：将人胚胎干细胞系H1的细胞在MATRIGELTM涂布的平皿(1∶30稀释)上培养，然后利用以下方案进行分化：
a.在补充有2％BSA(目录号：152401，MP Biomedical，Ohio)和100ng/ml激活素A(R&D Systems，MN)加20ng/ml WNT-3a(目录号：1324-WN-002，R&D Systems，MN)加8ng/ml bFGF(目录号：100-18B，PeproTech，NJ)的RPMI培养基(目录号：22400，Invitrogen，Ca)中培养一天，然后用补充有2％BSA和100ng/ml激活素A加8ng/mlbFGF的RPMI培养基再处理两天(第1阶段)，接下来
b.用DMEM/F12(目录号：11330，Invitrogen，Ca)+2％BSA+50ng/ml FGF7处理三天(第2阶段)，然后
c.进行处理1：用DMEM(高葡萄糖)+1％B27(Invitrogen，CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)和100ng/ml成头蛋白处理四天，或
d.进行处理2：用DMEM(高葡萄糖)+1％B27(Invitrogen，CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、20ng/ml激活素A处理四天，或
e.进行处理3：用DMEM(高葡萄糖)+1％B27(Invitrogen，CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、1μM ALK5抑制剂II处理四天。
在第3阶段的第4天对培养物进行取样，一式两份，然后用实时PCR对胰腺标志物的表达进行分析。还平行固定培养物，以进行免疫荧光分析。
表1示出了用本实验的最低条件(处理1)进行归一化时NKX6.1、NGN3和PDX1在第3阶段第4天的相对表达水平。
表1
    NGN3   NKX6.1   PDX1
  处理1   1   1   1
  处理2   0.02   5.97   1.13
  处理3   5.64   0.02   0.65
处理1(FGF7、视黄酸和成头蛋白)诱导了NKX6.1和NGN3的表达。参见图2中的分图a和b。然而，添加激活素A(处理2)阻断了NGN3的表达，并显著增加了NKX6.1表达细胞的数量。参见图2中的分图c和d。这些数据表明，在形成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群期间，激活TGFβ受体通路将会得到表达胰腺内胚层谱系特征性标志物但不表达NGN3的细胞群。
通过用TGFβ受体抑制剂Alk5抑制剂II来温育细胞证实了这一假设(参见处理3)。将细胞在添加了1％B27(Invitrogen，CA)、50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、1μM ALK5抑制剂II的DMEM(高葡萄糖)中进行处理导致了NKX6.1表达水平降低。所观察到的表达水平低于在接受处理1的细胞中观察到的表达水平。参见表1和图2的分图e。另一方面，NGN3表达细胞的数量显著增加。参见表1和图2的分图f。观察到对PDX1表达无显著影响。这些结果表明，成头蛋白、视黄酸和激活素A的组合可 协同作用来确定NKN6.1和PDX1表达阳性，而NGN3表达阴性的胰腺前体细胞群。
如图3的分图a和b所示，用DMEM(处理2-DMEM(高葡萄糖)+1％B27(Invitrogen，CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、20ng/ml激活素A)所得到的大部分PDX1表达细胞在第3阶段第4天不表达CDX2。这与通过使用补充有1％B27(Invitrogen，CA)+50ng/ml FGF7、0.25μM环巴胺-KAAD、2μM视黄酸(RA)、100ng/ml成头蛋白、20ng/ml激活素A的DMEM/F12而产生的PDX1表达细胞形成对照，其中大部分的PDX1表达细胞也表达CDX2。参见图3中的分图c和d。
在整篇文档中引用的出版物据此全文以引用方式并入。尽管上文已结合实例和优选实施例描述了本发明的各个方面，但应当理解本发明的范围不受上述具体实施方式的限定，而受以下在专利法原则下恰当理解的权利要求书的限定。

Claims (1)

1.一种使多能干细胞群分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群的方法，所述表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞群共表达PDX-1、NKX-6.1，但不表达CDX-2和NGN-3，所述方法包括下列步骤：
a. 培养所述多能干细胞，
b. 使所述多能干细胞分化成表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞，以及
c. 通过用补充有FGF7的第一培养基处理表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞，然后将所述细胞在补充有FGF7、成头蛋白、激活素A、视黄酸和环巴胺-KAAD的第二培养基中培养，使所述表达定形内胚层谱系特征性标志物的细胞分化成表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞，所述表达胰腺内胚层谱系特征性标志物的细胞共表达PDX1、NKX6.1，但不表达CDX2和NGN3，
其中所述多能干细胞是确立的多能干细胞系。
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Families Citing this family (58)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8017395B2 (en) 2004-12-17 2011-09-13 Lifescan, Inc. Seeding cells on porous supports
AU2006255183B2 (en) 2005-06-08 2012-02-02 Centocor, Inc. A cellular therapy for ocular degeneration
US8741643B2 (en) * 2006-04-28 2014-06-03 Lifescan, Inc. Differentiation of pluripotent stem cells to definitive endoderm lineage
US8685730B2 (en) 2006-05-02 2014-04-01 Wisconsin Alumni Research Foundation Methods and devices for differentiating pluripotent stem cells into cells of the pancreatic lineage
US9080145B2 (en) 2007-07-01 2015-07-14 Lifescan Corporation Single pluripotent stem cell culture
CA2695225C (en) 2007-07-31 2021-06-01 Lifescan, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells to pancreatic endocrine
RU2473684C2 (ru) 2007-11-27 2013-01-27 Лайфскен, Инк. Дифференцировка человеческих эмбриональных стволовых клеток
KR101597731B1 (ko) 2008-02-21 2016-02-26 센토코 오르토 바이오테크 인코포레이티드 세포 부착, 배양 및 탈리를 위한 방법, 표면 개질 플레이트 및 조성물
US8623648B2 (en) 2008-04-24 2014-01-07 Janssen Biotech, Inc. Treatment of pluripotent cells
MX2011000125A (es) 2008-06-30 2011-02-25 Centocor Ortho Biotech Inc Diferenciacion de celulas madre pluripotentes.
CA2742267C (en) 2008-10-31 2019-06-04 Centocor Ortho Biotech Inc. Differentiation of human embryonic stem cells to the pancreatic endocrine lineage
EP2346988B1 (en) 2008-10-31 2017-05-31 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells to the pancreatic endocrine lineage
US20100124781A1 (en) 2008-11-20 2010-05-20 Shelley Nelson Pluripotent Stem Cell Culture on Micro-Carriers
US9969973B2 (en) 2008-11-20 2018-05-15 Janssen Biotech, Inc. Methods and compositions for cell attachment and cultivation on planar substrates
EP2456859A4 (en) 2009-07-20 2015-03-18 Janssen Biotech Inc DIFFERENTIATION OF HUMAN EMBRYONIC STEM CELLS
US10076544B2 (en) 2009-07-20 2018-09-18 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
KR101893021B1 (ko) 2009-07-20 2018-08-29 얀센 바이오테크 인코포레이티드 인간 배아 줄기 세포의 분화
BR112012017761A2 (pt) 2009-12-23 2015-09-15 Centocor Ortho Biotech Inc diferenciação das células-tronco embrionárias humanas
SG181685A1 (en) 2009-12-23 2012-07-30 Centocor Ortho Biotech Inc Differentiation of human embryonic stem cells
KR101928299B1 (ko) 2010-03-01 2018-12-12 얀센 바이오테크 인코포레이티드 만능 줄기 세포로부터 유래된 세포의 정제 방법
EP3498825A1 (en) 2010-05-12 2019-06-19 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
RU2673946C1 (ru) 2010-08-31 2018-12-03 Янссен Байотек, Инк. Дифференцирование плюрипотентных стволовых клеток
WO2012030538A2 (en) 2010-08-31 2012-03-08 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
PL2611910T3 (pl) 2010-08-31 2018-06-29 Janssen Biotech, Inc Różnicowanie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych
ITMI20110780A1 (it) * 2011-05-06 2012-11-07 Euroclone Spa Terreno di coltura per differenziare cellule staminali in cellule beta
WO2012170853A1 (en) * 2011-06-10 2012-12-13 Wisconsin Alumni Research Foundation ("Warf") Methods and devices for differentiating pluripotent stem cells into cells of the pancreatic lineage
MX2014007744A (es) 2011-12-22 2015-01-12 Janssen Biotech Inc Diferenciacion de celulas madre embrionicas humanas en celulas individuales positivas de insulina hormonal.
JP6383292B2 (ja) 2012-03-07 2018-08-29 ヤンセン バイオテツク，インコーポレーテツド 多能性幹細胞の増殖及び維持のための明確な培地
RU2668814C2 (ru) * 2012-05-07 2018-10-02 Янссен Байотек, Инк. Способы продуцирования клеток дефинитивной энтодермы и панкреатической энтодермы
SG10201610313WA (en) 2012-06-08 2017-02-27 Janssen Biotech Inc Differentiation of human embryonic stem cells into pancreatic endocrine cells
CN104903440B (zh) 2012-09-03 2018-04-06 诺和诺德股份有限公司 使用小分子从多能干细胞产生胰内胚层
DK2938724T3 (da) 2012-12-31 2020-12-14 Janssen Biotech Inc Dyrkning af humane embryonale stamceller ved luft-væskegrænsefladen til differentiering til endokrine pankreasceller
US10370644B2 (en) 2012-12-31 2019-08-06 Janssen Biotech, Inc. Method for making human pluripotent suspension cultures and cells derived therefrom
EP4219683A1 (en) 2012-12-31 2023-08-02 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells into pancreatic endocrine cells using hb9 regulators
KR20150103203A (ko) 2012-12-31 2015-09-09 얀센 바이오테크 인코포레이티드 췌장 내분비 세포 내로의 분화를 위한 인간 만능 세포의 현탁 및 클러스터링
CN103194424A (zh) * 2013-03-28 2013-07-10 于涛 一种诱导胚胎干细胞为胰腺组织样细胞的方法
EP4461806A3 (en) 2013-06-11 2025-02-12 President and Fellows of Harvard College Sc-b cells and compositions and methods for generating the same
BR112016026626A2 (pt) 2014-05-16 2017-08-15 Janssen Biotech Inc Uso de moléculas pequenas para melhorar a expressão de mafa em células pancreáticas endócrinas
WO2016044721A1 (en) 2014-09-19 2016-03-24 Regenerative Medical Solutions, Inc. Compositions and methods for differentiating stem cells into cell populations comprising beta-like cells
WO2016100898A1 (en) 2014-12-18 2016-06-23 President And Fellows Of Harvard College Serum-free in vitro directed differentiation protocol for generating stem cell-derived b cells and uses thereof
WO2016100930A1 (en) 2014-12-18 2016-06-23 President And Fellows Of Harvard College Methods for generating stem cell-derived b cells and methods of use thereof
DK3234110T3 (da) 2014-12-18 2024-05-13 Harvard College FREMGANGSMÅDER TIL GENERERING AF STAMCELLE-AFLEDTE ß-CELLER OG ANVENDELSER DERAF
MA45479A (fr) 2016-04-14 2019-02-20 Janssen Biotech Inc Différenciation de cellules souches pluripotentes en cellules de l'endoderme de l'intestin moyen
US11623023B2 (en) 2016-11-10 2023-04-11 Viacyte, Inc. PDX1 pancreatic endoderm cells in cell delivery devices and methods thereof
EP3587560A4 (en) * 2017-01-27 2020-12-16 Kaneka Corporation Endodermal cell mass, and method for producing any one of three primary germ layer cell mass from pluripotent cells
US10767164B2 (en) 2017-03-30 2020-09-08 The Research Foundation For The State University Of New York Microenvironments for self-assembly of islet organoids from stem cells differentiation
US10391156B2 (en) 2017-07-12 2019-08-27 Viacyte, Inc. University donor cells and related methods
KR102789149B1 (ko) 2017-11-15 2025-03-31 셈마 테라퓨틱스, 인크. 섬세포 제조 조성물 및 사용 방법
EP3833365A4 (en) 2018-08-10 2022-05-11 Vertex Pharmaceuticals Incorporated Stem cell derived islet differentiation
US20200080107A1 (en) 2018-09-07 2020-03-12 Crispr Therapeutics Ag Universal donor cells
BR112021023389A2 (pt) * 2019-05-22 2022-02-01 Cleveland Clinic Found Geração de células de endoderma de intestino anterior dorsal e domínio anterior
JP2022535239A (ja) 2019-05-31 2022-08-05 ダブリュ．エル．ゴア アンド アソシエイツ，インコーポレイティド 生体適合性メンブレン複合体
WO2020243663A1 (en) 2019-05-31 2020-12-03 W. L. Gore & Associates, Inc. A biocompatible membrane composite
CN114401752B (zh) 2019-05-31 2023-04-04 W.L.戈尔及同仁股份有限公司 具有受控氧扩散距离的细胞封装装置
US12310830B2 (en) 2019-05-31 2025-05-27 W. L. Gore & Associates, Inc. Biocompatible membrane composite
MX2022002663A (es) 2019-09-05 2022-04-07 Crispr Therapeutics Ag Celulas donantes universales.
JP2022547505A (ja) 2019-09-05 2022-11-14 クリスパー セラピューティクス アクチェンゲゼルシャフト ユニバーサルドナー細胞
US11566230B2 (en) 2020-12-31 2023-01-31 Crispr Therapeutics Ag Universal donor cells

Family Cites Families (176)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3209652A (en) 1961-03-30 1965-10-05 Burgsmueller Karl Thread whirling method
AT326803B (de) 1968-08-26 1975-12-29 Binder Fa G Maschenware sowie verfahren zur herstellung derselben
US3935067A (en) 1974-11-22 1976-01-27 Wyo-Ben Products, Inc. Inorganic support for culture media
CA1201400A (en) 1982-04-16 1986-03-04 Joel L. Williams Chemically specific surfaces for influencing cell activity during culture
US4499802A (en) 1982-09-29 1985-02-19 Container Graphics Corporation Rotary cutting die with scrap ejection
US4537773A (en) 1983-12-05 1985-08-27 E. I. Du Pont De Nemours And Company α-Aminoboronic acid derivatives
US4557264A (en) * 1984-04-09 1985-12-10 Ethicon Inc. Surgical filament from polypropylene blended with polyethylene
US5089396A (en) 1985-10-03 1992-02-18 Genentech, Inc. Nucleic acid encoding β chain prodomains of inhibin and method for synthesizing polypeptides using such nucleic acid
US5215893A (en) 1985-10-03 1993-06-01 Genentech, Inc. Nucleic acid encoding the ba chain prodomains of inhibin and method for synthesizing polypeptides using such nucleic acid
US4737578A (en) 1986-02-10 1988-04-12 The Salk Institute For Biological Studies Human inhibin
US5863531A (en) 1986-04-18 1999-01-26 Advanced Tissue Sciences, Inc. In vitro preparation of tubular tissue structures by stromal cell culture on a three-dimensional framework
CA1340581C (en) 1986-11-20 1999-06-08 Joseph P. Vacanti Chimeric neomorphogenesis of organs by controlled cellular implantation using artificial matrices
US5759830A (en) 1986-11-20 1998-06-02 Massachusetts Institute Of Technology Three-dimensional fibrous scaffold containing attached cells for producing vascularized tissue in vivo
US5567612A (en) * 1986-11-20 1996-10-22 Massachusetts Institute Of Technology Genitourinary cell-matrix structure for implantation into a human and a method of making
EP0363125A3 (en) 1988-10-03 1990-08-16 Hana Biologics Inc. Proliferated pancreatic endocrine cell product and process
US5837539A (en) * 1990-11-16 1998-11-17 Osiris Therapeutics, Inc. Monoclonal antibodies for human mesenchymal stem cells
US5449383A (en) * 1992-03-18 1995-09-12 Chatelier; Ronald C. Cell growth substrates
GB9206861D0 (en) * 1992-03-28 1992-05-13 Univ Manchester Wound healing and treatment of fibrotic disorders
CA2114282A1 (en) 1993-01-28 1994-07-29 Lothar Schilder Multi-layered implant
JP3525221B2 (ja) 1993-02-17 2004-05-10 味の素株式会社 免疫抑制剤
US5523226A (en) 1993-05-14 1996-06-04 Biotechnology Research And Development Corp. Transgenic swine compositions and methods
GB9310557D0 (en) * 1993-05-21 1993-07-07 Smithkline Beecham Plc Novel process and apparatus
TW257671B (zh) 1993-11-19 1995-09-21 Ciba Geigy
US6001647A (en) 1994-04-28 1999-12-14 Ixion Biotechnology, Inc. In vitro growth of functional islets of Langerhans and in vivo uses thereof
US5834308A (en) * 1994-04-28 1998-11-10 University Of Florida Research Foundation, Inc. In vitro growth of functional islets of Langerhans
US6703017B1 (en) 1994-04-28 2004-03-09 Ixion Biotechnology, Inc. Reversal of insulin-dependent diabetes by islet-producing stem cells, islet progenitor cells and islet-like structures
US6083903A (en) 1994-10-28 2000-07-04 Leukosite, Inc. Boronic ester and acid compounds, synthesis and uses
DE69525971T3 (de) 1994-12-29 2013-01-10 Chugai Seiyaku K.K. Verwendung eines pm-1 antikörpers oder eines mh 166 antikörpers zur verstärkung des anti-tumor-effektes von cisplatin oder carboplatin
US5843780A (en) * 1995-01-20 1998-12-01 Wisconsin Alumni Research Foundation Primate embryonic stem cells
US5718922A (en) * 1995-05-31 1998-02-17 Schepens Eye Research Institute, Inc. Intravitreal microsphere drug delivery and method of preparation
US5908782A (en) * 1995-06-05 1999-06-01 Osiris Therapeutics, Inc. Chemically defined medium for human mesenchymal stem cells
PL191111B1 (pl) 1997-04-24 2006-03-31 Ortho Mcneil Pharm Inc Podstawione imidazole, sposób ich wytwarzania, kompozycje zawierające podstawione imidazole oraz ich zastosowanie
EP1028737B1 (en) * 1997-07-03 2007-04-04 Osiris Therapeutics, Inc. Human mesenchymal stem cells from peripheral blood
ATE294860T1 (de) 1997-09-16 2005-05-15 Egea Biosciences Llc Methoden zur kompletten chemischen synthese und zusammensetzung von genen und genomen
US6670127B2 (en) 1997-09-16 2003-12-30 Egea Biosciences, Inc. Method for assembly of a polynucleotide encoding a target polypeptide
JP3880795B2 (ja) * 1997-10-23 2007-02-14 ジェロン・コーポレーション フィーダー細胞を含まない培養物中で、霊長類由来始原幹細胞を増殖させるための方法
AR014195A1 (es) * 1997-12-29 2001-02-07 Ortho Mcneil Pharm Inc Compuestos de trifenilpropanamida utiles para el tratamiento de procesos inflamatorios, composiciones anti-inflamatorias que los comprenden, ymetodos para prepararlos
CA2320040C (en) 1998-03-18 2007-05-22 Osiris Therapeutics, Inc. Mesenchymal stem cells for prevention and treatment of immune responses in transplantation
MY132496A (en) * 1998-05-11 2007-10-31 Vertex Pharma Inhibitors of p38
US6667176B1 (en) 2000-01-11 2003-12-23 Geron Corporation cDNA libraries reflecting gene expression during growth and differentiation of human pluripotent stem cells
US7410798B2 (en) 2001-01-10 2008-08-12 Geron Corporation Culture system for rapid expansion of human embryonic stem cells
US6413556B1 (en) * 1999-01-08 2002-07-02 Sky High, Llc Aqueous anti-apoptotic compositions
EP1144597A2 (en) * 1999-01-21 2001-10-17 Vitro Diagnostics, Inc. Immortalized cell lines and methods of making the same
US6815203B1 (en) 1999-06-23 2004-11-09 Joslin Diabetes Center, Inc. Methods of making pancreatic islet cells
US6333029B1 (en) 1999-06-30 2001-12-25 Ethicon, Inc. Porous tissue scaffoldings for the repair of regeneration of tissue
US6306424B1 (en) * 1999-06-30 2001-10-23 Ethicon, Inc. Foam composite for the repair or regeneration of tissue
US6685936B2 (en) 1999-10-12 2004-02-03 Osiris Therapeutics, Inc. Suppressor cells induced by culture with mesenchymal stem cells for treatment of immune responses in transplantation
US20030082155A1 (en) 1999-12-06 2003-05-01 Habener Joel F. Stem cells of the islets of langerhans and their use in treating diabetes mellitus
WO2001042789A1 (en) * 1999-12-13 2001-06-14 The Scripps Research Institute MARKERS FOR IDENTIFICATION AND ISOLATION OF PANCREATIC ISLET α AND β CELL PROGENITORS
US7439064B2 (en) * 2000-03-09 2008-10-21 Wicell Research Institute, Inc. Cultivation of human embryonic stem cells in the absence of feeder cells or without conditioned medium
US7005252B1 (en) 2000-03-09 2006-02-28 Wisconsin Alumni Research Foundation Serum free cultivation of primate embryonic stem cells
US6436704B1 (en) 2000-04-10 2002-08-20 Raven Biotechnologies, Inc. Human pancreatic epithelial progenitor cells and methods of isolation and use thereof
US6458589B1 (en) * 2000-04-27 2002-10-01 Geron Corporation Hepatocyte lineage cells derived from pluripotent stem cells
JP4621410B2 (ja) * 2000-06-26 2011-01-26 Ｎｃメディカルリサーチ株式会社 神経細胞へ分化しうる細胞分画の調製方法及び神経変性疾患治療薬の製造方法
AU2002246855B2 (en) * 2000-10-23 2005-12-22 Smithkline Beecham Corporation Novel compounds
AU2002230727A1 (en) 2000-12-08 2002-06-18 Ortho-Mcneil Pharmaceutical, Inc. Indazolyl-substituted pyrroline compounds as kinase inhibitors
DE60112611T2 (de) 2000-12-08 2006-06-14 Ortho Mcneil Pharm Inc Makroheterocyclische verbindungen als kinase inhibitoren
US6599323B2 (en) * 2000-12-21 2003-07-29 Ethicon, Inc. Reinforced tissue implants and methods of manufacture and use
WO2002059278A2 (en) 2001-01-24 2002-08-01 The Government Of The United States Of America, As Represented By The Secretary Of Department Of Health & Human Services Differentiation of stem cells to pancreatic endocrine cells
CA2435146C (en) 2001-01-25 2011-03-29 The United States Of America, Represented By The Secretary, Department Of Health And Human Services Formulation of boronic acid compounds
US6656488B2 (en) * 2001-04-11 2003-12-02 Ethicon Endo-Surgery, Inc. Bioabsorbable bag containing bioabsorbable materials of different bioabsorption rates for tissue engineering
US20050054102A1 (en) * 2001-04-19 2005-03-10 Anna Wobus Method for differentiating stem cells into insulin-producing cells
ATE421991T1 (de) 2001-04-24 2009-02-15 Ajinomoto Kk Stammzellen und verfahren zu deren trennung
JP2004531262A (ja) 2001-05-15 2004-10-14 ラッパポート ファミリー インスチチュート フォア リサーチ イン ザ メディカル サイエンシズ ヒト胚性幹細胞由来インスリン産生細胞
US6626950B2 (en) 2001-06-28 2003-09-30 Ethicon, Inc. Composite scaffold with post anchor for the repair and regeneration of tissue
KR100418195B1 (ko) 2001-07-05 2004-02-11 주식회사 우리기술 전력케이블의 다중절연진단장치 및 그 방법
GB0117583D0 (en) * 2001-07-19 2001-09-12 Astrazeneca Ab Novel compounds
US7432104B2 (en) * 2001-08-06 2008-10-07 Bresgen Inc. Methods for the culture of human embryonic stem cells on human feeder cells
US6617152B2 (en) * 2001-09-04 2003-09-09 Corning Inc Method for creating a cell growth surface on a polymeric substrate
US20030138951A1 (en) 2001-10-18 2003-07-24 Li Yin Conversion of liver stem and progenitor cells to pancreatic functional cells
AU2002363659B2 (en) 2001-11-15 2008-09-25 Children's Medical Center Corporation Methods of isolation, expansion and differentiation of fetal stem cells from chorionic villus, amniotic fluid, and placenta and therapeutic uses thereof
JP4666567B2 (ja) * 2001-12-07 2011-04-06 ジェロン・コーポレーション ヒト胚幹細胞由来の膵島細胞
KR20120003961A (ko) 2001-12-07 2012-01-11 사이토리 테라퓨틱스, 인크. 처리된 리포애스퍼레이트 세포로 환자를 치료하기 위한 시스템 및 방법
AU2002218893A1 (en) 2001-12-21 2003-07-09 Thromb-X Nv Compositions for the in vitro derivation and culture of embryonic stem (es) cell lines with germline transmission capability
US20030162290A1 (en) 2002-01-25 2003-08-28 Kazutomo Inoue Method for inducing differentiation of embryonic stem cells into functioning cells
AU2003231358A1 (en) * 2002-04-17 2003-10-27 Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd. METHOD OF FORMING PANCREATIC Beta CELLS FROM MESENCHYMAL CELLS
US20040161419A1 (en) * 2002-04-19 2004-08-19 Strom Stephen C. Placental stem cells and uses thereof
JP2005529918A (ja) 2002-05-08 2005-10-06 ジヤンセン・フアーマシユーチカ・ナームローゼ・フエンノートシヤツプ 置換されたピロリンキナーゼ阻害剤
US20060003446A1 (en) * 2002-05-17 2006-01-05 Gordon Keller Mesoderm and definitive endoderm cell populations
WO2003102134A2 (en) 2002-05-28 2003-12-11 Becton, Dickinson And Company Pancreatic acinar cells into insulin producing cells
KR20050008787A (ko) 2002-06-05 2005-01-21 얀센 파마슈티카 엔.브이. 키나제 저해제로서의 비스인돌릴-말레이미드 유도체
GB0212976D0 (en) 2002-06-06 2002-07-17 Tonejet Corp Pty Ltd Ejection method and apparatus
CN1171991C (zh) 2002-07-08 2004-10-20 徐如祥 人神经干细胞的培养方法
US6877147B2 (en) * 2002-07-22 2005-04-05 Broadcom Corporation Technique to assess timing delay by use of layout quality analyzer comparison
US7838290B2 (en) * 2002-07-25 2010-11-23 The Scripps Research Institute Hematopoietic stem cells and methods of treatment of neovascular eye diseases therewith
EP1539930A4 (en) 2002-07-29 2006-08-09 Es Cell Int Pte Ltd METHOD IN MULTIPLE STAGES OF DIFFERENTIATION OF POSITIVE INSULIN-SENSITIVE CELLS, GLUCOSE
WO2004016747A2 (en) 2002-08-14 2004-02-26 University Of Florida Bone marrow cell differentiation
EP1539928A4 (en) 2002-09-06 2006-09-06 Amcyte Inc POSIOTIVE PANCREATIC ENDOCRINE PROGENITOR CELLS CD56 IN ADULT HUMAN BEINGS
US9969977B2 (en) 2002-09-20 2018-05-15 Garnet Biotherapeutics Cell populations which co-express CD49c and CD90
US20040062753A1 (en) * 2002-09-27 2004-04-01 Alireza Rezania Composite scaffolds seeded with mammalian cells
AU2003285172A1 (en) 2002-11-08 2004-06-03 The Johns Hopkins University Human embryonic stem cell cultures, and compositions and methods for growing same
US7144999B2 (en) * 2002-11-23 2006-12-05 Isis Pharmaceuticals, Inc. Modulation of hypoxia-inducible factor 1 alpha expression
AU2003302702B2 (en) 2002-12-05 2008-08-07 Technion Research & Development Foundation Ltd. Cultured human pancreatic islets, and uses thereof
ES2705683T3 (es) 2002-12-16 2019-03-26 Technion Res & Dev Foundation Medio de cultivo de células madre pluripotentes
US20070155661A1 (en) 2003-02-14 2007-07-05 The Board Of Trustees Of The Leland Standord Junior University Methods and compositions for modulating the development of stem cells
WO2005045001A2 (en) * 2003-02-14 2005-05-19 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Insulin-producing cells derived from stem cells
WO2004087885A2 (en) 2003-03-27 2004-10-14 Ixion Biotechnology, Inc. Method for transdifferentiation of non-pancreatic stem cells to the pancreatic pathway
WO2004090110A2 (en) 2003-03-31 2004-10-21 Bresagen Inc. Compositions and methods for the control, differentiation and/or manipulation of pluripotent cells through a gamma-secretase signaling pathway
US20090203141A1 (en) 2003-05-15 2009-08-13 Shi-Lung Lin Generation of tumor-free embryonic stem-like pluripotent cells using inducible recombinant RNA agents
PL2322599T3 (pl) 2003-06-27 2015-10-30 Depuy Synthes Products Inc Komórki pozyskiwane poporodowo z tkanki sznura pępowinowego i sposoby pozyskiwania i zastosowania tych komórek do naprawy i regeneracji tkanek miękkich
IL161903A0 (en) 2003-07-17 2005-11-20 Gamida Cell Ltd Ex vivo progenitor and stem cell expansion for usein the treatment of disease of endodermally- deri ved organs
ITRM20030395A1 (it) 2003-08-12 2005-02-13 Istituto Naz Per Le Malattie Infettive Lazz Terreno di coltura per il mantenimento, la proliferazione e il differenziamento di cellule di mammifero.
US20050042595A1 (en) 2003-08-14 2005-02-24 Martin Haas Banking of multipotent amniotic fetal stem cells
US7157275B2 (en) * 2003-08-15 2007-01-02 Becton, Dickinson And Company Peptides for enhanced cell attachment and growth
EP1670900A4 (en) 2003-08-27 2008-06-11 Stemcells California Inc ENHANCED PANCREATIC STEM CELL AND PRECURSOR CELL POPULATIONS AND METHOD OF IDENTIFYING, INSULATING AND ENRICHING SUCH POPULATIONS
JP2007515433A (ja) 2003-12-17 2007-06-14 アラーガン　インコーポレイテッド Ｃｙｐ２６ａおよびｃｙｐ２６ｂの選択的阻害剤を使用するレチノイド反応性障害の処置方法
US20060030042A1 (en) 2003-12-19 2006-02-09 Ali Brivanlou Maintenance of embryonic stem cells by the GSK-3 inhibitor 6-bromoindirubin-3'-oxime
US20050266554A1 (en) 2004-04-27 2005-12-01 D Amour Kevin A PDX1 expressing endoderm
US7625753B2 (en) 2003-12-23 2009-12-01 Cythera, Inc. Expansion of definitive endoderm cells
SG149061A1 (en) 2003-12-23 2009-01-29 Cythera Inc Definitive endoderm
TWI334443B (en) * 2003-12-31 2010-12-11 Ind Tech Res Inst Method of single cell culture of undifferentiated human embryonic stem cells
US20050233446A1 (en) 2003-12-31 2005-10-20 Parsons Xuejun H Defined media for stem cell culture
WO2005071066A1 (en) 2004-01-23 2005-08-04 Board Of Regents, The University Of Texas System Methods and compositions for preparing pancreatic insulin secreting cells
GB2441530B (en) 2004-02-12 2009-09-23 Univ Newcastle Stem Cells
JP2008500809A (ja) * 2004-03-09 2008-01-17 ライフスキャン・インコーポレイテッド インスリン産生細胞を発生させるための方法
CA2558486A1 (en) * 2004-03-10 2005-09-22 Alberto Hayek Compositions and methods for growth of embryonic stem cells
GB2427874B (en) 2004-04-01 2008-09-10 Wisconsin Alumni Res Found Differentiation of stem cells to endoderm and pancreatic lineage
EA011953B1 (ru) 2004-04-27 2009-06-30 Китера, Инк. Pdx1-экспрессирующая энтодерма
WO2006016999A1 (en) 2004-07-09 2006-02-16 Cythera, Inc. Methods for identifying factors for differentiating definitive endoderm
MX2007001772A (es) 2004-08-13 2007-07-11 Univ Georgia Res Found Composiciones y metodos para auto-renovacion y diferenciacion de celulas troncales embrionicas humanas.
WO2006026473A2 (en) 2004-08-25 2006-03-09 University Of Georgia Research Foundation, Inc. METHODS AND COMPOSITIONS UTILIZING MYC AND GSK3ß TO MANIPULATE THE PLURIPOTENCY OF EMBRYONIC STEM CELLS
DE102004043256B4 (de) 2004-09-07 2013-09-19 Rheinische Friedrich-Wilhelms-Universität Bonn Skalierbarer Prozess zur Kultivierung undifferenzierter Stammzellen in Suspension
MX2007002389A (es) 2004-09-08 2009-02-12 Wisconsin Alumni Res Found Cultivo de celulas progenitoras embrionarias humanas.
GB2432846B (en) 2004-09-08 2009-12-30 Wisconsin Alumni Res Found Medium and culture of embryonic stem cells
JP2008528038A (ja) 2005-01-31 2008-07-31 エス セル インターナショナル ピーティーイー リミテッド 胚性幹細胞の指示された分化及びその利用
WO2006094286A2 (en) 2005-03-04 2006-09-08 John O'neil Adult pancreatic derived stromal cells
GB0505970D0 (en) 2005-03-23 2005-04-27 Univ Edinburgh Culture medium containing kinase inhibitor, and uses thereof
US7998938B2 (en) 2005-04-15 2011-08-16 Geron Corporation Cancer treatment by combined inhibition of proteasome and telomerase activities
EP1874367B1 (en) 2005-04-26 2011-07-06 Arhus Universitet Biocompatible material for surgical implants and cell guiding tissue culture surfaces
EP1899344A1 (en) 2005-06-10 2008-03-19 Irm, Llc Compounds that maintain pluripotency of embryonic stem cells
WO2006138433A2 (en) 2005-06-14 2006-12-28 The Regents Of The University Of California Induction of cell differentiation by class i bhlh polypeptides
US20080199959A1 (en) 2005-06-21 2008-08-21 Ge Healthcare Bio-Sciences Ab Method For Cell Culture
EA017545B1 (ru) 2005-06-30 2013-01-30 Янссен Фармацевтика Н.В. Циклические анилино-пиридинотриазины в качестве ингибиторов gsk-3
GB2443370A (en) 2005-07-29 2008-04-30 Australian Stem Cell Ct Ltd Compositions and methods for growth of pluripotent cells
WO2007016485A2 (en) 2005-07-29 2007-02-08 Athersys, Inc. Use of a gsk-3 inhibitor to maintain potency of cultured cells
KR20080056181A (ko) 2005-09-02 2008-06-20 에이전시 포 사이언스, 테크놀로지 앤드 리서치 전구세포주의 유도 방법
WO2007030870A1 (en) 2005-09-12 2007-03-22 Es Cell International Pte Ltd Cardiomyocyte production
EP2674485B1 (en) * 2005-10-27 2019-06-12 Viacyte, Inc. Pdx-1 expressing dorsal and ventral foregut endoderm
WO2007082963A1 (es) 2006-01-18 2007-07-26 Fundación Instituto Valenciano De Infertilidad Líneas de células madre embrionarias humanas y métodos para usar las mismas
SG10201405107YA (en) 2006-02-23 2014-10-30 Viacyte Inc Compositions and methods useful for culturing differentiable cells
US7695965B2 (en) 2006-03-02 2010-04-13 Cythera, Inc. Methods of producing pancreatic hormones
CA2644468C (en) * 2006-03-02 2022-02-01 Cythera, Inc. Endocrine precursor cells, pancreatic hormone-expressing cells and methods of production
US8741643B2 (en) 2006-04-28 2014-06-03 Lifescan, Inc. Differentiation of pluripotent stem cells to definitive endoderm lineage
CA2984541C (en) 2006-04-28 2022-04-12 Lifescan, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells
CA2650561C (en) * 2006-05-02 2014-02-25 Wisconsin Alumni Research Foundation Method of differentiating stem cells into cells of the endoderm and pancreatic lineage
WO2007139929A2 (en) 2006-05-25 2007-12-06 The Burnham Institute For Medical Research Methods for culture and production of single cell populations of human embryonic stem cells
WO2007149182A2 (en) 2006-06-19 2007-12-27 Geron Corporation Differentiation and enrichment of islet-like cells from human pluripotent stem cells
CN100494359C (zh) 2006-06-23 2009-06-03 中日友好医院 神经干细胞三维立体培养体外扩增的方法
US20080003676A1 (en) 2006-06-26 2008-01-03 Millipore Corporation Growth of embryonic stem cells
EP2046946B8 (en) 2006-06-26 2017-01-25 Lifescan, Inc. Pluripotent stem cell culture
GB2454386B (en) 2006-07-06 2011-07-06 Es Cell Int Pte Ltd Method for embryonic stem cell culture on a positively charged support surface
AU2007277364B2 (en) 2006-07-26 2010-08-12 Viacyte, Inc. Methods of producing pancreatic hormones
JP2008099662A (ja) 2006-09-22 2008-05-01 Institute Of Physical & Chemical Research 幹細胞の培養方法
US20080091234A1 (en) * 2006-09-26 2008-04-17 Kladakis Stephanie M Method for modifying a medical implant surface for promoting tissue growth
WO2008048647A1 (en) 2006-10-17 2008-04-24 Cythera, Inc. Modulation of the phosphatidylinositol-3-kinase pathway in the differentiation of human embryonic stem cells
US8835163B2 (en) 2006-10-18 2014-09-16 The Board Of Trustees Of The University Of Illinois Embryonic-like stem cells derived from adult human peripheral blood and methods of use
TW200836749A (en) 2007-01-09 2008-09-16 Vioquest Pharmaceuticals Inc Compositions including triciribine and bortezomib and derivatives thereof and methods of use thereof
AU2008211103B2 (en) 2007-01-30 2014-05-08 University Of Georgia Research Foundation, Inc. Early mesoderm cells, a stable population of mesendoderm cells that has utility for generation of endoderm and mesoderm lineages and multipotent migratory cells (MMC)
GB0703188D0 (en) 2007-02-19 2007-03-28 Roger Land Building Large scale production of stem cells
JP5738591B2 (ja) 2007-07-18 2015-06-24 ライフスキャン・インコーポレイテッドＬｉｆｅｓｃａｎ，Ｉｎｃ． ヒト胚幹細胞の分化
CA2695225C (en) 2007-07-31 2021-06-01 Lifescan, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells to pancreatic endocrine
AU2008291930B2 (en) 2007-08-24 2014-04-17 Slotervaart Participaties Bv Compositions for the treatment of neoplastic diseases
RU2473684C2 (ru) 2007-11-27 2013-01-27 Лайфскен, Инк. Дифференцировка человеческих эмбриональных стволовых клеток
SG154367A1 (en) 2008-01-31 2009-08-28 Es Cell Int Pte Ltd Method of differentiating stem cells
WO2009101407A2 (en) 2008-02-11 2009-08-20 Cambridge Enterprise Limited Improved reprogramming of mammalian cells, and the cells obtained
KR101597731B1 (ko) 2008-02-21 2016-02-26 센토코 오르토 바이오테크 인코포레이티드 세포 부착, 배양 및 탈리를 위한 방법, 표면 개질 플레이트 및 조성물
EP2271747B1 (en) 2008-03-17 2016-09-07 Agency for Science, Technology And Research Microcarriers for pluripotent stem cell culture
AU2008355123B2 (en) 2008-04-21 2014-12-04 Viacyte, Inc. Methods for purifying endoderm and pancreatic endoderm cells derived from human embryonic stem cells
US20090298178A1 (en) 2008-06-03 2009-12-03 D Amour Kevin Allen Growth factors for production of definitive endoderm
DE102008032236A1 (de) 2008-06-30 2010-04-01 Eberhard-Karls-Universität Tübingen Isolierung und/oder Identifizierung von Stammzellen mit adipozytärem, chondrozytärem und pankreatischem Differenzierungspotential
MX2011000125A (es) 2008-06-30 2011-02-25 Centocor Ortho Biotech Inc Diferenciacion de celulas madre pluripotentes.
US20100028307A1 (en) 2008-07-31 2010-02-04 O'neil John J Pluripotent stem cell differentiation
EP2346988B1 (en) 2008-10-31 2017-05-31 Janssen Biotech, Inc. Differentiation of human embryonic stem cells to the pancreatic endocrine lineage
US8008075B2 (en) 2008-11-04 2011-08-30 Viacyte, Inc. Stem cell aggregate suspension compositions and methods of differentiation thereof
WO2011008993A1 (en) 2009-07-15 2011-01-20 The University Of Akron Manufacturing of multifunctional electrically conductive/transparent/flexible films
EP2456859A4 (en) 2009-07-20 2015-03-18 Janssen Biotech Inc DIFFERENTIATION OF HUMAN EMBRYONIC STEM CELLS

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