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WO2020209559A1 - Gpnmb 및 cd3에 특이적으로 결합하는 이중특이적 항체 및 이의 용도 - Google Patents

Gpnmb 및 cd3에 특이적으로 결합하는 이중특이적 항체 및 이의 용도 Download PDF

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Publication number
WO2020209559A1
WO2020209559A1 PCT/KR2020/004630 KR2020004630W WO2020209559A1 WO 2020209559 A1 WO2020209559 A1 WO 2020209559A1 KR 2020004630 W KR2020004630 W KR 2020004630W WO 2020209559 A1 WO2020209559 A1 WO 2020209559A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
gpnmb
seq
amino acid
acid sequence
domain
Prior art date
Application number
PCT/KR2020/004630
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
박재찬
송은정
임소정
이재철
권해냄
이수아
임옥재
김문경
조현정
김길중
이지원
김성근
원종화
장신아
Original Assignee
주식회사 녹십자
재단법인 목암생명과학연구소
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 주식회사 녹십자, 재단법인 목암생명과학연구소 filed Critical 주식회사 녹십자
Priority to JP2021555853A priority Critical patent/JP2022525627A/ja
Priority to BR112021020201A priority patent/BR112021020201A2/pt
Priority to CA3130483A priority patent/CA3130483A1/en
Priority to US17/431,218 priority patent/US12319746B2/en
Priority to EP20788397.6A priority patent/EP3954711A4/en
Priority to CN202080027046.6A priority patent/CN113853389B/zh
Priority to AU2020272376A priority patent/AU2020272376B2/en
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    • C07K16/28—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants
    • C07K16/30—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans against receptors, cell surface antigens or cell surface determinants from tumour cells
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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    • A61P35/00—Antineoplastic agents
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    • C07K2317/74—Inducing cell proliferation
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    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/90—Immunoglobulins specific features characterized by (pharmaco)kinetic aspects or by stability of the immunoglobulin
    • C07K2317/92—Affinity (KD), association rate (Ka), dissociation rate (Kd) or EC50 value

Definitions

  • the present invention relates to novel bispecific antibodies that specifically bind to GPNMB and CD3 and to uses thereof.
  • cancer deaths are occurring frequently, accounting for the second highest proportion.
  • Various methods for treating cancer have been continuously attempted, and typical methods include administration of anticancer drugs, radiation irradiation, and surgical operations.
  • typical methods include administration of anticancer drugs, radiation irradiation, and surgical operations.
  • such a method can be used alone or in combination, but it is known that the treatment effect is poor in the case of terminal cancer or in the case of cancer that has metastasized to other tissues or recurred through blood.
  • the present inventors developed a bispecific antibody capable of effectively inducing the death of cells expressing GPNMB by placing CD3-expressing immune cells in cancer cells expressing GPNMB and confirming its excellent anti-cancer effect.
  • a bispecific antibody capable of effectively inducing the death of cells expressing GPNMB by placing CD3-expressing immune cells in cancer cells expressing GPNMB and confirming its excellent anti-cancer effect.
  • compositions for preventing or treating cancer comprising the bispecific antibody or fragment thereof as an active ingredient.
  • the present invention provides a bispecific antibody comprising a first domain specifically binding to GPNMB and a second domain specifically binding to CD3.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating cancer comprising the bispecific antibody or fragment thereof.
  • the bispecific antibody according to the present invention has high affinity and specificity for GPNMB and CD3, it can induce the death of or inhibit the proliferation of cancer cells expressing GPNMB. Accordingly, the bispecific antibody can be used as an effective therapeutic agent for cancer expressing GPNMB.
  • the horizontal axis represents mL (Buffer flow), and the vertical axis represents mAu (OD at 280 nm).
  • Figure 2 shows the results of HPLC analysis for anti-GPNMB/anti-CD3 bispecific antibody.
  • FIG. 3 is a FACS result showing the binding pattern of anti-GPNMB/anti-CD3 bispecific antibodies to cancer cell lines.
  • Figure 4 shows the effect of killing SK-MEL-2, U87MG and T98G cancer cells by PBMC-mediated in the presence of an anti-GPNMB/anti-CD3 bispecific antibody.
  • Figure 5 shows T lymphocyte activation by SK-MEL-2, U87MG and T98G cancer cell lines in the presence of anti-GPNMB/anti-CD3 bispecific antibodies.
  • One aspect of the present invention provides a bispecific antibody comprising a first domain specifically binding to GPNMB and a second domain specifically binding to CD3.
  • GPNMB Glycoprotein Non-Metastatic Melanoma Protein B
  • GPNMB Glycoprotein Non-Metastatic Melanoma Protein B
  • the GPNMB refers to GPNMB present in animals, preferably humans and monkeys. That is, the term “human GPNMB” means human-derived GPNMB, and “mouse GPNMB” means mouse-derived GPNMB.
  • human GPNMB may have the amino acid sequence of SEQ ID NO: 37.
  • CD3 Cluster of differentiation 3
  • CD3 refers to a homodimeric or heterodimeric protein expressed on T cells with respect to the T cell receptor complex, which is an essential element for T cell activation. to be.
  • Functional CD3 is formed by two or more dimeric associations of four different chains such as ⁇ , ⁇ , ⁇ , ⁇ , and ⁇ / ⁇ , ⁇ / ⁇ and ⁇ / ⁇ are present in the CD3 dimeric configuration.
  • human CD3 protein ( ⁇ / ⁇ ) may have an amino acid sequence of SEQ ID NO: 38
  • human CD3 protein ( ⁇ ) may have an amino acid sequence of SEQ ID NO: 39.
  • Antibodies against CD3 are known to bind to CD3 present on T cells and induce T cell activation.
  • the CD3 refers to CD3 present in animals, preferably humans and monkeys. That is, the term “human CD3” refers to CD3 derived from humans, and “monkey CD3” refers to CD3 derived from monkeys.
  • antibody refers to an immunoglobulin molecule having an immunological reactivity with a specific antigen, and refers to a protein molecule that acts as a receptor that specifically recognizes an antigen.
  • the antibody may be used as a concept encompassing a whole antibody and an antibody fragment.
  • bispecific antibody refers to an antibody capable of simultaneously binding to two different antigens.
  • immune cells such as T cells may exhibit toxicity only to specific target cells such as cancer cells and may not exhibit toxicity to other normal cells. Therefore, the bispecific antibody can maximize the therapeutic effect while minimizing side effects, and thus can be usefully used in treatment requiring T cell mediated death.
  • Bispecific antibodies that specifically bind to CD3 and GPNMB according to the present invention may be referred to as "anti-GPNMB/anti-CD3 bispecific antibodies”.
  • one of the variable regions of the antibody is a first domain that specifically binds to GPNMB, and the other variable region specifically binds to CD3. It provides an antibody comprising a second domain.
  • the first domain specifically binding to GPNMB may have cross reactivity to human and monkey GPNMB.
  • the second domain specifically binding to CD3 may have cross reactivity to human and monkey CD3.
  • the first domain and the second domain may be substituted, inserted, and/or deleted as long as properties consistent with the objectives of the present invention, such as affinity and specificity for GPNMB and CD3, are maintained, respectively.
  • conservative substitutions of amino acids may occur, and conservative substitutions refer to substitutions with other amino acid residues having similar properties to the original amino acid sequence.
  • lysine, arginine, and histidine have similar properties because they have base side chains, and aspartic acid and glutamic acid have similar properties in that they have acid side chains.
  • glycine, asparagine, glutamine, serine, threonine, tyrosine, cysteine, and tryptophan have similar characteristics in that they have uncharged polar side chains, and alanine, valine, leucine, threonine, isoleucine, proline, phenylalanine, and methionine are nonpolar.
  • tyrosine, phenylalanine, tryptophan, and histidine have similar properties in that they have aromatic side chains.
  • the first domain is H-CDR1 represented by any one amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NOs: 1, 7, 8, 9, 10 and 11; H-CDR2 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2; A heavy chain variable region (VH) comprising H-CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3; And L-CDR1 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4; L-CDR2 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5 or 12; It may include a light chain variable region (VL) including L-CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6.
  • the first domain is H-CDR1 represented by any one amino acid sequence selected from the group consisting of SEQ ID NO: 1, 7, 8, 9, 10 and 11; H-CDR2 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2; A heavy chain variable region (VH) comprising H-CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3; And L-CDR1 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4; L-CDR2 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5; It may include a light chain variable region (VL) including L-CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6.
  • the first domain is H-CDR1 represented by SEQ ID NO: 1; H-CDR2 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2; A heavy chain variable region (VH) comprising H-CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3; And L-CDR1 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4; L-CDR2 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 12; It may include a light chain variable region (VL) including L-CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6.
  • the heavy chain variable region (VH) of the first domain may be represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 26, 27, 28, 29, 30 or 31.
  • the light chain variable region (VL) of the first domain may be represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 32 or 33.
  • the first domain may include an scFv form in which the heavy chain variable region and the light chain variable region are linked through a linker.
  • any amino acid linker may be used as long as the linker can connect the light chain variable region and the heavy chain variable region.
  • An example of such an scFv may have a sequence represented by any one amino acid sequence of SEQ ID NOs: 19, 20, 21, 22, 23, 24 or 25.
  • the second domain is H-CDR1 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 13; H-CDR2 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 14; A heavy chain variable region (VH) comprising H-CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 15; And L-CDR1 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 16; L-CDR2 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 17; It may include a light chain variable region (VL) including L-CDR3 represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18.
  • the heavy chain variable region (VH) of the second domain may be represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 44, 45 or 46.
  • the light chain variable region (VL) of the second domain may be represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 42 or 43.
  • the second domain may include an scFv form in which the heavy chain variable region and the light chain variable region are linked through a linker.
  • any amino acid linker may be used as long as the linker can connect the light chain variable region and the heavy chain variable region.
  • An example of such an scFv may have a sequence represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 49 or SEQ ID NO: 51.
  • the nucleic acid encoding this may have a nucleotide sequence of SEQ ID NO: 50 and SEQ ID NO: 52, respectively.
  • the first domain and the second domain may each further include an Fc region, and the Fc region may be derived from the heavy chain constant region (CH) of IgG1, IgG2, IgG3 or IgG4. have.
  • CH heavy chain constant region
  • Fc region refers to the C-terminal region of an immunoglobulin heavy chain containing a portion of the constant region.
  • the Fc region may generally include CH2 and CH3 of an antibody heavy chain constant region, and the Fc region may include a wild-type Fc region and a variant Fc region.
  • one of the Fc regions of the first domain and the second domain may have a knob structure, and the other may have a hole structure.
  • the Fc region of the first domain has a knob structure
  • the Fc region of the second domain has a hole structure
  • the Fc region of the first domain has a hole structure
  • the second domain The Fc region may have a knob structure.
  • knob-into-hole structure refers to a mutation in the CH3 region of two different Ig heavy chains to induce a knob structure in one Ig heavy chain CH3 region, It refers to a structure that induces a hole structure in the other Ig heavy chain CH3 region to form a heterodimer between them.
  • the amino acid residue forming the knob structure is substituted with a hydrophobic amino acid having a small side chain from a hydrophobic residue having a large side chain size
  • the amino acid residue forming the hole structure has a hydrophobic side chain having a large side chain from a hydrophobic amino acid residue having a small side chain It is substituted with an amino acid residue, but is not limited thereto.
  • the amino acids of the CH3 region (Q347R, S354C, D399V and F405T) of the Fc region of the first domain may be substituted, and some of the amino acids of the CH3 region of the Fc region of the second domain (Y349C, K360E and K409W) may be substituted.
  • the first domain and the second domain are bonded to each other through a disulfide bond or a knob-into-hole structure, preferably a knob-into-hole structure to form a bispecific antibody.
  • the amino acid number is according to EU numbering.
  • the Fc region having a hole structure may have the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47
  • the Fc region having a knob structure may have the amino acid sequence of SEQ ID NO: 48
  • the first domain may comprise an Fc region having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 47 or SEQ ID NO: 48
  • the second domain may comprise an Fc region having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 48 or SEQ ID NO: 47. I can.
  • LALA mutations may be present in each of the Fc regions of the first domain and the second domain.
  • ADCC antibody-dependent cell cytotoxicity efficacy
  • the amino acid number is according to EU numbering.
  • the first domain may be represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 34 or 35
  • the second domain may be represented by the amino acid sequence of SEQ ID NO: 36, 40 or 41.
  • an aspect of the present invention provides a polynucleotide encoding the amino acid sequence of the first domain and a polynucleotide encoding the amino acid sequence of the second domain.
  • the polynucleotide encoding the amino acid sequence of the first domain may be the nucleic acid sequence of SEQ ID NO: 53 or SEQ ID NO: 54.
  • the polynucleotide can be easily derived from the amino acid sequence of the bispecific antibody by one of ordinary skill in the art.
  • another aspect of the present invention provides an expression vector comprising a polynucleotide encoding the first domain and a polynucleotide encoding the second domain, respectively.
  • expression vector refers to a recombinant vector capable of expressing a protein of interest in a host cell, and refers to a genetic construct comprising essential regulatory elements operably linked to express the inserted gene.
  • Each polynucleotide encoding the amino acid sequence of the first domain and the second domain may be inserted into a separate vector, or may be used in a form inserted into one vector.
  • operably linked means that a nucleic acid expression control sequence and a nucleic acid sequence encoding a protein of interest are functionally linked to perform a desired function. Operable linkage with a recombinant vector can be prepared using gene recombination techniques well known in the art, and site-specific DNA cleavage and linkage can be facilitated using enzymes generally known in the art. .
  • Expression vectors suitable for the eukaryotic host include, but are not limited to, expression control sequences derived from SV40, bovine papillomavirus, adenovirus, adeno-associated virus, cytomegalovirus, and retrovirus.
  • Expression vectors that can be used for bacterial hosts include bacterial plasmids obtained from E. coli such as pET, pRSET, pBluescript, pGEX2T, pUC vector, colE1, pCR1, pBR322, pMB9, and derivatives thereof, and plasmids having a wider host range such as RP4. Etc. may be included.
  • an aspect of the present invention provides a host cell transformed with the expression vector.
  • Expression vectors each including a polynucleotide encoding the first domain and a polynucleotide encoding the second domain may be inserted into a host cell to form a transformant.
  • Suitable host cells of the vector may be prokaryotic cells such as E. coli, Bacillus subtilis, Streptomyces, Pseudomonas. It may be a eukaryotic cell such as a yeast such as Saccharomyces cerevisiae, and cells of higher eukaryotes such as cells from insects.
  • the host cell may be derived from a plant or mammal.
  • COS7 cells monkey kidney cell 7 (COS7) cells, NSO cells (myeloma cells of mouse origin), SP2/0 cells (myeloma cells of mouse origin), other myeloma cell lines, Chinese hamster ovary (CHO) cells , MDCK, HuT 78 cells, HEK293 cells, and the like may be used, preferably CHO cells, but are not limited thereto.
  • an aspect of the present invention is the step of culturing the host cell; And it provides a method for producing an anti-GPNMB / anti-CD3 bispecific antibody comprising the step of purifying the anti-GPNMB / anti-CD3 antibody.
  • the method of producing the antibody includes the steps of preparing a recombinant vector by inserting a polynucleotide encoding the first domain and a polynucleotide sequence encoding the second domain into the vector; Transforming the recombinant vector into a host cell and culturing it; And separating and purifying the bispecific antibody from the cultured transformant.
  • a large amount of bispecific antibodies can be produced, and the medium and culture conditions can be appropriately selected to be tolerated according to host cells.
  • conditions such as temperature, pH of the medium, and culture time can be appropriately adjusted to suit the growth of cells and mass production of proteins.
  • an aspect of the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating cancer comprising the bispecific antibody or fragment thereof.
  • the bispecific antibody can specifically bind to T cells expressing CD3 and cancer cells expressing GPNMB.
  • the cancer is colon cancer, lung cancer, brain cancer, pancreatic cancer, ovarian cancer, breast cancer, prostate cancer, liver cancer, thyroid cancer, head and neck cancer, gastric cancer, bladder cancer, non-Hodgkin's lymphoma cancer, skin cancer, melanoma, leukemia, neuroblastoma and glioblastoma. It may be one or more selected from the group consisting of, but is not limited thereto, and may include all cancers expressing GPNMB.
  • the bispecific antibody can induce the death of GPNMB-expressing cancer cells or inhibit the proliferation of the T cells through specific binding to CD3.
  • the pharmaceutical composition may further include a pharmaceutically acceptable carrier.
  • binders, lubricants, disintegrating agents, excipients, solubilizing agents, dispersing agents, stabilizing agents, suspending agents, coloring agents, flavoring agents, etc. can be used.
  • buffering agents, preservatives, painless agents, solubilizing agents, isotonic agents , Stabilizers, etc. may be mixed and used, and in the case of topical administration, base agents, excipients, lubricants, preservatives, etc.
  • the formulation of the pharmaceutical composition may be prepared in various ways by mixing with the above-described pharmaceutically acceptable carrier.
  • it when administered orally, it may be prepared in the form of tablets, troches, capsules, elixirs, suspensions, syrups, wafers, and the like, and in the case of injections, it may be prepared in the form of unit dosage ampoules or multiple dosage forms.
  • the pharmaceutical composition may be administered in a pharmaceutically effective amount to treat cancer cells or their metastasis or to inhibit the growth of cancer. It may vary according to various factors such as cancer type, patient's age, weight, characteristics and extent of symptoms, type of current treatment, number of treatments, dosage forms and routes, and can be easily determined by experts in the field.
  • the pharmaceutical composition may be administered together or sequentially with the pharmacological or physiological components described above, and may be administered in combination with an additional conventional therapeutic agent, and may be administered sequentially or simultaneously with the conventional therapeutic agent.
  • Such administration may be single or multiple administration. It is important to administer an amount capable of obtaining the maximum effect in a minimum amount without side effects in consideration of all the above factors, and this can be easily determined by a person skilled in the art.
  • the present invention provides a method of preventing or treating cancer by administering the pharmaceutical composition to an individual.
  • the term “individual” as used herein refers to a mammal suffering from or at risk of a condition or disease that can be alleviated, inhibited or treated by administering the pharmaceutical composition, and preferably means a human.
  • administration means introducing a predetermined substance to an individual by any suitable method, and the pharmaceutical composition can be administered through any route as long as it can reach the target tissue.
  • administration methods include intraperitoneal administration, intravenous administration, intramuscular administration, subcutaneous administration, intradermal administration, topical administration, intranasal administration, intrapulmonary administration, or rectal administration, but are not limited thereto.
  • the pharmaceutical composition can be administered by any device so that the active substance can move to the target cell.
  • the present invention provides the use of the pharmaceutical composition for use in the manufacture of a medicament for preventing or treating cancer.
  • a DNA sequence to be expressed in a bacteriophage parasitic in E. coli was inserted into the genome of the bacteriophage using gene recombination technology. Thereafter, the inserted protein was expressed on the surface of the phage in a form fused with one of the coat proteins of the phage using phage display technology.
  • Phage display synthesis scFv library After collecting a single colony of the final amplified group, incubated at 220 rpm at 37°C so that the OD600 value is about 0.8 to 1.0 in 1.5 mL of SB/carbenicillin, 1 mM IPTG, 30°C and 200 rpm Incubated for 12 hours or longer under the conditions of. After centrifuging the reaction product at 5,500 rpm for 5 minutes, only each supernatant was added to the ELISA plate coated with the GPNMB antigen.
  • the HRP/AntihFab-HRP conjugate was diluted 1/5000 with 1% BSA/1XPBS for 1 hour. It was reacted at room temperature. Then, after washing 4 times with PBST (1XPBS, 0.05% tween 20) again, a TMB solution was added to react for 5 to 10 minutes, and a TMB reaction stopping solution was added.
  • cloned GPNMB1 SEQ ID NO: 55
  • clone GPNMB2 SEQ ID NO: 56
  • clone GPNMB3 SEQ ID NO: 57
  • clone GPNMB4 SEQ ID NO: 58
  • clone GPNMB5 SEQ ID NO: 59
  • clone GPNMB6 SEQ ID NO: 60
  • clone GPNMB7 SEQ ID NO: 61
  • variable region sequences of the clones are shown in SEQ ID NOs: 26 to 33, respectively, and the CDR amino acid sequences in the variable region identified by Kabat numbering are shown in Table 1 below.
  • the clone GPNMB6 (SEQ ID NO: 18) showing the best affinity among anti-GPNMB antibodies was formed to have a knob-into-hole structure.
  • the mouse SP34 antibody was humanized to select antibodies that bind to CD3 with various affinities.
  • clones A15 consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 36 and E15 consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 41 were obtained.
  • an antibody consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 40 was prepared and used.
  • the bispecific antibody was formed with anti-CD3 antibodies (Hu38, A15, E15) to have a knob-into-hole structure.
  • Expi293F cells at a concentration of 2.0 ⁇ 10 6 cells/ml were passaged at 125 ⁇ 10 rpm in a shaking incubator at 37° C. and 8% CO 2 using Expi293 medium.
  • the number of cells and the cell viability were measured to confirm that the cell viability was 95% or more.
  • 5 ⁇ 10 8 cells were added to a 500 ml culture flask, and Expi293 medium was added to adjust the final 170 ml (200 ml basis).
  • Opti-MEM I medium 200 ⁇ g of antibody expression vector was mixed so that a total of 1,500 ⁇ l was mixed and incubated for 5 minutes at room temperature.
  • Opti-MEM I medium 540 ⁇ l of transfection reagent was mixed so that a total of 1,500 ⁇ l was mixed and incubated for 5 minutes at room temperature.
  • the vector and Opti-MEM I containing the transfection reagent, respectively, were gently mixed, reacted at room temperature for 20 minutes, and then put into a flask containing Expi293F cells. After incubation for 16-20 hours at 125 ⁇ 10 rpm in a 37° C., 8% CO 2 shaking incubator, 1 ml of transfection enhancer I and 10 ml of enhancer II were added, and incubated for 6 days to obtain candidate antibodies.
  • Example 1.4 term- GPNMB /Anti-CD3 Bispecific Antibody production
  • the culture solution was centrifuged at 4,000 rpm for 30 minutes, filtered through a 0.22 ⁇ m filter, cell debris was removed, and a supernatant was obtained. 1 ml of Mabselect Xtra resin was added to the column, and equilibration was performed using a Protein A binding buffer corresponding to 10 times the volume of the resin.
  • the supernatant was loaded onto the column using gravity, and after the loading was completed, the column was washed using a protein A binding buffer corresponding to 10 times the volume of the resin. Then, the IgG elution buffer was added to the column, and elution was performed. After neutralizing 1.5M Tris-Cl by adding 25 ⁇ l per 1 ml of the eluate, the concentration was measured at OD 280 nm. The eluate, whose concentration was measured, was dialyzed and the buffer was replaced with PBS.
  • the sample was concentrated or diluted to be about 1.0 g/L to 2.0 g/L, and this was loaded on a HiLoad 16/600 Superdex 200 pg (GE healthcare, 28989335) column mounted on an AKTA purifier 900.
  • As the mobile phase 20 mM sodium phosphate (pH 7.0) containing 200 mM sodium chloride was used, and after flowing at a flow rate of 1.0 ml/min, a fraction eluted after about 50 to 70 minutes of sample loading was taken.
  • FIG. 1 shows the results of obtaining a protein sample corresponding to 150 kDa by co-expressing and purifying a bispecific antibody including an anti-GPNMB antibody fragment (SEQ ID NO: 22) and an anti-CD3 antibody fragment (SEQ ID NO: 1). will be.
  • the mobile phase was analyzed by flowing the equilibrium buffer at 0.5 ml/min for 10 minutes and then flowing the elution buffer concentration from 0% to 100% over 40 minutes by a straight-line concentration method. After the analysis was completed, the purity was confirmed by measuring the area of the chromatogram measured at UV 280 nm.
  • Quantitative avidity (affinity) of the purified bispecific antibody to recombinant human GPNMB was measured using a Biacore T-200 (GE Healthcare, USA) biosensor.
  • GPNMB purified from HEK293 cells was fixed to 200 Rmax on a CM5 chip (GE Healthcare) using an amine-carboxyl reaction.
  • the GPNMB/CD3 bispecific antibody sequentially diluted in HBS-EP buffer solution (10 mM HEPES, pH 7.4, 150 mM NaCl, 3 mM EDTA, 0.005% surfactant P20) was added in a concentration range of 0.078 nM to 5 nM.
  • Flow cytometry was used to confirm whether the bispecific antibody exhibited affinity in the cells expressing GPNMB.
  • a 5 ml tube was prepared in which SK MEL2, U87MG, and T98G three types of cancer cells were added to 100 ⁇ l of FACS buffer (2% FBS/PBS) at a cell concentration of 3 ⁇ 10 5 respectively, and the primary antibody was 0.5 ⁇ g per tube. After treatment, light was blocked for 30 minutes and incubated at 4°C. Thereafter, 1 ml FACS buffer was added and centrifuged at 1,500 rpm for 3 minutes at 4° C., and the supernatant was removed.
  • FACS buffer 2% FBS/PBS
  • a 5 ml tube was prepared in which a Jurkat cell line was added at a concentration of 3 ⁇ 10 5 cells to 100 ⁇ l of FACS buffer (2% FBS/PBS), and 0.5 ⁇ g per tube was treated with the primary antibody, and the light was blocked for 30 minutes. And incubated at 4°C. Thereafter, 3 ml of FACS buffer was added, centrifuged at 1,500 rpm for 3 minutes at 4° C., and the supernatant was removed.
  • FACS buffer 2% FBS/PBS
  • GPNMB specific for three types of GPNMB+ tumor cells (SK-MEL-2, U87MG, T98G) using human peripheral blood mononuclear cells (PBMC, Peripheral Blood Mononuclear Cell) and the bispecific antibody prepared according to Example 1 above.
  • PBMC peripheral blood mononuclear cells
  • the red tumor cell killing efficacy was confirmed according to the following method.
  • GPNMB+ tumor cells Three types of GPNMB+ tumor cells (SK-MEL-2, U87MG, T98G) were harvested with 1 ⁇ trypsin-EDTA solution and centrifuged at 1,200 rpm at 4° C. for 5 minutes. Thereafter, the supernatant was removed and resuspended in cRPMI (RPMI, A10491-01+10% FBS+55 ⁇ M ⁇ -ME), and the number of cells was quantified. Each cell line suspension was prepared at a concentration of 1.0 to 10 5 cells/ml, and 1 ml/well was added to a 6-well plate, and the plates were cultured in a CO 2 incubator at 37° C. for one day to prepare a cell line. Then, IncuCyte® NucLight Red Lentivirus Reagent (EF-1 Alpha Promoter, Puromycin selection) was used at 3 MOI (Multiplicity of Infection) to transduction.
  • cRPMI RPMI, A10491-01+10% FBS+55 ⁇
  • PBMC peripheral blood mononuclear cells
  • Example 4.4 Peripheral blood mononuclear cells And antibodies Plating
  • PBMC 1:10 (SK-MEL-2) or 1:20 (U87MG, T98G) ratio.
  • Example 4.5 IncuCyteS3 Real-time cell image analysis
  • the GPNMB clone As a result of confirming the apoptosis effect by making a bispecific antibody with a third-party antibody and A15 (SEQ ID NO: 36) that showed similar cell-binding ability to the GPNMB (SEQ ID NO: 35)/A15 (SEQ ID NO: 36), the GPNMB clone It was confirmed that the efficacy was lower than that. Based on this, it is shown that the GPNMB antibody (SEQ ID NO: 35) recognizes an effective epitope as a T cell induced bispecific antibody.
  • SK MEL2, U87MG, and T98G cells expressing GPNMB were spread in a 96-well plate at 3 ⁇ 10 4 cells per well using 100 ⁇ l culture medium, respectively, and 37° C., 5% CO 2 humidified incubator (humidified incubator) for 18 hours to prepare a target cell line.
  • Dissolve GloResponse TM Frozen Thaw and Use (FTU) IL-2-luc2P Jurkat effector cells for 2 minutes in a 37°C water bath, and place 4 ml pre-warmed Assay Medium (10% FBS) in a 15 ml conical centrifuge tube. RPMI medium) was added, and 1 ml of the dissolved effector cells were added and slowly mixed to prepare an Effector cell line.
  • 75 ⁇ l of the medium was removed from the 96-well plate on which the target cells were laid, and 25 ⁇ l of FTU IL2-Luc2P Jurkat cells were added to the plate at a rate of 1 ⁇ 10 5 cells per well.
  • Antibodies were prepared by diluting by 1/3 from 10 nM to make 10 points of 3X dose. Then, 10 antibody concentrations prepared in a 96-well plate containing the previously prepared FTU IL2-Luc2P Jurkat cells were put into each of 25 ⁇ l to a 1X dose. After incubation for 5 hours in a 37° C., 5% CO 2 humidified incubator, it was removed from the incubator and allowed to stand for 10 to 15 minutes at room temperature. Thereafter, 75 ⁇ l of the Bio-Glo Steaming reagent was added per well and allowed to stand for 5 minutes, followed by measurement using GloMax Steaming Multi and a multiwell plate reader.
  • T cell activation by the bispecific antibody could be confirmed in all three cancer cells, and it was observed that the EC 50 value increased as the affinity of the antibody for CD3 decreased.
  • Bispecific antibodies prepared using Irrelevant Ab and Hu38 did not induce T cell activity (FIG. 5).

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Abstract

본 발명은 CD3 및 GPNMB에 특이적으로 결합하는 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체 및 이의 용도에 관한 것이다. 구체적으로, 상기 이중특이적 항체는 CD3 및 GPNMB에 대한 높은 친화도 및 특이성을 가지므로, GPNMB를 발현하는 암세포의 사멸을 유도하고 이의 증식을 억제할 수 있다. 이에 따라, 상기 이중특이적 항체는 GPNMB를 발현하는 암에 대해 효과적인 치료제로 사용될 수 있다.

Description

GPNMB 및 CD3에 특이적으로 결합하는 이중특이적 항체 및 이의 용도
본 발명은 GPNMB 및 CD3에 특이적으로 결합하는 신규한 이중특이적 항체 및 이의 용도에 관한 것이다.
다양한 사망 원인 중 암에 의한 사망은 2번째로 높은 비중을 차지할 정도로 빈번하게 일어나고 있다. 암을 치료하기 위한 다양한 방법이 계속 시도되고 있으며, 대표적인 방법으로는 항암제 투여나 방사선 조사, 외과적 수술 등이 이루어지고 있다. 그러나, 발병 초기 암의 경우에는 이와 같은 방법을 단독 또는 복합적으로 사용하여 치료할 수 있으나, 말기 암의 경우나 혈액을 통해 다른 조직으로 전이되거나 재발이 일어난 암의 경우에는 치료 효과가 저조한 것으로 알려져 있다.
이에 따라, 면역세포 치료기술에 대한 연구가 주목을 받고 있다. 구체적으로 환자의 혈액에서 추출한 면역세포를 시험관에서 대량으로 증식시킨 뒤 환자에게 재투여함으로써, 면역세포 내에 존재하는 암세포 특이적인 독성 T 세포가 암세포를 제거하도록 하는 기술이 개발되고 있다. 더욱이, 재조합 기술의 발전에 따라 암과 같이 T 세포 매개 사멸이 요구되는 치료 분야에 사용되는 이중특이적 항체 또한 개발되고 있으며, 이에 대한 효과가 확인되고 있다(Buhler, P., et al., Cancer Immunology, Immunotherapy 57.1, 2008: 43-52). 그럼에도 불구하고, 보다 우수한 항암 효과를 가지면서도 부작용을 최소화할 수 있는 이중특이적 항체의 개발이 여전히 필요한 실정이다.
이에, 본 발명자들은 GPNMB를 발현하는 암세포에 CD3를 발현하는 면역세포를 위치시켜, GPNMB를 발현하는 세포의 사멸을 효과적으로 유도할 수 있는 이중특이적 항체를 개발하고 이의 우수한 항암 효과를 확인하여 본 발명을 완성하였다.
이에 따라, 본 발명의 목적은 CD3 및 GPNMB에 특이적으로 결합하는 이중특이적 항체를 제공하는 것이다.
또한, 본 발명의 목적은 상기 이중특이적 항체 또는 이의 단편을 유효성분으로 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공하는 것이다.
상기 목적을 달성하기 위하여, 본 발명은 GPNMB에 특이적으로 결합하는 제1 도메인 및 CD3에 특이적으로 결합하는 제2 도메인을 포함하는 이중특이적 항체를 제공한다.
또한, 본 발명은 상기 이중특이적 항체 또는 이의 단편을 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
본 발명에 따른 이중특이적 항체는 GPNMB 및 CD3에 대한 높은 친화도 및 특이성을 가지므로, GPNMB를 발현하는 암세포의 사멸을 유도하거나 이의 증식을 억제할 수 있다. 이에 따라, 상기 이중특이적 항체는 GPNMB를 발현하는 암에 대해 효과적인 치료제로 사용될 수 있다.
도 1은 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체를 수득한 결과를 나타낸 것이다. 이때, 가로축은 mL (Buffer flow), 세로축은 mAu (OD at 280 nm)을 의미한다.
도 2는 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체에 대한 HPLC 분석 결과를 나타낸 것이다.
도 3은 암세포주에 대한 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체의 결합 양상을 나타내는 FACS 결과이다.
도 4는 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체 존재 시, PBMC 매개에 의한 SK-MEL-2, U87MG 및 T98G 암세포 사멸 효능을 나타낸 것이다.
도 5는 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체 존재 시, SK-MEL-2, U87MG 및 T98G 암세포주에 의한 T 림포사이트 활성화를 나타낸 것이다.
본 발명의 일 측면은 GPNMB에 특이적으로 결합하는 제1 도메인 및 CD3에 특이적으로 결합하는 제2 도메인을 포함하는 이중특이적 항체를 제공한다.
본 명세서에서 사용된 용어 "GPNMB"란, Glycoprotein Non-Metastatic Melanoma Protein B의 약자로서, 유방암 및 흑색종 등 다양한 암 환자에서 과발현되는 당단백질을 지칭한다. 현재까지 GPNMB 기능이 명확히 밝혀진 것은 아니지만, 암세포에서 GPNMB의 과발현이 나타난다. 또한, 상기 GPNMB는 동물, 바람직하게는 인간 및 원숭이 내에 존재하는 GPNMB를 의미한다. 즉, 용어 "인간 GPNMB"는 인간 유래의 GPNMB를 의미하며, "마우스 GPNMB"는 마우스 유래의 GPNMB를 의미한다. 예컨대, 인간 GPNMB는 서열번호 37의 아미노산 서열을 가질 수 있다.
본 명세서에서 사용된 용어 "CD3(Cluster of differentiation 3)"란, T 세포 수용 복합체와 관련하여, T 세포 상에 발현되는 동종 이량체성 또는 이종 이량체성 단백질을 의미하며, 이는 T 세포 활성화에 필수적인 요소이다. 기능성 CD3는 ε, ζ, δ, γ와 같은 4개의 상이한 사슬 중 2개 이상의 이량체성 회합으로 형성되며, CD3 이량체성 배열로는 γ/ε, δ/ε 및 ζ/ζ가 존재한다. 예컨대, 인간 CD3 단백질(ε/δ)은 서열번호 38의 아미노산 서열을 가질 수 있고, 인간 CD3 단백질(ε)은 서열번호 39의 아미노산 서열을 가질 수 있다. CD3에 대한 항체는 T 세포 상에 존재하는 CD3에 결합하여, T 세포 활성화를 유도하는 것으로 알려져 있다. 또한, 상기 CD3는 동물, 바람직하게는 인간 및 원숭이 내에 존재하는 CD3를 의미한다. 즉, 용어 "인간 CD3"는 인간 유래의 CD3를 의미하며, "원숭이 CD3"는 원숭이 유래의 CD3를 의미한다.
본 명세서에서 사용된 용어 "항체"란, 특정 항원과 면역학적 반응성을 가지는 면역글로불린 분자로, 항원을 특이적으로 인식하는 수용체 역할의 단백질 분자를 의미한다. 상기 항체는 전체 항체(whole antibody) 및 항체 단편(antibody fragment)을 포괄하는 개념으로 사용될 수 있다.
본 명세서에서 사용된 용어 "이중특이적 항체"란, 두 가지의 서로 다른 항원에 동시 결합할 수 있는 항체를 의미한다. 특히, 이중특이적 항체가 결합하는 항원의 종류를 적절히 선택할 경우, T 세포 등의 면역세포가 암세포와 같은 특정 타겟 세포에 대해서만 독성을 나타내고 그 외의 정상세포들에 대해서는 독성을 나타내지 않을 수 있다. 따라서, 이중특이적 항체는 치료 효과를 극대화하면서도 부작용을 최소화할 수 있어 T 세포 매개 사멸이 요구되는 치료에 유용하게 사용될 수 있다. 본 발명에 따른 CD3 및 GPNMB에 특이적으로 결합하는 이중특이적 항체는 "항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체"로 표기될 수 있다.
본 발명의 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체의 일 구체예로, 상기 항체의 가변 영역 중 하나는 GPNMB에 특이적으로 결합하는 제1 도메인과, 다른 가변 영역은 CD3에 특이적으로 결합하는 제2 도메인을 포함하는 항체를 제공한다. 이때, 상기 GPNMB에 특이적으로 결합하는 제1 도메인은 인간 및 원숭이 GPNMB에 대한 교차 반응성을 가질 수 있다. 또한, 상기 CD3에 특이적으로 결합하는 제2 도메인은 인간 및 원숭이 CD3에 대한 교차 반응성을 가질 수 있다.
상기 제1 도메인 및 제2 도메인은 각각 GPNMB 및 CD3에 대한 친화도 및 특이성 등 본 발명의 목적에 부합하는 특성이 유지되는 한, 일부 아미노산이 치환, 삽입 및/또는 결실될 수 있다. 예컨대, 아미노산의 보존적 치환이 일어날 수 있으며, 보존적 치환이란 본래의 아미노산 서열과 유사한 특성을 가지는 다른 아미노산 잔기로의 치환을 의미한다.
예를 들어 라이신, 아르기닌, 히스티딘은 염기 곁사슬을 가지고 있어 유사한 특성을 가지고, 아스팔틱산과 글루타믹산은 산 곁사슬을 가진다는 점에서 유사한 특성을 가진다. 또한, 글라이신, 아스파라긴, 글루타민, 세린, 트레오닌, 티로신, 시스테인, 트립토판은 비전하 극성 곁사슬을 가진다는 점에서 특성이 유사하며, 알라닌, 발린, 루신, 트레오닌, 아이소류신, 프롤린, 페닐알라닌, 메티오닌은 비극성 곁사슬을 가지고 있다는 점에서, 티로신, 페닐알라닌, 트립토판, 히스티딘은 방향족 곁사슬을 가지고 있다는 점에서 유사한 특성을 가진다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 제1 도메인은 서열번호 1, 7, 8, 9, 10 및 11로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR1; 서열번호 2의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR2; 서열번호 3의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR3을 포함하는 중쇄 가변 영역(VH); 및 서열번호 4의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR1; 서열번호 5 또는 12의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR2; 서열번호 6의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR3을 포함하는 경쇄 가변 영역(VL)을 포함할 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서, 상기 제1 도메인은 서열번호 1, 7, 8, 9, 10 및 11로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR1; 서열번호 2의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR2; 서열번호 3의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR3을 포함하는 중쇄 가변 영역(VH); 및 서열번호 4의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR1; 서열번호 5의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR2; 서열번호 6의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR3을 포함하는 경쇄 가변 영역(VL)을 포함할 수 있다.
본 발명의 또 다른 실시예에서, 상기 제1 도메인은 서열번호 1로 표시되는 H-CDR1; 서열번호 2의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR2; 서열번호 3의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR3을 포함하는 중쇄 가변 영역(VH); 및 서열번호 4의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR1; 서열번호 12의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR2; 서열번호 6의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR3을 포함하는 경쇄 가변 영역(VL)을 포함할 수 있다.
또한, 상기 제1 도메인의 중쇄 가변 영역(VH)은 서열번호 26, 27, 28, 29, 30 또는 31의 아미노산 서열로 표시될 수 있다. 또한, 상기 제1 도메인의 경쇄 가변 영역(VL)은 서열번호 32 또는 33의 아미노산 서열로 표시될 수 있다.
또한, 제1 도메인은 중쇄 가변 영역과 경쇄 가변 영역이 링커를 통해 연결된 형태인 scFv 형태를 포함할 수 있다. 이때, 링커는 경쇄 가변 영역과 중쇄 가변 영역을 연결할 수 있는 한 어떠한 아미노산 링커도 이용될 수 있다. 이러한 scFv의 일 실시예로는 서열번호 19, 20, 21, 22, 23, 24 또는 25 중 어느 하나의 아미노산 서열로 표시되는 서열을 가질 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 제2 도메인은 서열번호 13의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR1; 서열번호 14의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR2; 서열번호 15의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR3을 포함하는 중쇄 가변 영역(VH); 및 서열번호 16의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR1; 서열번호 17의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR2; 서열번호 18의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR3을 포함하는 경쇄 가변 영역(VL)을 포함할 수 있다.
또한, 상기 제2 도메인의 중쇄 가변 영역(VH)은 서열번호 44, 45 또는 46의 아미노산 서열로 표시될 수 있다. 또한, 상기 제2 도메인의 경쇄 가변 영역(VL)은 서열번호 42 또는 43의 아미노산 서열로 표시될 수 있다.
또한, 제2 도메인은 중쇄 가변 영역과 경쇄 가변 영역이 링커를 통해 연결된 형태인 scFv 형태를 포함할 수 있다. 이때, 링커는 경쇄 가변 영역과 중쇄 가변 영역을 연결할 수 있는 한 어떠한 아미노산 링커도 이용될 수 있다. 이러한 scFv의 일 실시예로는 서열번호 49 또는 서열번호 51의 아미노산 서열로 표시되는 서열을 가질 수 있다. 또한, 이를 코딩하는 핵산은 각각 서열번호 50 및 서열번호 52의 뉴클레오티드 서열을 가질 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 제1 도메인 및 제2 도메인은 각각 Fc 영역을 더 포함할 수 있으며, 상기 Fc 영역은 IgG1, IgG2, IgG3 또는 IgG4의 중쇄 불변 영역(CH)에서 유래된 것일 수 있다.
본 명세서에서 사용된 용어 "Fc 영역"이란, 불변 영역의 일부분을 내포하는 면역글로불린 중쇄의 C-말단 영역을 의미한다. 상기 Fc 영역은 통상 항체 중쇄 불변 영역의 CH2 및 CH3를 포함할 수 있으며, 상기 Fc 영역은 야생형 Fc 영역 및 변이체 Fc 영역을 포함할 수 있다.
본 발명의 일 구체예에서, 상기 제1 도메인 및 제2 도메인의 Fc 영역 중 어느 하나는 놉(knob) 구조를 갖고, 다른 하나는 홀(hole) 구조를 가질 수 있다. 예를 들어, 상기 제1 도메인의 Fc 영역이 놉 구조를 갖는 경우에는 상기 제2 도메인의 Fc 영역은 홀 구조를 가지며, 상기 제1 도메인의 Fc 영역이 홀 구조를 갖는 경우에는 상기 제2 도메인의 Fc 영역은 놉 구조를 가질 수 있다.
본 명세서에서 사용된 용어 "놉-인투-홀(knob-into-hole) 구조"란, 각기 다른 2개의 Ig 중쇄의 CH3 영역에 돌연변이를 유발하여 하나의 Ig 중쇄 CH3 영역에는 놉 구조를 유도하고, 다른 하나의 Ig 중쇄 CH3 영역에는 홀 구조를 유도하여 이들 간 이형이합체(heterodimer)를 형성하도록 하는 구조를 의미한다.
통상적으로, 상기 놉 구조를 형성하는 아미노산 잔기는 측쇄의 크기가 큰 소수성 잔기에서 측쇄가 작은 소수성 아미노산으로 치환되고, 홀 구조를 형성하는 아미노산 잔기는 측쇄의 크기가 작은 소수성 아미노산 잔기에서 측쇄가 큰 소수성 아미노산 잔기로 치환되나, 이에 한정되는 것은 아니다.
구체적으로, 상기 제1 도메인의 Fc 영역 중 CH3 영역의 아미노산 일부(Q347R, S354C, D399V 및 F405T)가 치환된 것일 수 있고, 상기 제2 도메인의 Fc 영역 중 CH3 영역의 아미노산 일부(Y349C, K360E 및 K409W)가 치환된 것일 수 있다. 이에 따라, 상기 제1 도메인 및 제2 도메인은 이황화결합 또는 놉-인투-홀(knob-into-hole) 구조, 바람직하게는 놉-인투-홀 구조를 통해 상호 결합되어 이중특이적 항체를 형성할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 이 때, 상기 아미노산 번호는 EU 넘버링에 따른 것이다.
일 구체예로 홀 구조를 가진 Fc 영역은 서열번호 47의 아미노산 서열을 가질 수 있으며, 놉 구조를 가진 Fc 영역은 서열번호 48의 아미노산 서열을 가질 수 있다. 따라서, 제1 도메인은 서열번호 47 또는 서열번호 48의 아미노산 서열을 가지는 Fc 영역을 포함할 수 있으며, 이러한 경우, 제2 도메인은 서열번호 48 또는 서열번호 47의 아미노산 서열을 가지는 Fc 영역을 포함할 수 있다.
또한, 상기 제1 도메인 및 제2 도메인의 각각의 Fc 영역에 LALA 돌연변이(L243A, L245A)가 존재할 수 있다. Fc 영역에 LALA 돌연변이가 존재하는 경우 항체-의존적 세포독성 효능(ADCC, antibody-dependent cell cytotoxicity efficacy)을 나타내지 않으므로, GPNMB를 발현하는 세포가 존재하는 암세포에 대해서만 선택적 독성을 나타내고, 그 외의 정상 세포에 대해서는 비독성을 나타낼 수 있다. 이 때, 상기 아미노산 번호는 EU 넘버링에 따른 것이다.
본 발명의 일 실시예에서, 상기 제1 도메인은 서열번호 34 또는 35의 아미노산 서열로 표시될 수 있으며, 상기 제2 도메인은 서열번호 36, 40 또는 41의 아미노산 서열로 표시될 수 있다.
또한, 본 발명의 일 측면은 상기 제1 도메인의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 및 상기 제2 도메인의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 제공한다. 일 구체예로 제1 도메인의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드는 서열번호 53 또는 서열번호 54의 핵산 서열일 수 있다.
상기 폴리뉴클레오티드는 상기 이중특이적 항체의 아미노산 서열로부터 본 발명이 속하는 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자가 용이하게 도출할 수 있다.
또한, 본 발명의 다른 측면은 상기 제1 도메인을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 및 상기 제2 도메인을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 각각 포함하는 발현벡터를 제공한다.
본 명세서에서 사용된 용어 "발현벡터"란, 숙주세포에서 목적 단백질을 발현할 수 있는 재조합 벡터로서, 삽입된 유전자가 발현되도록 작동 가능하게 연결된 필수적 조절 요소를 포함하는 유전자 작제물을 의미한다. 상기 제1 도메인 및 제2 도메인의 아미노산 서열을 코딩하는 각각의 폴리뉴클리오티드는 별개의 벡터에 삽입될 수도 있고, 하나의 벡터에 삽입된 형태로 이용될 수도 있다.
본 명세서에서 사용된 용어 "작동 가능하게 연결된(operably linked)"이란, 목적하는 기능을 수행하도록 핵산 발현조절 서열과 목적하는 단백질을 코딩하는 핵산 서열이 기능적으로 연결되어 있는 것을 의미한다. 재조합 벡터와의 작동 가능한 연결은 당해 기술분야에서 잘 알려진 유전자 재조합 기술을 이용하여 제조할 수 있으며, 부위 특이적 DNA 절단 및 연결은 당해 기술 분야에서 일반적으로 알려진 효소 등을 사용하여 용이하게 할 수 있다.
상기 이중특이적 항체를 발현시키기 위해 다양한 발현 숙주/벡터 조합이 이용될 수 있다. 진핵숙주에 적합한 발현벡터로는 SV40, 소 유두종바이러스, 아데노바이러스, 아데노-연관 바이러스, 시토메갈로바이러스 및 레트로바이러스로부터 유래된 발현 조절 서열 등이 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 세균 숙주에 사용할 수 있는 발현벡터에는 pET, pRSET, pBluescript, pGEX2T, pUC벡터, colE1, pCR1, pBR322, pMB9, 및 이들의 유도체와 같이 대장균에서 얻어지는 세균성 플라스미드, RP4와 같이 보다 넓은 숙주 범위를 갖는 플라스미드 등이 포함될 수 있다.
또한, 본 발명의 일 측면은 상기 발현벡터로 형질전환된 숙주세포를 제공한다. 상기 제1 도메인을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 및 상기 제2 도메인을 코딩하는 폴리뉴클레오티드를 각각 포함하는 발현벡터는 각각 숙주세포에 삽입되어 형질전환체를 형성할 수 있다. 상기 벡터의 적합한 숙주세포는 대장균, 바실러스 서브틸리스, 스트렙토마이세스 속, 슈도모나스 속과 같은 원핵 세포일 수 있다. 사카로마이세스 세레비지애와 같은 효모, 및 곤충으로부터의 세포와 같은 고등 진핵생물의 세포와 같은 진핵 세포일 수 있다.
또한, 상기 숙주세포는 식물, 포유동물로부터 유래할 수도 있다. 바람직하게는, 원숭이 신장 세포7(COS7) 세포, NSO 세포(마우스 기원의 골수종 세포), SP2/0 세포(마우스 기원의 골수종 세포), 기타 골수종 세포주, 차이니즈 햄스터 난소(CHO, Chinese hamster ovary) 세포, MDCK, HuT 78 세포 및 HEK293 세포 등을 사용할 수 있고, 바람직하게는 CHO 세포를 사용할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다.
한편, 본 발명의 일 측면은 상기 숙주세포를 배양하는 단계; 및 항-GPNMB/항-CD3 항체를 정제하는 단계를 포함하는 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체의 제조방법을 제공한다.
구체적으로, 상기 항체의 제조방법은 상기 제1 도메인을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 및 제2 도메인을 코딩하는 폴리뉴클레오티드 서열을 벡터에 삽입하여 재조합 벡터를 제조하는 단계; 상기 재조합 벡터를 숙주세포에 형질전환시켜 배양하는 단계; 및 상기 배양된 형질전환체로부터 이중특이적 항체를 분리 및 정제하는 단계를 포함할 수 있다.
상기 재조합 벡터가 발현되는 형질 전환체를 영양배지에서 배양함으로써 이중특이적 항체를 대량으로 생산할 수 있으며, 배지와 배양조건은 숙주세포에 따라 관용되는 것을 적절히 선택할 수 있다. 배양 시 세포의 생육과 단백질의 대량 생산에 적합하도록 온도, 배지의 pH 및 배양시간 등의 조건들을 적절하게 조절할 수 있다.
또한, 본 발명의 일 측면은 상기 이중특이적 항체 또는 이의 단편을 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물을 제공한다.
상기 이중특이적 항체는 CD3를 발현하는 T 세포 및 GPNMB 발현 암세포에 특이적으로 결합할 수 있다. 이때, 상기 암은 대장암, 폐암, 뇌암, 췌장암, 난소암, 유방암, 전립선암, 간암, 갑상선암, 두경부암, 위암, 방광암, 비호지킨 림프종암, 피부암, 흑색종, 백혈병, 신경모세포종 및 아교모세포종으로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상일 수 있으나, 이에 제한되지 않으며, GPNMB가 발현되는 모든 암을 포함할 수 있다. 이 때, 상기 이중특이적 항체는 CD3와의 특이적 결합을 통해 T 세포를 유도함으로써 GPNMB 발현 암세포의 사멸을 유도하거나 이의 증식을 억제할 수 있다.
상기 약학적 조성물은 약학적으로 허용되는 담체를 추가로 포함할 수 있다. 경구 투여 시에는 결합제, 활탁제, 붕해제, 부형제, 가용화제, 분산제, 안정화제, 현탁화제, 색소, 향료 등을 사용할 수 있고, 주사제의 경우에는 완충제, 보존제, 무통화제, 가용화제, 등장제, 안정화제 등을 혼합하여 사용할 수 있으며, 국소 투여용의 경우에는 기제, 부형제, 윤활제, 보존제 등을 사용할 수 있다.
상기 약학적 조성물의 제형은 상술한 약제학적으로 허용되는 담체와 혼합하여 다양하게 제조될 수 있다. 예를 들어, 경구 투여 시에는 정제, 트로키, 캡슐, 엘릴시르, 서스펜션, 시럽, 웨이퍼 등의 형태로 제조될 수 있으며, 주사제의 경우에는 단위 투약 앰플 또는 다수회 투약 형태로 제조될 수 있다.
상기 약학적 조성물은 암세포 또는 그들의 전이를 치료하거나 암의 성장을 억제하기 위해 약학적으로 효과적인 양으로 투여될 수 있다. 암 종류, 환자의 연령, 체중, 증상의 특성 및 정도, 현재 치료법의 종류, 치료 회수, 투여 형태 및 경로 등 다양한 요인에 따라 달라질 수 있으며, 해당 분야의 전문가들에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
상기 약학적 조성물은 상기한 약리학적 또는 생리학적 성분과 함께 투여되거나 순차적으로 투여될 수 있으며, 또한 추가의 종래의 치료제와 병용하여 투여될 수 있고 종래의 치료제와는 순차적 또는 동시에 투여될 수 있다. 이러한 투여는 단일 또는 다중 투여일 수 있다. 상기 요소를 모두 고려하여 부작용 없이 최소한의 양으로 최대 효과를 얻을 수 있는 양을 투여하는 것이 중요하며, 이는 당업자에 의해 용이하게 결정될 수 있다.
본 발명은 상기 약학적 조성물을 개체에 투여하여 암을 예방 또는 치료하는 방법을 제공한다.
본 명세서에서 사용된 용어 "개체"는 상기 약학적 조성물을 투여하여 경감, 억제 또는 치료될 수 있는 상태 또는 질환을 앓고 있거나 그러한 위험이 있는 포유동물을 의미하며, 바람직하게 사람을 의미한다.
본 명세서에서 사용된 용어 "투여"는 어떠한 적절한 방법으로 개체에게 소정의 물질을 도입하는 것을 의미하며, 상기 약학적 조성물은 목적 조직에 도달할 수 있는 한 어떠한 경로를 통해서도 투여될 수 있다. 이러한 투여 방법으로 복강내 투여, 정맥내 투여, 근육내 투여, 피하 투여, 피내 투여, 국소 투여, 비내 투여, 폐내 투여 또는 직장내 투여 등을 들 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 다만 경구 투여시, 단백질은 소화가 되기 때문에 경구용 조성물은 활성 약제를 코팅하거나 위에서의 분해로부터 보호되도록 제형화 하는 것이 바람직할 수 있다. 또한, 제약 조성물은 활성 물질이 표적 세포로 이동할 수 있도록 임의의 장치에 의해 투여될 수 있다.
또한, 본 발명은 암 예방 또는 치료를 위한 약제의 제조에 사용하기 위한 상기 약학적 조성물의 용도를 제공한다.
이하, 본 발명을 하기 실시예에 의하여 더욱 상세하게 설명한다. 단, 하기 실시예는 본 발명을 예시하기 위한 것일 뿐, 본 발명의 범위가 이들만으로 한정되는 것은 아니다.
실시예 1. 항- GPNMB /항-CD3 이중특이적 항체 제조
실시예 1.1. 항- GPNMB 항체 선별
GPNMB 특이적 항체를 선별하기 위해, 유전자 재조합 기술을 이용하여 대장균(E. coli)에 기생하는 박테리오 파지(Bacteriophage)에 발현시키려는 DNA 서열을 박테리오 파지의 게놈(genome)에 삽입하였다. 이후, 파지 디스플레이(phage display) 기술을 이용하여 상기 삽입된 단백질을 파지의 외피 단백질(coat protein) 중 하나와 융합된 형태로 파지의 표면에 발현시켰다.
파지 디스플레이 합성 scFv 라이브러리 최종 증폭집단의 단일 콜로니를 채취한 다음 SB/카베니실린 1.5 mL에서 OD600 값이 약 0.8 내지 1.0 정도가 되도록 37℃에서 220 rpm으로 배양한 후 1mM IPTG, 30℃ 및 200 rpm의 조건으로 12시간 이상 배양하였다. 이 반응물을 5,500 rpm으로 5분간 원심분리한 후 각각의 상층액만을 GPNMB 항원이 깔려있는 ELISA 플레이트에 첨가하였다. 이어서, 2시간 동안 상온에서 반응시킨 다음 PBST(1XPBS, 0.05% tween 20)로 4회 세척한 후, HRP/AntihFab-HRP 접합체를 1% BSA/1XPBS로 1/5000 희석한 것을 첨가하여 1시간 동안 상온에서 반응시켰다. 이후, 다시 PBST(1XPBS, 0.05% tween 20)로 4회 세척한 후, TMB 용액을 첨가하여 5 내지 10분간 반응시키고, TMB 반응정지액을 첨가하였다.
이어서, TECAN사의 Sunrise를 이용하여 450 nm 측정 파장에서 그 값을 읽고 높은 OD 값을 갖는 클론을 개별클론으로 확보하였다. 그 결과, 인간 GPNMB에 특이적으로 결합하는 23개의 클론을 선별하였고, 이들의 아미노산 서열을 확인하였다. 선별된 클론들로 GPNMB 발현 암세포주에 대한 결합력을 확인한 결과, 1종의 클론만이 상기 세포주에 결합되는 것을 확인하였다. 이를 기반으로 친화도 성숙(affinity maturation) 과정을 통해 상기 클론보다 단백질 및 세포에 대한 결합력이 향상된 6종의 클론을 추가적으로 확보하였다.
결과적으로, GPNMB 단백질 및 GPNMB 발현 암세포주에 결합하는 총 7종의 클론을 얻었고, 선별된 클론들을 각각 클론 GPNMB1(서열번호 55), 클론 GPNMB2(서열번호 56), 클론 GPNMB3(서열번호 57), 클론 GPNMB4(서열번호 58), 클론 GPNMB5(서열번호 59), 클론 GPNMB6(서열번호 60), 클론 GPNMB7(서열번호 61)로 명명하였다.
상기 클론들의 가변 영역 서열을 각각 서열번호 26 내지 33에 각각 나타내었고, Kabat numbering 기준으로 확인한 상기 가변 영역 내의 CDR 아미노산 서열을 하기 표 1에 나타내었다.
클론 가변영역 CDR1 CDR2 CDR3
GPNMB1 중쇄 GFTFSNYAMS SISHSGGSK KWSTFDY
(서열번호 1) (서열번호 2) (서열번호 3)
경쇄 SSNIGNNYVS ADSQRP GAWDSSLNAYV
(서열번호 4) (서열번호 5) (서열번호 6)
GPNMB2 중쇄 GFTFRKLNMS SISHSGGSK KWSTFDY
(서열번호 7) (서열번호 2) (서열번호 3)
경쇄 SSNIGNNYVS ADSQRP WDSSLNAYV
(서열번호 4) (서열번호 5) (서열번호 6)
GPNMB3 중쇄 GFTFRARPMS SISHSGGSK KWSTFDY
(서열번호 8) (서열번호 2) (서열번호 3)
경쇄 SSNIGNNYVS ADSQRP GAWDSSLNAYV
(서열번호 4) (서열번호 5) (서열번호 6)
GPNMB4 중쇄 GFTFQRYPMS SISHSGGSK KWSTFDY
(서열번호 9) (서열번호 2) (서열번호 3)
경쇄 SSNIGNNYVS ADSQRP GAWDSSLNAYV
(서열번호 4) (서열번호 5) (서열번호 6)
GPNMB5 중쇄 GFTFIRRPMS SISHSGGSK KWSTFDY
(서열번호 10) (서열번호 2) (서열번호 3)
경쇄 SSNIGNNYVS ADSQRP GAWDSSLNAYV
(서열번호 4) (서열번호 5) (서열번호 6)
GPNMB6 중쇄 GFTFAARPMS SISHSGGSK KWSTFDY
(서열번호 11) (서열번호 2) (서열번호 3)
경쇄 SSNIGNNYVS ADSQRP GAWDSSLNAYV
(서열번호 4) (서열번호 5) (서열번호 6)
GPNMB7 중쇄 GFTFSNYAMS SISHSGGSK KWSTFDY
(서열번호 1) (서열번호 2) (서열번호 3)
경쇄 SSNIGNNYVS DTPLRP GAWDSSLNAYV
(서열번호 4) (서열번호 12) (서열번호 6)
또한, 항-GPNMB 항체 중 가장 우수한 친화도를 보이는 클론 GPNMB6(서열번호 18)을 놉-인투-홀(knob-into-hole) 구조를 갖도록 형성하였다.
실시예 1.2. 항-CD3 항체 선별
인간과 원숭이의 CD3에 특이적인 항체를 선별하기 위해 마우스 SP34 항체를 인간화하여 CD3에 다양한 친화도로 결합하는 항체를 선별하였다. 이들 중에서 서열번호 36의 아미노산 서열로 이루어진 A15, 서열번호 41의 아미노산 서열로 이루어진 E15 클론을 얻었다. 또한, 서열번호 40의 아미노산 서열로 이루어진 항체(Genentech사의 Hu38E4.v1)를 제작하여 사용하였다. 또한, 이중특이적 항체는 항-CD3 항체(Hu38, A15, E15)를 놉-인투-홀(knob-into-hole) 구조를 갖도록 형성하였다.
실시예 1.3. 항체 발현을 위한 벡터의 도입
형질주입 24시간 전, Expi293 배지를 이용하여 2.0Х106 세포/㎖ 농도의 Expi293F 세포를 37℃, 8% CO2 진탕 배양기(shaking incubator)에서 125±10 rpm으로 계대하였다. 형질주입 시, 세포 수와 세포 생존율(viability)을 측정하여 95% 이상의 세포 생존율을 나타내는지 확인하였다. 500 ㎖ 배양 플라스크에 5Х108 세포를 넣고, Expi293 배지를 첨가하여 최종 170 ㎖로 조정하였다(200㎖ 기준). Opti-MEM I 배지를 이용하여 200 ㎍의 항체 발현벡터가 총 1,500 ㎕가 되도록 섞어 주고 실온에서 5분간 배양하였다.
Opti-MEM I 배지를 이용하여 540 ㎕의 transfection reagent가 총 1,500 ㎕가 되도록 섞어 주고 상온에서 5 분간 배양하였다. 벡터와 transfection reagent가 각각 들어있는 Opti-MEM I을 부드럽게 섞어주고 20분간 상온에서 반응시킨 후, Expi293F 세포가 포함된 플라스크에 넣어주었다. 37℃, 8% CO2 진탕 배양기에서 125±10 rpm으로 16~20시간 동안 배양한 후, transfection enhancer I을 1 ㎖, enhancer II를 10 ㎖ 첨가하고, 6일간 배양하여 후보 항체들을 수득하였다.
실시예 1.4. 항- GPNMB /항-CD3 이중특이적 항체의 제조
배양액을 4,000 rpm에서 30분 동안 원심분리하고, 0.22 ㎛ 필터로 여과한 뒤 세포 파괴물(cell debris)을 제거하고 상층액을 얻었다. Mabselect Xtra resin 1 ㎖을 컬럼에 넣고, 레진 부피의 10배에 해당하는 단백질 A 결합 버퍼를 이용하여 평형을 수행하였다.
이후 중력을 이용하여 상층액을 컬럼에 로딩(loading)하고, 로딩이 완료된 뒤 레진 부피의 10배에 해당하는 단백질 A 결합 버퍼를 이용하여 컬럼을 세척하였다. 그 다음 IgG 용출 버퍼를 컬럼에 넣고, 용출을 수행하였다. 1.5M Tris-Cl을 용출액 1 ㎖ 당 25 ㎕를 넣어 중화한 후, OD 280 ㎚에서 농도를 측정하였다. 농도가 측정된 용출액을 투석하여 PBS로 버퍼를 치환하였다.
다음으로, 시료를 약 1.0 g/L 내지 2.0 g/L이 되도록 농축 또는 희석하고, 이를 AKTA purifier 900에 장착된 HiLoad 16/600 Superdex 200 pg(GE healthcare, 28989335) 컬럼에 로딩하였다. 이동상은 200 mM의 염화나트륨을 포함하는 20 mM 소듐 포스페이트(pH 7.0)를 사용하고, 유속 1.0 ㎖/분으로 흘려준 뒤, 시료 로딩 약 50~70분 후에 용출되는 분획을 취하였다. 용출된 분획 중 4-12% Bis-Tris PAGE(Invitrogen, 0321BOX)를 사용하여 coomassie blue로 염색한 뒤, 150 kDa 크기의 항체가 포함된 분획을 취하였다. 이후 30 kDa Amicon 원심 필터 유닛(Merck, UFC803024)을 사용하여 농축하였다.
도 1은 항-GPNMB 항체 단편(서열번호 22) 및 항-CD3 항체 단편(서열번호 1)을 포함하는 이중특이적 항체를 공발현 및 정제하여 150 kDa에 해당하는 단백질 시료를 수득한 결과를 나타낸 것이다.
실시예 1.5. HPLC 분석을 통한 이중특이적 항체의 순도 확인
HPLC 분석을 위해 평형 버퍼로서 50 mM 소듐 포스페이트(pH 6.0)를 사용하였고, 용출 버퍼는 50 mM 소듐 포스페이트(pH 6.0)에 염화나트륨을 500 mM의 농도가 되도록 넣은 후 0.45 ㎛ bottle top filter(Nalgene, 597-4520)를 사용하여 여과하였다. HPLC(Waters, 2695/2489) system에 양이온 컬럼(Thermofisher, 054993)을 연결한 후 평형 버퍼를 사용하여 평형을 잡았다. 분석 시료를 평형버퍼에 10배 이상 희석하여 로딩 샘플을 준비하였다. 이동상은 평형버퍼를 10분간 0.5 ㎖/분으로 흘려준 후 40분에 걸쳐 용출버퍼의 농도를 0%에서 100%로 직선농도구배 방법으로 흘려 주는 방법으로 분석하였다. 분석이 완료된 후 UV 280 ㎚에서 측정된 크로마토그램의 면적을 측정하여 순도를 확인하였다.
도 1의 결과와 같이 정제한 단백질 시료에 대해 HPLC 분석을 수행한 결과, GPNMB/CD3 이중특이적 항체 시료에는 항-GPNMB 항체 절편 및 항-CD3 항체 절편이 거의 없는 것을 확인하였다(도 2).
실시예 2. 이중특이적 항체의 GPNMB 단백질 친화도 분석
정제된 이중특이적 항체의 재조합 인간 GPNMB에 대한 정량적인 결합력(친화도)을 Biacore T-200(GE Healthcare, 미국) 바이오센서를 이용하여 측정하였다. HEK293 세포로부터 정제된 GPNMB를 아민-카르복실 반응을 이용하여 CM5칩(GE Healthcare)에 200 Rmax가 되도록 고정시켰다. 다음, HBS-EP 완충용액(10 mM HEPES, pH 7.4, 150 mM NaCl, 3 mM EDTA, 0.005% surfactant P20)에 순차적으로 희석한 GPNMB/CD3 이중특이적 항체를 0.078 nM 내지 5 nM 농도 범위에서 120초 동안 결합시키고, 1,800 초간 유속 30 μL/분으로 흘려주어 해리시켰다. 10 mM 글라이신-HCl pH 1.5를 30초 동안 유속 30μL/분으로 흘려줌으로써 GPNMB에 결합된 항체의 해리를 유도하였다(표 2). Biacore T-200 evaluation software를 이용하여 친화도를 운동속도상수(Kon 및 Koff)와 평형해리상수(KD)로 얻었다(표 3).
SPR Biacore T200
칩(Chip) CM5
러닝 버퍼(Running Buffer) HBS-EP, pH 7.4
유속률(Flow rate) 30 ㎕/분
결합(Association)/해리(dissociation time) 120초/600초
IgG 농도 0.078~5 nM, 1/2 계단희석(serial dilution)
재생(Regeneration) 10 mM Glycine-HCl, pH 1.5, 30초
Kon Koff KD
GPNMB(서열번호 35)/A15(서열번호36) 3.41x105 3.74x10-4 1.10x10-9
실시예 3. GPNMB 및 CD3 발현 세포에 대한 이중특이적 항체의 친화도 분석
실시예 3.1. 인간 GPNMB 발현 암세포주에 대한 이중특이적 항체의 친화도 분석
유세포분석(Flow cytometry)을 이용하여 GPNMB를 발현하는 세포에서 이중특이적 항체가 친화도를 나타내는지 확인하였다. 구체적으로, 100 ㎕의 FACS 버퍼(2% FBS/PBS)에 SK MEL2, U87MG 및 T98G 3종류 암세포를 각각 3Х105 세포 농도로 첨가한 5 ㎖ 튜브를 준비하고, 1차 항체를 튜브당 0.5 ㎍씩 처리한 뒤 30분간 빛을 차단하고 4℃에서 배양하였다. 이후, 1 ㎖ FACS 버퍼를 넣어주고 4℃에서 1,500 rpm으로 3분간 원심분리한 다음 상층액을 제거하였다.
다음으로, 1차 항체에 특이적으로 결합할 수 있는 형광색소 표지된 2차 항체를 100 ㎕의 FACS 버퍼에 0.2 ㎍씩 처리한 뒤 30분간 빛을 차단하고 4℃에서 배양하였다. 이후, 1 ㎖ FACS 버퍼를 넣어주고 4℃에서 1,500 rpm으로 3분간 원심분리한 뒤 상층액을 제거하여 시료를 수득하였다. 그 후 시료를 FACS 버퍼 : BD CytofixTM = 1:4의 비율로 만든 버퍼 200 ㎕를 넣어주고 세포를 현탁시켜 BD FACSCalibur로 분석하였고, 그 결과를 도 3에 나타내었다.
도 3의 결과와 같이 3종류의 암세포주에 대해 GPNMB(서열번호 18)/A15 (서열번호 20) 이중특이적 항체가 결합하는 것을 확인할 수 있었다. irrelevant control로 사용하는 음성 대조군 항체에 대해서는 3종의 세포 모두 결합하지 않았다.
실시예 3.2. 인간 CD3 발현 암세포주에 대한 이중특이적 항체의 친화도 분석
유세포분석(Flow cytometry)을 이용하여 CD3를 발현하는 세포에도 상기 실시예 1.에 따라 제조된 이중특이적 항체가 친화도를 나타내는지 확인하였다. 구체적으로, 100 ㎕의 FACS 버퍼(2% FBS/PBS)에 Jurkat 세포주를 3Х105 세포 농도로 첨가한 5 ㎖ 튜브를 준비하고, 1차 항체를 튜브당 0.5 ㎍씩 처리한 뒤 30분간 빛을 차단하고 4℃에서 배양하였다. 이후, 3 ㎖ FACS 버퍼를 넣어주고 4℃에서 1,500 rpm으로 3분간 원심분리한 다음 상층액을 제거하였다.
다음으로, 1차 항체에 특이적으로 결합할 수 있는 형광색소 표지된 2차 항체를 100 ㎕의 FACS 버퍼에 0.2 ㎍씩 처리한 뒤 30분간 빛을 차단하고 4℃에서 배양하였다. 이후, 1 ㎖ FACS 버퍼를 넣어주고 4℃에서 1,500 rpm으로 3분간 원심분리한 뒤 상층액을 제거하여 시료를 수득하였다. 그 후 시료를 FACS 버퍼 : BD CytofixTM = 1:4의 비율로 만든 buffer 200 ㎕를 넣어주고 세포를 현탁시켜 BD FACS Calibur로 분석하였고, 그 결과를 도 3에 나타내었다.
도 3의 결과와 같이 Jurkat 세포주에 대해 GPNMB(서열번호 35)/A15 (서열번호 36) 이중특이적 항체가 결합하는 것을 확인할 수 있었다. irrelevant control로 사용하는 음성 대조군 항체에 대해서는 3종의 세포 모두 결합하지 않았다.
실시예 4. 종양 세포주에 대한 이중특이적 항체의 세포 사멸 효능 평가
인간 말초혈액 단핵세포(PBMC, Peripheral Blood Mononuclear Cell)와 상기 실시예 1에 따라 제조된 이중특이적 항체를 이용하여, GPNMB+ 종양 세포 3종(SK-MEL-2, U87MG, T98G)에 대해 GPNMB 특이적 종양 세포 사멸 효능을 아래 방법에 따라 확인하였다.
실시예 4.1. 타겟 세포주 구축
GPNMB+ 종양 세포 3종(SK-MEL-2, U87MG, T98G)을 1Х 트립신-EDTA 용액으로 세포들을 수확하고 1,200 rpm으로 4℃에서 5분간 원심분리하였다. 이후, 상층액을 제거하고 cRPMI(RPMI, A10491-01+10% FBS+55μM β-ME)에 재현탁한 뒤 세포 수를 정량하였다. 각 세포주 현탁액을 1.0Х105 세포/㎖ 농도로 준비하고, 6-웰 플레이트에 1 ㎖/웰씩 넣고, 플레이트들을 37℃의 CO2 인큐베이터에서 하루 동안 배양하여 세포주를 준비하였다. 그 다음, IncuCyte® NucLight Red Lentivirus Reagent(EF-1 Alpha Promoter, Puromycin selection)를 3 MOI(Multiplicity of Infection)로 사용하여 세포감염(transduction)하였다.
실시예 4.2. 타겟 세포주 준비
구체적으로, 1× 트립신-EDTA 용액으로 세포들을 수확(harvest)하고 1,200 rpm으로 4℃에서 5분간 원심분리하였다. 이후, 상층액을 제거하고 cRPMI(RPMI, A10491-01 + 10% FBS + 55μM β-ME)에 재현탁한 뒤 세포 수를 정량하였다. 각 세포주 현탁액을 1×105 세포/㎖로 준비하고, 96-웰 플레이트에 100 ㎕/웰씩 넣고, 플레이트들을 37℃의 CO2 인큐베이터에서 하루 동안 배양하여 타겟 세포주를 준비하였다.
실시예 4.3. 말초혈액단핵세포 준비
냉동보존된 말초혈액단핵세포(PBMC)를 37℃ 수조에서 신속하게 녹인 후, 50 ㎖ 코니컬 튜브로 옮겨 흔들어주면서 해동 배지(RPMI, 11875-093+10% FBS+55 μM β-ME)를 한 방울씩 점적하여 섞어 주었다. 그 다음 1,200 rpm으로 4℃에서 10분간 원심분리하여 상층액을 제거하고 30 ㎖의 해동 배지에 재현탁한 뒤 세포 수를 정량하였으며, 각 공여자(donor)별로 cRPMI에 현탁하여 1.0Х106 세포/㎖ 농도로 맞추었다.
실시예 4.4. 말초혈액단핵세포 및 항체 플레이팅
각 항체를 cRPMI로 희석한 후 20 nM에서부터 1/5씩 희석하여 하루 전에 타겟 세포를 플레이팅한 웰에 처리하였다. 그 다음 앞서 준비한 PBMC를 타겟 : PBMC = 1 : 10(SK-MEL-2) 또는 1 : 20(U87MG, T98G) 비율이 되도록 100 ㎕/웰씩 넣어 주었다.
실시예 4.5. IncuCyteS3를 이용한 실시간 세포 영상 분석
37℃의 CO2 인큐베이터에서 2일 동안 배양하면서 IncuCyteS3를 이용하여 10× 배율에서 2시간 간격으로 bright field, red fluorescence를 측정하였다. 측정 결과, GPNMB를 발현하는 3종의 암세포들에 대한 상기 이중특이적 항체의 세포 사멸 효과가 용량 의존적으로 나타나는 것을 확인하였다(도 4). 반면, Irrelevant Ab와 A15 항체를 연결한 이중특이적 항체(Irerelevant/A15)는 세포 사멸을 유도하지 않았다. 한편, 상기 GPNMB(서열번호 35)/A15(서열번호 36)와 유사한 세포 결합능을 보인 타사 항체와 A15(서열번호 36)를 가지고 이중특이적 항체를 만들어 세포 사멸 효과를 확인한 결과, 상기 GPNMB 클론에 비해 효능이 떨어짐을 확인하였다. 이를 바탕으로 상기 GPNMB 항체(서열번호 35)가 T 세포 유도 이중특이적 항체로써 유효한 에피토프를 인지한다고 보여진다.
실시예 5. 이중특이적 항체에 의한 T 세포 활성 측정
실시예 1.에 따라 제조된 이중특이적 항체의 T 세포 활성화 정도를 분석하기 위해, GPNMB이 과발현되는 3가지 암세포주(SK MEL2, U87MG 및 T98G)에 IL2-luc2P Jurkat 세포주(Promega)을 이용하여 T 세포 활성능을 분석하였다.
구체적으로, GPNMB를 발현하는 SK MEL2, U87MG 및 T98G 세포를 각각 96-웰 플레이트에 웰당 3Х104 세포로 100 ㎕ 배양 배지(Culture Medium)를 이용해 깔아주고, 37℃, 5% CO2 가습 인큐베이터(humidified incubator)에서 18시간 동안 배양하여 타겟 세포주를 준비하였다. 37℃ 수조에서 2분간 GloResponseTM Frozen Thaw and Use(FTU) IL-2-luc2P Jurkat 이펙터 세포를 녹이고, 15 ㎖ 코니컬 원심분리 튜브(conical centrifuge tube)에 4 ㎖ pre-warmed Assay Medium(10% FBS가 포함된 RPMI 배지)을 넣은 후, 녹여 놓은 이펙터 세포 1 ㎖을 첨가해 천천히 섞어주어 Effector 세포주를 준비하였다. 다음으로, 타겟 세포가 깔려있는 96-웰 플레이트에서 배지 75 ㎕를 제거하고, FTU IL2-Luc2P Jurkat 세포를 웰당 1Х105 세포가 되도록 25 ㎕씩 플레이트에 첨가하였다.
항체는 10 nM에서부터 1/3씩 희석하여 3X 도즈(dose)를 10 포인트(points) 만들어 준비하였다. 그 다음, 앞서 준비한 FTU IL2-Luc2P Jurkat 세포가 포함된 96-웰 플레이트에 준비된 10개 농도의 항체를 1X 도즈(dose)가 되도록 25 ㎕씩 넣어주었다. 37℃, 5% CO2 가습 인큐베이터(humidified incubator)에서 5시간 동안 배양한 후에 인큐베이터에서 꺼내 실온에 맞게 10~15분간 방치하였다. 이후, Bio-Glo쪠 시약을 웰당 75 ㎕씩 넣어주고 5분간 방치한 뒤, GloMax쪠Multi 및 멀티웰 플레이트 리더를 사용하여 측정하였다. 측정 결과, 3종의 암세포에서 모두 상기 이중특이적 항체에 의한 T 세포 활성화를 확인할 수 있었고, 항체의 CD3에 대한 친화도가 감소함에 따라 EC50값이 증가함을 관찰하였다. Irrelevant Ab와 Hu38을 이용하여 제작한 이중특이적 항체는 T 세포 활성을 유도하지 않았다(도 5).

Claims (27)

  1. GPNMB에 특이적으로 결합하는 제1 도메인 및 CD3에 특이적으로 결합하는 제2 도메인을 포함하는 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  2. 제1항에 있어서,
    상기 제1 도메인은
    서열번호 1, 7, 8, 9, 10 또는 11의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR1; 서열번호 2의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR2; 서열번호 3의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR3을 포함하는 중쇄 가변 영역(VH); 및
    서열번호 4의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR1; 서열번호 5 또는 12의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR2; 서열번호 6의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR3을 포함하는 경쇄 가변 영역(VL)을 포함하는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  3. 제2항에 있어서,
    상기 제1 도메인은 경쇄 가변 영역과 중쇄 가변 영역이 링커를 통해 연결된 가변 영역을 가지는 것인, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  4. 제3항에 있어서,
    상기 제1 도메인의 가변 영역은 서열번호 19 내지 25로 이루어진 군에서 선택되는 어느 하나의 아미노산 서열을 가지는 것인, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  5. 제1항에 있어서,
    상기 제2 도메인은
    서열번호 13의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR1; 서열번호 14의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR2; 서열번호 15의 아미노산 서열로 표시되는 H-CDR3을 포함하는 중쇄 가변 영역(VH); 및
    서열번호 16의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR1; 서열번호 17의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR2; 서열번호 18의 아미노산 서열로 표시되는 L-CDR3을 포함하는 경쇄 가변 영역(VL)을 포함하는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  6. 제5항에 있어서,
    상기 제2 도메인은 경쇄 가변 영역과 중쇄 가변 영역이 링커를 통해 연결된 가변 영역을 가지는 것인, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  7. 제6항에 있어서,
    상기 제2 도메인의 가변 영역은 서열번호 49 또는 서열번호 51의 아미노산 서열을 가지는 것인, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  8. 제1항에 있어서,
    상기 제1 도메인은 Fc 영역을 더 포함하는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  9. 제1항에 있어서,
    상기 제2 도메인은 Fc 영역을 더 포함하는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  10. 제8항 또는 제9항에 있어서,
    상기 Fc 영역은 IgG1, IgG2, IgG3 또는 IgG4의 중쇄 불변 영역(CH)에서 유래된 것인, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  11. 제8항 또는 제9항에 있어서,
    상기 제1 도메인 및 제2 도메인의 Fc 영역 중 어느 하나는 놉(knob) 구조를 갖고, 다른 하나는 홀(hole) 구조를 갖는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  12. 제8항에 있어서,
    상기 제1 도메인은 서열번호 47 또는 48의 아미노산 서열로 표시되는 Fc 영역을 포함하는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  13. 제9항에 있어서,
    상기 제2 도메인은 서열번호 48 또는 47의 아미노산 서열로 표시되는 Fc 영역을 포함하는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  14. 제1항에 있어서,
    상기 제1 도메인은 서열번호 34 또는 35의 아미노산 서열로 표시되는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  15. 제1항에 있어서,
    상기 제2 도메인은 서열번호 36, 40 또는 41의 아미노산 서열로 표시되는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  16. 제1항에 있어서,
    상기 이중특이적 항체는 T 세포 및 GPNMB 발현 암세포에 특이적으로 결합하는, 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체.
  17. 제1항의 제1 도메인의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드.
  18. 제1항의 제2 도메인의 아미노산 서열을 코딩하는 폴리뉴클레오티드.
  19. 제17항에 따른 폴리뉴클레오티드가 적재된 발현벡터.
  20. 제18항에 따른 폴리뉴클레오티드가 적재된 발현벡터.
  21. 제19항의 발현벡터로 형질전환된 숙주세포.
  22. 제20항의 발현벡터로 형질전환된 숙주세포.
  23. 제21항 또는 제22항에 따른 숙주세포를 배양하는 단계; 및
    항-GPNMB/항-CD3 항체를 정제하는 단계를 포함하는 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체의 제조방법.
  24. GPNMB에 특이적으로 결합하는 제1 도메인 및 CD3에 특이적으로 결합하는 제2 도메인을 포함하는 항-GPNMB/항-CD3 이중특이적 항체를 포함하는 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
  25. 제24항에 있어서,
    상기 암은 대장암, 폐암, 뇌암, 췌장암, 난소암, 유방암, 전립선암, 간암, 갑상선암, 두경부암, 위암, 방광암, 비호지킨 림프종암, 피부암, 흑색종, 백혈병, 신경모세포종 및 아교모세포종으로 이루어진 군으로부터 선택되는 하나 이상인, 암 예방 또는 치료용 약학적 조성물.
  26. 제24항에 따른 약학적 조성물을 개체에 투여하여 암을 예방 또는 치료하는 방법.
  27. 암 예방 또는 치료를 위한 약제의 제조에 사용하기 위한 제24항에 따른 약학적 조성물의 용도.
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