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WO2012118176A1 - フィブリノゲンを産生するトランスジェニックカイコ - Google Patents

フィブリノゲンを産生するトランスジェニックカイコ Download PDF

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Publication number
WO2012118176A1
WO2012118176A1 PCT/JP2012/055366 JP2012055366W WO2012118176A1 WO 2012118176 A1 WO2012118176 A1 WO 2012118176A1 JP 2012055366 W JP2012055366 W JP 2012055366W WO 2012118176 A1 WO2012118176 A1 WO 2012118176A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
silkworm
fibrinogen
gene
chain
promoter
Prior art date
Application number
PCT/JP2012/055366
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
哲 関口
学 高久
冨田　正浩
Original Assignee
日本製粉株式会社
株式会社 免疫生物研究所
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by 日本製粉株式会社, 株式会社 免疫生物研究所 filed Critical 日本製粉株式会社
Priority to EP12752986.5A priority Critical patent/EP2682464A4/en
Priority to US14/002,430 priority patent/US9447167B2/en
Publication of WO2012118176A1 publication Critical patent/WO2012118176A1/ja

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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K14/00—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/745—Blood coagulation or fibrinolysis factors
    • C07K14/75—Fibrinogen
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K67/00—Rearing or breeding animals, not otherwise provided for; New or modified breeds of animals
    • A01K67/30—Rearing or breeding invertebrates
    • A01K67/34—Insects
    • A01K67/35—Silkworms
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2217/00—Genetically modified animals
    • A01K2217/05—Animals comprising random inserted nucleic acids (transgenic)
    • A01K2217/052—Animals comprising random inserted nucleic acids (transgenic) inducing gain of function
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2227/00—Animals characterised by species
    • A01K2227/70—Invertebrates
    • A01K2227/706—Insects, e.g. Drosophila melanogaster, medfly
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A01—AGRICULTURE; FORESTRY; ANIMAL HUSBANDRY; HUNTING; TRAPPING; FISHING
    • A01K—ANIMAL HUSBANDRY; AVICULTURE; APICULTURE; PISCICULTURE; FISHING; REARING OR BREEDING ANIMALS, NOT OTHERWISE PROVIDED FOR; NEW BREEDS OF ANIMALS
    • A01K2267/00—Animals characterised by purpose
    • A01K2267/01—Animal expressing industrially exogenous proteins

Definitions

  • the present invention relates to a transgenic silkworm that produces fibrinogen having coagulation activity in a silk thread, a method for producing the silkworm, and a method for producing fibrinogen.
  • Fibrinogen is a kind of plasma protein present in plasma and is a glycoprotein having a molecular weight of 340 kDa.
  • the three chains of A ⁇ chain, B ⁇ chain and ⁇ chain are linked to each other by a disulfide bond, and this has a hexamer molecular structure of (A ⁇ -B ⁇ - ⁇ ) 2 which forms a dimer.
  • the A ⁇ chain consists of 67 kDa, 610 amino acid residues, and has no sugar chain.
  • the B ⁇ chain consists of 56 kDa and 461 amino acid residues, and Asn at position 364 has a sugar chain.
  • the ⁇ chain consists of 48 kDa and 411 amino acid residues, and Asn at position 52 has a sugar chain.
  • Fibrinogen is involved in blood clotting. Fibrinogen is cleaved in vivo by thrombin to cleave A ⁇ chain and B ⁇ chain, and fibrinopeptide A and fibrinopeptide B are removed and converted into ( ⁇ - ⁇ - ⁇ ) 2 (fibrino monomer). This fibrino monomer polymerizes in the presence of Ca 2+ to form a fibrin polymer. Further, when blood coagulation factor XIII is activated by thrombin, a peptide bond is formed between fibrin polymers due to its transglutaminase activity, resulting in strong cross-linked fibrin.
  • Fibrinogen currently used in the medical field is produced by separation and purification from human plasma. Since human plasma is used as a raw material, it is next to the risk of virus contamination, and steps such as inactivation treatment of infectious sources are essential. In addition, supply of human plasma as a raw material depends on blood donation, and it is not always easy to stably supply blood plasma.
  • Patent Document 1 and Non-Patent Document 1 disclose a method for producing recombinant fibrinogen using Pichia yeast. In this method, fibrinogen secreted into a culture solution is decomposed by a protease and efficiently. Is not a good production method.
  • Patent Documents 2 and 3 disclose methods for producing recombinant fibrinogen using animal cultured cells. However, for commercial production, large-scale equipment for cell culture, control of culture density, etc. , Cost and hassle. Moreover, since it is an animal cell, there exists a possibility that an animal origin substance and an infectious virus may be mixed, and will have the same problem as the present method manufactured from human blood.
  • JP 2004-16055 A Japanese Patent No. 4573775 Special table 2009-528843
  • an object of the present invention is to provide a novel means for enabling mass production of highly safe fibrinogen at a low cost.
  • the present inventors have conceived that fibrinogen is produced using a known recombinant protein production technique using silkworms, and the genes for fibrinogen A ⁇ chain, B ⁇ chain and ⁇ chain are expressed in silkworm silk gland. An attempt was made to recover fibrinogen from the straw. A silkworm expressing B ⁇ chain and a silkworm expressing A ⁇ chain and ⁇ chain were produced respectively, and an attempt was made to produce a silkworm expressing three chains by mating. I could not confirm. However, when this B ⁇ chain-expressing silkworm was crossed with an A ⁇ chain / ⁇ chain-expressing silkworm, fibrinogen having coagulation activity was successfully secreted into the silk thread, and further, there were conditions under which fibrinogen could be efficiently recovered from the silk thread. The present invention was completed.
  • the present invention provides a transgenic silkworm that expresses fibrinogen subunits A ⁇ chain, B ⁇ chain, and ⁇ chain in silk gland cells and produces fibrinogen having coagulation activity in the silk thread.
  • the present invention also provides silkworm cocoons containing fibrinogen having coagulation activity, which are produced by the transgenic silkworm of the present invention.
  • this invention provides the manufacturing method of a fibrinogen including collect
  • the present invention introduces a subunit A ⁇ gene, B ⁇ gene and ⁇ gene of fibrinogen into silkworms in a form operably linked to a promoter that functions in silk gland cells, and in the silk gland cells, A ⁇ chain, B ⁇ chain and A method for producing a transgenic silkworm that produces fibrinogen having coagulation activity in silkworms, comprising selecting a silkworm that expresses a ⁇ chain.
  • a transgenic silkworm that secretes fibrinogen having coagulation activity into the silk thread is provided for the first time.
  • fibrinogen is secreted into the sericin layer which is relatively soluble in water in the silk thread, which is advantageous for maintaining the activity and recovering fibrinogen. It is.
  • Silkworms are organisms with extremely high protein synthesis ability and are easy to breed. Unlike the production of fibrinogen from blood material collected by blood donation, the risk of virus contamination can be eliminated. According to the present invention, highly safe fibrinogen can be mass-produced at low cost.
  • FIG. 2 is a construction diagram of a vector used for producing a B ⁇ -introduced silkworm in an example.
  • FIG. 3 is a construction diagram of a vector used for producing A ⁇ / ⁇ -introduced silkworms in Examples.
  • FIG. 3 is a construction diagram of a vector used to produce A ⁇ / ⁇ -introduced silkworms in Examples (continuation of FIG. 2).
  • An example of the results of detecting each subunit protein in the silk thread by Western blotting for B ⁇ -introduced silkworms and A ⁇ / ⁇ -introduced silkworms produced in the examples is shown.
  • the transgenic silkworm of the present invention expresses three subunits of fibrinogen A ⁇ chain, B ⁇ chain and ⁇ chain in silk gland cells.
  • the silk gland is an organ that synthesizes and secretes silk thread. When a recombinant protein is expressed in the silk gland cells, it is secreted together with the silk thread and accumulated in the cocoon.
  • the silk gland is divided into three parts, an anterior part, a middle part, and a posterior part, and fibroin is secreted from the rear part and sericin is secreted from the middle part. Fibroin forms the center of the silk thread, and sericin covers it.
  • the transgenic silkworm of the present invention is also preferably one that expresses three subunit genes in the middle silk gland.
  • the amino acid sequence of human fibrinogen and the base sequence encoding it are known, and are registered in GenBank with accession numbers such as NM_021871 (A ⁇ chain), NM_005141 (B ⁇ chain), NM_000509 ( ⁇ chain), and the like. These known sequences are represented by SEQ ID Nos. 1 and 2 (A ⁇ chain cDNA sequence and amino acid sequence), SEQ ID Nos. 5 and 6 (B ⁇ chain cDNA sequence and amino acid sequence), SEQ ID Nos. 9 and 10 ( ⁇ chain sequences). cDNA sequence and amino acid sequence).
  • a ⁇ , B ⁇ , and ⁇ genes to be incorporated into silkworm transformation vectors are easily amplified from human cDNA libraries by conventional PCR by designing appropriate primers based on the known sequence information described in the sequence listing of this application. Can be obtained.
  • each subunit When introducing the fibrinogen subunit gene into silkworms, it is preferable to replace the original signal peptide region of each subunit with the signal peptide region of human calreticulin. Since the signal peptide of human calreticulin functions well in the silkworm middle silk gland cells, it is advantageous for efficiently secreting recombinant fibrinogen into the silk thread.
  • the cDNA sequence and amino acid sequence of each subunit in which the signal peptide was replaced with the signal peptide of human calreticulin are SEQ ID NOs: 3, 4 (A ⁇ chain), SEQ ID NOs: 7, 8 (B ⁇ chain), SEQ ID NOS: 11, 12 ( (gamma chain) respectively.
  • SEQ ID NO: 3 64 nt to 111 nt in SEQ ID NO: 3 is a region encoding a human calreticulin signal peptide.
  • the nucleotide sequences shown in SEQ ID NOs: 3, 7, and 11 include sequences for incorporation into vectors (restriction enzyme recognition sites and the like), and BmNPV polyhedrin 5′-UTR added for the purpose of promoting translation (11 nt in SEQ ID NO: 3 ⁇ 60nt).
  • sequence modification can be easily performed by PCR using a primer having a desired additional sequence. The specific procedure is as detailed in the examples below.
  • a procedure for introducing three subunit genes into a silkworm 3 genes are introduced simultaneously, and a silkworm introduced with any one of the 3 genes and a silkworm introduced with the remaining 2 genes simultaneously are crossed. Procedures such as sequentially mating silkworms that have been introduced.
  • a plurality of genes When a plurality of genes are introduced simultaneously, a plurality of genes may be incorporated on a single vector, or a plurality of vectors incorporating one gene at a time may be introduced simultaneously into silkworms.
  • a vector incorporating only the B ⁇ gene and a vector incorporating both the A ⁇ gene and the ⁇ gene are constructed, and a B ⁇ -introduced silkworm and an A ⁇ / ⁇ -introduced silkworm are obtained and mated with each other.
  • / B ⁇ / ⁇ -introduced silkworm has been obtained, the method for introducing 3 genes is not limited thereto.
  • the A ⁇ , B ⁇ , and ⁇ genes may be introduced into the silkworm in a state in which the fibrinogen subunit is functionally linked to a promoter that functions in the silk gland cells.
  • “functionally linked” means that a gene sequence is linked downstream so as to be controlled by the promoter.
  • the promoter that functions in the silk gland cells may be any promoter that initiates downstream gene expression in the silk gland cells, and may function in other tissues or cells. A promoter that functions specifically is preferred.
  • promoters that function in the middle silk gland include sericin genes (such as sericin 1 gene and sericin 2 gene), and preferred examples of promoters that function in the posterior silk gland include fibroin heavy chain gene and fibroin.
  • the promoter include, but are not limited to, a light chain gene and a fibrohexamelin gene.
  • a promoter that functions in the middle silk gland such as a sericin gene promoter is preferably used.
  • the three subunit genes are preferably introduced in combination with an enhancer.
  • An enhancer which is a cis element for transcriptional regulation, may be present in the vicinity of the promoter and subunit genes, and may be upstream or downstream, but is usually arranged upstream of the promoter.
  • transcription of a plurality of neighboring genes can be promoted by one enhancer, for example, only one enhancer may be combined for two sets of promoter + subunit genes.
  • one enhancer is inserted for two subunit genes.
  • the enhancer is not particularly limited as long as it can enhance the transcription activity of the adopted promoter, and those skilled in the art preferably evaluate the effect of enhancing the transcription activity of the enhancer using a transient expression system. You can select an enhancer.
  • a preferred specific example of an enhancer that can be used in the present invention is a homologous region of baculovirus.
  • hr3 derived from BmNPV can be preferably used (see Japanese Patent No. 4271122).
  • the sequence of baculovirus-derived enhancers such as hr3 is known (GenBank NC_001962, NC_001623, etc.), and is also used in commercially available expression vectors for insect cells. Therefore, PCR is appropriately performed from a baculovirus genome or a commercially available vector. Amplified and readily available.
  • the three subunit genes are preferably introduced in combination with a transactivator.
  • a transactivator is a factor that activates gene transcription by acting directly or indirectly on a promoter. It can be inserted into the same vector as the subunit gene and introduced simultaneously, or can be introduced into silkworm separately from the subunit gene.
  • the transactivator gene may be inserted into a vector separate from the vector containing the subunit gene and introduced into a silkworm together with the vector containing the subunit gene, or three subunit genes may be introduced first.
  • the introduced A ⁇ / B ⁇ / ⁇ -introduced silkworm may be prepared, and the transactivator gene may be introduced by crossing with a transactivator-expressing silkworm separately produced by a genetic engineering technique. Any of these embodiments is encompassed by “introducing a subunit gene in combination with a transactivator”.
  • the transactivator is not particularly limited as long as it can enhance the effect on the transcription of the promoter to be adopted (and the enhancer to be adopted if it is a transactivator that acts on an enhancer).
  • a preferable transactivator can be selected by appropriately evaluating the activity using a sex expression system.
  • Preferable specific examples of transactivator that can be used in the present invention include baculovirus-derived transcription factor IE1 (see Japanese Patent No.
  • IE1 gene sequence is also known (GenBank AY048770, M16820, etc.) and is also used in commercially available expression vectors for insect cells, etc., so it can be easily obtained by appropriate PCR amplification from baculovirus genomes or commercially available vectors. can do.
  • IE1-expressing silkworm lines are known (FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009), Biotechnol Bioeng 106, 860-870 (2010)).
  • both enhancer and transactivator are introduced in combination with the fibrinogen subunit gene.
  • the IE1 gene is introduced into an A ⁇ / B ⁇ / ⁇ -introduced silkworm (using hr3 as an enhancer)
  • the weight of the cocoon decreases according to the expression level of IE1
  • three fibrinogen subunits are used. Is greatly increased, and the content in the silk thread is greatly increased. As a result, the production efficiency of fibrinogen can be further improved.
  • “introduced in combination” means that an enhancer or a transactivator is introduced into a silkworm so as to contribute to increased expression of a fibrinogen subunit gene in a silk gland cell.
  • an enhancer is introduced in combination with a subunit gene
  • the enhancer is introduced so that it is present in the vicinity of the promoter and subunit gene, and is usually incorporated in the vicinity of the subunit gene on the gene introduction vector.
  • the subunit gene is introduced into the silkworm at the same time.
  • the transactivator does not need to be located in the vicinity of the subunit gene as described above. Therefore, in the case of “transactivator is introduced in combination with the subunit gene”, the above-described embodiment, For example, a mode in which a transactivator is newly introduced into a transgenic silkworm expressing three subunit genes is also included.
  • the silkworm transformation vector generally used at present is a vector using an insect-derived DNA-type transposon, and the most typical example is a plasmid vector using piggyBac.
  • the plasmid vector contains two inverted repeat sequences present at both ends of the transposon piggyBac, and a sequence to be integrated into the silkworm chromosome is inserted between the repeat sequences.
  • a silkworm having the region incorporated in the chromosome can be obtained.
  • a piggyBac vector can also be preferably used when producing the transgenic silkworm of the present invention.
  • the method used is not limited to this, and any known method may be used.
  • a marker gene that is integrated into the silkworm chromosome is usually inserted together with the subunit gene for the convenience of selection. Since the expression of the transgene can be confirmed indirectly by confirming the expression of the marker gene in the silkworm individual (egg, larva or adult) into which the vector has been introduced, if a transformed silkworm is selected based on the expression of the marker gene Good.
  • the step of “selecting silkworms expressing A ⁇ chain, B ⁇ chain and ⁇ chain in silk gland cells” indirectly involves the expression of the subunit gene by the expression of the marker gene. It may be a step of selecting after confirming.
  • a marker that can be detected while utilizing silkworms regardless of chemical treatment or mechanical treatment is preferable.
  • a fluorescent protein can be preferably used.
  • Two types of transgenic silkworms may be created using two types of fluorescent protein genes. For example, when a red fluorescent protein is used as one marker and a green fluorescent protein is used as the other marker, yellow fluorescence in which red and green are combined can be observed from silkworms into which both have been introduced by mating. As a result, silkworms with 3 genes introduced can be selected.
  • the vector construction diagrams shown in FIGS. 1 to 3 are vectors used for producing transgenic silkworms in the following examples.
  • the pMSG-1.1R and pMSG1.1MG used are known vectors for secreting the desired recombinant protein into the silkworm sericin layer (J Biosci Bioeng 105, 595-603 (2008), FEBS Journal 276). , 5806-5820 (2009)).
  • These vectors include an enhancer hr3 and a sericin 1 promoter Pser, and an NruI site for inserting a foreign gene cDNA exists between Pser and the silkworm fibroin L chain poly A addition signal FLpA (FIGS. 1 and 2). 2).
  • 3 is a modified version of pMSG1.1MG so that two subunit genes can be introduced.
  • the second subunit gene is inserted into the Eco47III site located between the second Pser and FLpA. It is a site to do.
  • a sequence encoding a fluorescent protein (DsRed, GFP) is functionally linked downstream of the promoter 3xP3.
  • 3xP3 is a promoter that functions in the eye and nervous system, and transgenic silkworms can be easily selected based on the presence or absence of fluorescence from these tissues.
  • the vector thus constructed can be microinjected into a silkworm egg together with a transposase expression helper plasmid by the method specifically described in the Examples below.
  • the helper plasmid to be used is not particularly limited as long as it can express transposase from the plasmid in silkworm eggs, and a known one such as pHA3PIG (Nat. Biotechnol. 18, 81-84 (2000)) used in the following examples is used. it can.
  • the vector and helper plasmid are usually mixed at a ratio of about 1: 1 and used for injection.
  • a buffer for injection for example, a buffer containing 0.5 mM phosphate buffer pH 7.0, 5 mM KCl, etc.
  • concentration of the vector and helper plasmid is about 200 ⁇ g / ml each. It can be injected into silkworm eggs at 8 hours before blastoderm at a liquid volume of about 15-20 nl / egg.
  • F1 is obtained by mating F0 generations hatched from the injected eggs with each other or with wild strains. By irradiating excitation light to eggs before F1 hatching or larvae after hatching, the fluorescence of the marker fluorescent protein can be confirmed in the eyes and nervous system in the egg or larvae into which the gene has been introduced. . Finally, the integration of the subunit gene into the silkworm genome may be confirmed by PCR, Southern blotting or the like. As appropriate, the expression level of the subunit gene in the silk gland cells or the secretion amount of the subunit protein into the silk thread may be confirmed by a conventional method, and an individual with a sufficiently high protein expression level may be further selected.
  • the transgenic silkworm of the present invention into which three genes have been introduced can be obtained by sequentially crossing these three lines.
  • the transgenic silkworm of the present invention into which three genes have been introduced can be obtained by mating the two.
  • the transgenic silkworm cocoons of the present invention contain active fibrinogen in which three subunits are hexamers.
  • the formation of a hexamer can be confirmed by size by electrophoresis in a non-reducing state.
  • fibrinogen By collecting fibrinogen from this cocoon, a large amount of safe fibrinogen can be obtained without fear of contamination with viruses that can infect humans.
  • the subunit gene When the subunit gene is expressed in the posterior silk gland and fibrinogen is secreted into the fibroin layer of the silk thread, the fibrinogen can be recovered by dissolving the fibroin.
  • a chaotropic salt such as lithium thiocyanate, guanidine thiocyanate or lithium bromide, or a mixed solution of calcium chloride and ethanol is usually used.
  • the subunit gene is expressed in the middle silk gland and fibrinogen is secreted into the sericin layer of the silk thread, the sericin layer is relatively soluble in water, so fibrinogen can be easily extracted by immersing the silk thread in an aqueous buffer solution. .
  • the kite When extracting from the kite string, the kite may be immersed in the extract as it is, or may be soaked after appropriately cutting, pulverizing, or the like.
  • Fibrinogen secreted into the sericin layer can be extracted and recovered by simply immersing it in an aqueous buffer, but particularly preferable extraction conditions include 1 to 4 M urea, 25 to 100 mM Tris. In a buffer containing HCl-pH (pH 6.5-8.5), 0.01-2.0% surfactant, 0-0.25M NaCl, at a low temperature of about 4-10 ° C. for about 10-24 hours, preferably 12 The condition is that the extraction is performed for about 18 hours. According to this condition, fibrinogen can be efficiently extracted while suppressing elution of sericin and in an advantageous state for the subsequent purification step.
  • the urea concentration is more preferably 1 to 3M.
  • polyoxyethylene octylphenyl ether (trade name: Triton® X-100), polyethylene glycol-p-octylphenyl ether (trade name: NP-40), 3-[(3-colamidopropyl) dimethylammonio ] -1-Propanesulfonate (trade name: CHAPS) can be used, and two or more kinds may be used in combination.
  • the NaCl concentration of the buffer solution is preferably low, and may be, for example, 0.1M or less, or 0.01M or less.
  • the fibrinogen eluted in the buffer solution can be appropriately subjected to ultrafiltration and buffer exchange, and the precipitate can be removed as necessary to obtain a concentrated fibrinogen solution.
  • fibrinogen recovered from the silkworm of the transgenic silkworm of the present invention when mixed with thrombin and allowed to react at 37 ° C. for 1 hour, as described in the following examples, increases the viscosity of the reaction solution. It has been confirmed that it has clotting activity.
  • a ⁇ chain is sometimes simply referred to as “ ⁇ chain”
  • B ⁇ chain is simply referred to as “ ⁇ chain”.
  • a ⁇ chain cDNA fragment (hereinafter referred to as Alpha) was amplified from a cDNA library under the following reaction conditions.
  • the first PCR product was electrophoresed on an agarose gel, and a band presumed to be Alpha was collected from the gel and purified, and used as a template for the second PCR.
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Alpha was recovered from the gel, purified, and inserted into the BamHI and HindIII sites of pBluescriptII SK +. The nucleotide sequence was confirmed and designated pSK-alpha.
  • the reverse primer Fibrinogen Alpha C1 was set at the position of the mature type so that the C-terminal 15 amino acids were removed as in the mature type.
  • the first PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Alpha was recovered from the gel and purified, and used as a template for the second PCR.
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Alpha was recovered from the gel and purified. Using Ex Taq, A was added to the 3 ′ end of the second PCR purification product, and ligation was performed to pCR2.1-TOPO. The nucleotide sequence was confirmed and designated pCR-ATGalpha.
  • UTR sequence was added as follows.
  • the first PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Alpha was collected from the gel and purified, and used as a template for the second PCR.
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Alpha was recovered from the gel and purified.
  • This purified fragment was ligated to pENTR / D-TOPO, which is a vector for integration into a silkworm expression vector.
  • the nucleotide sequence was confirmed and designated pENTR-UTRalpha.
  • Beta B ⁇ chain cDNA fragment
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Beta was recovered from the gel and purified. It was inserted into EcoRI and XhoI sites of pBluescriptII SK +. The nucleotide sequence was confirmed and designated pSK-beta.
  • the signal sequence of Beta was modified.
  • the first PCR product was electrophoresed on an agarose gel, and a band presumed to be Beta was recovered from the gel and purified, and used as a template for the second PCR.
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Beta was recovered from the gel.
  • A was added to the 3 ′ end of the second PCR purification product, and ligation was performed to pCR2.1-TOPO.
  • the nucleotide sequence was confirmed and designated pCR-ATGbetat.
  • UTR sequence was added as follows.
  • the first PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Beta was recovered from the gel and purified, and used as a template for the second PCR.
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, a band presumed to be Beta was collected from the gel, purified, and ligated to pENTR / D-TOPO, which is a vector for incorporation into a silkworm expression vector.
  • the nucleotide sequence was confirmed and designated pENTR-UTRbeta.
  • a ⁇ -chain cDNA fragment (hereinafter referred to as Gamma) was amplified from a cDNA library under the following reaction conditions.
  • the first PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Gamma was recovered from the gel and purified, and used as a template for the second PCR.
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Gamma was recovered from the gel, purified, and inserted into the EcoRI and HindIII sites of pBluescriptII SK +. The nucleotide sequence was confirmed and designated pSK-gamma.
  • the signal sequence of Gamma was modified.
  • the first PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Gamma was recovered from the gel and purified, and used as a template for the second PCR.
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Gamma was recovered from the gel and purified.
  • A was added to the 3 ′ end of the second PCR purification product, and ligation was performed to pCR2.1-TOPO.
  • the nucleotide sequence was confirmed and designated as pCR-ATGgamma.
  • UTR sequence was added as follows.
  • the first PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, and a band presumed to be Gamma was recovered from the gel and purified, and used as a template for the second PCR.
  • the second PCR product was subjected to agarose gel electrophoresis, a band presumed to be Gamma was recovered from the gel, purified, and ligated to pENTR / D-TOPO, which is a vector for incorporation into a silkworm expression vector.
  • the nucleotide sequence was confirmed and designated pENTR-UTRgamma.
  • B ⁇ chain expression vector Fibrinogen- ⁇ / pMSG1.1R (see Fig. 1) From pENTR-UTRbeta prepared above, the inserted gene was subcloned into pXINSECT-DEST38 using the GATEWAY system. Fibrinogen- ⁇ cDNA was excised from the obtained Fibrinogen- ⁇ / pXINSECT by SmaI digestion and inserted into the NruI site of a known silkworm transformation vector pMSG1.1R (J Biosci Bioeng 105, 595-603 (2008)). Fibrinogen- ⁇ / pMSG1.1R for transformation was completed (FIG. 1).
  • the pMSG1.1R vector is a vector that allows the inserted gene to be expressed in the middle silk gland by the sericin 1 gene promoter Pser1, which functions in the middle silk gland cells, and contains baculovirus-derived hr3 as an enhancer, and a transgene expression marker.
  • Pser1 sericin 1 gene promoter
  • baculovirus-derived hr3 as an enhancer
  • transgene expression marker As a red fluorescent protein gene DsRed controlled by a promoter 3xP3 that functions in the silkworm eye and nervous system.
  • the gene introduction vector pMSG3.1MG for expressing two kinds of genes is constructed as follows (FIG. 2).
  • PMSG1.1MG is obtained by replacing the transgene expression marker DsRed of pMSG1.1R used above with a green fluorescent protein gene hMGFP.
  • Insert DNA from pCR4-TOPO vector (PserFLpA / pCR4) inserted with sequences consisting of sericin 1 promoter, Eco47III restriction enzyme cleavage site, fibroin light chain poly A addition signal, by NotI and SpeI, vector-derived restriction enzyme sites
  • the excised insert DNA was blunt-ended.
  • pMSG1.1MG was digested with AscI (the AscI site is between the SV40 polyA addition signal and hr3), and then blunt-ended, and the blunt-ended insert DNA was inserted into the site. With the above operation, pMSG3.1MG was completed (Fig. 2).
  • Fibrinogen- ⁇ / pXINSECT was excised from Fibrinogen- ⁇ / pXINSECT by SmaI digestion and inserted into the NruI site of the pMSG3.1MG vector prepared above to obtain Fibrinogen- ⁇ / pMSG3.1MG.
  • Fibrinogen- ⁇ / pXINSECT was excised from Fibrinogen- ⁇ cDNA by SmaI digestion and inserted into the Eco47III site of Fibrinogen- ⁇ / pMSG3.1MG to complete Fibrinogen- ⁇ & ⁇ / pMSG3.1MG (FIG. 3).
  • This DNA solution was microinjected into a pre-blastoderm silkworm egg (Silkworm embryo) 2 to 8 hours after laying at a liquid volume of about 15 to 20 nl / egg, and the egg was incubated at 25 ° C. A total of 600 out of 3,032 injected eggs hatched. Reproductive adults obtained from this were mated to obtain 112 groups of F1 egg masses. F1 egg masses on the 5th to 6th day from the date of egg laying were observed with a fluorescent stereomicroscope, and eggs that could confirm marker gene expression, that is, red fluorescence from the eyes and nervous system, were selected. Seven groups of egg masses containing B ⁇ -expressing silkworm eggs were obtained. When these were hatched and reared, transgenic silkworms derived from multiple egg masses grew normally and became adults with reproductive ability. Each adult was crossed with a wild-type silkworm to obtain 6 B ⁇ -introduced silkworms.
  • IM1 silkworm is a silkworm in which IE1 is introduced under the control of sericin 1 promoter, and highly expresses transcription factor IE1 (Biotechnol-Bioeng 106, 860-870 (2010)).
  • the A ⁇ / B ⁇ / ⁇ -introduced silkworm produced above and IM1 silkworm are crossed to obtain A ⁇ / B ⁇ / ⁇ ⁇ IM silkworm, and silkworms of this silkworm are obtained, and the expression level of each subunit (each subunit in the silk thread) Content).
  • the expression level of fibrinogen increased significantly, but the weight of the straw decreased to about 30 to 40% (Table 10 and FIG. 7).
  • IE1 silkworm is a line with lower expression level of IE1 than the above IM1 silkworm (FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009)).
  • a ⁇ / B ⁇ / ⁇ ⁇ IE silkworm was obtained by crossing with IE1 silkworm, and silkworms of this silkworm were obtained, and the expression level of each subunit (content of each subunit in silk thread) and the weight of silkworm were examined. Decrease in cocoon weight could be avoided and the fibrinogen expression level was increased compared to A ⁇ / B ⁇ / ⁇ silkworm, but the fibrinogen expression level was lower than that of A ⁇ / B ⁇ / ⁇ ⁇ IM silkworm (Table 11 and FIG. 8).
  • the extraction conditions for fibrinogen were examined using silkworm cocoons introduced with A ⁇ / B ⁇ / ⁇ without transactivator.
  • the cocoon was cut and immersed in a buffer solution for extraction. Since extraction with PBS was difficult, examination was carried out as shown in FIG. 9 using buffers having various compositions containing NaCl and a surfactant.
  • conditions 8 in FIG. 9 (2M Urea, 50 mM Tris-HCl ( pH7.5), 1% Triton X-100, extraction temperature 4 °C, 16 hours) was considered the best.
  • fibrinogen extraction conditions were examined as shown in FIG. 10 (all extracted at 4 ° C. for 16 hours). Since the expression level of fibrinogen is higher than that of the previously studied A ⁇ / B ⁇ / ⁇ silkworm, it can be extracted efficiently even under milder conditions, and it was well extracted even when the Triton X-100 concentration was lowered to 0.1% .
  • the A ⁇ / B ⁇ / ⁇ ⁇ IM silkworm cocoons were extracted with 6M Urea, 50 mM Tris-HCl (pH 7.5) and electrophoresed under non-reducing conditions (without 2-mercaptoethanol). Although it was not a clear band due to its large molecular weight, it was considered that a hexamer was formed from its size (not shown).
  • IM sputum was extracted with 2M Urea, 50 mM Tris-HCl (pH 7.5), 0.1% Triton X-100 at 4 ° C. overnight.
  • the extract was concentrated from 15 ml to 400 ⁇ l by ultrafiltration (amicon ultra-15 10,000 NMWL, millipore). Subsequently, 15 ml of 100 mM Tris-HCl (pH 8.0), 200 mM NaCl, 500 nM CaCl 2 was added, and the mixture was again concentrated to 400 ⁇ l (buffer exchange). At this stage, some proteins became insoluble and precipitation was observed.

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Abstract

　安全性の高いフィブリノゲンを低コストで大量に生産可能にする新規な手段が開示されている。本発明のトランスジェニックカイコは、絹糸腺細胞内でフィブリノゲンのサブユニットAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖を発現し、凝固活性を有するフィブリノゲンを繭糸中に産生する。好ましくは、該トランスジェニックカイコは、中部絹糸腺細胞内で前記サブユニットを発現し、繭糸のセリシン層中にフィブリノゲンを産生する。本発明のトランスジェニックカイコの繭からフィブリノゲンを回収することで、安全性の高いフィブリノゲンを低コストで大量に生産できる。

Description

フィブリノゲンを産生するトランスジェニックカイコ
　本発明は、凝固活性を有するフィブリノゲンを繭糸中に産生するトランスジェニックカイコ、該カイコの製造方法、及びフィブリノゲンの製造方法に関する。
　フィブリノゲンは血漿中に存在する血漿タンパク質の一種であり、分子量340kDaの糖タンパク質である。Aα鎖、Bβ鎖及びγ鎖の３本鎖がジスルフィド結合により相互に結合し、これが２量体を形成した(Aα－Bβ－γ)２という６量体の分子構造を有する。Ａα鎖は６７ｋＤａ、６１０アミノ酸残基からなり、糖鎖を有しない。Ｂβ鎖は５６ｋＤａ、４６１アミノ酸残基よりなり、３６４位のＡｓｎが糖鎖を有する。γ鎖は４８ｋＤａ、４１１アミノ酸残基よりなり、５２位のＡｓｎが糖鎖を有する。
　フィブリノゲンは血液凝固に関わる。フィブリノゲンは生体内でトロンビンによりＡα鎖、Ｂβ鎖が各々切断され、フィブリノペプチドＡ、フィブリノペプチドＢが除去されて(α－β－γ)2へと変換される（フィブリノモノマー）。このフィブリノモノマーはＣａ２＋の存在下で重合してフィブリンポリマーを形成する。さらにトロンビンにより血液凝固第ＸＩＩＩ因子が活性化されると、そのトランスグルタミナーゼ活性によりフィブリンポリマー同士にペプチド結合が形成されて強固な交差架橋フィブリンになる。
　現在医療分野で用いられているフィブリノゲンは、ヒトの血漿より分離精製されて製造されている。ヒト血漿を原料にするため、ウイルス混入の危険性と隣り合わせであり、感染源の不活化処理等の工程が必須である。また、原料のヒト血漿の供給は献血に依存しており、常に安定供給することが必ずしも容易ではない。
　遺伝子組み換え技術を用いてフィブリノゲンを製造すれば、安全なフィブリノゲンを安定的に提供することができる。こうした試みは現在までにいくつか報告されているが、十分に効率的で満足できる手法は未だ提供されていない。例えば特許文献１及び非特許文献１には、ピキア酵母を用いて組換えフィブリノゲンを製造する方法が開示されているが、該方法では培養液中に分泌されたフィブリノゲンはプロテアーゼにより分解され、効率的な生産方法となっていない。特許文献２及び３には、動物培養細胞で組換えフィブリノゲンを製造する方法が開示されているが、商業的に製造するためには、細胞培養のための大規模な設備や培養密度のコントロールなど、コストや手間がかかる。また、動物細胞なので動物由来物質や感染性ウイルスが混入するおそれがあり、ヒト血液から製造する現在の方法と同様の問題点を抱えることになる。
特開２００４－１６０５５号公報 特許第４５７３７７５号公報 特表２００９－５２８８４３号公報
Protein Expression and Purification 59 (2008) 289-296
　従って、本願発明の目的は、安全性の高いフィブリノゲンを低コストで大量に生産可能にする新規な手段を提供することにある。
　本願発明者らは、カイコを用いた公知の組換えタンパク質生産技術を利用してフィブリノゲンを製造することに想到し、フィブリノゲンのAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖の遺伝子をカイコ絹糸腺で発現させて繭からフィブリノゲンを回収することを試みた。Bβ鎖を発現するカイコとAα鎖及びγ鎖を発現するカイコとをそれぞれ作製し、交配により３鎖を発現するカイコを作出しようと試みたが、Bβ鎖発現カイコで繭へのBβ鎖分泌を確認することができなかった。しかしながら、このBβ鎖発現カイコをAα鎖／γ鎖発現カイコと交配させたところ、繭糸中に凝固活性を有するフィブリノゲンを分泌させることに成功し、さらに、該繭糸から効率よくフィブリノゲンを回収できる条件を見出し、本願発明を完成した。
　すなわち、本発明は、絹糸腺細胞内でフィブリノゲンのサブユニットAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖を発現し、凝固活性を有するフィブリノゲンを繭糸中に産生するトランスジェニックカイコを提供する。また、本発明は、上記本発明のトランスジェニックカイコが生成する、凝固活性を有するフィブリノゲンを含有するカイコの繭を提供する。さらに、本発明は、上記本発明のトランスジェニックカイコの繭からフィブリノゲンを回収することを含む、フィブリノゲンの製造方法を提供する。さらに、本発明は、フィブリノゲンのサブユニットAα遺伝子、Bβ遺伝子及びγ遺伝子を、絹糸腺細胞内で機能するプロモーターと機能的に連結した形態でカイコに導入し、絹糸腺細胞内でAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖を発現するカイコを選抜することを含む、凝固活性を有するフィブリノゲンを繭糸中に産生するトランスジェニックカイコの作出方法を提供する。
　本発明により、凝固活性を有するフィブリノゲンを繭糸に分泌するトランスジェニックカイコが初めて提供された。特に、中部絹糸腺でAα、Bβ及びγ遺伝子を発現させれば、繭糸のうち水に比較的易溶のセリシン層にフィブリノゲンが分泌されるので、活性を維持してフィブリノゲンを回収するのに有利である。カイコはタンパク質合成能力が極めて高い生物であり、飼育も容易である。献血により収集した血液材料からフィブリノゲンを製造するのとは異なり、ウイルス混入の危険性も排除できる。本発明によれば、安全性の高いフィブリノゲンを低コストで大量生産することが可能になる。
実施例でBβ導入カイコを作出するために用いたベクターの構築図である。 実施例でAα／γ導入カイコを作出するために用いたベクターの構築図である。 実施例でAα／γ導入カイコを作出するために用いたベクターの構築図である（図２の続き）。 実施例で作出したBβ導入カイコとAα／γ導入カイコについて、繭糸中の各サブユニットタンパク質をウエスタンブロットにより検出した結果の一例を示す。 実施例で作出したBβ導入カイコについて、絹糸腺でのBβ鎖の発現をウエスタンブロットにより調べた結果の一例を示す。 実施例で作出したトランスジェニックカイコの繭糸中に含まれるタンパク質を電気泳動しCBB（クマシーブリリアントブルー）染色した結果を示す図である。 トランスアクチベーターIE1を導入したトランスジェニックカイコの繭ではフィブリノゲンの各サブユニットの蓄積量が増大していることを示す電気泳動像である。 トランスアクチベーターIE1の発現量の違いが各サブユニットの発現量（繭糸中の蓄積量）に及ぼす影響を表す電気泳動像である。 トランスアクチベーターIE1を導入していないトランスジェニックカイコの繭を用いて、繭糸からのフィブリノゲンの抽出条件を検討した結果を示す図である。 トランスアクチベーターIE1を導入したトランスジェニックカイコの繭を用いて、繭糸からのフィブリノゲンの抽出条件を検討した結果を示す図である。
　本発明のトランスジェニックカイコは、絹糸腺細胞内でフィブリノゲンの３つのサブユニットAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖を発現する。絹糸腺は絹糸を合成・分泌する器官であり、絹糸腺細胞内で組換えタンパク質を発現させれば絹糸と共に分泌され、繭に蓄積する。絹糸腺は前部、中部、後部の３部に分かれており、後部からフィブロインが、中部からセリシンが分泌される。フィブロインは絹糸の中心部を構成し、これの周囲をセリシンが覆う。後部絹糸腺でサブユニット遺伝子を発現させれば繭糸のフィブロイン層にフィブリノゲンが分泌され、中部絹糸腺でサブユニット遺伝子を発現させればセリシン層にフィブリノゲンが分泌される。セリシン層に分泌された組換えタンパク質は、繭糸を水や水性の緩衝液に浸漬するだけで容易に溶解するので、繭から活性を保持して回収することが容易である。本発明のトランスジェニックカイコも、中部絹糸腺で３つのサブユニット遺伝子を発現するものが好ましい。
　ヒトフィブリノゲンのアミノ酸配列及びこれをコードする塩基配列は公知であり、GenBankにも例えばNM_021871（Aα鎖）、NM_005141（Bβ鎖）、NM_000509（γ鎖）等のアクセッション番号で登録されている。これらの公知の配列を配列表の配列番号１、２（Aα鎖のcDNA配列及びアミノ酸配列）、配列番号５、６（Bβ鎖のcDNA配列及びアミノ酸配列）、配列番号９、１０（γ鎖のcDNA配列及びアミノ酸配列）にそれぞれ示す。カイコ形質転換用ベクターに組み込むべきAα、Bβ、γ遺伝子は、本願配列表にも記載する公知の配列情報に基づいて適宜プライマーを設計し、ヒトのcDNAライブラリーから常法のPCRにより容易に増幅して得ることができる。
　フィブリノゲンサブユニット遺伝子をカイコに導入する際には、各サブユニットが有する本来のシグナルペプチド領域をヒトカルレティキュリンのシグナルペプチド領域と置き換えて用いることが好ましい。ヒトカルレティキュリンのシグナルペプチドは、カイコ中部絹糸腺細胞内で良好に機能するので、繭糸中に組換えフィブリノゲンを効率よく分泌させるのに有利である。シグナルペプチドをヒトカルレティキュリンのシグナルペプチドに置き換えた各サブユニットのcDNA配列及びアミノ酸配列を配列番号３、４（Aα鎖）、配列番号７、８（Bβ鎖）、配列番号１１、１２（γ鎖）にそれぞれ示す。配列番号３中の64nt～111ntがヒトカルレティキュリンのシグナルペプチドをコードする領域である。なお、配列番号３、７、１１に示す塩基配列は、ベクターに組み込むための配列（制限酵素認識部位など）や、翻訳を促進する目的で付加したBmNPVポリヘドリン5'-UTR（配列番号3では11nt～60nt）を含んでいる。このような配列の修飾は、所望の付加配列を有するプライマーを用いたPCRにより容易に行うことができる。具体的な手順は下記実施例に詳述される通りである。
　３つのサブユニット遺伝子をカイコに導入する手順としては、３遺伝子を同時に導入する、３遺伝子のうちのいずれか１つを導入したカイコと残りの２遺伝子を同時に導入したカイコを交配する、１遺伝子を導入したカイコを順次交配する、などの手順が挙げられる。複数遺伝子を同時に導入する場合、単一のベクター上に複数の遺伝子を組み込んでもよいし、１遺伝子ずつ組み込んだ複数のベクターを同時にカイコに導入しても良い。下記実施例では、Bβ遺伝子のみを組み込んだベクターと、Aα遺伝子及びγ遺伝子の２つを組み込んだベクターを構築し、Bβ導入カイコとAα／γ導入カイコを得て両者を交配することにより、Aα／Bβ／γ導入カイコを取得しているが、３遺伝子の導入方法はこれに限定されるものではない。
　絹糸腺でフィブリノゲンサブユニットを発現させるためには、絹糸腺細胞内で機能するプロモーターと機能的に連結させた状態でAα、Bβ及びγ遺伝子をカイコに導入すればよい。ここで、「機能的に連結」とは、該プロモーターの支配を受けるようにその下流に遺伝子配列を連結することをいう。絹糸腺細胞内で機能するプロモーターは、絹糸腺細胞内で下流の遺伝子発現を開始させるものであればよく、他の組織・細胞内でも機能するものであっても良いが、目的とする絹糸腺細胞内で特異的に機能するプロモーターが好ましい。中部絹糸腺で機能するプロモーターの好ましい例としては、セリシン遺伝子（セリシン１遺伝子、セリシン２遺伝子など）を挙げることができ、後部絹糸腺で機能するプロモーターの好ましい例としては、フィブロイン重鎖遺伝子、フィブロイン軽鎖遺伝子、フィブロヘキサメリン遺伝子等のプロモーターを挙げることができるが、これらに限定されない。本発明では、フィブリノゲンサブユニット遺伝子を中部絹糸腺内で発現させることが好ましいので、セリシン遺伝子プロモーター等の中部絹糸腺で機能するプロモーターが好ましく用いられる。
　発現量を増大させる観点から、３つのサブユニット遺伝子はエンハンサーと組み合わせて導入することが好ましい。転写調節のシスエレメントであるエンハンサーは、プロモーター及びサブユニット遺伝子の近傍に存在すればよく、上流でも下流でもよいが、通常はプロモーターの上流に配置される。また、１つのエンハンサーで近傍の複数の遺伝子の転写を促進できるので、例えば２組のプロモーター＋サブユニット遺伝子に対し１つのエンハンサーのみを組み合わせても良い。例えば、図３に示す遺伝子導入用ベクターの具体例では、２つのサブユニット遺伝子に対し１つのエンハンサーが挿入されている。エンハンサーとしては、採用するプロモーターの転写活性を増強させることができるものであれば特に限定されず、当業者であれば一過性発現系を用いてエンハンサーの転写活性増強効果を適宜評価し、好ましいエンハンサーを選択することができる。本発明で使用できるエンハンサーの好ましい具体例としては、バキュロウイルスの相同領域（homologous region）を挙げることができ、特にBmNPV由来のhr3を好ましく用いることができる（特許第4271122号公報参照）。hr3等のバキュロウイルス由来エンハンサーは、配列が公知であり（GenBank NC_001962, NC_001623など）、また市販の昆虫細胞用発現ベクター等でも用いられているため、バキュロウイルスゲノムや市販のベクター等から適宜PCRにより増幅して容易に入手することができる。
　また、同様に発現量を増大させる観点から、３つのサブユニット遺伝子はトランスアクチベーターと組み合わせて導入することが好ましい。トランスアクチベーターは、プロモーターに直接又は間接的に作用して遺伝子の転写を活性化する因子である。サブユニット遺伝子と同一のベクター上に挿入して同時に導入することもできるし、またサブユニット遺伝子とは別個にカイコに導入することもできる。例えば、サブユニット遺伝子を含むベクターとは別個のベクターにトランスアクチベーター遺伝子を挿入し、これをサブユニット遺伝子を含むベクターと共にカイコに導入しても良いし、あるいは、先に３つのサブユニット遺伝子を導入したAα／Bβ／γ導入カイコを作製し、これに改めて遺伝子工学的手法により又は別途作出されたトランスアクチベーター発現カイコとの交配によりトランスアクチベーター遺伝子を導入しても良い。これらの態様のいずれもが、「サブユニット遺伝子をトランスアクチベーターと組み合わせて導入する」ことに包含される。トランスアクチベーターとしては、採用するプロモーター（及び、エンハンサーに作用するトランスアクチベーターであれば採用するエンハンサー）の転写に及ぼす作用を増強できるものであれば特に限定されず、当業者であれば一過性発現系を用いて適宜活性を評価して好ましいトランスアクチベーターを選択することができる。本発明で使用できるトランスアクチベーターの好ましい具体例としては、バキュロウイルス由来の転写因子IE1を挙げることができる（特許第4271122号公報参照）。トランスアクチベーターを遺伝子工学的手法によりカイコに導入する際には、フィブリノゲンのサブユニット遺伝子に用いたプロモーターと同じプロモーターを使用することができる。IE1遺伝子の配列も公知であり（GenBank AY048770, M16820など）、また市販の昆虫細胞用発現ベクター等でも用いられているため、バキュロウイルスゲノムや市販のベクター等から適宜PCRにより増幅して容易に入手することができる。また、下記実施例でも用いているように、IE1発現カイコ系統が公知である（FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009)、Biotechnol Bioeng 106, 860-870 (2010)）。
　より好ましくは、エンハンサーとトランスアクチベーターの両者がフィブリノゲンサブユニット遺伝子と組み合わせて導入される。下記実施例に記載される通り、Aα／Bβ／γ導入カイコ（エンハンサーとしてhr3を利用）にIE1遺伝子を導入すると、IE1の発現量に応じて繭の重量は減少するが、３つのフィブリノゲンサブユニットの発現量は大きく増大し、繭糸中含量も大きく上昇するので、結果としてフィブリノゲンの生産効率をさらに向上することができる。
　本発明において、「組み合わせて導入される」とは、エンハンサー又はトランスアクチベーターが、絹糸腺細胞内におけるフィブリノゲンサブユニット遺伝子の発現増大に寄与するようにカイコに導入されることをいう。エンハンサーがサブユニット遺伝子と組み合わせて導入される場合、エンハンサーは、プロモーター及びサブユニット遺伝子の近傍に存在するようにして導入され、通常は、遺伝子導入用ベクター上のサブユニット遺伝子の近傍に組み込まれて該サブユニット遺伝子と同時にカイコに導入される。トランスアクチベーターは、上述した通り、エンハンサーとは異なりサブユニット遺伝子の近傍に位置する必要はないため、「トランスアクチベーターがサブユニット遺伝子と組み合わせて導入される」といった場合には、上述した態様、例えば３つのサブユニット遺伝子を発現するトランスジェニックカイコに改めてトランスアクチベーターを導入するという態様も包含される。
　カイコに外来遺伝子を導入する手法自体は公知であり、カイコ形質転換用のベクターも種々のものが公知である（例えば、Nature Biotechnology. 21, 52-56, 2003、J Biosci Bioeng 105, 595-603 (2008)、FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009)、特開2002-306167号公報、特開2008-67612号公報等）。現在一般的に用いられるカイコ形質転換用ベクターは、昆虫由来のDNA型トランスポゾンを利用したベクターであり、最も代表的な例がpiggyBacを利用したプラスミドベクターである。該プラスミドベクターは、トランスポゾンpiggyBacの両末端に存在する２つの逆向き反復配列を含んでおり、カイコ染色体中に組み込みたい配列を該反復配列間に挿入する。これをトランスポゼース発現ヘルパープラスミドと共にカイコ卵に微量注入すると、トランスポゼースの働きで反復配列間の領域が転移するので、染色体中に該領域が組み込まれたカイコを得ることができる。本発明のトランスジェニックカイコを作製する際にも、このようなpiggyBacベクターを好ましく用いることができる。もっとも、使用する手法はこれに限定されるものではなく、公知のいかなる手法を用いても良い。
　カイコ形質転換用ベクターには、選抜の便宜のため、通常、サブユニット遺伝子と共にカイコ染色体に組み込まれるマーカー遺伝子が挿入されている。ベクターを導入したカイコ個体（卵、幼虫又は成虫）においてマーカー遺伝子の発現を確認することで、導入遺伝子の発現を間接的に確認できるので、マーカー遺伝子の発現に基づいて形質転換カイコを選抜すればよい。本発明のトランスジェニックカイコ作出方法における「絹糸腺細胞内でAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖を発現するカイコを選抜する」工程は、このような、マーカー遺伝子の発現によりサブユニット遺伝子の発現を間接的に確認して選抜する工程であり得る。
　マーカーとしては、化学的処理や機械的処理によらずカイコを生かしたまま検出可能なマーカーが好ましく、例えば蛍光タンパク質を好ましく用いることができる。下記実施例に記載されるように、3つのサブユニット遺伝子を2グループに分けて2種類のトランスジェニックカイコを作出し、これらを交配させて3遺伝子を導入したカイコを用いる場合、蛍光波長の異なる2種類の蛍光タンパク質の遺伝子を用いて2種類のトランスジェニックカイコを作出すればよい。例えば、赤色蛍光タンパク質を一方のマーカーとし、緑色蛍光タンパク質を他方のマーカーとして用いると、交配により両者が導入されたカイコからは赤色と緑色が合わさった黄色蛍光が観察できるので、この黄色蛍光を指標として3遺伝子が導入されたカイコを選抜できる。
　図１～３に示すベクター構築図は、下記実施例でトランスジェニックカイコを作出する際に用いたベクターである。使用したpMSG-1.1R及びpMSG1.1MGは、カイコのセリシン層に所望の組換えタンパク質を分泌させるためのベクターとして公知のものである（J Biosci Bioeng 105, 595-603 (2008)、FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009)）。これらのベクターには、エンハンサーhr3及びセリシン1プロモーターPserが含まれており、外来遺伝子cDNAを挿入するNruIサイトがPserとカイコフィブロインL鎖ポリA付加シグナルFLpAとの間に存在する（図１、図２参照）。図３中のpMSG3.1MGは、２つのサブユニット遺伝子を導入できるようにpMSG1.1MGを改変したベクターであり、第２のPser＋FLpAの間に存在するEco47IIIサイトが２つ目のサブユニット遺伝子を挿入するサイトである。また、遺伝子導入のマーカーとして、蛍光タンパク質（DsRed, GFP）をコードする配列がプロモーター3xP3の下流に機能的に連結して組み込まれている。3xP3は眼や神経系で機能するプロモーターであり、これらの組織からの蛍光の有無に基づいて容易にトランスジェニックカイコを選抜することができる。
　このようにして構築したベクターは、下記実施例に具体的に記載する方法で、トランスポゼース発現ヘルパープラスミドと共にカイコ卵に微量注入することができる。使用するヘルパープラスミドは、カイコ卵中でプラスミド上からトランスポゼースを発現できるものであればよく、下記実施例で用いたpHA3PIG（Nat. Biotechnol. 18, 81-84 (2000)）など公知のものを使用できる。ベクターとヘルパープラスミドは、通常1:1程度の割合で混合して注入に用いる。ベクターとヘルパープラスミドの濃度が各200μg/ml程度になるようにインジェクション用緩衝液（例えば、0.5 mMリン酸バッファー pH 7.0, 5 mM KClを含む緩衝液など）で調整し、これを産卵後２～８時間の前胚盤葉期のカイコ卵に約15～20 nl／卵の液量で注入すればよい。
　注入後の卵から孵化したF0世代をF0世代同士で又は野生株と交配してF1が得られる。F1孵化前の卵又は孵化後の幼虫に励起光を照射すれば、遺伝子が導入された卵又は幼虫では眼及び神経系でマーカーの蛍光タンパク質の蛍光が確認できるので、その個体を選抜すればよい。最終的には、PCRやサザンブロット等によりカイコゲノムへのサブユニット遺伝子の組み込みを確認してもよい。適宜、絹糸腺細胞内でのサブユニット遺伝子の発現量又は繭糸中へのサブユニットタンパク質の分泌量を常法により確認し、タンパク質発現量が十分に高い個体をさらに選抜してもよい。
　Aα、Bβ、γをそれぞれ発現する３つのトランスジェニックカイコ系統を作出した場合には、これら3系統を順次交配することにより、3遺伝子が導入された本発明のトランスジェニックカイコを得ることができる。1遺伝子を導入したカイコ系統と、他の2遺伝子を導入したカイコ系統を作出した場合には、両者を交配して3遺伝子が導入された本発明のトランスジェニックカイコを得ることができる。
　本発明のトランスジェニックカイコの繭には、3つのサブユニットが6量体となった活性のあるフィブリノゲンが含まれている。6量体を形成していることは、非還元状態で電気泳動してサイズで確認することができる。この繭からフィブリノゲンを回収することで、ヒトに感染力のあるウイルス等の混入の恐れがない安全なフィブリノゲンを大量に得ることができる。後部絹糸腺でサブユニット遺伝子を発現させ、繭糸のフィブロイン層にフィブリノゲンを分泌させた場合、フィブロインを溶解させればフィブリノゲンを回収できる。フィブロインの溶解には、通常、リチウムチオシアネート、グアニジンチオシアネート、臭化リチウム等のカオトロピック塩、又は塩化カルシウムとエタノールの混合液等が用いられる。中部絹糸腺でサブユニット遺伝子を発現させ、繭糸のセリシン層にフィブリノゲンを分泌させた場合、セリシン層は水に比較的易溶なので、水系の緩衝液に繭糸を浸漬すればフィブリノゲンを容易に抽出できる。繭糸からの抽出の際は、繭をそのまま抽出液に浸漬しても良いし、適宜裁断、粉砕等してから浸漬しても良い。
　セリシン層に分泌されたフィブリノゲンは、基本的には単に水系の緩衝液中に浸漬するのみで抽出、回収可能であるが、とりわけ好ましい抽出条件としては、1～4 M 尿素、25～100 mM Tris-HCl (pH 6.5～8.5)、0.01～2.0％ 界面活性剤、0～0.25M NaClを含有する緩衝液中で、4℃～10℃程度の低温にて10時間～24時間程度、好ましくは12時間～18時間程度抽出するという条件が挙げられる。この条件によれば、セリシンの溶出を抑えつつ後の精製工程にも有利な状態でフィブリノゲンを効率よく抽出することができる。尿素濃度としては1～3 Mがより好ましい。界面活性剤としては、ポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル（商品名　Triton X-100）、ポリエチレングリコール－p－オクチルフェニルエーテル（商品名　NP-40）、3‐［（3‐コラミドプロピル）ジメチルアンモニオ］‐1‐プロパンスルホナート（商品名　CHAPS）等を使用することができ、２種以上を混合して用いても良い。緩衝液のNaCl濃度は低くすることが好ましく、例えば0.1M以下、あるいは0.01M以下としてよい。
　緩衝液中に溶出したフィブリノゲンは、適宜限外濾過とバッファー交換を行ない、必要に応じ沈殿物を除去して濃縮フィブリノゲン溶液を得ることができる。このようにして本発明のトランスジェニックカイコの繭から回収されたフィブリノゲンは、下記実施例に記載されるように、トロンビンと混合して37℃で1時間反応させると、反応液の粘度の上昇が認められ、凝固活性を有することが確認されている。
　以下、本発明を実施例に基づきより具体的に説明する。もっとも、本発明は下記実施例に限定されるものではない。なお、下記実施例及び図面中では、「Aα鎖」を単に「α鎖」と、「Bβ鎖」を単に「β鎖」と呼ぶことがある。
１．ヒトフィブリノゲンcDNA断片の調製
　ヒト肝臓のcDNAライブラリーから、フィブリノゲンの３つのサブユニットＡα、Ｂβ、γのcDNA断片をPCRにより増幅し、適宜サブクローニングしながらシグナル配列の入れ替え、開始コドンATGの付加、UTR配列の付加を順次行ない、カイコ中部絹糸腺用の発現ベクターに挿入するための各サブユニットcDNA断片を調製した。以下、各サブユニットごとにcDNA断片の調製を詳述する。なお、PCR反応は５０μｌで行い、Ex Taqは５ユニット、KODは１ユニットを用いた。
(1)　Ａα鎖ｃＤＮＡの取得
　cDNAライブラリーから次の反応条件でＡα鎖cDNA断片（以下Alpha）を増幅した。1回目のPCR産物をアガロースゲルで電気泳動し、Alphaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Alphaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、pBluescriptII SK+のBamHI、HindIIIサイトに挿入した。塩基配列を確認し、pSK-alphaとした。
　次いで、Alphaのシグナル配列改変を行なった。成熟型と同様にC末端の１５アミノ酸が除去された配列となるように、成熟型の位置にリバースプライマーFibrinogen Alpha C1を設定した。1回目のPCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Alphaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Alphaと推定されるバンドをゲルから回収、精製した。Ex Taqを使用して2回目PCR精製産物の3'末端にAを付加し、pCR2.1-TOPOにライゲーションを行なった。塩基配列を確認し、pCR-ATGalphaとした。
　次いで、以下の通りにUTR配列の付加を行なった。1回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Alphaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Alphaと推定されるバンドをゲルから回収、精製した。この精製断片をカイコ発現ベクターへの組み込み用ベクターであるpENTR/D-TOPOにライゲーションした。塩基配列を確認し、pENTR-UTRalphaとした。
(2)　Ｂβ鎖ｃＤＮＡの取得
　cDNAライブラリーから次の反応条件でＢβ鎖cDNA断片（以下Beta）を増幅した。1回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Betaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Betaと推定されるバンドをゲルから回収、精製した。pBluescriptII SK+のEcoRI、XhoIサイトに挿入した。塩基配列を確認し、pSK-betaとした。
　次いで、Betaのシグナル配列改変を行なった。1回目のPCR産物をアガロースゲルで電気泳動し、Betaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Betaと推定されるバンドをゲルから回収した。Ex Taqを使用して2回目PCR精製産物の3'末端にAを付加し、pCR2.1-TOPOにライゲーションを行った。塩基配列を確認し、pCR-ATGbetatとした。
　次いで、以下の通りにUTR配列の付加を行なった。1回目のPCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Betaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Betaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、カイコ発現ベクターへの組み込み用ベクターであるpENTR/D-TOPOにライゲーションを行った。塩基配列を確認し、pENTR-UTRbetaとした。
(3)　γ鎖ｃＤＮＡの取得
　cDNAライブラリーから次の反応条件でγ鎖cDNA断片（以下Gamma）を増幅した。1回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Gammaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Gammaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、pBluescriptII SK+のEcoRI、HindIIIサイトに挿入した。塩基配列を確認し、pSK-gammaとした。
　次いで、Gammaのシグナル配列改変を行なった。1回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Gammaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Gammaと推定されるバンドをゲルから回収、精製した。Ex Taqを使用して2回目PCR精製産物の3'末端にAを付加し、pCR2.1-TOPOにライゲーションを行った。塩基配列を確認し、pCR-ATGgammaとした。
　次いで、以下の通りにUTR配列の付加を行なった。1回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Gammaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、2回目PCRの鋳型とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　2回目PCR産物のアガロースゲル電気泳動を行い、Gammaと推定されるバンドをゲルから回収、精製し、カイコ発現ベクターへの組み込み用ベクターであるpENTR/D-TOPOにライゲーションした。塩基配列を確認し、pENTR-UTRgammaとした。
２．ヒトフィブリノゲン発現ベクターの構築
　インビトロジェン社GATEWAYシステムを用いて、エントリーベクターpENTR/D-TOPOにクローニングした断片をpXINSECT-DEST38にサブクローニングした。ここから挿入断片を切り出して、公知のカイコ中部絹糸腺用発現ベクターに挿入した。Ｂβ鎖を発現するベクターと、Ａα鎖及びγ鎖を発現するベクターの２つを作製した。詳細を以下に記載する。
(1)　Ｂβ鎖発現ベクターFibrinogen-β/pMSG1.1R（図１参照）
　上記で調製したpENTR-UTRbetaより、GATEWAYシステムを用いてpXINSECT-DEST38に挿入遺伝子をサブクローニングした。得られたFibrinogen-β/pXINSECTからSmaI消化によってFibrinogen-β cDNAを切り出し、公知のカイコ形質転換用ベクターpMSG1.1R（J Biosci Bioeng 105, 595-603 (2008)）のNruIサイトに挿入し、カイコ形質転換用のFibrinogen-β/pMSG1.1Rを完成した（図１）。なお、pMSG1.1Rベクターは、中部絹糸腺細胞内で機能するセリシン１遺伝子プロモーターPser1により挿入遺伝子を中部絹糸腺内で発現させるベクターであり、エンハンサーとしてバキュロウイルス由来のhr3を、また導入遺伝子の発現マーカーとして、カイコの眼及び神経系で機能するプロモーター3xP3に制御された赤色蛍光タンパク質遺伝子DsRedを含む。
(2)　Ａα鎖／γ鎖発現ベクターFibrinogen-α＆γ/pMSG-MG（図２、３参照）
　上記で調製したpENTR-UTRalpha及びpENTR-UTRgammaより、GATEWAYシステムを用いてpXINSECT-DEST38に挿入遺伝子をそれぞれサブクローニングした（Fibrinogen-α/pXINSECT及びFibrinogen-γ/pXINSECT）。
　一方、公知のカイコ形質転換用ベクターpMSG1.1MG（FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009)）をもとに、2種類の遺伝子を発現させるための遺伝子導入用ベクターpMSG3.1MGを以下の通り構築した（図２）。なお、pMSG1.1MGは、上記で用いたpMSG1.1Rの導入遺伝子発現マーカーDsRedを緑色蛍光タンパク質遺伝子hMGFPに入れ替えたものである。
　セリシン1プロモーター、Eco47III制限酵素切断サイト、フィブロインL鎖ポリA付加シグナルからなる配列が挿入されたpCR4-TOPOベクター（PserFLpA/pCR4）から、ベクター由来の制限酵素サイトであるNotI及びSpeIによってインサートDNAを切り出し、切り出したインサートDNAを平滑末端化した。続いて、pMSG1.1MGをAscI消化（AscIサイトはSV40ポリA付加シグナル及びhr3間にある）した後、平滑末端化処理をし、そのサイトに平滑末端化したインサートDNAを挿入した。以上の操作により、pMSG3.1MGを完成した（図２）。
　Fibrinogen-α/pXINSECTよりSmaI消化によってFibrinogen-α cDNAを切り出し、このcDNAを上記で作製したpMSG3.1MGベクターのNruIサイトに挿入し、Fibrinogen-α/pMSG3.1MGを得た。Fibrinogen-γ/pXINSECTよりSmaI消化によってFibrinogen-γ cDNAを切り出し、このcDNAをFibrinogen-α/pMSG3.1MGのEco47IIIサイトに挿入し、Fibrinogen-α＆γ/pMSG3.1MGを完成した（図３）。
３．トランスジェニックカイコの作出
(1)　Bβ導入カイコの作出
　上記で構築した遺伝子導入用ベクターFibrinogen-β/pMSG1.1Rを塩化セシウム超遠心法で精製した後、ヘルパープラスミドであるpHA3PIG（Nat. Biotechnol. 18, 81-84 (2000)）とプラスミド量が1:1になるように混合した。エタノール沈殿により濃縮し、遺伝子導入用ベクターとpHA3PIGの濃度がそれぞれ200μg/mlになるようにインジェクションバッファー（0.5 mMリン酸バッファー pH 7.0, 5 mM KCl）に溶解し、卵注入用のDNA溶液を得た。このDNA溶液を、産卵後２～８時間の前胚盤葉期のカイコ卵（カイコ胚）に約15～20 nl／卵の液量で微量注入し、卵を２５℃でインキュベートした。合計3,032個の注入卵から600個が孵化した。ここから得られた生殖可能な成虫を交配し、112グループのF1卵塊を得た。産卵日から5～6日目のF1卵塊を蛍光実体顕微鏡で観察し、マーカー遺伝子の発現すなわち眼や神経系からの赤色蛍光を確認できた卵を選抜した。Bβ発現カイコの卵を含む卵塊が7グループ得られた。これらを孵化させ飼育したところ、複数の卵塊に由来するトランスジェニックカイコが正常に発育し、生殖能力を有する成虫になった。各成虫を野生型のカイコと交配し、Bβ導入カイコを6系統得た。
(2)　Aα／γ導入カイコの作出
　上記と同様にして、遺伝子導入用ベクターFibrinogen-α＆γ/pMSG3.1MGを精製し、ヘルパープラスミドと共にカイコ卵に微量注入した。合計3,336個の注入卵から1,050個が孵化した。ここから得られた生殖可能な成虫を交配し、233グループのF1卵塊を得た。眼や神経系からの緑色蛍光に基づき卵を選抜し、Aα／γ発現カイコの卵を含む卵塊を17グループ得た。正常に発育した成虫を野生型カイコと交配し、Aα/γ導入カイコを14系統得た。
(3)　フィブリノゲンサブユニットの発現の確認
　上記で得られたBβ導入カイコ系統及びAα/γ導入カイコ系統について、繭中への目的タンパク質の分泌をウエスタンブロットにより調べた。繭を裁断して8M尿素を含む緩衝液（8 M尿素、50 mMトリス塩緩衝液、pH 8.0）に浸漬し、80℃、5分間加温した後、遠心して得られた上清をウエスタンブロットに付した。結果の一部を図４に示す。Aα/γ導入カイコについては、Aα鎖及びγ鎖の両者が繭中に分泌されていることが確認できた。しかしながら、Bβ導入カイコでは繭中にBβ鎖を検出することができなかった。
　Bβ鎖が絹糸腺細胞内でタンパク質として発現しているかどうかを調べるため、５齢幼虫の絹糸腺の発現解析を行なった。野生型カイコ及びBβ導入カイコの５齢幼虫より絹糸腺を回収して1×TBSで抽出を行ない、遠心後の上清を可溶性画分とした。沈殿をさらに1×SDS-PAGEサンプルバッファーで抽出し、不溶性画分とした。それぞれを泳動してウエスタンブロットを行なった結果、不溶性画分においてBβ鎖のシグナルが検出された（図５）。以上より、Bβ導入カイコではBβ鎖は正常に合成されているが、絹糸腺細胞内にとどまっていることが確認された。
(4)　Aα/Bβ/γ導入カイコの作出
　繭へのBβ鎖分泌が確認できないBβ導入カイコと、繭へのAα鎖及びγ鎖分泌が確認できたAα／γ導入カイコを交配し、Aα/Bβ/γ導入カイコを複数系統得た。これら複数系統のカイコについては、卵又は幼虫の段階で励起光を照射し、赤色蛍光と緑色蛍光が合わさって黄色の蛍光が観察されることを確認した。このカイコの繭に含まれるタンパク質を上記と同様に抽出してSDS-ポリアクリルアミドゲルで泳動しCBB染色して観察したところ、Aα鎖、Bβ鎖、γ鎖いずれも明瞭なバンドが検出された（図６）。
４．フィブリノゲンの発現量を増加させるための転写因子の利用
　セリシンプロモーターに、バキュロウイルス（BmNPV）由来のエンハンサーであるhr3と、同じくBmNPV由来のトランスアクチベーターであるIE1遺伝子を組み合わせると、セリシンプロモーターの活性が大幅に増大することが知られている（特許第4271122号公報参照）。カイコでの組換えタンパク質発現にも応用されており、IE1タンパク質を中部絹糸腺で発現するトランスジェニックカイコ系統が知られている（FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009)、Biotechnol Bioeng 106, 860-870 (2010)）。公知のIE1発現カイコを用いて、Aα／Bβ／γ導入カイコでの導入遺伝子の発現量の増加を試みた。
　IM1カイコはセリシン１プロモーターの制御下でIE1が導入されたカイコであり、転写因子IE1を高発現する（Biotechnol Bioeng 106, 860-870 (2010)）。上記で作製したAα／Bβ／γ導入カイコとIM1カイコを交配してAα／Bβ／γ×IMカイコを取得し、このカイコの繭を得て各サブユニットの発現量（繭糸中の各サブユニットの含量）を調べた。その結果、フィブリノゲンの発現量は大幅に上昇したが、繭重量は3～4割程度まで減少した（表１０及び図７）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　IE1カイコは上記のIM1カイコよりもIE1の発現量が低い系統である（FEBS Journal 276, 5806-5820 (2009)）。IE1カイコと交配させてAα／Bβ／γ×IEカイコを取得し、このカイコの繭を得て各サブユニットの発現量（繭糸中の各サブユニットの含量）及び繭重量を調べた。繭重量の減少は回避でき、またフィブリノゲン発現量もAα／Bβ／γカイコと比較して増加していたが、Aα／Bβ／γ×IMカイコよりもフィブリノゲン発現量は低かった（表１１及び図８）。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　Aα／Bβ／γ×IMカイコとAα／Bβ／γ×IEカイコとを比較すると、繭１個当たりのトータルでは、前者のAα／Bβ／γ×IMカイコの方がフィブリノゲンの生産量が高いという結果であった。フィブリノゲンの生産には、トランスアクチベーターを高発現するIM1カイコと交配を行なった方が有利である。
５．繭からの組換えフィブリノゲン抽出条件の検討
　Aα／Bβ／γ導入カイコの繭からフィブリノゲンを効率よく抽出するため、抽出条件を検討した。
　トランスアクチベーターを導入していないAα／Bβ／γ導入カイコの繭を用いて、フィブリノゲンの抽出条件を検討した。繭を裁断し、緩衝液に浸漬して抽出処理を行なった。PBS抽出が困難だったため、NaClや界面活性剤を含む種々の組成のバッファーを用いて、図９に示す通りに検討した。後の精製のことを考慮してなるべくセリシンが抽出されない条件にしたいこと、変性を抑えるためUrea濃度を下げたいことなどを考えると、図９中の８の条件（2M Urea, 50mM Tris-HCl(pH7.5), 1% Triton X-100, 抽出温度4℃、16時間）が最も良いと考えられた。
　トランスアクチベーターを導入したAα／Bβ／γ×IMカイコの繭を用いて、図１０の通りフィブリノゲン抽出条件を検討した（全て4℃、16時間抽出）。先に検討したAα／Bβ／γカイコと比較してフィブリノゲンの発現量が高いため、より穏やかな条件でも効率よく抽出可能であり、Triton X-100濃度を0.1%に下げてもよく抽出された。
　Aα／Bβ／γ×IMカイコの繭を6M Urea, 50mM Tris-HCl(pH7.5)で抽出して非還元条件（２-メルカプトエタノールなし）で泳動した。分子量が大きいため明瞭なバンドにはならなかったが、そのサイズから６量体を形成していると考えられた（図は省略）。
６．フィブリノゲンの凝固活性の確認
　カイコで製造したヒトフィブリノゲンがトロンビンと反応して凝固（fibrin clot）を作ることができるかを確認した。
　β42-3×α/γ106-2×IMの繭を2M Urea, 50mM Tris-HCl(pH7.5), 0.1% Triton X-100で４℃にて一晩抽出した。限外濾過（amicon ultra-15 10,000NMWL, millipore社）にて抽出液を15mlから400μlまで濃縮した。次いで、15mlの100mM Tris-HCl(pH8.0), 200mM NaCl, 500nM CaCl2を加え、再度400μlまで濃縮（バッファー交換）した。この段階で一部のタンパク質が不溶化し沈殿が見られた。沈殿を除去し、終濃度10 U/mlになるようにトロンビン（Calbiochem社）を加えて37℃で１時間インキュベートしたところ、吸い上げたピペットの先端から滴下し難くなる程度まで液の粘度が上昇した。これにより、カイコで製造したフィブリノゲンの凝固活性が確認された。

Claims (19)

  1. 　絹糸腺細胞内でフィブリノゲンのサブユニットAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖を発現し、凝固活性を有するフィブリノゲンを繭糸中に産生するトランスジェニックカイコ。
  2. 　中部絹糸腺細胞内で前記サブユニットを発現し、繭糸のセリシン層中にフィブリノゲンを産生する請求項１記載のトランスジェニックカイコ。
  3. 　Aα鎖遺伝子、Bβ鎖遺伝子及びγ鎖遺伝子がセリシン遺伝子のプロモーターと機能的に連結されて導入されている請求項２記載のトランスジェニックカイコ。
  4. 　Aα鎖遺伝子、Bβ鎖遺伝子及びγ鎖遺伝子がエンハンサーと組み合わせて導入されている請求項３記載のトランスジェニックカイコ。
  5. 　前記エンハンサーがバキュロウイルス由来のhr3である請求項４記載のトランスジェニックカイコ。
  6. 　Aα鎖遺伝子、Bβ鎖遺伝子及びγ鎖遺伝子がトランスアクチベーターと組み合わせて導入されている請求項３ないし５のいずれか１項に記載のトランスジェニックカイコ。
  7. 　前記トランスアクチベーターがバキュロウイルス由来の転写因子IE1である請求項６記載のトランスジェニックカイコ。
  8. 　請求項１ないし７のいずれか１項に記載のトランスジェニックカイコが生成する、凝固活性を有するフィブリノゲンを含有するカイコの繭。
  9. 　請求項８記載のトランスジェニックカイコの繭からフィブリノゲンを回収することを含む、フィブリノゲンの製造方法。
  10. 　1～4 M 尿素、25～100 mM Tris-HCl (pH 6.5～8.5)、0.01～2.0％ 界面活性剤、0～0.25 M NaClを含有する緩衝液中に前記カイコの繭糸を浸漬し、緩衝液中に溶出したフィブリノゲンを回収する請求項９記載の方法。
  11. 　前記界面活性剤がポリオキシエチレンオクチルフェニルエーテル、ポリエチレングリコール‐p‐オクチルフェニルエーテル及び3‐［（3‐コラミドプロピル）ジメチルアンモニオ］‐1‐プロパンスルホナートから成る群より選択される少なくとも１種である請求項１０記載の方法。
  12. 　フィブリノゲンのサブユニットAα遺伝子、Bβ遺伝子及びγ遺伝子を、絹糸腺細胞内で機能するプロモーターと機能的に連結した形態でカイコに導入し、絹糸腺細胞内でAα鎖、Bβ鎖及びγ鎖を発現するカイコを選抜することを含む、凝固活性を有するフィブリノゲンを繭糸中に産生するトランスジェニックカイコの作出方法。
  13. 　前記絹糸腺が中部絹糸腺であり、前記プロモーターがセリシン遺伝子のプロモーターである請求項１２記載の方法。
  14. 　Aα遺伝子、Bβ遺伝子及びγ遺伝子がエンハンサーと共に導入される請求項１２又は１３記載の方法。
  15. 　前記エンハンサーがバキュロウイルス由来のhr3である請求項１４記載の方法。
  16. 　トランスアクチベーターをさらにカイコに導入することを含む請求項１２ないし１５のいずれか１項に記載の方法。
  17. 　前記トランスアクチベーターがバキュロウイルス由来の転写因子IE1である請求項１６記載の方法。
  18. 　Aα遺伝子、Bβ遺伝子及びγ遺伝子のいずれか１つを絹糸腺細胞内で機能するプロモーターの下流に含むベクターを導入した第１のカイコと、前記遺伝子のうちの残りの２つを絹糸腺細胞内で機能するプロモーターの下流に含むベクターを導入した第２のカイコとを交配させることにより、前記３つのサブユニット遺伝子をカイコに導入する請求項１２ないし１７のいずれか１項に記載の方法。
  19. 　Bβ遺伝子を含むベクターを導入した第１のカイコと、Aα遺伝子及びγ遺伝子を含むベクターを導入した第２のカイコとを交配させる請求項１８記載の方法。
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