WO2010070746A1 - イヌアンジオスタチン様ポリペプチド - Google Patents
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- A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides
Definitions
- the present invention relates to a method for producing an angiostatin-like polypeptide from canine plasminogen having a natural sugar chain, and a canine angiostatin-like polypeptide obtained by this method.
- Angiogenesis is a process in which new blood vessels are formed from existing blood vessels, and is regulated by various inhibitors such as growth factors released from platelets and vascular endothelial cells. Angiogenesis in tumors is essential for tumor growth, and therefore substances that inhibit angiogenesis may be useful as anti-tumor agents based on their ability to suppress cancer growth, invasion and metastasis. is there.
- Angiostatin is known as an example of such a substance.
- Angiostatin is a polypeptide containing kringle region 1 to 4 of plasminogen obtained by degrading plasminogen, which is a fibrinolytic factor, and reported to have an effect on cancer in animal experiments. (Non-Patent Document 1).
- angiostatin As a method for producing angiostatin, methods for producing recombinant proteins derived from humans (Non-patent Documents 2 to 3), dogs (Patent Documents 1 and 2), etc. have been reported. Angiostatin produced by these methods does not have a natural sugar chain structure. If it does not have a natural sugar chain structure, it may be antigenic in the administered subject, and if the sugar chain affects the activity, the activity may be lost. Therefore, angiostatin as described above may not exhibit sufficient activity as an anticancer agent.
- Non-patent Document 4 a method of hydrolyzing plasminogen with elastase is known (Non-patent Document 4).
- This method makes it difficult to selectively produce angiostatin from plasminogen because many byproducts are generated due to the low substrate specificity of elastase. This method therefore has the disadvantage that the activity of the resulting angiostatin is low.
- elastase preparations can be used to produce active angiostatin, and it has been suggested that cleavage or subsequent treatment may modify angiostatin (Non-Patent Documents). 4).
- angiostatin-like fragment (main product) was obtained by specifically cleaving human plasminogen using “Bacillolysin MA” which is a protease produced by Bacillus megaterium strain A9542.
- Bacillus megaterium strain A9542 was found to be a fragment having the amino acid sequence of Glu 1 to Ser 441 (hereinafter referred to as “human BL angiostatin” or “hBLAS”) (Patent Document 3).
- the above amino acid numbers are based on the amino acid sequence of a mature polypeptide (ie, Glu 1 -Asn 791 ) excluding the signal peptide from the amino acid sequence of human plasminogen (SWISSPROT accession number P00747).
- human BL angiostatin has an extremely excellent anticancer effect and has high solubility in water, and therefore exhibits an exceptional anticancer effect even by intravenous administration ( Patent Document 4).
- an angiostatin-like fragment human BL angiostatin obtained by allowing bacilolysin MA to act on human plasminogen has been demonstrated.
- angiostatin-like fragments as described above are expected to have similar effects.
- the fragment may be recognized as heterologous by the immune system of the administered animal, so that the effect may not be exhibited. Therefore, for application to non-human animals, it is necessary to obtain angiostatin-like fragments using plasminogen from the animal to be administered as a starting material.
- basilolysin MA is an enzyme obtained based on the action on human plasminogen, basilolysin MA was allowed to act on plasminogen derived from a non-human animal having an amino acid sequence different from that of human plasminogen. In some cases it was unclear whether fragments with angiostatin-like activity could be obtained. Therefore, a method for obtaining an angiostatin-like fragment having a natural sugar chain suitable for administration to mammals other than humans has been desired.
- JP 2002-355056 A Japanese translation of PCT publication No. 2002-523036 JP 2002-272453 A International Publication No.
- An object of the present invention is to provide a method for producing an angiostatin-like polypeptide from canine plasminogen having a natural sugar chain, and a canine angiostatin-like polypeptide obtained by this method.
- the present invention [1] A method for producing an angiostatin-like polypeptide, comprising digesting canine plasminogen with basilolysin MA; [2] Angiostatin-like polypeptide obtained by digesting canine plasminogen with basilolysin MA; [3] The N-terminal amino acid is arginine at position 78 or leucine at position 81 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, and the molecular weight determined by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis under reducing conditions is 35 to 38 kDa Angiostatin-like polypeptide of [2]; [4] Angiostatin-like polypeptide of [2] or [3] comprising kringle regions 1 to 3 and not including NTP and kringle regions 4 to 5; [5] The angiostatin-like polypeptide according to any one of [2] to [4], wherein canine plasminogen has a natural sugar chain; [6] An an
- VEGF represents a group to which 10 ng / mL vascular endothelial growth factor (VEGF) was added, the horizontal axis represents the concentration of canine angiostatin (cBLAS), and the vertical axis was stained with anti-CD31 antibody for the entire visual field. The ratio (%) of the remaining area.
- dog plasminogen refers to dog-derived plasminogen.
- Plasminogen is a precursor of plasmin, present in animal plasma, which is cleaved by plasminogen activator and converted to active plasmin. Plasmin consists of an H chain containing five kringle regions (K1 to K5) and an L chain containing a serine protease active center.
- plasminogen having a natural sugar chain is preferably used. “Having a natural sugar chain” means having a sugar chain having substantially the same structure as a sugar chain bound to natural plasminogen at the same site.
- Canine plasminogen having a natural sugar chain can be obtained, for example, by purification from canine plasma.
- plasminogen produced using recombinant DNA technology or the like based on the amino acid sequence of known canine plasminogen is used as long as it has a natural sugar chain. can do.
- NTP N-terminal peptide
- the kringle region is defined as a region sandwiched between the most N-terminal and C-terminal cysteine (Cys) residues of each region
- the kringle regions 1 to 5 are positions 84 to 162 of SEQ ID NO: 1, respectively. This corresponds to the regions of the 166th to 243rd, 256th to 333th, 360th to 437th, and 464th to 543th positions.
- Bacillolysin MA refers to a protease produced by Bacillus megaterium strain A9542. Basilolysin MA specifically cleaves human plasminogen to produce an angiostatin-like fragment (the main product is a fragment having the amino acid sequence of Glu 1 to Ser 441 ; the amino acid number is the amino acid sequence of human plasminogen (SWISSPROT The activity to generate a mature polypeptide (ie, based on the amino acid sequence of Glu 1 -Asn 791 ) excluding the signal peptide from session number P00747). Bacillus megaterium A9542 strain was established in Tsukuba Center, Central 1-1-1 Tsukuba Center, Ibaraki 305-8586, Japan, under the patent number FERM P-18268 in 2001. Deposited on March 21.
- angiostatin refers to a polypeptide that is derived from plasminogen and exhibits angiogenesis inhibitory activity, including plasminogen kringle regions 1 to 4.
- Angiostatin-like polypeptide refers to a plasminogen-derived polypeptide that exhibits angiogenesis inhibitory activity similar to Angiostatin. According to the present invention, an angiostatin-like polypeptide is obtained by digesting canine plasminogen with basilolysin MA.
- the angiostatin-like polypeptide of the present invention is not necessarily composed of a single molecular species, and may be a mixture of a plurality of molecular species having different N-terminal amino acids or sugar chain structures.
- an angiostatin-like polypeptide obtained by digesting canine plasminogen with basilolysin MA is also referred to as “cBLAS”.
- the polypeptide portion other than the sugar chain is an amino acid sequence derived from canine plasminogen.
- the angiostatin-like polypeptide of the present invention has a natural sugar chain.
- the angiostatin-like polypeptide may be further purified by subjecting this digest to affinity chromatography (eg, Lys-Sepharose).
- Angiogenesis inhibitory activity can be measured in vitro, for example, by observing the effect of a test substance on angiogenesis by endothelial cells using a commercially available kit or the like.
- angiogenesis inhibitory activity can be measured in vivo by observing the effect of a test substance on the growth of Lewis lung cancer transplanted subcutaneously into mice, for example as described in US Pat.
- the angiostatin-like polypeptide of the present invention is, for example, 34-40 kDa, preferably 35-38 kDa, more preferably 36-36 by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide electrophoresis (SDS-PAGE) under reducing conditions.
- the molecular weight is 37 kDa.
- the N-terminal amino acid of the angiostatin-like polypeptide of the present invention is arginine at position 78 (Arg 78 ) or leucine at position 81 (Leu 81 ) of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
- the C-terminal amino acid of the angiostatin-like polypeptide of the invention is tyrosine (Tyr 342 ) at position 342 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1.
- the angiostatin-like polypeptide of the present invention has an amino acid sequence of Arg 78 or Leu 81 to Tyr 342 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 except that the polypeptide portion (polypeptide backbone) other than its sugar chain Consists of.
- the amino acid sequences of Arg 78 -Tyr 342 and Leu 81 -Tyr 342 of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1 are shown in SEQ ID NOs: 2 and 3, respectively.
- This region includes the kringle regions 1 to 3, but does not include the NTP and the kringle regions 4 to 5.
- the main product of angiostatin-like fragment obtained by digesting human plasminogen with basilolysin MA has the amino acid sequence of human plasminogen Glu 1 to Ser 441 . This sequence includes NTP and kringle regions 1-4.
- the angiostatin-like polypeptide derived from canine plasminogen of the present invention has a structure very different from the angiostatin-like fragment derived from human.
- the recombinant canine angiostatins described in Patent Documents 1 and 2 each contain kringle regions 1 to 4 of canine plasminogen and have a structure different from that of the angiostatin-like polypeptide of the present invention. ing.
- the conditions for digestion of plasminogen with basilolysin MA are appropriately selected so as to obtain a polypeptide exhibiting angiogenesis inhibitory activity. Since basilolysin MA requires Ca 2+ for its enzymatic reaction, digestion is performed in the presence of Ca 2+ .
- the reaction temperature is selected in consideration of the optimum temperature of basilolysin MA (about 50 to 60 ° C.), the stability of the substrate (plasminogen), etc., for example, 0 to 60 ° C., preferably 20 to 50 ° C., more preferably Is 30 to 40 ° C., more preferably 37 ° C.
- Other conditions such as reaction time, enzyme and substrate concentration in the reaction solution are also appropriately determined by those skilled in the art.
- the reaction time is, for example, 0.5 to 2.5 hours, preferably 1 to 2 hours.
- concentration of enzyme (basilolysin MA) (concentration calculated based on a molecular weight of 34 kDa) is, for example, 50 to 500 nM, preferably 100 to 300 nM, more preferably 150 nM.
- concentration of the substrate (dog plasminogen) is, for example, 0.1 to 2 mg / mL, preferably 0.2 to 1.0 mg / mL, more preferably 0.5 mg / mL.
- the angiostatin-like polypeptide obtained by the production method of the present invention exhibits angiogenesis inhibitory activity. Since basilolysin MA is an enzyme obtained based on the action on human plasminogen, basilolysin MA is added to plasminogen derived from dogs, which are non-human animals having an amino acid sequence different from the amino acid sequence of human plasminogen. It was unclear whether a fragment having angiostatin-like angiogenesis inhibitory activity would be obtained when allowed to act. For example, the cleavage site of human plasminogen by basilolysin MA is between serine (Ser) at position 441 and valine (Val) at position 442.
- the amino acids of canine plasminogen corresponding to these amino acids are serine (Ser) at position 443 and Ala at position 444 of SEQ ID NO: 1.
- the cleavage site of basilolysin MA cannot be predicted from the primary amino acid sequence alone, so that the structure of a polypeptide obtained by reacting basilolysin MA with canine plasminogen could not be predicted. Therefore, the above findings were unexpected.
- the angiostatin-like polypeptide obtained by the production method of the present invention has a natural sugar chain because it can be obtained using plasminogen having a natural sugar chain as a starting material. Therefore, the present invention is advantageous in that it is not necessary to consider problems such as antigenicity and deactivation that may occur when a natural sugar chain is not present.
- the present invention provides a composition comprising the above-mentioned angiostatin-like polypeptide.
- This composition can be used to inhibit angiogenesis.
- a disease in which inhibition of angiogenesis is desired can be treated.
- a cancer is illustrated as a disease.
- the subject to be administered can be any mammal in need of treatment, but is preferably a dog.
- the composition can further include optional ingredients such as other angiogenesis inhibitors, pharmaceutically acceptable excipients, and the like.
- the form and route of administration of the preparation can be arbitrarily selected from known ones. For example, an injectable formulation can be administered to a subject by intravenous injection.
- Example 1 Purification of basilolysin MA (BL-MA) Glucose 1%, corn starch 3%, soybean meal 1%, peptone 0.5%, yeast extract 0.5%, CaCO 3 0.2%, CB442 0.01 In a 500 mL Erlenmeyer flask containing 100 mL of a liquid medium (pH 7.0) containing 1%, Bacillus megaterium A9542 strain (1-1-1 Higashi Tsukuba City, Ibaraki 305-8856 Tsukuba Center Chuo No. 6, Industrial Technology (Deposited on March 21, 2001) under the accession number FERM P-18268 at the Research Center for Patent Biological Deposits) and cultured with shaking at 28 ° C. for 6 days.
- BL-MA basilolysin MA
- BL-MA concentration of BL-MA is displayed in units such as “nM” and “ ⁇ M” calculated based on the molecular weight (34 kDa).
- Example 2 Purification of canine plasminogen (cPlg) Purification of cPlg was performed according to the procedure described in 1) to 8) below. The chromatographic flow rate was 8 mL / min unless otherwise specified.
- Protein was quantified by the Lowry method.
- 20 ⁇ L of cPlg obtained in 8) after dialysis was diluted with 40 ⁇ L of 0.1 M sodium hydroxide.
- 300 ⁇ L of a solution in which 2% (w / v) Na 2 CO 3 /0.1 M sodium hydroxide and 0.5% CuSO 4 .5H 2 O / 1% sodium citrate were mixed at a ratio of 50: 1 was first added. Were mixed well and allowed to react for 15 minutes at room temperature. After the reaction, 30 ⁇ L of a phenol reagent was added, mixed well, and further reacted at room temperature for 30 minutes.
- CPlg was purified 11 times in total. From the protein quantification results after dialysis, it was found that 448 mg of cPlg was obtained. In addition, when 1 ⁇ L of the eluate was subjected to sodium dodecyl sulfate polyacrylamide electrophoresis (SDS-PAGE, 10%, reducing conditions), no band other than cPlg was observed, so the purity was estimated to be 95% or more. . Since the total amount of canine plasma used was 4030 mL, the yield was 111 mg / L plasma.
- Example 4 Examination of cPlg cleavage conditions TBS / T / Ca (50 mM Tris-HCl (pH 7.4 (25 ° C.)) / 100 mM NaCl / 0.01% Tween 80/1 mM CaCl 2 ) 46.4 ⁇ L in 1.5 mL plastic
- 25.6 ⁇ L of 1.6 mg / mL cPlg prepared by diluting the stock solution with TBS / T / Ca
- 8 ⁇ L of 1.5 ⁇ M BL-MA (prepared by diluting the stock solution with TBS / T / Ca) was added to this tube and mixed uniformly.
- reaction temperature 37 ° C. was used.
- the optimal temperature for BL-MA is a higher temperature (50-60 ° C.), but this temperature was chosen to avoid denaturation of the substrate protein (cPlg).
- Example 5 Preparation of canine BL angiostatin (cBLAS) 0.5 mg / mL cPlg and 150 nM BL-MA were incubated in TBS / T / Ca for 2 hours at 37 ° C. Thereafter, EDTA-2Na was added to a final concentration of 10 mM to stop the reaction. The obtained reaction solution was immediately subjected to purification using Lys-Sepharose.
- cBLAS canine BL angiostatin
- the fraction in which cBLAS band was confirmed by SDS-PAGE was dialyzed against ultrapure water in the same manner as in Example 2 except that ultrapure water was used, freeze-dried, and dissolved in physiological saline. The solution was sterilized by filtration using a 0.2 ⁇ m disk filter. A part of the sample was subjected to protein quantification (by the Lowry method described in Example 2) and purity assay by SDS-PAGE.
- cBLAS was obtained from 448 mg of cPlg (about 3 mL of 35.7 mg / mL cBRAS solution). Further, when 1 ⁇ L of the eluate was subjected to SDS-PAGE (10%, reducing conditions), no band other than cBRAS was observed, so the purity was estimated to be 95% or more.
- the cBRAS solution was stored at ⁇ 80 ° C. Based on the molecular weights of cPlg and cBRAS on SDS-PAGE (about 100 kDa and about 37 kDa, respectively), the recovery was calculated to be about 84% (140 / (448 ⁇ 37/100)).
- Example 6 Determination of partial amino acid sequence
- the cBRAS obtained in Example 1 was subjected to SDS-PAGE. A 36-37 kDa band corresponding to two cBRAS was confirmed (FIG. 1, left lane).
- the protein in the gel was transferred to a PVDF membrane (Fluorotrans (registered trademark), Nippon Genetics)
- the target band was cut out and the N-terminal amino acid sequence was analyzed using 476A Protein Sequencer (Applied Biosystems).
- c-Plg BL-MA digest unpurified
- was subjected to SDS-PAGE several more bands were seen (FIG. 1, right lane). The most dominant band of about 53 kDa was similarly subjected to sequence analysis.
- N-terminal sequences determined for the upper and lower bands of cBRAS were Arg-Ile-Tyr-Leu and Leu-Ser-Glu-XXX-Lys, respectively. This sequence matched the sequence starting from ArP 78 and Leu 81 of cPlg, respectively.
- the N-terminal sequence of the approximately 53 kDa band dominant in the BL-MA digest of cPlg was Leu-Asp-Ala-Pro-Ala. This sequence matched the sequence starting from Leu 343 of cPlg.
- the N-terminal of the polypeptide corresponding to the band of about 50 kDa found in Example 4 was determined to be Val 356 , and the polypeptide corresponding to the band of about 53 kDa was further decomposed. It was suggested that it occurred.
- Example 7 Evaluation of cBRAS activity Regarding the effect of canine BL angiostatin (cBRAS) on angiogenesis of human endothelial cells induced by vascular endothelial growth factor (VEGF), angiogenesis kit (Kurashiki Spinning Co., Ltd.) It was examined using.
- VEGF vascular endothelial growth factor
- a “saline group” sodium chloride 85 mg in 10 mL water
- a “VEGF group” VEGF 10 ng / mL
- a “cBRAS group” VEGF 10 ng / mL + cBRAS 1, 10, 100 ⁇ g / mL, hereinafter “Experiments were performed using a total of 5 groups, “cBLAS 1 ⁇ g / mL group”, “cBRAS 10 ⁇ g / mL group”, and “cBRAS 100 ⁇ g / mL group”.
- the medium On the day of arrival of the angiogenesis kit (day 1), the medium is replaced with a medium in which the test sample (cBLAS at a predetermined concentration) is added to the medium (VEGF ( ⁇ ) medium) that does not contain VEGF for the cBLAS group.
- the physiological saline group and the VEGF group were replaced with VEGF ( ⁇ ) medium supplemented with the same amount of physiological saline as the test sample.
- the medium is changed to a medium in which the test sample (cBLAS at a predetermined concentration) is added to the medium (VEGF (+) medium) attached to the kit containing VEGF for the cBLAS group,
- the physiological saline group was replaced with a VEGF ( ⁇ ) medium
- the VEGF group was replaced with a medium in which the same amount of physiological saline as the test sample was added to the VEGF (+) medium.
- staining with an anti-CD31 (PECAM-1) antibody was performed according to the instructions of the angiogenesis staining kit.
- the staining area measured for the physiological saline group was 2.79 ⁇ 0.13% (mean value ⁇ standard deviation).
- the stained areas measured for the VEGF group, cBRAS 1 ⁇ g / mL group, cBRAS 10 ⁇ g / mL group, and cBRAS 100 ⁇ g / mL group are 3.06 ⁇ 0.11%, 3.00 ⁇ 0.11%, and 2.08, respectively. They were ⁇ 0.19% and 1.25 ⁇ 0.11% (FIG. 2).
- endothelial cell proliferation was significantly inhibited in the cBRAS 10 ⁇ g / mL group and the cBRAS 100 ⁇ g / mL group (P ⁇ 0.01).
- the present invention provides a method for producing an angiostatin-like polypeptide from canine plasminogen having a natural sugar chain, and a canine angiostatin-like polypeptide obtained by this method.
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Abstract
天然型糖鎖を有するイヌプラスミノーゲンからアンジオスタチン様ポリペプチドを製造するための方法、およびこの方法によって得られたイヌアンジオスタチン様ポリペプチドを提供する。
Description
本発明は、天然型糖鎖を有するイヌプラスミノーゲンからアンジオスタチン様ポリペプチドを製造するための方法、およびこの方法によって得られたイヌアンジオスタチン様ポリペプチドに関する。
血管新生は、既存の血管から新しい血管が形成される過程であり、血小板や血管内皮細胞から放出される成長因子等と種々の阻害因子によって調節されている。腫瘍における血管新生は腫瘍の増殖に必須であり、それゆえ、血管新生を阻害する物質は、癌の増殖、浸潤および転移を抑制するその能力に基づいて、抗腫瘍剤として有用である可能性がある。
このような物質の一例としてアンジオスタチンが知られている。アンジオスタチンは、線溶因子であるプラスミノーゲンを分解することにより得られる、プラスミノーゲンのクリングル領域1~4を含むポリペプチドであり、そして動物実験において癌に対する効果を示すことが報告されている(非特許文献1)。
アンジオスタチンの製造方法としては、ヒト(非特許文献2~3)、イヌ(特許文献1~2)など由来の組換えタンパク質の製造方法が報告されている。これらの方法によって製造されたアンジオスタチンは、天然型の糖鎖構造を有していない。天然型の糖鎖構造を有していなければ投与された対象内で抗原性を示す可能性があり、また糖鎖が活性に影響していれば、活性が失われる可能性もある。そのため、上記のようなアンジオスタチンは抗癌剤としての活性を十分に示さない可能性がある。
天然型糖鎖を有するアンジオスタチンの生産は、天然型のプラスミノーゲンを精製し、適当な酵素で処理することによって達成され得る。このような方法としては、例えば、プラスミノーゲンをエラスターゼで加水分解する方法が知られている(非特許文献4)。この方法では、エラスターゼの基質特異性の低さのために多くの副生成物が生じるので、プラスミノーゲンからアンジオスタチンを選択的に生成させることが困難である。従って、この方法には、得られるアンジオスタチンの活性が低いという欠点がある。また、すべての市販エラスターゼ標品を使用して活性のあるアンジオスタチンを生産することができるわけではなく、切断またはその後の処理によってアンジオスタチンが変性される可能性も示唆されている(非特許文献4)。
本発明者らは、プラスミノーゲンから選択的にアンジオスタチンを生成するために適切な基質特異性を有し、かつ副生成物を生じさせない新たな酵素を探索した。その結果、バチルス・メガテリウム(Bacillus megaterium)A9542株が産生するプロテアーゼである「バシロライシンMA」(Bacillolysin MA)を用いて、ヒトプラスミノーゲンを特異的に切断することによってアンジオスタチン様フラグメント(主生成物はGlu1からSer441のアミノ酸配列を有するフラグメントである、以下、「ヒトBLアンジオスタチン」または「hBLAS」と記載する)が得られることを見出した(特許文献3)。なお、上記のアミノ酸番号は、ヒトプラスミノーゲンのアミノ酸配列(SWISSPROTアクセッション番号P00747)からシグナルペプチドを除外した成熟ポリペプチド(すなわち、Glu1-Asn791)のアミノ酸配列に基づく。
さらに、本発明者らは、ヒトBLアンジオスタチンが極めて優れた制癌効果を有すること、および水に対する溶解性が高いことから、静脈内投与によっても格別の制癌効果を奏することを見出した(特許文献4)。このように、ヒトプラスミノーゲンにバシロライシンMAを作用させることによって得られるアンジオスタチン様フラグメント(ヒトBLアンジオスタチン)の有効性は実証されている。
癌のような血管新生の阻害が有効な疾患はヒト以外の哺乳動物にも存在する。このような疾患には上記のようなアンジオスタチン様フラグメントが同様の効果を有することが期待される。しかし、例えば、ヒト由来のプラスミノーゲンフラグメントを他の動物に投与すれば、このフラグメントは投与された動物の免疫系によって異種として認識されるので、その効果が発揮されない可能性がある。従って、ヒト以外の動物へ適用のためには、投与しようとする動物由来のプラスミノーゲンを出発材料として使用してアンジオスタチン様フラグメントを得る必要がある。バシロライシンMAはヒトプラスミノーゲンに対する作用に基づいて得られた酵素であるので、ヒトプラスミノーゲンのアミノ酸配列とは異なるアミノ酸配列を有するヒト以外の動物由来のプラスミノーゲンにバシロライシンMAを作用させた場合に、アンジオスタチン様活性を有するフラグメントが得られるかどうかは不明であった。それゆえ、ヒト以外の哺乳動物への投与に適切な天然型糖鎖を有するアンジオスタチン様フラグメントを得るための方法が望まれていた。
特開2002-355056号公報
特表2002-523036号公報
特開2002-272453号公報
国際公開第2005/079835号パンフレット
M.S. O'Reilly et al., Cell, 79:315-328 (1994)
Shepard, S.R. et al., Protein Expr. Purif., 20:216-227 (2000)
Lin, J. et al., J. Ind. Microbiol. Biotechnol., 24:31-35 (2000)
M.S. O'Reilly et al., Nature Medicine, 2:689-692 (1996)
本発明の目的は、天然型糖鎖を有するイヌプラスミノーゲンからアンジオスタチン様ポリペプチドを製造するための方法、およびこの方法によって得られたイヌアンジオスタチン様ポリペプチドを提供することである。
本発明は、
[1]イヌプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化することを含む、アンジオスタチン様ポリペプチドの製造方法;
[2]イヌプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化することによって得られる、アンジオスタチン様ポリペプチド;
[3]N末端アミノ酸が配列番号1のアミノ酸配列の78位のアルギニンまたは81位のロイシンであり、還元条件下のドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって決定される分子量が35~38kDaである、[2]のアンジオスタチン様ポリペプチド;
[4]クリングル領域1~3を含み、NTPおよびクリングル領域4~5を含まない、[2]または[3]のアンジオスタチン様ポリペプチド;
[5]イヌプラスミノーゲンが天然型の糖鎖を有する、[2]~[4]のいずれかのアンジオスタチン様ポリペプチド;
[6][2]~[5]のいずれかのアンジオスタチン様ポリペプチドを含む、血管新生阻害用組成物
に関する。
[1]イヌプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化することを含む、アンジオスタチン様ポリペプチドの製造方法;
[2]イヌプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化することによって得られる、アンジオスタチン様ポリペプチド;
[3]N末端アミノ酸が配列番号1のアミノ酸配列の78位のアルギニンまたは81位のロイシンであり、還元条件下のドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって決定される分子量が35~38kDaである、[2]のアンジオスタチン様ポリペプチド;
[4]クリングル領域1~3を含み、NTPおよびクリングル領域4~5を含まない、[2]または[3]のアンジオスタチン様ポリペプチド;
[5]イヌプラスミノーゲンが天然型の糖鎖を有する、[2]~[4]のいずれかのアンジオスタチン様ポリペプチド;
[6][2]~[5]のいずれかのアンジオスタチン様ポリペプチドを含む、血管新生阻害用組成物
に関する。
本明細書において使用する「イヌプラスミノーゲン」(「cPlg」ともいう)なる用語は、イヌ由来のプラスミノーゲンを指す。プラスミノーゲンは、動物の血漿中に存在する、プラスミンの前駆体であり、プラスミノーゲンアクチベータによって切断されて活性なプラスミンに変換される。プラスミンは5個のクリングル領域(K1~K5)を含むH鎖と、セリンプロテアーゼ活性中心を含むL鎖とからなる。本発明の目的のためには天然型の糖鎖を有するプラスミノーゲンが好適に使用される。「天然型の糖鎖を有する」とは、天然のプラスミノーゲンに結合した糖鎖と実質的に同一の構造を有する糖鎖を同一の部位に有することを意味する。イヌプラスミンのH鎖にはN結合型糖鎖が結合する可能性があるコンセンサス配列(Asn-Xaa-Ser/Thr)が2箇所存在する(配列番号1の117~119位および289~291位)。このうち後者はヒトプラスミンのN結合型糖鎖結合部位に相当し、イヌプラスミンにおいても実際に糖鎖が結合していると考えられる。天然型糖鎖を有するイヌプラスミノーゲンは、例えば、イヌ血漿から精製して得ることができる。あるいは、公知のイヌプラスミノーゲンのアミノ酸配列(配列番号1)に基づいて、組換えDNA技術などを使用して産生されたプラスミノーゲンであっても、天然型糖鎖を有するのであれば使用することができる。配列番号1のアミノ酸配列において、プラスミノーゲンアクチベータによる切断部位は563位と564位との間に存在し、78から563位がH鎖に、564~793位がL鎖に相当し、1~77位の領域はN末端ペプチド(N-terminal peptide;NTP)と称する。クリングル領域をそれぞれの領域の最もN末端側および最もC末端側のシステイン(Cys)残基にはさまれた領域と定義すれば、クリングル領域1~5はそれぞれ配列番号1の84~162位、166位~243位、256~333位、360~437位、464~543位の領域に相当する。
本明細書において使用する「バシロライシンMA」(「BL-MA」ともいう)なる用語は、バチルス・メガテリウム(Bacillus megaterium)A9542株が産生するプロテアーゼを指す。バシロライシンMAは、ヒトプラスミノーゲンを特異的に切断して、アンジオスタチン様フラグメント(主生成物はGlu1からSer441のアミノ酸配列を有するフラグメント;アミノ酸番号はヒトプラスミノーゲンのアミノ酸配列(SWISSPROTアクセッション番号P00747)からシグナルペプチドを除外した成熟ポリペプチド(すなわち、Glu1-Asn791)のアミノ酸配列に基づく)を生成する活性を示す。バチルス・メガテリウム A9542株は、〒305-8566茨城県つくば市東1-1-1 つくばセンター 中央第6、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに受託番号FERM P-18268の下、2001年3月21日に寄託されている。
本明細書において使用する「アンジオスタチン」なる用語は、プラスミノーゲンに由来し、プラスミノーゲンのクリングル領域1~4を含む、血管新生阻害活性を示すポリペプチドを指す。本明細書において使用する「アンジオスタチン様ポリペプチド」なる用語は、アンジオスタチンと同様の血管新生阻害活性を示すプラスミノーゲン由来のポリペプチドを指す。本発明によれば、アンジオスタチン様ポリペプチドは、イヌプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化することによって得られる。なお、本発明のアンジオスタチン様ポリペプチドは必ずしも単一の分子種からなるものではなく、N末端アミノ酸や糖鎖構造の異なる複数の分子種の混合物であってもよい。本明細書において、イヌプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化して得られるアンジオスタチン様ポリペプチドを「cBLAS」ともいう。本発明によれば天然型の糖鎖を有するイヌプラスミノーゲンが出発材料として使用されるので、その糖鎖以外のポリペプチド部分(「ポリペプチド骨格」という)はイヌプラスミノーゲン由来のアミノ酸配列からなり、そして本発明のアンジオスタチン様ポリペプチドは天然型糖鎖を有する。この消化物をアフィニティクロマトグラフィー(例えば、Lys-Sepharose)に供することによってアンジオスタチン様ポリペプチドをさらに精製してもよい。血管新生阻害活性は、例えば、市販のキットなどを使用して、内皮細胞による血管新生に対する試験物質の効果を観察することによってインビトロで測定することができる。あるいは、血管新生阻害活性は、例えば特許文献4に記載されるように、マウスに皮下移植したルイス肺癌の成長に対する試験物質の効果を観察することによってインビボで測定することができる。
1つの実施態様において、本発明のアンジオスタチン様ポリペプチドは、還元条件下のドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミド電気泳動(SDS-PAGE)で例えば34~40kDa、好ましくは35~38kDa、より好ましくは36~37kDaの分子量を示す。1つの実施態様において、本発明のアンジオスタチン様ポリペプチドのN末端アミノ酸は、配列番号1のアミノ酸配列の78位のアルギニン(Arg78)または81位のロイシン(Leu81)である。1つの実施態様において、本発明のアンジオスタチン様ポリペプチドのC末端アミノ酸は、配列番号1のアミノ酸配列の342位のチロシン(Tyr342)である。1つの実施態様において、本発明のアンジオスタチン様ポリペプチドは、その糖鎖以外のポリペプチド部分(ポリペプチド骨格)が、配列番号1のアミノ酸配列のArg78またはLeu81からTyr342までのアミノ酸配列からなる。配列番号1のアミノ酸配列のArg78-Tyr342およびLeu81-Tyr342のアミノ酸配列をそれぞれ配列番号2および3に示す。この領域にはクリングル領域1~3は含まれるが、NTPおよびクリングル領域4~5は含まれない。上記のヒトプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化して得られるアンジオスタチン様フラグメントの主生成物はヒトプラスミノーゲンのGlu1からSer441のアミノ酸配列を有する。この配列にはNTPおよびクリングル領域1~4が含まれる。このように、本発明のイヌプラスミノーゲン由来のアンジオスタチン様ポリペプチドは、ヒト由来のアンジオスタチン様フラグメントと非常に異なった構造を有している。また、特許文献1および2に記載される組換えイヌアンジオスタチンはいずれもイヌプラスミノーゲンのクリングル領域1~4を含むものであり、本発明のアンジオスタチン様ポリペプチドとは異なる構造を有している。
プラスミノーゲンのバシロライシンMAでの消化の条件は、血管新生阻害活性を示すポリペプチドが得られるように適宜選択される。バシロライシンMAはその酵素反応にCa2+を必要とするので、消化はCa2+の存在下行われる。反応温度は、バシロライシンMAの至適温度(約50~60℃)、基質(プラスミノーゲン)の安定性などを考慮して選択され、例えば0~60℃、好ましくは20~50℃、より好ましくは30~40℃、さらに好ましくは37℃である。反応時間、酵素および基質の反応液中の濃度などの他の条件も当業者によって適宜決定される。反応時間は、例えば0.5~2.5時間、好ましくは1~2時間である。酵素(バシロライシンMA)の濃度(分子量34kDaに基づいて算出される濃度)は例えば50~500nM、好ましくは100~300nM、より好ましくは150nMである。基質(イヌプラスミノーゲン)の濃度は例えば0.1~2mg/mL、好ましくは0.2~1.0mg/mL、より好ましくは0.5mg/mLである。
本発明の製造方法によって得られるアンジオスタチン様ポリペプチドは、血管新生阻害活性を示す。バシロライシンMAはヒトプラスミノーゲンに対する作用に基づいて得られた酵素であるので、ヒトプラスミノーゲンのアミノ酸配列とは異なるアミノ酸配列を有するヒト以外の動物であるイヌ由来のプラスミノーゲンにバシロライシンMAを作用させた場合に、アンジオスタチン様の血管新生阻害活性を有するフラグメントが得られるかどうかは不明であった。例えば、バシロライシンMAによるヒトプラスミノーゲンの切断部位は441位のセリン(Ser)と442位のバリン(Val)との間である。一方、これらのアミノ酸に相当するイヌプラスミノーゲンのアミノ酸は配列番号1の443位のセリン(Ser)および444位のAlaである。このような基質のアミノ酸配列の相違に加えて、バシロライシンMAの切断部位を一次アミノ酸配列のみから予測することはできないという理由から、イヌプラスミノーゲンにバシロライシンMAを作用させて得られるポリペプチドの構造を予測することはできなかった。従って、上記の知見は予想外であった。また、本発明の製造方法によって得られるアンジオスタチン様ポリペプチドは、天然型糖鎖を有するプラスミノーゲンを出発材料として得られるので、天然型糖鎖を有する。従って、天然型糖鎖を有していない場合に生じる可能性のある抗原性や失活などの問題を考慮する必要がないという点で本発明は有利である。
本発明により、上記のアンジオスタチン様ポリペプチドを含む組成物が提供される。この組成物は、血管新生を阻害するために使用することができる。例えば、本発明のアンジオスタチン様ポリペプチドを含有する組成物を対象に投与することによって、血管新生の阻害が所望される疾患を処置することができる。疾患としては癌が例示される。投与対象は処置を必要とする任意の哺乳動物であり得るが、好ましくはイヌである。組成物には、他の血管新生阻害剤、薬学的に許容される賦形剤など、任意の成分をさらに含めることができる。製剤の形態および投与経路は、公知のものから任意に選択することができる。例えば、注射用製剤を静脈注射によって対象に投与することができる。
以下、実施例により本発明を詳細に説明するが、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
実施例1:バシロライシンMA(BL-MA)の精製
グルコース1%、コーンスターチ 3%、大豆ミール1%、ペプトン 0.5%、イーストエキス0.5%、CaCO3 0.2%、CB442 0.01%を含む液体培地(pH7.0)100mLを含む500mL容三角フラスコ中で、バチルス・メガテリウム A9542株(〒305-8566茨城県つくば市東1-1-1 つくばセンター 中央第6、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに受託番号FERM P-18268の下、2001年3月21日に寄託)を28℃、6日間振とう培養した。培養後、培養液3Lをセライト(Celite(登録商標))を通してろ過し、そのろ液1LをH2Oで希釈して5Lにし、イソプロピルアルコールを最終濃度5%(v/v)となるように添加した。この混合物を、20mM MES(2‐[N‐モルホリノ]エタンスルホン酸)-NaOH(pH6.5)/5%イソプロピルアルコールで平衡化したカルボキシルメチルセルロース(生化学工業株式会社)カラム(400mLのゲル)に流速15mL/分でアプライした。同じ緩衝液600mLで洗浄した後、20mM MES-NaOH(pH6.5)/5%イソプロピルアルコール/0.2M NaClで溶出した。その溶出画分を60mLずつ分画し、活性の認められた画分を集めた。その純度をSDS-PAGEで確認し、精製品90mgを得た。なお、以下では、BL-MAの濃度を、その分子量(34kDa)に基づいて算出される「nM」、「μM」などの単位で表示する。
グルコース1%、コーンスターチ 3%、大豆ミール1%、ペプトン 0.5%、イーストエキス0.5%、CaCO3 0.2%、CB442 0.01%を含む液体培地(pH7.0)100mLを含む500mL容三角フラスコ中で、バチルス・メガテリウム A9542株(〒305-8566茨城県つくば市東1-1-1 つくばセンター 中央第6、独立行政法人産業技術総合研究所特許生物寄託センターに受託番号FERM P-18268の下、2001年3月21日に寄託)を28℃、6日間振とう培養した。培養後、培養液3Lをセライト(Celite(登録商標))を通してろ過し、そのろ液1LをH2Oで希釈して5Lにし、イソプロピルアルコールを最終濃度5%(v/v)となるように添加した。この混合物を、20mM MES(2‐[N‐モルホリノ]エタンスルホン酸)-NaOH(pH6.5)/5%イソプロピルアルコールで平衡化したカルボキシルメチルセルロース(生化学工業株式会社)カラム(400mLのゲル)に流速15mL/分でアプライした。同じ緩衝液600mLで洗浄した後、20mM MES-NaOH(pH6.5)/5%イソプロピルアルコール/0.2M NaClで溶出した。その溶出画分を60mLずつ分画し、活性の認められた画分を集めた。その純度をSDS-PAGEで確認し、精製品90mgを得た。なお、以下では、BL-MAの濃度を、その分子量(34kDa)に基づいて算出される「nM」、「μM」などの単位で表示する。
実施例2:イヌプラスミノーゲン(cPlg)の精製
cPlgの精製を以下の1)~8)に記載する手順に従って行った。クロマトグラフィーの流速は特に指定がない限り、8mL/分であった。
cPlgの精製を以下の1)~8)に記載する手順に従って行った。クロマトグラフィーの流速は特に指定がない限り、8mL/分であった。
1)45mLのLys-Sepharose(GE healthcare、17-0960-01)を、平衡化緩衝液(0.1M NH4HCO3(pH 8.3))を用いてXK26/20カラム(GE healthcare、18-1000-72)に充填した(φ2.6×11cm)。
2)カラムを225mLの平衡化緩衝液で平衡化した。
3)380μLの105 KIU/mLのアプロチニン(和光純薬、016-11826)を、380mLのイヌ血漿(オリエンタル酵母)に添加した(血漿は、低温で、泡立たせないように取り扱った)。
4)この血漿を上記Lys-Sepharoseにアプライし、その後、1350 mLの洗浄緩衝液(0.1M NH4HCO3(pH 8.3)/0.5M NaCl)で洗浄した(流速15mL/分)。
5)カラムの3倍容量の溶出緩衝液(0.1M NH4HCO3(pH 8.3)/0.2M ε-アミノカプロン酸(EACA))を用いて溶出した。280nmの吸光を観察し、検出されるピークに相当する画分の溶出液を回収した。
6)溶出液の一部をSDS-PAGEにより評価し、cPlgの純度、収量を確認した。残りの溶出液は以下のように硫安沈殿により濃縮した。溶出液100mLに対して、乳鉢で十分に細かくした硫酸アンモニウムを、氷上で溶出液を攪拌しながら、10gを5分程度の添加速度で39g添加した(60%飽和度)。全ての硫安を添加後、さらに15分間攪拌し、16,000×g、4℃で30分間遠心分離し、上清を別のチューブにデカンテーションにより移し、沈殿のあるチューブを再度16,000×g、4℃で5分間遠心分離し、上清を、ピペットを用いて先程のチューブに移した。得られた沈殿と上清はそれぞれ、-30℃、4℃で保存した。
7)凍結(-30℃)したcPlgに、数mLのTBS/T(50mM Tris-HCl(pH 7.4(25℃))/100mM NaCl/0.01% Tween80)を添加して沈殿を溶解し、この溶液を他の凍結cPlgを含むチューブに順次移し、同様の操作を繰り返し、高濃度のcPlg溶液を調製した。
8)上述で調製したcPlg溶液を透析膜セルロースチューブ20/32(三光純薬)に移し、20倍量のTBS/Tに対して透析を行った。2時間ごとにTBS/Tを5回交換し、cPlgの精製物とした。
Lowry法によりタンパク質を定量した。1.5mLのチューブ中で、8)で得られた透析後cPlg 20μLを40μLの0.1 Mの水酸化ナトリウムで希釈した。更に、2%(w/v)Na2CO3/0.1M水酸化ナトリウムと0.5%CuSO4・5H2O/1%クエン酸ナトリウムを50:1の割合で混合した溶液300μLを先のチューブに添加し、十分混和し、15分間室温で反応させた。反応後、30μLのフェノール試薬を添加し、十分混和し、さらに30分間室温で反応させた。この反応液の200μLを96ウェルプレートに移し、750nmの吸光度を測定した。20~100μg/mLのBSAを用いて同様の操作を行って吸光度を測定することによって検量線を作成した。この検量線に基づいて試料のタンパク濃度を算出した。
cPlgの精製は計11回行った。透析後のタンパク定量結果から、448mgのcPlgが得られたことが分かった。また、溶出液1μLをドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミド電気泳動(SDS-PAGE、10%、還元条件)に供した際に、cPlg以外のバンドが観察されなかったため、純度は95%以上であると推定した。使用したイヌ血漿の総量は4030mLであるため、収率は111mg/L血漿であった。
実施例4:cPlg開裂条件の検討
TBS/T/Ca(50mM Tris-HCl(pH7.4(25℃))/100mM NaCl/0.01%Tween80/1mM CaCl2)46.4μLを1.5mLプラスチックチューブにとり、このチューブに1.6mg/mL cPlg 25.6μL(原液をTBS/T/Caで希釈して調製)を添加し、均一に混和した。このチューブに1.5μM BL-MA 8μL(原液をTBS/T/Caで希釈して調製)を添加し、均一に混和した。このチューブを37℃のウォーターバスで加温し、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5時間目にチューブから10μLの反応液を取り、別の1.5mLプラスチックチューブに移した。このチューブを直ぐに氷上に移し,60mM EDTA 2μLを添加して酵素反応を停止させた。続いてこのチューブにEzApply(AE-1430、ATTO)12μLを添加し、全量(24μL)を電気泳動で分画した。
TBS/T/Ca(50mM Tris-HCl(pH7.4(25℃))/100mM NaCl/0.01%Tween80/1mM CaCl2)46.4μLを1.5mLプラスチックチューブにとり、このチューブに1.6mg/mL cPlg 25.6μL(原液をTBS/T/Caで希釈して調製)を添加し、均一に混和した。このチューブに1.5μM BL-MA 8μL(原液をTBS/T/Caで希釈して調製)を添加し、均一に混和した。このチューブを37℃のウォーターバスで加温し、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5時間目にチューブから10μLの反応液を取り、別の1.5mLプラスチックチューブに移した。このチューブを直ぐに氷上に移し,60mM EDTA 2μLを添加して酵素反応を停止させた。続いてこのチューブにEzApply(AE-1430、ATTO)12μLを添加し、全量(24μL)を電気泳動で分画した。
その結果、1.0~2.0時間の試料について、cBLASへの変換を示す2本のバンドが観察された。さらに加温すると、上記2本のバンドのうち、下のバンドの強度がさらに増加し、cPlg由来のcBLAS以外の部分に相当する約50kDaおよび約53kDaのバンドが時間経過とともに減少した。cBLASの下のバンドの強度の増強がこれらの分解物に起因する可能性も考えられた。そこで、cPlgの開裂に最適な反応時間は1~2時間とした。
37℃の反応温度を使用した。BL-MAの至適温度はより高い温度(50~60℃)であるが、基質タンパク質(cPlg)の変性を回避するためにこの温度を選択した。
実施例5:イヌBLアンジオスタチン(cBLAS)の調製
0.5mg/mLのcPlgと150nMのBL-MAをTBS/T/Ca中、37℃で2時間インキュベートした。その後、最終濃度が10mMとなるようにEDTA-2Naを添加し、反応を停止した。得られた反応液は直ちにLys-Sepharoseを用いた精製に供した。
0.5mg/mLのcPlgと150nMのBL-MAをTBS/T/Ca中、37℃で2時間インキュベートした。その後、最終濃度が10mMとなるようにEDTA-2Naを添加し、反応を停止した。得られた反応液は直ちにLys-Sepharoseを用いた精製に供した。
cBLASを精製するためのクロマトグラフィーは1mL/分で実施した。cPlg量224mgに相当する上述の反応液を60mLのLys-Sepharose(カラムの5倍量の平衡化緩衝液で平衡しておいた)へアプライした。その後、カラムの10倍量の平衡化緩衝液で洗浄した。溶出は、グラジエント溶出(カラムの5倍量;平衡化緩衝液中のEACA濃度を0mMから8mMへ増加させた)、8mM EACAを含む平衡化緩衝液での溶出(カラムの3倍量)によって行った。溶出画分は10mLずつ分取した。
SDS-PAGEにおいてcBLASのバンドが確認された画分を、超純水に対して、超純水を用いた以外は実施例2と同様にして透析し、凍結乾燥し、生理食塩水に溶解後、0.2μmのディスクフィルターを用いてろ過滅菌した。試料の一部を、タンパク定量(実施例2に記載のLowry法による)およびSDS-PAGEによる純度検定に供した。
448mgのcPlgから約140mgのcBLASが得られた(35.7 mg/mLのcBLAS溶液約4mL)。また、溶出液1μLをSDS-PAGE(10%、還元条件)に供した際に、cBLAS以外のバンドが観察されなかったため、純度は95%以上であると推定した。cBLAS溶液は、-80℃で保存した。cPlgおよびcBLASのSDS-PAGEでの分子量(それぞれ約100kDaおよび約37kDa)に基づいて、回収率は約84%と算出された(140/(448×37/100))。
実施例6:部分アミノ酸配列の決定
実施例1で得られたcBLASをSDS-PAGEに供した。2本のcBLASに相当する36~37kDaのバンドが確認された(図1、左レーン)。ゲル中のタンパク質をPVDF膜(フルオロトランス(登録商標)、日本ジェネティクス株式会社)に転写した後、目的のバンドを切り出し、476A Protein Sequencer(Applied Biosystems)を使用してN末端アミノ酸配列を解析した。cPlgのBL-MA消化物(未精製)をSDS-PAGEに供すると、さらにいくつかのバンドが見られた(図1、右レーン)。この中で最も優勢な約53kDaのバンドも同様に配列解析に供した。
実施例1で得られたcBLASをSDS-PAGEに供した。2本のcBLASに相当する36~37kDaのバンドが確認された(図1、左レーン)。ゲル中のタンパク質をPVDF膜(フルオロトランス(登録商標)、日本ジェネティクス株式会社)に転写した後、目的のバンドを切り出し、476A Protein Sequencer(Applied Biosystems)を使用してN末端アミノ酸配列を解析した。cPlgのBL-MA消化物(未精製)をSDS-PAGEに供すると、さらにいくつかのバンドが見られた(図1、右レーン)。この中で最も優勢な約53kDaのバンドも同様に配列解析に供した。
cBLASの上下のバンドについて決定されたN末端配列はそれぞれArg-Ile-Tyr-Leu、およびLeu-Ser-Glu-XXX-Lysであった。この配列はそれぞれcPlgのArg78、Leu81から開始する配列に一致した。またcPlgのBL-MA消化物において優勢な約53kDaのバンドのN末端配列はLeu-Asp-Ala-Pro-Alaであった。この配列はcPlgのLeu343から開始する配列に一致した。以上の結果から、cBLASのC末端アミノ酸配列はTyr342であると推測した。なお、実施例4において見られた約50kDaのバンドに対応するポリペプチドのN末端はVal356であると決定され、このポリペプチドは上記の約53kDaのバンドに対応するポリペプチドがさらに分解されて生じたことが示唆された。
実施例7:cBLASの活性の評価
血管内皮増殖因子(VEGF)により誘導されるヒト内皮細胞の血管新生に対するイヌBLアンジオスタチン(cBLAS)の作用について、血管新生キット(Angiogenesis kit;倉敷紡績株式会社)を用いて検討した。
血管内皮増殖因子(VEGF)により誘導されるヒト内皮細胞の血管新生に対するイヌBLアンジオスタチン(cBLAS)の作用について、血管新生キット(Angiogenesis kit;倉敷紡績株式会社)を用いて検討した。
試験群として「生理食塩水群」(水10mL中塩化ナトリウム85mg)、「VEGF群」(VEGF 10ng/mL)、ならびに「cBLAS群」(VEGF 10ng/mL+cBLAS 1、10、100μg/mL、以降、「cBLAS 1μg/mL群」、「cBLAS 10μg/mL群」、「cBLAS 100μg/mL群」と称する)の計5群を使用して実験を行った。血管新生キット到着日(1日目)に、培地を、cBLAS群についてはVEGFを含まないキット添付の培地(VEGF(-)培地)に試験サンプル(所定の濃度のcBLAS)を添加した培地に交換し、生理食塩水群およびVEGF群については試験サンプルと同量の生理食塩水を添加したVEGF(-)培地に交換した。2、4、7、9日目に、培地を、cBLAS群についてはVEGFを含むキット添付の培地(VEGF(+)培地)に試験サンプル(所定の濃度のcBLAS)を添加した培地に交換し、生理食塩水群についてはVEGF(-)培地に交換し、VEGF群についてはVEGF(+)培地に試験サンプルと同量の生理食塩水を添加した培地に交換した。11日目に血管新生染色キットの説明書に従って抗CD31(PECAM-1)抗体での染色を行った。画像解析システムWinROOF(Visual System)を使用して染色領域(染色された領域の全視野に対する割合)を測定し、得られた数値の統計学的解析をエクセル統計2006(Ver.1.41)(社会情報サービス(SSRI))を使用してDunnettの多重比較により行った。
生理食塩水群について測定された染色領域は2.79±0.13%(平均値±標準偏差)であった。VEGF群、cBLAS 1μg/mL群、cBLAS 10μg/mL群、cBLAS 100μg/mL群について測定された染色領域はそれぞれ、3.06±0.11%、3.00±0.11%、2.08±0.19%、1.25±0.11%であった(図2)。VEGF群と比較して、cBLAS 10μg/mL群、cBLAS 100μg/mL群では,内皮細胞の増殖が有意に阻害された(P<0.01)。なお、VEGF群では生理食塩水群と比較して有意な血管新生が観察されなかった。生理食塩水のみでは血管新生は起こらないと考えられるので、この結果は、上記条件ではVEGFによる血管新生効果が観察されなかったことを示す。従って、上記結果は、cBLASが既存の内皮細胞の生存を阻害している可能性を示唆する。以上のように、本試験条件下においてcBLASはヒト内皮細胞の増殖を有意に阻害することが確認された。
本発明により、天然型糖鎖を有するイヌプラスミノーゲンからアンジオスタチン様ポリペプチドを製造するための方法、およびこの方法によって得られたイヌアンジオスタチン様ポリペプチドが提供される。
Claims (6)
- イヌプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化することを含む、アンジオスタチン様ポリペプチドの製造方法。
- イヌプラスミノーゲンをバシロライシンMAで消化することによって得られる、アンジオスタチン様ポリペプチド。
- N末端アミノ酸が配列番号1のアミノ酸配列の78位のアルギニンまたは81位のロイシンであり、還元条件下のドデシル硫酸ナトリウム-ポリアクリルアミドゲル電気泳動によって決定される分子量が35~38kDaである、請求項2記載のアンジオスタチン様ポリペプチド。
- クリングル領域1~3を含み、NTPおよびクリングル領域4~5を含まない、請求項2または3記載のアンジオスタチン様ポリペプチド。
- イヌプラスミノーゲンが天然型の糖鎖を有する、請求項2~4のいずれか1項記載のアンジオスタチン様ポリペプチド。
- 請求項2~5のいずれか1項記載のアンジオスタチン様ポリペプチドを含む、血管新生阻害用組成物。
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2008
- 2008-12-17 WO PCT/JP2008/072974 patent/WO2010070746A1/ja active Application Filing
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