[go: up one dir, main page]

SU85755A1 - A method of manufacturing a vaccine against infectious goat pleuropneumonia - Google Patents

A method of manufacturing a vaccine against infectious goat pleuropneumonia

Info

Publication number
SU85755A1
SU85755A1 SU397959A SU397959A SU85755A1 SU 85755 A1 SU85755 A1 SU 85755A1 SU 397959 A SU397959 A SU 397959A SU 397959 A SU397959 A SU 397959A SU 85755 A1 SU85755 A1 SU 85755A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
goats
vaccine
pleuropneumonia
manufacturing
vaccine against
Prior art date
Application number
SU397959A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ф.Д. Лукашенко
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed filed Critical
Priority to SU397959A priority Critical patent/SU85755A1/en
Application granted granted Critical
Publication of SU85755A1 publication Critical patent/SU85755A1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Description

Обычно гидроокись-алюминиевые вакцины зготовл ют пз вирулентного материала и нримем ют против чумы кур, осны овец,  щура н др., но против инфекционной плевропневмоши коз онн оказывались недостаточно эффективными.Usually, aluminum hydroxide-aluminum vaccines were prepared by virulent material and were taken against the plague of chickens, sheep, shch, and others, but they were not sufficiently effective against infectious pleuropneumus mosquitoes.

В описываемом способе дл  изготовлени  гидроокись-алюминиевой формол-вакцины в качестве исходного вирусосодержашего материала берут легочную ткань, нмеюн.ую характерные норажени . лимфатические узлы грудно/ и плевральной зксудат от коз, больных остреи формой инфекционной плевропневмонии с  рко выраженными клинически .ми признаками в среднем на 5-8 сутки болезни. У убитых коз снимают шкуру, удал ют пин;езарительиые органы, отдел ют голову и заднюю часть туловиида в области по еннчпых позвонков, а грудную часть туловища перенос т в стерильную комнату. Вскрытие и извлечение легочной ткани и лимфатических желез производ т через диафрагму или путем вскрьгги  грудной клетки, но предварительно извлекают воспалнтельный экеудат из грудной полости. Вскрытие и извлечение органов про.изводпте  ео строгим соблюденнем асептики.In the described method, for the manufacture of a hydroxide-aluminum formol vaccine, pulmonary tissue is taken as the initial virus-containing material, which is characterized by characteristic signs. thoracic / and pleural lymph nodes from goats, patients with an acute form of infectious pleuropneumonia with prominent clinically apparent symptoms on average 5-8 days of illness. The killed goats are skinned, the pin is removed, the small organs are separated, the head and back of the body are separated in the region of the vertebrae, and the chest part of the body is transferred to a sterile room. The lung tissue and lymphatic glands are opened and removed through the diaphragm or through the chest cavity, but the inflammatory eculate is extracted from the chest cavity. Opening and removal of organs produced by the manufacturer with strict asepsis.

Пригодной дл  изготовлени  вакцины считаетс  ткань, имеюща  поражени , характерные дл  острой формы заболевани , а именно, острую гипере,ию легочной ткани и стадию красной и серой генатизании. В межплевральном пространстве в больщинстве случаев имеетс  скопление эксудата и свернувшегос  фибрина. Полученную легочную ткань н лимфатические железы подвергают размельчению в .м сорубке. Измельчение производ т путем последовательного применени  в м сорубке решеток с различным диаметром отверстий (уменьша  до I мм).Tissue with lesions characteristic of the acute form of the disease, namely, acute hypere, lung tissue and a stage of red and gray genation, is considered suitable for the manufacture of a vaccine. In most cases there is an accumulation of exudate and coagulated fibrin in the interpleural space. The resulting lung tissue n lymph glands are subjected to grinding in. M cutting. Grinding is carried out by successive use of cutting gratings with different aperture diameters in m (reducing to I mm).

Эксудат из межнлеврального пространства получают путем введенн  через диафрагму етекл ниой канюли или иглы, соединеиной с резиновым шлангом и еосудом.Exudate from the interstitial space is obtained by inserting a fluid cannula or needle through the diaphragm, connecting it with a rubber hose and vessel.

Дл  изготовлени  вакцины берут воспалительный эксудат грудной полости, вирулентный измельченный материал, гидроокиеь алюмиии For the manufacture of the vaccine take inflammatory exudate of the chest cavity, virulent crushed material, hydrokali aluminum

№ 8575585755

и буферный раствор, которые смешивают в следующих пропорци х: 5 вес. ч. гидроокиси адюмини  (6%); 4 ьес. ч. раствора фосфатного буфера; вес. ч. вирусной взвеси с иоследуюн1,ей ииактивацией формалином 38-40%-ным в колнчестве 0,1% ко всей смеси.and a buffer solution, which is mixed in the following proportions: 5 wt. adyumin hydroxide (6%); 4th day including phosphate buffer solution; weight. including viral suspension with subsequentin1, it is 38-40% in total 0.1% to the mixture by formalinactivation by formalin.

1 90 вес. ч. стеридьной смеси гидрата окнси алюмини  и буферного раствора добавл ют 10 вее. ч. 1 ируеиой взвеси, ноеле чего нроизвод т тщательное взбалтываине (нгуттулнрованне) жидкости li течение 30 MIH-.1 90 weight. including a steroid mixture of oxy-aluminum hydrate and a buffer solution was added 10 days. Part 1 of the liquid suspension, but of which it is produced by thoroughly stirring up the liquid (ngutlured) of the liquid for 30 MIH-.

После 24 час. выдержки к холодном месте смесь формалиннзируетс  из расчета 0,1% формалина, содержап;е|-о 38-40% формальдегида, д количеству смеси.After 24 hours holding the mixture to a cold place is formalinized at the rate of 0.1% formalin content; 38–40% formaldehyde is used for the amount of the mixture.

Закончив формалниизацию, бутыль с вакниной закрывают и тут же нронзБОД т взбалтывание в течение 5--6 мин. и став т в термостат или комнату дл  инактивации иа 48 час. при темнерату 1е 15-20°.Having completed the formalization, the bottle of vaknina is closed and immediately the nronzBOD t is agitated for 5--6 minutes. and placed in a thermostat or room for inactivation for 48 hours. at temneru 1e 15-20 °.

После 48-час. 15ыдержкн вйкнкну в бутыл х став т в темное ирохладное место, желательно с температурой 5-10°.After 48-hour Put the bottle in a bottle in a dark and cool place, preferably with a temperature of 5-10 °.

После расфасовки вакцина подвергаетс  бактериолог1 ческому и биологичес1;ому контро.тю.After packaging, the vaccine is subjected to bacteriological and biological control.

Бактериологический контроль ироводитс  иутем высева на питательные среды. Посевы выдерживаютс  в термостате при температуре 37-38° не менее 10 суток. При иаличии роста устанавли15аютс  вид и патогениость микроф торы. Наличие непатогенной микрофлоры в отдельны .х сери х вакцины не может преп тствовать ее выпуску дл  практического применени .Bacteriological control is carried out by sowing on nutrient media. Crops are kept in a thermostat at a temperature of 37-38 ° for at least 10 days. In case of growth, the type and pathogenicity of microorganisms are established. The presence of non-pathogenic microflora in separate vaccine series cannot prevent its release for practical use.

Биологическа  проверка на безвредность нроводитс :Biological safety test is carried out:

на двух кроликах в дозе2 слгon two rabbits in a dose of 2 slg

на морских свннках в дозе1 „at sea dose1

иа двух белых iMbiinax в дозе0,2 ,,ia two white iMbiinax at a dose of 0.2 ,,

Вакцину ввод т подкожно кроли1сам и морским свинкам в область живота, белым мышам-в область снины.The vaccine is administered subcutaneously to rabbits and guinea pigs in the abdominal area, while white mice are injected into the area.

Безвредность вакцины ировер ют также на козах нутем нодкожного введени  в дозе 10 см.The safety of the vaccine is also controlled on goats with a dose of 10 cm.

Испытание активности вакцины провод т на козах. Дл  этой цели берут четыре козы в возрасте 1,5-3 лет, которым вспрыскивают вакцину в дозе 5 см в области . Повториую вакцинацию провод т через 7 дней в тех же дозах. Па месте введени  вакцины обычно образуютс  незначительные подкожные уплотнени  вследст1зне медленного рассасыванн  гидрата окнси алюмини .Vaccine activity tests are performed on goats. For this purpose, four goats, ages 1.5-3 years old, are injected with a dose of 5 cm in the field. Repeated vaccination was carried out after 7 days at the same doses. At the site of the vaccine, minor subcutaneous consolidations are usually formed due to the slow resolution of the oxy-aluminum oxide hydrate.

Контрольное заражение г,нрусом вакцинированных коз ироизводитс  через 13-15 дней после второй привнвкн вакцины. Вирус в виде свежевз того эксудата нлеврального пли 1 ирусиой тканевой взвеси вводитс  четырем вакцинированньгм и трем контрольным козам интратрахеально в дозе 1-2 с.м. Дл  контрольного заражени  допускаетс  вирус не более 3-дневного хранени  в помешепии при температуре 4-6°.The challenge of infection with the people of the vaccinated goats is produced 13-15 days after the second vaccine vaccine. The virus in the form of a freshly exudate of a non-ple or 1 and a suspended tissue suspension is injected with four vaccinated and three control goats intratracheally at a dose of 1-2 cm. For the control of infection, no more than 3-day storage of the virus is allowed, at a temperature of 4-6 ° C.

Вакцина считаетс  активной, если в течение 20 дней срока наблюдени  после контрольного заражепп  все четыре вакцииирова П1ые козы не заболева от, а три контро;1ьных должны иметь клинику инфекционной плевропневмонии с детальны:, неходом.A vaccine is considered active if, within 20 days of the observation period after the control infection, all four vaccinated I1 goats are not sick of, and three controllers must have an infectious pleuropneumonia clinic with detailed information on it.

Если нз четырех вакцинированных коз о,ана заболевает, но выздоравливает , а все контрольные погнбают, вакцина также ечитаете  активной .If there are about four vaccinated goats, about ana becomes sick, but recovers, and all controls gobble up, the vaccine is also active.

Вакцина также считаетс  акт1-п ной нри условии заболевани  всех трех контрольных, но гибели из них двух коз и одной оста1зшейс  в ia-iвых .The vaccine is also considered to be an act of panic disease under the condition of the disease of all three control, but the death of them two goats and one left in the ia-i.

Вакцина примен етс  с профилактической целью двухкратно путем подкожного введени  в дозах 3-5 см, в зависимости от возраста коз.The vaccine is used prophylactically twice by subcutaneous administration in doses of 3-5 cm, depending on the age of the goats.

Предмет изобретени Subject invention

Claims (2)

1. Способ изготовлени  вакцины иротив инфекционной плевроиневмонин коз, отличающийс  тем, что в качестве исходного вирусосодержащего материала берут легочную ткань, имеющую характерные поражени , лимфатические узлы грудной полости и плевральной эксудат от коз, больных острой формой инфекционной плевропневмонии.1. A method of manufacturing a vaccine against infectious goats pleuroinemonin, characterized in that lung tissue having characteristic lesions, lymph nodes of the chest cavity and pleural exudate from goats, patients with an acute form of infectious pleuropneumonia, is taken as the original virus-containing material. 2. Прием выполнени  способа по п. , отличающийс  тем, что в рулентный материал после измельчани  и фильтрации смещивают с 5 вес. ч. 6%-иой гидроокиси алюмини , 4 вес. ч. раствора фосфатного буфера и 1 вес. ч. вирулентного материала с последующей инактивацией вируса формалином, добавл емым в количестве 0,1% ко всей смеси.2. Acceptance of the method according to claim 1, characterized in that, after grinding and filtering, the coil material is shifted from 5 wt. including 6% aluminum hydroxide, 4 wt. including a solution of phosphate buffer and 1 wt. including virulent material followed by inactivation of the virus with formalin, added in an amount of 0.1% to the entire mixture. - 3 -ЛЬ 85755- 3 -LE 85755
SU397959A 1949-05-26 1949-05-26 A method of manufacturing a vaccine against infectious goat pleuropneumonia SU85755A1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU397959A SU85755A1 (en) 1949-05-26 1949-05-26 A method of manufacturing a vaccine against infectious goat pleuropneumonia

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU397959A SU85755A1 (en) 1949-05-26 1949-05-26 A method of manufacturing a vaccine against infectious goat pleuropneumonia

Related Child Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU2108824A Addition SU532120A2 (en) 1975-02-26 1975-02-26 Electric siren
SU772457565A Addition SU698426A2 (en) 1977-03-01 1977-03-01 Electric syren

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU85755A1 true SU85755A1 (en) 1975-07-15

Family

ID=20436629

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU397959A SU85755A1 (en) 1949-05-26 1949-05-26 A method of manufacturing a vaccine against infectious goat pleuropneumonia

Country Status (1)

Country Link
SU (1) SU85755A1 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Smith et al. Influenza: experiments on the immunization of ferrets and mice
Marchette et al. Studies on the pathogenesis of dengue infection in monkeys. III. Sequential distribution of virus in primary and heterologous infections
Weinbren et al. The occurrence of chikungunya virus in Uganda I. Isolation from mosquitoes
Flexner et al. Experimental poliomyelitis in monkeys: seventh note: active immunization and passive serum protection
Kolmer A practical text-book of infection, immunity and biologic therapy, with sp
Rivers et al. Jennerian prophylaxis by means of intradermal injections of culture vaccine virus
US3985615A (en) Process for preparing live varicella vaccines
Traub Cultivation of pseudorabies virus
SU85755A1 (en) A method of manufacturing a vaccine against infectious goat pleuropneumonia
Levy, Lorraine, M.,* Baker, Norris,* Meyer, Michael, P.,* Crosland, Paul* & Hampton Anthrax meningitis in Zimbabwe
Herrmann Experimental peritonitis and peritoneal immunity
Pulvertaft Post-Hysterectomy and Puerperal Tetanus
Saelhof Observations on chancroidal infection
Greenbaum et al. EXPERIMENTAL STUDIES ON IMMUNITY IN HERPES SIMPLEX: WITH NOTES ON THE INFECTIVITY OF THE BLOOD AND SPINAL FLUID AND ON THE FILTRABILITY OF THE HERPETIC VIRUS
GB2092443A (en) Chlamydia vaccine against enzootic abortion in ewes
Sprunt et al. Interstitial Bronchopneumonia: I. Similarity of a Toxin Pneumonia to That Produced by the Viruses
Albee et al. The bacteriophage in surgery
Ascoli Increase of specific and non-specific resistance by the transplantation of attenuated tubercle bacilli nodules
Toomey Active Immunity: Preventions Against Smallpox, Diphtheria, Whooping Cough, Tetanus and Typhoid
Ledingham THE HARBEN LECTURES, 1925. LECTURE III. STUDIES ON VARIOLA, VACCINIA, AND AVIAN MOLLUSCUM
Legge Industrial anthrax
US2391540A (en) Prevention and treatment of canine encephalitis
Knowles Contagious bovine pleuro-pneumonia immunisa-tion
Schultz et al. Studies on the Antigenic Properties of the Ultraviruses: II. The Antigenic Properties of Vaccinia Virus
MINDEN et al. Oculoglandular tularemia treated with streptomycin