RU2429012C1 - Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets - Google Patents
Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets Download PDFInfo
- Publication number
- RU2429012C1 RU2429012C1 RU2010131633/15A RU2010131633A RU2429012C1 RU 2429012 C1 RU2429012 C1 RU 2429012C1 RU 2010131633/15 A RU2010131633/15 A RU 2010131633/15A RU 2010131633 A RU2010131633 A RU 2010131633A RU 2429012 C1 RU2429012 C1 RU 2429012C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cultures
- piglets
- calves
- streptococcosis
- escherichia coli
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной медицине, в частности к методам изготовления вакцин, и может быть использовано для профилактики смешанных кишечных инфекций у молодняка животных.The invention relates to veterinary medicine, in particular to methods for the manufacture of vaccines, and can be used to prevent mixed intestinal infections in young animals.
Разработка средств специфической профилактики инфекционных болезней животных была и остается одним из актуальных направлений ветеринарной медицины. Установлено, что в последние годы в нозологическом профиле инфекционной патологии телят и поросят, сопровождающихся диарейным синдромом, доминируют колибактериоз, стрептококкоз и энтерококковая инфекция (Субботин В.В., Сидоров М.А. Профилактика желудочно-кишечных болезней новорожденных животных с симптомокомплексом диареи. / Ветеринария, 2001. - №4. - С.3-4; Шахов А. и др. Профилактика желудочно-кишечных болезней поросят бактериальной этиологии. / Свиноводство, 2008. - №1. - С.23-25; Терехов В.И. и др. Видовой состав и антигенная структура микроорганизмов, обуславливающих смешанные кишечные инфекции у новорожденных телят. / Труды Кубанского государственного аграрного университета. Серия: Ветеринарные науки, 2009. - №1 (ч.1). - С.98-99). Данные заболевания чаще всего протекают в виде ассоциированных инфекций, поэтому применение ассоциированных вакцин, включающих антигены разных возбудителей, является более предпочтительным, чем моновакцины, поскольку они позволяют создать у животных напряженный иммунитет в сжатые сроки, а кроме того, снизить стрессовые ситуации у прививаемых животных и уменьшить трудозатраты. В связи с вариабельностью возбудителей кишечных инфекций состав средств специфической профилактики должен включать антигены, аналогичные антигенному составу бактерий, выделенных от больных и павших животных в эпизоотическом очаге.The development of means of specific prophylaxis of infectious diseases of animals has been and remains one of the relevant areas of veterinary medicine. It has been established that in recent years, colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection (Subbotin V.V., Sidorov M.A., Prevention of gastrointestinal diseases of newborns with a symptom complex of diarrhea) dominate in the nosological profile of infectious pathology of calves and piglets accompanied by diarrhea. Veterinary medicine, 2001. - No. 4. - P.3-4; Shakhov A. et al. Prevention of gastrointestinal diseases of piglets of bacterial etiology. / Pig production, 2008. - No. 1. - P.23-25; Terekhov V.I. . and others. Species composition and antigenic structure of a microorganism s, causing mixed intestinal infections in newborn calves / / Proceedings of the Kuban State Agrarian University. Series: Veterinary Sciences, 2009. - No. 1 (Part 1). - P.98-99). These diseases most often occur in the form of associated infections, therefore, the use of associated vaccines, including antigens of various pathogens, is more preferable than mono-vaccines, since they allow you to create intense immunity in animals in a short time, and in addition, reduce stressful situations in vaccinated animals and reduce labor costs. Due to the variability of pathogens of intestinal infections, the composition of specific prophylactic agents should include antigens similar to the antigenic composition of bacteria isolated from sick and dead animals in an epizootic focus.
Известна вакцина, ассоциированная против анаэробной энтеротоксемии и эшерихиоза поросят (патент РФ на изобретение №2129441 от 10.12.97). Данная вакцина содержит клостридиозный компонент, представленный штаммом Clostridium perfingens, активно продуцирующий токсин типа С. Она также содержит сложный эшерихиозный компонент, включающий набор полисахаридных О, К антигенов, адгезивных антигенов, ТЛ- и ТС-анатоксинов в соотношении 1:1. Однако данная вакцина обеспечивает спектр иммуногенности против возбудителей анаэробной энтеротоксемии и эшерихиоза у поросят и, естественно, не создает иммунитета против стрептококкоза и энтерококковой инфекции у животных.Known vaccine associated against anaerobic enterotoxemia and escherichiosis of piglets (RF patent for the invention No. 2129441 from 10.12.97). This vaccine contains a clostridiosis component represented by the Clostridium perfingens strain, which actively produces a type C toxin. It also contains a complex escherichiotic component, including a set of polysaccharide O, K antigens, adhesive antigens, TL and TC toxoids in a 1: 1 ratio. However, this vaccine provides an immunogenicity spectrum against pathogens of anaerobic enterotoxemia and Escherichiosis in piglets and, of course, does not create immunity against streptococcosis and enterococcal infection in animals.
Известна вакцина, ассоциированная против диареи телят (патент РФ на изобретение №2035916 от 27.05.1995), которая содержит 3 штамма E.coli, Salmonella typhimurium, S.dublin, S.enteritidis, 2 штамма Klebsiella pneumoniae, Proteus vulgaris и P.mirabilis. Эта вакцина предназначена для профилактики колибактериоза, сальмонеллеза, клебсиеллеза и протейной инфекции у телят, но она также не защищает животных от стрептококковой и энтерококковой инфекции.A known vaccine associated against calf diarrhea (RF patent for the invention No. 2035916 dated 05/27/1995), which contains 3 strains of E. coli, Salmonella typhimurium, S.dublin, S.enteritidis, 2 strains of Klebsiella pneumoniae, Proteus vulgaris and P.mirabilis . This vaccine is designed to prevent colibacteriosis, salmonellosis, Klebsiella and Proteus infections in calves, but it also does not protect animals from streptococcal and enterococcal infections.
Известен способ изготовления вакцины, ассоциированной против колибактериоза, сальмонеллеза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции нутрий (патент РФ на изобретение №2316345 от 19.07.2006 - прототип). Способ заключается в том, что осуществляют отбор пораженных органов от павших нутрий из местного эпизоотического очага. Готовят суспензию из патологического материала и делают посев на дифференциально-диагностические среды. Выделяют чистые культуры Escherichia coli, Salmonella typhimurium. Streptococcus pneumoniae и Streptococcus fecalis. Раздельно выращивают выделенные культуры в мясопептонной питательной среде с добавлением 0,2% глюкозы до достижения концентрации микробных клеток - 4-5 млрд в 1 см3. Инактивируют формалином до 0,4-0,6%-ной конечной концентрации. Выдерживают при температуре 37°С в течение 72-96 часов. Смешивают культуры в равных соотношениях. Вносят 3%-ный раствор гидроокиси алюминия в количестве 20% к объему культуры и тщательно смешивают. После чего полученную вакцину фасуют и укупоривают. Способ прост в исполнении, позволяет повысить специфичность и иммуногенность полученной вакцины. Однако данный способ позволяет получать вакцину против колибактериоза, сальмонеллеза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции только для нутрий и не предусматривает использования для телят и поросят, поскольку возбудители, вызывающие у них болезни, существенно отличаются по своим антигенным свойствам от возбудителей болезней нутрий.A known method of manufacturing a vaccine associated against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection of nutria (RF patent for the invention No. 2316345 of 07/19/2006 - prototype). The method consists in the fact that they carry out the selection of affected organs from fallen nutria from the local epizootic focus. A suspension is prepared from pathological material and inoculated onto differential diagnostic media. Pure cultures of Escherichia coli, Salmonella typhimurium are isolated. Streptococcus pneumoniae and Streptococcus fecalis. Separate cultures are grown separately in a meat-peptone nutrient medium with the addition of 0.2% glucose until the concentration of microbial cells is reached - 4-5 billion in 1 cm 3 . Formalin is inactivated to 0.4-0.6% final concentration. It is kept at a temperature of 37 ° C for 72-96 hours. Mix cultures in equal proportions. A 3% solution of aluminum hydroxide is added in an amount of 20% by volume of the culture and mixed thoroughly. After that, the resulting vaccine is packaged and sealed. The method is simple to implement, can increase the specificity and immunogenicity of the obtained vaccine. However, this method allows to obtain a vaccine against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection only for nutrias and does not provide for use for calves and piglets, since the pathogens causing their diseases differ significantly in their antigenic properties from pathogens of nutria.
Техническим результатом изобретения является повышение эффективности специфической профилактики колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции у телят и поросят путем введения в вакцинный препарат культур возбудителей болезней специфичных для крупного рогатого скота и свиней.The technical result of the invention is to increase the effectiveness of specific prophylaxis of colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection in calves and piglets by introducing into the vaccine preparation cultures of pathogens specific for cattle and pigs.
Решение задачи достигается тем, что в способе изготовления вакцины, ассоциированной против колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции телят и поросят, включающем получение антигенов и инактивацию формалином, проводят выделение из пораженных органов телят и поросят эпизоотических штаммов Escherichia coli, продуцирующих термолабильный, термостабильный и шигаподобный токсины, гемолитических штаммов Streptococcus bovis и Enterococcus fecalis раздельно их выращивают на питательном бульоне при температуре 37°С, при этом культуры Escherichia coli в течение 7 дней, а культуры Streptococcus bovis и Enterococcus fecalis в течении 24 ч до концентрации 5-6 млрд микробных тел в 1 мл, раздельно инактивируют формалином до концентрации 0,3-0,4% в течение 14 суток, смешивают культуры в равных объемах, фасуют и укупоривают.The solution is achieved by the fact that in the method of manufacturing a vaccine associated with colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets, including the production of antigens and inactivation by formalin, epizootic strains of Escherichia coli producing thermolabile, thermostable toxin and shigap are produced from the affected organs of the calves and piglets. , hemolytic strains of Streptococcus bovis and Enterococcus fecalis separately grown on nutrient broth at a temperature of 37 ° C, while cultures of Escherichia coli for 7 d cultures of Streptococcus bovis and Enterococcus fecalis for 24 hours to a concentration of 5-6 billion microbial bodies in 1 ml, separately inactivated with formalin to a concentration of 0.3-0.4% for 14 days, mix the cultures in equal volumes, pack and cork.
Новизна заявляемого предложения заключается в том, что в качестве антигена используют эпизоотические штаммы Escherichia coli, продуцирующие термолабильный, термостабильный и шигаподобный токсины, гемолитические штаммы Streptococcus bovis и Enterococcus fecalis, которые получают путем отбора пораженных органов от павших телят и поросят из местного эпизоотического очага с последующим выделением из них чистых культур возбудителей колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции животных и обработкой их при определенных режимах. Способ обеспечивает получение безвредной, иммуногенной и специфичной вакцины для защиты телят и поросят от поражения колибактериозом, стрептококкозом и энтерококковой инфекции.The novelty of the proposed proposal lies in the fact that epizootic strains of Escherichia coli producing thermolabile, thermostable and shigapodobny toxins, hemolytic strains of Streptococcus bovis and Enterococcus fecalis, which are obtained by selecting the affected organs from fallen calves and piglets from the local subsequent epizootic focus, are used as antigen. isolation of pure cultures of causative agents of colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of animals from them and their treatment under certain conditions. The method provides a harmless, immunogenic and specific vaccine for protecting calves and piglets from colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infections.
В патентной и научно-технической литературе не обнаружена аналогичная заявляемой совокупность признаков, что позволяет судить об изобретательском уровне и новизне заявляемого предложения.A similar set of features is not found in the patent and scientific and technical literature, which makes it possible to judge the inventive step and the novelty of the proposed proposal.
Пример конкретного осуществления способа изготовления вакцины, ассоциированной против колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции телят и поросят.An example of a specific implementation of the method of manufacturing a vaccine associated against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets.
Для изготовления вакцины ассоциированной против колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции первоначально проводят отбор пораженных органов от павших животных в период их заболевания колибактериозом, стрептококкозом и энтерококковой инфекцией из местного эпизоотического очага, осуществляют бактериологический посев с целью выделения чистых культур возбудителей.For the manufacture of a vaccine associated against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection, the affected organs are initially selected from dead animals during their period of colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection from the local epizootic focus, bacteriological culture is carried out in order to isolate pure cultures of pathogens.
Для определения культуральных свойств возбудителя колибактериоза делали посевы выделенной культуры из патологического материала в МПБ, на среду Эндо, МПА и инкубировали в термостате при 37°С в течение 18-24 ч. На чашках Петри с МПА росли влажные колонии с ровными краями и гладкой поверхностью серого цвета. В пробирках с МПБ наблюдали равномерное помутнение питательной среды с образованием на поверхности пленки и небольшим придонным осадком, разбивающимся при встряхивании. На среде Эндо наблюдали рост колоний малиново-красного цвета с бронзовым отливом, характерный для E.coli. При микроскопии препаратов, окрашенных по Граму, под иммерсионной системой микроскопа наблюдали толстые палочки с закругленными концами красного цвета, расположенные одиночно, характерные для E.coli.To determine the cultural properties of the causative agent of colibacteriosis, cultures of the isolated culture were made from pathological material in MPB, on Endo medium, MPA and incubated in an incubator at 37 ° C for 18-24 hours. Wet colonies with MPA grew on smooth Petri dishes with smooth edges and a smooth surface gray color. In test tubes with BCH, a uniform clouding of the nutrient medium was observed with the formation of a film on the surface and a small bottom sediment that breaks when shaken. On the Endo medium, a raspberry-red colony growth with bronze tint, characteristic of E. coli, was observed. Microscopy of Gram stained specimens under the immersion system of the microscope showed thick sticks with rounded red ends located singly, characteristic of E. coli.
Для подтверждения видовой принадлежности выделенных изолятов устанавливали их биохимические свойства с использованием микротест-систем «ENTEROtest» фирмы PLIVA-Lachema Diagnostika (Чехия). При подтверждении принадлежности чистых культур к Escherichia coli определяли способность их к токсинообразованию с помощью биотеста на инфузориях-стилонихиях по пат. РФ 2262529. При наличии в культуральной среде экзотоксинов количество погибших инфузорий должно быть не менее 70-80%, в то время как количество погибших инфузорий в контрольной пробе, не содержащей токсин, не должно превышать 5%. Токсинпродуцирующие изоляты отбирали для получения вакцины.To confirm the species affiliation of the isolated isolates, their biochemical properties were determined using the ENTEROtest microtest systems from PLIVA-Lachema Diagnostika (Czech Republic). When confirming the affiliation of pure cultures to Escherichia coli, their ability to toxin formation was determined using a biotest on infusoria-stilonychia according to US Pat. RF 2262529. If there are exotoxins in the culture medium, the number of dead ciliates should be at least 70-80%, while the number of dead ciliates in a control sample not containing toxin should not exceed 5%. Toxin-producing isolates were selected to obtain a vaccine.
Для определения культуральных свойств возбудителей стрептококкоза и энтерококковой инфекции делали посевы выделенных культур из патматериала в чашки Петри с мясопептонным агаром (МПА) с добавлением глюкозы до 1%-ной конечной концентрации и 5% дефибринированной крови барана. Через 18-20 ч инкубирования в термостате при температуре 37°С наблюдали в чашках Петри с кровяным МПА рост мелких, мутноватых с ровными краями колоний, окруженных зеленоватой зоной гемолиза. При микроскопии препаратов, окрашенных по Грамму, под иммерсионной системой микроскопа наблюдали диплококки или кокки в виде коротких цепочек, окрашенные в фиолетовый цвет, характерные для рода Streptococcus и Enterococcus.To determine the cultural properties of the causative agents of streptococcosis and enterococcal infection, cultures of the isolated cultures were sown from the material in Petri dishes with meat-peptone agar (MPA) with the addition of glucose to 1% final concentration and 5% defibrinated sheep blood. After 18-20 h of incubation in a thermostat at a temperature of 37 ° C, growth of small, turbid colonies with smooth edges of colonies surrounded by a greenish hemolysis zone was observed in Petri dishes with blood MPA. Under microscopy of Gram stained preparations, under the immersion system of the microscope, diplococci or cocci in the form of short chains, colored in purple, characteristic of the genus Streptococcus and Enterococcus, were observed.
Принадлежность выделенных изолятов к Streptococcus bovis и Enterococcus fecalis подтверждали исследованиями биохимических свойств и активности пирролидонилариламидазы с использованием «PYRAtest», «STREPTOtest» и «EN-COCCUStest» фирмы PLIVA-Lachema Diagnostika (Чехия).The affinity of the isolated isolates for Streptococcus bovis and Enterococcus fecalis was confirmed by studying the biochemical properties and activity of pyrrolidonylarylamidase using PYRAtest, STREPTOtest and EN-COCCUStest from PLIVA-Lachema Diagnostika (Czech Republic).
Выделенные таким образом чистые культуры возбудителей колибактериоза (Escherichia coli), стрептококкоза (Streptococcus bovis) и энтерококковой инфекции (Enterococcus fecalis) используют для получения баксырья. Для этого из культур каждого изолята, выросших на чашках Петри, отбирают по 2-3 изолированные колонии и засевают по отдельности в пробирки с 10 мл питательного бульона, приготовленного по пат. РФ №2342425, после культивируют при 37°С в течение 6-8 ч до появления легкой мути, свидетельствующей о росте микроорганизмов. Далее проводят микроскопию мазков, окрашенных по Граму, для подтверждения чистоты выросших культур и засевают каждый штамм во флаконы с 200-300 мл питательного бульона, приготовленного по пат. РФ №2342425, и культивируют при 37°С: культуры возбудителя колибактериоза в течение 7 суток, а культуры возбудителей стрептококкоза и энтерококковой инфекции - 24 ч. Концентрацию микробных клеток в бактериальной массе определяли по стандарту мутности и разводили стерильным физиологическим раствором до концентрации 5-6 млрд в 1 см3. Инактивацию полученного баксырья проводили внесением формалина до конечной концентрации 0,3-0,4%, выдерживали при температуре 37°С в течение 14 суток при периодическом перемешивании. Затем равные объемы инактивированных баккультур объединяют и тщательно перемешивают. После чего полученную вакцину фасуют по стерильным флаконам, укупоривают и проверяют на стерильность и безвредность.Pure cultures of the causative agents of colibacteriosis (Escherichia coli), streptococcosis (Streptococcus bovis) and enterococcal infection (Enterococcus fecalis) isolated in this way are used to produce bakery. For this, from cultures of each isolate grown on Petri dishes, 2-3 isolated colonies are selected and seeded individually in test tubes with 10 ml of nutrient broth prepared according to US Pat. RF №2342425, after culturing at 37 ° C for 6-8 hours until the appearance of a slight turbidity, indicating the growth of microorganisms. Next, microscopy of smears stained according to Gram is performed to confirm the purity of the grown cultures and each strain is seeded in bottles with 200-300 ml of nutrient broth prepared according to US Pat. RF No. 2342425, and cultured at 37 ° C: cultures of the causative agent of colibacteriosis for 7 days, and cultures of causative agents of streptococcosis and enterococcal infection for 24 hours. The concentration of microbial cells in the bacterial mass was determined according to the turbidity standard and diluted with sterile saline to a concentration of 5-6 billion in 1 cm 3 . The obtained raw materials were inactivated by introducing formalin to a final concentration of 0.3-0.4%, kept at a temperature of 37 ° C for 14 days with periodic stirring. Then equal volumes of inactivated bacultures are combined and thoroughly mixed. After that, the resulting vaccine is packaged in sterile vials, corked and checked for sterility and harmlessness.
При контрольных высевах на МПА, МПБ, среды Китт-Тароцци, Сабуро, Эндо рост бактериальной и грибной флоры отсутствовал, что свидетельствовало о стерильности вакцины.During the control seeding on MPA, BCH, medium Kitt-Tarozzi, Saburo, Endo, the growth of bacterial and fungal flora was absent, which indicated the sterility of the vaccine.
При внутрибрюшинном введении вакцины в дозе 0,3 мл белым мышам массой 20-22 г, состояние угнетения и гибели их в течение 10 дней не отмечали, что является показателем безвредности данной изготовленной вакцины.When the vaccine was administered intraperitoneally at a dose of 0.3 ml to white mice weighing 20-22 g, the state of oppression and their death within 10 days was not noted, which is an indicator of the safety of this manufactured vaccine.
Иммуногенные свойства вакцины проверяли на 5 кроликах массой 2,5-3 кг, при этом оценивали накопление в сыворотке крови животных антитоксических антител и антител к стрептококку и энтерококку в реакции преципитации в агаровом геле. Кроликов иммунизировали дважды с интервалом 7 дней в дозе 1,0+1,0 мл. Перед второй иммунизацией и спустя 7 дней после второй иммунизации у животных отбирали кровь и исследовали на наличие специфических антител. Результаты представлены в таблице 1, из данных которой видно, что после введения вакцины у кроликов появляются специфические антитела к токсинам кишечной палочки и антигенам Streptococcus bovis и Enterococcus fecalis. После повторного введения вакцины уровень специфических антител к вакцинным антигенам увеличился в 4-8 раз, что свидетельствует о выраженных иммуногенных свойствах препарата.The immunogenic properties of the vaccine were tested on 5 rabbits weighing 2.5-3 kg, while the accumulation of antitoxic antibodies and antibodies to streptococcus and enterococcus in the agar gel precipitation reaction was evaluated in animal serum. Rabbits were immunized twice with an interval of 7 days at a dose of 1.0 + 1.0 ml. Before the second immunization and 7 days after the second immunization, animals were bled and examined for the presence of specific antibodies. The results are presented in table 1, from the data of which it is seen that after the introduction of the vaccine in rabbits, specific antibodies to E. coli toxins and Streptococcus bovis and Enterococcus fecalis antigens appear. After repeated administration of the vaccine, the level of specific antibodies to vaccine antigens increased 4-8 times, which indicates the pronounced immunogenic properties of the drug.
Защитные свойства ассоциированной вакцины против колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции проверяли на модели острой инфекции при внутрибрюшинном заражении белых мышей суточными бульонными культурами соответствующих возбудителей (токсигенный изолят Escherichia coli, Streptococcus bovis, Enterococcus fecalis). Для этого было сформировано 6 групп по 10 мышей в каждой. Мышей 1-3 групп дважды с интервалом 7 дней иммунизировали вакциной ассоциированной против колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции телят и поросят в дозе 0,1 мл, а мышей 4-6 групп иммунизировали в той же дозе и по такой же схеме вакциной ассоциированой колибактериоза, сальмонеллеза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции нутрий. Через 14 дней после последней вакцинации всех животных заражали суточными бульонными культурами в дозе 2ЛД50 и в течение 10 дней вели наблюдение, учитывая при этом количество павших мышей. Результаты опыта представлены в таблицах 2-4. Из материалов данных таблиц видно, что вакцина, изготовленная по предлагаемому способу, обеспечивает защиту 80-100% животных при их экспериментальном заражении. 
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010131633/15A RU2429012C1 (en) | 2010-07-27 | 2010-07-27 | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010131633/15A RU2429012C1 (en) | 2010-07-27 | 2010-07-27 | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2429012C1 true RU2429012C1 (en) | 2011-09-20 |
Family
ID=44758626
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2010131633/15A RU2429012C1 (en) | 2010-07-27 | 2010-07-27 | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2429012C1 (en) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2538158C1 (en) * | 2013-12-30 | 2015-01-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
| RU2553556C1 (en) * | 2013-12-30 | 2015-06-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" | Vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
| RU2650604C1 (en) * | 2017-05-29 | 2018-04-16 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method of prophylaxis of acute intestinal diseases in calves |
| RU2650628C1 (en) * | 2017-05-29 | 2018-04-17 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method of obtaining vaccine associated with colibacillosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets |
| RU2753410C2 (en) * | 2020-01-14 | 2021-08-16 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method for obtaining toxoid vaccine against escherichiosis of animals |
| RU2764600C1 (en) * | 2021-03-15 | 2022-01-18 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Vaccine against escherichiosis of calves and piglets |
-
2010
- 2010-07-27 RU RU2010131633/15A patent/RU2429012C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2538158C1 (en) * | 2013-12-30 | 2015-01-10 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
| RU2553556C1 (en) * | 2013-12-30 | 2015-06-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Кубанский государственный аграрный университет" | Vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
| RU2650604C1 (en) * | 2017-05-29 | 2018-04-16 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method of prophylaxis of acute intestinal diseases in calves |
| RU2650628C1 (en) * | 2017-05-29 | 2018-04-17 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method of obtaining vaccine associated with colibacillosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets |
| RU2753410C2 (en) * | 2020-01-14 | 2021-08-16 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method for obtaining toxoid vaccine against escherichiosis of animals |
| RU2764600C1 (en) * | 2021-03-15 | 2022-01-18 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Vaccine against escherichiosis of calves and piglets |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2429012C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
| RU2428202C1 (en) | Associated vaccine against anaerobic enterotoxemia and colibacillosis diarrhea in calves | |
| RU2432174C1 (en) | Method for producing colibacillosis anatoxin | |
| RU2388489C1 (en) | Method for preparing vaccine associated against pseudomonosis and enterococcus infection of nutrias | |
| RU2687488C1 (en) | Poly-strain formolated vaccine against calves pneumonia streptococcal etiology | |
| RU2538158C1 (en) | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
| RU2553556C1 (en) | Vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
| RU2316345C1 (en) | Method for manufacturing associated vaccione against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection in nutrias | |
| RU2650628C1 (en) | Method of obtaining vaccine associated with colibacillosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
| RU2309767C1 (en) | Method for manufacturing vaccine against pseudomonosis in swine | |
| RU2406532C1 (en) | Method of producing associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
| RU2288002C1 (en) | Method for preparing vaccine against enterococcus infection in nutrias | |
| RU2263143C2 (en) | Strain of bacterium streptococcus pyogenes 289 used for preparing vaccine against streptococcosis in fur animal | |
| RU2301077C1 (en) | Method for preparing mixed vaccine against coli-bacteriosis, salmonellosis and streptococcosis in nutria | |
| RU2301076C1 (en) | Method for preparing mixed vaccine against streptococcosis and enterococcus infection in nutria | |
| RU2406530C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against streptococcosis, pseudomonosis and enterococcal infection of nutrias | |
| RU2799603C1 (en) | Sa-21 strain of bacteria of streptococcus genus of streptococcus agalactiae species for the manufacture of biological products for the specific prevention of mastitis in cows | |
| RU2761379C1 (en) | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use | |
| RU2338554C2 (en) | Method of manufacturing of vaccine associated against colibacillosis, salmonellosis and enterococcus infections of nutrias | |
| RU2316344C1 (en) | Associated vaccine against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection in nutrias | |
| RU2429880C1 (en) | Method to manufacture vaccine associated against streptococcosis and virus haemorrhagic disease of rabbits | |
| RU2707289C1 (en) | Method for producing vaccine associated with colibacillosis, streptococcus and pseudomonosis of bovine animals | |
| RU2292914C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and enterococcal infection in nutrias | |
| RU2292911C1 (en) | Method for preparing associated vaccine aginst salmonellosis and streptococcosis in nutrias | |
| RU2406533C1 (en) | Associated vaccine against streptococcosis and staphylococcosis of cattle |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20120728 |