[go: up one dir, main page]

RU2336841C2 - Method for osteoplasty in experiment - Google Patents

Method for osteoplasty in experiment Download PDF

Info

Publication number
RU2336841C2
RU2336841C2 RU2006137868/14A RU2006137868A RU2336841C2 RU 2336841 C2 RU2336841 C2 RU 2336841C2 RU 2006137868/14 A RU2006137868/14 A RU 2006137868/14A RU 2006137868 A RU2006137868 A RU 2006137868A RU 2336841 C2 RU2336841 C2 RU 2336841C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bone
cells
defect
fraction
tissue
Prior art date
Application number
RU2006137868/14A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2006137868A (en
Inventor
Владимир Борисович Карпюк (RU)
Владимир Борисович Карпюк
Original Assignee
Владимир Борисович Карпюк
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Владимир Борисович Карпюк filed Critical Владимир Борисович Карпюк
Priority to RU2006137868/14A priority Critical patent/RU2336841C2/en
Publication of RU2006137868A publication Critical patent/RU2006137868A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2336841C2 publication Critical patent/RU2336841C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: fraction of fibroblast-like cells is obtained from adipose tissue of subcutaneous layer by way of exsufflation, enzymatic treatment and centrifugation. Then osteal chips is added to the obtained cellular fraction as inductor of osteogenic embryonization. One part of chips is used for four parts of cellular faction. When the mixture is prepared it is injected in the defect area. The method allows quick and qualitative recovery of bony tissue and bearing-mechanical features of the bone due to respective proportion of mixture components as well as immunological safety of the operation due to usage of autologous material.
EFFECT: quick recovery of bony tissue and bearing-mechanical features of bone as well as immunological safety of operation.
2 ex, 1 dwg

Description

Предлагаемое изобретение относится к медицине и может быть использовано в остеологии, пластической и реконструктивной хирургии, стоматологии, травматологии и ортопедии.The present invention relates to medicine and can be used in osteology, plastic and reconstructive surgery, dentistry, traumatology and orthopedics.

К костно-пластическим операциям относятся вмешательства, при которых дефект кости одномоментно замещают участком другой кости, либо создают условия для постепенного замещения дефекта вновь образованной костной тканью. Показаниями к костной пластике чаще всего являются последствия переломов костей (ложные суставы, дефекты костей, травматический остеомиелит), врожденные и приобретенные деформации костей, дистрофические поражения скелета, дефекты костей после радикальных операций по поводу опухолей и туберкулеза костей. В зависимости от биологической характеристики различают ауто-, алло-, ксено- и брефогенные костные трансплантаты. По типу питания трансплантаты бывают кровоснабжаемые и некровоснабжаемые; по связи с донорским ложем - свободные и несвободные (на питающей ножке).Osteoplastic surgeries include interventions in which a bone defect is simultaneously replaced by a section of another bone, or conditions are created for the gradual replacement of the defect with newly formed bone tissue. Indications for bone grafting are most often the consequences of bone fractures (false joints, bone defects, traumatic osteomyelitis), congenital and acquired bone deformities, skeletal degenerative lesions, bone defects after radical surgery for tumors and bone tuberculosis. Depending on the biological characteristics, auto-, allo-, xeno- and brephogenic bone grafts are distinguished. According to the type of nutrition, the transplants are blood-supplied and necro-supplied; in connection with the donor bed - free and not free (on the feeding leg).

Недостатками пересадки некровоснабжаемых аутотрансплантатов являются нанесение больному дополнительной травмы в донорской зоне, ограниченный объем костно-пластического материала, его чувствительность к инфекции, а также относительно медленное вживление трансплантата в воспринимающее ложе из-за ограниченного участия его клеток в восстановительных процессах. Исключительная техническая сложность операции по пересадке кровоснабжаемых аутотрансплантатов ограничивает применение этого способа.The disadvantages of transplanting non-blood-supplied autografts are additional trauma to the patient in the donor area, the limited amount of osteoplastic material, its sensitivity to infection, and the relatively slow implantation of the graft into the receiving bed due to the limited participation of its cells in the recovery process. The exceptional technical complexity of the transplantation of blood-supplied autografts limits the application of this method.

При пластике на питающей ножке область пересадки кости ограничена, а расширенный доступ для выделения и транспозиции такого лоскута сопряжен с дополнительной травмой. Несвободная костная пластика по Илизарову имеет достаточно широкий круг противопоказаний и ограничений: неудовлетворительное состояние кожных покровов в области дефекта, остсопороз и малые размеры костных отломков, размеры дефекта более 8-10 см, наличие остеомиелита, недисциплинированность и психологическая неподготовленность больного к длительному лечению данным способом.In case of plastic surgery on the feeding leg, the bone transplantation area is limited, and the extended access for isolation and transposition of such a flap is associated with additional trauma. Non-free bone grafting according to Ilizarov has a fairly wide range of contraindications and limitations: poor condition of the skin in the area of the defect, osteoporosis and small size of bone fragments, size of the defect more than 8-10 cm, the presence of osteomyelitis, lack of discipline and psychological unpreparedness of the patient for long-term treatment with this method.

Аллотрансплантаты используют обычно в виде костной стружки или щебенки при условии хорошего кровоснабжения воспринимающего ложа без раневой инфекции. В отличие от аутопластического материала, клеточные элементы чужеродной кости при пересадке всегда погибают. Мертвая кость фактически становится инородным телом, реакция на которое определяется различиями в антигенной структуре белков, образующих вещество трансплантата и ткани воспринимающего ложа, а также состоянием иммунной системы организма (Чаклин В.Д., 1971).Allografts are usually used in the form of bone chips or gravel, provided the blood supply to the receiving bed is good without wound infection. Unlike autoplastic material, the cellular elements of a foreign bone always die during transplantation. Dead bone actually becomes a foreign body, the response to which is determined by differences in the antigenic structure of the proteins that form the transplant substance and the tissue of the receptive bed, as well as the state of the body's immune system (Chaklin V.D., 1971).

За ближайший аналог принят способ замещения костных дефектов путем аутотрансплантации остеогенных клеток костного мозга, выращенных вне организма (Осепян И.А. и соавт., 1987). Пластика костного дефекта данным способом предусматривает следующие этапы: 1) получение трепаната костного мозга из гребня тазовой кости и передача его в лабораторию; 2) выделение и размножение в культурах остеогенных клеток в течение 1-1,5 месяцев; 3) обратная трансплантация выращенных в культурах клеток в область дефекта кости больного, чей костный мозг был использован для культивирования.The closest analogue is the method for replacing bone defects by autotransplantation of osteogenic bone marrow cells grown outside the body (I. Osepyan et al., 1987). Plastic surgery of a bone defect using this method involves the following steps: 1) obtaining bone marrow trepanate from the ridge of the pelvic bone and transferring it to the laboratory; 2) isolation and reproduction in osteogenic cell cultures for 1-1.5 months; 3) reverse transplantation of cultured cells into the bone defect area of a patient whose bone marrow was used for cultivation.

Недостатки способа. Операционная травма и болезненность донорской зоны ограничивают количество костного мозга, которое может быть получено, это растягивает время культивирования для генерации терапевтической клеточной дозы. Традиционные способы культивирования ограничивают клиническую ценность клеток из-за постепенной потери ими в ходе размножения ex vivo пролиферативного потенциала и способности к дифференцировке. Имеются данные о том, что при пассировании появляются трансформированные клетки, способные к канцерогенезу in vivo.The disadvantages of the method. Surgical trauma and soreness of the donor zone limits the amount of bone marrow that can be obtained, this stretches the cultivation time to generate a therapeutic cell dose. Traditional cultivation methods limit the clinical value of cells due to their gradual loss of proliferative potential and differentiation ability during ex vivo propagation. There is evidence that, when passivated, transformed cells capable of carcinogenesis in vivo appear.

Задачи изобретения: повышение качества регенерации кости с восстановлением ее опорно-механических свойств, снижение травматичности и безопасности способа, сокращение сроков реабилитации.Objectives of the invention: improving the quality of bone regeneration with the restoration of its supporting mechanical properties, reducing the morbidity and safety of the method, reducing the time of rehabilitation.

Сущностью изобретения является то, что жировую ткань, полученную из подкожно-жирового слоя путем аспирации, подвергают ферментативной обработке раствором коллагеназы, центрифугируют, в полученную фракцию фибробластоподобных клеток в качестве индуктора остеогенной дифференцировки добавляют костную крошку в пропорции 1:4 и непосредственно после приготовления вводят аутологичную смесь в область костного дефекта.The essence of the invention is that adipose tissue obtained from the subcutaneous fat layer by aspiration is subjected to enzymatic treatment with a collagenase solution, centrifuged, bone crumb in a 1: 4 ratio is added to the obtained fraction of fibroblast-like cells as an inducer of osteogenic differentiation, and autologous is introduced immediately after preparation the mixture in the area of the bone defect.

Техническим результатом предлагаемого способа является устранение дефекта кости. При этом в качестве источника пластического материала - остеогенных клеток служит не костный мозг, а избыточная и легкодоступная жировая ткань. Известно, что стромально-васкулярная фракция жировой ткани содержит истинные «покоящиеся» мезенхимальные стволовые клетки, которые имеют характеристики, аналогичные свойствам стромальных клеток костного мозга: обладают высокой пролиферативной активностью, способны к самоподдержанию и мультилинейной (в том числе, остеогенной) дифференцировке (Zuk P.A. et al., 2002; Mizuno H., 2003). В предлагаемом способе остеогенная трансформация (пролиферация и дифференцировка) пересаженной клеточной фракции происходит in vivo под влиянием комплекса естественных остеоиндукторов, выделяемых костной крошкой. При осуществлении данного способа не проводят культивирование тканей, которое связано с риском инфицирования клеточной популяции, контаминации чужеродным материалом животного происхождения из питательной среды, непредсказуемого изменения свойств клеток (Wang Y. et al., 2005). Консистенция трансплантата в виде замазки обеспечивает максимальную площадь контакта с окружающими тканями, высокую скорость проникновения в него клеток воспринимающего ложа и создает условия для быстрой перестройки новообразованной кости в соответствии с условиями механической нагрузки (нет резорбируемого остова). Таким образом, использование способа позволяет снизить травматичность операции, риск осложнений, сроки реабилитации, повысить в более короткий период качество жизни больного.The technical result of the proposed method is the elimination of a bone defect. Moreover, the bone marrow is not the bone marrow, but excess and easily accessible adipose tissue as the source of plastic material - osteogenic cells. It is known that the stromal-vascular fraction of adipose tissue contains true “resting” mesenchymal stem cells that have characteristics similar to those of bone marrow stromal cells: they have high proliferative activity, are capable of self-maintenance and multilinear (including osteogenic) differentiation (Zuk PA et al., 2002; Mizuno H., 2003). In the proposed method, osteogenic transformation (proliferation and differentiation) of the transplanted cell fraction occurs in vivo under the influence of a complex of natural osteoinductors secreted by bone crumbs. When implementing this method, tissue culture is not carried out, which is associated with the risk of infection of the cell population, contamination with foreign material of animal origin from the nutrient medium, unpredictable changes in the properties of cells (Wang Y. et al., 2005). The graft consistency in the form of putty provides the maximum contact area with surrounding tissues, the high penetration rate of the cells of the receptive bed and creates the conditions for the rapid reconstruction of the newly formed bone in accordance with the conditions of mechanical load (there is no resorbable core). Thus, the use of the method allows to reduce the invasiveness of the operation, the risk of complications, the terms of rehabilitation, to improve the patient’s quality of life in a shorter period.

Способ осуществляют следующим образом. Под местной анестезией выполняют шприцевую липоаспирацию. Жировую ткань интенсивно промывают стерильным физиологическим раствором от примеси крови и анестетика. Путем ферментативной диссоциации жировой ткани и центрифугирования выделяют стромальную фракцию с преобладанием фибробластоподобных клеток. Костную крошку получают при обработке края костного дефекта. В стромальную клеточную фракцию добавляют костную крошку в пропорции 1:4 и этой смесью заполняют дефект кости. Фиксацию "трансплантата" осуществляют с помощью окружающих мягких тканей, проницаемых нерезорбируемых и резорбируемых материалов.The method is as follows. Under local anesthesia, syringe lipoaspiration is performed. Adipose tissue is intensively washed with sterile saline solution from blood impurities and anesthetic. Enzymatic dissociation of adipose tissue and centrifugation isolate the stromal fraction with a predominance of fibroblast-like cells. Bone chips are obtained by treating the edge of a bone defect. Bone chips are added to the stromal cell fraction in a ratio of 1: 4 and the bone defect is filled with this mixture. The fixation of the "graft" is carried out using the surrounding soft tissues, permeable non-resorbable and resorbable materials.

Данный способ изучен экспериментально на модели дефекта нижнечелюстной кости у 8 морских свинок 8-10 месячного возраста с массой тела 600-800 грамм.This method was studied experimentally on a model of a defect of the mandibular bone in 8 guinea pigs of 8-10 months of age with a body weight of 600-800 grams.

Пример 1. Вид и возраст животного: морская свинка, 8 месяцев. Вес до операции - 600 г. Описание операции: под внутрибрюшинным тиопенталовым наркозом (40 мг на кг массы животного) и местной анестезией 40 мл 0,25% раствором лидокаина с адреналином (1:1000000) выполняли шприцевую липоаспирацию в области паховой жировой подушки в объеме 5 мл. Полученный липоаспират промывали физиологическим раствором и подвергали воздействию 0,075% раствора коллагеназы I типа (Collagenase Type I, EUROBIO Biotechnology, France) в стерильном фосфатном буфере (Dulbecco's phosphate buffered saline without Ca & Mg, 1X solution, sterile solution, EUROBIO Biotechnology, France) в течение 30 минут при 37°С. Для удаления остаточной активности фермента материал повторно промывали фосфатным буфером и центрифугировали до получения 0,4 мл плотного осадка. Под внутрибрюшинным тиопенталовым наркозом и местной анестезией 0,25% раствором лидокаина с адреналином (1:10000) после удаления шерсти в подчелюстной области и антисептической обработки операционного поля делали разрез по нижнему краю угла и тела нижней челюсти длиной 2,5 см. Послойно рассекали подлежащие ткани до кости и обнажали тело и угол нижней челюсти. С обеих сторон кости отслаивали мышцы и с помощью торцевой фрезы создавали сквозной дефект диаметром 5 мм. Справа дефект оставляли нетронутым (контроль). Слева в область дефекта имплантировали полученную из липоаспирата клеточную фракцию, предварительно добавив в нее в качестве индуктора остеогенной дифференцировки крошку из 1/4 части резецированной кости (опыт). Рану ушивали послойно кетгутом 5-0 и полиамидом 4-0. Через 12 недель животное выводили из опыта путем введения летальной дозы тиопентала натрия. Костно-мышечный препарат нижней челюсти фиксировали в 10% растворе нейтрального формалина и проводили сравнительное макроскопическое, рентгенологическое и гистологическое изучение. При осмотре дефект, в который были имплантированы аутологичные фибробластоподобные клетки, был заполнен твердой тканью, похожей на кость, в то время как контроль был заполнен фиброзной тканью. Рентгенологически на стороне опыта область дефекта имела практически одинаковую плотность с окружающей костью. При микроскопии в ткани имплантированных дефектов идентифицированы остеобласты, остеоциты, костные трабекулы и кровеносные сосуды.Example 1. The type and age of the animal: guinea pig, 8 months. Weight before surgery - 600 g. Description of the operation: under intraperitoneal thiopental anesthesia (40 mg per kg of animal weight) and local anesthesia with 40 ml of 0.25% lidocaine solution with adrenaline (1: 1,000,000), syringe liposuction was performed in the inguinal fat pad in the volume 5 ml The resulting lipoaspirate was washed with saline and exposed to a 0.075% solution of type I collagenase (Collagenase Type I, EUROBIO Biotechnology, France) in sterile phosphate buffer (Dulbecco's phosphate buffered saline without Ca & Mg, 1X solution, sterile solution, EUROBIO Biotechnology, France) in for 30 minutes at 37 ° C. To remove residual enzyme activity, the material was repeatedly washed with phosphate buffer and centrifuged to obtain 0.4 ml of a dense precipitate. Under intraperitoneal thiopental anesthesia and local anesthesia with a 0.25% solution of lidocaine with adrenaline (1: 10000), after removal of the hair in the submandibular region and antiseptic treatment of the surgical field, an incision was made along the lower edge of the angle and body of the lower jaw 2.5 cm long. tissue to the bone and exposed the body and angle of the lower jaw. Muscles were exfoliated on both sides of the bone and a through defect with a diameter of 5 mm was created using an end mill. On the right, the defect was left untouched (control). The cell fraction obtained from lipoaspirate was implanted to the left of the defect, having previously added crumb from 1/4 part of the resected bone to it as an inducer of osteogenic differentiation (experiment). The wound was sutured in layers with catgut 5-0 and polyamide 4-0. After 12 weeks, the animal was withdrawn from the experiment by introducing a lethal dose of thiopental sodium. The musculoskeletal preparation of the lower jaw was fixed in a 10% solution of neutral formalin and a comparative macroscopic, radiological and histological study was performed. Upon examination, the defect in which autologous fibroblast-like cells were implanted was filled with bone-like solid tissue, while the control was filled with fibrous tissue. X-ray on the experiment side, the defect region had almost the same density as the surrounding bone. Microscopy in the tissue of implanted defects identified osteoblasts, osteocytes, bone trabeculae and blood vessels.

Пример 2. Вид и возраст животного: морская свинка, 10 месяцев. Вес до операции - 800 г. Описание операции: под внутрибрюшинным тиопенталовым наркозом и местной анестезией 40 мл 0,25% раствором лидокаина с адреналином (1:1000000) выполняли шприцевую липоаспирацию в области паховой жировой подушки в объеме 5 мл. Полученный липоаспират промывали физиологическим раствором и подвергали воздействию 0,075% раствора коллагеназы I типа (Collagenase Type I, EUROBIO Biotechnology, France) в стерильном фосфатном буфере (Dulbecco's phosphate buffered saline without Ca & Mg, 1X solution, sterile solution, EUROBIO Biotechnology, France) в течение 30 минут при 37°С. Для удаления остаточной активности фермента материал повторно промывали фосфатным буфером и центрифугировали до получения 0,6 мл плотного осадка. Под внутрибрюшинным тиопенталовым наркозом и местной анестезией делали разрез по нижнему краю нижней челюсти длиной 2,5 см, послойно рассекали подлежащие ткани и в области угла нижней челюсти торцевой фрезой создавали сквозной дефект диаметром 5 мм. Справа дефект оставляли нетронутым (контроль). Слева в область дефекта имплантировали полученную из липоаспирата клеточную фракцию, предварительно добавив в нее в качестве индуктора остеогенной дифференцировки крошку из 1/4 части резецированной кости (опыт). Рану орошали антибиотиком и ушивали послойно кетгутом 5-0 и полиамидом 4-0. Через 10 недель животное выводили из опыта путем введения летальной дозы тиопентала натрия. При осмотре извлеченной нижнечелюстной кости на стороне опыта отмечалось формирование кости в виде тонкой пластины, полностью закрывающей дефект, в то время как на стороне контроля имелось сквозное отверстие со сглаженными краями диаметром 5 мм, заполненное подтянутой рубцом мышцей. На рентгенограмме уложенных рядом симметричных половин нижней челюсти видна более высокая плотность в области имплантированного дефекта, по сравнению с контролем. При микроскопии срезов, окрашенных гематоксилином и эозином, по Ван-Гизону и по Коссу область дефекта, где была выполнена имплантация, заполнена зрелой костью неравномерной толщины с надкостницей, костными трабекулами и кровеносными сосудами (см. чертеж, а). На стороне контроля кость представлена в виде двух лежащих на одной оси фрагментов, между которыми располагается фиброзная ткань (см. чертеж, б).Example 2. The type and age of the animal: guinea pig, 10 months. Weight before the operation - 800 g. Description of the operation: under intraperitoneal thiopental anesthesia and local anesthesia of 40 ml with a 0.25% solution of lidocaine with adrenaline (1: 1,000,000), 5 ml syringe lipoaspiration was performed in the inguinal fat pad area. The resulting lipoaspirate was washed with saline and exposed to a 0.075% solution of type I collagenase (Collagenase Type I, EUROBIO Biotechnology, France) in sterile phosphate buffer (Dulbecco's phosphate buffered saline without Ca & Mg, 1X solution, sterile solution, EUROBIO Biotechnology, France) in for 30 minutes at 37 ° C. To remove residual enzyme activity, the material was repeatedly washed with phosphate buffer and centrifuged to obtain 0.6 ml of a dense precipitate. Under intraperitoneal thiopental anesthesia and local anesthesia, an incision was made along the lower edge of the lower jaw 2.5 cm long, the underlying tissues were dissected in layers and an end-to-end defect with a diameter of 5 mm was created in the area of the angle of the lower jaw with an end mill. On the right, the defect was left untouched (control). The cell fraction obtained from lipoaspirate was implanted to the left of the defect, having previously added crumb from 1/4 part of the resected bone to it as an inducer of osteogenic differentiation (experiment). The wound was irrigated with an antibiotic and sutured in layers with catgut 5-0 and polyamide 4-0. After 10 weeks, the animal was withdrawn from the experiment by introducing a lethal dose of thiopental sodium. When examining the extracted mandibular bone on the test side, bone formation was observed in the form of a thin plate completely covering the defect, while on the control side there was a through hole with smooth edges with a diameter of 5 mm filled with a tightened scar muscle. On the radiograph of the symmetrical halves of the lower jaw laid next to each other, a higher density is visible in the area of the implanted defect compared to the control. Microscopy of sections stained with hematoxylin and eosin, according to Van Gieson and Koss, the defect area where the implantation was performed is filled with a mature bone of uneven thickness with a periosteum, bone trabeculae and blood vessels (see drawing, a). On the control side, the bone is presented in the form of two fragments lying on the same axis, between which fibrous tissue is located (see drawing, b).

Таким образом, полученные результаты демонстрируют целесообразность применения предлагаемого способа костной пластики для устранения дефектов кости. Способ характеризуется малой травматичностью, иммунологической безупречностью, онкогенной безопасностью, не требует существенных материальных затрат и может быть применен в практической медицине.Thus, the results demonstrate the feasibility of using the proposed method of bone grafting to eliminate bone defects. The method is characterized by low invasiveness, immunological impeccability, oncogenic safety, does not require significant material costs and can be applied in practical medicine.

ЛитератураLiterature

1. Осепян И.А., Чайлахян Р.К., Гарибян Э.С., Айвазян В.П. Лечение несросшихся переломов, ложных суставов и дефектов длинных костей трансплантацией аутологичных костномозговых фибробластов, выращенных in vitro и имплантированных в АГМ // Ортопедия, травматология и протезирование. - 1987. - т.9. - С.59-61.1. Osepyan I.A., Chaylakhyan R.K., Garibyan E.S., Ayvazyan V.P. Treatment of non-consolidated fractures, false joints and defects of long bones with transplantation of autologous bone marrow fibroblasts grown in vitro and implanted in the AGM // Orthopedics, traumatology and prosthetics. - 1987 .-- 9. - S. 59-61.

2. Чаклин В.Д. Костная пластика. - М.: Медицина, 1971. - 228 с.2. Chaklin V.D. Bone grafting. - M .: Medicine, 1971. - 228 p.

3. Mizuno H. Versatility of adipose tissue as a source of stem cells // J Nippon Med Sch. - 2003 - Vol.70(5) - P.428-431.3. Mizuno H. Versatility of adipose tissue as a source of stem cells // J Nippon Med Sch. - 2003 - Vol.70 (5) - P.428-431.

4. Wang Y., Huso D.L., Harrington J., Kellner J., Jeong D.K., Turney J., McNiece I.K. Outgrowth of a transformed cell population derived from normal human BM mesenchymal stem cell culture // Cytotherapy - 2005 - Vol 7(6) - P.509-519.4. Wang Y., Huso D.L., Harrington J., Kellner J., Jeong D.K., Turney J., McNiece I.K. Outgrowth of a transformed cell population derived from normal human BM mesenchymal stem cell culture // Cytotherapy - 2005 - Vol 7 (6) - P.509-519.

5. Zuk P.A., Zhu M., Ashjan P. et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells // Mol. Biol. Cell - 2002 - Vol.13 - P.4279-4295.5. Zuk P.A., Zhu M., Ashjan P. et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells // Mol. Biol. Cell - 2002 - Vol.13 - P.4279-4295.

Claims (1)

Способ костной пластики в эксперименте, включающий имплантацию фибробластоподобных клеток, отличающийся тем, что жировую ткань, полученную из подкожно-жирового слоя путем аспирации, подвергают ферментативной обработке раствором коллагеназы, центрифугируют, в полученную фракцию фибробластоподобных клеток в качестве индуктора остеогенной дифференцировки добавляют костную крошку в пропорции 1 объем крошки на 4 объема клеточной фракции и непосредственно после приготовления вводят аутологичную смесь в область костного дефекта.The method of bone grafting in an experiment, including the implantation of fibroblast-like cells, characterized in that the adipose tissue obtained from the subcutaneous fat layer by aspiration is subjected to enzymatic treatment with a collagenase solution, centrifuged, bone crumb is added to the obtained fraction of fibroblast-like cells in the proportion of osteogenic differentiation in the proportion of osteogenic differentiation 1 volume of crumbs per 4 volumes of the cell fraction, and immediately after preparation, an autologous mixture is introduced into the area of the bone defect.
RU2006137868/14A 2006-10-26 2006-10-26 Method for osteoplasty in experiment RU2336841C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006137868/14A RU2336841C2 (en) 2006-10-26 2006-10-26 Method for osteoplasty in experiment

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006137868/14A RU2336841C2 (en) 2006-10-26 2006-10-26 Method for osteoplasty in experiment

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2006137868A RU2006137868A (en) 2008-05-27
RU2336841C2 true RU2336841C2 (en) 2008-10-27

Family

ID=39586046

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006137868/14A RU2336841C2 (en) 2006-10-26 2006-10-26 Method for osteoplasty in experiment

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2336841C2 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2450833C1 (en) * 2010-12-23 2012-05-20 Федеральное Государственное Учреждение "Научно-Исследовательский Детский Ортопедический Институт Имени Г.И. Турнера" Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации Biologically active bandage for treating persistent wound (trophic ulcers, decubitis ulcers, deep dermal burns)
RU2570034C1 (en) * 2014-06-16 2015-12-10 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Казанский (Приволжский) Федеральный Университет" (ФГАОУ ВПО КФУ) Method for bone augmentation within alveolar process defect
RU2805815C1 (en) * 2023-02-16 2023-10-24 Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого" Министерства Здравоохранения Российской Федерации Method of plastic surgery of bone tissue defects using platelet-rich plasma in experiment

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ОСЕПЯН И.А. и др. Экспериментальное применение костномозговых фибробластов на основе пористого углерода при замещении дефектов костей. Экспериментальная и клиническая медицина. Том XXIX, №3, 1989, с. 277-279. *
реферат. *
реферат. ШАРИФУЛЛИНА С.З. и др. Выделение мезенхимальных стволовых клеток из жировой ткани человека и их характеристика. - СПб., Россия, 2004 Международный симпозиум по биологии клетки в культуре "Стволовые клетки, регенерация, клеточная терапия». KRZYMANSKI G. et al. The use of bone-marrow-derived fibroblastoid cells and fresh bone marrow in the treatment of bone defects: an experimental study., Int J Oral Maxillofac Surg. 1997 Feb; 26(1):55-60, реферат. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2450833C1 (en) * 2010-12-23 2012-05-20 Федеральное Государственное Учреждение "Научно-Исследовательский Детский Ортопедический Институт Имени Г.И. Турнера" Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации Biologically active bandage for treating persistent wound (trophic ulcers, decubitis ulcers, deep dermal burns)
RU2570034C1 (en) * 2014-06-16 2015-12-10 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Казанский (Приволжский) Федеральный Университет" (ФГАОУ ВПО КФУ) Method for bone augmentation within alveolar process defect
RU2805815C1 (en) * 2023-02-16 2023-10-24 Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Образования "Красноярский Государственный Медицинский Университет Имени Профессора В.Ф. Войно-Ясенецкого" Министерства Здравоохранения Российской Федерации Method of plastic surgery of bone tissue defects using platelet-rich plasma in experiment

Also Published As

Publication number Publication date
RU2006137868A (en) 2008-05-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Stanovici et al. Bone regeneration strategies with bone marrow stromal cells in orthopaedic surgery
Bajada et al. Successful treatment of refractory tibial nonunion using calcium sulphate and bone marrow stromal cell implantation
Lendeckel et al. Autologous stem cells (adipose) and fibrin glue used to treat widespread traumatic calvarial defects: case report
S Shekkeris et al. Clinical applications of mesenchymal stem cells in the treatment of fracture non-union and bone defects
JPH02209811A (en) Composition for regenerating articular cartilage and bone,preparation of bone tissue transplant,and method for regenerating bone tissue
AU2018335854B9 (en) Biomaterial comprising adipose-derived stem cells and method for producing the same
AU2018335254B2 (en) Biomaterial comprising adipose-derived stem cells and method for producing the same
Bravo et al. Orthobiologics: A comprehensive review of the current evidence and use in orthopedic subspecialties
RU2336841C2 (en) Method for osteoplasty in experiment
CN108096633A (en) A kind of cartilage defect repair material and preparation method thereof
RU2301677C1 (en) Biotransplant for treatment of degenerative and traumatic disease of cartilage tissue and method for its preparing
Ben-David et al. Autologous cell-coated particles for the treatment of segmental bone defects—a new cell therapy approach
US11602579B2 (en) Biomaterial comprising adipose-derived stem cells and method for producing the same
RU2461621C1 (en) Method for stimulating formation of fibrocartilagenous regenerated clavus in mammals
RU2309756C1 (en) Method for treating false articulations due to transplantation of autologous mesenchymal stem cells and biotransplant for its application
RU2818176C1 (en) Method for producing tissue-engineered periosteum from cell spheroids for repairing bone defects in patients
Petite et al. Marrow stromal stem cells for repairing the skeleton
Chai et al. Treatment of osteonecrosis of the femoral head using prevascularized bone tissues constructed with human umbilical cord mesenchymal stem cells and human umbilical vein endothelial cells
RU2692452C1 (en) Method of jaw bone defects replacement
RU2296575C2 (en) Composition for bone tissue treatment in damages of inflammation etiology
Yoshikawa et al. Treatment of pseudoarthrosis using tissue-engineered bone graft
原田恭治 et al. Clinical use of bone marrow derived mesenchymal stromal cells auto-transplantation for delayed union cases of a cat and a dog
Cordonnier et al. Healing of long-bone defects in sheep metatarsals using bioceramics and mesenchymal stem cells
PETITE et al. Marrow Stromal Stem Cells for Repairing
Ganguly et al. Clinical application of human mesenchymal stromal cells for bone tissue engineering

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20081027