[go: up one dir, main page]

RU2054294C1 - Method of preparing inactivated vaccine against viral hemorrhagic disease in rabbits - Google Patents

Method of preparing inactivated vaccine against viral hemorrhagic disease in rabbits Download PDF

Info

Publication number
RU2054294C1
RU2054294C1 SU5059003A RU2054294C1 RU 2054294 C1 RU2054294 C1 RU 2054294C1 SU 5059003 A SU5059003 A SU 5059003A RU 2054294 C1 RU2054294 C1 RU 2054294C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
rabbits
vaccine against
suspension
hemorrhagic disease
inactivation
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
А.А. Шевченко
И.Ф. Вишняков
В.П. Князев
Н.В. Малоголовкина
В.В. Зиновьев
М.А. Лавров
Original Assignee
Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии filed Critical Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority to SU5059003 priority Critical patent/RU2054294C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2054294C1 publication Critical patent/RU2054294C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology. SUBSTANCE: method involves the use of 25-30% suspension of rabbit liver dead after viral hemorrhagic disease prepared on the buffered solution, pH 7.2, Virus is extracted twice for 20-48 hr at 6 ± 2 C, at periodic stirring and filtration through the sterile cotton-gauze filter. Inactivation of viral raw is carried out at 60 C for 5 hr. Material is stabilized by addition of 5% lactose and 1% gelatin at the ratio 1:1 and stabilizing agent followed by lyophilization. EFFECT: improved method of vaccine preparing. 4 tbl

Description

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способу изготовления инактивированной вакцины против вирусной геморрагической болезни кроликов (ВГБК), и может быть использовано в научных и производственных лабораториях, занимающихся конструированием биопрепаратов, а также на предприятиях биологической промышленности. The invention relates to biotechnology, in particular to a method for the manufacture of an inactivated vaccine against viral hemorrhagic rabbit disease (HBVC), and can be used in scientific and production laboratories involved in the design of biological products, as well as in enterprises of the biological industry.

Известен способ изготовления лиофилизированной тканевой инактивированной вакцины против вирусной геморрагической болезни кроликов (Временная инструкция по изготовлению и контролю вакцины против вирусной геморрагической болезни кроликов тканевой инактивированной лиофилизированной, утвержденная директором ВНИИВВиМ 02.01.91). A known method of manufacturing a lyophilized tissue inactivated vaccine against viral hemorrhagic disease of rabbits (Temporary instruction for the manufacture and control of a vaccine against viral hemorrhagic disease of rabbits of tissue inactivated lyophilized, approved by the director of VNIIVViM 02.01.91).

Известен способ изготовления инактивированной вакцины против вирусной геморрагической болезни кроликов. Также подана заявка N 5043431 от 26.05.92, авторы Шевченко А.А. и другие. A known method of manufacturing an inactivated vaccine against viral hemorrhagic rabbit disease. Also filed application N 5043431 from 05.26.92, authors Shevchenko A.A. and others.

В качестве вирусного сырья используют 20%-ную суспензию печени кроликов, павших после заражения вирулентным вирусом геморрагической болезни кроликов на забуференном физрастворе (рН 7,2). Полученную суспензию выдерживают при 20оС в течение 3 ч, от клеточного детрита освобождаются центрифугированием при 3000 об/мин в течение 20 мин (общее количество белка не более 5 мг/мл). Недостаток сливают в реактор и инактивируют 1,8,3,6-диэндометилен-1,3,6,8-тетраазатрициклодекан- ом из расчета 1 г вещества на 1000 мл вирусного сырья в течение 48 ч при температуре 27оС при периодическом перемешивании. Затем сырье осветляют добавлением 1 ч. хлороформа на 5 ч. сырья, выдерживают 10 ч при температуре 20оС. Для сохранения нативных свойств в качестве стабилизирующей защитной среды используют стабилизатор, который включает: лактозу ТУ 6-09-2293-75 50,0 г, пептон сухой ферментативный ГОСТ 13805-76 50,0 г, калий фосфорнокислый однозамещенный ГОСТ 4198-75 1,0 г, калий фосфорнокислый двузамещенный ГОСТ 2493-65 5,2 г, на 1 л дистиллированной волы рН 7,2 ГОСТ 6709-72.As a viral raw material use a 20% suspension of the liver of rabbits that died after infection with a virulent virus of hemorrhagic disease of rabbits in buffered saline (pH 7.2). The resulting suspension was kept at 20 ° C for 3 hours, freed of cellular debris by centrifugation at 3000 rev / min for 20 minutes (total amount of protein is not more than 5 mg / ml). The disadvantage of the reactor is drained and inactivate diendometilen-1,8,3,6-1,3,6,8-th tetraazatritsiklodekan- rate of 1 g of substance in 1000 ml viral feedstock for 48 hr at 27 ° C with occasional stirring. The stock was then clarified by the addition of chloroform for 1 hour 5 hours feedstock is heated 10 h at 20 ° C. To maintain native properties as a stabilizing protective medium using a stabilizer which comprises:.. TU 6-09-2293-75 lactose 50.0 g, dry enzymatic peptone GOST 13805-76 50.0 g, monosubstituted potassium phosphate GOST 4198-75 1.0 g, disubstituted potassium phosphate GOST 2493-65 5.2 g, per 1 liter of distilled ox pH 7.2 GOST 6709- 72.

Затем 1 ч. стабилизатора смешивают с 2 ч. инактивированного материала, тщательно смешивают и фасуют при помощи дозатора (АГ-5) в стерильные флаконы или ампулы по 2,0 мл и проводят лиофилизацию при вакууме 80 мкм. Для этого замораживают материал при минус 45оС в течение 10 ч, выдерживают при температуре от минус 45 до 0оС в течение 22 ч. Затем доводят температуру до 20оС в течение 3 ч и досушивают 3 ч. Весь цикл лиофилизации составляет 28 ч. Укупорка флаконов или запайка ампул проводятся под вакуумом.Then, 1 part of the stabilizer is mixed with 2 parts of inactivated material, thoroughly mixed and packaged with a dispenser (AG-5) into 2.0 ml sterile vials or ampoules and lyophilized under vacuum of 80 μm. To this frozen material at minus 45 ° C for 10 hours, kept at a temperature of from -45 to 0 ° C for 22 hours. Then the temperature is brought to 20 ° C for 3 hours and finally dried for 3 hours. The whole lyophilization cycle is 28 h. Corking of bottles or sealing of ampoules is carried out under vacuum.

Такая инактивированная тканевая вакцина против ВГБК не вызывает поствакциональных осложнений, иммунитет формируется на 3и сутки при внутримышечном введении (0,5 мл) продолжительностью 12 месяцев. Вакцина стабильна при длительном хранении. This inactivated tissue vaccine against HBV does not cause post-vaccination complications, immunity is formed on the 3rd day with intramuscular injection (0.5 ml) lasting 12 months. The vaccine is stable during long-term storage.

Однако при изготовлении указанной вакцины требуется в 2-43 раза больше кроликов, для инактивации используется химический инактиватор (1,8,3,6-диэндо- метилен-1,3,6,8-тетраазатрициклодекан), который нейтрализации не поддается, инактивация проводится в течение длительного времени (2-3 сут.), при осветлении применяют хлороформ, который не безвреден для работающих. Вакцина применяется только внутримышечно в объеме 0,5 мл. However, in the manufacture of this vaccine, 2-43 times more rabbits are required, a chemical inactivator (1,8,3,6-diendomethylene-1,3,6,8-tetraazatricyclodecane) is used for inactivation, which cannot be neutralized, inactivation is carried out for a long time (2-3 days), with clarification, chloroform is used, which is not harmless to workers. The vaccine is used only intramuscularly in a volume of 0.5 ml.

Предлагаемый способ изготовления вакцины устраняет перечисленные недостатки. The proposed method of manufacturing a vaccine eliminates the above disadvantages.

Задача изобретения изготовление высокоактивной инактивированной вакцины против ВГБК, стабильной при хранении. The objective of the invention is the manufacture of highly active inactivated vaccine against HBV, stable during storage.

Сущность предлагаемого способа заключается в том, что используется 25-30% -ная суспензия печени кроликов, павших от ВГБК, на забуференном растворе (рН 7,2). Проводят двукратное экстрагирование вируса в течение 20-48 ч при температуре 6± 2оС при периодическом перемешивании и фильтрование через стерильный ватно-марлевый фильтр. Инактивацию вирусного сырья проводят при температуре 60оС в течение 5-6 ч.The essence of the proposed method lies in the fact that a 25-30% suspension of the liver of rabbits killed by HBV is used in a buffered solution (pH 7.2). Twofold extraction was carried virus for 20-48 hours at 6 ± 2 ° C with occasional stirring, and filtering through a sterile cotton-gauze filter. Inactivation of viral raw materials is carried out at a temperature of 60 about C for 5-6 hours

Стабилизацию материала осуществляют внесением 5%-ного лактозы и 1%-ной желатины в соотношении 1:1 материала и стабилизатора. Material stabilization is carried out by introducing 5% lactose and 1% gelatin in a 1: 1 ratio of material and stabilizer.

Лиофилизируют по ранее предложенному режиму. Lyophilized according to the previously proposed regimen.

Для изготовления вакцины против вирусной геморрагической болезни кроликов массой 2,5 кг и выше, заражают их вирусом ГБК (регистрационный номер 1652 в коллекции ВГНКИ) с инфекционной активностью 103,0 ЛД 50/мл. Через 24-72 кролики погибают, от них берут печень, замораживают, пропускают через мясорубку, фарш размалывают в гомогенизаторе. Полученный материал доводят физраствором рН 7,2 до 30%-ной суспензии, экстрагируют вирус в течение 20 ч при 6оС, декантируют надосадок, а к осадку добавляют физраствор 1:2 и повторно экстрагируют в течение 20 ч при периодическом перемешивании.For the manufacture of a vaccine against viral hemorrhagic disease of rabbits weighing 2.5 kg and above, they are infected with GBK virus (registration number 1652 in the collection of VGNKI) with an infectious activity of 10 3.0 LD 50 / ml. After 24-72 rabbits die, they take the liver from them, freeze them, pass them through a meat grinder, and forcemeat grind in a homogenizer. The resulting material was adjusted with physiological saline pH 7.2 to 30% suspension extracted with virus for 20 hours at 6 ° C, the supernatant was decanted, and to the residue was added saline 1: 2, and re-extracted for 20 hours with occasional stirring.

От клеточного и тканевого детрита освобождаются путем фильтрования через стерильный ватно-марлевый фильтр. Результаты представлены в табл.1. Cell and tissue detritus are freed by filtration through a sterile cotton-gauze filter. The results are presented in table 1.

Из табл. 1 видно, что использование 30%-ной суспензии печени, двукратное экстрагирование вируса, освобождение от клеточного детрита фильтрованием через ватно-марлевый фильтр позволяют увеличить выход вирусного сырья в 2 раза при изготовлении вакцины по предлагаемому способу по сравнению с прототипом. Отфильтрованный материал сливают в емкость и инактивируют в водяной бане при температуре 60оС в течение 5 ч при периодическом перемешивании. Результаты представлены в табл.2.From the table. 1 shows that the use of a 30% suspension of the liver, double extraction of the virus, the release of cellular detritus by filtration through a cotton-gauze filter can increase the yield of viral raw materials by 2 times in the manufacture of the vaccine according to the proposed method compared to the prototype. The filtered material is poured into a container and inactivated in a water bath at 60 ° C for 5 hours with occasional stirring. The results are presented in table.2.

Из табл.2 видно, что наилучшей температурой для инактивации вируса является 60оС, активность при этом снижается только на порядок. Такой режим инактивации при 60оС в течение 5 ч позволяет полностью обеспечить патогенность вируса и сохранить иммуногенные свойства.From Table 2 it is seen that the best temperature for the virus inactivation is 60 ° C, while the activity decreases only one order of magnitude. Such inactivation treatment at 60 ° C for 5 hours allows completely secure and maintain pathogenicity immunogenic properties.

Для сохранения исходных свойств в качестве стабилизирующей защитной среды используют смесь 5%-ной лактозы и 1%-ной желатины. Затем инактивированный материал смешивают со стабилизирующей средой в соотношении 1:1, тщательно перемешивают и с помощью дозатора (АГ-5) фасуют по 2,0 мл в стерильные ампулы, замораживают и лиофилизируют по принятому режиму. Результаты представлены в табл.3. To preserve the original properties, a mixture of 5% lactose and 1% gelatin is used as a stabilizing protective medium. Then, the inactivated material is mixed with a stabilizing medium in a ratio of 1: 1, mixed thoroughly, and using a dispenser (AG-5), 2.0 ml are packaged in sterile ampoules, frozen and lyophilized according to the accepted regimen. The results are presented in table.3.

Из табл. 3 видно, что использование в качестве стабилизирующей защитной среды 5%-ной лактозы и 1%-ной желатины, смешанных с материалом в соотношении 1: 1, позволяет сохранять исходные свойства вакцины в течение 3-6 месяцев хранения. Применение по предложенному способу различными методами введения (внутримышечно, подкожно, внутрикожно) в дозах 0,20-0,50 мл не вызывает у животных поствакцинальных осложнений, иммунитет формируется на 3 сут, и защита после контрольного заражения вирулентным вирусом составляет 90-100%
Результаты по сравнительной характеристике вакцин против ВГБК представлены в табл. 4.
From the table. Figure 3 shows that the use of 5% lactose and 1% gelatin mixed with the material in a 1: 1 ratio as the stabilizing protective medium allows preserving the initial properties of the vaccine for 3-6 months of storage. The use of the proposed method by various methods of administration (intramuscularly, subcutaneously, intradermally) at doses of 0.20-0.50 ml does not cause post-vaccination complications in animals, immunity is formed for 3 days, and protection after control of infection with a virulent virus is 90-100%
The results of the comparative characteristics of vaccines against HBV are presented in table. 4.

Таким образом, предлагаемое двукратное экстрагирование вируса, освобождение от клеточного детрита позволяют повысить выход сырья в 2 раза, инактивирование вируса при температуре 60оС в течение 5 ч позволяет подавить вирулентность и сохранить иммуногенные свойства.Thus, the proposed twofold extraction of virus release from the cell detritus can increase raw material yield is 2 times, the inactivation of the virus at 60 ° C for 5 hours, and can suppress virulence retain immunogenic properties.

Использование в качестве защитной среды 5%-ной лактозы и 1%-ной желатины сохраняет биологические свойства лиофилизированного препарата и стабильность при хранении. The use of 5% lactose and 1% gelatin as a protective medium preserves the biological properties of the lyophilized preparation and storage stability.

Предложенный способ прост в исполнении, доступен и является промышленно применимым. The proposed method is simple to implement, affordable and is industrially applicable.

Claims (1)

СПОСОБ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ИНАКТИВИРОВАННОЙ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ВИРУСНОЙ ГЕМОРРАГИЧЕСКОЙ БОЛЕЗНИ КРОЛИКОВ, включающий приготовление суспензии печени кроликов, павших после заражения вирулентным вирусом геморрагической болезни, ее инактивацию, лиофилизацию, отличающийся тем, что суспензию готовят 25 - 30%-ной перед инактивацией суспензию дважды экстрагируют в течение 20 - 48 ч при 6oС, инактивацию проводят при 60oС в течение 5 ч, после чего суспензию стабилизируют равным количеством смеси 5%-ной лактозы и 1%-ной желатины на забуференном физиологическом растворе рН 7,2.METHOD FOR PRODUCING INACTIVATED VACCINE AGAINST VIRUS HEMORRHAGIC RABBIT DISEASE, including the preparation of a liver suspension of rabbits that died after infection with a virulent virus of hemorrhagic disease, its inactivation, lyophilization, characterized in that the suspension is prepared before it is inactivated - 25-30% twice before 48 h at 6 o C, inactivation is carried out at 60 o C for 5 h, after which the suspension is stabilized with an equal amount of a mixture of 5% lactose and 1% gelatin on a buffered physiological solution solution pH 7.2.
SU5059003 1992-08-17 1992-08-17 Method of preparing inactivated vaccine against viral hemorrhagic disease in rabbits RU2054294C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5059003 RU2054294C1 (en) 1992-08-17 1992-08-17 Method of preparing inactivated vaccine against viral hemorrhagic disease in rabbits

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5059003 RU2054294C1 (en) 1992-08-17 1992-08-17 Method of preparing inactivated vaccine against viral hemorrhagic disease in rabbits

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2054294C1 true RU2054294C1 (en) 1996-02-20

Family

ID=21611734

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5059003 RU2054294C1 (en) 1992-08-17 1992-08-17 Method of preparing inactivated vaccine against viral hemorrhagic disease in rabbits

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2054294C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Временная инструкция по изготовлению и контролю вакцины против вирусной геморрагической болезни кроликов тканевой инактивированной лиофилизированной, утверждена 02.01.91. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR100702086B1 (en) Live vaccines of lyophilized directed hepatitis A and stabilizers
US4622222A (en) Process for the preparation of a lyophilized vaccine against duck virus hepatitis
JPS58183628A (en) Stabilization for influenza virus vaccine
US3456053A (en) Inactivated hog cholera virus vaccine
US4086134A (en) Method for preparation of vaccine against feline leukemia
CA1039187A (en) Feline leukemia vaccines
US4034081A (en) Vaccines against feline leukemia
US4320115A (en) Rabies virus vaccine
US2912361A (en) Canine distemper vaccine and its preparation
Perez et al. Production methods for rabies vaccine
RU2054294C1 (en) Method of preparing inactivated vaccine against viral hemorrhagic disease in rabbits
US3423505A (en) Rabies vaccine and process for preparation thereof
MXPA05008695A (en) Stabilization of viral compositions.
Kramer et al. Active Immunization against Poliomyelitis. A Comparative Study: IV. Experimental Immunization of Monkeys with Purified Virus, Adsorbed on Al (OH) 3
US3627873A (en) Influenza vaccine with reduced pyrogenicity
US4537768A (en) Combined vaccine
RU2039570C1 (en) Process for manufacturing inactivated vaccine used against viral hemorrhagic diseases of rabbits
US3318775A (en) Production of viral antigens with n-acetyl-ethyleneimine
RU2064304C1 (en) Method of preparing bipartial vaccine against myxomatosis and viral hemorrhagic disease in rabbit
CN108175854B (en) Freeze-dried preparation of Japanese encephalitis vaccine
US3590127A (en) Process of producing equine viral arteritis vaccine and product thereof
US2594180A (en) Vaccine and process for manufacturing the same
US3135661A (en) Bacteria free dried smallpox vaccine
US3097142A (en) Benzyl alcohol stabilized polio vaccines and production thereof
RU2259214C1 (en) Method for preparing inactivated dry smallpox vaccine "ospavir"