JPS60199001A - 抗腫瘍性多糖誘導体 - Google Patents
抗腫瘍性多糖誘導体Info
- Publication number
- JPS60199001A JPS60199001A JP59054381A JP5438184A JPS60199001A JP S60199001 A JPS60199001 A JP S60199001A JP 59054381 A JP59054381 A JP 59054381A JP 5438184 A JP5438184 A JP 5438184A JP S60199001 A JPS60199001 A JP S60199001A
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- JP
- Japan
- Prior art keywords
- formula
- group represented
- residue
- glucobylanose
- polysaccharide derivative
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- Pending
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- Medicines Containing Plant Substances (AREA)
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
Abstract
(57)【要約】本公報は電子出願前の出願データであるた
め要約のデータは記録されません。
め要約のデータは記録されません。
Description
【発明の詳細な説明】
の多糖誘導体を有効成分として含む抗腫瘍剤に関するも
のである。
のである。
担子菌由来の多糖は、抗腫瘍性を示すことで注目されて
いる。この例としては、シイタケよりのレンチナン、ス
エヒロタケよりのシゾフィランなどが知られている。こ
れらは、いずれも、β−1、3−グルカンを主鎖とし、
β−1、6一結合でグルコースが分岐しているといわれ
ている。
いる。この例としては、シイタケよりのレンチナン、ス
エヒロタケよりのシゾフィランなどが知られている。こ
れらは、いずれも、β−1、3−グルカンを主鎖とし、
β−1、6一結合でグルコースが分岐しているといわれ
ている。
担子菌ブクリツウよりのバキマン、スクレロチウム属の
微生物よりのスクレログルカン同様の構造を持つといわ
れている。
微生物よりのスクレログルカン同様の構造を持つといわ
れている。
しかしながらこのような類似した構造を持つ多糖であっ
ても,それらの抗腫瘍性には、差が認められるのであり
、時に抗腫瘍性のほとんど認められない場合もある。そ
の原因の一つとして、分岐した糖、即ち側鎖の形態(例
えば、側鎖の数や長さ)の違いによることが考えられる
。
ても,それらの抗腫瘍性には、差が認められるのであり
、時に抗腫瘍性のほとんど認められない場合もある。そ
の原因の一つとして、分岐した糖、即ち側鎖の形態(例
えば、側鎖の数や長さ)の違いによることが考えられる
。
本発明者等は分岐を有するβ−1、6−グルカンにさら
に強力な抗腫瘍性を付与すべく鋭意研究の結果本発明を
なした。
に強力な抗腫瘍性を付与すべく鋭意研究の結果本発明を
なした。
本発明は本質的に式
%式%(13
で表わされる第1のくり返えし単位(式中D − Gl
uはD一グルコビラノース残基を表わし、βは結合様式
を表わし、数字は結合位置を表わす)、ならびに式 %式%(1 で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−Glu、
β、及び数字は前記同様の意味を表わし、+3)βーD
ーGJu(1)+は主鎖部分を表わし、nはロないし2
の整数を表わし,Xは式 であられされる基(人は一OH又は C)1,OH で表わされるD−グルコピラノシル基を表わし、Yは式 で表わされる基(人は前記同様の意味である)、で表わ
されるD−グルコビラノース残基な表わす。
uはD一グルコビラノース残基を表わし、βは結合様式
を表わし、数字は結合位置を表わす)、ならびに式 %式%(1 で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−Glu、
β、及び数字は前記同様の意味を表わし、+3)βーD
ーGJu(1)+は主鎖部分を表わし、nはロないし2
の整数を表わし,Xは式 であられされる基(人は一OH又は C)1,OH で表わされるD−グルコピラノシル基を表わし、Yは式 で表わされる基(人は前記同様の意味である)、で表わ
されるD−グルコビラノース残基な表わす。
これらの両式中、(PIを付した炭素にXが結合し、0
を付した酸素でグルコビラノース残基に結合する意味で
ある)からなり、前記第2のくり返えし単位中のXの少
なくとも一部は前記 CH,OH 奮 で表わされる基であり、さらにAの少なくとも一部分は
前記 で表わされる基を同時に含有することを特徴とする、β
−1,5−グル力/を主鎖とする多糖誘導体ならびKそ
の製造法ならびにそれを含んで成る抗腫瘍剤を提供する
ものである。
を付した酸素でグルコビラノース残基に結合する意味で
ある)からなり、前記第2のくり返えし単位中のXの少
なくとも一部は前記 CH,OH 奮 で表わされる基であり、さらにAの少なくとも一部分は
前記 で表わされる基を同時に含有することを特徴とする、β
−1,5−グル力/を主鎖とする多糖誘導体ならびKそ
の製造法ならびにそれを含んで成る抗腫瘍剤を提供する
ものである。
本発明の多糖誘導体は好ましくは前記第1および第2の
各くりかえし単位の個数の和100個あたり、各平均で
第2のくりかえし単位の個数が約16ないし85個であ
ることを特徴とする、β−1,3−グルカンを主鎖とす
る多糖誘導体である。
各くりかえし単位の個数の和100個あたり、各平均で
第2のくりかえし単位の個数が約16ないし85個であ
ることを特徴とする、β−1,3−グルカンを主鎖とす
る多糖誘導体である。
本発明の多糖の物理的化学的性質は以下の通りである。
+1) 溶解性
ヒスタミンの結合量が少ない場合INか性ソーダ水溶液
およびジメチルスルホキシドに可溶(しばしばゾル状溶
液となる)であり、メチルアルコール、エチルアルコー
ル、アセトン等に不溶性ないし離溶性である。
およびジメチルスルホキシドに可溶(しばしばゾル状溶
液となる)であり、メチルアルコール、エチルアルコー
ル、アセトン等に不溶性ないし離溶性である。
(2)元素分析
原料として用いる多糖類の種類ならびにヒスタミンの結
合量によっても異なるが、その元素分析値は、充分に乾
燥した試料においては、通常 C= 41%〜48% H=5.8%〜&8% N=α1%〜7.0% を与える。
合量によっても異なるが、その元素分析値は、充分に乾
燥した試料においては、通常 C= 41%〜48% H=5.8%〜&8% N=α1%〜7.0% を与える。
(3)分子量
原料として用いる多糖類の種類ならびに調製方法にもよ
るが、通常ジメチルスルホキシドを移動相とする高速液
体クロマトグラフィーでカラムとして東洋曹達製G−6
oooPWおよびG−3000PWを用いた場合、分子
量7万〜450万の範囲に溶出する。
るが、通常ジメチルスルホキシドを移動相とする高速液
体クロマトグラフィーでカラムとして東洋曹達製G−6
oooPWおよびG−3000PWを用いた場合、分子
量7万〜450万の範囲に溶出する。
(4)赤外吸収スペクトル
臭化カリウム錠剤法による赤外吸収スペクトルを第一図
に示した。
に示した。
(5)構成糖
本発明の多糖誘導体をギ酸および硫酸あるいは硫酸で加
水分解した後、高速液体クロマトグラフィ(移動相:
CH,CN/H,0=75/25、カラム:東洋1達製
LS−450K)ならびにペーパークロマトダラフイ(
展開溶媒:ブタノール/ピリジン/水、、=6/415
、発色剤;硫酸銀溶液)ならびにアルジトールアセテー
トに誘導した後ガスクロマトグラフィ(カラA : T
hermon −5000およびECN38−N)で同
定ならびに定量した。
水分解した後、高速液体クロマトグラフィ(移動相:
CH,CN/H,0=75/25、カラム:東洋1達製
LS−450K)ならびにペーパークロマトダラフイ(
展開溶媒:ブタノール/ピリジン/水、、=6/415
、発色剤;硫酸銀溶液)ならびにアルジトールアセテー
トに誘導した後ガスクロマトグラフィ(カラA : T
hermon −5000およびECN38−N)で同
定ならびに定量した。
(イ)本発明の多糖誘導体を完全に加水分解すると糖質
としてはグルコースとグリセロールとグリコールアルデ
ヒドが生成した。
としてはグルコースとグリセロールとグリコールアルデ
ヒドが生成した。
(ロ)本発明の多糖誘導体を箱守法によりメチル化し、
加水分解した後分解物をそのままあるいはアルジトール
アセテートに誘導してガスクロマトグラフィで分析した
所、糖質として主成分として2.4.6−トリー〇−メ
チルグルコースが検出され、少量成分として2.4−0
−メチルグルコースならびに1.3−ジー0−メチル−
グリセリンが検出され、他にごく少量の2.3.4.6
−チトラーO−メチルーグルコースと2゜3.4−トリ
ー〇−メチルーグルコースが認められる場合と認められ
ない場合がある。
加水分解した後分解物をそのままあるいはアルジトール
アセテートに誘導してガスクロマトグラフィで分析した
所、糖質として主成分として2.4.6−トリー〇−メ
チルグルコースが検出され、少量成分として2.4−0
−メチルグルコースならびに1.3−ジー0−メチル−
グリセリンが検出され、他にごく少量の2.3.4.6
−チトラーO−メチルーグルコースと2゜3.4−トリ
ー〇−メチルーグルコースが認められる場合と認められ
ない場合がある。
e→ 本発明の多糖誘導体を酸で緩和加水分解すると白
色の沈殿を生ずる。この水溶性画分を高速液体クロマト
グラフィで分析スると糖質としてグリセリンの存在が確
認される。一方この白色沈殿をメチル化し加水分解した
後分解物をそのままあるいはアルジトールアセテートに
誘導してガスクロマトグラフィで分析した所、糖質由来
の化合物としては2.4,6−)リーO−メチルーグル
コースのみが主成分として検出され、他に痕跡量の2.
3.4.6−チトラーO−メチルグルコースが検出され
る場合がある。
色の沈殿を生ずる。この水溶性画分を高速液体クロマト
グラフィで分析スると糖質としてグリセリンの存在が確
認される。一方この白色沈殿をメチル化し加水分解した
後分解物をそのままあるいはアルジトールアセテートに
誘導してガスクロマトグラフィで分析した所、糖質由来
の化合物としては2.4,6−)リーO−メチルーグル
コースのみが主成分として検出され、他に痕跡量の2.
3.4.6−チトラーO−メチルグルコースが検出され
る場合がある。
本発明の多糖誘導体は非常に強い抗腫瘍性を有するが哺
乳動物への毒性は極めて低′く、マウスに対する急性毒
性はLDお で1500119/Kt以上である。
乳動物への毒性は極めて低′く、マウスに対する急性毒
性はLDお で1500119/Kt以上である。
本発明の多糖誘導体は公知の抗腫瘍性多糖と同様、生理
的に許容し得る基剤に溶解または分散させて、皮下、筋
肉内、静脈内などへの注射その他の慣用の方法によりて
投与することができる。投与量は体重1KF当り約0.
05ないし約5019程度である。
的に許容し得る基剤に溶解または分散させて、皮下、筋
肉内、静脈内などへの注射その他の慣用の方法によりて
投与することができる。投与量は体重1KF当り約0.
05ないし約5019程度である。
本発明の多糖誘導体は、本質的に式
%式%(1))
で表わされる第1のくり返えし単位(式中D −GJu
ハD−グルコビラノース残基を表わし、βは結合様式
を表わし、数字は結合位置を表わす)、ならびに式 %式%(13 で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−GJu、
β、及び数字は前記同様の意味を表わし、÷5)β−D
−Gj!u(1:3+は主鎖部分を表わし、nは口ない
し2の整数な表わで表わされるD−グルコピラノシル基
又はCH,OH 1 で表わされる基を表わし、 で表わされる基または式 で表わされるD−グルコビラノース残基ヲ表わす。これ
らの前式中、(ト)を付した炭素にLが結合し、(Qを
付した酸素でグルコビラノース残基に結合する意味であ
る)からなり、前記第2のくり返えし単位中のしの少な
くとも一部は前記 CH,OH で表わされる基であるカルボニル基を含有するアルデヒ
ド型β−1,3−グルカンをヒスタミン又はその許容し
うる塩類と反応させてシッフ塩基を形成させ、これを還
元することにより製造することができる。
ハD−グルコビラノース残基を表わし、βは結合様式
を表わし、数字は結合位置を表わす)、ならびに式 %式%(13 で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−GJu、
β、及び数字は前記同様の意味を表わし、÷5)β−D
−Gj!u(1:3+は主鎖部分を表わし、nは口ない
し2の整数な表わで表わされるD−グルコピラノシル基
又はCH,OH 1 で表わされる基を表わし、 で表わされる基または式 で表わされるD−グルコビラノース残基ヲ表わす。これ
らの前式中、(ト)を付した炭素にLが結合し、(Qを
付した酸素でグルコビラノース残基に結合する意味であ
る)からなり、前記第2のくり返えし単位中のしの少な
くとも一部は前記 CH,OH で表わされる基であるカルボニル基を含有するアルデヒ
ド型β−1,3−グルカンをヒスタミン又はその許容し
うる塩類と反応させてシッフ塩基を形成させ、これを還
元することにより製造することができる。
この方法(以下本発明の方法と云う)で出発物質として
用いるアルデヒド型β−1,3−グルカンは、例えばA
gric%Biol、Chem、す2)、417〜42
5(197B)に開示されている様にキクラゲ(Aur
icularia auri−cula−judae
)子実体を、アルカリ性水溶液で抽出し、そのアルカリ
性水溶液に溶解しない部分(以下キクラゲアルカリ不溶
部という)、あるいはフクロタケ(Volvariel
1avolvacea )の冷アルカリ抽出多糖ある
いはシイタケ(Lentinus edodes )の
熱水抽出多糖等の主鎖の6位でグルコースの分岐を有す
るβ−1,3−グルカンを過ヨウ素酸又はその水溶性塩
類たとえばメタ過ヨウ素酸ナトリウム又はメタ過ヨウ素
酸カリウムで酸化することにより調製することができる
。
用いるアルデヒド型β−1,3−グルカンは、例えばA
gric%Biol、Chem、す2)、417〜42
5(197B)に開示されている様にキクラゲ(Aur
icularia auri−cula−judae
)子実体を、アルカリ性水溶液で抽出し、そのアルカリ
性水溶液に溶解しない部分(以下キクラゲアルカリ不溶
部という)、あるいはフクロタケ(Volvariel
1avolvacea )の冷アルカリ抽出多糖ある
いはシイタケ(Lentinus edodes )の
熱水抽出多糖等の主鎖の6位でグルコースの分岐を有す
るβ−1,3−グルカンを過ヨウ素酸又はその水溶性塩
類たとえばメタ過ヨウ素酸ナトリウム又はメタ過ヨウ素
酸カリウムで酸化することにより調製することができる
。
一方の反応物であるヒスタミンあるいはその許容しうる
塩類としては、ヒスタミンあるいはその塩酸塩、リン酸
塩等があげられる。
塩類としては、ヒスタミンあるいはその塩酸塩、リン酸
塩等があげられる。
本発明の方法で、アルデヒド型β−1,3−グルカンと
ヒスタミンあるいはその許容しうる塩類とからシッフ塩
基を形成させる反応は、水性媒体中で行うことができる
。
ヒスタミンあるいはその許容しうる塩類とからシッフ塩
基を形成させる反応は、水性媒体中で行うことができる
。
その際のアルデヒド型β−1,3−グルカンは水性媒体
中によく分散させる。アルデヒド型β−1,3−グルカ
ンに対する水性媒体の量は重量比で約10ないし約1,
000倍量、好ましくは約30ないし300倍量程度で
ある。反応の際の液性はpH約3ないし約10.好まし
くは約6ないし約8とする。液性調整のために酸、例え
ば塩酸、又はアルカリ、例えば水酸化ナトリウム等を使
用することができる。
中によく分散させる。アルデヒド型β−1,3−グルカ
ンに対する水性媒体の量は重量比で約10ないし約1,
000倍量、好ましくは約30ないし300倍量程度で
ある。反応の際の液性はpH約3ないし約10.好まし
くは約6ないし約8とする。液性調整のために酸、例え
ば塩酸、又はアルカリ、例えば水酸化ナトリウム等を使
用することができる。
反応は、通常温度約5ないし約80℃、好ましくは約1
0ないし約50℃程度で行なう。反応時間は特に限定す
るものではないが、2時間以上が好ましく通常10時間
ないし50時間が用いられる。
0ないし約50℃程度で行なう。反応時間は特に限定す
るものではないが、2時間以上が好ましく通常10時間
ないし50時間が用いられる。
こうしてシップ塩基を形成させたのち還元を行う。還元
剤としては強い還元剤、例えば水素化ホウ素ナトリウム
、シアン化水素化ホウ素ナトリウムなどが用いられる。
剤としては強い還元剤、例えば水素化ホウ素ナトリウム
、シアン化水素化ホウ素ナトリウムなどが用いられる。
還元剤の量は出発物質として用いたアルデヒド型β−1
,3−グルカン中のカルボニル基に対して当量以上であ
り、通常光量の1.5倍量以上用いる。
,3−グルカン中のカルボニル基に対して当量以上であ
り、通常光量の1.5倍量以上用いる。
還元剤の濃度は限定的ではないが約0.001モル濃度
以上、例えば約0001ないし約0.1モル程度を例示
することができる。反応温度は約0ないし約80℃、好
ましくは約10ないし約50℃程度、反応時間は通常数
時間ないし5日間程度、好ましくは数時間ないし2日間
程度である。
以上、例えば約0001ないし約0.1モル程度を例示
することができる。反応温度は約0ないし約80℃、好
ましくは約10ないし約50℃程度、反応時間は通常数
時間ないし5日間程度、好ましくは数時間ないし2日間
程度である。
なお、この還元反応に先だって、たとえば重炭酸ソウダ
のような化合物で反応液を弱塩基性に調製するのは何ら
差しつかえない。
のような化合物で反応液を弱塩基性に調製するのは何ら
差しつかえない。
この反応によって本発明の多糖は水性媒体中へ溶出され
る。水性媒体中へ溶出した本発明の多糖は遠心分離など
の慣用の方法で不溶性画分を除去したのち、アルコール
沈殿透析、凍結乾燥等の常法によって単離することがで
きる。
る。水性媒体中へ溶出した本発明の多糖は遠心分離など
の慣用の方法で不溶性画分を除去したのち、アルコール
沈殿透析、凍結乾燥等の常法によって単離することがで
きる。
なお原料として用いるアルデヒド型β−1,3−グルカ
ンは、さらにその原料であるβ−1,5−グル力/を過
ヨウ素酸又はその水溶性塩類で酸化した後、水洗したま
まのものをそのまま用いてもよく、さらに乾燥されたも
のを用いても何らさしつかえない。
ンは、さらにその原料であるβ−1,5−グル力/を過
ヨウ素酸又はその水溶性塩類で酸化した後、水洗したま
まのものをそのまま用いてもよく、さらに乾燥されたも
のを用いても何らさしつかえない。
また、原料であるアルデヒド型β−1,6−グルカン調
製の段階ないし本発明の多糖誘導体調製の任意の段階で
たとえば超音波処理等の低粘度化処理、ギ酸による主鎖
切断操作など行なうのは何ら差しつかえない。
製の段階ないし本発明の多糖誘導体調製の任意の段階で
たとえば超音波処理等の低粘度化処理、ギ酸による主鎖
切断操作など行なうのは何ら差しつかえない。
以下、本発明を実施例によりさらに詳しく説明する。
実施例1
フラスコに原料調製例1で調製したキクラゲアルカリ不
溶部5tをいれ、蒸留水400−を加えディスパーザ−
でよく分散させる。メタ過ヨウ素酸ナトリウム10Fを
600−の蒸留水に溶解させた溶液を加え、0.3規定
のか性ソウダを滴下しPHを58に保ち、ちっ累算囲気
で遮光下に30℃で44時間反応させた。
溶部5tをいれ、蒸留水400−を加えディスパーザ−
でよく分散させる。メタ過ヨウ素酸ナトリウム10Fを
600−の蒸留水に溶解させた溶液を加え、0.3規定
のか性ソウダを滴下しPHを58に保ち、ちっ累算囲気
で遮光下に30℃で44時間反応させた。
ついで10−のエチレングリコールを加え約2時間攪拌
後、反応液を12000Gで15分間遠心分離した。得
られる固形物を蒸留水11に加え、ディスパーザ−で分
散させた後、再び遠心分離を行なった。得られた固形物
をもう一度水洗し、固形物を得た。この固形物を500
WItの蒸留水にいれディスパーザ−でよく分散させた
後、ヒスタミン・二塩酸塩α5fを加え室温下pH8で
1日攪拌した。次いで遠心分離し沈殿を得た。この沈殿
KIJの蒸留水を加えよく分散させ水素化ホウ素す)I
Jウム3.5tを加え10℃で1日攪拌した後遠心分離
し上清と沈殿に分けた。この沈殿に対し水素化ホウ素ナ
トリウムを1fとした他は前記と同様に還元操作をさら
に2回施し、上清と沈殿を得た。
後、反応液を12000Gで15分間遠心分離した。得
られる固形物を蒸留水11に加え、ディスパーザ−で分
散させた後、再び遠心分離を行なった。得られた固形物
をもう一度水洗し、固形物を得た。この固形物を500
WItの蒸留水にいれディスパーザ−でよく分散させた
後、ヒスタミン・二塩酸塩α5fを加え室温下pH8で
1日攪拌した。次いで遠心分離し沈殿を得た。この沈殿
KIJの蒸留水を加えよく分散させ水素化ホウ素す)I
Jウム3.5tを加え10℃で1日攪拌した後遠心分離
し上清と沈殿に分けた。この沈殿に対し水素化ホウ素ナ
トリウムを1fとした他は前記と同様に還元操作をさら
に2回施し、上清と沈殿を得た。
3回のこの操作の上清区分を合せ、酢酸で中和しPHa
oとした。この液を減圧下に約400dにまで濃縮し、
濃縮液に3倍量のメチルアルコールを加えた。遠心分離
により生じた沈殿を分離した後、この沈殿に水を加え溶
解させ次いで7日間流水中で透析した。透析内液を凍結
乾燥し目的の物質0.99 fを得た。
oとした。この液を減圧下に約400dにまで濃縮し、
濃縮液に3倍量のメチルアルコールを加えた。遠心分離
により生じた沈殿を分離した後、この沈殿に水を加え溶
解させ次いで7日間流水中で透析した。透析内液を凍結
乾燥し目的の物質0.99 fを得た。
かくして得られた多糖誘導体は以下の性状を有していた
。
。
1)元素分析値
充分に乾燥した本物質の元素分析値は以下の通りであっ
た。
た。
C:44.8%
H: 63%
N: ti%
本化合物のヒスタミン結合量は、前記したくりかえし単
位100個あたり約11個と計算される。
位100個あたり約11個と計算される。
2)赤外吸収スペクトル
臭化カリウム錠剤法による赤外吸収スペクトルを第1図
に示す。
に示す。
3)アセチル化分析
よく乾燥された試料5119を精秤し、蒸留水1−を加
えよ〈分散させた。次いで2規定硫酸1−を加え98℃
〜100℃で18時間加熱し加水分解した。冷却後水酸
化バリウムで中和後、内部標準としてトリエチレングリ
コールを加え、よく混合し遠心分離した。上澄液をとり
よく乾燥させた後、ピリジンと無水酢酸の混合液(に1
)α2−を加え、100℃で2時間加熱しアセチル化し
た。
えよ〈分散させた。次いで2規定硫酸1−を加え98℃
〜100℃で18時間加熱し加水分解した。冷却後水酸
化バリウムで中和後、内部標準としてトリエチレングリ
コールを加え、よく混合し遠心分離した。上澄液をとり
よく乾燥させた後、ピリジンと無水酢酸の混合液(に1
)α2−を加え、100℃で2時間加熱しアセチル化し
た。
反応液をガスクロマトグラフィー(カラム: Ther
mon 5000.5%chrcmosorbiv−A
W DMC8)で分析した所、酸水解液中のグリセリン
量は試料乾燥重量あたり14.1%であった。このグリ
セリンは前記したAが水酸基である式Xより生成し友も
のである。
mon 5000.5%chrcmosorbiv−A
W DMC8)で分析した所、酸水解液中のグリセリン
量は試料乾燥重量あたり14.1%であった。このグリ
セリンは前記したAが水酸基である式Xより生成し友も
のである。
り分子量
ジメチルスルホキシドを移動相とし、東洋1達製G60
00 PWおよびGsoooPWカラムを用いた高速液
体クロマトグラフィーで分子量約500万の位置を中心
に溶出した。
00 PWおよびGsoooPWカラムを用いた高速液
体クロマトグラフィーで分子量約500万の位置を中心
に溶出した。
実施例2
原料調製例2で調製したキクラゲのアルデヒド型β−1
,3−グルカン4tを蒸留水40(lagにいれ攪拌下
に減圧で充分脱気した後ディスパーザ−でよく分散させ
た。次いでヒスタミン・二塩酸塩0.75 fを加え、
ちっ累算囲気下にp Hs、 oで2日間よく攪拌した
。ついで還元、中和、濃縮、アルコール沈殿まで実施例
1と同様な操作を行なりだ。アルコール沈殿物を蒸留水
500TItにいれ攪拌下に20KHz 140Wで1
20分超音波を照射した。次いで7日間流水中で透析を
行ない内液を凍結乾燥し、目的の物質0.84fを得た
。
,3−グルカン4tを蒸留水40(lagにいれ攪拌下
に減圧で充分脱気した後ディスパーザ−でよく分散させ
た。次いでヒスタミン・二塩酸塩0.75 fを加え、
ちっ累算囲気下にp Hs、 oで2日間よく攪拌した
。ついで還元、中和、濃縮、アルコール沈殿まで実施例
1と同様な操作を行なりだ。アルコール沈殿物を蒸留水
500TItにいれ攪拌下に20KHz 140Wで1
20分超音波を照射した。次いで7日間流水中で透析を
行ない内液を凍結乾燥し、目的の物質0.84fを得た
。
本多糖誘導体は次の性質を有していた。
1)元素分析
充分に乾燥した本物質の元素分析値は以下の通りであっ
た。
た。
C:46.0%
H: 6.4%
N:4.3%
この元素分析値より本化合物のヒスタミン結合量は前記
したくりかえし単位100個あたり約16個と計算され
る。
したくりかえし単位100個あたり約16個と計算され
る。
2)アセチル化分析
実施例1と同様にアセチル化分析を行なった所、酸水解
液中のグリセリン量は試料乾燥重量あたり1t2%であ
った。グリセリンは前記したAが水酸基である式Xより
生成したものである。
液中のグリセリン量は試料乾燥重量あたり1t2%であ
った。グリセリンは前記したAが水酸基である式Xより
生成したものである。
3)分子量
実施例1と同様の条件において分子量約120万の位置
に溶出した。
に溶出した。
実施例3
原料調製例2で調製したキクラゲのアルデヒド型β−1
,S−/ルカン4fとヒスタミンα6tを用い、実施例
2と同様に反応を行なった。
,S−/ルカン4fとヒスタミンα6tを用い、実施例
2と同様に反応を行なった。
遠心分離した後の沈殿の還元操作において液量を2jに
した以外、は実施例2と同様に行ない、目的の多糖誘導
体α241を得た。
した以外、は実施例2と同様に行ない、目的の多糖誘導
体α241を得た。
本多糖誘導体は次の性質を有していた。
り元素分析
充分に乾燥された本物質の元素分析値は以下の通りであ
った。
った。
C:4&6%
H二 65%
N: 48%
であった。この結果より本化合物のヒスタミン結合量は
前記したくりかえし単位100個あたり約18個と計算
される。
前記したくりかえし単位100個あたり約18個と計算
される。
2)アセチル化分析
実施例1と同様にアセチル化分析を行なった所酸水解液
中のグリセリン量は試料乾燥重量あたり98%であった
。
中のグリセリン量は試料乾燥重量あたり98%であった
。
3)分子量
実施例1と同様の条件において分子量約100万の位置
を中心に溶出した。
を中心に溶出した。
実施例4
原料調製例6で調製したフクロタケのアルデヒド型β−
1,3−グルカン2fを蒸留水20(lqt中にいれ攪
拌下に減圧にして脱気し、またディスハーサーでよく分
散させた。次いでヒスタミン2塩酸塩0.2gを加えp
H7に調製し、室温下で2日間攪拌した。次いで遠心分
離し、沈殿を得た。
1,3−グルカン2fを蒸留水20(lqt中にいれ攪
拌下に減圧にして脱気し、またディスハーサーでよく分
散させた。次いでヒスタミン2塩酸塩0.2gを加えp
H7に調製し、室温下で2日間攪拌した。次いで遠心分
離し、沈殿を得た。
この沈殿を1jの蒸留水中に分散させ、シアノ化水素化
ホウ素ナトリウム4fを加え一日間攪拌した。遠心分離
して上清と沈殿に分離し、沈殿を再び11の蒸留水に分
散させシアノ化水素化ホウ素ナトリウム1fを加え同様
に遠心分離し上清と沈殿を得た。上清を合し以下実施例
1と同様な操作により目的の多糖誘導体α85fを得た
。
ホウ素ナトリウム4fを加え一日間攪拌した。遠心分離
して上清と沈殿に分離し、沈殿を再び11の蒸留水に分
散させシアノ化水素化ホウ素ナトリウム1fを加え同様
に遠心分離し上清と沈殿を得た。上清を合し以下実施例
1と同様な操作により目的の多糖誘導体α85fを得た
。
本多糖誘導体は次の性質を示した。
1)元素分析値
充分に乾燥された本物質の元素分析値は以下の通りであ
った。
った。
C: 45.1%
H: 6.4%
N: 14%
この結果より本化合物のヒスタミン結合量は前記したく
りかえし単位100個あたり約7個と計算される。
りかえし単位100個あたり約7個と計算される。
2)赤外吸収スペクトル
臭化カリウム錠剤法による赤外吸収スペクトルを第2図
に示す。
に示す。
S)アセチル化分析
実施例1と同様にアセチル化分析を行なった所酸水解液
中のグリセリン量は試料乾燥重量あたり、4.7%であ
りた。
中のグリセリン量は試料乾燥重量あたり、4.7%であ
りた。
す分子量
実施例1と同様の条件において分子量約300万の位置
を中心に溶出した。
を中心に溶出した。
実施例5
原料調製例3で調製したフクロタケのアルデヒド型β−
1,5−グルカン2vとヒスタミンニリン酸塩[125
fを実施例4と同様にして反応させ、ついで遠心分離し
た。得られる沈殿を400−の蒸留水中にいれ、水素化
ホウ素ナトリウム2tを加えディスパーザ−でよく分散
させた後、攪拌下に20KH1140Wで120分超音
波を照射した。
1,5−グルカン2vとヒスタミンニリン酸塩[125
fを実施例4と同様にして反応させ、ついで遠心分離し
た。得られる沈殿を400−の蒸留水中にいれ、水素化
ホウ素ナトリウム2tを加えディスパーザ−でよく分散
させた後、攪拌下に20KH1140Wで120分超音
波を照射した。
次いて蒸留水600−を加え1夜攪拌後遠心分離した。
この沈殿を11の蒸留水によく分散させ、1fの水素化
ホウ素ナトリウムを加え20時間攪拌後再び遠心分離し
た。2回の遠心分離の上清を合し、同上の条件で20分
間超音波を照射し、以下実施例1と同様の操作により目
的の多糖誘導体103Fを得た。
ホウ素ナトリウムを加え20時間攪拌後再び遠心分離し
た。2回の遠心分離の上清を合し、同上の条件で20分
間超音波を照射し、以下実施例1と同様の操作により目
的の多糖誘導体103Fを得た。
1)元素分析値
充分に乾燥された本物質の元素分析値は以下の通りであ
った。
った。
C:44.9%
H: 64%
N: to%
この結果より1本化合物のヒスタミン結合量は前記した
くりかえし単位100個あたり、約5個と計算される。
くりかえし単位100個あたり、約5個と計算される。
2)アセチル化分析
実施例1と同様にアセチル化分析を行なった所、酸水解
液中のグリセリン量は試料乾燥重量あたり 9.5%で
あった。
液中のグリセリン量は試料乾燥重量あたり 9.5%で
あった。
3)実施例1と同様の条件において分子量約70万の位
置に溶出した。
置に溶出した。
実施例6
体重的251のTCR系マウスを用い、本発明の多糖誘
導体のザルコーマ180固型腫瘍に対する効果を試験し
た。腹水化されたザルコーマ180細胞600万個をそ
けい部皮下から背部に向は皮下に接種した。実験群は1
群6匹とした。腫瘍細胞接種後翌日より10日間、1日
1回薬剤を腹腔内にQ、1−ずつ投与した。対照群とし
ては0.5%のカルボキシメチルセルロースを含む生理
食塩水を用い、試験群は本発明の多糖誘導体を51q/
Kg/ dayの投与量になるように上記生理食塩水に
溶解させ用いた。
導体のザルコーマ180固型腫瘍に対する効果を試験し
た。腹水化されたザルコーマ180細胞600万個をそ
けい部皮下から背部に向は皮下に接種した。実験群は1
群6匹とした。腫瘍細胞接種後翌日より10日間、1日
1回薬剤を腹腔内にQ、1−ずつ投与した。対照群とし
ては0.5%のカルボキシメチルセルロースを含む生理
食塩水を用い、試験群は本発明の多糖誘導体を51q/
Kg/ dayの投与量になるように上記生理食塩水に
溶解させ用いた。
腫瘍移植後35日0に腫瘍を摘出してその重量を測定し
た。各群の腫瘍抑制率は次式により算出した。
た。各群の腫瘍抑制率は次式により算出した。
−T
腫瘍抑制率%=了X100
ここでC:対照群の平均腫瘍重量
T:試験群の平均腫瘍重量
結果を第1表に示す。
比較例1
実施例6と同様腫瘍ならびにマウスを用いての方法を用
い、原料調製例1ないし3の化合物の抗盾瘍を検討した
。
い、原料調製例1ないし3の化合物の抗盾瘍を検討した
。
結果を第2表に示した。
実施例7
体重的259のICR系マウスにエールリッヒ・カルシ
ノーマ細胞500万個を実施例6と同様に移植し、以下
実施例6と同様に行なった。
ノーマ細胞500万個を実施例6と同様に移植し、以下
実施例6と同様に行なった。
結果を第3表に示す。
比較例2
原料調製例1ならびに3の化合物の抗腫瘍性を実施例7
と同様に試験したところ第4表の結果を得た。
と同様に試験したところ第4表の結果を得た。
実施例8
体重的21fのC3H/He系マウスにザルコーマ18
0細胞を実施例6と同様に移植し、以下実施例6と同様
に行なった結果を第5表に示す。
0細胞を実施例6と同様に移植し、以下実施例6と同様
に行なった結果を第5表に示す。
また、比較例として同時に原料多糖の抗腫瘍性結果を第
5表に示した。
5表に示した。
[
「
第2表
試 料 売4.ア一 ″′i謬111 ”r“原料調製
例 5 6.51 21.1 1の多糖 原料調製例 2のフルデ 5 7.89 4.4 ヒト型多糖 原料調製例 3のフルデ 5 7.47 9.5 ヒト型多糖 第3表 第4表 第5表 原料調製例1 キクラゲアルカリ不溶部の調卿 乾燥キクラゲ500fを粉砕した後、1%食塩水61に
いれ一夜浸漬した後、さらに51の1%食塩水31を加
え60℃で6時間攪拌した。遠心分離により得られる沈
殿を蒸留水10jにいれホモジナイザーでよく粉砕した
flk120℃で2時間熱水抽出を行なった。遠心分離
により得られる沈殿に再び同様の熱水抽出を施した。
例 5 6.51 21.1 1の多糖 原料調製例 2のフルデ 5 7.89 4.4 ヒト型多糖 原料調製例 3のフルデ 5 7.47 9.5 ヒト型多糖 第3表 第4表 第5表 原料調製例1 キクラゲアルカリ不溶部の調卿 乾燥キクラゲ500fを粉砕した後、1%食塩水61に
いれ一夜浸漬した後、さらに51の1%食塩水31を加
え60℃で6時間攪拌した。遠心分離により得られる沈
殿を蒸留水10jにいれホモジナイザーでよく粉砕した
flk120℃で2時間熱水抽出を行なった。遠心分離
により得られる沈殿に再び同様の熱水抽出を施した。
このようにして得られた残置画分にIN水酸化す) 9
ウム溶液9!を加え60℃、4時間、窒素雰囲気下でア
ルカリ抽出を行っ九。遠心分離を行ないアルカリ抽出画
分を除き、アルカリ抽出残置を得た。このアルカリ抽出
残置に1N水酸化ナトリウム溶液81を加え、再び同様
にしてアルカリ抽出操作を行った。
ウム溶液9!を加え60℃、4時間、窒素雰囲気下でア
ルカリ抽出を行っ九。遠心分離を行ないアルカリ抽出画
分を除き、アルカリ抽出残置を得た。このアルカリ抽出
残置に1N水酸化ナトリウム溶液81を加え、再び同様
にしてアルカリ抽出操作を行った。
アルカリ抽出残置に水101を加え洗浄、遠心分離及び
再懸濁の操作を懸濁液の・pHが約9になるまで繰り返
した。懸濁液に希塩酸を加え吊Hを7に調整した。
再懸濁の操作を懸濁液の・pHが約9になるまで繰り返
した。懸濁液に希塩酸を加え吊Hを7に調整した。
次にこの懸濁液に水51を加え、ホモジナイザー処理し
、アルカリ抽出残置をさらに細分化した。
、アルカリ抽出残置をさらに細分化した。
懸濁液にさらに水を加えて凍結乾燥し、146fのアル
カリ不溶部を得た(収率29%)。
カリ不溶部を得た(収率29%)。
このキクラゲアルカリ不溶部は本質的にグルコースより
成る、分岐を有するβ−1,3−グルカンであり本質的
に式 %式%(13 で表わされる第1のくり返えし単位(式中D−GJ u
はD−グルコピラノシル基を表わし、βは結合様式を表
わし数字は結合位置を表わす)、ならびに式 %式% ) (1 で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−Glu、
β、及び数字は前記同様の意味を表わし。
成る、分岐を有するβ−1,3−グルカンであり本質的
に式 %式%(13 で表わされる第1のくり返えし単位(式中D−GJ u
はD−グルコピラノシル基を表わし、βは結合様式を表
わし数字は結合位置を表わす)、ならびに式 %式% ) (1 で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−Glu、
β、及び数字は前記同様の意味を表わし。
→3)β−D−Glu(1′3+は主鎖部分を示し、n
は1又は2である)からなるβ−1,5−グルカンであ
り、齢記第1、第2のくりかえし巣位の和100個あた
り、第2のくり返えし単位は約70個であり、第1のく
り返えし単位は約50個でありた。
は1又は2である)からなるβ−1,5−グルカンであ
り、齢記第1、第2のくりかえし巣位の和100個あた
り、第2のくり返えし単位は約70個であり、第1のく
り返えし単位は約50個でありた。
原料調製例2
キクラゲアルデヒド型多糖の調製
内容量5jの細口かっ色びんに、上記したキクラゲアル
カリ不溶部25fを入れ、蒸留水51を加え、ディスパ
ーザ−でよく分散させた後、メタ過ヨウ素酸ナトリウム
662を加え、溶解させた後、攪拌しながら、5℃でつ
いで11日間反応させた。エチレングリコール50−を
加え1時間攪拌後、遠心分離し沈殿に対し水洗と遠心分
離を3回繰り返して行い、生成したギ酸及び残存のメタ
過ヨウ素酸ナトリウム等を除去した。沈殿を凍結乾燥し
て20.1Fのアルデヒド型β−1,3−グルカンを得
た。
カリ不溶部25fを入れ、蒸留水51を加え、ディスパ
ーザ−でよく分散させた後、メタ過ヨウ素酸ナトリウム
662を加え、溶解させた後、攪拌しながら、5℃でつ
いで11日間反応させた。エチレングリコール50−を
加え1時間攪拌後、遠心分離し沈殿に対し水洗と遠心分
離を3回繰り返して行い、生成したギ酸及び残存のメタ
過ヨウ素酸ナトリウム等を除去した。沈殿を凍結乾燥し
て20.1Fのアルデヒド型β−1,3−グルカンを得
た。
このアルデヒド型β−1,5−グルカンの窒素の含有量
は定量限界以下であり、原料であるアルカリ不溶部の分
岐グルコースが酸化された形態を有する。
は定量限界以下であり、原料であるアルカリ不溶部の分
岐グルコースが酸化された形態を有する。
原料調製例6
乾燥したフクロタケ子実体500fを0.9%の食塩を
含むp H7,0の0.1 M IJン酸塩緩衝液5j
に一夜浸した後、ディスパーザ−で破砕した。さらにこ
れに同じ緩衝液71を加えて4時間攪拌し遠心分離した
。得られた固形分を同じ緩衝液71に入れディスパーザ
−で分散させた後、4時間攪拌、遠心分離し沈殿を得た
。この沈殿を61の水に分散させ、オートクレーブ中で
120℃で30分間加熱した。冷却後遠心分離して沈殿
を得た。
含むp H7,0の0.1 M IJン酸塩緩衝液5j
に一夜浸した後、ディスパーザ−で破砕した。さらにこ
れに同じ緩衝液71を加えて4時間攪拌し遠心分離した
。得られた固形分を同じ緩衝液71に入れディスパーザ
−で分散させた後、4時間攪拌、遠心分離し沈殿を得た
。この沈殿を61の水に分散させ、オートクレーブ中で
120℃で30分間加熱した。冷却後遠心分離して沈殿
を得た。
この熱水抽出処理をさらに4回くり返し、水溶性画分を
ほぼ完全に抽出除去した。
ほぼ完全に抽出除去した。
こうして得られた水不溶性画分を、水素化ホウ素す)
IJウム5tを溶解させた1規定水酸化ナトリウム水溶
液10!に分散させた。窒素気流下に25℃で4時間攪
拌した後遠心分離した。この沈殿に対して1規定水酸化
ナトリウム水溶液による抽出操作をくり返した。雨水酸
化ナトリウム抽出液を合併し、これを酢酸で中和し、p
H6,5に調整した。
IJウム5tを溶解させた1規定水酸化ナトリウム水溶
液10!に分散させた。窒素気流下に25℃で4時間攪
拌した後遠心分離した。この沈殿に対して1規定水酸化
ナトリウム水溶液による抽出操作をくり返した。雨水酸
化ナトリウム抽出液を合併し、これを酢酸で中和し、p
H6,5に調整した。
次いで2倍量のエチルアルコールを加えた後遠心分離を
した。得られる沈殿に21の蒸留水な加え流水中で5日
間透析した。透析内液にα02モル/!の硫酸ナトリウ
ム溶液21を加え約20時間よく攪拌した後遠心分離し
九。
した。得られる沈殿に21の蒸留水な加え流水中で5日
間透析した。透析内液にα02モル/!の硫酸ナトリウ
ム溶液21を加え約20時間よく攪拌した後遠心分離し
九。
得られる沈殿を41の0.01モル/lの硫酸ナトリク
ム溶液中に分散させ、同様の洗浄操作を行なった。遠心
分離により得られる沈殿を21の蒸留水に分散させ、流
水中で8日間透析した後、フクロタケのβ−1,3−グ
ルカン21fを得た。
ム溶液中に分散させ、同様の洗浄操作を行なった。遠心
分離により得られる沈殿を21の蒸留水に分散させ、流
水中で8日間透析した後、フクロタケのβ−1,3−グ
ルカン21fを得た。
このβ−1,3−グルカンは、原料調製例1で記した第
1および第2のくりかえし単位から成り、第1および第
2のくりかえし単位の和100個あたり、第2のくりか
えし単位は約22個であった。
1および第2のくりかえし単位から成り、第1および第
2のくりかえし単位の和100個あたり、第2のくりか
えし単位は約22個であった。
かくして調製した分岐を有するβ−1,3−グルカンi
ofをかっ色びんにとり2jの蒸留水を加えよく分散さ
せ、12tのメタ過ヨウ素酸ナトリウムを加え、遮光下
に5℃で10日間攪拌し友。
ofをかっ色びんにとり2jの蒸留水を加えよく分散さ
せ、12tのメタ過ヨウ素酸ナトリウムを加え、遮光下
に5℃で10日間攪拌し友。
ついでエチレングリコール10−を加え1時間攪拌後遠
心分離し沈殿を得た。この沈殿を21の蒸留水中に充分
分散させ、再び遠心分離して得た沈殿を透析し凍結乾燥
しフクロタケのアルデヒド製多糖7.8 fを得た。こ
のアルデヒド型多糖の窒素の含有量は元素分析で定量限
界以下であり、原料であるフクロタケアルカリ不溶部の
分岐グルコースが酸化された形態を有する。
心分離し沈殿を得た。この沈殿を21の蒸留水中に充分
分散させ、再び遠心分離して得た沈殿を透析し凍結乾燥
しフクロタケのアルデヒド製多糖7.8 fを得た。こ
のアルデヒド型多糖の窒素の含有量は元素分析で定量限
界以下であり、原料であるフクロタケアルカリ不溶部の
分岐グルコースが酸化された形態を有する。
特許出願人 東洋1達芋業株式会社
Claims (1)
- 【特許請求の範囲】 (1)本質的に式 %式%(1 で表わされる第1のくり返えし単位(式中D−Qluは
D−グルコビラノース残基を表わし、βは結合様式を表
わし、数字は結合位置を表わす)、ならびに式 で表わされる第2のくり返えし単位(式中り−Glu、
β、及び数字は前記同様の意味を表わし、−1+3)β
−D−GJu(1*は主鎖部分な表わし、nは口ないし
2の整数を表わし、Xは式であられされる基(Aは一〇
〇又は CH,OH で表わされるD−グルコピラノシル基を表わし、Yは式 %式% で表わされる基(Aは前記同様の意味である)。 又は で表わされるD−グルコビラノース残基を表わす。これ
らの前式中、(乃を付した炭素にXが結合し、(Qを付
した酸素でグルコビラノース残基に結合する意味である
)からなり、前記第2のくり返えし単位中のXの少なく
とも一部は前記 CH,OH で表わされる基であり、さらにAの少なくとも一部分は
前記 で表わされる基を同時に含有することを4!徴とするβ
−1,s−グルカンを主鎖とする多糖誘導体。 (2)前記第1および第2の各〈り返えし単位の個数の
和100個当り、各平均で、第2のくり返えし単位の個
数が約16ないし約85個であることを特徴とするβ−
1,3−グルカンを主鎖とする多糖誘導体。 (3) ジメチルスルホキシドを移動相とし、東洋盲達
製G4oooPWおよびG6oooPWをカラムとした
高速液11本クロマトグラフィーで分子量7万ないし4
50万の範囲に溶出する特許請求の範囲第(11項又は
第(2)項記載の多糖誘導体。 (4)本質的に式 %式%(1 で表わされる第1のくり返えし単位(式中D−Gju[
D−グルコビラノース残基を表わし、βは結合様式を表
わし、数字は結合位置を表わす)ならびに式 %式%(1)) で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−GjuJ
”β、及び数字は前記同様の意味を表わし、÷3)β−
D−GJu(1シは主鎖部分を表わし、nUOないし2
の整数を表わし、で表わされるD−グルコピラノシル基
又はCH,OF( ■ 1 で表わされる基を表わし、 Mは式 で表わされる基または式 で表わされるD−グルコビラノース残基な表わす。これ
らの前式中、(Piを付した炭素にLが結合し、0を付
した酸素でグルコビラノース残基に結合する意味である
)からなり、前記第2のくり返えし単^Lの少なくとも
一部は前記 CH,OH 1 で表わされる基であるカルボニル基を含有するアルデヒ
ド型β−1,3−グルカンをヒスタミン又はその許容し
つる塩類と反応させてシップ塩基を形成させ、これを還
元することを特徴とする、本質的に式 %式%(1 で表わされる第1のくり返えし単位(式中り−Gjuハ
D−グルコビラノース残基を表わし、βは結合様式を表
わし、数字は結合位置を表わす)、ならびに式 %式%(1) で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−Glu、
β、及び数字は前記同様の意味を表わし、+3)β−D
−GJu (1−)は主鎖部分を表わし、nは口ないし
2の整数を表わし、Xは式 であられされる基(Aは−OH又は \、/ ^ 占H で表わされるD−グルコピラノシル基を表わし、Yは式 で表わされる基(人は前記同様の意味である。)、又は で表わされるD−グルコビラノース残基を表わす。これ
らの前式中、(乃を付した炭素にXが結合し、(Qを付
した酸素でグルコビラノース残基に結合する意味である
)からなり、前記第2のくり返えし単位中のXの少なく
とも一部は前記 H1OH で表わされる基であり、さらに人の少なくとも一部分は
前記 で表わされる基を同時に含有することを特徴とするβ−
1,3−グルカンを主鎖とする多糖誘導体の製造法 (5)前記第1および第2のくり返えし単位の個数の和
100個当り、各平均で、第2のくり返えし単位の個数
が約16ないし、約85個であることを特徴とする、β
−1,3−グルカンを主鎖とする多糖誘導体を特徴する
特許請求の範囲第(4)項記載の製造法。 (6) ジメチルスルホキシドを移動相とし、東洋1達
製G 4000 PWおよびG10OPWをカラムとし
た高速液体クロマトグラフィーで分子量7万ないし45
0万の範囲に溶出する多糖誘導体を得る。特許請求の範
囲第(4)項又は第(5)項記載の方法。 (力 出発物質として用いるアルデヒド型−β−(学名
Volvariel Ia volvacea )のア
ルカリ抽出部分を過ヨウ葉酸あるいはその水溶性塩類で
酸化して得たものである特許請求の範囲第4項ないし第
6項のいずれかの項記載の製造方法 (8)本質的に式 %式%(1) で表わされる第1のくり返えし単位(式中D−Gjuハ
D−グルコビラノース残基な表わし、βは結合様式を表
わし、数字は結合位置を表わす)、ならびに式 %式%(1 で表わされる第2のくり返えし単位(式中D−GA u
、β、及び数字は前記同様の意味を表わし、(+3)β
−D−GJu(1++i主鎖部分を表わし、nは口ない
し2の整数を表わし、Xは式 であられされる基(人は−OH又は \l CH,0)( で表わされるD−グルコピラノシル基を表わで表わされ
る基(Aは前記同様の意味である)、で表わされるD−
グルコビラノース8基を表わす。これらの前式中、(D
を付した炭素にXが結合し、qを付した酸素でグルコビ
ラノース残基に結合する意味である)からなり、前記第
2のくり返えし巣位中のXの少なくとも一部は前記 CH,OH 園 で表わされる基であり、さらにAの少なくとも一部分は
前記 \C/ で表わされる基を同時に含有することを特徴とするβ−
1,3−グル力/を主鎖とする多糖誘導体を含んで成る
抗腫瘍剤。 (9)前記第1および第2の各〈り返えし単位の個数の
和100個当り、各平均で、第2のくり返えし単位の個
数が約16ないし約85個であることを特徴とするβ−
1,3−グルヵンを主鎖とする多糖誘導体を含んでなる
抗腫瘍剤 α〔キクラゲ属(学名Auricularia )の菌
類のアルカリ不溶部分あるいはフクロタケ(学名Vol
variella $アルカリ抽出部分から製造される
特許請求の範囲(8)ないしく9)記載の抗腫瘍剤
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59054381A JPS60199001A (ja) | 1984-03-23 | 1984-03-23 | 抗腫瘍性多糖誘導体 |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
JP59054381A JPS60199001A (ja) | 1984-03-23 | 1984-03-23 | 抗腫瘍性多糖誘導体 |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
JPS60199001A true JPS60199001A (ja) | 1985-10-08 |
Family
ID=12969103
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
JP59054381A Pending JPS60199001A (ja) | 1984-03-23 | 1984-03-23 | 抗腫瘍性多糖誘導体 |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
JP (1) | JPS60199001A (ja) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103834641A (zh) * | 2013-12-03 | 2014-06-04 | 上海市农业科学院 | 一种草菇菌株0229分子特异性检测标记及其检测方法 |
CN110483661A (zh) * | 2019-08-21 | 2019-11-22 | 江苏江南生物科技有限公司 | 一种草菇多糖及其制备方法和应用 |
-
1984
- 1984-03-23 JP JP59054381A patent/JPS60199001A/ja active Pending
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN103834641A (zh) * | 2013-12-03 | 2014-06-04 | 上海市农业科学院 | 一种草菇菌株0229分子特异性检测标记及其检测方法 |
CN110483661A (zh) * | 2019-08-21 | 2019-11-22 | 江苏江南生物科技有限公司 | 一种草菇多糖及其制备方法和应用 |
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