JP7505984B2 - サイトカインをコードするrnaを用いた治療 - Google Patents
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Description
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含む方法に関する。
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することをさらに含む。
a.延長PK IL2をコードするRNAおよび任意で延長PK IL7をコードするRNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA;ならびに
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む。
a.延長PK IL7をコードするRNAおよび任意で延長PK IL2をコードするRNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA;ならびに
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む。
a-1.延長PK IL2をコードするRNA;
a-2.延長PK IL7をコードするRNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA;および
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む。
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において腫瘍関連抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含む方法に関する。
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を含む医薬製剤に関する。
c.免疫チェックポイント阻害剤
をさらに含む。
a.延長PK IL2をコードするRNAおよび/または延長PK IL7をコードするRNA;
b.対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA;ならびに
c.免疫チェックポイント阻害剤
を含む。
a-1.延長PK IL2をコードするRNA;
a-2.延長PK IL7をコードするRNA;
b.対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA;および
c.免疫チェックポイント阻害剤
を含む。
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含む。
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することをさらに含む。
a.延長PK IL2をコードするRNAおよび任意で延長PK IL7をコードするRNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA;ならびに
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む。
a.延長PK IL7をコードするRNAおよび任意で延長PK IL2をコードするRNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA;ならびに
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む。
a-1.延長PK IL2をコードするRNA;
a-2.延長PK IL7をコードするRNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA;および
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む。
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において腫瘍関連抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含む、対象における癌を治療または予防するための方法で使用するためのRNAに関する。
a.延長PK IL2をコードするRNAおよび/もしくは延長PK IL7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドもしくはタンパク質をコードするRNA
であるか、またはそれを含む。
a-1.延長PK IL2をコードするRNA;
a-2.延長PK IL7をコードするRNA;および
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドもしくはタンパク質をコードするRNA
であるか、またはそれを含む。
a.サイトカインをコードするRNAおよび
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含み、サイトカインをコードするRNAおよびエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNAがリンパ系、特に二次リンパ器官、より具体的には脾臓に送達される、方法を提供する。
以下、参考形態の例を付記する。
1. 対象において免疫応答を誘導するための方法であって、前記対象に、
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含む方法。
2. 前記延長PK IL2が融合タンパク質を含む、1.に記載の方法。
3. 前記融合タンパク質が、IL2部分ならびに血清アルブミン、免疫グロブリン断片、トランスフェリン、およびFn3、またはそれらの変異体からなる群より選択される部分を含む、2.に記載の方法。
4. 前記延長PK IL7が融合タンパク質を含む、1.~3.のいずれか一つに記載の方法。
5. 前記融合タンパク質が、IL7部分ならびに血清アルブミン、免疫グロブリン断片、トランスフェリン、およびFn3、またはそれらの変異体からなる群より選択される部分を含む、4.に記載の方法。
6. 前記血清アルブミンがマウス血清アルブミンまたはヒト血清アルブミンを含む、3.または5.に記載の方法。
7. 前記免疫グロブリン断片が免疫グロブリンFcドメインを含む、3.または5.に記載の方法。
8. 前記対象に、
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することをさらに含む、1.~7.のいずれか一つに記載の方法。
9. 前記免疫チェックポイント阻害剤が、(i)PD-1とPD-L1、または(ii)CTLA-4とCD80もしくはCD86の間の相互作用を標的とする、8.に記載の方法。
10. 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗体または抗体断片である、8.または9.に記載の方法。
11. 前記抗体または抗体断片がPD-1、PD-L1、またはCTLA-4を標的とする、10.に記載の方法。
12. 延長PK IL2をコードする前記RNAおよび/または延長PK IL7をコードする前記RNA、前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA、ならびに任意で前記免疫チェックポイント阻害剤を同時にまたは連続的に投与する、1.~11.のいずれか一つに記載の方法。
13. 前記対象に、
a.延長PK IL2をコードする前記RNAおよび任意で延長PK IL7をコードする前記RNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA;ならびに
c.前記免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む、8.~12.のいずれか一つに記載の方法。
14. 前記対象に、
a.延長PK IL7をコードする前記RNAおよび任意で延長PK IL2をコードする前記RNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA;ならびに
c.前記免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む、8.~12.のいずれか一つに記載の方法。
15. 前記対象に、
a-1.延長PK IL2をコードする前記RNA;
a-2.延長PK IL7をコードする前記RNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA;ならびに
c.前記免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む、8.~14.のいずれか一つに記載の方法。
16. 前記治療が、前記抗原に特異的なCD127陽性T細胞の数を増加させる、1.~15.のいずれか一つに記載の方法。
17. 前記治療が短命なエフェクタ細胞の数を減少させる、1.~16.のいずれか一つに記載の方法。
18. 前記治療が、制御性T細胞に対する抗原特異的T細胞の比率を増加させる、1.~17.のいずれか一つに記載の方法。
19. 対象における癌を治療または予防するための方法であって、前記抗原が腫瘍関連抗原である、1.~18.のいずれか一つに記載の方法。
20. 腫瘍抗原に対する治療用抗体または抗体断片を投与しない、19.に記載の方法。
21. 対象における癌を治療または予防するための方法であって、前記対象に、
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において腫瘍関連抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含む方法。
22. 前記癌が、黒色腫、白血病、リンパ腫、肺癌、乳癌、前立腺癌、卵巣癌、結腸癌、中皮腫、腎細胞癌、および脳の癌からなる群より選択される、19.~21.のいずれか一つに記載の方法。
23. a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を含む医薬製剤。
24. 前記延長PK IL2が融合タンパク質を含む、23.に記載の医薬製剤。
25. 前記融合タンパク質が、IL2部分ならびに血清アルブミン、免疫グロブリン断片、トランスフェリン、およびFn3、またはそれらの変異体からなる群より選択される部分を含む、24.に記載の医薬製剤。
26. 前記延長PK IL7が融合タンパク質を含む、23.~25.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
27. 前記融合タンパク質が、IL7部分ならびに血清アルブミン、免疫グロブリン断片、トランスフェリン、およびFn3、またはそれらの変異体からなる群より選択される部分を含む、26.に記載の医薬製剤。
28. 前記血清アルブミンがマウス血清アルブミンまたはヒト血清アルブミンを含む、25.または27.に記載の医薬製剤。
29. 前記免疫グロブリン断片が免疫グロブリンFcドメインを含む、25.または27.に記載の医薬製剤。
30. c.免疫チェックポイント阻害剤
をさらに含む、23.~29.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
31. 前記免疫チェックポイント阻害剤が、(i)PD-1とPD-L1、または(ii)CTLA-4とCD80もしくはCD86の間の相互作用を標的とする、30.に記載の医薬製剤。
32. 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗体または抗体断片である、30.または31.に記載の医薬製剤。
33. 前記抗体または抗体断片がPD-1、PD-L1、またはCTLA-4を標的とする、32.に記載の医薬製剤。
34. a.延長PK IL2をコードする前記RNAおよび/または延長PK IL7をコードする前記RNA;
b.対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA;ならびに
c.前記免疫チェックポイント阻害剤
を含む、30.~33.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
35. a-1.延長PK IL2をコードする前記RNA;
a-2.延長PK IL7をコードする前記RNA;
b.対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA;ならびに
c.前記免疫チェックポイント阻害剤
を含む、30.~34.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
36. キットである、23.~35.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
37. 各RNAを別々の容器に含む、36.に記載の医薬製剤。
38. 前記免疫チェックポイント阻害剤が、前記RNAを含まない容器内にある、36.または37.に記載の医薬製剤。
39. 癌を治療または予防するための前記医薬製剤の使用説明書をさらに含み、前記抗原が腫瘍関連抗原である、36.~38.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
40. 前記RNAを含む医薬組成物である、23.~35.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
41. 前記医薬組成物が、1つ以上の薬学的に許容される担体、希釈剤および/または賦形剤をさらに含む、40.に記載の医薬製剤。
42. 前記RNAが、液体形態、固体形態、またはそれらの組合せから選択される形態で存在する、23.~41.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
43. 前記固体形態が凍結形態または脱水形態である、42.に記載の医薬製剤。
44. 前記脱水形態が凍結乾燥形態または噴霧乾燥形態である、43.に記載の医薬製剤。
45. 医薬用途のための、23.~44.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
46. 前記医薬用途が、疾患または障害の治療的または予防的処置を含む、45.に記載の医薬製剤。
47. 前記抗原が腫瘍関連抗原である、対象における癌を治療または予防するための方法で使用するための、23.~46.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
48. 前記癌が、黒色腫、白血病、リンパ腫、肺癌、乳癌、前立腺癌、卵巣癌、結腸癌、中皮腫、腎細胞癌、および脳の癌からなる群より選択される、39.および42~47.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
49. 腫瘍抗原に対する治療用抗体または抗体断片を含まない、23.~48.のいずれか一つに記載の医薬製剤。
50. 対象において免疫応答を誘導するための方法で使用するためのRNAであって、前記方法が、前記対象に、
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含む、RNA。
51. 前記延長PK IL2が融合タンパク質を含む、50.に記載のRNA。
52. 前記融合タンパク質が、IL2部分ならびに血清アルブミン、免疫グロブリン断片、トランスフェリン、およびFn3、またはそれらの変異体からなる群より選択される部分を含む、51.に記載のRNA。
53. 前記延長PK IL7が融合タンパク質を含む、50.~52.のいずれか一つに記載のRNA。
54. 前記融合タンパク質が、IL7部分ならびに血清アルブミン、免疫グロブリン断片、トランスフェリン、およびFn3、またはそれらの変異体からなる群より選択される部分を含む、53.に記載のRNA。
55. 前記血清アルブミンがマウス血清アルブミンまたはヒト血清アルブミンを含む、52.または54.に記載のRNA。
56. 前記免疫グロブリン断片が免疫グロブリンFcドメインを含む、52.または54.に記載のRNA。
57. 前記方法が、前記対象に、
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することをさらに含む、50.~56.のいずれか一つに記載のRNA。
58. 前記免疫チェックポイント阻害剤が、(i)PD-1とPD-L1、または(ii)CTLA-4とCD80もしくはCD86の間の相互作用を標的とする、57.に記載のRNA。
59. 前記免疫チェックポイント阻害剤が抗体または抗体断片である、57.または58.に記載のRNA。
60. 前記抗体または抗体断片がPD-1、PD-L1、またはCTLA-4を標的とする、59.に記載のRNA。
61. 延長PK IL2をコードする前記RNAおよび/または延長PK IL7をコードする前記RNA、前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA、ならびに任意で前記免疫チェックポイント阻害剤を同時にまたは連続的に投与する、50.~60.のいずれか一つに記載のRNA。
62. 前記方法が、前記対象に、
a.延長PK IL2をコードする前記RNAおよび任意で延長PK IL7をコードする前記RNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA;ならびに
c.前記免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む、57.~61.のいずれか一つに記載のRNA。
63. 前記方法が、前記対象に、
a.延長PK IL7をコードする前記RNAおよび任意で延長PK IL2をコードする前記RNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA;ならびに
c.前記免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む、57.~61.のいずれか一つに記載のRNA。
64. 前記方法が、前記対象に、
a-1.延長PK IL2をコードする前記RNA;
a-2.延長PK IL7をコードする前記RNA;
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA;ならびに
c.前記免疫チェックポイント阻害剤
を投与することを含む、57.~63.のいずれか一つに記載のRNA。
65. 前記治療が、前記抗原に特異的なCD127陽性T細胞の数を増加させる、50.~64.のいずれか一つに記載のRNA。
66. 前記治療が短命なエフェクタ細胞の数を減少させる、50.~65.のいずれか一つに記載のRNA。
67. 前記治療が、制御性T細胞に対する抗原特異的T細胞の比率を増加させる、50.~66.のいずれか一つに記載のRNA。
68. 前記方法が、対象における癌を治療または予防するための方法であり、前記抗原が腫瘍関連抗原である、50.~67.のいずれか一つに記載のRNA。
69. 腫瘍抗原に対する治療用抗体または抗体断片を投与しない、68.に記載のRNA。
70. 対象に、
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび/または延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において腫瘍関連抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含む、前記対象における癌を治療または予防するための方法で使用するためのRNA。
71. 前記癌が、黒色腫、白血病、リンパ腫、肺癌、乳癌、前立腺癌、卵巣癌、結腸癌、中皮腫、腎細胞癌、および脳の癌からなる群より選択される、68.~70.のいずれか一つに記載のRNA。
72. 前記方法で投与される前記RNAの1つ以上であるか、またはそれを含む、50.~71.のいずれか一つに記載のRNA。
73. 延長PK IL2をコードする前記RNA、延長PK IL7をコードする前記RNA、および前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドもしくはタンパク質をコードする前記RNAからなる群より選択される1つ以上であるか、またはそれを含む、72.に記載のRNA。
74. 延長PK IL2をコードする前記RNAであるか、またはそれを含む、72.または73.に記載のRNA。
75. 延長PK IL7をコードする前記RNAであるか、またはそれを含む、72.または73.に記載のRNA。
76. 前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドもしくはタンパク質をコードする前記RNAであるか、またはそれを含む、72.または73.に記載のRNA。
77. a.延長PK IL2をコードする前記RNAおよび/もしくは延長PK IL7をコードする前記RNA;ならびに
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドもしくはタンパク質をコードする前記RNA
であるか、またはそれを含む、72.または73.に記載のRNA。
78. a-1.延長PK IL2をコードする前記RNA;
a-2.延長PK IL7をコードする前記RNA;および
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドもしくはタンパク質をコードする前記RNA
であるか、またはそれを含む、72.または73.に記載のRNA。
構築物の設計およびmRNAの作製
mRNAをコードするサイトカインのインビトロ転写は、pST4-T7-GG-TEV-MCS-FI-A30LA70プラスミド骨格および派生DNA構築物に基づいた。これらのプラスミド構築物は、タバコエッチウイルス(TEV)の5'リーダー配列、3'FIエレメント(Fはスプリットのアミノ末端エンハンサーの136ヌクレオチド長の3'-UTR断片であるmRNAであり、Iはミトコンドリアにコードされた12S RNAの142ヌクレオチド長の断片であり、両方ともヒト(Homo sapiens)において同定されている;国際公開第2017/060314号)および100ヌクレオチドのポリ(A)尾部と、70ヌクレオチドの後にリンカーを含む。サイトカインおよびAlbコード配列はハツカネズミ(Mus musculus)に由来し、得られたアミノ酸配列に変化は導入されなかった(mIL2:NP_032392.1;mIFNβ:NP_034640.1;mIL7:NP_032397.1;mIL15Rα:NP_032384.1;mIL15:NP_032383.1)。コードされるタンパク質は、それぞれのタンパク質の天然シグナルペプチドであるN末端シグナルペプチド(SP)を備える。融合タンパク質の場合、N末端部分のSPのみが維持され、さらなる部分については成熟部分(SPのないタンパク質)のみがコードされた。終止コドンは、ほとんどのC末端部分についてのみ維持された。サイトカインおよびAlb融合構築物の異なるタンパク質部分は、グリシンおよびセリン残基をコードする30ヌクレオチド長のリンカー配列によって分離された。マウス(m)IL15sushiの場合は、mIL15Rαの最初の103アミノ酸(SPを含む)のコード配列とmIL15の成熟ドメインの間の融合タンパク質を使用した。この融合タンパク質では、mIL15Rα部分がN末端を規定し、グリシンおよびセリン残基をコードする60ヌクレオチドのリンカーによって分離されている。分泌型ナノルシフェラーゼ(sec-nLUC)の配列を購入し(Promega)、上記のプラスミド骨格にサブクローニングした。sec-nLUCとmAlbの融合のために、sec-nLUCの終止コドンを欠失させ、mAlbの成熟ドメインを、グリシンおよびセリン残基をコードする30ヌクレオチド長のリンカー配列によって分離されたsec-nLUCのC末端に融合した。mRNAは、通常ヌクレオシドウリジンを1-メチルプソイドウリジンに置き換えて、Kreiter et al.(Kreiter,S.et al.Cancer Immunol.Immunother.56,1577-87(2007))に記載されているようにインビトロ転写によって生成した。得られたmRNAはキャップ1構造を備えており、二本鎖(dsRNA)分子はセルロース精製によって枯渇させた。精製したmRNAをH2Oに溶出させ、さらに使用するまで-80℃で保存した。記載されているすべてのmRNA構築物のインビトロ転写は、BioNTech RNA Pharmaceuticals GmbHによって行われた。
生成したmRNAからのサイトカイン発現を、HEK-293T-17細胞へのmRNAのリポフェクション、およびその後の上清の酵素免疫測定法(ELISA)分析によって制御した(図1A、図2A、図3A、図4A)。Lipofectamine MessengerMax(Thermo Fisher Scientific)を使用して、mRNAを無菌のRNアーゼ不含条件下で製剤化した。ここで、125または250ng mRNA/μlのLipofectamine MessengerMaxを複合体化し、約80%の集密度のHEK-293T-17細胞のリポフェクションのために1cm2の培養皿ごとに使用した。上清を無菌条件下で24時間の発現後に収集し、さらに使用するまで-80℃で保存した。それぞれの細胞培養上清中のサイトカインの存在を、それぞれのサイトカインに特異的な市販のELISAキット(Biolegend,R&D systems)を使用して決定した。ELISA分析を製造者のプロトコルに従って実施した。タンパク質が天然の折り畳み状態のままである限り、ELISA抗体のエピトープはしばしば融合タンパク質中でアクセスできないように見えるため、変性条件下でタンパク質濃度を半定量的に決定するために同じ上清をウェスタンブロット分析に使用した(図1B、図2B、図3B、図4B)。したがって、適切なVivaSpinカラム(Sartorious AG)を使用して総タンパク質を濃縮し、Image Quant TLソフトウェア(GE Healthcare)を使用したSDS-PAGEおよびクマシー染色での試料の分離後に、著明なバンドの定量化によって濃度を評価した。ウェスタンブロット法のために、均一なタンパク質の量をSDS-PAGEによって分離し、セミドライまたはウェットブロットプロトコルでニトロセルロース膜に転写した。ブロットした後、ニトロセルロース膜をブロックし(1×PBS-T中の5%脱脂粉乳)、続いて適切な希釈の一次抗体(抗mIL2:BioLegend(BLD-503701)、抗mIL15:R&D Systems(MAB447-SP)、抗mIFNβ:Abcam(ab151605);抗mIL7:Thermo Scientific(PA5-46944))および二次抗体と共にインキュベートした。二次抗体のインキュベーションの前と後に膜を洗浄した(1×PBS-T)。Lumi-Light Western Blotting Substrate(Roche)、SuperSignal(登録商標)West Dura Extended Duration Substrate(Thermo Fisher Scientific)、またはTrident femto Western HRP Substrate(Gene Tex)の添加後に発生した化学発光シグナルを、LAS 4000システム(GE Healthcare)を使用して記録した。発現されたサイトカインの生物学的活性を適切な活性アッセイによって試験した。mIL2およびmIL15sushiの活性を、マウスCTLL-2細胞(マウスC57b1/6 T細胞、Sigma-Aldrich)のサイトカイン依存性増殖を分析することによってアッセイした(図1C、図2C)。CTLL-2増殖を、それぞれのサイトカインmRNAの発現後またはAlbのみをコードするmRNAの発現後に採取したHEK-293T-17上清の存在下でのCTLL-2培養時に、2つのサイトカインのいずれかに依存して観測した。CellTiter-Glo Luminescent Cell Viability Assay(Promega)を使用して、72時間のそれぞれの処理後に細胞の量を測定した。組換えヒト(h)IL2およびIL15sushiタンパク質を対照として使用した。mIL7をコードするmRNAの発現後に採取したHEK-293T-17上清の存在下での培養時に、カルボキシフルオレセインスクシンイミジルエステル(CFSE)で標識した抗CD3活性化PBMC集団においてCD4+T細胞増殖を誘導する能力を分析することによって、mIL7をコードするmRNAの生物学的活性を試験した(図3C)。T細胞の増殖を、抗CD4-PEおよび抗CD8-PE-Cy7染色後にフローサイトメトリを使用したCFSEモニタリングによって分析した。組換えmIL7タンパク質を対照として使用した。マウスのIFNβ部分を有するmRNAの生物学的活性を、マウス大腸癌細胞(CT26)でMHCクラスI発現を上方制御する、それぞれ発現されたタンパク質産物の能力を調へることによって確認した(図4C)。mIFNβをコードするmRNAの発現後に採取したHEK293T-17上清の存在下でCT26細胞を培養した。組換えmIFNβを対照として使用した。処理の前後のCT26細胞上のMHCクラスIの表面レベルを、FITC結合H2-Kb抗体によるMHCクラスI染色およびその後のフローサイトメトリ分析によって評価した。製造者のプロトコルに従ってNano-Glo Luciferase Assay System(Promega)を使用して、sec-nLUCをコードするmRNAの24時間の発現後に、HEK-293T-17の上清中でsec-nLUCの発現および得られた遺伝子産物のルシフェラーゼ活性を測定した(図4D)。mRNAの非存在下でリポフェクトしたHEK-293T-17(モック)の上清を対照として使用した。
アルブミン融合サイトカインと比較した未改変サイトカインの全身バイオアベイラビリティの強度と持続時間を、血液循環中のサイトカインレベルを測定することによって検討した。雌性C57BL/6(9週齢)(群および時点あたりn=3匹のマウス)をEnvigoから購入し、TransIT(Mirrus)を用いて製剤化した3μgの未改変またはmAlb融合タンパク質をコードするmRNAを静脈内(i.v.)注射した。マウスに、mIL2もしくはmAlbに融合したmIL2(mAlb-mIL2)、マウスインターフェロンβ(mIFNβ)もしくはmAlbに融合したmIFNβ(mIFNβ-mAlb)、mIFNβに結合したmIL2(mIFNβ-mIL2)もしくはmIFNβに結合し、mAlbに融合したmIL2(mIFNβ-mAlb-mIL2)、またはmAlbのみをコードする対照mRNAを投与した。注射後6、24および48時間目ならびに5日目に血液を採取し、血清を調製した。450nmでの光学密度を、製造者の指示に従って標準的なELISAキット(Biolegend,PBL Assay Science)によって測定し、Infinite M200プレートリーダ(Tecan)を使用して基質活性を測定した。図5に示すように、mAlbのmIL2またはmIFNβへの融合は、全身アベイラビリティを高め、延長する。mAlbとIFNβおよびmIL2の二重融合物は、mIL2の存在を増強しないが、循環中のより多量のmIFNβを促進する。
免疫細胞サブセットの組成に対する、延長されたサイトカイン、特にmIL2のアベイラビリティの影響を、主要な免疫関連器官として脾臓において決定した。実施例2に記載された実験設定に従って、mRNA注射の5日後に脾臓を採取し、重さを量り、細胞ストレーナおよび赤血球の低張溶解によって器官をすりつぶして単細胞懸濁液を調製した。フローサイトメトリによる単一細胞分析のために、固定可能な生存性色素(Ebioscience)を使用して5×106の脾細胞を2~8℃で15分間、生存性について染色し、続いてCD8、CD19、CD25およびNK1.1(すべてBD Biosciences)ならびにCD4(Biolegend)に特異的な抗体を使用してT、BおよびNK細胞を2~8℃で30分間染色した。絶対細胞数を決定するために、細胞をTrucount(登録商標)チューブ(BD Biosciences)に移した。フローサイトメトリデータをFACSCanto IIフローサイトメータ(BD Biosciences)で取得し、FlowJo 7.6.5ソフトウェア(Tree Star)で分析した。免疫細胞サブセットは、ダブレットおよび死細胞を除外し、その後のNK1.1+CD19-(NK細胞)、NK1.1-CD19+(B細胞)、NK1.1-CD19-CD8+(CD8+T細胞)、NK1.1-CD19-CD4+(CD4+T細胞)、およびNK1.1-CD19-CD4+CD25+(CD4+CD25+T細胞)のゲーティングによって決定した。ゲート内の細胞を、それらの細胞数を同じ試料で測定されたTrucount(登録商標)ビーズの数に関連付けることによって定量化した。GraphPad Prism 7を使用して結果を描画し、統計(一元配置分散分析とそれに続くDunnettの多重比較検定)を分析した。図6Aでは、脾臓あたりの絶対細胞数を視覚化しており、図6Bは脾臓の重量を示す(平均±平均の標準誤差(s.e.m.))。mAlbのmIL2への融合物は、mAlbに比べてCD4+T細胞、CD4+CD25+T細胞、CD8+T細胞、B細胞およびNK細胞を有意に拡大することができたが、一方、未改変のmIL2は細胞数を増加させたが、その差は有意ではなかった。予想されたように、マウスIFN-β(mIFNβ)もmIFNβ-mAlbも、これらの細胞サブセットの増殖を誘導しなかった。当然のことながら、mIFNβのmIL2への融合物は、細胞サブセットの中間的な拡大をもたらし、mIFNβはmIL2およびmAlb-mIL2の両方の増殖能力を制限した。これに対応して、脾臓は、mAlb-mIL2で処置した群では高度に拡大し、mIFNβ-mAlb-mIL2で処置した群ではより小さな程度に拡大したが、有意ではなかった。
抗原に加えて適切な刺激環境を提供することは、堅固で長続きするT細胞免疫を開始するための1つの重要な前提条件である。我々は以前に、I型IFN(IFNαおよびIFNβ)が、IFNα/β受容体(IFNAR)を介したオートクリンまたはパラクリンシグナル伝達によって脾臓免疫細胞サブセットを活性化することができ(Kranz,L.M.et al.Nature 534,396-401(2016))、抗原提示樹状細胞(DC)およびエフェクタ細胞に一連の活性化マーカを選択的に上方制御させることを示した。mIFNβの存在の増加によって媒介されるマーカ発現の変化を測定するために、実施例2に記載されている実験からの未改変またはアルブミン融合サイトカインの注射の24時間後に得られた脾細胞を、固定可能な生存性色素(Ebioscience)を使用して2~8℃で15分間、生存性について染色し、続いてCD11c(Miltenyi)、CD11b、CD3、CD40、CD69、NK1.1(すべてBD Biosciences)およびCD86(Biolegend)に特異的な抗体を用いてDC、NKおよびT細胞を染色した。フローサイトメトリデータをFACSCanto IIフローサイトメータ(BD Biosciences)で取得し、FlowJo 7.6.5ソフトウェア(Tree Star)で分析した。免疫細胞サブセットを、ダブレットおよび死細胞を除外し、その後のNK1.1+CD3-(NK細胞)、NK1.1-CD3+(T細胞)、およびNK1.1-CD3-CD11c+CD11bint(DC)のゲーティングによって決定した。GraphPad Prism 6を使用して結果を描画し、統計(一元配置分散分析とそれに続くDunnettの多重比較検定)を分析した。図7に示すように、mIFNβを含むすべてのmRNAにコードされたタンパク質は、DC上の活性化マーカCD40、CD69およびCD86の類似で有意な上方制御を誘導することができた。mIFNβおよびmIFNβ-mAlbは、mIFNβ-mIL2またはmIFNβ-mAlb-mIL2と比較して、NKおよびT細胞上でのCD69発現の媒介において優れていた。
サイトカインのmAlbへの融合がどのように生体内分布を変化させ、特に腫瘍組織および腫瘍排出リンパ節でのアベイラビリティを変化させたかを視覚化するために、NanoLuc(登録商標)ルシフェラーゼ(sec-nLUC)の分泌変異体をmAlbに融合するかまたは融合せず、ヌクレオシド修飾mRNAにコードした。酸素の存在下で、その基質であるフリマジンは、フリマミド、二酸化炭素および光に変換され、後者は、従来のルミネセンスリーダによって測定することができる。雌性BALB/c(6~9週間齢)マウス(群および時点あたりn=3匹のマウス)をJanvier Labsから購入し、100μl PBS中の5×105 CT26腫瘍細胞(ATCC CRL-2638ロット番号58494154)を右側腹部に皮下(s.c.)注射した。24日目に、マウスを、すべてTransIT(Mirrus)で製剤化した3μgのsec-nLUC、mAlbに融合したsec-nLUC(sec-nLUC-mAlb)でi.v.処置するかまたは未処置のままにした(対照)。注射後2、6、24、48および72時間目に血液を採取し、血清を調製した。肝臓、腫瘍、腫瘍排出鼠径リンパ節および非腫瘍排出鼠径リンパ節を単離し、重さを量り、1.4mmおよび2.8mmのセラミックボール(Bertin Instruments)が入った2mlプラスチックチューブに移し、注射の6、24、48および72時間後に液体窒素に浸したイソペンタン中で凍結保存した。対照群を2時間目に犠死させ、この群から得たデータを時点0に使用した。組織溶解物を、-80℃で保存した試料から調製した。簡単に述べると、組織試料を20~25℃で解凍した。1×Halt(商標)Protease and Phosphatase Inhibitor Cocktail(Thermo Scientific)を添加したDPBS-Buffer(Gibco)を添加し、Precellys(登録商標)24Dualホモジナイザ(Bertin Instruments)を使用して組織をホモジナイズした。溶解物を遠心分離によって清澄化し、上清を清浄な冷却したエッペンドルフチューブに移し、氷上で保存した。溶解物中のタンパク質濃度を、Pierce(商標)BCA Protein Assay Kit(Thermo Scientific)を製造者の指示に従って使用して測定した。その後、溶解物を液体窒素中で瞬間凍結し、-80℃で保存した。Infinite M200プレートリーダ(Tecan)を使用して、製造者の指示に従って30μgのタンパク質または50μlの血清を用いてNano-Glo(登録商標)Luciferase Assay(Promega)を実施した。生物発光強度を図8に示す。未改変sec-nLUCは、選択したどの時点でもほとんどまたは全く検出されなかった。しかし、mAlbの融合は、全身(血清)および腫瘍内のアベイラビリティを高め、延長させて、注射後72時間でも高レベルのレポータタンパク質がまだ存在した。同様に、mAlbとの融合は、腫瘍排出リンパ節におけるタンパク質の蓄積をもたらした。肝臓での発現は、増加されるのではなく主に延長された。標的器官におけるmAlbの存在は最初は無関係であると考えられる;注入されたmRNAの翻訳の程度は、製剤およびそのトランスフェクション率のみに依存するが、mAlbは、翻訳されたタンパク質を安定化し、末梢での高いアベイラビリティを保証する。
選択したサイトカインアルブミン融合構築物の治療効果をマウス大腸癌モデルCT26で試験した。6~9週齢のBALB/cマウスをJanvier Labsから購入し、200μl PBS s.c中の5×105 CT26腫瘍細胞(ATCC CRL-2638ロット番号58494154)を右側腹部に皮下注射した。10日後、マウスをgp70 mRNAリポプレックス(RNA-LPX)(Kreiter,S.et al.Nature 520,692-696(2015);Kranz,L.M.et al.Nature 534,396-401(2016))ワクチン接種(20μg i.v.)および抗PD-L1ブロッキング抗体(クローン6E11、mIgG2A、L234A、L235A、P329G;Genentech;最初の処置時は腹腔内(i.p.)に200μg、2回目から最後の処置までは100μg i.p.)で処置した。各ワクチン接種/抗体処置の2日後、TransIT(Mirrus)に製剤化した1μgのアルブミン融合タンパク質をコードするmRNAを静脈内注射した。マウスに、マウスインターロイキン-2に融合したアルブミン(mAlb-IL2)、マウスインターフェロンβに融合したアルブミン(mIFNβ-mAlb)、インターフェロンβと結合したインターロイキン-2に融合したアルブミン(mIFNβ-mAlb-mIL2)、マウスインターロイキン-7に融合したアルブミン(mIL7-mAlb)、インターロイキン-15受容体αに融合したマウスインターロイキン-15に融合したアルブミン(mIL15sushi-mAlb)、またはマウスアルブミンのみをコードする対照mRNA(mAlb)を投与した。図9の上のパネルに示すように、処置スケジュールを毎週繰り返した。腫瘍体積をキャリパーで2また3日ごとに測定し、式(A×B2)/2(Aは腫瘍の最大径、Bは腫瘍の最小径)を使用して計算し、GraphPad Prism 6を使用して描画した。図9に示すように、構築物mAlb-IL2、mIFNβ-mAlb-mIL2およびmIL7-mAlbは、ワクチン接種およびPD-L1遮断の治療効果を高め、それぞれ63%、50%および75%のマウスで腫瘍拒絶をもたらすことができた。
次に、融合タンパク質をコードするmRNAの注射が、CT26腫瘍に特異的なワクチン誘導性T細胞応答を促進するかどうかを分析した。図9に示したCT26-WT腫瘍担持マウスを、最初の処置の7日後(腫瘍接種後17日目)の血液中のgp70 AH1四量体+CD8+T細胞についてフローサイトメトリによって分析した。このために、マウスの末梢血を眼窩洞から採取した。50μlの血液を、H-2Ld/AH1423-431(SPSYVYHQF)四量体(MBL)とCD45およびCD8(BD)に特異的な抗体を用いて2~8℃で30分間染色した。溶解液(BD FACS(商標))を使用して血液を溶解した。絶対細胞数を決定するために、細胞をTrucount(登録商標)チューブ(BD)に移した。FACSCanto IIまたはFACSCelestaフローサイトメータ(両方ともBD Biosciences)でフローサイトメトリデータを取得し、FlowJo Xソフトウェア(Tree Star)で分析した。Gp70 AH1特異的T細胞を、CD45+CD8+四量体+リンパ球をゲーティングすることによって定量化した。ゲート内の細胞を、それらの細胞数を同じ試料で測定されたTrucount(登録商標)ビーズの数に関連付けることによって定量化した。GraphPad Prism 6を使用して結果を描画し、統計(一元配置分散分析とそれに続くDunnettの多重比較検定)を分析した。図10には、血液1μlあたりの絶対数(左)およびCD8+T細胞中の四量体+細胞のフラクションの割合(右)を示している(平均±平均の標準誤差(s.e.m.))。mAlb-IL2投与は、非常に迅速に最初のワクチン接種の7日後に、gp70特異的T細胞数および頻度を有意に数倍高めることができた。図11に示すように、反応速度はより緩やかであるが、mIFNβ-mAlb-mIL2、mIL7-mAlbおよびmIL15sushi-mAlbも、経時的にgp70特異的T細胞数を増加させることができた。図11に示す測定は、図10について説明したのと同様に実施した。注目すべきことに、図12に示すように、mAlb-IL2のみが、非特異的四量体陰性CD8+T細胞よりも特にgp70特異的T細胞数を増加させた(平均±s.e.m.)。mIFNβ-mAlb-mIL2、mIL7-mAlbおよびmIL15sushi-mAlbは、四量体陰性および四量体陽性細胞を同程度に増加させた。一元配置分散分析とそれに続くSidakの多重比較検定を使用して、図12の統計的有意性を決定した。各測定日の腫瘍サイズに対して血液1μlあたりの四量体陽性細胞の数をプロットすると、統計的に有意な(spearmanの順位相関係数)負の相関を示す(図13)。これは、gp70腫瘍抗原特異的T細胞の数が多いほど、より少ない腫瘍体積、すなわち腫瘍制御の改善をもたらすことを示す。
IL2は、エフェクタT細胞の機能と増殖を支持することに加えて、制御性T細胞(Treg)の公知の誘導因子である。Tregは、抗腫瘍CD8+およびCD4+T細胞の機能を抑制することが公知のCD4+T細胞のサブセットである(Nishikawa,H.&Sakaguchi,S.,Curr.Opin.Immunol.27,1-7(2014))。続いて、サイトカインアルブミン融合物をコードするmRNAがCD4+T細胞の数を変化させるかどうか、およびそれらの中で望ましくないTregの割合を変化させるかどうかを試験した。図9のマウスの末梢血を、腫瘍接種の31日後に眼窩洞から採取した。50μlの血液を、CD45、CD8(BD)、CD25およびCD4(eBioscience)に特異的な抗体を用いて2~8℃で30分間染色した。次に、溶解液(BD FACS(商標))を使用して血液を溶解した。FoxP3の細胞内染色のために、eBioscienceの固定化/透過化緩衝液(Foxp3/転写因子染色緩衝液セット)を使用した。透過処理後、FoxP3(eBioscience)特異的抗体を2~8℃で30分間添加した。Trucount(登録商標)チューブ(BD)を使用して絶対細胞数を決定した。FFACSCelestaフローサイトメータ(BD Biosciences)でフローサイトメトリデータを取得し、FlowJo Xソフトウェア(Tree Star)で分析した。GraphPad Prism 6を使用して結果を描画し、統計(一元配置分散分析とそれに続くDunnettの多重比較検定)を分析した。血液1μlあたりのCD4+T細胞の数は、mIL7-mAlbによって有意に増加した(図14、左)。mAlb-IL2群では、わずかな有意でない増加のみが観察された。他のすべての群は、mAlb対照群と同様のCD4 T細胞レベルを示した。予想されたように、mAlb-IL2はCD25+FoxP3+CD4+Tregの割合を有意に増加させた(図14、右)。重要な点として、mIL7-mAlbはTregの割合を減らすことができた。同様に、mIL7-mAlbはCD4+T細胞数を強力に増加させ、Tregの割合を減少させるので、エフェクタT細胞の割合が増加すると想定できる。注目すべきことに、IFNβをmAlb-IL2に結合すると(mIFNβ-mAlb-mIL2)、Tregの頻度をベースラインレベルに正常化することができた。
抗原特異的T細胞は、KLRG-1+、CD127-短命エフェクタT細胞(SLEC)および記憶T細胞の前駆体である長命CD127+T細胞に細分することができる(Kaech,S.M.et al.Nat.Immunol.4,1191-1198(2003);Joshi,N.S.et al.Immunity 27,281-295(2007))。どちらのサブセットも同等の細胞傷害性を示すが、生存能力が異なる(Yuzefpolskiy,Y.,Baumann,F.M.,Kalia,V.&Sarkar,S.Cell.Mol.Immunol.12,400-408(2015))。CD127+T細胞は、KLRG-、CD127+のいわゆる記憶前駆エフェクタ細胞(MPEC)と、これまでに特徴付けられていないKLRG+、CD127+T細胞に細分することができる。後者は、数回増殖したか、またはKLRG-、CD127+MPECへの移行段階のMPECであり得る。
mAlb-mIL2およびIL7-mAlb構築物はどちらも、独自の長所を有していた。mAlb-mIL2は、高い抗原特異的T細胞数を非常に早く(図10)、選択的に(図12)達成したが、加えてTregの頻度を増加させた(図14、右)。しかし、IL7-mAlbは、CD4+エフェクタT細胞を強力に増加させ、Tregの割合を減少させ(図14)、CD127+記憶前駆T細胞の支持に特に有効であった。したがって、両方の構築物との併用処置が抗腫瘍効果を相乗的に高め得ると結論付けた。
実施例7および実施例9に記載されているように、図17に示すマウスの血液を、腫瘍接種後19、27および34日目にフローサイトメトリによってgp70 AH1四量体+CD8+T細胞(図18a)ならびにそれらのKLRG1およびCD127の発現(図18b)について分析した。図10および図11におけるように、Alb-mIL2処置は抗原特異的T細胞数を非常に早く増加させた。Alb-mIL2とmIL7-mAlbはどちらも、mAlb対照よりも抗原特異的T細胞の数を増加させた。Alb-mIL2とmIL7-mAlbの組合せは、特により後の時点で、最も高い抗原特異的T細胞数を誘導した(図18A)。同様に、SLECの最も強力な減少とCD127+gp70特異的T細胞の増加が、腫瘍接種後34日目に併用群で観察された(図18b)。
図14の結果に基づいて、mIL7-mAlbはAlb-mIL2によって増加する制御性T細胞の割合を減らすことができると仮定した。実施例8に記載されているように、図17に示すマウスの血液中のgp70特異的T細胞を、57日目にCD4+CD25+FoxP3+T細胞の割合について分析した。やはり、Tregの頻度はAlb-mIL2によって有意に増加し、mIL7-mAlbによって減少した。仮定したように、両方の組合せは、mAlb対照と同様のTreg頻度をもたらした(図19)。
構築物の設計およびmRNAの作製
以下の実施例で使用される構築物は、実施例1に記載されるように設計し、mRNAを生成した。マウスインターロイキン-12のコード配列を、39ヌクレオチド長のエラスチンリンカーによって分離された2つのサブユニットp40とp35の間の融合タンパク質としてクローニングした。
生成されたmRNAからのサイトカイン発現とmIL12の生物学的活性を、それぞれのmRNAのHEK-293T-17細胞へのリポフェクション、およびその後のHEK-Blue IL12細胞(Invivogen)を使用した上清のmIL12活性の分析によって制御した。ここで、250ng mRNA/μlのLipofectamine MessengerMaxを複合体化し、約80%の集密度のHEK-293T-17細胞のリポフェクションのために1cm2の培養皿ごとに使用した。上清を無菌条件下で24時間の発現後に収集し、さらに使用するまで80℃で保存した。mIL12をコードするmRNAの生物学的活性を、製造者のプロトコルに従ってHEK-Blue IL12細胞(Invivogen)を使用して試験した。これらの細胞はIL12R(IL12受容体)を発現し、IL12のIL12Rへの結合は、STAT4誘導性の分泌型胚性アルカリホスファターゼ(SEAP)レポータ遺伝子の発現を誘導する。HEK-Blue IL12細胞を上記のHEK-293T-17上清の存在下で24時間培養した。組換えヒトIL12を対照として使用し、Infinite 200装置(Tecan)を使用してアルカリホスファターゼの存在を決定した。mIL12のみを含む上清とmAlbに融合したmIL12を含む上清でのレポータ遺伝子SEAPの発現の増加は、これらの構築物の生物学的活性が組換えタンパク質と同様であることを確認した(図20)。
抗原特異的免疫の誘導のために、抗原提示はリンパ組織、特に抗原提示DCで行われる必要がある。しかし、抗原送達だけでは十分な免疫応答を開始するには不十分であるが、病原性の脅威の性質に応じてT細胞応答を調節するにはサイトカインが存在する必要がある。IL12などのサイトカインは、高度に増殖するT細胞とIFNγの産生を特徴とするTh1免疫を強力に促進する。T細胞のプライミング中、そのような強力なサイトカインの発現は厳しく制御されており、全身的な有害作用を回避するために、外因性の供給を関心対象の微小環境に限定する必要がある。そのようなサイトカインをそれらの生理的機能に応じて送達するために、抗原をコードするmRNAの翻訳をリンパ系組織、特にDCのみに指令する製剤の開発を目指した。
IL2またはIL7などのサイトカインがその生理学的機能、すなわちT細胞の増殖と維持の誘導を実行するためには、全身アベイラビリティが鍵となる。タンパク質プロデューサのプールとしての肝細胞のトランスフェクションのためにサイトカインをコードするmRNAを肝臓に標的化することは、ポリマー/脂質製剤で製剤化されたmRNAの静脈内注射によって達成された。肝臓におけるmRNAにコードされたタンパク質の選択的で高い発現を確認するために、BALB/cマウスに5μgのポリマー/脂質製剤化LUC mRNA(n=3)またはポリマー/脂質(TransIT)単独(n=2)を静脈内注射し、実施例14に記載されているように、注射の6、24、48、96および120時間後にインビボイメージングによって生物発光を測定した。図22に示すように、生物発光はすべての時点で肝臓においてのみ検出された。驚くべきことに、翻訳された活性タンパク質は、注射後120時間まで検出可能であった。強力な肝臓トランスフェクションの結果として、血液、腫瘍および腫瘍排出リンパ節におけるタンパク質のアベイラビリティが増強および延長することは、実施例2および実施例5に記載されている。
IL15およびIL12のような特定のサイトカインは、全身投与された場合非常に毒性である。この毒性は、例えば胃腸および肝臓機能障害を媒介する二次IFNγ放出に大きく依存することが公知である(Guo,Y.et al.J.Immunol.195,2353-64(2015);Car,B.D.,Eng,V.M.,Lipman,J.M.&Anderson,T.D.Toxicol.Pathol.27,58-63)。しかし、それらの治療効果は、二次リンパ組織において最も一般的であるNK細胞、T細胞およびDCなどの免疫細胞サブタイプの活性化に依存する。
同様に、IL12の二次リンパ器官への標的化は、堅固な治療効果を示しながら、耐容できる毒性をもたらすと仮定した。IL12は、T細胞のプライミング中にDCによって放出され、ナイーブT細胞のCD4+またはCD8+T細胞の抗腫瘍性または抗ウイルス性Th1型への分化を媒介する重要なサイトカインである。この理由から、IL12は、二次リンパ器官に送達された場合、特にT細胞ワクチンの効果を増強するはずである。関心対象のもう1つのサイトカインであるIL2は、T細胞プライミング中のリンパ組織だけでなく、二次リンパ器官を離れて新たにプライミングされたT細胞の増殖を促進する末梢で選択的にその生理学的機能を発揮し、腫瘍微小環境での機能維持を促進する。これら2つのサイトカインについて得られた時空間要件を念頭に置いて、mRNAワクチン接種およびチェックポイント遮断の状況で、mIL12のリンパ組織への送達と、mIL2のわずかに遅れた全身送達とを組み合わせることを意図した。Envigoから購入したC57BL/6マウス(群あたりn=11)に、100μl PBS中の3×105 B16F10黒色腫細胞(ATCC)を皮下接種した。腫瘍接種の8日後、マウスを腫瘍サイズに従って層別化し、10μgの分化抗原チロシナーゼ関連タンパク質2(TRP2180-188)および10μgのMHCクラスII拘束性ネオ抗原B16_M309を含むRNA-LPXベースのT細胞ワクチンi.v.、または無関係なmRNA(20μgの挿入物のないワクチン骨格)のいずれかを投与した。すべてのマウスに200μl PBS 中の200μg(100μgでの連続処置)の抗PD-L1抗体(クローン6E11、mIgG2A、L234A、L235A、P329G;Genentech)を腹腔内投与した。マウスに、RNA-LPXとして送達される(二次リンパ器官に送達)3μg(4回目の処置からは1μg)のmIL12 mRNAまたは無関係なmRNAを静脈内に同時注射した。およそ48時間後、mIL2-mAlbをコードする1μgのmRNA、またはTransITを用いて製剤化した1μgのmAlb対照(全身アベイラビリティのために肝臓に送達)を静脈内注射した。処置スケジュールを週に1回、7週間繰り返した。IL12処置は免疫療法を強く改善し、60日間超にわたってマウスの80%の生存をもたらした(図24A)。mIL12またはmIL2のいずれかを除いた場合、それぞれマウスの45%または64%のみが60日目まで生存した。この時点で、PD-L1抗体と組み合わせた対照mRNAを投与された対照マウスの9%のみが生存していた。さらに、PD-L1抗体およびmAlb-mIL2と組み合わせたmIL12、mIL12単独またはmAlb-mIL2単独を含むmRNAワクチン接種を受けたマウスの大部分は、白斑の徴候、すなわち処置に起因したTRP-2含有細胞に対する強力な自己免疫の結果としての眼の周囲の毛皮の色素沈着の喪失を示した(図24B)。倫理上の理由により、耐容できない毒性を示すために肝臓に送達されるIL12の投与を試験する対照群は、この実験には加えなかった。
実施例16および17で観察されるように、二次リンパ器官へのサイトカインRNAの標的化は、強力な治療効果を有することができ、IL12などの特定のサイトカインの毒性を減少させることができる。しかし、他のサイトカイン、例えばIL2およびIL7については、腫瘍抗原特異的T細胞に対する強力で長期的な効果のためには高い量のサイトカインの全身アベイラビリティが必要である。この理由から、TransITで送達されたまたはRNA-LPXとして製剤化されたmAlb-mIL2 RNAの、gp70特異的T細胞の数に対する効果を比較した。BALB/cマウス(n=5)を、0日目と7日目にgp70 RNA-LPXワクチン接種(20μg i.v.)と抗PD-L1ブロッキング抗体(100μg i.p.)で処置し、2日後にTransIT中でまたはRNA-LPXとして、mAlb-mIL2をコードする1μgのmRNAを投与した。実施例6に記載されるように、Gp70特異的T細胞応答を血液中で測定した。図25に示すように、肝臓を標的とするmAlb-mIL2(mAlb-mIL2(TransIT))のみが、最初のワクチン接種(左)または2回目のワクチン接種(右)の7日後にgp70特異的CD8+T細胞応答を有意に増加させることができたが、二次リンパ器官を標的とするmAlb-mIL2(mAlb-mIL2(RNA-LPX))は、有意に増加させることができなかった。
構築物の設計およびmRNAの作製
実施例1に従って、ヒトサイトカインをコードするmRNAのインビトロ転写のためのDNAプラスミド構築物を設計した。サイトカインとAlbをコードする配列はヒト(Homo sapiens)に由来し、得られたアミノ酸配列に変化は導入されなかった(hIL2:NP_000577.2;hIL7:NP_000871.1;NCBIタンパク質リソース;https://www.ncbi.nlm.nih.gov/protein/)。hAlbをサイトカインのN末端またはC末端のいずれかに付加した。実施例1に記載されるように、mRNAをインビトロ転写によって生成し、キャップし、精製した。
生成したmRNAからのサイトカイン発現を、HEK-293T-17細胞へのmRNAのリポフェクション、および得られた上清の酵素免疫測定法(ELISA)を使用したその後の分析によって分析した。リポフェクションの1日前に、1.2×106個のHEK-293T-17細胞を、6ウェルプレート中の3mL DMEM(Life Technologies GmbH、カタログ番号31966-021)+10%ウシ胎仔血清(FBS、Biochrom GmbH、カタログ番号S0115)に播種した。リポフェクションのために、3μgのmRNAを無菌のRNアーゼ不含条件下で、Lipofectamine MessengerMax(Thermo Fisher Scientific、カタログ番号LMRNA015)1μLあたり400ng mRNAを使用して製剤化し、10cm2の培養皿ごとに約80%の集密度でHEK-293T-17細胞に適用した。20時間の発現後、無細胞上清を無菌条件下で収集し、さらに使用するまで-20℃で保存した。細胞培養上清中のhIL2サイトカインの存在を、組換えヒトCD25へのhAlb-hIL2およびhIL2-hAlbの結合をELISAで分析することによって決定した。ここで、1μg/mLの組換えヒトCD25(C-Fc、Novoproteinカタログ番号CJ78)を、100μL DPBS中で高タンパク質結合96ウェルプレート(Nunc MaxiSorp(商標)、Thermo Fisher Scientific、カタログ番号439454)に被覆した。hIL2を含有する上清を被覆したCD25に1:4希釈で適用し、結合タンパク質をHRP結合抗ヒト血清アルブミン抗体(Abcam、カタログ番号ab8941)によって検出した。一般的なELISA試薬と手順を、DuoSet ELISA Ancillary Reagent Kit2(R&D Systems、カタログ番号DY008)のプロトコルに従って使用した。hIL7の場合、細胞培養上清中のサイトカインレベルは、市販のHuman IL-7 DuoSet ELISA(R&D Systems、カタログ番号DY207)を製造者のプロトコルに従って使用して決定した。
薬物動態修飾基の位置は、サイトカインに関してN末端またはC末端に位置し得る。どちらかの位置が安定性、全身バイオアベイラビリティまたは機能性に影響を及ぼすかどうかを判定するために、ヒトIL2(hIL2)をヒトアルブミン(hAlb)のN末端(hIL2-hAlb)またはC末端(hAlb-hIL2)に融合し、血液循環中でサイトカインレベルを測定した。雌性BALB/cマウス(12~15週齢)(群および時点あたりn=3匹のマウス)をJanvier Labsから購入し、TransIT(Mirrus)を用いて製剤化した1μgのhIL2-hAlbもしくはhALb-hIL2をコードするmRNA、またはhAlbのみをコードする製剤化した対照mRNAを静脈内(i.v.)注射した。注射後6、24、48および72時間目に血液を採取し、血清を調製した。製造者の指示に従ってMESO QuickPlex SQ120装置(Meso Scale Diagnostics,LLC)でV-Plex Human IL-2キット(Meso Scale Diagnostics,LLC)を使用して、サイトカイン濃度を測定した。潜在的な機能の違いを検討するために、Tリンパ球数を、実施例3に記載されているように調製して染色した脾細胞の単細胞懸濁液のフローサイトメトリ分析によって、注射の96時間後に脾臓で決定した。フローサイトメトリデータをFACSCelestaフローサイトメータ(両方ともBD Biosciences)で取得し、FlowJo Xソフトウェア(Tree Star)で分析した。図28Aに示すように、2つの異なるhIL2融合タンパク質の薬物動態プロフィールは同一であり、翻訳されたタンパク質の初期レベルおよび経時的な全身アベイラビリティは非常に類似していた。Tリンパ球サブセットのCD4+、TregおよびCD8+T細胞数は、対照動物と比較して、両方のhIL2融合タンパク質で同様に拡大した(図28B)。これらのデータセットは、薬物動態修飾基、この場合はhAlbの、サイトカインに関してN末端またはC末端の位置が、適切なサイトカインの機能性に無関係であることを示す。
実施例10において、mAlb-mIL2およびmIL7-mAlbは、特に組み合わせて適用した場合に、ワクチン誘導性抗腫瘍免疫を増強することが示された。これらの所見をヒトサイトカイン融合物で確認するために、BALB/cマウス(群あたりn=11)に、200μl PBS中の5×105 CT26腫瘍細胞を右側腹部に皮下注射し、マウスに、腫瘍接種後10日目から、20μgのgp70 RNA-LPX i.v.および脂質ナノ粒子(LNP)として製剤化し、静脈内注射した(肝臓標的化)3μgのhAlb-hIL2、hIL7-hAlbまたはその2つの組合せを4週間ごとの投与でワクチン接種した。対照動物には、mRNAワクチン接種およびLNP i.v.として製剤化したhAlbを投与した。hAlb-hIL2またはhIL7-hAlbのいずれかを投与された両方の群は、対照群(hAlb)と比較して腫瘍増殖を減少および減速させ、確立された腫瘍でさえも拒絶した(図29A)。hAlb-hIL2の場合、処置下にある間、腫瘍は増殖せず、64%のマウスで高い腫瘍拒絶をもたらしたが、hIL7-hAlbで処置した場合は、18%のマウスで腫瘍が拒絶された。hAlb-hIL2とhIL7-hAlbの組合せは、マウスの対応物と極めて類似しており、対照群では生存マウスが存在しなかったのと比較して、91%のマウスで腫瘍拒絶と無腫瘍生存をもたらした(図29AおよびB)。
実施例7および11に沿って、融合タンパク質をコードするmRNAのワクチン誘導性T細胞応答の拡大に対する効果を、hAlb-hIL2およびhIL7-hAlbに対する応答で検討した。実施例21に記載されるCT26腫瘍担持マウスを、3回の連続処置のそれぞれ7日後(腫瘍接種後17、24および31日目)の血液中のgp70 AH1四量体+CD8+T細胞についてフローサイトメトリによって分析した。このために、実施例7に記載されているようにマウスの末梢血を収集し、gp70 AH1四量体+CD8+T細胞について染色した。フローサイトメトリデータをFACSCelestaフローサイトメータ(BD Biosciences)で取得し、FlowJo Xソフトウェア(Tree Star)で分析した。実施例7に記載されているように、Gp70 AH1特異的T細胞をゲーティングし、定量化した。GraphPad Prism 7を使用して統計(一元配置分散分析とそれに続くDunnettの多重比較検定)を分析した。
実施例8に沿って、融合タンパク質をコードするmRNAの望ましくないTregの拡大に対する効果をhAlb-hIL2およびhIL7-hAlbに対する応答で検討した。実施例21に記載されるCT26腫瘍担持マウスを、3回の連続処置のそれぞれ7日後(腫瘍接種後17、24および31日目)の血液中のTreg細胞についてフローサイトメトリによって分析した。このために、実施例8に記載されているようにマウスの末梢血を収集し、Treg細胞について染色した。フローサイトメトリデータをFACSCelestaフローサイトメータ(BD Biosciences)で取得し、FlowJo Xソフトウェア(Tree Star)で分析した。実施例8に記載されているように、Treg細胞をゲーティングし、定量化した。
Claims (15)
- 対象における癌を治療または予防するための方法で使用するための医薬製剤であって、
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を含み、
前記抗原が腫瘍関連抗原である、医薬製剤。 - 対象において免疫応答を誘導するための方法で使用するためのRNAであって、前記方法が、前記対象に、
a.延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-2をコードするRNAおよび延長薬物動態(PK)インターロイキン(IL)-7をコードするRNA;ならびに
b.前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードするRNA
を投与することを含み、
前記使用するためのRNAが、
延長PK IL2をコードする前記RNA、
延長PK IL7をコードする前記RNA、および
前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するための前記エピトープを含むペプチドもしくはタンパク質をコードする前記RNAを含む、使用するためのRNA。 - 前記延長PK IL2が融合タンパク質を含み、
前記融合タンパク質が、IL2部分ならびに血清アルブミン、免疫グロブリン断片、トランスフェリン、およびFn3、またはそれらの変異体からなる群より選択される部分を含む、請求項1に記載の医薬製剤または請求項2に記載の使用するためのRNA。 - 前記延長PK IL7が融合タンパク質を含み、
前記融合タンパク質が、IL7部分ならびに血清アルブミン、免疫グロブリン断片、トランスフェリン、およびFn3、またはそれらの変異体からなる群より選択される部分を含む、請求項1または3に記載の医薬製剤あるいは請求項2または3に記載の使用するためのRNA。 - 前記血清アルブミンがマウス血清アルブミンまたはヒト血清アルブミンを含む、あるいは、
前記免疫グロブリン断片が免疫グロブリンFcドメインを含む、請求項3または4に記載の医薬製剤あるいは請求項3または4に記載の使用するためのRNA。 - c.免疫チェックポイント阻害剤
をさらに含む、請求項1および3~5のいずれか一項に記載の医薬製剤。 - 前記方法が、前記対象に、
c.免疫チェックポイント阻害剤
を投与することをさらに含む、請求項2~5のいずれか一項に記載の使用するためのRNA。 - 前記免疫チェックポイント阻害剤が、(i)PD-1とPD-L1、または(ii)CTLA-4とCD80もしくはCD86の間の相互作用を標的とする、ならびに/あるいは、
前記免疫チェックポイント阻害剤が抗体または抗体断片であって、前記抗体または抗体断片がPD-1、PD-L1、またはCTLA-4を標的とする、請求項6に記載の医薬製剤または請求項7に記載の使用するためのRNA。 - キットであり、各RNAを別々の容器に含む、ならびに/あるいは
前記免疫チェックポイント阻害剤が、前記RNAを含まない容器内にある、ならびに/あるいは
前記キットが癌を治療または予防するための前記医薬製剤の使用説明書をさらに含み、前記抗原が腫瘍関連抗原である、請求項1、3~6および8のいずれか一項に記載の医薬製剤。 - 前記RNAを含む医薬組成物であり、
前記医薬組成物が、1つ以上の薬学的に許容される担体、希釈剤および/または賦形剤をさらに含む、請求項1、3~6および8のいずれか一項に記載の医薬製剤。 - 前記RNAが、液体形態、固体形態、またはそれらの組合せから選択される形態で存在し、
前記固体形態が凍結形態または脱水形態であり、
前記脱水形態が凍結乾燥形態または噴霧乾燥形態である、請求項1、3~6および8~10のいずれか一項に記載の医薬製剤。 - 医薬用途のためのものであり、前記医薬用途が、疾患または障害の治療的または予防的処置のための方法における使用を含む、請求項1、3~6および8~11のいずれか一項に記載の医薬製剤。
- 前記方法において、延長PK IL2をコードする前記RNAおよび延長PK IL7をコードする前記RNA、前記対象において抗原に対する免疫応答を誘導するためのエピトープを含むペプチドまたはタンパク質をコードする前記RNA、ならびに免疫チェックポイント阻害剤を同時にまたは連続的に投与する、請求項2~5、7および8のいずれか一項に記載の使用するためのRNA。
- 前記方法が、疾患の治療的または予防的処置のための方法であり、
前記治療が、前記抗原に特異的なCD127陽性T細胞の数を増加させる、ならびに/あるいは
前記治療が短命なエフェクタ細胞の数を減少させる、ならびに/あるいは
前記治療が、制御性T細胞に対する抗原特異的T細胞の比率を増加させる、請求項2~5、7、8および13のいずれか一項に記載の使用するためのRNA。 - 前記方法が、対象における癌を治療または予防するための方法であり、前記抗原が腫瘍関連抗原である、
腫瘍抗原に対する治療用抗体または抗体断片を投与しない、ならびに/あるいは
前記癌が、黒色腫、白血病、リンパ腫、肺癌、乳癌、前立腺癌、卵巣癌、結腸癌、中皮腫、腎細胞癌、および脳の癌からなる群より選択される、請求項12に記載の医薬製剤または請求項2~5、7、8、13および14のいずれか一項に記載の使用するためのRNA。
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