JP7404518B2 - 5’-イノシン酸二ナトリウムの分離方法 - Google Patents
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Description
1.IMP生産及び微生物の培養
コリネバクテリウムグルタミカム(Corynebacterium glutamicum)を、培地18Lを含む30L発酵培養器に接種し、31℃で140時間培養し、培養物において、5’-イノシン酸(IMP)を生成した。前記5’-イノシン酸は、細胞外に分泌され、培養液中に存在した。前記培地は、初期pHは、pH7.2であり、蒸溜水1L当たり、ブドウ糖46g、果糖30g、酵母抽出物10g、KH2PO4 18g、K2HPO4 42g、尿素6g、MgSO4・7H2O 10g、ビオチン30μg及びチアミン塩酸塩5mgを含んでいる。最終生成された培養物のpHは、6.8であった。
前記濾過液2Lを、ロータリ蒸発器(rotary evaporator)(N-1110V、東京理化器械株式会社(EYELA))に入れ、濾過液中の水分を蒸発させ、5’-IMPの濃度が260g/Lになるまで濾過液を濃縮した。該蒸発は、真空制御器NVC-2200を使用し、蒸発器内部圧力120mmHg、容器温度65℃及び蒸発速度1L/hrにして進めた。このとき、容器内部濾過液の温度は、55℃であった。該濃縮過程を、以下、「一次濃縮」という。
得られた熟成されたスラリーから、5’-IMP 2Na結晶を分離した。具体的には、得られた熟成されたスラリー608mLを、バスケット分離器H-110F((株)コクサン)に入れ、340xgで20分間遠心分離した。前記H-110F遠心分離機は、その内部に孔があいたバスケット(perforated basket)が設けられており、該バスケットは、外部回転駆動器(external rotation supply)に連結されている。孔があいたバスケットは、ポリアミドマルチフィラメント纎維フィルタ纎維材(polyamide multi filament fiber filter fabric)によってなっており、フィルタの空気透過度は、2mbarで250L/m2/sである。前記遠心分離結果、スラリーから液体が除去されたIMP 2Na結晶を含むケーキ(cake)300gを得た。
本節においては、結晶化段階における溶液のpHが、5’-IMPの結晶化に及ぼす影響を確認した。
本節においては、前述の「3.5’-イノシン酸二ナトリウム結晶の回収」において、60%(v/v)エタノール水溶液の代わりに、有機溶媒、濃度が異なり、含量を異ならせた場合、5’-IMPの溶解度、5’-IMP 2Na結晶の色、及び5’-IMP 2Na結晶の純度、水分含量及び吸光度に及ぼす影響を確認した。
前述の「2.5’-イノシン酸二ナトリウム結晶の形成」で得られた熟成されたスラリー608mlを、表3に示した有機溶媒1,000mlに入れ、25℃で1時間撹拌し、前記スラリー中の5’-IMPを有機溶媒に溶解させた。該溶液を、1,500rpmで10分間遠心分離し、上澄み液を得た。
前述の「3.5’-イノシン酸二ナトリウム結晶の回収」で使用された60%(v/v)エタノール水溶液の量を、スラリー体積対比で0ないし40%(v/v)に異ならせたことを除いては、同一過程によって5’-IMP 2Na結晶を分離し、結晶純度、結晶水分及び吸光度を測定した。該結晶水分は、オーブンで125℃で3時間、乾燥前後の重量を測定する方法であるドライオーブン法によって測定した。結晶純度及び吸光度は、前述のところによって測定した。
本発明は、例えば以下の実施形態を包含する:
[1]5’-イノシン酸の生産微生物を培養する段階と、
前記微生物培養液のpHを、7.4ないし8.0に調整する段階と、
前記pHが調整された培養液を濃縮し、5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を形成する段階と、
前記5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を含む前記培養液から、5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を分離する段階と、
前記5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を親水性有機溶媒と接触させ、前記結晶を洗浄する段階と、を含む、5’-イノシン酸二ナトリウムの分離方法。
[2]前記微生物培養液は、前記培養液の総重量基準で、5ないし20重量%の5’-イノシン酸を含む、[1]に記載の方法。
[3]前記微生物は、Corynebacterium属バクテリアまたはEscherichia属バクテリアである、[1]に記載の方法。
[4]前記濃縮する段階は、減圧濃縮を行う、[1]に記載の方法。
[5]前記濃縮する段階は、前記培養液中において、5’-イノシン酸の濃度が、400ないし550g/Lになるまで遂行する、[1]に記載の方法。
[6]前記pHを調整する段階前、さらに前記培養液を濃縮する段階を含む、[1]に記載の方法。
[7]前記pHを調整する段階前、前記培養液を濃縮する段階は、前記培養液中において、5’-イノシン酸の濃度が、150ないし360g/Lになるまで遂行する、[6]に記載の方法。
[8]前記pHを調整する段階前、前記培養液を濃縮する段階は、減圧濃縮を行う、[6]に記載の方法。
[9]前記濃縮する段階後、形成された結晶を冷却させる段階を含む、[1]に記載の方法。
[10]前記冷却は、25ないし30℃に冷却する、[9]に記載の方法。
[11]前記親水性有機溶媒は、C 1 -C 5 アルコールである、[1]に記載の方法。
[12]前記アルコールは、メタノール、エタノール、プロパノール及びイソプロパノールからなる群のうちから選択された少なくとも1以上である、[11]に記載の方法。
[13]前記親水性有機溶媒は、エタノールである、[1]に記載の方法。
[14]前記親水性有機溶媒の濃度は、50ないし70%(v/v)である、[1]に記載の方法。
[15]前記親水性有機溶媒の体積は、形成された結晶含有試料の総体積の20ないし50%である、[1]に記載の方法。
[16]洗浄された結晶を、水性溶媒中において活性炭と接触させ、発色物質を除去する段階をさらに含む、[1]に記載の方法。
Claims (14)
- 5’-イノシン酸を生産する微生物を培養する段階と、
前記培養により得られた微生物の培養液にNaOHを添加する段階と、
NaOHが添加された微生物の前記培養液から前記微生物を除去する段階と、
前記微生物が除去された前記培養液を濃縮する段階と、
濃縮された前記培養液のpHを、7.4ないし8.0に調整する段階と、
pHが調整された前記培養液を、有機溶媒を使用しないで濃縮し、5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を形成する段階と、
前記5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を含む前記培養液から、5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を分離する段階と、
前記5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を、C 1 -C 5 アルコールである親水性有機溶媒と接触させ、前記結晶を洗浄する段階と、
を含み、微生物の前記培養液においてイオン交換クロマトグラフィが行われない、5’-イノシン酸二ナトリウムの分離方法。 - 前記培養により得られた微生物の前記培養液は、前記培養液の総重量基準で、5ないし20重量%の5’-イノシン酸を含む、請求項1に記載の方法。
- 前記微生物は、Corynebacterium属バクテリアまたはEscherichia属バクテリアである、請求項1に記載の方法。
- pHが調整された前記培養液を前記濃縮する段階は、減圧濃縮を行う、請求項1に記載の方法。
- pHが調整された前記培養液を前記濃縮する段階は、前記培養液中において、5’-イノシン酸の濃度が、400ないし550g/Lになるまで遂行する、請求項1に記載の方法。
- 前記pHを調整する段階前、前記培養液を濃縮する段階は、前記培養液中において、5’-イノシン酸の濃度が、150ないし360g/Lになるまで遂行する、請求項1に記載の方法。
- 前記pHを調整する段階前、前記培養液を濃縮する段階は、減圧濃縮を行う、請求項1に記載の方法。
- pHが調整された前記培養液の前記濃縮によって形成された前記5’-イノシン酸二ナトリウム結晶を冷却させる段階をさらに含む、請求項1に記載の方法。
- 前記冷却は、25ないし30℃に冷却する、請求項8に記載の方法。
- 前記アルコールは、メタノール、エタノール、プロパノール及びイソプロパノールからなる群のうちから選択された少なくとも1以上である、請求項1に記載の方法。
- 前記親水性有機溶媒は、エタノールである、請求項1に記載の方法。
- 前記親水性有機溶媒の濃度は、50ないし70%(v/v)である、請求項1に記載の方法。
- 前記親水性有機溶媒の体積は、形成された結晶含有試料の総体積の20ないし50%である、請求項1に記載の方法。
- 前記洗浄された結晶を、水性溶媒中において活性炭と接触させ、発色物質を除去する段階をさらに含む、請求項1に記載の方法。
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