[go: up one dir, main page]

JP7011828B2 - 多層気道オルガノイドならびにそれを調製および使用する方法 - Google Patents

多層気道オルガノイドならびにそれを調製および使用する方法 Download PDF

Info

Publication number
JP7011828B2
JP7011828B2 JP2018519447A JP2018519447A JP7011828B2 JP 7011828 B2 JP7011828 B2 JP 7011828B2 JP 2018519447 A JP2018519447 A JP 2018519447A JP 2018519447 A JP2018519447 A JP 2018519447A JP 7011828 B2 JP7011828 B2 JP 7011828B2
Authority
JP
Japan
Prior art keywords
cell layer
lung
cells
mammalian
epithelial
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Active
Application number
JP2018519447A
Other languages
English (en)
Other versions
JP2018531603A (ja
Inventor
マーフィー，ショーン・ブイ
アタラ，アンソニー
Original Assignee
ウェイク・フォレスト・ユニヴァーシティ・ヘルス・サイエンシズ
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ウェイク・フォレスト・ユニヴァーシティ・ヘルス・サイエンシズ filed Critical ウェイク・フォレスト・ユニヴァーシティ・ヘルス・サイエンシズ
Publication of JP2018531603A publication Critical patent/JP2018531603A/ja
Application granted granted Critical
Publication of JP7011828B2 publication Critical patent/JP7011828B2/ja
Active legal-status Critical Current
Anticipated expiration legal-status Critical

Links

Images

Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0688—Cells from the lungs or the respiratory tract
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M21/00—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses
    • C12M21/08—Bioreactors or fermenters specially adapted for specific uses for producing artificial tissue or for ex-vivo cultivation of tissue
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/02—Form or structure of the vessel
    • C12M23/16—Microfluidic devices; Capillary tubes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M23/00—Constructional details, e.g. recesses, hinges
    • C12M23/22—Transparent or translucent parts
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0697—Artificial constructs associating cells of different lineages, e.g. tissue equivalents
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/27—Lung cells, respiratory tract cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2502/00—Coculture with; Conditioned medium produced by
    • C12N2502/28—Vascular endothelial cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/50—Proteins
    • C12N2533/54—Collagen; Gelatin
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2533/00—Supports or coatings for cell culture, characterised by material
    • C12N2533/90—Substrates of biological origin, e.g. extracellular matrix, decellularised tissue

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Sustainable Development (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Pulmonology (AREA)
  • Dispersion Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Virology (AREA)

Description

関連出願
本出願は、その内容が全体にわたって引用することにより本明細書の一部をなすものとする、２０１５年１０月１６日出願の米国仮特許出願第６２／２４２，６１１号、および２０１６年１０月６日出願の第６２／４０４，９３１号による優先権の利益を主張するものである。
本発明は概して、多層気道オルガノイド、ならびにそれを調製および使用する方法に関する。
呼吸器感染症の研究は、呼吸上皮、感染症および疾患の間の相互作用を調べるのに適したインビボおよびインビトロモデルがないことにより、極めて制限されている。例えば、動物モデルはしばしば、ヒトに見られる気道および肺の病理学的異常を持たない。例えば、Ｇｕｉｌｂａｕｌｔ ｅｔ ａｌ．， Ｃｙｓｔｉｃ ｆｉｂｒｏｓｉｓ ｍｏｕｓｅ ｍｏｄｅｌｓ， Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ Ｃｅｌｌ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ．２００７；３６（１）：１－７を参照のこと。さらに、大部分のインビトロモデルは、気道上皮の分化した組織成分および構造上の複雑性を作り出すことができない。例えば、Ｌａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｔｈｒｅｅ－ｄｉｍｅｎｓｉｏｎａｌ ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅｓ ｏｎ ｐｏｒｃｉｎｅ ｌｉｖｅｒ ｔｉｓｓｕｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｍａｔｒｉｘ， Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ． ２０１１；３２（２９）：７０４２－７０５２を参照のこと。
死体組織に由来し、２Ｄプラスチック培養（ｐｌａｓｔｉｃ ｃｕｌｔｕｒｅ）表面においてエクスビボで増殖させた初代気道上皮細胞が、依然としてインビトロでの疾患モデリングおよび療法評価の現行標準となっている。しかし、これらの技術では、細胞が、大部分の軟部組織より数段階硬い２次元（２Ｄ）増殖表面、および組織微小環境からの重要なシグナルの欠如を含む人工の条件にさらされる。結果として、これらの技術では、細胞の不均一性および機能特性を実質的に変化させる選択圧が細胞にかかる。例えば、Ａｎｄｅｒｓｏｎ ｅｔ ａｌ．， Ｔｕｍｏｒ ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ ａｎｄ ｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃ ｅｖｏｌｕｔｉｏｎ ｄｒｉｖｅｎ ｂｙ ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ ｐｒｅｓｓｕｒｅ ｆｒｏｍ ｔｈｅ ｍｉｃｒｏｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ， Ｃｅｌｌ １２７．５ （２００６）：９０５－９１５を参照のこと。例えば、プラスチック培養で増殖させた細胞はしばしば非線毛性となり、インビボで線毛呼吸上皮への優先的な付着を示すことが多い気道細菌病原体を研究するのに重大な制限となる。例えば、Ｍａｔｓｕｉ ｅｔ ａｌ．， Ｅｖｉｄｅｎｃｅ ｆｏｒ ｐｅｒｉｃｉｌｉａｒｙ ｌｉｑｕｉｄ ｌａｙｅｒ ｄｅｐｌｅｔｉｏｎ， ｎｏｔ ａｂｎｏｒｍａｌ ｉｏｎ ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ， ｉｎ ｔｈｅ ｐａｔｈｏｇｅｎｅｓｉｓ ｏｆ ｃｙｓｔｉｃ ｆｉｂｒｏｓｉｓ ａｉｒｗａｙｓ ｄｉｓｅａｓｅ． Ｃｅｌｌ． １９９８；９５（７）：１００５－１０１５； Ｇｒａｙ ｅｔ ａｌ．， Ｍｕｃｏｃｉｌｉａｒｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｅｒｉａｌｌｙ ｐａｓｓａｇｅｄ ｎｏｒｍａｌ ｈｕｍａｎ ｔｒａｃｈｅｏｂｒｏｎｃｈｉａｌ ｅｐｉｔｈｅｌｉａｌ ｃｅｌｌｓ． Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ Ｃｅｌｌ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ． １９９６；１４（１）：１０４－１１２を参照のこと。生理的気道モデルがないということは、気道における感染症の病因についての研究に重大な制限があるということになる。
Ｎｉｃｈｏｌｓらの米国特許出願公開第２００９／０２２７０２５号は、微小重力条件を使用してインビトロ系で新たな肺組織を生成するための、前駆細胞または幹細胞の使用について論じた。Ｍａｈｍｏｏｄらの米国特許第８，６４７，８３７号、およびＱｕｉｎｎらの米国特許第５，７５０，３２９号は、肺の肺胞または気嚢に関する肺疾患の研究に、人工組織構築物中の肺胞細胞層および内皮細胞層を使用することについて論じている。Ｇｏｏｄｗｉｎの米国特許第８，３３８，１１４号は、回転壁容器中で、マイクロキャリアを用いて、間葉系気管支－気管細胞および気管支上皮細胞を共培養することにより産生される、３次元（３Ｄ）ヒト気管支上皮組織様集合体について論じている。しかし依然として、肺を侵す感染症および病因の研究に使用可能な改良されたインビトロ系が必要とされている。
（ａ）哺乳動物肺上皮細胞を含む上皮細胞層、
（ｂ）哺乳動物肺線維芽細胞を含む間質細胞層、および
（ｃ）哺乳動物内皮細胞（例えば毛細血管内皮細胞）を含む内皮細胞層
を含む人工哺乳動物肺オルガノイドが本明細書で提供される。
一部の実施形態で、オルガノイドは、前記上皮細胞層と前記肺間質細胞層の間および／または前記肺間質細胞層と前記肺内皮細胞層の間に、多孔質膜（例えば高分子物質）をさらに含む。
一部の実施形態で、肺上皮細胞層の細胞は極性化している。一部の実施形態で、肺内皮細胞層、間質細胞層および／または上皮細胞層の細胞はヒトである。
一部の実施形態で、肺オルガノイドは上気道肺オルガノイドである。一部の実施形態で、哺乳動物肺上皮細胞は気管支上皮細胞である。一部の実施形態で、哺乳動物肺上皮細胞は正常な気管支上皮細胞を含む。一部の実施形態で、哺乳動物肺上皮細胞は病変気管支上皮細胞を含む。
一部の実施形態で、気管支上皮細胞は、基底細胞、杯細胞、線毛細胞および／またはクララ細胞を含む。
一部の実施形態で、間質層の哺乳動物肺線維芽細胞と内皮細胞層の哺乳動物内皮細胞との比は２：１～１：２である。一部の実施形態で、間質層の哺乳動物肺線維芽細胞と上皮細胞層の哺乳動物上皮細胞との比は２：１～１：２である。一部の実施形態で、内皮層の哺乳動物内皮細胞と上皮細胞層の哺乳動物上皮細胞との比は２：１～１：２である。
一部の実施形態で、多孔質膜は一方または両方の側面を、ラミニン、Ｉ型コラーゲン、ＩＶ型コラーゲン、フィブロネクチン、エラスチン、肺組織由来の細胞外マトリックス組成物、またはそれらの組合せでコーティングされている。
一部の実施形態で、肺オルガノイドは肺病原体に感染している。一部の実施形態で、肺オルガノイドは百日咳菌（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ ｐｅｒｔｕｓｓｉｓ）または緑膿菌（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ ａｅｒｕｇｉｎｏｓａ）に感染している。
本明細書で教示される肺オルガノイドを含むマイクロ流体デバイスも提供される。マイクロ流体デバイスは、チャンバーおよびチャネルを含む外装を含んでいてよい。肺オルガノイドはチャンバー内にあってよく、チャネルは、肺オルガノイドが流体入口および流体出口に流体連通するように形作られていてよく、前記流体入口および前記流体出口は流体貯留容器に連絡していてよい。
一部の実施形態で、外装の少なくとも一部は透明であってよい。一部の実施形態で、肺オルガノイドの内皮細胞層はデバイス内において液体（例えば培地）で流体連通している。一部の実施形態で、肺オルガノイドの上皮細胞層は気体（例えば空気）で流体連通している。一部の実施形態で、肺オルガノイドの上皮細胞層は液体（例えば培地）で流体連通している。
本明細書で教示される肺オルガノイドを調製する方法も提供される。一部の実施形態によれば、方法は、
多孔質膜の第１の側面に、哺乳動物内皮細胞を含む内皮細胞層を堆積させるステップ、
多孔質膜の第１の側面の反対側である多孔質膜の第２の側面に、哺乳動物肺線維芽細胞を含む間質細胞層を堆積させるステップ、および
間質細胞層に直接、哺乳動物肺上皮細胞を含む上皮細胞層を堆積させるステップ
を含んでいてよい。
一部の実施形態で、方法は、
哺乳動物肺線維芽細胞を含むヒドロゲルを用意するステップ、
ヒドロゲルの第１の側面に、哺乳動物内皮細胞を含む内皮細胞層を堆積させるステップ、および
ヒドロゲルの第１の側面の反対側であるヒドロゲルの第２の側面に、哺乳動物肺上皮細胞を含む上皮細胞層を堆積させるステップ
を含んでいてよい。
一部の実施形態で、ヒドロゲルは架橋結合していてよい。一部の実施形態で、ヒドロゲルは、ゼラチン、フィブリノーゲン、ジェランガム、プルロニック（ポロクサマー）、アルギン酸、キトサン、ヒアルロン酸、セルロースおよび／またはコラーゲンを含んでいてよい。
図１（ａ）、（ｂ）および（ｃ）は、本発明の一部の実施形態による膜を含む肺オルガノイドの層の概略図である。 蛍光色素標識された毛細血管系内皮細胞および気道間質間葉系細胞を初代気道上皮と層にすることで生じる３Ｄ肺オルガノイドを示す画像である。 本発明の一部の実施形態によるヒドロゲルを含む肺オルガノイドの概略図である。 （ａ）本発明の一部の実施形態によるマイクロ流体デバイスの模式図である；（ｂ）本発明の一部の実施形態によるマイクロ流体支持系（ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ ｓｕｐｐｏｒｔ ｓｙｓｔｅｍ）の模式図である；（ｃ）本発明の一部の実施形態によるマイクロ流体支持系の画像である。
本発明はこれより、以下でより十分に記載される。しかし本発明は、多くの様々な形態で具体化可能であり、本明細書で示す実施形態に限定されるものと解釈されるべきでない。そうではなくこれらの実施形態は、本開示が網羅的かつ完全であり、当業者に本発明の範囲を十分に伝えるように提供される。
本明細書で使用する用語は特定の実施形態について記載するためだけのものであり、本発明を限定することを意図するものではない。本明細書で使用する場合、単数形「ａ」、「ａｎ」および「ｔｈｅ」は、別途文脈で明らかに示されない限り、複数形も含むことを意図するものである。「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｅｓ）」または「含む（ｃｏｍｐｒｉｓｉｎｇ）」という語は、本明細書で使用する場合、明記される特徴、ステップ、操作、要素、成分および／またはそれらの群もしくは組合せの存在を明示するが、１つまたは複数のその他の特徴、ステップ、操作、要素、成分および／またはそれらの群もしくは組合せの存在または追加を除外するものではないことがさらに理解されるであろう。
本明細書で使用する場合、「および／または」という語は、任意のもしくは全ての考えられる組合せ、または関連する列挙項目のうち１つもしくは複数、および代替と解釈される場合（「または」）には組合せの欠如を含む。
別途規定されない限り、本明細書で使用する全ての用語（技術用語および科学用語を含む）は、本発明が属する当業者が通常理解するものと同じ意味を有する。通常使用される辞書で規定されるものなどの用語は、明細書および特許請求の範囲の文脈における意味と一致する意味を有するものと解釈すべきであり、本明細書で明確にそのように規定されない限り、理想的なまたは過度に形式的な意味に解釈すべきでないことがさらに理解されるであろう。簡潔性および／または明瞭性のため、周知の機能または構造は詳細に記載されない可能性がある。
本明細書で使用する場合、「細胞」は概して、イヌ、ネコ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ、マウス、ウサギ、ラットなどの細胞などの哺乳動物細胞である。一部の好ましい実施形態で、細胞はヒト細胞である。適切な細胞は既知であり市販されている、かつ／または既知の技術に従って産生可能である。一部の実施形態で、細胞はドナーから採取され継代される。一部の実施形態で、細胞は細胞株から分化したものである。一部の実施形態で、細胞は、成体幹細胞（骨髄、末梢血、臍帯血、臍帯中または胎盤組織由来のｗｈａｒｔｏｎ膠質）、胚性幹細胞、羊水幹細胞、または目的の組織に分化可能な、任意のその他の供給源からの幹細胞に由来する。
本明細書で使用する場合、「哺乳動物」は、ヒト対象（および細胞供給源）およびイヌ、ネコ、マウス、サルなど（例えば獣医学用）の非ヒト対象（および細胞供給源または型）の両方を指す。
本明細書で使用する場合、「細胞外マトリックス」（ＥＣＭ）は、周辺の細胞を構造上および生化学的支持を提供する、細胞により分泌される細胞外の分子を指す。ＥＣＭは通常、線維タンパク質、およびグリコサミノグリカン（ＧＡＧ）などのポリサッカライドの連動する網から構成される。本明細書で使用する場合、「細胞外マトリックス組成物」はＥＣＭタンパク質を含む組成物を指す。
本明細書で使用する場合、「細胞外マトリックスタンパク質」（または「ＥＣＭタンパク質」）は既知であり、これらに限定されないがＹ．Ｚｈａｎｇらの米国特許出願公開第２０１３／０２８８３７５号に記載されるものを含む。ＥＣＭタンパク質の例には、これらに限定されないが、ラミニン、Ｉ型コラーゲン、ＩＶ型コラーゲン、フィブロネクチンおよびエラスチンが含まれる。
本明細書で使用する場合、「オルガノイド」は、器官またはその一部の機能性および／または組織学的構造を模すかこれらに似るように作り出される人工インビトロ構築物を指す。
本明細書で使用する場合、「培地」または「培養培地」は、本発明を実施するのに使用される細胞の増殖、生存、または保存のために用意される水性溶液を指す。培地または培養培地は天然でも人工のものでもよい。培地または培養培地は基本培地を含んでいてよく、培地で培養される細胞の細胞生存、増殖、増加、および／または分化などの望ましい細胞活性を促進するように栄養（例えば、塩、アミノ酸、ビタミン、微量元素、抗酸化剤）が添加されてもよい。本明細書で使用する場合、「基本培地」は、基本塩栄養または塩の水溶液、ならびに、細胞に水、および正常な細胞代謝に必須の一定のバルク無機イオンを供給するその他の因子を指し、細胞内および／または細胞外浸透圧の平衡を維持する。一部の実施形態で、基本培地は、エネルギー供給源としての少なくとも１種の糖、および／または生理的ｐＨ範囲内に培地を維持するための緩衝系を含んでいてよい。市販の基本培地の例には、これらに限定されないが、リン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）、ダルベッコ改変イーグル培地（ＤＭＥＭ）、最小必須培地（ＭＥＭ）、イーグル基本培地（ＢＭＥ）、ロズウェルパーク記念研究所培地（ＲＰＭＩ）１６４０、ＭＣＤＢ１３１、クリック培地、マッコイ５Ａ培地、１９９培地、ウィリアム培地Ｅ、グレース培地などの昆虫培地、ハム栄養混合物Ｆ－１０（ハムＦ－１０）、ハムＦ－１２、α－最小必須培地（αＭＥＭ）、グラスゴー最小必須培地（Ｇ－ＭＥＭ）およびイスコフ改変ダルベッコ培地が含まれていてよい。例えば、米国特許出願公開第ＵＳ２０１５０１７５９５６号を参照のこと。
本明細書で使用する場合、「ヒドロゲル」は、天然由来のヒドロゲルおよび合成ヒドロゲルを指す。天然由来のヒドロゲルおよび合成ヒドロゲルを混合して、ハイブリッドヒドロゲルを形成してもよい。天然由来のヒドロゲルは、これらに限定されないが、細胞株から収集された天然の細胞外マトリックスタンパク質から調製されるＭａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）、コラーゲンおよびアルギン酸を含んでいてよい。天然由来のヒドロゲルは、脱細胞化組織抽出物に由来していてもよい。細胞外マトリックスは、特定の組織から収集してよく、その組織型の細胞を支持するのに使用可能なヒドロゲル物質として使用するかこれと組み合わせることができる。例えば、Ｓｋａｒｄａｌ ｅｔ ａｌ．， Ｔｉｓｓｕｅ Ｓｐｅｃｉｆｉｃ Ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ＥＣＭ Ｈｙｄｒｏｇｅｌｓ ｆｏｒ ３－Ｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ Ｍａｉｎｔｅｎａｎｃｅ ｏｆ Ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ Ｆｕｎｃｔｉｏｎ， Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ ３３ （１８）：４５６５－７５（２０１２）を参照のこと。キトサンヒドロゲルは、分解可能かつ数種の異なる細胞型を支持する天然由来のヒドロゲルの一例である。例えば、Ｍｏｕｒａ ｅｔ ａｌ．， Ｉｎ Ｓｉｔｕ Ｆｏｒｍｉｎｇ Ｃｈｉｔｏｓａｎ Ｈｙｄｒｏｇｅｌｓ Ｐｒｅｐａｒｅｄ ｖｉａ Ｉｏｎｉｃ／Ｃｏｖａｌｅｎｔ Ｃｏ－Ｃｒｏｓｓ－Ｌｉｎｋｉｎｇ， Ｂｉｏｍａｃｒｏｍｏｌｅｃｕｌｅｓ １２ （９）： ３２７５－８４ （２０１１）を参照のこと。ヒアルロン酸ヒドロゲルも使用可能である。例えば、Ｓｋａｒｄａｌ ｅｔ ａｌ．， Ａ ｈｙｄｒｏｇｅｌ ｂｉｏｉｎｋ ｔｏｏｌｋｉｔ ｆｏｒ ｍｉｍｉｃｋｉｎｇ ｎａｔｉｖｅ ｔｉｓｓｕｅ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ ｍｅｃｈａｎｉｃａｌ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｉｎ ｂｉｏｐｒｉｎｔｅｄ ｔｉｓｓｕｅ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｓ， Ａｃｔａ Ｂｉｏｍａｔｅｒ． ２５： ２４－３４ （２０１５）を参照のこと。
合成ヒドロゲルは、多くの技術を使用して様々な物質（例えば、ポリ－（エチレングリコール））から産生可能である。天然由来のヒドロゲルとは対照的に、合成ヒドロゲルは均一に産生することができ、容易に再現可能かつ特性を明らかにすることができる。しかし合成ヒドロゲルは、天然の細胞外マトリックスに見られる活性部位のような、細胞に対するいくつかの機能性シグナルを欠いていることがあり、それにより合成ヒドロゲルの、細胞を支持する潜在能力が制限される。例えば、Ｍａｈｏｎｅｙ ｅｔ ａｌ．， Ｔｈｒｅｅ－Ｄｉｍｅｎｓｉｏｎａｌ Ｇｒｏｗｔｈ ａｎｄ Ｆｕｎｃｔｉｏｎ ｏｆ Ｎｅｕｒａｌ Ｔｉｓｓｕｅ ｉｎ Ｄｅｇｒａｄａｂｌｅ Ｐｏｌｙｅｔｈｙｌｅｎｅ Ｇｌｙｃｏｌ Ｈｙｄｒｏｇｅｌｓ， Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ ２７ （１０）： ２２６５－７４ （２００６）を参照のこと。ハイブリッドヒドロゲルは折衷案となる可能性があり、これにより特定の微小環境を再構築する能力をよりよく制御することが可能となりうる。細胞外マトリックス分子（例えば細胞外マトリックスタンパク質）などの天然成分を、規定の合成ヒドロゲルと組み合わせることで、より容易に再現可能かつ機能性のヒドロゲルが産生可能である。例えば、Ｓａｌｉｎａｓ ｅｔ ａｌ．， Ｃｈｏｎｄｒｏｇｅｎｉｃ Ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ Ｐｏｔｅｎｔｉａｌ ｏｆ Ｈｕｍａｎ Ｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ Ｓｔｅｍ Ｃｅｌｌｓ Ｐｈｏｔｏｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ ｗｉｔｈｉｎ Ｐｏｌｙ（Ｅｔｈｙｌｅｎｅ Ｇｌｙｃｏｌ）－Ａｒｇｉｎｉｎｅ－Ｇｌｙｃｉｎｅ－Ａｓｐａｒｔｉｃ Ａｃｉｄ－Ｓｅｒｉｎｅ Ｔｈｉｏｌ－Ｍｅｔｈａｃｒｙｌａｔｅ Ｍｉｘｅｄ－Ｍｏｄｅ Ｎｅｔｗｏｒｋｓ， Ｔｉｓｓｕｅ Ｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ １３ （５）： １０２５－３４ （２００７）を参照のこと。
本明細書で引用される全ての米国特許文献の開示は、本明細書での開示と一致する程度に、引用することにより本明細書の一部をなすものとする。
１．肺オルガノイドおよびそれを調製する方法
（ａ）哺乳動物肺上皮細胞を含む上皮細胞層、（ｂ）哺乳動物肺線維芽細胞を含む間質細胞層、および（ｃ）哺乳動物内皮細胞を含む内皮細胞層を含む、人工哺乳動物肺オルガノイドが本明細書で提供される。一部の実施形態で、上皮細胞層は初代哺乳動物肺上皮細胞を含んでいてよい。一部の実施形態で、間質細胞層は初代哺乳動物肺線維芽細胞、または幹細胞もしくは細胞株から分化した哺乳動物肺線維芽細胞を含んでいてよく、内皮細胞層は初代哺乳動物内皮細胞、または幹細胞もしくは細胞株から分化した哺乳動物内皮細胞を含んでいてよい。一部の実施形態で、内皮細胞層は毛細血管内皮細胞を含んでいてもよい。一部の実施形態で、内皮細胞層はヒト臍帯静脈内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）を含んでいてよい。
一部の実施形態で、前記哺乳動物肺上皮細胞、前記哺乳動物肺線維芽細胞および／または前記哺乳動物内皮細胞はヒト細胞であってよい。一部の実施形態で、哺乳動物肺上皮細胞は、明確な「頂端」細胞膜、「側方」細胞膜および「基底」細胞膜ドメインを含む極性化した細胞である。一部の実施形態で、極性化した上皮細胞により、上皮層の端から端への分子の指向性輸送が可能となる。
一部の実施形態で、肺オルガノイドは、前記上皮細胞層と前記肺間質細胞層の間、および／または前記肺間質細胞層と前記肺内皮細胞層の間に膜をさらに含んでいてよい。
図１（ａ）、（ｂ）および（ｃ）は、本発明の一部の実施形態による膜を含む肺オルガノイドの層の概略図を提供する。肺オルガノイドは、図１（ａ）に示すように、上皮細胞層２０と肺間質細胞層３０の間に膜１０を含むか、図１（ｂ）に示すように、肺間質細胞層３０と肺内皮細胞層４０の間に膜１０を含むか、図１（ｃ）に示すように、上皮細胞層２０と肺間質細胞層３０の間、および肺間質細胞層３０と肺内皮細胞層４０の間にそれぞれ膜１０を含んでいてよい。一部の実施形態で、肺オルガノイドに含まれる膜は多孔質とすることができ、それを通しての分子の流動または輸送が可能となる。
一部の実施形態で、本発明の肺オルガノイドは、
膜（例えば多孔質膜）の第１の側面に生哺乳動物内皮細胞（例えば毛細血管内皮細胞）を含む内皮細胞層を堆積させ、
膜の第１の側面の反対側である膜の第２の側面に生哺乳動物肺線維芽細胞を含む間質細胞層を堆積させ、
間質細胞層に直接、生哺乳動物肺上皮細胞を含む上皮細胞層を堆積させる
ことによって調製することができる。
細胞は、樹立された培養物、ドナー、生検、不死化細胞株、幹細胞、またはそれらの組合せから得られる。一部の実施形態で、細胞は初代細胞である。一部の実施形態で、細胞はヒト肺細胞である。一部の実施形態で、細胞は継代される。
細胞の堆積または播種は、広げる／塗る、コーティングする、噴霧することなどを含むがこれらに限定されない任意の適切な技術により実施可能である。一部の実施形態で、堆積させるステップは、「インクジェット」型プリンティング、シリンジ注射型プリンティングまたは当技術分野で既知のその他の技法を含む任意の適切な技術によるプリンティングまたはバイオプリンティングにより実施可能である。このようなバイオプリンティングを実施するための器具は既知であり、例えば、Ｂｏｌａｎｄらの、米国特許第７，０５１，６５４号；Ｙｏｏらの、米国特許出願公開第ＵＳ２００９／０２０８４６６号；およびＫａｎｇらの、米国特許出願公開第ＵＳ２０１２／００８９２３８号に記載されている。
上記の通り、膜（例えば多孔質膜）は、肺オルガノイドの細胞層の１つまたは複数の接合部に位置していてよい。膜は高分子物質であるかこれを含んでいてよい。高分子物質はポリスチレンなどの合成物であってもよく、脱細胞化細胞外マトリックス（ＥＣＭ）または非脱細胞化細胞外マトリックス（ＥＣＭ）などの天然の組織に由来していてもよい。一部の実施形態で、膜の一方または両方の側面は、ＥＣＭタンパク質（例えば、ラミニン、Ｉ型コラーゲン、ＩＶ型コラーゲン、フィブロネクチンおよびエラスチン）、プロテオグリカン、ビトロネクチン、ポリ－Ｄ－リジンおよび／またはポリサッカライドでコーティングされていてよい。
一部の実施形態で、膜の一方または両方の側面は、肺組織由来の細胞外マトリックス組成物、または肺組織由来の細胞外マトリックス組成物を含むヒドロゲルでコーティングされていてよい。例えば、Ｌａｎｇ ｅｔ ａｌ．， Ｔｈｒｅｅ－ｄｉｍｅｎｓｉｏｎａｌ ｃｕｌｔｕｒｅ ｏｆ ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅｓ ｏｎ ｐｏｒｃｉｎｅ ｌｉｖｅｒ ｔｉｓｓｕｅ－ｄｅｒｉｖｅｄ ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｍａｔｒｉｘ， Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ． ２０１１；３２（２９）：７０４２－７０５２； Ｍｉｒｍａｌｅｋ－Ｓａｎｉ ｅｔ ａｌ．， Ｐｏｒｃｉｎｅ ｐａｎｃｒｅａｓ ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｍａｔｒｉｘ ａｓ ａ ｐｌａｔｆｏｒｍ ｆｏｒ ｅｎｄｏｃｒｉｎｅ ｐａｎｃｒｅａｓ ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ， Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ． ２０１３；３４（２２）：５４８８－５４９５； Ｏｒｌａｎｄｏ ｅｔ ａｌ．， Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ａｎｄ ｉｍｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ｏｆ ｒｅｎａｌ ｅｘｔｒａｃｅｌｌｕｌａｒ ｍａｔｒｉｘ ｓｃａｆｆｏｌｄｓ ｆｒｏｍ ｐｏｒｃｉｎｅ ｋｉｄｎｅｙｓ ａｓ ａ ｐｌａｔｆｏｒｍ ｆｏｒ ｒｅｎａｌ ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎｓ， Ａｎｎａｌｓ ｏｆ ｓｕｒｇｅｒｙ． ２０１２；２５６（２）：３６３－３７０を参照のこと；Ｂｏｏｔｈ ｅｔ ａｌ．， Ａｃｅｌｌｕｌａｒ ｎｏｒｍａｌ ａｎｄ ｆｉｂｒｏｔｉｃ ｈｕｍａｎ ｌｕｎｇ ｍａｔｒｉｃｅｓ ａｓ ａ ｃｕｌｔｕｒｅ ｓｙｓｔｅｍ ｆｏｒ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｉｎｖｅｓｔｉｇａｔｉｏｎ， Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｊｏｕｒｎａｌ ｏｆ Ｒｅｓｐｉｒａｔｏｒｙ ａｎｄ Ｃｒｉｔｉｃａｌ Ｃａｒｅ Ｍｅｄｉｃｉｎｅ． ２０１２；１８６（９）：８６６－８７６も参照のこと。例えば、肺ＥＣＭバイオゲルは、ヒト肺ＥＣＭ粉末を可溶化させ、可溶化させたヒト肺ＥＣＭ粉末をヒドロゲルと組み合わせることにより生成可能である。ヒト肺ＥＣＭ粉末は、脱細胞化または非脱細胞化ヒト肺ＥＣＭから調製することができる。ヒト肺ＥＣＭ粉末は、ヒト肺ＥＣＭを凍結乾燥させ、次いで凍結乾燥させたヒト肺ＥＣＭを、例えばフリーザーミルで粉末にすりつぶすことにより形成可能である。例えば、Ｙ．Ｚｈａｎｇらの、米国特許出願公開第２０１３／０２８８３７５号；およびＳｋａｒｄａｌ ｅｔ ａｌ．， Ｔｉｓｓｕｅ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ｓｙｎｔｈｅｔｉｃ ＥＣＭ ｈｙｄｒｏｇｅｌｓ ｆｏｒ ３－Ｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｍａｉｎｔｅｎａｎｃｅ ｏｆ ｈｅｐａｔｏｃｙｔｅ ｆｕｎｃｔｉｏｎ， Ｂｉｏｍａｔｅｒｉａｌｓ ３３（１８）： ４５６５－７５ （２０１２）を参照のこと。
一部の実施形態で、本発明の肺オルガノイドは、
間質細胞（例えば生哺乳動物肺線維芽細胞）をそこに含むヒドロゲルを用意し、
ヒドロゲルの第１の側面に、生哺乳動物内皮細胞（例えば毛細血管内皮細胞）を含む内皮細胞層を堆積させ、
ヒドロゲルの第１の側面の反対側であるヒドロゲルの第２の側面に、生哺乳動物肺上皮細胞を含む上皮細胞層を堆積させる
ことによって調製することができる。
一部の実施形態で、ヒドロゲルは架橋結合されていてもいなくてもよい。一部の実施形態で、ヒドロゲルはゼラチン、フィブリノーゲン、ジェランガム、プルロニック（ポロクサマー）、アルギン酸、キトサン、ヒアルロン酸、セルロースおよび／またはコラーゲンを含んでいてよい。
一部の実施形態で、３Ｄ肺オルガノイドは、図２に示すように、毛細血管系内皮細胞（下）および気道間質間葉系細胞（中）を初代気道上皮（上）と層にすることにより形成可能である。上皮細胞は極性化しており、かつ線毛性である。一部の実施形態で、内皮細胞は蛍光色素で標識されていてよい。
図３は、本発明の一部の実施形態によるヒドロゲルを含む肺オルガノイドの概略図を提供する。図３を参照すれば、一部の実施形態で、肺オルガノイドは、前記間質細胞３０をそこに含むヒドロゲル５０をさらに含んでいてよい。上皮細胞層２０および内皮細胞層４０はヒドロゲル５０のそれぞれ反対面にあってよい。ヒドロゲル５０は架橋結合されていてもいなくてもよい。ヒドロゲル５０の例には、これらに限定されないが、ゼラチン、フィブリノーゲン、ジェランガム、プルロニック（ポロクサマー）、アルギン酸、キトサン、ヒアルロン酸、セルロース、コラーゲン、およびそれらの混合物が含まれる。
一部の実施形態で、ヒドロゲル５０は肺組織由来の細胞外マトリックス組成物（肺ＥＣＭバイオゲル）を含んでいてよい。一部の実施形態で、オルガノイドの間質細胞は、生理的硬さ（１～２ｋＰａ）の肺ＥＣＭバイオゲル中に懸濁されていてよい。一部の実施形態で、ヒドロゲル５０はヒアルロン酸ベースのヒドロゲルであってよい。例えば、Ｓｋａｒｄａｌ ｅｔ ａｌ．， Ａ ｈｙｄｒｏｇｅｌ ｂｉｏｉｎｋ ｔｏｏｌｋｉｔ ｆｏｒ ｍｉｍｉｃｋｉｎｇ ｎａｔｉｖｅ ｔｉｓｓｕｅ ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ ａｎｄ ｍｅｃｈａｎｉｃａｌ ｐｒｏｐｅｒｔｉｅｓ ｉｎ ｂｉｏｐｒｉｎｔｅｄ ｔｉｓｓｕｅ ｃｏｎｓｔｒｕｃｔｓ， Ａｃｔａ Ｂｉｏｍａｔｅｒ． ２５： ２４－３４ （２０１５）；および引用することにより本明細書の一部をなすものとするＰＣＴ出願公開第ＷＯ２０１６／０６４６４８Ａ１号を参照のこと。
一部の実施形態で、肺オルガノイドは、ウイルスまたは細菌肺病原体に感染していてよい。呼吸器疾患の原因となる病原体には、一般的なｆｌｕつまりインフルエンザ（ＡまたはＢ；オルトミクソウイルス科（Ｏｒｔｈｏｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ））、呼吸器多核体ウイルス、ヒトパラインフルエンザウイルス（ＨＰＩＶ；パラミクソウイルス科（ｐａｒａｍｙｘｏｖｉｒｕｓ））、メタニューモウイルス（ｈＭＰＶ；パラミクソウイルス科（Ｐａｒａｍｙｘｏｖｉｒｉｄａｅ））、アデノウイルス、ライノウイルス、パラインフルエンザウイルス、コロナウイルス、コクサッキーウイルス、および単純ヘルペスウイルスが含まれる。呼吸器疾患の細菌病原体には、ペスト菌（Ｙｅｒｓｉｎｉａ ｐｅｓｔｉｓ）、炭疽菌（Ｂａｃｉｌｌｕｓ ａｎｔｈｒａｃｉｓ）、大腸菌（Ｅｓｃｈｅｒｉｃｈｉａ ｃｏｌｉ）、緑膿菌、野兎菌（Ｆｒａｎｃｉｓｅｌｌａ ｔｕｌａｒｅｎｓｉｓ）、黄色ブドウ球菌（Ｓｔａｐｈｙｌｏｃｏｃｃｕｓ ａｕｒｅｕｓ）Ａ群ベータ溶血性連鎖球菌（ＧＡＢＨＳ）、Ｃ群ベータ溶血性連鎖球菌、ジフテリア菌（Ｃｏｒｙｎｅｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｄｉｐｈｔｈｅｒｉａｅ）、淋菌（Ｎｅｉｓｓｅｒｉａ ｇｏｎｏｒｒｈｏｅａｅ）、溶血性アルカノバクテリア（Ａｒｃａｎｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ ｈａｅｍｏｌｙｔｉｃｕｍ）、肺炎クラミジア（Ｃｈｌａｍｙｄｉａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、肺炎マイコプラズマ（Ｍｙｃｏｐｌａｓｍａ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、肺炎球菌（Ｓｔｒｅｐｔｏｃｏｃｃｕｓ ｐｎｅｕｍｏｎｉａｅ）、インフルエンザ菌（Ｈａｅｍｏｐｈｉｌｕｓ ｉｎｆｌｕｅｎｚａｅ）、カタル球菌（Ｍｏｒａｘｅｌｌａ ｃａｔａｒｒｈａｌｉｓ）、百日咳菌、およびパラ百日咳菌（Ｂｏｒｄｅｔｅｌｌａ ｐａｒａｐｅｒｔｕｓｓｉｓ）が含まれる。
２．デバイスおよびシステム
一部の実施形態で、肺オルガノイドはマイクロ流体デバイスとして提供されうる。オルガノイドを支持するのに有用な各種マイクロ流体デバイス構成が、当技術分野で既知となっている。例えば、Ｉｎｇｂｅｒらの米国特許出願公開第２０１４／００３８２７９号；Ｂｈａｔｉａ ａｎｄ Ｉｎｇｂｅｒ， “Ｍｉｃｒｏｆｌｕｉｄｉｃ ｏｒｇａｎｓ－ｏｎ－ｃｈｉｐｓ，” Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ３２：７６０－７７２ （２０１４）を参照のこと。
概して、本明細書で教示される肺オルガノイドを含むマイクロ流体デバイスは、肺オルガノイドの上皮細胞層と流体接触する第１のチャンバーまたは開口部と、肺オルガノイドの内皮細胞層と流体接触する第２のチャンバーまたは開口部との間の境界を肺オルガノイドが規定するような、その内部に肺オルガノイドを受容する大きさのチャンバーを含んでいてよい。流体は培地などの液体でも空気などの気体でもよい。デバイスは、各チャンバーにつき流体入口および流体出口、それと連絡する流体貯留容器などをさらに含んでいてよい。一部の実施形態で、気体（例えば空気）が肺オルガノイドの上皮細胞層に接触していてよく、液体（例えば培地）が肺オルガノイドの内皮細胞層に接触していてよい。一部の実施形態で、マイクロ流体デバイスは、「プラグイン」、すなわちポンプ、培養培地貯留容器、検出器などを含むより大きな器具に挿入するためのカートリッジの形態で提供可能である。
図４（ａ）は、本発明の一部の実施形態によるマイクロ流体デバイスの模式図である。図４（ａ）を参照すれば、一部の実施形態で、マイクロ流体デバイスは、外装５１０および外装５１０中のチャンバー５２０を含んでいてよい。肺オルガノイド５３０は、チャンバー５２０中に配置することができる。マイクロ流体デバイスは、そこを通って流体（例えば培地、空気）が出入り可能な流体入口および流体出口５４０、ならびに肺オルガノイド５３０が流体と流体連通するために設けられたチャネルまたは開口部５５０をさらに含んでいてよい。一部の実施形態で、マイクロ流体デバイス外装５１０の少なくとも一部は、肺オルガノイド５３０の画像化を可能にするため透明であってよい。一部の実施形態で、マイクロ流体デバイスは、異なる種類の流体を肺オルガノイド５３０に供給するための、複数の流体入口および出口５４０ならびに複数のチャネル５５０を含んでいてよい。一部の実施形態で、マイクロ流体デバイスの外装５１０内に経内皮（または上皮）電気抵抗（ＴＥＥＲ）センサーの電極を設けることができる（図示しない）。
図４（ｂ）は、本発明の一部の実施形態によるマイクロ流体支持系の模式図である。図４（ｂ）を参照すれば、マイクロ流体支持系は、ポンプ制御のための制御部１００（例えばコンピュータ）、ポンプ２００（例えば蠕動ポンプ）、気泡トラップ３００、培地貯留容器４００およびマイクロ流体デバイス５００のうち１つまたは複数を含んでいてよい。マイクロ流体支持系が、異なる種類の培地またはその他の流体用に複数の貯留容器４００を含んでいてよいことが理解されるであろう。
図４（ｃ）は、本発明の一部の実施形態によるマイクロ流体支持系の画像である。マイクロ流体支持系は、円筒形状を有しチューブを介してポンプに連絡する２つの培地貯留容器、ならびに長方形の形状を有しチューブを介して培地貯留容器およびポンプの両方に連絡するマイクロ流体デバイスを含み、閉ループ系を形成する。
３．使用方法
本明細書に記載される肺オルガノイドは、化合物もしくはワクチンスクリーニング（例えば、有効性、毒性、またはその他の代謝もしくは生理的活性についてのスクリーニング）、または肺感染症もしくは疾患（例えば、慢性閉塞性肺疾患（ＣＯＰＤ））の治療（治療に対する抵抗性を含む）についての、生きた動物による実験の代替として使用可能である。急性治療試験では、化合物またはワクチンを例えば数時間に１回適用することができる。慢性治療試験では、化合物またはワクチンを例えば数日～１週間適用することができる。このような試験は、本明細書に記載される肺オルガノイド製品を、その製品の構成細胞を生きたまま維持する条件下（例えば、酸素添加した培養培地）で用意し、試験する化合物（例えば薬物候補）を、（例えば、上皮層への局所適用または気体適用により）肺オルガノイドに適用し、次いで生理応答（例えば、損傷、瘢痕組織形成、感染症、細胞増加、熱傷、細胞死、ヒスタミン放出、サイトカイン放出などのマーカー放出、遺伝子発現変化など）を検出することによって実施可能であり、このような生理応答の存在によって、前記化合物またはワクチンが、哺乳動物対象の肺に吸い込まれるかその他の方法で送達された場合に治療有効性、毒性、またはその他の代謝もしくは生理的活性を有することが示される。対照化合物（例えば、生理食塩水、化合物溶媒または担体）が適用されうる肺オルガノイドの対照試料を同様の条件下で維持することができ、その結果比較結果を得るか、過去データとの比較または薄いレベルの試験化合物の適用により得られるデータとの比較などに基づいて損傷を決定することができる。
肺オルガノイドは上皮細胞層および内皮細胞層の両方を含むため、本明細書に記載される肺オルガノイドが薬物送達について研究するための優れた手段となりうることが理解されるであろう。肺オルガノイドの内皮細胞層を液体（例えば培地）に曝露することができ、内皮細胞層を通過する物質を制御する成熟血管バリアとして機能させることができる。肺オルガノイドの上皮細胞層を気体（例えば空気）に曝露することができ、それによりエアロゾルで送達される物質に曝露することができる。一部の実施形態で、上皮細胞層は線毛を含んでいてよい。
試験化合物が免疫学的活性を有するかどうかを決定する方法には、細胞による免疫グロブリン生成、ケモカイン生成およびサイトカイン生成についての試験が含まれうる。
４．デバイスの保存および運送
一旦産生されると、上記のデバイスは速やかに使用するか、保存および／または輸送用に調製することができる。
デバイスを保存および輸送するため、室温（例えば２５℃）では流動性の液体であるが冷蔵温度（例えば４℃）ではゲル化または凝固する、水と混合されたゼラチンなどの一時的な保護支持培地をデバイスに添加して、チャンバー、および好ましくは任意の関連する導管も実質的にまたは完全に満たすことができる。任意の入口および出口を、適切な被覆部品（例えば栓）または被覆物質（例えばワックス）で被覆することができる。次いでデバイスを冷却部品（例えば、氷、ドライアイス、熱電冷却装置など）とともにパッケージングしてよく、全てを（好ましくは断熱された）パッケージ中に配置することができる。
一部の実施形態で、デバイスを保存および輸送するため、冷却温度（例えば４℃）では流動性の液体であるが室温（例えば２０℃）または体温（例えば３７℃）などの暖かい温度ではゲル化または凝固する、ポリ（Ｎ－イソプロピルアクリルアミド）およびポリ（エチレングリコール）のブロックコポリマーなどの一時的な保護支持培地をデバイスに添加して、チャンバー、および好ましくは任意の関連する導管も実質的にまたは完全に満たすことができる。
受け取ったら、エンドユーザーは関連するパッケージおよび冷却部品からデバイスを取り出すだけでよく、（一時的な保護支持培地の選択に応じて）温度を上昇または下降させることができ、任意の口の被覆を外すことができ、シリンジで（例えば、増殖培地で洗い流すことにより）一時的な保護支持培地を除去することができる。
本発明は、以下の非限定的な実施例でより詳細に説明される。
ヒト気道組織を複製するための順序および比でポリエステル膜において層にした、正常なヒト上気道に見られる初代正常ヒト気管支上皮（ＮＨＢＥ）細胞、初代ヒト肺線維芽細胞およびヒト内皮細胞（ＨＵＶＥＣ）を使用して、気道オルガノイドを構築した。
１．肺オルガノイドの構築
ポリエステル膜（Ｃｏｒｎｉｎｇ（登録商標）Ｃｏｓｔａｒ（登録商標）Ｓｎａｐｗｅｌｌ（商標）細胞培養インサート、１２ｍｍで孔０．４μｍ、孔密度４ｘ１０６孔／ｃｍ２、ポリエステル膜、ＴＣ処理済み、滅菌済み）の各側面をコラーゲンＩＶ１５０μｌ（Ｓｉｇｍａ Ｃ７５２１）でコーティングし、バイオセーフティフードで一晩（フード開放および送風機オン）放置した。翌朝、膜を３０分間ＵＶ滅菌した。
ＨＵＶＥＣ（内皮細胞）（Ｃｅｌｌ ａｎｄ Ｖｉｒａｌ Ｖｅｃｔｏｒ Ｃｏｒｅ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ、Ｗａｋｅ Ｆｏｒｅｓｔ Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ）２５０，０００個を膜の下面に播種し、細胞を付着させるため最大４時間静置した。次いで６ウェルプレートのウェル中に、ＥＧＭ－１０ ２ｍｌとともに膜を配置した。
ＨＡＬＦ（ヒト成人肺線維芽細胞、ドナーから単離）２５０，０００個を膜上面に播種し、ＤＭＥＭ－Ｆ１２ １：１（Ｈｙｃｌｏｎｅ ＳＨ３０２６１．０１）２００μｌで覆った。
５～７日後、ＮＨＢＥ細胞（上皮細胞）（Ｌｏｎｚａ Ｃａｔ＃ＣＣ２５４０）２５０，０００細胞の層を線維芽細胞層の上に樹立し、ＢＥＧＭ（Ｃｌｏｎｅｔｉｃｓ ＣＣ４１７５）２００μｌで覆った。
培地交換：ＥＧＭ１０およびＢＥＧＭ－２日毎に１回；ＤＭＥＭ－３～４日毎に１回、細胞に触ることなく（ＨＡＬＦおよびＮＨＢＥの場合は）トランズウェルの上部から培地１００μｌを注意深くピペットで除き、同量の新しい培地で置き換える。
初代細胞の型をＰＣＲおよびフローサイトメトリーにより特徴付け、Ｖｙｂｒａｎｔ（登録商標）Ｍｕｌｔｉｃｏｌｏｒ Ｃｅｌｌ－Ｌａｂｅｌｉｎｇ Ｋｉｔ Ｖ－２２８８９（画像化のための細胞の標識に使用）を使用して正常な細胞表現型であることを実証した。ｐ６３－α（Ｄ２Ｋ８Ｘ）ＸＰ（登録商標）ウサギｍＡｂ＃１３１０９、抗ダイニン中鎖１抗体［７４．１］（ａｂ２３９０５）および抗ムチン５ＡＣ抗体［４５Ｍ１］（ａｂ３６４９）を、フローサイトメトリーによるＮＨＢＥの特性決定に使用した。
マイクロ流体デバイスを使用して、膜の両側面に培地の生理的流動を与えるか、あるいは下面のみに与えて上側の膜で樹立される空気－液体界面を産生した。
経上皮抵抗、毒素およびサイトカインのレベルを分析し、蛍光顕微鏡により画像化することで、このモデルにおける百日咳菌の病因を研究した。
２．結果および考察
細胞の特性決定：初代肺線維芽細胞は継代の間、線維芽細胞特異的なマーカーの発現を維持し、ＮＨＢＥ細胞は培養中、基底細胞、杯細胞、線毛細胞およびクララ細胞に対するマーカーの発現を維持した。
ｖｏｎ Ｗｉｌｌｅｂｒａｎｄ因子／第ＶＩＩＩ因子、サイトケラチン１８および１９、ならびにアルファ平滑筋アクチンの発現について、正常なヒト肺線維芽細胞を試験する。肺毛細血管内皮細胞は、ＣＤ３１／１０５、ｖｏｎ Ｗｉｌｌｅｂｒａｎｄ因子、およびＰＥＣＡＭを発現する。ヒト初代肺上皮細胞は、基底細胞（ｐ６３＋ ＫＲＴ５＋）、線毛細胞（Ｆｏｘｊ１＋ Ｓｏｘ１７＋）、クララ細胞（Ｓｃｇｂ１Ａ１＋）粘膜細胞（Ｍｕｃ５ａｃ＋）数およびＣＦＴＲ＋上皮細胞に対するマーカーを発現する。
オルガノイド形成：気道オルガノイドの細胞を蛍光標識すると、細胞が、内皮脈管構造、間質成分および極性化した上皮単層を示す明確な細胞層を形成していることが実証された。ＴＥＭおよび組織学的イメージングにより、多層上気道オルガノイド構築物の形成が確認された。
マイクロ流体系における細胞の維持：マイクロ流体系で維持された気道オルガノイドは生存可能なままであり、百日咳菌の病因の非侵襲性分析を促進した。
結論
複数の初代気道細胞型を組み合わせて機能性の上気道オルガノイドを生成した。この生物工学によるオルガノイド系は、ヒト疾患についての研究、毒性研究ならびに薬物およびワクチン開発の実施に有用である。
上記は本発明を例示するものであり、これを限定するものとして解釈されるべきではない。本発明は以下の特許請求の範囲で規定され、特許請求の範囲の同等物がそこに含まれるものとする。

Claims (6)

  1. （ａ）哺乳動物肺上皮細胞を含む上皮細胞層、
    （ｂ）哺乳動物肺線維芽細胞を含む間質細胞層、および
    （ｃ）哺乳動物内皮細胞を含む内皮細胞層
    を含む人工哺乳動物肺オルガノイドであって、
    任意選択的に、前記オルガノイドが前記上皮細胞層と前記間質細胞層の間および／または前記間質細胞層と前記内皮細胞層の間に多孔質膜をさらに含み、
    前記多孔質膜の少なくとも１つの側面が、肺組織由来の細胞外マトリックス組成物でコーティングされている、人工哺乳動物肺オルガノイドを調製する方法であって、
    前記多孔質膜の第１の側面に、前記哺乳動物内皮細胞を含む前記内皮細胞層を堆積させるステップ、
    前記多孔質膜の前記第１の側面の反対側である前記多孔質膜の第２の側面に、前記哺乳動物肺線維芽細胞を含む前記間質細胞層を堆積させるステップ、および
    前記間質細胞層に直接、前記哺乳動物肺上皮細胞を含む前記上皮細胞層を堆積させるステップ
    を含む、方法。
  2. 前記堆積させるステップが、広げる、塗る、コーティングする、プリントする、バイオプリントする、および／または噴霧することにより実施される、請求項１に記載の方法。
  3. （ａ）哺乳動物肺上皮細胞を含む上皮細胞層、
    （ｂ）哺乳動物肺線維芽細胞を含む間質細胞層、および
    （ｃ）哺乳動物内皮細胞を含む内皮細胞層
    を含む人工哺乳動物肺オルガノイドであって、
    任意選択的に、前記オルガノイドが前記上皮細胞層と前記間質細胞層の間および／または前記間質細胞層と前記内皮細胞層の間に多孔質膜をさらに含み、
    前記多孔質膜の少なくとも１つの側面が、肺組織由来の細胞外マトリックス組成物でコーティングされている、人工哺乳動物肺オルガノイドを調製する方法であって、
    前記哺乳動物肺線維芽細胞を含むヒドロゲルを用意するステップ、
    前記ヒドロゲルの第１の側面に、前記哺乳動物内皮細胞を含む前記内皮細胞層を堆積させるステップ、および
    前記ヒドロゲルの前記第１の側面の反対側である前記ヒドロゲルの第２の側面に、前記哺乳動物肺上皮細胞を含む前記上皮細胞層を堆積させるステップ
    を含む、方法。
  4. 前記堆積させるステップが、広げる、塗る、コーティングする、プリントする、バイオプリントする、および／または噴霧することにより実施される、請求項３に記載の方法。
  5. 前記ヒドロゲルが架橋結合している、請求項３または４に記載の方法。
  6. 前記ヒドロゲルが、ゼラチン、フィブリノーゲン、ジェランガム、プルロニック（ポロクサマー）、アルギン酸、キトサン、ヒアルロン酸、セルロースおよび／またはコラーゲンを含む、請求項３から５のいずれか１項に記載の方法。
JP2018519447A 2015-10-16 2016-10-14 多層気道オルガノイドならびにそれを調製および使用する方法 Active JP7011828B2 (ja)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US201562242611P 2015-10-16 2015-10-16
US62/242,611 2015-10-16
US201662404931P 2016-10-06 2016-10-06
US62/404,931 2016-10-06
PCT/US2016/056947 WO2017066507A1 (en) 2015-10-16 2016-10-14 Multi-layer airway organoids and methods of making and using the same

Publications (2)

Publication Number Publication Date
JP2018531603A JP2018531603A (ja) 2018-11-01
JP7011828B2 true JP7011828B2 (ja) 2022-01-27

Family

ID=58517914

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
JP2018519447A Active JP7011828B2 (ja) 2015-10-16 2016-10-14 多層気道オルガノイドならびにそれを調製および使用する方法

Country Status (7)

Country Link
US (2) US11001811B2 (ja)
EP (1) EP3362554B1 (ja)
JP (1) JP7011828B2 (ja)
KR (1) KR102886924B1 (ja)
AU (1) AU2016339998B2 (ja)
CA (1) CA3001342A1 (ja)
WO (1) WO2017066507A1 (ja)

Families Citing this family (43)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US9719068B2 (en) 2010-05-06 2017-08-01 Children's Hospital Medical Center Methods and systems for converting precursor cells into intestinal tissues through directed differentiation
US10174289B2 (en) 2014-05-28 2019-01-08 Children's Hospital Medical Center Methods and systems for converting precursor cells into gastric tissues through directed differentiation
US11584916B2 (en) 2014-10-17 2023-02-21 Children's Hospital Medical Center Method of making in vivo human small intestine organoids from pluripotent stem cells
NL2016404B1 (en) * 2016-03-09 2017-09-26 Mimetas B V Double tubular structures.
CA3016641A1 (en) 2016-05-05 2017-11-09 Children's Hospital Medical Center Methods for the in vitro manufacture of gastric fundus tissue and compositions related to same
AU2017342467B2 (en) 2016-10-14 2024-03-28 Wake Forest University Health Sciences Compositions, cell constructs, and methods of making and using the same
WO2018081425A1 (en) 2016-10-26 2018-05-03 Wake Forest University Health Sciences Hydrogen-bonding compounds, compositions comprising the same, and methods of preparing and using the same
KR102546194B1 (ko) 2016-11-04 2023-06-21 칠드런즈 호스피탈 메디칼 센터 간 유사 장기 조성물 및 이를 제조 및 사용하는 방법
WO2018106628A1 (en) 2016-12-05 2018-06-14 Children's Hospital Medical Center Colonic organoids and methods of making and using same
US11612676B2 (en) * 2017-01-31 2023-03-28 The Trustees Of The Stevens Institute Of Technology Tissue-derived scaffolding materials and method for tissue formation
WO2018191673A1 (en) 2017-04-14 2018-10-18 Children's Hospital Medical Center Multi donor stem cell compositions and methods of making same
WO2018217882A1 (en) * 2017-05-23 2018-11-29 EMULATE, Inc. Advanced pulmonary models
DE102017217738B3 (de) * 2017-10-05 2018-10-04 Eberhard Karls Universität Tübingen Mikrophysiologische Organoidkultur
EP3694603A4 (en) 2017-10-10 2021-07-14 Children's Hospital Medical Center ESOPHAGUS TISSUE AND / OR ORGANOID COMPOSITIONS AND METHOD FOR MANUFACTURING THEREOF
US11629329B2 (en) 2017-10-11 2023-04-18 Wake Forest University Health Sciences Bioink compositions and methods of preparing and using the same
WO2019126626A1 (en) 2017-12-21 2019-06-27 Children's Hospital Medical Center Digitalized human organoids and methods of using same
KR102036843B1 (ko) * 2018-01-19 2019-10-25 제주대학교 산학협력단 폐 모방 칩 및 이의 제조방법
CA3089127A1 (en) 2018-02-02 2019-08-08 Wake Forest University Health Sciences Organoids related to immunotherapy and methods of preparing and using the same
EP3775162B1 (en) * 2018-06-02 2025-08-06 The University of Hong Kong Mature airway organoids, methods of making and uses thereof
US12282013B2 (en) * 2018-06-20 2025-04-22 Novoheart International Limited Ex vivo methods of screening for, and characterizing, cardiac therapeutics using preloaded cardiac tissues
WO2020023245A1 (en) 2018-07-26 2020-01-30 Children's Hospital Medical Center Hepato-biliary-pancreatic tissues and methods of making same
US11993785B2 (en) 2018-08-07 2024-05-28 Wake Forest University Health Sciences Immersion deposition methods and compositions for use in the same
US11213608B2 (en) 2018-08-14 2022-01-04 Wake Forest University Health Sciences Compositions including gelatin nanoparticles and methods of use thereof
SG11202102431YA (en) 2018-09-12 2021-04-29 Childrens Hospital Med Ct Organoid compositions for the production of hematopoietic stem cells and derivatives thereof
CN109294949B (zh) * 2018-10-11 2021-03-26 浙江理工大学 结冷胶裂解酶产生菌及其用途
DE102018221838B3 (de) * 2018-12-14 2020-01-09 Fraunhofer-Gesellschaft zur Förderung der angewandten Forschung e.V. Mikrophysiologisches Choroidea-Modell
EP3976066A4 (en) 2019-05-31 2023-06-28 Children's Hospital Medical Center Methods of generating and expanding hematopoietic stem cells
CA3141814A1 (en) 2019-05-31 2020-12-03 Children's Hospital Medical Center Shaped organoid compositions and methods of making same
US20210062157A1 (en) * 2019-08-27 2021-03-04 United Therapeutics Corporation Methods and compositions for culturing alveolar cells
KR102354778B1 (ko) * 2019-09-30 2022-01-24 서울대학교병원 폐 조직 모사 미세유체 시스템
KR102403466B1 (ko) 2019-10-16 2022-05-30 가톨릭대학교 산학협력단 사람 호흡기 점막 조직 및 점막 조직 유래 세포로부터 호흡기 오가노이드를 제조하는 방법
CN111471643B (zh) * 2020-04-09 2020-12-29 创芯国际生物科技(广州)有限公司 一种通用型上呼吸道粘膜类器官的培养基及培养方法
JP7795743B2 (ja) * 2020-05-25 2026-01-08 国立大学法人京都大学 呼吸器オルガノイドの製造方法
US20220145265A1 (en) * 2020-11-09 2022-05-12 University Of Kentucky Research Foundation In vitro equine model systems and their integration into horse-on-a-chip platform
KR102779511B1 (ko) * 2020-11-27 2025-03-13 가톨릭대학교 산학협력단 호흡기도 조직 유래 dECM을 이용한 호흡기도 오가노이드 제작 방법
CA3203588A1 (en) * 2020-11-30 2022-06-02 Trustees Of Tufts College Engineered multicellular organisms
US20240174962A1 (en) * 2021-03-24 2024-05-30 Unist(Ulsan National Institute Of Science And Technology) Functional membrane and microfluidic chip comprising same and method for manufacturing same
AU2022270167A1 (en) * 2021-05-06 2023-11-30 Lung Biotechnology Pbc Microphysiological 3-d printing and its applications
WO2022236116A1 (en) 2021-05-06 2022-11-10 Lung Biotechnology Pbc Modified 3d-printed objects and their uses
KR102839557B1 (ko) * 2022-07-27 2025-07-29 재단법인 아산사회복지재단 세포 배양 바이오리액터
WO2024227257A1 (en) * 2023-05-04 2024-11-07 The Royal Institution For The Advancement Of Learning/Mcgill University Lung organoid for high throughput drug screening
GB202306769D0 (en) * 2023-05-09 2023-06-21 Cellesce Ltd Composition
WO2025122436A1 (en) * 2023-12-05 2025-06-12 Board Of Trustees Of The University Of Arkansas Dynamic multilayered organ-on-chip (dynamoc) for the comprehensive simulation of organ pathophysiology

Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006174837A (ja) 2004-12-23 2006-07-06 Samsung Electronics Co Ltd 呼吸器疾患と関連した１０種のバクテリアに特異的なプライマーセット及びプローブオリゴヌクレオチド
US20140147482A1 (en) 2007-07-16 2014-05-29 Sanofi Pasteur Vaxdesign Corporation Artificial tissue constructs comprising alveolar cells and methods for using the same
US20140335496A1 (en) 2011-12-05 2014-11-13 Research Triangle Institute Human conducting airway model comprising multiple fluidic pathways
JP2014531204A (ja) 2011-09-12 2014-11-27 オルガノボ，インク． インビトロでの研究使用のための操作した組織、そのアレイ、およびその製造方法
WO2015138034A2 (en) 2013-12-20 2015-09-17 President And Fellows Of Harvard College Low shear microfluidic devices and methods of use and manufacturing thereof

Family Cites Families (11)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5695996A (en) 1994-09-23 1997-12-09 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Artificial organ culture system
US7051654B2 (en) 2003-05-30 2006-05-30 Clemson University Ink-jet printing of viable cells
US20090227025A1 (en) 2003-06-06 2009-09-10 The Board Of Regents Of The University Of Texas System Ex vivo human lung/immune system model using tissue engineering for studying microbial pathogens with lung tropism
US20090208466A1 (en) 2006-04-21 2009-08-20 James Yoo Ink-jet printing of tissues
US8338114B1 (en) 2007-04-19 2012-12-25 The United States Of America As Represented By The Administrator Of The National Aeronautics And Space Administration Engineered human broncho-epithelial tissue-like assemblies
US20120089238A1 (en) 2010-10-06 2012-04-12 Hyun-Wook Kang Integrated organ and tissue printing methods, system and apparatus
HUE029316T2 (en) * 2010-11-04 2017-03-28 Univ Of Pecs Lung tissue model
US9938502B2 (en) 2010-11-10 2018-04-10 Wake Forest University Health Sciences Tissue-specific extracellular matrix with or without tissue protein components for cell culture
KR102117921B1 (ko) 2011-02-28 2020-06-03 프레지던트 앤드 펠로우즈 오브 하바드 칼리지 세포 배양 시스템
AU2014364368A1 (en) 2013-12-20 2016-07-07 Bio-Ess Laboratories, Llc Media for cell culture
AU2015336283B2 (en) 2014-10-24 2019-10-24 Wake Forest University Health Sciences Tissue-mimicking hydrogel compositions for biofabrication

Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2006174837A (ja) 2004-12-23 2006-07-06 Samsung Electronics Co Ltd 呼吸器疾患と関連した１０種のバクテリアに特異的なプライマーセット及びプローブオリゴヌクレオチド
US20140147482A1 (en) 2007-07-16 2014-05-29 Sanofi Pasteur Vaxdesign Corporation Artificial tissue constructs comprising alveolar cells and methods for using the same
JP2014531204A (ja) 2011-09-12 2014-11-27 オルガノボ，インク． インビトロでの研究使用のための操作した組織、そのアレイ、およびその製造方法
US20140335496A1 (en) 2011-12-05 2014-11-13 Research Triangle Institute Human conducting airway model comprising multiple fluidic pathways
WO2015138034A2 (en) 2013-12-20 2015-09-17 President And Fellows Of Harvard College Low shear microfluidic devices and methods of use and manufacturing thereof

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Acta Biomaterialia (2015), Vol.25, p.24-34
Lab On A Chip (2014), Vol.14, No.17, p.3349-3358

Also Published As

Publication number Publication date
CA3001342A1 (en) 2017-04-20
WO2017066507A1 (en) 2017-04-20
US20180291350A1 (en) 2018-10-11
US12391926B2 (en) 2025-08-19
US20210222131A1 (en) 2021-07-22
EP3362554A4 (en) 2019-03-27
US11001811B2 (en) 2021-05-11
EP3362554A1 (en) 2018-08-22
KR20180068994A (ko) 2018-06-22
JP2018531603A (ja) 2018-11-01
AU2016339998B2 (en) 2022-04-07
EP3362554B1 (en) 2025-09-03
KR102886924B1 (ko) 2025-11-17
AU2016339998A1 (en) 2018-04-26

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7011828B2 (ja) 多層気道オルガノイドならびにそれを調製および使用する方法
JP6873985B2 (ja) インビトロで肝臓構築物を産生する方法およびその使用
EP2639293B1 (en) Cell culture chamber, method for producing same, tissue model using cell culture chamber, and method for producing same
Doryab et al. Advances in pulmonary therapy and drug development: Lung tissue engineering to lung-on-a-chip
Lewis et al. Directing the growth and alignment of biliary epithelium within extracellular matrix hydrogels
Yang et al. Flourishing tumor organoids: History, emerging technology, and application
Moreira et al. Advanced in vitro lung models for drug and toxicity screening: the promising role of induced pluripotent stem cells
NL2011895C2 (en) Fluidic device and perfusion system for in vitro tissue reconstruction.
JP2019524124A (ja) 血液脳関門モデルならびにそれを作製する方法および使用する方法
KR20170090519A (ko) 조작된 간 조직, 그의 어레이, 및 그의 제조 방법
JP7117245B2 (ja) 二重管状構造体
JP6292323B2 (ja) ポリイミド多孔質膜を用いる細胞の長期培養、及びポリイミド多孔質膜を用いる細胞の凍結保存方法
JP7061356B2 (ja) 培養装置、２種類以上の細胞構造体を構築する方法及びオンチップ臓器デバイス
Pereira et al. The third dimension: new developments in cell culture models for colorectal research
US20210341462A1 (en) Artificial human pulmonary airway and methods of preparation
JP2009521907A (ja) 細胞および組織の培養のためのバイオリアクター
Wu et al. Engineering a cell home for stem cell homing and accommodation
US20160123960A1 (en) Method for preparing three-dimensional, organotypic cell cultures and uses thereof
JPWO2005014774A1 (ja) 動物細胞の培養担体と、該培養担体を用いた動物細胞の培養方法および移植方法
JP6425420B2 (ja) 細胞培養チャンバーとその製造方法、細胞培養チャンバーを利用した細胞培養方法および細胞培養キット
Cryan et al. 3D models as tools for inhaled drug development
Coburn Evaluating the Impact of Particulate Matter on the Vocal Fold Mucosa via a Novel Vocal Fold On-a-Chip
Mazzaglia Development of a hydrogel-based microfluidic model of the lymph node
Shingwekar Development of a Nanoinjector System for Controlled Deposition of Cell-Laden Hydrogels

Legal Events

Date Code Title Description
A621 Written request for application examination

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A621

Effective date: 20191010

A977 Report on retrieval

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A971007

Effective date: 20200630

A131 Notification of reasons for refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A131

Effective date: 20200901

A601 Written request for extension of time

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A601

Effective date: 20201201

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20210201

A02 Decision of refusal

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A02

Effective date: 20210604

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A523

Effective date: 20211004

C60 Trial request (containing other claim documents, opposition documents)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: C60

Effective date: 20211004

A521 Request for written amendment filed

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A821

Effective date: 20211004

A911 Transfer to examiner for re-examination before appeal (zenchi)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A911

Effective date: 20211101

C21 Notice of transfer of a case for reconsideration by examiners before appeal proceedings

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: C21

Effective date: 20211104

TRDD Decision of grant or rejection written
A01 Written decision to grant a patent or to grant a registration (utility model)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A01

Effective date: 20211210

A61 First payment of annual fees (during grant procedure)

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: A61

Effective date: 20220107

R150 Certificate of patent or registration of utility model

Ref document number: 7011828

Country of ref document: JP

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R150

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250

R250 Receipt of annual fees

Free format text: JAPANESE INTERMEDIATE CODE: R250