JP6525282B2 - 骨分化能を有する脂肪由来幹細胞シート及びその作製方法 - Google Patents
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Description
本願発明は、幹細胞の分化誘導の技術分野に関する。具体的には、本発明は、脂肪由来幹細胞から骨分化能を有する脂肪由来幹細胞シートを作製する方法、及び該方法で得られた脂肪由来幹細胞シートに関する。
なお、本出願は、参照によりここに援用されるところの、日本国特許出願の特願2014-038913からの優先権を請求する。
なお、本出願は、参照によりここに援用されるところの、日本国特許出願の特願2014-038913からの優先権を請求する。
（再生医療）
近年、再生医療が注目され、整形外科分野でも、骨再生を目的とした再生医療が実施されている。幹細胞を骨形成系列に分化させ、続いて骨再生に使用することは再生医療における主要な目標である。再生医療分野において、重要な３つのファクターである細胞、制御因子及び足場｛以下、スキャホールド（scaffolds）という。｝が、その地位を確立してきている（非特許文献１）。
骨髄間質細胞（bone marrow stromal cells；ＢＭＳＣｓ）が骨再生に関して注目されており（非特許文献２）、そして胚性幹細胞（ＥＳＣｓ）が、再生幹細胞の材料でもあることから、次第に注目を集めている（非特許文献３）。人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣｓ）もまた、再生医療分野で注目を浴びており、再生幹細胞の有望な材料の１つと考えられている（非特許文献４）。
近年、再生医療が注目され、整形外科分野でも、骨再生を目的とした再生医療が実施されている。幹細胞を骨形成系列に分化させ、続いて骨再生に使用することは再生医療における主要な目標である。再生医療分野において、重要な３つのファクターである細胞、制御因子及び足場｛以下、スキャホールド（scaffolds）という。｝が、その地位を確立してきている（非特許文献１）。
骨髄間質細胞（bone marrow stromal cells；ＢＭＳＣｓ）が骨再生に関して注目されており（非特許文献２）、そして胚性幹細胞（ＥＳＣｓ）が、再生幹細胞の材料でもあることから、次第に注目を集めている（非特許文献３）。人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣｓ）もまた、再生医療分野で注目を浴びており、再生幹細胞の有望な材料の１つと考えられている（非特許文献４）。
（骨芽細胞）
骨形成においては骨芽細胞が重要な役割を果たしている。骨芽細胞は、骨組織において骨形成を行う細胞であり、タンパク質等を産生及び分泌して骨基質をつくる。具体的には、骨芽細胞は、生体内でコラーゲン等の基質タンパク質を分泌し、そこに基質小胞（matrix vesicle）を作る。この基質小胞の周囲にリン酸カルシウムが沈着して骨の基質が完成し、骨芽細胞は最終的にはこの基質の中で骨細胞となる。
骨形成においては骨芽細胞が重要な役割を果たしている。骨芽細胞は、骨組織において骨形成を行う細胞であり、タンパク質等を産生及び分泌して骨基質をつくる。具体的には、骨芽細胞は、生体内でコラーゲン等の基質タンパク質を分泌し、そこに基質小胞（matrix vesicle）を作る。この基質小胞の周囲にリン酸カルシウムが沈着して骨の基質が完成し、骨芽細胞は最終的にはこの基質の中で骨細胞となる。
骨芽細胞は、間葉系幹細胞から分化するものであり、間葉系幹細胞にデキサメタゾン、β−グリセロリン酸、及びアスコルビン酸を作用させることにより分化誘導できることが開示されている（非特許文献５）。また、インビトロにおいて多能性幹細胞から分化させた間葉系幹細胞を、骨形成タンパク質（Bone Morphogenetic Protein；ＢＭＰ）−４、アスコルビン酸−２−リン酸塩、デキサメタゾン及びβ−グリセロリン酸塩を含む培養培地を使用して、ゼラチンでコートした培養プレートで培養することにより、骨芽細胞に分化誘導できたことが開示されている（特許文献１）。
（脂肪由来幹細胞）
間葉系幹細胞の１つとして認められている脂肪由来幹細胞（adipose-derived stem cell；以下、ＡＤＳＣｓと略称することがある）も、ＢＭＳＣｓ、ＥＳＣｓ及びｉＰＳＣｓに加えて、骨再生医療における使用が検討されている（非特許文献６）。損傷を受けた組織及び臓器の修復及び再建へのＡＤＳＣｓの利用にはいくつかの選択肢がある。
間葉系幹細胞の１つとして認められている脂肪由来幹細胞（adipose-derived stem cell；以下、ＡＤＳＣｓと略称することがある）も、ＢＭＳＣｓ、ＥＳＣｓ及びｉＰＳＣｓに加えて、骨再生医療における使用が検討されている（非特許文献６）。損傷を受けた組織及び臓器の修復及び再建へのＡＤＳＣｓの利用にはいくつかの選択肢がある。
修復部位へＡＤＳＣｓを直接注入する方法（非特許文献７−１０）が知られている。また、ＡＤＳＣｓをフィブリン糊などの生物学的接着剤に混ぜて修復部位に注入する方法が知られている。しかしながら、これら方法では皮質骨表面への細胞の生着や固定が困難であった。最近、壊死した大腿骨骨頭へのＡＤＳＣｓ注入に関する良好な報告があった（非特許文献８）。それによれば、ＡＤＳＣｓを注入された大腿骨骨頭壊死例において、有望な骨形成が核磁気共鳴画像法（ＭＲＩ）による検査により観察された。しかしながら、ＡＤＳＣｓを皮質骨に固定させることは未だに困難である。
また、ＡＤＳＣｓを様々な担体と共に移植する方法が知られている。心血管疾患における幹細胞治療において、天然の生物分解性マトリクス（biodegradable matrixes）で構成されたスキャホールドを使用することにより、該治療の大きな制約であった細胞生着の不足を回避することができた（非特許文献１１）。しかしながら、この様な方法によっても、細胞を移植部位に確実に固定することは困難であり、細胞が経時的に脱落する問題があった。
一方、個々の分散状態にあるＡＤＳＣｓ（以下、分散ＡＤＳＣｓということがある）がシート状を形成してなるＡＤＳＣｓシートが、心血管分野及び形成外科分野において、組織再生に一定の成果を挙げていることが報告されている（非特許文献１２−２１）。
現在利用できるＡＤＳＣｓシートは、大まかに２種類に分けることができ、一方は、CellSeed社の製品などのような特別な担体を支持体とするＡＤＳＣｓシート（非特許文献１９−２３）であり、もう一方は、コラーゲンタンパク質担体と共に移植部位に移植するＡＤＳＣｓシートである（非特許文献１１、２４）。
現在利用できるＡＤＳＣｓシートは、大まかに２種類に分けることができ、一方は、CellSeed社の製品などのような特別な担体を支持体とするＡＤＳＣｓシート（非特許文献１９−２３）であり、もう一方は、コラーゲンタンパク質担体と共に移植部位に移植するＡＤＳＣｓシートである（非特許文献１１、２４）。
（細胞シート）
細胞シートの製造方法は、様々な報告がある。例えば、軟骨細胞、軟骨前駆細胞、滑膜由来細胞、滑膜幹細胞、骨芽細胞、間葉系幹細胞、脂肪由来細胞、又は脂肪由来幹細胞を、支持体や担体上で培養することにより製造する方法が報告されている（特許文献２、３）。また、間葉系幹細胞、滑膜細胞、及び胚性幹細胞から選択される細胞を細胞培養支持体上で培養して、該培養した細胞を、シート状三次元構造体として作製する方法が報告されている（特許文献４）。さらに、脂肪細胞を含有する細胞シートを含む心臓疾患治療用移植材料を製造する方法であって、ａ）温度応答性高分子が被覆された細胞培養支持体上で、脂肪細胞を含有する細胞群を培養液中で培養する工程、ｂ）培養液の温度を、上限臨界溶解温度以上又は下限臨界溶解温度以下とする工程、ｃ）細胞群を、細胞培養支持体から細胞シートとして剥離する工程、さらに工程ｃ）の前にｄ）培養液にアスコルビン酸又はその誘導体を加える工程を含む方法が開示されている（特許文献５）。
細胞シートの製造方法は、様々な報告がある。例えば、軟骨細胞、軟骨前駆細胞、滑膜由来細胞、滑膜幹細胞、骨芽細胞、間葉系幹細胞、脂肪由来細胞、又は脂肪由来幹細胞を、支持体や担体上で培養することにより製造する方法が報告されている（特許文献２、３）。また、間葉系幹細胞、滑膜細胞、及び胚性幹細胞から選択される細胞を細胞培養支持体上で培養して、該培養した細胞を、シート状三次元構造体として作製する方法が報告されている（特許文献４）。さらに、脂肪細胞を含有する細胞シートを含む心臓疾患治療用移植材料を製造する方法であって、ａ）温度応答性高分子が被覆された細胞培養支持体上で、脂肪細胞を含有する細胞群を培養液中で培養する工程、ｂ）培養液の温度を、上限臨界溶解温度以上又は下限臨界溶解温度以下とする工程、ｃ）細胞群を、細胞培養支持体から細胞シートとして剥離する工程、さらに工程ｃ）の前にｄ）培養液にアスコルビン酸又はその誘導体を加える工程を含む方法が開示されている（特許文献５）。
しかし、ＡＤＳＣｓシートの整形外科での使用を試みた例は報告されていない。本願発明者らは、骨塊を液体窒素中で凍結後に骨マトリクスを維持し、その後、それを元の位置に戻して固定する液体窒素療法を開発している（非特許文献２５−２７）。整形外科分野でのＡＤＳＣｓの応用は、分散ＡＤＳＣｓと他の物質、例えば標準生理食塩水、フィブリンゲル及びコラーゲンゲルなどとの混合物を海綿質骨に注入する（非特許文献８、２８）といった方法により行われているのみである。
また、ＡＤＳＣｓとβ型リン酸三カルシウム（β−ＴＣＰ）ベースの骨セメントスキャホールドとの併用が骨欠損に対して見込みがあるとの報告がある（非特許文献２９、３０）。
しかしながら、ＡＤＳＣｓは、整形外科分野においては、移植箇所で固定するためにフィブリン糊様の物質を構成成分とする混合物として使用されるため、そのような混合物に含まれるＡＤＳＣｓの濃度には制限がある。
また、ＡＤＳＣｓとβ型リン酸三カルシウム（β−ＴＣＰ）ベースの骨セメントスキャホールドとの併用が骨欠損に対して見込みがあるとの報告がある（非特許文献２９、３０）。
しかしながら、ＡＤＳＣｓは、整形外科分野においては、移植箇所で固定するためにフィブリン糊様の物質を構成成分とする混合物として使用されるため、そのような混合物に含まれるＡＤＳＣｓの濃度には制限がある。
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脂肪由来幹細胞（ＡＤＳＣｓ）がインビトロ及びインビボのいずれにおいても骨芽細胞に分化誘導される可能性を有することが報告されている。しかしながら、分散ＡＤＳＣｓを骨再生及び骨再建に使用することは今までのところ困難であった。
本発明の課題は、ＡＤＳＣｓを利用して、骨組織再生用材料となり得る細胞構築物を作製するための簡便で安価な方法、及び該方法により得られる骨形成能を有する細胞構築物を提供することである。
本発明者らは、上記目的を達成すべく、鋭意研究を行った。そして、細胞培養培地にアスコルビン酸−２−リン酸のみを添加することにより調製した作製培地（fabricating medium）で、ＡＤＳＣｓを培養することにより、ＡＤＳＣｓシートが作製されること、並びに、このようにして作製されたＡＤＳＣｓシートは、骨分化誘導を実施したときに、従来の細胞培養培地で培養したＡＤＳＣｓと比較して、短期間で有効に骨誘導されることを見出した。
また、このような方法で作製されたＡＤＳＣｓシートはその力学的強度が高く、骨損傷部位に移植したときに、骨表面への生着が良く、インビボでも有効に骨分化が誘導されると考えることができる。
以上により、本発明は、これら知見により達成したものである。
また、このような方法で作製されたＡＤＳＣｓシートはその力学的強度が高く、骨損傷部位に移植したときに、骨表面への生着が良く、インビボでも有効に骨分化が誘導されると考えることができる。
以上により、本発明は、これら知見により達成したものである。
即ち、本発明は以下に関する。
１．細胞分化誘導剤を含まない細胞培養培地にアスコルビン酸又はその塩を添加して調製した溶液を、スキャホールドを添加していない培養容器内に加え、該溶液中で、脂肪由来幹細胞を培養することを含む、骨分化能を有する脂肪由来幹細胞シートの作製方法。
２．前記アスコルビン酸又はその塩が、５０μＭ〜５００μＭの濃度になるように細胞培養培地に添加されることを特徴とする、前項１に記載の作製方法。
３．前記脂肪由来幹細胞を培養することが、脂肪由来幹細胞を３日〜１５日間培養することである、前項１又は２に記載の作製方法。
４．前記脂肪由来幹細胞シートが単層の脂肪由来幹細胞シートである、前項１〜３のいずれか１に記載の作製方法。
５．前項１〜４のいずれか１に記載の作製方法により製造された、骨分化能を有する脂肪幹細胞シート。
６．前項５に記載の脂肪幹細胞シートを、骨分化誘導剤を含む細胞培養培地中で培養することを含む、骨芽細胞を含む細胞シートの作製方法。
７．前項５に記載の骨分化能を有する脂肪幹細胞シート又は前項６に記載の作製方法により製造された骨芽細胞を含む細胞シートを含む骨組織再生用材料。
８．前記骨組織再生用材料は、スキャホールドを含まないことを特徴とする、前項７に記載の骨組織再生用材料。
１．細胞分化誘導剤を含まない細胞培養培地にアスコルビン酸又はその塩を添加して調製した溶液を、スキャホールドを添加していない培養容器内に加え、該溶液中で、脂肪由来幹細胞を培養することを含む、骨分化能を有する脂肪由来幹細胞シートの作製方法。
２．前記アスコルビン酸又はその塩が、５０μＭ〜５００μＭの濃度になるように細胞培養培地に添加されることを特徴とする、前項１に記載の作製方法。
３．前記脂肪由来幹細胞を培養することが、脂肪由来幹細胞を３日〜１５日間培養することである、前項１又は２に記載の作製方法。
４．前記脂肪由来幹細胞シートが単層の脂肪由来幹細胞シートである、前項１〜３のいずれか１に記載の作製方法。
５．前項１〜４のいずれか１に記載の作製方法により製造された、骨分化能を有する脂肪幹細胞シート。
６．前項５に記載の脂肪幹細胞シートを、骨分化誘導剤を含む細胞培養培地中で培養することを含む、骨芽細胞を含む細胞シートの作製方法。
７．前項５に記載の骨分化能を有する脂肪幹細胞シート又は前項６に記載の作製方法により製造された骨芽細胞を含む細胞シートを含む骨組織再生用材料。
８．前記骨組織再生用材料は、スキャホールドを含まないことを特徴とする、前項７に記載の骨組織再生用材料。
本発明によれば、通常の細胞培養培地にアスコルビン酸又はその塩のみを添加して調製した溶液中で、細胞培養支持体を用いずに、ＡＤＳＣｓを培養することを含む、骨分化能を有するＡＤＳＣｓシートの作製方法、並びに該作製方法により得られる、骨分化能を有するＡＤＳＣｓシートを提供できる。
本発明によれば、骨再生及び骨再建のための骨組織再生用材料として使用することができるＡＤＳＣｓシートを提供することができる。
本発明のＡＤＳＣｓシートは、分散ＡＤＳＣｓと比較して、骨形成能が高く、迅速に骨形成が可能である。
また、分散ＡＤＳＣｓは骨組織再生部位におけるその固定及び増殖のためにフィブリン糊等の固定用材料やスキャホールドと共に使用される必要があったが、本発明のＡＤＳＣｓシートは、スキャホールドと共に使用してもよいが、その力学的強度が高いため、それら自身のみで移植部分に接着することができる。このように、ＡＤＳＣｓシートは骨分化能を有する細胞を含み、またそれ自身単独で修復部位に固定され得るため、骨組織再生用材料として、分散ＡＤＳＣｓと比較してより有用である。
本発明のＡＤＳＣｓシートは、分散ＡＤＳＣｓと比較して、骨形成能が高く、迅速に骨形成が可能である。
また、分散ＡＤＳＣｓは骨組織再生部位におけるその固定及び増殖のためにフィブリン糊等の固定用材料やスキャホールドと共に使用される必要があったが、本発明のＡＤＳＣｓシートは、スキャホールドと共に使用してもよいが、その力学的強度が高いため、それら自身のみで移植部分に接着することができる。このように、ＡＤＳＣｓシートは骨分化能を有する細胞を含み、またそれ自身単独で修復部位に固定され得るため、骨組織再生用材料として、分散ＡＤＳＣｓと比較してより有用である。
また、本発明に係る方法は、アスコルビン酸又はその塩の他に他の物質を使用せずに骨組織再生用材料となるＡＤＳＣｓシートを作製できるため、簡便かつ安価に実施できる。
（本発明の概要）
本発明は、骨分化能を有するＡＤＳＣｓシート（より詳細には、単層のＡＤＳＣｓシート）の作製方法、及び該作製方法で作製されたＡＤＳＣｓシートに関する。
本方法は、細胞分化誘導剤を含まない細胞培養培地にアスコルビン酸又はその塩を添加して調製した溶液を、細胞培養支持体を添加していない培養容器内に加え、該溶液中で、脂肪由来幹細胞を培養することを含む。
特に、ＡＤＳＣｓシートは骨形成用に使用することが好ましい。
本発明は、骨分化能を有するＡＤＳＣｓシート（より詳細には、単層のＡＤＳＣｓシート）の作製方法、及び該作製方法で作製されたＡＤＳＣｓシートに関する。
本方法は、細胞分化誘導剤を含まない細胞培養培地にアスコルビン酸又はその塩を添加して調製した溶液を、細胞培養支持体を添加していない培養容器内に加え、該溶液中で、脂肪由来幹細胞を培養することを含む。
特に、ＡＤＳＣｓシートは骨形成用に使用することが好ましい。
本発明に係るＡＤＳＣｓシートの作製方法は、骨再生及び骨再建のための骨組織再生用材料として使用することができるＡＤＳＣｓシートを、簡便、迅速及び安価に作製できるという利点を有する。
また、本発明に係る作製方法により作成されたＡＤＳＣｓシートは、骨分化能を有する細胞を含み、また、その力学的強度が高いため、それ自身を単独で修復部位に移植されたときにその部位に固定され得るという利点を有する。
本発明は、さらに、本発明の作製方法により作成されたＡＤＳＣｓシートを、骨分化誘導剤を含む細胞培養培地中で培養することを含む、骨芽細胞を含む細胞シートの作製方法を提供する。
（幹細胞）
「幹細胞（stem cell）」とは、複数系統の細胞に分化できる能力（多分化能）と、細胞分裂を経ても多分化能を維持できる能力（自己複製能）を併せ持つ細胞をいう。幹細胞は、発生の過程や組織・器官の維持において細胞を供給する役割を担っている。幹細胞には、全ての系統の細胞に分化することのできる胚性幹細胞、通常は分化系統が限定されている成体幹細胞（組織幹細胞、体性幹細胞）、胚体外組織を除く全ての系統に分化する多能性を有し、人工的に作製された人工多能性幹細胞等が知られている。
「幹細胞（stem cell）」とは、複数系統の細胞に分化できる能力（多分化能）と、細胞分裂を経ても多分化能を維持できる能力（自己複製能）を併せ持つ細胞をいう。幹細胞は、発生の過程や組織・器官の維持において細胞を供給する役割を担っている。幹細胞には、全ての系統の細胞に分化することのできる胚性幹細胞、通常は分化系統が限定されている成体幹細胞（組織幹細胞、体性幹細胞）、胚体外組織を除く全ての系統に分化する多能性を有し、人工的に作製された人工多能性幹細胞等が知られている。
（脂肪由来幹細胞）
「脂肪由来幹細胞（adipose-derived stem cell；ＡＤＳＣｓ）」は、脂肪組織に存在する幹細胞である。主に間葉系幹細胞で構成され、骨髄由来の幹細胞と同様に、骨芽細胞、軟骨細胞、心筋細胞、脂肪細胞、肝細胞、血管内皮細胞及びインスリン分泌細胞等の多種類の細胞に分化することができる多能性を有する。脂肪組織は採取が容易であり、また多量の幹細胞を含むため、ＡＤＳＣｓは容易かつ大量に調製することが可能である。
「脂肪由来幹細胞（adipose-derived stem cell；ＡＤＳＣｓ）」は、脂肪組織に存在する幹細胞である。主に間葉系幹細胞で構成され、骨髄由来の幹細胞と同様に、骨芽細胞、軟骨細胞、心筋細胞、脂肪細胞、肝細胞、血管内皮細胞及びインスリン分泌細胞等の多種類の細胞に分化することができる多能性を有する。脂肪組織は採取が容易であり、また多量の幹細胞を含むため、ＡＤＳＣｓは容易かつ大量に調製することが可能である。
（脂肪由来幹細胞の分離及び精製）
脂肪組織からのＡＤＳＣｓの分離及び精製は、従来報告された公知の方法を参考にして実施できる。例えば、文献Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009;29:1723-1729に記載の方法を用いることができる。あるいは、市販のヒトＡＤＳＣｓ（例：Invitrogen社製品）を使用することもできる。
脂肪組織からのＡＤＳＣｓの分離及び精製は、従来報告された公知の方法を参考にして実施できる。例えば、文献Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009;29:1723-1729に記載の方法を用いることができる。あるいは、市販のヒトＡＤＳＣｓ（例：Invitrogen社製品）を使用することもできる。
（脂肪由来幹細胞シート）
「脂肪由来幹細胞シート（ＡＤＳＣｓシート）」は、個々別々の分散状態にあるＡＤＳＣｓがシート状を形成してなる細胞構築物をいう。
「単層の脂肪由来幹細胞シート」とは、ＡＤＳＣｓが一層のシート状態を形成してなり、重層構造や三次元構造を形成していない細胞構築物をいう。
「脂肪由来幹細胞シート（ＡＤＳＣｓシート）」は、個々別々の分散状態にあるＡＤＳＣｓがシート状を形成してなる細胞構築物をいう。
「単層の脂肪由来幹細胞シート」とは、ＡＤＳＣｓが一層のシート状態を形成してなり、重層構造や三次元構造を形成していない細胞構築物をいう。
本明細書において、個々別々の分散状態にあるＡＤＳＣｓを単にＡＤＳＣｓ又は分散ＡＤＳＣｓといい、シート状を形成してなるＡＤＳＣｓをＡＤＳＣｓシートという。
（脂肪由来幹細胞の由来）
ＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートは、哺乳動物の脂肪由来のものであればいずれでもよく、哺乳動物として、ヒト、サル、ブタ、ブタ、ウマ、ウシ、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、ネコ、イヌ、モルモット等を例示できる。
好ましくは、ヒトの脂肪由来のＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートである。
さらに、ＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートは、骨組織再生材料として使用される場合、同種ＡＤＳＣｓ及び同種ＡＤＳＣｓシートであることが好ましく、自家ＡＤＳＣｓ及び自家ＡＤＳＣｓシートであることがさらに好ましい。
同種ＡＤＳＣｓ及び同種ＡＤＳＣｓシートとは、同じ動物種に由来するＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートを意味する。
自家ＡＤＳＣｓ及び自家ＡＤＳＣｓシートとは、骨組織再生を受ける対象自身に由来するＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートを意味する。
ＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートは、哺乳動物の脂肪由来のものであればいずれでもよく、哺乳動物として、ヒト、サル、ブタ、ブタ、ウマ、ウシ、ウサギ、ヒツジ、ヤギ、ネコ、イヌ、モルモット等を例示できる。
好ましくは、ヒトの脂肪由来のＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートである。
さらに、ＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートは、骨組織再生材料として使用される場合、同種ＡＤＳＣｓ及び同種ＡＤＳＣｓシートであることが好ましく、自家ＡＤＳＣｓ及び自家ＡＤＳＣｓシートであることがさらに好ましい。
同種ＡＤＳＣｓ及び同種ＡＤＳＣｓシートとは、同じ動物種に由来するＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートを意味する。
自家ＡＤＳＣｓ及び自家ＡＤＳＣｓシートとは、骨組織再生を受ける対象自身に由来するＡＤＳＣｓ及びＡＤＳＣｓシートを意味する。
（骨分化能）
「骨分化能」とは、骨芽細胞、骨細胞又はそれらの前駆細胞に分化する能力をいう。すなわち、骨分化誘導条件下で、骨芽細胞、骨細胞又はそれらの前駆細胞に分化する能力をいう。骨分化誘導条件は、インビボ及びインビトロのいずれの条件下であってもよい。インビトロの骨分化誘導として、デキサメタゾン、β−グリセロリン酸、及びアスコルビン酸を含む培地での培養（非特許文献５）や、ＢＭＰ−４、アスコルビン酸−２−リン酸塩、デキサメタゾン及びβ−グリセロリン酸塩を含む培養培地での培養を例示できる。
「骨分化能」とは、骨芽細胞、骨細胞又はそれらの前駆細胞に分化する能力をいう。すなわち、骨分化誘導条件下で、骨芽細胞、骨細胞又はそれらの前駆細胞に分化する能力をいう。骨分化誘導条件は、インビボ及びインビトロのいずれの条件下であってもよい。インビトロの骨分化誘導として、デキサメタゾン、β−グリセロリン酸、及びアスコルビン酸を含む培地での培養（非特許文献５）や、ＢＭＰ−４、アスコルビン酸−２−リン酸塩、デキサメタゾン及びβ−グリセロリン酸塩を含む培養培地での培養を例示できる。
（脂肪由来幹細胞シートの作製方法の特徴）
本発明の脂肪由来幹細胞シートの作製方法では、細胞培養支持体を添加していない培養容器内に、細胞分化誘導剤を含まない細胞培養培地にアスコルビン酸又はその塩を添加して調製した溶液を加え、該溶液中で、脂肪由来幹細胞を培養することを特徴とする。
本発明の脂肪由来幹細胞シートの作製方法では、細胞培養支持体を添加していない培養容器内に、細胞分化誘導剤を含まない細胞培養培地にアスコルビン酸又はその塩を添加して調製した溶液を加え、該溶液中で、脂肪由来幹細胞を培養することを特徴とする。
細胞の培養に使用する容器は、細胞培養用に一般的に使用されているものであれば特に限定されず、シャーレやフラスコなどの細胞培養容器を例示できる。接着性の細胞であれば、このような細胞培養容器の壁面に接着して増殖し、浮遊性の細胞であれば、培養溶液中に遊離の状態で増殖する。このような細胞培養容器を基体と称することがある。
（細胞培養支持体）
「細胞培養支持体」とは、細胞の付着及び増殖、あるいは細胞による三次元構造の構築を目的として基体に被覆又は積層されたコーティング材料で形成された構造体いう。細胞培養支持体として、高分子が架橋した三次元網目構造体であるハイドロゲルやコラーゲンマトリックス（非特許文献３１）等を好ましく例示できる。本明細書において、「細胞培養支持体」と言う場合は、基体を含まない。
「細胞培養支持体」とは、細胞の付着及び増殖、あるいは細胞による三次元構造の構築を目的として基体に被覆又は積層されたコーティング材料で形成された構造体いう。細胞培養支持体として、高分子が架橋した三次元網目構造体であるハイドロゲルやコラーゲンマトリックス（非特許文献３１）等を好ましく例示できる。本明細書において、「細胞培養支持体」と言う場合は、基体を含まない。
細胞培養支持体を添加していない培養容器として、例えば通常市販されているシャーレや細胞培養フラスコ等を例示できる。
（アスコルビン酸又はその塩）
本発明に係る方法で使用するアスコルビン酸は、Ｌ−アスコルビン酸又はその誘導体、例えばＬ−アスコルビン酸−２−グルコシドやＬ−アスコルビン酸−２−リン酸等であり、好ましくはＬ−アスコルビン酸−２−リン酸である。
アスコルビン酸の塩とは、ナトリウム塩又はカルシウム塩等の薬理学的に許容される塩であればいずれの塩であってもよい。
アスコルビン酸−２−リン酸は、間葉系細胞のコラーゲンタンパク質分泌を増加させるが、該細胞に他の影響は何ら与えないことが報告されている（非特許文献３２）。
細胞培養培地に添加されるアスコルビン酸又はその塩は、最終濃度が１０μＭ〜８００μＭ、好ましくは５０μＭ〜５００μＭ、より好ましくは１００μＭ〜２００μＭ、最も好ましくは約１５０μＭになるように細胞培養培地に添加する。
本発明に係る方法で使用するアスコルビン酸は、Ｌ−アスコルビン酸又はその誘導体、例えばＬ−アスコルビン酸−２−グルコシドやＬ−アスコルビン酸−２−リン酸等であり、好ましくはＬ−アスコルビン酸−２−リン酸である。
アスコルビン酸の塩とは、ナトリウム塩又はカルシウム塩等の薬理学的に許容される塩であればいずれの塩であってもよい。
アスコルビン酸−２−リン酸は、間葉系細胞のコラーゲンタンパク質分泌を増加させるが、該細胞に他の影響は何ら与えないことが報告されている（非特許文献３２）。
細胞培養培地に添加されるアスコルビン酸又はその塩は、最終濃度が１０μＭ〜８００μＭ、好ましくは５０μＭ〜５００μＭ、より好ましくは１００μＭ〜２００μＭ、最も好ましくは約１５０μＭになるように細胞培養培地に添加する。
（細胞培養培地）
細胞培養培地は、ＡＤＳＣｓの培養に一般的に使用されている培養培地を使用することができる。例えば、ダルベッコ改変イーグル培地（Dulbecco's modified Eagle's medium；ＤＭＥＭ）を好ましく例示できるが、特に限定されない。
細胞培養培地は、ＡＤＳＣｓの培養に一般的に使用されている培養培地を使用することができる。例えば、ダルベッコ改変イーグル培地（Dulbecco's modified Eagle's medium；ＤＭＥＭ）を好ましく例示できるが、特に限定されない。
（脂肪由来幹細胞の培養条件）
ＡＤＳＣｓの培養条件は一般的に知られている培養条件を採用することができる。
ＡＤＳＣｓシートの作製のためのＡＤＳＣｓ培養日数は、３日〜１５日、好ましくは４日〜１３日、より好ましくは５日〜１０日、さらに好ましくは７日〜１０日、最も好ましくは７日間である。
ＡＤＳＣｓの培養条件は一般的に知られている培養条件を採用することができる。
ＡＤＳＣｓシートの作製のためのＡＤＳＣｓ培養日数は、３日〜１５日、好ましくは４日〜１３日、より好ましくは５日〜１０日、さらに好ましくは７日〜１０日、最も好ましくは７日間である。
（骨芽細胞を含む細胞シート）
本発明に係る作製方法で作製された脂肪幹細胞シートを、骨分化誘導剤を含む細胞培養培地中で培養することにより、骨芽細胞を含む細胞シートを作製し提供することができる。
本発明に係る作製方法で作製された脂肪幹細胞シートを、骨分化誘導剤を含む細胞培養培地中で培養することにより、骨芽細胞を含む細胞シートを作製し提供することができる。
（骨細胞分化誘導剤）
骨細胞分化誘導剤とは、幹細胞や骨系列前駆細胞を、骨芽細胞又は骨細胞に分化させ得る薬剤をいう。骨細胞分化誘導剤として、公知の骨細胞分化誘導剤をいずれも使用することができるが、デキサメタゾン、β−グリセロリン酸、及びアスコルビン酸を含む混合物、並びにＢＭＰ−４、アスコルビン酸−２−リン酸塩、デキサメタゾン及びβ−グリセロリン酸塩を含む混合物を好ましく例示できる。インビトロにおける骨細胞分化誘導は、骨細胞分化誘導剤を加えた培養培地中で、幹細胞や骨系列前駆細胞を、培養することにより実施できる。骨細胞分化誘導剤を加える培養培地は、一般的に使用されている培地であればいずれも使用できるが、α−最小必須培地（alpha-Minimum Essential Media；α−ＭＥＭ）を好ましく例示できる。
培養条件は、骨分化誘導剤を含む細胞培養培地中で、本発明に係る作製方法で作製された脂肪幹細胞シートを培養し、該シート中での骨芽細胞の分化誘導を検出することにより適宜変更して設定することができる。
骨芽細胞の分化誘導の検出は、公知方法、例えばＡＬＰ染色（ALP staining）やアリザリンレッド染色、あるいはＡＬＰ活性の測定により実施することができる。
骨細胞分化誘導剤とは、幹細胞や骨系列前駆細胞を、骨芽細胞又は骨細胞に分化させ得る薬剤をいう。骨細胞分化誘導剤として、公知の骨細胞分化誘導剤をいずれも使用することができるが、デキサメタゾン、β−グリセロリン酸、及びアスコルビン酸を含む混合物、並びにＢＭＰ−４、アスコルビン酸−２−リン酸塩、デキサメタゾン及びβ−グリセロリン酸塩を含む混合物を好ましく例示できる。インビトロにおける骨細胞分化誘導は、骨細胞分化誘導剤を加えた培養培地中で、幹細胞や骨系列前駆細胞を、培養することにより実施できる。骨細胞分化誘導剤を加える培養培地は、一般的に使用されている培地であればいずれも使用できるが、α−最小必須培地（alpha-Minimum Essential Media；α−ＭＥＭ）を好ましく例示できる。
培養条件は、骨分化誘導剤を含む細胞培養培地中で、本発明に係る作製方法で作製された脂肪幹細胞シートを培養し、該シート中での骨芽細胞の分化誘導を検出することにより適宜変更して設定することができる。
骨芽細胞の分化誘導の検出は、公知方法、例えばＡＬＰ染色（ALP staining）やアリザリンレッド染色、あるいはＡＬＰ活性の測定により実施することができる。
（骨組織再生用材料）
骨組織再生用材料とは、骨再生及び骨再建のために使用する材料をいう。
本発明の骨組織再生用材料は、本発明の骨分化能を有する脂肪幹細胞シート、又は、本発明の骨芽細胞を含む細胞シート（又は、本発明に係る作製方法により製造された骨芽細胞を含む細胞シート）を含む。特に、本発明の骨組織再生用材料では、骨芽細胞を含む細胞シートが力学的強度を有しかつ自身単独で骨修復部位に固定されるので、スキャホールドを必要としないことが特徴である。
骨組織再生用材料とは、骨再生及び骨再建のために使用する材料をいう。
本発明の骨組織再生用材料は、本発明の骨分化能を有する脂肪幹細胞シート、又は、本発明の骨芽細胞を含む細胞シート（又は、本発明に係る作製方法により製造された骨芽細胞を含む細胞シート）を含む。特に、本発明の骨組織再生用材料では、骨芽細胞を含む細胞シートが力学的強度を有しかつ自身単独で骨修復部位に固定されるので、スキャホールドを必要としないことが特徴である。
以下、実施例を示して本発明をより具体的に説明するが、本発明は以下に示す実施例によって何ら限定されるものではない。
ヒト脂肪由来幹細胞（ｈＡＤＳＣｓ）を使用し、これら細胞が骨芽細胞へ分化誘導される方法を検討した。
（材料）
ヒト脂肪由来幹細胞は、Life Technologies社より購入した。ＡＤＳＣｓの細胞表面タンパク質の特徴は、フローサイトメトリーにより解析しており、ＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５及びＣＤ１６６陽性であり、ＣＤ１４、ＣＤ３１、ＣＤ４５及びＬｉｎ１陰性である。
ヒト脂肪由来幹細胞は、Life Technologies社より購入した。ＡＤＳＣｓの細胞表面タンパク質の特徴は、フローサイトメトリーにより解析しており、ＣＤ２９、ＣＤ４４、ＣＤ７３、ＣＤ９０、ＣＤ１０５及びＣＤ１６６陽性であり、ＣＤ１４、ＣＤ３１、ＣＤ４５及びＬｉｎ１陰性である。
凍結保存されていたｈＡＤＳＣｓを融解した後、１０％ 牛胎仔血清（ＦＢＳ）（NICHIREI BIOSCIENCES社）及び１％ ペニシリン−ストレプトマイシン溶液（Ｐ／Ｓ）(Wako Pure Chemical Industries社）を加えたＤＭＥＭ（Wako Pure Chemical Industries, Ltd社）にけん濁し、３７℃で１日間インキュベーションした。
前記１日間のインキュベーション後、活性化したｈＡＤＳＣｓの形態が円形から紡錘形に変化することが、光学顕微鏡により観察できた。これらの形態の変化は、細胞からのコラーゲン線維性タンパク質の分泌によるものであり、コラーゲン線維性タンパク質を分泌した細胞はシャーレの底に接着した。
シャーレは予備加温したリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）（Wako Pure Chemical Industries, Ltd.）で静かに３回すすぎ、非接着細胞を除去した。残っているｈＡＤＳＣｓは１０％ ＦＢＳ及び１％ Ｐ／Ｓを加えたＤＭＥＭ中で培養し（非特許文献３３）、そしてそれらがシャーレの面積の９０％を覆うように増殖するまで継代培養した。継代３代目のｈＡＤＳＣｓを以降の実験で使用した。
シャーレは予備加温したリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）（Wako Pure Chemical Industries, Ltd.）で静かに３回すすぎ、非接着細胞を除去した。残っているｈＡＤＳＣｓは１０％ ＦＢＳ及び１％ Ｐ／Ｓを加えたＤＭＥＭ中で培養し（非特許文献３３）、そしてそれらがシャーレの面積の９０％を覆うように増殖するまで継代培養した。継代３代目のｈＡＤＳＣｓを以降の実験で使用した。
（ｈＡＤＳＣｓの骨芽細胞への分化の誘導）
継代３代目のｈＡＤＳＣｓが骨形成への分化能を維持しているか分析した。詳しくは、分化誘導のために、ｈＡＤＳＣｓを公知の骨誘導培地で培養した。骨誘導培地は、１０％ ＦＢＳ、０．１μＭ デキサメタゾン、５０μＭ アスコルビン酸−２−リン酸、１０ｍＭ β−グリセロホスフェート、１％ Ｐ／Ｓを含むα−ＭＥＭ（Wako Pure Chemical Industries社）から成る（非特許文献６、３４−３７）。
１０％ ＦＢＳ及び１％ Ｐ／Ｓのみを含むα−ＭＥＭ溶液を、各条件の対照培地として使用した。
以下、ｈＡＤＳＣｓを骨誘導培地で分化誘導した細胞群をｈＡＤＳＣｓ誘導群と称し、ｈＡＤＳＣｓ対照培地で培養した細胞群をｈＡＤＳＣｓ対照群と称することがある。
継代３代目のｈＡＤＳＣｓが骨形成への分化能を維持しているか分析した。詳しくは、分化誘導のために、ｈＡＤＳＣｓを公知の骨誘導培地で培養した。骨誘導培地は、１０％ ＦＢＳ、０．１μＭ デキサメタゾン、５０μＭ アスコルビン酸−２−リン酸、１０ｍＭ β−グリセロホスフェート、１％ Ｐ／Ｓを含むα−ＭＥＭ（Wako Pure Chemical Industries社）から成る（非特許文献６、３４−３７）。
１０％ ＦＢＳ及び１％ Ｐ／Ｓのみを含むα−ＭＥＭ溶液を、各条件の対照培地として使用した。
以下、ｈＡＤＳＣｓを骨誘導培地で分化誘導した細胞群をｈＡＤＳＣｓ誘導群と称し、ｈＡＤＳＣｓ対照培地で培養した細胞群をｈＡＤＳＣｓ対照群と称することがある。
（ｈＡＤＳＣｓの骨芽細胞への分化誘導の確認）
ｈＡＤＳＣｓからの骨芽細胞分化誘導の成否を、アルカリホスファターゼ染色及びアリザリンレッド染色による組織化学分析により検討した。
詳しくは、アルカリホスファターゼ染色は、骨芽細胞機能の亢進及び骨形成活性亢進の指標として使用されている。アリザリンレッド染色は石灰化の促進の指標として使用されている。したがって、これら染色により陽性が確認された細胞は、骨芽細胞あるいは骨細胞としての機能を有すると考えることができる。
ｈＡＤＳＣｓからの骨芽細胞分化誘導の成否を、アルカリホスファターゼ染色及びアリザリンレッド染色による組織化学分析により検討した。
詳しくは、アルカリホスファターゼ染色は、骨芽細胞機能の亢進及び骨形成活性亢進の指標として使用されている。アリザリンレッド染色は石灰化の促進の指標として使用されている。したがって、これら染色により陽性が確認された細胞は、骨芽細胞あるいは骨細胞としての機能を有すると考えることができる。
これら組織化学分析（非特許文献３８―４０）は、分化誘導培養期間中の１日目、３日目、５日目、７日目、１０日目、２週間目及び３週間目に実施した。
アルカリホスファターゼ染色実施時、培地は除去し、細胞層をＰＢＳで３回すすぎ、そして４％ パラホルムアルデヒド−リン酸緩衝液（Wako Pure Chemical Industries, Ltd）で室温にて５分間固定した。
その後、細胞層を脱イオン水で洗浄した。次いで、固定した細胞を1-Step NBT/BCIP plus Suppressor Solution（Thermo Fisher Scientific社）でインキュベーションした。３７℃で３０分間インキュベーション後、細胞層を脱イオン水で洗浄し、そして裸眼及び光学顕微鏡の両方で観察した。
その後、細胞層を脱イオン水で洗浄した。次いで、固定した細胞を1-Step NBT/BCIP plus Suppressor Solution（Thermo Fisher Scientific社）でインキュベーションした。３７℃で３０分間インキュベーション後、細胞層を脱イオン水で洗浄し、そして裸眼及び光学顕微鏡の両方で観察した。
アリザリンレッド染色の前に、細胞層をＰＢＳで３回すすぎ、そして４％ パラホルムアルデヒド−リン酸緩衝液（Wako Pure Chemical Industries社）で室温にて１０分間固定した。その後、細胞層を脱イオン水で３回洗浄した。次いで、アリザリンレッド染色をオステオジェネシスアッセイキット（ECM815, Millipore社）を使用して、標準プロトコルにしたがって行った（非特許文献４１）。
（本発明のｈＡＤＳＣｓシートの作製）
継代３代目のｈＡＤＳＣｓを、１０ｃｍ シャーレに１×１０６細胞／シャーレで播種し、１０％ ＦＢＳ及び１％ Ｐ／Ｓを添加したＤＭＥＭ中でオーバーコンフルエントになるまで培養し、ｈＡＤＳＣｓシートを作製した。
作製培地は、１０％ ＦＢＳ、５０μＭ アスコルビン酸−２−リン酸、１％ Ｐ／Ｓを含むものである。培地は１週間の間、３日毎に交換した。これが、本願においてＡＤＳＣｓシートを作製するために開発した重要工程である。ｈＡＤＳＣｓシートが作成されたかどうかを確認するために、試料を無作為に採取して検査した。
継代３代目のｈＡＤＳＣｓを、１０ｃｍ シャーレに１×１０６細胞／シャーレで播種し、１０％ ＦＢＳ及び１％ Ｐ／Ｓを添加したＤＭＥＭ中でオーバーコンフルエントになるまで培養し、ｈＡＤＳＣｓシートを作製した。
作製培地は、１０％ ＦＢＳ、５０μＭ アスコルビン酸−２−リン酸、１％ Ｐ／Ｓを含むものである。培地は１週間の間、３日毎に交換した。これが、本願においてＡＤＳＣｓシートを作製するために開発した重要工程である。ｈＡＤＳＣｓシートが作成されたかどうかを確認するために、試料を無作為に採取して検査した。
（作製した細胞シートの骨芽細胞への分化の誘導）
ｈＡＤＳＣｓシートの骨分化を誘導するために、ｈＡＤＳＣｓシートを公知の誘導培地で培養した。
骨誘導培地は１０％ 、０．１μＭ デキサメタゾン、５０μＭ アスコルビン酸−２−リン酸、１０ｍＭ β−グリセロホスフェート、１％ Ｐ／Ｓを含むα−ＭＥＭから成る。
１０％ ＦＢＳ及び１％ Ｐ／Ｓのみを含むα−ＭＥＭ溶液を、各条件の対照培地として使用した。
以下、ｈＡＤＳＣｓシートを骨誘導培地で分化誘導した細胞群をｈＡＤＳＣｓシート誘導群と称し、ｈＡＤＳＣｓシートを対照培地で培養した細胞群をｈＡＤＳＣｓシート対照群と称することがある。
ｈＡＤＳＣｓシートの骨分化を誘導するために、ｈＡＤＳＣｓシートを公知の誘導培地で培養した。
骨誘導培地は１０％ 、０．１μＭ デキサメタゾン、５０μＭ アスコルビン酸−２−リン酸、１０ｍＭ β−グリセロホスフェート、１％ Ｐ／Ｓを含むα−ＭＥＭから成る。
１０％ ＦＢＳ及び１％ Ｐ／Ｓのみを含むα−ＭＥＭ溶液を、各条件の対照培地として使用した。
以下、ｈＡＤＳＣｓシートを骨誘導培地で分化誘導した細胞群をｈＡＤＳＣｓシート誘導群と称し、ｈＡＤＳＣｓシートを対照培地で培養した細胞群をｈＡＤＳＣｓシート対照群と称することがある。
（ｈＡＤＳＣｓシートのＡＬＰ染色キット及びアリザリンレッド染色キットによる染色）
ｈＡＤＳＣｓシートからの骨芽細胞分化誘導の成否を、アルカリホスファターゼ染色及びアリザリンレッド染色による組織化学分析により検討した。組織化学分析は、誘導培養期間中の１日目、３日目、５日目、７日目、１０日目、２週間目及び３週間目に実施した。ＡＬＰ染色及びアリザリンレッド染色は、上記した方法により実施した。
ｈＡＤＳＣｓシートからの骨芽細胞分化誘導の成否を、アルカリホスファターゼ染色及びアリザリンレッド染色による組織化学分析により検討した。組織化学分析は、誘導培養期間中の１日目、３日目、５日目、７日目、１０日目、２週間目及び３週間目に実施した。ＡＬＰ染色及びアリザリンレッド染色は、上記した方法により実施した。
（ＡＬＰ活性の定量及び統計解析）
ｈＡＤＳＣｓ対照群、ｈＡＤＳＣｓ誘導群、ｈＡＤＳＣｓシート対照群及びｈＡＤＳＣｓシート誘導群のそれぞれについてＡＬＰ活性を測定した。
ＡＬＰ活性の測定はTRACP & ALP assay kit（MK301、TaKaRa Bio社）を使用して製造者使用説明書にしたがって行った。チェックポイントは、培養期間の１日目、３日目、５日目、７日目、１０日目、２週間目及び３週間目に設定した。上記４群間のＡＬＰ活性の差異の有意性は、スチューデントｔ−検定を使用した統計解析により評価した。ｐ値が０．０５以下のとき有意であると判定した。
ｈＡＤＳＣｓ対照群、ｈＡＤＳＣｓ誘導群、ｈＡＤＳＣｓシート対照群及びｈＡＤＳＣｓシート誘導群のそれぞれについてＡＬＰ活性を測定した。
ＡＬＰ活性の測定はTRACP & ALP assay kit（MK301、TaKaRa Bio社）を使用して製造者使用説明書にしたがって行った。チェックポイントは、培養期間の１日目、３日目、５日目、７日目、１０日目、２週間目及び３週間目に設定した。上記４群間のＡＬＰ活性の差異の有意性は、スチューデントｔ−検定を使用した統計解析により評価した。ｐ値が０．０５以下のとき有意であると判定した。
（結果）
ｈＡＤＳＣｓ及びｈＡＤＳＣｓシートを光学顕微鏡で観察した。そして、細胞形態の変化を、実験期間中、観察した。細胞数はオーバーコンフルエント状態になった後には変化しなかった。ｈＡＤＳＣｓシートの細胞形態がオーバーコンフルエント状態のｈＡＤＳＣｓのものと同じであることが確認できた（図１）。
ｈＡＤＳＣｓ及びｈＡＤＳＣｓシートを光学顕微鏡で観察した。そして、細胞形態の変化を、実験期間中、観察した。細胞数はオーバーコンフルエント状態になった後には変化しなかった。ｈＡＤＳＣｓシートの細胞形態がオーバーコンフルエント状態のｈＡＤＳＣｓのものと同じであることが確認できた（図１）。
ｈＡＤＳＣｓ対照群とｈＡＤＳＣｓ誘導群との間のＡＬＰ染色の結果の差異は、誘導開始後２週間目に認められ、そしてこれら２群間のアリザリンレッド染色の結果の差異は３週間目に認められた（図２）。
これに対し、ｈＡＤＳＣｓシート対照群とｈＡＤＳＣｓシート誘導群との間の差異はＡＬＰ染色では５日目に、そしてアリザリンレッド染色では７日目に認められた（図３）。
これに対し、ｈＡＤＳＣｓシート対照群とｈＡＤＳＣｓシート誘導群との間の差異はＡＬＰ染色では５日目に、そしてアリザリンレッド染色では７日目に認められた（図３）。
ＡＬＰ染色及びアリザリンレッド染色のいずれにおいても、その染色濃度は経時的に濃くなった。それぞれ対応する染色チェックポイントで、ｈＡＤＳＣｓシート誘導群のＡＬＰ染色及びアリザリンレッド染色の濃度は、ｈＡＤＳＣｓ誘導群のものより濃かった（図２、３）。
ｈＡＤＳＣｓ誘導群のＡＬＰ活性の平均値は、ｈＡＤＳＣｓのＡＬＰ活性が骨誘導の５日後から急増したことを示す（図４）。Life Technologies社の使用者説明書と一致して、この増加は１４日目に最高値に達し、他の研究による報告と一致する（非特許文献４２）。ｈＡＤＳＣｓ対照群のＡＬＰ活性は、実験期間全体にわたって低値の範囲にとどまっていた。
ｈＡＤＳＣｓシート誘導群及びｈＡＤＳＣｓシート対照群はいずれも１日目に、ｈＡＤＳＣｓ誘導群及びｈＡＤＳＣｓ対照群とそれぞれ比較して高いＡＬＰ活性を示した（Ｐ＜０．０５）。特に、ｈＡＤＳＣｓシート誘導群は、ｈＡＤＳＣｓ誘導群より極めて高い値を示した（Ｐ＜０．０５）。ｈＡＤＳＣｓシート誘導群のＡＬＰ活性の直線的増加は１日目から始まり、そして１０日目に最高近くに達した。しかしながら、ｈＡＤＳＣｓシート誘導群のＡＬＰ活性は１４日目及び２１日目でも未だ増加していた。ｈＡＤＳＣｓシート対照群のＡＬＰ活性は、ｈＡＤＳＣｓシート誘導群と比較して、実験期間全体にわたって低値の範囲にとどまっていたが、その値はｈＡＤＳＣｓ対照群のものよりずっと大きかった（Ｐ＜０．０５）（図４）。
このように、ＡＤＳＣｓシート誘導群のＡＬＰ活性が、各時点で分散ＡＤＳＣｓ群のものより高かったことから、ＡＤＳＣｓシートが分散ＡＤＳＣｓと比較して骨形成により有効かつ迅速に作用することが確認された。
すなわち、本発明のＡＤＳＣｓシートの移植片は移植後に、個々別々の分散細胞よりもより早く骨形成にその役割を果たすことができるという利点を有するため、臨床治療に有用である。
すなわち、本発明のＡＤＳＣｓシートの移植片は移植後に、個々別々の分散細胞よりもより早く骨形成にその役割を果たすことができるという利点を有するため、臨床治療に有用である。
（添加するアスコルビン酸濃度の最適化）
上記実施例１において、骨分化能を有する脂肪幹細胞シート及び骨芽細胞を含む細胞シートは優れた骨分化誘導能を有することを確認した。さらに、本実施例では、最適な添加するアスコルビン酸濃度を検討した。詳細は、以下の通りである。
上記実施例１において、骨分化能を有する脂肪幹細胞シート及び骨芽細胞を含む細胞シートは優れた骨分化誘導能を有することを確認した。さらに、本実施例では、最適な添加するアスコルビン酸濃度を検討した。詳細は、以下の通りである。
（ＡＬＰ活性の確認）
５０ μＭ、１５０ μＭ又は４５０ μＭのアスコルビン酸濃度の培地条件で作製したＡＤＳＣｓシートのＡＬＰ活性を４０５ ｎｍ波長の吸光度により測定した。１５０ μＭアスコルビン酸含有培地で作製したＡＤＳＣｓシートは、５０ μＭ及び４５０ μＭのアスコルビン酸含有培地で作製したＡＤＳＣｓシートと比較して、ＡＬＰ活性が高かった（参照：図５）。
これにより、ＡＤＳＣｓシート培地のアスコルビン酸濃度の最適な範囲は、５０ μＭ〜５００ μＭの範囲、より好ましくは１００ μＭ〜２００ μＭであることを確認した。
なお、アスコルビン酸濃度５０ μＭでは、ＡＤＳＣｓシート作製に通常７日間かかる。しかし、アスコルビン酸濃度１５０ μＭでは、ＡＤＳＣｓシート作製は約５日間から作製できた。
５０ μＭ、１５０ μＭ又は４５０ μＭのアスコルビン酸濃度の培地条件で作製したＡＤＳＣｓシートのＡＬＰ活性を４０５ ｎｍ波長の吸光度により測定した。１５０ μＭアスコルビン酸含有培地で作製したＡＤＳＣｓシートは、５０ μＭ及び４５０ μＭのアスコルビン酸含有培地で作製したＡＤＳＣｓシートと比較して、ＡＬＰ活性が高かった（参照：図５）。
これにより、ＡＤＳＣｓシート培地のアスコルビン酸濃度の最適な範囲は、５０ μＭ〜５００ μＭの範囲、より好ましくは１００ μＭ〜２００ μＭであることを確認した。
なお、アスコルビン酸濃度５０ μＭでは、ＡＤＳＣｓシート作製に通常７日間かかる。しかし、アスコルビン酸濃度１５０ μＭでは、ＡＤＳＣｓシート作製は約５日間から作製できた。
（ＡＤＳＣｓシートの強度の確認）
各培養日数において、ＡＤＳＣｓシートの強度を確認した。５０ μＭ、１５０μＭ及び４５０ μＭのアスコルビン酸濃度のいずれの場合においても、力学的強度を有しかつ破れにくいことを確認した。特に、５０ μＭアスコルビン酸濃度ではスクレーパーでゆっくりそっと剥ぎ取らなければならないのに対して、１５０ μＭ及び４５０ μＭアスコルビン酸濃度ではピンセット（トゥイザーズ）でつまんで持ち上げることができた。すなわち、アスコルビン酸濃度１５０ μＭ及び４５０ μＭでは、アスコルビン酸濃度５０ μＭと比較して、優れた力学的強度を有していることを確認した。
これにより、ＡＤＳＣｓシートが力学的強度を有しかつ自身単独で骨修復部位に固定されるので、スキャホールドを必要としないことを確認した。
各培養日数において、ＡＤＳＣｓシートの強度を確認した。５０ μＭ、１５０μＭ及び４５０ μＭのアスコルビン酸濃度のいずれの場合においても、力学的強度を有しかつ破れにくいことを確認した。特に、５０ μＭアスコルビン酸濃度ではスクレーパーでゆっくりそっと剥ぎ取らなければならないのに対して、１５０ μＭ及び４５０ μＭアスコルビン酸濃度ではピンセット（トゥイザーズ）でつまんで持ち上げることができた。すなわち、アスコルビン酸濃度１５０ μＭ及び４５０ μＭでは、アスコルビン酸濃度５０ μＭと比較して、優れた力学的強度を有していることを確認した。
これにより、ＡＤＳＣｓシートが力学的強度を有しかつ自身単独で骨修復部位に固定されるので、スキャホールドを必要としないことを確認した。
（総論）
本発明のＡＤＳＣｓシートの骨分化が早いのは、コラーゲン分泌が高いためであると考えられる。アスコルビン酸−２−リン酸は、間葉系細胞のコラーゲンタンパク質分泌を増加させることが報告されており（非特許文献３２）、また、コラーゲンタンパク質は骨形成系列において細胞シートの良好な天然担体と考えられている（非特許文献３１）。
本発明のＡＤＳＣｓシートは、コラーゲンタンパク質の分泌のゆえに、著しい力学的強度を示し、それらは従来の実験用ピンセット及び従来の外科用具類で直接持つことができる（非特許文献４３、４４）という利点を有する。この点からも、本発明のＡＤＳＣｓシートはインビトロ・インビボでの骨再生及び骨再建に高い有効性を有する。
本発明のＡＤＳＣｓシートの骨分化が早いのは、コラーゲン分泌が高いためであると考えられる。アスコルビン酸−２−リン酸は、間葉系細胞のコラーゲンタンパク質分泌を増加させることが報告されており（非特許文献３２）、また、コラーゲンタンパク質は骨形成系列において細胞シートの良好な天然担体と考えられている（非特許文献３１）。
本発明のＡＤＳＣｓシートは、コラーゲンタンパク質の分泌のゆえに、著しい力学的強度を示し、それらは従来の実験用ピンセット及び従来の外科用具類で直接持つことができる（非特許文献４３、４４）という利点を有する。この点からも、本発明のＡＤＳＣｓシートはインビトロ・インビボでの骨再生及び骨再建に高い有効性を有する。
本発明は、骨組織再生分野、例えば整形外科分野において、骨再生及び骨再建のための材料及びその迅速で有効な作製方法を提供するものであり、このような分野において極めて有用である。
Claims (7)
- 細胞分化誘導剤を含まない細胞培養培地にアスコルビン酸又はその塩を添加して調製し
た溶液を、スキャホールドを添加していない培養容器内に加え、該溶液中で、脂肪由来幹
細胞を培養することを含む、骨分化能を有する脂肪由来幹細胞シートの作製方法であって、
ここで、該アスコルビン酸又はその塩が、１００μＭ〜２００μＭの濃度になるように細胞培養培地に添加されることを特徴とする、作製方法。
- 前記アスコルビン酸又はその塩が、１５０μＭの濃度になるように細胞培養培地に添加されることを特徴とする、請求項１に記載の作製方法。
- 前記脂肪由来幹細胞を培養することが、脂肪由来幹細胞を３日〜１５日間培養することである、請求項１又は２のいずれか１に記載の作製方法。
- 前記脂肪由来幹細胞シートが単層の脂肪由来幹細胞シートである、請求項１〜３のいずれか１に記載の作製方法。
- 請求項１〜４のいずれか１項に記載の作製方法により製造された、骨分化能を有する脂
肪幹細胞シート。
- 請求項５に記載の脂肪幹細胞シートを、骨分化誘導剤を含む細胞培養培地中で培養する
ことを含む、骨芽細胞を含む細胞シートの作製方法。
- 請求項５に記載の骨分化能を有する脂肪幹細胞シート又は請求項６に記載の作製方法に
より製造された骨芽細胞を含む細胞シートを含む骨組織再生用材料。
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